CN102384955A - 人体血浆中洛伐他汀酸及HMG-CoA还原酶抑制剂的定量分析方法 - Google Patents
人体血浆中洛伐他汀酸及HMG-CoA还原酶抑制剂的定量分析方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102384955A CN102384955A CN2010102705367A CN201010270536A CN102384955A CN 102384955 A CN102384955 A CN 102384955A CN 2010102705367 A CN2010102705367 A CN 2010102705367A CN 201010270536 A CN201010270536 A CN 201010270536A CN 102384955 A CN102384955 A CN 102384955A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- preparation
- solution
- hydroxyl
- mval
- lovastatin acid
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Images
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明公开了一种通过测定HMG-CoA还原酶活性定量分析人体血浆中洛伐他汀酸及其它HMG-CoA还原酶抑制剂的方法。经过方法适用性实验验证,用本方法在测定人血浆中洛伐他汀酸和其他HMG-CoA还原酶抑制剂的抑制活性可满足方法学要求,可以被生物研究接受。所有数据符合试验设计的验收标准。
Description
发明领域
本发明涉及一种人体血浆中洛伐他汀酸及其它HMG-CoA还原酶抑制剂的定量分析方法,特别涉及一种通过测定HMG-CoA还原酶活性定量分析人体血浆中洛伐他汀酸及其它HMG-CoA还原酶抑制剂的方法。
背景技术
HMG-CoA还原酶是胆固醇合成的关键酶,抑制HMG-CoA还原酶可以限制胆固醇的合成,达到调节血脂的目的。目前HMG-CoA还原酶抑制剂主要有洛伐他汀、辛伐他汀、普伐他汀、氟伐他汀、阿托伐他汀、瑞舒伐他汀等。文献报道的技术方法均为针对单个他汀的定量分析方法,由于他汀类的血浆代谢产物他汀酸类亦具有一定的HMG-CoA还原酶抑制活性,所以定量分析血浆中他汀类药物的含量并不能真实的反应此他汀对HMG-CoA还原酶的抑制活性。本方法通过HMG-CoA还原酶抑制剂的定量分析,可以从总体上评价洛伐他汀对HMG-CoA还原酶的抑制活性,而不单是洛伐他汀本身,尚包含其他洛伐他汀代谢物等活性成分对HMG-CoA还原酶的抑制作用。目前尚未见定量分析HMG-CoA还原酶抑制剂的方法学报道。
发明内容
本发明目的在于公开一种通过测定HMG-CoA还原酶活性定量分析人体血浆中洛伐他汀酸及其它HMG-CoA还原酶抑制剂的方法。
本发明目的是通过如下方案实现的:
本发明定量分析方法具体包括如下步骤:
A.试剂溶液的配制
(1)200mM磷酸二氢钾缓冲液(pH7.4,PBS)的配制
称取10.6g K3PO4·3H2O于烧杯中,加180mL水溶解,用H3PO4调节pH至7.4,再加入纯水至200mL,摇匀;
(2)200mM EDTA(乙二胺四乙酸)(在200mM pH7.4的PBS中)的配制
向200mL pH7.4,200mM的PBS中加入162mg K2EDTA·2H2O(乙二胺四乙酸二钾),摇匀;
(3)10mM DTT(二硫苏糖醇)(在2mM EDTA和200mM PBS(PH7.4)中)的配制取15.4mg DTT至10mL容量瓶中,以2mM EDTA定容至刻度;
(4)12mM NADPH(还原型辅酶II)的配制
取20mg NADPH·Na4至5mL塑料管中,加入2mL纯水,溶解混匀,于-20℃保存,备用;
(5)0.4mM HMG-CoA的配制
将10mg HMG-CoA加至25mL容量瓶中,纯水稀释至刻度并混合均匀,每3mLHMG-CoA分装至一只5mL PP试管中,于-20℃冷冻保存;
(6)3.3mg/mL大鼠肝脏微粒体(在2mM NADPH中)的配制
以10mM DTT将20mg/mL的大鼠肝脏微粒体稀释至4mg/mL,将该溶液以5∶1的比例与12mM NADPH混合;
(7)5N HCl的配制
将5mL HCl倒至玻璃容器中,以7mL水溶解,摇匀;
(8)0.1N HCl的配制
取9.0mL HCl至1000mL容量瓶中,加水稀释至刻度,摇匀;
(9)15%甲醇的配制
加入75mL甲醇至425mL水中,摇匀;
(10)0.2%氨水的配制
取8.0mL 25%氨水至1000mL容量瓶中,用纯水定容至刻度,摇匀;
(11)10mM甲酸铵(pH=8.0)的配制
在1000mL烧瓶中,将630g甲酸铵用800mL水溶解,以0.2%氨水调至pH 8.0,转移至1000mL容量瓶中并用纯水定容至刻度,摇匀;
(12)流动相的配制
700mL 10mM,pH=8.0的甲酸铵与300mL乙腈混合均匀;
(13)稀释液:0.1%甲酸甲醇溶液的配制
移取100μL甲酸至100mL甲醇中,摇匀;
(14)0.5%甲酸甲醇溶液的配制
移取500μL甲酸至100mL甲醇中,摇匀;
(15)羟基洛伐他汀酸标准储备液的配制
羟基洛伐他汀酸标准储备液(LSS,1mg/mL):精密称取10mg羟基洛伐他汀酸钠至10mL容量瓶中,以稀释液溶解并定容至刻度,于-20℃下冷冻保存;
羟基洛伐他汀酸标准储备液1(LSS1,10μg/mL)的配制:取100μL LSS至10mL容量瓶中并以稀释液定容至刻度,于-20℃下冷冻保存;
(16)羟基洛伐他汀酸标准加样溶液(STD)的配制
以表1的方法配制标准加样溶液,于-20℃下冷冻保存;
表1羟基洛伐他汀酸标准加样溶液的配制
(17)羟基洛伐他汀酸(QC)储备液的配制
羟基洛伐他汀酸QC储备液(LQS,1mg/mL)的配制:精密称取10mg羟基洛伐他汀酸钠至10mL容量瓶中,以稀释液溶解并定容至刻度,于-20℃下冷冻保存;
羟基洛伐他汀酸QC储备液1(LQS1,10μg/mL)的配制:取100μL LQS至10mL容量瓶中并以稀释液定容至刻度,于-20℃下冷冻保存;
(18)羟基洛伐他汀酸(QC)标准加样溶液的配制
以表2的方法配制标准加样溶液,于-20℃下冷冻保存;
表2羟基洛伐他汀酸(QC)标准加样溶液的配制
(19)羟基洛伐他汀酸(QC)样品溶液的配制
以表3的方法配制样品溶液,于-20℃下冷冻保存;
表3羟基洛伐他汀酸(QC)样品溶液的配制
(20)甲瓦龙酸内酯(MVAL)标准储备液的配制
甲瓦龙酸内酯标准储备液(MSS,2mg/mL):精密称取20mg甲瓦龙酸内酯至10mL容量瓶中,乙腈溶解并定容至刻度,摇匀,4℃保存;
甲瓦龙酸内酯标准储备液1(MSS1,5μg/mL):取50μL MSS至20mL容量瓶中并以水定容至刻度,摇匀,4℃保存;
(21)甲瓦龙酸内酯(MVAL)标准加样溶液的配制
以表4的方法配制标准加样溶液,于-20℃下冷冻保存;
表4甲瓦龙酸内酯(MVAL)标准加样溶液的配制
(22)内标物溶液的制备
