CN102424699B

CN102424699B - 一种新灰毡毛忍冬皂苷及其制备方法和用途

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Publication number: CN102424699B
Application number: CN201110284742.8A
Authority: CN
Inventors: 单宇; 冯煦; 管福琴; 孙浩; 陈雨; 王鸣; 印敏; 王奇志; 赵友谊
Original assignee: Institute of Botany of CAS
Current assignee: Institute of Botany of CAS
Priority date: 2011-09-23
Filing date: 2011-09-23
Publication date: 2016-02-17
Anticipated expiration: 2031-09-23
Also published as: CN102424699A

Abstract

本发明涉及一种新皂苷化合物及其制备方法和用途，属于天然药物化学领域，其特征是通过水或有机溶剂的化学方法，从灰毡毛忍冬花蕾中提取、分离、纯化，得到一种新忍冬绿原酸酯皂苷，命名为Lonimacranthoide？VI。该化合物可体内外抑制环氧化酶II和基质金属蛋白酶-9活性，且具有较强抗氧化活性，证明Lonimacranthoide？VI在医药领域中具有制备抗肿瘤药物和抗氧化剂的新用途。

Description

一种新灰毡毛忍冬皂苷及其制备方法和用途

一、技术领域：

本发明涉及天然药物化学领域，公开了从灰毡毛忍冬花蕾中提取分离的一种新忍冬绿原酸酯皂苷类化合物，以及该化合物的制备方法和在医药领域中的用途，尤其在制备环氧化酶II抑制剂、基质金属蛋白酶-2/9抑制剂抗肿瘤药物及自由基引起的疾病药物的用途。

二、技术背景：

忍冬属植物中富含绿原酸类和齐墩果酸型皂苷类成分。绿原酸具有抗菌、抗病毒、增高白血球、保肝利胆、抗肿瘤、降血压、降血脂、清除自由基和兴奋中枢神经系统等作用；近年有报道表明绿原酸有较强的抑制基质金属蛋白酶-2/9(MMP-9)的活性(Un-Ho，J.，etal.LifeSciences，2005，77：2760-2769)；同时，绿原酸通过对捕捉自由基正离子ABTS⁺、DPPH，稳定细胞膜等作用机制对红细胞溶血和DNA氧化产生保护作用(Kadoma，Y.，etal.Molecules，2008，13：2488-2494)。齐墩果酸型皂苷类成分也是一种重要的生物活性物质，这些皂苷报道有抑制环氧化酶II(COX-2)活性(Shepo，S.，etal.JNatProd，2006，69：1591-1595)等活性。灰毡毛忍冬(LoniceramacranthoidesHand.-Mazz.)为忍冬科忍冬属植物，具有清热解毒、抗菌消炎的功效，在中医临床及民间广泛应用于痈肿疔疮，喉痹，丹毒，热毒血痢，风热感冒，温热发病等疾病的治疗。2005年版《中国药典》收载，将其与红腺忍冬、华南忍冬一同列入山银花项下。江苏省中国科学院植物研究所在对灰毡毛忍冬花蕾中皂苷类成分的研究过程中，得到一种新的绿原酸酯皂苷类化合物，命名为LonimacranthoideVI，同时具有抑制自由基(IC₅₀＝0.37μM)、环氧化酶II(COX-2)(IC₅₀＝0.25μM)、基质金属蛋白酶2(MMP-2)(IC₅₀＝3.61μM)和基质金属蛋白酶9(MMP-9)(IC₅₀＝1.76μM)活性；在体内试验中，LonimacranthoideVI高中低剂量组(2.5、5.0和7.5mg/kg)均可明显抑制小鼠黑色素瘤B16/BL6肺转移灶数。有望开发成新的防治肿瘤生长和转移的抗癌药物及自由基引起的疾病药物。

