CN101831485B - 食品中大肠菌群的快速检测方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开一种食品中大肠菌群的快速检测方法,包括如下步骤:1)对样品进行菌体分离富集,去除干扰物;2)将分离的菌体悬浮于增菌增酶培养液中,在39℃~42℃下恒温培养6~7小时;3)在培养后的菌体悬液中加入发光检测试剂进行发光值检测,根据发光值判断大肠菌群数量;所述增菌增酶培养液包括以体积比100∶1混合的组分A、组分B,组分A为:每1000ml蒸馏水中含有胰蛋白胨0.5~2g,氯化钠2~5g,磷酸二氢钾6~8g,氢氧化钠1~2g,组分B为:每100mL蒸馏水中含有β-半乳糖苷酶诱导物0.05~0.2g,亚致死细菌快速修复物3~6g,细菌快速增长剂2~5g。本发明检测结果准确、检测速度快。
Description
技术领域
本发明涉及菌群的检测,特别涉及一种食品中大肠菌群的检测方法。
背景技术
在食品行业,大肠菌群的含量是一项重要的卫生指标。目前传统国家标准方法(GB)采用9管发酵,48-72小时才可以出结果,存在滞后现象,检测效率低。改进后的方法如:荧光方法(SN)、显色培养基方法、膜过滤方法,这几种方法需要24-48小时可以出结果,仍不能达到快速检测的目的。另外,免疫学方法,虽然8小时可以出结果,但检出限有限,同时检测成本高,一旦菌体发生变异,检测结果就不准确;分子生物学方法,虽然12小时可以出结果,明显提高了检测灵敏度,但是该方法检测成本较贵、操作繁杂、对操作员的技术要求高,不利于推广。
因此,开发适宜生产需要、操作简单的快速大肠菌群检测方法十分必要。在所有方法中利用β-半乳糖苷酶作为标记物检测大肠菌具有较好的应用潜力。可以保证建立的快速检测方法具有操作简单、低成本等优点,同时该方法也存在很大的挑战,如何达到国家标准方法的检出限,如何降低检出所消耗的时间,提高检出速率等。
发明内容
本发明的目的在于,提供一种食品中大肠菌群的快速检测方法,利用β-半乳糖苷酶作为标记物检测调味品中的大肠菌群,能以较高的检出速率达到国家标准方法的检出限。
为解决以上技术问题,本发明的技术方案是,一种食品中大肠菌群的快速检测方法,包括如下步骤:
1)对样品进行菌体分离富集,去除干扰物;
2)将分离的菌体悬浮于增菌增酶培养液中,在39℃~42℃下恒温培养6~7小时;
3)在培养后的菌体悬液中加入包含发光试剂底物、大肠菌群温和裂解液的发光检测试剂进行发光值检测,根据发光值判断大肠菌群数量;
所述增菌增酶培养液包括以体积比100∶1混合的组分A、组分B,组分A为:每1000ml蒸馏水中含有胰蛋白胨0.5~2g,氯化钠2~5g,磷酸二氢钾6~8g,氢氧化钠1~2g,组分B为:每100mL蒸馏水中含有β-半乳糖苷酶诱导物0.05~0.2g,亚致死细菌快速修复物3~6g,细菌快速增长剂2~5g。本技术方案中,通过步骤1)对样品进行前处理,使样品中的菌体分离富集,去除影响检测的干扰物;通过步骤2),对分离得到的菌体进行增菌增酶培养因此又加入一能有效诱导β-半乳糖苷酶表达的物质,使菌体快速增殖的同时,β-半乳糖苷酶也得到高效表达,从而提高检测速率。
其中,所述β-半乳糖苷酶诱导物为乳糖、异丙基硫代半乳糖苷或者半乳糖中的任一种。
其中,所述亚致死细菌快速修复物为甘油、葡萄糖、丙酮酸钠、抗坏血酸、维生素E中的任一种或多种。
其中,所述细菌快速增长剂为三磷酸腺苷、肌酐,肌苷或者牛血清提取物中的任一种或多种。
其中,组分A中还包括自由基清除剂1g~3g、十二烷基磺酸钠0.03g~0.06g。
其中,所述自由基清除剂为活性炭、可溶性淀粉、半胱氨酸、二苯胺、巯基乙醇或α-生育酚中的任一种。