内标物储备液(ISS,500μg/mL):移取10mg甲瓦龙酸内酯-d7(MVAL-d7,内标物)于20mL容量瓶中,乙腈溶解并稀释至刻度;4℃保存;
内标物储备液1(ISS1,100μg/mL)的制备:取1000μL ISS至5mL容量瓶中,纯水溶解并稀释至刻度,摇匀,MVAL-d7的准确加入量应根据ISS的储备浓度计算;4℃保存;
内标物储备液2(ISS2,10μg/mL)的制备:取200μL ISS至10mL容量瓶中,纯水溶解并稀释至刻度,摇匀,MVAL-d7的准确加入量应根据ISS的储备浓度计算;4℃保存;
内标物溶液(200ng/mL)的制备:取200μL ISS2至10mL容量瓶中,纯水溶解并稀释至刻度;4℃保存;
B.试验前预处理
(1)羟基洛伐他汀酸工作标准溶液的制备
在2mL塑料管中以表5的方法配制工作标准溶液:
表5羟基洛伐他汀酸工作标准溶液的制备
(2)取100μL血浆(双空白溶液**,空白溶液***,工作曲线溶液,QC样品溶液)至1.2mL 96深孔板中;加入400μL 0.5%甲酸(Formic Acid,FA),盖板并充分振荡;3750rpm离心10min,取上清液300μL加至1.2mL可拆装的96孔板中,30℃氮气吹干,得提取物于-20℃下保存;
STD 0*:0ng/mL样品溶液(阴性对照);
双空白溶液**:含有肝脏微粒体和NADPH,而不含有HMG-CoA和内标物的血浆样品;
空白溶液***:含有肝脏微粒体、NADPH以及内标物,而不含有HMG-CoA的血浆样品;
C.HMG-CoA酶反应
将上述可拆装的96孔板中的1.2mL小管重新装配至96孔板上,向各小管中分别加入20μL水,涡流振荡混匀;冰浴下,用排枪向各管中加入3.3mg/mL的大鼠肝脏微粒体溶液120μL,涡流振荡混匀;37℃水浴预孵育,同时振摇15min;再用排枪加入0.4mM的HMG-CoA溶液20μL,涡流振荡混匀,其中双空白和空白样品溶液中均加入20mL纯水代替HMG-CoA;37℃水浴孵育,同时振摇30min;用排枪向各孔加入5N的HCl 20μL,涡流振荡混匀;再次37℃水浴孵育,同时振摇15min以终止反应,得反应溶液,备用;
D.MVAL含量测定前处理
分别取150μL MVAL标准加样溶液或反应溶液(双空白溶液、空白溶液、羟基洛伐他汀酸工作溶液、QC样品溶液和待测样品溶液)至玻璃试管中;除双空白溶液外,向其余各试管分别加入100μL内标物加样溶液;再加入900μL 0.1N的HCl和1mL水,涡流振荡混匀,静置30min使MVA转化为MVAL;采用1mL甲醇和1mL 0.1N的HCl次序活化ENV-SPE小柱;将样品上ENV-SPE小柱后,以1mL 0.1N的HCl,1mL纯水和1mL 15%甲醇依次洗脱,抽干小柱;再以0.5mL甲醇洗脱ENV-SPE小柱3次,富集流份;洗脱液在40℃下,氮气吹干;干燥物以200μL 0.2%氨水重溶,涡流振荡混匀,静置30min使MVAL转化为MVA;接着进样LC/MS/MS系统,30μL/针;
E.仪器设置
(1)HPLC条件:
HPLC色谱柱: Venusil ABS C18柱(5μm,4.6×150mm)
流动相: 10mM甲酸铵(pH=8.0)和乙腈(70/30,v/v)
流速: 0.8mL/min(不分流)
进样针清洗液: 50∶50甲醇/水
进样体积: 30μL
数据采集时间: 3min
柱温: 室温
自动进样温度: 室温;
(2)转换阀条件:
具体转换时间和数据采集时间根据色谱柱条件改变,T1为1.2min,该设置在第一个色谱峰出峰前0.5min,数据采集时间应设置在最后一个色谱峰出峰至少0.5min后;T2为2.5min。
(3)MS/MS条件
MVA:极性为负离子模式,母离子和子离子荷质比分别为147.0和59.1,延滞时间为200msec,停顿时间为5msec,保留时间为~1.8min;
MVA-d7(MVA的内标物):极性为负离子模式,母离子和子离子荷质比分别为154.0和59.1,延滞时间为200msec,停顿时间为5msec,保留时间为~1.8min;
F.数据计算
(1)MVAL定量分析
色谱峰保留时间和峰面积由分析软件(1.4.1)确定;以峰面积比率和浓度得曲线,计算出MVAL的浓度;采用线性回归根据以下等式计算出MVAL的浓度:
y=ax+b
其中:y=被测物与内标物的峰面积比率
b=标准曲线的截距
a=标准曲线的斜率
x=被测物浓度(ng/mL)
(采用加权最小二乘法进行回归运算)
(2)HMG-CoA还原酶抑制剂定量分析
①计算HMG-CoA还原酶(HMGR)的抑制率:
首先,计算标准品和样品(QC):
y=HMGR的活性抑制率
注:标准曲线测定在QC样品测定前后至少重复两次,测得的MVAL含量的平均数值用于计算抑制率;用空白血浆制备的阴性对照液需要重复制备并测定四次,测得阴性对 照液中MVAL的平均含量用于上式计算;
其次,计算血浆样品:
y=HMGR的活性抑制率
注:不同个体可能有不同的阴性对照值(基线值),如果没有对于每个个体都合适的阴性对照值,则取给药前的(0h)MVAL血浆浓度作个体阴性对照浓度。
②作HMGR的抑制率与羟基洛伐他汀酸浓度的相关曲线;
③以人血浆中羟基洛伐他汀酸的含量定量HMG-CoA还原酶抑制剂的含量:
血浆中羟基洛伐他汀酸和其它HMG-CoA还原酶抑制剂(统称羟基洛伐他汀酸类似物)的浓度由HMGR的抑制率与洛伐他汀酸浓度的相关曲线计算得来;浓度计算采用药理/化学软件Origin 7.5中的对数剂量响应法;
y=A2+(A1-A2)/[1+(X/X0)P]
其中:X=羟基洛伐他汀酸浓度(ng/mL)
(无加权处理)
-5≤A1<A2≤115
A1,A2,X0和P来自软件中的原始参数;交互作用过程中,简化的卡方检验并没有降低;
(3)准确度和精密度的检测
①羟基洛伐他汀酸
准确度:
羟基洛伐他汀酸计算浓度是由HMGR的抑制率与洛伐他汀酸浓度的相关曲线回溯计算得来;
精密度:
所有计算数据和统计数据在软件中都不进行舍入处理,只有在出具报告数据时进行舍入处理;
②MVAL
准确度:
MVAL计算浓度是由MVAL的峰面积比率与MVAL浓度的相关曲线回溯计算而来的;
精密度:
所有计算数据和统计数据在软件中都不进行舍入处理,只有在最终出具报告数据时进行舍入处理。
附图说明
图1:洛伐他汀酸双空白的代表色谱图;
图2:洛伐他汀酸空白的代表色谱图;
图3:MVAL低限校正标准溶液的代表色谱图;
图4:洛伐他汀酸低限校正标准溶液的代表色谱图;
图5:洛伐他汀酸最高浓度标准溶液的代表色谱图;
图6:MVAL代表标准曲线;
图7:洛伐他汀酸代表标准曲线;
图8:HMG-CoA转化为MVA示意图;
图9:MVA与MVAL的相互转化示意图。
本发明公开了一种通过测定HMG-CoA还原酶活性定量分析人体血浆中洛伐他汀酸及其它HMG-CoA还原酶抑制剂的方法。经过方法适用性实验验证,用本方法在测定人血浆中洛伐他汀酸和其他HMG-CoA还原酶抑制剂的抑制活性可满足方法学要求,可以被生物研究接受。所有数据符合试验设计的验收标准。
下述实验例和实施例用于进一步说明但不限于本发明。