三、发明内容：

本发明公开了一种绿原酸酯皂苷类化合物，简称LonimacranthoideVI，分子式为：C₇₅H₁₁₂O₃₅，分子量：1572，化学名为：

3-O-β-D-glucopyranosyl-(1→4)-β-D-glucopyranosyl-(1→3)-α-L-rhamnopyranosyl-(1→2)-α-L-arabinopyranosylhederagenin23-O-chlorogenicacyl-28-O-β-D-glucopyranosylester，化学结构式为：

上述化合物的制备方法，其特征在于以灰毡毛忍冬(LoniceramacranthoidesHand.-Mazz.)花蕾为原料，经水、甲醇、乙醇、甲醇-水混合溶液或乙醇-水混合溶液提取；水提取液直接过大孔树脂吸附，甲醇、乙醇、甲醇-水混合溶液或乙醇-水混合溶液的提取液浓缩后加水溶解过大孔树脂吸附；大孔树脂吸附物经柱层析分离而得。其中，大孔树脂包括D101、AB-8或HP-20；柱层析用担体选自硅胶、凝胶和反相硅胶中的一种或几种制得。

本发明的新绿原酸酯皂苷LonimacranthoideVI与医学上可接受的药用辅料组成药物组合物及其制剂。如，片剂、胶囊剂、以及注射剂。

本发明提供了新绿原酸酯皂苷LonimacranthoideVI制备环氧化酶II抑制剂、基质金属蛋白酶-2/9抑制剂抗肿瘤药物及自由基引起的疾病药物的用途。在体外，LonimacranthoideVI抑制自由基的IC₅₀为0.37μM、抑制环氧化酶II(COX-2)的IC₅₀为0.25μM、抑制基质金属蛋白酶2(MMP-2)的IC₅₀为3.61μM、抑制基质金属蛋白酶9(MMP-9)的IC₅₀为1.76μM。体内，当LonimacranthoideVI剂量为2.5、5和7.5mg/kg时对小鼠B16/BL6细胞静脉注射肺转移的抑制作用分别为42.3％、52.5％和67.3％。

四、附图说明：

图1、新忍冬绿原酸酯皂苷LonimacranthoideVI的结构式

图2、化合物(I)的主要HMBC相关关系

图3、化合物(I)的ESI-MS谱

图4、化合物(I)的¹H-NMR谱

图5、化合物(I)的¹³C-NMR谱

图6、化合物(I)的HMQC谱

图7、化合物(I)的HMBC谱

五、具体实施方式：

结合具体实施方式对本发明作进一步说明，但本发明的内容并不仅仅限于所列举的实施方式。

实施例1.从灰毡毛忍冬中分离和鉴定化合物LonimacranthoideVI

将灰毡毛忍冬干燥花蕾10kg，用100kg95％(体积比)乙醇-水溶液回流提取3次，每次2小时，浓缩至无醇味得浸膏(干重1.7kg)；所得浸膏加10倍体积的水溶解，滤纸过滤除去水不溶物，滤液用大孔树脂HP-20进行吸附，再以水，20％，70％乙醇溶液洗脱，合并70％乙醇溶液洗脱液，浓缩得灰毡毛忍冬总皂苷860g。所得灰毡毛忍冬总皂苷进行硅胶柱层析，洗脱剂依次为氯仿-甲醇-水(17∶3∶0.2→4∶1∶0.1→7∶3∶0.5→3∶3∶0.5)、甲醇；其中氯仿-甲醇-水(3∶3∶0.5)部分进行反复反相硅胶C-18柱层析(洗脱剂为37％乙醇-水溶液)分离及凝胶SephdexLH-20柱层析纯化(洗脱剂为40％乙醇-水溶液)得到化合物LonimacranthoideVI0.8g，得率为0.008％，纯度为96.99％(HPLC面积归一化法)。

