CN101962637A - 一种蛹虫草纤溶酶及其培制方法 - Google Patents

一种蛹虫草纤溶酶及其培制方法 Download PDF

Info

Publication number
CN101962637A
CN101962637A CN 201010204473 CN201010204473A CN101962637A CN 101962637 A CN101962637 A CN 101962637A CN 201010204473 CN201010204473 CN 201010204473 CN 201010204473 A CN201010204473 A CN 201010204473A CN 101962637 A CN101962637 A CN 101962637A
Authority
CN
China
Prior art keywords
plasmin
cordyceps militaris
link
enzyme
lsg
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN 201010204473
Other languages
English (en)
Other versions
CN101962637B (zh
Inventor
刘晓兰
郑喜群
艾瑞波
时晰
李瑶
李巍巍
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Qiqihar University
Original Assignee
Qiqihar University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Qiqihar University filed Critical Qiqihar University
Priority to CN2010102044735A priority Critical patent/CN101962637B/zh
Publication of CN101962637A publication Critical patent/CN101962637A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN101962637B publication Critical patent/CN101962637B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明公开了一种蛹虫草纤溶酶及该纤溶酶的培制方法,该蛹虫草纤溶酶是以蛹虫草C.LSG-1为菌种,经培养发酵、分离和提纯制成;分子量为28000左右,等电点为9.3±0.2;最适作用温度为37℃,最适pH分别为7.2,在pH3~11之间较稳定。该蛹虫草纤溶酶具有很好的溶栓性能,且无明显的急性毒性。本发明所用菌株是经过严格筛选得到的高产纤溶酶蛹虫草C.LSG-1菌种,生长条件粗放,产酶周期短,性能优良,在产酶同时能收获大量蛹虫草菌丝体,因该酶是一种胞外酶,在制备中特别有利于后续的分离和纯化。由于本发明产品是以来源广泛的玉米蛋白为主要培养基,不仅原料成本低廉,而且也为这些原有资源的开发利用提供了新的途径。

