WO2022224619A1 - コラーゲン産生促進剤及びそれを含む皮膚外用剤 - Google Patents

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WO2022224619A1
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skin
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collagen production
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雅和 橋本
有香 河合
弘之 小島
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一丸ファルコス株式会社
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    • C07H17/06—Benzopyran radicals
    • C07H17/065—Benzo[b]pyrans
    • C07H17/07—Benzo[b]pyran-4-ones

Definitions

  • the present invention relates to an agent for promoting collagen production containing kaempferol glycoside, a derivative thereof, or a salt thereof as an active ingredient, and an external preparation for skin containing this agent.
  • wrinkles under the eyes and wrinkles at the corners of the eyes are mainly caused by a decrease in collagen and elastin due to aging (a decrease in firmness), a decrease in the number of cells that produce extracellular matrix in the dermis, a decrease in collagen fibers, and a decrease in collagen fibers. It is believed that loss of elasticity occurs due to degeneration, reduction of subcutaneous adipose tissue, and the like.
  • neutrophil elastase inhibitory ingredients trifluoride isopropyl oxopropyl aminocarbonyl pyrrolidine carbonyl methyl propyl amino carbonyl benzoyl amino acetate Na (Niel One) as cosmetics / quasi-drugs ), moisturizing ingredients (hyaluronic acid, collagen, elastin), highly moisturizing ingredients (vaseline, ceramide, hyaluronic acid), firmness-improving ingredients (vitamin C derivatives, retinol, collagen), collagen-promoting ingredients (retinol), etc.
  • neutrophil elastase inhibitory ingredients trifluoride isopropyl oxopropyl aminocarbonyl pyrrolidine carbonyl methyl propyl amino carbonyl benzoyl amino acetate Na (Niel One) as cosmetics / quasi-drugs
  • moisturizing ingredients hyaluronic acid, collagen, elastin
  • highly moisturizing ingredients vaeline,
  • Kaempferol is a type of natural flavonoid contained in many edible plants such as tea, broccoli, grapefruit, cabbage, kale, beans, sagebrush, leek, tomato, strawberry, grape, Brussels sprouts, apple, quinoa, and horseradish. Natural flavonoids, including kaempferol, have been studied with a focus on their various physiological actions. Non-Patent Document 1), and that kaempferol analogues or glycosides thereof have effects such as improving exercise efficiency, alleviating fatigue, and improving dynamic visual acuity (see Patent Document 1).
  • the problem to be solved by the present invention is to find a material (agent) containing an active ingredient that maintains the softness of the skin and gives the skin a resilience (firmness).
  • the present invention includes the following embodiments.
  • the compound represented by formula (I) is represented by the following formula (III):
  • the agent of the present invention when used as an ingredient in cosmetics or quasi-drugs, has effects such as maintaining the softness of the skin and imparting resilience (firmness) to the skin.
  • FIG. 1 shows an outline of the method for fractionating the active ingredient of the present invention from carnation flower extract.
  • FIG. 2 shows the results of measuring collagen production-promoting activity in normal human adult skin fibrospores.
  • FIG. 3 shows the results of measuring human fibroblast proliferation ability.
  • FIG. 4 shows the measurement sites of the skin monitor test in humans. 5 shows the results of confirming the wrinkle-improving effect of Test Example 3.
  • FIG. 6 shows the results of confirming the dermal collagen fiber density improving effect of Test Example 4.
  • FIG. The white in the figure is
  • FIG. 7 shows a method for measuring mechanical parameters of the skin used in Test Example 5.
  • 8 shows the results of Test Example 5.
  • FIG. FIG. 9 shows the results of confirming the effect of preventing blemishes in Test Example 6.
  • the present invention provides an agent for promoting collagen production containing the following active ingredients.
  • the agent of this embodiment has the following formula (I):
  • a compound represented by, an organic acid ester thereof, or a salt thereof is included as an active ingredient.
  • R1 represents a hydrogen atom or a rhamnosyl group
  • R2 represents a glucosyl group or a rhamnosyl group.
  • the compound when R 1 is a rhamnosyl group and R 2 is a glucosyl group, the compound can be represented by the above formula (II), kaempferol-3-(6'''-rhamnosyl -2'''-glucosyl-glucoside), or kaempferol-3-O-[2-O- ⁇ -D-glucosyl-6-O- ⁇ -rhamnosyl]- ⁇ -D-glucoside (CAS No. 55696- 58-7). It is a kaempferol glycoside in which one rhamnose and two glucoses are linked in a branched chain. It will be referred to as KMP-2 in the examples to be described later.
  • An organic acid such as malic acid, succinic acid and/or malonic acid may be bound to the hydroxy group of the compound of formula (I). Soluble and stable in water.
  • a compound in which R 1 is a hydrogen atom and R 2 is a glucosyl group can be represented by the above-described formula (III), and will be referred to as KMP-3 in the examples described later.
  • a compound in which R 1 is a hydrogen atom and R 2 is a rhamnosyl group can be represented by the above-described formula (IV), and will be referred to as KMP-5 in the examples described later. .
  • the compounds represented by the above formulas (I) to (IV) may be in the free form, but may be in the form of a salt when the hydroxy group has moderate acidity.
  • hydroxy group salts include alkali metal salts such as lithium salts, sodium salts and potassium salts; alkaline earth metal salts such as magnesium salts and calcium salts; trimethylamine salts, triethylamine salts, dicyclohexylamine salts, ethanolamine salts, Aliphatic amine salts such as diethanolamine salts, triethanolamine salts and brocaine salts; aralkylamine salts such as N,N-dibenzylethylenediamine; heterocyclic aromatic amine salts such as pyridine salts, picoline salts, quinoline salts and isoquinoline salts; basic amino acid salts such as arginine salts and lysine salts; Quaternary ammonium salts; ammonium salts and the like.
  • the parts that can be used as raw materials for extraction are, for example, petals.
  • extraction in addition to direct extraction using a solvent, extraction can be performed by adding a solvent to the press liquid and/or residue obtained after the pressing treatment.
  • a 50% aqueous ethanol solution is used as the extraction solvent.
  • the content of active ingredients in the extract can be measured in terms of kaempferol glycosides.
  • "kaempferol glycoside equivalent value” means a value obtained by converting the amount of the active ingredient of the present invention into the mass of a specific standard product.
  • Standards include, for example, readily available kaempferol glycosides such as kaempferol-3-glucoside.
  • the agent for promoting collagen production of the present embodiment may be the above active ingredient itself, or may be a composition containing the active ingredient at a predetermined concentration or higher. Preferably, it may be in the form of a plant extract such as carnation flower.
  • the amount of the active ingredient contained in the agent of the present embodiment is not particularly limited as long as the agent exhibits a collagen production promoting action when added to an external skin preparation or the like. For example, when adding 0.1% of a collagen production-promoting agent in terms of mass to an external skin preparation, if the active ingredient is contained at a concentration that can exhibit a collagen production-promoting effect even when diluted 1000 times. good.
  • the lower limit and upper limit of the amount of the active ingredient contained in the agent for promoting collagen production of the present embodiment are the kaempferol glycoside conversion value, and the lower limit of the conversion value is preferably 1 ⁇ g/mL, more preferably is 5 ⁇ g/mL, more preferably 10 ⁇ g/mL, and the upper limit of the conversion value is preferably 1000 ⁇ g/mL, more preferably 750 ⁇ g/mL, more preferably 500 ⁇ g/mL, and still more preferably 250 ⁇ g/mL. be.
  • the amount of each of the above active ingredients contained in the agent for promoting collagen production of the present embodiment is preferably 0.05 ⁇ g/mL, more preferably 0.05 ⁇ g/mL, more preferably 0.05 ⁇ g/mL as the lower limit of the equivalent value of kaempferol glycoside. It is 5 ⁇ g/mL, more preferably 5 ⁇ g/mL, and the upper limit of this converted value is preferably 500 ⁇ g/mL, more preferably 250 ⁇ g/mL, and still more preferably 100 ⁇ g/mL.
  • the agent for promoting collagen production of the present embodiment can be contained in, for example, external skin preparations, food and drink, or pharmaceutical compositions.
  • the food, drink or pharmaceutical composition can be used as food or drink such as food with function claims, food for specified health use, health food, nutritional supplement (supplement), medical food, or oral composition.
  • pharmaceutically acceptable bases and carriers, additives that can be used in foods, and the like can be added to formulate orally administered preparations.
  • the external preparation for skin containing the agent for promoting collagen production of the present embodiment will be described in detail below.
  • female hormones are steroid hormones that govern reproductive functions, and are a general term for estrogen (follicle hormone) and progesterone (luteinizing hormone). Conjugates, or female hormone-like substances similar thereto. Among them, estrogen plays a role in the development and maintenance of functions of female reproductive organs, and is used as a general term for hormones exhibiting estrous action and substances having similar actions. Estrone, estradiol, estriol, and estetrol exist in nature, and estradiol is the main one. Synthetic estrogens having biological activities equivalent to those of them are also known, and estrogens have a stilbene structure, except for some synthetic forms such as stilbene sterols.
  • the source of estrogen is mainly the granulosa cells of the ovary, but it is also secreted from the fetal placental system, adrenal glands, and ovaries during pregnancy. Estrogen secretion from the ovary is governed by gonadotropin secreted from the anterior pituitary gland, but conversely, estrogen has a feedback effect on the diencephalic pituitary type, and the interaction between the two establishes the estrous cycle. .
  • Estrogen acts through its receptors, and its main physiological actions are the proliferation of the endometrium, the development of the uterine muscle, the expression of secondary sexual characteristics, the mediation of the establishment of the menstrual cycle, the induction of maternal changes during pregnancy, and the mammary glands. It promotes proliferation and secretion of ducts. Furthermore, since estrogen has receptors not only in the target tissues of the diencephalon-anterior pituitary gland-reproductive organs and mammary glands, but also in various tissues, it has effects not only on reproductive function but also on brain, cardiovascular, Acting on the skeleton, skin, and other tissues throughout the body, it is deeply involved in the health of adult women and is regarded as the hormone that creates women. Therefore, in the present specification, an agent that promotes one or more of the effects of female hormones as exemplified above is referred to as "an agent for promoting female hormone action" or "an agent for promoting female hormone-like action”. are used interchangeably.
  • An external preparation for skin in one embodiment of the present invention is characterized by containing the aforementioned agent for promoting collagen production.
  • the external preparation for skin of the present embodiment may contain only one of the above active ingredients, or may contain two or more in combination.
  • the external preparation for skin of the present embodiment exhibits an excellent preventive or ameliorating effect on wrinkle formation by containing the collagen production-promoting agent.
  • the external preparation for skin of the present embodiment may exert an action other than the action of preventing or improving wrinkles.
  • Such actions include moisturizing action, action for improving actinic keratosis or non-actinic keratosis, exfoliation of skin, stimulating epidermal renewal, and improving aging action.
