具体实施方式
下面结合实施例对本发明作进一步详细说明。
实施例1(解热、抗炎)
1.1实验目的
观察高纯度连翘酯苷在解热、抗炎方面的用途。
1.2实验材料
1.2.1药品
受试药物:高纯度连翘酯苷:为连翘有效成分提取物;纯度>90%;上海玉森新药开发有限公司提供。理化性质: 本品为黄色粉末。保存条件:4℃,避光保存。批号:060425。
试验设三个剂量组(以下简称高纯度组)。①大鼠给药配制方法:按10ml/(kg·d)尾静脉注射给药,低、中、高剂量组分别相当于临床日用量的3、6、12倍;②小鼠给药配制方法:按10ml/(kg·d)给药,低、中、高剂量组分别相当于临床日用量的5、10、20倍。
阳性对照药物:双黄连注射液(以下简称双黄连),黑龙江多多药业责任有限公司,批号:2005091512,试验时给药剂量大鼠为相当于临床日服剂量的6倍;小鼠为相当于临床日用剂量的10倍。
连翘酯苷粗提药物(以下简称粗提物组):经HPLC测定,纯度低于90%。试验时给药剂量大鼠为相当于临床日服剂量的6倍;小鼠为相当于临床日用剂量的10倍。
1.2.2动物
KM小鼠,雌雄各半,体重18~22g,SPF级。SD大鼠,体重180~220g,清洁级。
1.2.3仪器
塞多利斯BS124S电子天平、分光光度计。
1.2.4试剂
2,4-二硝基苯酚、二甲苯、冰醋酸、印度墨汁。
1.3数据处理
1.4方法及结果
1.4.1 2,4-二硝基苯酚致热大鼠解热试验
分组:雄性大鼠200±20g,用水银体温计测正常体温,每日2次,连续3天。试验前每小时测体温一次,连续2次,选取体温在37.3~38.6℃之间者随机分6组,每组10只,即NS对照组、双黄连对照组、粗提物组、高纯度低、中、高剂量组,取其均值作为基础体温。
造模:大鼠给药后,立即背部皮下注射临时配制的1.5mg/ml 2,4-二硝基苯酚10ml/kg,测量并记录0.5、1、1.5、2、3、4小时动物体温。
结果显示,给药后0.5h,高纯度中、高剂量组与NS对照组比较即出现显著性差异(P<0.05),给药后1h~3h,高纯度低、中、高剂量组与NS对照组比较均出现不同程度显著性差异(P<0.05,P<0.01);粗提物组给药1~2小时与NS对照组比较均出现不同程度差异(P<0.05,P<0.01),与高纯度组相比,起效慢,解热维持时间短。结果见表1.1。
表1.1 2,4-二硝基苯酚致热大鼠解热试验给药后各时相体温变化
注:与NS组比较,*P<0.05,**P<0.01
1.4.2细菌内毒素致热大鼠的解热试验
内毒素溶液的配制:取定量内毒素标准管一只,用注射用生理盐水溶液稀释至10eu/ml,现用现配。
分组:同1.4.1。
造模:静脉注射给药后1h,每只动物静脉注射细菌内毒素1ml/kg(10eu/ml),于内毒素攻击后1、1.5、2、3及4h各测体温1次。
结果显示,与NS对照组比较,高纯度高剂量组及双黄对照组给药0.5h后即出现显著性差异(P<0.01),给药1h至4h,高纯度中、高剂量组及双黄对照组与NS对照组比较均出现不同程度显著性差异(P<0.05、P<0.01);高纯度低剂量组给药1.5h至4h与NS对照组出现 极显著性差异(P<0.01);粗提物组给药1.5h和2h与NS对照组比较出现显著性差异(P<0.05)。结果见表1.2:
表1.2细菌内毒素致热大鼠的解热试验给药后各时相体温变化(℃,
注:与NS组比较,*P<0.05,**P<0.01
1.4.3高纯度连翘酯苷对二甲苯致小鼠耳肿胀的作用
分组:同1.4.1
造模:10ml/kg连续静脉给药4天,末次给药后30min每只小鼠左耳涂二甲苯50ul,右耳作空白对照,致炎15min后将小鼠脱颈椎处死,剪下两耳,用打孔器(直径7mm)分别在两耳同一部位打下耳片,称重,计算肿胀度和肿胀抑制率。公式:
肿胀度=左耳片重量-右耳片重量
