CN102586230A - 基于pcr的玉米半粒种子dna快速提取方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种基于PCR的玉米半粒种子DNA快速提取方法,是将玉米种子纵切,取一半(必须含有胚)放入1.5mL离心管中,加入500μL提取液(0.03mol/L~0.05mol/LKOH或NaOH溶液),提取1min~48h,混匀,即为DNA提取液样品。取0.5~5μL该DNA样品可以直接用于PCR扩增,该方法的主要用途是玉米种子纯度或GMO高通量检测,和基于PCR的玉米种子DNA快速提取主要用于玉米种子DNA的快速提取,提取后的DNA满足PCR扩增。
Description
一、技术领域
本发明涉及一种基于PCR的玉米半粒种子DNA快速提取方法,属于分子生物技术领域,具体涉及玉米半粒种子DNA快速提取,提取后的DNA适用于PCR扩增。
二、背景技术
目前,植物DNA 提取已经发展了很多方法,可以从植物叶片、果实和种子等组织器官中提取DNA,但大多数方法提取时间较长,这些方法大多应用于科学研究,难以应用于快速检测领域。在提取植物DNA的过程中,需要根据植物组织材料的外在性质(来源、部位、形态等)和内在特点(化学成分、组织结构等)的差异,选择适宜的方法或作一些特殊的处理。
传统的DNA提取方法(SDS法和CTAB法)是在裂解细胞的基础上,用等体积的酚氯仿或酚氯仿异戊醇(25:24:1)抽提使蛋白质变性沉淀于有机相,核酸留在水相,从而达到分离核酸的目的;加入RNA酶可以去除RNA;然后加入异丙醇或乙醇沉淀DNA;用70%乙醇漂洗沉淀,去除残留的有机溶剂和盐离子,以免影响DNA溶解和后续实验,最后用TE或ddH2O溶解DNA备用。自从SDS法和CTAB法报道以来,国内外很多学者对这两种方法作了许多改进。经典的DNA提取方法不需要昂贵的仪器和药品,提取的DNA能够满足一般分子生物学研究的需要,已成为分子生物学实验室提取DNA最常用的方法。但这些方法也存在着很多不足,如操作步骤复杂、耗时长、易交叉污染、苯酚和氯仿等有机溶剂易造成环境污染并且有损操作者健康等。今后,DNA提取方法研究的发展方向:①用无毒的有机溶剂或无机溶剂代替有毒的有机溶剂;②简化操作步骤,朝着批量提取的方向发展;③提取过程朝着自动化方向发展,将DNA提取与其他分子生物学技术(毛细管电泳、基因芯片技术等)相结合,实现从样品处理到分析的过程全部自动化。
由于目前的DNA提取方法提取时间较长,在短时间内不能进行基于PCR的大量样品的检测,难以在基于PCR的快速检测中应用。为了突破DNA提取时间较长这个瓶颈,国内外很多研究者加入了DNA提取研究的行列,并取得了一些成绩。近年来有很多DNA快速提取方法的报道,提取时间缩短了很多,少数方法可以用于快速检测,但提取速度还不是很快,有待进一步加快。
三、发明内容
为了解决上述问题,本发明提供了一种基于PCR的玉米半粒种子DNA快速提取方法。
一种基于PCR的玉米半粒种子DNA快速提取技术,是先将玉米种子沿胚纵切,取含有胚的半粒种子放入1.5mL离心管中,再加入200μL~1000μL 提取液,所述的提取液为0.03M~0.2M氢氧化钾( KOH)或氢氧化钠(NaOH)溶液,提取时间1min~48h,混匀提取液,混匀后的提取液即为DNA样品,用于PCR扩增。用于PCR扩增时DNA模板量为0.5μL~5μL,综合考虑DNA样品中杂质含量和加样的操作方便性,通常优先选择2μL作为DNA模板。
本发明提取过程简便,不研磨、不离心、不转管、不使用有毒试剂,最主要的是提取速度非常快。用SSR引物对该方法提取的DNA进行PCR扩增,扩增产物用9%PAGE(聚丙烯酰胺凝胶)检测,结果显示PCR扩增产物良好。
四、附图说明
图1 提取液浓度和体积对PCR扩增产物的影响(材料:郑单958)
由图1可知,PCR扩增产物主要受提取液浓度影响,提取液体积200μL~1000μL的样品间差异不显著。提取液浓度0.01~0.02M的样品有较弱的目标带,0.03~0.05M的样品有中等亮度的目标带,0.06~0.2M的样品有清晰的目标带,0.3M的样品无目标带。
图2 提取时间对PCR扩增产物的影响
