WO2022092784A1 - 양이온성 물질을 포함하는 조성물 및 이의 용도 - Google Patents

양이온성 물질을 포함하는 조성물 및 이의 용도 Download PDF

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natural killer
cancer
immune
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박경순
박근홍
최승희
김혜진
안희정
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의료법인 성광의료재단
차의과학대학교 산학협력단
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Definitions

  • the present invention relates to compositions comprising cationic materials and uses thereof.
  • Natural killer cells are immune cells that perform the primary defense action in the body in the innate immune system. Natural killer cells contain receptors that recognize abnormal cells, and they regulate the immune system by immediately detecting and removing abnormal cells such as cancer cells or viruses without specific antigens, and effectively inhibits the proliferation, recurrence, and metastasis of cancer cells. do
  • immune cell therapy refers to a therapeutic agent that is genetically modified using immune cells in the body and then put back into the body.
  • CAR-T cells chimeric antigen receptor T-cells
  • the present inventors solved the above problems by confirming that the stabilization of the perforin protein is increased when the immune cells are treated with a cationic substance.
  • compositions for increasing intracellular perforin protein comprising a cationic material as an active ingredient.
  • compositions for enhancing immune cell activity comprising a cationic material as an active ingredient.
  • the cationic material is pre-treated to provide immune cells with increased perforin expression level or content compared to normal cells.
  • compositions for preventing or treating cancer including immune cells that have been pretreated with a cationic material and have increased perforin expression or content compared to normal cells.
  • Another aspect provides a pharmaceutical composition for preventing or treating cancer comprising a cationic material and immune cells as active ingredients.
  • Another aspect provides a culturing method for promoting the activity of immune cells comprising the step of culturing the cationic material and immune cells.
  • Another aspect provides a method for increasing the content or expression of perforin in immune cells comprising the step of culturing the cationic material and immune cells.
  • Another aspect provides a method for preventing or treating cancer, comprising administering to a subject a composition comprising a cationic material and immune cells as active ingredients.
  • compositions comprising a cationic material as an active ingredient for use in increasing intracellular perforin protein.
  • compositions comprising a cationic material as an active ingredient for use in increasing immune cell activity.
  • compositions comprising a cationic material as an active ingredient for use in the manufacture of a medicament for the prevention or treatment of cancer.
  • Another aspect provides the use of a cationic material for use in increasing the intracellular perforin protein.
  • compositions for increasing intracellular perforin protein comprising a cationic material as an active ingredient.
  • compositions for enhancing immune cell activity comprising a cationic material as an active ingredient.
  • cationic substance may be a material having a cation on the surface, or a material having a positive charge on the surface.
  • the cationic material may be polyetherimide (PEI) or chitosan (chitosan).
  • PEI polyetherimide
  • chitosan chitosan
  • the cationic material may be a polyetheramide.
  • polyetherimide is a polymer having a chemical formula of (C37H24O6N2)n, and has a density of 1.27 g/cm3.
  • the polyetheramide may be a cationic material.
  • the cationic property of the polyetheramide may be to deliver a gene into the cell.
  • the cells may be immune cells, T cells, B cells, dendritic cells or natural killer cells.
  • the enhancement of immune cell activity means that the immunomodulatory ability, cytotoxicity or apoptosis ability of the cell is activated compared to parental cells, for example, hematopoietic cells, or progenitor cells.
  • the immune cells may be CAR-immune cells.
  • NK cell Natural Killer cell
  • the natural killer cells may be responsible for non-specific immunity, and may serve to remove viruses, cancer cells, and the like.
  • the composition includes natural killer cells with increased immunomodulatory ability, cytotoxicity or apoptosis, and the virus or cancer cell killing ability of the natural killer cells is increased.
  • Perforin protein refers to a glycoprotein that destroys cells by making holes in the plasma membrane of cells.
  • the perforin protein of the cell may be present in the immune cell.
  • the polyetheramide may be branched.
  • the branching means that the chemical structure is not linear and includes branches.
  • the polyetheramine may be a primary, secondary or tertiary amine.
  • the molecular weight of the polyetheramide may be 10,000 mM to 30,000 mM.
  • the molecular weight of the polyetheramide may be 10,000 to 28,000, 10,000 to 27,000, 12,000 to 30,000, 12,000 to 28,000, 12,000 to 27,000, 15,000 to 30,000, 15,000 to 28,000, or 15,000 to 27,000 mM.
  • it may be about 25,000 mM. Since the gene transfer efficiency increases in proportion to the density of the cations, when the molecular weight range is greater than or less than the numerical value, the gene transfer efficiency may be decreased.
  • the polyetheramide may be branched or linear.
  • the branched type may have one or more selected from the group consisting of primary, secondary and tertiary amines in one molecule.
  • the branched type may have one or more amine structures in one molecule and thus may have a cation sponge effect that can be changed to a cation within a wide pH range.
  • the content of the cationic material may be 0.1 ⁇ g/ml to 10 ⁇ g/ml.
  • the content of the cationic material is 0.1 to 9, 0.1 to 8, 0.5 to 10, 0.5 to 9, 0.5 to 8, 1 to 10, 1 to 9, 1 to 8, 2 to 10, 2 to 9 , 2 to 8, 3 to 10, 3 to 9 or 3 to 8 ⁇ g/ml.
  • the content of the cationic material is less than or more than the above range, there is a problem in that immune cells are not sufficiently activated or the scale of the perforin protein is reduced.
  • the composition may be a medium composition.
  • the composition for increasing perforin protein or the composition for enhancing immune cell activity when cultured with immune cells as a medium composition, induces stabilization or accumulation of perforin protein in immune cells, and consequently induces activation of immune cells it could be
  • the composition may additionally include nanoparticles.
  • nanoparticles may refer to particles having a size of 1 to 100 nm having a surface.
  • the nanoparticles may be coated.
  • the nanoparticles may be magnetic nanoparticles. More specifically, the core of the nanoparticles may include Zn or Fe. The nanoparticles may have magnetism due to the core layer.
  • the cationic material may be bound to nanoparticles.
  • the cationic material may be present on the surface of the nanoparticles, and may be chemically bonded to the surface of the nanoparticles.
  • the composition according to an embodiment may be obtained by culturing the nanoparticles and the cationic material for a predetermined time, thereby binding polyetheramine to the surface of the nanoparticles, and obtaining a composition including the nanoparticles and the cationic material.
  • the composition may induce the accumulation of the perforin protein in the cell by stabilizing the perforin protein.
  • the stabilization may mean resistance to proteolytic degradation that induces an increase in the amount of perforin protein and improvement in translation efficacy from perforin mRNA. Accordingly, the composition may increase the number or amount of perforin protein in the cell.
  • the composition may be administered simultaneously with the immuno-cancer agent.
  • the composition When the composition is administered simultaneously with the immuno-oncology agent, it may increase the activity of the immuno-cancer agent.
  • the composition may additionally include one or more selected from the group consisting of gamma-PGA (Gamma-PGA), glycol chitosan, and protamine.
  • gamma-PGA Gamma-PGA
  • glycol chitosan glycol chitosan
  • protamine protamine
  • the cationic material is pre-treated to provide immune cells with increased perforin expression level or content compared to normal cells.
  • Another aspect provides a composition for preventing or treating cancer comprising the immune cells.
  • the cationic material, cells, perforin, and immune cells are the same as described above.
  • the therapeutic composition may be an immune anticancer agent.
  • the term “immune anticancer agent” is an anticancer agent that kills cancer cells by activating immune cells in the body, and may refer to a drug that exhibits a therapeutic effect on cancer by enhancing the patient's own immunity.
  • the immune anticancer agent may be an immune cell therapeutic agent.
  • immune checkpoint inhibitor refers to T cells by blocking the activation of immune checkpoint proteins involved in T cell suppression, for example, PD-L1 expressed in tumor cells. It may refer to an immune anticancer agent that activates and attacks cancer cells.
  • the immune cell therapeutic agent in the immune cell therapeutic agent, is an NK cell therapeutic agent, a T cell therapeutic agent, a CAR-immune cell therapeutic agent, a DC vaccine, a CTL therapeutic agent, anti-PD-L1, anti-PD-1, and anti-PD-L1 It may be any one or more selected from the group consisting of -CTLA-4, for example, it may be an NK cell therapeutic agent.
  • the CAR-immunocyte therapeutic agent may refer to an immune cell therapeutic agent comprising CAR T (Chimeric Antigen Receptor-T) or CAR-NK (Chimeric Antigen Receptor-NK) cells.
  • Another aspect provides a method of treating cancer in a subject, comprising administering the pharmaceutical composition to the subject.
  • Another aspect provides a method for preventing or treating cancer, comprising administering to an individual a composition comprising a cationic material as an active ingredient.