Description

一种蛹虫草纤溶酶及其培制方法
技术领域
本发明涉及一种蛹虫草纤溶酶,本发明还涉及一种该纤溶酶的培制方法。
背景技术
生物溶栓法目前是治疗和预防血栓性疾病的主要手段,研制高效、快速、防止再栓塞并能降低出血等不良反应的新型溶栓药物是现代医学的迫切需要。蛹虫草是一种珍贵的中药和高级滋补品,能够提高免疫功能,护肝清肺、止咳化痰、抗疲劳、抗缺氧、抗病毒等功效,具有重要的医用价值,是一种亟待开发的重要资源。近十余年的时间里,本申请人一直在探讨蛹虫草在现代生物溶栓剂制备中的应用潜力,并于2006年成功地筛选到了一株具有优良溶栓性能的蛹虫草菌株C.LSG-1,该菌株已由本申请人于2008年7月4日向中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心提供了菌种保藏,保藏号为CGMCC NO.2577,其分类学命名为Cordyceps militaris。利用该菌株本申请人培养出了一种具有良好溶栓性能的纤溶酶,并于2008年11月12日向国家知识产权局提交了申请号为200810137564.4的发明专利申请。该发明申请中的纤溶酶酶分子相对分子量为21000,该纤溶酶酶分子能够直接溶解血纤维蛋白,在适宜人体生理pH下溶栓性质稳定,本发明内容属于对该项目的继续研究。
发明内容
本发明的发明目的在于提供一种蛹虫草纤溶酶,该纤溶酶不仅具有很好的溶栓性能,而且使用上安全性好,相对分子量小,易于人体吸收,制备成本也很低廉。本发明的另一个发明目的还在于提供一种该纤溶酶的培制方法。
本发明产品是以保藏号为CGMCC NO.2577,其分类学命名为Cordycepsmilitaris的蛹虫草菌株C.LSG-1为菌种,经过斜面培养、平板培养、液体发酵培养、分离和提纯,最后培制出本发明的纤溶酶产品。
本发明培制的纤溶酶具有以下酶学性质:该蛹虫草纤溶酶酶分子由单个亚基组成,相对分子量约为28000;等电点为9.3±0.2;蛹虫草纤溶酶为糖蛋白,总含糖量约1.668%;该酶不但可以直接降解血纤维蛋白,而且具有激活纤溶酶原转化成纤溶酶共同参与溶栓的作用;可以顺次降解纤维蛋白α、β和γ链。最适作用温度为37℃,最适pH分别为pH7.2,在pH3~11之间较稳定;Ca2+对蛹虫草纤溶酶具有较高的保护作用,而不同浓度Fe2+对纤溶酶表现出较强的抑制作用。质谱法测得三个肽段序列分别为:N-T-T-Y-F-Q-P-V-N-R;L-L-Q-T-Y-G-L-T-L-V-G-R;A-T-V-Q-G-G-D-A-Y-V-L-N-N-Q-F-R,Edman降解法测得N端十五个氨基酸序列为:I-V-G-G-V-S-V-L-I-E-D-F-P-Y-Q。
本发明的产品制备方法与申请号200810137564.4发明专利申请技术方案对比,原方案中纤溶酶色谱提纯方法包括Phenyl Sepharose HP疏水相互作用层析和Superdex75预装柱凝胶过滤层析。本发明中纤溶酶色谱提纯方法增加了Sephadex G-25凝胶层析脱盐和SP-Sepharose HP强阳离子交换层析。
本发明产品制备的具体步骤:
1、以蛹虫草C.LSG-1为菌种,经过斜面培养、平板培养、液体发酵培养生产蛹虫草纤溶酶;
2、培养方法:斜面培养→平板培养→液体发酵培养;
将蛹虫草菌株C.LSG-1接入斜面培养基:葡萄糖1%,琼脂2.5%,马铃薯汁20%,蛋白胨0.5%,KH2PO4 0.1%,MgSO4 0.05%,pH自然,23℃恒温培养10d。将培养物转接入同斜面培养基相同的平板培养基23℃恒温培养10d。
发酵培养基含蔗糖1.25%,玉米蛋白5%,KH2PO4 0.01%、KCl 0.005%、MgSO40.001%、CuSO4 0.001%,装液量为40mL/250mL三角瓶,发酵培养基的初始pH值自然。液体发酵条件:接菌量为直径1cm的菌苔圆片1片;21~28℃,180rpm/min发酵5天得液体发酵培养物。
3、粗提纯蛹虫草纤溶酶:将液体发酵培养物10000rpm/min、4℃、离心10min,离心上清液经20%饱和度的硫酸铵盐析后为粗酶液。
4、精提纯蛹虫草纤溶酶:采用现代色谱技术对粗酶液进行精提纯,主要采用以下方法得到色谱纯的纤溶酶:
A、Sephadex G-25凝胶层析脱盐:缓冲液为0.02mol/L PBS(pH 6.0);
B、SP-Sepharose HP强阳离子交换层析:按NaCl浓度递增方向用含0.8mol/L NaCl的0.02mol/L PBS缓冲液梯度洗脱;
C、Phenyl Sepharose HP疏水相互作用层析:采用梯度洗脱方式:将样品盐饱和度调到40%,上样后用40%~0硫酸铵溶液梯度洗脱,收集有纤溶活性组分;
D、Superdex75预装柱凝胶过滤层析:用含0.3mol/LNaCl的0.02mol/L PBS缓冲液(pH7.4)洗脱,收集有纤溶活性组分。
