CN103417990A - 人miR-148a在制备促进脂肪细胞增殖药物中的应用 - Google Patents
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Abstract
本发明基于基因工程领域,公开了人miR-148a在制备促进脂肪细胞增殖药物中的应用。本发明的技术方案为人miR-148a在制备促进脂肪细胞增殖药物中的应用。本发明的研究结果表明在人脂肪细胞中过表达miR-148a可以明显促进脂肪细胞的增殖速度和细胞个数,可用于制备促进脂肪细胞增殖的药物。
Description
技术领域
本发明属于基因工程领域,涉及人miR-148a在制备促进脂肪细胞增殖药物中的应用。
背景技术
肥胖已成为危害全球人类健康的重要问题之一,受到社会的广泛关注。随着经济发展和生活方式改变,中国的肥胖人口也急剧增长,且低龄化趋势十分突出。肥胖相关的各种并发症,如高血压、糖尿病和心脑血管疾病等,严重威胁着人类健康。《新英格兰医学杂志》一项调查显示中国糖尿病发病率已高达10%,且很大程度与肥胖有关。肥胖的科学治疗及其并发症的防治已成为临床医生面临的挑战。目前已知肥胖是机体在遗传、环境、行为因素或三者相互作用下能量代谢失衡的结果,并且随着遗传学和生物学的发展,遗传因素在肥胖发生中的重要性已倍受重视。已有研究结果指出,肥胖发生的病因中遗传因素占40-70%,开展肥胖病因的遗传学研究十分重要。
在前期研究工作中,发明人采用miRNA芯片(miRNA Array)技术筛选人脂肪细胞分化前后的差异表达miRNA,获得一条特异高表达于成熟脂肪细胞的miRNA-------人miR-148a,提示其可能与肥胖的发生发展相关。该miRNA位于人Chr7p15.2,属于基因间的miRNA。但目前没有关于人miR-148a在脂肪细胞中的功能报道。
发明内容
本发明的目的是提供人miR-148a在制备促进脂肪前体细胞增殖药物中的应用。
发明人在研究中发现人miR-148a过表达组的细胞增殖速度明显快于空载对照组细胞,细胞个数明显增加,人miR-148a过表达组的脂肪细胞中S期细胞比例显著高于空载对照组,表明染色质合成期细胞较多,细胞增殖速度加快,可见人miR-148a能够显著促进脂肪细胞增殖,因此,本发明提出了人miR-148a在制备促进脂肪细胞增殖药物中的应用的技术方案。
本发明的有益效果:
本发明检测了人miR-148a过表达对脂肪细胞增殖功能的影响,显示过表达miR-148a能促进脂肪细胞增殖(细胞个数增多且增殖速度加快),可用于制备促进脂肪细胞增殖的药物,为研究肥胖的发生发展提供了新的研究手段。
附图说明
图1:pGLV-H1-GFP/Puro载体图谱、插入位点及人miR-148a过表达慢病毒载体酶切及测序鉴定
图2:人miR-148a过表达慢病毒感染人脂肪前体细胞株的鉴定
图3:人miR-148a过表达的脂肪细胞和对照细胞生长曲线图。
其中:pGLV-H1-miR-148a-GFP/Puro:miR-148a过表达的前体脂肪细胞,pGLV-H1-GFP/Puro:空载转染对照细胞。
图4:人miR-148a的脂肪细胞和对照细胞12、24、48、72小时细胞各周期分布图。
其中:pGLV-H1-miR-148a-GFP/Puro:miR-148a过表达的前体脂肪细胞,pGLV-H1-GFP/Puro:空载转染对照细胞,G1:染色质合成前期,S:染色质合成期,G2/M:染色质合成后期及分裂期。
具体实施方式
以下通过实施例对本发明作进一步阐述,但不限制本发明
实施例1
1 材料和方法
1.1 试验材料:人前体脂肪细胞株(Human Preadipocytes-visceral,HPA-v)购自美国Sciencell公司。本实验所需的pGLV-H1-GFP/Puro质粒购自上海吉玛公司,包装质粒Pcgvp、Rev、Vsvg购自美国Allele Biotech&Pharmaceuticals公司;pGLV-H1-miR-148a-GFP/Puro慢病毒载体由本实验小组自行构建;DNA、RNA抽提试剂盒购自德国Qiagen公司,miRNA逆转录试剂盒、miRNA检测试剂盒、TanMan基因表达mixⅡ购自美国ABI公司,TaKaRa LA TaqDNA Polymerase Hot-Start Version PCR试剂盒购自日本Takara公司,脂肪细胞专有培养基7211购自美国Sciencell公司,限制性内切酶、T4连接酶购自美国NEB公司,引物由美国Invitrogen公司合成。
1.2 实验方法:
(一)人miR-148a minigene的扩增及人miR-148a慢病毒过表达载体(pGLV-H1-miR-148a-GFP/Puro)的构建
(1).DNA提取:按照以下步骤提取基因组DNA(德国Qiagen公司QIAamp DNAMini Kit)
1)取4ml离心管一只,加入600μl核裂解液,冰上冷却。