由图2可知,提取1min~48h的样品间差异不显著,提取3d的样品目标带亮度开始减弱,提取4d的样品目标带已经很弱。
图3 DNA模板量对PCR扩增产物的影响
由图3可知,各处理间差异不显著,说明该方法有很宽的DNA模板量适应范围。
图4 不同公司的Mix对PCR扩增产物的影响(材料:郑单958)
由图4可知,提取液浓度0.01~0.02M的样品,两个公司的Mix都扩增出较弱的目标带;提取液浓度0.03~0.05M的样品,两个公司的Mix都扩增出中等亮度的目标带;但BioTeke公司的Mix对提取液浓度为0.06M~0.20M的样品的扩增都显示很亮的目标带,而天根公司的Mix对提取液浓度为0.06M~0.10M的样品扩增显示很亮的目标带,0.02M的样品就已经开始不出带;提取液浓度为0.3M的样品两个公司的Mix都未扩增出目标带。
图5提取液浓度0.03M,提取液体积500ml的 PCR扩增产物
有图5可知,提取液浓度0.03M,提取液体积500ml,提取10min,能保证得到较好的PCR产物。
图1、图4中:图上方是对应的提取液(KOH溶液)浓度编号:1~2:0.01M;3~4:0.02M;5~6:0.03M;7~8:0.04M;9~10:0.05M;11~12:0.06M;13~14:0.07M;15~16:0.08M;17~18:0.09M;19~20:0.1M;21~22:0.2M;23~24:0.3M。
图2中:图上方是对应的提取时间编号:1~2:1min;3~4:5min;5~6:10min;7~8:20min;9~10:40min;11~12:60min;13~14:12h;15~16:24h;17~18:36h;19~20:48h;21~22:3d;23~24:4d
图3中:图上方是对应的DNA模板量编号(1~12:郑单958):1~2:0.5μL;3~4:1μL;5~6:2μL;7~8:3μL;9~10:4μL;11~12:5μL。
图5中:图上方1、2、3、4对应4个重复。
图1中:图左侧是对应的提取液体积。
图2中:图左侧是对应的玉米品种。
图4中:图左侧是对应的提供Mix的公司。
图3中:Marker的大小(从上到下):200bp,180bp,160bp,140bp,120bp,100bp。
五、具体实施方式
以玉米商品种子(郑单958、先玉335)为材料,通过实施例对本发明做进一步的描述。
实施例统一采用20μL PCR扩增体系,具体组分及程序如下 (引物:phi065;Mix:北京BioTeke公司、北京天根公司)。取2μL PCR扩增后产物,浓度9%PAGE电泳检测。
本发明中的所述的浓度单位M是指摩尔浓度mol/L。
实施例1
说明所用的提取液浓度和体积对PCR扩增的影响。
(1) 提取液浓度和体积参数
提取液(KOH溶液)浓度分别为:0.01M,0.02M,0.03M,0.04M,0.05M,0.06M,0.07M,0.08M,0.09M,0.1M,0.2M,0.3M;提取液体积分别为:200μL,400μL,600μL,800μL,1000μL;共设定60种浓度、体积组合,如:设定KOH溶液浓度0.01M,体积分别为200μL,400μL,600μL,800μL,1000μL;以此类推。
(2) DNA提取
将120粒玉米种子逐粒沿胚纵切(60种浓度、体积提取组合,2次重复),将含胚的半粒种子分别放入1.5mL离心管中,不同浓度提取液按以上5种提取液体积分别加入离心管中,为保证结果的可靠,每种浓度、体积组合两次重复,提取10min后,将1.5 mL离心管中提取液逐个混匀,即为DNA提取样品。
(3) PCR扩增
取2μL上述DNA样品进行PCR扩增,用9%PAGE检测PCR扩增产物。
(4)结果检测
由图1(材料:郑单958)可知,PCR扩增产物主要受提取液浓度影响,提取液体积200μL~1000μL的样品间差异不显著。提取液浓度0.01~0.02M的样品有较弱的目标带,0.03~0.05M的样品有中等亮度的目标带,0.06~0.2M的样品有清晰的目标带,0.3M的样品无目标带。说明该方法的PCR扩增产物有较宽的提取液浓度适应范围(0.03~0.2M),而且有很宽的提取液体积适应范围(200μL~1000μL都可以),保证了该方法的可靠性和实用性。