本发明的优点:该蛹虫草纤溶酶分子量较小,适宜在人体生理pH下发挥作用,实验证明具有很好的溶栓性能,不仅能独立溶栓,还能够激活纤溶酶原间接溶栓,且无明显的急性毒性,因而具有在临床上开展试验、开发应用的前景,也为稀薄的纤溶酶家族增添了一名新的成员。本发明所用菌株是经过严格筛选得到的高产纤溶酶蛹虫草C.LSG-1菌种,生长条件比较粗放,产酶周期短,在产酶同时能收获大量蛹虫草菌丝体,是一株生产性能优良的菌种。本发明的蛹虫草纤溶酶是一种胞外酶,在制备中特别有利于后续的分离和纯化。由于本发明产品是以来源广泛的玉米蛋白为主要培养基,不仅原料成本低廉,而且也为这些原有资源的开发利用提供了新的途径。
附图说明
图1为利用血纤维蛋白蛋白平板法证实本发明产品纤溶酶溶纤作用的图片
图2为SDS-PAGE测定纤溶酶对人血纤维蛋白原的降解图片
本发明所使用的蛹虫草菌株C.LSG-1已由本申请人于2008年7月4日向中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心提供了菌种保藏,保藏号为CGMCCNO.2577,其分类学命名为Cordyceps militaris。
具体实施例
实施例1:
1、菌种:蛹虫草菌株C.LSG-1,保藏号为CGMCC NO.2577
2、培养基及培养条件:
(1)斜面培养基:葡萄糖1%,琼脂2.5%,马铃薯汁20%,蛋白胨0.5%,KH2PO40.1%,MgSO4 0.05%,pH自然。培养条件:23℃恒温培养10d。(20%马铃薯汁制备:称去皮马铃薯200g,切成碎块,加蒸馏水1000mL,煮沸30min,以双层纱布过滤取汁备用)
(2)平板培养基:葡萄糖1%,琼脂2.5%,马铃薯汁20%,蛋白胨0.5%,KH2PO40.1%,MgSO4 0.05%,pH自然。培养条件:23℃恒温培养10d。
(3)液体发酵培养基:蔗糖1.25%,玉米蛋白5%,KH2PO4 0.01%、KCl0.005%、MgSO40.001%、CuSO4 0.001%,装液量为40mL/250mL三角瓶,发酵培养基的初始pH值自然。液体发酵条件:接菌量为直径1cm的菌苔圆片1片;21~28℃,180rpm/min发酵5天得液体发酵培养物。
实施例2
1、斜面培养同实施例1
2、液体发酵培养同实施例1
3、蛹虫草纤溶酶的分离纯化:
液体发酵产物经过20%饱和度硫酸铵盐析后,再经过:
a、Sephadex G-25凝胶过滤层析,使用pH6.0磷酸盐缓冲液洗脱,收集有纤溶活性组分;
b、SP-Sephar离子交换层析,使用含0~0.8mol/L NaCl的磷酸盐缓冲溶液(pH6.0)梯洗,收集有纤溶活性组分;
c、Phenyl-Sepharose HP疏水相互作用层析,将样品盐饱和度调到40%,上样后用40~0%硫酸铵溶液梯度洗脱,收集有纤溶活性组分;
d、Sephadex 75凝胶过滤层析:用pH7.4磷酸盐缓冲液洗脱,洗脱液含0.3mol/LNaCl,收集有纤溶活性组分。
实施例3
1、斜面培养同实施例1
2、液体发酵培养同实施例1
3、纤溶酶分离纯化同实施例2
4、测定分离纯化后的纤溶酶的性质:蛹虫草纤溶酶酶分子由单个亚基组成,相对分子量约为28000;等电点为9.3±0.2;蛹虫草纤溶酶为糖蛋白,总含糖量约1.668%;该酶不但可以直接降解血纤维蛋白,而且具有激活纤溶酶原转化成纤溶酶共同参与溶栓的作用;可以顺次降解纤维蛋白α、β和γ链。最适作用温度为37℃,最适pH分别为pH7.2;Ca2+对蛹虫草纤溶酶具有较高的保护作用,而不同浓度Fe2+对纤溶酶表现出较强的抑制作用。质谱法测得三个肽段序列分别为:N-T-T-Y-F-Q-P-V-N-R;L-L-Q-T-Y-G-L-T-L-V-G-R;A-T-V-Q-G-G-D-A-Y-V-L-N-N-Q-F-R,Edman降解法测得N端十五个氨基酸序列为:I-V-G-G-V-S-V-L-I-E-D-F-P-Y-Q。
实施例4
蛹虫草纤溶酶纤溶活性证明:
采用血纤维蛋白平板法检验此酶对血纤维蛋白的溶解性。
A血纤维蛋白平板法
血纤维蛋白平板含有血纤维蛋白原(市售的血纤维蛋白原中可能含有纤维蛋白)和凝血酶,可溶性纤维蛋白原在凝血酶作用形成纤维蛋白单体,血纤维蛋白单体自发缔结,多聚化形成可见的血纤维蛋白凝胶,将纤溶酶液加到此平板凝胶表面,经过短时间培养后该酶即将血纤维蛋白溶解,在平板凝胶表面形成肉眼可见的透明圈。见图1。
B电泳法
将纤溶酶和人血纤维蛋白原等体积混匀37℃反应,用SDS--PAGE检测脉孢霉纤溶酶降解人血纤维蛋白原,降解图谱见图2(从右至左泳道依次为人血纤维蛋白原、蛹虫草纤溶酶与纤维蛋白原混合后作用1min、5min、30min、1h、2h、4h、6h、8h、12h)。1min后α链就开始降解,5min后α链和β链都完全降解,2h后γ链降解完毕,这一降解顺序与人纤溶酶降解纤维蛋白原的情况相同。

