CN102600466B - 抗甲型流感病毒新型通用表位疫苗及其制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种抗甲型流感病毒新型通用表位疫苗的制备方法,采用生物信息学方法,结合网络服务器和相关软件对流感保护抗原相关的NP、M1和HA功能表位进行了预测,获得来自H1N1、H3N1、H3N2、H5N1、H5N2亚型CTL表位和B细胞表位共8条表位,在每两个表位之间加入柔性片段GPGPG连接,命名为HMN;将表位多肽相应的核苷酸序列连到质粒载体上,原核系统表达,纯化的表达蛋白配以佐剂制成疫苗,免疫小鼠。该重组多肽,通过western blot试验,证明目的基因有效表达且具有抗原性;通过小鼠免疫试验,试验组T淋巴细胞亚群指数高于对照组,表明该多肽可诱导BALC/c小鼠产生针对所选表位的特殊性体液免疫和细胞免疫反应,证明其具有较强免疫原性。
Description
技术领域
本发明涉一种抗甲型流感病毒新型通用表位疫苗及其制备方法。
背景技术
流行性感冒(Influenza)是由流行性感冒病毒(简称流感病毒,Influenza Virus,IV)引起的至今尚未得到有效控制的呼吸道急性传染病。甲型流感病毒曾引起了全世界数次大范围的流行,每次大流行不仅造成了巨大的人力资源和物力资源的损失,还严重危害人类和畜禽健康。
禽流感(Avain Influenza AI)和猪流感(Swine Influenza S1)分别是由甲型流感病毒引起的禽类传染病和畜类传染病。Smith等人于1933年首次将从人体中所分离到的流感病毒称之为A型流感病毒。20世纪人类流感曾发生过3次瘟疫性的全球大流行,死亡人数达2000多万。禽流感病毒自意大利首次发现至今,由于候鸟的迁徙和国际间禽类贸易的日益频繁,使得该病呈全球性分布,给养禽业造成巨大的经济损失。猪在流感病毒的种间传播方面占有很特别的地位,被认为是人、禽和/或猪流感病毒通过基因重排产生新的亚型流感病毒的“混合器”。近年来,人畜共患病毒性疾病频繁发生,不仅出现了SARS等一些新型病毒,而且一些传统型的人畜共患病毒性疾病呈现流行趋势,并且随着病毒的不断进化,出现了一些新的烈性重组病毒。2009年在全球肆虐的甲型H1N1流感,再次敲响了人畜共患危害人类健康的警钟。目前,我国流感病毒流行广泛并且不断出现变异,毒株间重组的几率非常高。然而并无效果良好的疫苗,且现有疫苗中,不论是灭活苗、弱毒苗,还是亚单位疫苗,都需要培养大量的致病毒株。不仅给疫苗研制带来不便,同时还存在安全性、免疫原性、产量及保存等诸多方面存在不足,因此迫切需要研制新型的、高效的抗流感疫苗,应用新型疫苗来预防流感的爆发。
多表位疫苗(Multi-epitope Vaccine)也称鸡尾酒式疫苗,是同时携带多个与目标抗原相关的及辅助性表位的疫苗。抗原表位预测大多为计算机软件分析法,即根据已有的表位数据资料,通过计算机软件对氨基酸(或碱基)序列进行分析,迅速地预测出候选抗原表位。流感病毒的主要抗原相关蛋白有HA和NA、NP、基质蛋白M1/M2,其中HA、NA和M2是猪流感病毒的三种表面抗原分子,针对三种抗原的抗体都有抑制病毒感染的作用,但由于HA和NA抗原变异性很高,不同变异株间不交叉保护,研制此类抗原疫苗的速度往往跟不上病毒变异。M1和M2是病毒的两个基质蛋白,M1蛋白是病毒的主要结构蛋白,占流感蛋白总量的30%~40%,特异性强,是流感病毒分型的主要依据之一,IEDB的分析结构显示M1蛋白中存在至少三个极为保守的抗原决定簇。M2蛋白的氨基酸序列也高度保守,该蛋白在机体内能刺激产生抵抗不同性别流感抗原,但由于M2分子量很小,免疫原性较差,难以诱导高水平的免疫反应。NP蛋白是构成猪流感病毒的主要核蛋白,各亚型毒株之间氨基酸序列保守,是细胞毒性淋巴细胞识别的内部主要抗原。NP和M1在序列和抗原性上保持相对稳定,二者位于病毒内部,因此不是诱导中和抗体有效的靶目标。