下述实验例1-8为按照本发明实施例1所述方法定量分析人体血浆中洛伐他汀酸及其它HMG-CoA还原酶抑制剂,下述实验例1-8是对该方法的验证以评估该方法的适用性,以测定人血浆中洛伐他汀酸和其他HMG-CoA还原酶抑制剂的抑制活性。研究结果表明,本发明定量分析方法可满足方法学要求,可以被生物研究接受。所有数据符合试验设计的验收标准。
实验例1本发明定量分析方法的选择性实验
对照组血浆采集自6个不同的个体,分析不含内标物和HMG-CoA的双空白对照血浆、 含有内标物但不含HMG-CoA的空白对照血浆、含有内标物(n=1)的洛伐他汀酸的定量上限(ULOQ,MVAL的较低浓度)的样品,如表6所示,对照样品没有干扰峰。洛伐他汀酸的双空白色谱图、空白色谱图,MVAL的定量下限色谱图,洛伐他汀酸的定量下限和定量上限色谱图分别见附图1,2,3,4,5。
表6洛伐他汀选择性研究
注:从每天的结果中收集选择性研究数据。
双空白:内标和HMG-CoA都没加的空白对照血浆
空白:没加HMG-CoA,加内标的空白对照血浆
定量上限:加内标的洛伐他汀酸样品的定量上限(洛伐他汀酸是25ng/mL,MVAL浓度的定量下限)。
实验例2本发明定量分析方法的灵敏度实验
按照本发明实施例2所述的方法定量分析人体血浆中洛伐他汀酸及其它HMG-CoA还原酶抑制剂,将洛伐他汀酸的定量下限(LLOQ)设计为0.5ng/mL。为了评估方法的灵敏度,在该浓度检测了至少8个样品。由5个不同批次的血浆制备,检测结果由标准曲线回溯计算得到,结果见表7。该结果不符合设计要求(所有洛伐他汀酸LLOQ的测定结果的准确度应为真实值的100±30%,LLOQ的测定结果的RSD应≤25%)。将标准曲线上的次低浓度点1ng/mL设置为定量最低限则满足设计要求。数据(见表12)说明,该方法在洛伐他汀酸浓度为1ng/mL时具有足够的灵敏度。
表7洛伐他汀酸定量下限样品结果
实验例3本发明定量分析方法中标准曲线的实验
表8和表9分别显示了洛伐他汀酸和MVAL的校正曲线上标准品的回溯计算浓度,结果表明符合设计要求(洛伐他汀酸的LLOQ的回溯计算值未超出其真实值的100±30%,其余各点的回溯计算值未超出其真实值的100±25%;MVLA的LLOQ的回溯计算值未超出其真实值的100±20%,其余各点的回溯计算值未超出其真实值的100±15%;包括定量下限(LLOQ)和定量上限(ULOQ)在内的至少75%非零标准品符合上述验收标准)。
表8本发明分析过程:洛伐他汀酸校正标准溶液的实测浓度
表9本发明分析过程:MVAL校正标准溶液的实测浓度
实验例4本发明定量分析方法中曲线拟合算法的实验
在10-2000ng/mL的MVAL标准浓度范围内评估该方法的线性。线性回归(加权最小二乘法)表明血浆中MVAL浓度/检测器响应关系的最佳拟合曲线。MVAL的校正曲线参数见表10,曲线上各点相关系数R大于0.99。MVAL的代表性线性点见附图6。
洛伐他汀酸的校正曲线由一份双空白样品、一份空白样品、一份0ng/mL样品和至少6个非零标准品浓度点(在线性1~25ng/mL浓度范围内),其中包括定量上限和定量下限。采用对数回归拟合法绘出血浆中洛伐他汀酸的浓度抑制曲线。洛伐他汀的校正曲线参数见表11。曲线上各点相关系数R大于0.99。洛伐他汀酸的代表性线性点见附图7。
表10本发明分析过程:MVAL的校正曲线参数
表11本发明分析过程:洛伐他汀酸的校正曲线参数
实验例5本发明定量分析方法日内和日间的准确度和精密度实验
在三个不同浓度水平(1ng/mL,10ng/mL和20ng/mL洛伐他汀酸)评估本发明定量分析方法的日内和日间的准确度和精密度。洛伐他汀酸的样品(QC)的统计结果见表12。
结果显示,该方法的日内和日间的准确度和精密度均符合本研究要求(%Nom在[100±25]%范围内,%RSD不大于20%)。
表12洛伐他汀酸日内和日间的准确度和精密度
注:*异常值,不计入统计分析
实验例6本发明定量分析方法回收率实验
分别在两个QC浓度(1.5ng/mL和36ng/mL)测定洛伐他汀和洛伐他汀酸的回收率。每个浓度水平制备3个平行样品,采用3个结果的平均值进行比较。表13显示的是不同浓度水平的洛伐他汀的回收率,分别是86.1%和85.5%。表14显示的是不同浓度水平的洛伐他汀酸的回收率,分别是83.3%和81.8%。
在3个浓度水平(20ng/mL,100ng/mL和2000ng/mL)测定MVAL的回收率,结果见表15,分别是82.2%(低)、72.3%(中)、72.3%(高)。在浓度200ng/mL测定MVAL-d7(内标物)的回收率,结果为72.4%,见表16。
表13洛伐他汀的回收率
表14洛伐他汀酸的回收率
表15MVAL的回收率
表16MVAL-d7(内标)的回收率
实验例7本发明定量分析方法稀释完整性实验
为了验证高浓度的样品稀释后仍在可分析的范围内,并为检测限所接受,在人血浆中加入加倍的洛伐他汀酸,达到500ng/mL。QC样品的稀释液至少准备6份平行样,加入空白血浆稀释50倍至洛伐他汀酸的浓度为10ng/mL。稀释后的样品采用标准校正曲线分析。实测浓度乘以稀释倍数(50)即可得到准确浓度。计算得到的浓度乘以稀释因子(50)得到准确的样品浓度。稀释完整性评估表明符合生物分析研究要求(%准确度在100±25%范围内,%RSD在20%范围内)。结果见表17,洛伐他汀酸的稀释完整性符合试 验要求。
表17洛伐他汀酸的稀释完整性研究结果(稀释因子=50)
注:*异常值,不计入统计分析
实验例8本发明定量分析方法稳定性实验
(1)提取物的稳定性
在评估经处理样品的完整性时,在预实验之后准备两个浓度水平的QC样品(含洛伐他汀酸1ng/mL(LQC)和20ng/mL(HQC)),置-20℃冷冻保存120h。采用实验例3和4的方法重新求得一条MVAL校正标准曲线和两条洛伐他汀酸标准曲线,并用它们定量分析上述样品。每个浓度水平的QC样品至少准备6个平行样品进行分析测定。结果见表18,均满足方案设计的验收标准(如果在-20℃提取物的测定浓度平均值在真实值的100±25%内,则认为提取物是稳定的)。
表18-20℃条件下放置120小时后提取物样品中洛伐他汀酸的稳定性结果
(2)短期稳定性
为了评价血浆中洛伐他汀酸的短期稳定性,将两个浓度水平的QC样品(含洛伐他汀酸1ng/mL(LQC)和20ng/mL(HQC))在冰水浴中放置6h,采用实验例3和4的方法重新求得一条MVAL校正标准曲线和两条洛伐他汀酸标准曲线,并用它们定量分析以上样品。 每个浓度水平的QC样品至少准备6个平行样品进行分析。结果见表19,说明血浆中洛伐他汀酸在冰水浴条件下6h是稳定的。
表19冰水条件下放置6小时后洛伐他汀酸的稳定性结果
(3)自动进样器内的样品稳定性
为了评估人血浆中洛伐他汀酸在处理样品时的稳定性,将处理样品置于自动进样器中,于15℃放置44h。采用实验例3和4的方法重新求得一条MVAL校正标准曲线和两条洛伐他汀酸标准曲线,并用它们定量分析自动进样器中的样品。结果见表20,符合试验方案的验收标准(测定结果的平均值在真实浓度的[100±25]%内),表明洛伐他汀酸在自动进样器中于15℃放置44h是稳定的。
表20室温(15℃)条件下在自动进样器中放置44小时后洛伐他汀酸的稳定性结果
注:*异常值,不计入统计分析
(4)冻溶稳定性
