CN102353784A - 净化三聚氰胺的免疫亲和色谱柱及用其净化三聚氰胺的方法 - Google Patents
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Abstract
净化三聚氰胺的免疫亲和色谱柱及用其净化三聚氰胺的方法,属于免疫亲和层析及三聚氰胺检测技术领域。本发明为一种净化三聚氰胺的试剂盒,由净化三聚氰胺的免疫亲和色谱柱,三聚氰胺标准溶液,淋洗液,洗脱液,再生液,平衡保存液和海绵托架所组成;所述净化三聚氰胺的免疫亲和色谱柱是将三聚氰胺单克隆抗体包埋于固相载体上而后作为填料装柱而成;经样品前处理和免疫层析处理后,所得净化三聚氰胺溶液用于后续仪器分析样品中三聚氰胺含量。本发明的免疫亲和色谱柱具有高选择性,且方法操作简单,净化效果好,避免杂质对测定结果产生的干扰,免疫亲和色谱柱可重复使用,降低分析成本和环境污染。
Description
技术领域
本发明涉及一种三聚氰胺免疫亲和色谱柱的制备和使用方法,属于免疫亲和层析及三聚氰胺检测技术领域。
背景技术
近年来频频发生的在食品和饲料中违法添加三聚氰胺而导致的中毒事件引起了广泛的关注。尤其是2008年我国的三鹿奶粉事件使得食品安全问题成为国家和人民关注的新焦点。三聚氰胺(MEL)是一种用途广泛的有机化工原料,其主要用途是用来生产三聚氰胺甲醛树脂,用以制造涂料、模塑粉、装饰面板等。目前,对奶粉等食品中蛋白质的测试方法通常采用“凯氏定氮法”,其原理是通过测出总含氮量来间接推算出蛋白质的含量。三聚氰胺分子含氮量高达66%,最重要的是,三聚氰胺是一种无色,无味的白色结晶粉末,掺杂后不易被发现,而且成本低廉,在巨大利益的驱动下,三聚氰胺这一化工原料被一些不法商贩添加到奶粉及其他食品中以牟取暴利。
毒理学研究表明,三聚氰胺是一种低毒或微毒的化学物质,但如果长期摄入会对动物泌尿系统造成损害,其作用的靶器官为肾脏,从而导致膀胱癌和结石的发生。其机理在于三聚氰胺和其水解产物三聚氰酸在肾脏可形成一种不溶于水的大分子的网络结构复合物,这种复合物不能透过肾小球,当沉积下来后就会形成结石,造成肾小管的物理性阻塞,尿液无法排出,最终导致肾结石甚至肾脏衰竭,这也与2008年的“三鹿奶粉事件”中那些受害婴儿所表现的“肾结石”症状相一致。
目前,三聚氰胺的检测方法主要有高效液相色谱法(HPLC)、气相色谱质谱法(GC-MS)、液相色谱-质谱/质谱法(LC-MS/MS)等,但这些方法前处理过程均比较繁琐,如GC法需要衍生化,过程复杂,后经常规的SPE柱净化和分离,存在着净化效果差,有机溶剂掺杂,所需时间长等缺点。免疫亲和技术是90年代在分析领域发展起来的新技术,免疫亲和柱(IAC)是利用免疫亲和层析原理制作的分离分析预装柱,由于抗原与抗体作用的高度特异性,待测样品通过IAC柱后能有效,快速,灵敏,准确的去除绝大部分杂质从而净化富集目标物。但是,用免疫亲和柱净化基质中的三聚氰胺未见报道,更无商品化的IAC柱出售。
发明内容
本发明的目的是提供一种净化三聚氰胺的免疫亲和色谱柱,及由其为主组成的净化三聚氰胺的试剂盒,得到被测样品中所含的净化的三聚氰胺溶液,用于后续仪器分析样品中三聚氰胺含量。
本发明的技术方案:一种净化三聚氰胺的试剂盒,由净化三聚氰胺的免疫亲和色谱柱,三聚氰胺标准溶液,淋洗液,洗脱液,再生液,平衡保存液和海绵托架所组成;
所述净化三聚氰胺的免疫亲和色谱柱是将三聚氰胺单克隆抗体包埋于固相载体上而后作为填料装柱而成;
所述的三聚氰胺单克隆抗体是以三聚氰胺为半抗原与载体蛋白偶联而成的完全抗原为免疫原得到的三聚氰胺鼠单克隆抗体;
“一种三聚氰胺人工抗原的合成方法”已获中国专利ZL200810234130.6,授权公告号CN101402683B,公告日2011年3月30日。
所述固相载体为四甲氧基硅烷(TMOS);
所述载体蛋白为牛血清白蛋白或卵清蛋白;
所述淋洗液为0.01M,pH7.4,含0.05% Tween-20的PBS溶液;
所述洗脱液为甲醇-甘氨酸盐酸溶液,甲醇:甘氨酸盐酸溶液v:v为1:1;甘氨酸盐酸溶液为甘氨酸7.5g,12mol/L HCL 10mL,用高纯水定容至500mL,甲醇500mL;
所述再生液为含0.01% 叠氮钠、含0.05% Tween-20的0.01M,pH7.4的PBS溶液;
所述平衡保存液为0.01M,pH7.4的PBS溶液。
所述PBS缓冲液为1L溶液中含有磷酸二氢钾0.27g,十二水合磷酸氢二钠2.86g,氯化钾0.2g,氯化钠8.8g。
用所述的净化三聚氰胺的试剂盒净化样品中三聚氰胺的方法,步骤为:
1)样品的前处理:参照国家标准GB/T 22388-2008:称取1g的奶粉样品于50mL塑料离心管中,加入8mL三氯乙酸和2mL乙腈,超声提取10min,再震荡提取10min,然后以不低于4000r/min离心10min,取上清液,经三氯乙酸溶液润湿的滤纸过滤,取滤液;
2)净化:免疫亲和色谱柱使用前用10mL的PBS平衡保存液平衡;然后将步骤1)得到的滤液通过所述的免疫亲和色谱柱层析;然后用所述的淋洗液及超纯水洗涤,再用所述的洗脱液洗脱,收集洗脱液经0.22μm孔径的聚四氟乙烯膜过滤后即可得到净化的三聚氰胺溶液,用于后续仪器分析样品中三聚氰胺含量。
本发明的免疫亲和色谱柱基于免疫反应和色谱原理,适合从各种基质样品(如奶粉,液态奶)中净化三聚氰胺,便于后续分析。在所述免疫亲和色谱柱中,三聚氰胺的单克隆抗体与四甲氧基硅烷(TMOS)的偶联率为72.57±1.2%。动态柱容量为80μg/mL,绝对柱容量为16.5μg/mg,使用了8次后柱容量为总柱容量的38%左右,保存期为1年。
本发明的有益效果:本发明的免疫亲和色谱柱具有高选择性,将抗体的非结合活性区域Fc端定向的包埋于载体,更好的保持抗体的活性,且方法操作简单,净化效果好,避免杂质对测定结果产生的干扰,免疫亲和色谱柱可重复使用,降低分析成本和环境污染。本发明的净化方法结合色谱法可用于奶粉,液态奶,酸奶等样品中三聚氰胺的高效检测。
附图说明
图1三聚氰胺不同浓度标准品的液相质谱图。
图2三聚氰胺不同浓度标准品的液相质谱图的标准曲线。
图3在奶粉中三聚氰胺净化提纯样品效果的液相质谱图。
具体实施方式
为更好的理解本发明,下面结合具体的实施例来进一步阐明,应理解,这些实施例仅用于说明本发明,而不用来限制本发明的范围。
实施例1 三聚氰胺单克隆抗体的制备
动物免疫:以三聚氰胺为半抗原,经戊二醛法与载体蛋白BSA偶联为免疫原,选用BALB/C小鼠为免疫动物,免疫剂量为100μg/只,首免时混合等体积的完全弗氏佐剂,21天后,加等体积的不完全弗氏佐剂以同样剂量进行加强免疫,二免后第10天采血进行检测,以后每间隔21天进行一次加强免疫,直到血清效价和特异性达到要求,然后免疫剂量减半进行冲刺免疫,3天后取脾细胞进行融合。
细胞融合:融合前一天制备饲养细胞,融合当天取脾细胞按5:1的比例与SP2/0骨髓瘤细胞进行融合。
杂交瘤细胞克隆化:融合后采用间接竞争ELISA法筛选出阳性孔,而后采用有线稀释法进行亚克隆并进行阳性率的检测,直至得到完全同质的三聚氰胺单克隆抗体和稳定的单克隆杂交瘤细胞株。
单克隆抗体的大量生产:采用体内诱生法,选用BALB/C小鼠为实验动物,首先对其腹腔注入灭菌石蜡油,7-10天后腹腔注射上述的单克隆杂交瘤细胞株,1×106-2×106个/只,待7-10天后采集腹水。
