WO2023226938A1 - 甲基化生物标记物、试剂盒及用途 - Google Patents

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WO2023226938A1
WO2023226938A1 PCT/CN2023/095576 CN2023095576W WO2023226938A1 WO 2023226938 A1 WO2023226938 A1 WO 2023226938A1 CN 2023095576 W CN2023095576 W CN 2023095576W WO 2023226938 A1 WO2023226938 A1 WO 2023226938A1
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seq
primers
probe
methylation
colorectal cancer
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PCT/CN2023/095576
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阮微媚
王军
杨婷
陶锦胜
陈志伟
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广州市基准医疗有限责任公司
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6883—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material
    • C12Q1/6886—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material for cancer

Definitions

  • the invention relates to the fields of biotechnology and medical diagnosis, and in particular to a methylation biomarker, a kit and its use.
  • CRC Colorectal cancer
  • the mortality rate of colorectal cancer is increasing every year around the world. According to the latest statistics, the incidence rate of CRC is gradually increasing globally, and the mortality rate remains high. CRC shows a younger trend. Its morbidity and mortality have climbed to the third and second places. Among them, CRC lymph node metastasis is the main cause of postoperative recurrence and increased mortality. In China, CRC is also one of the most common malignant tumors, which brings a heavy blow to national health and economic burden.
  • CRC World Health Organization's International Agency for Research on Cancer
  • CRC computed tomography
  • MRI magnetic resonance imaging
  • positron emission computed tomography positron emission tomography
  • PET-CT emission tomography-computed tomography
  • Metastasis is the main characteristic of malignant tumors, which is also the main reason for postoperative recurrence and high mortality in patients.
  • the metastasis of most malignant tumors mainly includes lymph node metastasis, implantation metastasis, blood vessel metastasis, and direct metastasis.
  • CRC also metastasizes through the blood.
  • CRC most commonly metastasizes to the liver, followed by the lungs, bones, and brain.
  • colorectal cancer can also directly invade surrounding tissue such as the bladder, uterus, ureter, etc. Shedding cancer cells can also cause metastasis in the abdominal cavity.
  • CRC lymph node metastasis is the most important way, and CRC lymph node metastasis determines its prognosis and mortality. Since the presence or absence of lymph node metastasis in CRC determines the important stage of the patient and is also an important factor affecting postoperative recurrence and prognosis, and also determines different treatment options, it has always received widespread clinical attention. Therefore, it is necessary to know whether the patient has lymph node metastasis before treatment for CRC.
  • serological indicators and imaging diagnosis are widely used in clinical practice. Serological indicators mainly include gastrointestinal tract-associated tumor antigen (CA199) and serum carcinoembryonic antigen (CEA).
  • PET-CT has a sensitivity of 66%, a specificity of 60%, and an accuracy of 63% for detecting proximal lymph nodes in CRC. Its specificity and accuracy are higher than CT's specificity of 29% and accuracy of 59% year-on-year, but it is still to less than 70% or even higher.
  • the purpose of the present invention is to use DNA methylation biomarkers to detect lymph node metastasis and non-metastasis of colorectal cancer.
  • the methylation biomarkers provided by the present invention can achieve the purpose of accurate detection/diagnosis.
  • Some aspects of the present invention provide a methylation biomarker for diagnosis of colorectal cancer lymph node metastasis, wherein the methylation biomarker includes:
  • the methylation biomarker at least includes the sequence shown in SEQ ID NO: 10 and/or a sequence complementary to the sequence shown in SEQ ID NO: 10.
  • the methylation biomarker comprises the sequence shown in SEQ ID NO: 10 and/or a sequence complementary to the sequence shown in SEQ ID NO: 10, in combination with a sequence selected from: :
  • the diagnosis is to distinguish the presence or absence of lymph node metastasis in a subject with colorectal cancer.
  • the colorectal cancer is selected from the group consisting of T1, T2, T3, or T4 colorectal cancer of T stage in the TNM staging.
  • Some aspects of the present invention provide the use of the above-mentioned methylation biomarker in preparing a reagent or kit for diagnosing the presence of lymph node metastasis in a subject suffering from colorectal cancer.
  • kits for diagnosing colorectal cancer lymph node metastasis includes a method for detecting the methylation degree of the above-mentioned methylation biomarkers in the sample to be tested. reagents.
  • the reagent is a reagent used in a method for detecting methylation degree selected from the following: fluorescence quantitative PCR, methylation-specific PCR, digital PCR, DNA methylation chip, targeted One or more of DNA methylation sequencing, whole-genome methylation sequencing, and DNA methylation mass spectrometry.
  • the reagents include primers and/or probes; wherein, the primers specifically amplify the sequences shown in SEQ ID NO: 1 to 15 or are identical to those shown in SEQ ID NO: 1 to 15. A sequence complementary to the sequence shown; the probe at least partially hybridizes to a sequence shown in SEQ ID NO: 1 to 15 or a sequence complementary to a sequence shown in SEQ ID NO: 1 to 15.
  • the reagents include at least one set of primers and probes selected from:
  • the sample to be tested is selected from one or more of tissue, blood, plasma, saliva, serum, urine, urine exfoliated cells, urine sediment, and urine supernatant.
  • Some aspects of the present invention provide a system for colorectal cancer lymph node metastasis diagnosis, wherein the system includes a detection device, a computing device and an output device;
  • the detection device includes a sample injector and a detector, the sample injector is used to collect samples from the subject, and the detector is used to detect the methylation degree of the above-mentioned methylation biomarker in the sample;
  • the computing device includes a memory and a processor, a computer program is stored in the memory, and the processor is configured to execute the computer program stored in the memory to achieve the following determination:
  • the methylation degree of the methylation biomarker in the sample is compared with the determination threshold to determine whether the subject corresponding to the sample has lymph node metastasis of colorectal cancer.
  • Some aspects of the present invention provide the use of at least one group selected from the following combinations of primers and probes in preparing a reagent or kit for diagnosing the presence of lymph node metastasis in a subject suffering from colorectal cancer, wherein , the combination of primers and probes is used to detect the methylation degree of the above-mentioned methylation biomarkers:
  • the DNA methylation biomarkers and kits provided by the present invention can be used to diagnose the presence of lymph node metastasis in subjects with colorectal cancer, and have good sensitivity, specificity and accuracy.
  • Figure 1 shows the ⁇ CT clustering effect diagram of methylation biomarkers.
  • Figure 2 is a schematic diagram comparing the AUC differences between the markers shown in SEQ ID NO:10 and CA199, CEA, and imaging diagnostic methods.
  • the use of “substantially” or “substantially” means that the standard deviation from the theoretical model or theoretical data is within the range of 5%, preferably 3%, and more preferably 1%.
  • references to “some specific/preferred embodiments”, “other specific/preferred embodiments”, “implementations”, etc. refer to the specific elements described related to the implementation. (eg, features, structures, properties and/or characteristics) are included in at least one embodiment described herein and may or may not be present in other embodiments. Additionally, it is to be understood that the described elements may be combined in various embodiments in any suitable manner.
  • the "plurality” mentioned in the present invention means two or more.
  • “And/or” describes the relationship between related objects, indicating that there can be three relationships.
  • a and/or B can mean: A exists alone, A and B exist simultaneously, and B exists alone.
  • the character “/” generally indicates that the related objects are in an "or” relationship.
  • colon refers to the colon, rectum and/or appendix, ie the entire large intestine.
  • cancer also called carcinoma
  • carcinoma generally refers to any type of malignant neoplasm, that is, any target cell that displays or has a tendency to develop cancer characteristics when compared to unaffected (healthy) wild-type control cells.
  • Morphological and/or physiological changes (based on genetic re-programming). Examples of such changes may involve cell size and shape (increasing or decreasing), cell proliferation (increase in cell number), cell differentiation (change in physiological state), apoptosis (programmed cell death), or cell survival. Therefore, the term “colorectal cancer” refers to cancerous growths in the colon, rectum, and appendix.
  • colorectal cancer cell The most common type of colorectal cancer cell is adenocarcinoma, accounting for approximately 95% of cases.
  • Other types of CRC include lymphoma and squamous cell carcinoma, among others.
  • TNM Tumor Node Metastasis
  • T Tumor Node Metastasis
  • sample refers to any substance, including biological samples, that may contain target molecules that require analysis.
  • sample or biological sample refers to any sample obtained from a live or viral (or prion) source or other source of macromolecules and biomolecules, and includes from which nucleic acids, proteins, and /or other macromolecules in any cell type or tissue of the subject.
  • a sample or biological sample may be a sample obtained directly from a biological source or a processed sample.
  • Samples or biological samples include, but are not limited to, body fluids (such as blood, plasma, serum, cerebrospinal fluid, synovial fluid, urine, sweat, semen, feces, sputum, tears, mucus, amniotic fluid, etc.), exudate, bone marrow Samples, ascites, pelvic flushes, pleural fluid, spinal fluid, lymph fluid, eye fluid, extracts from nasal, throat or genital swabs, cell suspensions from digestive tissue, or extracts from fecal matter, and extracts from human, Tissue and organ samples of animals (e.g., non-human mammals) and plants, and processed samples derived therefrom.
  • body fluids such as blood, plasma, serum, cerebrospinal fluid, synovial fluid, urine, sweat, semen, feces, sputum, tears, mucus, amniotic fluid, etc.
  • exudate bone marrow Samples, ascites, pelvic flushes, pleural fluid,
  • the term "subject” may be a mammal or a cell, tissue, organ or part of the mammal.
  • mammal refers to any kind of mammal, preferably human (including humans, human subjects or human patients).
  • Subjects and mammals include, but are not limited to, farm animals, sporting animals, pets, primates, horses, dogs, cats, and rodents such as mice and rats.
  • diagnosis includes the detection or identification of a disease state or condition in a subject, the determination of the likelihood that a subject will develop a given disease or condition, or the determination of the likelihood that a subject suffering from a disease or condition will respond to treatment. properties, determining the prognosis of a subject suffering from a disease or disorder (or its likely progression or regression), and determining the effect of a treatment in a subject suffering from a disease or disorder.
  • diagnosis also means distinguishing the presence or absence of lymph node metastasis in a subject with colorectal cancer.
  • complementarity refers to a nucleotide (eg, 1 nucleotide) or polynucleotide (eg, a sequence of nucleotides) associated with a base pairing rule.
  • sequence 5'-AGT-3' is complementary to the sequence 3'-TCA-5'.
  • Complementarity can be “partial” in which only some of the nucleic acid bases base pair according to rules to match. Alternatively, there may be “complete” or “total” complementarity between nucleic acids. The degree of complementarity between nucleic acid strands affects the efficiency and strength of hybridization between nucleic acid strands. This is particularly important in amplification reactions and detection methods that rely on binding between nucleic acids.
  • polymerase chain reaction is used to amplify a target sequence and the method consists of introducing a large excess of two oligonucleotide primers into a DNA mixture containing the desired target sequence, followed by the presence of a DNA polymerase Perform the exact thermal cycling sequence below. Both primers are complementary to the corresponding strands of the double-stranded target sequence. To perform amplification, the mixture is denatured and the primers anneal to their complementary sequences within the target molecule. After annealing, the primers are amplified using a polymerase to form a new pair of complementary strands.
  • the steps of denaturation, primer annealing, and polymerase extension can be repeated multiple times (i.e., denaturation, annealing, and extension constitute one "cycle”; there can be many "cycles") to obtain a high concentration of amplified fragments of the desired target sequence.
  • the length of the amplified fragment of the desired target sequence is determined by the relative position of the primers relative to each other and is therefore a controllable parameter. Due to the repetitive aspect of the method, the method is known as “polymerase chain reaction” ("PCR"). Since the desired amplified fragment of the target sequence becomes the dominant sequence (in concentration) in the mixture, it is said to be “PCR amplified” and is a "PCR product” or "amplicon”.
  • amplifiable nucleic acid refers to a nucleic acid that can be amplified by any amplification method. It is contemplated that "amplifiable nucleic acid” will generally comprise a “sample template”.
  • sample template refers to the nucleic acid derived from the sample used to analyze the presence of the "target".
  • background template is used to refer to nucleic acids other than the sample template, which may or may not be present in the sample. Background templates are often unintentional. This may be a carryover result, or it may be due to the presence of nucleic acid contaminants that were attempted to be purified away from the sample. For example, nucleic acids from an organism other than the nucleic acid to be detected may be present as background in the test sample.
  • primer refers to an oligonucleotide that occurs naturally or synthetically in a purified restriction digest when exposed to conditions that induce the synthesis of a primer extension product complementary to a nucleic acid strand (e.g., in It can serve as a starting point for synthesis in the presence of nucleotides and an inducer such as DNA polymerase and at the appropriate temperature and pH).
  • Primers are preferably single-stranded for maximum efficiency of amplification, but may be double-stranded. If double-stranded, the primer is first treated to separate its strands before being used to prepare extension products.
  • the primers are oligodeoxyribonucleotides. Primers must be long enough to The synthesis of the extension product is initiated in the presence of an inducer. The exact length of the primer will depend on many factors, including temperature, source of primer, and method used.
  • probe refers to an oligonucleotide (e.g., a nucleotide sequence) that occurs naturally in a purified restriction digest or is synthesized, recombinant, or produced by PCR amplification, which is capable of interacting with another A target oligonucleotide hybridizes. Probes can be single-stranded or double-stranded. Probes can be used for the detection, identification and isolation of specific genetic sequences (eg, "capture probes"). It is contemplated that in some embodiments, any probe used in the invention may be labeled with any "reporter” such that it is detectable in any detection system.
  • amplification generally refers to the process of producing multiple copies of a desired sequence.
  • Multiple copies means at least two copies.
  • Copy does not necessarily mean perfect sequence complementarity or identity to the template sequence.
  • copies may include nucleotide analogs such as deoxyinosine, intentional sequence changes (such as those introduced by primers containing sequences that are hybridizable but not complementary to the template), and/or those that occur during amplification. Sequence error.
  • sequence determination and the like include determining information on the nucleotide base sequence of a nucleic acid. Such information may include the identification or determination of part or all of the sequence information of the nucleic acid. Sequence information can be determined with varying degrees of statistical reliability or confidence. In one aspect, the term includes determining the identity and sequence of multiple consecutive nucleotides in a nucleic acid.
  • sequencing includes sequence determination using methods that determine many (usually thousands to billions) of sequences in an essentially parallel manner.
  • nucleic acid sequences i.e. in this method the DNA templates are prepared not for sequencing one at a time but rather in a batch process and in this method many sequences are preferably read in parallel or the use itself can be parallelized Ultra-high-throughput serial process readout.
  • Such methods include, but are not limited to, pyrosequencing (e.g., as commercialized by 454 Life Sciences, Inc., Branford, CT); sequencing by ligation (e.g., as marketed by SOLiDTM technology, Life Technologies, Inc., Carlsbad, Calif.
  • sequencing by synthesis using modified nucleotides e.g., TruSeqTM and HiSeqTM technologies commercialized by Illumina, Inc., San Diego, CA, HeliScopeTM commercialized by Helicos Biosciences Corporation, Cambridge, MA; and Pacific Biosciences PacBio RS commercialized by California, Inc., Menlo Park, CA
  • sequencing by ion detection technology e.g, Ion TorrentTM technology, Life Technologies, Carlsbad, CA
  • DNA nanosphere sequencing Complete Genomics, Inc., Mountain View, CA
  • highly parallel sequencing methods such as nanopore-based sequencing technology (e.g., developed by Oxford Nanopore Technologies, LTD, Oxford, UK).
  • methylation refers to cytosine methylation at the C5 or N4 position of cytosine, methylation at the N6 position of adenine or other types of nucleic acid methylation.
  • In vitro amplified DNA is usually unmethylated because generally in vitro DNA amplification methods do not preserve the methylation pattern of the amplified template.
  • unmethylated DNA or “methylated DNA” can also refer to amplified DNA that is unmethylated or methylated from the original template, respectively.
  • methylated nucleotide or “methylated nucleotide base” refers to the presence of a methyl moiety on the nucleotide base, where the methyl moiety does not exist in recognized typical nucleotides. in the base.
  • cytosine does not contain a methyl moiety on its pyrimidine ring, but 5-methylcytosine contains a methyl moiety at position 5 of its pyrimidine ring. Therefore, cytosine is not a methylated nucleotide and 5-methylcytosine is.
  • thymine contains a methyl moiety at position 5 of its pyrimidine ring; however, for the purposes of this article, thymine is not considered a methylated nucleotide when present in DNA because thymine is DNA Typical nucleotide bases.
  • methylation status refers to the presence or absence of one or more methylated nucleotide bases in the nucleic acid molecule.
  • a nucleic acid molecule that contains methylated cytosine is considered methylated (eg, the methylation status of the nucleic acid molecule is methylated).
  • Nucleic acid molecules that do not contain any methylated nucleotides are considered unmethylated.
  • methylation status may optionally be represented or indicated by a "methylation value” (eg, indicating methylation frequency, fraction, ratio, percentage, etc.).
  • Methylation values can be quantified, e.g., after restriction digestion with methylation-dependent restriction enzymes, or by comparing amplification profiles after bisulfite reaction, or by comparing bisulfite treatment and Unprocessed nucleic acid sequences are generated. Therefore, values such as methylation values represent methylation status and can therefore be used as quantitative indicators of methylation status in multiple copies of a locus.
  • the "degree of methylation” or “degree of co-methylation” is defined by The methylation status of more than one methylation site indicates or indicates that within a methylation region (such as the methylation biomarker provided by the present invention), when the methyl group of more than one methylation site When both methylation states are methylated, it is defined as co-methylation.
  • bisulfite reagent refers to a reagent that in some embodiments includes bisulfite (bisulfite), disulfite (disulfite), hydrogen sulfite (hydrogen sulfite), or a combination thereof,
  • bisulfite bisulfite
  • disulfite disulfite
  • hydrogen sulfite hydrogen sulfite
  • a combination thereof After DNA is treated with bisulfite reagent, its unmethylated cytosine nucleotides will be converted into uracil, while the methylated cytosine and other bases will remain unchanged, so it can distinguish, for example, CpG dinuclear Methylated and unmethylated cytidines in nucleotide sequences.
  • Some aspects of the present invention provide a methylation biomarker for diagnosis of colorectal cancer lymph node metastasis, wherein the methylation biomarker includes:
  • the sequence shown in SEQ ID NO: 1 to 15 or a sequence complementary to the sequence shown in SEQ ID NO: 1 to 15 contains at least one methylation site indicated by CG , that is, the sequence shown in SEQ ID NO: 1 to 15 or the sequence complementary to the sequence shown in SEQ ID NO: 1 to 15 is a methylated region including the methylation site indicated by CG.
  • the methylation biomarkers comprise at least one, at least two, at least three, at least four, at least five of the sequences shown in SEQ ID NO: 1 to 15. species or more.
  • the methylation biomarker includes at least one, at least two, at least three, at least one of the sequences complementary to the sequences shown in SEQ ID NO: 1 to 15. Four, at least five or more.
  • the methylation biomarker may comprise at least one of the sequences shown in SEQ ID NO: 1 to 15 and is complementary to the sequence shown in SEQ ID NO: 1 to 15 at least one of the sequences.
  • the methylation biomarker at least includes the sequence shown in SEQ ID NO: 10 and/or a sequence complementary to the sequence shown in SEQ ID NO: 10.
  • the methylation biomarker comprises the sequence shown in SEQ ID NO: 10 and/or a sequence complementary to the sequence shown in SEQ ID NO: 10, and is selected from the following A combination of sequences:
  • the combination may be, but is not limited to:
  • SEQ ID NO:3 and SEQ ID NO:10 or a combination with the complementary sequences of SEQ ID NO:3 and SEQ ID NO:10;
  • SEQ ID NO:3 SEQ ID NO:10, SEQ ID NO:11, SEQ ID NO:12 and SEQ ID NO:15, or with SEQ ID NO:3, SEQ ID NO:10, SEQ ID NO :11, SEQ ID NO:12, SEQ ID NO:15 combination of complementary sequences.
  • the diagnosis is to distinguish the presence or absence of lymph node metastasis in a subject with colorectal cancer.
  • the subject is a mammal; preferably, the mammal is a human; further preferably, the subject is a colorectal cancer patient.
  • the colorectal cancer is selected from the group consisting of T1, T2, T3 or T4 colorectal cancer of the T stage in the TNM staging.
  • the use of the above-mentioned methylation biomarker in preparing a reagent or kit for diagnosing the presence of lymph node metastasis in a subject suffering from colorectal cancer is provided.
  • a reagent for detecting the methylation degree of the above-mentioned methylation biomarker is provided for use in preparing an assay for diagnosing the presence of lymph node metastasis in a subject suffering from colorectal cancer. Use in agents or kits.
  • kits for diagnosing colorectal cancer lymph node metastasis includes a method for detecting the methylation degree of the above-mentioned methylation biomarker in the sample to be tested. reagents.
  • the reagent is a reagent selected from the following methods for detecting methylation degree: fluorescence quantitative PCR (qPCR), methylation-specific PCR (MSP), One or more of digital PCR (ddPCR), DNA methylation chip, targeted DNA methylation sequencing, whole genome methylation sequencing (WGBS), DNA methylation mass spectrometry (MassArray) .
  • qPCR fluorescence quantitative PCR
  • MSP methylation-specific PCR
  • ddPCR digital PCR
  • DNA methylation chip DNA methylation chip
  • targeted DNA methylation sequencing targeted DNA methylation sequencing
  • WGBS whole genome methylation sequencing
  • MassArray DNA methylation mass spectrometry
  • the reagents are reagents used in fluorescence quantitative PCR and/or methylation-specific PCR.
  • the reagents include primers and/or probes.
  • the primer amplification includes the sequence shown in SEQ ID NO: 1 to 15 or a sequence complementary to the sequence shown in SEQ ID NO: 1 to 15.
  • the probe hybridizes at least in part to a sequence set forth in SEQ ID NO: 1-15 or a sequence complementary to a sequence set forth in SEQ ID NO: 1-15.
  • the reagents include at least one set of primers and probes selected from:
  • the sample to be tested is selected from one or more of tissue, blood, plasma, saliva, serum, urine, urine exfoliated cells, urine sediment, and urine supernatant. kind.
  • the sample to be tested is tissue, such as colorectal cancer tissue.
  • the use of at least one group selected from the following combinations of primers and probes in preparing a reagent or kit for diagnosing the presence of lymph node metastasis in a subject suffering from colorectal cancer wherein, the combination of primers and probes is used to detect the methylation degree of the above-mentioned methylation biomarkers:
  • Some aspects of the present invention provide a system for colorectal cancer lymph node metastasis diagnosis, wherein the system includes a detection device, a computing device and an output device;
  • the detection device includes a sample injector and a detector, the sample injector is used to collect samples from the subject, and the detector is used to detect the methylation degree of the above-mentioned methylation biomarker in the sample;
  • the computing device includes a memory and a processor, a computer program is stored in the memory, and the processor is configured to execute the computer program stored in the memory to achieve the following determination:
  • the methylation degree of the above-mentioned methylation biomarker in the sample is compared with the determination threshold to determine whether the subject corresponding to the sample has lymph node metastasis of colorectal cancer.
  • the output device is used to output the detection results of the detection device and/or the discrimination results of the computing device, and the output device includes at least one of a display, a printer, and an audio output device.
  • the computing device includes at least one of a computer host, a central processing unit, and a network server.
  • the determination threshold can be obtained in the following manner: establishing a determination based on the methylation degree of the above-mentioned methylation biomarkers in colorectal cancer lymph node non-metastasis subjects and lymph node metastasis subjects.
  • a diagnostic model for the occurrence of lymph node metastasis eg, ROC curve
  • a determination threshold for classifying whether lymph node metastasis exists is obtained based on the diagnostic model (eg, ROC curve).
  • a method for diagnosing colorectal cancer lymph node metastasis includes the following steps.
  • DNA methylation biomarkers used for diagnosis of colorectal cancer lymph node metastasis include:
  • the specific DNA methylation biomarkers are shown in Table 1 below.
  • the sequences shown in SEQ ID NO: 1 to 15 and their complementary sequences contain multiple methylation sites indicated by CG (shown in bold in Table 1). methylated region.
  • the present invention determines whether there is lymph node metastasis of colorectal cancer through the co-methylation degree (or methylation degree) of multiple methylation sites in the above-mentioned methylated region.
  • methylated regions of the above-mentioned DNA methylation biomarkers corresponding specific primers and probes were designed, as shown in Table 2 and Table 3 below. Specific primers and probes can be used to detect the methylation status of methylated sites in methylated regions, thereby determining the methylation degree of methylated regions, and can constitute reagents for the diagnosis of lymph node metastasis of colorectal cancer.
  • the cassette includes multiple methylation region methylation-specific primer pairs and probes.
  • the internal reference primers and probes are shown in Table 4 below: choose any group for each experiment.
  • primer probes of the present invention are purchased from Thermo Fisher, Jinweizhi Biotechnology Co., Ltd. or Sangon Bioengineering Co., Ltd., the multiplex PCR reaction reagents are purchased from NEB Company, and the fluorescent quantitative PCR reagents are purchased from NEB Company, TAKARA Company or Novezin company.
  • DNA extraction The extraction kit was purchased from QIAGEN Company and was carried out according to the kit instructions.
  • DNA bisulfite conversion The DNA bisulfite conversion kit was purchased from Zymo Company and was performed according to the kit instructions.
  • Multiplex PCR amplification Use 15 primer pairs of methylated regions, in each reaction Multiplex PCR is performed in the corresponding wells to amplify the target sequence containing the target region.
  • the product size is about 70-130bp.
  • the multiplex PCR reaction procedure is as follows: 98°C, 30 seconds ⁇ 20 ⁇ [98°C, 15 seconds ⁇ 63°C, 15 seconds ⁇ 72°C, 15 seconds] ⁇ 72°C 5 minutes ⁇ store at 4°C.
  • multiplex PCR and fluorescence quantitative PCR were performed with these 15 pairs of primers to obtain the ⁇ CT of these 15 markers in each sample.
  • the ⁇ CT value is negatively correlated with the amount of DNA in the sample.
  • the ⁇ CT value reflects the content of co-methylated DNA fragments of the marker in the sample. Generally, the higher the methylation level or the co-methylated DNA content, the higher the ⁇ CT value. The lower the value.
  • a diagnostic model ROC curve for identifying the occurrence of lymph node metastasis by a single methylation region is established, and based on the ROC curve Calculate the AUC value and the decision threshold to divide the area. Calculate the sensitivity, specificity, etc.
  • the pROC (version 1.12) package in R (R version 3.6.1) software was used to calculate the AUC, sensitivity (Sensitivity, SE), and specificity (Specificity, SP) of each marker.
  • Accuracy (ACC), Positive predictive value (PPV), Negative predictive value (NPV) are shown in Table 7 below. You can see that each marker is effective in distinguishing colorectal cancer lymph node metastasis. It has distinguishing ability in both the and non-metastasis aspects, and the ACC is above 0.54, up to about 0.82;
  • Figure 1 is the ⁇ CT clustering effect diagram.
  • biomarker shown in SEQ ID NO:10 performs best (AUC is about 0.87, ACC is about 0.82).
  • Select the biomarker shown in SEQ ID NO:10. substances, randomly combined with one or more markers in SEQ ID NO:3, SEQ ID NO:11, SEQ ID NO:12, and SEQ ID NO:15, using 221 samples, randomly divided 100 times, and using logic Regression modeling, the average AUC in 100 tests (tests) is shown in Table 8 below. It can be seen that the combination of these markers also has a good ability to distinguish lymph node metastasis of intestinal cancer.

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Abstract

本发明公开了甲基化生物标记物、试剂盒及用途。本发明提供了一种用于结直肠癌淋巴结转移诊断的甲基化生物标记物，其中，所述的甲基化生物标记物包含：(i)如SEQ ID NO:1～15所示的序列的至少一种；和/或(ii)与SEQ ID NO:1～15所示的序列互补的序列中的至少一种。本发明提供的DNA甲基化生物标记物、试剂盒可以用于诊断患有结直肠癌的受试者是否存在淋巴结转移，具有良好的敏感性、特异性及准确度。

Description

甲基化生物标记物、试剂盒及用途
优先权和相关申请
本发明要求2022年5月25日提交的名称为“甲基化生物标记物、试剂盒及用途”的中国专利申请202210578062.5的优先权，该申请包括附录在内的全部内容作为参考并入本发明。
技术领域
本发明涉及生物技术和医学诊断领域，具体涉及一种甲基化生物标记物、试剂盒及用途。
背景技术
结直肠癌(colorectal cancer,CRC)是世界第三大恶性肿瘤，全世界每年结直肠癌死亡率呈上升趋势，据最新统计，目前全球CRC的发病率逐渐升高，死亡率仍然高居不下，并CRC呈现出年轻化趋势。其发病率和死亡率已攀升到第三位和第二位，其中，CRC淋巴结转移是术后复发和死亡率升高的主要原因。在中国，CRC同样是最常见的恶性肿瘤之一，它给国民健康和经济负担都带来沉重的打击。根据2021年世界卫生组织国际癌症研究机构(international agency for research on cancer,IARC)公布的2020年数据显示，中国一年内新发的CRC患者约56万人，死亡近29万人，均呈现上升的趋势。而在我国，CRC具备有三个明显特征，第一是人口特征分布，目前男性CRC患者约是女性CRC患者1.3倍；同时，确诊CRC的平均年龄大概是59岁，也远低于世界平均年龄的69岁；第二，目前CRC的病理特征显示，确诊时是早期CRC患者比例在逐年减少，而确诊时已经是晚期CRC的比例仍在增加；第三，临床诊断方面显示目前计算机断层扫描成像(computed tomography，CT)用于诊断CRC的比例翻倍式升高；磁共振成像(magnetic resonance imaging，MRI)用于诊断CRC也较前增加，而正电子发射计算机断层扫描成像(positron  emission tomography-computed tomography,PET-CT)也明显升高；第四，目前CRC治疗方面仍然以手术为主，手术联合术后放化疗的治疗方案比例升高。
转移是恶性肿瘤的主要特征，这也是导致患者术后复发、死亡率高的主要原因。大多数恶性肿瘤的转移主要包括了淋巴结转移、种植转移、血道转移、直接转移。相似地，CRC也经血行转移，比如CRC最常见的是转移到肝脏，其次是肺、骨头、脑。除此之外，结直肠癌也可以直接侵犯肿瘤周围组织如膀胱、子宫、输尿管等。脱落的癌细胞也可以导致腹腔的种植转移。但是，CRC淋巴结转移是最主要的方式，而CRC淋巴结的转移决定了其预后及死亡率。由于CRC淋巴结转移与否决定了患者的重要分期，也是术后复发和预后的重要影响因素，同时也决定了不同的治疗方案，所以一直以来都受到临床上的广泛关注。因此，有必要在CRC治疗前了解患者有无合并淋巴结转移。目前广泛应用于临床的主要有血清学指标和影像学诊断，其中血清学指标主要包括胃肠道相关肿瘤抗原(CA199)、血清癌胚抗原(CEA)，但其检验效能有限，它们尚不能将CEA、CA199用于鉴别淋巴结转移。虽然目前对于CRC淋巴结转移诊断的金标准仍然是通过术后的淋巴结病理活检，但这明显滞后。因此术前的影像学诊断仍被广泛用于对CRC淋巴结转移的判断。但目前关于影像学在CRC淋巴结转移的诊断准确性仍然偏低。有研究指出MRI、CT对CRC淋巴结诊断结果与CRC组织病理学结果的符合率分别只有为57.6％和54.7％，而MRI和CT的敏感性分别为42.6％和25.0％，特异性分别为74.1％和41.3％，且MR和CT评估5年无病生存率和总生存率的符合率分别为56.7％和43.8％。虽然总体MRI诊断性能优于CT，但诊断效能仍十分有限。而近年来被广泛认可的用于肿瘤诊断，尤其是微小病灶具有高度敏感性和特异性的PET-CT，其在关于CRC淋巴结转移的诊断效能也非常有限。有实验证明，
PET-CT检测CRC近端淋巴结的灵敏度为66％，特异性为60％，准确度为63％，其特异性及准确性同比高于CT特异性的29％，准确性的59％，但仍到不到70％以上甚至更高的水平。
综上，亟需开发一种新的DNA甲基化标志物，鉴别早期肠癌淋巴结转移， 辅助临床准确诊断和指导治疗。
发明内容
发明要解决的问题
本发明的目的在于利用DNA甲基化生物标记物来检测结直肠癌淋巴结转移与非转移，本发明提供的甲基化生物标记物可以实现精准检测/诊断的目的。
用于解决问题的方案
本发明的一些方面提供了一种用于结直肠癌淋巴结转移诊断的甲基化生物标记物，其中，所述的甲基化生物标记物包含：
(i)如SEQ ID NO:1～15所示的序列的至少一种；和/或，
(ii)与SEQ ID NO:1～15所示的序列互补的序列中的至少一种。
在一些实施方案中，所述的甲基化生物标记物至少包含SEQ ID NO:10所示的序列和/或与SEQ ID NO:10所示的序列互补的序列。
在一些实施方案中，所述的甲基化生物标记物包含SEQ ID NO:10所示的序列和/或与SEQ ID NO:10所示的序列互补的序列，与选自以下的序列的组合：
(a)如SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12和SEQ ID NO:15中所示的序列的至少一种；和/或，
(b)与SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12和SEQ ID NO:15所示的序列互补的序列中的至少一种。
在一些实施方案中，所述诊断是区分患有结直肠癌的受试者是否存在淋巴结转移。
在一些任选的实施方案中，所述结直肠癌选自TNM分期中T分期的T1期、T2期、T3期或T4期的结直肠癌。
在本发明的一些方面提供了上述的甲基化生物标记物在制备用于诊断患有结直肠癌的受试者是否存在淋巴结转移的试剂或试剂盒中的用途。
在本发明的一些方面提供了一种用于结直肠癌淋巴结转移诊断的试剂盒，其中，所述的试剂盒包含用于检测待测样本中上述的甲基化生物标记物的甲基化程度的试剂。
在一些实施方案中，所述的试剂为选自以下的检测甲基化程度的方法中所使用的试剂：荧光定量PCR、甲基化特异性PCR、数字PCR、DNA甲基化芯片、靶向DNA甲基化测序、全基因组甲基化测序和DNA甲基化质谱中的一种或多种。
在一些具体的实施方案中，所述的试剂包括引物和/或探针；其中，所述引物特异扩增包含SEQ ID NO:1～15所示的序列或与SEQ ID NO:1～15所示的序列互补的序列；所述探针至少部分地与SEQ ID NO:1～15所示的序列或与SEQ ID NO:1～15所示的序列互补的序列杂交。
在一些更具体的实施方案中，所述的试剂包括选自以下的至少一组引物和探针：
(1)如SEQ ID NO:16～17所示的引物，如SEQ ID NO:46所示的探针；
(2)如SEQ ID NO:18～19所示的引物，如SEQ ID NO:47所示的探针；
(3)如SEQ ID NO:20～21所示的引物，如SEQ ID NO:48所示的探针；
(4)如SEQ ID NO:22～23所示的引物，如SEQ ID NO:49所示的探针；
(5)如SEQ ID NO:24～25所示的引物，如SEQ ID NO:50所示的探针；
(6)如SEQ ID NO:26～27所示的引物，如SEQ ID NO:51所示的探针；
(7)如SEQ ID NO:28～29所示的引物，如SEQ ID NO:52所示的探针；
(8)如SEQ ID NO:30～31所示的引物，如SEQ ID NO:53所示的探针；
(9)如SEQ ID NO:32～33所示的引物，如SEQ ID NO:54所示的探针；
(10)如SEQ ID NO:34～35所示的引物，如SEQ ID NO:55所示的探针；
(11)如SEQ ID NO:36～37所示的引物，如SEQ ID NO:56所示的探针；
(12)如SEQ ID NO:38～39所示的引物，如SEQ ID NO:57所示的探针；
(13)如SEQ ID NO:40～41所示的引物，如SEQ ID NO:58所示的探针；
(14)如SEQ ID NO:42～43所示的引物，如SEQ ID NO:59所示的探针；
(15)如SEQ ID NO:44～45所示的引物，如SEQ ID NO:60所示的探针。
在一些具体实施方案中，所述的待测样本选自组织、血液、血浆、唾液、血清、尿液、尿液脱落细胞、尿沉渣、尿液上清中的一种或多种。
本发明的一些方面提供了一种用于结直肠癌淋巴结转移诊断的系统，其中，所述系统包括检测装置、计算装置和输出装置；
所述检测装置包括进样器和检测器，所述进样器用于采集来自受试者的样本，所述检测器用于检测所述样本中上述的甲基化生物标记物的甲基化程度；
所述计算装置包括存储器和处理器，所述存储器中存储有计算机程序，所述处理器被配置为执行所述存储器中存储的计算机程序，以实现如下判别：
将所述样本中所述的甲基化生物标记物的甲基化程度与判定阈值相比较，判别所述样本对应的受试者的是否存在结直肠癌淋巴结转移。
本发明的一些方面提供了选自以下的引物和探针的组合中的至少一组在制备用于诊断患有结直肠癌的受试者是否存在淋巴结转移的试剂或试剂盒中的用途，其中，所述引物和探针的组合用于检测上述的甲基化生物标记物的甲基化程度：
(1)如SEQ ID NO:16～17所示的引物，如SEQ ID NO:46所示的探针；
(2)如SEQ ID NO:18～19所示的引物，如SEQ ID NO:47所示的探针；
(3)如SEQ ID NO:20～21所示的引物，如SEQ ID NO:48所示的探针；
(4)如SEQ ID NO:22～23所示的引物，如SEQ ID NO:49所示的探针；
(5)如SEQ ID NO:24～25所示的引物，如SEQ ID NO:50所示的探针；
(6)如SEQ ID NO:26～27所示的引物，如SEQ ID NO:51所示的探针；
(7)如SEQ ID NO:28～29所示的引物，如SEQ ID NO:52所示的探针；
(8)如SEQ ID NO:30～31所示的引物，如SEQ ID NO:53所示的探针；
(9)如SEQ ID NO:32～33所示的引物，如SEQ ID NO:54所示的探针；
(10)如SEQ ID NO:34～35所示的引物，如SEQ ID NO:55所示的探针；
(11)如SEQ ID NO:36～37所示的引物，如SEQ ID NO:56所示的探针；
(12)如SEQ ID NO:38～39所示的引物，如SEQ ID NO:57所示的探针；
(13)如SEQ ID NO:40～41所示的引物，如SEQ ID NO:58所示的探针；
(14)如SEQ ID NO:42～43所示的引物，如SEQ ID NO:59所示的探针；
(15)如SEQ ID NO:44～45所示的引物，如SEQ ID NO:60所示的探针。
发明的效果
本发明提供的DNA甲基化生物标记物、试剂盒可以用于诊断患有结直肠癌的受试者是否存在淋巴结转移，具有良好的敏感性、特异性及准确度。
附图说明
图1为甲基化生物标记物的ΔCT聚类效果图。
图2为比较SEQ ID NO:10所示标记物与CA199、CEA、影像诊断方法的AUC差异的示意图。
具体实施方式
以下，针对本发明的内容进行详细说明。以下所记载的技术特征的说明基于本发明的代表性的实施方案、具体例子而进行，但本发明不限定于这些实施方案、具体例子。需要说明的是：
本说明书中，使用“数值A～数值B”表示的数值范围是指包含端点数值A、B的范围。
本说明书中，使用“基本上”或“实质上”表示与理论模型或理论数据的标准偏差在5％、优选为3％、更优选为1％范围以内。
本说明书中，使用“可以”表示的含义包括了进行某种处理以及不进行某种处理两方面的含义。
本说明书中，“任选的”或“任选地”是指接下来描述的事件或情况可发生或可不发生，并且该描述包括该事件发生的情况和该事件不发生的情况。
本说明书中，所提及的“一些具体/优选的实施方案”、“另一些具体/优选的实施方案”、“实施方案”等是指所描述的与该实施方案有关的特定要素 (例如，特征、结构、性质和/或特性)包括在此处所述的至少一种实施方案中，并且可存在于其它实施方案中或者可不存在于其它实施方案中。另外，应理解，所述要素可以任何合适的方式组合在各种实施方案中。
本发明的术语“包括”和“具有”以及它们任何变形，意图在于覆盖不排他的包含。例如包含了一系列步骤的过程、方法、装置、产品或设备没有限定于已列出的步骤或模块，而是可选地还包括没有列出的步骤，或可选地还包括对于这些过程、方法、产品或设备固有的其它步骤。
在本发明中提及的“多个”是指两个或两个以上。“和/或”，描述关联对象的关联关系，表示可以存在三种关系，例如，A和/或B，可以表示：单独存在A，同时存在A和B，单独存在B这三种情况。字符“/”一般表示前后关联对象是一种“或”的关系。
本说明书中，术语“结直肠”指的是结肠、直肠和/或阑尾，即整个大肠。
本说明书中，术语“癌症”(也称为癌)通常指任何类型的恶性新生物，即与未受影响的(健康)野生型对照细胞相比显示或具有发生癌特征倾向的靶细胞的任何形态学和/或生理学改变(基于遗传重编程(genetic re-programming))。这种改变的例子可涉及细胞大小和形状(变大或变小)、细胞增殖(细胞数增加)、细胞分化(生理学状态变化)、凋亡(程序性细胞死亡)或细胞存活。因此，术语“结直肠癌”指的是结肠、直肠和阑尾的癌性生长。
最常见的结直肠癌细胞类型是腺癌，大约占95％。其他类型的CRC包括尤其是淋巴瘤和鳞癌。
本说明书中，TNM(Tumor Node Metastasis)是肿瘤学中对肿瘤的一种分期形式，其中T(Tumor)指肿瘤原发灶的情况，随着肿瘤体积的增加和邻近组织受累范围的增加，依次用T1～T4来表示；N(Node)指区域淋巴结(regional lymph node)受累情况。淋巴结未受累时，用N0表示。随着淋巴结受累程度和范围的增加，依次用N1～N3表示；M(Metastasis)指远处转移 (通常是血道转移)，没有远处转移者用M0表示，有远处转移者用M1表示。在此基础上，用TNM三个指标的组合划出特定的分期。
本说明书中，术语“样本”是指可能包含需要进行分析的靶分子的任何物质，包括生物样本。如本文所用，“样本”或“生物样本”是指从活的或病毒性(或朊病毒的)来源或其他大分子和生物分子来源获得的任何样本，并且包括可以从之获得核酸、蛋白质和/或其他大分子的受试者的任何细胞类型或组织。样本或生物样本可以是直接从生物来源获得的样本或者是被处理的样本。样本或生物样本包括，但不限于，体液(例如血液、血浆、血清、脑脊髓液、滑液、尿液、汗液、精液、粪便、痰、眼泪、粘液、羊水等)、渗出液、骨髓样本、腹水、骨盆冲洗液、胸膜液、脊髓液、淋巴液、眼液、鼻、喉或生殖器拭子的提取物、消化组织的细胞悬浮液、或粪类物质的提取物、以及来自人、动物(例如非人哺乳动物)和植物的组织和器官样本，以及由此衍生出的加工样本。
本说明书中，术语“受试者”可以是哺乳动物或所述哺乳动物的细胞、组织、器官或一部分。在本发明中，哺乳动物是指任何种类的哺乳动物，优选人(包括人、人受试者或人患者)。受试者和哺乳动物包括，但不限于，农场动物、运动动物、宠物、灵长类动物、马、狗、猫和啮齿类动物如小鼠和大鼠。
本说明书中，诊断包括受试者疾病状态或病症的检测或鉴定、确定受试者将患给定疾病或病症的可能性、确定患有疾病或病症的受试者将对治疗有反应的可能性、确定患有疾病或病症的受试者的预后(或其可能的进展或消退)以及确定治疗对患有疾病或病症的受试者的效果。
在本发明的一些具体实施方案中，诊断还意指区分患有结直肠癌的受试者是否存在淋巴结转移。
术语“互补”和“互补性”是指与碱基配对规则相关的核苷酸(例如，1个核苷酸)或多核苷酸(例如核苷酸的序列)。例如，序列5′-A-G-T-3′与序列3′-T-C-A-5′互补。互补可以是“部分的”，其中仅一些核酸碱基根据碱基配对 规则进行匹配。或者，核酸之间可能存在“完全”或“总”互补。核酸链之间的互补程度影响核酸链之间杂交的效率和强度。这在扩增反应和依赖核酸之间的结合的检测方法中尤其重要。
术语“聚合酶链式反应”用于扩增靶序列，该方法由以下步骤组成：将大量过量的两种寡核苷酸引物引入到含有期望靶序列的DNA混合物中，随后在DNA聚合酶存在下进行精确的热循环顺序。两种引物与双链靶序列的相应链互补。为了进行扩增，将混合物变性，然后引物与靶分子内的其互补序列退火。退火后，用聚合酶扩增引物，形成一对新的互补链。变性、引物退火和聚合酶延伸的步骤可以重复多次(即，变性、退火和延伸构成一个“循环”；可以有许多“循环”)以获得高浓度的期望靶序列的扩增片段。期望靶序列的扩增片段的长度由引物相对于彼此的相对位置确定，因此该长度是可控参数。由于该方法的重复方面，该方法被称为“聚合酶链式反应”(“PCR”)。由于靶序列的期望扩增片段成为混合物中的主要序列(以浓度计)，所以称其被“PCR扩增”，是“PCR产物”或“扩增子”。
本说明书中，术语“可扩增核酸”是指可以通过任何扩增方法扩增的核酸。预期“可扩增核酸”通常将包含“样本模板”。
本说明书中，术语“样本模板”是指来源于样本的用于分析“靶”的存在的核酸。相比之下，“背景模板”用于指样本模板以外的核酸，其可能存在或可能不存在于样本中。背景模板通常是无意的。这可能是遗留的结果，或者可能是由于试图从样本中纯化走的核酸污染物的存在。例如，来自生物体的待检测核酸以外的核酸可以作为测试样本的背景存在。
本说明书中，术语“引物”是指在纯化的限制性消化物中天然存在的或合成产生的寡核苷酸，当处于其中诱导与核酸链互补的引物延伸产物合成的条件下(例如，在核苷酸和诱导剂如DNA聚合酶的存在下并且在合适的温度和pH下)时，其能够作为合成的起点。引物优选是单链的，用于扩增的最大效率，但也可以是双链的。如果是双链，则在用于制备延伸产物之前首先处理引物以分离其链。优选地，引物是寡脱氧核糖核苷酸。引物必须足够长以 在诱导剂的存在下引发延伸产物的合成。引物的确切长度将取决于许多因素，包括温度、引物来源以及方法的使用。
本说明书中，术语“探针”是指在纯化的限制性消化物中天然存在的或者合成、重组或通过PCR扩增产生的寡核苷酸(例如，核苷酸序列)，其能够与另一种目标寡核苷酸杂交。探针可以是单链或双链的。探针可用于特定基因序列的检测、鉴定和分离(例如，“捕获探针”)。预期在一些实施方案中，本发明中使用的任何探针可以用任何“报道分子”进行标记，使得在任何检测系统中可检测。
本说明书中，“扩增”通常是指产生所需序列的多个拷贝的过程。“多个拷贝”是指至少两个拷贝。“拷贝”并不一定意味着与模板序列具有完美的序列互补性或同一性。例如，拷贝可以包括核苷酸类似物如脱氧肌苷，有意的序列改变(例如通过包含与模板可杂交但不互补的序列的引物引入的序列改变)，和/或在扩增过程中发生的序列错误。
本说明书中，“序列确定”等包括确定与核酸的核苷酸碱基序列有关的信息。这样的信息可以包括对核酸的部分或全部序列信息的鉴定或确定。可以以不同程度的统计可靠性或置信度来确定序列信息。在一个方面，所述术语包括确定核酸中多个连续核苷酸的身份和顺序。
本说明书中，术语“测序”、“高通量测序”或“下一代测序”包括使用这样的方法进行序列确定：所述方法以本质上平行的方式确定许多(通常数千至数十亿)个核酸序列，即在这种方法中，制备DNA模板并不是用于每次测序一个，而是以批量过程进行，并且在这种方法中许多序列优选地被并行读取，或者使用本身可以并行化的超高通量串行过程读取。此类方法包括但不限于焦磷酸测序(例如，如454Life Sciences,Inc.,Branford,CT所商业化的)；通过连接进行测序(例如，如SOLiDTM技术，Life Technologies,Inc.,Carlsbad,CA所商业化的)；使用修饰的核苷酸通过合成进行测序(例如，如Illumina,Inc.,San Diego,CA所商业化的TruSeqTM和HiSeqTM技术，Helicos Biosciences Corporation,Cambridge,MA所商业化的HeliScopeTM；和Pacific Biosciences  of California,Inc.,Menlo Park,CA所商业化的PacBio RS)，通过离子检测技术进行测序(例如，Ion TorrentTM技术,Life Technologies,Carlsbad,CA)；DNA纳米球测序(Complete Genomics,Inc.,Mountain View,CA)；基于纳米孔的测序技术(例如，由Oxford Nanopore Technologies,LTD,Oxford,UK所开发的)等高度并行的测序方法。
本说明书中，“甲基化”是指胞嘧啶位置C5或N4的胞嘧啶甲基化，腺嘌呤的N6位点或其他类型的核酸甲基化。体外扩增的DNA通常是未甲基化的，因为通常体外DNA扩增方法不能保留扩增模板的甲基化模式。然而，“未甲基化DNA”或“甲基化DNA”也可以分别指原始模板未甲基化或甲基化的扩增DNA。
本说明书中，“甲基化核苷酸”或“甲基化核苷酸碱基”是指在核苷酸碱基上存在甲基部分，其中甲基部分不存在于公认的典型核苷酸碱基中。例如，胞嘧啶在其嘧啶环上不包含甲基部分，但是5-甲基胞嘧啶在其嘧啶环的5位包含甲基部分。因此，胞嘧啶不是甲基化核苷酸，5-甲基胞嘧啶是甲基化核苷酸。在另一个实例中，胸腺嘧啶在其嘧啶环的5位含有甲基部分；然而，为了本文的目的，当存在于DNA中时不认为胸腺嘧啶是甲基化核苷酸，因为胸腺嘧啶是DNA的典型核苷酸碱基。
本说明书中，核酸分子的“甲基化状态”、“甲基化谱”和“甲基化状况”是指在核酸分子中存在或不存在一个或多个甲基化核苷酸碱基。例如，包含甲基化胞嘧啶的核酸分子被视为甲基化的(例如，核酸分子的甲基化状态为甲基化的)。不含任何甲基化核苷酸的核酸分子被视为未甲基化的。
本说明书中，甲基化状态可任选地由“甲基化值”表示或指示(例如，表示甲基化频率、分数、比例、百分比等)。甲基化值可以例如在用甲基化依赖性限制酶限制性消化之后定量存在的完整核酸的量，或者通过比较亚硫酸氢盐反应后的扩增谱，或者通过比较亚硫酸氢盐处理和未处理的核酸的序列来产生。因此，诸如甲基化值的值代表甲基化状态，因此可用作基因座的多个拷贝中甲基化状态的定量指标。“甲基化程度”或“共甲基化程度”由 多于一个甲基化位点的甲基化状态表示或指示，在一段甲基化区域内(例如本发明提供的甲基化生物标记物)，当多于一个甲基化位点的甲基化状态均为甲基化时定义为共甲基化。
本说明书中，术语“亚硫酸氢盐试剂”是指在一些实施方案中包含亚硫酸氢盐(bisulfite)、亚硫酸氢盐(disulfite)、亚硫酸氢盐(hydrogen sulfite)或其组合的试剂，经过亚硫酸氢盐试剂处理的DNA，其未经过甲基化的胞嘧啶核苷酸将转化为尿嘧啶，而甲基化的胞嘧啶及其他碱基维持不变，因此可以区分例如CpG二核苷酸序列中的甲基化和未甲基化胞苷。
以下对于本发明甲基化生物标记物、试剂盒及用途进一步说明。
<甲基化生物标记物>
本发明的一些方面提供了一种用于结直肠癌淋巴结转移诊断的甲基化生物标记物，其中，所述的甲基化生物标记物包含：
(i)如SEQ ID NO:1～15所示的序列的至少一种；和/或，
(ii)与SEQ ID NO:1～15所示的序列互补的序列中的至少一种。
在本发明的一些实施方案中，如SEQ ID NO:1～15所示的序列或与SEQ ID NO:1～15所示的序列互补的序列中包含至少一个由CG指示的甲基化位点，即如SEQ ID NO:1～15所示的序列或与SEQ ID NO:1～15所示的序列互补的序列为包含由CG指示的甲基化位点的甲基化区域。
在本发明的一些实施方案中，所述的甲基化生物标记物包含如SEQ ID NO:1～15所示的序列的至少一种、至少两种、至少三种、至少四种、至少五种或更多种。在本发明的另一些实施方案中，所述的甲基化生物标记物包含与SEQ ID NO:1～15所示的序列互补的序列中的至少一种、至少两种、至少三种、至少四种、至少五种或更多种。在本发明的一些实施方案中，所述的甲基化生物标记物可以包含如SEQ ID NO:1～15所示的序列的至少一种和与SEQ ID NO:1～15所示的序列互补的序列中的至少一种。
在本发明的一些优选的实施方案中，所述的甲基化生物标记物至少包含SEQ ID NO:10所示的序列和/或与SEQ ID NO:10所示的序列互补的序列。
在本发明的一些具体实施方案中，所述的甲基化生物标记物包含SEQ ID NO:10所示的序列和/或与SEQ ID NO:10所示的序列互补的序列，与选自以下的序列的组合：
(a)如SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12和SEQ ID NO:15中所示的序列的至少一种；和/或，
(b)与SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12和SEQ ID NO:15所示的序列互补的序列中的至少一种。
在本发明的一些具体实施方案中，所述的组合可以为但不限于：
(1)SEQ ID NO:3和SEQ ID NO:10，或与SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:10互补序列的组合；
(2)SEQ ID NO:10和SEQ ID NO:11，或与SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11互补序列的组合；
(3)SEQ ID NO:10和SEQ ID NO:15，或与SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:15互补序列的组合；
(4)SEQ ID NO:10和SEQ ID NO:12，或与SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:12互补序列的组合；
(5)SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:10和SEQ ID NO:11，或与SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11互补序列的组合；
(6)SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:10和SEQ ID NO:15，或与SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:15互补序列的组合；
(7)SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:10和SEQ ID NO:12，或与SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:12互补序列的组合；
(8)SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11和SEQ ID NO:15，或与SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:15互补序列的组合；
(9)SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11和SEQ ID NO:12，或与SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12互补序列的组合；
(10)SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:12和SEQ ID NO:15，或与SEQ ID NO: 10、SEQ ID NO:12、SEQ ID NO:15互补序列的组合；
(11)SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12和SEQ ID NO:15，或与SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12、SEQ ID NO:15互补序列的组合；
(12)SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11和SEQ ID NO:15，或与SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:15互补序列的组合；
(13)SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:12和SEQ ID NO:15，或与SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:12、SEQ ID NO:15互补序列的组合；
(14)SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11和SEQ ID NO:12，或与SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12互补序列的组合；
(15)SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12和SEQ ID NO:15，或与SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12、SEQ ID NO:15互补序列的组合。
在本发明的一些实施方案中，所述诊断是区分患有结直肠癌的受试者是否存在淋巴结转移。
在本发明的一些具体实施方案中，所述的受试者是哺乳动物；优选地，所述的哺乳动物是人；进一步优选地，所述的受试者是结直肠癌患者。
在本发明的一些具体实施方案中，所述结直肠癌选自TNM分期中T分期的T1期、T2期、T3期或T4期的结直肠癌。
<甲基化生物标记物的用途>
在本发明的一些方面中，提供了上述的甲基化生物标记物在制备用于诊断患有结直肠癌的受试者是否存在淋巴结转移的试剂或试剂盒中的用途。
在另一些实施方案中，提供了检测上述的甲基化生物标记物的甲基化程度的试剂在制备用于诊断患有结直肠癌的受试者是否存在淋巴结转移的试 剂或试剂盒中的用途。
<结直肠癌淋巴结转移诊断的试剂盒>
在本发明的一些方面中，提供了用于结直肠癌淋巴结转移诊断的试剂盒，其中，所述的试剂盒包含用于检测待测样本中上述的甲基化生物标记物的甲基化程度的试剂。
在本发明的一些具体的实施方案中，所述的试剂为选自以下的检测甲基化程度的方法中所使用的试剂：荧光定量PCR(qPCR)、甲基化特异性PCR(MSP)、数字PCR(ddPCR)、DNA甲基化芯片、靶向DNA甲基化测序、全基因组甲基化测序(Whole Genome Bisulfite Sequencing,WGBS)、DNA甲基化质谱(MassArray)中的一种或多种。
在本发明的一些具体的实施方案中，所述的试剂为荧光定量PCR和/或甲基化特异性PCR中所使用的试剂。具体地，所述的试剂包括引物和/或探针。在一些实施方案中，所述引物扩增(特异性扩增)包含SEQ ID NO:1～15所示的序列或与SEQ ID NO:1～15所示的序列互补的序列。在一些实施方案中，所述探针至少部分地与SEQ ID NO:1～15所示的序列或与SEQ ID NO:1～15所示的序列互补的序列杂交。
在本发明的一些更具体的实施方案中，所述的试剂包括选自以下的至少一组引物和探针：
(1)如SEQ ID NO:16～17所示的引物，如SEQ ID NO:46所示的探针；
(2)如SEQ ID NO:18～19所示的引物，如SEQ ID NO:47所示的探针；
(3)如SEQ ID NO:20～21所示的引物，如SEQ ID NO:48所示的探针；
(4)如SEQ ID NO:22～23所示的引物，如SEQ ID NO:49所示的探针；
(5)如SEQ ID NO:24～25所示的引物，如SEQ ID NO:50所示的探针；
(6)如SEQ ID NO:26～27所示的引物，如SEQ ID NO:51所示的探针；
(7)如SEQ ID NO:28～29所示的引物，如SEQ ID NO:52所示的探针；
(8)如SEQ ID NO:30～31所示的引物，如SEQ ID NO:53所示的探针；
(9)如SEQ ID NO:32～33所示的引物，如SEQ ID NO:54所示的探针；
(10)如SEQ ID NO:34～35所示的引物，如SEQ ID NO:55所示的探针；
(11)如SEQ ID NO:36～37所示的引物，如SEQ ID NO:56所示的探针；
(12)如SEQ ID NO:38～39所示的引物，如SEQ ID NO:57所示的探针；
(13)如SEQ ID NO:40～41所示的引物，如SEQ ID NO:58所示的探针；
(14)如SEQ ID NO:42～43所示的引物，如SEQ ID NO:59所示的探针；
(15)如SEQ ID NO:44～45所示的引物，如SEQ ID NO:60所示的探针。
在本发明的一些具体的实施方案中，所述的待测样本选自组织、血液、血浆、唾液、血清、尿液、尿液脱落细胞、尿沉渣、尿液上清中的一种或多种。在一些优选的实施方案中，所述的待测样本为组织，例如结直肠癌组织。
<引物和探针的组合的用途>
在本发明的一些方面，提供了选自以下的引物和探针的组合的至少一组在制备用于诊断患有结直肠癌的受试者是否存在淋巴结转移的试剂或试剂盒中的用途，其中，所述引物和探针的组合用于检测上述的甲基化生物标记物的甲基化程度：
(1)如SEQ ID NO:16～17所示的引物，如SEQ ID NO:46所示的探针；
(2)如SEQ ID NO:18～19所示的引物，如SEQ ID NO:47所示的探针；
(3)如SEQ ID NO:20～21所示的引物，如SEQ ID NO:48所示的探针；
(4)如SEQ ID NO:22～23所示的引物，如SEQ ID NO:49所示的探针；
(5)如SEQ ID NO:24～25所示的引物，如SEQ ID NO:50所示的探针；
(6)如SEQ ID NO:26～27所示的引物，如SEQ ID NO:51所示的探针；
(7)如SEQ ID NO:28～29所示的引物，如SEQ ID NO:52所示的探针；
(8)如SEQ ID NO:30～31所示的引物，如SEQ ID NO:53所示的探针；
(9)如SEQ ID NO:32～33所示的引物，如SEQ ID NO:54所示的探针；
(10)如SEQ ID NO:34～35所示的引物，如SEQ ID NO:55所示的探针；
(11)如SEQ ID NO:36～37所示的引物，如SEQ ID NO:56所示的探针；
(12)如SEQ ID NO:38～39所示的引物，如SEQ ID NO:57所示的探针；
(13)如SEQ ID NO:40～41所示的引物，如SEQ ID NO:58所示的探针；
(14)如SEQ ID NO:42～43所示的引物，如SEQ ID NO:59所示的探针；
(15)如SEQ ID NO:44～45所示的引物，如SEQ ID NO:60所示的探针。
<结直肠癌淋巴结转移诊断系统>
本发明的一些方面提供了一种用于结直肠癌淋巴结转移诊断的系统，其中，所述系统包括检测装置、计算装置和输出装置；
所述检测装置包括进样器和检测器，所述进样器用于采集来自受试者的样本，所述检测器用于检测所述样本中上述的甲基化生物标记物的甲基化程度；
所述计算装置包括存储器和处理器，所述存储器中存储有计算机程序，所述处理器被配置为执行所述存储器中存储的计算机程序，以实现如下判别：
将所述样本中如上述的甲基化生物标记物的甲基化程度与判定阈值相比较，判别所述样本对应的受试者的是否存在结直肠癌淋巴结转移。
在一些具体的实施方案中，所述输出装置用于输出所述检测装置的检测结果和/或所述计算装置的判别结果，所述输出装置包括显示器、打印机和音频输出装置中的至少一种；所述计算装置包括电脑主机、中央处理器和网络服务器中的至少一种。
在一些具体的实施方案中，所述判定阈值可以通过以下方式获得：根据结直肠癌淋巴结非转移受试者及淋巴结转移受试者中上述的甲基化生物标记的甲基化程度，建立判别淋巴结转移发生的诊断模型(例如ROC曲线)，并根据诊断模型(例如ROC曲线)获得划分是否存在淋巴结转移的判定阈值。
<结直肠癌淋巴结转移诊断方法>
在本发明的一些方面，提供了一种结直肠癌淋巴结转移诊断方法，其包括以下步骤。
获得受试者的样本；
提取所述样本的基因组DNA和/或游离DNA；
检测所述DNA中，上述的甲基化生物标记物的甲基化程度；
判别受试者是否存在直肠癌淋巴结转移，即患有结直肠癌的受试者是否存在淋巴结转移。
以下通过实施例与测试例进一步说明本发明，但不作为对本发明的限制。以下提供了本发明实施方案中所使用的具体材料及其来源。但是，应当理解的是，这些仅仅是示例性的，并不意图限制本发明，与如下试剂和仪器的类型、型号、品质、性质或功能相同或相似的材料均可以用于实施本发明。下述实施例与测试例中所使用的实验方法如无特殊说明，均为常规方法。下述实施例与测试例中所用的材料、试剂等，如无特殊说明，均可从商业途径得到。
实验材料及方法
一、DNA甲基化生物标记物
本发明以下实施例中，用于结直肠癌淋巴结转移诊断的DNA甲基化生物标记物，其包含：
(i)如SEQ ID NO:1～15所示的序列的至少一种，和/或
(ii)与SEQ ID NO:1～15所示的序列互补的序列中的至少一种。
DNA甲基化生物标记物具体如下表1所示，SEQ ID NO:1～15所示的序列及其互补序列为包含由CG指示(表1中粗体显示)的多个甲基化位点的甲基化区域。本发明通过上述甲基化区域中的多个甲基化位点的共甲基化程度(或称为甲基化程度)判别是否存在结直肠癌淋巴结转移。
在下表中，根据2009年2月human genome assembly GRCh37/hg19(参见例如Rosenbloom等(2012)“ENCODE whole-genome data in the UCSC Genome Browser：update 2012”Nucleic Acids Research 40：D912-D917)对碱基编号。
表1 DNA甲基化生物标记物

二、引物及探针
针对上述的DNA甲基化生物标记物的甲基化区域，设计了相应的特异性引物及探针，具体如下表2和表3所示。特异性引物及探针可以用于检测甲基化区域中甲基化位点的甲基化状态，从而判断甲基化区域的甲基化程度，可以构成用于结直肠癌淋巴结转移诊断的试剂盒，包括多个甲基化区域甲基化特异性引物对及探针。
表2针对DNA甲基化生物标记物的特异性引物
表3针对DNA甲基化生物标记物的探针
内参引物及探针如下表4所示：每次试验选择任一组使用。
表4：
本发明上述引物探针购于Thermo Fisher、金唯智生物科技有限公司或生工生物工程股份有限公司，多重PCR反应试剂购于NEB公司，荧光定量PCR试剂购于NEB公司、TAKARA公司或诺唯赞公司。
三、多重PCR
具体流程如下：
1、DNA提取：提取试剂盒购自QIAGEN公司，按照试剂盒说明书进行。
2、DNA亚硫酸氢盐转化：DNA亚硫酸氢盐转化试剂盒购于Zymo公司，按照试剂盒说明书进行。
3、多重PCR扩增：采用15个甲基化区域的引物对，在每个反 应孔中进行多重PCR，扩增出含目标区域的目标序列，产物大小在70-130bp左右。
具体包括以下步骤：
1)配置单个引物浓度为10μM(每个引物)PCR引物混合物，里面包含多重反应里每个甲基化区域的正向和反向引物，共1个反应孔。
2)PCR混合液配置：根据下表5配制PCR混合液：
表5 PCR混合液配置方案
3)打开PCR仪，将反应体系放入PCR仪进行反应，多重PCR反应程序如下：98℃30秒→20×[98℃，15秒→63℃15秒→72℃15秒]→72℃5分钟→4℃保存。
四、荧光定量PCR
1、配置荧光定量PCR反应体系如下：配置单个标志物的引物和探针混合液，一般标志物的引物(正向引物/反向引物)终浓度为0.4μM，探针终浓度为0.2μM；选择一组内参引物(以下实施例中使用如SEQ ID NO:61～63所示的引物组和探针)，内参的引物(正向引物/反向引物)终浓度为0.8μM，探针终浓度为0.4μM。
2、把该反应体系加入96孔板，每个孔18μL，然后将上述经过多重PCR的产物用DECP水稀释，根据孔的个数计算稀释的体积，充分振荡混匀；向每个孔加入2μL稀释过的多重PCR产物；
3、打开qPCR仪器，设定好程序如下：95℃5分钟→40×[95°C15秒→62℃30秒]，将96孔板放入qPCR仪按该程序运行；
4、获得CT值。
实施例
共收集145例石蜡结直肠组织样本(CRC淋巴结阴性79例和CRC淋巴结阳性66例)，以及76例新鲜结直肠组织样本(CRC淋巴结阴性39例和CRC淋巴结阳性37例)所有患者临床资料，其中包括年龄、性别、TNM分期、肿瘤大小、淋巴管浸润状态、血管浸润状态、神经浸润状态、溃疡型等如下表6所示：
表6患者临床资料
对这221个样本，如材料和方法部分所述，用这15对引物进行多重PCR及荧光定量PCR，得到这15个标记物在每个样本里面的ΔCT。具体地，检测所得每个甲基化区域的CT值通过内参CT值进行校正，得到目标区域的相对循环数ΔCT＝CT(目标区域，即甲基化区域)-CT(内参)；若目标区域未检出，则赋予目标区域的相对循环数ΔCT＝35。
ΔCT值与样品中DNA量呈负相关，ΔCT值的高低反映了样本中该标记物共甲基化的DNA片段的含量的高低，通常甲基化水平或者共甲基化DNA含量越高，ΔCT值越低。根据15个甲基化区域共甲基化在结直肠癌淋巴结非转移人群及淋巴结转移人群中的相对循环数ΔCT值建立单个甲基化区域判别淋巴结转移发生的诊断模型ROC曲线，并根据ROC曲线计算AUC值及划分该区域的判定阈值。 根据阈值对比标准诊断计算该甲基化区域的判别灵敏度、特异性等。具体地，在本实施例中，利用R(R version 3.6.1)软件里面的pROC(version 1.12)包计算每个标记物的AUC及敏感性(Sensitivity,SE)、特异性(Specificity,SP)、准确率(Accuracy,ACC)、阳性预测值(Positive predictive value,PPV)、阴性预测值(Negative predictive value,NPV)如下表7所示，可以看到每个标记物在区分结直肠癌淋巴结转移和非转移方面均有区分能力，ACC均在0.54以上，最高可达约0.82；图1是ΔCT聚类效果图。
表7 15个标记物区分结直肠癌淋巴结转移和非转移的统计结果
从上表7中单个标记物的表现可以看出SEQ ID NO:10所示的生物标记物表现最佳(AUC约为0.87，ACC约为0.82)，选取SEQ ID NO:10所示的生物标记物，与SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12、SEQ ID NO:15中的一个或多个标记物进行随机组合，用221样本，随机切分100次，用逻辑回归建模，在100次试验(test)里面平均AUC如下表8所示，可以看出这些标记物的组合同样具有良好的区分肠癌淋巴结转移的能力。
表8标记物组合区分结直肠癌淋巴结转移和非转移的统计结果
同样通过221个样本，比较了如SEQ ID NO:10所示标记物的ΔCT与CA199、CEA、影像的差异，如图2及下表9所示，可以看出如SEQ ID NO:10所示标记物远优于CA199、CEA和影像，如SEQ ID NO:10所示标记物的AUC约为0.87，CA199的AUC约为0.58，CEA的AUC约为0.56，影像的AUC约为0.52。
表9本发明生物标记物与CA199、CEA、影像的对比
以上所述实施例的各技术特征可以进行任意的组合，为使描述简洁，未对上述实施例中的各个技术特征所有可能的组合都进行描述，然而，只要这些技术特征的组合不存在矛盾，都应当认为是本 说明书记载的范围。
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式，其描述较为具体和详细，但并不能因此而理解为对发明专利范围的限制。应当指出的是，对于本领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明构思的前提下，还可以做出若干变形和改进，这些都属于本发明的保护范围，因此，本发明专利的保护范围应以所附权利要求为准。

Claims (12)

  1. 一种用于结直肠癌淋巴结转移诊断的甲基化生物标记物，其中，所述的甲基化生物标记物包含：
    (i)如SEQ ID NO:1～15所示的序列的至少一种；和/或，
    (ii)与SEQ ID NO:1～15所示的序列互补的序列中的至少一种。
  2. 根据权利要求1所述的用于结直肠癌淋巴结转移诊断的甲基化生物标记物，其中，所述的甲基化生物标记物至少包含SEQ ID NO:10所示的序列和/或与SEQ ID NO:10所示的序列互补的序列。
  3. 根据权利要求1或2所述的用于结直肠癌淋巴结转移诊断的甲基化生物标记物，其中，所述的甲基化生物标记物包含SEQ ID NO:10所示的序列和/或与SEQ ID NO:10所示的序列互补的序列，与选自以下的序列的组合：
    (a)如SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12和SEQ ID NO:15中所示的序列的至少一种；和/或，
    (b)与SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12和SEQ ID NO:15所示的序列互补的序列中的至少一种。
  4. 根据权利要求1～3中任一项所述的用于结直肠癌淋巴结转移诊断的甲基化生物标记物，其中，所述诊断是区分患有结直肠癌的受试者是否存在淋巴结转移；
    任选地，所述结直肠癌选自TNM分期中T分期的T1期、T2期、T3期或T4期的结直肠癌。
  5. 权利要求1～4中任一项所述的甲基化生物标记物在制备用于诊断患有结直肠癌的受试者是否存在淋巴结转移的试剂或试剂盒中的用途。
  6. 一种用于结直肠癌淋巴结转移诊断的试剂盒，其中，所述的试剂盒包含用于检测待测样本中权利要求1～4中任一项所述的甲基化生物标记物的甲基化程度的试剂。
  7. 根据权利要求6所述的用于结直肠癌淋巴结转移诊断的试剂盒，其中，所述的试剂为选自以下的检测甲基化程度的方法中所使用的试剂：荧光定量PCR、甲基化特异性PCR、数字PCR、DNA甲基化芯片、靶向DNA甲基化 测序、全基因组甲基化测序和DNA甲基化质谱中的一种或多种。
  8. 根据权利要求6或7所述的用于结直肠癌淋巴结转移诊断的试剂盒，其中，所述的试剂包括引物和/或探针；其中，
    所述引物扩增包含SEQ ID NO:1～15所示的序列或与SEQ ID NO:1～15所示的序列互补的序列；
    所述探针至少部分地与SEQ ID NO:1～15所示的序列或与SEQ ID NO:1～15所示的序列互补的序列杂交。
  9. 根据权利要求6～8中任一所述的用于结直肠癌淋巴结转移诊断的试剂盒，其中，所述的试剂包括选自以下的至少一组引物和探针：
    (1)如SEQ ID NO:16～17所示的引物，如SEQ ID NO:46所示的探针；
    (2)如SEQ ID NO:18～19所示的引物，如SEQ ID NO:47所示的探针；
    (3)如SEQ ID NO:20～21所示的引物，如SEQ ID NO:48所示的探针；
    (4)如SEQ ID NO:22～23所示的引物，如SEQ ID NO:49所示的探针；
    (5)如SEQ ID NO:24～25所示的引物，如SEQ ID NO:50所示的探针；
    (6)如SEQ ID NO:26～27所示的引物，如SEQ ID NO:51所示的探针；
    (7)如SEQ ID NO:28～29所示的引物，如SEQ ID NO:52所示的探针；
    (8)如SEQ ID NO:30～31所示的引物，如SEQ ID NO:53所示的探针；
    (9)如SEQ ID NO:32～33所示的引物，如SEQ ID NO:54所示的探针；
    (10)如SEQ ID NO:34～35所示的引物，如SEQ ID NO:55所示的探针；
    (11)如SEQ ID NO:36～37所示的引物，如SEQ ID NO:56所示的探针；
    (12)如SEQ ID NO:38～39所示的引物，如SEQ ID NO:57所示的探针；
    (13)如SEQ ID NO:40～41所示的引物，如SEQ ID NO:58所示的探针；
    (14)如SEQ ID NO:42～43所示的引物，如SEQ ID NO:59所示的探针；
    (15)如SEQ ID NO:44～45所示的引物，如SEQ ID NO:60所示的探针。
  10. 根据权利要求6～9中任一项所述的用于结直肠癌淋巴结转移诊断的试剂盒，其中，所述的待测样本选自组织、血液、血浆、唾液、血清、尿液、尿液脱落细胞、尿沉渣、尿液上清中的一种或多种。
  11. 一种用于结直肠癌淋巴结转移诊断的系统，其中，所述系统包括检测装置、计算装置和输出装置；
    所述检测装置包括进样器和检测器，所述进样器用于采集来自受试者的样本，所述检测器用于检测所述样本中权利要求1～4中任一项所述的甲基化生物标记物的甲基化程度；
    所述计算装置包括存储器和处理器，所述存储器中存储有计算机程序，所述处理器被配置为执行所述存储器中存储的计算机程序，以实现如下判别：
    将所述样本中所述的甲基化生物标记物的甲基化程度与判定阈值相比较，判别所述样本对应的受试者的是否存在结直肠癌淋巴结转移。
  12. 选自以下的引物和探针的组合中的至少一组在制备用于诊断患有结直肠癌的受试者是否存在淋巴结转移的试剂或试剂盒中的用途，其中，所述引物和探针的组合用于检测权利要求1～4中任一项所述的甲基化生物标记物的甲基化程度：
    (1)如SEQ ID NO:16～17所示的引物，如SEQ ID NO:46所示的探针；
    (2)如SEQ ID NO:18～19所示的引物，如SEQ ID NO:47所示的探针；
    (3)如SEQ ID NO:20～21所示的引物，如SEQ ID NO:48所示的探针；
    (4)如SEQ ID NO:22～23所示的引物，如SEQ ID NO:49所示的探针；
    (5)如SEQ ID NO:24～25所示的引物，如SEQ ID NO:50所示的探针；
    (6)如SEQ ID NO:26～27所示的引物，如SEQ ID NO:51所示的探针；
    (7)如SEQ ID NO:28～29所示的引物，如SEQ ID NO:52所示的探针；
    (8)如SEQ ID NO:30～31所示的引物，如SEQ ID NO:53所示的探针；
    (9)如SEQ ID NO:32～33所示的引物，如SEQ ID NO:54所示的探针；
    (10)如SEQ ID NO:34～35所示的引物，如SEQ ID NO:55所示的探针；
    (11)如SEQ ID NO:36～37所示的引物，如SEQ ID NO:56所示的探针；
    (12)如SEQ ID NO:38～39所示的引物，如SEQ ID NO:57所示的探针；
    (13)如SEQ ID NO:40～41所示的引物，如SEQ ID NO:58所示的探针；
    (14)如SEQ ID NO:42～43所示的引物，如SEQ ID NO:59所示的探针；
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