采用两个浓度的样品(含洛伐他汀酸1ng/mL和20ng/mL),每个浓度水平至少准备6个平行样品,以评估血浆中洛伐他汀酸的冻溶稳定性。经过冻溶循环的样品浓度与真实浓度进行比较,结果见表21,符合方案的验收标准(测定结果平均值在真实浓度的[100±25]%内),说明洛伐他汀酸在冻溶循环中是稳定的。
表21洛伐他汀酸的冻融稳定性研究结果
(5)标准加样样品稳定性
为了评估冷藏条件下标准加样样品的稳定性,将MVAL和MVAL-d7(IS)的标准加样样品在4℃放置22天。结果分别与新配制的MVAL和MVAL-d7的标准加样样品进行比较。结果见表22和23,表明MVAL和MVAL-d7的标准加样溶液在4℃放置22天是稳定的。
表22MVAL加样溶液在冷藏(4℃)条件下放置22天后的稳定性结果
表23MVAL-d7(内标)加样溶液在冷藏(4℃)条件下放置22天后的稳定性结果
(6)储备液稳定性
为了评估冷藏条件下储备液的稳定性,将MVAL和MVAL-d7(IS)的储备液在4℃分别放置62天和82天。结果分别与新配制的MVAL和MVAL-d7的标准加样样品进行比较。结 果见表24和25,表明MVAL和MVAL-d7的标准加样溶液在4℃分别放置62天和82天是稳定的。
表24MVAL储备液在冷藏(4℃)条件下放置62天后的稳定性结果
表25MVAL-d7(内标)储备液在冷冻(-20℃)条件下放置82天后的稳定性结果
下述实施例均能实现上述实验例所述效果。
具体实施方式
实施例1:本发明定量分析方法
A.试剂溶液的配制
(1)200mM磷酸二氢钾缓冲液(pH7.4,PBS)的配制
称取10.6g K3PO4·3H2O于烧杯中,加180mL水溶解,用H3PO4调节pH至7.4,再加入纯水至200mL,摇匀;
(2)200mM EDTA(乙二胺四乙酸)(在200mM pH7.4的PBS中)的配制
向200mL pH7.4,200mM的PBS中加入162mg K2EDTA·2H2O(乙二胺四乙酸二钾),摇匀;
(3)10mM DTT(二硫苏糖醇)(在2mM EDTA和200mM PBS(PH7.4)中)的配制取15.4mg DTT至10mL容量瓶中,以2mM EDTA定容至刻度;
(4)12mM NADPH(还原型辅酶II)的配制
取20mg NADPH·Na4至5mL塑料管中,加入2mL纯水,溶解混匀,于-20℃保存,备用;
(5)0.4mM HMG-CoA的配制
将10mg HMG-CoA加至25mL容量瓶中,纯水稀释至刻度并混合均匀,每3mLHMG-CoA分装至一只5mL PP试管中,于-20℃冷冻保存;
(6)3.3mg/mL大鼠肝脏微粒体(在2mM NADPH中)的配制
以10mM DTT将20mg/mL的大鼠肝脏微粒体稀释至4mg/mL,将该溶液以5∶1的比例与12mM NADPH混合;
(7)5N HCl的配制
将5mL HCl倒至玻璃容器中,以7mL水溶解,摇匀;
(8)0.1N HCl的配制
取9.0mL HCl至1000mL容量瓶中,加水稀释至刻度,摇匀;
(9)15%甲醇的配制
加入75mL甲醇至425mL水中,摇匀;
(10)0.2%氨水的配制
取8.0mL 25%氨水至1000mL容量瓶中,用纯水定容至刻度,摇匀;
(11)10mM甲酸铵(pH=8.0)的配制
在1000mL烧瓶中,将630g甲酸铵用800mL水溶解,以0.2%氨水调至pH 8.0,转移至1000mL容量瓶中并用纯水定容至刻度,摇匀;
(12)流动相的配制
700mL 10mM,pH=8.0的甲酸铵与300mL乙腈混合均匀;
(13)稀释液:0.1%甲酸甲醇溶液的配制
移取100μL甲酸至100mL甲醇中,摇匀;
(14)0.5%甲酸甲醇溶液的配制
移取500μL甲酸至100mL甲醇中,摇匀;
(15)羟基洛伐他汀酸标准储备液的配制
羟基洛伐他汀酸标准储备液(LSS,1mg/mL):精密称取10mg羟基洛伐他汀酸钠至10mL容量瓶中,以稀释液溶解并定容至刻度,于-20℃下冷冻保存;
羟基洛伐他汀酸标准储备液1(LSS1,10μg/mL)的配制:取100μL LSS至10mL容量瓶中并以稀释液定容至刻度,于-20℃下冷冻保存;
(16)羟基洛伐他汀酸标准加样溶液(STD)的配制
以表1的方法配制标准加样溶液,于-20℃下冷冻保存;
表1羟基洛伐他汀酸标准加样溶液的配制
(17)羟基洛伐他汀酸(QC)储备液的配制
羟基洛伐他汀酸QC储备液(LQS,1mg/mL)的配制:精密称取10mg羟基洛伐他汀酸钠至10mL容量瓶中,以稀释液溶解并定容至刻度,于-20℃下冷冻保存;
羟基洛伐他汀酸QC储备液1(LQS1,10μg/mL)的配制:取100μL LQS至10mL容量瓶中并以稀释液定容至刻度,于-20℃下冷冻保存;
(18)羟基洛伐他汀酸(QC)标准加样溶液的配制
以表2的方法配制标准加样溶液,于-20℃下冷冻保存;
表2羟基洛伐他汀酸(QC)标准加样溶液的配制
(19)羟基洛伐他汀酸(QC)样品溶液的配制
以表3的方法配制样品溶液,于-20℃下冷冻保存;
表3羟基洛伐他汀酸(QC)样品溶液的配制
(20)甲瓦龙酸内酯(MVAL)标准储备液的配制
甲瓦龙酸内酯标准储备液(MSS,2mg/mL):精密称取20mg甲瓦龙酸内酯至10mL容量瓶中,乙腈溶解并定容至刻度,摇匀,4℃保存;
甲瓦龙酸内酯标准储备液1(MSS1,5μg/mL):取50μL MSS至20mL容量瓶中并以水定容至刻度,摇匀,4℃保存;
(22)甲瓦龙酸内酯(MVAL)标准加样溶液的配制
以表4的方法配制标准加样溶液,于-20℃下冷冻保存;
表4甲瓦龙酸内酯(MVAL)标准加样溶液的配制
(22)内标物溶液的制备
内标物储备液(ISS,500μg/mL):移取10mg甲瓦龙酸内酯-d7(MVAL-d7,内标物)于20mL容量瓶中,乙腈溶解并稀释至刻度;4℃保存;
内标物储备液1(ISS1,100μg/mL)的制备:取1000μL ISS至5mL容量瓶中,纯水溶解并稀释至刻度,摇匀,MVAL-d7的准确加入量应根据ISS的储备浓度计算;4℃保存;
内标物储备液2(ISS2,10μg/mL)的制备:取200μL ISS至10mL容量瓶中,纯水溶解并稀释至刻度,摇匀,MVAL-d7的准确加入量应根据ISS的储备浓度计算;4℃保存;
内标物溶液(200ng/mL)的制备:取200μL ISS2至10mL容量瓶中,纯水溶解并稀释至刻度;4℃保存;
B.试验前预处理
(1)羟基洛伐他汀酸工作标准溶液的制备
在2mL塑料管中以表5的方法配制工作标准溶液:
表5羟基洛伐他汀酸工作标准溶液的制备
(2)取100μL血浆(双空白溶液**,空白溶液***,工作曲线溶液,QC样品溶液)至1.2mL 96深孔板中;加入400μL 0.5%甲酸(Formic Acid,FA),盖板并充分振荡;3750rpm离心10min,取上清液300μL加至1.2mL可拆装的96孔板中,30℃氮气吹干,得提取物于-20℃下保存;
STD 0*:0ng/mL样品溶液(阴性对照);
双空白溶液**:含有肝脏微粒体和NADPH,而不含有HMG-CoA和内标物的血浆样品;
空白溶液***:含有肝脏微粒体、NADPH以及内标物,而不含有HMG-CoA的血浆样品;
C.HMG-CoA酶反应