  • the external preparation for skin of this embodiment can contain optional ingredients that are usually used in external preparations for skin, in addition to the agent for promoting collagen production, which is an essential component.
  • optional ingredients include hydrocarbons such as squalane, petrolatum, and microcrystalline wax, esters such as jojoba oil, carnauba wax, and octyldodecyl oleate, triglycerides such as olive oil, beef tallow, and coconut oil, and stearic acid.
  • fatty acids such as oleic acid and retinoic acid
  • higher alcohols such as oleyl alcohol, stearyl alcohol and octyldodecanol
  • anionic surfactants such as sulfosuccinic acid esters and sodium polyoxyethylene alkylsulfate
  • amphoteric surfactants such as alkyl betaine salts.
  • cationic surfactants such as dialkylammonium salts, sorbitan fatty acid esters, fatty acid monoglycerides, polyoxyethylene adducts thereof, nonionic surfactants such as polyoxyethylene alkyl ethers and polyoxyethylene fatty acid esters, polyethylene Glycol, glycerin, polyhydric alcohols such as 1,3-butanediol, thickening/gelling agents, antioxidants, ultraviolet absorbers, colorants, preservatives, powders, and the like can be contained.
  • cationic surfactants such as dialkylammonium salts, sorbitan fatty acid esters, fatty acid monoglycerides, polyoxyethylene adducts thereof, nonionic surfactants such as polyoxyethylene alkyl ethers and polyoxyethylene fatty acid esters, polyethylene Glycol, glycerin, polyhydric alcohols such as 1,3-butanediol, thickening/gelling agents, antioxidants, ultraviolet absorb
  • the agent for promoting collagen production of the present embodiment and optional ingredients are processed according to a conventional method, and are used in suitable forms such as ampoules, capsules, powders, granules, liquids, gels, bubbles, emulsions, sheets, mists, and sprays.
  • suitable forms such as ampoules, capsules, powders, granules, liquids, gels, bubbles, emulsions, sheets, mists, and sprays.
  • pharmaceuticals, 2) quasi-drugs, 3) topical or systemic external skin preparations e.g.
  • the lower and upper limits of the amount of the agent for promoting collagen production contained in the external skin preparation of the present embodiment are the total amount with respect to the total amount of the external skin preparation, and the lower limit is preferably 0.001% by mass, more preferably. is 0.01% by mass, more preferably 0.1% by mass, and the upper limit is preferably 10% by mass, more preferably 5% by mass, and even more preferably 2% by mass.
  • the lower limit and upper limit of the content of the active ingredient contained in the external skin preparation of the present embodiment are preferably 10 ng/ mL, more preferably 50 ng/mL, more preferably 100 ng/mL, and the upper limit of the conversion value is preferably 10 ⁇ g/mL, more preferably 7.5 ⁇ g/mL, more preferably 5 ⁇ g/mL, and even more preferably is 2.5 ⁇ g/mL.
  • the amount of the active ingredient contained in the external skin preparation of the present embodiment is calculated as a kaempferol glycoside conversion value, and the lower limit of this conversion value is preferably 0.05 ⁇ g/mL, more preferably 0.5 ⁇ g/mL. , more preferably 5 ⁇ g/mL, and the upper limit of this conversion value is preferably 5 ⁇ g/mL, more preferably 2.5 ⁇ g/mL, and even more preferably 1 ⁇ g/mL.
  • the present invention will be described in more detail with reference to Examples, but the present invention is not limited to these Examples.
  • the unit % of numerical values indicating the addition amount of various components means % by mass.
  • Example 1 Preparation of carnation flower extract 100 g of dried fresh carnation flower parts (above the calyx) were immersed in 1 kg of a 50% ethanol aqueous solution at room temperature for 1 week, filtered, and filtered to give a crude extract of about 1 kg. 0.95 kg was obtained. Next, after concentrating the crude extract and evaporating the ethanol, a 50% butylene glycol aqueous solution was added to obtain 0.95 kg of liquid carnation flower extract. The concentration of the active ingredient in this extract was converted from the peak area of the HPLC analysis under the following analytical conditions using a calibration curve using kaempferol-3-glucoside (MERCK) as a standard. The concentration of the active ingredient in the resulting extract is 102.1 ⁇ g/mL (90 ⁇ g/mL to 110 ⁇ g/mL) in terms of kaempferol glycosides.
  • MERCK kaempferol-3-glucoside
  • Example 2 Purification of kaempferol glycosides
  • the 50% ethanol aqueous solution of the carnation flower extract prepared in Example 1 was purified using a hydrophobic adsorption resin.
  • FIG. 1 shows an outline of the method for fractionating the active ingredients of the carnation flower extract.
  • a 50% ethanol aqueous solution of carnation flower extract was first crudely fractionated on a column packed with Diaion HP20 (Mitsubishi Chemical Co., Ltd.).
  • Fraction 03 eluted with 40% ethanol was diluted with water and adsorbed on the same column, and collagen production promoting activity described later was recovered in fraction 13 eluted with 30% ethanol aqueous solution. This fraction 13 was subjected to preparative liquid chromatography preparative LC1 under the following conditions to collect the main peak.
  • KMP-1 kaempferol-3-(6'''-rhamnosyl-2'''-(6-malyl-glucosyl)-glucoside)
  • KMP-2 kaempferol-3-(6''-rhamnosyl-2'''-glucosyl-glucoside)
  • KMP-2 kaempferol-3-(6''-rhamnosyl-2'''-glucosyl-glucoside)
  • KMP-2 kaempferol-3-(6''-rhamnosyl-2'''-glucosyl-glucoside)
  • KMP-1 is a compound in which malic acid is added to the 6-position of the terminal glucosyl group of KMP-2.
  • Table 1 shows measurement data of KMP2 measured with a nuclear magnetic resonance apparatus JEOL (JEOL Ltd.) JNM-ECA500. Note that "a" shown in Table 1 indicates overlapping signals.
  • Fig. 2 shows the ability to synthesize type 3 collagen of each sample when the ability to synthesize type 3 collagen of the non-added group (indicated by cnt) is set to 1.
  • the extract addition group of Example 1 indicated as crude was 1.30
  • the KMP1 addition group indicated as KMP1 was 1.21
  • the KMP-2 addition group indicated as KMP-2 was 1.52. there were.
  • FIG. 2 it was found that the addition of carnation flower extract, KMP-1 and KMP-2 promoted type 3 collagen production.
  • Example 2 Measurement of human fibroblast proliferation ability Human fibroblasts of the carnation flower extract obtained in Example 1 and the two fractions (KMP-1 and KMP-2) purified in Example 2 The presence or absence of proliferation ability was evaluated. Using DMEM medium containing 5% FBS, normal human skin fibroblasts (Cell applications) were seeded in a 96-well plate at 2.5 ⁇ 10 3 cells/well. After seeding, the normal human skin fibroblasts were cultured for 24 hours in an environment of 37° C. and 5% CO 2 .
  • Sample 1 group As a control, a predetermined amount of 50% butylene glycol aqueous solution was administered.
  • - Group of sample 2 The carnation flower extract obtained in Example 1 was administered so as to be 0.5%.
  • - Group of sample 3 The carnation flower extract obtained in Example 1 was administered to 1%.
  • Sample 4 group KMP-1 was administered to 0.5%.
  • Sample 5 group KMP-1 was administered at 1%.
  • Sample 6 group KMP-2 was administered to 0.5%.
  • Sample 7 group KMP-2 was administered at 1%.
  • the concentration of the active ingredient contained in samples 4 to 7 corresponds to the group containing the carnation flower extract (sample 2 or 3), samples 4 and 6 are contained in sample 2, and samples 5 and 7 are contained in sample 3.
  • a sample prepared with a 50% butylene glycol aqueous solution so as to have the same concentration as each compound used was used as a sample.
  • Fig. 3 shows the measurement results.
  • the fibroblast proliferation ability of the sample 1 group (indicated as cnt) is set to 1
  • the sample 2 and 3 groups (indicated as crude) are 1.33 and 1.75, respectively
  • the sample 4 and 5 groups (indicated as KMP-1) showed a fibroblast proliferation potency of 1.03 and 1.34, respectively
  • the groups of samples 6 and 7 (labeled KMP2) showed a fibroblast proliferation potency of 1.16 and 1.10, respectively.
  • the carnation flower extract dose-dependently promoted the proliferation of fibroblasts
  • KMP-1 at 1% promoted the proliferation of fibroblasts.
  • KMP-2 had no effect on cell proliferation.
  • Example 3 Preparation of lotion A lotion used in the following monitor test was prepared as follows. A lotion having the composition shown in Table 2 and containing 1% of the carnation flower extract prepared in Example 1 (lotion shown in Table 2) was prepared. A placebo (lotion containing no carnation flower extract) was prepared with the composition shown in Table 3.
  • This predetermined interval was applied twice a day (morning and evening) for one month. Then, on the 0th day (baseline) before the application of these lotions and 4 weeks after the application of the lotions, the surface of the predetermined site was photographed in 3D with light of a specific wavelength, and image processing was performed. , the size of the entire wrinkle, the average width and average depth of wrinkles were measured (measurement device: skin analyzer "ANTERA3D TM ", Gadelius Medical Co.). The results are shown in FIG.
  • Figure 5 shows the overall wrinkle size, average width and average depth of wrinkles, with the value on day 0 set to 100, placebo (labeled “placebo” in Figure 5) and Table 2 lotion ("Table 2" in Figure 5) It shows the relative value when applying "lotion”).
  • the overall size of wrinkles was 101.4 for the placebo-applied group and 94.7 for the lotion-applied group in Table 2.
  • the average wrinkle width was 100.0 for the placebo-applied group and 97.5 for the lotion-applied group in Table 2.
  • the average wrinkle depth was 101.6 for the placebo application group and 93.6 for the lotion application group in Table 2.
  • Test Example 4 Human skin monitoring test (dermis collagen fiber density improvement test) Each lotion was applied under the same conditions as in Test Example 3, except that the measurement site was changed from the side of the corner of the mouth (nasolabial fold) to the cheek (side of the nasal alar, see FIG. 4), and the dermal collagen of the site was measured. Fiber density was measured using the DermaLab® Combo. The results are shown in FIG. This device can be used as a device for visualizing and quantifying the density of collagen fibers in the depth direction of the skin based on the difference in reflected intensity (echo) of ultrasonic waves incident from the skin surface.
  • echo reflected intensity
  • Intensity Score echo intensity
  • echo intensity which is a parameter of this measuring device, is imaged as an index of collagen fiber density, and the larger this value, the richer the collagen and the better the dermal collagen condition.
  • Bright areas in the image areas indicated by arrows in FIG. 6) indicate high density, and dark areas indicate low density.
  • the epidermis is highly reflective to ultrasound, becomes a highly reflected echo, and is imaged white. As is clear from this image, the bright areas increased compared to day 0, and the density of collagen fibers in the dermis increased.