化合物LonimacranthoideVI的鉴定，白色粉末，TLC香草醛-浓硫酸试液加热显紫红色，放置后变蓝。Molish反应和Liebermann-Burchard反应阳性。难溶于氯仿，易溶于水-甲醇混合溶液。以上信息提示该化合物为皂苷类化合物。由ESI-MS：[M-1]^-atm/z1571.8(见附图3)以及¹³C-NMR谱确定其分子式为C₇₅H₁₁₂O₃₅，分子量1572。由¹H、¹³C-NMR谱(C₅D₅N，500MHz)(见附图4、5)以及完全酸水解后co-TLC实验结果表明其皂苷元为常春藤皂苷元。¹³C-NMR：C-3(δ81.7)和C-28(δ176.5)表明该化合物在C-3、28位都接有糖链。¹H-NMR谱及HMQC谱(见附图6)中五个糖端基信号：δ4.82(1H，d，J＝6.6Hz)，5.15(1H，d，J＝7.7Hz)，5.58(1H，d，J＝7.1Hz)，6.20(1H，d，J＝8.4Hz)，and6.23(1H，brs)；以及¹³C-NMR：δ95.7，101.5，105.1，105.4和106.7显示化合物在C-28与C-3位上共有五个糖取代。糖的种类和比例由GC和2D-NMR确定为阿拉伯糖、鼠李糖、葡萄糖(1∶1∶3)。糖链的连接顺序由HMBC谱(见附图2、7)确定：由GlcII的H-1(δ5.15)与GlcI的C-4(δ81.3)相关，GlcI的H-1(δ5.58)与Rha的C-3(δ84.1)相关，Rha的H-1(δ6.23)与Ara的C-2(δ75.1)相关，Ara的H-1(δ4.82)与苷元的C-3(δ81.7)相关，确定C-3的糖链3-O-β-D-glucopyranosyl-(1→4)-β-D-glucopyranosyl-(1→3)-α-L-rhamnopyranosyl-(1→2)-α-L-arabinopyranosyl；由GlcI’的H-1(δ6.20)与C-28(δ176.5)相关，确定C-28的糖链28-O-β-D-glucopyranosyl。¹H-NMR中除了苷元和糖的氢信号还有：反式双键氢信号[δ6.50(1H，d，J＝15.9Hz，H-8″)，7.91(1H，d，J＝15.9Hz，H-7″)]，1、3、4-三取代苯氢信号[δ7.01(1H，dd，J＝2.3，8.3Hz，H-6″)，7.15(1H，d，J＝8.3Hz，H-5″)和7.54(1H，d，J＝2.3Hz，H-2″)]，三个接氧甲基质子[δ4.65(1H，m，H-3′)，4.17(1H，m，H-4′)和6.21(1H，m，H-5′)]，四个亚甲基质子[δ2.68，2.91(2H，m，H-2′)和2.70，2.91(2H，m，H-6′)]，这些信号结合碳谱信号表明该皂苷结构存在绿原酸酯。由HMBC谱确定绿原酸酯接在苷元的C-23位。综合各数据及与文献对比鉴定化合物LonimacranthoideVI为：

3-O-β-D-glucopyranosyl-(1→4)-β-D-glucopyranosyl-(1→3)-α-L-rhamnopyranosyl-(1→2)-α-L-arabinopyranosylhederagenin23-O-chlorogenicacyl-28-O-β-D-glucopyranosylester。经CA网络版检索为新化合物。

表1化合物LonimacranthoideVI的苷元与糖链部分的NMR数据(δ，ppm，0＝TMS，C₅D₅N)

^aValuesinparanthesesare¹H-¹Hsplittingsincaseswheretheseareclearlyresolved.

^bAra＝α-L-arabinopyranose；^cRha＝α-L-rhamnopyranose；^dGlc＝β-D-glucopyranose.