Claims (3)

1.一种蛹虫草纤溶酶,该蛹虫草纤溶酶以保藏号为CGMCC NO.2577,分类学命名为Cordyceps militaris的蛹虫草菌株C.LSG-1为培养菌种,经发酵、分离和提纯制成;其相对分子量为28000,等电点9.3±0.2;该酶可以直接降解血纤维蛋白,且具有激活纤溶酶原转化成纤溶酶共同参与溶栓的作用;最适作用温度37℃,最适pH为7.2;能顺次降解人血纤维蛋白α、β和γ链;三个肽段序列分别为:N-T-T-Y-F-Q-P-V-N-R;L-L-Q-T-Y-G-L-T-L-V-G-R;A-T-V-Q-G-G-D-A-Y-V-L-N-N-Q-F-R,Edman降解法测得N端十五个氨基酸序列为:I-V-G-G-V-S-V-L-I-E-D-F-P-Y-Q。
2.使用如权利要求1所述蛹虫草发酵制备纤溶酶方法,是以微生物蛹虫草菌株C.LSG-1为菌种,经摇瓶发酵培养产生纤溶酶,将发酵物滤去菌体和固形物,收集滤过液,用20%W/V饱和度硫酸铵盐析,得到粗酶液,再采用现代色谱分离技术进行纯化。
3.一种如权利要求2所述蛹虫草纤溶酶的培制方法,所述的粗酶液纯化方法如下:
a、Sephadex G-25凝胶过滤层析,使用pH6.0磷酸盐缓冲液洗脱,收集有纤溶活性组分;
b、SP-Sephar离子交换层析,使用含0~0.8mol/L NaCl的pH6.0的磷酸盐缓冲溶液梯洗,收集有纤溶活性组分;
c、Phenyl-Sepharose HP疏水相互作用层析,将样品盐饱和度调到40%,上样后用40~0%W/V硫酸铵溶液梯度洗脱,收集有纤溶活性组分;
d、Sephadex 75凝胶过滤层析:用pH7.4磷酸盐缓冲液洗脱,洗脱液含0.3mol/LNaCl,收集有纤溶活性组分。
CN2010102044735A 2009-12-04 2010-06-04 一种蛹虫草纤溶酶及其培制方法 Active CN101962637B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN2010102044735A CN101962637B (zh) 2009-12-04 2010-06-04 一种蛹虫草纤溶酶及其培制方法

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN200910073373.0 2009-12-04
CN200910073373 2009-12-04
CN2010102044735A CN101962637B (zh) 2009-12-04 2010-06-04 一种蛹虫草纤溶酶及其培制方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN101962637A true CN101962637A (zh) 2011-02-02
CN101962637B CN101962637B (zh) 2012-11-28

Family

ID=43515692

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN2010102044735A Active CN101962637B (zh) 2009-12-04 2010-06-04 一种蛹虫草纤溶酶及其培制方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN101962637B (zh)

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103333874A (zh) * 2013-05-02 2013-10-02 齐齐哈尔大学 一种放线菌纤溶酶及其制备方法
WO2013155862A1 (zh) * 2012-04-16 2013-10-24 济南亿安生物研究所 一种利用蛹虫草液体发酵生产纤溶酶的方法
CN105219754A (zh) * 2015-09-30 2016-01-06 齐齐哈尔大学 一种放线菌纤溶酶的制备方法
CN105400761B (zh) * 2015-10-21 2019-02-15 山东睿鹰先锋制药有限公司 一种低分子量纤溶酶及其制备方法和应用
CN110616151A (zh) * 2019-09-18 2019-12-27 华中农业大学 一种分离的冬虫夏草菌及其在生产纤溶酶中的应用
CN113025600A (zh) * 2021-05-08 2021-06-25 北京工商大学 一种纤维蛋白溶解酶及其制备方法和应用

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1174889A (zh) * 1997-06-16 1998-03-04 中国医学科学院医药生物技术研究所 一种链霉菌产生的新型纤溶酶
CN1260394A (zh) * 1999-10-21 2000-07-19 中国医学科学院医药生物技术研究所 新型纤溶酶cgw-3及其制备方法
CN1563370A (zh) * 2004-03-25 2005-01-12 南京大学 轮枝菌纤溶酶及其制法和用途
CN101503682A (zh) * 2008-11-12 2009-08-12 齐齐哈尔大学 一种真菌纤溶酶及其培制方法

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1174889A (zh) * 1997-06-16 1998-03-04 中国医学科学院医药生物技术研究所 一种链霉菌产生的新型纤溶酶
CN1260394A (zh) * 1999-10-21 2000-07-19 中国医学科学院医药生物技术研究所 新型纤溶酶cgw-3及其制备方法
CN1563370A (zh) * 2004-03-25 2005-01-12 南京大学 轮枝菌纤溶酶及其制法和用途
CN101503682A (zh) * 2008-11-12 2009-08-12 齐齐哈尔大学 一种真菌纤溶酶及其培制方法

Cited By (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2013155862A1 (zh) * 2012-04-16 2013-10-24 济南亿安生物研究所 一种利用蛹虫草液体发酵生产纤溶酶的方法
CN103333874A (zh) * 2013-05-02 2013-10-02 齐齐哈尔大学 一种放线菌纤溶酶及其制备方法
CN105219754A (zh) * 2015-09-30 2016-01-06 齐齐哈尔大学 一种放线菌纤溶酶的制备方法
CN105400761B (zh) * 2015-10-21 2019-02-15 山东睿鹰先锋制药有限公司 一种低分子量纤溶酶及其制备方法和应用
CN110616151A (zh) * 2019-09-18 2019-12-27 华中农业大学 一种分离的冬虫夏草菌及其在生产纤溶酶中的应用
CN110616151B (zh) * 2019-09-18 2020-12-22 华中农业大学 一种分离的冬虫夏草菌及其在生产纤溶酶中的应用
CN113025600A (zh) * 2021-05-08 2021-06-25 北京工商大学 一种纤维蛋白溶解酶及其制备方法和应用
CN113025600B (zh) * 2021-05-08 2021-09-28 北京工商大学 一种纤维蛋白溶解酶及其制备方法和应用

Also Published As

Publication number Publication date
CN101962637B (zh) 2012-11-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN101503682B (zh) 一种真菌纤溶酶及其培制方法
CN101962637B (zh) 一种蛹虫草纤溶酶及其培制方法
ES2643554T3 (es) Proceso y sistema para obtener neurotoxina botulínica
CN101671703A (zh) 一种提高ε-聚-L-赖氨酸产量的新方法
CN104911169A (zh) 一种培制蛹虫草菌丝体和纤溶酶的方法
CN101134951B (zh) 一种纤溶酶的培制方法
Meshram et al. Potential fibrinolytic activity of an endophytic Lasiodiplodia pseudotheobromae species
CN113106138A (zh) 一种从香菇中提取分离抗肿瘤活性蛋白的制备方法
JPH06217769A (ja) 糖分解酵素の製造法
US3475276A (en) Method of producing uricase from yeast
Afifi et al. Purification and characterization of a pectin lyase produced by Curvularia inaequalis NRRL 13884 on orange peels waste, solid state culture
CN114250216B (zh) 一种纳豆激酶的分离纯化方法
US20210062175A1 (en) Fibrinolytic enzyme from agrocybe aegerita and a preparation method thereof
CN103333874A (zh) 一种放线菌纤溶酶及其制备方法
CN103865865B (zh) 一种海参肠道产碱性蛋白酶菌株及其应用
Thuy et al. Deproteinization in purification of exopolysaccharide from Ophiocordyceps sinensis olive oil-stimulated culture.
JP3227430B2 (ja) エリンギ菌糸体エキスの製造方法
Gupta et al. Microbial clot busters: an overview of source, production, properties and fibrinolytic activity
CN101701191B (zh) 好食脉孢霉及由该好食脉孢霉培制纤溶酶的方法
CN105219754A (zh) 一种放线菌纤溶酶的制备方法
CN102229890B (zh) 一种复合蛋白酶及其制备方法和用途
CN1587399A (zh) 一种华根霉生产新型纤溶酶及其方法
CN113736684B (zh) 一种利用西洋参内生菌发酵制备溶栓酶的方法
CN117343132B (zh) 一种三文鱼鱼皮来源的ace抑制肽及制备方法
JPH0198485A (ja) 微生物による−α−N−アセチルガラクトサミニダーゼの製造法

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C14 Grant of patent or utility model
GR01 Patent grant