CN103160529A - 一种培育转基因杂交水稻的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种培育转基因杂交水稻的方法。该方法包括如下步骤:将目的基因拆成5’端和3’端两部分,分别与Intein的N端和C端剪接区的序列连接,形成融合基因A和融合基因B,将两融合基因分别导入三系杂交体系的保持系和恢复系,或者两系杂交体系的不育系和恢复系,杂交后获得杂交种,所得杂交种同时含两个基因片段,在intein介导的蛋白剪接下,两无活性的蛋白片段重新组装成完整有活性的目标蛋白,赋予杂交种目标性状。这样两亲本中虽含有部分基因片段,但不具功能,不会产生转基因飘流引起的环境安全问题,杂交种的花粉虽能扩散出去,但同时含两个基因片段的概率大大降低,很大程度上降低了转基因飘流频率,且还能避免自留种,更好的保护知识产权。
Description
技术领域
本发明属于转基因生物安全技术领域,涉及一种培育转基因杂交水稻的方法,特别涉及一种培育安全转基因杂交水稻的方法。
背景技术
杂种优势是自然界普遍存在的现象。杂交育种就是通过不同品种间的杂交,在杂交后代的分离群体中筛选集合双亲优良性状的个体并最终形成品种。但由于长期定向选择,种内可用的优异基因逐渐减少,通过常规杂交育种方法选育能够满足人们需求的优良品种正面临很大的挑战,于是育种家们开始寻求将丰富的生物资源库中的优异基因用于杂交育种的新方法和新途径。
植物转基因技术的迅猛发展,为育种家们提供了培育优质杂交种的新方法。利用转基因技术培育杂交种,不但可以实现1个或多个目标基因的定向转移,而且能打破有利基因和不利基因的连锁,缩短育种进程。但转基因飘流及其可能引起的环境后果等转基因安全性问题越来越受到人们的关注,已成为限制转基因杂交种应用的瓶颈问题之一。因此,探寻培育安全的转基因杂交种的新方法势在必行。
蛋白内含肽(Intein)是一类介导翻译后蛋白剪接的内部蛋白元件,前体蛋白中Intein催化一系列反应,将其自身从前体蛋白中移去,并将两侧称为Extein的蛋白片段以正常的肽键连接起来形成成熟蛋白,这个过程称为蛋白剪接。蛋白剪接是一个非常快速的过程,Intein-Extein连接处的3个保守的氨基酸残基直接参与蛋白的拼接反应,包括Intein N末端的Ser或Cys(基序A的第一个氨基酸),Intein C末端的Asn或Gln(基序G的最后一个氨基酸),C-extein起始端的Ser、Thr或Cys。Intein首先是在酵母中发现的。1990年Kane等[Kane PM,Yamashiro CT,Wolczyk DF,Neff N,GoeblM,Stevens TH(1990)Protein splicing converts the yeast TFP1gene product to the69-kDsubunit of the vacuolar H(+)-adenosine triphosphatase.Science250:651–657]在研究酵母(Saccharomyces cerevisiae))液泡H(+)2ATPase的69kD亚基基因vma1时,首次发现蛋白质的自我剪接现象。Intein普遍存在于三界生物系统(古细菌、真细菌和真核生物)中,目前在InBase库中注册的intein已有580多个(http://www.neb.com/neb/inteins.html)。Intein一般由128-1650个氨基酸残基所组成,含有高度保守的基序A、B、F和G[Noren CJ,Wang J,Perler FB(2000)Dissecting the chemistry ofprotein splicing and its applications.Angew Chem Int Ed Engl39(3):450–466]。根据Intein是否含有居家核酸内切酶(homing endonuclease)结构域,可将其分为大Intein和小Intein,大Intein含有居家核酸内切酶结构域、N端和C端剪接域,其中居家核酸内切酶结构域不参与蛋白剪接,推测其功能是通过自导引的机制来促进Intein的转移[Gimble FS,Thorner J(1992)Homing of a DNA endonuclease gene by meiotic geneconversion in Saccharomyces cerevisiae.Nature357:301–306]。另外,根据N端和C端剪接域是否为共价连接,可将Intein分为cis-splicing inteins和trans-splicing inteins[Wu H,Xu MQ,Liu XQ(1998)Protein trans-splicing and functional mini-Inteins of acyanobacterial DnaB Intein.Biochim Biophys Acta1387:422–432]。
发明内容
