发明内容
本发明所解决的技术问题是,提供了一种高效、无污染的从翠菊中提取多酚类成分的提取工艺。
为了实现本发明的上述目的,本发明的工艺步骤为:取翠菊原料加到提取罐中,加入酸性乙醇溶液,提取,每次提取液回收醇,所得浓缩液合并,上大孔吸附树脂,采用10倍量蒸馏水、10~95%乙醇进行梯度洗脱,分别减压浓缩洗脱液。
所述的酸性乙醇溶液浓度为10%~95%;
所述的大孔吸附树脂选自Hpt-100、D-101或AB-8;
提取中温度为20~100℃,提取时间为0.5~3 h,提取2-3次。
所述的洗脱液在50℃真空条件下浓缩。
本发明的有益效果:
1. 本发明首次选用翠菊作为研究对象,对其中多酚类成分进行提取、制备。所用原料翠菊已实现大规模种植,原料易得、来源广泛、价格低廉,生产成本较低;
2. 本发明首次对翠菊中多酚类成分的提取工艺进行了优选,筛选出了最佳提取条件。在该优选工艺条件下,多酚的提取率可以达到1.38%,适合工业放大和生产;
3. 本发明采用活性追踪法,对翠菊多酚提取物按不同极性进行分段萃取,并首次分别对它们进行体内、外降血糖和抗肿瘤活性评价;
4. 本发明对翠菊提取物各萃取层进行体内、外降糖和抗肿瘤活性评价,首次发现乙酸乙酯萃取层的体内、外降血糖活性与三种阳性对照药相比,活性接近或者优于阳性药,同时该层也显示了较好的抗肿瘤活性。
5.本发明涉及的结果不仅扩展了具有降糖和抗肿瘤活性天然药物的来源,其显示的活性结果也为进一步开发糖尿病及抗癌药物提供科学参考。
具体实施方法:
一、翠菊多酚类成分提取工艺
本发明的工艺步骤为:取翠菊原料加到提取罐中,加入10%~95%的酸性乙醇溶液,提取温度为20~100°℃,提取时间为0.5~3 h,提取2-3次,每次提取液回收乙醇溶液,所得浓缩液合并,上大孔吸附树脂,采用10倍量蒸馏水、10~55%和55%~95%乙醇分别洗脱,10%~55%洗脱液在50°℃真空浓缩得多酚提取物。
作为一种优选方案,工艺参数为:乙醇浓度为50%,提取温度为50°,提取时间为2.5 h。
乙醇浓度、提取温度和提取时间对多酚类的提取效果影响,可见下表。
同时,将提取液合并后,过大孔树脂,本发明采用上述提取的优选条件7考察了三种型号的大孔吸附树脂及不同乙醇浓度梯度洗脱对对多酚类成分富集的影响,结果可见下表。
结果显示,采用如上三种大孔树脂,在10-55%乙醇洗脱浓度下,其多酚类成分的产率均可达1.25%以上,同时,对翠菊多酚提取物的大孔树脂富集效果最好的是45%乙醇洗脱,Hpt-100型号的大孔树脂。
二、α-葡萄糖苷酶抑制活性研究
本发明对50℃提取2.5h的提取物过Hpt-100大孔树脂45%乙醇洗脱流分,进行分层萃取(萃取比例1:5),得到石油醚、二氯甲烷、乙酸乙酯、正丁醇等流分,同时对这几个流分进行α-葡萄糖苷酶抑制活性筛选,发现乙酸乙酯层活性与阳性药阿卡波糖活性相近。
1、磷酸缓冲液的配制:250 mL (0.2 mol/L)磷酸二氢钾与118 mL (0.2 mol/L) NaOH混合得到pH值为6.8的磷酸缓冲液,备用。
2、α-葡萄糖苷酶溶液的配制:适量称取,用双重蒸馏水溶解,保证酶溶液的活力单位为0.02 U/μL。配制好后将其在-4℃下冷冻、避光保存。本次实验取30 μL后加270 μL 缓冲液(稀释10倍)。
3、底物对硝基苯基-α-D-吡喃葡萄糖苷(PNPG)溶液的配制:称取30 mg固体PNPG,溶于5 mL磷酸缓冲液中(6 μg/μL),因底物较难溶解,故用超声波将其振荡20 min,溶解后用黑色塑料袋将其包裹,严密避光,冷藏保存。
4、Na2CO3终止液的配制:取21.2 g Na2CO3溶于蒸馏水中,配成0.2 mol/L的溶液。
操作步骤:
第一组(对照组): 将30 μL的a葡萄糖苷酶溶液加入试管中→加入20 μL的双重蒸馏水→37℃温浴5 min→ 加入150 μL的PNPG→用800 μL 磷酸缓冲液补齐,保证最后体积为1 mL→所有的溶液加齐后,密封,放入水浴锅中37℃温浴30 min →然后将每个瓶中加入2 mL的碳酸钠做为终止剂,停止反应。
第二组~第三组为加药组,分别加入抑制剂 10 mg/mL、3 mg/mL、1 mg/mL共3个浓度梯度。与对照组不同的是用抑制剂代替双重蒸馏水,其它组份保持一致。最后,测出每个瓶中的OD值。所有的反应体系做三个平行。
酶活性抑制率=[A空白- (A样品- A背景)]/A空白×100%
A空白:不加样品反应后的吸收值;
A样品:加入样品反应后的吸收值;
A背景:只加样品的吸收值。
结果如下:
三、PTP1B酶抑制活性实验
1. 储存液的配制:储存液由250 mM Tris与10 mM EDTA组成,分别称取0.6055 g Tris与0.0584 g EDTA溶于10 mL 水中,加浓HCl调节pH值至7.5,定溶至20 mL,4 ℃保存。终浓度Tris-HCl为250 mM,EDTA为10 mM。
保存条件:4 ℃可长期保存。
2. 缓冲液的配制:1 mL存储液加入0.0015 g DTT,0.72 μL β-巯基乙醇,定溶至10 mL备用。
3. 原始包装为50 μg/50 μL,含 25 mM Tris-HCl(pH 7.5),2 mM β-mercaptoethanol, 1mM EDTA, 1 mM DTT和20% Glycerol。
保存条件:4 ℃冻存2-4周,-20 ℃冻存时间更长,若长时间冻存可添加0.1%牛血清白蛋白或人血清白蛋白。避免反复冻融。
使用时取35.4 μL酶溶液加缓冲液稀释至8.3 mL,可供96孔使用。可根据每次实验新化合物数量、浓度梯度、平行数量按比例配置PTP1B酶溶液。
4. 底物的配制:0.1856 g pNPP 用缓冲液定溶至1 mL即可,锡箔纸包裹-20°C保存。
5. 钒酸钠阳性药的配制:取0.816 g十二水钒酸钠,加100 mL蒸馏水,将溶液加热沸腾至半透明,并调节pH至10左右,用移液枪取1 mL溶液至100 mL烧杯中,用玻璃棒搅拌混匀,再次加热至沸腾至半透明,确保钒酸钠为单体形式,待冷却后分装于1.5 mL EP管中,-20℃冷冻保存。
6. 终止液的配制:2 M NaOH。
操作步骤:
第一组(对照组)把83 μL缓冲液加入96孔板中→加入0.4 μL的PTP1B酶→再加入10 μL 1% DMSO溶液→ 最后加入4 μL底物→恒温37℃反应30 min→然后每孔加入终止液5 μL NaOH。
第二组~第三组为加药组,分别加入抑制剂 100 μM、30 μM、10μM共3个浓度梯度。与对照组不同的是用抑制剂代替1%DMSO,其它组份保持一致。最后,测出每个孔的OD值。所有的反应体系做三个平行。
酶活性抑制率=[A空白- (A样品- A背景)]/A空白×100%
A空白:不加样品反应后的吸收值;
A样品:加入样品反应后的吸收值;
A背景:只加样品的吸收值。
四、体外抗肿瘤活性研究
体外抗肿瘤活性实验采用MTT法,MTT法又称MTT比色法,是一种检测细胞存活和生长的方法,该方法已广泛用于一些生物活性因子的活性检测、大规模的抗肿瘤药物筛选、细胞毒性试验以及肿瘤放射敏感性测定等。
操作步骤如下:
1、接种细胞:用含10%胎小牛血清得培养液配成单个细胞悬液,以每孔1000-10000个细胞接种到96孔板,每孔体积100 μL.
2、培养细胞:同一般培养条件,在CO2恒温培养箱中培养12 h。
3、呈色:培养12 h之后,进行加药,每孔加入10 μL。
4、加MTT:MTT溶液(5 mg/mL用PBS配制,pH=7.4) 20 μL,继续孵育4 h, 终止培养,小心吸取孔内培养上清液,对于悬浮细胞需要离心后再吸弃孔内培养上清液。
5、加入DMSO溶液100 μL。
6、比色:选择490 nm波长,在酶联免疫监测仪上测定各孔光吸收值,记录结果。
体外细胞活性抑制率=[A空白- (A样品- A背景)]/A空白×100%
A空白:不加样品反应后的吸收值;
A样品:加入样品反应后的吸收值;
A背景:只加样品的吸收值。
数据结果如下:(IC50值大于50的均无法证明其活性,其应该为具体值或是小于某个值)
从体外降血糖及抗癌活性研究中可以看出,翠菊的多酚类物质对α-葡萄糖苷酶和肿瘤细胞都有较强的抑制作用。
五、翠菊提取物对四氧嘧啶引起小鼠糖尿病模型的降糖试验
取雄性小鼠150只,体重22-24 g,测正常血糖值。禁食32小时,以220 mg/kg剂量腹腔注射四氧嘧啶生理盐水溶液,72小时后测定血糖值,选高血糖造型成功者84只分组,另设空白对照组,共计7组:1、空白对照组;2、模型组;3、降糖灵(市购降糖药)组80 mg/kg;4、糖尿灵片(市购降糖药)组800 mg/kg;5、翠菊提取物高剂量组60 mg/kg;6、翠菊提取物中剂量组30 mg/kg;7、翠菊提取物低剂量组15 mg/kg。每天灌胃给药1次,连续给药7天,禁食后测血糖值。结果见下表。
结果表明,翠菊提取物可明显降低四氧嘧啶至糖尿病模型小鼠的血糖值(p<0.05, 0.01),具有明显的降糖作用,其作用优于糖尿灵片。
通过上述实例可见,翠菊提取物具有抑制肿瘤细胞生长的作用,同时具有抑制胰岛素受体信号通路负性调节子PTP1B酶活力,改善四氧嘧啶高血糖家兔的血糖水平和胰岛素水平,具有明显的降糖作用。并且对于链脲霉素引起小鼠与家兔糖尿病血糖值具有明显的降低作用。
本发明首次从翠菊花中通过大孔树脂富集得到高含量的原花青素类成分,并首次对其乙酸乙酯层流分进行体内外活性研究,通过验证,表明翠菊原花青素富集物的乙酸乙酯层萃取物降血糖及抗肿瘤作用均与所选的阳性药相接近甚至更好。