CN103361315A - 一种稳定表达hbv耐药变异株细胞系及其用途 - Google Patents
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Abstract
本发明属生物技术、微生物动物细胞系领域,涉及一种能够稳定表达HBV耐药变异株细胞系及其用途。本发明采用HBV真核表达质粒pREP-HBV-WT,定点诱变为阿德福韦耐药基因型A181V后插入切除RSV启动子的pREP10构建成HBV真核表达质粒pREP-HBV-A181V,转染HepG2细胞后通过潮霉素筛选,建立耐药HBV细胞克隆株HepG2.HS181V。该细胞株的保藏编号:CGMCC No.5829,分类命名:人肝癌细胞株。该耐药HBV细胞克隆株能持续表达HBsAg及HBeAg,胞内有HBV复制,并可以产生感染性HBV颗粒。该细胞系HepG2.HS181V表达HBsAg及HBeAg明显高于Hep2.2.15,细胞上清HBV颗粒水平低于HepG2.2.15。能用于筛选抗药物、研究HBV生物学特点及其与细胞间相互作用的HBV细胞模型的建立。
Description
技术领域
本发明属生物技术、微生物动物细胞系领域,具体涉及一种能够稳定表达HBV耐药变异株细胞系及其用途。
背景技术
HBV细胞模型是筛选抗药物、研究其生物学特点及其与细胞间相互作用的必要工具,在研究有关发病机制、免疫机制、抗病毒药物的筛选中有重要的作用。本领域公知Hep2.2.15细胞是HBV细胞模型开发研究的里程碑,其用含2个HBV头对尾二聚体的pDolt-HBV-1重组载体转染HepG2细胞,经G418筛选后获得一个产高水平HBsAg和HBeAg的细胞克隆,其胞内外均能检测到HBV-DNA以及具有感染性的完整病毒颗粒。目前Hep2.2.15仍是应用最为广泛的HBV细胞模型。近年来以拉米夫定为代表的核苷类似物类抗HBV药物的临床应用在为慢性乙型肝炎(CHB)患者带来福音的同时,也带来了严重的耐药问题,因此,对于HBV耐核苷类药物的分子生物学机制的研究成为重中之重。在HBV耐药株逐年上升的临床背景下,HepG2.2.15显然已经不能完全满足对于耐核苷类药物HBV病毒株的研究,为研究HBV耐药的分子生物学机制以及新的抗HBV药物的筛选,需要建立一种能够稳定表达HBV耐药变异株细胞系。
现有技术公开了耐核苷类药物HBV的基因变异主要集中于反转录区(RT区),研究显示,目前临床最广泛的耐药病毒株为rtM204V即YVDD变异,可以导致HBV对于拉米夫定(LAM)的敏感性明显下降,可低于对照野毒株越45倍左右。虽然阿德福韦(ADV)可以治疗LAM耐药患者,但ADV诱导的rtA181以及rtN236变异的耐药株相继在临床被发现,明显增加了治疗难度以及医疗成本。由于RT区核苷酸变异可能影响耐核苷类药物HBV变异株的复制能力,由HBV耐药变异株基因构建稳定表达HBV变异株细胞系的难度也相应增高。有学者在含核心启动子1.3-1.7倍体或外源性CMV启动子1.1倍体HBV真核表达载体直接诱变为耐药基因型转染HepG2细胞试图构建HBV变异株细胞系,但总体结果显示,HBV-DNA合成、HBsAg与HBeAg等病毒蛋白以及病毒颗粒释放水平明显低于Hep2.2.15细胞。至今仍未见有关适用目前严重的耐药问题研究的HBV变异株细胞系的报道。本申请在前期构建野生型以及LAM耐药变异型细胞系基础上构建了适合目前严重的耐药问题研究的耐ADV HBV细胞株。
发明内容
本发明的目的是提供一种能够稳定表达HBV耐药变异株细胞系HepG2.HS181V。
本发明的进一步目的是提供该稳定表达HBV耐药变异株细胞系HepG2.HS181V的医用用途。该细胞系能用于筛选抗HBV药物、研究HBV生物学特点及其与细胞间相互作用的HBV细胞模型的建立。