2)加入10-20mg解冻的人脂肪组织,匀浆机匀浆10秒。将裂解物移至1.5ml离心管中。65℃孵育30分钟。
3)待样品达到室温后,加入200μl蛋白沉淀液,涡旋震荡20秒,置于冰上冷却5分钟。
4)13,000×g离心4分钟,可见白色沉淀。将上清移至一新离心管中。
5)加入600μl异丙醇,轻轻颠倒混匀溶液,直至白色线状DNA形成。13,000×g离心1分钟,弃去上清。
6)加入600μl室温70%乙醇,轻轻颠倒离心管数次,13,000×g离心1分钟,小心弃去上清。将离心管倒置在干净的吸水纸上,自然干燥10-15分钟。
7)向离心管中加入50μl双蒸水,65℃孵育1小时,以充分溶解DNA,4℃保存。
(2).人miR-148a minigene的扩增
(2.1)通过miRBase数据库获得人miR-148a的前体pre-miRNA-148a的序列;在NCBIblast中比对查找其所在的基因组序列,根据引物设计规则,采用Primer5软件设计扩增包括pre-miR-148a在内的序列,并在其上游和下游分别引入BamHI和EcoRI酶切位点,上游引物(含BamHI位点,下划线区域)5′-GCCGGATCCAATCTGAGGACGGGTAGGAAG-3’;下游引物(含EcoRI位点,下划线区域)5'-ACCGAATTCCAAGGGAAAGGCGCAGCGACGTG-3’,目的基因长度为443bp。(PCR试剂盒:TaKaRa LA TaqDNA Polymerase Hot-Start Version,Takara)
PCR反应条件为:预变性94℃5min;
终末延伸72℃10min
(2.2)PCR产物切胶纯化回收(Gel/PCR Extraction Kit,Biomiga)
1)按照5μl PCR产物+1μl上样缓冲液(6×)比例混匀后,在1.0%琼脂糖凝胶上电泳,在成像仪显色下,切取443bp的目的条带于离心管中。
2)加入1倍体积的Buffer GC,至于55℃水浴中8-10分钟,至凝胶完全融化。冷却至室温。
3)转移以上混合液至一带有收集管的吸附柱中,室温下,13,000×g离心1分钟,倒掉收集管中的废液。重复此步骤,直至剩余液体全部通过吸附柱。
4)加入650μl DNA Wash Buffer至吸附柱中,室温下,13,000×g离心30秒,倒掉废液,重复此步骤。
5)室温下,13,000×g开盖离心2分钟,去除残余的乙醇。
6)转移吸附柱至一新的1.5ml的离心管中,加入30-50μl在60℃预热的ddH2O,室温放置数分钟,13,000×g离心1分钟。
(2.3)PCR产物及载体pGLV-H1-GFP/Puro双酶切
PCR产物及载体pGLV-H1-GFP/Puro分别按照下述反应体系,37℃反应1小时,得PCR产物目的片段及载体片段。
照下述反应体系,37℃反应1小时。
酶切产物,加入2倍体积Buffer GC后,瞬时离心。其余步骤按照上述切胶纯化回收步骤进行纯化。
(2.4)PCR产物及载体pGLV-H1-GFP/Puro连接反应
按照载体片段和PCR产物目的片段数目比例1:3左右加反应体系,体系中加入1μlT4DNA连接酶及1μl T4DNA Buffer,16℃过夜,得到连接产物(pGLV-H1-miR-148a-GFP/Puro)。以不加入目的片段的载体为对照。
(2.5)转化(无菌操作)
1)从-80℃冰箱取出TOP10感受态细胞,冰上融化,每200μl感受态细菌加入2-4μl连接产物,轻轻扣击管壁混匀细菌。
2)冰上30min,42℃热休克90sec,然后迅速放置冰上3min。
3)加入500μl预热到37℃的LB培养基,37℃200转/分钟培养90分钟。然后将菌液铺于含有Ampicillin抗生素(100mg/ml)的LB固体培养板。
4)37℃孵育,培养板先正置1h后倒置培养12-16小时后挑取克隆或于4℃保存。
(2.6)阳性克隆扩增和质粒抽提(质粒抽提试剂盒为德国QIAGEN公司PlasmidMini Kit)
1)取5ml无菌Ampicillin LB液体培养基(100mg/ml),加入到无菌的15ml试管中,用无菌移液器枪头在培养板上随机挑选阳性克隆,置于上述试管中,37℃200rpm振荡孵育过夜。
2)室温下,10,000rpm离心1分钟,收集菌体,并尽可能弃去上清
3)加入250μl Buffer A1,涡旋震荡混匀。
4)加入250μl Buffer B1,混匀后静置5分钟至溶液粘稠而澄清
5)加入350μl Buffer N1,立即反转多次,至溶液充分混匀,此时出现白色絮状沉淀。13,000rpm离心10分钟。
6)吸取上清至带有收集管的DNA吸附柱中,13,000rpm离心1分钟,弃去收集管中的废液。
7)加入500μl Buffer KB,室温下13,000rpm离心1分钟,弃去收集管中的废液。
