CN102206615B - 一种用酶解法制备乙醇脱氢酶的工艺 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种用酶解法制备乙醇脱氢酶的方法,其特征在于,包括以下步骤:1)混合液:将CBP液和α-淀粉酶液按体积比为5∶1-2混合均匀,得混合溶液;取啤酒酵母和上述混合液置反应罐中,搅拌均匀;2)在搅拌下调pH值至6.5-7.5,在37-42℃条件下搅拌反应23h-25h,得酶解啤酒酵母液;3)上述酶解啤酒酵母液经离心、超滤浓缩,得浓缩液;4)上述浓缩液经干燥得乙醇脱氢酶酶粉。本发明的原料获取简单,制备设备简单、过程操作简单且时间不长。
Description
【技术领域】
本发明涉及一种用酶解法制备乙醇脱氢酶的工艺。
【背景技术】
乙醇脱氢酶(Alcohol dehydrogenase,EC 1.1.1.1,缩写ADH)属氧化还原酶类,是体内一种含Zn的金属酶,它在乙醇代谢途径中起着关键酶的重要作用。催化反应如下:
【发明内容】
本发明的目的是提供一种用酶解法制备乙醇脱氢酶的工艺,制备简单、快速。
上述目的通过以下技术方案实现:
一种用酶解法制备乙醇脱氢酶的工艺,其特征在于,包括以下步骤:
1)混合液:将CBP液和α-淀粉酶液按体积比为5∶1-2混合均匀,得混合溶液;取啤酒酵母和上述混合液置反应罐中,搅拌均匀;
2)在搅拌下调pH值至6.5-7.5,在37-42℃条件下搅拌反应23h-25h,得酶解啤酒酵母液;
3)上述酶解啤酒酵母液经离心、超滤浓缩,得浓缩液;
4)上述浓缩液经干燥得乙醇脱氢酶酶粉。
由上述方案可知,本发明通过CBP液和α-淀粉酶液对啤酒酵母按设置条件进行酶解以获取酶解啤酒酵母液,再经离心、超滤浓缩和干燥得乙醇脱氢酶酶粉,其中,离心、超滤浓缩和干燥这些步骤皆为常规技术手段;本发明的原料获取简单,制备设备简单、过程操作简单且时间不长。
进一步的方案是,所述步骤1)的α-淀粉酶液由以下工艺制得:混合步骤3)的残渣和步骤4)的残渣得混合物,将所述混合物加入pH6.0-pH7.0、0.01mol/L磷酸缓冲液,混合物的质量g与磷酸缓冲液的体积ml之比为1∶2,搅拌0.5h,经离心、超滤浓缩,得α-淀粉酶液。本方案使得本制备工艺可以废物利用,在刚开始制备乙醇脱氢酶时,可以先从其它地方获取α-淀粉酶液,之后就可以在生产过程中利用相应的残渣来生产α-淀粉酶液。
进一步的方案是,步骤2)中的所述啤酒酵母为废弃啤酒酵母泥,即生产啤酒后过滤出的啤酒酵母;这些废弃啤酒酵母泥可由啤酒厂提供,可以废物回收利用,低成本低耗环保。
进一步的方案是,步骤1)中,所述啤酒酵母的质量g与混合溶液的体积ml之比为1∶2。
进一步的方案是,所述步骤3)具体包括:
301)上述酶解啤酒酵母液抽入离心机,经1200-1500r/min常温离心收集上清液,残渣压滤再收集上清液,合并两次上清液,残渣保留备用;
302)上述合并上清液抽入离心机,经14000-17000r/min常温离心收集上清液,残渣保留备用;
303)将步骤302)所得的上清液经超滤浓缩,得浓缩液。
进一步的方案是,所述步骤4)具体为,上述浓缩液转入冷冻干燥机中冷冻干燥,或用-15℃以下的冷丙酮洗涤脱水干燥,得乙醇脱氢酶酶粉。
【附图说明】
图1是本发明的制备工艺流程图;
图2是本发明制备工艺中所采用的设备流程图。
【具体实施方式】
结合图1、图2和表1,本发明包括以下步骤:
1)取100kg废啤酒酵母泥(废弃啤酒酵母泥是生产啤酒后过滤出的啤酒酵母,由青岛啤酒厂(珠海)提供,当然也可以用其他公司的废弃啤酒酵母泥或其它啤酒酵母)置反应罐中,加入混合溶液,搅拌均匀,该混合溶液包括150L的酶活力为500U/ml的萝卜几丁质结合蛋白液(CBP液)和50L的酶活力为1.17U/ml的α-淀粉酶液;其中,CBP液可以按由本申请人于2011年1月30日在中国申请的专利申请号为201110033110.4、名称为《一种高分子冷凝聚法制备萝卜几丁质结合蛋白的方法》的发明专利中所记载的技术方案来制备。
2)在搅拌下调pH值至7,在搅拌速度100r/min、40℃的条件下保温反应25h,得酶解啤酒酵母液约300L,酶活力达13500U/ml,比活力5403U/mg蛋白质;
3)上述酶解啤酒酵母液抽入离心机,先用低速离心(1500r/min,常温)收集上清液,残渣再经过压滤机压滤一次再收集上清液,合并两次上清液约97L,残渣保留备用;
4)上述合并上清液再经管式离心机离心(16000r/min,常温),收集上清液约85L,酶活力达14967U/ml,比活力770807U/g蛋白质,残渣保留备用;
5)将步骤4)所得的上清液泵入超滤机,经超滤(过滤条件:收集分子量为10000道尔顿以上的物质)得浓缩液约29L,酶活力达15600U/ml,比活力19500U/mg蛋白质;
6)将浓缩液转入冷冻干燥机中冷冻干燥或用-15℃以下的冷丙酮洗涤脱水三次,得ADH酶粉5kg,酶活力达14万U/g。
表1制备过程中的相关数据