结果显示,NS组小鼠左耳红肿,耳肿胀度高达0.0145±0.0037g,而高纯度连翘酯苷高、中、低剂量组小鼠及双黄连对照组的耳肿胀度均小于NS对照组,且与NS组比较中剂量有不同的显著性差异(P<0.05,P<0.01);连翘酯苷粗提物组与NS组比较无显著性差异。结果见表1.3:
表1.3连翘酯苷对二甲苯致小鼠耳肿胀的影响
注:与NS组比较,*P<0.05,**P<0.01
1.4.4高纯度连翘酯苷对小鼠血管通透性影响的实验
取体重18-22g小鼠,分组同1.4.1。动物给药后1h尾静脉注射0.5%伊文思蓝生理盐水溶液0.1ml/10g体重,随即腹腔注射0.6%醋酸0.20ml/只,20min后脱颈椎处死,剪开腹部皮肤肌肉,用6ml生理盐水分3次洗涤腹腔,吸管吸出洗涤液、合并后加入生理盐水至10ml,3000rpm离心15min;取上清液与590nm比色测定,记录0D值进行统计分析。
结果显示,高纯度中、高剂量组与NS组比较有显著性差异(P<0.05),低剂量组无显著性差异(P>0.05),双黄连对照组与NS组比较有显著性差异(P<0.05);粗提物组与NS组比较无差异(P>0.05)。结果见表1.4。
表1.4连翘酯苷对腹腔注射醋酸致小鼠腹腔毛细管通透性增高的影响
注:与NS组比较,*P<0.05,**P<0.01
1.5结论
高纯度连翘酯苷对2,4-二硝基苯酚致热大鼠及大肠杆菌内毒素致热家兔均有较好的退热作用;高纯度连翘酯苷具有抑制二甲苯致小鼠耳肿胀的作用,对醋酸致小鼠毛细管通透性增加也有较好的抑制作用。而粗提物有一定退热作用,但是效果不如高纯度连翘酯苷好;且 对二甲苯致小鼠耳肿胀、醋酸致小鼠毛细管通透性增加没有抑制作用
实施例2(增强免疫力试验)
2.1实验目的
观察高纯度连翘酯苷在增强免疫力方面的用途。
2.2实验材料
同实施例1中的1.2实验材料
2.3数据处理
同1.3。
2.4方法及结果
2.4.1高纯度连翘酯苷对小鼠碳廓清能力的影响
分组同1.4.1。10ml/kg连续尾静脉注射给药1周,取各组小鼠,分别经尾静注射20%印度墨汁0.1ml,于注射后1分钟和5分钟各采血20ul置2ml0.1%Na2CO3溶液中混匀,于680nm下测定OD值,并按下式计算K值。
公式:K=(logOD1-logOD5)/(t5-t1)
结果显示,高纯度高剂量组与NS组比较有极显著性差异(P<0.01),低、中剂量组无显著性差异(P>0.05);粗提物组与NS组比较无显著性差异(P>0.05);双黄连对照组与NS组比较有显著性差异(P<0.05)。结果见表2.1。
注:与NS组比较,*P<0.05,**P<0.01
2.4.2淋巴细胞转化试验
分组同1.4.1,每组12只。于给药的前3d,每鼠均加肌注植物血凝素(PHA)8mg/kg·d,连续给药8天,于最后1次给药后2h,小鼠剪尾取血,推片,瑞氏染色,油镜观察,计算外 周血淋巴细胞转化率。公式:
结果显示,高纯度低、中、高剂量组及双黄连对照组与NS组比较均有极显著性差异(P<0.01);粗提物组与NS组比较无显著性差异(P>0.05),结果见表2.2
注:与NS组比较,*P<0.05,**P<0.01
2.5结论
本实验结果表明,高纯度连翘酯苷能较好的增加小鼠炭廓清能力,抑制PHA对小鼠淋巴细胞的转化,具有增强免疫抵抗力的作用;而连翘酯苷粗提物没有这个作用。
实施例3(体外抗病毒试验)
3.1病毒增殖:
将流感甲型接种MDCK细胞上,加维持液置37℃、5%CO2培养,在96h后出现90%以上的病变,冻融3次后吹打离心,定量分装,-80℃冰箱冻存备用。
3.2病毒毒力测定:
将备用流感病毒甲型病毒用维持液做10倍比系列稀释,纵向重复3孔,横向依次接种在96孔板内的单层细胞上,37℃、5%CO2培养,每日观察病变,48-96h后,将板孔内液体吸弃,加1%中性红100ul置37℃染色2h,弃染液,用洗液将多余染料充分洗脱,加脱色液100ul,室温脱色10min,用酶标仪在540nm波长测定OD值,用公式1、2计算细胞病变率,然后公式3计算比距,比距与高于50%的病变率病毒稀释度指数相加,获得TCID50(Reed-Muench方法)。结果流感甲型TCID50为10-3/ml。
