CN101857904B - 大豆检疫性病毒病害多重实时荧光pcr检测方法及试剂盒 - Google Patents
大豆检疫性病毒病害多重实时荧光pcr检测方法及试剂盒 Download PDFInfo
- Publication number
- CN101857904B CN101857904B CN 200910106536 CN200910106536A CN101857904B CN 101857904 B CN101857904 B CN 101857904B CN 200910106536 CN200910106536 CN 200910106536 CN 200910106536 A CN200910106536 A CN 200910106536A CN 101857904 B CN101857904 B CN 101857904B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- seq
- oligonucleotide probe
- primer
- detection
- mosaic virus
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明涉及一种同时检测烟草环斑病毒、南方菜豆花叶病毒、番茄环斑病毒、南芥菜花叶病毒四种中一种或多种大豆病毒病害的简单、快速、特异、灵敏的实时荧光PCR检测方法及其试剂盒。所述实时荧光PCR检测方法使用SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4、SEQID NO:5、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:7、SEQ ID NO:8中的引物序列和SEQID NO:9、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12中的寡核苷酸探针。本发明的实时荧光PCR检测方法及其试剂盒适合于口岸检验检疫、农业生产、植物保护等部门使用。
Description
技术领域
本发明涉及一种同时检测烟草环斑病毒、南方菜豆花叶病毒、番茄环斑病毒、南芥菜花叶病毒四种中一种或多种大豆病毒病害的简单、快速、特异、灵敏的实时荧光PCR检测方法及其试剂盒。适合于口岸检验检疫、农业生产、植物保护等部门使用。
背景技术
大豆(Glycine max)是我国重要的油料作物和粮食作物,也是世界上食用油和植物蛋白的主要来源,在我国国民经济中占有重要地位。目前我国大豆产量居世界第四位,但仍然不能满足国内植物油及饲料蛋白加工的需要。随着我国进口大豆的数量逐年递增,各种危害大豆生产的病害传入的风险也逐渐增大。其中本发明涉及的四种大豆病毒病害是目前严重影响大豆生产及贸易的病毒病害,具有重要的检疫重要性和经济重要性。
烟草环斑病毒(Tobacco Ringspot Virus,简称TRSV)是豇豆花叶病毒科(Comoviridae),线虫传多面体病毒属(Nepovirus)的成员。其寄主范围很广,能够侵染包括豆类、瓜类、薯类、花卉和果树等在内的54科300余种植物,并引起重大经济损失。TRSV可经汁液摩擦接种、介体及种子传播。其症状变化多样,常有隐症现象等,给常规诊断带来困难,甚至出现漏检。该病毒分布于美国、加拿大、巴西、阿根廷等的30多个国家,中国仅山东、宁夏和陕西有发生报道。
南芥菜花叶病毒(Arabis mosaic virus,简称ArMV)是豇豆花叶病毒科(Comoviridae),线虫传多面体病毒属(Nepovirus)成员。ArMV寄主范围广泛,可侵染174属215种植物,自然侵染并危害多种瓜类、豆类、花卉和果树,引起花叶、黄化褪绿、矮化、皱缩甚至坏死等症状。可以通过种子及鳞球、块茎及苗木等无性繁殖材料远距离传播。目主要分布在美国、加拿大、澳大利亚、荷兰、比利时、新西兰、南非、日本等20多个国家,中国尚未有发生的报道。
番茄环斑病毒(Tomato ringspot virus,简称ToRSV)是豇豆花叶病毒科(Comoviridae),线虫传多面体病毒属(Nepovirus)的成员。1936年Price等首次报道在美国新泽西州发现ToRSV。该病毒寄主范围广泛,能侵染105个属157种单、双子叶植物,常见的自然寄主有番茄、烟草、大豆、葡萄、苹果等具有重要经济价值的作物和果树,造成严重的经济损失。ToRSV在不同寄主上表现症状不同,但一般都引起植株矮化、叶片斑点、果实畸形。ToRSV有多种传播方式,在田间通过介体剑线虫等昆虫和嫁接传播,而远距离传播主要是靠种子、苗木调运。目前在美国、巴西、加拿大、澳大利 亚等30多个国家有分布,中国尚无发生报道。