  • FIG. 6(B) shows the collagen density, with the value on day 0 set to 100, placebo (indicated as “placebo” in FIG. 6(B)) and Table 2 lotion ("Table 2 lotion” in FIG. 6(B) ”) is applied.
  • the placebo application group was 96.8, while the Table 2 lotion application group was 105.2. From these results, application of the lotion shown in Table 2 significantly increased the dermal collagen fiber density.
  • Each value in the bar graph is the average value and standard error of the measured values of 12 people. In the figure, ⁇ indicates a significant difference of p ⁇ 0.01 by Student's t-test.
  • Test Example 5 Human skin monitor test Each lotion under the same conditions as in Test Example 3, except that the measurement site was changed from the side of the corner of the mouth (nasolabial fold) to the lower eyelid (see Fig. 4) was applied, and the softness and resilience of the skin at the site were measured using a cutometer MPA580. Elasticity was measured using a cutometer by applying suction pressure of 500 mb for 5 seconds using a probe with a suction port of 2 mm, and then analyzing the displacement of the deformed skin when released. FIG. 7 shows displacement on the vertical axis against measurement time on the horizontal axis. In the figure, (A) indicates softness, (B) indicates restoring force, and B/A indicates elasticity (property of a deformed object returning to its original shape). The higher the elasticity, the better, since it declines with age.
  • FIG. 8(A) shows the results for softness
  • FIG. 8(B) for restoring force
  • FIG. 8B/A for elasticity.
  • placebo indicated as "placebo” in FIG. 8
  • lotion in Table 2 indicated as "lotion in Table 2" in FIG. 8
  • FIG. 8(A) the softness of the placebo-applied group was 99.5, while the softness of the lotion-applied group in Table 2 was 104.6.
  • the restoring force of the placebo-applied group was 99.6, while the restoring force of the lotion-applied group in Table 2 was 109.4.
  • FIG. 8(A) shows the results for softness
  • FIG. 8(B) for restoring force
  • FIG. 8B/A for elasticity.
  • FCS Fluorinal Calf Serum
  • FBS Fetal Bovine Serum
  • DMEM Dulbecco's Modified Eagle Medium
  • T Fujifilm Wako Pure Chemical
  • E2 FUJIFILM Wako Pure Chemical Industries, Ltd., 052-04041).
  • Dihydrotestosterone ELISA Kit Abnova, KA1886.
  • SRD5A2 Human 3-oxo-5-alpha-steroid 4-dehydrogenase 2
  • Step of adding T etc. after step (1) the medium was replaced with a 1% FBS/DMEM medium.
  • each group was added (or not added) with T etc. as follows.
  • Control group group to which T (final concentration 10 nM) was added.
  • E2 group Group to which T (final concentration 10 nM) and E2 (final concentration 10 nM) were added.
  • Estrogen increases sex hormone binding globulin (SHBG) and suppresses activation of active testosterone (free testosterone) and androgen receptor (Reference: J Am Acad Dermatol. 2016, 74, 945-973, Reference: Endocr Rev. 2000, 21, 363-392). Estrogen suppresses 5 ⁇ -reductase activity and reduces the conversion of testosterone to DHT (Reference: J Am Acad Dermatol, 2019, 80, 1509-1521, Reference: Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol.
  • DHT is related to female pattern baldness (FPHL), and the amount of 5 ⁇ -reductase in the hair follicle shows a higher value than healthy subjects (Reference: Arch Dermatol Res. 2018, 310, 77- 83). Therefore, also from the descriptions in these references, the results shown in Tables 4 and 5 are considered to be estrogenic effects by antagonizing androgenic effects.
  • Example 4 Preparation of carnation flower extract 100 g of the dried carnation flower part (above the sepal) was immersed in 1 kg of a 50% ethanol aqueous solution at room temperature for 1 week, filtered, and then filtered. About 0.95 kg of extract was obtained. Next, after concentrating the crude extract and evaporating ethanol, 50% aqueous butylene glycol solution was added to obtain 0.95 kg of liquid carnation flower extract.
  • Example 5 Purification of kaempferol glycoside (KMP-3) From the 50% ethanol aqueous solution of the carnation flower extract obtained in Example 4, using a hydrophobic adsorption resin, Example 2 and Purification was performed in the same manner. That is, as shown in FIG. 1, a 50% ethanol aqueous solution of carnation flower extract was first crudely fractionated with a column filled with Diaion HP20 (Mitsubishi Chemical Co., Ltd.).
  • Fraction 03 (Fr03) eluted with 40% ethanol was diluted with water and adsorbed on the same column, and then fraction 14 (Fr14) eluted with 40% ethanol aqueous solution was collected under the following conditions: A chromatographic preparative LC3 was performed to collect the main peak (fraction 31).
  • KMP-3 kaempferol-3-(2''-glucosyl-glucoside)
  • Example 6 Purification of kaempferol glycoside (KMP-5) The 50% ethanol aqueous solution of the carnation flower extract prepared in Example 4 was subjected to preparative liquid chromatography preparative LC4 under the following conditions to collect the main peak.