细胞存活率=(各组OD值-空白对照OD值)/(正常细胞OD值-空白对照OD值)(公式1)
细胞病变率=1-细胞存活率 ………………(公式2)
细胞比距=(高于50%病变率-50%)/(高于50%病变率-低于50%病变率)…(公式3)
3.3药物细胞毒性测定:
将药物用细胞培养液1∶5、1∶10、1∶20、1∶40、1∶80、1∶160、1∶320、1∶640、1∶1280、1∶2560稀释,接种于多孔板中已经长成单层的MDCK细胞上,37℃、5%CO2培养,每日观察细胞病变,连续7d观察药物毒性,细胞出现病变者判为药物毒性,并根据公式1、2计算药物半数中毒浓度,结果见表3.1。
表3.1药物毒性试验(半数中毒浓度IC50(mg/ml))
可以看出,高纯度连翘酯苷在MDCK的半数中毒浓度为2.84mg/ml;利巴韦林的半数中毒浓度为33.8mg/ml;感冒退热颗粒的半数中毒浓度为31.4mg/ml。
3.4药物抑毒试验:
将药物用无血清1640培养液分别作5倍系列稀释,1∶5、1∶52、1∶53、1∶54、1∶55、1∶56、1∶57的稀释后,分别纵向重复6孔(A、B、C、D、E、F),依次横向(1、2、3、4、5、6、7、8、9、10)加入96孔板内的单层细胞上,将A、B、C行作为药物对照,D、E、F行加100个TCID50的病毒(100ul),同时设计有阳性药利巴韦林和感冒退热颗粒(相同稀释方法)做抗病毒效果的对照,11列为病毒对照、12列为细胞对照。37℃、5%CO2培养,每日观察病变,连续观察96h。培养96h病毒对照出现90%以上的病变后,将板孔内液体吸弃,加1%中性红染色,在540nm波长测定OD值,用公式1计算细胞病变率,用公式(2)计算细胞存活率,Reed-Muench方法计算病毒毒力,观察药物抑杀病毒的效果。将半数细胞中毒浓度除以半数有效浓度为抑毒指数(TI)。将各组抑毒指数相比较,观察药物连翘酯苷的抑毒效果。结果见表3.2。
表3.2药物半数有效浓度和抑毒指数的测定
从表3.2看出,三种药物对流甲有一定抑制效果,连翘酯苷抑制流感甲型病毒的抑制指数为13.8,略高于感冒退热颗粒,但略低于利巴韦林。
3.5结论与评价:
连翘酯苷可以抑制流感甲型病毒在MDCK细胞上的繁殖,抑毒指数为13.8,略高于感冒退热颗粒,但略低于利巴韦林。综上所述,在体外连翘酯苷对流感甲型病毒具有一定的抑制作用。
实施例4(体内抗病毒试验)
4.1实验材料
实验动物:昆明种鼠,雄性,体重13~14g,洁净级。
受试药物
高纯度连翘酯苷:由上海玉森新药开发有限公司提供,批号分别为:060425,连翘酯苷纯度90%。
阳性对照药 利巴韦林注射液产地:山东省鲁抗辰欣药业有限公司批号:国药准字H20003176。
病毒株
呼吸道合胞病毒(Long株)。
细胞株
HEL:人胚肺细胞,为呼吸道合胞病毒宿主细胞株;
Hep-2:人喉癌细胞系,为呼吸道合胞病毒宿主细胞株。
培养液
pH7.2的磷酸盐生理盐水(PBS):含NaCL 8g、KCL 0.2g、KH2PO4 0.2g、Na2HPO4 2.9g,加双蒸水至1000ml,除菌过滤,分装置4℃备用。
细胞消化液:胰酶(Diffico公司产品)1.25g用1000ml PBS溶解,除菌过滤,分装青霉素瓶,置-20℃冰箱备用。
仪器
CO2恒温培养箱;分光光度计;恒温培养箱;净化工作台;离心机;-80℃冰箱;-20℃冰箱;酶标仪;722分光光度计。
实验室:
P2实验室。
4.2试验方法与结果
4.2.1细胞复苏传代
将液氮冻存的Hep-2、HEL细胞在37℃水浴1min内迅速融化,悬浮于培养液中,于细胞 培养瓶中37℃、5%C02静止培养,3d后长成单层,用0.25%胰酶消化,1∶3(HEL细胞1∶2)传代,细胞长成单层时用于试验。