然而一旦病毒感染宿主细胞,这些蛋白可能是激活CTL并克服感染的靶目标。2006年Kaiser等提出了通用流感疫苗的设想,主要基于流感保守的NP和M蛋白。在DNA疫苗及活载体重组疫苗上,大量研究已证实通过添加NP或M组分,有助于对其他亚型的流感产生交叉免疫保护。Ernst等、De Filette分别构建了A型流感病毒M蛋白M2e表位,免疫组小鼠能抵抗H1、H3、H6、H9亚型流感病毒的感染。Kodihalli等用火鸡H5N2病毒的HA和NP蛋白制备的亚单位复合疫苗免疫火鸡。在免疫后21d,火鸡产生高的H1抗体滴度,并对同源或异源(H6N1)AIV的攻击产生抵抗力。Jeon等串联表达了HA、NP蛋白B细胞的表位、辅助性T细胞的表位和细胞毒性T细胞表位,将此翻译肽段免疫小鼠后产生了体液免疫和辅助性T细胞反应,小鼠可抵抗致死性病毒的攻击,并迅速得以康复。
发明内容
本发明的流感多表位疫苗,其中所描述CTL表位的选择采用SYFPEITHI、CTLpred、Multipre对参考毒株序列进行分析,对其HLA*0201及HLA*1101的CTL表位进行预测,筛选得分较高,排名靠前的CTL表位,综合评价各软件预测结果分析得到所需表位。
B表位预测使用网络服务器BepiPred 1.0sever、Bcepred对线性B细胞表位进行预测。筛选时依据亲水性好(hydrophilicity),可及性高(accessibility),可塑性好(flexibility),抗原性强(antigenicity),分子极性强(polarity),表面暴露(exposed surface)和转角可能性大(Turns)的为候选B细胞表位。所有预测表位筛选于HA主要抗原区和NP、M1的保守区域。汇总各项表位预测结果,以CTL表位预测为基础,使预测表位尽量覆盖B细胞表位预测区,以获得兼有CTL与B细胞表位功能的预测表位。应用SWISS MODELSIB Service和3D-JIGSAW Protein Comparative Modelling Server进行分子建模,分析候选表位构象,最终确定细胞表位。根据设计的表位,复原其核酸序列,按照原核优势密码子规则进行了优化,随后进行人工合成。
抗甲型流感病毒新型通用表位疫苗的制备方法,采用生物信息学方法,结合网络服务器和相关软件对流感保护抗原相关的NP、M1和HA功能表位进行了预测,获得来自H1N1、H3N1、H3N2、H5N1、H5N2亚型CTL表位和B细胞表位共8条表位,在每两个表位之间加入柔性片段GPGPG连接,命名为HMN;将表位多肽相应的核苷酸序列连到质粒载体上,原核系统表达,纯化的表达蛋白配以佐剂制成疫苗,免疫小鼠,所述8条表位分别为SEQ ID No:1至SEQ ID No:8;HMN的编码核苷酸序列为:SEQ ID No:9。
该多肽通过western blot试验,证明目的基因有效表达且具有抗原性;通过小鼠免疫试验,试验组T淋巴细胞亚群指数高于对照组,表明该疫苗可诱导BALC/c小鼠产生针对所选表位的特殊性体液免疫和细胞免疫反应,证明其具有免疫原性。
附图说明
图1:重组表达质粒pET28a-HMN PCR鉴定;M1:DNA分子质量标准;1、2:重组质粒pET28a-HMN PCR产物;
图2:重组表达质粒pET28a-HMN酶切鉴定;M1、M2:DNA分子质量标准;1:空质粒pET28a的BamH I+HindIII双酶切产物;2:重组质粒pET28a-HMN的BamH I+HindIII双酶切产物;
图3:重组蛋白原核表达,M:蛋白质分子量标准(低);1:BL21经IPTG诱导后的细菌裂解产物;2:pET28a-BL21经IPTG诱导后的细菌裂解产物;3-6:pET28a-HMN在28℃分别由0.1mmol/L、0.2mmol/L、0.3mmol/L、0.4mmol/L IPTG诱导后的细菌裂解产物;7-10:pET28a-HMN在37℃分别由0.1mmol/L、0.2mmol/L、0.3mmol/L、0.4mmol/LIPTG诱导后的细菌裂解产物;