本发明采用HBV真核表达质粒pREP-HBV-WT(质粒由福建医科大学分子病毒实验室林旭教授馈赠),其载体骨架为pREP10载体,HBV复制子为含cp启动子以及完整HBV前基因组的HBV1.2倍体,并定点诱变为阿德福韦耐药基因型A181V后插入切除RSV启动子的pREP10构建成HBV真核表达质粒pREP-HBV-A181V。将该质粒转染HepG2细胞后通过潮霉素筛选后检测细胞中HBV复制、特异性抗原的表达及病毒颗粒的产生,并与HepG2.2.15细胞株相比较,确立耐药HBV细胞克隆株HepG2.HS181V的建立。经检测,结果显示该耐药HBV细胞克隆株pREP-HBV-A181V能持续表达HBsAg及HBeAg,胞内有HBV复制,并可以产生感染性HBV颗粒。与目前广泛使用的Hep2.2.15相比,该细胞系HepG2.HS181V表达HBsAg及HBeAg明显高于Hep2.2.15,细胞上清HBV颗粒水平与略低于HepG2.2.15。该细胞株已于2012年3月6日保藏,保藏单位:中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(CGMCC),北京市朝阳区北辰西路1号院3号,中国科学院微生物研究所,100101,保藏编号:CGMCC No.5829,分类命名:人肝癌细胞株。
本发明中,所述的pREP10载体相对优势在于潮霉素Hygromycin抗性基因有利于细胞筛选工作以及EBNA-1基因转录蛋白能够上调含OriP复制原点的真核表达质粒中基因转录和表达。
本发明的细胞株HepG2.HS181V通过下述方法构建,
1.质粒转染HepG2细胞
①细胞培养:HepG2细胞以DMEM培养液培养,
②细胞转染:将处于生长对数期的细胞,以0.25%胰酶消化,吸去胰酶后,制成单个细胞悬液,计数,按5×105细胞/孔的浓度接种至6孔培养板培养,待细胞融合,换无抗生素的培养液,备转染,将Opt iDMEM培养液与Lipofectamin2000转染试剂(Invitrogen)混合,同时将质粒DNA稀释于OptiDMEM培养液中,混匀后室温静置,将稀释的Lipofectamin2000与质粒DNA混和,室温静置,滴加入6孔板中,PBS清洗换培养液,继续培养;
2.潮霉素筛选细胞克隆
①转染后细胞扩大培养,并设空白对照(未转染HepG2细胞),
②待细胞贴壁后加入潮霉素,
③每3天换液一次,
④待空白对照细胞死亡后观察细胞克隆生长情况,
⑤挑取细胞克隆,以潮霉素继续培养,
⑥待细胞克隆密度至60-70%后测上清中的HBsAg、HBeAg以及HBV-DNA水平,
⑦获取HBsAg、HBeAg以及HBV-DNA阳性克隆株,传至6孔培养板以潮霉素继续培养;
3.细胞克隆的有限稀释
定量获得的阳性克隆细胞HBsAg、HBeAg以及HBV-DNA水平,细胞传至10代左右,行有限稀释法获取更纯净以及高水平表达蛋白细胞克隆,
将处于生长对数期的细胞,以0.25%胰酶消化,吸去胰酶后,用细胞培养液吹打成单个细胞悬液,计数后细胞密度稀释为10cell/ml,接种96孔含潮霉素培养板,显微镜下观察每孔细胞数,标记只接种1cell的培养孔,继续培养,每周换液一次,2-3周后待细胞密度约60%左右后传至24孔培养板继续培养,待24孔中细胞密度至60-70%后测上清中的HBsAg、HBeAg以及HBV-DNA水平,将HBsAg、HBeAg以及HBV-DNA水平较高的细胞克隆定义为pREP-HBV-A181V。
4.稳定表达A181V变异株的生物学特征及表型耐药分析
1)细胞上清HBsAg、HBeAg以及HBV-DNA水平检测
HBsAg及HBeAg精确定量试剂盒采用Abbott公司Archipct HBsAg Reagentkit和Archipct HBeAg Reagent kit,HBV-DNA检测采用上海科华生物工程有限公司乙肝病毒核酸定量检测试剂盒,检测步骤按照试剂盒提供说明书,real-timePCR扩增仪采用ABI-7300;
2)细胞内病毒复制检测
细胞总DNA抽提,6孔板中细胞90%汇合度时加入400ul细胞裂解液,37℃过夜,加入等量的酚进行DNA抽提、沉淀后DNA溶解于TE,凝胶电泳后20XSSC转膜,southern-blot杂交,结果显示HBV杂交信号;