表2化合物LonimacranthoideVI的绿原酸酯部分与绿原酸的NMR数据(δ，ppm，0＝TMS，C₅D₅N)

HPLC法测定LonimacranthoideVI的纯度，色谱条件为：色谱柱C₁₈(AgilentEclipseXDB-C₁₈，4.6×250mm，5μm)；柱温：35℃；流动相：甲醇-水(60∶40)溶液洗脱；流速：0.8mL/min；进样量5μL；UV检测波长：332nm；理论塔板数按LonimacranthoideVI峰计算应不低于1000。LonimacranthoideVI的保留时间为7.82min，按面积归一化法计算产物的纯度为96.99％。

实施例2、用水提法从灰毡毛忍冬中制备LonimacranthoideVI

灰毡毛忍冬干燥花蕾1kg，用水加热提取三次，水用量为10升，提取时间为2小时，提取温度为100℃，提取液经大孔树脂D101吸附，再用水，15％，75％乙醇洗脱，75％乙醇洗脱液减压回收溶剂得灰毡毛忍冬总皂苷87g。所得灰毡毛忍冬总皂苷进行硅胶柱层析，流动相依次为氯仿-甲醇-水(17∶3∶0.2→4∶1∶0.1→7∶3∶0.5→3∶3∶0.5)、甲醇；其中氯仿-甲醇-水(3∶3∶0.5)进行反复反相硅胶C-18柱层析(洗脱剂为37％乙醇-水溶液)分离及凝胶柱SephdexLH-20层析纯化(洗脱剂为40％乙醇-水溶液)得到化合物LonimacranthoideVI0.08克，得率为0.008％，纯度为95％(外标法)。本实施例中所得产物的鉴定及纯度检查，是以实施例1所得LonimacranthoideVI为对照品采用HPLC法检测计算得到。HPLC测定方法的色谱条件为：色谱柱C₁₈(AgilentEclipseXDB-C₁₈，4.6×250mm，5μm)；柱温：35℃；流动相：甲醇-水(60∶40)溶液洗脱；流速：0.8mL/min；进样量5μL；UV检测波长：332nm；理论塔板数按LonimacranthoideVI峰计算应不低于1000。LonimacranthoideVI的保留时间为7.82min。

实施例3、用甲醇冷浸提取法从灰毡毛忍冬中制备LonimacranthoideVI

灰毡毛忍冬干燥花蕾1Kg，用甲醇冷浸提取三次，甲醇用量为20升，提取时间为20天，提取温度为室温，提取液浓缩至无醇味得浸膏(干重为120g)；所得浸膏加10倍体积的水溶解，滤纸过滤除去水不溶物，滤液用大孔树脂AB-8进行吸附，再以水，10％，80％乙醇溶液洗脱，合并80％乙醇溶液洗脱液，浓缩得灰毡毛忍冬总皂苷81g。所得灰毡毛忍冬总皂苷再经柱层析(硅胶柱层析：氯仿-甲醇-水梯度洗脱系统，RP-C18柱层析：水-甲醇系统，凝胶柱层析：水-甲醇系统)分离后，得到化合物LonimacranthoideVI0.07克，得率为0.007％，纯度为98％(外标法)。本实施例中所得产物的鉴定及纯度检查，是以实施例1所得LonimacranthoideVI为对照品采用HPLC法检测计算得到。HPLC测定方法的色谱条件为：色谱柱C₁₈(AgilentEclipseXDB-C₁₈，4.6×250mm，5μm)；柱温：35℃；流动相：甲醇-水(60∶40)溶液洗脱；流速：0.8mL/min；进样量5μL；UV检测波长：332nm；理论塔板数按LonimacranthoideVI峰计算应不低于1000。LonimacranthoideVI的保留时间为7.82min。