  • KMP-5 kaempferol-3-neohesperidoside
  • Sample 1 group As a control, a predetermined amount of 50% butylene glycol aqueous solution was administered. • Sample 2 group: KMP-3 was administered at 0.5%. • Sample 3 group: KMP-5 was administered to 0.5%. The concentrations of the active ingredients contained in Samples 2 and 3 were prepared with a 50% butylene glycol aqueous solution so that the concentrations of the respective compounds contained in the carnation flower extract were the same.
  • the concentration of type 3 collagen in the medium was measured using a Human PIIINP (N-Terminal Procollagen III Propeptide) ELISA kit (manufactured by Elabscience). The measurement was performed on 5 samples in each group (groups of samples 1 to 3).
  • the measurement results are described below.
  • the measurement result indicates the average value of the values measured in each group.
  • the average value of the sample 1 group was set to 1
  • the average value of the sample 2 group was 1.283
  • the average value of the sample 3 group was 1.379.
  • a significant difference (p ⁇ 0.01) was observed between the average values of the sample 2 and sample 3 groups and the control group in Dunnett's test with respect to the average values of the sample 1 group. was the data. It was found that the addition of the sample 2 and sample 3 groups promoted the production of type 3 collagen.
  • the external preparation for skin containing the agent of the present invention is effective in improving wrinkles by promoting collagen production and improving the softness and resilience of the skin. Therefore, the external preparation for skin of the present invention may be used as cosmetics for improving wrinkles.

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Abstract

【課題】皮膚のやわらかさを保ち、肌に復元力（ハリ）を与えるような天然物由来の有効成分を含む剤を見出すこと、などである。 【解決手段】下記式（Ｉ）：（式中、Ｒ１は水素原子又はラムノシル基を示し、Ｒ２はグルコシル基又はラムノシル基を示す。）で表される化合物、その有機酸エステル又はそれらの塩を含有するコラーゲン産生促進用又は女性ホルモン作用の促進用の剤。

Description

コラーゲン産生促進剤及びそれを含む皮膚外用剤 クロスリファレンス
　本出願は、日本国において、２０２１年４月２３日に出願された特願２０２１－０７３４５８及び２０２１年９月２４日に出願された特願２０２１－１５５２７４号に基づく優先権を主張するものであり、当該出願に記載された内容は全て、参照によりそのまま本明細書に援用される。また、本願において引用した全ての特許、特許出願及び文献に記載された内容は全て、参照によりそのまま本明細書に援用される。
　本発明は、ケンフェロール配糖体、その誘導体又はそれらの塩を有効成分として含有するコラーゲン産生促進用の剤及びこの剤を含有する皮膚外用剤等に関する。
　肌は、加齢などの内的因子や紫外線、活性酸素などの外的因子によって、本来維持している収縮性、柔軟性、保湿性等の機能が衰え、様々なトラブルを発生する。例えば、目の下のシワや目尻のシワについては、その主な原因が、加齢によるコラーゲン・エラスチンの低下（ハリの低下）、真皮の細胞外マトリックスを産生する細胞数の減少、コラーゲン線維の減少及び変性、皮下脂肪組織の減少等により、弾力性の損失が起こることが原因であると考えられる。従来、このようなシワの改善方法としては、例えば、化粧品・医薬部外品として、好中球エラスターゼ抑制成分（三フッ化イソプロピルオキソプロピルアミノカルボニルピロリジンカルボニルメチルプロピルアミノカルボニルベンゾイルアミノ酢酸Ｎａ（ニールワン））、保湿成分配合（ヒアルロン酸、コラーゲン、エラスチン）、高保湿成分（ワセリン、セラミド、ヒアルロン酸）、ハリ改善成分（ビタミンＣ誘導体、レチノール、コラーゲン）、コラーゲン促進成分（レチノール）等が用いられている。
　ケンフェロールは茶、ブロッコリー、グレープフルーツ、キャベツ、ケール、豆類、キクヂシャ、セイヨウニラネギ、トマト、イチゴ、ブドウ、メキャベツ、リンゴ、キヌア、西洋わさび等多くの食用植物に含まれる天然フラボノイドの一種である。ケンフェロールを含む天然フラボノイドについてはその多様な生理作用に着目した研究がなされており、例えば、ケンフェロール配糖体が、カーネーションの花色を青くするための発色補助因子（コピグメント）であること（非特許文献１参照）や、ケンフェロール類縁体又はその配糖体が、運動効率向上、疲労軽減及び動体視力改善などの作用を有することの報告がある（特許文献１参照）。
Ｙ．Ｆｕｋｕｉ，Ｙ．Ｔａｎａｋａ，Ｔ．Ｋｕｓｕｍｉ，Ｔ．Ｉｗａｓｈｉｔａ，Ｋ．Ｎｏｍｏｔｏ，Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ．２００３Ｍａｙ；６３（１）：１５－２３．
ＷＯ２０１９／０４４９６４
　本発明が解決しようとする課題は、皮膚のやわらかさを保ち、肌に復元力（ハリ）を与えるような有効成分を含む素材（剤）などを見出すことなどである。
　上記課題を解決するために本発明者らは鋭意検討した結果、所望の天然物（カーネーションの花など）に含まれるケンフェロール配糖体が、コラーゲン産生を促進し、皮膚のやわらかさを保ち、肌に復元力（ハリ）を与える作用を有することなどを見出して本発明を完成した。すなわち本発明は以下の実施形態を含む。
［１］下記式（Ｉ）：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000005
 （式中、Ｒ１は水素原子又はラムノシル基を示し、Ｒ２はグルコシル基又はラムノシル基を示す。）で表される化合物、その有機酸エステル又はそれらの塩を含有するコラーゲン産生促進用の剤。
［２］式（Ｉ）で表される化合物、その有機酸エステル又はそれらの塩を含有する、女性ホルモン作用の促進用の剤。
［３］式（Ｉ）で表される化合物が、下記式（ＩＩ）：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000006
 で表される化合物である［１］に記載のコラーゲン産生促進用の剤又は［２］に記載の女性ホルモン作用の促進用の剤。
［４］式（Ｉ）で表される化合物が、下記式（ＩＩＩ）：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000007
 又は（ＩＶ）：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000008
 で表される化合物である［１］に記載のコラーゲン産生促進用の剤又は［２］に記載の女性ホルモン作用の促進用の剤。
［５］有機酸エステルが、式（Ｉ）～（ＩＶ）の何れかの化合物のリンゴ酸エステルである［１］～［４］のいずれか1つに記載の剤。
［６］［１］～［５］のいずれか１つに記載の剤を含有する皮膚外用剤。
［７］シワ改善用である［６］に記載の皮膚外用剤。
［８］皮膚のコラーゲン密度を増加させるための［６］又は［７］に記載の皮膚外用剤。
　本発明の剤は、例えば、化粧品や医薬部外品の成分として使用したときに、皮膚のやわらかさを保ち、肌に復元力（ハリ）を与える効果をなど、有する。
図１は、カーネーション花抽出物から本発明の有効成分を分画する方法の概略を示す。 図２は、正常ヒト成人皮膚線維芽胞におけるコラーゲン産生促進作用を測定した結果を示す。 図３は、ヒト線維芽細胞増殖能を測定した結果を示す。 図４は、ヒトでの皮膚モニター試験の測定部位を示す。 図５は、試験例３のシワ改善効果を確認した結果を示す。 図６は、試験例４の真皮コラーゲン線維密度改善効果を確認した結果を示す。図の白が、 図７は、試験例５で用いた皮膚の力学的パラメータの測定方法を示す。 図８は、試験例５の結果を示す。 図９は、試験例６のアト付き予防効果を確認した結果を示す。
　次に、本発明の各実施形態について、図面を参照して説明する。なお、以下に説明する各実施形態は、特許請求の範囲に係る発明を限定するものではなく、また、各実施形態の中で説明されている諸要素及びその組み合わせの全てが本発明の解決手段に必須であるとは限らない。
（コラーゲン産生促進用の剤）
　本発明は、１つの実施形態において、以下の有効成分を含有するコラーゲン産生促進用の剤を提供する。本実施形態の剤は、下記式（Ｉ）：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000009