3)HBV YVDD变异株细胞表型耐药分析
105cell/孔细胞密度接种12孔板,细胞贴壁后加入核苷类抗病毒药物,拉米夫定设浓度梯度,阿德福韦设浓度梯度,每个浓度梯度设复孔,隔天换液,第10天检测细胞上清HBV-DNA水平,细胞抽提胞内总DNA检测胞内HBV复制情况,
结果显示,细胞上清HBV-DNA水平随LAM浓度梯度升高104下降至103之下,对LAM敏感性较野生型明显下降。HBV-DNA随ADV浓度上升下降不明显,表明HBV对ADV耐药。
本细胞株具有以下生物学特性
1,该耐药HBV细胞克隆株pREP-HBV-A181V能持续表达HBsAg及HBeAg,胞内有HBV复制,并可以产生感染性HBV颗粒;
2,与目前广泛使用的Hep2.2.15相比,该细胞系表达HBsAg及HBeAg明显高于Hep2.2.15,细胞上清HBV颗粒水平与略低于HepG2.2.15。
本发明的稳定表达HBV耐药变异株人肝癌细胞株HepG2.HS181V能用于筛选抗药物、研究HBV生物学特点及其与细胞间相互作用的HBV细胞模型的建立。
附图说明
图1:pREP-HBV-A181V HBV耐药变异细胞株上清HBsAg、HBeAg和HBV-DNA表达水平,HBsAg水平维持于60-80IU/ml之间,为Hep2.2.15细胞5-10倍左右;HBeAg水平60S/CO之间,为Hep2.2.15细胞5-10倍左右,HBV-DNA维持于104-105之间,略低于Hep2.2.15细胞,并随传代次数增加无明显下降。
图2:pREP-HBV-A181V HBV耐药变异细胞株耐药表型分析,细胞上清HBV-DNA水平随LAM浓度梯度升高104下降至103之下,但对LAM敏感性较野生型明显下降,HBV-DNA随ADV浓度上升下降不明显,提示HBV对ADV耐药。
图3:Southern-blot结果提示pREP-HBV-A181V胞内HBV复制较HepG2.2.15略高。
具体实施方式
实施例1
本发明的细胞株HepG2.HS181V通过下述方法构建,
1,质粒转染HepG2细胞
①细胞培养:HepG2细胞以DMEM培养液(Gibco公司,含10%小牛血清,100U/ml青霉素,100μg/ml链霉素,0.03%谷氨酰胺)培养,
②细胞转染:将处于生长对数期的细胞,以0.25%胰酶消化,吸去胰酶后,用细胞培养液吹打成单个细胞悬液,计数。按5×105细胞/孔的浓度接种至6孔培养板,培养18-24小时后,待细胞约80-90%融合成片时,换新鲜无抗生素的培养液,准备转染。按照每孔转染2μg的量,将50μl OptiDMEM培养液与5μlLipofectamin2000转染试剂(Invitrogen)混合,同时将2μg质粒DNA稀释于50μl OptiDMEM培养液中,混匀后室温静置5分钟。将稀释的Lipofectamin2000与质粒DNA混和,室温静置20分钟。将混合物均匀滴加入6孔板中,6小时后用PBS清洗2遍后换新鲜培养液,继续培养;
2,潮霉素筛选细胞克隆
①转染后细胞培养24小时后扩大培养至10cm培养皿,并设空白对照(未转染HepG2细胞),
②待细胞贴壁后加入潮霉素浓度至300ug/ml,
③每3天换液一次,
④约14-21天待空白对照细胞全部死亡后观察细胞克隆生长情况,
⑤挑取细胞克隆至24孔培养板,以潮霉素浓度150ug/ml继续培养,
⑥待24孔培养板中细胞克隆密度至60-70%后测上清中的HBsAg、HBeAg以及HBV-DNA水平,
⑦获取HBsAg、HBeAg以及HBV-DNA阳性克隆共4株,将阳性克隆传至6孔培养板以潮霉素浓度150ug/ml继续培养;
3,细胞克隆的有限稀释
获得的阳性克隆中1株细胞克隆HBsAg、HBeAg以及HBV-DNA水平较高,经定量后上清HBsAg为60-80IU/ml左右,HBeAg水平60S/CO左右,HBV-DNA水平维持于104-105copies/ml,细胞传至10代左右,行有限稀释法获取更纯净以及高水平表达蛋白细胞克隆,
