CN103289990A - 一种血液dna的快速提取方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开一种血液DNA的快速提取方法。现有技术很繁琐而且耗时,且过去传统的方法抽提出的痕量DNA由于含量太少,很难用来进行分子诊断。本发明能够在很短时间内快速完成血液样本的DNA提取。采集来的全血样本首先加入细胞洗涤液,离心分离后得到残留细胞团,加入SDS、醋酸铵、盐酸胍、蛋白酶K置于60℃水浴15~30分钟,然后经纯化柱充分结合DNA,离心取沉淀物加入硅胶膜洗涤液洗涤两次,离心后加入TE缓冲液,最后得到含DNA的保存液。本发明具有较高的重复稳定性、较简单且不耗时、所得DNA质量高的优点。
Description
技术领域
本发明属于分子生物学技术领域,涉及一种血液DNA的快速提取方法,具体涉及一种全血样品DNA的快速提取方法,是分子生物学的最基本的步骤之一,涉及了基因克隆、基因序列分析、核酸疫苗、基因治疗和各种基因重组技术等领域。
背景技术
血液DNA的提取和纯化是分子生物学的最基本步骤之一,涉及了基因克隆、基因序列分析、核酸疫苗、基因治疗和各种基因重组技术等领域。经典的从血液样品中提取和纯化DNA是分为五个步骤:破碎红细胞、离心沉淀白细胞、破碎白细胞、沉淀去蛋白、分离和纯化DNA。目前常用的血液DNA提取的方法有两个:酚氯仿抽提法和Chelex-100法。前种方法一般可以得到质量和纯化较好的能够长时间保存的DNA,对满足基本的小规模分子实验工作需求已足够,但是这种方法耗时长,不适合大规模的分子临床检验工作,且实验过程所用到的苯酚、氯仿、异丙醇等试剂有毒害。后种方法常用于司法实践中微量DNA的提取,快速简便,但是此种方法得到的DNA模板浓度很低,容易降解,不易长期保存,不能浓缩DNA,对于量少质差的检材提取成功率偏低(杨静开.脱落细胞类DNA提取方法的研究应用[J].刑事技术.2009.(3):54-56),且此种方法很可能会出现下游PCR扩增不均匀,甚至扩增失败。所以这两种方法不易扩大规模,从而影响了后期工作的效率,目前称其为临床基因序列分析研究和应用的瓶颈,许多临床核酸技术的应用受制于快速大量制备血液DNA技术不足。
发明内容
本发明的目的是针对现有技术的不足,提供一种快速简易、低成本、高可靠性的血液DNA提取方法,推进血液DNA技术推广,最终解决了以上提到的血液DNA提取技术不足问题,并使其可以顺利地应用于规模化的临床实践。我们的目的是用最简便快速的方法制备大量符合品质要求的血液DNA。
本发明为解决其技术问题,所采取的方法步骤如下:
步骤(1).细胞裂解分离
在全血样本中加入细胞洗涤液,其中全血样本与细胞洗涤液的体积比为5:14,颠倒混匀样本,常温孵育5~10min,期间间偶尔颠倒混一下离心管,13000~16000g转速常温离心1分钟,弃上清,得到残留细胞团;
所述的细胞洗涤液为浓度为20mM的Tris-HCl溶液,pH值为7.6;
步骤(2).消化沉淀
取20~30ul上述步骤(1)所得的残留细胞团,然后依次加入15ul体积分数为10﹪的十二烷基硫酸钠SDS、15ul浓度为8M的醋酸铵、600ul浓度为5M的盐酸胍、3ul浓度为20mg/ml的蛋白酶K,60℃水浴15~30分钟后,冰浴冷却至常温,然后在4~8℃下13000~16000rpm/min转速离心2~3min,得到离心后的上清液,该上清液为DNA抽提液;
步骤(3).纯化
将上述步骤(2)所得的DNA抽提液加入到2ml Eppendorf管中的纯化柱中,常温孵化2~5分钟,充分结合DNA,经纯化柱吸附后,离心分离,得到沉淀物;将沉淀物经硅胶膜洗涤液洗涤两次,离心分离,去除纯化柱中残存的硅胶膜洗涤液,得到洗涤后的沉淀物;然后再洗涤后的沉淀物中加入TE缓冲液,溶解洗脱DNA后,离心分离,去除沉淀,得到含DNA的保存液;
所述的硅胶膜洗涤液为10mM Tris-HCl、1mM乙二胺四乙酸EDTA、20mM NaCl、体积分数为50﹪乙醇的混合液。
本发明得到的DNA片段长度大于20Kb,OD260/OD280比值大于1.7,可直接用于PCR和其它分子生物学用途。
本发明有较高的重复稳定性,不需重复实验,在200例志愿者血液DNA提取中,仅一次快速提取即得到高质量的模板DNA,在对EGFR第18、19、20、21号外显子的扩增中,所有提取的血液DNA模板均能成功进行扩增,得到与预计片段大小相同的产物,测序结果也证实了本发明的可靠性。本发明DNA的提取无需经过苯酚、氯仿、异丙醇等有害试剂抽提,可直接迅速取全血样本进行DNA提取。本发明方法具有较高的重复稳定性、操作简单且不耗时、所得DNA质量高的优点。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明做进一步的分析。