 で表される化合物、その有機酸エステル又はそれらの塩、を有効成分として含む。ここで、上記式中、Ｒ１は水素原子又はラムノシル基を示し、Ｒ２はグルコシル基又はラムノシル基を示す。上記式（Ｉ）において、Ｒ１がラムノシル基であり、かつＲ２がグルコシル基の場合の化合物は上述した式（ＩＩ）で表すことができ、ケンフェロール－３－（６’’’－ラムノシル－２’’’－グルコシル－グルコシド）、又はケンフェロール－３－Ｏ－［２－Ｏ－β－Ｄ－グルコシル－６－Ｏ－α－ラムノシル］－β－Ｄ－グルコシド（ＣＡＳ　Ｎｏ．５５６９６－５８－７）とも称する。１つのラムノースと２つのグルコースが分岐鎖状に結合したケンフェロール配糖体である。後述する実施例では、ＫＭＰ－２と称する。式（Ｉ）の化合物のヒドロキシ基には、リンゴ酸、コハク酸及び／又はマロン酸等の有機酸が結合していてもよく、これらの糖や有機酸が付くことでアグリコンであるケンフェロールを水に溶けやすく安定化している。
　また、式（Ｉ）において、Ｒ１が水素原子であり、かつＲ２がグルコシル基の場合の化合物は上述した式（ＩＩＩ）で表すことができ、後述する実施例では、ＫＭＰ－３と称する。さらに、式（Ｉ）において、Ｒ１が水素原子であり、かつＲ２がラムノシル基の場合の化合物は上述した式（ＩＶ）で表すことができ、後述する実施例では、ＫＭＰ－５と称する。
　なお、上記式（Ｉ）～（ＩＶ）で表される化合物は、遊離体のままでもよいが、ヒドロキシ基が適度な酸性を有する場合は塩の形態であってもよい。ヒドロキシ基の塩としては、例えば、リチウム塩、ナトリウム塩、カリウム塩等のアルカリ金属塩類；マグネシウム塩、カルシウム塩等のアルカリ土類金属塩類；トリメチルアミン塩、トリエチルアミン塩、ジシクロヘキシルアミン塩、エタノールアミン塩、ジエタノールアミン塩、トリエタノールアミン塩、ブロカイン塩等の脂肪族アミン塩；Ｎ，Ｎ－ジベンジルエチレンジアミン等のアラルキルアミン塩；ピリジン塩、ピコリン塩、キノリン塩、イソキノリン塩等の複素環芳香族アミン塩；アルギニン塩、リジン塩等の塩基性アミノ酸塩；テトラメチルアンモニウム塩、テトラエチルアモニウム塩、ベンジルトリメチルアンモニウム塩、ベンジルトリエチルアンモニウム塩、ベンジルトリブチルアンモニウム塩、メチルトリオクチルアンモニウム塩、テトラブチルアンモニウム塩等の第４級アンモニウム塩；アンモニウム塩等が挙げられる。また、本実施形態の化合物（Ｉ）の遊離体又はヒドロキシ基の塩は、水和物として存在することもある。
　上記有効成分をカーネーションから抽出する場合、抽出原料として使用し得る部位としては、例えば、花弁等である。抽出方法としては、溶媒を用いて直接抽出することで得られるものの他、圧搾処理を施した後に得られる圧搾液及び／又は残渣に溶媒を加えて抽出することができる。好ましくは、５０％エタノール水溶液を抽出溶媒として用いる。本実施形態においては、カーネーションの花弁を用いたエタノール抽出物を用いることが好ましい。抽出液中における有効成分の含有量は、ケンフェロール配糖体換算値として測定することができる。本明細書中、「ケンフェロール配糖体換算値」とは、本発明の有効成分の量を、特定の標準品の質量に換算した値を意味する。標準品としては、例えば、ケンフェロール－３－グルコシド等の入手が容易なケンフェロール配糖体が挙げられる。具体的には、抽出液を、例えば、逆相ＨＰＬＣ（カラム：Ｉｍｔａｋｔ　ＵＫ－Ｃ１８）で分析し、メタノール：リン酸＝３７：６３の溶出液で分離したときの３４０ｎｍの吸光度で検出したピーク面積を、種々の濃度のケンフェロール－３－グルコシドを用いて作成した検量線に当てはめて換算することができる。
　本実施形態のコラーゲン産生促進用の剤は、上記有効成分そのものであっても、あるいは当該有効成分を所定濃度以上に含有する組成物であってもよい。好ましくは、カーネーションの花等の植物抽出物の形態でありうる。本実施形態の剤に含まれる上記有効成分の量は、この剤を皮膚外用剤等に添加したときにコラーゲン産生促進作用が発揮される量であれば特に制限されない。例えば、質量換算で０．１％のコラーゲン産生促進用の剤を皮膚外用剤に添加する場合には、１０００倍希釈してもコラーゲン産生促進作用を発揮しうる濃度で当該有効成分を含有すればよい。したがって、本実施形態のコラーゲン産生促進用の剤に含まれる上記有効成分の量の下限及び上限は、ケンフェロール配糖体換算値として、当該換算値の下限は、好ましくは１μｇ／ｍＬ、より好ましくは５μｇ／ｍＬ、更に好ましくは１０μｇ／ｍＬ、であり、当該換算値の上限は、好ましくは１０００μｇ／ｍＬ、より好ましくは７５０μｇ／ｍＬ、より好ましくは５００μｇ／ｍＬ、さらに好ましくは２５０μｇ／ｍＬ、である。
　本実施形態のコラーゲン産生促進用の剤に含まれる上記各有効成分の量は、ケンフェロール配糖体換算値として、この換算値の下限は、好ましくは０．０５μｇ／ｍＬ、より好ましくは０．５μｇ／ｍＬ、さらに好ましくは５μｇ／ｍＬ、であり、この換算値の上限は、好ましくは５００μｇ／ｍＬ、より好ましくは２５０μｇ／ｍＬ、さらに好ましくは１００μｇ／ｍＬ、である。
　本実施形態のコラーゲン産生促進用の剤は、例えば、皮膚外用剤、飲食品又は医薬組成物に含有させることができる。飲食品又は医薬組成物としては、例えば機能性表示食品、特定保健用食品、健康食品、栄養補助食品（サプリメント）、医療用食品などの飲食品又は経口用組成物として利用されうる。その場合、上記有効成分の他に、薬学的に許容される基剤や担体、食品に使用可能な添加物等を添加して、経口投与製剤に製剤化されうる。本実施形態のコラーゲン産生促進用の剤を含有する皮膚外用剤については以下に詳細に説明する。
（女性ホルモン）
　女性ホルモンは、生殖機能を支配するステロイドホルモンであり、エストロゲン（卵胞ホルモン）とプロゲステロン（黄体ホルモン）の総称であり、例えば、１７β－エストラジオール、エストロン、エストリオール、１７α－エストラジオール、エチニルエストラジオール、それらの抱合体、又はそれらに類した女性ホルモン様物質、である。中でもエストロゲンは、女性生殖器の発達、機能維持などの役割を果たし、発情作用を示すホルモン及び類似の作用を有する物質の総称として用いられている。天然にはエストロン、エストラジオール、エストリオール、エステトロールが存在し、エストラジオールが主要なものである。また、それらと同等の生物活性を有する合成エストロゲンも知られており、スチルベンステロールなどの合成型の一部を除いて、エストロゲンはスチルベン構造を有している。
　エストロゲンの分泌源は主に卵巣の顆粒膜細胞であるが、妊娠時の胎児胎盤系、副腎、卵巣などからも分泌される。卵巣からのエストロゲンの分泌は、下垂体前葉より分泌される性腺刺激ホルモンにより支配されるが、逆にエストロゲンによる間脳下垂体型へのフィードバック作用が認められ、両者の相互作用により性周期が成立する。
　エストロゲンはその受容体を介して働き、主な生理作用は、子宮内膜の増殖、子宮筋の発育、第二次性徴の発現、月経周期の成立の媒介、妊娠時の母体変化の惹起、乳腺管の増殖分泌促進などである。さらに、エストロゲンは標的組織である間脳－下垂体前葉－生殖器及び乳腺のみならず、種々の組織に受容体を有しているため、生殖機能への上記作用だけでなく、脳、心血管、骨格、皮膚、その他の全身の組織に作用し、成人女性の健康に深く関わっており、女性を創るホルモンとされている。
　したがって、本明細書において、上記で例示したような女性ホルモンの有する作用の１つまたは複数を促進する剤を、「女性ホルモン作用の促進用の剤」又は「女性ホルモン様作用の促進剤」と称し、同義的に用いられる。
（皮膚外用剤の形態）
　本発明の一実施形態における皮膚外用剤は、上記コラーゲン産生促進のための剤を含有することを特徴とする。本実施形態の皮膚外用剤は、上記有効成分の１種のみを含有してもよく、２種以上を組み合わせて含有してもよい。本実施形態の皮膚外用剤は、上記コラーゲン産生促進用の剤を含有させることにより、優れたシワ形成に対する予防又は改善作用を発揮する。また、本実施形態の皮膚外用剤は、シワ形成に対する予防又は改善作用以外の作用を奏してもよい。そのような作用としては、保湿作用、光線性角化症又は非光線性角化症改善作用、皮膚の剥離、表皮更新の刺激及び老化改善作用などが挙げられる。
　本実施形態の皮膚外用剤は、必須成分であるコラーゲン産生促進用の剤以外に、通常皮膚外用剤で使用される任意成分を含有することが出来る。この様な任意成分としては、スクワラン、ワセリン、マイクロクリスタリンワックスなどの炭化水素類、ホホバ油、カルナウバワックス、オレイン酸オクチルドデシルなどのエステル類、オリーブ油、牛脂、椰子油などのトリグリセライド類、ステアリン酸、オレイン酸、レチノイン酸などの脂肪酸、オレイルアルコール、ステアリルアルコール、オクチルドデカノール等の高級アルコール、スルホコハク酸エステルやポリオキシエチレンアルキル硫酸ナトリウム等のアニオン界面活性剤類、アルキルベタイン塩等の両性界面活性剤類、ジアルキルアンモニウム塩等のカチオン界面活性剤類、ソルビタン脂肪酸エステル、脂肪酸モノグリセライド、これらのポリオキシエチレン付加物、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレン脂肪酸エステル等の非イオン界面活性剤類、ポリエチレングリコール、グリセリン、１，３－ブタンジオール等の多価アルコール類、増粘・ゲル化剤、酸化防止剤、紫外線吸収剤、色剤、防腐剤、粉体等を含有することができる。
　本実施形態のコラーゲン産生促進用の剤及び任意成分を常法に従って処理し、アンプル、カプセル、粉末、顆粒、液体、ゲル、気泡、エマルジョン、シート、ミスト、スプレー剤等利用上の適当な形態の１）医薬品類、２）医薬部外品類、３）局所用又は全身用の皮膚外用剤類（例えば、化粧水、乳液、クリーム、軟膏、ローション、オイル、パック等の基礎化粧料、固形石鹸、液体ソープ、ハンドウォッシュ等の洗顔料や皮膚洗浄料、マッサージ用剤、クレンジング用剤、除毛剤、脱毛剤、髭剃り処理料、アフターシェーブローション、プレシェーブローション、シェービングクリーム、ファンデーション、口紅、頬紅、アイシャドウ、アイライナー、マスカラ等のメークアップ化粧料、香水類、美爪剤、美爪エナメル、美爪エナメル除去剤、パップ剤、プラスター剤、テープ剤、シート剤、貼付剤、エアゾール剤等）、４）頭皮・頭髪に適用する薬用又は／及び化粧用の製剤類（例えば、シャンプー剤、リンス剤、ヘアートリートメント剤、プレヘアートリートメント剤、パーマネント液、染毛料、整髪料、ヘアートニック剤、育毛・養毛料、パップ剤、プラスター剤、テープ剤、シート剤、エアゾール剤等）、５）浴湯に投じて使用する浴用剤、６）その他、腋臭防止剤や消臭剤、制汗剤、衛生用品、衛生綿類、ウエットティシュ等が挙げられる。本実施形態の皮膚外用剤は、皮膚に適応させることの出来る剤型であれば、いずれの剤型でも可能であるが、有効成分が皮膚に浸透して効果を発揮することから、皮膚への馴染みの良い、ローション、乳液、クリーム、エッセンスなどの剤型が好ましい。
　本実施形態の皮膚外用剤に含有される上記コラーゲン産生促進用の剤の量の下限及び上限は、皮膚外用剤全量に対し、総量で、この下限は、好ましくは０．００１質量％、より好ましくは０．０１質量％、さらに好ましくは０．１質量％、であり、この上限は、好ましくは１０質量％、より好ましくは５質量％、さらに好ましくは２質量％である。