实施例4、用甲醇加热回流提取法从灰毡毛忍冬中制备LonimacranthoideVI

灰毡毛忍冬干燥花蕾1kg，用8kg甲醇回流提取3次，每次2小时，提取液浓缩至无醇味得浸膏(干重为150g)；所得浸膏加10倍体积的水溶解，滤纸过滤除去水不溶物，滤液用大孔树脂D101进行吸附，再以水，10％，75％乙醇溶液洗脱，合并75％乙醇溶液洗脱液，浓缩得灰毡毛忍冬总皂苷89g。所得灰毡毛忍冬总皂苷再经柱层析(硅胶柱层析：氯仿-甲醇-水梯度洗脱系统，RP-C18柱层析：水-甲醇系统，凝胶柱层析：水-甲醇系统)分离后，得到化合物LonimacranthoideVI0.09克，得率为0.009％，纯度为96％(外标法)。本实施例中所得产物的鉴定及纯度检查，是以实施例1所得LonimacranthoideVI为对照品采用HPLC法检测计算得到。HPLC测定方法的色谱条件为：色谱柱C₁₈(AgilentEclipseXDB-C₁₈，4.6×250mm，5μm)；柱温：35℃；流动相：甲醇-水(60∶40)溶液洗脱；流速：0.8mL/min；进样量5μL；UV检测波长：332nm；理论塔板数按LonimacranthoideVI峰计算应不低于1000。LonimacranthoideVI的保留时间为7.82min。

实施例5、用高浓度的甲醇-水混合溶液提取法从灰毡毛忍冬中制备LonimacranthoideVI

灰毡毛忍冬干燥花蕾1kg，用10kg95％(体积比)甲醇-水的混合溶液回流提取3次，每次2小时，提取液浓缩至无醇味得浸膏(干重为170g)；所得浸膏加9倍体积的水溶解，滤纸过滤除去水不溶物，滤液用大孔树脂HP-20进行吸附，再以水，10％，75％乙醇溶液洗脱，合并75％乙醇溶液洗脱液，浓缩得灰毡毛忍冬总皂苷78g。所得灰毡毛忍冬总皂苷再经柱层析(硅胶柱层析：氯仿-甲醇-水梯度洗脱系统，RP-C18柱层析：水-甲醇系统，凝胶柱层析：水-甲醇系统)分离后，得到化合物LonimacranthoideVI0.10克，得率为0.010％，纯度为97％(外标法)。本实施例中所得产物的鉴定及纯度检查，是以实施例1所得LonimacranthoideVI为对照品采用HPLC法检测计算得到。HPLC测定方法的色谱条件为：色谱柱C₁₈(AgilentEclipseXDB-C₁₈，4.6×250mm，5μm)；柱温：35℃；流动相：甲醇-水(60∶40)溶液洗脱；流速：0.8mL/min；进样量5μL；UV检测波长：332nm；理论塔板数按LonimacranthoideVI峰计算应不低于1000。LonimacranthoideVI的保留时间为7.82min。

实施例6、用低浓度的甲醇-水混合溶液提取法从灰毡毛忍冬中制备LonimacranthoideVI

灰毡毛忍冬干燥花蕾1kg，用8kg40％(体积比)甲醇-水的混合溶液回流提取3次，每次2小时，提取液浓缩至无醇味得浸膏(干重为180g)；所得浸膏加4倍体积的水溶解，滤纸过滤除去水不溶物，滤液用大孔树脂HP-20进行吸附，再以水，10％，75％乙醇溶液洗脱，合并75％乙醇溶液洗脱液，浓缩得灰毡毛忍冬总皂苷79g。所得灰毡毛忍冬总皂苷再经柱层析(硅胶柱层析：氯仿-甲醇-水梯度洗脱系统，RP-C18柱层析：水-甲醇系统，凝胶柱层析：水-甲醇系统)分离后，得到化合物LonimacranthoideVI0.09克，得率为0.009％，纯度为98％(外标法)。本实施例中所得产物的鉴定及纯度检查，是以实施例1所得LonimacranthoideVI为对照品采用HPLC法检测计算得到。HPLC测定方法的色谱条件为：色谱柱C₁₈(AgilentEclipseXDB-C₁₈，4.6×250mm，5μm)；柱温：35℃；流动相：甲醇-水(60∶40)溶液洗脱；流速：0.8mL/min；进样量5μL；UV检测波长：332nm；理论塔板数按LonimacranthoideVI峰计算应不低于1000。LonimacranthoideVI的保留时间为7.82min。