  • the term “individual” refers to a subject in need of treatment for cancer, and more specifically, human or non-human primates, mice, rats, dogs, cats, horses and cattle. means mammals.
  • the cancer is breast cancer, thyroid cancer, stomach cancer, colon cancer, lung cancer, liver cancer, prostate cancer, pancreatic cancer, gallbladder cancer, biliary tract cancer, non-Hodgkin's lymphoma, oral cancer, oral cancer, testicular cancer, acute myeloid leukemia, basal cell cancer, ovarian epithelial cancer, brain tumor, Multiple myeloma, hematologic cancer, chronic myelogenous leukemia, chronic lymphocytic leukemia, bladder cancer, peritoneal cancer, tongue cancer, non-small cell lung cancer, small cell lung cancer, small-cell lung cancer, small-cell cancer, esophageal cancer, kidney cancer, heart cancer, malignant lymphoma, urethral cancer, cervical cancer, rectal cancer, It may be at least one selected from the group
  • prevention refers to any action that inhibits or delays the occurrence of cancer by administration of the composition according to the present invention.
  • treatment refers to or includes the alleviation, progression inhibition or prevention of a disease, disorder or condition, or one or more symptoms thereof
  • active ingredient or the term “pharmaceutically effective amount” refers to a disease, disorder or may mean any amount of a composition employed in the practice of the invention provided herein sufficient to alleviate, inhibit the progression or prevent the condition, or one or more symptoms thereof.
  • the pharmaceutical composition may include immune cells in which the content of perforin is increased due to a cationic substance, thereby effectively treating cancer by including immune cells in which an immune response is activated as an active ingredient.
  • composition may additionally contain other known adjuvants, preferably monophosphoryl lipid A (MPL) and Glucopyranosyl Lipid Adjuvant (GLA-SE), formulated as other adjuvants. in a stable nano-emulsion of squalene oil in water).
  • MPL monophosphoryl lipid A
  • GLA-SE Glucopyranosyl Lipid Adjuvant
  • the method of administering the pharmaceutical composition is not particularly limited, but may be administered parenterally or orally, such as intravenously, subcutaneously, intraperitoneally, inhalation or topical application, depending on the desired method.
  • the dosage varies according to the patient's weight, age, sex, health status, diet, administration time, administration method, excretion rate, and severity of disease.
  • a daily dose refers to an amount of a therapeutic agent according to one aspect sufficient to treat a disease state ameliorated by administration to a subject in need thereof.
  • An effective amount of a therapeutic agent depends on the particular compound, the disease state and its severity, and the individual in need of treatment, which can be routinely determined by one of ordinary skill in the art.
  • the dosage for the human body of the composition according to one aspect may vary depending on the patient's age, weight, sex, dosage form, health status, and disease degree. Based on an adult patient weighing 70 kg, for example, about 1,000-10,000 cells/time, 1,000-100,000 cells/time, 1,000-1000,000 cells/time, 1,000-10,000,000, 1,000-100,000,000 cells/time, 1,000 to 1,000,000,000 cells/time, 1,000 to 10,000,000,000 cells/time, may be administered in divided doses once or several times a day at regular time intervals, or may be administered several times at regular time intervals.
  • the pharmaceutical composition may include a pharmaceutically acceptable carrier and/or additive.
  • a pharmaceutically acceptable carrier and/or additive for example, sterile water, physiological saline, conventional buffers (phosphoric acid, citric acid, other organic acids, etc.), stabilizers, salts, antioxidants (ascorbic acid, etc.), surfactants, suspending agents, isotonic acid, or preservatives, etc. can do.
  • organic materials such as biopolymers, inorganic materials such as hydroxyapatite, specifically collagen matrix, polylactic acid polymers or copolymers, polyethylene glycol polymers or copolymers and chemical derivatives thereof, etc. may also be combined for topical administration.
  • the pharmaceutical composition according to one embodiment is formulated in a dosage form suitable for injection, the immune cells, or substances that increase their activity, are dissolved in a pharmaceutically acceptable carrier or frozen in a dissolved solution.
  • the pharmaceutical composition can be used as a suspending agent, solubilizer, stabilizer, isotonic agent, preservative, adsorption inhibitor, surfactant, diluent, excipient, pH adjuster, analgesic agent, buffer, reducing agent, Antioxidants and the like may be included as appropriate.
  • Pharmaceutically acceptable carriers and agents suitable for the present invention including those exemplified above, are described in detail in Remington's Pharmaceutical Sciences, 19th ed., 1995.
  • the pharmaceutical composition is prepared in unit dosage form by formulating using a pharmaceutically acceptable carrier and/or excipient according to a method that can be easily carried out by a person skilled in the art to which the present invention pertains, or It can be prepared by introducing into a multi-dose container.
  • the formulation may be in the form of a solution, suspension or emulsion in an oil or aqueous medium, or in the form of a powder, granules, tablets or capsules.
  • Another aspect provides a culturing method for promoting the activity of immune cells comprising the step of culturing the cationic material and immune cells.
  • Another aspect provides a method for increasing the content or expression of perforin in immune cells comprising the step of culturing the cationic material and immune cells.
  • the culturing may include culturing the cationic material and immune cells for 5 to 60 hours. For example, 5 to 60 hours, 12 to 60 hours, 6 to 58 hours, 6 to 55 hours, 6 to 53 hours, 6 to 50 hours, 8 to 60 hours, 8 to 58 hours, 8 to 55 hours, 8 to 53 hours, 8 to 50 hours, 10 to 60 hours, 10 to 58 hours, 10 to 55 hours, 10 to 53 hours, 10 to 50 hours may be cultured. If the incubation time is greater than or less than the above value, the stabilization of Perforin may not be sufficiently achieved.
  • the method may be to increase the stabilization of the perforin protein and induce intracellular accumulation by culturing the cationic material and immune cells, and consequently enhance apoptosis.
  • compositions comprising a cationic material as an active ingredient for use in increasing intracellular perforin protein.
  • compositions comprising a cationic material as an active ingredient for use in increasing immune cell activity.
  • compositions comprising a cationic material as an active ingredient for use in the manufacture of a medicament for the prevention or treatment of cancer.
  • Another aspect provides the use of a cationic material for use in increasing the intracellular perforin protein.
  • composition comprising a cationic material according to an aspect as an active ingredient, there is an effect of increasing the activity of immune cells by increasing the stability of the perforin protein and inducing the accumulation of the perforin protein in the cell.
  • 1 is a schematic diagram showing the results of polyetheramide treatment on natural killer cells.
  • FIG. 2 is a diagram showing the activity of natural killer cells as a result of treating branched or linear polyetheramides in the natural killer cells.
  • FIG. 3 is a diagram showing the activity of natural killer cells as a result of treating breast cancer cells with polyethylenamine having a molecular weight of 25K for each concentration.
  • FIG. 4 is a graph showing the quantification of the activity of natural killer cells as a result of treating breast cancer cells with polyethylenamine having a molecular weight of 25K by concentration.
  • FIG. 5 is a diagram showing the degree of apoptosis of breast cancer cells as a result of culturing breast cancer cells and 5 ⁇ g/ml of polyethylenamine having a molecular weight of 25K at each E:T ratio.
  • FIG. 6 is a graph quantitatively showing the degree of apoptosis of breast cancer cells as a result of culturing breast cancer cells and 5 ⁇ g/ml of polyethylenamine having a molecular weight of 25K at each E:T ratio.
  • FIG. 7 is a diagram showing the activity of natural killer cells as a result of treatment with natural killer cells by inhibiting the cationicity of polyetheramide.
  • FIG. 9 is a graph showing the change in expression of granzyme protein as a result of culturing polyetheramide 5 ⁇ g/ml and natural killer cells by time.
  • 10 is a graph showing the change in expression of perforin protein as a result of culturing polyetheramide 5 ⁇ g/ml and natural killer cells for each hour.
  • 11 is an image showing changes in expression of granzyme protein and perforin protein as a result of culturing polyetheramide 5 ⁇ g/ml and natural killer cells by time.
  • FIG. 12 is a diagram showing changes in expression of granzyme and perforin proteins as a result of culturing polyetheramide 5 ⁇ g/ml and natural killer cells for 48 hours.
  • FIG. 13 is an image showing the change in expression of perforin protein as a result of culturing polyetheramide and natural killer cells treated with MG132.
  • Polyethylenimine in branched form (Sigma-Aldrich, Sigma 408727) was diluted to 5 mg/ml in distilled water and used according to the dose.