其中,所述发光检测试剂包括发光试剂底物、发光增强剂、大肠菌温和裂解液。
其中,所述大肠菌温和裂解液为细胞膜破坏试剂,所述细胞膜破坏剂为EDTA、Nisin、Tween-80、硫酸粘菌素B、曲拉通、CATB中的任一种。
其中,所述发光试剂底物为AMPGD、铕试剂、荧光素-β-半乳糖苷中的任一种。
其中,所述发光增强剂为季铵盐高聚物。
其中,步骤1)中,所述菌体分离富集为:将样品利用无菌生理盐水稀释5~40倍,用真空过滤法滤过30μm聚丙烯滤膜,取滤后液过0.2-0.45μm混合醋酸纤维素滤膜,再利用20~50ml无菌生理盐水洗涤2-3次,菌体截留在混合醋酸纤维素滤膜上。
其中,组分A在121℃下灭菌15分钟后再与组分B混合。
其中,步骤3)中的发光值检测为:将50μl~100μl的增菌增酶培养后的菌体悬液与50~100μl发光检测试剂反应10~50分钟,利用发光光度计于530nm~590nm处检测发光值,将检样发光值与阴性对照样发光值比对。
本发明的食品中大肠菌群的快速检测方法具有如下优点:
本发明通过对样品进行菌体分离富集,去除干扰菌体生理状态、影响β-半乳糖苷酶与检测用酶底物反应的物质;通过高效增菌增酶培养液对菌体悬液在适当的培养条件下进行培育,使快速增菌的同时增加β-半乳糖苷酶的量;通过添加大肠菌群温和裂解液使β-半乳糖苷酶(胞内酶)释放到培养液中,提高酶的得率和活力,从而提高检出速率。本发明的检测方法检测速度快,8小时内即可准确检出大肠菌群存在与否,远快于国家标准方法(48-72小时),而且检测成本低廉,检测成本为3元/样品。
附图说明
图1是本发明食品中大肠菌群的快速检测方法的流程图。
具体实施方式
本发明的基本构思是,利用β-半乳糖苷酶作为标记物对调味品中的大肠菌群进行检测,对待侧样品先利用菌体分离富集技术收集菌体,去除干扰菌体生理状态、影响β-半乳糖苷酶与检测用酶底物反应的物质;以高效增菌增酶培养液对分离后的菌体进行培养,使菌体在快速增菌的同时增加β-半乳糖苷酶的量,提高检出速率和提高灵敏度。
参见图1,图1是本发明食品中大肠菌群的快速检测方法的流程图。
本发明的食品中大肠菌群分离富集方法包括如下步骤:
S1、对样品进行菌体分离富集;
此步骤中,利用菌体分离富集技术对样品进行菌体分离富集,使菌体从样品中分离出来,去除干扰菌体生理状态、影响β-半乳糖苷酶与检测用酶底物反应的物质。
S2、对分离后的菌体以增菌增酶培养液进行修复、增菌增酶培养;
在此步骤中,以增菌增酶培养液对分离富集得到的菌体进行培育,使菌体在快速增菌的同时增加β-半乳糖苷酶的量,具体步骤为:将截留细菌的膜用无菌镊子夹取,放入装有增菌增酶培养液的试管中,在39-42℃的恒温培养箱中培养6-7小时。其中,增菌增酶培养液组成与制备过程如下:
培养液组分A:胰蛋白胨0.5g,氯化钠2g,自由基清除剂1g,十二烷基磺酸钠0.03g,磷酸二氢钾6g,氢氧化钠1g,溶解于1000ml蒸馏水,取10ml分装到试管中,在121℃下灭菌15分钟,室温保存供使用。
培养液组分B:β-半乳糖苷酶诱导物0.05g,亚致死细菌快速修复物3g,细菌快速增长剂2g,溶于100mL蒸馏水,过滤除菌,取100μl到10ml培养液组分A中。
S3、对培育后的菌体加入发光检测试剂进行发光值检测;
在此步骤中,对培育后的菌体进行发光值检测。具体步骤为:取培养完毕的菌悬液,置于发光检测仪的检测孔中,加入发光检测试剂反应一段时间,而后在振荡器上摇匀振荡,进行发光检测,测定样品的发光值。