实施例1.现以正常人血液为例,非限定实施例叙述如下:
(1)取500ul新鲜的全血样本到2.0ml离心管里。离心管中加入1400ul的细胞洗涤液,颠倒混匀样本,常温孵育10min,期间偶尔颠倒混一下离心管。
(2)13000g转速离心1分钟,常温。
(3)弃上清,使管底残留细胞团20ul。
(4)重新震荡悬浮管内残留细胞团。
(5)向残留细胞团中依次加入15ul体积分数为10﹪的十二烷基硫酸钠SDS、15ul浓度为8M的醋酸铵、600ul浓度为5M的盐酸胍、3ul浓度为20mg/ml的蛋白酶K,60℃水浴15分钟。
(6)混合物冰浴冷却至常温,4℃下13000g rpm/min转速离心3min。
(7)取上清液,将上清液加入到置于2ml Eppendorf管中的纯化柱中,常温下孵化2min,盖上盖子,5000rpm/min离心1min,弃去滤出液。
(8)将纯化柱放在新的2ml Eppendorf管中,弃去含有滤出液的Eppendorf管,加入700μl硅胶膜洗涤液。盖上盖子,5000rpm/min离心1min,弃去含有滤出液的Eppendorf管。
(9)用硅胶膜洗涤液重复洗涤一次。
(10)将纯化柱放在新的2ml Eppendorf管中,开盖,最高转速离心1min。
(11)将纯化柱放到新的1.5ml Eppendorf管中,取100μl的TE缓冲液直接加到纯化柱底部的硅胶膜上,盖上盖子,常温下溶解5min,高速离心1min,得到从纯化柱中洗涤下来的DNA。
(12)从1.5ml Eppendorf管中轻轻取出洗涤下来的滤出液,重新加入到纯化柱上,常温下溶解5min,重新高速离心一次,得到DNA保存液。
(13)将DNA保存液置于-20℃保藏。
实施例2.现以正常人血液为例,非限定实施例叙述如下:
(1)取500ul冷冻的全血样本到2.0ml离心管里。离心管中加入1400ul的细胞洗涤液,颠倒混匀样本,常温孵育10min,期间偶尔颠倒混一下离心管。
(2)15000g转速离心1分钟,常温。
(3)弃上清,使管底残留细胞团25ul。
(4)重新震荡悬浮管内残留细胞团。
(5)向残留细胞团中依次加入15ul体积分数为10﹪的十二烷基硫酸钠SDS、15ul浓度为8M的醋酸铵、600ul浓度为5M的盐酸胍、3ul浓度为20mg/ml的蛋白酶K,60℃水浴20分钟。
(6)混合物冰浴冷却至常温,5℃下15000g rpm/min转速离心3min。
(7)取上清液,将上清液加入到置于2ml Eppendorf管中的纯化柱中,常温下孵化4min,盖上盖子,5000rpm/min离心1min,弃去滤出液。
(8)将纯化柱放在新的2ml Eppendorf管中,弃去含有滤出液的Eppendorf管,加入700μl硅胶膜洗涤液。盖上盖子,5000rpm/min离心1min,弃去含有滤出液的Eppendorf管。
(9)用硅胶膜洗涤液重复洗涤一次。
(10)将纯化柱放在新的2ml Eppendorf管中,开盖,最高转速离心1min。
(11)将纯化柱放到新的1.5ml Eppendorf管中,取100μl的TE缓冲液直接加到纯化柱底部的硅胶膜上,盖上盖子,常温下溶解5min,高速离心1min,得到从纯化柱中洗涤下来的DNA。
(12)从1.5ml Eppendorf管中轻轻取出洗涤下来的滤出液,重新加入到纯化柱上,常温下溶解5min,重新高速离心一次,得到DNA保存液。
(13)将DNA保存液置于-20℃保藏。
实施例3.现以正常人血液为例,非限定实施例叙述如下:
(1)取500ul加入抗凝剂的全血样本到2.0ml离心管里。离心管中加入1400ul的细胞洗涤液,颠倒混匀样本,常温孵育10min,期间偶尔颠倒混一下离心管。
(2)16000g转速离心1分钟,常温。
(3)弃上清,使管底残留细胞团30ul。
(4)重新震荡悬浮管内残留细胞团。
(5)向残留细胞团中依次加入15ul体积分数为10﹪的十二烷基硫酸钠SDS、15ul浓度为8M的醋酸铵、600ul浓度为5M的盐酸胍、3ul浓度为20mg/ml的蛋白酶K,60℃水浴30分钟。
(6)混合物冰浴冷却至常温,8℃下16000g rpm/min转速离心2min。
(7)取上清液,将上清液加入到置于2ml Eppendorf管中的纯化柱中,常温下孵化5min,盖上盖子,5000rpm/min离心1min,弃去滤出液。