  • Alpha-MEM media (gibco12561-056) media base with 12.5% FBS (gibco 16000-044), 1% P/S (gibco15140-122), 2 mM L-glutamine (gibco25030-081), 0.2 mM inositol (Sigma I7508) ); 0.1 mM 2-mercaptoethanol; After uniformly diluting 0.02 mM folic acid (Sigma F8785), it was used after sterilization using a filter (corning 430758). NK cells were cultured in a 37°C CO 2 5% incubator at 3X105/ml in a T75 flask.
  • Green-type fluorescence-labeled MDA MB 231 cells and natural killer cells were put in 1.5 ml eppendorf tube at respective ratios, mixed, and reacted in a 37°C CO 2 5% incubator for 4 hours. After the reaction was completed, it was stained with 7AAD (Invitrogen A1310) for 20 minutes and fixed. The presence or absence of green fluorescence among the mixed cells through flow cytometry was also analyzed for activity by dividing the two cell populations, measuring the percentage of dead cells, and comparing them by group.
  • the protein extracts of natural killer cells were separated using 10% SDS-PAGE, and transferred to a polyvinylidene difluoride membrane (polyvinylidene difluoride amersham Biosciences) under 120V conditions for 90 minutes.
  • Tris-buffered saline-Tween containing 3% bovine serum albumin (BSA) [TBST; 0.2 M NaCl, 0.1% Tween-20, and 10 mM Tris (pH 7.4)] to block the membrane for 1 hour.
  • the blocking membrane was incubated with rabbit polyclonal anti-Perforin antibody (1:1000; ab180773, abcam) or rabbit monoclonal anti-GAPDH antibody (1:1000; 3683S, Cell signaling).
  • membranes were incubated with anti-rabbit polyclonal IgG (1:5000; #7074, Cell Signaling Technology) for 1 hour at room temperature. After each step, the membrane was washed several times with TBST and bound antibody was detected using an enhanced chemiluminescence detection system (Thermo Fisher Scientific Biosciences) according to the manufacturer's instructions.
  • the natural killer cells of Example 1 were mixed with polyetheramide or a comparative group for each molecular weight and type and cultured for 48 hours.
  • Table 1 below shows the molecular weight, charge, and structure of the polyetheramide or comparative compound by molecular weight and form used in the experiment.
  • branched polyetheramides having a molecular weight of 1.8K branched polyetheramides having a molecular weight of 10K, linear polyetheramides having a molecular weight of 25K, branched polyetheramides having a molecular weight of 25K, branched polyetheramides having a molecular weight of 750K
  • Gamma-PGA gamma-PGA
  • glycol chitosan with a molecular weight of 5K and protamine with a molecular weight of 4.5K were mixed with natural killer cells and cultured for 48 hours.
  • the branched polyetheramine primary, secondary and tertiary amines were used, and the prior polyetheramine used secondary amines.
  • the cultured natural killer cells were washed, and repositioned in a fresh culture medium (resuspension). Then, the natural killer cells and the triple-negative breast cancer cell line MDA_MB231 were mixed at an E:T ratio of 10:1 and cultured for 4 hours. Finally, the degree of apoptosis of the target cells was quantitatively analyzed for the cultured cells using the CFSE-7AAD assay.
  • FIG. 2 is a diagram showing the activity of natural killer cells as a result of treating branched or linear polyetheramides in the natural killer cells.
  • polyetheramide having a molecular weight of 25K was added to the natural killer cells of Example 1 by concentration (0 ⁇ g/ml, 0.63 ⁇ g/ml, 1.25 ⁇ g/ml). , 2.5 ⁇ g/ml, or 5 ⁇ g/ml) and incubated for 48 hours.
  • the cultured natural killer cells were washed, and repositioned in a fresh culture medium (resuspension). Then, the natural killer cells and the triple-negative breast cancer cell line MDA_MB231 were mixed at an E:T ratio of 10:1 and cultured for 4 hours. Finally, the degree of apoptosis of the target cells was quantitatively analyzed for the cultured cells using the CFSE-7AAD assay.
  • FIG. 3 is a diagram showing the activity of natural killer cells as a result of treating breast cancer cells with polyethylenamine having a molecular weight of 25K for each concentration.
  • FIG. 4 is a graph showing the quantification of the activity of natural killer cells as a result of treating breast cancer cells with polyethylenamine having a molecular weight of 25K by concentration.
  • the natural killer cells of Example 1 were treated with polyetheramide having a molecular weight of 25K and 5 ⁇ g/ml by concentration, and the treated natural killer cells were tripled.
  • Negative breast cancer cells MDA-MB231 and E:T ratios (1.25:1, 2.5:1, 5:1 or 10:1) were cultured for 48 hours.
  • the cultured natural killer cells were washed, and repositioned in a fresh culture medium (resuspension). Then, the natural killer cells and the triple-negative breast cancer cell line MDA_MB231 were mixed at an E:T ratio of 10:1 and cultured for 4 hours. Finally, the degree of apoptosis of the target cells was quantitatively analyzed for the cultured cells using the CFSE-7AAD assay.
  • FIG. 5 is a diagram showing the degree of apoptosis of breast cancer cells as a result of culturing breast cancer cells and 5 ⁇ g/ml of polyethylenamine having a molecular weight of 25K at each E:T ratio.
  • the non-treated group showed 9.80 for E:T ratio 1.25, 9.53 for E:T ratio 2.5, 11.92 for E:T ratio 5, and 17.56 for E:T ratio 10.
  • the group treated with PEI at a concentration of 5 ⁇ g/ml showed 36.55 for E:T Ratio 1.25, 39.90 for E:T Ratio 2.5, 43.82 for E:T Ratio 5, and 49.55 for E:T Ratio 10. .
  • FIG. 6 is a graph quantitatively showing the degree of apoptosis of breast cancer cells as a result of culturing breast cancer cells and 5 ⁇ g/ml of polyethylenamine having a molecular weight of 25K at each E:T ratio.
  • Example 1 In order to confirm the ability to induce natural killer cell activity in response to the charge of polyetheramine, the nanoparticles of Example 1 were coated with anionic hyalunic acid.
  • cationic polyetheramide was first bound to Zn/Fe nanoparticles by electric interaction, and anionic hyalunic acid was bound to cationic polyetheramide thereon, and the zeta potential of the nanoparticles was By measuring, anionicity was confirmed.
  • the cultured natural killer cells were washed, and repositioned in a fresh culture medium (resuspension). Then, the natural killer cells and the triple-negative breast cancer cell line MDA_MB231 were mixed at an E:T ratio of 10:1 and cultured for 4 hours. Finally, the degree of apoptosis of the target cells was quantitatively analyzed for the cultured cells using the CFSE-7AAD assay.
  • FIG. 7 is a diagram showing the activity of natural killer cells as a result of treatment with natural killer cells by inhibiting the cationicity of polyetheramide.
  • the values were 1.02 for MDA-MB-231, 18.47 for MDA-MB-231 and NK-92MI, and 18.21 for MDA-MB-231 and NK-92MI and aNP.
  • Example 1 In order to determine whether polyetheramine increases the amount of intracellular perforin, the natural killer cells of Example 1 were treated with 5 ⁇ g/ml of polyetheramide, and timed (0 hours, 3 hours, 6 hours) , 12 hours, 24 hours or 48 hours), and then Western blot was performed on the cultured natural killer cells to confirm the amount of granzyme B and perforin protein.
  • FIG. 9 is a graph showing the change in expression of granzyme protein as a result of culturing polyetheramide 5 ⁇ g/ml and natural killer cells by time.
  • 10 is a graph showing the change in expression of perforin protein as a result of culturing polyetheramide 5 ⁇ g/ml and natural killer cells for each hour.
  • 11 is an image showing changes in expression of granzyme protein and perforin protein as a result of culturing polyetheramide 5 ⁇ g/ml and natural killer cells by time.
  • FIG. 12 is a diagram showing changes in expression of granzyme and perforin proteins as a result of culturing polyetheramide 5 ⁇ g/ml and natural killer cells for 48 hours.
  • Example 6.2 In order to check whether the increase in the amount of intracellular perforin in Example 6.2 is related to the degree of intracellular perforin stabilization, the natural killer cells of Example 1 were treated with MG132, a proteolysis inhibitor, to prevent intracellular proteolysis. After that, it was cultured. Then, Western blot was performed on the cultured natural killer cells to confirm the amount of granzyme B and perforin protein.
  • FIG. 13 is an image showing the change in expression of perforin protein as a result of culturing polyetheramide and natural killer cells treated with MG132.

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Abstract

일 양상에 따른 양이온성 물질을 유효성분으로 포함하는 조성물에 의하면, 퍼포린 단백질의 안정도를 증가시켜 세포 내 퍼포린 단백질의 축척을 유도함으로서 면역세포의 활성을 증가시키는 효과가 있다.

Description

양이온성 물질을 포함하는 조성물 및 이의 용도
본 출원은 2020년 10월 29일 출원된 대한민국 특허출원 제10-2020-0142534호를 우선권으로 주장하고, 상기 명세서 전체는 본 출원의 참고문헌이다.
본 발명은 양이온성 물질을 포함하는 조성물 및 이의 용도에 관한 것이다.
자연살해세포(Natural Killer cell: NK cell)은 선천면역계에서 체내 1차 방어작용을 수행하는 면역세포이다. 자연살해세포는 비정상세포를 인지하는 수용체를 포함하고 있으며, 특정한 항원 없이도 암세포 또는 바이러스 등의 비정상세포를 즉각적으로 감지하고 제거하여 면역계를 조절하고, 암 세포의 증식과 재발, 전이를 효과적으로 억제하는 역할을 한다.
상기와 같은 자연살해세포의 특징을 이용하여, 최근 자연살해세포를 이용한 항암면역치료제의 연구가 활발해지고 있다. 면역항암치료의 방법 중 면역세포치료제란, 체내의 면역세포를 이용해 유전공학적으로 변형시켜 다시 체내에 투입하는 치료제를 말한다. 면역항암치료제는 세포성 면역을 강화하는 것이 목적이나, 키메라 항원 수용체 T-세포(CAR-T 세포)는 유전자 조작이 복잡하고, 치료비용이 고가라는 단점이 존재하였으며, T 세포의 특성으로 인하여 사이토카인 방출 증후군 및 여러 부작용을 초래한다는 문제점 또한 존재하였다. 상기와 같은 문제점을 극복하기 위하여, 자연살해세포가 면역항암치료 분야에서 새롭게 주목받고 있다.
본 발명자들은 양이온성 물질을 면역세포에 처리한 경우 퍼포린 단백질의 안정화가 증가됨을 확인함으로써, 위와 같은 문제점을 해결하였다.
일 양상은 양이온성 물질을 유효성분으로 포함하는 세포 내 퍼포린 단백질 증가용 조성물을 제공한다.
다른 양상은 양이온성 물질을 유효성분으로 포함하는 면역세포 활성 증진용 조성물을 제공한다.
다른 양상은 양이온성 물질이 전처리되어 정상 세포에 비해 퍼포린 발현량 또는 함량이 증가한 면역세포를 제공한다.
다른 양상은 양이온성 물질이 전처리되어 정상 세포에 비해 퍼포린 발현량 또는 함량이 증가한 면역세포를 포함하는 암 예방 또는 치료용 조성물을 제공한다.
다른 양상은 양이온성 물질 및 면역세포를 유효성분으로 포함하는 암의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다.
다른 양상은 양이온성 물질 및 면역세포를 배양하는 단계를 포함하는 면역세포의 활성을 촉진하는 배양 방법을 제공한다.
다른 양상은 양이온성 물질 및 면역세포를 배양하는 단계를 포함하는 면역세포 내의 퍼포린 함량 또는 발현량을 증가시키는 방법을 제공한다.
다른 양상은 양이온성 물질 및 면역세포를 유효성분으로 포함하는 조성물을 개체에 투여하는 단계를 포함하는 암의 예방 또는 치료하는 방법을 제공한다.
다른 양상은 세포 내 퍼포린 단백질 증가에 사용하기 위한 양이온성 물질을 유효성분으로 포함하는 조성물의 용도를 제공한다.
다른 양상은 면역세포 활성 증가에 사용하기 위한 양이온성 물질을 유효성분으로 포함하는 조성물의 용도를 제공한다.
다른 양상은 암의 예방 또는 치료용 의약의 제조에 사용하기 위한 양이온성 물질을 유효성분으로 포함하는 조성물의 용도를 제공한다.
다른 양상은 세포 내 퍼포린 단백질 증가에 사용하기 위한 양이온성 물질의 용도를 제공한다.
일 양상은 양이온성 물질을 유효성분으로 포함하는 세포 내 퍼포린 단백질 증가용 조성물을 제공한다.
다른 양상은 양이온성 물질을 유효성분으로 포함하는 면역세포 활성 증진용 조성물을 제공한다.
본 명세서에서 용어 “양이온성 물질(Cationic substance)”는 표면에 양이온을 띄는 물질일 수 있고, 표면에 양전하를 가지는 물질일 수 있다.
일 실시예에 있어서, 상기 양이온성 물질은 폴리에테르아미드(Polyetherimide: PEI) 또는 키토산(chitosan)일 수 있다. 바람직하게는, 상기 양이온성 물질은 폴리에테르아미드일 수 있다.
본 명세서에서 용어 “폴리에테르아미드(Polyetherimide: PEI)”는 (C37H24O6N2)n 의 화학식을 갖는 폴리머로서, 밀도는 1.27 g/cm³ 이다. 상기 폴리에테르아미드는 양이온성 물질일 수 있다. 상기 폴리에테르아미드의 양이온성은 세포 내부로 유전자를 전달하는 것일 수 있다.
상기 세포는 면역 세포일 수 있으며, T세포, B세포, 수지상세포 또는 자연살해세포일 수 있다.
상기 면역세포 활성 증진은 모세포, 예를 들면, 조혈 세포, 또는 전구세포에 비해, 세포의 면역조절능, 세포 독성 또는 세포사멸능이 활성화된 것을 의미한다. 상기 면역세포는 CAR-면역세포인 것일 수 있다.
본 명세서에서 용어 “자연살해세포(Natural Killer cell: NK cell)”는 면역을 담당하는 혈액 속 백혈구의 일종으로, 간과 골수에서 성숙하는 세포를 의미한다. 상기 자연살해세포는 비특이적 면역을 담당하며, 바이러스, 암세포 등을 제거하는 역할을 하는 것일 수 있다.
일 실시예에서는 상기 조성물을 자연살해세포에 처리한 결과, 자연살해세포의 면역조절능, 세포 독성 또는 세포사멸능이 증가된 것을 확인하였다. 따라서 상기 조성물은 면역조절능, 세포 독성 또는 세포사멸능이 증가된 자연살해세포를 포함함으로서, 자연살해세포의 바이러스 또는 암세포 사멸 능력이 증가된 것을 확인하였다.
본 명세서에서 용어 “퍼포린(Perforin) 단백질”은 세포의 원형질막에 구멍을 만들어서 세포를 파괴하는 당단백질을 의미한다. 세포의 상기 퍼포린 단백질은 면역세포 내에 존재하는 것일 수 있다.
상기 폴리에테르아미드는 분지된 것일 수 있다. 상기 분지는 화학적 구조가 선형이 아니고 가지를 포함하고 있음을 의미한다. 또한, 상기 폴리에테르아민은 1차, 2차 또는 3차 아민일 수 있다.
상기 폴리에테르아미드의 분자량은 10,000 mM 내지 30,000 mM 일 수 있다. 예를 들어, 상기 폴리에테르아미드의 분자량은 10,000 내지 28,000, 10,000 내지 27,000, 12,000 내지 30,000, 12,000 내지 28,000, 12,000 내지 27,000, 15,000 내지 30,000, 15,000 내지 28,000 또는 15,000 내지 27,000 mM 일 수 있다. 바람직하게는 약 25,000 mM 일 수 있다. 유전자 전달 효율은 양이온의 밀도와 비례하여 높아지기 때문에, 상기 분자량의 범위가 상기 수치 초과 또는 미만인 경우, 유전자 전달 효율이 떨어지는 것일 수 있다.
상기 폴리에테르아미드는 분지형(brancned) 또는 직선형(linear)일 수 있다. 또한, 상기 분지형은 한 분자안에 1차, 2차 및 3차 아민으로 이루어진 군으로부터 선택된 하나 이상을 가지는 것일 수 있다. 상기 분지형은 한 분자안에 아민 구조를 1개 이상 가지고 있어 넓은 pH 범위 내에서 양이온으로 변할 수 있는 양이온 스펀지(Proton Sponge) 효과를 가지는 것일 수 있다.
일 구체예에 있어서, 상기 양이온성 물질의 함량은 0.1 ㎍/㎖ 내지 10 ㎍/㎖ 일 수 있다. 예를 들어, 상기 양이온성 물질의 함량은 0.1 내지 9, 0.1 내지 8, 0.5 내지 10, 0.5 내지 9, 0.5 내지 8, 1 내지 10, 1 내지 9, 1 내지 8, 2 내지 10, 2 내지 9, 2 내지 8, 3 내지 10, 3 내지 9 또는 3 내지 8 ㎍/㎖ 일 수 있다. 이때, 양이온성 물질의 함량이 상기 범위 미만 또는 초과인 경우, 면역세포가 충분히 활성화되지 않거나, 퍼포린 단백질의 축척도가 떨어지는 문제점이 있다.
일 구체예에 있어서, 상기 조성물은 배지 조성물일 수 있다. 상기 퍼포린 단백질 증가용 조성물 또는 면역세포 활성 증진용 조성물은, 배지 조성물로서 면역세포와 함께 배양할 경우, 면역세포 내의 퍼포린 단백질의 안정화 또는 축척을 유도하여, 결과적으로 면역세포의 활성화를 유도하는 것일 수 있다.
상기 조성물은, 나노입자를 추가적으로 포함하는 것일 수 있다.
본 명세서에서 용어 “나노입자(Nanoparticles)”란, 표면을 갖는 1 내지 100 nm 크기의 입자를 의미할 수 있다. 상기 나노입자는 코팅된 것일 수 있다.
일 구체예에 있어서, 상기 나노입자는 상기 나노입자는 자성 나노입자일 수 있다. 보다 구체적으로, 상기 나노입자의 코어는 Zn 또는 Fe를 포함하는 것일 수 있다. 상기 나노입자는 상기 코어층으로 인해 자성을 가지는 것일 수 있다.
상기 양이온성 물질은 나노입자에 결합된 것일 수 있다. 구체적으로, 상기 양이온성 물질은 나노입자의 표면에 존재하는 것일 수 있으며, 나노입자의 표면과 화학적으로 결합한 것일 수 있다. 일 실시예에 따른 조성물은, 나노입자 및 양이온성 물질을 일정 시간 배양함으로서, 나노입자의 표면에 폴리에테르아민을 결합시키고, 상기 나노입자 및 양이온성 물질을 포함하는 조성물을 수득한 것일 수 있다.
일 구체예에 있어서, 상기 조성물은 퍼포린 단백질을 안정화시킴으로서, 세포 내 퍼프린 단백질의 축적을 유도하는 것일 수 있다. 상기 안정화는 퍼포린 단백질량의 증가를 유도하는 단백질 분해(proteolytic degradation) 저항성 및 퍼포린 mRNA로부터의 번역 효율성(translation efficacy) 향상을 의미할 수 있다. 따라서, 상기 조성물은 세포 내의 퍼포린 단백질의 개수 또는 양을 증가시키는 것일 수 있다.
상기 조성물은 면역항암제와 동시에 투여될 수 있다. 상기 조성물은 면역항암제와 동시 투여되는 경우, 면역항암제의 활성도를 높이는 것일 수 있다.
상기 조성물은 감마 PGA(Gamma-PGA), 글리콜 키토산(glycol chitosan), 및 프로타민(protamine)으로 이루어진 군으로부터 선택된 하나 이상의 것을 추가적으로 포함할 수 있다.
다른 양상은 양이온성 물질이 전처리되어 정상 세포에 비해 퍼포린 발현량 또는 함량이 증가한 면역세포를 제공한다.
다른 양상은 상기 면역세포를 포함하는 암 예방 또는 치료용 조성물을 제공한다.
상기 양이온성 물질, 세포, 퍼포린, 면역세포는 상술한 바와 같다.
상기 치료용 조성물은 면역 항암제일 수 있다.
본 명세서에서 용어 “면역 항암제”는 인체의 면역세포를 활성화시켜서 암세포를 사멸시키는 항암제로, 환자 스스로의 면역 강화를 통해 암의 치료효과를 나타내는 약제를 의미할 수 있다. 일 구체예에 있어서, 상기 면역 항암제는 면역 세포 치료제일 수 있다.
본 명세서에서 용어 “면역 세포 치료제(immune checkpoint inhibitor)”는 T 세포 억제에 관여하는 면역 관문 단백질(immune checkpoint protein) 예컨대, 종양세포에서 발현되는 PD-L1과 같은 단백질의 활성화를 차단함으로써 T 세포를 활성화시켜 암세포를 공격하는 면역 항암제를 의미할 수 있다.
일 구체예에 있어서, 상기 면역 세포 치료제는 상기 면역 세포 치료제는 NK 세포 치료제, T 세포 치료제, CAR-면역세포 치료제, DC 백신, CTL 치료제, 항-PD-L1, 항-PD-1, 및 항-CTLA-4로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것일 수 있으며, 예를 들어, NK 세포 치료제일 수 있다.
일 구체예에 있어서, 상기 CAR-면역세포 치료제는 CAR T(Chimeric antigen receptor-T) 또는 CAR-NK(Chimeric antigen receptor-NK) 세포를 포함하는 면역세포 치료제를 의미할 수 있다.
다른 양상은, 상기 약학적 조성물을 개체에 투여하는 단계를 포함하는, 개체의 암 치료 방법을 제공한다.
다른 양상은 양이온성 물질을 유효성분으로 포함하는 조성물을 개체에 투여하는 단계를 포함하는 암의 예방 또는 치료하는 방법을 제공한다.
상기 양이온성 물질, 폴리에테르아민 또는 면역세포의 구체적인 내용은 상술한 바와 같다.
본 명세서에서 용어 “개체”는 암의 치료를 필요로 하는 대상을 의미하고, 보다 구체적으로 인간 또는 비-인간인 영장류, 생쥐(mouse), 쥐(rat), 개, 고양이, 말 및 소 등의 포유류를 의미한다. 상기 암은 유방암, 갑상선암, 위암, 대장암, 폐암, 간암, 전립선암, 췌장암, 담낭암, 담도암, 비호지킨 림프종, 구강암, 구순암, 고환암, 급성 골수성 백혈병, 기저세포암, 난소상피암, 뇌종양, 다발성골수종, 혈액암, 만성 골수성 백혈병, 만성 림프구 백혈병, 방광암, 복막암, 설암, 비소세포폐암, 소세포폐암, 소장암, 식도암, 신장암, 심장암, 악성림프종, 요도암, 자궁경부암, 직장암, 편도암 및 후두암으로 이루어진 군으로부터 선택된 하나 이상의 것일 수 있다.
본 명세서에서 용어 "예방"은 본 발명에 따른 조성물의 투여로 암의 발생을 억제 또는 지연시키는 모든 행위를 말한다.
본 명세서에서 용어 "치료"는 질환, 장애 또는 병태, 또는 그의 하나 이상의 증상의 경감, 진행 억제 또는 예방을 지칭하거나, 그를 포함하며, "유효성분" 또는 용어 "약제학적 유효량"은 질환, 장애 또는 병태, 또는 그의 하나 이상의 증상의 경감, 진행 억제 또는 예방에 충분한 본원에서 제공되는 발명을 실시하는 과정에서 이용되는 조성물의 임의의 양을 의미할 수 있다.
상기 약학적 조성물은, 양이온성 물질로 인해 퍼포린의 함량이 증가된 면역세포를 포함함으로서, 면역 반응이 활성화된 면역세포를 유효성분으로 포함하여 암을 효과적으로 치료할 수 있는 것일 수 있다.
상기 조성물은 기존에 알려져 있는 다른 면역항원보강제를 추가로 포함할 수 있으며, 다른 면역항원보강제로는 바람직하게는 모노포스포릴 리피드 A(monophosphoryl lipid A, MPL) 및 GLA-SE(Glucopyranosyl Lipid Adjuvant, formulated in a stable nano-emulsion of squalene oilin- water) 중 하나를 포함하는 것일 수 있다.
상기 약학적 조성물의 투여방법은 특별히 제한되는 것은 아니나, 목적하는 방법에 따라 정맥내, 피하, 복강 내, 흡입 또는 국소적용과 같이 비경구 투여하거나 경구 투여할 수 있다. 투여량은 환자의 체중, 연령, 성별, 건강상태, 식이, 투여시간, 투여방법, 배설율 및 질환의 중증도 등에 따라 그 범위가 다양하다. 일일 투여량은 치료를 필요로 하는 개체에 투여됨으로써 경감된 질병 상태에 대한 치료에 충분한 일 양상에 따른 치료용 물질의 양을 의미한다. 치료용 물질의 효과적인 양은 특정 화합물, 질병 상태 및 그의 심각도, 치료를 필요로 하는 개체에 따라 달라지며, 이는 당업자에 의해 통상적으로 결정될 수 있다. 비제한적 예로서, 일 양상에 따른 조성물의 인체에 대한 투여량은 환자의 나이, 몸무게, 성별, 투여 형태, 건강 상태 및 질환 정도에 따라 달라질 수 있다. 몸무게가 70 ㎏인 성인 환자를 기준으로 할 때 예를 들어 약 1,000~10,000 세포/회, 1,000~100,000세포/회, 1,000~1000,000 세포/회, 1,000~10,000,000, 1,000~100,000,000 세포/회, 1,000~1,000,000,000세포/회, 1,000~10,000,000,000 세포/회로, 일정시간 간격으로 1일 1회 내지 수회에 분할 투여할 수도 있고, 일정 시간 간격으로 여러 번 투여할 수 있다.
상기 약학적 조성물은 약학적으로 허용가능한 담체 및/또는 첨가물을 포함할 수 있다. 예를 들어, 멸균수, 생리식염수, 관용의 완충제(인산, 구연산, 그 밖의 유기산 등), 안정제, 염, 산화방지제(아스코르브산 등), 계면활성제, 현탁제, 등장화제, 또는 보존제 등을 포함할 수 있다. 국소 투여를 위해, 생체고분자(biopolymer) 등의 유기물, 하이드록시아파타이트 등의 무기물, 구체적으로는 콜라겐 매트릭스, 폴리락트산 중합체 또는 공중합체, 폴리에틸렌글리콜 중합체 또는 공중합체 및 그의 화학적 유도체 등과 조합시키는 것도 포함할 수 있다. 일 구체예에 따른 약학적 조성물이 주사에 적당한 제형으로 조제되는 경우에는, 면역세포, 또는 그의 활성을 증가시키는 물질은 약학적으로 허용가능한 담체 중에 용해되어 있거나 또는 용해되어 있는 용액상태로 동결된 것일 수 있다.
상기 약학적 조성물은 그 투여방법이나 제형에 따라 필요한 경우, 현탁제, 용해보조제, 안정화제, 등장화제, 보존제, 흡착방지제, 계면활성화제, 희석제, 부형제, pH 조정제, 무통화제, 완충제, 환원제, 산화방지제 등을 적절히 포함할 수 있다. 상기에 예시된 것들을 비롯하여 본 발명에 적합한 약학적으로 허용되는 담체 및 제제는 문헌[Remington's Pharmaceutical Sciences, 19th ed., 1995]에 상세히 기재되어 있다. 상기 약학적 조성물은 당해 발명이 속하는 기술 분야에서 통상의 지식을 가진 자가 용이하게 실시할 수 있는 방법에 따라, 약학적으로 허용되는 담체 및/또는 부형제를 이용하여 제제화함으로써 단위 용량 형태로 제조되거나 또는 다용량 용기 내에 내입시켜 제조될 수 있다. 이때 제형은 오일 또는 수성 매질 중의 용액, 현탁액 또는 유화액 형태이거나 분말, 과립, 정제 또는 캡슐 형태일 수 있다.
다른 양상은 양이온성 물질 및 면역세포를 배양하는 단계를 포함하는 면역세포의 활성을 촉진시키는 배양 방법을 제공한다.
다른 양상은 양이온성 물질 및 면역세포를 배양하는 단계를 포함하는 면역세포 내의 퍼포린 함량 또는 발현량을 증가시키는 방법을 제공한다.
상기 양이온성 물질, 폴리에테르아미드, 면역세포, 활성 촉진에 관한 구체적인 내용은 상술한 바와 같다.
상기 배양하는 단계는, 양이온성 물질 및 면역세포를 5 내지 60시간 배양하는 것일 수 있다. 예를 들어, 5 내지 60시간, 12 내지 60시간, 6 내지 58시간, 6 내지 55시간, 6 내지 53시간, 6 내지 50시간, 8 내지 60시간, 8 내지 58시간, 8 내지 55시간, 8 내지 53시간, 8 내지 50시간, 10 내지 60시간, 10 내지 58시간, 10 내지 55시간, 10 내지 53시간, 10 내지 50시간 배양하는 것일 수 있다. 상기 배양시간이 상기 수치 초과 또는 미만인 경우, 퍼포린의 안정화가 충분히 이루어지지 않는 것일 수 있다.
상기 방법은 양이온성 물질 및 면역세포를 배양함으로서, 퍼포린 단백질의 안정화를 증가시키고 세포 내 축척을 유도함으로서, 결과적으로 세포사멸능을 증진시키는 것일 수 있다.
다른 양상은 세포 내 퍼포린 단백질 증가에 사용하기 위한 양이온성 물질을 유효성분으로 포함하는 조성물의 용도를 제공한다.
다른 양상은 면역세포 활성 증가에 사용하기 위한 양이온성 물질을 유효성분으로 포함하는 조성물의 용도를 제공한다.
다른 양상은 암의 예방 또는 치료용 의약의 제조에 사용하기 위한 양이온성 물질을 유효성분으로 포함하는 조성물의 용도를 제공한다.
다른 양상은 세포 내 퍼포린 단백질 증가에 사용하기 위한 양이온성 물질의 용도를 제공한다.
상기 양이온성 물질, 폴리에테르아미드, 면역세포, 활성 촉진, 개체, 투여, 예방 또는 치료 등의 용어들의 의미는 전술한 범위 내일 수 있다.
일 양상에 따른 양이온성 물질을 유효성분으로 포함하는 조성물에 의하면, 퍼포린 단백질의 안정도를 증가시켜 세포 내 퍼포린 단백질의 축척을 유도함으로서 면역세포의 활성을 증가시키는 효과가 있다.
도 1은 폴리에테르아미드를 자연살해세포에 처리한 결과를 나타낸 모식도이다.
도 2는 자연살해세포에 분지된 또는 선형의 폴리에테르아미드를 처리한 결과, 자연살해세포의 활성도를 나타낸 도이다.
도 3은 유방암세포에 25K 분자량의 폴리아틸렌아민을 농도별로 처리한 결과, 자연살해세포의 활성도를 나타낸 도이다.
도 4는 유방암세포에 25K 분자량의 폴리아틸렌아민을 농도별로 처리한 결과, 자연살해세포의 활성도를 정량화하여 나타낸 그래프이다.
도 5는 유방암 세포 및 25K 분자량의 폴리아틸렌아민 5 ㎍/㎖을 E:T 비율별로 배양한 결과, 유방암 세포의 세포 사멸 정도를 나타낸 도이다.
도 6은 유방암 세포 및 25K 분자량의 폴리아틸렌아민 5 ㎍/㎖을 E:T 비율별로 배양한 결과, 유방암 세포의 세포 사멸 정도를 정량적으로 나타낸 그래프이다.
도 7은 폴리에테르아미드의 양이온성을 저해하여 자연살해세포에 처리한 결과, 자연살해세포의 활성도를 나타낸 도이다.
도 8은 폴리에테르아미드의 양이온성을 저해하여 자연살해세포에 처리한 결과, 자연살해세포의 활성도를 정량화하여 나타낸 그래프이다.
도 9는 폴리에테르아미드 5 ㎍/㎖ 및 자연살해세포를 시간별로 배양한 결과, 그랜자임 단백질의 발현 변화를 나타낸 그래프이다.
도 10은 폴리에테르아미드 5 ㎍/㎖ 및 자연살해세포를 시간별로 배양한 결과, 퍼포린 단백질의 발현 변화를 나타낸 그래프이다.
도 11은 폴리에테르아미드 5 ㎍/㎖ 및 자연살해세포를 시간별로 배양한 결과, 그랜자임 단백질 및 퍼포린 단백질의 발현 변화를 나타낸 이미지이다.
도 12는 폴리에테르아미드 5 ㎍/㎖ 및 자연살해세포를 48시간 동안 배양한 결과, 그랜자임 및 퍼포린 단백질의 발현 변화를 나타낸 도이다.
도 13은 폴리에테르아미드 및 자연살해세포에 MG132를 처리하여 배양한 결과 퍼포린 단백질의 발현 변화를 나타낸 이미지이다.
이하 본 발명을 실시예를 통하여 보다 상세하게 설명한다. 그러나, 이들 실시예는 본 발명을 예시적으로 설명하기 위한 것으로 본 발명의 범위가 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.
실시예 1. 재료 및 동물 모델의 준비
1.1 화합물의 준비과정 또는 구입처
Branched form의 Polyethylenimine 을(시그마-알드리치, Sigma 408727) 증류수에 5mg/ml로 희석하여 용량에 맞게 사용하였다.
1.2 NK 세포의 준비과정
Alpha-MEM media(gibco12561-056) media base에 12.5% FBS(gibco 16000-044), 1% P/S(gibco15140-122), 2 mM L-glutamine(gibco25030-081), 0.2 mM inositol (Sigma I7508); 0.1 mM 2-mercaptoethanol; 0.02 mM folic acid(Sigma F8785) 를 균일하게 희석한 후 filter(corning 430758)를 사용하여 멸균한뒤 사용하였다. NK 세포는 T75 flask에서 3X105/ml로 37도씨 CO2 5% 인큐베이터 안에서 배양하였다.
1.3 인 비트로에서 자연살해세포의 활성 유도능의 분석 방법
초록 계열의 형광을 표지한 MDA MB 231세포와 자연살해세포를 1.5 ml의 eppendorf tube에 각각의 비율로 넣고 혼합하여 37도씨 CO2 5% 인큐베이터에서 4시간 반응 시켰다. 반응이 끝난 후에는 7AAD (Invitrogen A1310)로 20분간 염색하고 고정하였다. 유세포 분석기를 통해 혼합되어있는 세포들중 초록 형광의 유무도 두 세포군집을 구분한 뒤 죽은세포의 비율을 측정, 그룹별로 비교하여 활성을 분석하였다.
1.4 웨스턴 블롯 분석 방법
자연살해세포의 단백질 추출물을 10% SDS-PAGE를 사용하여 분리하고, 폴 리비닐리덴 디플루오라이드 막(polyvinylidene difluoride amersham Biosciences) 으로 120V 조건하에 90분 동안 transfer 하였다. 3% 보바인 세럼 알부민(bovine serum albumin, BSA) 를 함유하는 트리스-완충 생리식 염수-트윈(Tris-buffered saline-Tween)[TBST; 0.2 M NaCl, 0.1% Tween-20, 및 10 mM Tris (pH 7.4)] 내에서 상기 막을 1시간 동안 blocking 하였다. blocking 된 막을 래빗 다클론 항-Perforin 항체(1:1000; ab180773, abcam) 또는 래빗 단일클론 항-GAPDH 항체(1:1000; 3683S, Cell signaling)와 함께 인큐베이션하였다. 인큐베이션 후, 막을 항-래빗 다클론 IgG(1:5000; #7074, Cell Signaling Technology) 1시간 동안 실온에서 인큐베이션하였다. 각각의 단계 후에, 막을 TBST로 수차례 세척하였고, 결합된 항체를 화학발광 검출 시스템(enhanced chemiluminescence detection system)( Thermo Fisher Scientific Biosciences)을 사용하여 제조사 지침에 따라 검출하였다
실시예 2. 폴리에테르아미드의 구조별 자연살해세포 활성 유도능 확인
폴리에테르아민의 분자량 및 형태별 자연살해세포 활성 유도능을 확인하기 위하여, 상기 실시예 1의 자연살해세포에 분자량 및 형태별 폴리에테르아미드 또는 비교군을 혼합하여 48시간 동안 배양하였다.
실험에 사용된 분자량 및 형태별 폴리에테르아미드 또는 비교 화합물의 분자량, 전하, 및 구조를 하기 표 1에 나타내었다.
구체적으로, 하기 표 1에 나타낸 것과 같이, 분자량 1.8K의 분지된 폴리에테르아미드, 분자량 10K의 분지된 폴리에테르아미드, 분자량 25K의 선형 폴리에테르아미드, 분자량 25K의 분지된 폴리에테르아미드, 분자량 750K의 감마-PGA(gamma-PGA), 분자량 5K의 글리콜 키토산, 분자량 4.5K의 프로타민(Protamine)을 자연살해세포와 혼합하여 48시간 동안 배양하였다. 상기 분지된 폴리에테르아민은 일차, 이차 및 삼차 아민을 사용하였으며, 선행의 폴리에테르아민은 2차 아민을 사용하였다.
번호 화합물명 (Mw) 분자량 전하 아민의 구조
1 Branched PET (25K) 25,000 (+ + +) 1차, 2차 및 3차
2 Linear PEL (25K) 25,000 (+) 2차
3 Branched PET (10K) 10,000 (+) 1차, 2차 및 3차
4 Branched PET (1.8K) 1,800 (+) 1차, 2차 및 3차
5 Gamma-PGA 750,000 (-) -
6 Glycol Chitosan 5,000 (+) 1차 및 2차
7 Protamine 4,500 (+) 1차 및 2차
다음으로, 배양한 자연살해세포를 세척하고, 신선한 배양액에 재배치(resuspension)시켰다. 이후, 상기 자연살해세포와 삼중음성유방암세포주인 MDA_MB231을 E:T 비율 10:1으로 혼합하여 4시간 배양하였다. 마지막으로, 상기 배양된 세포를 CFSE-7AAD 분석법을 이용하여 표적세포의 세포사멸 정도를 정량적으로 분석하였다.
도 2는 자연살해세포에 분지된 또는 선형의 폴리에테르아미드를 처리한 결과, 자연살해세포의 활성도를 나타낸 도이다.
그 결과, 도 2에 나타낸 것과 같이, 비교 대상인 타겟만 있는 경우 (1.32), NK 세포만 있는 경우 (21.36), 분자량 1.8K의 분지된 폴리에테르아미드를 혼합한 경우 (22.99), 분자량 10K의 분지된 폴리에테르아미드를 혼합한 경우 (24.07), 분자량 25K의 선형 폴리에테르아미드를 혼합한 경우 (26.12), 분자량 750K의 감마-PGA(gamma-PGA)를 혼합한 경우 (23.08), 분자량 5K의 글리콜 키토산을 혼합한 경우 (32.14), 분자량 4.5K의 프로타민(Protamine)을 혼합한 경우 (25.31)는 세포사멸 정도가 낮았다. 반면, 자연살해세포 및 분자량 25K의 분지된 폴리에테르아미드를 배양하였을 경우 (Branched PET (25K), (59.28))가 비교군에 비해 삼중음성암세포의 세포사멸정도가 높았다. 이러한 결과는, 10K이상의, 분지된 형태의 폴리에테르아미드를 사용하였을 경우다 타 화합물과 비교하여, 자연살해세포의 활성을 증진시킴을 의미한다.
실시예 3. 폴리에테르아미드의 농도별 암세포 사멸능 확인
폴리에테르아민의 농도별 자연살해세포 활성 유도능을 확인하기 위하여, 상기 실시예 1의 자연살해세포에 분자량 25K의 폴리에테르아미드를 농도별(0 ㎍/㎖, 0.63 ㎍/㎖, 1.25 ㎍/㎖, 2.5 ㎍/㎖, 또는 5 ㎍/㎖)로 처리하여 48시간 동안 배양하였다.
다음으로, 배양한 자연살해세포를 세척하고, 신선한 배양액에 재배치(resuspension)시켰다. 이후, 상기 자연살해세포와 삼중음성유방암세포주인 MDA_MB231을 E:T 비율 10:1으로 혼합하여 4시간 배양하였다. 마지막으로, 상기 배양된 세포를 CFSE-7AAD 분석법을 이용하여 표적세포의 세포사멸 정도를 정량적으로 분석하였다.
도 3은 유방암세포에 25K 분자량의 폴리아틸렌아민을 농도별로 처리한 결과, 자연살해세포의 활성도를 나타낸 도이다. 비교 대상인 타겟만 있는 경우 (5.0), 없는 경우 (N, 9.1), 0.63 ㎍/㎖의 농도로 처리한 경우 (14.6), 1.25㎍/㎖의 농도로 처리한 경우 (24.2), 2.5 ㎍/㎖의 농도로 처리한 경우 (32.8), 5 ㎍/㎖의 농도로 처리한 경우 (55.1)의 활성도를 나타냈다.
도 4는 유방암세포에 25K 분자량의 폴리아틸렌아민을 농도별로 처리한 결과, 자연살해세포의 활성도를 정량화하여 나타낸 그래프이다.
그 결과, 도 3 및 4에 나타낸 것과 같이, 폴리이틸렌이민의 농도가 증가할수록, 세포 사멸능은 상승하고, 5 ㎍/㎖의 농도에서 NK세포의 활성을 90%이상 유지하면서, 가장 높은 면역활성을 나타내며, 10 ㎍/㎖이상의 농도에서는 세포 사멸능이 현저하게 하락하는 것을 확인할 수 있었다.
실시예 4. 폴리에테르아미드 및 유방암세포의 비율별 세포 사멸능 확인
폴리에테르아민 및 암세포의 혼합 비율별 암세포 사멸능을 확인하기 위하여, 상기 실시예 1의 자연살해세포에 분자량 25K, 5㎍/㎖ 의 폴리에테르아미드를 농도별로 처리하고, 처리한 자연살해세포를 삼중음성유방암 세포 MDA-MB231와 E:T 비율별(1.25:1, 2.5:1, 5:1 또는 10:1)로 48시간 동안 배양하였다.
다음으로, 배양한 자연살해세포를 세척하고, 신선한 배양액에 재배치(resuspension)시켰다. 이후, 상기 자연살해세포와 삼중음성유방암세포주인 MDA_MB231을 E:T 비율 10:1으로 혼합하여 4시간 배양하였다. 마지막으로, 상기 배양된 세포를 CFSE-7AAD 분석법을 이용하여 표적세포의 세포사멸 정도를 정량적으로 분석하였다.
도 5는 유방암 세포 및 25K 분자량의 폴리아틸렌아민 5 ㎍/㎖을 E:T 비율별로 배양한 결과, 유방암 세포의 세포 사멸 정도를 나타낸 도이다. 비교 대상인 타겟만 있는 경우에는 수치가 2.58로 나타났다. 처리하지 않은 군 (Non-treat)는 E:T Ratio 1.25의 경우 9.80, E:T Ratio 2.5의 경우 9.53, E:T Ratio 5의 경우 11.92, E:T Ratio 10의 경우 17.56을 나타냈다. PEI를 5 ㎍/㎖의 농도로 처리한 군은 E:T Ratio 1.25의 경우 36.55, E:T Ratio 2.5의 경우 39.90, E:T Ratio 5의 경우 43.82, E:T Ratio 10의 경우 49.55을 나타냈다.
도 6은 유방암 세포 및 25K 분자량의 폴리아틸렌아민 5 ㎍/㎖을 E:T 비율별로 배양한 결과, 유방암 세포의 세포 사멸 정도를 정량적으로 나타낸 그래프이다.
그 결과, 도 5 및 6에 나타낸 것과 같이, 모든 E:T 비율의 자연살해세포의 활성이 무처리군보다 높았으며, 특히 E:T 비율이 10:1인 경우가 가장 우수하였다.
실시예 5. 폴리에테르아미드의 양이온-의존성 분석
폴리에테르아민의 전하에 대한 자연살해세포 활성 유도능을 확인하기 위하여, 상기 실시예 1의 나노입자에 음이온성을 띄는 hyalunic acid를 코팅하였다.
구체적으로 Zn/Fe 나노입자에 electric interaction에 의한 방법으로 양이온성 폴리에테르아미드를 먼저 결합시키고, 그 위에 음이온성 hyalunic acid를 양이온성 폴리에테르아미드와 결합시켰으며, 나노입자의 전하(zeta potential)을 측정하여, 음이온성을 확인하였다.
다음으로, 배양한 자연살해세포를 세척하고, 신선한 배양액에 재배치(resuspension)시켰다. 이후, 상기 자연살해세포와 삼중음성유방암세포주인 MDA_MB231을 E:T 비율 10:1으로 혼합하여 4시간 배양하였다. 마지막으로, 상기 배양된 세포를 CFSE-7AAD 분석법을 이용하여 표적세포의 세포사멸 정도를 정량적으로 분석하였다.
도 7은 폴리에테르아미드의 양이온성을 저해하여 자연살해세포에 처리한 결과, 자연살해세포의 활성도를 나타낸 도이다. MDA-MB-231의 경우 1.02, MDA-MB-231 및 NK-92MI인 경우 18.47, MDA-MB-231 및 NK-92MI와 aNP인 경우 18.21의 수치를 나타냈다.
도 8은 폴리에테르아미드의 양이온성을 저해하여 자연살해세포에 처리한 결과, 자연살해세포의 활성도를 정량화하여 나타낸 그래프이다.
그 결과, 도 7 및 8에 나타낸 것과 같이, 음이온성 코팅으로 양이온성을 감소시킨 경우, 자연살해세포의 활성화능이 저해된 것을 볼 수 있었다. 이러한 결과는 폴리에테르아민의 자연살해세포 활성화능이 양이온성에 의존함을 의미한다.
실시예 6. 폴리에테르아미드의 퍼포린 단백질 안정화 능력 분석
6.1 배양 시간별 안정화 능력 분석
폴리에테르아민이 세포 내 퍼포린 양을 증가시키는지 여부를 확인하기 위하여, 상기 실시예 1의 자연살해세포에 5 ㎍/㎖의 폴리에테르아미드를 처리하고, 시간별(0시간, 3시간, 6시간, 12시간, 24시간 또는 48시간)로 동안 배양한 다음, 배양한 자연살해세포에 웨스턴 블롯을 수행하여 그랜자임 B 및 퍼포린 단백질의 양을 확인하였다.
도 9는 폴리에테르아미드 5 ㎍/㎖ 및 자연살해세포를 시간별로 배양한 결과, 그랜자임 단백질의 발현 변화를 나타낸 그래프이다.
도 10은 폴리에테르아미드 5 ㎍/㎖ 및 자연살해세포를 시간별로 배양한 결과, 퍼포린 단백질의 발현 변화를 나타낸 그래프이다.
도 11은 폴리에테르아미드 5 ㎍/㎖ 및 자연살해세포를 시간별로 배양한 결과, 그랜자임 단백질 및 퍼포린 단백질의 발현 변화를 나타낸 이미지이다.
도 12는 폴리에테르아미드 5 ㎍/㎖ 및 자연살해세포를 48시간 동안 배양한 결과, 그랜자임 및 퍼포린 단백질의 발현 변화를 나타낸 도이다.
그 결과, 도 12에 나타낸 것과 같이, 배양된 자연살해세포는 그랜자임 B의 단백질 양에는 변화가 없었으나, 퍼포린 단백질 양은 유의미하게 상승한 것을 확인할 수 있었다. 특히, 도 9 내지 11에 나타낸 것과 같이, 48시간 동안 배양한 경우, 48 시간 미만으로 배양한 세포와 비교하여 퍼포린 단백질의 양이 현저하게 증가한 것을 확인할 수 있었다. 이러한 결과는, 폴리에테르아민이 퍼포린 단백질의 안정화를 유도하여 양을 증가시킴으로서, 결과적으로 자연살해세포의 활성화를 유도함을 의미한다.
6.2 세포내 퍼포린 양의 퍼포린 안정도 의존성 확인
상기 실시예 6.2의 세포 내 퍼포린 양 증가가, 세포 내 퍼포린 안정화 정도와 연관성이 있는지 확인하기 위하여, 상기 실시예 1의 자연살해세포에 단백질 분해 저해제인 MG132를 처리하여 세포 내 단백질 분해를 막은 후, 배양하였다. 이후, 배양한 자연살해세포에 웨스턴 블롯을 수행하여 그랜자임 B 및 퍼포린 단백질의 양을 확인하였다.
도 13은 폴리에테르아미드 및 자연살해세포에 MG132를 처리하여 배양한 결과 퍼포린 단백질의 발현 변화를 나타낸 이미지이다.
그 결과, 도 13에 나타낸 것과 같이, 세포내 단백질 분해를 막은 후, 퍼포린 단백질량을 분석한 결과, MG132 처리에 의해 퍼포린 단백질량이 증가함을 확인할 수 있었다. 이러한 결과는, 폴리에테르아민 처리가 단백질 안정도를 증가시키고, 결과적으로 세포 내 퍼포린 단백질 양이 증가하므로, MG132 처리에 의해 퍼포린 단백질량이 추가적으로 증가하지 않음을 확인한 것이다. 따라서, 자연살해세포 내 퍼포린 양은 단백질 안정도에 따라 조절되는 것임을 의미한다.

Claims (12)

  1. 양이온성 물질을 유효성분으로 포함하는 세포 내 퍼포린 단백질 증가용 조성물.
  2. 청구항 1에 있어서, 상기 세포는 면역 세포인 것인, 세포 내 퍼포린 단백질 증가용 조성물.
  3. 청구항 1에 있어서, 상기 양이온성 물질은 폴리에테르아미드(Polyetherimide: PEI)인 것인, 세포 내 퍼포린 단백질 증가용 조성물.
  4. 청구항 1에 있어서, 상기 폴리에테르아미드의 분자량은 10,000 mM 내지 30,000 mM 인 것인, 세포 내 퍼포린 단백질 증가용 조성물.
  5. 청구항 1에 있어서, 상기 폴리에테르아미드는 분지된 것인, 세포 내 퍼포린 단백질 증가용 조성물.
  6. 청구항 1에 있어서, 상기 폴리에테르아미드의 함량은 1 ㎍/㎖ 내지 10 ㎍/㎖ 인 것인, 세포 내 퍼포린 단백질 증가용 조성물.
  7. 양이온성 물질을 유효성분으로 포함하는 면역세포 활성 증진용 조성물.
  8. 양이온성 물질 및 면역세포를 배양하는 단계를 포함하는 자연살해세포의 활성을 촉진하는 배양 방법.
  9. 청구항 1의 조성물을 개체에 투여하는 단계를 포함하는 암의 예방 또는 치료하는 방법.
  10. 세포 내 퍼포린 단백질 증가에 사용하기 위한 청구항 1의 조성물의 용도.
  11. 면역세포 활성 증가에 사용하기 위한 청구항 1의 조성물의 용도.
  12. 세포 내 퍼포린 단백질 증가에 사용하기 위한 양이온성 물질의 용도.
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