实施例7、用乙醇冷浸提取法从灰毡毛忍冬中制备LonimacranthoideVI

灰毡毛忍冬干燥花蕾1kg，用乙醇冷浸提取三次，乙醇用量为20升，提取时间为20天，提取温度为室温，提取液浓缩至无醇味得浸膏(干重为110g)；所得浸膏加10倍体积的水溶解，滤纸过滤除去水不溶物，滤液用大孔树脂D-101进行吸附，再以水，10％，75％乙醇溶液洗脱，合并75％乙醇溶液洗脱液，浓缩得灰毡毛忍冬总皂苷75g。所得灰毡毛忍冬总皂苷再经柱层析(硅胶柱层析：氯仿-甲醇-水梯度洗脱系统，RP-C18柱层析：水-甲醇系统，凝胶柱层析：水-甲醇系统)分离后，得到化合物LonimacranthoideVI0.11克，得率为0.011％，纯度为98％(外标法)。本实施例中所得产物的鉴定及纯度检查，是以实施例1所得LonimacranthoideVI为对照品采用HPLC法检测计算得到。HPLC测定方法的色谱条件为：色谱柱C₁₈(AgilentEclipseXDB-C₁₈，4.6×250mm，5μm)；柱温：35℃；流动相：甲醇-水(60∶40)溶液洗脱；流速：0.8mL/min；进样量5μL；UV检测波长：332nm；理论塔板数按LonimacranthoideVI峰计算应不低于1000。LonimacranthoideVI的保留时间为7.82min。

实施例8、用低浓度的乙醇-水混合溶液提取法从灰毡毛忍冬中制备LonimacranthoideVI

灰毡毛忍冬干燥花蕾1kg，用10kg30％(体积比)乙醇-水的混合溶液回流提取3次，每次2小时，提取液浓缩至无醇味得浸膏(干重约为170g)；所得浸膏加4倍体积的水溶解，滤纸过滤除去水不溶物，滤液用大孔树脂HP-20进行吸附，再以水，10％，75％乙醇溶液洗脱，合并75％乙醇溶液洗脱液，浓缩得灰毡毛忍冬总皂苷8.2g。所得灰毡毛忍冬总皂苷再经柱层析(硅胶柱层析：氯仿-甲醇-水梯度洗脱系统，RP-C18柱层析：水-甲醇系统，凝胶柱层析：水-甲醇系统)分离后，得到化合物LonimacranthoideVI0.07克，得率为0.007％，纯度为97％(外标法)。本实施例中所得产物的鉴定及纯度检查，是以实施例1所得LonimacranthoideVI为对照品采用HPLC法检测计算得到。HPLC测定方法的色谱条件为：色谱柱C₁₈(AgilentEclipseXDB-C₁₈，4.6×250mm，5μm)；柱温：35℃；流动相：甲醇-水(60∶40)溶液洗脱；流速：0.8mL/min；进样量5μL；UV检测波长：332nm；理论塔板数按LonimacranthoideVI峰计算应不低于1000。LonimacranthoideVI的保留时间为7.82min。

实施例9、化合物LonimacranthoideVI体外抑制环氧化酶II(COX-2)的活性测试

以每孔1×10⁵个细胞接种于96孔培养板，24h后换培养基。设不加药物的细胞为对照组，加入不同浓度LonimacranthoideVI培养24h后收集上清，存于-20℃备用。取上述细胞培养上清按荧光免疫试剂盒说明测定前列腺素E(prostaglandinE2，PGE2)。