实施例2
说明提取时间对PCR扩增的影响。
(1) DNA提取
取24粒郑单958玉米种子(12种时间处理,两次重复),沿胚纵切,取含胚的半粒种子放入1.5mL离心管中,加入500μL 0.05M KOH溶液,在25℃培养箱中提取:1min,5min,10min,20min,40min,60min,12h,24h,36h,48h,3d,4d,到提取时间后混匀,即为DNA提取样品,用于PCR扩增。
(2) PCR扩增
取2μL上述DNA提取样品,进行PCR扩增,用PAGE检测PCR扩增产物。
(3) 结果检测
由图2可知,提取1min~48h的样品间差异不显著,提取3d的样品目标带亮度开始减弱,提取4d的样品目标带已经很弱。因此,说明该方法有很宽的提取时间适应范围1min~48h,足以保证该方法的可行性。
实施例3
说明DNA模板用量对PCR扩增的影响。
(1) DNA提取
将种子沿胚纵切,取一半放入1.5mL离心管中,加入500μL提取液(0.05M KOH溶液),提取10min后混匀提取液。
(2) PCR扩增
分别取0.5μL,1μL,2μL,3μL,4μL,5μL DNA样品作为DNA模板进行PCR扩增,两次重复。
(3) 结果检测
由图3可知,各处理间差异不显著,说明该方法有很宽的DNA模板量适应范围。
实施例4
鉴定不同公司的Mix对本发明提取的DNA的PCR扩增产物的影响。
(1) DNA提取
将种子沿胚纵切,取一半放入1.5mL离心管中,分别加入0.01M,0.02M,0.03M,0.04M,0.05M,0.06M,0.07M,0.08M,0.09M,0.1M,0.2M,0.3M提取液500μL,两次重复,提取10min后混匀,用于PCR检测。
(2) PCR扩增
取2μL DNA提取样品进行PCR扩增,PCR扩增体系中的Mix分别购自北京的BioTeke公司和天根公司,两次重复。
(3) 结果检测
由图4(材料郑单958)可知,提取液浓度0.01~0.02M的样品,两个公司的Mix都扩增出较弱的目标带;提取液浓度0.03~0.05M的样品,两个公司的Mix都扩增出中等亮度的目标带;但BioTeke公司的Mix对提取液浓度为0.06M~0.20M的样品的扩增都显示很亮的目标带,而天根公司的Mix对提取液浓度为0.06M~0.10M的样品扩增显示很亮的目标带,0.2M的样品就已经开始不出带;提取液浓度为0.3M的样品两个公司的Mix都未扩增出目标带。因此,说明不同公司的Mix由于成分不同会导致扩增结果略有差异,但结论是一致的,提取液浓度为0.03 M~0.20M,提取时间1min~2d,均可满足PCR要求。
实施例5
证明本发明实用性。
(1) DNA提取
将4粒种子沿胚纵切,各取一半分别放入4个1.5mL离心管中,并分别加入0.03M提取液500μL,两次重复,提取10min后混匀,用于PCR检测。
(2) PCR扩增
取2μL DNA提取样品进行PCR扩增,PCR扩增体系中的Mix分别购自北京的BioTeke公司。
(3) 结果检测
由图5(材料先玉335)可知,提取液扩增显示很亮的目标带。因此,提取液浓度在本发明浓度范围内,提取适合的时间(1min~2d),均可满足PCR要求。
Claims (2)
1.一种基于PCR的玉米半粒种子DNA快速提取方法,其特征在于:先将玉米种子沿胚纵切,取含有胚的半粒种子放入1.5mL离心管中,再加入200μL~1000μL 提取液,所述的提取液为0.03M~0.2M氢氧化钾 KOH或氢氧化钠NaOH溶液,提取时间1min~2d,混匀提取液,混匀后的提取液即为DNA样品,用于PCR扩增时DNA样品模板量为0.5μL~5μL。
2.根据权利要求1所述的一种基于PCR的玉米半粒种子DNA快速提取方法,其特征在于:用于PCR扩增时所述的DNA样品模板量为2μL。
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Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103525808A (zh) * | 2013-10-26 | 2014-01-22 | 福建省农业科学院果树研究所 | 一种黄龙病菌dna的快速提取方法 |