图4:免疫小鼠T淋巴细胞亚类检测。A:PBS组;B:市售疫苗组;C:25μg组;D:50μg组。
具体实施方式
以下结合具体实施例,对本发明进行详细说明。
实施例1
流感病毒表位筛选
搜集已发表的流感表位,从NCBI(http://www.ncbi.nlm.nih.gov)上分别下载H1、H3、H5、H9亚型流感HA基因、NP基因和M1基因的氨基酸和核苷酸序列。
生物信息学MHC类分子预测采用:网络服务器SYFPEITHI(http://www.syfpeithi.de/home.htm )、CTLpred(http://www.imtech.res.in/raghava/ctlpred/index.html )、Multipre(http://www.i2r.a-star.Edu.sg);生物信息学B细胞表位预测采用:网络服务器BepiPred 1.0 sever (http://www.cbs.dtu.dk/services/BepiPred/)、Bcepred(http://www.imtech.res.in/raghava/bcepred/bcepred_submission.html)、SWISS MODELSIB Service(http://swissmodel.expasy.org/)和3D-JIGSAW Protein Comparative ModellingServer(http://bmm.cancerresearchuk.org/~3djigsaw/)。
应用生物信息学的方法,对多种亚型(H1、H3、H5、H9)流感HA、NP和M1相关的CTL和B细胞表位进行了预测分析,综合各项表位筛选获得CTL/B相关表位共8条,将表位片段(请参阅表1SEQ ID No:1至SEQ ID No:8所示)拼接起来(由于多表位基因片段独立且较小,在每两个氨基酸序列之间添加柔性片段:GPGPG,以促进表达蛋白进行正确折叠,减少由于空间构象相互影响而可能产生的对抗原性的影响),命名为HMN。
表1
序号 | 表位序列 | 来源 | 表位性质 |
SEQ ID No:1 | IPNIGSRPW | H3HA230-238 | CTL |
SEQ ID No:2 | RESRNPGNAEI | NP243-253 | CTL/B |
SEQ ID No:3 | RLVPKIATRSKVNG | H5HA223-236 | B |
SEQ ID No:4 | YVKSNRLVLATG | H5HA320-331 | CTL |
SEQ ID No:5 | LNGNGDPNNMD | M184-94 | CTL/B |
SEQ ID No:6 | KHSNGTVKDRSP | NA143-154 | B |
SEQ ID No:7 | KVRDQEGRM | H 1HA236-244 | CTL |
SEQ ID No:8 | RLIQNSLTIERMVLS | NP55-69 | Th |
2.多表位串联多肽的合成:将所设计的序列HMN的编码核苷酸序列交由上海生工生物工程有限公司进行合成。编码核苷酸序列为:
ATTCCGAACATTGGCTCCCGTCCGTGGGGTCCAGGTCCGGGTCGTGAATCTCGTAATCCAGGTAATGCAGAAATTGGCCCAGGTCCAGGTCGTCTGGTACCAAAAATCGCGACGCGTTCTAAGGTTAACGGTGGTCCAGGCCCTGGCTACGTTAAATCTAATCGCCTGGTACTGGCAACCGGTGGTCCGGGTCCTGGTCTGAATGGTAACGGTGATCCGAATAATATGGATGGCCCTGGTCCGGGCAAACACTCCAACGGCACTGTCAAGGACCGTTCCCCTGGCCCGGGTCCGGGCAAGGTTCGTGACCAGGAAGGCCGTATGGGTCCTGGCCCAGGCCGTCTGATTCAGAATTCTCTGACCATCGAACGTATGGTGCTGTCC;
3.引物合成:应用primer5、olige6引物设计软件,根据筛选的多表位序列设计引物,引物由博尚公司合成:
HMN-F:CCGGATCC ATTCCGAACATTGGCTCC
HMN-R:CCAAGCTT GGACAGCACCATACGTTCG
4.大肠杆菌感受态细胞的制备(氯化钙法)
用接种环取冻存的菌种DH5á在LB固体培养基上划线,倒置于37温箱过夜培养。挑生长良好的单个菌落接种于5mL LB液体培养基中37-振荡培养过夜。按1%的体积将培养物接种至适量200ml无抗性LB液体扩大培养基中,37℃,250r/min恒温振荡培养至OD600=0.4~0.5,将培养物转入预冷的离心管中,4℃5000r/min离心10min,弃上清,加入10ml CaCl2溶液,重悬沉淀,冰浴30min。4℃,5000r/min离心5min,弃上清。加入约1ml CaCl2溶液,重悬菌体,冰置几分钟。加入1ml 50%已灭菌甘油混匀后用冷却的无菌吸头将感受态细胞分装于无菌的1.5mL Ep管中,每管200ul,标明菌株、体积和日期,置-80℃冰箱保存备用。
5.限制性内切酶酶切反应
双酶切反应:选择反应活性等于或接近100%的同一缓冲系统进行双酶切反应,若温度或缓冲系统不同,则按先低温后高温,先低盐后高盐的顺序进行,或第一酶切完成后,酚/仿抽提,乙醇沉淀回收DNA,再进行第二酶切反应。反应液进行琼脂糖凝胶电泳检查。完全酶切后,回收片段备用。
6.PCR反应:用天根公司Taq的扩增HMN基因,按照说明加入10X Taq buffer2.5ul、dNTP Mixture(2.5mM)2ul、上游引物1ul、下游引物1ul、HMN基因1ul、天根EXTaq 0.5ul,灭菌水17ul。PCR循环参数设定为:94℃预变性5min,94℃30s,64℃30s,72℃30s,30个循环,最后72℃延伸10min。扩增在biometra PCR仪上进行,扩增得一条片段,利用琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒(离心柱型)(TIANGEN公司),按照操作说明将目的片段回收,纯化,用BamH I及HindIII双酶切后,与相同酶切的pET28a(+)载体连接。连接产物命名为pET28a-HMN。
7.转化
将连接产物pET28a-HMN加入感受态细胞中,轻轻混匀,冰浴30min。放入42℃水浴中,热激90s,冰浴冷却2min;加入到890uL LB液体培养基中,37℃条件下150r/min恒温振荡培养40~60min。室温12000r/min离心1min弃上清,重悬菌体,涂布在含有卡那霉素(100μg/ml)的LB琼脂平板上,37℃培养14~16h,出现转化菌落。
8.质粒的提取(碱裂解法)
接种单菌到5ml含适量抗生素的LB培养液中,37℃,200r/min恒温振荡培养过夜。室温下,12000r/min离心1min收集菌体。弃去上清。将细菌沉淀重悬于100μl预冷的Solution I溶液,冰置5min。加入200μl新鲜配制的Solution II,颠倒混匀。加入150μl预冷的Solution III,颠倒混匀,冰浴3~5min。4℃,12000r/min离心5min,取上清,加入等体积的酚∶氯仿∶异戊醇(体积比为25∶24∶1)溶液,振荡混匀,12000r/min离心10min,取上层溶液,加入2倍体积的无水乙醇,冰置15min,12000r/min离心10min,去上清,用1ml预冷的70%乙醇洗涤沉淀,12000r/min离心5min弃上清,室温或真空干燥。用50~100μl含20μg/ml RNase(无DNase)的TE(pH8.0)重新溶解DNA沉淀,37℃水浴中孵育30min(去除RNA)。由此获得的质粒DNA可于-20℃贮存备用。