南芥菜花叶病毒(Southern bean mosaic virus,简称SBMV)属于南芥菜花叶病毒属成员,侵染能力强,适应性广。1942年Zawmey和Harter首先报道。该病毒自然状况下可引起菜豆、大豆、豇豆和黑绿豆的花叶、斑驳病害,导致花、果、种子数量下降,产量降低。该病毒传播途径多样,汁液和种子均能传毒。主要包括SBMV-B和SBMV-C两个株系,前者能侵染菜豆的大多数品种,后者只能侵染豇豆。该病毒一直引起世界各国的高度重视。分布在美国、巴西、墨西哥、法国、印度等国家,中国仅贵州有分布。
目前对上述四种病毒都存在多种检测方法,但各个病毒采用不同的体系,不利于高通量检测工作的进行。并且在对同一种病毒检测中,不同的检测体系之间存在的误差严重影响检测的准确性和可靠性。此外,在国内外大豆上重要病毒病害检测中还没有实现了多种病毒的同时检测。随着我国对进口大豆需求的增加,各种大豆病害传入的风险也不断增加,对我国的大豆生产构成巨大的潜在威胁。因此,在口岸检疫部门采用简单、快速、特异、灵敏的检测方法对其中具有严重影响的病害进行检测,对保护我国大豆生产,防止其重要检疫性病原的传入具有重大意义。
发明内容
本发明的目的在于提出快速、可靠、灵敏度高、特异性强和价格便宜的检测烟草环斑病毒、南方菜豆花叶病毒、番茄环斑病毒、南芥菜花叶病毒四种大豆病毒重要病害的引物、寡核苷酸探针、试剂盒及多重实时荧光PCR检测方法。
为实现上述目的,本发明提供了以下技术方案:
本发明提供了一种用于大豆病毒病害实时荧光PCR检测的引物和寡核苷酸探针,至少包括选自表1两组以上病毒的一对引物和对应的寡核苷酸探针。
表1 多重实时荧光PCR检测各种大豆病毒病害对应各组的引物和寡核苷酸探针一览表
上表中探针5’和3’端标记的MAR、URA、JUP、SAT为荧光自淬灭基团,即其5’和3’标记的是同一基团,通过寡核酸连接进行荧光谐振能量传递。在扩增反应中,由于扩增酶的5’外切酶作用将与模板匹配的探针切割,使两个基团分开;在一定激发光条件下,荧光基团发出自身波长的光子。不同的荧光信号标记类型其需要的激发光条件不同,能够被收集到的荧光信号也有所不同,从而实现多重检测。
本发明又提供了一种用于大豆病毒病害实时荧光PCR检测的试剂盒,至少包括根据表1所述的两组以上的病毒的一对引物和对应的寡核苷酸探针。
本发明再提供了一种大豆病毒病害实时荧光PCR检测方法采用的技术方案,包括如下步骤:
步骤一:设计检测选自烟草环斑病毒、南方菜豆花叶病毒、番茄环斑病毒、南芥菜花叶病毒中两种以上病毒的引物和寡核苷酸探针;
步骤二:将步骤一中设计的两种以上病毒的引物和寡核苷酸探针同时进行实时荧光PCR反应,并优化出合适的反应体系和反应条件;
步骤三:根据荧光信号类型判定检测样品的病毒。
采用上述技术方案,本发明突出的技术进步在于:(1)设计出了同时检测大豆上四种重要病毒病害的多重实时荧光PCR快速检测的引物、寡核苷酸探针和试剂盒,克服了现有的分子检测方法操作复杂或检测灵敏度不高、或特异性不强、或重复性不好等缺点。(2)本发明的多重实时荧光PCR检测方法能同时检测大豆上的四种重要病毒病害,在国内外大豆检疫性病毒病害的检测中尚属先例。(3)本发明适合大豆上四种重要病毒病害的多重检测。(4)由于本发明检测快速、特异性强,特别适用于口岸检疫等时效性要求特别强的场合使用。
综上所述,采用本发明,能对实际检疫和田间调查过程中所发现的病组织进行烟草环斑病毒、南方菜豆花叶病毒、番茄环斑病毒以及南芥菜花叶病毒四种病毒进行分子生物学鉴定或检测,其意义重大。
附图说明
图1四重实时荧光PCR特异性检测结果。
1为烟草环斑病毒TRSV组特异扩增结果;2为南方菜豆花叶病毒SBMV组特异扩增结果;3为番茄环斑病毒ToRSV组特异扩增结果;8为南芥菜花叶病毒ArMV组特异扩增结果
具体实施方式
下面通过具体的实施例并对本发明作进一步详细的描述。
实例1 大豆上四种重要病毒病害多重实时荧光PCR检测及试剂盒
一种用于大豆上四种重要病毒病害检测的多重实时荧光PCR检测的引物、寡核苷酸探针及试剂盒,用于大豆上四种重要病毒病害的特异性检测。
先对烟草环斑病毒、南方菜豆花叶病毒、番茄环斑病毒、南芥菜花叶病毒四种病毒其近似种属的外壳蛋白(Coat Protein简称CP)基因序列进行测序、比对分析,分别找出四种病毒不同于其它病原菌及近似种的独有的碱基位点。
设计出的用于大豆病毒病害实时荧光PCR检测的引物具有如下的核酸序列:
TRSV-ZFP | 5’-AACTGCCTACCAAGGTTTTCAT-3’ |
TRSV-ZRP | 5’-TCCCCATAGTTGAACTGCCA-3’ |
SBMV-1F | 5’-TGGTCCTTCGACGCAGTCT-3’ |
SBMV-1R | 5’-TGGCTTTCTCGTTGATTTCC-3’ |
ToRSV-2-FP | 5’-TTGGCAAAGGAGTGGAGGAA-3’ |
[0030]
ToRSV-2-RP | 5’-TCCACAGGTATACGGGCTTCA-3’ |
ARMV-1-FP1 | 5’-AGGCCACTGGCATGGATG-3’ |
ARMV-1-RP1 | 5’-CGCATCCCATGTTTTGCA-3’ |
设计出的用于大豆病毒病害实时荧光PCR检测的寡核苷酸探针具有如下的核酸序列:
TRSV-ZP | 5’-MAR-AGATGCAGATGTGCATGA-MAR-3’ |
SBMV-1Q | 5’-URA-AGTCTGCAAGAAGGCGCA-URA-3’ |
ToRSV-2-Q | 5’-JUP-CAGCCACTGCTTGGT-JUP-3’ |
ARMV-1-1Q | 5’-SAT-CGTCCCGTGTCTGTGCT-SAT-3’ |
应用上述引物和寡核苷酸探针可制成用于大豆上四种重要病毒病害多重实时荧光PCR检测的试剂盒。
实施例2 利用四重实时荧光PCR检测方法对从寄主中提取的四种病毒RNA进行检测
所用引物和寡核苷酸探针是实施例1中的引物和寡核苷酸探针。
反转录PCR扩增(RT-PCR)体系总体积为10μL,各成分为:RT buffer 5μL(TOYOBO公司),5μM引物对0.5μL,Enzyme mix 0.5μL。
反应条件:37℃温浴15min。
四重实时荧光PCR检测反应见表2。
其检测反应条件见表3。
表2 四重实时荧光PCR检测反应体系(20ul)
表3 检测反应条件
以四种病毒RT-PCR产物为阳性对照,以其它近似种属病毒RT-PCR产物为阴性对照,并设置水空白对照。按照表1提供的探针标记信息对实时荧光PCR进行相应荧光收集设置。
实时荧光PCR检测结果为:定量PCR仪检测到阳性对照报告荧光有明显信号增长,阴性对照和空白对照的报告荧光没有荧光信号增长,而检测样品的报告荧光信号有明显增长,则根据检测样品的荧光信号类型判定检测样品属于哪种病毒(见图1)。
采用本发明的方法能同时检测大豆上的四种病毒病害比以前的检测方法更加快速、准确,且易于推广应用。
以上内容是结合具体的优选实施方式对本发明所作的进一步详细说明,不能认定本发明的具体实施只局限于这些说明。对于本发明所属技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明构思的前提下,还可以做出若干简单推演或替换,都应当视为属于本发明的保护范围。
序列表
<110>深圳出入境检验检疫局动植物检验检疫技术中心
<120>大豆检疫性病毒病害多重实时荧光PCR检测方法及试剂盒
<140>2009101065360
<160>12
<210>1
<211>22
<212>DNA
<213>artifical sequence
<214>人工序列
<400>1
aactgcctac caaggttttc at 22
<210>2
<211>20
<212>DNA
<213>artifical sequence
<214>人工序列
<400>2
tccccatagt tgaactgcca 20
<210>3
<211>19
<212>DNA
<213>artifical sequence
<214>人工序列
<400>3
tggtccttcg acgcagtct 19
<210>4
<211>20
<212>DNA
<213>artifical sequence
<214>人工序列
<400>4
tggctttctc gttgatttcc 20
<210>5
<211>20
<212>DNA
<213>artifical sequence
<214>人工序列
<400>5
ttggcaaagg agtggaggaa 20
<210>6
<211>21
<212>DNA
<213>artifical sequence
<214>人工序列
<400>6
tccacaggta tacgggcttc a 21
<210>7
<211>18
<212>DNA
<213>artifical sequence
<214>人工序列
<400>7
aggccactgg catggatg 18
<210>8
<211>18
<212>DNA
<213>artifical sequence
<214>人工序列
<400>8
cgcatcccat gttttgca 18
<210>9
<211>18
<212>DNA
<213>artifical sequence
<214>人工序列
<400>9
agatgcagat gtgcatga 18
<210>10
<211>18
<212>DNA
<213>artifical sequence
<214>人工序列
<400>10
agtctgcaag aaggcgca 18
<210>11
<211>15
<212>DNA
<213>artifical sequence
<214>人工序列
<400>11
cagccactgc ttggt 15
<210>12
<211>17
<212>DNA
<213>artifical sequence
<214>人工序列
<400>12
cgtcccgtgt ctgtgct 17
Claims (4)
1.一种对大豆病毒病害实时荧光PCR检测的方法,包括如下步骤:
步骤一:设计检测选自烟草环斑病毒、南方菜豆花叶病毒、番茄环斑病毒、南芥菜花叶病毒中两种以上病毒的引物和寡核苷酸探针;
步骤二:将步骤一中设计的两种以上病毒的引物和寡核苷酸探针同时进行实时荧光PCR反应;
步骤三:根据荧光信号类型判定检测样品的病毒;
所述烟草环斑病毒的一对引物是:
TRSV-ZFP:5’-AACTGCCTACCAAGGTTTTCAT-3’SEQ ID NO:1
TRSV-ZRP:5’-TCCCCATAGTTGAACTGCCA-3’SEQ ID NO:2,
所述烟草环斑病毒的寡核苷酸探针是:
TRSV-ZP:5’-MAR-AGATGCAGATGTGCATGA-MAR-3’SEQ ID NO:9,
所述南方菜豆花叶病毒的一对引物是:
SBMV-1F:5’-TGGTCCTTCGACGCAGTCT-3’SEQ ID NO:3
SBMV-1R:5’-TGGCTTTCTCGTTGATTTCC-3’SEQ ID NO:4,
所述南方菜豆花叶病毒的寡核苷酸探针是:
SBMV-1Q:5’-URA-AGTCTGCAAGAAGGCGCA-URA-3’SEQ IDNO:10,
所述番茄环斑病毒的一对引物是:
ToRSV-2-FP:5’-TTGGCAAAGGAGTGGAGGAA-3’SEQ ID NO:5ToRSV-2-RP:5’-TCCACAGGTATACGGGCTTCA-3’SEQ ID NO:6,
所述番茄环斑病毒的寡核苷酸探针是:
ToRSV-2-Q:5’-JUP-CAGCCACTGCTTGGT-JUP-3’SEQ ID NO:11,
所述南芥菜花叶病毒的一对引物是:
ARMV-1-FP1:5’-AGGCCACTGGCATGGATG-3’SEQ ID NO:7
ARMV-1-RP1:5’-CGCATCCCATGTTTTGCA-3’SEQ ID NO:8,
所述南芥菜花叶病毒的寡核苷酸探针是:
ARMV-1-1Q:5’-SAT-CGTCCCGTGTCTGTGCT-SAT-3’SEQ IDNO:12。
2.根据权利要求1所述的大豆病毒病害实时荧光PCR检测方法,其步骤二中所述反应体系为:实时荧光反应混合液2×PCR Mix为10μL,5μM的TRSV组引物和寡核苷酸MIX为0.25μl,5μM的SBMV组引物和寡核苷酸MIX为2μl,5μM的ToRSV组引物和寡核苷酸MIX为2μl,5μM ArMV组引物和寡核苷酸MIX为2μl,待检样品RT-PCR产物为1μl,加双蒸水将总体系补至20μl体积。
3.一种用于大豆病毒病害实时荧光PCR检测的引物和寡核苷酸探针,至少包括选自如下两组以上病毒的一对引物和对应的寡核苷酸探针:
第一组:
一对用于检测烟草环斑病毒的引物:
TRSV-ZFP:5’-AACTGCCTACCAAGGTTTTCAT-3’SEQ ID NO:1
TRSV-ZRP:5’-TCCCCATAGTTGAACTGCCA-3’SEQ ID NO:2,
一条用于检测烟草环斑病毒的寡核苷酸探针:
TRSV-ZP:5’-MAR-AGATGCAGATGTGCATGA-MAR-3’SEQ ID NO:9,
第二组:
一对用于检测南方菜豆花叶病毒的引物:
SBMV-1F:5’-TGGTCCTTCGACGCAGTCT-3’SEQ ID NO:3
SBMV-1R:5’-TGGCTTTCTCGTTGATTTCC-3’SEQ ID NO:4,
一条用于检测南方菜豆花叶病毒的寡核苷酸探针:
SBMV-1Q:5’-URA-AGTCTGCAAGAAGGCGCA-URA-3’SEQ IDNO:10,
第三组:
一对用于检测番茄环斑病毒的引物:
ToRSV-2-FP:5’-TTGGCAAAGGAGTGGAGGAA-3’SEQ ID NO:5ToRSV-2-RP:5’-TCCACAGGTATACGGGCTTCA-3’SEQ ID NO:6,
一条用于检测番茄环斑病毒的寡核苷酸探针:
ToRSV-2-Q:5’-JUP-CAGCCACTGCTTGGT-JUP-3’SEQ ID NO:11,
第四组:
一对用于检测南芥菜花叶病毒的引物:
ARMV-1-FP1:5’-AGGCCACTGGCATGGATG-3’SEQ ID NO:7
ARMV-1-RP1:5’-CGCATCCCATGTTTTGCA-3’SEQ ID NO:8,
一条用于检测南芥菜花叶病毒的寡核苷酸探针:
ARMV-1-1Q:5’-SAT-CGTCCCGTGTCTGTGCT-SAT-3’SEQ IDNO:12。
4.一种用于大豆病毒病害实时荧光PCR检测的试剂盒,至少包括根据权利要求3所述的两组以上的病毒的一对引物和对应的寡核苷酸探针。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 200910106536 CN101857904B (zh) | 2009-04-10 | 2009-04-10 | 大豆检疫性病毒病害多重实时荧光pcr检测方法及试剂盒 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 200910106536 CN101857904B (zh) | 2009-04-10 | 2009-04-10 | 大豆检疫性病毒病害多重实时荧光pcr检测方法及试剂盒 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN101857904A CN101857904A (zh) | 2010-10-13 |
CN101857904B true CN101857904B (zh) | 2013-10-16 |
Family
ID=42944060
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN 200910106536 Expired - Fee Related CN101857904B (zh) | 2009-04-10 | 2009-04-10 | 大豆检疫性病毒病害多重实时荧光pcr检测方法及试剂盒 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN101857904B (zh) |
Families Citing this family (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102277450B (zh) * | 2011-08-16 | 2013-04-03 | 厦门出入境检验检疫局检验检疫技术中心 | 五种检疫性线虫传多面体病毒多重检测用引物及其应用 |
CN103088159B (zh) * | 2013-01-14 | 2015-03-04 | 宁波检验检疫科学技术研究院 | 南方菜豆花叶病毒的rt-lamp检测试剂盒及检测方法 |
CN103088161B (zh) * | 2013-01-14 | 2014-10-29 | 宁波检验检疫科学技术研究院 | 番茄环斑病毒的rt-lamp检测方法 |
CN112322794B (zh) * | 2020-12-04 | 2023-07-14 | 湛江海关技术中心 | 一种利用多重dpo-rt-pcr检测花生矮化病毒及番茄环斑病毒的试剂盒 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1952647A (zh) * | 2006-06-29 | 2007-04-25 | 上海交通大学 | Mgb探针多重荧光定量pcr检测大肠杆菌o157的方法 |
CN101260442B (zh) * | 2007-03-09 | 2010-09-29 | 中国农业科学院哈尔滨兽医研究所 | 检测猪圆环病毒、猪细小病毒、猪伪狂犬病毒、猪瘟病毒的多重实时荧光定量pcr方法 |
-
2009
- 2009-04-10 CN CN 200910106536 patent/CN101857904B/zh not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1952647A (zh) * | 2006-06-29 | 2007-04-25 | 上海交通大学 | Mgb探针多重荧光定量pcr检测大肠杆菌o157的方法 |
CN101260442B (zh) * | 2007-03-09 | 2010-09-29 | 中国农业科学院哈尔滨兽医研究所 | 检测猪圆环病毒、猪细小病毒、猪伪狂犬病毒、猪瘟病毒的多重实时荧光定量pcr方法 |
Non-Patent Citations (7)
Title |
---|
主要豆类种传病毒IC-RT-Real time PCR检测方法研究;李琳等;《中国植物病理学会2008年学术年会论文集》;20081231;392 * |
利用实时荧光RT-PCR方法检测番茄环斑病毒和烟草环斑病毒;杨翠云等;《植物检疫》;20061231;31-34 * |
吴兴海等.应用复合RT-PCR同时检测烟草环斑病毒和番茄环斑病毒.《江苏农业学报》.2006,398-400. * |
李琳等.主要豆类种传病毒IC-RT-Real time PCR检测方法研究.《中国植物病理学会2008年学术年会论文集》.2008,392. |
杨翠云等.利用实时荧光RT-PCR方法检测番茄环斑病毒和烟草环斑病毒.《植物检疫》.2006,31-34. |
植物病毒的实时荧光PCR检测;赵文军等;《云南农业大学学报》;20031231;67-69 * |
赵文军等.植物病毒的实时荧光PCR检测.《云南农业大学学报》.2003,67-69. |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN101857904A (zh) | 2010-10-13 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN102286637B (zh) | 采用反转录环介导等温扩增技术检测烟草病毒的方法 | |
CN101210271A (zh) | 马铃薯病毒和类病毒检测试剂盒及应用 | |
CN101857904B (zh) | 大豆检疫性病毒病害多重实时荧光pcr检测方法及试剂盒 | |