利用已知大肠菌群阴性样的发光值,计算6h检样发光值与阴性对照样发光值的比值T1,当比值T1少于或等于1.2(阀值A)时,判断为大肠菌群阴性,当比值T1大于1.2时,需进行培养7小时检测,计算7h检样发光值与阴性对照样发光值的比值T2,若T2与T1的比值K少于或等于1.1(阀值B),则判断为大肠菌群阴性,若T2与T1的比值K大于1.1,则判断为大肠菌群阳性,并与国标法进行比对。其中:阀值A、B的理论值应为1,但检测过程中发光值会有轻微的波动,故将阀值设为略高于1。其中阀值A为1.2、阀值B为1.1,是由大量检测数据经统计学分析得出。
下面,以具体实施例对本发明的食品中大肠菌群的快速检测方法进行说明。
实施例一
1、菌体分离富集
用电子天平移取10g黄豆酱样品(样品代号为1)到含有灭菌玻璃珠的90ml无菌生理盐水中,振荡摇匀,取该样品稀释液10ml过30μm聚丙烯滤膜,去除大颗粒酱渣,滤后液过0.25μm混合醋酸纤维素滤膜,用无菌生理盐水对截留在膜上的菌体反复冲洗三次,去除干扰菌体生理状态、影响β-半乳糖苷酶活性及检测反应体系的物质。
2、以增菌增酶培养液对菌体进行增菌增酶培养
将截留细菌的膜用无菌镊子夹取,放入装有10ml增菌增酶培养液的试管中,在40℃的恒温培养箱中培养6~7小时。其中,增菌增酶培养液组成与制备过程如下:
培养液组分A:胰蛋白胨1g,氯化钠3g,可溶性淀粉1g,十二烷基磺酸钠0.05g,磷酸二氢钾7g,氢氧化钠1g,溶解于1000ml蒸馏水,取10ml分装到试管中,在121℃下灭菌15分钟,室温保存供使用。
培养液组分B:异丙基硫代半乳糖苷0.05g,甘油3g,三磷酸腺苷2g,溶于100mL蒸馏水,过滤除菌,取100μl到10ml培养液组分A中。
3、检测过程
取孵育完毕的菌悬液100μl,置于发光检测仪96孔板中相应检测孔中,加入50μl发光检测试剂反应20分钟,在振荡器上摇匀振荡1分钟后,进行发光检测,发光检测的波长为560nm,检测积分时间为0.5秒,测定样品的发光值,6h检样发光值为2508。其中发光检测试剂包括AMPGD、聚合度为4000的季铵盐高聚物和EDTA混合试剂,AMPGD作为发光试剂底物,聚合度为4000的季铵盐高聚物作为发光增强剂,EDTA作为大肠菌温和裂解液。已知大肠菌群阴性样的发光值为2745,计算得出6h检样发光值与阴性对照样发光值的比值T1为0.91,T1少于1.2(阀值A),因此,可判断为大肠菌群阴性,与国标法进行比对,检测结果正确。检测结果参见表1。
实施例二
1、菌体分离富集
用电子天平移取10g蚝油样品(样品代号为2)到含有灭菌玻璃珠的90ml无菌生理盐水中,振荡摇匀,取该样品稀释液10ml过30μm聚丙烯滤膜,滤后液过0.25μm混合醋酸纤维素滤膜,用无菌生理盐水对截留在膜上的菌体反复冲洗二次。
2、以增菌增酶培养液对菌体进行增菌增酶培养
将截留细菌的膜用无菌镊子夹取,放入装有10ml增菌增酶培养液的试管中,在40℃的恒温培养箱中培养6~7小时。其中,增菌增酶培养液组成与制备过程如下:
培养液组分A:胰蛋白胨1.5g,氯化钠2g,二苯胺3g,十二烷基磺酸钠0.04g,磷酸二氢钾8g,氢氧化钠1g,溶解于1000ml蒸馏水,取10ml分装到试管中,在121℃下灭菌15分钟,室温保存供使用。
培养液组分B:半乳糖0.1g,丙酮酸钠4g,肌酐3g,溶于100mL蒸馏水,过滤除菌,取100μl到10ml培养液组分A中。
3、检测过程
取孵育完毕的菌悬液50μl,置于发光检测仪96孔板中相应检测孔中,加入50μl发光检测试剂反应20分钟,在振荡器上摇匀振荡1分钟后,进行发光检测,发光检测的波长为550nm,检测积分时间为0.5秒,测定样品的发光值,6h检样发光值为3330。其中发光检测试剂包括铕试剂、Nisin、聚合度为8000的季铵盐高聚物,铕试剂作为发光试剂底物、Nisin作为大肠菌温和裂解液、聚合度为8000的季铵盐高聚物作为发光增强剂。已知大肠菌群阴性样的发光值为2745,计算得出6h检样发光值与阴性对照样发光值的比值T1为1.21,T1大于1.2(阀值A),需进行培养7小时检测,7h检样发光值为3480,计算得出7h检样发光值与阴性对照样发光值的比值T2为1.20,T2与T1的比值K为0.99,少于1.1(阀值B),因此,可判断为大肠菌群阴性,与国标法进行比对,检测结果正确。检测结果参见表1。