腹水纯化:采用辛酸-硫酸铵法进行抗体的纯化。具体步骤如下:1)辛酸法沉淀:取上述腹水首先12000r/min,20min,取上清。加2倍体积的0.06mol/L pH5.0醋酸缓冲液稀释,用1mol/L HCL调pH至4.8。按每mL稀释腹水加11μL辛酸的比例,室温搅拌下逐滴加入辛酸,于30min内加完,4℃静置2h,取出8000r/min,30min,弃沉淀。2)50%饱和硫酸铵盐析:将所得的上清加入1/10体积的0.01M PBS,用1M NaOH调pH至7.2。缓慢加入等量的饱和硫酸铵溶液,混匀,4℃静置1h,5000r/min,20min,弃上清留沉淀。3)33%饱和硫酸铵盐析:将步骤2)得到的沉淀溶于2mL 0.01mol/L PBS中,再加1mL的饱和硫酸铵使其达到33%饱和度,混匀,4℃静置1h,5000r/min,20min,弃上清留沉淀。4)透析除盐:将步骤3)所得沉淀溶于0.01 mol/L、pH7.4的PBS,装入透析袋,用0.01M、pH7.4的PBS透析,4℃静置,每天换水3次以上。5)透析完毕,5000r/min,10min,将所得上清液置于-20℃保存。
实施例2 免疫亲和色谱柱(IAC)的制备
其具体步骤如下:取0.2mL、0.04 mol/L HCL,0.75mL去离子水和3.4mL 四甲氧基硅烷TMOS混匀,在4℃保存2-3min。将上述TMOS溶液温度控制在0℃左右时超声混匀30min。取一烧杯,称取重量,吸取一定量的抗体溶液,用0.01M、pH7.4 PBS缓冲液稀释至1mg/mL,4℃保存。待TMOS溶液超声完全后,吸取其中1mL,加入至4℃保存的抗体溶液中,使之形成凝胶。待凝胶结束后,再将烧杯称重,并置于37℃恒温烘箱凝胶老化。待凝胶失去初重的50%时,老化过程结束。将老化后的凝胶(约1g)研磨碎,并进行装柱。待柱中凝胶沉积稳定后,用5mL 0.01M、pH7.4 PBS预淋洗,洗去未包埋的抗体和其他干扰杂质,最后用5mL 0.01M、pH7.4 PBS平衡。制备好的IAC柱上部用0.01M、pH7.4 PBS保存,并在4℃环境中保存备用,长期保存则在PBS中加入0.01% 叠氮钠。
实施例3 IAC柱容量的确定:
将实施例2所制备的IAC柱取出,取下柱子上下端的塞子,将柱子与真空泵连接,调节流速,使液体以2d/s的速度流出(不超过1mL/min),待液体排干后,将10mL、10μg/mL处理后的样品溶液(样品溶解于上样缓冲液中)上样,流速同上,收集上样滤液,测定OD240。液体排干后,分别用10mL 0.01M、pH7.4 PBST和10mL纯水淋洗,流速同上。收集淋洗滤液,并测定OD240。如该OD240值大于0.02,则重复淋洗,直至小于0.02,计算淋洗滤液体积以及滤液中三聚氰胺含量。液体排干后,上样1mL含50%甲醇的0.01M、pH3.5甘氨酸盐酸溶液,流速1d/s(不超过0.5mL/min),将收集的洗脱液直接用于检测。液体排干后,分别用10mL 0.01M、pH7.4 PBST,10mL 0.01M、pH7.4 PBS清洗,收集清洗液,测定清洗液中OD240。然后,柱子下端用塞子密封,加入3mL 0.01M、pH7.4 PBS平衡保存液,上端用塞子密封,置于4℃保存。计算出动态柱容量和绝对柱容量。动态柱容量是指每毫升免疫包埋剂(或柱床体积)对待测物的最大吸收值。绝对柱容量是指每毫克固定抗体对待测物的最大结合容量。结果表明本发明制备的免疫亲和柱动态柱容量为80μg/mL,绝对柱容量为16.5μg/mg。
实施例4 含有三聚氰胺免疫亲和色谱柱的试剂盒的制备及其对三聚氰胺的提纯净化效果
1、含有三聚氰胺免疫亲和色谱柱的试剂盒的制备
该试剂盒主要有纸质盒体,IAC柱,三聚氰胺标准溶液,洗脱液,再生液,平衡保存液,海绵托架所组成,其中海绵托架上有放置上述各种溶液的凹槽和放置IAC柱的孔。其中,所述的IAC柱为实施例2制备的偶联有对三聚氰胺特异性识别的单克隆杂交瘤细胞株所分泌的单克隆抗体的免疫亲和色谱柱。所述洗脱液为甲醇-甘氨酸盐酸溶液(1:1,v:v),包括甘氨酸7.5g,12mol/L HCL 10mL,高纯水500mL,甲醇500mL;所述再生液为含0.01%叠氮钠、0.05% Tween-20的0.01M,pH7.4的PBS溶液;所述PBS缓冲液为1L溶液中含有磷酸二氢钾0.27g,12水合磷酸氢二钠2.86g,氯化钾0.2g,氯化钠8.8g;所述平衡保存液为0.01M,pH7.4的PBS溶液。将组合好的含有三聚氰胺免疫亲和色谱柱的试剂盒放在4℃保存。
2、奶粉样品中三聚氰胺的检测
在空白样品(奶粉)中,分别添加1,10,50,100ppb 三聚氰胺标准品,样品提取液用实施例2制备的免疫亲和色谱柱净化,而后用HPLC进行测定。具体操作方法参照国家标准GB/T 22388-2008。以三聚氰胺含量为10 ppb为例,结果如图3所示。结果表明,本发明制备的三聚氰胺免疫亲和色谱柱非特异性吸附极小,结果可靠,完全可以满足三聚氰胺实际检测的要求。
Claims (2)
1.一种净化三聚氰胺的试剂盒,其特征在于由净化三聚氰胺的免疫亲和色谱柱,三聚氰胺标准溶液,淋洗液,洗脱液,再生液,平衡保存液和海绵托架所组成;
所述净化三聚氰胺的免疫亲和色谱柱是将三聚氰胺单克隆抗体包埋于固相载体上而后作为填料装柱而成;
所述的三聚氰胺单克隆抗体是以三聚氰胺为半抗原与载体蛋白偶联而成的完全抗原为免疫原得到的三聚氰胺鼠单克隆抗体;
所述固相载体为四甲氧基硅烷;
所述载体蛋白为牛血清白蛋白或卵清蛋白;
所述淋洗液为0.01M,pH7.4,含0.05% Tween-20的PBS溶液;
所述洗脱液为甲醇-甘氨酸盐酸溶液,甲醇:甘氨酸盐酸溶液v:v为1:1;甘氨酸盐酸溶液为甘氨酸7.5g,12mol/L HCL 10mL,用高纯水定容至500mL;甲醇500mL;
所述再生液为含0.01% 叠氮钠、含0.05% Tween-20的0.01M,pH7.4的PBS溶液;
所述平衡保存液为0.01M,pH7.4的PBS溶液。
2.一种用权利要求1所述的净化三聚氰胺的试剂盒净化样品中三聚氰胺的方法,其特征在于步骤为:
1)样品的前处理:参照国家标准GB/T 22388-2008:称取1g的奶粉样品于50mL塑料离心管中,加入8mL三氯乙酸和2mL乙腈,超声提取10min,再震荡提取10min,然后以不低于4000r/min离心10min,取上清液,经三氯乙酸溶液润湿的滤纸过滤,取滤液;
2)净化:免疫亲和色谱柱使用前用10mL的PBS平衡保存液平衡;然后将步骤1)得到的滤液通过所述的免疫亲和色谱柱层析;然后用所述的淋洗液及超纯水洗涤,再用所述的洗脱液洗脱,收集洗脱液经0.22μm孔径的聚四氟乙烯膜过滤后即得到净化的三聚氰胺溶液,用于后续仪器分析样品中三聚氰胺含量。
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C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C12 | Rejection of a patent application after its publication | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20120215 |