9.质粒DNA的定量
以TE(pH8.0)为空白对照,用NaNoDROP 1000分光光度计测定核酸浓度。双链DNA纯品的OD260/OD280值为1.8-2.0,若样品OD260/OD280值低于1.6,则可能有蛋白质或酚污染,需进一步纯化;若样品OD260/OD280值高于2.0,说明可能样品中RNA含量过高,可以选择用RNA酶消化处理样品。
10.琼脂糖凝胶电泳
用1×TAE琼脂糖凝胶电泳缓冲液按质量(g)体积(ml)比(m/v)配制所需浓度的琼脂糖凝胶溶液,加热使琼脂糖完全溶解,冷却至60℃左右加入适量的溴化乙锭(Ethidium bromide,EB)至终浓度约为0.5μg/ml,充分混匀后缓慢倒入根据需要选定的电泳胶模中,厚度在3~5mm之间,插入相应的梳子,待凝胶完全冷却凝固后,小心拨出梳子,将凝胶放入装有缓冲液的电泳槽中。取适量待进行电泳检测的DNA样品滴加在Parafilm膜(或混样板)上,与合适体积的10×DNA上样缓冲液混匀后,用微量加样器小心的将混合后样品加到点样孔中。以5V/cm的电压进行电泳,当溴酚蓝指示剂迁移至凝胶适当位置后,停止电泳。在紫外灯下观察并记录结果,或拍照保存(图1)。
11.重组子的酶切筛选鉴定
将连接产物转化DH5α,37℃培养过夜。取单菌落接种于2mlKan LB培养液中,小量制备质粒DNA。选择2种合适的限制性内切酶消化,琼脂糖凝胶电泳分析(图2)。酶切结果与预计相同者即为重组质粒。
12.原核系统表达
将获得阳性重组质粒转化BL21(DE3)感受态,挑取单菌落,接种10mL LB液体培养基,加入10μLKana,培养至OD值0.6时,加入终浓度为0.4mmol/L的IPTG,37℃诱导4h,诱导后离心弃上清,加入100ulddH2O重悬沉淀,加入等体积上样缓冲液,SDS-PAGE电泳检测蛋白表达情况(图3)。诱导表达蛋白经Western blot检测能与抗His-tag抗体发生免疫学反应。采用亲和层析法,变性条件下纯化表达蛋白,蛋白经过复性后,定量。量取10mlPBS溶液,加入一定体积复性蛋白母液,使溶液蛋白终浓度为0.1μg/ul、0.2μg/ul,加入等体积福氏佐剂,混匀,4℃存放。
13.小鼠免疫试验
将6-8周龄昆明白雌鼠,随机分成3组,每组6只,A组每只小鼠注射100ul PBS溶液,B组每只小鼠注射100ul市面现有疫苗,C组每只小鼠注射HMN蛋白25μg/500ul量接种/次,D组每只小鼠注射HMN蛋白50μg/500ul量接种/次。间隔2周,免疫3次。三免后2周尾部采血,流式细胞仪测定T淋巴细胞亚群,所得数据进行统计学分析。分析所得数据,外周血T淋巴细胞计数结果表明,与对照组相比,各免疫组小鼠T淋巴细胞亚类CD3+、CD4+、CD8+数量均有明显增加。C、D组CD3+、CD4+与A组差异显著,D组CD3+、CD4+与B组差异不显著,B组CD3+、CD4+与A组差异不显著。C组CD8+数量高于其余组,且各组差异不显著(图4)。证明HMN蛋白具有良好的免疫原性,能使小鼠CD4+、CD8+T淋巴细胞显著增加,说明小鼠获得了针对多种亚型(H1、H3、H5)流感的体液和细胞免疫反应。
应当理解的是,对本领域普通技术人员来说,可以根据上述说明加以改进或变换,而所有这些改进和变换都应属于本发明所附权利要求的保护范围。
Claims (1)
1.一种流感病毒多表位串联多肽,其特征在于,编码所述多肽的核苷酸序列为:SEQ ID N0:9。
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