CN101337001B - 黄果茄提取物、其制备方法及其药物用途 - Google Patents

Abstract

本发明涉及一种黄果茄提取物、其制备方法及其药物用途。澳洲茄碱、茄边碱和刺茄碱三者的总含量为80wt％～99wt％，其中澳洲茄碱含量为30wt％～50wt％，茄边碱含量为10wt％～30wt％，刺茄碱含量为30wt％～50wt％。本发明还涉及到这种黄果茄提取物制备方法和作为活性成分制备预防和治疗肿瘤、糖尿病、哮喘病、冠心病等疾病的药物的用途。

Description

黄果茄提取物、其制备方法及其药物用途

技术领域

本发明涉及植物黄果茄提取物，其制备方法，和作为活性成分制备预防和治疗肿瘤、糖尿病、哮喘病、冠心病等疾病的药物的应用。

背景技术

黄果茄Solanum xanthocarpum为茄属植物，印度民间常用于治疗咳嗽、发热及心脏病。其果实含绿原酸(chlorogenic acid)，异绿原酸(isochlorogenic acid)，新绿原酸(neochlorogenicacid)，咖啡酸(caffeic acid)，咖啡酸甲酯(Methyl caffeate)，β-谷甾醇(β-sitosterol)。还富含糖苷生物碱，据报道含有澳洲茄碱(solasonine)，茄边碱(solamargine)和刺茄碱(solasurine)，其中澳洲茄碱在成熟果实和未成熟果实里的干重比例分别为0.75％和1.7％。Amir-ud-Din等从其浆果中得到了0.67％的糖苷生物碱混合物，并测定出其种子中含9.76％的油脂。

澳洲茄碱和茄边碱是黄果茄中主要的两个生物碱成分，在体外试验中，两个化合物均表现出对细胞膜脂的破坏性，两者表现出协同效应，茄边碱的破坏性更强，其中的鼠李糖可能在引导糖苷生物碱与细胞的结合中起了重要作用；一些对茄边碱的研究表明，茄边碱能够调节肿瘤坏死因子受体的表达从而引起癌细胞凋亡，2位的鼠李糖可能在触发细胞凋亡中起决定性作用。其它糖苷生物碱也表现出近似的生理活性。因此，摸索出合适的工艺，从黄果茄中提取出糖苷总生物碱部位，进行药效研究，可以作为抗肿瘤新药研究的一个方向。对黄果茄粗提物的预防治疗糖尿病、哮喘病和冠心病等活性的研究也是目前国外的关注点，但目前还没有研究确切地表明是粗提物中哪些化学成分在起作用。

中国专利授权公告号CN1329038C公开的茄属植物的水溶性萃取物、其制备方法及其药学组合物，其中水溶性萃取物是基本上是由60％-90％的澳洲茄碱及茄边碱所构成。

目前使用的黄果茄提取方法成本较高，有效成分含量较低，杂质较多，且制备过程中产生的污染较大。经提取后得到的产物有效成分的含量限制了其在药学组合物中的使用，尚不能满足高效药学组合物的需要。

发明内容

本发明的目的第一方面是提供了一种黄果茄提取物。

本发明的目的第二方面是提供上述黄果茄提取物的制备方法。

本发明的目的第三方面是提供上述黄果茄提取物在药物中的应用。

作为本发明第一方面的黄果茄提取物，包含澳洲茄碱和茄边碱，还包含刺茄碱，其中澳洲茄碱、茄边碱和刺茄碱三者的总含量为80wt％～99wt％。

澳洲茄碱含量为30wt％～50wt％，茄边碱含量为10wt％～30wt％，刺茄碱含量为30wt％～50wt％。

作为本发明第二方面的黄果茄提取物的制备方法，包括以下步骤：

(1)黄果茄果实，加乙醇提取，收集提取液A；

(2)回收提取液中的乙醇至无醇味，得浓缩液B；

(3)浓缩液B用阳离子交换树脂吸附，依次用水、乙醇和含碱乙醇进行洗脱，收集含碱乙醇洗脱部分C；

(4)含碱乙醇洗脱部分C，回收乙醇得浓缩液D；

(5)浓缩液D离心分离，弃上清液，得沉淀物E；

(6)沉淀物E用水洗涤至近白色且上清液pH值小于9，沉淀干燥后即得黄果茄提取物。

在上述步骤(1)中，乙醇的用量每次为生药量的2～8倍体积；乙醇的重量百分比浓度为50％～95％。优选为乙醇的用量每次为生药量的5倍体积；乙醇的重量百分比浓度为90％。