4.2.2病毒活化和传代
将冻干保存的呼吸道合胞病毒毒种0.5ml接种于已经长成单层的Hep-2细胞上,37℃、5%CO2培养,3-5d后出现细胞病变,用同样方法将病毒传代扩增。收获的病毒冻融3次、吹打离心(10000r/min,20min)、定量分装、-80℃冰箱冻存备用。
4.2.3病毒毒力测定:
制备多孔板内单层细胞备用。用维持液将病毒液做10倍比系列稀释,纵向重复3孔,横向依次接种在96孔板内单层细胞上,37℃、5%CO2培养,显微镜下观察细胞病变和病变率,公式1计算比距,比距与低于50%的病变率病毒稀释度指数相加,获得TCID50。结果见表4.1。
细胞比距=(高于50%病变率-50%)/(高于50%病变率-低于50%病变率)……公式(1)
表4.1:病毒毒力测定(TCID50/ml)
由表1看出,呼吸道合胞病毒24h TCID50为10-5.6;48h TCID50为10-8.8。
4.2.4体内疗效模型的建立和病毒感染剂量的确定:
昆明种小鼠40只,雄性,体重13~14g,随机分为4组,每组10只,分别为:病毒大剂量组、病毒中剂量组、病毒小剂量组和正常对照组。各组动物乙醚麻醉下分别鼻腔接种上述呼吸道合胞病毒毒液50μl、30μl、10μl和细胞培养液50μl,常规喂养,每日观察动物存活情况,死亡动物及时解剖。在第7d末次给药40min后,将动物眼动脉丛放血,牵颈臼处死,无菌取肺组织。结果见表4.2:
表4.2病毒重分离结果
从上述结果和上表可以看出,接种50μl病毒为造模最适剂量。
4.2.5体内抗病毒药效学试验:
昆明种鼠70只,雄性,体重13~14g。将动物按体重随机分为7组:正常对照组、病毒模型对照组、利巴韦林对照组和高纯度连翘酯苷大、中、小剂量组,连翘酯苷粗提物组,每组10只。各组动物经尾静脉注射给药(给药剂量见表4.3)3天后,各组动物在乙醚麻醉下造模,正常组动物鼻腔接种细胞培养液50μl,其余动物均鼻腔接种呼吸道合胞病毒毒液 50μl,各组动物继续按表4.3剂量尾静脉注射给药7天。
表4.3动物给药剂量
在第7d末次给药2h后,将动物称重后取血、取胸腺、脾称重计算免疫学指数(表4.4);
*与病毒组比较:大剂量组体重t=2.595,p<0.05;正常组体重t=3.460,p<0.05;大剂量组脾指数t=3.333,p<0.05;中剂量组脾指数t=2.479,p<0.05;小剂量组脾指数t=2.712,p<0.05;正常对照组脾指数,t=4.55,p<0.05;大剂量组胸腺指数t=2.742,p<0.05;中剂量组胸腺指数t=6.190,p<0.05;正常组组胸腺指数t=2.545,p<0.05。与正常对照组比较大中小剂量组脾指数以及大剂量组胸腺指数t值分别为1.20,0.85,0.46,1.081,p>0.05。
从上表可以明显看出,动物感染病毒后,生长发育受到影响,体重小于正常对照组,具有显著性差异。而给与高纯度连翘酯苷干预后,大中小剂量组动物体重都有增加,其中大剂量组具有显著性差异;
同时,感染病毒的小鼠脾指数、胸腺指数降低,与正常对照组比较具有显著性差异。而给与高纯度连翘酯苷干预后,大、中、小剂量组动物脾和胸腺指数都有增加,其中大、中、小剂量组的脾指数和大剂量组的胸腺指数与病毒对照组比较均有显著性增加,达到正常水平(与正常对照组比较p>0.05),表明连翘酯苷对病毒感染引起的免疫力低下有显著的调节作用。而连翘酯苷粗提物则无提高免疫力的作用。
将各组肺组织用玻璃匀浆器匀浆,加100μl的细胞维持液吹打悬浮,高速离心(10000r/min)10mim,做1∶10稀释,再做连续2倍比系列稀释(2-1、2-2、2-3、2-4)后横向依次加入96孔板孔内已经长成单层的HEL细胞上,纵向重复3孔。37℃、5%CO2培养,每日观察细胞病变,第7d记录终末含毒浓度,计算终末含毒指数的几何均数,判断体内抗病 毒效果,结果见表4.5。
*与病毒模型组比较t=2.85,p<0.05.