将处于生长对数期的细胞,以0.25%胰酶消化,吸去胰酶后,用细胞培养液吹打成单个细胞悬液,计数后细胞密度稀释为10cell/ml,接种96孔培养板,每孔150ul培养基(含潮霉素浓度150ug/ml),显微镜下观察每孔细胞数,标记只接种1cell的培养孔,继续培养,每周换液一次,2-3周后待细胞密度约60%左右后传至24孔培养板继续培养,待24孔中细胞密度至60-70%后测上清中的HBsAg、HBeAg以及HBV-DNA水平,将HBsAg、HBeAg以及HBV-DNA水平较高的细胞克隆定义为pREP-HBV-A181V,建立了稳定表达HBV耐药变异株HepG2.HS181V。4,稳定表达A181V变异株的生物学特征及表型耐药分析,
1)细胞上清HBsAg、HbeAg以及HBV-DNA水平检测
HbsAg及HbeAg精确定量试剂盒采用Abbott公司Archipct HbsAg Reagentkit和Archipct HbeAg Reagent kit,HBV-DNA检测采用上海科华生物工程有限公司乙肝病毒核酸定量检测试剂盒,检测步骤按照试剂盒提供说明书,real-timePCR扩增仪采用ABI-7300,检测结果如图1所示;
2)细胞内病毒复制检测
细胞总DNA抽提,6孔板中细胞90%汇合度时加入400ul细胞裂解液,37℃过夜(细胞裂解液1XSDS/Pronase buffer,2mg/ml pronase、50mM Tris.HClPh7.5、10mM EDTA、100mM NaCl、0.2%SDS),加入等量的的酚进行DNA抽提、沉淀后DNA溶解于20ul TE。1.3%凝胶电泳后20XSSC转膜,southern-blot杂交。结果可见HBV杂交信号提示胞内HBV复制(如图3所示)。
3)HBV YVDD变异株细胞表型耐药分析
105cell/孔细胞密度接种12孔板,细胞贴壁后加入核苷类抗病毒药物,拉米夫定设0、0.3uM、1uM、3uM、10uM、30uM 6个浓度梯度,阿德福韦设0、0.5uM、1uM、2uM、5uM、10uM 6个浓度梯度,每个浓度梯度设复孔,隔天换液,第10天检测细胞上清HBV-DNA水平,细胞抽提胞内总DNA检测胞内HBV复制情况,
结果显示,细胞上清HBV-DNA水平随LAM浓度梯度升高104下降至103之下,对LAM敏感性较野生型明显下降。HBV-DNA随ADV浓度上升下降不明显,表明HBV对ADV耐药(如图2所示)。
Claims (3)
1.一种稳定表达HBV耐药变异株细胞系,其特征是,所述细胞为稳定表达HBV耐药变异株HepG2.HS181V,保藏编号:CGMCC No.5829,分类命名:人肝癌细胞株;具有以下生物学特性:
1)能持续表达HBsAg及HBeAg,胞内有HBV复制,能产生感染性HBV颗粒;
2)表达HBsAg及HBeAg明显高于Hep2.2.15,细胞上清HBV颗粒水平低于HepG2.2.15。
2.权利要求1的稳定表达HBV耐药变异株细胞系在制备筛选抗HBV药物中的用途。
3.权利要求1的稳定表达HBV耐药变异株细胞系在制备HBV细胞模型中的用途。
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---|---|---|---|---|
CN101988129A (zh) * | 2009-08-03 | 2011-03-23 | 复旦大学附属华山医院 | 乙肝病毒阿德福韦耐药变异株的检测探针及其应用方法 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
王江华 等: "乙型肝炎病毒rtA181V/T和rtA181V变异阿德福韦耐药株表达质粒的构建及其病毒学特征", 《中华检验医学杂志》 * |
黄清玲等: "乙型肝炎病毒在HepG2细胞中的稳定复制及表达", 《中华传染病杂志》 * |
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