8)加入500μl DNA Wash Buffer,13,000rpm离心1分钟,弃去收集管中的废液。充分此步骤后,开盖离心5分钟。
9)向吸附柱中加入50-100μl ddH2O。
(2.7)pGLV-H1-miR-148a-GFP/Pur双酶切验证、测序及保种
按照前述酶切方法(表1)进行双酶切后,1%琼脂糖凝胶电泳,切开双条带及条带大小与目的条带分子量相符(约400多bp)进,进行测序验证。同时取无菌1.5ml离心管并作标记,加入0.15ml无菌甘油溶液,分别吸取0.85ml阳性克隆的菌液,加入相应标记的离心管中,充分混匀,贮存于-80℃保种。构建载体及酶切、测序结果见图1。
1.2(二)慢病毒包装
在37℃、5%CO2孵箱中,以含10%胎牛血清的DMEM高糖培养基培养病毒包装细胞HEK-293T细胞(美国ATCC)。将HEK-293T细胞按105/ml密度均匀接种于6孔板中,待细胞融合度达80%左右时,共转染慢病毒表达质粒与包装质粒,转染试剂(美国Invtrogen公司LipofectamineTM 2000)(μl)与表达和包装质粒总质量(μg)比例为2.5:1,慢病毒表达质粒与包装质粒Pcgvp、Rev、Vsvg比例为1.5:1.5:1:0.5(质量比)。转染12h换液,24h后使用荧光显微镜观察转染效率,于48h、72h收取细胞培养液上清(即病毒液),0.45μM滤器过滤后,分装-80℃冻存。
1.2(三)慢病毒感染人脂肪前体细胞
在37℃、5%CO2孵箱中,以含5%胎牛血清的人脂肪细胞专用培养基(7211,Sciencell)培养人脂肪前体细胞,按105/ml密度接种于6孔板中,待细胞融合度达60%左右时,将收集的病毒上清与凝聚胺(polybrene,终浓度5μg/ml)一同加入人脂肪前体细胞,24h后换液,48h-72h在荧光显微镜通过观察荧光表达情况判断感染效率,80%以上细胞可见绿色荧光,表明感染效率达到80%以上(见图2),72h时使用RNA抽提试剂盒(TRIzol法)提取细胞总RNA。
1.2(四)Real-time PCR鉴定人miR-148a在人脂肪前体细胞中过表达
分别收集miR-148a慢病毒组(miR-148a过表达组)及空载对照组的人脂肪前体细胞,使用RNA抽提试剂盒(TRIzol法)抽提总RNA,Nanodrop2.0检测RNA浓度,定量150ng总RNA用于逆转录,经特异性茎环引物(美国ABI公司,miR-148a检测试剂盒)逆转录为cDNA,进一步使用相应引物探针(美国ABI公司,miR-148a检测试剂盒)检测人miR-148a的表达。Realtime PCR反应体系为:TanMan gene expression master MixII 10μl,cDNA1μl,TanMan引物探针1μl,双蒸水8μl,共20μl,在ABI 7500运行,条件为:预变性95℃10min后,95℃15s,60℃1min,重复40个循环。用△△CT法计算人miR-148a的相对表达量。结果见图2。
1.2(五)脂肪细胞增殖的测定
A.整个增殖实验过程检测72小时细胞生长速度,在此期间应保证细胞增殖一直处于对数增长期,为了避免实验中途细胞出现生长接触抑制影响实验结果,必须先确定实验初始阶段种植于96孔板中每孔适宜的细胞数。消化呈对数增长期的人脂肪前体细胞,分别以每孔100,200,300,400,500,600,700,800,900,1000个细胞数的密度将细胞种植于96孔板上。37℃孵箱培养72小时,期间根据细胞情况换液一次。倒置显微镜下观察细胞生长状态,以72小时不发生细胞生长接触抑制、实验结束时细胞密度在80%左右为最佳。本实验确定人脂肪前体细胞起始生长浓度为500个细胞/孔。
将人miR-148a过表达的脂肪细胞、空载对照细胞,接种于72孔细胞培养板,接种密度约为每孔500个细胞,以PAM培养基培养72小时,分别于第0、4、8、12、24、48、72、时取细胞进行细胞生长活力测定(CCK-8法),连续4天后,根据CCK-8吸光度值画出生长曲线(见图3)。
B.将人miR-148a过表达的脂肪细胞、空载对照细胞,培养于细胞培养瓶,以无胎牛血清的PAM培养基培养48小时后,使细胞同步化,停留于G0期。恢复含胎牛血清的PAM培养基进行培养,并在恢复血清培养后的第0、12、24、48、72小时收取细胞,70%冰乙醇固定后经流式细胞仪检测细胞各周期分布,计算不同时间点S期细胞(染色质合成期)分布(代表细胞增殖能力)。
2.结果
通过CCK-8法实验发现在72小时内,人miR-148a过表达组的细胞增殖速度明显快于空载对照组细胞,细胞个数明显增加(见图3);通过检测细胞周期发现,在恢复血清培养第24、48小时,人miR-148a过表达组的脂肪细胞中S期细胞比例显著高于空载对照组,表明染色质合成期细胞较多,细胞增殖速度加快(见图4)。
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