在上述步骤(1)中，采用回流或超声方式提取，提取次数为2～5次，每次1～3小时。优选为采用回流方式提取，提取次数为3次，每次1.5小时。

在上述步骤(3)中，阳离子交换树脂的用量为生药量的0.5～5倍体积。优选为生药量的1倍体积。

所述阳离子交换树脂的功能基为磺酸基、甲基磺酸基、磷酸基、羧基和酚羟基之中的一种。优选为磺酸基。

在上述步骤(3)中，优选的洗脱方法为依次用水洗树脂至流出液近无色，1～10倍树脂体积的重量百分比浓度为30％～90％的乙醇洗脱，0.5～10倍树脂体积的含碱乙醇洗脱。更优选的洗脱方法为依次用水洗树脂至流出液近无色，1～2倍树脂体积的重量百分比浓度为30％～60％的乙醇洗脱，1～5倍树脂体积的重量百分比浓度为90％的乙醇洗脱，1～5倍树脂体积的含碱乙醇洗脱。最优选的洗脱方式为依次用水洗树脂至流出液近无色，1倍树脂体积的重量百分比浓度为40％的乙醇洗脱，2倍树脂体积的重量百分比浓度为90％的乙醇洗脱，3倍树脂体积的含碱乙醇洗脱。

在上述步骤(3)中，所述含碱乙醇是重量百分比浓度为50～95％乙醇与碱的混合溶液，其中碱为氨水、氢氧化钠、碳酸钠、碳酸氢钠以及其它工业生产常用的碱之中的一种。优选的含碱乙醇是重量百分比浓度为90％乙醇与重量百分比浓度为25％氨水按体积比10∶1混合的溶液。

在上述步骤(6)中，如果沉淀物E颜色较深，增加一用丙酮洗涤沉淀至近白色的步骤。

在上述步骤(3)中，所述的阳离子交换树脂可以再生，其再生的方法是：用2％氢氧化钠水溶液加热浸泡树脂；装柱，用2％的氢氧化钠水溶液800ml洗脱；用水洗至流出液呈中性；用1N盐酸洗树脂至流出液pH值为2；用去离子水洗树脂至流出液pH值为6，即可投入重复使用。

根据本发明制备方法获得的黄果茄提取物中澳洲茄碱、茄边碱和刺茄碱三者的总含量为80wt％～99wt％，澳洲茄碱含量为30wt％～50wt％，茄边碱含量为10wt％～30wt％，刺茄碱含量为30wt％～50wt％。

作为本发明第三方面的上述黄果茄提取物的药物用途是以所述的黄果茄提取物中的澳洲茄碱、茄边碱和刺茄碱作为活性成分，加入药学上可接受的辅料，制成的任何一种剂型的药物。优选的剂型为注射剂。

作为本发明第三方面的黄果茄提取物在作为活性成分在制备预防与治疗肿瘤、糖尿病、哮喘病、心脏病等疾病的药物中的应用。

上述黄果茄提取物作为活性成分的具体药物用途如下，但不限于下述药物用途：

1、以黄果茄提取物作为活性成分可以在制备预防和治疗肿瘤药物中应用。

2、以黄果茄提取物作为活性成分可以在制备预防和治疗糖尿病药物中应用。

3、以黄果茄提取物作为活性成分可以在制备预防和治疗哮喘病药物中应用。

4、以黄果茄提取物作为活性成分可以在制备预防和治疗冠心病药物中应用。

本发明的黄果茄提取物含有活性成分澳洲茄碱、茄边碱和刺茄碱，其在预防与治疗肿瘤、糖尿病、哮喘病、冠心病等疾病方面有一定疗效。本发明的制备方法与现有技术相比，该方法工艺先进，大生产实用性强，成本相对较低。有机溶剂主要为乙醇，使用后的酸碱均经处理后排放，环境污染小。所得提取物杂质少，有效成分含量高。