将上述可拆装的96孔板中的1.2mL小管重新装配至96孔板上,向各小管中分别加入20μL水,涡流振荡混匀;冰浴下,用排枪向各管中加入3.3mg/mL的大鼠肝脏微粒体溶液120μL,涡流振荡混匀;37℃水浴预孵育,同时振摇15min;再用排枪加入0.4mM的HMG-CoA溶液20μL,涡流振荡混匀,其中双空白和空白样品溶液中均加入20mL纯水代替HMG-CoA;37℃水浴孵育,同时振摇30min;用排枪向各孔加入5N的HCl 20μL,涡流振荡混匀;再次37℃水浴孵育,同时振摇15min以终止反应,得反应溶液,备用;HMG-CoA转化为MVA的示意图见附图8。
D.MVAL含量测定前处理
分别取150μL MVAL标准加样溶液或反应溶液(双空白溶液、空白溶液、羟基洛伐他汀酸工作溶液、QC样品溶液和待测样品溶液)至玻璃试管中;除双空白溶液外,向其余各试管分别加入100μL内标物加样溶液;再加入900μL 0.1N的HCl和1mL水,涡流振荡混匀,静置30min使MVA转化为MVAL;采用1mL甲醇和1mL 0.1N的HCl次序活化ENV-SPE小柱;将样品上ENV-SPE小柱后,以1mL 0.1N的HCl,1mL纯水和1mL 15%甲醇依次洗脱,抽干小柱;再以0.5mL甲醇洗脱ENV-SPE小柱3次,富集流份;洗脱液在40℃下,氮气吹干;干燥物以200μL 0.2%氨水重溶,涡流振荡混匀,静置30min使MVAL转化为MVA;接着进样LC/MS/MS系统,30μL/针;MVA与MVAL的相互转化的示意图详见附图9。
E.仪器设置
(1)HPLC条件:
HPLC色谱柱: Venusil ABS C18柱(5μm,4.6×150mm)
流动相: 10mM甲酸铵(pH=8.0)和乙腈(70/30,v/v)
流速: 0.8mL/min(不分流)
进样针清洗液: 50∶50甲醇/水
进样体积: 30μL
数据采集时间: 3min
柱温: 室温
自动进样温度: 室温;
(2)转换阀条件:
具体转换时间和数据采集时间根据色谱柱条件改变,T1为1.2min,该设置在第一个色谱峰出峰前0.5min,数据采集时间应设置在最后一个色谱峰出峰至少0.5min后;T2为2.5min。
(3)MS/MS条件
MVA:极性为负离子模式,母离子和子离子荷质比分别为147.0和59.1,延滞时间为200msec,停顿时间为5msec,保留时间为~1.8min;
MVA-d7(MVA的内标物):极性为负离子模式,母离子和子离子荷质比分别为154.0和59.1,延滞时间为200msec,停顿时间为5msec,保留时间为~1.8min;
F.数据计算
(1)MVAL定量分析
色谱峰保留时间和峰面积由分析软件(1.4.1)确定;以峰面积比率和浓度得曲线,计算出MVAL的浓度;采用线性回归根据以下等式计算出MVAL的浓度:
y=ax+b
其中:y=被测物与内标物的峰面积比率
b=标准曲线的截距
a=标准曲线的斜率
x=被测物浓度(ng/mL)
(采用加权最小二乘法进行回归运算)
(2)HMG-CoA还原酶抑制剂定量分析
①计算HMG-CoA还原酶(HMGR)的抑制率:
首先,计算标准品和样品(QC):
y=HMGR的活性抑制率
注:标准曲线测定在QC样品测定前后至少重复两次,测得的MVAL含量的平均数值用于计算抑制率;用空白血浆制备的阴性对照液需要重复制备并测定四次,测得阴性对 照液中MVAL的平均含量用于上式计算;
其次,计算血浆样品:
y=HMGR的活性抑制率
注:不同个体可能有不同的阴性对照值(基线值),如果没有阴性对照值对于每个个体都是合适的,则取给药前的(0h)MVAL血浆浓度作个体阴性对照浓度。
②作HMGR的抑制率与羟基洛伐他汀酸浓度的相关曲线;
③以人血浆中羟基洛伐他汀酸的含量定量HMG-CoA还原酶抑制剂的含量:
血浆中羟基洛伐他汀酸和其它HMG-CoA还原酶抑制剂(统称羟基洛伐他汀酸类似物)的浓度由HMGR的抑制率与洛伐他汀酸浓度的相关曲线计算得来;浓度计算采用药理/化学软件Origin 7.5中的对数剂量响应法;
y=A2+(A1-A2)/[1+(X/X0)P]
其中:X=羟基洛伐他汀酸浓度(ng/mL)
(无加权处理)
-5≤A1<A2≤115
A1,A2,X0和P来自软件中的原始参数;交互作用过程中,简化的卡方检验并没有降低;
(3)准确度和精密度
①羟基洛伐他汀酸
准确度:
羟基洛伐他汀酸计算浓度是由HMGR的抑制率与洛伐他汀酸浓度的相关曲线回溯计算得来;
精密度:
所有计算数据和统计数据在软件中都不进行舍入处理,只有在出具报告数据时进行舍入处理;
②MVAL
准确度:
MVAL计算浓度是由MVAL的峰面积比率与MVAL浓度的相关曲线回溯计算而来的;
精密度:
所有计算数据和统计数据在软件中都不进行舍入处理,只有在最终出具报告数据时进行舍入处理;
G.验收标准
1、标准品验收标准
(1)羟基洛伐他汀酸:
羟基洛伐他汀酸的校正曲线应至少包含1~25ng/mL范围内六个浓度样品。这些样品准备相应的平行样,在样品测定之前和之后,进样检测。采用MVAL的平均浓度计算抑制率。为更好的曲线拟合,亦将0.25ng/mL、0.5ng/mL和30ng/mL作为浓度测定点,但并不进行报告和评估。其余校正曲线样品的理论计算浓度将予以报告。
验收标准:
1)标准品的定量低限(LLOQ)的回溯计算值不应超出其真实值的(100±30)%、所有其他标准品的(100±25)%。
2)舍弃不符合验收标准的标准品值,但不改变已经建立的标准。
3)包括定量低限(LLOQ)和定量高限(ULOQ)在内的所有标准曲线中各浓度的回溯计算值应至少有75%符合验收标准,并且校正曲线中应至少包含六个符合标准的数据,回归系数≥0.99。
4)如果LLOQ或ULOQ不满足验收标准,可适当调节方法的浓度范围并予以记录。
(2)MVAL
MVAL的校正曲线至少包含10~2000ng/mL六个浓度的样品。在每一个样品进样之前,这些样品均进行相应的检测。校正曲线中样品的理论计算浓度将予以报告。
验收标准
1)标准品的定量低限(LLOQ)的回溯计算值不应超出其真实值的(100±20)%、所有其他标准品的(100±15)%。
2)舍弃不符合验收标准的标准品值,但不改变已经建立的标准。
3)包括定量低限(LLOQ)和定量高限(ULOQ)在内的所有标准曲线中各浓度的回溯计算值应至少有75%符合验收标准,并且校正曲线应该由至少6个可以接受的标准品所构成。
4)如果LLOQ或ULOQ不满足验收标准,可适当调节方法的浓度范围并予以记录。
2、验收标准
1)LQC样品(1ng/mL)计算值(测量值)的准确度应在标识值(真实值)的70%~130%,其余样品(10ng/mL和20ng/mL)测量值的准确度应在真实值的75%~125%。
2)至少2/3样品的计算值(测量值)必须在各自的标识值(真实值)范围内,每个浓度水平必须有一个样品在标识值(真实值)范围内。
Claims (1)
1.一种人体血浆中洛伐他汀酸及HMG-CoA还原酶抑制剂的定量分析方法,其特征在于该方法包括如下步骤:
A.试剂溶液的配制
(1)200mM磷酸二氢钾缓冲液(pH7.4,PBS)的配制
称取10.6g K3PO4·3H2O于烧杯中,加180mL水溶解,用H3PO4调节pH至7.4,再加入纯水至200mL,摇匀;
(2)200mM EDTA(乙二胺四乙酸)(在200mM pH7.4的PBS中)的配制