　本実施形態の皮膚外用剤に含有される上記有効成分の含有量の下限及び上限は、皮膚外用剤全量に対し、ケンフェロール配糖体換算値として、当該換算値の下限は、好ましくは１０ｎｇ／ｍＬ、より好ましくは５０ｎｇ／ｍＬ、更に好ましくは１００ｎｇ／ｍＬ、であり、当該換算値の上限は、好ましくは１０μｇ／ｍＬ、より好ましくは７．５μｇ／ｍＬ、より好ましくは５μｇ／ｍＬ、さらに好ましくは２．５μｇ／ｍＬ、である。
　本実施形態の皮膚外用剤に含有される上記有効成分の量は、ケンフェロール配糖体換算値として、この換算値の下限は、好ましくは０．０５μｇ／ｍＬ、より好ましくは０．５μｇ／ｍＬ、さらに好ましくは５μｇ／ｍＬ、であり、この換算値の上限は、好ましくは５μｇ／ｍＬ、より好ましくは２．５μｇ／ｍＬ、さらに好ましくは１μｇ／ｍＬ、である。
　次に実施例を挙げ、本発明を更に詳しく説明するが、本発明はこれら実施例に何ら制約されるものではない。なお、以下の実施例において、各種成分の添加量を示す数値の単位％は、質量％を意味する。
［実施例１］カーネーション花抽出物の調製
　カーネーションの生の花部（ガクより上）の乾燥物１００ｇを、１ｋｇの５０％エタノール水溶液に常温で１週間浸漬させた後にろ過し、粗抽出液約０．９５ｋｇを得た。次に粗抽出液を濃縮しエタノールをとばした後、５０％ブチレングリコール水溶液を加え０．９５ｋｇの液体のカーネーション花抽出物を得た。この抽出液中の有効成分の濃度は、以下の分析条件でＨＰＬＣ分析したときのピーク面積をケンフェロール－３－グルコシド（ＭＥＲＣＫ）を標準品として用いた検量線により換算した。得られた抽出液における有効成分の濃度は、ケンフェロール配糖体換算値で１０２．１μｇ／ｍＬ（９０μｇ／ｍＬ～１１０μｇ／ｍＬ）である。
ＬＣ１
装置：ＳＨＩＭＡＤＺＵ　ＬＣ－２０Ａ
カラム：Ｍｉｇｈｔｙｓｉｌ　ＲＰ－１８　ＧＰ　２５０×４．６ｍｍ（５μｍ）
移動相：ＣＨ３ＣＮ：０．１％Ｈ３ＰＯ４＝（１０：９０）→（１００：０）／３０分
流速：１ｍＬ／分
温度：４０℃
検出器：ＳＰＤ　Ｍ１０Ａｖｐ　３４０ｎｍ
［実施例２］ケンフェロール配糖体の精製
　実施例１で調製したカーネーション花抽出物の５０％エタノール水溶液から疎水性吸着樹脂を用いて精製を行った。カーネーション花抽出物の有効成分を分画する方法の概略を図１に示す。カーネーション花抽出物の５０％エタノール水溶液を、最初にダイヤイオンＨＰ２０（三菱ケミカル株式会社）を充填したカラムで粗分画した。４０％エタノールで溶出されるフラクション０３を水で希釈して、さらに同じカラムに吸着させた後、３０％エタノール水溶液で溶出されるフラクション１３に、後述するコラーゲン産生促進活性が回収された。このフラクション１３について、以下の条件による分取液体クロマトグラフィー分取ＬＣ１を行ってメインピークを回収した。
分取ＬＣ１
装置：Ａｇｉｌｅｎｔ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（Ａｇｉｌｅｎｔ　１２６０　ＩｎｆｉｎｉｔｙＩＩ）
カラム：Ｄｅｖｅｌｏｓｉｌ　ＯＤＳ、７μｍ、２０×２５０ｍｍ
流速：１０ｍＬ／分
検出器：Ｄｉｏｄｅ　Ａｒｒａｙ　Ｄｅｔｅｃｔｏｒ　ＷＲ　３４０ｎｍ
移動相：ＭｅＯＨ：０．１％ギ酸＝３７：６３
　このメインピークには、複数の成分が含まれていたため、この画分についてさらに以下の条件で液体クロマトグラフィー分取ＬＣ２を行ったところ単一に分かれた２つのピーク（フラクション２１及び２２）が得られた。
分取ＬＣ２
装置：ＳＨＩＭＡＤＺＵ　１０Ａ
カラム：Ｍｉｇｈｔｙｓｉｌ　ＲＰ－１８　ＧＰ　４．６×２５０ｍｍ
流速：１ｍＬ／分
検出器：ＳＰＤ　Ｍ１０Ａｖｐ　３４０ｎｍ
移動相：ＭｅＯＨ：０．１ギ酸＝３５：６５
　フラクション２１及び２２に含まれる化合物の濃度を以下の条件（ＬＣ２）を行ったところ、ケンフェロール配糖体換算値で、それぞれ、４３．４μｇ／ｍＬ及び５８．７μｇ／ｍＬであった。
ＬＣ２
装置：ＳＨＩＭＡＤＺＵ　１０Ａ
移動相：メタノール：リン酸＝３７：６３
流速：０．７ｍＬ／分
カラム：Ｉｍｔａｋｔ　Ｕｎｉｓｏｎ　ＵＫ－Ｃ１８
温度：４０℃
検出器：ＳＰＤ　Ｍ１０Ａｖｐ　３４０ｎｍ
　フラクション２１及び２２に回収された化合物をＮＭＲで分析した結果、それぞれケンフェロール－３－（６’’’－ラムノシル－２’’’－（６－マリル－グルコシル）－グルコシド）（ＫＭＰ－１）及びケンフェロール－３－（６’’’－ラムノシル－２’’’－グルコシル－グルコシド）（ＫＭＰ－２）であることが分かった。ＫＭＰ－１は、ＫＭＰ－２の末端グルコシル基の６位にリンゴ酸が付加した化合物である。なお、核磁気共鳴装置ＪＥＯＬ（日本電子株式会社）ＪＮＭ－ＥＣＡ５００で測定したＫＭＰ２の測定データを以下表１に示す。なお、表１に示す「ａ」は、ｏｖｅｒｌａｐｐｉｎｇ　ｓｉｇｎａｌｓを示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
［試験例１］コラーゲン産生量の測定
　カーネーション花抽出物中に含まれる上記有効成分を投与した場合、コラーゲン産生量（合成能）が変化するかどうかを確認した。細胞は正常ヒト成人皮膚線維芽細胞を用いた。前培養は５％ＦＢＳを含むＤＭＥＭを使用し、本実験では１％ＦＢＳを含むＤＭＥＭを使用した。５％ＣＯ２、３７℃の条件で培養した。
　５×１０４個の正常ヒト成人皮膚線維芽細胞（Ｃｅｌｌ　ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ）を２４ウェルプレートに播種し７５％コンフルエント状態になるまで培養した。その後、１％ＦＢＳを含むＤＭＥＭに置換し、２４時間培養した後、新たな１％ＦＢＳを含むＤＭＥＭに置換し、試料（実施例１で調製したカーネーション花抽出物並びに実施例２で精製したＫＭＰ－１及びＫＭＰ－２）を添加し、７２時間培養した。その後、培地中の３型コラーゲンの濃度を、Ｈｕｍａｎ　ＰＩＩＩＮＰ（Ｎ－Ｔｅｒｍｉｎａｌ　Ｐｒｏｃｏｌｌａｇｅｎ　ＩＩＩ　Ｐｒｏｐｅｐｔｉｄｅ）ＥＬＩＳＡ　ｋｉｔ（Ｅｌａｂｓｃｉｅｎｃｅ社製）を用いて、評価した。結果を図２に示す。なお、試料中の有効成分の濃度は、ＨＰＬＣで測定し、カーネーション花抽出物に含まれるそれぞれの化合物の濃度と同じになるように５０％ブチレングリコール水溶液で調製した。
　図２は、未添加群（ｃｎｔと表示）の３型コラーゲン合成能を１とした場合の各試料の３型コラーゲン合成能を表す。図２において、ｃｒｕｄｅと表示した実施例１の抽出物添加群は１．３０、ＫＭＰ１と表示したＫＭＰ１添加群は１．２１、及びＫＭＰ－２と表示したＫＭＰ－２添加群は１．５２であった。図２から明らかなように、カーネーション花抽出物、ＫＭＰ－１及びＫＭＰ－２の添加により、３型コラーゲン産生が促進されることが分かった。
［試験例２］ヒト線維芽細胞増殖能の測定
　実施例１で得られたカーネーション花抽出物及び実施例２で精製した２つの画分（ＫＭＰ－１及びＫＭＰ－２）についてのヒト線維芽細胞増殖能の有無を評価した。５％ＦＢＳを含むＤＭＥＭ培地を用いて、正常ヒト皮膚線維芽細胞（Ｃｅｌｌ　ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ）を、９６ウェルプレートに２．５×１０３個／ウェルの細胞数となるように播種した。播種後、３７℃、５％ＣＯ２の環境下で、２４時間、当該正常ヒト皮膚線維芽細胞を培養した。その後、５％ＦＢＳを含むＤＭＥＭ培地から１％ＦＢＳを含むＤＭＥＭ培地へ置換後、以下試料を各ウェルに投与し、３７℃、５％ＣＯ２の環境下で、５日間、当該正常ヒト皮膚線維芽細胞を培養した。５日間の培養後、Ｃｅｌｌ　Ｃｏｕｎｔｉｎｇ　Ｋｉｔ－８（ＤＯＪＩＮＤＯ）を用いて、各群（試料１から試料７の群）の正常ヒト皮膚線維芽細胞数を測定した。当該測定は、各群（試料１から試料７の群）において６サンプルずつ行った。
・試料１の群：コントロールとして、所定量の５０％ブチレングリコール水溶液を投与。
・試料２の群：０．５％となるように、実施例１で得られたカーネーション花抽出物を投与。
・試料３の群：１％となるように、実施例１で得られたカーネーション花抽出物を投与。
・試料４の群：０．５％となるように、ＫＭＰ－１を投与。
・試料５の群：１％となるように、ＫＭＰ－１を投与。
・試料６の群：０．５％となるように、ＫＭＰ－２を投与。
・試料７の群：１％となるように、ＫＭＰ－２を投与。
　なお、試料４～７に含まれる有効成分の濃度は、カーネーション花抽出物を含む群（試料２または３）に対応し、試料４及び６は試料２に、試料５及び７は試料３に含まれるそれぞれの化合物と同じ濃度になるように５０％ブチレングリコール水溶液で調製したものを検体として使用した。
　測定結果を図３に示す。試料１の群（ｃｎｔと表示）の線維芽細胞増殖能を１とした場合の、試料２及び３の群（ｃｒｕｄｅと表示）はそれぞれ１．３３及び１．７５、試料４及び５の群（ＫＭＰ－１と表示）はそれぞれ１．０３及び１．３４、試料６及び７の群（ＫＭＰ２と表示）はそれぞれ１．１６及び１．１０の線維芽細胞増殖能を示した。図３から明らかなように、カーネーション花抽出物は濃度依存的に、ＫＭＰ－１は１％で線維芽細胞の増殖が促進されることが分かった。一方、ＫＭＰ－２は細胞増殖には影響を与えなかった。
［実施例３］ローションの作製
　下記モニター試験で用いるローションを次のように作製した。表２に示す組成で、実施例１で調製したカーネーション花抽出物を１％含有したローション（表２ローション）を作製した。表３に示す組成で、プラセボ（当該カーネーション花抽出物を含有しないローション）を作製した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
［試験例３］ヒトでの皮膚モニター試験（シワ改善効果の確認）
　健康な３０代から４０代の女性１２名（平均年齢４１．２歳）の顔の口角横（ほうれい線、図４参照）に、表２ローション（表２に記載のローションで、カーネーション花抽出物を含むローション）と、プラセボ（表３に記載のローションで、カーネーション花抽出物を含まないローション）とを塗布することにより、２０２０年１２月から１月の間に試験を行った。当該被験者は、自覚症状として、皮膚のたるみ、小じわ及び／又は皮膚の脆弱性を感じている方々である。表２ローションを被験者の顔の左半分に所定間隔にて塗布し、プラセボを被験者の顔の右半分に所定間隔にて塗布した。この所定間隔は、１日２回ずつ（朝晩）１ヶ月間塗布とした。そして、これらのローションの塗布前の０日目（ベースライン）と、ローションを塗布してから４週間目に、所定部位表面を３Ｄで特定波長の光を照射して撮影し画像処理することで、シワ全体の大きさ、シワの平均幅及び平均深度を測定した（測定装置；皮膚分析器「ＡＮＴＥＲＡ３ＤＴＭ」、ガデリウス・メディカル株式会社）。その結果を図５に示す。
　図５は、シワ全体の大きさ、シワの平均幅及び平均深度について、０日目の値を１００として、プラセボ（図５では「プラセボ」と表記）及び表２ローション（図５では「表２ローション」と表記）を塗布したときの相対値を示す。図５（ａ）に示したように、シワ全体の大きさは、プラセボ塗布群が１０１．４、表２ローション塗布群が９４．７であった。図５（ｂ）に示したように、シワ平均幅は、プラセボ塗布群が１００．０、表２ローション塗布群が９７．５であった。また、図５（ｃ）に示したように、シワ平均深度は、プラセボ塗布群が１０１．６、表２ローション塗布群が９３．６であった。これらの結果より、表２ローションの塗布により、シワ全体の大きさ、シワの平均幅及び平均深度ともに小さくなった。なお、棒グラフのそれぞれの値は１２人の測定値の平均値及び標準誤差で示した。図中、＊及び＊＊は、０日目の測定値と比較したときのウィルコクソンの検定で、それぞれｐ＜０．０５及びｐ＜０．０１の有意差があることを示し、†及び††は、スチューデントのｔ検定でｐ＜０．０５及びｐ＜０．０１の有意差を示す。