表3不同浓度LonimacranthoideVI对COX-2的作用

结果显示，随着化合物浓度增加，环氧化酶II(COX-2)活性逐渐降低，IC50＝0.25μM。

实施例10、化合物LonimacranthoideVI体外抑制基质金属蛋白酶2/9(MMP-2/9)的活性测试

收集细胞，以10⁵个/孔接种24孔板，培养过夜。PBS洗两遍，换无血清培养基培养1h，去培养基后，PBS洗2遍，加200μl的不同浓度LonimacranthoideVI和溶剂对照的无血清培养基培养24h。离心收集细胞上清液，SDS-PAGE电泳。100ml2.5％Triton-X-100洗脱半小时，然后加入100ml明胶酶缓冲液，37度恒温摇床中温育18-24h。染色，脱色直至条带清晰。

表4明胶酶谱法检测LonimacranthoideVI对MMP-2、9的抑制活性

结果显示，相对未给药对照组，给药后MMP-2、9被抑制，IC₅₀分别为1.76、3.61μM。

实施例11、化合物LonimacranthoideVI对小鼠黑色素瘤试验性转移的抑制作用

取对数生长期的小鼠肺高转移黑色素瘤细胞B16/BL6，用PBS稀释至2.5×10⁵个/ml，每只小鼠静脉注射0.2ml后随机分为5组，每组8只，次日给药。设3个给药组，分别每日灌胃给予LonimacranthoideVI2.5、5和7.5mg/kg，连续给药14d；阴性对照组为溶剂对照组，每日灌胃给予0.5％CMCNa0.5ml，连续14d；环磷酰胺为阳性对照组，每日皮下注射(30mg/kg，7d)。第21天所有动物拉颈处死，取出肺，计数肺上黑色素瘤斑点数，记为转移灶数，按下式计算转移抑制率。

转移抑制率(％)＝(阴性对照组平均转移灶数一给药组平均转移灶数)/阴性对照组平均转移灶数×100％

结果表明，化合物LonimacranthoideVI剂量为2.5、5和7.5mg/kg时对小鼠B16/BL6细胞静脉注射肺转移的抑制作用分别为42.3％、52.5％和67.3％。高剂量组与阴性对照组相比，肺转移灶数显著减少(P＜0.05)。

实施例12、DPPH自由基清除活性的测定

向96孔板中加入不同浓度的样品100μL，然后再加入0.16mmol/LDPPH100μl。该体系于25℃条件下反应30min，于517nm波长处测定得样品吸光度(Ai)，将体系中的样品改为加入100μLH₂O，其他试剂量不变，测定得空白对照吸光度(Ao)；当向体系中加入100μL无水乙醇代替DPPH时，测得样品本底吸光度(Aj)，每个样品作4个重复，取平均值，以抗坏血酸作阳性对照，按下面公式计算清除率：

表5LonimacranthoideVI对DPPH自由基的抑制活性

结果显示，随着样品浓度增加，DPPH自由基活性逐渐降低，IC₅₀＝0.59μg/mL(0.37μM)。

实施例13、含本发明新皂苷单体LonimacranthoideVI的片剂

取实施例1制得的LonimacranthoideVI10g与微晶纤维素50g及糊精5g混合，用适量30％乙醇做湿润剂，制成软材，常规方法制粒，加入适量硬脂酸镁混合，制成片剂。本片剂中每片含LonimacranthoideVI50mg。

实施例14、含本发明新皂苷单体LonimacranthoideVI的胶囊剂

取LonimacranthoideVI5g与淀粉7g，糊精10g，糖粉10g混合，用适量30％乙醇做湿润剂，制成软材，常规方法制粒，装入硬胶囊中。本胶囊剂中每粒含LonimacranthoideVI70mg。

实施例15、含本发明新皂苷单体LonimacranthoideVI的注射剂

取LonimacranthoideVI5g以普通注射剂制备方法，用250ml60℃注射用蒸馏水溶解，用NaCl调节等渗，封入安瓶。本注射剂10ml含LonimacranthoideVI200mg。

Claims

1.一种绿原酸酯皂苷类化合物LonimacranthoideVI，其特征在于化学名为3-O-β-D-glucopyranosyl-(1→4)-β-D-glucopyranosyl-(1→3)-α-L-rhamnopyranosyl-(1→2)-α-L-arabinopyranosylhederagenin23-O-chlorogenicacyl-28-O-β-D-glucopyranosylester，化学结构式为：

2.制备权利要求1所述化合物的方法，其特征在于水提取的具体工艺步骤如下：灰毡毛忍冬干燥花蕾1kg，用水加热提取3次，水用量为10升，提取时间为2小时，提取温度为100℃，提取液经大孔树脂D101吸附，再用水，15％，75％乙醇洗脱，75％乙醇洗脱液减压回收溶剂得灰毡毛忍冬总皂苷87g；所得灰毡毛忍冬总皂苷进行硅胶柱层析，流动相依次为17∶3∶0.2→4∶1∶0.1→7∶3∶0.5→3∶3∶0.5的氯仿-甲醇-水、甲醇；其中3∶3∶0.5的氯仿-甲醇-水进行反复反相硅胶C-18柱层析分离，洗脱剂为37％乙醇-水溶液，及凝胶柱SephdexLH-20层析纯化，洗脱剂为40％乙醇-水溶液，得到化合物LonimacranthoideVI0.08克。

3.制备权利要求1所述化合物的方法，其特征在于甲醇提取的具体工艺步骤如下：灰毡毛忍冬干燥花蕾1 kg，用甲醇加热回流提取3次，甲醇用量8kg，提取时间2小时，提取液浓缩至无醇味得浸膏，浸膏干重为150g；所得浸膏加10倍体积的水溶解，滤纸过滤除去水不溶物，滤液用大孔树脂D101进行吸附，再以水，10％，75％乙醇溶液洗脱，合并75％乙醇溶液洗脱液，浓缩得灰毡毛忍冬总皂苷89g，所得灰毡毛忍冬总皂苷再经硅胶柱层析、RP-C18柱层析、凝胶柱层析分离后，得到化合物LonimacranthoideVI0.09克，其中所述硅胶柱层析洗脱系统为氯仿-甲醇-水梯度，RP-C18柱层析洗脱系统为水-甲醇，凝胶柱层析洗脱系统为水-甲醇。

4.制备权利要求1所述化合物的方法，其特征在于乙醇-水混合溶液提取的具体工艺步骤如下：将灰毡毛忍冬干燥花蕾1kg，用10kg体积比为30％乙醇-水的混合溶液回流提取3次，每次2小时，提取液浓缩至无醇味得浸膏，浸膏干重170g；所得浸膏加4倍体积的水溶解，滤纸过滤除去水不溶物，滤液用大孔树脂HP-20进行吸附，再以水，10％、75％乙醇溶液洗脱，合并75％乙醇溶液洗脱液，浓缩得灰毡毛忍冬总皂苷8.2g；所得灰毡毛忍冬总皂苷再经硅胶柱层析、RP-C18柱层析、凝胶柱层析分离后，得到化合物LonimacranthoideVI0.07克，其中所述硅胶柱层析洗脱系统为氯仿-甲醇-水梯度，RP-C18柱层析洗脱系统为水-甲醇，凝胶柱层析洗脱系统为水-甲醇。

5.权利要求1所述的化合物与医学上可接受的药用辅料组成药物制剂。

6.根据权利要求5所述药物制剂，其特征在于所述药物制剂是片剂、胶囊剂和注射剂。

7.权利要求1所述的化合物在制备环氧化酶II抑制剂、基质金属蛋白酶-2/9抑制剂类的抗肿瘤药物的用途。

8.权利要求1所述化合物在制备治疗和/或预防自由基引起的疾病药物中的用途。