CN103937783A (zh) * | 2014-04-29 | 2014-07-23 | 海河流域水环境监测中心 | 一种单克隆微囊藻dna的提取方法 |
CN108795926A (zh) * | 2018-06-27 | 2018-11-13 | 中国农业科学院麻类研究所 | 一种dna模板快速制备方法 |
CN110541045A (zh) * | 2019-09-16 | 2019-12-06 | 天津大学 | 一种利用玉米种子快速检测分子特征和品种纯度的方法 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1529841A1 (en) * | 2003-11-07 | 2005-05-11 | Hitachi High-Technologies Corporation | RNA extraction method, RNA extraction reagent, and method for analyzing biological materials |
CN101407808A (zh) * | 2008-11-11 | 2009-04-15 | 苏州工业园区普天生物科技有限公司 | 一种快速提取小鼠组织dna的方法 |
CN101724628A (zh) * | 2009-12-15 | 2010-06-09 | 中国水产科学研究院长江水产研究所 | 一种快速提取鱼类dna进行聚合酶链式反应的方法 |
-
2012
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Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1529841A1 (en) * | 2003-11-07 | 2005-05-11 | Hitachi High-Technologies Corporation | RNA extraction method, RNA extraction reagent, and method for analyzing biological materials |
CN101407808A (zh) * | 2008-11-11 | 2009-04-15 | 苏州工业园区普天生物科技有限公司 | 一种快速提取小鼠组织dna的方法 |
CN101724628A (zh) * | 2009-12-15 | 2010-06-09 | 中国水产科学研究院长江水产研究所 | 一种快速提取鱼类dna进行聚合酶链式反应的方法 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
吴向远 等: "玉米基因组DNA快速提取方法", 《河南农业大学学报》 * |
李葱葱等: "一种快速提取玉米基因组DNA的方法", 《玉米科学》 * |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103525808A (zh) * | 2013-10-26 | 2014-01-22 | 福建省农业科学院果树研究所 | 一种黄龙病菌dna的快速提取方法 |
CN103525808B (zh) * | 2013-10-26 | 2015-09-16 | 福建省农业科学院果树研究所 | 一种黄龙病菌dna的快速提取方法 |
CN103937783A (zh) * | 2014-04-29 | 2014-07-23 | 海河流域水环境监测中心 | 一种单克隆微囊藻dna的提取方法 |
CN108795926A (zh) * | 2018-06-27 | 2018-11-13 | 中国农业科学院麻类研究所 | 一种dna模板快速制备方法 |
CN110541045A (zh) * | 2019-09-16 | 2019-12-06 | 天津大学 | 一种利用玉米种子快速检测分子特征和品种纯度的方法 |
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