具体实施方式

下面结合具体实施例对本发明做进一步的说明，但不以任何方式限制本发明。

实施例1

黄果茄提取物的制备：

(1)黄果茄鲜果400g，加90％乙醇2000ml，回流提取3次，每次1.5小时；

(2)提取液回收乙醇至无醇味，得浓缩液约300ml；

(3)浓缩液用400ml处理成H+型的HD-8强酸型阳离子交换树脂(上海华震科技有限公司)装柱吸附，依次用水洗脱至流出液近无色，40％乙醇400ml洗脱，90％乙醇800ml洗脱，含氨水乙醇(90％乙醇∶25％氨水为10∶1)1200ml洗脱；

(4)收集含氨水乙醇洗脱部分，回收乙醇；

(5)浓缩液5000rpm离心10分钟，弃上清液；

(6)少量水洗涤沉淀，5000rpm离心10分钟，如此用水洗涤2次，再用少量丙酮洗涤一次，沉淀减压干燥后即得黄果茄提取物0.49g，收率0.12％。

其中树脂再生过程如下：用2％氢氧化钠水溶液800ml加热浸泡树脂；装柱，用2％的氢氧化钠水溶液800ml洗脱；用水洗至流出液呈中性；用1N盐酸洗树脂至流出液pH值为2；用去离子水洗树脂至流出液pH值为6，即可投入重复使用。

实施例2

黄果茄提取物的制备：

(1)黄果茄鲜果1000g，加90％乙醇5000ml，回流提取3次，每次1.5小时；

(2)提取液回收乙醇至无醇味，得浓缩液约800ml；

(3)浓缩液用1000ml处理成H+型的HD-8强酸型阳离子交换树脂(上海华震科技有限公司)装柱吸附，依次用水洗脱至流出液近无色，40％乙醇1000ml洗脱，90％乙醇2000ml洗脱，含氨水乙醇(90％乙醇∶25％氨水为10∶1)3000ml洗脱；

(4)收集含氨水乙醇洗脱部分，回收乙醇；

(5)浓缩液5000rpm离心10分钟，弃上清液；

(6)少量水洗涤沉淀，5000rpm离心10分钟，如此用水洗涤2次，再用少量丙酮洗涤一次，沉淀减压干燥后即得黄果茄提取物1.3g，收率0.13％。

其中树脂再生过程如下：用2％氢氧化钠水溶液2000ml加热浸泡树脂；装柱，用2％的氢氧化钠水溶液2000ml洗脱；用水洗至流出液呈中性；用1N盐酸洗树脂至流出液pH值为2；用去离子水洗树脂至流出液pH值为6，即可投入重复使用。

实施例3

黄果茄提取物的制备：

(1)黄果茄鲜果400g，加90％乙醇2000ml，超声提取3次，每次1.5小时；

(2)提取液回收乙醇至无醇味，得浓缩液约300ml；

(3)浓缩液用400ml处理成H+型的HD-8强酸型阳离子交换树脂(上海华震科技有限公司)装柱吸附，依次用水洗脱至流出液近无色，40％乙醇400ml洗脱，90％乙醇800ml洗脱，含0.1％氢氧化钠的80％乙醇1200ml洗脱；

(4)收集含氢氧化钠乙醇洗脱部分，回收乙醇；

(5)浓缩液5000rpm离心10分钟，弃上清液；

(6)少量水洗涤沉淀，5000rpm离心10分钟。如此用水洗涤4次后，上清液pH值约为8。沉淀干燥后即得黄果茄提取物0.45g，收率0.11％。

其中树脂再生过程如下：用2％氢氧化钠水溶液800ml加热浸泡树脂；装柱，用2％的氢氧化钠水溶液800ml洗脱；用水洗至流出液呈中性；用1N盐酸洗树脂至流出液pH值为2；用去离子水洗树脂至流出液pH值为6，即可投入重复使用。