实施例三
1、菌体分离富集
用电子天平移取10g蚝油样品(样品代号为3)到含有灭菌玻璃珠的90ml无菌生理盐水中,振荡摇匀,取该样品稀释液10ml过30μm聚丙烯滤膜,滤后液过0.4μm混合醋酸纤维素滤膜,用无菌生理盐水对截留在膜上的菌体反复冲洗二次。
2、以增菌增酶培养液对菌体进行增菌增酶培养
将截留细菌的膜用无菌镊子夹取,放入装有10ml增菌增酶培养液的试管中,在42℃的恒温培养箱中培养6~7小时。其中,增菌增酶培养液组成与制备过程如下:
培养液组分A:胰蛋白胨0.5g,氯化钠2g,活性炭3g,十二烷基磺酸钠0.045g,磷酸二氢钾6g,氢氧化钠1.5g,溶解于1000ml蒸馏水,取10ml分装到试管中,121℃灭菌15分钟,室温保存供使用;
培养液组分B:乳糖0.15g,抗坏血酸4g,肌酐3g,溶于100mL蒸馏水,过滤除菌,取100μl到10ml组分A培养液中。
3、检测过程
取孵育完毕的菌悬液80μl,置于发光检测仪96孔板中相应检测孔中,加入包含80μl铕试剂、聚合度为9000的季铵盐高聚物和Tween-80的发光检测试剂反应40分钟,在振荡器上摇匀振荡1分钟后,进行发光检测,发光检测的波长为570nm,检测积分时间为0.5秒,测定样品的发光值,6h检样发光值为6884。已知大肠菌群阴性样的发光值为2745,计算得出6h检样发光值与阴性对照样发光值的比值T1为2.51,T1大于1.2(阀值A),需进行培养7小时检测,7h检样发光值为11454,计算得出7h检样发光值与阴性对照样发光值的比值T2为3.94,T2与T1的比值K为1.57,大于1.1(阀值B),因此,可判断为大肠菌群阳性,与国标法进行比对,检测结果正确。检测结果参见表1。
实施例四
1、菌体分离富集
用电子天平移取10g蚝油样品(样品代号为4)到含有灭菌玻璃珠的90ml无菌生理盐水中,振荡摇匀,取该样品稀释液10ml过30μm聚丙烯滤膜,滤后液过0.35μm混合醋酸纤维素滤膜,用无菌生理盐水对截留在膜上的菌体反复冲洗二次。
2、以增菌增酶培养液对菌体进行增菌增酶培养
将截留细菌的膜用无菌镊子夹取,放入装有10ml增菌增酶培养液的试管中,在42℃的恒温培养箱中培养6~7小时。其中,增菌增酶培养液组成与制备过程如下:
培养液组分A:胰蛋白胨2g,氯化钠2g,半胱氨酸3g,十二烷基磺酸钠0.06g,磷酸二氢钾7g,氢氧化钠2g,溶解于1000ml蒸馏水,取10ml分装到试管中,121℃灭菌15分钟,室温保存供使用;
培养液组分B:乳糖0.15g,维生素E5g,牛血清3g,溶于100mL蒸馏水,过滤除菌,取100μl到10ml组分A培养液中。
3、检测过程
取孵育完毕的菌悬液70μl,置于发光检测仪96孔板中相应检测孔中,加入100μl包含荧光素-β-半乳糖苷、聚合度为10000的季铵盐高聚物和硫酸粘菌素B的发光检测试剂反应50分钟,在振荡器上摇匀振荡1分钟后,发光检测的波长为580nm,检测积分时间为0.5秒,测定样品的发光值,6h检样发光值为4255。已知大肠菌群阴性样的发光值为2745,计算得出6h检样发光值与阴性对照样发光值的比值T1为1.55,T1大于1.2(阀值A),需进行培养7小时检测,7h检样发光值为5243,计算得出7h检样发光值与阴性对照样发光值的比值T2为1.80,T2与T1的比值K为1.16,大于1.1(阀值B),因此,可判断为大肠菌群阳性,与国标法进行比对,检测结果正确。检测结果参见表1。
实施例五
1、菌体分离富集
用电子天平移取10g蚝油样品(样品代号为5)到含有灭菌玻璃珠的90ml无菌生理盐水中,振荡摇匀,取该样品稀释液10ml过30μm聚丙烯滤膜,滤后液过0.3μm混合醋酸纤维素滤膜,用无菌生理盐水对截留在膜上的菌体反复冲洗三次。
2、以增菌增酶培养液对菌体进行增菌增酶培养
将截留细菌的膜用无菌镊子夹取,放入装有10ml增菌增酶培养液的试管中,在40℃的恒温培养箱中培养6~7小时。其中,增菌增酶培养液组成与制备过程如下:
培养液组分A:胰蛋白胨0.8g,氯化钠4g,α-生育酚2g,十二烷基磺酸钠0.06g,磷酸二氢钾6g,氢氧化钠1g,溶解于1000ml蒸馏水,取10ml分装到试管中,121℃灭菌15分钟,室温保存供使用;
培养液组分B:异丙基硫代半乳糖苷0.2g,葡萄糖4g,三磷酸腺苷4g,溶于100mL蒸馏水,过滤除菌,取100μl到10ml组分A培养液中。
3、检测过程
取孵育完毕的菌悬液80μl,置于发光检测仪96孔板中相应检测孔中,加入100μl包含铕试剂、聚合度为12000的季铵盐高聚物和曲拉通的发光检测试剂反应45分钟,在振荡器上摇匀振荡1分钟后,发光检测的波长为590nm,检测积分时间为0.5秒,测定样品的发光值,6h检样发光值为2526。已知大肠菌群阴性样的发光值为2745,计算得出6h检样发光值与阴性对照样发光值的比值T1为0.92,T1小于1.2(阀值A),因此,可判断为大肠菌群阴性,与国标法进行比对,检测结果正确。检测结果参见表1。
实施例六
1、菌体分离富集
用电子天平移取10g蚝油样品(样品代号为6)到含有灭菌玻璃珠的90ml无菌生理盐水中,振荡摇匀,取该样品稀释液10ml过30μm聚丙烯滤膜,滤后液过0.45μm混合醋酸纤维素滤膜,用无菌生理盐水对截留在膜上的菌体反复冲洗二次。
2、以增菌增酶培养液对菌体进行增菌增酶培养
将截留细菌的膜用无菌镊子夹取,放入装有10ml增菌增酶培养液的试管中,在42℃的恒温培养箱中培养6~7小时。其中,增菌增酶培养液组成与制备过程如下:
培养液组分A:胰蛋白胨1.8g,氯化钠2g,巯基乙醇2g,十二烷基磺酸钠0.08g,磷酸二氢钾7g,氢氧化钠1.5g,溶解于1000ml蒸馏水,取10ml分装到试管中,121℃灭菌15分钟,室温保存供使用;
培养液组分B:乳糖0.2g,丙酮酸钠6g,肌苷5g,溶于100mL蒸馏水,过滤除菌,取100μl到10ml组分A培养液中。
3、检测过程
取孵育完毕的菌悬液90μl,置于发光检测仪96孔板中相应检测孔中,加入100μl包含荧光素-β-半乳糖苷、聚合度为11000的季铵盐高聚物和CATB的发光检测试剂反应25分钟,在振荡器上摇匀振荡1分钟后,发光检测的波长为590nm,检测积分时间为0.5秒,测定样品的发光值,6h检样发光值为15201。
已知大肠菌群阴性样的发光值为2745,计算得出6h检样发光值与阴性对照样发光值的比值T1为5.54,T1大于1.2(阀值A),需进行培养7小时检测,7h检样发光值为28201,计算得出7h检样发光值与阴性对照样发光值的比值T2为9.70,T2与T1的比值K为1.75,大于1.1(阀值B),因此,可判断为大肠菌群阳性,与国标法进行比对,检测结果正确。检测结果参见表1。
表1实施例一~实施例六的大肠菌群检测结果与国标法检测结果对照表
样品代号 | 6h发光值 | T1 | 7h发光值 | T2 | K | 结果1 | 结果2(MPN/100g) | 比对 |
1 | 2508 | 0.91 | - | - | - | 阴性 | <30 | 正确 |
2 | 3330 | 1.21 | 3480 | 1.20 | 0.99 | 阴性 | <30 | 正确 |
3 | 6884 | 2.51 | 11454 | 3.94 | 1.57 | 阳性 | 230 | 正确 |
4 | 4255 | 1.55 | 5243 | 1.80 | 1.16 | 阳性 | 90 | 正确 |
5 | 2526 | 0.92 | - | - | - | 阴性 | <30 | 正确 |
6 | 15201 | 5.54 | 28201 | 9.70 | 1.75 | 阳性 | 2400 | 正确 |
阴性对照样 | 2745 | 2907 | <30 |
注:表1中,结果1代表本发明方法实施例一到实施例六的检测结果;结果2代表采用国家标准检测法对实施例一到六的样品进行检测的结果。
从以上实施例可以得出,本发明的检测方法,检测结果准确,检测速度快。
以上仅是本发明的优选实施方式,应当指出的是,上述优选实施方式不应视为对本发明的限制,本发明的保护范围应当以权利要求所限定的范围为准。对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明的精神和范围内,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
Claims (5)
1.一种食品中大肠菌群的快速检测方法,其特征在于,包括如下步骤:
1)对样品进行菌体分离富集,去除干扰物;
2)将分离的菌体悬浮于增菌增酶培养液中,在39℃~42℃下恒温培养6~7小时;
3)在培养后的菌体悬液中加入发光检测试剂进行发光值检测,根据发光值判断大肠菌群数量;
所述增菌增酶培养液包括以体积比100:1混合的组分A、组分B,组分A为:每1000ml蒸馏水中含有胰蛋白胨0.5~2g,氯化钠2~5g,磷酸二氢钾6~8g,氢氧化钠1~2g,组分B为:每100mL蒸馏水中含有β-半乳糖苷酶诱导物0.05~0.2g,亚致死细菌快速修复物3~6g,细菌快速增长剂2~5g;
组分A中每1000ml蒸馏水中还含有自由基清除剂1g~3g、十二烷基磺酸钠0.03g~0.06g;
所述发光检测试剂包括发光试剂底物、发光增强剂、大肠菌温和裂解液;
所述大肠菌温和裂解液为细胞膜破坏试剂,所述细胞膜破坏剂为硫酸粘菌素B;
所述β-半乳糖苷酶诱导物为乳糖、异丙基硫代半乳糖苷或者半乳糖中的任一种;
所述亚致死细菌快速修复物为甘油、葡萄糖、丙酮酸钠、抗坏血酸、维生素E中的任一种或多种;
所述细菌快速增长剂为三磷酸腺苷、肌酐,肌苷或者牛血清提取物中的任一种或多种;
所述自由基清除剂为活性炭、可溶性淀粉、半胱氨酸、二苯胺、巯基乙醇或α-生育酚中的任一种;
步骤1)中,所述菌体分离富集为:将样品利用无菌生理盐水稀释5~40倍,用真空过滤法滤过30μm聚丙烯滤膜,取滤后液过0.2-0.45μm混合醋酸纤维素滤膜,再利用20~50ml无菌生理盐水洗涤2-3次,菌体截留在混合醋酸纤维素滤膜上。
2.如权利要求1的食品中大肠菌群的快速检测方法,其特征在于,所述发光试剂底物为AMPGD、铕试剂、荧光素-β-半乳糖苷中的任一种。
3.如权利要求1的食品中大肠菌群的快速检测方法,其特征在于,所述发光增强剂为季铵盐高聚物。
4.如权利要求1的食品中大肠菌群的快速检测方法,其特征在于,组分A在121℃下灭菌15分钟后再与组分B混合。
5.如权利要求1的食品中大肠菌群的快速检测方法,其特征在于,步骤3)中的发光值检测为:将50μl~100μl的增菌增酶培养后的菌体悬液与50~100μl发光检测试剂反应10~50分钟,利用发光光度计于530nm~590nm处检测发光值,将检样发光值与阴性对照样发光值比对。
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