在生产过程中,我们利用步骤3)的残渣和步骤4)的残渣来制备α-淀粉酶液:混合步骤3)的残渣和步骤4)的残渣得混合物,将该混合物加入pH6.0-pH7.0、0.01mol/L磷酸缓冲液,混合物的质量g与磷酸缓冲液的体积ml之比为1∶2,搅拌0.5h,先离心(1200-1500r/min,常温)收集上清液,残渣重复一次离心(14000-17000r/min,常温)收集上清液,合并两次上清液,经超滤(过滤条件:收集分子量为10000道尔顿以上的物质)浓缩,得α-淀粉酶液,经检测,酶活力达1.17-1.36U/ml,比活力为63.3-76.8U/mg蛋白质。
酶解啤酒酵母液、上清液、浓缩液和酶粉的活力测定工艺:于石英比色皿中加入pH8.0、0.05mol/L的三羟甲基氨基甲烷盐酸盐Tri-HCl缓冲液3ml、17mol/L乙醇40uL、0.05mol/LNAD+40ul(用上述缓冲液制备),于25℃水浴恒温恒定后,迅速加入0.1ml酶液(酶解啤酒酵母液或提取液或浓缩液或酶粉的稀释液),并以缓冲液为对照;在340nm波长下,每隔30S读一次数,共读3min,以A340对时间(s)作图,计算出每分钟的A340增加值。在上述条件下,每分钟在340nm波长下,增加0.001光吸收单位的酶量为一个酶活力单位(U)。按下式计算酶活力单位:
U/ml=ΔA340×3.18/(3×0.001×0.1)
U/g酶=U/mL×稀释倍数/酶质量
萝卜几丁质结合蛋白的活力测定工艺:以溶壁微球菌(Micrococcuslysodeikticus)为底物。挑取少量底物于研钵内,加入定量1/15mol/L pH6.2的磷酸盐缓冲液,研磨破壁,不断加入上述缓冲液,研磨,使悬浮液在450nm波长下,光吸收值达0.6~0.9个光吸收单位,即为底物悬浮液;酶活性测定时,在25℃下以上述磷酸盐缓冲液为对照,于测定比色皿内加入底物悬浮液2.5ml,迅速加入0.1ml酶液,搅匀,立即读取光吸收值(A)后,每隔30s读一次数,共读3min。求出平均光吸收值(ΔA)。以在上述条件下每分钟在450nm波长下光吸收值下降0.001个单位的酶量为1个酶活力单位(U),依下式计算酶活力单位:
酶活力单位(U/ml)=ΔA450×0.1/(3×0.001)
酶活力单位(U/g)=U/mL×稀释倍数/酶质量
α-淀粉酶的活力测定工艺:取酶液、1%可溶性淀粉溶液(1g可溶性淀粉加入0.01mol/L pH6.9磷酸缓冲液100ml,该磷酸缓冲液内含0.05mol/L NaCl)分别在25℃水浴中保温恒定,各取0.5ml,迅速混匀,于25℃下准确反应3min,立即加入1.0ml显色剂(1g 3,5-二硝基水杨酸中加入少量蒸馏水,搅匀,加入20ml 2mol/L NaOH水溶液,使其溶解,然后加入30.0g四水酒石酸钾钠,待其溶解后以蒸馏水定容至100ml)终止反应。置沸水浴中加热5min,冷却后用4ml蒸馏水稀释。在540nm波长下测定吸光值(A),并以1ml显色剂中加入1ml上述缓冲液同样保温冷却再用4ml蒸馏水稀释为对照。以A值于葡萄糖标准曲线上,查出还原糖含量。在上述条件下每分钟从可溶性淀粉中释放1μmol/L还原糖的酶量为1个酶活力单位。
蛋白质含量测定:蛋白质含量测定按Bradford(1976)工艺,并以牛血清白蛋白为标准蛋白质。
本发明不局限于上述实施例,基于上述实施例的、未做出创造性劳动的简单替换,应当属于本发明揭露的范围。
Claims (2)
1.一种用酶解法制备乙醇脱氢酶的方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)混合液:将萝卜几丁质结合蛋白液和α-淀粉酶液按体积比为5∶1-2混合均匀,得混合溶液;取啤酒酵母和上述混合液置反应罐中,搅拌均匀,所述啤酒酵母的质量g与混合溶液的体积ml之比为1∶2;
2)在搅拌下调pH值至6.5-7.5,在37-42℃条件下搅拌反应23h-25h,得酶解啤酒酵母液;
3)上述酶解啤酒酵母液经离心、超滤浓缩,得浓缩液;
4)上述浓缩液转入冷冻干燥机中冷冻干燥,或用-15℃以下的冷丙酮洗涤脱水干燥,得乙醇脱氢酶酶粉;
所述步骤3)具体包括:
301)上述酶解啤酒酵母液抽入离心机,经1200-1500r/min常温离心收集上清液,残渣压滤再收集上清液,合并两次上清液,残渣保留备用;
302)上述合并上清液抽入离心机,经14000-17000r/min常温离心收集上清液,残渣保留备用;
303)将步骤302)所得的上清液经超滤浓缩,得浓缩液。
2.根据权利要求1所述的用酶解法制备乙醇脱氢酶的方法,其特征在于,步骤1)中的所述啤酒酵母为废弃啤酒酵母泥,即生产啤酒后过滤出的啤酒酵母。
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WO2010064748A1 (en) * | 2008-12-04 | 2010-06-10 | Korea Research Institute Of Bioscience And Biotechnology | Screening of abundantly secreted proteins and their use as fusion partners for the production of recombinant proteins |
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