CN101748078B - 新颖液化淀粉芽孢杆菌菌株及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种新颖液化淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliquefaciensBa-BPD1)(德国微生物菌种保藏中心，生物材料样品保藏编号DSM21836)，其具有命名为SEQ ID NO:1的独特16S核糖体RNA序列，且可制造淀粉分解酶、蛋白分解酶、纤维素分解酶、脂质分解酶及血栓分解酶以显示其生物降解活性。该液化淀粉芽孢杆菌还可生产抗生素，例如：伊枯草菌素、芬荠素及表面活性素，用以抑制真菌或细菌生长。本发明的新颖液化淀粉芽孢杆菌及其产物可应用于农业、污水处理、食品业及化学工业。
Description
技术领域
本发明是关于一种新颖液化淀粉芽孢杆菌菌株—Bacillusamyloliquefaciens，尤其，本发明是关于一种新颖液化淀粉芽孢杆菌菌株—Bacillus amyloliquefaciens Ba-BPD1或其突变株，用以产生多种酶、多种抗生素及生物表面活性剂。
背景技术
微生物及其产物已被广泛应用以增进人类生活，例如在食品、酒类、药物、化学工业及农业等方面。这些应用大量地降低生产及/或处理成本以及满足人类需求。
某些微生物生产酶以分解大分子。例如，解脂耶氏酵母菌(Yarrowialipolytica)生产脂质分解酶(脂酶)用以降解橄榄研磨厂污水处理的化学需氧量(chemical oxygen demand，COD)(Lanciotti，R.，Gianotti，A.，Baldi，D.，Angrisani，R.，Suzzi，G.，Mastrocola，D.and Guerzoni，M.E.Use of Yarrowialipolytica strains for the treatment of olive mill wastewater.Bioresour.Technol.2005.96(3)：317-22)；铜绿假单胞菌(Pseudomonas aerugenosa)生产碱性蛋白酶用以水解皮革制造工业的主要蛋白固体废弃物--动物肉质(Kumar，A.G.，Swarnalatha，S.，Sairam，B.and Sekaran，G.Production of alkaline protease byPseudomonas aeruginosa using proteinaceous solid waste generated fromleather manufacturing industries.Bioresour.Technol.2008.99(6)：1939-44)；及土曲霉(Aspergillus terreus)生产羧甲基纤维素酶(carboxymethyl cellulase，CMCase)用以生物降解木质纤维素废弃物(lignocellulosic waste)(Emtiazi，G.，Naghavi，N.and Bordbar，A.Biodegradation of lignocellulosic waste byAspergillus terreus.Biodegradation，2001.12(4)：257-61)。然而，这些微生物被证明其主要酶功能在于分解一种受质。当处理都市污水中更复杂的成分时，加入多种微生物以降解多种大分子是必要且无可避免的。这将增加成本、降低经济效益，而且处理过程将更复杂。再者，这些添加的微生物可能相互竞争生长优势。若一种微生物具有生产多种酶的能力但只能应用于一种领域，此微生物的经济效益比其他具有产生多种酶的能力及应用于多种领域的微生物低。
除了生物降解有机废弃物，微生物也可生产抗生素以拮抗其他真菌或细菌。一般说来，抗生素是由真菌生产或提取且应用于医药方面。然而，植物、果实及动物在成熟及生长时也面临真菌或细菌感染。传统的杀真菌剂、杀细菌剂及化学合成药剂不只抑制真菌及细菌感染，而且危害人体及环境。若细菌被发现能生产生物性的抗生素以抑制真菌或细菌生长，此菌株将有益于农业及畜牧业。
近来，由微生物生产的独特两亲性(amphiphilic)生物性化合物—生物表面活性剂，已在有机及金属污染地区的复原上显现出多种潜在的应用(Bodour，A.A.，Drees，K.P.and Maier，R.M.Distribution ofbiosurfactant-producing bacteria in undisturbed and contaminated aridsouthwestern soils.Appl.Environ.Microbiol.2003.69(6)：3280-7)。生物表面活性剂可降低表面张力、稳定乳化作用及促进泡沫生成，而且通常不具毒性且可生物降解。生物表面活性剂分为糖脂质(glycolipid)及脂蛋白(lipoprotein)两类，其中脂蛋白包括由芽孢杆菌属(Bacillus sp.)生产的伊枯草菌素(iturin)、表面活性素(surfactin)及芬荠素(fengycin)等。生产生物表面活性剂的微生物在碳氢化合物污染区域的生物复原上扮演重要角色。生物表面活性剂也可用于促进油类回收，被认为在环境保护上具有其他应用潜力。其他应用包括杀草剂及杀虫剂的剂型、清洁剂、保健及化妆品、纸浆与制纸、煤炭、纺织品、陶器处理及食品工业、铀矿处理及泥碳机械脱水。
因此，若微生物被发现能生产多种酶及分子，此微生物将有益于人类的生活及经济。本发明申请人鉴于现有技术中的不足，经过悉心试验与研究，并一本锲而不舍之精神，终构思出本发明「新颖液化淀粉芽孢杆菌菌株及其应用」，筛选出的液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1与其他微生物相比较，具有生产上述酶、抗生素及生物表面活性剂的能力，能够克服先前技术的不足，以下为本发明的简要说明。
发明内容
本发明提出一种筛选出的菌株，其具有特定的16S核糖体RNA(ribosomal RNA，rRNA)序列，分类为液化淀粉芽孢杆菌(Bacillusamyloliquefaciens Ba-BPD1)，其在德国微生物菌种保藏中心的生物材料样品保藏编号为DSM 21836。此新颖菌株生产具有专一性且有益的酶，例如脂质分解酶用以分解脂质、淀粉分解酶用以水解淀粉、纤维素分解酶用以水解纤维素、及蛋白分解酶用以水解蛋白质。
由于有机物质存在于污水中，生产多种酶的新颖液化淀粉芽孢杆菌(B.amyloliquefaciens Ba-BPD1)应用于处理污水、水管道系统、动物饲料、厨房垃圾处理，以增进污水中的有机物质分解以及污水、垃圾处理过程的品质及效率。因此，此新颖菌株及其酶可被制作成清洁剂并应用于除污及食品制造。
再者，该生产多种酶的新颖液化淀粉芽孢杆菌应用于农业，包括青贮菌剂(silage inoculants)、家畜粪肥处理及动物饲料组成的益生菌(Direct FedMicrobials)。
再者，由于其将大分子分解为简单有机分子的酶活性，筛选出的液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1可促进植物生长。
此外，由液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产的血栓分解酶可水解血栓，以致降低血液中的血栓量，预防及治疗心血管疾病、栓塞、动脉硬化、子宫内膜异位及癌症。因此，血栓分解酶可促进人类及动物的健康。
此外，分离出的液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产抗生素(包括：伊枯草菌素、表面活性素及芬荠素)及表面活性剂。尤其，伊枯草菌素是指伊枯草菌素A及其同源物。伊枯草菌素、表面活性素及芬荠素属于脂多肽，对预防及治疗真菌及/或细菌感染有益，而这些感染的对象为植物、动物及果实。
此外，液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产生物表面活性剂，包括表面活性素、伊枯草菌素及芬荠素，用以抑制植物病原菌及动物病原菌的生长，并具有抗生素生产的潜力。
本发明另一目的在于提出新颖菌株—液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1及/或该菌株所生产的抗生素，作为抗真菌剂，用以抑制属于下列组成群组中至少一种真菌菌属的生长，该组成群组包括：葡萄孢属(Botrytis)、刺盘孢属(Colletotrichum)、丝核菌属(Rhizoctonia)、镰刀菌属(Fusarium)、菌核属(Sclerotium)、链格孢属(Alternaria)、疫霉属(Phytophthora)、曲菌属(Aspergillus)、青霉菌属(Penicillium)、拟盘多毛孢属(Pestalotiopsis)及球二孢属(Botryodiplodia)。
其中，该真菌感染源自下列组成群组的真菌：百合灰霉病菌(Botrytiselliptica)、玫瑰灰霉病菌(Botrytis cinerea)、檬果炭疽病菌(Glomerellacingulata)、香蕉炭疽病菌(Colletotrichum musae)、甜柿胶孢炭疽菌(Colletotrichum gloeosporioides)、水稻立枯丝核菌(Rhizoctonia solani)、豌豆尖孢镰刀菌(Fusarium oxysporum f.sp.pisi)、番茄尖孢镰刀菌(Fusariumoxysporum f.sp.lycopersici)、兰花镰刀菌(Fusarium solani)、荔枝镰刀菌(Fusarium solani)、百合白绢病菌(Sclerotium rolfsii Saccardo)、苹果链格孢菌(Alternaria mali)、甜椒疫病菌(Phytophthora capsici)、洋葱黑曲霉菌(Aspergillus niger)、柑桔青霉菌(Penicillium italicum)、莲雾果腐菌(Pestalotiopsis eugeniae)及檬果蒂腐菌(Botryodiplodia theobromae)。
本发明另提出新颖菌株—液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1及/或该菌株所生产的抗生素，作为抗菌剂，用以抑制属于下列组成群组中至少一种细菌菌属的生长，该组成群组包括：欧氏杆菌属(Erwinia)、嗜酸菌属(Acidovorax)、农杆菌属(Agrobacterium)、伯克氏菌属(Burholderia)、肠杆菌属(Enterobactor)、假单胞菌属(Pseudomonas)、青枯菌属(Ralstonia)、黄色单胞菌属(Xanthomonas)、芽孢杆菌属(Bacillus)及沙门氏菌属(Salmonella)。
其中，该细菌感染源自下列组成群组的细菌：菊软腐欧氏杆菌和胡萝卜软腐欧氏杆菌胡萝卜亚种(Erwinia chrysanthemi及Erwinia carotovorasubsp.carotovora)、燕麦嗜酸菌瓜类亚种(Acidovorax avenae subsp.citrulli)、根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens)、石竹伯克氏菌(Burholderiacaryophylli)、茭白细菌性基腐菌(Enterobactor cloaceae)、杨桃假单胞菌(Pseudomonas syringae)、青枯病菌(Ralstonia solanacearum)、柑桔溃疡菌(Xanthomonas axonopodis pv.cirti)、茄科植物细菌性斑点菌(Xanthomonasaxonopodis pv.vesicatoria)、十字花科黑腐菌(Xanthomonas campestris pv.compestris)、水稻白叶枯菌(Xanthomonas oryzae pv.oryzae)、蜡状芽孢杆菌(Bacillus cereus)及沙门氏菌(Salmonella)。
再者，筛选出的液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1作为抑制真菌及/或细菌生长的抗微生物制剂，抗真菌剂抑制属于下列组成群组中的真菌生长：百合灰霉病菌、玫瑰灰霉病菌、檬果炭疽病菌、香蕉炭疽病菌、甜柿胶孢炭疽菌、水稻立枯丝核菌、豌豆尖孢镰刀菌、番茄尖孢镰刀菌、莲花镰刀菌、荔枝镰刀菌、百合白绢病菌、苹果链格孢菌、甜椒疫病菌、洋葱黑曲霉菌、柑桔青霉菌、莲雾果腐菌及檬果蒂腐菌。抗菌剂抑制属于下列组成群组中的细菌生长：细菌性软腐杆菌、燕麦嗜酸菌瓜类亚种、根癌农杆菌、石竹伯克氏菌、茭白细菌性基腐菌、杨桃假单胞菌、青枯病菌、柑桔溃疡菌、茄科植物细菌性斑点菌、十字花科黑腐菌、水稻白叶枯菌、蜡状芽孢杆菌及沙门氏菌。
表面活性素抑制家畜及食物的病原菌生长，并且预防及/或治疗受该病原菌感染的动物或植物。此外，由于对环境无毒及较佳的生物降解特性，表面活性素被广泛地应用于清洁剂、化妆品、食品、药物、石化业、农业及环境保护等方面。
根据上述构想，筛选出的液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1的应用型态为全肉汤培养液(whole broth culture)、上清液、可湿性粉剂(wettable powder)、粒剂(granule)、水分散性粒剂(water dispersible granule)、浓缩悬剂(suspensionconcentrate or flowable concentrate)及微囊形式(microencapsulation)。
本发明另一目的在于提出生物材料样品保藏编号为DSM 21836的液化淀粉芽孢杆菌的筛选突变株，其具有特定的16S核糖体序列(SEQ ID NO：1)。
本发明另一目的在于提出包括具有生物材料样品保藏编号为DSM21836的液化淀粉芽孢杆菌的组合物。
附图说明
图1为根据本发明实施例7及8，由液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产的伊枯草菌素A及表面活性素的LC/TOF-MS分析图谱。
图2为根据本发明实施例7，由液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产的芬荠素的LC/TOF-MS分析图谱。
具体实施方式
本发明所提出的「新颖液化淀粉芽孢杆菌菌株及其应用」将可由以下的实施例说明而得到充分了解，使得本领域技术人员可以据以完成，然而本发明的实施并非可由下列实施例而被限制其实施型态，本领域技术人员仍可依据除已公开的实施例的精神推演出其他实施例，这些实施例都应当属于本发明的范围。
实施例1：新颖液化淀粉芽孢杆菌的特征
新颖液化淀粉芽孢杆菌(B.amyloliquefaciens Ba-BPD1)是由发明人自台湾台中县梨山的土壤筛选出来，并且进一步培养、鉴定及保存。当培养液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1时，接种其单菌落并过夜培养于6ml的LB培养液(Luria-Bertani，Miller，Difco)。培养后的菌液再以1/100比例接种于500ml LB培养液，于30℃、150rpm培养6天。
此外，液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1与其他细菌相较，具有特定的16S核糖体RNA序列，其部分的16S核糖体序列被测序，且将于2009年12月31日公开于美国国家生物科技信息中心网站(National Center forBiotechnology Information，NCBI，http://www.ncbi.nlm.gov/Genbank/)，其基因库(GenBank)序号命名为EF137183。如后所述的该部分16S核糖体序列(SEQIDNO:1)成为液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1特殊及重要的特征。
液化淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliquefaciens Ba-BPD1)于2008年9月11日保藏于德国微生物菌种保藏中心(地址：德国不伦瑞克D-38124茵霍芬大街7B)，生物材料样品保藏编号为DSM21836。
实施例2：液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产的淀粉分解酶
为了证明液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1可生产淀粉分解酶(淀粉酶)以水解淀粉，淀粉酶水解测试如下所述。由营养琼脂培养基(nutrient agar(NA)plate)挑取液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1的单菌落并混合于50μl无菌水作为菌液。然后，将此50μl菌液滴在1cm直径的滤纸上，再放置于酵母提取物-可溶性淀粉琼脂培养基(yeast extract-soluble starch agar(YSA)plate，含1.0％酵母提取物、1.0％可溶性淀粉及1.5％琼脂)上。将YSA培养基置于30℃培养2至3天。培养后，以3至4ml碘液(含0.3％(w/v)碘及3％(w/v)碘化钾(potassium iodine))覆满YSA培养基，于5分钟内测量液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1的菌落大小及溶解圈(clear zone)大小。培养基变成蓝黑色表示淀粉未被水解，然而，菌落周围的溶解圈表示淀粉被水解。三重复的结果显示菌落直径及溶解圈大小分别为1.57cm及2.81cm。
Ito等人(1998)也证实嗜碱性枯草芽孢杆菌生产碱性胞外清洁酶，包括α-淀粉酶，应用于强效清洁剂及自动洗碗机清洁剂，用以分解污水里的淀粉(Ito，S.，Kobayashi，T.，Ara，K.，Ozaki，K.，Kawai，S.and Hatada，Y.Alkalinedetergent enzymes from alkaliphiles：enzymatic properties，genetics，andstructures.Extremophiles.1998.2(3)：185-90)。因此，液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产的淀粉分解酶可以应用于水解污水、废弃物、农业及食品业的淀粉。
实施例3：液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产的蛋白分解酶
为了证明液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产蛋白分解酶(蛋白酶)水解蛋白质，蛋白水解测试如下所述。液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1的菌液如实施例2所述制备。将50μl菌液滴在1cm直径的滤纸上，再放置于脱脂乳琼脂培养基(skim milk agar(SMA)plate，含1.5％脱脂奶粉、1.3％营养肉汤(nutrient broth，NB)及1.5％琼脂)上(Elsheikh，L，E.，Bergman，R.，Cryz，S.J.Jr.and Wretlind，B.A comparison of different methods for determining elastaseactivity of Pseudomonas aeruginosa strains from mink.Acta Pathol.Microbiol.Immunol.Scand.Sect.B，Microbiol.1986.94(3)：135-8)。将此SMA培养基以30℃培养2至3天，测量液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1的菌落大小及溶解圈大小。菌落周围的溶解圈表示脱脂乳中的蛋白质被细菌水解。三重复的结果显示菌落直径及溶解圈大小分别为1.77cm及3.61cm。
Kumar等人(2008)发现铜绿假单胞菌生产碱性蛋白酶，用以水解皮革制造工厂产出的蛋白固体废弃物(Kumar，A.G.，Swarnalatha，S.，Sairam，B.and Sekaran，G.Production of alkaline protease by Pseudomonas aeruginosausing proteinaceous solid waste generated from leather manufacturing industries.Bioresour.Technol.2008.99(6)：1939-44)。此外，Drouin等人(2008)证实地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)生产的蛋白酶对污水污泥具有蛋白水解活性(Drouin，M.，Lai，C.K.，Tyagi，R.D.and Surampalli，R.Y.Bacilluslicheniformis proteases as high value added products from fermentation ofwastewater sludge：pre-treatment of sludge to increase the performance of theprocess.Water Sci.Technol.2008.57(3)：423-9)。在实施例3中，液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产的蛋白分解酶也可应用于污水、废弃物、农业及食品业的蛋白水解，并可制造为清洁剂或洗衣剂的成分。
实施例4：液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产的纤维素分解酶
为了证明液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产纤维素分解酶(纤维素酶)水解纤维素，纤维素水解测试如下所述。液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1菌液如实施例2所述制备。将50μl菌液滴在1cm直径的滤纸上，再放置于Mandel-Reese(M-R)琼脂培养基(含1.0％羧甲基纤维素(carboxyl methylcellulose，CMC)、0.1％蛋白胨(peptone)、0.03％尿素、0.14％(NH4)2SO4、0.2％KH2PO4、0.04％ CaCl2·H2O、0.03％ MgSO4·7H2O、5×10-4％ FeSO4·7H2O、1.4×10-3％ ZnSO4·7H2O、1.6×10-3％ MnSO4·4H2O、2×10-4％ CoCl2·6H2O及1.5％琼脂，调整pH至6.0并灭菌)(Mandel，M.and Reese，E.T.Induction ofcellulose in fungi by cellobiose.J.Bact.1960.79：816-26)。此M-R琼脂培养基于30℃培养2天后，将3至4ml的0.1％刚果红(Congo Red)覆满M-R琼脂培养基30分钟，再以1M氯化钠溶液洗去未结合的刚果红，刚果红通过氢键形成团块(agglomerate)或胶体(colloid)、再与纤维素结合，而溶解圈的形成表示纤维素未与刚果红结合。三重复的结果显示液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1形成的溶解圈直径为2.3cm。
Alam等人(2008)证实哈茨木霉(Trichoderma harzianum)生产纤维分解酶用以在污水污泥的生物转换中水解纤维素(Alam，M.Z.，Muyibi，S.A.andWahid，R.Statistical optimization of process conditions for cellulase productionby liquid state bioconversion of domestic wastewater sludge.Bioresour.Technol.2008.99(11)：4709-16)。Sangave及Pandit于2006也发表纤维素酶用于蒸馏厂污水的生物降解活性的前处理步骤，以将纤维素转化为简单的生物分子(Sangave，P.C.and Pandit，A.B.Enhancement in biodegradability of distillerywastewater using enzymatic pretreatment.J.Environ.Manage.2006.78(1)：77-85)。由于M-R琼脂培养基的主要成分是羧甲基纤维素，所以液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1可生产纤维素分解酶以消化纤维素及在消化时显现透明环是相当明显的。因此，由于纤维素分解酶的生产及水解活性，液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1在处理废水的纤维素上具有显着的经济价值。新颖菌株—液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1可以生产纤维素分解酶，用以水解废弃物处理的纤维素。
实施例5：液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产的脂质分解酶
为了证明液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产脂质分解酶(脂酶)以分解脂质，脂酶水解测试如下所述。首先，接种液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1的单菌落于5ml营养液，再以30℃、150rpm培养1天。之后，将5μl的培养菌液滴在罗丹明B琼脂培养基(Rhodamine B agar plate，含1％橄榄油、0.001％罗丹明B及1.5％营养琼脂)上，于30℃培养7天。作为染剂的罗丹明B嵌入脂质，在例如荧光显微镜的生物技术应用上作为荧光标志。溶解圈表示脂质被水解，且罗丹明B无法嵌入脂质。因此，实验结果发现液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1显现荧光菌落，且菌落周围的溶解圈直径为0.6cm。
实施例6：液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产的血栓分解酶
纤维蛋白(fibrin)为负责止血的关键性血液成分，已被广泛地作为组织工程的多功能生物聚合物骨架。单独的纤维蛋白或与其他材料结合(例如纤维蛋白原(fibrinogen)和凝血酶(thrombin))已被用作干细胞或初生细胞的生物骨架，用以再生脂肪组织、心脏组织、软骨、肝脏、神经组织、眼球组织、皮肤、肌腱及韧带，并显现组织再生及伤口愈合的重大潜力(Ahmed，T.A.E.，Dare，E.V.and Hincke，M.Fibrin：a versatile seaffold for tissueengineering applications.Tissue Eng.Part B Rev.2008.14(2)：199-215)。然而，若纤维蛋白在血管或心脏凝集为血栓(fibrin clot或thrombus)，将导致心血管疾病或使人致死(Hua，Y.，Jiang，B.，Mine，Y.and Mu，W.Purification andcharacterization of a novel fibrinolytic enzyme from Bacillus sp.nov.SK006isolated from an Asian traditional fermented shrimp paste.J.Agric.Food Chem.2008.56(4)：1451-7)。枯草杆菌属菌株被证明生产血栓分解酶用以通过自血纤维蛋白溶酶原(plasminogen)形成具活性的血纤维蛋白溶酶(plasmin)或通过直接血栓溶解(fibrinolysis)分解血栓。因此，由微生物生产的血栓分解酶在组织再生、伤口愈合及性命急救上相当重要。
在本发明中，接种液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1的单菌落于5ml营养液，于30℃培养12小时。离心5ml营养液中的100μl菌液后，将20μl上清液滴入事先以移液管尖头(tip)在挖出的纤维蛋白琼脂培养基(fibrin agarplate)的浅洞内，再将该纤维蛋白琼脂培养基以37℃培养12小时，观察其溶解圈的形成。结果显示溶解圈直径为1.8cm，证实液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1具有生产血栓分解酶以水解血栓的能力，并涉及例如血栓形成(thrombosis)、动脉硬化(arteriosclerosis)、子宫内膜异位(endometriosis)及癌症的病理状态。
实施例7：液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产的伊枯草菌素及芬荠素
伊枯草菌素(一种生物表面活性剂)是一种抗真菌脂多肽(antifungallipopeptide)，作为一种具生物活性的微生物二次代谢产物，并显示具吸引力的抗生素特性(Hsieh，F.-C.，Lin，T.-C.，Meng，M.and Kao，S.-S.Comparingmethods for identifying Bacillus strains capable of producing the antifungallipopeptide iturin A.Curr.Microbiol.2008.56(1)：1-5)。枯草杆菌属生产的伊枯草菌素A(iturin A)与固醇分子在致病真菌(例如立枯丝核菌(Rhizoctoniasolani))的细胞膜表面形成复合物，以致扩大离子通道大小、改变膜渗透压，并进一步导致致病真菌的菌丝分解及抑制孢子萌芽。由此达到植物病原菌的抑制效果。因此，伊枯草菌素A及枯草杆菌属被应用于饲料及/或食物保存，动物及植物的预防及/或治疗，可用作工业、农业、环境的生物降解及清除的表面活性素(或生物表面活性剂)，以及作为动物及/或植物感染的抗生素(Mizumoto，S.and Shoda，M.Medium optimization of antifungallipopeptide，iturin A，production by Bacillus subtilis in solid-state fermentationby response surface methodology.Appl.Microbiol.Biotechnol.2007.76(1)：101-8)。
请参阅图1，为根据本发明实施例7，由液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产的伊枯草菌素A的液相色谱分析仪/飞行时间质谱仪(liquidchromatography/time-to-flight-mass spectrometry，LC/TOF-MS)分析图谱。在图1中，伊枯草菌素A同源物(A2至A8)的分子量鉴定为1043、1057、1065、1079、1095及1119 Da，这些伊枯草菌素A同源物及液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1可应用于食品业及农业。
芬荠素是另一种由枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)生产的具生物活性的脂多肽及抗真菌物质，在枯草芽孢杆菌拮抗葫芦粉霉菌(Podosphaera fusca，cucurbit powdery mildew)(Deleu，M.，Paquot，M.and Nylander，T.Effect offengycin，a lipopeptide produced by Bacillus subtilis，on model biomembranes.Biophys.J.2008.94(7)：2667-79，Romero，D.，de Vicente，A.，Rakotoaly，R.H.，Dufour，S.E.，Veening，J.-W.，Arrebola，E.，Cazorla，F.M.，Kuipers，O.P.，Paquot，M.and Pérez-García，A.The iturin and fengycin families of lipopeptidesare key factors in antagonism of Bacillus subtilis toward Podosphaera fusca.Mol.Plant Microbe Interact.2007.20(4)：430-40)扮演重要角色。如同伊枯草菌素A，芬荠素也应用于饲料及/或食物保存，作为工业、农业、环境的生物降解及清除的表面活性素(或生物表面活性剂)，以及作为动物及/或植物感染的抗生素。
请参阅图2，为根据本发明实施例7，由液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产的芬荠素的LC/TOF-MS分析图谱。在图2中，芬荠素同源物的分子量鉴定为1449、1463、1477、1491及1505Da，这些芬荠素同源物及液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1可应用于食品业及农业。
实施例8：液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产的表面活性素
表面活性素是一种细菌性环状脂多肽或表面活性剂，作为抗生素，其两亲性(amphiphilic)特性帮助此物质存在于疏水及亲水两种环境。例如，表面活性素在牛奶中可显现其对大肠杆菌(Escherichia coli)的抗微生物活性，以对牛奶杀菌(Huang，X.，Wei，Z.，Zhao，G.，Gao，X.，Yang，S.and Cui，Y.Optimization of Sterilization of Escherichia coli in milk by surfactin andfengycin using a response surface method.Curr.Microbiol.2008.56(4)：376-81)。Whang等人(2008)证实表面活性素具有对柴油污染的水及土壤的生物降解能力(Whang，L-M.，Liu，P.-W.G.，Ma，C.-C.and Cheng，S.-S.Application of biosurfactants，rhamnolipid，and surfactin，for enhancedbiodegradation of diesel-contaminated water and soil.J.Hazard.Mater.2008.151(1)：155-63)。因此，表面活性素可以作为食品制造及食品保存的杀菌剂，并作为工业、农业、环境的生物降解及清除的表面活性素(或生物表面活性剂)。
为了证明液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1可生产表面活性素，大规模的液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1菌液及表面活性素制备如下。以30℃、200rpm培养液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1 16小时，培养后的菌液再以1/100比例接种于Cooper’s培养基，并于30℃培养120小时。Cooper’s培养基为具有4％葡萄糖的无机盐类(mineral salts，含0.05M NH4NO3、0.03M KH2PO4、0.04M Na2HPO4、8.0×10-4M MgSO4、7.0×10-6M CaCl2、4.0×10-6M FeSO4及4.0×10-6M乙二胺四乙酸二钠(Na2 EDTA))。
离心移除菌体后，加入浓盐酸至液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1培养菌液，分离出天然的表面活性素。收集、干燥、以二氯甲烷萃取，在pH 2生成沉淀物。以减压移除二氯甲烷以获得黄白色固体。以再结晶进一步纯化。二氯甲烷萃取物溶解于含有足量氢氧化钠的无菌水以达到pH 8。此溶液进一步以Whatman No.1滤纸过滤，并以浓盐酸滴定至pH2。离心后获得白色固体沉淀物。此外，精炼的表面活性素购自Sigma公司(Steinheim，Germany)或由枯草芽孢杆菌菌液纯化，以作为校正标准品。
分离出的表面活性素沉淀物溶解于1ml甲醇，再以活性炭处理，并以0.22μm孔径的滤纸过滤，过滤液注入高效液相色谱仪(HPLC)的反向管柱(RP-18，5μm，4x250mm；Merek)。该管柱以3.8mM乙腈-三氟乙酸(acetonitrile-trifluoroacetic acid，80：20(v/v))、1.0ml/min的流速洗提，并以210nm波长检测。表面活性素的浓度以Sigma公司购买的精炼表面活性素作为校正曲线而测定，并以6种表面活性素异构物的总量作为表面活性素的浓度。实验证明：液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产的表面活性素浓度为460mg/L。
请参阅图1，为根据本发明实施例8，由液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产的表面活性素的LC/TOF-MS分析图谱。在图1中，表面活性素同源物的分子量鉴定为1022及1036Da。因此，由液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1生产的表面活性素可应用于食品杀菌、食品保存、生物降解，及工业、农业及环境的清除。
实施例9：液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1与病原真菌的对峙试验
根据实施例7和8的结果，可知三种脂多肽—伊枯草菌素A、芬荠素及表面活性素可抑制病原真菌及病原细菌的生长。为了确定液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1的拮抗病原真菌能力，对峙培养及试验操作如下。对峙试验显示出一种生物对另一种生物的生长抑制。
培养液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1及21种真菌。接种液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1的单菌落于5ml LB培养液，并以30℃、200rpm培养7天。在每一片马铃薯葡萄糖琼脂培养基(potato dextrose agar(PDA)plate)中央放置1cm直径的真菌菌丝块(mycelial disc)，再培养于25℃直到长满，共培养21株真菌。
对峙试验开始时，放置上述1cm直径的真菌菌丝块于一片PDA培养基中央，并放置3片9mm直径滤纸于PDA培养基上，每片滤纸距离真菌菌丝块边缘1.8cm，放置在PDA培养基的3片滤纸看似等边三角形的三个顶点。在实验组方面，在PDA培养基的每一片滤纸上滴入30μl的液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1菌液；在对照组方面，在PDA培养基的每一片滤纸上滴入30μl无菌水。将这些PDA培养基培养于25℃直到长满。滤纸周围将会形成新月形的抑制。纪录液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1与真菌菌株间的对峙培养，并计算液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1滤纸到真菌菌丝块间的对峙距离。
请参阅表1，为本发明实施例9的液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1滤纸与真菌菌丝块间的平均对峙距离。对峙距离越长，抑制真菌效果越佳。在表1中，可知此21种真菌生长可被液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1有效地抑制，其中液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1与柑橘青霉菌(Penicillium italicum，缩写为Pi13)间的对峙距离最长(13.5mm)，液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1与檬果炭疽病菌(Glomerella cingulata，缩写为Gc)间的对峙距离最短(3.1mm)。因此，液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1对真菌的生长抑制效果被加以证实。
实施例10：液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1与病原细菌的对峙试验
另一个液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1与病原细菌间的对峙试验如下所述。首先，将60μl待测试的液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1滴在营养琼脂培养基的滤纸上，于30℃培养24小时。每一待测试的病原细菌均匀喷洒到培养好的液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1的营养琼脂培养基上，再将此培养基以30℃培养24小时。每一病原细菌进行三重复测试。测定液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1对每一种病原细菌的抑制圈大小。
请参阅表2，为本发明实施例10的液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1对病原细菌的抑制圈大小。在表2中，可知液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1可有效抑制这些病原细菌的生长。因此，由这些细菌引起的病原植物及果实疾病被预防、治疗或控制。此外，液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1可抑制蜡状芽孢杆菌(Bacillus cereus JSR01)及沙门氏菌(Salmonella TA100)，而且液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1可预防及治疗由这些细菌引起的细菌性食物中毒。
本发明的新颖液化淀粉芽孢杆菌具有独特的16S核糖体RNA序列，且可制造多种酶用以分解淀粉、蛋白质、纤维素、脂质及血栓，并可生产抗生素，对病原真菌及病原细菌皆具有显著的抑制效果，实属难能的创新发明，深具产业价值，因此依法提出申请。此外，本发明可以由本领域技术人员做任何修改，但不脱离如所附权利要求所要保护的范围。
参考文献：
1.Ahmed，T.A.E.，Dare，E.V.and Hincke，M.Fibrin：a versatile scaffold fortissue engineering applications.Tissue Eng.Part B Rev.2008.14(2)：199-215.
2.Alam，M.Z.，Muyibi，S.A.and Wahid，R.Statistical optimization of processconditions for cellulase production by liquid state bioconversion of domesticwastewater sludge.Bioresour.Technol.2008.99(11)：4709-16.
3.Bodour，A.A.，Drees，K.P.and Maier，R.M.Distribution ofbiosurfactant-producing bacteria in undisturbed and contaminated aridsouthwestern soils.Appl.Environ.Microbiol.2003.69(6)：3280-7.
4.Deleu，M.，Paquot，M.and Nylander，T.Effect of fengycin，a lipopeptideproduced by Bacillus subtilis，on model biomembranes.Biophys.J.2008.94(7)：2667-79.
5.Drouin，M.，Lai，C.K.，Tyagi，R.D.and Surampalli，R.Y.Bacilluslicheniformis proteases as high value added products from fermentation ofwastewater sludge：pre-treatment of sludge to increase the performance of theprocess.Water Sci.Technol.2008.57(3)：423-9.
6.Elsheikh，L，E.，Bergman，R.，Cryz，S.J.Jr.and Wretlind，B.A comparison ofdifferent methods for determining elastase activity of Pseudomonasaeruginosa strains from mink.Acta Pathol.Microbiol.Immunol.Scand.Sect.B，Microbiol.1986.94(3)：135-8.
7.Emtiazi，G.，Naghavi，N.and Bordbar，A.Biodegradation of lignoce1lulosicwaste by Aspergillus terreus.Biodegradation，2001.12(4)：257-61.
8.Ertugrul，S.，
G.and Takac，S.Isolation of lipase producing Bacillussp.from olive mill wastewater and improving its enzyme activity.J.Hazard.Mater.2007.149(3)：720-4.
9.Hsieh，F.-C.，Lin，T.-C.，Meng，M.and Kao，S.-S.Comparing methods foridentifying Bacillus strains capable of producing the antifungal lipopeptideiturin A.Curr.Microbiol.2008.56(1)：1-5.
10.Hua，Y.，Jiang，B.，Mine，Y.and Mu，W.Purification and characterization of anovel fibrinolytic enzyme from Bacillus sp.nov.SK006 isolated from anAsian traditional fermented shrimp paste.J.Agric.Food Chem.2008.56(4)：1451-7.
11.Huang，X.，Wei，Z.，Zhao，G.，Gao，X.，Yang，S.and Cui，Y.Optimization ofSterilization of Escherichia coli in milk by surfactin and fengycin using aresponse surface method.Curr.Microbiol.2008.56(4)：376-81.
12.Ito，S.，Kobayashi，T.，Ara，K.，Ozaki，K.，Kawai，S.and Hatada，Y.Alkalinedetergent enzymes from alkaliphiles：enzymatic properties，genetics，andstructures.Extremophiles.1998.2(3)：185-90.
13.Jeganathan，J.，Nakhla，G.and Bassi，A.Hydrolytic pretreatment of oilywastewater by immobilized lipase.J.Hazard.Mater.2007.145(1-2)：127-35.
14.Kumar，A.G.，Swarnalatha，S.，Sairam，B.and Sekaran，G.Production ofalkaline protease by Pseudomonas aeruginosa using proteinaceous solidwaste generated from leather manufacturing industries.Bioresour.Technol.2008.99(6)：1939-44.
15.Lanciotti，R.，Gianotti，A.，Baldi，D.，Angrisani，R.，Suzzi，G.，Mastrocola，D.and Guerzoni，M.E.Use of Yarrowia lipolytica strains for the treatment ofolive mill wastewater.Bioresour.Technol.2005.96(3)：317-22.
16.Mandel，M.and Reese，E.T.Induction of cellulose in fungi by cellobiose.J.Bact.1960.79：816-26.
17.Mizumoto，S.and Shoda，M.Medium optimization of antifungal lipopeptide，iturin A，production by Bacillus subtilis in solid-state fermentation byresponse surface methodology.Appl.Microbiol.Biotechnol.2007.76(1)：101-8.
18.Romero，D.，de Vicente，A.，Rakotoaly，R.H.，Dufour，S.E.，Veening，J.-W.，Arrebola，E.，Cazorla，F.M.，Kuipers，O.P.，Paquot，M.and Pérez-García，A.The iturin and fengycin families of lipopeptides are key factors inantagonism of Bacillus subtilis toward Podosphaera fusca.Mol.PlantMicrobe Interact.2007.20(4)：430-40.
19.Sangave，P.C.and Pandit，A.B.Enhancement in biodegradability ofdistillery wastewater using enzymatic pretreatment.J.Environ.Manage.2006.78(1)：77-85.
20.Whang，L.-M.，Liu，P.-W.G.，Ma，C.-C.and Cheng，S.-S.Application ofbiosurfactants，rhamnolipid，and surfactin，for enhanced biodegradation ofdiesel-contaminated water and soil.J.Hazard.Mater.2008.151(1)：155-63.
表1、液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1滤纸与真菌菌丝块间的平均对峙距离
序列表
<110>行政院农业委员会农业药物毒物试验所
<120>新颖液化淀粉芽孢杆菌菌株及其应用
<160>1
<210>1
<211>1421
<212>RNA
<213>液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1
<220>
<223>部分16S核糖体RNA序列
<400>1
Claims (15)
1.一种分离的菌株，该菌株为液化淀粉芽孢杆菌(Bacillusamyloliquefaciens)Ba-BPD1菌株，其生物材料样品保藏编号为DSM21836，其包含16S核糖体RNA，该核糖体RNA的核苷酸序列如SEQ IDNO：1所示。
2.一种如权利要求1的菌株的用途，其用于生产下列组成群组中至少一种酶，该组成群组由淀粉分解酶、蛋白分解酶、纤维素分解酶及脂质分解酶所同时组成。
3.一种如权利要求1的菌株的用途，其用于分解下列组成群组中至少一种有机成分，该组成群组由淀粉、蛋白质、纤维素、脂质及血栓所同时组成。
4.一种如权利要求1的菌株的用途，其用于处理废水、水管道系统及有机废弃物。
5.一种如权利要求1的菌株的用途，其用作动物饲料添加剂。
6.一种如权利要求1的菌株的用途，其用于促进植物生长。
7.一种如权利要求1的菌株的用途，其用于生产下列组成群组中至少一种成分，该组成群组由伊枯草菌素、表面活性素及芬荠素所同时组成。
8.一种如权利要求1的菌株的用途，其用于生产生物表面活性剂，该生物表面活性剂是由表面活性素、伊枯草菌素及芬荠素所组成。
9.一种如权利要求1的菌株的用途，其用于预防或治疗被真菌感染或细菌感染的植物。
10.一种如权利要求1的菌株的用途，其用于制备预防或治疗被真菌感染或细菌感染的动物的药物。
11.如权利要求9或10所述的用途，其特征在于，该真菌感染由下列组成群组中至少一种真菌所造成，该组成群组由百合灰霉病菌、玫瑰灰霉病菌、檬果炭疽病菌、香蕉炭疽病菌、甜柿胶孢炭疽菌、水稻立枯丝核菌、豌豆尖孢镰刀菌、番茄尖孢镰刀菌、兰花镰刀菌、荔枝镰刀菌、百合白绢病菌、苹果链格孢菌、甜椒疫病菌、洋葱黑曲霉菌、柑桔青霉菌、莲雾果腐菌及檬果蒂腐菌所同时组成；以及该细菌感染由下列组成群组中 至少一种细菌所造成，该组成群组由菊软腐欧氏杆菌和胡萝卜软腐欧氏杆菌胡萝卜亚种、燕麦嗜酸菌瓜类亚种、根癌农杆菌、石竹伯克氏菌、茭白细菌性基腐菌、杨桃假单胞菌、青枯病菌、柑桔溃疡菌、茄科植物细菌性斑点菌、十字花科黑腐菌与水稻白叶枯菌、蜡状芽孢杆菌及沙门氏菌所同时组成。
12.一种如权利要求1的菌株的用途，其用作抗微生物剂。
13.如权利要求12所述的用途，其特征在于，该抗微生物剂抑制下列组成群组中至少一种真菌生长，该组成群组由百合灰霉病菌、玫瑰灰霉病菌、檬果炭疽病菌、香蕉炭疽病菌、甜柿胶孢炭疽菌、水稻立枯丝核菌、豌豆尖孢镰刀菌、番茄尖孢镰刀菌、兰花镰刀菌、荔枝镰刀菌、百合白绢病菌、苹果链格孢菌、甜椒疫病菌、洋葱黑曲霉菌、柑桔青霉菌、莲雾果腐菌、檬果蒂腐菌所同时组成；以及该抗微生物剂抑制下列组成群组中至少一种细菌生长，该组成群组由菊软腐欧氏杆菌和胡萝卜软腐欧氏杆菌胡萝卜亚种、燕麦嗜酸菌瓜类亚种、根癌农杆菌、石竹伯克氏菌、茭白细菌性基腐菌、杨桃假单胞菌、青枯病菌、柑桔溃疡菌、茄科植物细菌性斑点菌、十字花科黑腐菌与水稻白叶枯菌、蜡状芽孢杆菌及沙门氏菌所同时组成。
14.如权利要求2、3、4、5、6、7、8、9、10或12所述的用途，其特征在于，该菌株的应用型态为全肉汤培养液、上清液、可湿性粉剂、粒剂、浓缩悬剂及微囊形式。
15.一种包含液化淀粉芽孢杆菌Ba-BPD1菌株的组合物，其中该液化淀粉芽孢杆菌菌株具有生物材料样品保藏编号DSM 21836。
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Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN107058163A (zh) * | 2016-12-30 | 2017-08-18 | 华南农业大学 | 一株解淀粉芽孢杆菌及其在防治柑橘溃疡病中的应用 |
Families Citing this family (19)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102311926B (zh) * | 2011-09-19 | 2013-04-03 | 天津科技大学 | 降解废弃蓖麻基润滑油及矿物油的m-4菌株 |
| CN103275907B (zh) * | 2013-06-18 | 2014-10-01 | 武汉科前动物生物制品有限责任公司 | 一种解淀粉芽胞杆菌及制备方法和应用 |
| CN104450546A (zh) * | 2013-11-28 | 2015-03-25 | 辽宁省农业科学院 | 一种防治由镰刀菌引起辣椒土传病害的sy-17菌株及其生防菌剂 |
| CN104997756B (zh) * | 2015-07-02 | 2017-08-08 | 华中农业大学 | 一种伊枯草菌素a微胶囊剂的制备方法 |
| CN105132336B (zh) * | 2015-10-10 | 2018-04-13 | 中国热带农业科学院环境与植物保护研究所 | 一株解淀粉芽孢杆菌及其菌剂和应用 |
| CN105316266A (zh) * | 2015-12-08 | 2016-02-10 | 领先生物农业股份有限公司 | 一株解淀粉芽孢杆菌lx-j1及其用途 |
| CN106399156B (zh) * | 2016-08-25 | 2021-08-13 | 中国热带农业科学院热带生物技术研究所 | 一株解淀粉芽孢杆菌及其在马尾藻生物降解中的应用 |
| CN107118979B (zh) * | 2017-03-31 | 2021-05-25 | 山东省花生研究所 | 一种解淀粉芽孢杆菌与应用 |
| CN106811435A (zh) * | 2017-03-31 | 2017-06-09 | 甘肃农业大学 | 一种高寒草地牧草内生细菌解淀粉芽孢杆菌菌株、微生物菌剂及其制备方法和应用 |
| CN106906167B (zh) * | 2017-04-26 | 2020-04-07 | 北京农学院 | 一株生防用解淀粉芽胞杆菌及其应用 |
| CN107287138A (zh) * | 2017-07-14 | 2017-10-24 | 南京林业大学 | 一株蜡状芽孢杆菌jk‑xz3及其在防治樱花根癌病中的应用 |
| CN107723267B (zh) * | 2017-11-28 | 2022-11-15 | 中国科学院微生物研究所 | 一种仔猪源解淀粉芽孢杆菌及其应用 |
| CN108690817A (zh) * | 2018-04-08 | 2018-10-23 | 西北师范大学 | 一种多功能广谱性复合微生物菌剂及其制备和应用 |
| CN110452863B (zh) * | 2019-07-27 | 2021-08-27 | 湖北大学 | 鸟氨酸环己烷酶在提高解淀粉芽胞杆菌生产伊枯草菌素a产量中的应用 |
| CN110819557B (zh) * | 2019-10-10 | 2021-07-09 | 中国农业大学 | 一种纤维素降解复合菌剂及其制备方法和应用 |
| CN110904002B (zh) * | 2019-11-25 | 2022-04-29 | 天津大学 | 一种生物移除四环素类抗生素的方法 |
| CN110982746B (zh) * | 2019-12-25 | 2022-03-18 | 陕西紫瑞生物科技有限公司 | 芽孢菌株及应用 |
| CN114164120A (zh) * | 2021-11-18 | 2022-03-11 | 海南大学 | 用于防治植物病害的微生物制剂及其制备方法、应用 |
| CN114369550B (zh) * | 2022-01-04 | 2023-07-25 | 青海大学 | 一株促燕麦生长的解淀粉芽孢杆菌及其应用 |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN1952116A (zh) * | 2006-04-18 | 2007-04-25 | 兰州大学 | 一株解淀粉芽孢杆菌菌株及其应用 |
| CN101085448A (zh) * | 2007-03-31 | 2007-12-12 | 杨培根 | 一种城市垃圾生物预处理方法 |
| CN101270344A (zh) * | 2008-05-12 | 2008-09-24 | 华中农业大学 | 防治油菜菌核病的枯草芽胞杆菌及抗菌物质分离 |
-
2008
- 2008-12-05 CN CN2008101824287A patent/CN101748078B/zh active Active
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN1952116A (zh) * | 2006-04-18 | 2007-04-25 | 兰州大学 | 一株解淀粉芽孢杆菌菌株及其应用 |
| CN101085448A (zh) * | 2007-03-31 | 2007-12-12 | 杨培根 | 一种城市垃圾生物预处理方法 |
| CN101270344A (zh) * | 2008-05-12 | 2008-09-24 | 华中农业大学 | 防治油菜菌核病的枯草芽胞杆菌及抗菌物质分离 |
Non-Patent Citations (6)
| Title |
|---|
| J.-H. Yang, et al..Diversity analysis of antagonists from rice-associated bacteria and their application in biocontrol of rice diseases.《Journal of Applied Microbiology》.2007,第104卷(第1期),表5. * |
| Li X. Mei. |
| Li, X. Mei., et al..Genbank序列号:EU855185.《Genbank数据库》.2008, * |
| Xu A et al..Genbank序列号:EU723210.《Genbank数据库》.2008, * |
| Yang JH et al..Genbank序列号：EF178456.《Genbank数据库》.2008, * |
| Yang JH et al..Genbank序列号:EF178461.《Genbank数据库》.2008, * |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN107058163A (zh) * | 2016-12-30 | 2017-08-18 | 华南农业大学 | 一株解淀粉芽孢杆菌及其在防治柑橘溃疡病中的应用 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CN101748078A (zh) | 2010-06-23 |
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Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| C06 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
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