CN101522890A - 组织来源细胞的冷冻保存方法 - Google Patents
组织来源细胞的冷冻保存方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN101522890A CN101522890A CNA2007800374366A CN200780037436A CN101522890A CN 101522890 A CN101522890 A CN 101522890A CN A2007800374366 A CNA2007800374366 A CN A2007800374366A CN 200780037436 A CN200780037436 A CN 200780037436A CN 101522890 A CN101522890 A CN 101522890A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- tissue
- cell
- skin
- pieces
- substratum
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
- A01N1/00—Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
- A01N1/02—Preservation of living parts
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/04—Preserving or maintaining viable microorganisms
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
- A01N1/00—Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
- A01N1/02—Preservation of living parts
- A01N1/0205—Chemical aspects
- A01N1/021—Preservation or perfusion media, liquids, solids or gases used in the preservation of cells, tissue, organs or bodily fluids
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
- A01N1/00—Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
- A01N1/02—Preservation of living parts
- A01N1/0278—Physical preservation processes
- A01N1/0284—Temperature processes, i.e. using a designated change in temperature over time
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Dentistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Virology (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明提供一种简便且有效地冷冻保存来源于各种组织的所希望的细胞的方法。该方法包括以下步骤,即:将含有目标细胞的组织片段化,将片段化的组织片段在规定的培养基中培养,回收经培养得到的组织片段并悬浊于冷冻保护溶液中,然后将该组织片段悬浊物在-70℃以下的温度下冷冻。在优选的方式中,所述细胞为来源于皮肤组织的成纤维细胞。
Description
技术领域
本发明涉及组织来源细胞的冷冻保存方法,具体地,涉及一种用于简便且有效地冷冻保存来源于从哺乳动物获取的各种组织的所希望的细胞的方法。
本申请主张日本专利申请特愿2006-274243号(申请日:2006年10月5日)的优先权,并且将该申请的全部记载内容以引用的方式编入本申请文件中。
背景技术
哺乳动物的组织或器官,在从受检体上取下后不做处理或者对其进行培养、增殖后,用于调查填补患者欠损部用的移植用组织、药剂、或化妆品的功效。另外,从特定的组织提取出干细胞、并使其增殖而使用的面向再生医疗的应用也受到了人们的关注。通常,从活体上获取的组织或培养组织在维持其机能的状态下储藏是有期限的,因此不可能在全部长的期间保持合适的在库品。为了延长储藏时间,进行利用冷冻的组织或细胞保存。已公开有当保存组织时在添加有冷冻保护剂的保存液中浸渍培养组织而冷冻保存的技术(例如,参照专利文献1)、将培养上皮层在浸渍到DMEM中的状态下在8~19℃下低温保存的技术(例如,参照专利文献2)等。
另外,作为哺乳动物细胞的保存方法,确立了冷冻保存的方法,在树立细胞的情况下用于使遗传的变化为最小的限度,在有寿命的细胞的情况下用于避免老化和形质转换(例如,参照非专利文献1和2)。在该方法中,为了使活性维持在50%以上来保存培养细胞等细胞,以每分钟1℃左右的速度逐渐冷却细胞,在—200℃左右下保存,保存结束时急速融解(解冻)。此时,为了防止细胞由于冷冻而被破坏,将细胞悬浊于含10%甘油三酯的完全培养基、或者含5~10%二甲基亚砜的条件培养基或者无血清培养基等中。冷冻时,液体凝固而结晶化,存在着在细胞内形成冰晶的问题。这些冰晶在解冻时对细胞的生长(生育)力造成不良影响。一般认为,上述甘油三酯等的冷冻保护剂使细胞内的液体玻璃化或非晶质化,从而抑制冰晶的生成。
为了从哺乳动物组织得到细胞,通常有利用酶处理等使细胞分散来培养、或者将组织片段本身浸到培养基中,获取从组织游走到培养基中的细胞的方法等。而且,本说明书中引用的全部文献通过引用而编入到本申请文件中。
专利文献1:日本专利文献特表平9-505032号公报;
专利文献2:日本专利文献特许第2693640号公报;
非专利文献1:井出利宪著、细胞培养入门Note、1999年、羊土社、139页(井出利憲薯、細胞培養入門ノ—ド、1999年、羊土社、139頁);
非专利文献2:Sigma细胞培养手册、2005年、Sigma-Aldrich Japan株式会社、286页(シグマ細胞培養マニユアル、2005年、シグマアルドリツチジヤパン株式会社、286頁)。
当对获取的组织通过酶处理等进行分解后回收细胞时,由于多种细胞混杂,难以只获得目标细胞。因此,使用仅由特定细胞育成的选择培养基来培养回收的细胞,会花费用于选择目标细胞的功夫和时间。另外,在将组织片段本身浸入到培养基中并等待细胞从组织向培养基中游走的方法的情况下,由于需要长时间的培养并且为了将游走后所得的细胞从组织分离而需要继代,因此要花费功夫和时间。
发明内容
本发明者发现了如下事实,即:当从探取的组织仅使作为目标的细胞游走到组织片段的边缘、并不做任何处理将其冷冻保存时,组织内的细胞发生冰、溶质的结晶,从而细胞受到重大损伤,相对于此,存在于组织边缘的细胞即使在组织中发生了冰、溶质的结晶也不会因此受到损伤,可以通过通常的冷冻方法长时间储藏,并且能够通过解冻冷冻组织作为可再生长的细胞回收。基于这些事实,完成了本发明。
即,本发明涉及的组织来源细胞的冷冻保存方法的特征在于,将含有目标细胞的组织片段化,将片段化的组织片段在规定的培养基中培养,回收经培养得到的组织片段,并悬浊于冷冻保护溶液中,然后将该组织片段悬浊物在—70℃以下的温度下冷冻。
在本发明优选的实施方式中,所述组织是从哺乳动物身上探取或培养而得的组织。而且,所述组织片段的培养进行组织内部的细胞游走到组织片段的边缘所必要的时间。所述规定的培养基是能够使该组织中存在的所希望的细胞游走到组织片段的边缘的培养基。
而且,在本发明的一个实施方式中还包括以下过程,即:使所述冷冻的组织片段悬浊物解冻,对解冻的组织片段进行培养,回收游走到培养基中的细胞。
在本发明的另一个实施方式中,提供一种来源于真皮的成纤维细胞的冷冻保存方法,其特征在于,将从哺乳动物身上採取的皮肤片段化,将片段化的皮肤片段在含血清的最小必需培养基中培养,回收经培养得到的皮肤片段并悬浊于冷冻保护溶液中,然后将该皮肤片段悬浊物在—70℃以下的温度下冷冻。所述片段化的皮肤片段的最大直径优选为5mm以下,更优选为1mm~0.5mm。所述皮肤片的培养,在通常的细胞培养条件下,例如约37℃、5%的二氧化碳的条件下,优选进行5~10天,在典型的一个实施方式中进行约1周(7天)。
在本发明的进一步优选的实施方式中,所述冷冻保护溶液含有10%的甘油三酯或5~10%的二甲基亚砜,所述组织片段悬浊物的冷冻在液氮中进行。
发明效果
利用本发明的方法冷冻的组织片段中含有来源于该组织的可生长的细胞,因此在解冻该组织片段来培养时能够回收较多的生存细胞。因此,与对从活体上探取的组织培养,并只预先回收细胞来保存的情况相比,可以在短时间内完成冷冻保存,例如,在皮肤成纤维细胞的情况下能够以约1周的时间完成冷冻保存,从而能够在短时间且以低成本保存组织来源细胞。而且,通过在冷冻前的组织片段的培养中使用规定的培养基,能够仅仅将该来源于组织的所希望的细胞诱导到组织片段的边缘以可生长的状态保存。因而,在冷冻保存结束后对组织片段进行解冻、培养时,能够高效地只获取所希望的细胞。
附图说明
图1是示出在直接冷冻保存皮肤组织的情况(D组)和利用本发明的方法进行冷冻的情况(C组)下的刚解冻后所见情形的照片。
图2是示出在直接冷冻保存皮肤组织的情况(D组)和利用本发明的方法进行冷冻的情况(C组)下的解冻后培养第一天所见情形的照片。
图3是示出在直接冷冻保存皮肤组织的情况(D组)和利用本发明的方法进行冷冻的情况(C组)下的解冻后培养第七天所见情形的照片。
具体实施方式
(定义)
在本说明书中,以下的用语定义如下。用语“组织(tissue)”是指在多细胞生物中构成细胞分化而具有同一机能、形态的细胞集团。动物的组织根据形态、机能、或者发生学可大致分为上皮组织、结缔组织、肌肉组织、神经组织。组织的成分不仅仅是细胞,还有作为充满细胞之间的空间的物质的基质(matrix)。多个组织或细胞集合起来构成器官(organ)。动物的器官也称为脏器。在本发明中,“组织”可以和“器官”或“脏器”同义使用,例如除了皮肤、骨骼肌、心肌、神经等之外,还包括肝脏、肾脏、胰腺、脾脏、睾丸、卵巢、副肾、脑、甲状腺等。
用语“冷冻保护溶液”,是指在冷冻保存组织或细胞时,通过液体成分的结晶化用于保护细胞使其免受损害的所有保护剂,包括细胞浸透性的玻璃化剂或细胞非浸透性的玻璃化剂。非细胞浸透玻璃形成剂包括软骨素硫酸、聚乙烯吡咯烷酮、聚乙二醇、或羟乙基淀粉等复合碳水化合物的高分子量形成体。细胞浸透玻璃化剂包括甘油三酯、丙二醇、乙二醇、二甲基亚砜(DMSO)等。作为优选的冷冻保护溶液,可以例举有含10%甘油三酯的完全培养基、含10%DMSO的完全培养基、含10%甘油三酯的50%条件培养基+50%新鲜培养基、含10%DMSO的50%条件培养基+50%新鲜培养基、含7.5%DMSO的50%条件培养基+50%无血清培养基、以及含7.5%DMSO与10%BSA的新鲜无血清培养基等,但不限于这些。
用语“培养基”乃至“培养液”,是指为了在玻璃器内使细胞、组织、器官等增殖、生长而给予的营养成分。用语“边缘(border ormarginal)”,是指片段化的组织片段的端部区域,即从组织片段末端到数μm以内的区域。用语“游走(migration)”是指在组织、器官或者活体内细胞从某一地点向另一地点移动。血球细胞通过血管壁移动,另外,肿瘤细胞转移也是一种游走。
(组织来源细胞的冷冻保存)
本发明的冷冻保存方法,首先将从活体上获取的组织片段化。可以根据各种组织优选使用片段化方法,例如,可以是利用胰蛋白酶、胶原酶等的酶处理的化学方法,也可以是利用手术用剪刀或手术刀细切的物理方法。在如同哺乳动物的皮肤那样比较薄而脆弱的组织的情况下,优选利用物理方法的片段化。被片段化的组织片段的大小根据使用的组织而不同,例如,在皮肤组织的情况下,优选最大直径为5mm以下,更优选最大直径为1mm~0.5mm。
然后,将片段化了的组织片段在规定的培养基中培养。例如,可以使用片段化了的哺乳动物的皮肤。当从组织学的角度观察人的皮肤时,从表面以表皮、真皮以及皮下组织的顺序形成了层。表皮的主要构成细胞包括:角化细胞(Keratinocyte)、黑色素产生细胞(melanocyte)、所谓与知觉有关系的Merkel细胞、作为抗原呈递细胞的来自骨髓的细胞的朗格汉斯(Langerhans)细胞。表皮非常薄,为0.1~0.3mm,在该表皮中起到防御作用的是角化细胞。存在于表皮下层的母细胞反复增殖,在皮肤的表面上形成物理上以及化学上都强韧的角化层(细胞内以被称为硬的角蛋白纤维的物质充满的状态),成为壁垒。对于创伤治愈,角化细胞游走覆盖伤口表面是比较重要的。另外,真皮由成纤维细胞、以及由该细胞产生的弹性胶原性间质构成,其在带来皮肤的伸缩性和弹性同时,还富含毛细血管,具有与表皮协调的作用。真皮(胶原纤维、弹性蛋白纤维、成纤维细胞)被保护在表皮下而不易受到来自外部的损伤,通过保持水分支持皮肤的机能,主要起到保持皮肤的弹性、张力的作用。
通过调节用于培养组织片段的培养基成分以及有无血清添加或者其添加量,能够使该组织中存在的所希望的细胞游走到组织片段的边缘。作为本发明的一个实施方式,在皮肤组织的情况下,可以通过使用含血清的最小必需培养基来使来源于真皮的成纤维细胞良好地游走。作为最小必需培养基,是可进行细胞培养、含有定义的数量的营养源的培养基,例如可以例举有Eagle的MEM培养基、Dulbecco改良Eagle培养基(DMEM)、Ham的培养基、RPMI1640培养基等。另外,为了抑制成纤维细胞的增殖并使能增殖的角化细胞选择性地游走,已知可使用无血清、低钙浓度的培养基。而且,为了使角化细胞、黑色素产生细胞游走,向培养基中添加的肽添加物(上皮成长因子、胰岛素、碱性成纤维细胞增殖因子)是重要的。
作为其他实施方式,已公开了使作为末梢神经损伤时诱导神经再生的材料有用的施沃恩(Schwann)细胞选择性地游走的方法(参照日本专利文献特开2003-70465号公报)。根据该方法,在用含血清的培养基对经酶处理过的末梢神经片培养规定时间后,用无血清培养基培养规定时间,从而能够在抑制了成纤维细胞增殖的情况下诱导施沃恩细胞游走。而且,也可以使用2.5%左右的FCS等、低浓度的含血清的培养基进行培养。在另外的实施方式中,可以从脐带静脉、大动脉、肺动脉等使血管内皮细胞或血管平滑肌细胞等选择性地游走。其中使用的培养基能够从Sigma公司、Aldrich公司、Invitrogen/GIBCO公司、Clontech公司、Qiagen公司、Kurabo、Takara-bio株式会社等销售商购得。
上述组织片段的培养,优选进行为了使组织内部的所希望的细胞游走到组织片段的边缘所必需的时间,例如,在皮肤组织的情况下,在约37℃的培养温度下培养5~10天,优选约1周(7天)。如果培养时间短,那么真皮成纤维细胞就不能完全游走到皮肤组织片段的边缘,由于停留在组织内(皮肤片内),所以在冷冻组织片段时,这些细胞会受到损伤,另外,如果培养时间较此更长,那么细胞就游走到组织片段的外部,与通常的细胞冷冻保存没有什么变化。
然后,回收上述培养组织片段,在去除培养基后,悬浊于冷冻保护溶液中。培养组织片段由于是浮游在培养基中或者是缓缓地黏附到培养容器,所以能够通过对容器给予轻轻的敲击或吸管操作等容易地回收。
最后,在—70℃以下的温度下冷冻上述组织片段悬浊物。优选在约—140℃~约—180℃下冷却。冷却速度优选缓慢的1分钟—1℃左右,使用程序冷冻仪,或者用小瓶立放到绝热箱(发泡苯乙烯制箱等)中,放入—70℃~—90℃的冷冻库中冷冻。冷冻后,优选转移到液氮保存容器中在进一步低的温度下保存。
(冷冻保存的组织片段悬浊物的解冻)
冷冻的组织片段悬浊物通过高速升温解冻,以便在约1~数秒以内解冻。例如,可以将冷冻组织片段悬浊物的管在水浴中加热、或者诱导加热。优选地,通过将在管内冷冻的组织片段悬浊物浸渍到37℃的水浴中来解冻。
如果长时间与冷冻保护剂接触就有损伤细胞的可能,因此优选在维持在组织片段的边缘部存在的细胞的活力的基础上,在尽可能短的时间内从解冻的组织片段上去除冷冻保护剂溶液。例如,将安瓿或小瓶的内容物转移到加有15~20ml培养基的烧瓶或者适当的容器中,照常进行培育。在黏附细胞的情况下,大部分的细胞黏附后(通常3~4小时)立即将己稀释的含有冷冻保护剂的培养基除去,更换成新的培养基。在对冷冻保护剂具有易感性的细胞的情况下,可以通过低速离心分离而容易地将旧的培养基除去。例如,将安瓿或小瓶的内容物转移到加入有新的10ml培养基的15ml的离心管中,以100×g离心分离5分钟,将含有冷冻保护剂的上清废弃,使组织片段切片再次悬浊于新的培养基。随后,将组织片段的悬浊物转移到合适的培养容器中,照常进行培育。
而且,在以下的实施例中,具体说明了本发明实施所使用的材料以及方法,但所述实施例并不是对本发明的限定。
实施例1
成人女性3名(年龄33岁、27岁以及35岁)和成人男性1名(年龄50岁),经本人的同意,探取了皮肤进行以下的实验。麻醉各被验者后,从耳廓后面探取1mm~3mm的全层皮肤。立即进行2小时酶(dispase2000单位/ml、合同酒精)处理,将全层皮肤分离为表皮层和真皮层,废弃掉表皮层后,细切真皮层(直径约0.5mm),制作10切片标本。将得到的10个标本切片分成2组,以供以下的实验。
D组(直接组):将标本切片不作任何处理而浸到冷冻保存液(10%DMSO、80%αMEM、10%人血清)或者市售的细胞冷冻保存液cellbanker(注册商标)1(十慈field株式会社),在—80℃下保管12小时后,用液氮冷冻2周。
C组(培养组):将标本切片在含10%人血清的αMEM培养基中,并在5%二氧化碳浓度、37℃下培育1周。随后,将切片回收到离心管中,去除上清后,与上述同样地浸入到冷冻保存液中,在—80℃下保管12小时后,用液氮冷冻2周。
经过2周后,将上述D组以及C组的各标本从液氮中取出并解冻,在含10%人血清的αMEM培养基中,并在5%二氧化碳浓度、37℃下培育。用显微镜观察各标本刚解冻后、培养第1天、以及培养第7天的情形,各自的代表例如图1、图2以及图3所示。如图1所示,刚解冻后的标本,D组和C组都没有差异。从图2可见,D组在刚解冻后没有特别的变化,但C组中细胞开始向组织片段的附近游走了。在培养第7天的D组中,在2个皮肤片中发现了细胞游走(参照图3的d—1),而在其他3个皮肤片中未发现细胞游走而死灭(参照图3的d—2)。另外,在培养第7天的C组中,从全部5个皮肤片都发现了良好且大量的细胞游走(参照图3的c—1以及c—2)。
如上所述,D组中,细胞的游走数明显少,而且在真皮内细胞死灭、完全没有细胞游走的皮肤片在半数以上。与此相对,C组中,细胞的游走数明显多,而且在真皮内细胞死灭、完全没有细胞游走的皮肤片一个也没有。
产业上的利用可能性
以往,关于保存细胞,如果不完全是细胞的形态,则很难实现半永久性保存。但是,例如通过将皮肤这样的组织细切、并使目标细胞游走到组织边缘后、冷冻保存每个组织片段,能够简便且有效地保存所希望的细胞,由此在使用细胞的诊断、治疗等的生命科学相关产业、以及医药品产业中有用。
本发明基于上述实施例进行了说明,但不限于上述实施例。在本发明全部公开(包含权利要求书)的范围内,基于本发明的基本技术思想,可进一步对实施方式或实施例进行变更和调整。而且,在本发明权利要求书的范围内,可进行各种公开要素的多样组合或选择。并且,本发明进一步的要解决的问题、目的以及展开方式可从包含权利要求书在内的本发明的全部公开事项得以明确。
Claims (10)
1.一种组织来源细胞的冷冻保存方法,其特征在于,将含有目标细胞的组织片段化,将片段化的组织片段在规定的培养基中培养,回收经培养得到的组织片段,并悬浊于冷冻保护溶液中,然后将该组织片段悬浊物在—70℃以下的温度下冷冻。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述组织是从哺乳动物身上探取或者培养而得的组织。
3.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述组织片段的培养进行组织内部的细胞游走到组织片段的边缘所必要的时间。
4.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述规定的培养基是能够使该组织中存在的所希望的细胞游走到组织片段的边缘的培养基。
5.根据权利要求1至4中任一项所述的方法,其特征在于,还包括以下过程,即:使所述冷冻的组织片段悬浊物解冻,对解冻的组织片段进行培养,回收游走到培养基中的细胞。
6.一种来源于真皮的成纤维细胞的冷冻保存方法,其特征在于,将从哺乳动物身上採取的皮肤片段化,将片段化的皮肤片在含血清的最小必需培养基中培养,回收经培养得到的皮肤片并悬浊于冷冻保护溶液中,然后将该皮肤片悬浊物在—70℃以下的温度下冷冻。
7.根据权利要求6所述的方法,其特征在于,所述片段化的皮肤片的最大直径为5mm以下。
8、根据权利要求6所述的方法,其特征在于,所述片段化的皮肤片的最大直径为1mm~0.5mm。
9、根据权利要求6至8中任一项所述的方法,其特征在于,所述皮肤片的培养在约37℃的温度下进行5~10天。
10、根据权利要求6至8中任一项所述的方法,其特征在于,所述皮肤片的培养在约37℃的温度下进行约7天。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP274243/2006 | 2006-10-05 | ||
JP2006274243A JP5100078B2 (ja) | 2006-10-05 | 2006-10-05 | 組織由来細胞の凍結保存方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN101522890A true CN101522890A (zh) | 2009-09-02 |
Family
ID=39268596
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CNA2007800374366A Pending CN101522890A (zh) | 2006-10-05 | 2007-10-04 | 组织来源细胞的冷冻保存方法 |
Country Status (6)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP2077320A1 (zh) |
JP (1) | JP5100078B2 (zh) |
KR (1) | KR20090059157A (zh) |
CN (1) | CN101522890A (zh) |
AU (1) | AU2007302949A1 (zh) |
WO (1) | WO2008041744A1 (zh) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103269580A (zh) * | 2010-12-30 | 2013-08-28 | Zf百奥特丝有限责任公司 | 细胞冷冻方法 |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP5387878B2 (ja) | 2008-03-31 | 2014-01-15 | 株式会社ジェイテクト | モータ制御装置 |
JP6329468B2 (ja) * | 2014-09-16 | 2018-05-23 | 三菱製紙株式会社 | 線維芽細胞のガラス化凍結保存方法 |
Family Cites Families (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5100676A (en) | 1990-02-02 | 1992-03-31 | Biosurface Technology, Inc. | Cool storage of cultured epithelial sheets |
US5518878A (en) | 1993-09-15 | 1996-05-21 | Organogenesis Inc. | Cryopreservation of cultured skin or cornea equivalents with agitation |
JP2003070465A (ja) | 2001-08-31 | 2003-03-11 | Keio Gijuku | シュワン細胞の培養方法 |
KR20070015519A (ko) * | 2004-03-11 | 2007-02-05 | 아르브라스트 가부시키가이샤 | 생체 조직 시트, 그것의 제조 방법, 및 그것을 이용한 이식방법 |
-
2006
- 2006-10-05 JP JP2006274243A patent/JP5100078B2/ja active Active
-
2007
- 2007-10-04 CN CNA2007800374366A patent/CN101522890A/zh active Pending
- 2007-10-04 WO PCT/JP2007/069466 patent/WO2008041744A1/ja active Application Filing
- 2007-10-04 EP EP07829204A patent/EP2077320A1/en not_active Withdrawn
- 2007-10-04 KR KR1020097007620A patent/KR20090059157A/ko not_active Application Discontinuation
- 2007-10-04 AU AU2007302949A patent/AU2007302949A1/en not_active Abandoned
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103269580A (zh) * | 2010-12-30 | 2013-08-28 | Zf百奥特丝有限责任公司 | 细胞冷冻方法 |
CN103269580B (zh) * | 2010-12-30 | 2015-10-14 | Zf百奥特丝有限责任公司 | 细胞冷冻方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP2077320A1 (en) | 2009-07-08 |
KR20090059157A (ko) | 2009-06-10 |
JP5100078B2 (ja) | 2012-12-19 |
AU2007302949A1 (en) | 2008-04-10 |
JP2008092801A (ja) | 2008-04-24 |
WO2008041744A1 (fr) | 2008-04-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN104145943B (zh) | 一种人脐带华通氏胶组织的冻存保护液及其制备与应用 | |
CN1292651C (zh) | 培养皮肤组织相同物的冷藏和贮存的方法和包装设计 | |
CN104560870B (zh) | 一种制备蜕膜间充质干细胞的方法 | |
CN109090100A (zh) | 一种间充质干细胞冻存液及其制备方法与使用方法 | |
CN109843052A (zh) | 用于细胞冷冻保存的组合物和方法 | |
JP2644024B2 (ja) | 生体外で培養された上皮組織の移植片を保存する方法 | |
CN108207930A (zh) | 一种鸡尾酒式冷冻保护剂及其应用 | |
CN104560869B (zh) | 一种制备绒毛膜间充质干细胞的方法 | |
Ivanics et al. | Patient-derived xenograft cryopreservation and reanimation outcomes are dependent on cryoprotectant type | |
CN108617638A (zh) | 组织和/或细胞冻存保护液及其制备与应用 | |
JP6745449B2 (ja) | 臍帯組織の凍結保存方法 | |
KR101407355B1 (ko) | 식물 유래의 재조합 인간 혈청 알부민, 지질 및 식물 단백질 가수분해물을 유효성분으로 포함하는 줄기세포 또는 일차배양세포의 동결보존용 조성물 | |
CN1184884C (zh) | 组织等效物的冷冻保存方法和冷冻保存的组织等效物 | |
CN101522890A (zh) | 组织来源细胞的冷冻保存方法 | |
CN100463963C (zh) | 一种家猪皮肤组织冷冻保存方法 | |
JP2009219503A (ja) | 組織由来細胞の凍結保存方法 | |
CN108124853A (zh) | 一种间充质干细胞的保存方法 | |
CN106520675A (zh) | 一种包含Clusterin蛋白的体外胚胎培养液及其在胚胎冷冻保存中的应用 | |
Lambert | The influence of temperature and fluid medium on the survival of embryonic tissues in vitro | |
Laschke et al. | University of Wisconsin solution for the xeno-free storage of adipose tissue-derived microvascular fragments | |
RU2398873C1 (ru) | Способ получения препаратов для медицинских целей | |
CN1218632C (zh) | 用于治疗性克隆的人体细胞组织器官保存方法 | |
CN108812641A (zh) | 人胎盘绒毛组织的制备冻存方法和应用 | |
Sugishita et al. | Methods of ovarian tissue cryopreservation: vitrification | |
Kilbride et al. | Scaling up Cryopreservation from Cell Suspensions to Tissues: Challenges and Successes |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C02 | Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001) | ||
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Open date: 20090902 |