［試験例４］ヒトでの皮膚モニター試験（真皮コラーゲン線維密度改善試験）
　測定部位を、顔の口角横（ほうれい線）から、頬（鼻翼側部、図４参照）に変更したこと以外は、試験例３と同じ条件で各ローションを塗布し、当該部位の真皮コラーゲン線維密度を、ＤｅｒｍａＬａｂ（登録商標）Ｃｏｍｂｏを用いて測定した。その結果を図６に示す。これは、皮膚表面から入射した超音波の反射強度（エコー）の違いから皮膚の深さ方向におけるコラーゲン線維の密度を可視化および定量化する装置として利用することが可能な装置である。
　表２ローションを塗布した被験者の０日目及び４週目の鼻翼側部内の状態をＤｅｒｍａＬａｂにて観測し、得られた真皮内画像を図６（Ａ）に示した。この測定装置のパラメータであるＩｎｔｅｎｓｉｔｙ　Ｓｃｏｒｅ（エコー強度）がコラーゲン線維密度の指標として画像化され、この値が大きいほどコラーゲンが豊富で真皮コラーゲンの状態が良いとされる。画像中の明部（図６の矢印の部位）は高密度、暗部は低密度を示している。表皮は超音波の反射性が高く、高反射エコーとなり、白く画像処理される。この画像から明らかなように、０日目と比較して明部が増加しており、真皮内のコラーゲン線維密度が高まっていた。このＩｎｔｅｎｓｉｔｙ　Ｓｃｏｒｅを数値化し、コラーゲン密度とした。図６（Ｂ）は、コラーゲン密度について、０日目の値を１００として、プラセボ（図６（Ｂ）では「プラセボ」と表記）、及び表２ローション（図６（Ｂ）では「表２ローション」と表記）を塗布したときの相対値を示す。図６（Ｂ）に示したように、プラセボ塗布群は９６．８に対し、表２ローション塗布群は１０５．２となった。これらの結果より、表２ローションの塗布により、真皮コラーゲン線維密度は有意に増加した。なお、棒グラフのそれぞれの値は１２人の測定値の平均値及び標準誤差である。図中、††は、スチューデントのｔ検定でｐ＜０．０１の有意差があることを示す。
［試験例５］ヒトでの皮膚モニター試験
　測定部位を、顔の口角横（ほうれい線）から、下眼瞼部（図４参照）に変更したこと以外は、試験例３と同じ条件で各ローションを塗布し、当該部位の皮膚のやわらかさと復元力を、キュートメーターＭＰＡ５８０を用いて計測した。キュートメーターによる弾性の測定は、吸引口２ミリのプローブを用い５００ｍｂ吸引圧で５秒間吸引し、その後開放したときの変形する皮膚の変位を解析した。図７は、横軸の測定時間に対し、縦軸の変位を示す。図中（Ａ）がやわらかさ、（Ｂ）が復元力、Ｂ／Ａが弾性（変形した物体が元の形に戻ろうとする性質）を表す。弾性は加齢により低下することより、高いほど良いとされる。
　その結果を図８に示す。図８（Ａ）は、やわらかさについて、図８（Ｂ）は復元力について、及び図８Ｂ／Ａは弾性についての結果を示す。それぞれ、０日目の値を１００として、プラセボ（図８では「プラセボ」と表記）、及び表２ローション（図８では「表２ローション」と表記）を塗布したときの相対値を示す。図８（Ａ）に示したように、プラセボ塗布群のやわらかさは９９．５に対し、表２ローション塗布群のやわらかさは１０４．６であった。図８（Ｂ）に示したように、プラセボ塗布群の復元力は９９．６に対し、表２ローション塗布群の復元力は１０９．４であった。また、図８（Ｂ／Ａ）に示したように、プラセボ塗布群の弾性は９９．１に対し、表２ローション塗布群の弾性は１０５．８であった。これらの結果より、表２ローションの塗布により、やわらかさは増加傾向、復元力及び弾性が有意に増加した。なお、棒グラフのそれぞれの値は１２人の測定値の平均値及び標準誤差で示した。図中、＊は、０日目の測定値と比較したときのウィルコクソン検定でｐ＜０．０５の有意差があることを示し、†は、スチューデントのｔ検定でｐ＜０．０５の有意差があることを示す。
［試験例６］ヒトでの皮膚モニター試験（アト付き予防効果試験）
　健康な３０代から４０代の女性１２名（平均年齢４１．２歳）の左右どちらかの前腕内側部（図４参照）に、表２ローションと、プラセボとを塗布することにより、２０２０年１２月から１月の間に試験を行った。当該被験者は、自覚症状として、皮膚のたるみ、小じわ及び／又は皮膚の脆弱性を感じている方々である。表２ローションを被験者の左腕の所定部位に所定間隔にて塗布し、プラセボを被験者の右腕の所定部位に所定間隔にて塗布した。この所定間隔は、１日２回ずつ（朝晩）１ヶ月間塗布である。そして、これらのローションの塗布前の０日目と、ローションを塗布してから４週間目に、両腕に所定時間輪ゴムを巻き付けて付け、輪ゴムを外した後のゴム跡のくぼみ体積を測定した（測定装置；皮膚分析器「ＡＮＴＥＲＡ３ＤＴＭ」、ガデリウス・メディカル株式会社）。
　その結果を図９に示す。くぼみ体積について、０日目の値を１００として、プラセボ（図９では「プラセボ」と表記）、及び表２ローション（図８では「表２ローション」と表記）を塗布したときの相対値を示す。図９に示したように、プラセボ塗布群の弾性は９６．８に対し、表２ローション塗布群の弾性は７３．２であった。これらの結果より、表２ローションの塗布により、０日目よりも有意にくぼみ体積が減少した。なお、棒グラフのそれぞれの値は１２人の測定値の平均値及び標準誤差である。図中、＊＊は、０日目の測定値と比較したときのウィルコクソン検定でｐ＜０．０１の有意差があることを示す。
［試験例７］女性ホルモン様作用の確認試験（５α－ｒｅｄｕｃｔａｓｅ　ｅｎｚｙｍｅ　ａｃｔｉｖｉｔｙ）
　毛乳頭細胞にて、カーネーション花抽出物（ｃａｒｎａｔｉｏｎ　ｆｌｏｗｅｒ　ｅｘｔｒａｃｔ：ＣＦＥ）の添加並びに当該抽出物に含有されるＫＭＰ－１及びＫＭＰ－２の添加の有無により、男性ホルモンＴｅｓｔｏｓｔｅｒｏｎｅ（Ｔ）がＤｉｈｙｄｒｏｔｅｓｔｏｓｔｅｒｏｎｅ（ＤＨＴ）に変換および分泌される量の変化を確認した。
　先ず、以下を準備した。
・上述の実施例１のカーネーション花抽出物：試験例７の記載において以下「抽出物」と記載。
・上述の実施例２のケンフェロール配糖体の精製過程で得られるメインピークの組成物（ＫＭＰ－１及びＫＭＰ－２が含有）：試験例７の記載において以下「ＫＭＰｓ」と記載。
・成人ヒト毛乳頭細胞：Ｃｅｌｌ　Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ、Ｓａｎ　Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ、ＵＳＡ（ＨＦＤＰＣ、ヒト頭髪毛乳頭細胞（ａｄｕｌｔ）、ＣＡ６０２０５ａ）
・毛乳頭細胞培養培地：ＰｒｏｍｏＣｅｌｌ、Ｈｅｉｄｅｌｂｅｒｇ、Ｇｅｒｍａｎｙ（毛乳頭細胞増殖培地キット：Ｆｏｌｌｉｃｌｅ　Ｄｅｒｍａｌ　Ｐａｐｉｌｌａ　Ｃｅｌｌ　Ｇｒｏｗｔｈ　Ｍｅｄｉｕｍ　Ｋｉｔ（製品コード：Ｃ－２６５０２））。この培地に、この製品コードに含まれるサプリメントとして挙げられるＦＣＳ　（Ｆｏｅｔａｌ　Ｃａｌｆ　Ｓｅｒｕｍ）も添加した。
・ＦＢＳ　（Ｆｅｔａｌ　Ｂｏｖｉｎｅ　Ｓｅｒｕｍ）：Ｍｅｒｃｋ、Ｆｅｔａｌ　Ｂｏｖｉｎｅ　Ｓｅｒｕｍ　（Ｃａｔ＃１７３０１２）。
・Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ　Ｍｏｄｉｆｉｅｄ　Ｅａｇｌｅ　Ｍｅｄｉｕｍ　（ＤＭＥＭ）　培地：富士フイルム和光純薬、Ｄ－ＭＥＭ（低グルコース）（Ｌ－グルタミン、フェノールレッド含有）、０４１－２９７７５。
・Ｔｅｓｔｏｓｔｅｒｏｎｅ（Ｔ）：富士フイルム和光純薬（Ｃａｔ＃２０１－２０５５１）。
・β－ｅｓｔｒａｄｉｏｌ（Ｅ２）：（富士フイルム和光純薬、０５２－０４０４１）。
・Ｄｉｈｙｄｒｏｔｅｓｔｏｓｔｅｒｏｎｅ　ＥＬＩＳＡ　Ｋｉｔ：Ａｂｎｏｖａ、ＫＡ１８８６。
・Ｈｕｍａｎ　３－ｏｘｏ－５－ａｌｐｈａ－ｓｔｅｒｏｉｄ　４－ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ　２（ＳＲＤ５Ａ２）ＥＬＩＳＡ　ｋｉｔ：ＣＵＳＡＢＩＯ、　ＣＳＢ－ＥＬ０２２６５４ＨＵ。
（１）成人ヒト毛乳頭細胞を起こす工程
　成人ヒト毛乳頭細胞を２×１０４個／ウェルの細胞数で、２４ウェルプレートに播種した。当該播種後、当該細胞を５％ＣＯ２、３７℃の条件で２４時間培養した。当該培養後、１％ＦＢＳを含むＤＭＥＭ培地に置換した。当該置換後の培地で、当該細胞を、５％ＣＯ２、３７℃の条件で２４時間培養した。
（２）（１）の工程後での、Ｔなどを添加する工程
　（１）の工程後、培地を、１％ＦＢＳ／ＤＭＥＭ　培地に置換した。その際に、１％ＦＢＳ／ＤＭＥＭ培地において、各群において、以下のようにＴなどの添加（又は未添加）を行った。なお、下記ＤＨＴ　量の測定のために各群それぞれ６サンプル（ｎ＝６）、５α－還元酵素ＩＩ型の量の測定を行った群については各群それぞれ４サンプル（ｎ＝４）を作製した。
・未添加群：　Ｔを添加していない群。
・コントロール群：Ｔ（最終濃度１０ｎＭ）を添加した群。
・Ｅ２群：Ｔ（最終濃度１０ｎＭ）及びＥ２（最終濃度１０ｎＭ）を添加した群。この試験例７において、ポジティブコントロールの位置付けの実験群（参考文献：Ｅｕｒ．　Ｊ．　Ｄｅｒｍａｔｏｌ．２００１，１１，１９５－１９８，Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　ｅｓｔｒｏｇｅｎｓ　ｏｎ　ｔｈｅ　ａｎｄｒｏｇｅｎ　ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ　ｉｎ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｓｕｂｕｎｉｔｓ　ｏｆ　ｈｕｍａｎ　ｈａｉｒ　ｆｏｌｌｉｃｌｅ．）
・抽出物０．５群：Ｔ（最終濃度１０ｎＭ）及び抽出物０．５％を添加した群。
・抽出物１．０群：Ｔ（最終濃度１０ｎＭ）及び抽出物１．０％を添加した群。
・ＫＭＰｓ０．０２５群・Ｔ（最終濃度１０ｎＭ）及びＫＭＰｓ０．０２５％を添加した群。抽出物０．５群に含有されるＫＭＰｓと同じ量と想定して、この添加（ＫＭＰｓ０．０２５％の添加）を行った。
・ＫＭＰｓ０．０５０群：Ｔ（最終濃度１０ｎＭ）及びＫＭＰｓ０．０５０％を添加した群。抽出物１．０群に含有されるＫＭＰｓと同じ量と想定して、この添加（ＫＭＰｓ０．０５０％の添加）を行った。
　これらの群を作成後、５％ＣＯ２、３７℃の条件で７２時間培養した。その後、上清を回収し、上清中のＤＨＴ量を、Ｄｉｈｙｄｒｏｔｅｓｔｏｓｔｅｒｏｎｅ　ＥＬＩＳＡ　Ｋｉｔを用いて測定した。当該測定した結果を以下表４に示す。
　以下のように算出して、表４に記載する数値（相対値）を算出した。先ず、各群（ｎ＝６）の測定結果の平均値を算出した。次に、当該平均値について、各群のコントロール群の数値を１として、各群の数値はコントロール群と比較しての相対値を算出した。＊＊は、ＳｔｕｄｅｎｔのＴ検定で、コントロール群に対して、有意差（ｐ＜０．０１）が認められたデータを示す。††は、Ｄｕｎｎｅｔｔ’ｓ　ｔｅｓｔにて、コントロール群に対して、有意差（ｐ＜０．０１）が認められたデータを示す。
　さらに、当該培養後にプロテアーゼおよびホスファターゼ阻害剤を添加したＰａｓｓｉｖｅ　Ｌｙｓｉｓ　Ｂｕｆｆｅｒ（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）で均質化処理した細胞懸濁液を用いて、５α－還元酵素ＩＩ型の量をＨｕｍａｎ　３－ｏｘｏ－５－ａｌｐｈａ－ｓｔｅｒｏｉｄ　４－ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ　２（ＳＲＤ５Ａ２）ＥＬＩＳＡ　ｋｉｔを用いて測定した。得られた値は、ｂｒａｄｆｏｒｄ法により細胞懸濁液のタンパク質量を求め、補正した。この測定した結果を以下表５に示す。なお、この測定は、論文（Ｊ．Ｃｏｓｍｅｔ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．２０１９，１８，４１４－４２１．）を参考にして行った。
　以下のように算出して、表５に記載する数値（相対値）を算出した。先ず、各群（ｎ＝４）の測定結果の平均値を算出した。次に、当該平均値について、各群のコントロール群の数値を１として、各群の数値はコントロール群と比較しての相対値を算出した。＊＊は、ＳｔｕｄｅｎｔのＴ検定で、コントロール群に対して、有意差（ｐ＜０．０１）が認められたデータを示す。††は、Ｄｕｎｎｅｔｔ’ｓ　ｔｅｓｔにて、コントロール群に対して、有意差（ｐ＜０．０１）が認められたデータを示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000014
　表４及び表５に示す結果から、抽出物及びＫＭＰｓの添加でも、Ｅ２の添加群と同様の効果、すなわち女性ホルモン様作用が確認できた。
　エストロゲン（エストラジオール）は、性ホルモン結合グロブリン（ＳＨＢＧ）を増やし、活性型テストステロン（フリーテストステロン）およびアンドロゲン受容体の活性化を抑制する（参考文献：Ｊ　Ａｍ　Ａｃａｄ　Ｄｅｒｍａｔｏｌ．２０１６，７４，９４５－９７３、参考文献：Ｅｎｄｏｃｒ　Ｒｅｖ．２０００，２１，３６３－３９２）。エストロゲンは、５α－還元酵素活性を抑制し、テストステロンからＤＨＴへの変換を減少させる（参考文献：Ｊ　Ａｍ　Ａｃａｄ　Ｄｅｒｍａｔｏｌ，２０１９，８０，１５０９－１５２１、参考文献：Ｅｕｒ　Ｊ　Ｏｂｓｔｅｔ　Ｇｙｎｅｃｏｌ　Ｒｅｐｒｏｄ　Ｂｉｏｌ．２００４，ｖｏｌ１１２，１３６－１４１）。ＤＨＴは、女性型脱毛症（ＦＰＨＬ）に関係しており、毛包内の５α－還元酵素量が健常者と比較して高い値を示す（参考文献：Ａｒｃｈ　Ｄｅｒｍａｔｏｌ　Ｒｅｓ．２０１８，３１０，７７－８３）。
　よって、これらの参考文献の記載からも、表４及び表５に示す結果は、男性ホルモン作用と拮抗することでの女性ホルモン様作用と考えられる。
［実施例４］カーネーション花抽出物の調製
　カーネーション（キュイン）の生の花部（ガクより上）の乾燥物１００ｇを、１ｋｇの５０％エタノール水溶液に常温で１週間浸漬させた後にろ過し、粗抽出液約０．９５ｋｇを得た。次に粗抽出液を濃縮しエタノールをとばした後、５０％ブチレングリコール水溶液を加え０．９５ｋｇの液体のカーネーション（キュイン）の花抽出物を得た。
［実施例５］ケンフェロール配糖体（ＫＭＰ－３）の精製
　実施例４で得られたカーネーション（キュイン）の花抽出物の５０％エタノール水溶液から疎水性吸着樹脂を用いて、実施例２と同様の方法にて精製を行った。すなわち、図１に示すように、カーネーション花抽出物の５０％エタノール水溶液を、最初にダイヤイオンＨＰ２０（三菱ケミカル株式会社）を充填したカラムで粗分画した。４０％エタノールで溶出されるフラクション０３（Ｆｒ０３）を水で希釈して、さらに同じカラムに吸着させた後、４０％エタノール水溶液で溶出されるフラクション１４（Ｆｒ１４）について、以下の条件による分取液体クロマトグラフィー分取ＬＣ３を行ってメインピーク（フラクション３１）を回収した。
分取ＬＣ３
装置：Ａｇｉｌｅｎｔ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（Ａｇｉｌｅｎｔ　１２６０　ＩｎｆｉｎｉｔｙＩＩ）
カラム：Ｄｅｖｅｌｏｓｉｌ　ＯＤＳ、７μｍ、２０×２５０ｍｍ
流速：１０ｍＬ／分
検出器：Ｄｉｏｄｅ　Ａｒｒａｙ　Ｄｅｔｅｃｔｏｒ　ＷＲ　３４０ｎｍ 
移動相：ＭｅＯＨ：０．１％ギ酸＝３７：６３
　フラクション３１に含まれる化合物の濃度を以下の条件（ＬＣ３）を行ったところ、ケンフェロール配糖体換算値で、４８．６６μｇ／ｍＬであった。
ＬＣ３
装置：ＳＨＩＭＡＤＺＵ　１０Ａ
移動相：メタノール：リン酸＝３５：６５
流速：０．８ｍＬ／分
カラム：Ｉｍｔａｋｔ　Ｕｎｉｓｏｎ　ＵＫ－Ｃ１８
温度：４０℃
検出器：ＳＰＤ　Ｍ１０Ａｖｐ　３４０ｎｍ
　フラクション３１に回収された化合物をＮＭＲで分析した結果、ケンフェロール－３－（２’’－グルコシル－グルコシド）（ＫＭＰ－３）であることが分かった。なお、核磁気共鳴装置ＪＥＯＬ（日本電子株式会社）ＪＮＭ－ＥＣＡ５００で測定したＫＭＰ３の測定データを以下表６に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000015
［実施例６］ケンフェロール配糖体（ＫＭＰ－５）の精製 
　実施例４で調製したカーネーション（キュイン）花抽出物の５０％エタノール水溶液について以下の条件による分取液体クロマトグラフィー分取ＬＣ４を行ってメインピークを回収した。
分取ＬＣ４
装置：Ａｇｉｌｅｎｔ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（Ａｇｉｌｅｎｔ　１２６０　ＩｎｆｉｎｉｔｙＩＩ） 
カラム：Ｄｅｖｅｌｏｓｉｌ　ＯＤＳ、７μｍ、２０×２５０ｍｍ 
流速：１０ｍＬ／分 
検出器：Ｄｉｏｄｅ　Ａｒｒａｙ　Ｄｅｔｅｃｔｏｒ　ＷＲ　３４０ｎｍ 
移動相：ＭｅＯＨ：０．１％ギ酸＝３５：６５
　当該水溶液に含まれる化合物の濃度を下記の条件（ＬＣ４）を行ったところ、ケンフェロール配糖体換算値で、５３．５３μｇ／ｍＬであった。 
ＬＣ４
装置：ＳＨＩＭＡＤＺＵ　１０Ａ
移動相：メタノール：リン酸＝３５：６５
流速：０．８ｍＬ／分
カラム：Ｉｍｔａｋｔ　Ｕｎｉｓｏｎ　ＵＫ－Ｃ１８
温度：４０℃
検出器：ＳＰＤ　Ｍ１０Ａｖｐ　３４０ｎｍ
　フラクション４１に回収された化合物をＮＭＲで分析した結果、ケンフェロール－３－ネオヘスペリドシド（ＫＭＰ－５）であることが分かった。なお、核磁気共鳴装置ＪＥＯＬ（日本電子株式会社）ＪＮＭ－ＥＣＡ５００で測定したＫＭＰ－５の測定データを以下表７に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000016
［試験例８］コラーゲン産生量の測定
　実施例４及び５で精製した２つの画分（ＫＭＰ－３及びＫＭＰ－５）を細胞に添加した場合、並びにカーネーション花抽出物中に含まれる上記有効成分を投与した場合、コラーゲン産生量（合成能）が変化するかどうかを確認した。細胞は正常ヒト成人皮膚線維芽細胞を用いた。前培養は５％ＦＢＳを含むＤＭＥＭを使用し、本実験では１％ＦＢＳを含むＤＭＥＭを使用した。５％ＣＯ２、３７℃の条件で培養した。
　５×１０４個の正常ヒト成人皮膚線維芽細胞（Ｃｅｌｌ　ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ）を２４ウェルプレートに播種し７５％コンフルエント状態になるまで培養した。その後、１％ＦＢＳを含むＤＭＥＭに置換し、２４時間培養した後、新たな１％ＦＢＳを含むＤＭＥＭに置換し、以下の試料を添加し、７２時間培養した。
・試料１の群：コントロールとして、所定量の５０％ブチレングリコール水溶液を投与。
・試料２の群：０．５％となるように、ＫＭＰ－３を投与。
・試料３の群：０．５％となるように、ＫＭＰ－５を投与。
　なお、試料２と試料３に含まれる有効成分の濃度は、カーネーション（キュイン）の花抽出物に含まれるそれぞれの化合物の濃度と同じになるように５０％ブチレングリコール水溶液で調製した。
　その後、培地中の３型コラーゲンの濃度を、Ｈｕｍａｎ　ＰＩＩＩＮＰ（Ｎ－Ｔｅｒｍｉｎａｌ　Ｐｒｏｃｏｌｌａｇｅｎ　ＩＩＩ　Ｐｒｏｐｅｐｔｉｄｅ）ＥＬＩＳＡ　ｋｉｔ（Ｅｌａｂｓｃｉｅｎｃｅ社製）を用いて、測定した。当該測定は、各群（試料１から試料３の群）において5サンプルずつ行った。
　測定結果を以下記載する。当該測定結果は、各群において測定した値の平均値を示す。試料１の群の平均値を１とした場合、試料２の群の平均値は１．２８３、試料３の群の平均値は１．３７９、であった。この試料２及び試料３の群の平均値は、試料１の群の平均値に対して、Ｄｕｎｎｅｔｔ’ｓ　ｔｅｓｔにて、コントロール群に対して、有意差（ｐ＜０．０１）が認められたデータであった。試料２と試料３の群の添加により、３型コラーゲン産生が促進されることが分かった。
　以上、本発明の実施の形態（実施例も含め）について、図面を参照して説明してきたが、本発明の具体的構成は、これに限られるものではなく、本発明の要旨を逸脱しない範囲において、設計変更等があっても、本発明に含まれるものである。
　本発明の剤を含む皮膚外用剤は、コラーゲン産生を促進し、肌の柔らかさと復元力を改善することによりシワ改善に有効であることなどが確認できた。したがって、本発明の皮膚外用剤は、シワの改善用化粧品などとして利用できる可能性がある。

 

Claims (8)

  1. 　下記式（Ｉ）：
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
     （式中、Ｒ１は水素原子又はラムノシル基を示し、Ｒ２はグルコシル基又はラムノシル基を示す。）で表される化合物、その有機酸エステル又はそれらの塩を含有するコラーゲン産生促進用の剤。
  2. 　前記式（Ｉ）で表される化合物、その有機酸エステル又はそれらの塩を含有する、女性ホルモン作用の促進用の剤。
  3. 　前記式（Ｉ）で表される化合物が、下記式（ＩＩ）：
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
     で表される化合物である請求項１又は２に記載の剤。
  4. 　前記式（Ｉ）で表される化合物が、下記式（ＩＩＩ）：
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
     又は（ＩＶ）：
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000004
     で表される化合物である請求項１又は２に記載の剤。
  5. 　前記有機酸エステルが、式（Ｉ）～（ＩＶ）の何れかの化合物のリンゴ酸エステルである請求項１～４のいずれか一項に記載の剤。
  6. 　請求項１～５のいずれか一項に記載の剤を含有する皮膚外用剤。
  7. 　シワ改善用である請求項６に記載の皮膚外用剤。
  8. 　皮膚のコラーゲン密度を増加させるための請求項６又は７に記載の皮膚外用剤。

     
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