由表4.5看出,高纯度连翘酯苷具有良好的体内抗病毒作用,且效果优于利巴韦林。4.2.6动物肺组织病理学检查:将石蜡包埋HE染色组织切片做显微镜检测,按照如下组织病例学评分系统进行评分,结果见表4.6。
表明大、中、小剂量的高纯度连翘酯苷均具有减轻病毒引起的肺组织损伤的所用,并表现出显著的量效关系,效果明显优于阳性药物利巴韦林和连翘酯苷粗提物。
附:组织病理学评分标准:
A.细支管、支气管周围浸润(部位的百分率):
0=无;1=少许(<25%);2=许多(25%~75%);3=所有(>75%)。
B.细支气管、支气管浸润的定性:
0=无偶见轻微的浸润,或支气管周围淋巴样细胞团块见于正常动物;1=轻不正常,常常伴有间断的环;2=中度完整的环或新月形的环,伴有<5个细胞的厚度;3=严重完全的环,伴有>5~10个细胞厚度。
C.细支气管/支气管腔渗出:0=无;1=轻度,≤25%腔闭合;2=重度,≥25%腔闭合。
D.血管周围浸润,(部位的百分率):0=无;1=少(<10%);2=许多(10%~50%);3=大多数(>50%)
E.实质性肺炎:0=无;1=轻度:斑状实质性浸润;2=重度。斑和融合的实质性浸润。
分数的计算=A+3(B+C)+D+E=0-26分
实施例5(体外抑菌试验)
5.1实验材料
5.1.1受试药物
连翘酯苷的高纯度药品和粗提物:见1.2.1
5.1.2细菌菌种
细菌菌种和病毒毒种:
乙型溶血性链球菌(SD CDC 02410-5)、金黄色葡萄球菌(SD CDC 25923)、草绿色链球菌(SD CDC 02404)、表皮葡萄球菌(SD CDC 02519)。
5.1.3培养液
MEM细胞培养液,含10%新生牛血清、MEM细胞维持液,含2%新生牛血清;营养肉汤。
5.1.4仪器
恒温培养箱、净化工作台、-80℃冰箱、-20℃冰箱、722分光光度计。、
5.2试验方法与结果
5.2.1活化菌种及菌液制备
将冻干保存的菌种接种于营养肉汤,37℃培养过夜,重复接种培养,获得活化菌种。
5.2.2抑菌试验:
将药物用细菌培养基稀释成20mg/ml浓度,然后做2倍比系列稀释(1∶2、1∶4、1∶8、1∶16、1∶32、1∶64、1∶128),取1ml分别加等容量的菌液:乙型溶血性链球菌(1.35×107/ml)、金黄色葡萄球(1.18×108/ml)、表皮葡萄球菌(4.05×107/ml)、草绿色链球菌(1.9×107/ml)。每个药物稀释度、每株菌重复3个试管;
同时设药物对照,即上述相同浓度的药物中加等量灭活菌液;菌液对照,即菌液加等容量培养液;培养液对照。
37℃培养24h,用722分光光度计于600nm检测吸光度,用公式③计算细菌抑制率,并将获得的数据代人公式①计算比距,比距与低于50%的病变率病毒稀释度指数相加,获得半数抑菌浓度。
(抑菌试验OD值-药物对照OD值)/菌液对照OD值-空白对照OD值)…公式③
5.2.3结果
见表5.1。
表5.1体外抑菌试验结果
金黄色葡萄球菌 草绿色葡萄球菌 表皮葡萄球菌 溶血性链球菌
半数抑菌浓度 2-2.5(3.54mg/ml) 2-3.5(1.77g/ml) 2-4.5(0.88g/ml) 2-2.6(3.30g/ml)
从上述内容和上表可以看出,连翘酯苷具有一定的体外抑菌效果。
5.3结论与评价
连翘酯苷对乙型溶血性链球菌、金黄色葡萄球菌、草绿色链球菌、表皮葡萄球菌有抑菌活性,而这些细菌都属于革兰氏阳性菌,故提示连翘酯苷对革兰氏阳性菌效果更为显著。