本发明的目的是提供一种培育转基因杂交水稻的方法。
本发明所提供的培育转基因杂交水稻的方法,具体包括如下步骤:
(1)将目的基因分成5’端序列和3’端序列两部分;在所述目的基因的5’端序列的3’末端直接连接内含肽(intein)的N端剪接区的核苷酸序列,形成融合基因片段A;在所述目的基因的3’端序列的5’末端直接连接内含肽(intein)的C端剪接区的核苷酸序列,形成融合基因片段B;
(2)为如下I)或II):
I)为如下a1)-a5):
a1)将所述融合基因片段A和所述融合基因片段B,两者中的一个导入水稻三系杂交体系中的恢复系,得到转基因水稻恢复系;另一个导入所述水稻三系杂交体系中的保持系,得到转基因水稻保持系;
a2)通过确定所述融合基因片段A和所述融合基因片段B,两者在所述转基因水稻恢复系或所述转基因水稻保持系基因组中的拷贝数(可采用Southern杂交检测)及在染色体上的插入位点(可进行染色体定位分析),得到满足如下条件的所述转基因水稻恢复系和所述转基因水稻保持系,分别记作转基因水稻恢复系-1和转基因水稻保持系-1:
所述融合基因片段A和所述融合基因片段B,两者在所述转基因水稻恢复系或所述转基因水稻保持系基因组中均以单拷贝的形式插入,并且所述融合基因片段A和所述融合基因片段B,两者在所述转基因水稻恢复系或所述转基因水稻保持系基因组中所位于的染色体编号相同;
a3)筛选(如抗生素压力筛选)获得转基因水稻恢复系-1纯合系和转基因水稻保持系-1纯合系;
a4)将步骤a3)所得的转基因水稻保持系-1纯合系与所述水稻三系杂交体系中的不育系杂交,获得含有所述融合基因片段A或所述融合基因片段B的转基因水稻不育系;
a5)将步骤a3)所得的转基因水稻恢复系-1纯合系与步骤a4)所得的转基因水稻不育系杂交,获得同时含有所述融合基因片段A和所述融合基因片段B的转基因杂交水稻;
II)为如下b1)-b4):
b1)将所述融合基因片段A和所述融合基因片段B,两者中的一个导入水稻两系杂交体系中的恢复系,得到转基因水稻恢复系;另一个导入所述水稻两系杂交体系中的不育系,得到转基因水稻不育系;
b2)通过确定所述融合基因片段A和所述融合基因片段B,两者在所述转基因水稻恢复系或所述转基因水稻不育系基因组中的拷贝数(可采用Southern杂交检测)及在染色体上的插入位点(可进行染色体定位分析),得到满足如下条件的所述转基因水稻恢复系和所述转基因水稻不育系,分别记作转基因水稻恢复系-1和转基因水稻不育系-1:
所述融合基因片段A和所述融合基因片段B,两者在所述转基因水稻恢复系或所述转基因水稻不育系基因组中均以单拷贝的形式插入,并且所述融合基因片段A和所述融合基因片段B,两者在所述转基因水稻恢复系或所述转基因水稻不育系基因组中所位于的染色体编号相同;
b3)筛选(如抗生素压力筛选)获得转基因水稻恢复系-1纯合系和转基因水稻不育系-1纯合系;
b4)将步骤a3)所得的转基因水稻恢复系-1纯合系与转基因水稻不育系-1纯合系杂交,获得同时含有所述融合基因片段A和所述融合基因片段B的转基因杂交水稻。
在本发明的一个实施例中,具体是将所述融合基因片段A导入所述水稻三系杂交体系中的恢复系,得到转基因水稻恢复系;将所述融合基因片段B导入所述水稻三系杂交体系中的保持系,得到转基因水稻保持系。
在本发明中,所述内含肽具体为来自于集胞藻6803(Synechocystis sp.PCC6803)的DnaE内含肽。
在蛋白水平上,所述DnaE内含肽的N端剪接区的氨基酸序列具体为序列表中序列1。所述DnaE内含肽的C端剪接区的氨基酸序列为序列表中序列2。
在基因水平上,所述DnaE内含肽的N端剪接区的核苷酸序列具体为序列表中序列3。所述DnaE内含肽的C端剪接区的核苷酸序列为序列表中序列4。
在本发明中,所述目的基因具体为具有草甘膦抗性的G2-aroA基因;所述G2-aroA基因的核苷酸序列如序列表中序列5所示。
进一步,所述G2-aroA基因的所述5’端序列为序列5的第1-885位;所述G2-aroA基因的所述3’端序列为序列5的第886-1335位。
在本发明的一个实施例中,所述水稻三系杂交体系中的恢复系具体为水稻品种中恢8006;所述水稻三系杂交体系中的保持系具体为水稻品种内香2B;所述水稻三系杂交体系中的不育系具体为水稻品种内香2A。
在本发明中,所述方法步骤a1)或b1)中,将所述融合基因片段A或所述融合基因片段B导入所述水稻三系杂交体系中的恢复系或所述水稻三系杂交体系中的保持系,具体是通过导入含有所述融合基因片段A或所述融合基因片段B的重组表达载体实现的;
进一步,含有所述融合片段A的所述重组表达载体具体为在植物表达载体pCAMBIA1300的多克隆位点(如Hind III和EcoR I之间)处自上游到下游依次插入ubi启动子、叶绿体导肽、融合基因片段A、nos终止子后所得的重组质粒;含有所述融合片段B的所述重组表达载体具体为在植物表达载体pCAMBIA1300的多克隆位点(如Hind III和EcoR I之间)处自上游到下游依次插入ubi启动子、叶绿体导肽、融合基因片段B、nos终止子后所得的重组质粒。
其中,所述ubi启动子的核苷酸序列为序列表中序列6所示;所述叶绿体导肽的核苷酸序列为序列表中序列7所示;所述nos终止子的核苷酸序列为序列表中序列8所示。
本发明具有如下优点:本发明采用两个基因片段分别导入三系杂交体系的恢复系和保持系,或两系杂交体系的恢复系和不育系中,这样在杂交时,亲本A和亲本B的花粉虽仍可随风传播,但其花粉中只带有单个基因片段,即使飘流至其它非转基因作物或近缘种,也不会产生有功能的完整目的蛋白。杂种F1的花粉虽仍可随风传播,但两个基因片段随花粉同时飘流出去的频率很低,使得基因飘流频率可降低到阈值允许范围内,从而达到培育安全转基因杂交种的目的。
附图说明
图1为重组表达载体基因表达框示意图。其中,A为含有融合基因片段A的重组表达载体pEnIn;B为含有融合基因片段B的重组表达载体pICEC。A、B中UbiP均表示玉米多聚泛素蛋白基因Ubiqutin启动子;CTS均表示菊花Rubisco小亚基的叶绿体信号肽;NosT均表示胭脂碱合成酶基因Nos的终止子;35SP均表示花椰菜花叶病毒CaMV35S启动子;hptII均表示潮霉素磷酸转移酶基因,提供潮霉素抗性;PolyA Signal均表示多聚腺苷酸加尾信号;RB均表示T-DNA右边界;LB均表示T-DNA。
图2为不同类型转基因水稻的PCR检测结果。其中,A为转基因水稻中恢8006/pEnIn;B为转基因水稻内香2B/pICEC。A和B中,泳道M均为Trans100bp DNA分子量标准;泳道1-15(或16)均为阳性待测转基因水稻。
图3为不同类型转基因水稻的Southern检测结果。其中,B’为转基因水稻内香2B/pICEC。具体的,1:Ec-1/EcoRI;2:Ec-1/XhoI;3:Ec-5/EcoRI;4:Ec-5/XhoI;5:Ec-28/EcoRI;6:Ec-28/XhoI;7:Ec-8/EcoRI;8:Ec-8/XhoI;9:转基因水稻内香2B/pCAMBIA1300/EcoRI(阴性对照);10:pICEC(阳性对照)。D’为转基因水稻中恢8006/pEnIn。具体的,1:En-1/EcoRI;2:En-1/XhoI;3:En-6/EcoRI;4:En-6/XhoI;5:En-9/EcoRI;6:En-9/XhoI;7:En-12/EcoRI;8:En-12/XhoI;9:En-34/EcoRI;10:En-34/XhoI;11:转基因水稻中恢8006/pCAMBIA1300/EcoRI(阴性对照);12:pEnIn(阳性对照)。
图4为T1代转基因杂交种的草甘膦抗性筛选结果。其中左图为T1代转基因杂交种,右图为转基因水稻中恢8006/pEnIn。
图5为T1代转基因杂交种的PCR检测结果。具体的,泳道1为DNA分子量标准Trans5K DNA Marker;泳道2为T1代转基因杂交种扩增融合基因片段EnIn;泳道3为中恢8006/pCAMBIA1300扩增融合基因片段EnIn;泳道4为以水代替模板扩增融合基因片段EnIn;泳道5为T1代转基因杂交种扩增融合基因片段ICEC;泳道6为内香2B/pCAMBIA1300扩增融合基因片段ICEC;泳道7为水代替模板扩增融合基因片段ICEC。
具体实施方式
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。
下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
实施例中未详细说明的操作步骤参照《分子克隆实验指南》第三版相应部分(J.萨姆布鲁克D.W.拉塞尔著,科学出版社)或参阅所用试剂盒的说明书。
植物表达载体pCAMBIA1300:购自澳大利亚CAMBIA公司。
植物表达载体pBI121:上海希匹吉生物技术有限公司,货号CPC087
水稻恢复系中恢8006:记载在“曹立勇,沈希宏,占小登等.杂交水稻新品种国稻6号的选育及栽培技术.粮食作物,2008(3):55-56”一文,公众可从中国农业科学院生物技术研究所获得。
水稻不育系内香2A及其保持系内香2B:记载在“任鄄胜,李仕贵,肖培村等.水稻线粒体基因atp6启动子突变导致的一种细胞质雄性不育型.西南农业学报,2009(22):544-549”一文,公众可从中国农业科学院生物技术研究所获得。
玉米品种郑单958:购自北京德农种业有限公司。
Impactvector1.4质粒:购自Wageningen UR(荷兰)。
pMD19-T质粒:购自六合通经贸有限公司(产品目录号:D102A)。
所用培养基配方如下表:
实施例1、用于杂交的不同类型转基因水稻的获得
一、重组表达载体的构建
1、融合基因片段EnIn和IcEc的获得
利用PCR方法将G2-aroA基因分成5’端和3’端两部分,并分别与来自于集胞藻6803(Synechocystis sp.PCC6803)的DnaE内含肽(intein)的N端剪接区的核苷酸序列和C端剪接区的核苷酸序列连接,形成融合基因片段EnIn和IcEc。具体如下:
以序列表中序列5所示的G2-aroA基因为模板,利用引物G2-5’-up和G2-5’-down进行PCR扩增,获得含有G2-aroA基因的5’端序列的DNA片段;利用引物G2-3’-up和G2-3’-down进行PCR扩增,获得含有G2-aroA基因的3’端序列的DNA片段。以序列表中序列3所示的来自于集胞藻6803(Synechocystis sp.PCC6803)的DnaE内含肽的N端剪接区的编码核苷酸序列为模板,利用引物DnaE-5’-up和DnaE-5’-down进行PCR扩增,获得含有DnaE内含肽的N端剪接区序列的DNA片段;以序列表中序列4所示的来自于集胞藻6803(Synechocystis sp.PCC6803)的DnaE内含肽的C端剪接区的编码核苷酸序列为模板,利用引物DnaE-3’-up和DnaE-3’-down进行PCR扩增,获得含有DnaE内含肽的C端剪接区序列的DNA片段。
G2-5’-up:5’-GGCCATGGATGGCGTGTTTGCCTGATGA-3’(下划线部分为Nco I的识别位点,其后的序列为序列5的第1-20位);
G2-5’-down:5’-GAAGTCCTGCGCGGCTACGC-3’(序列5的第866-885位的反向互补序列);
G2-3’-up:5’-TTTAACATATCC-ACCCAGCCCGACGCCAAGGC-3’(“-”前的序列为序列4的第112-123位;“-”后的序列为序列5的第886-905位);
G2-3’-down:5’-CCGGAGCTC-TCAGTCGTTTAGGTGAACGCCCAGG-3’(下划线部分为Sac I的识别位点,“-”后的序列为序列5的第1311-1335位的反向互补序列);
DnaE-5’-up:5’-GCGCAGGACTTC-AAATTTGCTGAATATTGCCT-3’(“-”前的序列为5的第874-885位;“-”后的序列为序列3的第1-20位);
DnaE-5’-down:5’-GGCGAGCTCTTAT-TTAATTGTCCCAGCGTCAAG-3’(下划线部分为Sac I的识别位点,“-”后的序列为序列3的第364-384位的反向互补序列);
DnaE-3’-up:5’-GGCCATGGATGGTTAAAGTTATCGGTCG-3’(下划线部分为NcoI的识别位点,其后的序列为序列4的第1-20位);
DnaE-3’-down:5’-GGATATGTTAAAGCAGTTAG-3’(序列4的第104-123位的反向互补序列);
以上述PCR获得的含有G2-aroA基因的5’端序列的DNA片段,与含有DnaE内含肽的N端剪接区序列的DNA片段的混合物为模板,利用引物G2-5’-up和DnaE-5’-down进行PCR扩增,获得二者的融合基因片段,将所得融合基因片段命名为EnIn。以上述PCR获得的含有G2-aroA基因的3’端序列的DNA片段,与含有DnaE内含肽的C端剪接区序列的DNA片段的混合物为模板,利用引物DnaE-3’-up和G2-3’-down进行PCR扩增,获得二者的融合基因片段,将所得融合基因片段命名为IcEc。
2、重组表达载体的构建
(1)重组载体pUBI121的构建
以玉米品种郑单958的基因组DNA为模板,利用如下引物ubi-F和ubi-R进行PCR扩增,以期得到ubi启动子。
ubi-F:5’-AAGCTTGCATGCCTGCAGTGCAGCGT-3’(下划线部分为Hind III的识别位点,其后的序列为序列6的第1-20位);
ubi-R:5’-GGATCCTCTAGAGTCGACCTGCAGAAG-3’(下划线部分为BamH I的识别位点,该序列的第8-27位为序列6的第1095-2014位的反向互补序列)
用限制性内切酶Hind III和BamH I双酶切PCR产物,回收酶切产物(大小约为2014bp),与经过同样双酶切的pBI121载体的骨架片段(大小约为188937bp)相连,将连接产物转化大肠杆菌DH5α后,摇菌提取质粒,测序。将经测序表明在pBI121载体的酶切位点Hind III和BamH I之间插入了序列表中序列6所示的DNA片段的重组质粒命名为pUBI121。
(2)重组载体p121-ST的构建
根据Impactvector1.4质粒中的叶绿体导肽序列设计引物IF和IR,为构建载体方便,在引物IF的5’端增加了BamH I酶切位点,在引物IR的5’端增加了Bgl II、NcoI和SacI酶切位点。以IF和IR为引物,以Impactvector1.4质粒为模板进行PCR扩增,一期获得叶绿体导肽。
IF:5’-CTGGATCCATGGCCTCGATCTCTTCCTC-3’(下划线部分为BamH I的识别位点,其后的序列为序列7的第1-20位);
IR:5’-CTGAGCTCAT-AGATCT-CCATGGACTTCTTCAA ACCCAATGGT-3’(下划线部分依次为SacI、Bgl II和NcoI的识别位点,自粗体A后的序列为序列7的第270-288位的反向互补序列)
将PCR产物与pMD19-T质粒相连,连接后挑选阳性克隆测序,将测序表明含有序列表中序列7所示DNA片段(叶绿体导肽)的重组质粒命名为p19-ST。
用限制性内切酶BamH Ⅰ和Sac Ⅰ双酶切p19-ST载体,回收酶切目的片段(大小约为288bp),与经过同样双酶切的步骤(1)构建的重组载体pUBI121的骨架片段(大小约为189057bp)相连,将连接产物转化大肠杆菌DH5α后,摇菌提取质粒,测序。将经测序表明在pUBI121载体的酶切位点BamH Ⅰ和Sac Ⅰ之间插入了序列表中序列7所示的DNA片段的重组质粒命名为p121-ST。
(3)重组载体p121-ENIN和p121-IcEc的构建
用限制性内切酶NcoI和SacI分别双酶切步骤1所得的融合基因EnIn和IcEc,回收酶切产物后,分别与经过同样双酶切的步骤(2)构建的重组载体p121-ST的骨架片段(大小约为189345bp)相连,将连接产物转化大肠杆菌DH5α后,摇菌提取质粒,测序。
将经测序表明在p121-ST载体的酶切位点NcoI和SacI之间插入了所述融合基因EnIn的重组质粒命名为p121-ENIN。将经测序表明在p121-ST载体的酶切位点NcoI和SacI之间插入了所述融合基因IcEc的重组质粒命名为p121-IcEc。
(4)重组表达载体pEnIn和pICEC的构建
用限制性内切酶Hind III和EcoR I分别双酶切步骤(3)构建得到的重组载体p121-ENIN和p121-IcEc,回收目的片段(对应p121-ENIN和p121-IcEc的目的片段大小依次约为3827bp和3131bp)后,分别与经过同样双酶切的pCAMBIA1300载体的骨架片段(大小约为8958bp)相连,将连接产物转化大肠杆菌DH5α后,摇菌提取质粒,测序。
将测序正确且含有融合基因片段EnIn(序列5的第1-885位+序列3,“+”表示直接连接)的重组质粒命名为pEnIn;将测序正确且含有融合基因片段IcEc(序列4+序列5的第886-1335位,“+”表示直接连接)的重组质粒命名为pICEC。重组表达载体pEnIn和pICEC的基因表达框如图1所示,外源基因前面带有Rubisco小亚基的叶绿体导肽,并由ubi启动子驱动,3’末端为nos终止子(来源于pBI121质粒),筛选标记基因为hpt(来源于pCAMBIA1300质粒)。具体的,重组表达载体pEnIn为在植物表达载体pCAMBIA1300的多克隆位点Hind III和EcoR I之间自上游到下游依次插入ubi启动子、叶绿体导肽、融合基因片段EnIn、nos终止子后所得的重组质粒;重组表达载体pICEC为在植物表达载体pCAMBIA1300的多克隆位点Hind III和EcoR I之间自上游到下游依次插入ubi启动子、叶绿体导肽、融合基因片段IcEc、nos终止子后所得的重组质粒。其中,所述ubi启动子的核苷酸序列为序列表中序列6所示;所述叶绿体导肽的核苷酸序列为序列表中序列7所示;所述nos终止子的核苷酸序列为序列表中序列8所示。
二、不同类型转基因水稻的获得及鉴定
1、不同类型重组农杆菌的获得
将步骤一获得的重组表达载体pEnIn、pICEC和空载体pCAMBIA1300用电击的方式分别转入农杆菌EHA105(Biovector Co.,LTD,Biovector-375)中。按照如下方法对转化后的重组农杆菌进行鉴定:1)提取重组农杆菌的质粒,冻融法回转至大肠杆菌TOP10;2)提取含有重组质粒的大肠杆菌TOP10的质粒,用BamHI和SacI酶切,同时酶切重组表达载体pEnIn和pICEC,通过比较酶切结果确定重组农杆菌的正确性。将酶切鉴定正确的重组农杆菌进行测序验证。将经鉴定表明含有融合基因片段EnIn(序列5的第1-885位+序列3,“+”表示直接连接,目的条带大小约为1269bp)的重组农杆菌命名为EHA105/pEnIn。将经测序表明含有融合基因片段IcEc(序列4+序列3的第886-1335位,“+”表示直接连接,目的条带大小约为573bp)的重组农杆菌命名为EHA105/pICEC。将转入空载体pCAMBIA1300的重组农杆菌命名为EHA105/pCAMBIA1300。
2、不同类型转基因水稻的获得
(1)将水稻恢复系中恢8006,以及水稻不育系内香2A的保持系内香2B的成熟种子脱去颖壳,置于无菌三角瓶中,用浓度为40%(40g/100ml)的次氯酸钠水溶液灭菌30~40min,然后用无菌水冲洗3~4次。将种子置于无菌的滤纸上30min晾干多余水分,接种于愈伤组织诱导培养基中,15~20粒/皿,置于光照培养箱中培养。诱导愈伤的时间约40~50天。
(2)将重组农杆菌EHA105/pEnIn和EHA105/pICEC分别置于28℃培养过夜,待其浓度达到OD600值为0.60~0.80之间时,4℃、3000rpm、离心10min,之后将菌体重悬至100ml的AA液体培养基中,使菌液的OD600值为0.10~0.20之间,待用。
(3)用重组农杆菌EHA105/pEnIn菌液侵染水稻恢复系中恢8006的愈伤组织,用重组农杆菌EHA105/pICEC菌液侵染水稻不育系内香2A的保持系内香2B的愈伤组织,侵染30分钟,期间不时用手轻摇。倒掉菌液,把愈伤颗粒用勺子取出,置于铺有无菌滤纸的培养皿中,40~50min,直到表面菌液被晾干。共培养培养基平板中放一张滤纸,把阴干的愈伤组织颗粒铺在上面,封好平皿,25~28℃暗培养三天。
(4)共培养结束后,将愈伤组织转移到选择培养基上培养10~15天后继代一次。挑取从原愈伤组织表面生长出来的新的抗性愈伤组织,转移到预分化培养基上。
(5)28℃黑暗下预分化培养7天。选择奶白色,表面光滑的愈伤组织转移到分化培养基上,28℃分化培养:先在黑暗下培养3天,然后在持续冷光照下培养15~20天。
(6)将从抗性愈伤组织再生出的幼苗转移到生根培养基上,持续光照培养15天,生长状况良好的幼苗直接转移到大田种植。将得到的转入重组农杆菌EHA105/pEnIn的水稻恢复系中恢8006命名为中恢8006/pEnIn;将得到的转入重组农杆菌EHA105/pICEC的水稻不育系内香2A的保持系内香2B命名为内香2B/pICEC。
实验同时设置转入重组农杆菌EHA105/pCAMBIA1300的水稻恢复系中恢8006,和转入重组农杆菌EHA105/pCAMBIA1300的水稻不育系内香2A的保持系内香2B作为空载体对照。将得到的转入重组农杆菌EHA105/pCAMBIA1300的水稻恢复系中恢8006命名为中恢8006/pCAMBIA1300;将得到的转入重组农杆菌EHA105/pCAMBIA1300的水稻不育系内香2A的保持系内香2B命名为内香2B/pCAMBIA1300。
3、不同类型转基因水稻的鉴定
(1)PCR鉴定
将获得的转基因水稻中恢8006/pEnIn、内香2B/pICEC、中恢8006/pCAMBIA1300和内香2B/pCAMBIA1300分别进行PCR分子鉴定。同时以未转基因的中恢8006和内香2A保持系内香2B作为对照。
检测融合基因片段EnIn的引物为R1、L1,对应模板为转基因水稻中恢8006/pEnIn、中恢8006/pCAMBIA1300的基因组DNA(空载体对照)、水稻品种中恢8006的基因组DNA(未转基因对照);检测融合基因片段ICEC的引物为R2、L2,对应模板为转基因水稻内香2B/pICEC、内香2B/pCAMBIA1300的基因组DNA(空载体对照)、内香2A保持系内香2B的基因组DNA(未转基因对照);
R1:5’-CGAGATTGATGGTGGTTTGTCC-3’(序列5的第567-588位)
L1:5’-GTCAACAAGTCCAGTTGCCTAG-3’(序列3的第281-302位的反向互补序列)
R2:5’-GCATCTTTGATATCGGTCTG-3’(序列4的第41-60位)
L2:5’-GGTCTTGAATGCGAATGCC-3’(序列5的第1243-1261位的反向互补序列)
检测结果如图2所示,以R1、L1为引物对转基因水稻中恢8006/pEnIn、中恢8006/pCAMBIA1300的基因组DNA(空载体对照)、水稻品种中恢8006的基因组DNA(未转基因对照)进行PCR扩增,只有转基因水稻中恢8006/pEnIn扩增得到大小约为621bp的目的条带,而空载体对照和未转基因对照均没有目的条带;以R2、L2为引物对转基因水稻内香2B/pICEC、内香2B/pCAMBIA1300的基因组DNA(空载体对照)、水稻不育系内香2A保持系内香2B的基因组DNA(未转基因对照)进行PCR扩增,只有转基因水稻内香2B/pICEC扩增得到大小约为436bp的目的条带,而空载体对照和未转基因对照均没有目的条带。
(2)Southern检测
选用的杂交试剂盒是Thermo公司的生物素探针标记试剂盒BiotinRandom Prime Labeling Kit(Number17075)及化学发光杂交检测试剂盒Chemiluminescent Hybridization and Detection Kit(Number17097)。
提取转基因水稻中恢8006/pEnIn(不同植株用En-x表示)和内香2B/pIcEc(不同植株用Ec-x表示)的基因组DNA,利用限制性内切酶EcoR I和Xho I分别进行过夜单酶切,每组酶切反应中基因组总量在200μg以上。电泳后进行转膜、洗膜和预杂交。用限制性内切酶Nco I和Sac I双酶切重组表达载体pEnIn和pICEC,分别回收1.2kb和0.5kb的DNA条带,作为标记探针。按照试剂盒说明对探针进行标记。为了计算标记探针的产量,使用Thermo Scientific NanoDrop2000C测量该探针溶液的OD260、OD280的吸光值,获得质量浓度。预杂交结束后加入标记好的探针进行杂交,杂交条件为55℃过夜。过夜结束后用1×严谨洗膜液(试剂盒随附)按照200μl/cm2膜面积加入到杂交瓶中,55℃洗膜单次15~20min,共计3次。将膜至于发光检测工作液(等体积混合Luminol Enhancer溶液和Peroxide(过氧化氢)溶液,试剂盒随附)中孵育5min(RT),将湿润的膜置于干净的保鲜膜上,包好,赶走气泡,不要有褶皱。将膜用胶带固定于X光片夹的增感屏上,含有DNA的一面朝上;在暗室中压上一张大小合适的X光片,用胶带固定两角,上面再放一张增感屏,扣紧X光片夹,-70℃曝光数小时至数天。最后将X光胶片浸没与显影液中直到看到清晰的目的条带,然后浸没与酸性定影液中定影5~10min,用清水冲洗胶片,晾干保存。
Southern检测结果如图3所示,转基因水稻样品En-1、En-12、En-34、Ec-28、Ec-5、Ec-8基因组DNA经EcoR I和Xho I单酶切后,都只能杂交得到1条DNA条带,证明这些转基因水稻为单拷贝插入。
(3)染色体定位分析
利用Tail-PCR方法对步骤(2)鉴定为单拷贝的转基因水稻进行了侧翼序列克隆,并进行染色体定位分析,具体如下:
选用TaKaRa公司的Genome Walking Kit(TaKaRa Code:D316)进行插入片段侧翼序列的克隆。根据pCAMBIA1300载体左边界附近的潮霉素筛选标记基因设计三条同向且退火温度较高的特异性引物hptII-tail-1、hptII-tail-2和hptII-tail-3,与试剂盒中提供的四种经过独特设计的退火温度较低的简并引物,即AP1、AP2、AP3、AP4进行热不对称PCR反应,通过三次巢式PCR反应获取已知序列的侧翼序列,具体操作参见试剂盒说明书进行。将得到的侧翼序列与水稻基因组序列进行比对后确定外源基因在染色体上的定位。
hptII-tail-1:5’-GCTCCAACAATGTCCTGACGGACAATGG-3’
hptII-tail-2:5’-GCATAACAGCGGTCATTGACTGGAGCGAG-3’
hptII-tail-3:5’-GGATTCCCAATACGAGGTCGCCAACATC-3’
结果显示,转基因水稻En-1和Ec-28中外源基因(融合基因片段EnIn或融合基因片段ICEC)都插入到了9号染色体上。
4、转基因水稻En-1和Ec-28纯合系的筛选
收获转基因水稻En-1和Ec-28的种子后进行播种,于3叶期喷施浓度为75mM的潮霉素水溶液,所有自交后代均能正常生长(即所有后代均具潮霉素抗性)的亲本植株为纯合系,经过连续2代筛选,最终获得转基因水稻En-1(恢复系)和Ec-28(保持系)的纯合系植株。
实施例2、安全转基因杂交水稻的获得
一、转基因杂交水稻的获得
将实施例1得到的转基因水稻Ec-28纯合系(保持系)与水稻品种内香2A(不育系)杂交,获得含有融合基因片段ICEC的不育系,记作内香2A-B。
将实施例1得到的转基因水稻En-1纯合系(恢复系)与内香2A-B(不育系)杂交,获得期待同时含有2个目的基因片段(融合基因片段EnIn和融合基因片段ICEC)的转基因杂交水稻,收获T1代杂交种。
二、转基因杂交水稻的鉴定
1、T1代杂交苗草甘膦抗性鉴定
将步骤一得到的T1代转基因杂交种播种,5M行长、3行区,3次重复,密度:60×35cm,3-5叶期喷施2000ppm的农达(Roundup,41%的草甘膦),7天后开始观察实验结果。同时以转基因水稻中恢8006/pEnIn作为对照。
结果如图4所示,步骤一得到的T1代转基因杂交种100%表现抗性,而作为对照的转基因水稻中恢8006/pEnIn全部死亡。可见,在intein介导的蛋白剪接作用下,两个无活性的蛋白片段重新组装成完整有活性的目标蛋白(草甘膦抗性蛋白),赋予了杂交种目标性状。
2、T1代杂交苗的PCR分子鉴定
以检测融合基因片段EnIn的引物R1、L1,以及检测融合基因片段ICEC的引物R2、L2,对T1代杂交苗的基因组DNA进行PCR扩增。对于引物R1、L1,同时设置以中恢8006/pCAMBIA1300基因组DNA为模板,以及以水为模板的对照;对于引物R2、L2,同时设置以内香2B/pCAMBIA1300基因组DNA为模板,以及以水为模板的对照。
结果如图5所示,对于T1代杂交苗,两对引物的PCR反应可分别得到大小约为621bp和436bp)的两个目的条带,而对照均没有目的条带产生。这一结果证明,步骤一得到的转基因杂交水稻同时含有2个目的基因片段(融合基因片段EnIn和融合基因片段ICEC)。
3、转基因安全性鉴定
以获得的T1代杂交水稻(花期)为父本,以水稻品种内香2A(不育系)为母本进行杂交,收获种子后播种,,5M行长、3行区,3次重复,密度:60×35cm,3-5叶期喷施2000ppm的农达(Roundup,41%的草甘膦),7天后开始观察实验结果。结果显示,杂交后代全部死亡,证明杂交后代不具有草甘膦抗性,证明在100%异交率的情况下,杂交后代中同时含有2个基因片段的频率为0。
Claims (10)