(8)将纯化柱放在新的2ml Eppendorf管中,弃去含有滤出液的Eppendorf管,加入700μl硅胶膜洗涤液。盖上盖子,5000rpm/min离心1min,弃去含有滤出液的Eppendorf管。
(9)用硅胶膜洗涤液重复洗涤一次。
(10)将纯化柱放在新的2ml Eppendorf管中,开盖,最高转速离心1min。
(11)将纯化柱放到新的1.5ml Eppendorf管中,取100μl的TE缓冲液直接加到纯化柱底部的硅胶膜上,盖上盖子,常温下溶解5min,高速离心1min,得到从纯化柱中洗涤下来的DNA。
(12)从1.5ml Eppendorf管中轻轻取出洗涤下来的滤出液,重新加入到纯化柱上,常温下溶解5min,重新高速离心一次,得到DNA保存液。
(13)将DNA保存液置于-20℃保藏。
实施例1~3得到的DNA保存液经琼脂糖凝胶电泳检测,实施例1~3DNA保存液中的DNA片段长度均大于20Kb;该DNA保存液经紫外分光光度法测定,其纯度OD260/OD280比值均大于1.7,DNA浓度(ng/μL )= OD260 × 50ng/μL均大于50ng/ul。
实施例1~3所用的细胞洗涤液为浓度为20mM的Tris-HCl溶液,pH值为7.6;硅胶膜洗涤液为10mM Tris-HCl、1mM乙二胺四乙酸EDTA、20mM NaCl、体积分数为50﹪乙醇的混合液。
实施例4.本发明提取的DNA片段具有较高的重复稳定性:
(1)对200例志愿者进行血液采集,得到200人的新鲜全血样本;
(2)对上述步骤(1)采集到的200人的新鲜全血样本分别进行DNA提取,具体操作与实施例1相同;
(3)将上述步骤(2)提取到的200人的DNA片段进行紫外分光光度法检测,测定260nm波长、280nm波长下的吸光度值,这200人的血液DNA模板纯度OD260/OD280比值均大于1.7,DNA浓度(ng/μL )= OD260 × 50ng/μL均大于50ng/ul;对该200人的DNA片段进行琼脂糖凝胶电泳检测,这200人的血液DNA模板长度均大于20Kb。
通过实施例4可知,根据本发明方法可一次快速提取即得到高质量的模板DNA,且在对EGFR第18、19、20、21号外显子的扩增中,所有提取的200人血液DNA模板均能成功进行扩增,得到的扩增产物经琼脂糖凝胶电泳检测其长度为400~450bp,与预计片段大小相同的产物,对EGFR第18、19、20、21号外显子扩增产物进行测序,测序结果与NCBI基因数据库上的序列一致,也证实了本发明的可靠性。
上述实施例并非是对于本发明的限制,本发明并非仅限于上述实施例,只要符合本发明要求,均属于本发明的保护范围。
Claims (3)
1. 一种血液DNA的快速提取方法,其特征在于该方法包括以下步骤:
步骤(1).细胞裂解分离:
在全血样本中加入细胞洗涤液,其中全血样本与细胞洗涤液的体积比为5:14,颠倒混匀样本,常温孵育5~10min,常温下13000~16000g转速离心1分钟,弃上清,得到残留细胞团;
步骤(2).消化沉淀:
取20~30ul上述步骤(1)所得的残留细胞团,然后依次加入15ul体积分数为10﹪的十二烷基硫酸钠SDS、15ul浓度为8M的醋酸铵、600ul浓度为5M的盐酸胍、3ul浓度为20mg/ml的蛋白酶K,60℃水浴15~30分钟后,冰浴冷却至常温,然后在4~8℃下13000~16000rpm/min转速离心2~3min,得到离心后的上清液,该上清液为DNA抽提液;
步骤(3).纯化:
将上述步骤(2)所得的DNA抽提液加入到2ml Eppendorf管中的纯化柱中,常温孵化2~5分钟,充分结合DNA,经纯化柱吸附后,离心分离,得到沉淀物;将沉淀物经硅胶膜洗涤液洗涤两次,离心分离,去除纯化柱中残存的硅胶膜洗涤液,得到洗涤后的沉淀物;然后再洗涤后的沉淀物中加入TE缓冲液,溶解洗脱DNA后,离心分离,去除沉淀,得到含DNA的保存液。
2.如权利要求1所述的一种血液DNA的快速提取方法,其特征在于步骤(1)所述的细胞洗涤液为浓度为20mM的Tris-HCl溶液,pH值为7.6。
3.如权利要求1所述的一种血液DNA的快速提取方法,其特征在于步骤(3)所述的硅胶膜洗涤液为10mM Tris-HCl、1mM乙二胺四乙酸EDTA、20mM NaCl、体积分数为50﹪乙醇的混合液。
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