向200mL pH7.4,200mM的PBS中加入162mg K2EDTA·2H2O(乙二胺四乙酸二钾),摇匀;
(3)10mM DTT(二硫苏糖醇)(在2mM EDTA和200mM PBS(PH7.4)中)的配制取15.4mg DTT至10mL容量瓶中,以2mM EDTA定容至刻度;
(4)12mM NADPH(还原型辅酶II)的配制
取20mg NADPH·Na4至5mL塑料管中,加入2mL纯水,溶解混匀,于-20℃保存,备用;
(5)0.4mM HMG-CoA的配制
将10mg HMG-CoA加至25mL容量瓶中,纯水稀释至刻度并混合均匀,每3mLHMG-CoA分装至一只5mL PP试管中,于-20℃冷冻保存;
(6)3.3mg/mL大鼠肝脏微粒体(在2mM NADPH中)的配制
以10mM DTT将20mg/mL的大鼠肝脏微粒体稀释至4mg/mL,将该溶液以5∶1的比例与12mM NADPH混合;
(7)5N HCl的配制
将5mL HCl倒至玻璃容器中,以7mL水溶解,摇匀;
(8)0.1N HCl的配制
取9.0mL HCl至1000mL容量瓶中,加水稀释至刻度,摇匀;
(9)15%甲醇的配制
加入75mL甲醇至425mL水中,摇匀;
(10)0.2%氨水的配制
取8.0mL 25%氨水至1000mL容量瓶中,用纯水定容至刻度,摇匀;
(11)10mM甲酸铵(pH=8.0)的配制
在1000mL烧瓶中,将630g甲酸铵用800mL水溶解,以0.2%氨水调至pH 8.0,转移至1000mL容量瓶中并用纯水定容至刻度,摇匀;
(12)流动相的配制
700mL 10mM,pH=8.0的甲酸铵与300mL乙腈混合均匀;
(13)稀释液:0.1%甲酸甲醇溶液的配制
移取100μL甲酸至100mL甲醇中,摇匀;
(14)0.5%甲酸甲醇溶液的配制
移取500μL甲酸至100mL甲醇中,摇匀;
(15)羟基洛伐他汀酸标准储备液的配制
羟基洛伐他汀酸标准储备液(LSS,1mg/mL):精密称取10mg羟基洛伐他汀酸钠至10mL容量瓶中,以稀释液溶解并定容至刻度,于-20℃下冷冻保存;
羟基洛伐他汀酸标准储备液1(LSS1,10μg/mL)的配制:取100μL LSS至10mL容量瓶中并以稀释液定容至刻度,于-20℃下冷冻保存;
(16)羟基洛伐他汀酸标准加样溶液(STD)的配制
以表1的方法配制标准加样溶液,于-20℃下冷冻保存;
表1羟基洛伐他汀酸标准加样溶液的配制
(17)羟基洛伐他汀酸(QC)储备液的配制
羟基洛伐他汀酸QC储备液(LQS,1mg/mL)的配制:精密称取10mg羟基洛伐他汀酸钠至10mL容量瓶中,以稀释液溶解并定容至刻度,于-20℃下冷冻保存;
羟基洛伐他汀酸QC储备液1(LQS1,10μg/mL)的配制:取100μL LQS至10mL容量瓶中并以稀释液定容至刻度,于-20℃下冷冻保存;
(18)羟基洛伐他汀酸(QC)标准加样溶液的配制
以表2的方法配制标准加样溶液,于-20℃下冷冻保存;
表2羟基洛伐他汀酸(QC)标准加样溶液的配制
(19)羟基洛伐他汀酸(QC)样品溶液的配制
以表3的方法配制样品溶液,于-20℃下冷冻保存;
表3羟基洛伐他汀酸(QC)样品溶液的配制
(20)甲瓦龙酸内酯(MVAL)标准储备液的配制
甲瓦龙酸内酯标准储备液(MSS,2mg/mL):精密称取20mg甲瓦龙酸内酯至10mL容
量瓶中,乙腈溶解并定容至刻度,摇匀,4℃保存;
甲瓦龙酸内酯标准储备液1(MSS1,5μg/mL):取50μL MSS至20mL容量瓶中并以
水定容至刻度,摇匀,4℃保存;
(21)甲瓦龙酸内酯(MVAL)标准加样溶液的配制
以表4的方法配制标准加样溶液,于-20℃下冷冻保存;
表4甲瓦龙酸内酯(MVAL)标准加样溶液的配制
(22)内标物溶液的制备
内标物储备液(ISS,500μg/mL):移取10mg甲瓦龙酸内酯-d7(MVAL-d7,内标物)于20mL容量瓶中,乙腈溶解并稀释至刻度;4℃保存;
内标物储备液1(ISS1,100μg/mL)的制备:取1000μL ISS至5mL容量瓶中,纯水溶解并稀释至刻度,摇匀,MVAL-d7的准确加入量应根据ISS的储备浓度计算;4℃保存;
内标物储备液2(ISS2,10μg/mL)的制备:取200μL ISS至10mL容量瓶中,纯水溶解并稀释至刻度,摇匀,MVAL-d7的准确加入量应根据ISS的储备浓度计算;4℃保存;
内标物溶液(200ng/mL)的制备:取200μL ISS2至10mL容量瓶中,纯水溶解并稀释至刻度;4℃保存;
B.试验前预处理
(1)羟基洛伐他汀酸工作标准溶液的制备
在2mL塑料管中以表5的方法配制工作标准溶液:
表5羟基洛伐他汀酸工作标准溶液的制备
(2)取100μL血浆(双空白溶液**,空白溶液***,工作曲线溶液,QC样品溶液)至1.2mL 96深孔板中;加入400μL 0.5%甲酸(Formic Acid,FA),盖板并充分振荡;3750rpm离心10min,取上清液300μL加至1.2mL可拆装的96孔板中,30℃氮气吹干,得提取物于-20℃下保存;
STD 0*:0ng/mL样品溶液(阴性对照);
双空白溶液**:含有肝脏微粒体和NADPH,而不含有HMG-CoA和内标物的血浆样品;
空白溶液***:含有肝脏微粒体、NADPH以及内标物,而不含有HMG-CoA的血浆样品;
C.HMG-CoA酶反应
将上述可拆装的96孔板中的1.2mL小管重新装配至96孔板上,向各小管中分别加入20μL水,涡流振荡混匀;冰浴下,用排枪向各管中加入3.3mg/mL的大鼠肝脏微粒体溶液120μL,涡流振荡混匀;37℃水浴预孵育,同时振摇15min;再用排枪加入0.4mM的HMG-CoA溶液20μL,涡流振荡混匀,其中双空白和空白样品溶液中均加入20mL纯水代替HMG-CoA;37℃水浴孵育,同时振摇30min;用排枪向各孔加入5N的HCl 20μL,涡 流振荡混匀;再次37℃水浴孵育,同时振摇15min以终止反应,得反应溶液,备用;
D.MVAL含量测定前处理
分别取150μL MVAL标准加样溶液或反应溶液(双空白溶液、空白溶液、羟基洛伐他汀酸工作溶液、QC样品溶液和待测样品溶液)至玻璃试管中;除双空白溶液外,向其余各试管分别加入100μL内标物加样溶液;再加入900μL 0.1N的HCl和1mL水,涡流振荡混匀,静置30min使MVA转化为MVAL;采用1mL甲醇和1mL 0.1N的HCl次序活化ENV-SPE小柱;将样品上ENV-SPE小柱后,以1mL 0.1N的HCl,1mL纯水和1mL 15%甲醇依次洗脱,抽干小柱;再以0.5mL甲醇洗脱ENV-SPE小柱3次,富集流份;洗脱液在40℃下,氮气吹干;干燥物以200μL 0.2%氨水重溶,涡流振荡混匀,静置30min使MVAL转化为MVA;接着进样LC/MS/MS系统,30μL/针;
E.数据计算
(1)MVAL定量分析
色谱峰保留时间和峰面积由分析软件(1.4.1)确定;以峰面积比率和浓度得曲线,计算出MVAL的浓度;采用线性回归根据以下等式计算出MVAL的浓度:
y=ax+b
其中:y=被测物与内标物的峰面积比率
b=标准曲线的截距
a=标准曲线的斜率
x=被测物浓度(ng/mL)
(采用加权最小二乘法进行回归运算)
(2)HMG-CoA还原酶抑制剂定量分析
①计算HMG-CoA还原酶(HMGR)的抑制率:
首先,计算标准品和样品(QC):
y=HMGR的活性抑制率
注:标准曲线测定在QC样品测定前后至少重复两次,测得的MVAL含量的平均数值用于计算抑制率;用空白血浆制备的阴性对照液需要重复制备并测定四次,测得阴性对照液中MVAL的平均含量用于上式计算;
其次,计算血浆样品:
y=HMGR的活性抑制率
注:不同个体可能有不同的阴性对照值(基线值),如果没有对于每个个体都合适的阴性对照值,则取给药前的(0h)MVAL血浆浓度作个体阴性对照浓度;
②作HMGR的抑制率与羟基洛伐他汀酸浓度的相关曲线;
③以人血浆中羟基洛伐他汀酸的含量定量HMG-CoA还原酶抑制剂的含量:
血浆中羟基洛伐他汀酸和其它HMG-CoA还原酶抑制剂(统称羟基洛伐他汀酸类似物)的浓度由HMGR的抑制率与洛伐他汀酸浓度的相关曲线计算得来;浓度计算采用药理/化学软件Origin 7.5中的对数剂量响应法;
y=A2+(A1-A2)/[1+(X/X0)P]
其中:X=羟基洛伐他汀酸浓度(ng/mL)
(无加权处理)
-5≤A1<A2≤115
A1,A2,X0和P来自软件中的原始参数;交互作用过程中,简化的卡方检验并没有降低;
(3)准确度和精密度的检测
①羟基洛伐他汀酸
准确度:
羟基洛伐他汀酸计算浓度是由HMGR的抑制率与洛伐他汀酸浓度的相关曲线回溯计算得来;
精密度:
所有计算数据和统计数据在软件中都不进行舍入处理,只有在出具报告
数据时进行舍入处理;
②MVAL
准确度:
MVAL计算浓度是由MVAL的峰面积比率与MVAL浓度的相关曲线回溯计算而来的;精密度:
所有计算数据和统计数据在软件中都不进行舍入处理,只有在最终出具报告数据时进行舍入处理。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201010270536.7A CN102384955B (zh) | 2010-09-01 | 2010-09-01 | 人体血浆中HMG-CoA还原酶抑制剂的定量分析方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201010270536.7A CN102384955B (zh) | 2010-09-01 | 2010-09-01 | 人体血浆中HMG-CoA还原酶抑制剂的定量分析方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN102384955A true CN102384955A (zh) | 2012-03-21 |
CN102384955B CN102384955B (zh) | 2014-04-30 |
Family
ID=45824580
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201010270536.7A Active CN102384955B (zh) | 2010-09-01 | 2010-09-01 | 人体血浆中HMG-CoA还原酶抑制剂的定量分析方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN102384955B (zh) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102621238A (zh) * | 2011-02-01 | 2012-08-01 | 北京北大维信生物科技有限公司 | 一种测定HMG-CoA还原酶抑制剂浓度的方法 |
CN103776933A (zh) * | 2014-02-11 | 2014-05-07 | 润泽制药(苏州)有限公司 | 瑞舒伐他汀钙制剂溶出度的测定方法 |
CN112871822A (zh) * | 2020-12-25 | 2021-06-01 | 安徽工业大学 | 一种电气柜自动清洗方法 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1291238A (zh) * | 1998-02-18 | 2001-04-11 | 莱克制药与化学公司 | 获得高纯度HMG-CoA还原酶抑制剂的方法 |
JP2004236618A (ja) * | 2003-02-07 | 2004-08-26 | Asahi Denka Kogyo Kk | メバロン酸の製造方法及びそれにかかわる酵素遺伝子 |
CN1987449A (zh) * | 2005-12-19 | 2007-06-27 | 北京维信学知科技发展有限公司 | 一种血脂康胶囊的质量检测方法 |
-
2010
- 2010-09-01 CN CN201010270536.7A patent/CN102384955B/zh active Active
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1291238A (zh) * | 1998-02-18 | 2001-04-11 | 莱克制药与化学公司 | 获得高纯度HMG-CoA还原酶抑制剂的方法 |
JP2004236618A (ja) * | 2003-02-07 | 2004-08-26 | Asahi Denka Kogyo Kk | メバロン酸の製造方法及びそれにかかわる酵素遺伝子 |
CN1987449A (zh) * | 2005-12-19 | 2007-06-27 | 北京维信学知科技发展有限公司 | 一种血脂康胶囊的质量检测方法 |
Non-Patent Citations (11)
Title |
---|
《Biomedical Chromatography》 20080229 Jian-Wei Deng et al. Determination of two HMG-CoA reductase inhibitors, pravastatin and pitavastatin, in plasma samples using liquid chromatography-tandem mass spectrometry for pharmaceutical study 131-135 1 第22卷, 第2期 * |
《Journal of Chromatography B》 20010425 Eun Jung Park et al. Analysis of 3-hydroxy-3-methylglutaryl-coenzyme A reductase inhibitors using liquid chromatography-electrospray mass spectrometry 327-332 1 第754卷, 第2期 * |
EUN JUNG PARK ET AL.: "Analysis of 3-hydroxy-3-methylglutaryl-coenzyme A reductase inhibitors using liquid chromatography–electrospray mass spectrometry", 《JOURNAL OF CHROMATOGRAPHY B》 * |