1.一种培育转基因杂交水稻的方法,包括如下步骤:
(1)将目的基因分成5’端序列和3’端序列两部分;在所述目的基因的5’端序列的3’末端直接连接内含肽的N端剪接区的核苷酸序列,形成融合基因片段A;在所述目的基因的3’端序列的5’末端直接连接内含肽的C端剪接区的核苷酸序列,形成融合基因片段B;
(2)为如下I)或II):
I)为如下a1)-a5):
a1)将所述融合基因片段A和所述融合基因片段B,两者中的一个导入水稻三系杂交体系中的恢复系,得到转基因水稻恢复系;另一个导入所述水稻三系杂交体系中的保持系,得到转基因水稻保持系;
a2)通过确定所述融合基因片段A和所述融合基因片段B,两者在所述转基因水稻恢复系或所述转基因水稻保持系基因组中的拷贝数及在染色体上的插入位点,得到满足如下条件的所述转基因水稻恢复系和所述转基因水稻保持系,分别记作转基因水稻恢复系-1和转基因水稻保持系-1:
所述融合基因片段A和所述融合基因片段B,两者在所述转基因水稻恢复系或所述转基因水稻保持系基因组中均以单拷贝的形式插入,并且所述融合基因片段A和所述融合基因片段B,两者在所述转基因水稻恢复系或所述转基因水稻保持系基因组中所位于的染色体编号相同;
a3)筛选获得转基因水稻恢复系-1纯合系和转基因水稻保持系-1纯合系;
a4)将步骤a3)所得的转基因水稻保持系-1纯合系与所述水稻三系杂交体系中的不育系杂交,获得含有所述融合基因片段A或所述融合基因片段B的转基因水稻不育系;
a5)将步骤a3)所得的转基因水稻恢复系-1纯合系与步骤a4)所得的转基因水稻不育系杂交,获得同时含有所述融合基因片段A和所述融合基因片段B的转基因杂交水稻;
II)为如下b1)-b4):
b1)将所述融合基因片段A和所述融合基因片段B,两者中的一个导入水稻两系杂交体系中的恢复系,得到转基因水稻恢复系;另一个导入所述水稻两系杂交体系中的不育系,得到转基因水稻不育系;
b2)通过确定所述融合基因片段A和所述融合基因片段B,两者在所述转基因水稻恢复系或所述转基因水稻不育系基因组中的拷贝数及在染色体上的插入位点,得到满足如下条件的所述转基因水稻恢复系和所述转基因水稻不育系,分别记作转基因水稻恢复系-1和转基因水稻不育系-1:
所述融合基因片段A和所述融合基因片段B,两者在所述转基因水稻恢复系或所述转基因水稻不育系基因组中均以单拷贝的形式插入,并且所述融合基因片段A和所述融合基因片段B,两者在所述转基因水稻恢复系或所述转基因水稻不育系基因组中所位于的染色体编号相同;
b3)筛选获得转基因水稻恢复系-1纯合系和转基因水稻不育系-1纯合系;
b4)将步骤a3)所得的转基因水稻恢复系-1纯合系与转基因水稻不育系-1纯合系杂交,获得同时含有所述融合基因片段A和所述融合基因片段B的转基因杂交水稻。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述内含肽为来自于集胞藻6803的DnaE内含肽。
3.根据权利要求2所述的方法,其特征在于:所述DnaE内含肽的氨基酸序列为序列表中序列1。
4.根据权利要求3所述的方法,其特征在于:所述DnaE内含肽的所述N端剪接区的氨基酸序列为序列1;所述DnaE内含肽的所述C端剪接区的氨基酸序列为序列2。
5.根据权利要求4所述的方法,其特征在于:所述DnaE内含肽的所述N端剪接区的核苷酸序列为序列3;所述DnaE内含肽的所述C端剪接区的核苷酸序列为序列4。
6.根据权利要求1-5中任一所述的方法,其特征在于:所述目的基因为具有草甘膦抗性的G2-aroA基因;所述G2-aroA基因的核苷酸序列如序列表中序列5所示。
7.根据权利要求6所述的方法,其特征在于:所述G2-aroA基因的所述5’端序列为序列5的第1-885位;所述G2-aroA基因的所述3’端序列为序列5的第886-1335位。
8.根据权利要求1-7中任一所述的方法,其特征在于:所述水稻三系杂交体系中的恢复系为水稻品种中恢8006;所述水稻三系杂交体系中的保持系为水稻品种内香2B;所述水稻三系杂交体系中的不育系为水稻品种内香2A。
9.根据权利要求1-8中任一所述的方法,其特征在于:所述方法中,步骤a1)或b1)中,将所述融合基因片段A或所述融合基因片段B导入所述水稻三系杂交体系中的恢复系或所述水稻三系杂交体系中的保持系,是通过导入含有所述融合基因片段A或所述融合基因片段B的重组表达载体实现的。
10.根据权利要求9所述的方法,其特征在于:所述方法中,含有所述融合片段A的所述重组表达载体为在植物表达载体pCAMBIA1300的多克隆位点处自上游到下游依次插入ubi启动子、叶绿体导肽、所述融合基因片段A、nos终止子后得到的重组质粒;含有所述融合片段B的所述重组表达载体为在植物表达载体pCAMBIA1300的多克隆位点处自上游到下游依次插入ubi启动子、叶绿体导肽、所述融合基因片段B、nos终止子后得到的重组质粒。
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