实施例4

黄果茄提取物中生物碱的鉴别测定(液质联用法)

实验仪器：

液质联用仪，Agilent 1200LC/MSD/VL

蒸发光散射检测器，SoftA 300A

迪马C18钻石柱，250×4.6mm

HPLC条件：

甲醇：0.2％乙酸，梯度0min，5∶95；10min，5∶95；15min，90∶10；25min，100∶0。流速0.8ml/min，柱温35℃。

蒸发光散射检测器检测条件：

DT＝70℃，SC＝35℃，GAS＝50psi

实验方法和结果：

取黄果茄提取物10mg，精密称定，置25ml量瓶中，少量甲醇溶解，甲醇稀释至刻度，0.45μm微孔滤膜过滤，10μl进样。保留时间在16～20分钟之间的一组峰为糖苷生物碱，峰面积之和占总峰面积的90％。HPLC-MS检测出分子离子峰17.8min，884(澳洲茄碱，M+1)；18.0，868(茄边碱，M+1)；18.3，722(刺茄碱，M+1)。

实施例5

黄果茄提取物中生物碱含量的测定(薄层扫描法)

实验仪器：

岛津CS-9310型双波长薄层扫描仪

TLC条件：

高效硅胶G板10cm×20cm；展开剂为正丁醇∶氨水(4∶1)上层液；碘化铋钾显色；λS＝468nm扫描。

实验方法和结果：

取黄果茄提取物10.05mg，精密称定，置5ml量瓶中，少量甲醇溶解，甲醇稀释至刻度，摇匀，取5μl点样，展开，显色，扫描，澳洲茄碱、茄边碱和刺茄碱三个点的面积百分比为37.0％、21.4％和41.6％。

实施例6

黄果茄提取物注射剂的制备

取黄果茄提取物2000mg，加注射用水900ml，1，2-丙二醇50ml，氯化钠9g，用0.1N的盐酸调pH值至4.0，加注射用水至1000ml，用0.2μm微孔滤膜过滤，灌封，湿热灭菌，得黄果茄提取物注射剂。

实施例7

黄果茄提取物灌胃给药对小鼠肝癌H22影响的实验研究

选取18～20g雌性C57BL/6小鼠，取生长良好的小鼠肝癌H22腹水，用生理盐水稀释成1～2×10⁷个/ml浓度的细胞悬液，每只小鼠右腋皮下接种0.2ml，随机分组，每组动物数10只，对照组15只，设：

空白对照组(相应溶剂，25ml/kg，ig×7)

注射用环磷酰胺(30mg/kg，ip×7)

黄果茄提取物(50mg/kg，ig×7)

黄果茄提取物(100mg/kg，ig×7)

黄果茄提取物(200mg/kg，ig×7)

黄果茄提取物用数滴吐温-80助溶后用0.5％CMC配成混悬液，注射用环磷酰胺用生理盐水配制成所需浓度。

接种后次日起给药，给药体积为0.5ml/20g体重，连续经口灌胃7天。接种后10日脱颈处死动物，解剖取瘤块，称瘤重，计算抑瘤率。

试验结果见表1，黄果茄提取物在50、100、200mg/kg的水平上经口灌胃给药时可以明显降低小鼠肝癌H22组织水平。给药7天后，各给药组与对照组相比，瘤重有显著差异(P＜0.01)。

表1.黄果茄提取物灌胃给药对小鼠肝癌H22的抑瘤作用

与对照组比较：^*P＜0.05，^**P＜0.01。

实施例8

黄果茄提取物灌胃给药对小鼠Lewis肺癌影响的实验研究

选取18～20g雌性C57BL/6小鼠，取生长良好的小鼠Lewis肺癌瘤块，用生理盐水匀浆法制备成1～2×10⁷个/ml浓度的细胞悬液，每只小鼠右腋皮下接种0.2ml，随机分组，各组动物数6只，对照组12只，设：

空白对照组(相应溶剂，25ml/kg)

注射用环磷酰胺(30mg/kg，ip×7)

黄果茄提取物(50mg/kg，ig×10)

黄果茄提取物(100mg/kg，ig×10)

黄果茄提取物(200mg/kg，ig×10)

黄果茄提取物用数滴吐温-80助溶后用0.5％CMC配成混悬液，注射用环磷酰胺用生理盐水配制成所需浓度。

接种次日起给药，给药体积为0.5ml/20g体重，连续经口灌胃10天。接种后14日脱颈处死动物，解剖取瘤块，称瘤重，计算抑瘤率。

试验结果见表2，黄果茄提取物在50、100、200mg/kg的水平上经口灌胃给药时可以明显降低小鼠Lewis肺癌组织水平。给药10天后，各给药组与对照组相比，瘤重有显著差异(P＜0.01)。

表2.黄果茄提取物灌胃给药对小鼠Lewis肺癌的抑瘤作用

与对照组比较：^*P＜0.05，^**P＜0.01。

实施例9

黄果茄提取物皮下、腹腔给药对小鼠肝癌H22影响的实验研究

选取18～20g雌性C57BL/6小鼠，取生长良好的小鼠肝癌H22腹水，用生理盐水匀浆法制备成1～2×10⁷个/ml浓度的细胞悬液，每只小鼠右腋皮下接种0.2ml，随机分组，各组动物数10只，对照组15只，设：

空白对照组(相应溶剂，25ml/kg)

注射用环磷酰胺(30mg/kg，ip×7)

黄果茄提取物(40mg/kg，sc×10)

黄果茄提取物(40mg/kg，ip×10)

黄果茄提取物用数滴吐温-80助溶后用0.5％CMC配成混悬液，注射用环磷酰胺用生理盐水配制成所需浓度。

接种次日起给药，给药体积为0.5ml/20g体重，连续皮下、腹腔给药7天。接种后10日脱颈处死动物，解剖取瘤块，称瘤重，计算抑瘤率。

试验结果见表3，黄果茄提取物在40mg/kg的水平上皮下和腹腔给药时可以明显降低小鼠肝癌H22组织水平。给药7天后，黄果茄提取物40mg/kg皮下给药组、腹腔注射给药组与对照组相比，瘤重有显著差异(P＜0.01)。

表3.黄果茄提取物皮下、腹腔给药对小鼠肝癌H22的抑瘤作用

与对照组比较：^*P＜0.05，^**P＜0.01。

实施例10

黄果茄提取物皮下、腹腔给药对小鼠Lewis肺癌影响的实验研究

选取18～20g雄性C57BL/6小鼠，取生长良好的小鼠肺癌瘤块，用生理盐水匀浆法制备成1～2×10⁷个/ml浓度的细胞悬液，每只小鼠右腋皮下接种0.2ml，随机分组，各组动物数10只，对照组15只，设：

空白对照组(相应溶剂，25ml/kg)

注射用环磷酰胺(30mg/kg，ip×7)

黄果茄提取物(40mg/kg，sc×10)

黄果茄提取物(40mg/kg，ip×10)

黄果茄提取物用数滴吐温-80助溶后用0.5％CMC配成混悬液，注射用环磷酰胺用生理盐水配制成所需浓度。

接种次日起给药，给药体积为0.5ml/20g体重，连续皮下、腹腔给药10天。接种后14日脱颈处死动物，解剖取瘤块，称瘤重，计算抑瘤率。

试验结果见表4，黄果茄提取物在40mg/kg的水平上皮下和腹腔给药时可以明显降低小鼠Lewis肺癌组织水平。给药10天后，黄果茄提取物40mg/kg腹腔注射给药组与对照组相比，瘤重有显著差异(P＜0.01)。

表4.黄果茄提取物皮下、腹腔给药对小鼠Lewis肺癌的抑瘤作用

与对照组比较：^*P＜0.05，^**P＜0.01。

实施例11

黄果茄提取物对正常小鼠餐后血糖的影响

选取18～20g雄性昆明种小鼠，按体重随机分为空白对照组(生理盐水)、正对照组(格列本脲2.5mg/kg)、给药组I(黄果茄提取物10mg/kg)和给药组II(黄果茄提取物20mg/kg)，每组各6只，试验前18h禁食不禁水，灌胃给药后1、2、4、8、10h尾静脉采血，离心分离血浆后，用葡萄糖氧化酶-过氧化物酶(GOD-POD)法测定葡萄糖水平。

试验结果见表5，黄果茄提取物在10、20mg/kg的水平上可以明显降低正常小鼠餐后血糖水平。给药8h、10h后，20mg/kg剂量组与对照组相比，血糖值有显著差异(P＜0.01)。

表5.黄果茄提取物对正常小鼠餐后血糖的影响

与对照组比较：^*P＜0.05，^**P＜0.01(n＝6)。

实施例12

黄果茄提取物对实验性糖尿病小鼠餐后血糖的影响

选取18～20g雄性昆明种小鼠，24h禁食不禁水，按120mg/kg腹腔注射四氧嘧啶生理盐水液，1h后喂食，48h后尾静脉采血测定血糖水平，当血糖值达到200mg/100ml以上的小鼠定为糖尿病模型鼠。将其按体重随机分为空白对照组(生理盐水)、正对照组(格列本脲2.5mg/kg)、给药组I(黄果茄提取物10mg/kg)和给药组II(黄果茄提取物20mg/kg)，每组各6只，灌胃给药后1、2、4、8、10h尾静脉采血，离心分离血浆后，用葡萄糖氧化酶-过氧化物酶(GOD-POD)法测定葡萄糖水平。

试验结果见表6，黄果茄提取物在10、20mg/kg的水平上可以明显降低实验性糖尿病小鼠餐后血糖水平。给药4h、8h和10h后，各剂量组与对照组相比，血糖值有显著差异(P＜0.01)。

表6.黄果茄提取物对实验性糖尿病小鼠餐后血糖的影响

与对照组比较：^*P＜0.05，^**P＜0.01(n＝6)。

实施例13

黄果茄提取物对豚鼠实验性哮喘的影响

选取200～250g健康豚鼠随机分为正常对照组、哮喘模型组、给药组I(黄果茄提取物10mg/kg)和给药组II(黄果茄提取物20mg/kg)，每组各6只。以卵白蛋白(OVA)腹腔注射致敏和雾化吸入激发建立哮喘豚鼠模型。检测血清NO、T-NOS、iNOS水平。

试验结果见表7，黄果茄提取物在10、20mg/kg的水平上可以明显降低血清NO、T-NOS及iNOS水平，与模型组比较有显著差异(P＜0.05)。

表7.黄果茄提取物对豚鼠实验性哮喘的影响

实施例14

黄果茄提取物对心肌缺血再灌注损伤的保护作用

采用离体大鼠灌流心脏(Langendorff heart)缺血再灌注模型，用含黄果茄提取物的K-H氏缓冲液灌注心脏，检测心肌组织中MDA含量和再灌15min灌流液中LDH活性，此两指标能间接反映与心肌损伤密切相关的氧自由基水平变化。记录各组的室颤发生率。再灌注引起的结果如表8、9、10所示。

表8.黄果茄提取物对离体大鼠灌流心脏室颤发生率的影响

注：与阴性对照组相比，^*P＜0.05，^**P＜0.01(n＝12)。

表9.黄果茄提取物对离体心肌组织MDA含量的影响

注：与阴性对照组相比，^*P＜0.05，^**P＜0.01(n＝12)。

表10.黄果茄提取物提取物对再灌灌流液中LDH活性的影响

注：与阴性对照组相比，^*P＜0.05，^**P＜0.01(n＝12)。

以上显示和描述了本发明的基本原理、主要特征和本发明的优点。本行业的技术人员应该了解，本发明不受上述实施例的限制，上述实施例和说明书中描述的只是说明本发明的原理，在不脱离本发明精神和范围的前提下本发明还会有各种变化和改进，这些变化和改进都落入要求保护的本发明范围内。本发明要求保护范围由所附的权利要求书及其等同物界定。

Claims (12)

1.黄果茄提取物，包含澳洲茄碱和茄边碱，还包含刺茄碱，其中澳洲茄碱、茄边碱和刺茄碱三者的总含量为80wt％～99wt％；

其中所述黄果茄提取物的提取包括以下步骤：

(1)黄果茄果实，加乙醇提取，收集提取液A；乙醇的用量为每次为生药量的5倍体积；乙醇的重量百分比浓度为90％；

(2)回收提取液中的乙醇至无醇味，得浓缩液B；

(3)浓缩液B用阳离子交换树脂吸附，依次用水、乙醇和含碱乙醇进行洗脱，收集含碱乙醇洗脱部分C；所述阳离子交换树脂的用量为生药量的1倍体积；所述阳离子交换树脂的功能基为磺酸基；采用的洗脱方式为依次用水洗树脂至流出液近无色，1倍树脂体积的重量百分比浓度为40％的乙醇洗脱，2倍树脂体积的90％的乙醇洗脱，3倍树脂体积的含碱乙醇洗脱；所述的含碱乙醇是重量百分比浓度为90％乙醇与重量百分比浓度为25％氨水按体积比10∶1混合的溶液；

(4)含碱乙醇洗脱部分C，回收乙醇得浓缩液D；

(5)浓缩液D离心分离，弃上清液，得沉淀物E；

(6)沉淀物E用水洗涤至近白色且上清液pH值小于9，沉淀干燥后即得黄果茄提取物。

2.如权利要求1所述的黄果茄提取物，其特征在于，澳洲茄碱含量为30wt％～50wt％，茄边碱含量为10wt％～30wt％，刺茄碱含量为30wt％～50wt％。

3.如权利要求1所述的黄果茄提取物，其特征在于，在上述步骤(1)中，采用回流或超声方式提取，提取次数为2～5次，每次1～3小时。

4.如权利要求1所述的黄果茄提取物，其特征在于，在上述步骤(1)中，采用回流方式提取，提取次数为3次，每次1.5小时。

5.如权利要求1所述的黄果茄提取物，其特征在于，在上述步骤(6)中，如果沉淀物E颜色较深，增加一用丙酮洗涤沉淀至近白色的步骤。

6.如权利要求1所述的黄果茄提取物，其特征在于，所述的阳离子交换树脂能够再生，其再生的方法是：用2％氢氧化钠水溶液加热浸泡树脂；装柱，用2％的氢氧化钠水溶液800ml洗脱；用水洗至流出液呈中性；用1N盐酸洗树脂至流出液pH值为2；用去离子水洗树脂至流出液pH值为6，即可投入重复使用。

7.一种权利要求1或2所述的黄果茄提取物，其特征在于，以所述的黄果茄提取物中的澳洲茄碱、茄边碱和刺茄碱作为活性成分，加入药学上可接受的辅料，制成任何一种药物制剂。

8.如权利要求7所述的黄果茄提取物，其特征在于，所述的制剂为注射剂。

9.一种权利要求1或2所述的黄果茄提取物作为活性成分在制备预防和治疗肿瘤药物中的应用，所述的肿瘤为肝癌H22或LEWIS肺癌。

10.一种权利要求1或2所述的黄果茄提取物作为活性成分在制备预防和治疗糖尿病药物中的应用。

11.一种权利要求1或2所述的黄果茄提取物作为活性成分在制备预防和治疗哮喘病药物中的应用。

12.一种权利要求1或2所述的黄果茄提取物作为活性成分在制备预防和治疗心肌缺血再灌注损伤导致的冠心病药物中的应用。