G.S.SAINI ET AL.: "Validation of the LC-MS/MS method for the quantification of mevalonic acid in human plasma and determination of the matrix effect", 《JOURNAL OF LIPID RESEARCH》 * |
JIAN-WEI DENG ET AL.: "Determination of two HMG-CoA reductase inhibitors, pravastatin and pitavastatin, in plasma samples using liquid chromatography–tandem mass spectrometry for pharmaceutical study", 《BIOMEDICAL CHROMATOGRAPHY》 * |
MICHAEL J. KAUFMAN ET AL.: "Rate and equilibrium constants for acid-catalyzed lactone hydrolysis of HMG-CoA reductase inhibitors", 《INTERNATIONAL JOURNAL OF PHARMACEUTICS》 * |
MICHELE BUFFALINI ET AL.: "Novel and simple high-performance liquid chromatographic method for determination of 3-hydroxy-3-methylglutaryl-coenzyme A reductase activity", 《JOURNAL OF CHROMATOGRAPHY B》 * |
于刚等: "高效液相色谱法测定3-羟基-3-甲基戊二酸单酰辅酶A还原酶抑制剂的活性", 《分析化学》 * |
李鹏等: "血脂康与洛伐他汀、辛伐他汀对HMG-CoA还原酶抑制作用的比较", 《中华医学信息导报》 * |
谢虹等: "反相高效液相测定洛伐他汀方法的改良", 《中国公共卫生》 * |
郁韵秋等: "高效液相色谱· 质谱联用法测定人血浆中洛伐他汀的浓度", 《中国新药与临床杂志》 * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102621238A (zh) * | 2011-02-01 | 2012-08-01 | 北京北大维信生物科技有限公司 | 一种测定HMG-CoA还原酶抑制剂浓度的方法 |
WO2012103780A1 (zh) * | 2011-02-01 | 2012-08-09 | 北京北大维信生物科技有限公司 | 一种测定hmg-coa还原酶抑制剂浓度的方法 |
CN103776933A (zh) * | 2014-02-11 | 2014-05-07 | 润泽制药(苏州)有限公司 | 瑞舒伐他汀钙制剂溶出度的测定方法 |
CN112871822A (zh) * | 2020-12-25 | 2021-06-01 | 安徽工业大学 | 一种电气柜自动清洗方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN102384955B (zh) | 2014-04-30 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN101315351B (zh) | 一种同时检测19种喹诺酮类药物的hplc-esi-ms/ms测定方法 | |
Ehleringer et al. | Geo-location of heroin and cocaine by stable isotope ratios | |
CN105223264A (zh) | 一种质谱定量分析的模拟内标方法、装置及应用 | |
WO2005095644A3 (de) | Verfahren zur erkennung von signaturen in komplexen genexpressionsprofilen | |
CN102384955A (zh) | 人体血浆中洛伐他汀酸及HMG-CoA还原酶抑制剂的定量分析方法 | |
CN105021643A (zh) | 一种由核磁共振仪测定有机物中水含量的方法 | |
CN102141552A (zh) | 一种高灵敏全血他克莫司定量检测试剂盒及其制备 | |
Korecka et al. | Review of the newest HPLC methods with mass spectrometry detection for determination of immunosuppressive drugs in clinical practice | |
Clemens et al. | Spatial variability of N2O emissions and soil parameters of an arable silt loam–a field study | |
US20170189902A1 (en) | Ready-to-constitute analytical platforms for chemical analyses and quantification | |
CN105004831A (zh) | 高效液相色谱法测定金霉素预混剂含量及相关物质的方法 | |
CN106770719A (zh) | 低糖型强力枇杷露的指纹图谱检测方法 | |
CN114487150A (zh) | 地表水中氯甲烷的吹扫捕集/气相色谱-质谱检测方法 | |
CN106338561A (zh) | 一种丙谷二肽中间体的定量检测方法 | |
CN104119422A (zh) | 一种磷酸化肽的吸附富集方法、添加剂及其应用 | |
CN102749301B (zh) | 一种紫外光谱法测定三聚氰胺含量的方法 | |
CN106483230B (zh) | 一种尿液羟基多环芳烃的快速检测方法 | |
CN111551645A (zh) | 一种硫酸羟氯喹有关物质的检测方法及其应用 | |
WO2021048841A3 (en) | Gps positioning methods and computer program product | |
CN102384954B (zh) | 一种测定人血浆中洛伐他汀和羟基洛伐他汀酸的浓度的方法 | |
CN110361482A (zh) | 一种血液中利奈唑胺药物浓度监测试剂盒及其检测方法 | |
CN104820042A (zh) | 一种采用高效液相色谱法测定样品中卡西酮和4-甲基甲卡西酮含量的方法 | |
CN102116765A (zh) | 一种用高效液相色谱法测定米诺膦酸中间体有关物质的方法 | |
CN103940936B (zh) | 一种4α-羟基-L-脯氨酸及其中痕量L-脯氨酸的检测方法 | |
CN108414648B (zh) | 一种利用顶空气相色谱法检测罗库溴铵中残留溶剂的方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant |