CN101125889A

CN101125889A - 一种微囊藻毒素单克隆抗体及其制备方法与应用

Info

Publication number: CN101125889A
Application number: CNA2007101192121A
Authority: CN
Inventors: 何苗; 盛建武; 施汉昌
Original assignee: Tsinghua University
Current assignee: Tsinghua University
Priority date: 2007-07-18
Filing date: 2007-07-18
Publication date: 2008-02-20
Anticipated expiration: 2027-07-18
Also published as: CN100567324C

Abstract

本发明公开了一种微囊藻毒素单克隆抗体及其制备方法与应用。本发明的微囊藻毒素单克隆抗体是微囊藻毒素－LR的单克隆抗体，它按照包括以下步骤的方法制备：1)在微囊藻毒素－LR的第七位氨基酸残基N－甲基脱氢丙氨酸上引入一个氨基，得到经氨基修饰的微囊藻毒素－LR多肽；将该经氨基修饰的微囊藻毒素－LR多肽与载体蛋白偶联得到完全抗原A；2)将步骤1)的完全抗原A免疫小鼠，取免疫小鼠的脾细胞，与小鼠骨髓瘤细胞融合，筛选出阳性杂交瘤细胞株；培养所述阳性杂交瘤细胞株或将所述阳性杂交瘤细胞株注入同系小鼠腹腔诱生腹水，得到微囊藻毒素－LR的单克隆抗体。该单克隆抗体可用于微囊藻毒素－LR的检测及其免疫亲和纯化。

Description

一种微囊藻毒素单克隆抗体及其制备方法与应用

技术领域

本发明涉及一种微囊藻毒素单克隆抗体及其制备方法与应用。

背景技术

水体富营养化致使藻类异常增殖并释放微囊藻毒素(Microcystins，MCs)，其中微囊藻毒素-LR(Microcystin-LR，MC-LR)是目前已知急性毒性最强、危害最大的一种淡水蓝藻毒素。微囊藻毒素-LR是一组环状七肽，其化学结构式如式I所示：

(式I)

微囊藻毒素水华的频繁暴发严重威胁着生态安全和人类的饮水安全，因此，对水中微囊藻毒素及时准确的监测非常重要。免疫检测是基于抗原-抗体特异性反应的检测方法，具有特异性强、灵敏度高、分析通量大、检测速度快和费用低廉等优点，在微囊藻毒素的大规模样品快速筛查和预警监测方面具有广阔的应用前景。

免疫检测技术的关键在于获得特异性和亲和力良好的抗体，即抗体是免疫检测技术的关键。特别是对于微囊藻毒素等分子量小于5000的小分子有机污染物(其中，微囊藻毒素-LR的分子量为995.2)，免疫原性很弱或不具备免疫原性，不能刺激动物机体产生抗体，只有与大分子载体物质偶联形成完全抗原，才能促使动物机体产生免疫反应，从而获得抗体。另外，利用合成的完全抗原免疫动物，其目的是需要尽可能多地获得针对完全抗原上小分子的抗体，并尽量减少针对载体物质的抗体。因此，所获抗体的质量在很大程度上还取决于免疫方案的设计和优化。

目前有关微囊藻毒素抗体制备的文献报道中，所获得抗体的质量各不相同，主要表现在以下两方面：首先是抗体所表现出来的特异性各不相同，并且还未见有只针对微囊藻毒素-LR特异性非常强的抗体的报道，同时也未见能与所有藻毒素类似物都有较好的交叉反应的抗体报道；其次是所报道的抗体亲和力各不同，检测限和定量检测区间也存在较大差别。因此，抗体是决定微囊藻毒素免疫检测大规模应用的瓶颈。

发明内容

本发明的目的是提供-种微囊藻毒素单克隆抗体及其制备方法，即微囊藻毒素-LR单克隆抗体及其制备方法。

该微囊藻毒素-LR的单克隆抗体按照包括以下步骤的方法制备：

1)在微囊藻毒素-LR的第七位氨基酸残基N-甲基脱氢丙氨酸上引入一个氨基，得到经氨基修饰的微囊藻毒素-LR；将该经氨基修饰的微囊藻毒素-LR与载体蛋白偶联得到完全抗原A；

2)将步骤1)的完全抗原A免疫小鼠，取免疫小鼠的脾细胞，与小鼠骨髓瘤细胞融合，筛选出阳性杂交瘤细胞株；培养所述阳性杂交瘤细胞株或将所述阳性杂交瘤细胞株注入同系小鼠腹腔诱生腹水，得到微囊藻毒素-LR的单克隆抗体。

其中，所述步骤1)中，用2-巯基乙胺在微囊藻毒素-LR的第7位氨基酸残基上引入一个氨基。所述完全抗原A中的载体蛋白可为任意一种常用的载体蛋白，如牛血清白蛋白(BSA)、人血清白蛋白(HSA)、钥孔血蓝蛋白(KLH)或卵清白蛋白(OVA)等大分子白蛋白，优选为牛血清白蛋白；所述偶联方法可采用常规的戊二醛法或N-琥珀酰亚胺法等。

所述步骤2)中用于免疫的小鼠具体可为Balb/c小鼠；免疫方法为：每只小鼠每次免疫所用的所述完全抗原剂A量为15-40μg，两次免疫的间隔时间为20-40天；免疫方式为皮下多点注射；

所述步骤2)中的小鼠骨髓瘤细胞具体可为小鼠骨髓瘤细胞SP2/0。

所述步骤2)中的筛选阳性杂交瘤细胞株的方法具体可为：先用包被抗原筛选1-2次，再用微囊藻毒素-LR单体筛选至少1次；所述包被抗原为将所述步骤1)中的经氨基修饰的微囊藻毒素-LR多肽与载体蛋白偶联得到的完全抗原B；所述完全抗原B与所述完全抗原A中的载体蛋白不相同；

当完全抗原A中的载体蛋白为牛血清白蛋白时，所述完全抗原B中的载体蛋白具体可为人血清白蛋白、钥孔血蓝蛋白或卵清白蛋白。

本发明利用上述免疫方法和筛选方法，用合成的完全抗原免疫小鼠，得到了只针对完全抗原上小分子微囊藻毒素-LR的抗体。

所述阳性杂交瘤细胞株具体可为能分泌抗Microcystin-LR单克隆抗体的小鼠杂交瘤细胞株MC8C10，其保藏号为CGMCC No.2101。

所述方法中还可包括纯化所述单克隆抗体的步骤，将上述腹水或上层培养液分离纯化后，即获得抗微囊藻毒素的单克隆抗体。

为提高单克隆抗体的纯度，可用免疫亲和层析方法对其进行纯化，尤以HiTraprProtein A FF 1mL免疫亲和层析柱的纯化效果好。

所述微囊藻毒素-LR的单克隆抗体，具体可由保藏号为CGMCC No.2101的小鼠杂交瘤细胞株MC8C10产生。

能分泌抗Microcystin-LR单克隆抗体的小鼠杂交瘤细胞株MC8C10，已于2007年06月18日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(简称CGMCC，地址是中国北京市海淀区中关村北一条13号)，保藏编号为CGMCC No.2101。

本发明的单克隆抗体可用于微囊藻毒素-LR的免疫检测中。

所述微囊藻毒素-LR的免疫学检测方法可为放射免疫法、酶联免疫吸附法(ELISA)、夹心式免疫法、免疫沉淀或荧光免疫法等。

所述单克隆抗体与样品发生相互作用的条件，可依据检测方法进行确定。

本领域技术人员知晓，对于固相反应而言，可以将本发明所述单克隆抗体固定于固相载体，也可以将待测样品固定于固相载体上。反应通常在室温下进行。

对于液相反应而言，通常可以向处在特定缓冲体系中的待测样品中直接加入本发明的单克隆抗体，然后在适于抗原抗体发生相互作用的温度下(如室温)进行反应。

免疫检测中所用的第二抗体可以是放射性同位素标记的，包括但不限于使用选自：³²P、¹²⁵I、S或²H等；也可以是非放射性同位素标记的，包括但不限于使用选自：辣根过氧化物酶、碱性磷酸酶、生物素、链霉亲和素等标记。免疫检测中使用的检测剂，取决于检测过程使用的第二抗体的标记物，本领域技术人员知晓如何选择合适的检测试剂。

本发明的抗微囊藻毒素-LR的单克隆抗体来自单一细胞的克隆，质地均一，且可以大量生产，具有极高的稳定性；并且通过系统筛选，获得了针对微囊藻毒素-LR这一种毒素的高特异性单克隆抗体MC8C10，该单克隆抗体能更好地应用于微囊藻毒素的酶标抗体、荧光标记抗体、胶体金标记抗体等；同时该单克隆抗体是微囊藻毒素ELISA试剂盒、胶体金试纸、免疫传感器等检测技术稳定应用的基础；再者，该抗体还可用于样品中微囊藻毒素的免疫亲和纯化。

下面结合具体实施例对本发明作进一步详细说明。

附图说明

图1为微囊藻毒素-LR单克隆抗体MC8C10的标准曲线

具体实施方式

下述实施例中所用方法如无特别说明均为常规方法。

骨髓瘤细胞SP2/0种子来源于中国协和医科大学基础医学院细胞中心。6周龄的Balb/c纯系雌性小鼠购自中国协和医科大学实验动物中心。新生牛血清(PAA，LotB00104-0786)，细胞融合用PEG 1500(Roche，11423800)，50×HAT储液(Sigma，H0262，Lot 093K8931)，50×HT储液(Sigma H0137，Lot 064K8927)，IMDM培养基(Gibco，Invitrogen Corp.Lot 1272036)，氨苄青霉素钠(Amresco 0339)，硫酸链霉素(Amresco0382)，8-Azaguanine(Sigma A5284)，DMSO(Amresco 0231)，石蜡油，无水乙醚、异丙醇(北京化学试剂公司)。MC-LR(Alexis公司(Lausen，Switzerland)，产品编号ALX-350-012)。BSA(Sigma，A7638)。OVA(Sigma，A5378)。

实施例1、杂交瘤细胞株MC8C10 CGMCC No.2101的获得及其产生的抗微囊藻毒素-LR的单克隆抗体MC8C10的鉴定

一、杂交瘤细胞株MC8C10 CGMCC No.2101的获得

1、微囊藻毒素-LR完全抗原MC-LR-BSA的合成

将微囊藻毒素-LR采用2-巯基乙胺进行化学修饰，在其第七位氨基酸(Mdha)上引入一个活性基团——氨基，再采用戊二醛法将修饰后的微囊藻毒素-LR(MC-LR)与牛血清白蛋白偶联，经过滤层析后得到完全抗原，经MALDI-TOF/MS确定完全抗原的偶联比。具体方法如下：

(1)对微囊藻毒素-LR进行氨基修饰

①将2-巯基乙胺和MC-LR按照摩尔比3000∶1充分混和在碱性的碳酸盐缓冲液中(pH＝8.0)；混合物充分摇匀，在50℃反应1.5小时；

②反应完毕，降到室温，加入与2-巯基乙胺等摩尔的乙酸使反应停止；

③中间产物的纯化采用固相萃取技术，得到经氨基修饰的微囊藻毒素-LR。材料为500mg 6mL C₁₈ BondElut cartridge(Varian，Walnut Creek，CA)，具体步骤如下：

活化：用4mL甲醇活化，并用6mL高纯水调整，分为2-3次使用；

上样：将水样以5-10mL/min的流速流过固相萃取柱进行富集浓缩。重力过滤；

淋洗：装样完毕后，用5％甲醇水溶液6mL淋洗以净化样品，分为3次使用；

洗脱：待固相萃取柱吹干后，以4mL甲醇(分为2次)将微囊藻毒素洗脱并收集。

(2)半抗原多肽与载体蛋白偶联

选择牛血清白蛋白(BSA)作为载体蛋白，采用戊二醛法将步骤(1)获得的经氨基修饰的微囊藻毒素-LR与载体蛋白进行偶联，具体方法包括以下步骤：

(a)取10mg BSA(1.5×10^-7摩尔)，完全溶解于5mL 0.01mol/L PBS(Na₂HPO₄·12H₂O2.96g，KH₂PO₄ 0.2g，NaCl 8.0g加水至1000mL，pH7.2)中，再加入4mg步骤(1)获得的经氨基修饰的微囊藻毒素-LR(4×10^-6摩尔)，使其完全溶解；

(b)缓慢加入5mL 0.2％的戊二醛溶液，与步骤(a)获得的溶液混合，并在室温下，搅拌反应2小时；

(c)加入0.2mL 1M甘氨酸，在室温下搅拌1小时，以终止反应；

(d)将步骤(c)获得的溶液用Sephadex G-25凝胶层析柱(Pharmacia)进行过滤层析，得到微囊藻毒素-LR完全抗原MC-LR-BSA。MALDI-TOF/MS检测，结果表明该完全抗原的偶联比为5.12，符合要求。将纯化的完全抗原经-40℃冷冻后，真空浓缩干燥，保存于-20℃冰箱中。

2、免疫动物

选取6周龄的雌性Balb/c小鼠，采用低剂量长程免疫法进行免疫，方法为：皮下多点注射，30μg MC-LR-BSA/只，共免疫4次，初次免疫加福氏完全佐剂(0.1mL/只)，后三次加强免疫加福氏不完全佐剂(0.1mL/只)，免疫间隔时间为30天。在第三次加强免疫后的第10天，对小鼠进行尾部静脉取血，用间接ELISA法测定效价，其中，包被的MC-LR-BSA的浓度为5μg/mL。对抗血清效价达到1×10⁵以上的小鼠，进行一次冲击免疫，即每只小鼠采用10μl MC-LR-BSA+90μl生理盐水进行腹腔注射，3天后取脾细胞进行细胞融合。

3、细胞融合

1)免疫脾细胞的制备

将步骤2冲击免疫三天后的BALB/c小鼠处死，无菌状态下取出脾脏，去表面包膜及脂肪，剪碎，置于平皿中研磨，加GKN溶液(NaCl 8g，KCl 0.4g，Na₂HPO₄·2H₂O1.77g，NaH₂PO₄·H₂O 0.69g，葡萄糖2g，酚红0.01g，溶于1000mL水中)制成单细胞悬液，用200目铜网过滤，去除大的细胞团块后，离心，用GKN溶液洗涤并重悬脾细胞，计活细胞数，约为1×10⁸个/mL。

2)SP2/0骨髓瘤细胞的处理

取指数生长期的SP2/0骨髓瘤细胞，离心，用GKN溶液洗一次并悬浮于其中，计活细胞数，为1×10⁸个/mL。

3)免疫脾细胞与SP2/0骨髓瘤细胞的融合

将步骤2)的SP2/0骨髓瘤细胞与步骤1)的免疫脾细胞融合，具体过程包括以下步骤：

1.聚乙二醇(PEG)的配制(50％PEG)：PEG(MW1500，Roche，11423800)10.0g置于30mL容量小烧瓶中，高压3.6×10⁵Pa 15min，冷却至50℃后加入完全培养基(IMDM培养基(Gibco，Invitrogen Corp.Lot 1272036))10.0mL，混匀，分装1.0mL/管，4℃保存。

2.取HAT培养液40mL(50×HAT储液，Sigma，H0262，Lot 093K8931)，完全培养液(IMDM培养基)15mL和50％PEG分别放入37℃水浴箱中预热，另将一只盛水的烧杯同时放入水浴箱中备用。

3.分别吸取含7.0×10⁷个骨髓瘤细胞SP2/0和7.0×10⁸个脾细胞的悬液加入50mL离心管中，充分混匀，并加IMDM培养基至40mL。

4.1200rpm离心8min，弃去上清液，用吸管吸净残留液体，以免影响PEG的浓度。轻轻弹击离心管底，使两种细胞充分混匀，直至成糊状。

5.将离心管置于预温的烧杯中，用1mL已用7.5％NaHCO₃调整pH值至8.0(7.8-8.2均可)的PEG 0.8mL，将吸管插入管底，继而轻轻搅动沉淀，并缓缓滴加PEG，1min内加完，再在水浴中静置90s。

6.立即滴加37℃预温的完全培养液(IMDM培养基)15mL，使PEG稀释而失去作用。滴加的方法是在30s内加1mL，次30s加3mL，接下来1min加完。注意，当PEG溶液加入后，即可见细胞凝集成小团块状，此时操作宜轻柔，以免干扰细胞融合过程。

7.补加完全培养液(IMDM培养基)至40mL，1000rpm离心10min，弃上清。

8.将细胞沉淀轻悬于预温的HAT培养液40mL中，加到4块已有饲养细胞层(小鼠腹腔巨噬细胞)的96孔板内，每孔加100μl。继而将培养板移至37℃、5％CO₂饱和湿度恒温箱中培养。

4、融合细胞的筛选及克隆化培养

约3天后，当杂交瘤细胞长满孔底1/4-1/2时，培养基变黄，此时用常用的ELISA法检测培养基上清液中的抗体，具体方法包括以下步骤：

1.吸取96孔板每孔的一半上清，采用ELISA法进行阳性杂交瘤细胞筛选(一筛)，具体方法为：

用50mM碳酸盐缓冲液(pH9.5)稀释包被抗原至2mg/L，加入到96孔酶联板中进行包被，每孔100μl，4℃包被12-24小时，无需封闭；每孔加入各个克隆孔上清液100μL，37℃温育1h，充分洗涤后加入100μL 1∶10000的酶标二抗(HRP-羊抗鼠IgG)，37℃温育1h后，加入底物显色，10min后终止，读取A_450nm，A_450nm值为阴性对照2.1倍的为阳性杂交瘤细胞。对于一筛呈阳性的克隆株，进一步培养后，按照同样方法进行第二次筛选。

其中，包被抗原为MC-LR-OVA，它按照下述方法制备：取3mL OVA，加入0.3mg上述氨基修饰后的MC-LR，加入0.1mL 1.25％戊二醛充分混合，室温反应24h。

2.吸取检测结果呈阳性的孔中的剩余上清，加入新鲜HT培养基(50×HT储液(Sigma H0137，Lot 064K8927))做进一步培养；

3.第二天用与步骤1相同的ELISA法复测第一次呈阳性的上清及吸取的剩余上清(二筛)；

4.将2次ELISA检测均为阳性的克隆细胞吸出，转移至含BALB/c小鼠腹腔细胞的HT培养基制成的24孔(每孔0.9mL HT培养基)营养板的3-4个孔内，进行再克隆。然后吸取上清，采用与步骤1相同的ELISA法对阳性克隆株进行再次确定(三筛)。

对于三筛后的阳性克隆株，采用MC-LR单体、BSA及OVA再进行一次筛选，包被浓度分别为5μg/mL，2μg/mL及2μg/mL，4℃包被过夜，其它条件同上。选取对OVA及BSA均为阴性、对MC-LR检测结果为阳性的克隆株。结果得到4株阳性克隆株。将其中一株阳性克隆株，名称为MC8C10，于2007年06月18日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(简称CGMCC，地址是中国北京市海淀区中关村北一条13号)，保藏编号为CGMCC No.2101。

二、单克隆抗体MC8C10的获得及亚型鉴定

1、获取抗体腹水

选取10周龄BALB/C小鼠，接种细胞前7-10天，预先腹腔注射液体石蜡0.5mL/只。用生理盐水调整杂交瘤细胞株MC8C10 CGMCC No.2101浓度至2×10⁶个/mL，腹腔接种杂交瘤细胞，接种细胞数为1×10⁶个/只，7-10天后采集腹水。

2、腹水的纯化

采用HiTrap rProtein AFF 1mL免疫亲和层析柱(Bio-Science AB，Sweden.LotNo.309591)来纯化步骤1获得的小鼠单克隆抗体腹水，得到MC8C10。该层析柱所含的1mL介质最多能结合23mg由小鼠产生的IgG2b型单克隆抗体，并且对于IgG2b型抗体的结合能力是最高的，而对于小鼠产生的其它抗体亚类(如IgG1、IgG2a、IgG3等)的结合能力较弱。偶联缓冲液为0.2mol/L、pH 7的磷酸盐缓冲液(将NaH₂PO₄·2H₂O1.216g，Na₂HPO₄·12H₂O 4.369g溶解于100mL双蒸水中)。洗脱缓冲液采用0.1M柠檬酸钠溶液(pH3.5)。结果得到3mg固态的MC8C10。将纯化的抗体分装，-20℃保存。

3、抗体亚型鉴定

采用单克隆抗体亚型检测试盒(ImmunoTypeTM Kit，Sigma)对步骤2获得的抗体进行免疫球蛋白亚型的鉴定，具体方法为：用PBS以1∶1000比例稀释各类抗体(小鼠IgG₁、IgG_2a、IgG_2b、IgG₃、IgA及IgM)，然后用稀释抗体包被96孔酶联板(每孔0.1mL，每类抗体两个孔)，37℃温育1小时后，弃包被液，洗涤3次，按0.1mL/孔的量加入步骤2纯化的抗体，室温温育1小时后洗涤3次，按0.1mL/孔的量加入辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠IgG(购自邦定生物公司)，室温温育30分钟后，洗涤3次，按0.1mL/孔的量加入辣根过氧化物酶底物反应液(1mg/mL TMB)，室温10-15分钟，出现褐色即为阳性结果，最后按0.05mL/孔的量加入2mol/L H₂SO₄终止反应。结果表明杂交瘤细胞MC8C10分泌的抗体为IgG2b亚类。

这里配制缓冲液均使用双蒸水，化学试剂纯度为分析纯或更高。最后配制的缓冲液采用0.45μm的滤器过滤。

实施例2、采用杂交瘤细胞株MC8C10 CGMCC No.2101分泌的单克隆抗体MC8C10检测水样中的微囊藻毒素-LR

采用竞争ELISA方法检测，所用的试剂和酶标板按照如下方法制备：

a)抗微囊藻毒素-LR标准溶液的配制：采用Alexis公司(Lausen，Switzerland)购买的MC-LR作为标准品(产品编号ALX-350-012)，采用高纯水分别配制如下浓度(单位：μg/L)梯度的MC-LR标准溶液：1000、300、90、27、8.1、2.43、0.729、0.219、0.0656、0.020、0.006、0，作为水样。

b)抗体溶液配制：将实施例1的单克隆抗体MC8C10(1mg固体)用磷酸盐缓冲液稀释成工作浓度1∶6000，再加入1％(质量百分含量)的牛血清白蛋白(BSA)和0.1％(质量百分含量)的硫柳汞，灌装入试剂瓶中。

c)酶标二抗溶液配制：辣根过氧化物酶-羊抗鼠IgG原液，灌装入试剂瓶中，使用时用洗涤液按1∶10000配制成工作浓度。

d)洗涤液配制(10×PBST)：含0.5％(体积百分含量)吐温-20和80g/L氯化钠的0.1mol/L pH＝7.5磷酸盐缓冲液，灌装入试剂瓶中。使用时，将该溶液用纯水稀释10倍再用。

e)底物溶液配制：使用0.1mol/L pH5.0的醋酸钠-柠檬酸缓冲液，每1ml缓冲液中加入50μL 0.1％的H₂O₂溶液，灌装入试剂瓶中。

f)显色剂溶液配制：用丙酮配制成10mg/mL的四甲基联苯胺溶液，用0.1mol/LpH5.0的醋酸钠-柠檬酸缓冲液配制成0.2mg/mL的四甲基联苯胺溶液，灌装入试剂瓶中。

g)终止液配制：2mol/L H₂SO₄溶液，灌装入试剂瓶中。

h)酶标板是包被了包被抗原的96孔聚苯乙烯微量反应板。

酶标板的包被：包被抗原采用实施例1的MC-LR-BSA，包被浓度0.25μg/mL，取120μL包被抗原加入反应板孔中，4℃冰箱中过夜，倒出孔内液体，用洗涤液1×PBST洗涤3-5次，将酶标板倒置在吸水纸上拍打，吸干，在已包被抗原的酶标板小孔中加入150μL 1％的BSA(质量百分含量)封闭，37℃温育1h，用洗涤液1×PBST洗涤3-5次，用吸水纸吸干，真空封装。

采用12组平行试验(n＝12)。将标准溶液与抗体溶液同时加入酶标板小孔中，同时设置空白孔(将添加的抗体换成高纯水，其它一致)和阴性对照孔(标准溶液用高纯水代替，即不含MC-LR，其它一致)，37℃温育0.5h，倒出孔内液体，重复用洗涤液(10×PBST)洗涤2-5次，将酶标板倒置在吸水纸上拍打；加入酶标二抗溶液于酶标板小孔中，37℃温育0.5h，用洗涤液重复洗3-5次，吸干；加入底物溶液和显色溶液到酶标板小孔中，室温下反应10-15min，用酶标仪在波长450m处测定吸光度A，以不加抗体的小孔作为空白调零。以各浓度的吸光度A为纵坐标，以对应微囊藻毒素浓度的log₁₀值为横坐标，绘制半对数标准曲线图。结果如图1所示，表明标准曲线具有完整的反S形状，并具有上平台和下平台，标准曲线的平行测定次数12次，误差线为n＝12次平行实验的标准偏差，实验重复性良好，相对标准偏差(变异系数)均在15％以内，表明精密度良好。

对单克隆抗体MC8C10半抑制浓度、检测限、定量检测区间等描述，基于对图1的标准曲线进行模型拟合后进一步评价。采用4参数Logistic模型作为水环境样品ELISA检测试剂盒数据分析和评价的基础，模型如下：

A = A_{2} + \frac{A_{1} - A_{2}}{1 + {(\frac{x}{x_{0}})}^{p}}

(4参数Logistic模型)

其中：

x：未标记抗原浓度(质量浓度或物质的量浓度)，自变量；

A：x对应的吸光度(Absorbance)，因变量；

A₁：上端渐近线(x＝0)，常数；

A₂：下端渐近线(x→∞)，常数；

p：与曲线的斜率有关，常数；

x₀：曲线的中点，或称拐点，常数；

对于图1的标准曲线，A₁为0.453，A₂为0.029，p为0.78，x₀为1.8。

(3)半抑制浓度IC₅₀是竞争ELISA一个很重要的评价指标。在竞争ELISA中，IC₅₀≡x₀。

(4)在竞争ELISA中，依据上述Logistic模型，定义结合率Y如下式。

Y = \frac{A - A_{2}}{A_{1} - A_{2}} \times 100 %

(5)竞争ELISA标准曲线最低检测限和最高检测限的确定采用结合率法，即最低和最高检测限分别为Y＝90％和Y＝10％时对应的目标物质(待测物)的浓度。

(6)竞争ELISA标准曲线的定量检测区间的确定采用结合率法，定量检测区间即Y＝80％-20％对应的目标物质(待测物)的浓度区间。

进一步对图1中的标准曲线采用四参数的Logistic模型拟合，分析结果表明半抑制浓度IC₅₀＝1.8±0.1μg/L；单克隆抗体MC8C10对MC-LR的最低检测限为0.10μg/L；对MC-LR进行检测的定量检测区间为0.30μg/L-10.00μg/L。

Claims

1.一种制备微囊藻毒素-LR的单克隆抗体的方法，包括以下步骤：

1)在微囊藻毒素-LR的第七位氨基酸残基N-甲基脱氢丙氨酸上引入一个氨基，得到经氨基修饰的微囊藻毒素-LR；再将该经氨基修饰的微囊藻毒素-LR与载体蛋白偶联得到完全抗原A；

2.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于：所述步骤1)中，用2-巯基乙胺在微囊藻毒素-LR的第7位氨基酸残基上引入一个氨基。

3.根据权利要求1所述的方法，其特征在于：所述步骤2)中的载体蛋白为牛血清白蛋白；所述偶联方法为戊二醛法。

4.根据权利要求1所述的方法，其特征在于：所述步骤2)中用于免疫的小鼠为Balb/c小鼠；免疫方法为：每只小鼠每次免疫所用的所述完全抗原剂A量为15-40μg，两次免疫的间隔时间为20-40天；免疫方式为皮下多点注射；

所述步骤2)中的小鼠骨髓瘤细胞为小鼠骨髓瘤细胞SP2/0。

5.根据权利要求1所述的方法，其特征在于：所述步骤2)中的筛选阳性杂交瘤细胞株的方法为：先用包被抗原筛选，再用微囊藻毒素-LR单体筛选至少1次；所述包被抗原为将所述步骤1)中的经氨基修饰的微囊藻毒素-LR多肽与载体蛋白偶联得到的完全抗原B；所述完全抗原B与所述完全抗原A中的载体蛋白不相同。

6.根据权利要求1所述的方法，其特征在于：所述阳性杂交瘤细胞株为能分泌抗Microcystin-LR单克隆抗体的小鼠杂交瘤细胞株MC8C10，其保藏号为CGMCCNo.2101。

7.根据权利要求1所述的方法，其特征在于：所述方法中还包括纯化所述单克隆抗体的步骤。

8.权利要求1至7中任一权利要求所述的方法制备的微囊藻毒素-LR的单克隆抗体。

9.微囊藻毒素-LR的单克隆抗体，由保藏号为CGMCC No.2101的能分泌抗Microcystin-LR单克隆抗体的小鼠杂交瘤细胞株MC8C10产生。

10.能分泌抗Microcystin-LR单克隆抗体的小鼠杂交瘤细胞株MC8C10，其保藏号为CGMCC No.2101。

11.权利要求8或9所述的微囊藻毒素-LR的单克隆抗体在检测微囊藻毒素-LR和/或纯化微囊藻毒素-LR中的应用。