CN104593502A (zh) | 一种检测平头炭疽菌的环介导等温扩增引物组合物及其应用 | |
CN103710463B (zh) | 草莓轻型黄边病毒的快速检测试剂盒及方法 | |
CN103276101A (zh) | 利用四重荧光定量pcr检测番茄转基因成分的方法 | |
Jiang et al. | Distribution patterns of mulberry dwarf phytoplasma in reproductive organs, winter buds, and roots of mulberry trees | |
Kamińska et al. | The association of phytoplasma with stunting, leaf necrosis and witches’ broom symptoms in magnolia plants | |
Oliver et al. | Genetic diversity of Prunus necrotic ringspot virus isolates within a cherry orchard in New York | |
CN101857905B (zh) | 大豆检疫性真菌病害多重实时荧光pcr检测方法及试剂盒 | |
Ertunç et al. | Virus diseases of lettuce in ankara province | |
Bakelana et al. | Attempts to identify cassava brown streak virus in western democratic Republic of Congo | |
Khurana et al. | Recent developments towards detection and diagnosis for management of plant viruses | |
EP3328989B1 (en) | Novel strain of gluconacetobacter diazotrophicus (gd) and use thereof in agriculture | |
KR101293743B1 (ko) | 박과 식물체에서 병원성 세균 및 병원성 바이러스의 표적서열 증폭을 위한 프라이머 세트 및 이를 이용한 병원균 검출 방법 | |
Lin et al. | One-step multiplex RT-PCR for simultaneous detection of four pome tree viroids | |
CN104894125B (zh) | 一种检测葡萄a病毒的rt‑lamp试剂盒及其专用引物 | |
Tiwari et al. | Ratoon stunting disease (Leifsonia xyli) of sugarcane | |
Bostan et al. | Occurrence of Pospiviroid in potato, tomato and some ornamental plants in Turkey | |
Shiller et al. | Sensitive detection of viruses in pollen using conventional and real‐time reverse transcription‐polymerase chain reaction | |
CN113403429B (zh) | 同时检测辣椒三种rna病毒的多重rt-pcr引物组及其方法 | |
Deng et al. | First specific detection and validation of tomato wilt caused by Fusarium brachygibbosum using a PCR assay | |
Arogundade et al. | Detection and characterization of cucumber mosaic virus (CMV) infecting passion fruit in Nigeria | |
KR101953125B1 (ko) | 가지과 식물체에서 병원성 바이러스의 표적서열 증폭을 위한 프라이머 세트 및 이를 이용한 바이러스의 검출 방법 | |
Alkowni | Phytoviruses in Palestine: Status and Future Perspectives |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20131016 Termination date: 20180410 |
|
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |