WO2021194180A1 - 이중 특이적 핵산분자를 포함한 항암 바이러스의 구조 - Google Patents

이중 특이적 핵산분자를 포함한 항암 바이러스의 구조 Download PDF

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박성훈
찰스고흐너 피터
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최청갑
엄기환
이의진
이형빈
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㈜큐리진
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    • C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/178—Oligonucleotides characterized by their use miRNA, siRNA or ncRNA

Definitions

  • the present invention relates to an antitumor adenovirus and an anticancer composition comprising the same.
  • Cancer is one of the diseases that cause the highest number of deaths worldwide, and the development of innovative cancer treatments can reduce medical costs and create high added value at the same time.
  • molecular therapeutics that can overcome existing anticancer drug resistance accounted for $17.5 billion in 7 major countries (US, Japan, France, Germany, Italy, Spain, UK), and in 2018, about It is expected to show a growth rate of 9.5% compared to 2008, occupying a market size of about $45 billion.
  • Cancer treatment is divided into surgery, radiation therapy, chemotherapy, and biological therapy.
  • chemotherapy is a treatment that suppresses or kills cancer cell proliferation as a chemical substance.
  • RNA interference (hereinafter referred to as RNAi) has been found to act on sequence-specific mRNA in various types of mammalian cells since its role was discovered (Silence of the transcripts: RNA interference in medicine. J Mol Med (2005) 83: 764773).
  • RNAi is a small interfering ribonucleic acid short interfering RNA (small interfering RNA, hereinafter referred to as siRNA) having a double helix structure of 21-25 nucleotides in size is specifically bound to an mRNA transcript having a complementary sequence. It is a phenomenon in which the expression of a specific protein is suppressed by decomposing the transcriptome.
  • RNA double-stranded is processed by an endonuclease called Dicer and converted into 21 to 23 double-stranded (base pair, bp) siRNA, which binds to RISC (RNA-induced silencing complex).
  • RISC RNA-induced silencing complex
  • the guide (antisense) strand recognizes and degrades the target mRNA to sequence-specifically inhibit the expression of the target gene (NUCLEIC-ACID THERAPEUTICS: BASIC PRINCIPLES AND RECENT APPLICATIONS. Nature Reviews Drug Discovery. 2002. 1, 503 -514).
  • siRNA for the same target gene has a superior inhibitory effect on mRNA expression in vitro and in vivo compared to antisense oligonucleotide (ASO), and the effect lasts for a long time.
  • ASO antisense oligonucleotide
  • the market for RNAi technology-based therapeutics, including siRNA, has been analyzed to form a total of more than 12 trillion won in the future world market size around 2020. It is being evaluated as a next-generation gene therapy technology that can treat difficult-to-treat diseases.
  • siRNA binds to the target mRNA and regulates the expression of the target gene in a sequence-specific manner. Compared to the development period and development cost of (Progress Towards in Vivo Use of siRNAs. MOLECULAR THERAPY. 2006 13(4):664-670).
  • this ribonucleic acid-mediated interference phenomenon proposes a solution to the problem that occurs in the development of conventional chemical synthesis drugs, while selectively inhibiting the expression of specific proteins at the transcript level, and a study to use them in the development of therapeutic agents for various diseases, especially tumor therapeutics is in progress
  • siRNA therapeutics have the advantage that side effects can be predicted because the target is clear, but this target specificity is a disease caused by problems with various genes. may be the cause
  • the present invention provides an antitumor adenovirus comprising a nucleotide sequence having a first nucleic acid as a target sequence and a nucleotide sequence having a second nucleic acid as a target sequence.
  • the present invention provides a composition for treating cancer comprising the anti-tumor adenovirus.
  • the double-stranded siRNA of the present invention simultaneously inhibits the expression of the first nucleic acid and the second nucleic acid, thereby promoting apoptosis of cancer cells, and exhibiting more remarkable anticancer activity than treatment with each siRNA together.
  • has an effect of synergistically enhancing cancer cell death in the combined treatment of, and adenovirus containing an expression cassette encoding an shRNA containing the same and an adenovirus containing an hTERT promoter avoids an immune response in the body and is specifically delivered to cancer cells, resulting in systemic therapeutic effect It can be delivered locally, has excellent selectivity, and exhibits remarkable anticancer effects even with minimally invasive treatment.
  • FIG. 1 is a diagram illustrating a map of a vector for intracellular expression of shRNA including a dual target siRNA set of the present invention.
  • FIG. 2 is a view confirming the effect of inhibiting mTOR or STAT3 gene expression by the double-target double-stranded siRNA of sets 1 to 9 of the present invention.
  • FIG 3 is a diagram confirming the effect of suppressing the expression of the BCL2 gene (left) and the BI-1 gene (right) by the dual target siRNA set 10 (si-BB1) of the present invention.
  • FIG. 4 is a diagram confirming the effect of inhibiting the expression of the BCL2 gene and the BI-1 gene by the dual target siRNA sets 11 to 15 of the present invention:
  • si-BB2 to si-BB6 siRNA sets 11 to 15 of the present invention.
  • FIG. 5 is a diagram confirming the effect of inhibiting the expression of AR gene and mTOR gene by the dual target siRNA set 16 of the present invention in a cancer cell line:
  • siAR siRNA for AR
  • simTOR siRNA for mTOR
  • si-AT1 AR and mTOR dual target siRNA set of the present invention 16.
  • FIG. 6 shows A549 by dual target siRNA sets 17-28 of the present invention. It is a diagram confirming the effect of suppressing the expression of AR gene and mTOR gene in cell lines:
  • si-AT2 to si-AT13 siRNA sets 17 to 28 of the present invention.
  • FIG. 7 is a diagram confirming the effect of inhibiting the expression of c-MET and PD-L1 genes by a double-target siRNA (double strand) set capable of simultaneously inhibiting c-MET and PD-L1 of the present invention in various cancer cell lines.
  • FIG. 8 is a diagram confirming the expression levels of mTOR and STAT3 by a vector comprising a sequence encoding the TTGGATCCAA loop shRNA sequence of SEQ ID NO: 66 or the TTCAAGAGAG loop shRNA sequence of SEQ ID NO: 67 according to the amount of DNA in the shRNA expression cassette.
  • FIG. 9 is a diagram comparing the gene expression inhibition effect of two single target siRNAs connected in series with the dual target shRNA of the present invention.
  • FIG. 10 is a diagram confirming the cell viability of human lung cancer cell line A549 cells when mTOR and STAT3 are simultaneously inhibited with the dual target siRNA of the present invention (dual target siRNA of sets 1 to 9).
  • FIG. 11 is a diagram confirming the cell viability of human lung cancer cell line A549 cells when mTOR and STAT3 are simultaneously inhibited with the dual target siRNA of the present invention after cisplatin treatment.
  • FIG. 12 is a diagram confirming the cell viability of human lung cancer cell line A549 cells when mTOR and STAT3 are simultaneously inhibited with the dual target siRNA of the present invention after paclitaxel treatment.
  • FIG. 13 is a diagram confirming the cell viability of human lung cancer cell line A549 cells when mTOR and STAT3 are simultaneously inhibited with the dual target siRNA of the present invention after 5-FU (5-fluorouracil) treatment.
  • FIG. 14 is a diagram confirming the death of cancer cells by the combination treatment of the dual target siRNA set of the present invention and an anticancer agent:
  • FIG. 15 is a diagram confirming the cancer cell killing effect of ABT-737, a Bcl2 inhibitor used as an anticancer agent, and the dual target siRNA set 10 (si-BB1) of the present invention, and the synergistic effect of their combined treatment.
  • FIG. 16 is a diagram comparing the cancer cell killing effect of dual target siRNA set 10 (si-BB1) and an anticancer agent in combination with a group treated with siRNA for BCL2 gene and siRNA for BI-1 gene.
  • 17 is a diagram confirming the cancer cell killing effect by the combined treatment of the anticancer agent of dual target siRNA set 1 in cancer cell lines:
  • si-AT1 AR and mTOR dual target siRNA set 16 of the present invention
  • A DU145 cell line
  • FIG. 18 is a diagram schematically illustrating the structure of the adenovirus of the present invention.
  • FIG. 19 is a diagram showing a vector map of the adenoviral vector of the present invention:
  • Bs-shRNA a sequence insertion site encoding the dual target shRNA of the present invention.
  • 20 is a diagram confirming the effect of inhibiting the expression of mTOR and STAT3 genes by the recombinant adenovirus CA102 of the present invention, which encodes and expresses the hTERT promoter and dual target shRNA, in bladder cancer cell lines T24 and 253JBV.
  • FIG. 21 is a diagram confirming the effect of inhibiting the expression of mTOR and STAT3 genes by the recombinant adenovirus CA102 of the present invention, which encodes and expresses the hTERT promoter and dual target shRNA, in the head and neck cancer cell lines FaDu and HSC-2.
  • FIG. 22 is a diagram confirming the effect of inhibiting the expression of mTOR and STAT3 genes by the recombinant adenovirus CA102 of the present invention, which encodes and expresses the hTERT promoter and dual target shRNA, in skin squamous cell carcinoma cell lines A431 and HSC-5.
  • FIG. 23 is a diagram confirming the effect of inhibiting the expression of mTOR and STAT3 genes at the protein level by the recombinant adenovirus CA102 of the present invention in bladder cancer cell lines T24 and 253J-BV.
  • 24 is a diagram confirming the effect of inhibiting the expression of BCL2 and BI-1 genes by the recombinant adenovirus CA101 of the present invention including the hTERT promoter and the dual target shRNA expression cassette.
  • 25 is a diagram confirming the effect of inhibiting the expression of AR and mTOR genes by the recombinant adenovirus CA103 of the present invention including the hTERT promoter and the dual target shRNA expression cassette in the prostate cancer cell line LNcap.
  • 26 is a diagram confirming the expression inhibition effect of AR and mTOR genes by the recombinant adenovirus CA103 of the present invention containing the hTERT promoter and the dual target shRNA expression cassette in vitro in prostate cancer cell lines C42B and 22Rv1.
  • FIG. 27 is a diagram confirming in vivo the effect of inhibiting the expression of AR and mTOR genes by the recombinant adenovirus CA103 of the present invention including the hTERT promoter and the dual target shRNA expression cassette.
  • FIG. 28 is a diagram confirming the effect of suppressing the expression of c-MET and PD-L1 genes by the recombinant adenovirus CA104 of the present invention including the hTERT promoter and the dual target shRNA expression cassette.
  • 29 is a diagram confirming the killing effect of a cancer cell line by the recombinant adenovirus CA101 of the present invention including the hTERT promoter and the dual target shRNA expression cassette.
  • FIG. 30 is a diagram confirming the killing effect of bladder cancer cell lines RT4, T24 and 253J-BV by the recombinant adenovirus CA102 of the present invention.
  • FIG. 31 is a diagram confirming the killing effect of the head and neck cancer cell lines FaDu and HSC-2 by the recombinant adenovirus CA102 of the present invention.
  • FIG. 32 is a diagram confirming the killing effect of the skin squamous cell carcinoma cell lines A431 and HSC-5 by the recombinant adenovirus CA102 of the present invention.
  • FIG 33 is a diagram confirming the killing effect of the cancer cell line LNcap by the recombinant adenovirus CA103 of the present invention including the hTERT promoter and the dual target shRNA expression cassette.
  • FIG. 34 is a diagram confirming the killing effect of cancer cell lines C42B and 22Rv1 cell lines by the recombinant adenovirus CA103 of the present invention containing the hTERT promoter and the dual target shRNA expression cassette.
  • 35 is a view confirming the anticancer effect of the recombinant adenovirus CA102 of the present invention on bladder cancer cells (253J-BV) in vivo.
  • FIG. 36 is a diagram confirming the anticancer effect of the recombinant adenovirus CA102 of the present invention on head and neck cancer cells (FaDu) in vivo.
  • FIG. 37 is a diagram confirming the anticancer effect of the recombinant adenovirus CA102 of the present invention on tumors (bladder cancer) formed in vivo.
  • FIG. 38 is a diagram confirming the anticancer effect of CA102 according to the number of administrations on tumors (bladder cancer) formed in vivo.
  • 39 is a diagram confirming the effect of treating glioblastoma according to the dose of recombinant adenovirus CA102 of the present invention in vivo.
  • FIG. 40 is a diagram confirming the prostate cancer treatment effect in vivo by the recombinant adenovirus CA103 of the present invention comprising the hTERT promoter and the dual target shRNA expression cassette.
  • 41 is a view confirming the bladder cancer treatment effect of the recombinant adenovirus CA102 of the present invention and the combined treatment with cisplatin in vivo.
  • nucleic acids are written in a 5' ⁇ 3' direction from left to right.
  • Numerical ranges recited within the specification are inclusive of the numbers defining the range, including each integer or any non-integer fraction within the defined range.
  • the present invention provides a human telomere promoter (hTERT); And it relates to an antitumor adenovirus comprising an expression cassette comprising a nucleotide sequence having a first nucleic acid as a target sequence and a nucleotide sequence having a second nucleic acid as a target sequence.
  • hTERT human telomere promoter
  • the nucleotide sequence targeting the first nucleic acid as the target sequence and the nucleotide sequence targeting the second nucleic acid may be partially or 100% reverse complementary sequences, and when expressed in vivo, target the first nucleic acid A sequence that targets the first nucleic acid and a sequence that targets the second nucleic acid form a double-stranded, preferably shRNA.
  • the nucleotide sequence targeting the first nucleic acid and the nucleotide sequence targeting the second nucleic acid may partially or 100% complementarily bind to form a double strand during gene expression.
  • the human telomere promoter may be operably linked with an endogenous gene of an adenovirus.
  • operably linked refers to a functional linkage between a gene expression control sequence (eg, an array of promoter, signal sequence, or transcriptional regulatory factor binding sites) and another gene sequence, whereby the Regulatory sequences will control the transcription and/or translation of the other gene sequences.
  • a gene expression control sequence eg, an array of promoter, signal sequence, or transcriptional regulatory factor binding sites
  • the hTERT promoter may include the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 74.
  • the hTERT promoter sequence may include various known modified sequences.
  • the endogenous gene of adenovirus has the structure of 5'ITR-C1-C2-C3-C4-C5 3'ITR; wherein C1 comprises E1A (SEQ ID NO: 75), E1B (SEQ ID NO: 77) or E1A-E1B; wherein C2 includes E2B-L1-L2-L3-E2A-L4; wherein C3 does not include E3 or includes E3; wherein C4 includes L5; and C5 may not include E4 or may include E4, and may include the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 78.
  • the adenovirus may have a partial deletion of the E3 region, and the deleted nucleotide sequence may include the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 82.
  • the expression cassette may be located at the C3 region of the endogenous gene of the adenovirus.
  • the hTERT promoter may be operably linked with E1A and E1B of endogenous genes of adenovirus.
  • an IRES sequence (SEQ ID NO: 76) may be further included between E1A and E1B of the endogenous gene of adenovirus.
  • the expression cassette is capable of encoding and expressing shRNA.
  • the shRNA may simultaneously inhibit the expression of the first nucleic acid and the second nucleic acid.
  • the antitumor adenovirus of the present invention can inhibit expression by degrading mRNA of a nucleic acid or inhibiting translation by RNA interference.
  • the expression cassette of the present invention comprises a double-stranded siRNA in which a sense strand specific for a first nucleic acid or a second nucleic acid and a second nucleic acid or an anti-sense strand specific for the first nucleic acid form partially complementary binding.
  • the first nucleic acid and the second nucleic acid can be simultaneously inhibited by expression.
  • the term “repression of expression” means to cause a decrease in expression or translation of a target gene, and preferably means that the expression of the target gene becomes undetectable or exists at an insignificant level.
  • siRNA small interfering RNA
  • siRNA refers to a short double-stranded RNA capable of inducing an RNA interference (RNAi) phenomenon through cleavage of a specific mRNA.
  • RNAi RNA interference
  • siRNA is composed of a sense RNA strand having a sequence homologous to the mRNA of a target gene and an antisense RNA strand having a sequence complementary thereto.
  • the antisense RNA strand is a second nucleic acid or siRNA specific to the first nucleic acid (antisense strand to the second nucleic acid or first nucleic acid) of the siRNA may simultaneously inhibit the first nucleic acid or the second nucleic acid or the expression thereof.
  • RNA short hairpin RNA
  • shRNA short hairpin RNA
  • RNA refers to a single-stranded RNA that partially includes a palindromic nucleotide sequence, has a double-stranded structure in the 3' region, forms a hairpin-like structure, and is expressed in cells It means RNA that can be converted into siRNA after being cut by dicer, a type of RNase present in the cell, and the length of the double-stranded structure is not particularly limited, but is preferably 10 nucleotides or more, more preferably is 20 nucleotides or more.
  • the shRNA may be included in an expression cassette, and the shRNA is TTGGATCCAA (TTGGATCCAA) 3' of the sense strand after converting U to T in the set sequence consisting of the siRNA antisense strand and the sense strand for each gene. loop) or TTCAAGAGAG (TTCAAGAGAG loop), an antisense strand and TT are linked to construct an expression cassette encoding an shRNA, and it can be produced by expressing it in a cell.
  • TTGGATCCAA TTGGATCCAA
  • TTCAAGAGAG loop an antisense strand and TT are linked to construct an expression cassette encoding an shRNA, and it can be produced by expressing it in a cell.
  • the first nucleic acid may include a nucleotide sequence having at least 60% complementarity with the reverse complementary sequence of the second nucleic acid, and the second nucleic acid having a reverse complementary sequence of at least 60% complementarity with the first nucleic acid. It may include a nucleotide sequence.
  • the first nucleic acid comprises a nucleotide sequence having at least 70%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98% or 99% complementarity with the reverse complementary sequence of the second nucleic acid.
  • the second nucleic acid may include a nucleotide sequence having a complementarity of 70%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98% or 99% or more with the reverse complementary sequence to the first nucleic acid. may include.
  • variants of the nucleotide sequence having the first nucleic acid included in the expression cassette as the target sequence or the second nucleic acid as the target sequence are included within the scope of the present invention.
  • the expression cassette of the present invention is a functional equivalent of a nucleic acid molecule constituting it, for example, some nucleotide sequence of a nucleic acid molecule has been modified by deletion, substitution or insertion, but a nucleotide sequence molecule and It is a concept that includes variants capable of performing the same functionally.
  • the "% of sequence homology" for a nucleic acid molecule is determined by comparing two optimally aligned sequences to a comparison region, wherein a portion of the nucleic acid molecule sequence in the comparison region is a reference sequence (additions or deletions) to the optimal alignment of the two sequences. may include additions or deletions (ie, gaps) compared to (not including).
  • the nucleic acid may be a gene associated with cancer.
  • the cancer-related gene may be an oncogene whose expression is increased in cancer, and the oncogene is an apoptosis-related gene, a transcription factor gene, a metastasis-related gene, angiogenesis ( Angiogenesis)-related gene, cancer cell-specific gene, or tyrosine-kinase (Tyrosine-Kinase) gene.
  • the oncogene is an apoptosis-related gene, a transcription factor gene, a metastasis-related gene, angiogenesis ( Angiogenesis)-related gene, cancer cell-specific gene, or tyrosine-kinase (Tyrosine-Kinase) gene.
  • the apoptosis-related gene is ABL1, AKT1, AKT2, BARD1, BAX, BCL11B, BCL2, BCL2A1, BCL2L1, BCL2L12, BCL3, BCL6, BIRC2, BIRC3, BIRC5, BRAF, CARD11, CAV1, CARD11, CDC25A CDKN1A, CFLAR, CNR2, CTNNB1, CUL4A, DAXX, DDIT3, E2F1, E2F3, E2F5, ESPL1, FOXO1, HDAC1, HSPA5, IGF1R, IGF2, JUN, JUNB, JUND, MDMALT1, MAP3K7, MCL1, MDM MYC, NFKB2, NPM1, NTRK1, PAK1, PAX3, PML, PRKCA, PRKCE, PTK2B, RAF1, RHOA, TGFB1, TNFRSF1B, TP73, TRAF6, YWHAG, YWHAQ or YWH
  • the oncogene is SEPTIN9, ACOD1, ACTN4, ADAM28, ADAM9, ADGRF1, ADRBK2, AFF1, AFF3, AGAP2, AGFG1, AGRN, AHCYL1, AHI1, AIMP2, AKAP13, AKAP9, ALL1 AKIRIN2, AKTIP1 , ANIB1, ANP32C, ANP32D, AQP1, ARAF, ARHGEF1, ARHGEF2, ARHGEF5, ASPSCR1, AURKA, BAALC, BAIAP2L1, BANP, BCAR4, BCKDHB, BCL9, BCL9L, BCR, BMID1, BRD4CAM, BOC, BRD4, BOC, BRD4 , CAPG, CBFB, CBLB, CBLL1, CBX7, CBX8, CCDC28A, CCDC6, CCNB1, CCNB2, CCND1, CCNE1, CCNL1, CD24, CDC25C, CDC6, CDH17, CDK1, CDK
  • the cancer cell specific gene may be PD-L1 (Programmed death-ligand 1) expressed on the surface of tumor cells.
  • the first and second nucleic acids targeted by the transcript of the expression cassette of the invention are ABL1, AKT1, AKT2, BARD1, BAX, BCL11B, BCL2, BCL2A1, BCL2L1, BCL2L12, BCL3, BCL6, BIRC2, BIRC3, BIRC5, BRAF, CARD11, CAV1, CBL, CDC25A, CDKN1A, CFLAR, c-MET, CNR2, CTNNB1, CUL4A, DAXX, DDIT3, E2F1, E2F3, E2F5, ESPL1, FOXO1, HDAC1, IGF2 HSPA5, IGF1 JUN, JUNB, JUND, MALT1, MAP3K7, MCL1, MDM2, MDM4, MYB, MYC, NFKB2, NPM1, NTRK1, PAK1, PAX3, PML, PRKCA, PRKCE, PTK2B, RAF1, RHOA, TGFB1, TP73, TRAF1B
  • the first nucleic acid may be a signal transducer and activator of transcription 3 (STAT3)
  • the second nucleic acid may be a mammalian target of rapamycin (mTOR)
  • the expression cassette comprises SEQ ID NOs: 1 and 2, bases of SEQ ID NOs: 3 and 4, SEQ ID NOs: 5 and 6, SEQ ID NOs: 7 and 8, SEQ ID NOs: 9 and 10, SEQ ID NOs: 11 and 12, SEQ ID NOs: 13 and 14, SEQ ID NOs: 15 and 16, or SEQ ID NOs: 17 and 18 It may comprise a nucleic acid in which U is converted to T in the sequence.
  • siRNAs of SEQ ID NOs: 1 and 2 are 17mers in 21mers
  • siRNAs of SEQ ID NOs: 3 and 4 are 16mers in 20mers
  • siRNAs of SEQ ID NOs: 5 and 6 are 15mers in 19mers
  • siRNAs of SEQ ID NOs: 7 and 8 are 14mer in 18mer
  • siRNA of SEQ ID NOs: 9 and 10 is 16mer in 17mer
  • siRNA of SEQ ID NO: 11 and 12 is 17mer in 20mer
  • siRNA of SEQ ID NO: 13 and 14 is 16mer in 19mer
  • siRNA of SEQ ID NOs: 17 and 18, 14mer of 17mer can complementarily bind.
  • the shRNA expression DNA (DNA sequence encoding STAT3 and mTOR dual target shRNA) included in the expression cassette may include the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 66 or 67. .
  • the first nucleic acid may be B-cell lymphoma 2 (BCL2)
  • the second nucleic acid may be BI-1 (BAX inhibitor 1)
  • the expression cassette comprises SEQ ID NOs: 19 and 20, 21 and 22, SEQ ID NOs: 23 and 24, SEQ ID NOs: 25 and 26, SEQ ID NOs: 27 and 28, or nucleotide sequences of SEQ ID NOs: 29 and 30.
  • siRNA (Antisense Bcl-2) of SEQ ID NO: 19, 21, 23, 25, 27 or 29 of Table 2 below is complementary to the mRNA of Bcl-2, and SEQ ID NO: 20, 22, 24, 26, 28 or 30 siRNA (Antisense BI-1) can complementarily bind to mRNA of BI-1.
  • the shRNA expression DNA included in the expression cassette may include the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 68 or 69.
  • the first nucleic acid may be an androgen receptor (AR), and the second nucleic acid may be a mammalian target of rapamycin (mTOR), in which case the expression cassette comprises SEQ ID NOs: 31 and 32, SEQ ID NOs: 33 and 34 , SEQ ID NO: 35 and 36, SEQ ID NO: 37 and 38, SEQ ID NO: 39 and 40, SEQ ID NO: 41 and 42, SEQ ID NO: 43 and 44, SEQ ID NO: 45 and 46, SEQ ID NO: 47 and 48, SEQ ID NO: 49 and 50, sequence No. 51 and 52, SEQ ID NOs: 53 and 54, or may include the nucleotide sequence of SEQ ID NOs: 55 and 56.
  • AR androgen receptor
  • mTOR mammalian target of rapamycin
  • siRNA set 16 consisting of SEQ ID NOs: 31 and 32
  • 18mers are complementary to each other
  • 19mer siRNA set 17 consisting of SEQ ID NOs: 33 and 34
  • the 17mers are complementary to each other
  • the 18mer consisting of SEQ ID NOs: 35 and 36 siRNA set 18 of siRNA set 18 is 16mer complementary to each other
  • 17mer siRNA set 19 consisting of SEQ ID NOs: 37 and 38
  • 19mer siRNA set 20 consisting of SEQ ID NOs: 39 and 40
  • 18mer siRNA set 21 consisting of SEQ ID NOs: 41 and 42
  • 17mer siRNA set 22 consisting of SEQ ID NOs: 43 and 44 is 13mer complementary to each other
  • 23mer siRNA consisting of SEQ ID NOs: 45 and 46 Set 23 is 19mer complementary to each other
  • 22mer siRNA set 24 consisting of SEQ ID NOs: 47 and 48 is 18mer complementary to each other
  • 22mer siRNA set 24 consisting of SEQ ID NOs: 47 and 48 is 18mer complementary to
  • siRNA (Antisense AR) of SEQ ID NO: 31, 33, 35, 37, 39, 41, 43, 45, 47, 49, 51, 53 or 55 complementarily binds to the mRNA of AR
  • SEQ ID NO: 32, 34, siRNA of 36, 38, 40, 42, 44, 46, 48, 50, 52, 54 or 56 can complementarily bind to mRNA of mTOR.
  • the shRNA expression DNA included in the expression cassette may include the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 70 or 71.
  • the first nucleic acid may be MGMT (O-6-methylguanine-DNA methyltransferase), and the second nucleic acid may be mTOR, in which case the expression cassette may include the nucleotide sequences of SEQ ID NOs: 57 and 58.
  • the first nucleic acid may be BCL2
  • the second nucleic acid may be MCL1 (MCL1 apoptosis regulator)
  • the expression cassette may include the nucleotide sequences of SEQ ID NOs: 59 and 60.
  • the first nucleic acid may be STAT3
  • the second nucleic acid may be TFEB (transcription factor EB)
  • the expression cassette may include the nucleotide sequences of SEQ ID NOs: 61 and 62.
  • the first nucleic acid may be c-MET (Homo sapiens MET proto-oncogene), and the second nucleic acid may be PD-L1 (Programmed death-ligand 1), in which case the expression cassette is SEQ ID NO: It may include a nucleic acid in which U is converted to T in the nucleotide sequences of 63 and 64.
  • siRNAs of SEQ ID NOs: 63 and 64 may be complementary to 15mers among 19mers.
  • the shRNA expression DNA included in the expression cassette may include the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 72 or 73.
  • the expression cassette may include a nucleotide sequence sequentially encoding a nucleotide sequence having a first nucleic acid as a target sequence, a loop sequence capable of forming a hairpin structure, and a nucleotide sequence having a second nucleic acid as a target sequence.
  • the expression cassette may be regulated by the U6 promoter.
  • the adenovirus may be an adenovirus with a serotype 5 of group C.
  • the anti-tumor virus of the present invention may have high oncolytic activity compared to wild-type adenovirus, and may have high oncolytic activity compared to adenovirus in which the hTERT promoter is introduced into wild-type adenovirus.
  • the present invention relates to a composition for treating cancer comprising the anti-tumor virus of the present invention.
  • the composition of the present invention may further include an anticancer agent, for example, acibacin, aclarubicin, acodazole, acronisin, adozelesin, alanosine, aldesleukin, allo Purinol Sodium, Altretamine, Aminoglutethimide, Amonafide, Ampligen, Amsacrine, Androgens, Anguidin, Apidicoline Glycinate, Asaray, Asparaginase, 5-Azacytidine , Azathioprine, Bacillus Calmete-Guerin (BCG), Bakers Antipol, Beta-2-deoxythioguanosine, Bisantrene HCl, Bleomycin Sulfate, Bulsupan, Butionine Sulfoximine, BWA 773U82 , BW 502U83/HCl, BW 7U85 mesylate, cerasemid, carvetimer, carboplatin, carmustine, chloram
  • the cancer is colon cancer, breast cancer, uterine cancer, cervical cancer, ovarian cancer, prostate cancer, brain tumor, head and neck carcinoma, melanoma, myeloma, leukemia, lymphoma, stomach cancer, lung cancer, pancreatic cancer, non-small cell lung cancer, liver cancer, esophageal cancer, small intestine cancer , perianal cancer, fallopian tube carcinoma, endometrial carcinoma, vaginal carcinoma, vulvar carcinoma, Hodgkin's disease, bladder cancer, kidney cancer, ureter cancer, renal cell carcinoma, renal pelvic carcinoma, bone cancer, skin cancer, head cancer, cervical cancer, skin melanoma , intraocular melanoma, endocrine adenocarcinoma, thyroid cancer, parathyroid cancer, adrenal cancer, soft tissue sarcoma, urethral cancer, penile cancer, central nervous system (CNS) tumor, primary CNS lymphoma, spinal cord tumor, glioblastoma multiforme and pituitary gland
  • promoter refers to an untranslated nucleic acid upstream of a coding region that includes a binding site for RNA polymerase and has transcription initiation activity into mRNA of a gene downstream of the promoter. say sequence.
  • the promoter may be any promoter capable of initiating the expression of shRNA.
  • a promoter constitutive promoter
  • a promoter inducible promoter
  • Examples include U6 promoter, H1 promoter, CMV (cytomegalovirus) promoter, SV40 promoter, CAG promoter (Hitoshi Niwa et al., Gene, 108:193-199, 1991), CaMV 35S promoter (Odell et al., Nature 313: 810-812, 1985), the Rsyn7 promoter (US Patent Application No.
  • the promoter of the present invention may be a U6 promoter, a HI promoter, or a CMV promoter, and according to a preferred embodiment of the present invention, the U6 promoter may be used.
  • composition of the present invention may further include an adjuvant.
  • the adjuvant may be used without limitation as long as it is known in the art, for example, Freund's complete adjuvant or incomplete adjuvant may be further included to increase the effect.
  • composition according to the present invention may be prepared in a form in which the active ingredient is incorporated into a pharmaceutically acceptable carrier.
  • the pharmaceutically acceptable carrier includes carriers, excipients and diluents commonly used in the pharmaceutical field.
  • Pharmaceutically acceptable carriers that can be used in the composition of the present invention include, but are not limited to, lactose, dextrose, sucrose, sorbitol, mannitol, xylitol, erythritol, maltitol, starch, gum acacia, alginate, gelatin, calcium phosphate, calcium silicate, cellulose, methyl cellulose, polyvinyl pyrrolidone, water, methylhydroxybenzoate, propylhydroxybenzoate, talc, magnesium stearate and mineral oil.
  • composition of the present invention may be formulated in the form of powders, granules, tablets, capsules, suspensions, emulsions, syrups, aerosols, etc., external preparations, suppositories, or sterile injection solutions according to conventional methods, respectively.
  • Solid preparations for oral administration include tablets, pills, powders, granules, capsules, etc., and such solid preparations include at least one excipient in the active ingredient, for example, starch, calcium carbonate, sucrose, lactose, gelatin. It can be prepared by mixing and the like. In addition to simple excipients, lubricants such as magnesium stearate and talc may also be used.
  • Liquid formulations for oral administration include suspensions, internal solutions, emulsions, syrups, etc.
  • compositions for parenteral administration include sterile aqueous solutions, non-aqueous solutions, suspensions, emulsions, lyophilized formulations and suppositories.
  • non-aqueous solvent and suspending agent propylene glycol, polyethylene glycol, vegetable oils such as olive oil, and injectable esters such as ethyl oleate may be used.
  • base of the suppository witepsol, tween 61, cacao butter, laurin, glycerogelatin, etc. may be used.
  • the holy material according to the present invention may be administered to an individual by various routes. Any mode of administration can be envisaged, for example, by oral, intravenous, intramuscular, subcutaneous, intraperitoneal injection.
  • the dosage of the pharmaceutical composition according to the present invention is selected in consideration of the individual's age, weight, sex, physical condition, and the like. It is self-evident that the concentration of the single domain antibody included in the pharmaceutical composition can be variously selected depending on the subject, and is preferably included in the pharmaceutical composition at a concentration of 0.01 to 5,000 ⁇ g/ml. If the concentration is less than 0.01 ⁇ g/ml, pharmaceutical activity may not appear, and if it exceeds 5,000 ⁇ g/ml, it may be toxic to the human body.
  • composition of the present invention can be used for the prevention or treatment of cancer and its complications, and can also be used as an anticancer adjuvant.
  • the present invention also provides a method for preventing and treating cancer comprising administering a pharmaceutically effective amount of the composition of the present invention to a subject.
  • composition of the present invention is administered in a therapeutically effective amount or a pharmaceutically effective amount.
  • pharmaceutically effective amount means an amount sufficient to treat a disease with a reasonable benefit/risk ratio applicable to medical treatment, and the effective dose level depends on the subject type and severity, age, sex, activity of the drug, and the drug. It can be determined according to factors including sensitivity, administration time, administration route and excretion rate, duration of treatment, concurrent drugs, and other factors well known in the medical field.
  • the present invention relates to the use of the anti-tumor adenovirus of the present invention for preventing or treating tumors.
  • the present invention relates to a method of treating a tumor using the anti-tumor adenovirus of the present invention.
  • a double-target siRNA (double strand) capable of simultaneously inhibiting STAT3 (signal transducer and activator of transcription 3) and mTOR (mammalian target of rapamycin) was prepared with the sequence shown in Table 1 below (Bioneer, Daejeon, Korea).
  • siRNAs of SEQ ID NOs: 1 and 2 of Set 1 have a 17mer in 21mer
  • siRNAs of SEQ ID NOs: 3 and 4 of Set 2 have a 16mer of 20mer
  • siRNAs of SEQ ID NOs: 5 and 6 of Set 3 have a 15mer of 19mer
  • siRNAs of SEQ ID NOs: 7 and 8 of set 4 bind to 14mers in 18mer
  • siRNAs of SEQ ID NOs: 9 and 10 of set 5 bind to 16mers in 17mers.
  • siRNA of SEQ ID NOs: 11 and 12 of set 6 has a 17mer in 20mer
  • the siRNA of SEQ ID NOs: 13 and 14 of set 7 has a 16mer of 19mer
  • the siRNA of SEQ ID NOs: 15 and 16 of set 8 has a 15mer of 18mer
  • siRNAs of SEQ ID NOs: 17 and 18 of set 9 are complementary to 14mers in 17mers.
  • each set of antisense_mTOR was converted into mTOR mRNA (gi
  • mTOR mRNA gi
  • MTOR mechanistic target of rapamycin (serine/threon
  • si-MS1 gacuguggcauccaccugcau One augcagguaggcgccucaguc 2 21 17 2 si-MS2 gacuguggcauccaccugca 3 ugcagguaggcgccucaguc 4 20 16 3 si-MS3 gacuguggcauccaccugc 5 gcagguaggcgccucaguc 6 19 15 4 si-MS4 gacuguggcauccaccug 7 cagguaggcgccucaguc 8 18 14 5 si-MS5 ucagccacagcuug 9 caagcugcuguagcuga 10 17 16 6 si-MS6 gcagcgcaugcggcccagca 11 ugcugggccgcaguggcugc 12 20 17 7 si-MS7 gcagcgcaugcgggg
  • a 21mer double-target siRNA (double strand) capable of simultaneously inhibiting BCL2 (B-cell lymphoma 2) and BI-1 (BAX inhibitor 1) was prepared with the sequence shown in Table 2 below (Bioneer, Daejeon, Korea). Specifically, in the 21mer siRNA set 10 consisting of SEQ ID NOs: 19 and 20 in Table 2 below, 15mers are complementary to each other, and in the 20mer siRNA set 11 consisting of SEQ ID NOs: 21 and 22, 14mers are complementary to each other, and SEQ ID NO: 23 And the 20mer siRNA set 12 consisting of 24 is 14mer complementary to each other, the 19mer siRNA set 13 consisting of SEQ ID NOs: 25 and 26 is 13mer complementary to each other, and the 19mer siRNA set 14 consisting of SEQ ID NOs: 27 and 28 is 13mer is complementary to each other, and in the 18mer siRNA set 15 consisting of SEQ ID NOs: 29 and 30, the 12mer is complementary to each other.
  • siRNA (Antisense Bcl-2) of SEQ ID NO: 19, 21, 23, 25, 27 or 29 of Table 2 below is complementary to the mRNA of Bcl-2, and SEQ ID NO: 20, 22, 24, 26, 28 or Since siRNA of 30 (Antisense BI-1) complementarily binds to mRNA of BI-1, siRNA sets 10 to 15 of the present invention simultaneously reduce the expression of Bcl-2 and BI-1 genes.
  • a set of double-target siRNA (double strand) capable of simultaneously inhibiting androgen receptor (AR) and mammalian target of rapamycin (mTOR) was prepared with the sequence shown in Table 3 below (Bioneer, Daejeon, Korea).
  • the 20mer siRNA set 16 consisting of SEQ ID NOs: 31 and 32 18mers are complementary to each other
  • the 19mer siRNA set 17 consisting of SEQ ID NOs: 33 and 34 the 17mers are complementary to each other
  • the 18mer consisting of SEQ ID NOs: 35 and 36 siRNA set 18 of siRNA set 18 is 16mer complementary to each other
  • 17mer siRNA set 19 consisting of SEQ ID NOs: 37 and 38 is 15mer complementary to each other
  • 19mer siRNA set 20 consisting of SEQ ID NOs: 39 and 40 is 15mer complementary to each other
  • 18mer siRNA set 21 consisting of SEQ ID NOs: 41 and 42 is 14mer complementary to each other
  • siRNA (Antisense AR) of SEQ ID NOs: 31, 33, 35, 37, 39, 41, 43, 45, 47, 49, 51, 53 or 55 of Table 3 below complementarily binds to the mRNA of AR
  • siRNA (Antisense mTOR) complementarily binds to the mRNA of mTOR. Therefore, the siRNA sets 16 to 28 of the present invention simultaneously decrease the expression of AR and mTOR genes.
  • siRNA Sequence(sense), 5'-3' SEQ ID NO: Sequence (antisense), 5'-3' SEQ ID NO: length (mer) complementary bond length (mer) 16 si-AT1 GCUGCUGCUGCUGCCUGGGG 31 CCCCAUGCAGCUGCAGCAGC 32 20 18 17 si-AT2 CUGCUGCUGCUGCCUGGGG 33 CCCCAUGCAGCUGCAGGCAG 34 19 17 18 si-AT3 UGCUGCUGCUGCCUGGGG 35 CCCCAUGCAGCUGCAGCA 36 18 16 19 si-AT4 GCUGCUGCUGCCUGGGG 37 CCCCAUGCAGCUGCAGGC 38 17 15 20 si-AT5 CCACCCCCACCACCACCACCACCACCAC 39 GUGGUGGCAGCGGUGGUGG 40 19 15 21 si-AT6 CCACCCCCACCACCACCACCACCA 41 UGGUGGCAGCGGUGGUGG 42 18 14 22 si-AT7 CCACCCCCACCACCACCACCACCACCA 41 UGGUGGCAGCGGUGGUGG 42 18 14 22
  • MGMT O-6-methylguanine-DNA methyltransferase, NM_002412.5
  • mTOR NM_004958.3 gene expression of a double-targeting siRNA (double strand) set capable of simultaneously reducing (suppressing) was prepared with the sequence shown in Table 4 below (Bioneer, Daejeon, Korea).
  • BCL2 (NM_000633.2) and MCL1 (MCL1 apoptosis regulator, NM_021960.5) a double-target siRNA (double strand) set capable of simultaneously reducing (inhibiting) the expression of genes was prepared with the sequence shown in Table 5 below (Bioneer, Daejeon) (Bioneer, Daejeon) , Korea).
  • a double-target siRNA (double strand) set capable of simultaneously reducing (inhibiting) the expression of STAT3 (NM_139276.2) and TFEB (transcription factor EB, NM_007162.2) genes was prepared with the sequence shown in Table 6 below (Bioneer, Daejeon) (Bioneer, Daejeon) , Korea).
  • siRNA Sequence(sense), 5'-3' SEQ ID NO: Sequence (antisense), 5'-3' SEQ ID NO: 31 si-ST CCAGCCAGACCCAGAAGGA 61 UCCUUCUUGGACAGGCUGG 62
  • a double-target siRNA (double strand) set capable of simultaneously inhibiting c-MET (Homo sapiens MET proto-oncogene) and PD-L1 (Programmed death-ligand 1) was constructed with the sequence shown in Table 7 below (Bioneer, Daejeon, Korea).
  • the 19mer siRNA set 32 consisting of SEQ ID NOs: 63 and 64, the 15mers are complementary to each other, and the siRNA (Antisense c-MET) of SEQ ID NO: 63 in Table 7 below is complementary to the mRNA of c-MET, , siRNA of SEQ ID NO: 64 (Antisense PD-L1) complementarily binds to the mRNA of PD-L1. Therefore, the siRNA set of the present invention simultaneously reduces the expression of c-MET and PD-L1 genes.
  • shRNAs TTGGATCCAA loop shRNA and TTCAAGAGAG loop shRNA
  • shRNAs including the double-target siRNA (SEQ ID NOs: 1 and 2) siRNA double-stranded sequence and loop sequence of set 1 among siRNAs were prepared as representative (Table 8) .
  • Each of the prepared shRNA expression cassettes was placed after the U6 promoter (SEQ ID NO: 65) at the restriction enzymes PstI and EcoRV cleavage sites of the pE3.1 vector (FIG. 1), respectively, to obtain a dual target siRNA targeting mTOR and STAT3.
  • a recombinant expression vector for expressing the two types of shRNAs in cells was constructed.
  • mTOR and STAT3 dual target shRNA sequence (5' ⁇ 3') SEQ ID NO: TTGGATCCAA loop shRNA gactgtggcatccacctgcatTTGGATCCAAatgcaggtaggcgcctcagtcTT 66 TTCAAGAGAG loop shRNA gactgtggcatccacctgcatTTCAAGAGAGatgcaggtaggcgcctcagtcTT 67
  • shRNAs TTGGATCCAA loop shRNA and TTCAAGAGAG loop shRNA
  • a double-target siRNA SEQ ID NO: 19 and 20
  • siRNA double-stranded sequence SEQ ID NO: 19 and 20
  • a loop sequence of set 10 among siRNAs were prepared as representative (Table 9) .
  • the expression cassettes expressing each of the prepared shRNAs were placed after the U6 promoter (SEQ ID NO: 65) at the restriction enzymes PstI and EcoRV cleavage sites of the pE3.1 vector (FIG. 1), respectively, to target BCL2 and BI-1
  • a recombinant expression vector expressing two types of shRNAs including dual target siRNAs in cells was constructed.
  • BCL2 and BI-1 dual target shRNA sequence (5' ⁇ 3') SEQ ID NO: TTGGATCCAA loop shRNA aagaagaggagaaaaaatgaTTGGATCCAAtcatttcttcttttctttTT 68 TTCAAGAGAG loop shRNA aagaagaggagaaaaaatgaTTCAAGAGAGtcatttcttctttctttTT 69
  • shRNAs TTGGATCCAA loop shRNA and TTCAAGAGAG loop shRNA
  • a double-target siRNA SEQ ID NO: 31 and 32
  • siRNA double-stranded sequence SEQ ID NO: 31 and 32
  • a loop sequence of set 16 among siRNAs were prepared as representative (Table 10) .
  • the expression cassettes expressing each of the prepared shRNAs were placed after the U6 promoter (SEQ ID NO: 65) at the restriction enzymes PstI and EcoRV cut sites of the pE3.1 vector (FIG. 1), respectively, to target AR and mTOR.
  • a recombinant expression vector expressing two types of shRNA including the target siRNA in cells was constructed.
  • AR and mTOR dual target shRNA sequence (5' ⁇ 3') SEQ ID NO: TTGGATCCAA loop shRNA GCTGCTGCTGCTGCCTGGGGTTGGATCCAACCCCATGCAGCTGCAGCAGCTT 70 TTCAAGAGAG loop shRNA GCTGCTGCTGCTGCCTGGGGTTCAAGAGAGCCCCATGCAGCTGCAGCAGCTT 71
  • shRNA expression cassettes (TTGGATCCAA loop shRNA and TTCAAGAGAG loop shRNA) were prepared including a double-target siRNA siRNA double-stranded sequence and a loop sequence. Specifically, by linking TTGGATCCAA (TTGGATCCAA loop) or TTCAAGAGAG (TTCAAGAGAG loop), antisense strand and TT to 3' of the sense strand of the siRNA set of Table 7 (SEQ ID NOs: 63 and 64) in the 5' to 3' direction, shRNA The DNA sequences encoding the were shown in Table 11 (siRNA is capitalized, and additional sequences are shown in small letters).
  • c-MET and PD-L1 dual target shRNA sequence (5' ⁇ 3') SEQ ID NO: TTGGATCCAA loop shRNA ACCACACAUCUGACUUGGUttggatccaaACCAAUUCAGCUGUAUGGUtt 72 TTCAAGAGAG loop shRNA ACCACACAUCUGACUUGGUttcaagagagACCAAUUCAGCUGUAUGGUtt 73
  • the cells were cultured at 37° C. and 5% CO 2 in RPMI medium (Hyclone) supplemented with 10% FBS (Hyclone) until the cell density reached 50%. Thereafter, the cells were transfected with lipofectamine3000 (Invitrogen, Carlsbad, CA, USA) with the dual target siRNAs of sets 1 to 9 prepared in Example 1, respectively, to knock down mTOR and STAT3 simultaneously. 48 hours after transfection, cells were lysed and total RNA was extracted with GeneJET RNA Purification Kit (Invitrogen). Reverse transcription reaction was performed with RevoScriptTM RT PreMix (iNtRON BIOTECHNOLOGY) using the extracted total RNA as a template.
  • Hela cells were each seeded in a 12-well plate, and then cultured in RPMI medium (Hyclone) supplemented with 10% FBS (Hyclone) at 37°C and 5% CO 2 conditions until the cell density reached 50%. Then, 80 pmoles of the dual-target siRNA set 10 (si-BB1) and the dual-target siRNA sets 11 to 15 prepared in Example 1 (Table 2) were added to the Hela cell-cultured wells in 3 ⁇ l of lipoproteins per well. BCL2 and BI-1 were simultaneously knocked down by transfection with lipofectamine 3000 (Invitrogen, Carlsbad, CA, USA).
  • the probes used were Bcl2 (Thermo, Hs00608023_m1), BI-1 (Thermo, Dm01835892_g1), and GAPDH (Thermo, Hs02786624_g1), and it was performed using QS3 equipment. All reactions were repeated three times and their average value was taken. The results obtained in this way were normalized to the mRNA value of GAPDH, a housekeeping gene.
  • the dual target siRNA of the present invention simultaneously inhibits the expression of both genes, and through this, it was confirmed that remarkable anticancer activity was shown by promoting the death of cancer cells. suggests that it can
  • h460 and A549 cell lines in a 12-well plate, respectively, in RPMI medium (Hyclone) supplemented with 10% FBS (Hyclone) until the cell density reached 50% at 37°C, 5% CO 2 cultured under conditions.
  • 80 pmol of each of the double target siRNA sets 16 to 28 (Table 3) prepared in Example 1 were added to the cell-cultured wells in 3 ⁇ l of lipofectamine 3000 (Invitrogen, Carlsbad, CA). , USA) to knock down AR and mTOR simultaneously.
  • set 16 was transfected into h460 cells and set 17 was knocked down by transfection into PC3 cells.
  • siRNA for AR and siRNA for mTOR described in Table 12 below were transfected, respectively. 48 hours after transfection, cells were lysed and total RNA was extracted with GeneJET RNA Purification Kit (Invitrogen). AR by each siRNA and dual target siRNA sets 16 to 28 (si-AT1 to siAT13) of the present invention through q-PCR reaction after reverse transcription into cDNA through RT-PCR reaction using the extracted total RNA as a template And the mRNA expression level of mTOR was confirmed.
  • primer set and reaction mixture for AR or mTOR [10X reaction Buffer 2 ⁇ l, HQ Buffer 2 ⁇ l, dNTP 1.6 ⁇ l, Primer (F, R, 10 pmole/ul) 1 ⁇ l, Template (500 ng) 2 ⁇ l, Taq 0.2 ⁇ l, DW 10.2 ⁇ l, Total vol. 20 ⁇ l] was used.
  • mRNA of AR and mTOR in cell lysates knocked down by PCR conditions [2 min at 95°C, 30 cycles at 95°C for 20 sec, 10 sec at 60°C and 30-60 sec at 72°C, 5 min at 72°C] was converted to cDNA.
  • the reaction mixture [Template (RT-PCR product) 6 ⁇ l, Taqman probe 3 ⁇ l, 10X reaction Buffer 6 ⁇ l, HQ Buffer 6 ⁇ l, dNTP 4.8 ⁇ l, Taq 0.6 ⁇ l, DW 10.2 ⁇ l, Total vol. 60 ⁇ l] and qPCR was performed [10 min at 95° C., 15 sec at 95° C. and 40 cycles per minute at 60° C. by furnace].
  • the probes used were AR (Thermo, Hs00171172_m1), mTOR (Thermo, Hs00234508_m1), and GAPDH (Thermo, Hs02786624_g1), and it was performed using QS3 equipment. All reactions were repeated three times and their average value was taken. The results obtained in this way were normalized to the mRNA value of GAPDH, a housekeeping gene.
  • both AR and mTOR expression were decreased by the dual target siRNA sets 16 and 17 of the present invention in both PC3 cells and h460 cell lines ( FIG. 5 ), and the degree of reduction was similar to or superior to the effect of each siRNA. showed up
  • both AR and mTOR expression were decreased by the dual target siRNA sets 17 and 28 of the present invention ( FIG. 6 ). Through this, it was found that the dual target siRNA of the present invention can effectively inhibit the expression of both genes at the same time.
  • glioblastoma cell line U-87 The prostate cancer cell line CWR22Rv-1 (22Rv-1), the melanoma cell line A431 and the non-small cell lung cancer cell line HCC827 was dispensed in a 12-well plate, and 10% until the cell density reached 50%.
  • FBS Hyclone Corporation
  • RPMI medium Hyclone Corporation 37 °C, 5% CO 2 Conditions were cultured.
  • the double target siRNA set (Table 7) prepared in the above example was transferred to the cell cultured well with 3 ⁇ l of lipofectamine 3000 (Invitrogen, Carlsbad, CA, USA) at 80 pmole per well.
  • RNA expression levels of c-MET and PD-L1 by each siRNA and the dual target siRNA set of the present invention through q-PCR reaction after reverse transcription into cDNA through RT-PCR reaction using the extracted total RNA as a template was confirmed.
  • a primer set and reaction mixture for PD-L1 or c-MET [10X reaction Buffer 2 ⁇ l, HQ Buffer 2 ⁇ l, dNTP 1.6 ⁇ l, Primer (F, R, 10 pmole/ul), respectively 1 ⁇ l, Template (500 ng) 2 ⁇ l, Taq 0.2 ⁇ l, DW 10.2 ⁇ l, Total vol. 20 ⁇ l] was used.
  • c-MET and PD in cell lysates knocked down by PCR conditions [2 min at 95 °C, 30 cycles at 95 °C for 20 sec, 10 sec at 60 °C and 30-60 sec at 72 °C, 5 min at 72 °C] -L1 mRNA was converted into cDNA.
  • the reaction mixture was prepared with [Template (RT-PCR product) 6 ⁇ l, Taqman probe 3 ⁇ l, 10X reaction Buffer 6 ⁇ l, HQ Buffer 6 ⁇ l, dNTP 4.8 ⁇ l, Taq 0.6 ⁇ l, DW 10.2 ⁇ l, Total vol.
  • the vector containing the TTGGATCCAA loop shRNA sequence of SEQ ID NO: 66 or the TTCAAGAGAG loop shRNA sequence of SEQ ID NO: 67 (Table 8) encoding the mTOR and STAT3 target shRNAs constructed in Example 2 above using lipofectamine3000 A549 cells and glioblastoma Cells U-87 (U87MG) were transfected with 0, 1 and 2 ⁇ g, respectively. 48 hours after transfection, the degree of decrease in gene expression of mTOR and STAT3 was confirmed using the Real-time PCR analysis method described in the above Examples.
  • the expression of mTOR and STAT3 was decreased in both types of shRNA including the dual target siRNA of the present invention, and showed a tendency to decrease by about 20% in proportion to the amount of DNA of the shRNA ( FIG. 8 ).
  • siRNA for mTOR and siRNA for STAT3 were serially linked in the sequence of mTOR-STAT3 or STAT3-mTOR, and the gene expression inhibitory effect on mTOR and STAT3 was compared with the mTOR/STAT3 dual target shRNA of the present invention.
  • human lung cancer cell line A549 cells were each dispensed in a 96-well plate at 5 ⁇ 10 3 cells/well, and then set with lipofectamine 3000 Each of the dual target siRNAs 1 to 9 were transfected into cells. After 48 hours of transfection, an additional 24 hours later, 5 mg/mL MTT (Promega, Ltd.) was applied to the cells and incubated for 4 hours. Thereafter, the medium was removed, and 150 ⁇ l of a solubilization solution and a stop solution were treated, and incubated at 37° C. for 4 hours. The absorbance of the reaction solution was measured at 570 nm, and cell viability was calculated using the following equation.
  • Human lung cancer cell line A549 cells were seeded in a 96-well plate at 5 ⁇ 10 3 cells/well, and the cells were transfected with the dual target siRNAs (mTOR and STAT3 simultaneous knockdown) of sets 1 to 9 of the present invention with lipofectamine3000, respectively. did. After 48 hours of transfection, 5 ⁇ M of cisplatin was treated and incubated for 10 hours. Thereafter, the MTT reaction was performed as in the above example, and the absorbance thereof was measured at 570 nm to calculate the cell viability.
  • the dual target siRNAs mTOR and STAT3 simultaneous knockdown
  • Human lung cancer cell line A549 cells were seeded in a 96-well plate at 5 ⁇ 10 3 cells/well, and the cells were transfected with the dual target siRNAs (mTOR and STAT3 simultaneous knockdown) of sets 1 to 9 of the present invention with lipofectamine3000, respectively. did. 48 hours after transfection, 5 ⁇ M of paclitaxel was treated and incubated for 10 hours. Thereafter, the MTT reaction was performed as in Example 4, and the absorbance thereof was measured at 570 nm to calculate the cell viability.
  • the dual target siRNAs mTOR and STAT3 simultaneous knockdown
  • Human lung cancer cell line A549 cells were seeded in a 96-well plate at 5 ⁇ 10 3 cells/well, and the cells were transfected with the dual target siRNAs (mTOR and STAT3 simultaneous knockdown) of sets 1 to 9 of the present invention with lipofectamine3000, respectively. did. 48 hours after transfection, 5 ⁇ M of paclitaxel was treated and incubated for 10 hours. Thereafter, the MTT reaction was performed as in Example 4, and the absorbance thereof was measured at 570 nm to calculate the cell viability.
  • the dual target siRNAs mTOR and STAT3 simultaneous knockdown
  • the cancer cell death inhibitory effect of the dual target siRNA (set 1 si-BB1) against BCL2 and BI-1 of the present invention was compared with the ABT-737 drug, which is used as a cancer cell treatment agent through the inhibition of BCL2. Specifically, after dispensing the LnCap cell line, which is a prostate cancer cell, as in the above examples, transfected with siRNA set 1 (si-BB1) for BCL2 and BI-1 of the present invention and treated with 3 ⁇ M of ABT-737 And after incubation for 12 hours, the degree of death of cancer cell lines was confirmed by MTT analysis.
  • LnCap cell lines were increased by treatment with ABT-737 or siRNA set 1 (si-BB1) for BCL2 and BI-1 of the present invention.
  • ABT-737 and dual target siRNA of the present invention were used in combination When treated, it was found that apoptosis of cancer cells was significantly increased synergistically (FIG. 15).
  • the dual target siRNA set 10 (si-BB1) of the present invention and the siRNA for each of BCL2 or BI-1 of Table 13 below as a control were transfected, respectively.
  • cisplatin was treated with 10 to 20 uM.
  • cells were treated with 5 mg/mL MTT (Promega, Ltd.) and incubated for 4 hours. Thereafter, the medium was removed, and 150 ⁇ l of a solubilization solution and a stop solution were treated, and incubated at 37° C. for 4 hours. The absorbance of the reaction solution was measured at 570 nm, and cell viability was calculated using Equation 1 above.
  • BCL2 siRNA sense CAGAAGUCUGGGGAAUCGAU(dTdT) anti-sense AUCGAUUCCCAGACUUCUG(dTdT)
  • BI-1 siRNA sense GGAUCGCAAUUAAGGAGCA(dTdT) anti-sense UGCUCCUUAAUUGCGAUCC(dTdT)
  • the cancer cell death was significantly increased in the group treated with the dual target siRNA set 10 of the present invention in combination with cisplatin compared to the control group treated with the control siRNA without treatment with cisplatin, and the degree of cancer cell death was significantly increased in each of BCL2 and BI-1 It was found that there was a significant increase compared to the group treated with siRNA for siRNA (FIG. 16).
  • the dual target siRNA of the present invention alone induced apoptosis in the DU145 cell line, which is a prostate cancer cell line (no anticancer drug treatment), and the cisplatin treatment group of the present invention did not show an apoptotic effect. It was found that the dual target siRNA induces apoptosis. In addition, it was confirmed that DU145 apoptosis was significantly improved by co-treatment with the dual target siRNA set 16 (si-AT1) of the present invention for etoposide and taxol, which exhibited some anticancer activity (FIG. 17A).
  • the dual target siRNA of the present invention itself exhibited an apoptotic effect, and it was found that the combination treatment with etoposide and taxol exhibited remarkably anticancer activity (FIG. 17B) .
  • Example 7 Construction of a dual-target shRNA-encoding adenovirus
  • a recombinant adenovirus into which only hTERT was inserted as a control was prepared (CA10G). Thereafter, the sequence of the prepared adenovirus vector was analyzed, and if there was no abnormality, the virus genome was linearized using PacI restriction enzyme, and 293A cells were transduced using the CaCl 2 method to produce each virus.
  • RNA prep was performed using an RNA prep kit (Takara, 9767A).
  • a PCR mixture (total volume, 20 ul) corresponding to the experimental group was prepared (template 2 ul, forward primer 0.5 ul (10 pmole/ul), reverse primer 0.5 ul (10 pmole/ul) ), 10 ul 2X master mix (Bioline, BIO-94005) and 7 ul DW).
  • the PCR mixture was vortexed, mixed well, and centrifuged, followed by 40 cycles of 5 minutes at 95°C, 10 seconds at 95°C, and 30 seconds at 60°C in a qPCR device (Applied Biosystems, QS3). The results were analyzed using the program in the qPCR instrument.
  • the recombinant adenovirus CA102 of the present invention which encodes and expresses the hTERT promoter and mTOR and STAT3 dual target shRNA, is significantly more mTOR and STAT3 genes than the recombinant adenovirus CA10G containing only the hTERT promoter. was shown to inhibit the expression of (Fig. 20).
  • Example 7 After the recombinant adenovirus CA102 prepared in Example 7 was treated in bladder cancer cell lines T24 cells and 253JBV cells, the expression inhibitory effect on target genes mTOR and STAT3 was confirmed at the protein level by Western blot analysis. As a result, in both cell lines, it was confirmed that the recombinant adenovirus CA102 of the present invention suppressed the protein expression of mTOR and STAT3 ( FIG. 23 ).
  • RNA prep kit Takara, 9767A was applied 72 hours later. RNA prep was performed using After that, RNA was quantified using Nanodirp, and 400 ng/20 ul per tube was added using RT premix (intron, 25081), mixed well with the premix contents, and then using a PCR device at 45° C.
  • the recombinant adenovirus CA101 of the present invention which encodes and expresses the hTERT promoter and the BCL2 and BI-1 dual target shRNA, is significantly more BCL2 and BI- compared to the recombinant adenovirus CA10G containing only the hTERT promoter. 1 was shown to inhibit the expression of the gene ( FIG. 24 ).
  • RNA prep was performed using a prep kit (Takara, 9767A). After that, RNA was quantified using Nanodirp, and 400 ng/20 ul per tube was added using RT premix (intron, 25081), mixed well with the premix contents, and then using a PCR device at 45° C.
  • the recombinant adenovirus CA103 of the present invention encoding and expressing the hTERT promoter and the AR and mTOR dual target shRNA significantly suppressed the expression of AR and mTOR genes compared to the recombinant adenovirus CA10G containing only the hTERT promoter. was found to be (Fig. 25).
  • the recombinant adenovirus CA103 of the present invention significantly suppressed the expression of AR and mTOR genes compared to CA10G ( FIG. 26 ).
  • the recombinant adenoviruses CA10G and CA103 prepared in Example 7 were administered directly intratumorally once ( 2 ⁇ 10 8 pfu/spot, 3 times), the tumor was excised 21 days later, and the expression levels of AR and mTOR genes in the tumor were confirmed by Western blot analysis and IHC analysis. As a result of Western blot analysis, it was found that the expression of mTOR and AR was decreased in the CA103-administered group compared to the control group and the CA10G-administered group.
  • the fluorescence expression of mTOR and AR in the CA103-administered group was higher in the control group and the CA10G-administered group. showed a decrease of 70-90% or more, confirming that CA103 effectively inhibits the expression of mTOR and AR, which are target genes in the tumor (FIG. 27)
  • RNA prep kit Takara, 9767A was applied 72 hours later. RNA prep was performed using After that, RNA was quantified using Nanodirp, and 400 ng/20 ul per tube was added using RT premix (intron, 25081), mixed well with the premix contents, and then using a PCR device at 45° C.
  • the recombinant adenovirus CA104 of the present invention which encodes and expresses the hTERT promoter and c-MET and PD-L1 dual target shRNA, is significantly c-MET and compared to the recombinant adenovirus CA10G containing only the hTERT promoter It was shown to inhibit the expression of the PD-L1 gene ( FIG. 28 ).
  • the cancer cell killing effects of the recombinant adenoviruses CA10G and CA101 prepared in Example 7 were compared. Specifically, after 1 hour after spreading U87MG cells (5X10 3 /well) in a 96-well plate, each well was treated with CA10G and CA101 to 1, 2, 5, 10, 30 or 50 MOI for 72 hours. MTT reagent was then added and incubated at 37° C. for 3 hours. After 3 hours, the medium was removed from each well, 100 ul of DMSO was added, and then the absorbance was measured at a wavelength of 540 nm using a microplate reader, followed by MTT analysis.
  • CA101 of the present invention significantly killed cancer cells compared to CA10G ( FIG. 29 ).
  • T24 cells 2.5X10 3 /well
  • 253J-BV cells 5X10 3 /well
  • human bladder epithelial cell line RT4 cells 5X10 3 /well
  • T24 cells 2.5X10 3 /well
  • 253J-BV cells 253J-BV cells
  • human bladder epithelial cell line RT4 cells 5X10 3 /well
  • MTT reagent was added and incubated at 37° C. for 3 hours.
  • the medium was removed from each well, 100 ul of DMSO was added, and then the absorbance was measured at a wavelength of 540 nm using a microplate reader, followed by MTT analysis.
  • CA102 of the present invention significantly killed cancer cells compared to CA10G (FIG. 30).
  • the recombinant adenovirus CA10G and CA102 prepared in Example 4 were treated with HSC-2 and Fadu, the head and neck cancer cell lines, and the apoptosis effect was analyzed by MTT analysis. were compared.
  • CA10G treatment resulted in about 40% of cell death, whereas CA102 encoding and expressing mTOR and STAT3 dual target shRNA induced more than 70% of cell death (FIG. 31).
  • the recombinant adenoviruses CA10G and CA102 prepared in Example 4 were treated with skin squamous cell lines A431 and HSC-5, followed by MTT analysis. The apoptosis effect was compared. As a result, it was found that the apoptosis effect of CA102 was significantly higher than that of CA10G on the basis of 10 MOI treatment ( FIG. 32 ).
  • the cancer cell killing effects of the recombinant adenoviruses CA10G and CA103 prepared in Example 7 were compared. Specifically, after each dispensing of LNcap, C42B and 22Rv1 cell lines in a 96-well plate at 5X10 3 /well, 1, 2, 5, 10, 20, 40 or 50 MOI of CA10G and CA103 into each well after 1 hour After 72 hours of treatment as much as possible, MTT reagent was added and incubated at 37° C. for 3 hours. After 3 hours, the medium was removed from each well, 100 ul of DMSO was added, and then the absorbance was measured at a wavelength of 540 nm using a microplate reader, followed by MTT analysis.
  • CA103 of the present invention significantly killed cancer cells compared to CA10G in the case of LNcap cell line (FIG. 33), and it was confirmed that CA103 of the present invention significantly killed cancer cells even in the case of C42B and 22Rv1 cell lines. could (Fig. 34).
  • 1.0 x 10 7 bladder cancer cell line 253J-BV and head and neck cancer cell line FaDu were cultured on a 100 mm 3 plate, respectively, and then the recombinant adenovirus CA10G of the present invention was cultured. and CA102 at 2 MOI and 5 MOI, respectively, for 1 hour (control group treated with PBS), replaced with fresh medium and cultured for 2 hours. Thereafter, cells were harvested, mixed with Matrigel at a ratio of 1:1 (v/v), and transplanted (Xenograft) into 6-week-old male Balb/c nu-nu mice, followed by observation for 32 days.
  • the recombinant adenoviruses CA10G and CA103 prepared in Example 7 were administered directly intratumorally (2 ⁇ 10 8 pfu/spot, 3 times) to observe the growth, the tumor volume and weight were significantly reduced in the CA103-treated group compared to the untreated control group (buffer-treated group) and the vector control group (CA10G-treated group). was confirmed (FIG. 40).
  • Example 11 Confirmation of the effect of combination treatment with an anticancer agent of a dual target shRNA-encoding adenovirus
  • a bladder cancer cell line (253J-BV) was subcutaneously transplanted into balb c nu/nu mice to construct a bladder cancer mouse model, and then, the recombinant adenoviruses CA10G and CA102 prepared in Example 7 were administered directly into the tumor to grow the tumor.
  • the tumor volume and weight were significantly reduced in the CA102-treated group compared to the untreated control group (buffer-treated group) and the vector control group (CA10G-treated group). It was confirmed that the anticancer effect synergistically increased (FIG. 41).

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Abstract

본 발명은 항종양 아데노바이러스 및 이를 포함하는 항암용 조성물에 관한 것으로, 본원발명의 이중 가닥 siRNA는 제 1 핵산 및 제 2 핵산의 발현을 동시에 억제함으로써, 암세포의 사멸을 촉진하고, 각각의 siRNA를 함께 처리한 것보다 항암 활성이 현저하며, 항암제와의 병용 처리에서 암세포 사멸을 시너지적으로 향상시키는 효과가 있고, 이를 발현하는 shRNA를 코딩하는 발현 카세트와 hTERT 프로모터 포함 아데노바이러스는 체내 면역 반응을 회피하여 암세포에 특이적으로 전달되어 전신 치료 효과가 있으며, 국소 전달이 가능하고, 선택성이 뛰어나며, 최소 침습 치료로도 현저한 항암 효과를 나타내, 다양한 암종에 항암용 조성물 또는 항암보조제로서 유용하게 이용될 수 있다.

Description

이중 특이적 핵산분자를 포함한 항암 바이러스의 구조
본 발명은 항종양 아데노바이러스 및 이를 포함하는 항암용 조성물에 관한 것이다.
암은 전세계적으로 가장 많은 사망자를 내는 질병 중 하나로, 혁신적인 암 치료제의 개발은 이에 대한 치료시 발생되는 의료비를 절감할 수 있음과 동시에 고부가가치를 창출할 수 있다. 또한, 2008년의 통계에 따르면, 기존항암제 내성을 극복 할 수 있는 분자 치료제는 주요 7개국(US, Japan, France, Germany, Italy, Spain, UK)에서 $17.5 billion을 차지했고, 2018년의 경우 약 $45 billion 정도의 market size를 차지하여, 2008년 대비 9.5%의 성장률을 보일 것이라 예측되고 있다. 암의 치료는 수술, 방사선치료, 화학요법, 생물학적 치료로 구분되는데, 이 중에 화학요법은 화학물질로서 암 세포의 증식을 억제하거나 죽이는 치료법으로 항암제에 의하여 나타나는 독성은 상당부분 정상세포에서도 나타나기 때문에 일정 정도의 독성을 나타내며, 항암제가 효과를 나타내다가도 일정 기간의 사용 후에는 효과가 상실되는 내성이 발생하기 때문에 암세포에 선택적으로 작용하고 내성이 생기지 않는 항암제의 개발이 절실하다 (암 정복의 현주소 Biowave 2004. 6(19)). 최근 암에 대한 분자유전정보의 확보를 통해 암의 분자적 특성을 표적으로 한 새로운 항암제의 개발이 진행되고 있으며, 암세포만이 가지고 있는 특징적인 분자적 표적(molecular target)을 겨냥하는 항암제들은 약제 내성이 생기지 않는다는 보고도 있다.
유전자의 발현을 억제하는 기술은 질병치료를 위한 치료제 개발 및 표적 검증에서 중요한 도구이다. 간섭 RNA(RNA interference, 이하 RNAi라고 한다)는 그 역할이 발견된 이후로, 다양한 종류의 포유동물세포(mammalian cell)에서 서열 특이적 mRNA에 작용한다는 사실이 밝혀졌다 (Silence of the transcripts: RNA interference in medicine. J Mol Med (2005) 83: 764773). RNAi는 21-25개의 뉴클레오타이드 크기의 이중나선 구조를 가진 작은 간섭 리보핵산 짧은 간섭 RNA (small interfering RNA, 이하 siRNA라고 한다)이 상보적인 서열을 가지는 전사체(mRNA transcript)에 특이적으로 결합하여 해당 전사체를 분해함으로써 특정 단백질의 발현을 억제하는 현상이다. 세포 내에서는 RNA 이중가닥이 Dicer라는 엔도뉴클라아제(endonuclease)에 의해 프로세싱되어 21 내지 23개의 이중가닥(base pair,bp)의 siRNA로 변환되며, siRNA 는 RISC(RNA-induced silencing complex)에 결합하여 가이드(안티센스) 가닥이 타겟 mRNA를 인식하여 분해하는 과정을 통해 타겟 유전자의 발현을 서열 특이적으로 저해한다 (NUCLEIC-ACID THERAPEUTICS: BASIC PRINCIPLES AND RECENT APPLICATIONS. Nature Reviews Drug Discovery. 2002. 1, 503-514). 베르트랑(Bertrand) 연구진에 따르면 동일한 타겟 유전자에 대한 siRNA가 안티센스 올리고뉴클레오티드(Antisense oligonucleotide, ASO)에 비하여 생체 내/외(in vitro 및 in vivo)에서 mRNA 발현의 저해효과가 뛰어나고, 해당 효과가 오랫동안 지속되는 효과를 포함하는 것으로 밝혀졌다 (Comparison of antisense oligonucleotides and siRNAs in cell culture and in vivo. Biochem. Biophys. Res.Commun. 2002. 296: 1000-1004). siRNA를 포함하는 RNAi 기술 기반 치료제 시장은 향후 세계 시장규모가 2020년경에 총 12조원 이상을 형성하는 것으로 분석되었으며, 해당 기술을 적용할 수 있는 대상이 획기적으로 확대되어 기존의 항체, 화합물 기반 의약품으로 치료하기 어려운 질병을 치료할 수 있는 차세대 유전자 치료기술로 평가되고 있다. 또한 siRNA의 작용 기작은 타겟 mRNA와 상보적으로 결합하여 서열 특이적으로 타겟 유전자의 발현을 조절하기 때문에, 기존의 항체 기반 의약품이나 화학물질(small molecule drug)이 특정한 단백질 표적에 최적화되기까지 오랜 동안의 개발 기간 및 개발 비용이 소요되는 것에 비하여, 적용할 수 있는 대상이 획기적으로 확대될 수 있고, 개발 기간이 단축되면서, 의약화가 불가능한 표적 물질을 포함한 모든 단백질 표적에 대하여 최적화된 리드 화합물을 개발할 수 있다는 장점을 가진다 (Progress Towards in Vivo Use of siRNAs. MOLECULAR THERAPY. 2006 13(4):664-670). 이에, 최근 이 리보핵산 매개 간섭현상이 기존의 화학 합성 의약 개발에서 발생되는 문제의 해결책을 제시하면서 전사체 수준에서 특정 단백질의 발현을 선택적으로 억제하여 각종 질병 치료제, 특히 종양 치료제 개발에 이용하려는 연구가 진행되고 있다. 또한, siRNA 치료제는 기존 항암제와 달리 표적이 명확하여 부작용이 예측 가능하다는 장점이 있으나, 이러한 표적 특이성은 다양한 유전자의 문제에 의해 발생하는 질병인 종양의 경우, 오히려 이러한 표적 특이성은 치료 효과가 높지 않은 원인이 되기도 한다.
본 발명의 목적은 항종양 아데노바이러스를 제공하는 것이다.
아울러, 본 발명의 목적은 암 치료용 조성물을 제공하는 것이다.
상기 과제를 해결하기 위하여, 본 발명은 제 1 핵산을 표적서열로 하는 염기 서열 및 제 2 핵산을 표적서열로 하는 염기 서열을 포함하는 항종양 아데노바이러스를 제공한다.
아울러, 본 발명은 상기 항종양 아데노바이러스를 포함하는 암 치료용 조성물을 제공한다.
본 발명에 따르면, 본원발명의 이중 가닥 siRNA는 제 1 핵산 및 제 2 핵산의 발현을 동시에 억제함으로써, 암세포의 사멸을 촉진하고, 각각의 siRNA를 함께 처리한 것보다 항암 활성이 현저하며, 항암제와의 병용 처리에서 암세포 사멸을 시너지적으로 향상시키는 효과가 있고, 이를 포함하는 shRNA를 코딩하는 발현 카세트와 hTERT 프로모터를 포함하는 아데노바이러스는 체내 면역 반응을 회피하여 암세포에 특이적으로 전달되어 전신 치료 효과가 있으며, 국소 전달이 가능하고, 선택성이 뛰어나며, 최소 침습 치료로도 현저한 항암 효과를 나타내, 다양한 암종에 항암용 조성물 또는 항암보조제로서 유용하게 이용될 수 있다.
도 1은 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트를 포함하는 shRNA를 세포 내에서 발현하기 위한 벡터의 맵을 나타낸 도이다.
도 2는 본 발명의 세트 1 내지 9의 이중 표적 이중 가닥 siRNA에 의한 mTOR 또는 STAT3 유전자 발현 억제 효과를 확인한 도이다.
도 3은 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트 10(si-BB1)에 의한 BCL2 유전자(좌) 및 BI-1 유전자(우)의 발현 억제 효과를 확인한 도이다.
도 4는 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트 11 내지 15에 의한 BCL2 유전자 및 BI-1 유전자의 발현 억제 효과를 확인한 도이다:
NC: 대조군 siRNA; 및
si-BB2 내지 si-BB6: 본 발명의 siRNA 세트 11 내지 15.
도 5는 암 세포주에서 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트 16에 의한 AR 유전자 및 mTOR 유전자의 발현 억제 효과를 확인한 도이다:
A: h460 세포주;
B: pc3 세포주;
NC: 대조군 siRNA;
siAR: AR에 대한 siRNA;
simTOR: mTOR에 대한 siRNA; 및
si-AT1: 본 발명의 AR 및 mTOR 이중 표적 siRNA 세트 16.
도 6은 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트 17-28에 의한 A549 세포주에서의 AR 유전자 및 mTOR 유전자의 발현 억제 효과를 확인한 도이다:
NC: 대조군 siRNA; 및
si-AT2 내지 si-AT13: 본 발명의 siRNA 세트 17 내지 28.
도 7은 본 발명의 c-MET 및 PD-L1을 동시에 억제할 수 있는 이중 표적 siRNA(double strand) 세트에 의한 c-MET 및 PD-L1 유전자의 발현 억제 효과를 다양한 암세포주에서 확인한 도이다.
도 8은 서열번호 66의 TTGGATCCAA 루프 shRNA 서열 또는 서열번호 67의 TTCAAGAGAG 루프 shRNA 서열을 코딩하는 서열을 포함하는 벡터에 의한 mTOR 및 STAT3의 발현량을 shRNA 발현 카세트의 DNA 양에 따라 확인한 도이다.
도 9는 단일 타겟 siRNA 두 가지를 직렬로 연결한 것과 본 발명의 이중 타겟 shRNA의 유전자 발현 억제 효과를 비교한 도이다.
도 10은 본 발명의 이중 표적 siRNA (세트 1 내지 9의 이중 표적 siRNA)로 mTOR 및 STAT3를 동시에 억제하였을 때의 인간 폐암세포주 A549 세포의 세포 생존율을 확인한 도이다.
도 11은 시스플라틴 처리 후, 본 발명의 이중 표적 siRNA로 mTOR 및 STAT3를 동시에 억제하였을 때의 인간 폐암세포주 A549 세포의 세포 생존율을 확인한 도이다.
도 12는 파클리탁셀 처리 후, 본 발명의 이중 표적 siRNA로 mTOR 및 STAT3를 동시에 억제하였을 때의 인간 폐암세포주 A549 세포의 세포 생존율을 확인한 도이다.
도 13은 5-FU(5-fluorouracil) 처리 후, 본 발명의 이중 표적 siRNA로 mTOR 및 STAT3를 동시에 억제하였을 때의 인간 폐암세포주 A549 세포의 세포 생존율을 확인한 도이다.
도 14는 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트와 항암제의 병용처리에 의한 암세포 사멸을 확인한 도이다:
A: 항암제 + Bcl2 siRNA + BI-1 siRNA 병용 처리; 및
B: 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트 10 (si-BB1) + 항암제 병용처리.
도 15는 항암제로 사용되고 있는 Bcl2 억제제인 ABT-737과 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트 10 (si-BB1)의 암세포 사멸 효과와, 이들의 병용 처리에 의한 시너지 효과를 확인한 도이다.
도 16은 이중 표적 siRNA 세트 10(si-BB1)과 항암제의 병용 처리에 의한 암세포 사멸 효과를 BCL2 유전자에 대한 siRNA 및 BI-1 유전자에 대한 siRNA를 함께 처리한 군과 비교한 도이다.
도 17은 암 세포주에서 이중 표적 siRNA 세트 1의 항암제의 병용 처리에 의한 암세포 사멸 효과를 확인한 도이다:
NC: 대조군 siRNA;
no treat: 항암제를 처리하지 않은 대조군;
si-AT1: 본 발명의 AR 및 mTOR 이중 표적 siRNA 세트 16;
A: DU145 세포주; 및
B: H460 세포주.
도 18은 본 발명의 아데노바이러스의 구조를 모식화한 도이다.
도 19는 본 발명의 아데노바이러스 벡터의 벡터맵을 나타낸 도이다:
Bs-shRNA: 본 발명의 이중 표적 shRNA를 코딩하는 서열 삽입 부위.
도 20은 hTERT 프로모터 및 이중 표적 shRNA를 코딩 및 발현하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102에 의한 mTOR 및 STAT3 유전자의 발현 억제 효과를 방광암 세포주 T24 및 253JBV에서 확인한 도이다.
도 21은 hTERT 프로모터 및 이중 표적 shRNA를 코딩 및 발현하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102에 의한 mTOR 및 STAT3 유전자의 발현 억제 효과를 두경부암 세포주 FaDu 및 HSC-2에서 확인한 도이다.
도 22는 hTERT 프로모터 및 이중 표적 shRNA를 코딩 및 발현하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102에 의한 mTOR 및 STAT3 유전자의 발현 억제 효과를 피부 편평세포암 세포주 A431 및 HSC-5에서 확인한 도이다.
도 23은 방광암 세포주 T24 및 253J-BV에서 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102에 의한 mTOR 및 STAT3 유전자의 발현 억제 효과를 단백질 수준에서 확인한 도이다.
도 24는 hTERT 프로모터 및 이중 표적 shRNA 발현 카세트를 포함하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA101에 의한 BCL2 및 BI-1 유전자의 발현 억제 효과를 확인한 도이다.
도 25는 hTERT 프로모터 및 이중 표적 shRNA발현 카세트를 포함하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA103에 의한 AR 및 mTOR 유전자의 발현 억제 효과를 전립선암 세포주 LNcap에서 확인한 도이다.
도 26은 hTERT 프로모터 및 이중 표적 shRNA발현 카세트를 포함하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA103에 의한 AR 및 mTOR 유전자의 발현 억제 효과를 전립선암 세포주 C42B 및 22Rv1에서 in vitro로 확인한 도이다.
도 27은 hTERT 프로모터 및 이중 표적 shRNA발현 카세트를 포함하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA103에 의한 AR 및 mTOR 유전자의 발현 억제 효과를 in vivo로 확인한 도이다.
도 28은 hTERT 프로모터 및 이중 표적 shRNA발현 카세트를 포함하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA104에 의한 c-MET 및 PD-L1 유전자의 발현 억제 효과를 확인한 도이다.
도 29는 hTERT 프로모터 및 이중 표적 shRNA 발현 카세트를 포함하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA101에 의한 암세포주의 사멸 효과를 확인한 도이다.
도 30은 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102에 의한 방광암 세포주 RT4, T24 및 253J-BV의 사멸 효과를 확인한 도이다.
도 31은 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102에 의한 두경부암 세포주 FaDu 및 HSC-2의 사멸 효과를 확인한 도이다.
도 32는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102에 의한 피부 편평세포암 세포주 A431 및 HSC-5의 사멸 효과를 확인한 도이다.
도 33은 hTERT 프로모터 및 이중 표적 shRNA 발현 카세트를 포함하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA103에 의한 암세포주 LNcap의 사멸 효과를 확인한 도이다.
도 34는 hTERT 프로모터 및 이중 표적 shRNA 발현 카세트를 포함하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA103에 의한 암세포주 C42B 및 22Rv1 세포주의 사멸 효과를 확인한 도이다.
도 35는 생체 내 방광암 세포 (253J-BV)에 대한 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102의 항암 효과를 확인한 도이다.
도 36는 생체 내 두경부암 세포 (FaDu)에 대한 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102의 항암 효과를 확인한 도이다.
도 37는 생체 내 형성된 종양 (방광암)에 대한 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102의 항암 효과를 확인한 도이다.
도 38은 생체 내 형성된 종양 (방광암)에 대한 투여한 횟수에 따른 CA102의 항암 효과를 확인한 도이다.
도 39은 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102의 투여량에 따른 교모세포종 치료 효과를 in vivo로 확인한 도이다.
도 40은 hTERT 프로모터 및 이중 표적 shRNA 발현 카세트를 포함하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA103에 의한 전립선암 치료 효과를 in vivo로 확인한 도이다.
도 41은 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102 및 이와 시스플라틴의 병용 처리에 의한 방광암 치료 효과를 in vivo로 확인한 도이다.
이하, 본 발명의 구현예로 본 발명을 상세히 설명하기로 한다. 다만, 하기 구현예는 본 발명에 대한 예시로 제시되는 것으로, 이에 의해 본 발명이 제한되지는 않으며 본 발명은 후술하는 특허청구범위의 기재 및 그로부터 해석되는 균등 범주 내에서 다양한 변형 및 응용이 가능하다.
달리 지시되지 않는 한, 핵산은 좌측에서 우측으로 5'→3' 방향으로 기록된다. 명세서 내에서 열거된 수치 범위는 범위를 정의하는 숫자를 포함하고, 정의된 범위 내의 각각의 정수 또는 임의의 비-정수 분획을 포함한다.
달리 정의되지 않는 한, 본원에서 사용된 모든 기술적 및 과학적 용어는 본 발명이 속하는 분야의 당업자가 통상적으로 이해하는 것과 동일한 의미를 갖는다. 본원에 기술된 것들과 유사하거나 등가인 임의의 방법 및 재료가 본 발명을 테스트하기 위한 실행에서 사용될 수 있지만, 바람직한 재료 및 방법이 본원에서 기술된다.
일 측면에서, 본 발명은 인간 텔로미어 프로모터(hTERT); 및 제 1 핵산을 표적서열로 하는 염기 서열 및 제 2 핵산을 표적서열로 하는 염기 서열을 포함하는 발현 카세트를 포함하는 항종양 아데노바이러스에 관한 것이다.
일 구현예에서, 제 1 핵산을 표적서열로 하는 염기 서열과, 제 2 핵산을 표적하는 염기서열은 부분적으로 또는 100% 역상보서열일 수 있으며, 생체 내에서 발현하는 경우, 제 1 핵산을 표적하는 서열과 제 2 핵산을 표적하는 서열은 이중가닥을 형성하고, 바람직하게는 shRNA를 형성할 수 있다.
일 구현예에서, 제 1 핵산을 표적서열로 하는 염기 서열과, 제 2 핵산을 표적하는 염기서열은 유전자 발현시, 부분적 또는 100% 상보적으로 결합하여 이중가닥을 형성할 수 있다.
일 구현예에서, 인간 텔로미어 프로모터는 아데노바이러스의 내재적 유전자와 작동 가능하게 연결될 수 있다.
본 발명에 있어서, 용어 "작동가능하게 연결된"은 유전자 발현 조절 서열(예: 프로모터, 시그널 서열, 또는 전사조절 인자 결합 위치의 어레이)과 다른 유전자 서열 사이의 기능적인 결합을 의미하며, 이에 의해 상기 조절 서열은 상기 다른 유전자 서열의 전사 및/또는 해독을 조절하게 된다.
일 구현예에서, hTERT 프로모터는 서열번호 74의 염기서열을 포함할 수 있다. 또한, hTERT 프로모터서열은 공지의 다양한 변형서열을 포함할 수 있다.
일 구현예에서, 아데노바이러스의 내재적 유전자는 5'ITR-C1-C2-C3-C4-C5 3'ITR의 구조를 가지며; 상기 C1은 E1A (서열번호 75), E1B (서열번호 77) 또는 E1A-E1B를 포함하고; 상기 C2는 E2B-L1-L2-L3-E2A-L4를 포함하며; 상기 C3는 E3를 포함하지 않거나 E3를 포함하고; 상기 C4는 L5를 포함하며; 및 상기 C5는 E4를 포함하지 않거나 E4를 포함할 수 있고, 서열번호 78의 염기서열을 포함할 수 있다.
일 구현예에서, 아데노바이러스는 E3 영역이 일부 결실될 수 있으며, 결실된 염기서열은 서열번호 82의 염기서열을 포함할 수 있다.
일 구현예에서, 발현 카세트가 아데노바이러스의 내재적 유전자의 C3 부위에 위치할 수 있다.
일 구현예에서, hTERT 프로모터가 아데노바이러스의 내재적 유전자의 E1A 및 E1B와 작동가능하게 연결될 수 있다.
일 구현예에서, 아데노바이러스의 내재적 유전자의 E1A 및 E1B 사이에 IRES 서열 (서열번호 76)이 추가로 포함될 수 있다.
일 구현예에서, 상기 발현 카세트는 shRNA를 코딩 및 발현할 수 있다.
일 구현예에서, 상기 shRNA는 동시에 제 1 핵산 및 제 2 핵산의 발현을 억제할 수 있다.
일 구현예에서, 본 발명의 항종양 아데노바이러스는 RNA 간섭에 의해 핵산의 mRNA를 분해하거나 번역을 억제함으로써 발현을 억제할 수 있다.
일 구현예에서, 본 발명의 발현 카세트는 제 1 핵산 또는 제 2 핵산에 특이적인 센스 가닥 및 제 2 핵산 또는 제 1 핵산에 특이적인 안티 센스 가닥이 부분적으로 상보적인 결합을 이루고 있는 이중 가닥 siRNA를 발현시킴으로써 제 1 핵산 및 제 2 핵산을 동시에 억제할 수 있다.
본 발명에서 사용되는 용어, "발현 억제"란 표적 유전자의 발현 또는 번역 저하를 야기하는 것을 의미하며, 바람직하게는 이에 의해 표적 유전자 발현이 탐지 불가능해지거나 무의미한 수준으로 존재하게 되는 것을 의미한다.
본 발명에서 사용되는 용어, "siRNA(small interfering RNA)"란 특정 mRNA의 절단(cleavage)을 통하여 RNAi(RNA interference) 현상을 유도할 수 있는 짧은 이중사슬 RNA를 의미한다. 일반적으로 siRNA는 타겟 유전자의 mRNA와 상동인 서열을 가지는 센스 RNA 가닥과 이와 상보적인 서열을 가지는 안티센스 RNA 가닥으로 구성되나, 본 발명의 이중 가닥 siRNA는 센스 RNA 가닥이 제 1 핵산 또는 제 2 핵산에 특이적인 siRNA (제 1 핵산 또는 제 2 핵산에 대한 안티센스 가닥)이고, 안티센스 RNA 가닥이 제 2 핵산 또는 제 1 핵산에 특이적인 siRNA(제 2 핵산 또는 제 1 핵산에 대한 안티센스 가닥)이므로, 이중 가닥의 siRNA가 각각 동시에 제 1 핵산 또는 제 2 핵산을 또는 이의 발현을 억제할 수 있다.
본 발명의 용어 "shRNA(short hairpin RNA)"란, 단일가닥 RNA에서 부분적으로 회문상의 염기서열을 포함함으로써, 3´영역에 이중가닥 구조를 가지고 헤어핀과 같은 구조를 형성하고, 세포내에서 발현된 후에 세포내에 존재하는 RNase의 일종인 dicer에 의하여 절단되어 siRNA로 변환될 수 있는 RNA를 의미하는데, 상기 이중가닥 구조의 길이는 특별히 한정되지는 않으나, 바람직하게는 10 뉴클레오티드 이상이고, 보다 바람직하게는 20 뉴클레오티드 이상이다. 본 발명에 있어서, 상기 shRNA는 발현 카세트에 포함될 수 있으며, 상기 shRNA는 각 유전자에 대한 siRNA 안티센스 가닥 및 센스 가닥으로 이루어진 세트 서열에서 U를 T로 변환한 뒤, 센스 가닥의 3'에 TTGGATCCAA (TTGGATCCAA 루프) 또는 TTCAAGAGAG (TTCAAGAGAG 루프), 안티센스 가닥 및 TT를 연결하여 shRNA를 코딩하는 발현 카세트를 제작하고 이를 세포 내에서 발현시킴으로써 생산할 수 있다.
일 구현예에서, 제 1 핵산은 제 2 핵산의 역상보 서열과 60% 이상의 상보성을 갖는 염기서열을 포함할 수 있고, 제 2 핵산은 제 1 핵산에 대한 역상보 서열과 60% 이상의 상보성을 갖는 염기서열을 포함할 수 있다.
일 구현예에서, 제 1 핵산은 제 2 핵산의 역상보 서열과 70%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99% 이상의 상보성을 갖는 염기서열을 포함할 수 있고, 제 2 핵산은 제 1 핵산에 대한 역상보 서열과 70%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99% 이상의 상보성을 갖는 염기서열을 포함할 수 있다.
발현 카세트에 포함된 제 1 핵산을 표적서열로 하는 염기 서열 또는 제 2 핵산을 표적서열로 하는 염기 서열의 변이체가 본 발명의 범위 내에 포함된다. 본 발명의 발현 카세트는 이를 구성하는 핵산 분자의 작용성 등가물, 예를 들어, 핵산 분자의 일부 염기서열이 결실(deletion), 치환(substitution) 또는 삽입(insertion)에 의해 변형되었지만, 염기 서열 분자와 기능적으로 동일한 작용을 할 수 있는 변이체(variants)를 포함하는 개념이다. 핵산 분자에 대한 "서열 상동성의 %"는 두 개의 최적으로 배열된 서열과 비교 영역을 비교함으로써 확인되며, 비교 영역에서의 핵산 분자 서열의 일부는 두 서열의 최적 배열에 대한 참고 서열(추가 또는 삭제를 포함하지 않음)에 비해 추가 또는 삭제(즉, 갭)를 포함할 수 있다.
일 구현예에서, 핵산은 암과 관련된 유전자일 수 있다.
일 구현예에서, 암과 관련된 유전자는 암에서 발현이 증가되는 암유전자일 수 있으며, 암유전자는 아폽토시스(Apoptosis) 관련 유전자, 전사인자(Trnscription Factor) 유전자, 전이(Metastasis) 관련 유전자, 혈관신생(Angiogenesis) 관련 유전자, 암세포 특이적 유전자 또는 티로신-카이네이즈(Tyrosine-Kinase) 유전자일 수 있다.
일 구현예에서, 상기 아폽토시스 관련 유전자는 ABL1, AKT1, AKT2, BARD1, BAX, BCL11B, BCL2, BCL2A1, BCL2L1, BCL2L12, BCL3, BCL6, BIRC2, BIRC3, BIRC5, BRAF, CARD11, CAV1, CBL, CDC25A, CDKN1A, CFLAR, CNR2, CTNNB1, CUL4A, DAXX, DDIT3, E2F1, E2F3, E2F5, ESPL1, FOXO1, HDAC1, HSPA5, IGF1R, IGF2, JUN, JUNB, JUND, MALT1, MAP3K7, MCL1, MDM2, MDM4, MYB, MYC, NFKB2, NPM1, NTRK1, PAK1, PAX3, PML, PRKCA, PRKCE, PTK2B, RAF1, RHOA, TGFB1, TNFRSF1B, TP73, TRAF6, YWHAG, YWHAQ 또는 YWHAZ일 수 있으며; 상기 전사인자 유전자는 AR, ARID3A, ASCL1, ATF1, ATF3, BCL11A, BCL11B, BCL3, BCL6, CDC5L, CDX2, CREB1, CUX1, DDIT3, DLX5, E2F1, E2F3, E2F5, ELF4, ELK1, ELK3, EN2, ERG, ETS1, ETS2, ETV1, ETV3, ETV4, ETV6, FEV, FEZF1, FLI1, FOS, FOSL1, FOXA1, FOXG1, FOXM1, FOXO1, FOXP1, FOXQ1, GATA1, GATA6, GFI1, GFI1B, GLI1, GLI2, GLI3, HES6, HHEX, HLF, HMGA1, HMGA2, HOXA1, HOXA9, HOXD13, HOXD9, ID1, ID2, IKZF1, IRF2, IRF4, JUN, JUNB, JUND, KAT6A, KDM2A, KDM5B, KLF2, KLF4, KLF5, KLF6, KLF8, KMT2A, LEF1, LHX1, LMX1B, MAF, MAFA, MAFB, MBD1, MECOM, MEF2C, MEIS1, MITF, MYB, MYC, MYCL, MYCN, NANOG, NCOA3, NFIB, NFKB2, NKX2-1, OTX2, PATZ1, PAX2, PAX3, PAX4, PAX8, PBX1, PBX2, PITX2, PLAG1, PLAGL2, PPARG, PPP1R13L, PRDM10, PRDM13, PRDM14, PRDM15, PRDM16, PRDM6, PRDM8, PRDM9, RARA, REL, RERE, RUNX1, RUNX3, SALL4, SATB1, SFPQ, SIX1, SNAI1, SOX2, SOX4, SPI1, SREBF1, STAT3, TAF1, TAL1, TAL2, TBX2, TBX3, TCF3, TFCP2, TFE3, THRA, TLX1, TP63, TP73, TWIST1, WT1, YBX1, YY1, ZBTB16, ZBTB7A, ZIC2, ZNF217 또는 ZNF268일 수 있고; 상기 전이 관련 유전자는 AKT1, AKT2, AR, CBL, CDH1, CRK, CSF1, CTNNB1, CTTN, CXCR4, EGFR, FGFR1, FLT3, FYN, GLI1, ILK, ITGA3, JAK2, MET, PDGFRB, PLXNB1, PRKCI, PTCH1, PTPN11, RAC1, RHOA, RHOC, ROCK1, SMO, SNAI1, SRC, TCF3 또는 WT1일 수 있으며; 상기 혈관신생 관련 유전자는 BRAF, CAV1, CTGF, EGFR, ERBB2, ETS1, FGF4, FGF6, FGFR1, FGFR3, FGFR4, ID1, NRAS, PDGFB, PDGFRA, PDGFRB 또는 SPARC일 수 있고; 상기 티로신-카이네이즈 유전자는 ABL1, ABL2, ALK, AXL, BLK, EGFR, EPHA2, ERBB2, ERBB3, ERBB4, FES, FGFR1, FGFR2, FGFR3, FGFR4, FGR, FLT3, FYN, ITK, JAK1, JAK2, KIT, LCK, MERTK, MET, MST1R, NTRK1, NTRK3, PDGFRA, PDGFRB, PTK2B, PTK7, RET, ROS1, SRC, SYK, TEC 또는 YES1일 수 있다.
일 구현예에서, 상기 암유전자는 SEPTIN9, ACOD1, ACTN4, ADAM28, ADAM9, ADGRF1, ADRBK2, AFF1, AFF3, AGAP2, AGFG1, AGRN, AHCYL1, AHI1, AIMP2, AKAP13, AKAP9, AKIRIN2, AKTIP, ALDH1A1, ALL1, ANIB1, ANP32C, ANP32D, AQP1, ARAF, ARHGEF1, ARHGEF2, ARHGEF5, ASPSCR1, AURKA, BAALC, BAIAP2L1, BANP, BCAR4, BCKDHB, BCL9, BCL9L, BCR, BMI1, BMP7, BOC, BRD4, BRF2, CABIN1, CAMK1D, CAPG, CBFB, CBLB, CBLL1, CBX7, CBX8, CCDC28A, CCDC6, CCNB1, CCNB2, CCND1, CCNE1, CCNL1, CD24, CDC25C, CDC6, CDH17, CDK1, CDK14, CDK4, CDK5R2, CDK6, CDK8, CDKN1B, CDKN3, CDON, CEACAM6, CENPW, CHD1L, CHIC1, CHL1, CKS1B, CMC4, CNTN2, COPS3, COPS5, CRKL, CRLF2, CROT, CRTC1, CRYAB, CSF1R, CSF3, CSF3R, CSNK2A1, CSNK2A2, CT45A1, CTBP2, CTNND2, CTSZ, CUL7, CXCL1, CXCL2, CXCL3, CYGB, CYP24A1, DCD, DCUN1D1DDB2, DDHD2, DDX6, DEK, DIS3, DNPH1, DPPA2, DPPA4, DSG3, DUSP12, DUSP26, ECHS1, ECT2, EEF1A1, EEF1A2, EEF1D, EIF3E, EIF3I, EIF4E, EIF5A2, ELAVL1, ELL, EML4, EMSY, ENTPD5, EPCAM, EPS8, ERAS, ERGIC1, ERVW-1, EVI2A, EVI5, EWSR1, EZH2, FAM189B, FAM72A, FAM83D, FASN, FDPS, FGF10, FGF3, FGF5, FGF8, FR1OP, FHL2, FIP1L1, FNDC3B, FRAT1, FUBP1, FUS, FZD2, GAB2, GAEC1, GALNT10, GALR2, GLO1, GMNN, GNA12, GNA13, GNAI2, GNAQ, GNAS, GOLPH3, GOPC, GPAT4, GPM6A, GPM6B, GPR132, GREM1, GRM1, GSK3A, GSM1, H19, HAS1, HAX1, HDGFRP2, HMGN5, HNRNPA1, HOTAIR, HOTTIP, HOXA-AS2, HRAS, HSPA1A, HSPA4, HSPB1, HULC, IDH1, IFNG, IGF2BP1, IKBKE, IL7R, INPPL1, INTS1, INTS2, INTS3, INTS4, INTS5, INTS7, INTS8, IRS2, IST1, JUP, KDM4C, KIAA0101, KIAA1524, KIF14, KRAS, KSR2, LAMTOR5, LAPTM4B, LCN2, LDHB, LETMD1, LIN28A, LIN28B, LMO1, LMO2, LMO3, LMO4, LSM1, LUADT1, MACC1, MACROD1, MAGEA11, MALAT1, MAML2, MAP3K8, MAPRE1, MAS1, MCC, MCF2, MCF2L, MCTS1, MEFV, MFHAS1, MFNG, MIEN1, MINA, MKL2, MLANA, MLLT1, MLLT11, MLLT3, MLLT4, MMP12, MMS22L, MN1, MNAT1, MOS, MPL, MPST, MRAS, MRE11A, MSI1, MTCP1, MTDH, MTOR, MUC1, MUC4, MUM1, MYD88, NAAA, NANOGP8, NBPF12, NCOA4, NEAT1, NECTIN4, NEDD4, NEDD9, NET1, NINL, NME1, NOTCH1, NOTCH4, NOV, NSD1, NUAK2, NUP214, NUP98, NUTM1, OLR1, PA2G4, PADI2, PAK7, PARK7, PARM1, PBK, PCAT1, PCAT5, PDGFA, PDZK1IP1, PELP1, PFN1P3, PIGU, PIK3CA, PIK3R1, PIM1, PIM2, PIM3, PIR, PIWIL1, PLAC8, PLK1, PPM1D, PPP1R10, PPP1R14A, PPP2R1A, PRAME, PRDM12, PRMT5, PSIP1, PSMD10, PTCH2, PTMA, PTP4A1, PTP4A2, PTP4A3, PTTG1, PTTG1IP, PTTG2, PVT1, RAB11A, RAB18, RAB22A, RAB23, RAB8A, RALGDS, RAP1A, RASSF1, RBM14, RBM15, RBM3, RBMY1A1, RFC3, RGL4, RGR, RHO, RING1, RINT1, RIT1, RNF43, RPL23, RRAS, RRAS2, RSF1, RUNX1T1, S100A4, S100A7, S100A8, SAG, SART3, SBSN, SEA, SEC62, SERTAD1, SERTAD2, SERTAD3, SET, SETBP1, SETDB1, SGK1, SIRT1, SIRT6, SKI, SKIL, SKP2, SLC12A5, SLC3A2, SMR3B, SMURF1, SNCG, SNORA59A, SNORA80E, SPAG9, SPATA4, SPRY2, SQSTM1, SRSF1, SRSF2, SRSF3, SRSF6, SS18, SSX1, SSX2, SSX2B, STIL, STMN1, STRA6, STYK1, SUZ12, SWAP70, SYT1, TAC1, TACSTD2, TAF15, TALDO1, TAZ, TBC1D1, TBC1D15, TBC1D3, TBC1D3C, TBC1D7, TCL1A, TCL1B, TCL6, TCP1, TFG, TGM3, TINCR, TKTL1, TLE1, TMEM140, TMPOP2, TMPRSS2, TNS4, TPD52, TPR, TRE17, TREH, TRIB1, TRIB2, TRIM28, TRIM32, TRIM8, TRIO, TRIP6, TSPAN1, TSPY1, TXN, TYMS, TYRP1, UBE2C, UBE3C, UCA1, UCHL1, UHRF1, URI1, USP22, USP4, USP6, VAV1, VAV2, VAV3, VIM, WAPL, WHSC1, WHSC1L1, WISP1, WNT1, WNT10A, WNT10B, WNT2, WNT3, WNT5A, WWTR1, XCL1, XIAP, YAP1, YEATS4, YY1AP1, ZEB1-AS1, ZFAND4, ZFAS1, ZMYM2, ZNF703 또는 ZNHIT6일 수 있다.
일 구현예에서, 암세포 특이적 유전자는 종양 세포 표면에서 발현되는 PD-L1(Programmed death-ligand 1)일 수 있다.
일 구현예에서, 본 발명의 발현 카세트의 전사체가 표적으로 하는 제 1 핵산 및 제 2 핵산은 ABL1, AKT1, AKT2, BARD1, BAX, BCL11B, BCL2, BCL2A1, BCL2L1, BCL2L12, BCL3, BCL6, BIRC2, BIRC3, BIRC5, BRAF, CARD11, CAV1, CBL, CDC25A, CDKN1A, CFLAR, c-MET, CNR2, CTNNB1, CUL4A, DAXX, DDIT3, E2F1, E2F3, E2F5, ESPL1, FOXO1, HDAC1, HSPA5, IGF1R, IGF2, JUN, JUNB, JUND, MALT1, MAP3K7, MCL1, MDM2, MDM4, MYB, MYC, NFKB2, NPM1, NTRK1, PAK1, PAX3, PML, PRKCA, PRKCE, PTK2B, RAF1, RHOA, TGFB1, TNFRSF1B, TP73, TRAF6, YWHAG, YWHAQ, YWHAZ, AR, ARID3A, ASCL1, ATF1, ATF3, BCL11A, BCL11B, BCL3, BCL6, CDC5L, CDX2, CREB1, CUX1, DDIT3, DLX5, E2F1, E2F3, E2F5, ELF4, ELK1, ELK3, EN2, ERG, ETS1, ETS2, ETV1, ETV3, ETV4, ETV6, FEV, FEZF1, FLI1, FOS, FOSL1, FOXA1, FOXG1, FOXM1, FOXO1, FOXP1, FOXQ1, GATA1, GATA6, GFI1, GFI1B, GLI1, GLI2, GLI3, HES6, HHEX, HLF, HMGA1, HMGA2, HOXA1, HOXA9, HOXD13, HOXD9, ID1, ID2, IKZF1, IRF2, IRF4, JUN, JUNB, JUND, KAT6A, KDM2A, KDM5B, KLF2, KLF4, KLF5, KLF6, KLF8, KMT2A, LEF1, LHX1, LMX1B, MAF, MAFA, MAFB, MBD1, MECOM, MEF2C, MEIS1, MITF, MYB, MYC, MYCL, MYCN, NANOG, NCOA3, NFIB, NFKB2, NKX2-1, OTX2, PATZ1, PAX2, PAX3, PAX4, PAX8, PBX1, PBX2, PD-L1, PITX2, PLAG1, PLAGL2, PPARG, PPP1R13L, PRDM10, PRDM13, PRDM14, PRDM15, PRDM16, PRDM6, PRDM8, PRDM9, RARA, REL, RERE, RUNX1, RUNX3, SALL4, SATB1, SFPQ, SIX1, SNAI1, SOX2, SOX4, SPI1, SREBF1, STAT3, TAF1, TAL1, TAL2, TBX2, TBX3, TCF3, TFCP2, TFE3, THRA, TLX1, TP63, TP73, TWIST1, WT1, YBX1, YY1, ZBTB16, ZBTB7A, ZIC2, ZNF217, ZNF268, AKT1, AKT2, AR, CBL, CDH1, CRK, CSF1, CTNNB1, CTTN, CXCR4, EGFR, FGFR1, FLT3, FYN, GLI1, ILK, ITGA3, JAK2, MET, PDGFRB, PLXNB1, PRKCI, PTCH1, PTPN11, RAC1, RHOA, RHOC, ROCK1, SMO, SNAI1, SRC, TCF3, WT1, BRAF, CAV1, CTGF, EGFR, ERBB2, ETS1, FGF4, FGF6, FGFR1, FGFR3, FGFR4, ID1, NRAS, PDGFB, PDGFRA, PDGFRB, SPARC, ABL1, ABL2, ALK, AXL, BLK, EGFR, EPHA2, ERBB2, ERBB3, ERBB4, FES, FGFR1, FGFR2, FGFR3, FGFR4, FGR, FLT3, FYN, ITK, JAK1, JAK2, KIT, LCK, MERTK, MET, MST1R, NTRK1, NTRK3, PDGFRA, PDGFRB, PTK2B, PTK7, RET, ROS1, SRC, SYK, TEC, YES1, SEPTIN9, ACOD1, ACTN4, ADAM28, ADAM9, ADGRF1, ADRBK2, AFF1, AFF3, AGAP2, AGFG1, AGRN, AHCYL1, AHI1, AIMP2, AKAP13, AKAP9, AKIRIN2, AKTIP, ALDH1A1, ALL1, ANIB1, ANP32C, ANP32D, AQP1, ARAF, ARHGEF1, ARHGEF2, ARHGEF5, ASPSCR1, AURKA, BAALC, BAIAP2L1, BANP, BCAR4, BCKDHB, BCL9, BCL9L, BCR, BMI1, BMP7, BOC, BRD4, BRF2, CABIN1, CAMK1D, CAPG, CBFB, CBLB, CBLL1, CBX7, CBX8, CCDC28A, CCDC6, CCNB1, CCNB2, CCND1, CCNE1, CCNL1, CD24, CDC25C, CDC6, CDH17, CDK1, CDK14, CDK4, CDK5R2, CDK6, CDK8, CDKN1B, CDKN3, CDON, CEACAM6, CENPW, CHD1L, CHIC1, CHL1, CKS1B, CMC4, CNTN2, COPS3, COPS5, CRKL, CRLF2, CROT, CRTC1, CRYAB, CSF1R, CSF3, CSF3R, CSNK2A1, CSNK2A2, CT45A1, CTBP2, CTNND2, CTSZ, CUL7, CXCL1, CXCL2, CXCL3, CYGB, CYP24A1, DCD, DCUN1D1DDB2, DDHD2, DDX6, DEK, DIS3, DNPH1, DPPA2, DPPA4, DSG3, DUSP12, DUSP26, ECHS1, ECT2, EEF1A1, EEF1A2, EEF1D, EIF3E, EIF3I, EIF4E, EIF5A2, ELAVL1, ELL, EML4, EMSY, ENTPD5, EPCAM, EPS8, ERAS, ERGIC1, ERVW-1, EVI2A, EVI5, EWSR1, EZH2, FAM189B, FAM72A, FAM83D, FASN, FDPS, FGF10, FGF3, FGF5, FGF8, FR1OP, FHL2, FIP1L1, FNDC3B, FRAT1, FUBP1, FUS, FZD2, GAB2, GAEC1, GALNT10, GALR2, GLO1, GMNN, GNA12, GNA13, GNAI2, GNAQ, GNAS, GOLPH3, GOPC, GPAT4, GPM6A, GPM6B, GPR132, GREM1, GRM1, GSK3A, GSM1, H19, HAS1, HAX1, HDGFRP2, HMGN5, HNRNPA1, HOTAIR, HOTTIP, HOXA-AS2, HRAS, HSPA1A, HSPA4, HSPB1, HULC, IDH1, IFNG, IGF2BP1, IKBKE, IL7R, INPPL1, INTS1, INTS2, INTS3, INTS4, INTS5, INTS7, INTS8, IRS2, IST1, JUP, KDM4C, KIAA0101, KIAA1524, KIF14, KRAS, KSR2, LAMTOR5, LAPTM4B, LCN2, LDHB, LETMD1, LIN28A, LIN28B, LMO1, LMO2, LMO3, LMO4, LSM1, LUADT1, MACC1, MACROD1, MAGEA11, MALAT1, MAML2, MAP3K8, MAPRE1, MAS1, MCC, MCF2, MCF2L, MCTS1, MEFV, MFHAS1, MFNG, MIEN1, MINA, MKL2, MLANA, MLLT1, MLLT11, MLLT3, MLLT4, MMP12, MMS22L, MN1, MNAT1, MOS, MPL, MPST, MRAS, MRE11A, MSI1, MTCP1, MTDH, MTOR, MUC1, MUC4, MUM1, MYD88, NAAA, NANOGP8, NBPF12, NCOA4, NEAT1, NECTIN4, NEDD4, NEDD9, NET1, NINL, NME1, NOTCH1, NOTCH4, NOV, NSD1, NUAK2, NUP214, NUP98, NUTM1, OLR1, PA2G4, PADI2, PAK7, PARK7, PARM1, PBK, PCAT1, PCAT5, PD-L1, PDGFA, PDZK1IP1, PELP1, PFN1P3, PIGU, PIK3CA, PIK3R1, PIM1, PIM2, PIM3, PIR, PIWIL1, PLAC8, PLK1, PPM1D, PPP1R10, PPP1R14A, PPP2R1A, PRAME, PRDM12, PRMT5, PSIP1, PSMD10, PTCH2, PTMA, PTP4A1, PTP4A2, PTP4A3, PTTG1, PTTG1IP, PTTG2, PVT1, RAB11A, RAB18, RAB22A, RAB23, RAB8A, RALGDS, RAP1A, RASSF1, RBM14, RBM15, RBM3, RBMY1A1, RFC3, RGL4, RGR, RHO, RING1, RINT1, RIT1, RNF43, RPL23, RRAS, RRAS2, RSF1, RUNX1T1, S100A4, S100A7, S100A8, SAG, SART3, SBSN, SEA, SEC62, SERTAD1, SERTAD2, SERTAD3, SET, SETBP1, SETDB1, SGK1, SIRT1, SIRT6, SKI, SKIL, SKP2, SLC12A5, SLC3A2, SMR3B, SMURF1, SNCG, SNORA59A, SNORA80E, SPAG9, SPATA4, SPRY2, SQSTM1, SRSF1, SRSF2, SRSF3, SRSF6, SS18, SSX1, SSX2, SSX2B, STIL, STMN1, STRA6, STYK1, SUZ12, SWAP70, SYT1, TAC1, TACSTD2, TAF15, TALDO1, TAZ, TBC1D1, TBC1D15, TBC1D3, TBC1D3C, TBC1D7, TCL1A, TCL1B, TCL6, TCP1, TFG, TGM3, TINCR, TKTL1, TLE1, TMEM140, TMPOP2, TMPRSS2, TNS4, TPD52, TPR, TRE17, TREH, TRIB1, TRIB2, TRIM28, TRIM32, TRIM8, TRIO, TRIP6, TSPAN1, TSPY1, TXN, TYMS, TYRP1, UBE2C, UBE3C, UCA1, UCHL1, UHRF1, URI1, USP22, USP4, USP6, VAV1, VAV2, VAV3, VIM, WAPL, WHSC1, WHSC1L1, WISP1, WNT1, WNT10A, WNT10B, WNT2, WNT3, WNT5A, WWTR1, XCL1, XIAP, YAP1, YEATS4, YY1AP1, ZEB1-AS1, ZFAND4, ZFAS1, ZMYM2, ZNF703 및 ZNHIT6로 이루어진 군으로부터 각각 선택되는 서로 다른 핵산일 수 있다.
일 구현예에서, 제 1 핵산은 STAT3(signal transducer and activator of transcription 3)일 수 있으며, 제 2 핵산은 mTOR(mammalian target of rapamycin)일 수 있고, 이 경우에 발현 카세트는 서열번호 1 및 2, 서열번호 3 및 4, 서열번호 5 및 6, 서열번호 7 및 8, 서열번호 9 및 10, 서열번호 11 및 12, 서열번호 13 및 14, 서열번호 15 및 16, 또는 서열번호 17 및 18의 염기서열에서 U가 T로 변환된 핵산을 포함할 수 있다. 상기에서, 서열번호 1 및 2의 siRNA는 21mer 중 17mer가, 서열번호 3 및 4의 siRNA는 20mer 중 16mer가, 서열번호 5 및 6의 siRNA는 19mer 중 15mer가, 서열번호 7 및 8의 siRNA는 18mer 중 14mer가, 및 서열번호 9 및 10의 siRNA는 17mer 중 16mer가, 서열번호 11 및 12의 siRNA는 20mer 중 17mer가, 서열번호 13 및 14의 siRNA는 19mer 중 16mer가, 서열번호 15 및 16의 siRNA는 18mer 중 15mer가, 및 서열번호 17 및 18의 siRNA는 17mer 중 14mer가 상보적으로 결합할 수 있다. 또한, 제 1 핵산이 STAT3 및 제 2 핵산이 mTOR인 경우 발현 카세트에 포함된 shRNA 발현 DNA (STAT3 및 mTOR 이중타겟 shRNA를 코딩하는 DNA 서열)는 서열번호 66 또는 67의 염기서열을 포함할 수 있다.
일 구현예에서, 제 1 핵산은 BCL2(B-cell lymphoma 2)일 수 있으며, 제 2 핵산은 BI-1(BAX inhibitor 1)일 수 있고, 이 경우에 발현 카세트는 서열번호 19 및 20, 서열번호 21 및 22, 서열번호 23 및 24, 서열번호 25 및 26, 서열번호 27 및 28, 또는 서열번호 29 및 30의 염기서열을 포함할 수 있다. 상기에서, 서열번호 19 및 20으로 이루어진 21mer의 siRNA 세트 10은 15mer가 서로 상보적이이고, 서열번호 21 및 22로 이루어진 20mer의 siRNA 세트 11은 14mer가 서로 상보적이며, 서열번호 23 및 24으로 이루어진 20mer의 siRNA 세트 12는 14mer가 서로 상보적이고, 서열번호 25 및 26으로 이루어진 19mer의 siRNA 세트 13은 13mer가 서로 상보적이며, 서열번호 27 및 28으로 이루어진 19mer의 siRNA 세트 14는 13mer가 서로 상보적이고, 및 서열번호 29 및 30로 이루어진 18mer의 siRNA 세트 15는 12mer가 서로 상보적이다. 하기 표 2의 서열번호 19, 21, 23, 25, 27 또는 29의 siRNA (Antisense Bcl-2)가 Bcl-2의 mRNA에 상보적으로 결합하며, 서열번호 20, 22, 24, 26, 28 또는 30의 siRNA (Antisense BI-1)가 BI-1의 mRNA에 상보적으로 결합할 수 있다. 또한, 제 1 핵산이 BCL2 및 제 2 핵산이 BI-1인 경우 발현 카세트에 포함된 shRNA 발현 DNA는 서열번호 68 또는 69의 염기서열을 포함할 수 있다.
일 구현예에서, 제 1 핵산은 AR(androgen receptor)일 수 있으며, 제 2 핵산은 mTOR(mammalian target of rapamycin)일 수 있고, 이 경우에 발현 카세트는 서열번호 31 및 32, 서열번호 33 및 34, 서열번호 35 및 36, 서열번호 37 및 38, 서열번호 39 및 40, 서열번호 41 및 42, 서열번호 43 및 44, 서열번호 45 및 46, 서열번호 47 및 48, 서열번호 49 및 50, 서열번호 51 및 52, 서열번호 53 및 54, 또는 서열번호 55 및 56의 염기서열을 포함할 수 있다. 상기에서, 서열번호 31 및 32로 이루어진 20mer의 siRNA 세트 16은 18mer가 서로 상보적이며, 서열번호 33 및 34로 이루어진 19mer의 siRNA 세트 17는 17mer가 서로 상보적이고, 서열번호 35 및 36으로 이루어진 18mer의 siRNA 세트 18은 16mer가 서로 상보적이며, 서열번호 37 및 38로 이루어진 17mer의 siRNA 세트 19는 15mer가 서로 상보적이고, 서열번호 39 및 40으로 이루어진 19mer의 siRNA 세트 20은 15mer가 서로 상보적이며, 서열번호 41 및 42로 이루어진 18mer의 siRNA 세트 21은 14mer가 서로 상보적이고, 서열번호 43 및 44로 이루어진 17mer의 siRNA 세트 22은 13mer가 서로 상보적이며, 서열번호 45 및 46으로 이루어진 23mer의 siRNA 세트 23은 19mer가 서로 상보적이고, 서열번호 47 및 48로 이루어진 22mer의 siRNA 세트 24는 18mer가 서로 상보적이며, 서열번호 49 및 50으로 이루어진 22mer의 siRNA 세트 25은 18mer가 서로 상보적이고, 서열번호 51 및 52로 이루어진 21mer의 siRNA 세트 26은 17mer가 서로 상보적이며, 서열번호 53 및 54로 이루어진 20mer의 siRNA 세트 27는 16mer가 서로 상보적이고, 및 서열번호 55 및 56으로 이루어진 21mer의 siRNA 세트 28은 17mer가 서로 상보적이다. 서열번호 31, 33, 35, 37, 39, 41, 43, 45, 47, 49, 51, 53 또는 55의 siRNA (Antisense AR)가 AR의 mRNA에 상보적으로 결합하며, 서열번호 32, 34, 36, 38, 40, 42, 44, 46, 48, 50, 52, 54 또는 56의 siRNA (Antisense mTOR)가 mTOR의 mRNA에 상보적으로 결합할 수 있다. 또한, 제 1 핵산이 AR 및 제 2 핵산이 mTOR인 경우 발현 카세트에 포함된 shRNA 발현 DNA는 서열번호 70 또는 71의 염기서열을 포함할 수 있다.
일 구현예에서, 제 1 핵산은 MGMT(O-6-methylguanine-DNA methyltransferase)일 수 있으며, 제 2 핵산은 mTOR일 수 있고, 이 경우에 발현 카세트는 서열번호 57 및 58의 염기서열을 포함할 수 있다.
일 구현예에서, 제 1 핵산은 BCL2일 수 있으며, 제 2 핵산은 MCL1(MCL1 apoptosis regulator)일 수 있고, 이 경우에 발현 카세트는 서열번호 59 및 60의 염기서열을 포함할 수 있다.
일 구현예에서, 제 1 핵산은 STAT3일 수 있으며, 제 2 핵산은 TFEB(transcription factor EB)일 수 있고, 이 경우에 발현 카세트는 서열번호 61 및 62의 염기서열을 포함할 수 있다.
일 구현예에서, 제 1 핵산은 c-MET(Homo sapiens MET proto-oncogene)일 수 있으며, 제 2 핵산은 PD-L1(Programmed death-ligand 1)일 수 있고, 이 경우에 발현 카세트는 서열번호 63 및 64의 염기서열에서 U가 T로 변환된 핵산을 포함할 수 있다. 상기에서, 서열번호 63 및 64의 siRNA는 19mer 중 15mer가 상보적으로 결합할 수 있다. 또한, 제 1 핵산이 c-MET 및 제 2 핵산이 PD-L1인 경우 발현 카세트에 포함된 shRNA 발현 DNA는 서열번호 72 또는 73의 염기서열을 포함할 수 있다.
일 구현예에서, 발현 카세트는 제 1 핵산을 표적서열로 하는 염기 서열, 헤어핀 구조를 이룰 수 있는 루프 서열, 및 제 2 핵산을 표적서열로 하는 염기 서열을 순차적으로 코딩하는 염기서열을 포함할 수 있다.
일 구현예에서, 발현 카세트는 U6 프로모터에 의하여 발현이 조절될 수 있다.
일 구현예에서, 아데노바이러스는 그룹 C의 혈청형이 5 타입인 아데노바이러스일 수 있다.
일 구현예에서, 본 발명의 항종양 바이러스는 야생형 아데노바이러스에 비해 종양살상능이 높으며, 야생형 아데노바이러스에 hTERT 프로모터가 도입된 아데노바이러스에 비해 종양살상능이 높을 수 있다.
일 측면에서, 본 발명은 본 발명의 항종양 바이러스를 포함하는 암 치료용 조성물에 관한 것이다.
일 구현예에서, 본 발명의 조성물은 항암제를 추가로 포함할 수 있으며, 예를 들어, 아시바이신, 아클라루비신, 아코다졸, 아크로나이신, 아도젤레신, 알라노신, 알데스루킨, 알로푸리놀 소듐, 알트레타민, 아미노글루테티미드, 아모나파이드, 암플리겐, 암사크린, 안드로겐스, 안구이딘, 아피디콜린 글리시네이트, 아사레이, 아스파라기나아제, 5-아자시티딘, 아자티오프린, 바실러스 칼메테-구에린(BCG), 베이커스 안티폴, 베타-2-디옥시티오구아노신, 비스안트렌 HCl, 블레오마이신 설페이트, 불서판, 부티오닌 설폭시민, BWA 773U82, BW 502U83/HCl, BW 7U85 메실레이트, 세라세미드, 카르베티머, 카르보플라틴, 카르무스틴, 클로람부실, 클로로퀴녹살린-설포나미드, 클로로조토신, 크로모마이신 A3, 시스플라틴, 클라드리빈, 코르티코스테로이드, 코리너박테리움 파르붐, CPT-11, 크리스나톨, 사이클로사이티딘, 사이클로포스파미드, 사이타라빈, 사이템베나, 다비스 말리에이트, 데카르바진, 닥티노마이신, 다우노루바이신 HCl, 디아자유리딘, 덱스라족산, 디언하이드로 갈락티톨, 디아지쿠온, 디브로모둘시톨, 디데민 B, 디에틸디티오카르바메이트, 디클라이코알데하이드, 다이하이드로-5-아자사이틴, 독소루비신, 에치노마이신, 데다트렉세이트, 에델포신, 에플롤니틴, 엘리옷스 용액, 엘사미트루신, 에피루비신, 에소루비신, 에스트라머스틴 포스페이트, 에스트로겐, 에타니다졸, 에티오포스, 에토포사이드, 파드라졸, 파자라빈, 펜레티나이드, 필그라스팀, 피나스테라이드, 플라본 아세트산, 플록스유리딘, 플루다라빈 포스페이트, 5'-플루오로우라실, Fluosol™, 플루타미드, 갈륨 나이트레이트, 겜사이타빈, 고세레린 아세테이트, 헤프설팜, 헥사메틸렌 비스아세트아미드, 호모하링토닌, 하이드라진 설페이트, 4-하이드록시안드로스테네디온, 하이드로지우레아, 이다루비신 HCl, 이포스파미드, 4-이포메아놀, 이프로플라틴, 이소트레티노인, 류코보린 칼슘, 류프로라이드 아세테이트, 레바미솔, 리포좀 다우노루비신, 리포좀 포집 독소루비신, 로머스틴, 로니다민, 마이탄신, 메클로레타민 하이드로클로라이드, 멜팔란, 메노가릴, 메르바론, 6-머캅토푸린, 메스나, 바실러스 칼레테-구에린의 메탄올 추출물, 메토트렉세이트, N-메틸포름아미드, 미페프리스톤, 미토구아존, 마이토마이신-C, 미토탄, 미톡산트론 하이드로클로라이드, 모노사이트/마크로파아지 콜로니-자극 인자, 나빌론, 나폭시딘, 네오카르지노스타틴, 옥트레오타이드 아세테이트, 오르마플라틴, 옥살리플라틴, 파크리탁셀, 팔라, 펜토스타틴, 피페라진디온, 피포브로만, 피라루비신, 피리트렉심, 피록산트론 하이드로클로라이드, PIXY-321, 플리카마이신, 포르피머 소듐, 프레드니무스틴, 프로카르바진, 프로게스틴스, 파이라조푸린, 라족산, 사르그라모스팀, 세무스틴, 스피로게르마늄, 스피로무스틴, 스트렙토나이그린, 스트렙토조신, 술로페너르, 수라민 소듐, 타목시펜, 탁소레레, 테가푸르, 테니포사이드, 테레프탈아미딘, 테록시론, 티오구아닌, 티오테파, 티미딘 인젝션, 티아조푸린, 토포테칸, 토레미펜, 트레티노인, 트리플루오페라진 하이드로클로라이드, 트리플루리딘, 트리메트렉세이트, TNF(tumor necrosis factor), 우라실 머스타드, 빈블라스틴 설페이트, 빈크리스틴 설페이트, 빈데신, 비노렐빈, 빈졸리딘, Yoshi 864, 조루비신, 사이토신아라비노시드, 에토포시드, 멜파란, 탁솔 및 이들의 혼합물을 포함할 수 있다. 바람직하게는 시스플라틴, 파클리탁셀, 5-FU(5-fluorouracil), 메토트렉세이트, 독소루비신, 다우노루비신, 사이토신아라비노시드, 에토포시드, 멜파란, 클로람부실, 사이클로포스파마이드, 빈데신, 마이토마이신, 블레오마이신, 타목시펜 및 탁솔이고, 더욱 바람직하게는, 시스플라틴, 파클리탁셀 또는 5-FU(5-fluorouracil)이나, 본 발명의 조성물과 병용 처리하여 항암 효과에 시너지 효과를 나타낼 수 있는 목적을 달성하기 위해서라면, 이에 제한되지 않는다.
상기 암은 대장암, 유방암, 자궁암, 자궁경부암, 난소암, 전립선암, 뇌종양, 두경부암종, 흑색종, 골수종, 백혈병, 림프종, 위암, 폐암, 췌장암, 비소세포성폐암, 간암, 식도암, 소장암, 항문부근암, 나팔관암종, 자궁내막암종, 질암종, 음문암종, 호지킨병, 방광암, 신장암, 수뇨관암, 신장세포암종, 신장골반암종, 골암, 피부암, 두부암, 경부암, 피부흑색종, 안구내흑색종, 내분비선암, 갑상선암, 부갑상선암, 부신암, 연조직육종, 요도암, 음경암, 중추신경계(central nervous system; CNS) 종양, 1차 CNS 림프종, 척수종양, 다형성교모세포종 및 뇌하수체선종으로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나일 수 있다.
본 발명에 있어서, 용어, "프로모터"란, RNA 중합효소에 대한 결합 부위를 포함하고 프로모터 다운스트림 (downstream) 유전자의 mRNA로의 전사 개시 활성을 가지는, 암호화 영역의 상위(upstream)의 비해독된 핵산 서열을 말한다. 본 발명의 발현 카세트에 있어서, 상기 프로모터는 shRNA의 발현을 개시할 수 있는 어떤 프로모터도 가능하다. 구체적으로, 본 발명의 프로모터로는 모든 시간대에 상시적으로 목적 유전자의 발현을 유도하는 프로모터(constitutive promoter) 또는 특정한 위치, 시기에 목적 유전자의 발현을 유도하는 프로모터 (inducible promoter)를 사용할 수 있으며, 그 예로는 U6 프로모터, H1 프로모터, CMV (cytomegalovirus) 프로모터, SV40 프로모터, CAG 프로모터 (Hitoshi Niwa et al., Gene, 108:193-199, 1991), CaMV 35S 프로모터 (Odell et al.,Nature 313:810-812, 1985), Rsyn7 프로모터 (미국특허출원 제08/991,601호), 라이스 액틴 (rice actin) 프로모터 (McElroy et al., Plant Cell 2:163-171, 1990), 유비퀴틴 프로모터 (Christensen et al., Plant Mol. Biol. 12:619-632, 1989), ALS 프로모터(미국 특허출원 제08/409,297) 등이 있다. 이외에도 미국특허 제5,608,149; 제5,608,144호 제5,604,121호 제5,569,597호 제5,466,785호, 제5,399,680호 제5,268,463호 및 제5,608,142호 등에 개시된 프로모터 등 당업자에게 자명한 공지의 모든 프로모터를 사용할 수 있으며, 이에 제한되는 것은 아니다. 바람직하게는 본 발명의 프로모터는 U6 프로모터, HI 프로모터, CMV 프로모터일 수 있으며, 본 발명의 바람직한 일 구현예에 따르면 U6 프로모터를 사용할 수 있다.
본 발명의 조성물에는 보조제(adjuvant)를 추가로 포함할 수 있다. 상기 보조제는 당해 기술분야에 알려진 것이라면 어느 것이나 제한 없이 사용할 수 있으나, 예를 들어 프로인트(Freund)의 완전 보조제 또는 불완전 보조제를 더 포함하여 그 효과를 증가시킬 수 있다.
본 발명에 따른 조성물은 유효성분을 약학적으로 허용된 담체에 혼입시킨 형태로 제조될 수 있다. 여기서, 약학적으로 허용된 담체는 제약 분야에서 통상 사용되는 담체, 부형제 및 희석제를 포함한다. 본 발명의 조성물에 이용할 수 있는 약학적으로 허용된 담체는 이들로 제한되는 것은 아니지만, 락토스, 덱스트로스, 수크로스, 솔비톨, 만니톨, 자일리톨, 에리스리톨, 말티톨, 전분, 아카시아 고무, 알지네이트, 젤라틴, 칼슘 포스페이트, 칼슘 실리케이트, 셀룰로스, 메틸 셀룰로스, 폴리비닐 피롤리돈, 물, 메틸히드록시벤조에이트, 프로필히드록시벤조에이트, 탈크, 마그네슘 스테아레이트 및 광물유를 들 수 있다.
본 발명의 조성물은 각각 통상의 방법에 따라 산제, 과립제, 정제, 캡슐제, 현탁액, 에멀전, 시럽, 에어로졸 등의 경구형 제형, 외용제, 좌제 또는 멸균 주사용액의 형태로 제형화하여 사용될 수 있다.
제제화할 경우에는 통상 사용하는 충진제, 증량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제를 사용하여 조제될 수 있다. 경구투여를 위한 고형제제에는 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제 등이 포함되며, 그러한 고형 제제는 유효성분에 적어도 하나 이상의 부형제, 예를 들면 전분, 칼슘 카르보네이트, 수크로스, 락토오스, 젤라틴 등을 섞어 조제될 수 있다. 또한, 단순한 부형제 이외에 마그네슘 스테아레이트, 탈크 같은 윤활제들도 사용될 수 있다. 경구투여를 위한 액상 제제로는 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제 등이 해당되는데, 일반적으로 사용되는 희석제인 물, 리퀴드 파라핀 이외에 여러 가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등이 포함될 수 있다. 비경구 투여를 위한 제제에는 멸균된 수용액, 비수용성용제, 현탁제, 유제, 동결건조 제제 및 좌제가 포함된다. 비수용성용제, 현탁제로는 프로필렌 글리콜, 폴리에틸렌 글리콜, 올리브유와 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테르 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기제로는 위텝솔(witepsol), 트윈(tween) 61, 카카오지, 라우린지, 글리세로젤라틴 등이 사용될 수 있다.
본 발명에 따른 성물은 개체에 다양한 경로로 투여될 수 있다. 투여의 모든 방식이 예상될 수 있는데, 예를 들면 경구, 정맥, 근육, 피하, 복강내 주사에 의해 투여될 수 있다.
본 발명에 따른 약학 조성물의 투여량은 개체의 연령, 체중, 성별, 신체 상태 등을 고려하여 선택된다. 상기 약학 조성물 중 포함되는 단일 도메인 항체 의 농도는 대상에 따라 다양하게 선택할 수 있음은 자명하며, 바람직하게는 약학 조성물에 0.01 ~ 5,000 ㎍/ml의 농도로 포함되는 것이다. 그 농도가 0.01 ㎍/ml 미만일 경우에는 약학 활성이 나타나지 않을 수 있고, 5,000 ㎍/ml를 초과할 경우에는 인체에 독성을 나타낼 수 있다.
본 발명의 조성물은 암 및 이의 합병증의 예방 또는 치료에 이용될 수 있으며, 항암보조제로도 사용될 수 있다.
또한 본 발명은 약학적으로 유효한 양의 본 발명의 조성물를 개체에 투여하는 단계를 포함하는 암의 예방 및 치료방법을 제공한다.
본 발명의 조성물은 치료적 유효량 또는 약학으로 유효한 양으로 투여한다. 용어 "약학적으로 유효한 양"은 의학적 치료에 적용 가능한 합리적인 수혜/위험 비율로 질환을 치료하기에 충분한 양을 의미하며, 유효 용량 수준은 개체 종류 및 중증도, 연령, 성별, 약물의 활성, 약물에 대한 민감도, 투여 시간, 투여 경로 및 배출 비율, 치료기간, 동시 사용되는 약물을 포함한 요소 및 기타 의학 분야에 잘 알려진 요소에 따라 결정될 수 있다.
일 측면에서, 본 발명은 본 발명의 항종양 아데노바이러스의 종양 예방 또는 치료 용도에 관한 것이다.
일 측면에서, 본 발명은 본 발명의 항종양 아데노바이러스를 이용한 종양의 치료 방법에 관한 것이다.
하기의 실시예를 통하여 본 발명을 보다 상세하게 설명한다. 그러나 하기 실시예는 본 발명의 내용을 구체화하기 위한 것일 뿐 이에 의해 본 발명이 한정되는 것은 아니다.
실시예 1. 이중 표적 siRNA 제작
1-1. mTOR 및 STAT3 이중 표적 siRNA
STAT3(signal transducer and activator of transcription 3) 및 mTOR(mammalian target of rapamycin)를 동시에 억제할 수 있는 이중 표적 siRNA (double strand)를 하기의 표 1의 서열로 제작하였다 (Bioneer, Daejeon, Korea). 구체적으로, 세트 1의 서열번호 1 및 2의 siRNA는 21mer 중 17mer가, 세트 2의 서열번호 3 및 4의 siRNA는 20mer 중 16mer가, 세트 3의 서열번호 5 및 6의 siRNA는 19mer 중 15mer가, 세트 4의 서열번호 7 및 8의 siRNA는 18mer 중 14mer가, 및 세트 5의 서열번호 9 및 10의 siRNA는 17mer 중 16mer가 상보적으로 결합한다. 또한, 세트 6의 서열번호 11 및 12의 siRNA는 20mer 중 17mer가, 세트 7의 서열번호 13 및 14의 siRNA는 19mer 중 16mer가, 세트 8의 서열번호 15 및 16의 siRNA는 18mer 중 15mer가, 및 세트 9의 서열번호 17 및 18의 siRNA는 17mer 중 14mer가 상보적으로 결합한다. 하기 표 1의 각 세트의 두 서열이 double strand 형태로 세포 내로 들어간 뒤, 각 세트의 antisense_mTOR의 siRNA가 mTOR mRNA(gi|206725550|ref|NM_004958.3| Homo sapiens mechanistic target of rapamycin (serine/threonine kinase) (MTOR), mRNA)의 표적 부위에 상보적으로 결합하며, 각 세트의 antisense_STAT3의 siRNA가 STAT3 mRNA(gi|47080104|ref|NM_139276.2| Homo sapiens signal transducer and activator of transcription 3 (acute-phase response factor)(STAT3), transcript variant 1, mRNA)의 표적 부위에 상보적으로 결합하여 mTOR 및 STAT3 유전자 발현을 감소시킨다.
set siRNA Sequence(sense), 5'-3' 서열번호 Sequence(antisense), 5'-3' 서열번호 length 상보적 결합 길이
1 si-MS1 gacuguggcauccaccugcau 1 augcagguaggcgccucaguc 2 21 17
2 si-MS2 gacuguggcauccaccugca 3 ugcagguaggcgccucaguc 4 20 16
3 si-MS3 gacuguggcauccaccugc 5 gcagguaggcgccucaguc 6 19 15
4 si-MS4 gacuguggcauccaccug 7 cagguaggcgccucaguc 8 18 14
5 si-MS5 ucagccacagcagcuug 9 caagcugcuguagcuga 10 17 16
6 si-MS6 gcagcgcaugcggcccagca 11 ugcugggccgcaguggcugc 12 20 17
7 si-MS7 gcagcgcaugcggcccagc 13 gcugggccgcaguggcugc 14 19 16
8 si-MS8 gcagcgcaugcggcccag 15 cugggccgcaguggcugc 16 18 15
9 si-MS9 gcagcgcaugcggccca 17 ugggccgcaguggcugc 18 17 14
1-2. BCL2 및 BI-1 이중 표적 siRNA
BCL2(B-cell lymphoma 2) 및 BI-1(BAX inhibitor 1)을 동시에 억제할 수 있는 21mer 의 이중 표적 siRNA (double strand)를 하기 표 2의 서열로 제작하였다 (Bioneer, Daejeon, Korea). 구체적으로, 하기 표 2의 서열번호 19 및 20으로 이루어진 21mer의 siRNA 세트 10은 15mer가 서로 상보적이이고, 서열번호 21 및 22로 이루어진 20mer의 siRNA 세트 11은 14mer가 서로 상보적이며, 서열번호 23 및 24으로 이루어진 20mer의 siRNA 세트 12는 14mer가 서로 상보적이고, 서열번호 25 및 26으로 이루어진 19mer의 siRNA 세트 13은 13mer가 서로 상보적이며, 서열번호 27 및 28으로 이루어진 19mer의 siRNA 세트 14는 13mer가 서로 상보적이고, 및 서열번호 29 및 30로 이루어진 18mer의 siRNA 세트 15는 12mer가 서로 상보적이다. 하기 표 2의 서열번호 19, 21, 23, 25, 27 또는 29의 siRNA (Antisense Bcl-2)가 Bcl-2의 mRNA에 상보적으로 결합하며, 서열번호 20, 22, 24, 26, 28 또는 30의 siRNA (Antisense BI-1)가 BI-1의 mRNA에 상보적으로 결합하므로, 본 발명의 siRNA 세트 10 내지 15는 Bcl-2 및 BI-1 유전자의 발현을 동시에 감소시킨다.
set siRNA Sequence(sense), 5'-3' 서열번호 Sequence(antisense), 5'-3' 서열번호 length
(mer) 		상보적 결합 길이
(mer)
10 si-BB1 AAGAAGAGGAGAAAAAAAUGA 19 UCAUUUCUUCUCUUUCUUCUU 20 21 15
11 si-BB2 AAGAAGAGGAGAAAAAAAUG 21 CAUUUCUUCUCUUUCUUCUU 22 20 14
12 si-BB3 AGAAGAGGAGAAAAAAAUGA 23 CAUUUCUUCUCUUUCUUCUU 24 20 14
13 si-BB4 GAAGAGGAGAAAAAAAUGA 25 UCAUUUCUUCUCUUUCUUC 26 19 13
14 si-BB5 AGAAGAGGAGAAAAAAAUG 27 CAUUUCUUCUCUUUCUUCU 28 19 13
15 si-BB6 GAAGAGGAGAAAAAAAUG 29 CAUUUCUUCUCUUUCUUC 30 18 12
1-3. AR 및 mTOR 이중 표적 siRNA
AR(androgen receptor) 및 mTOR(mammalian target of rapamycin)을 동시에 억제할 수 있는 이중 표적 siRNA(double strand) 세트를 하기 표 3의 서열로 제작하였다 (Bioneer, Daejeon, Korea). 구체적으로, 서열번호 31 및 32로 이루어진 20mer의 siRNA 세트 16은 18mer가 서로 상보적이며, 서열번호 33 및 34로 이루어진 19mer의 siRNA 세트 17는 17mer가 서로 상보적이고, 서열번호 35 및 36으로 이루어진 18mer의 siRNA 세트 18은 16mer가 서로 상보적이며, 서열번호 37 및 38로 이루어진 17mer의 siRNA 세트 19는 15mer가 서로 상보적이고, 서열번호 39 및 40으로 이루어진 19mer의 siRNA 세트 20은 15mer가 서로 상보적이며, 서열번호 41 및 42로 이루어진 18mer의 siRNA 세트 21은 14mer가 서로 상보적이고, 서열번호 43 및 44로 이루어진 17mer의 siRNA 세트 22은 13mer가 서로 상보적이며, 서열번호 45 및 46으로 이루어진 23mer의 siRNA 세트 23은 19mer가 서로 상보적이고, 서열번호 47 및 48로 이루어진 22mer의 siRNA 세트 24는 18mer가 서로 상보적이며, 서열번호 49 및 50으로 이루어진 22mer의 siRNA 세트 25은 18mer가 서로 상보적이고, 서열번호 51 및 52로 이루어진 21mer의 siRNA 세트 26은 17mer가 서로 상보적이며, 서열번호 53 및 54로 이루어진 20mer의 siRNA 세트 27는 16mer가 서로 상보적이고, 및 서열번호 55 및 56으로 이루어진 21mer의 siRNA 세트 28은 17mer가 서로 상보적이다. 하기 표 3의 서열번호 31, 33, 35, 37, 39, 41, 43, 45, 47, 49, 51, 53 또는 55의 siRNA (Antisense AR)가 AR의 mRNA에 상보적으로 결합하며, 서열번호 32, 34, 36, 38, 40, 42, 44, 46, 48, 50, 52, 54 또는 56의 siRNA (Antisense mTOR)가 mTOR의 mRNA에 상보적으로 결합한다. 따라서, 본 발명의 siRNA 세트 16 내지 28은 AR 및 mTOR 유전자의 발현을 동시에 감소시킨다.
set siRNA Sequence(sense), 5'-3' 서열번호 Sequence(antisense), 5'-3' 서열번호 length
(mer) 		상보적 결합 길이
(mer)
16 si-AT1 GCUGCUGCUGCUGCCUGGGG 31 CCCCAUGCAGCUGCAGCAGC 32 20 18
17 si-AT2 CUGCUGCUGCUGCCUGGGG 33 CCCCAUGCAGCUGCAGCAG 34 19 17
18 si-AT3 UGCUGCUGCUGCCUGGGG 35 CCCCAUGCAGCUGCAGCA 36 18 16
19 si-AT4 GCUGCUGCUGCCUGGGG 37 CCCCAUGCAGCUGCAGC 38 17 15
20 si-AT5 CCACCCCCACCACCACCAC 39 GUGGUGGCAGCGGUGGUGG 40 19 15
21 si-AT6 CCACCCCCACCACCACCA 41 UGGUGGCAGCGGUGGUGG 42 18 14
22 si-AT7 CCACCCCCACCACCACC 43 GGUGGCAGCGGUGGUGG 44 17 13
23 si-AT8 UGGAGGCAGAGAGUGAGAGAGAA 45 UUCUCUCAGACGCUCUCCCUCCA 46 23 19
24 si-AT9 GGAGGCAGAGAGUGAGAGAGAA 47 UUCUCUCAGACGCUCUCCCUCC 48 22 18
25 si-AT10 UGGAGGCAGAGAGUGAGAGAGA 49 UCUCUCAGACGCUCUCCCUCCA 50 22 18
26 si-AT11 UGGAGGCAGAGAGUGAGAGAG 51 CUCUCAGACGCUCUCCCUCCA 52 21 17
27 si-AT12 GGAGGCAGAGAGUGAGAGAG 53 CUCUCAGACGCUCUCCCUCC 54 20 16
28 si-AT13 GGAGGCAGAGAGUGAGAGAGA 55 UCUCUCAGACGCUCUCCCUCC 56 21 17
1-4. MGMT 및 mTOR 이중 표적 siRNA
MGMT(O-6-methylguanine-DNA methyltransferase, NM_002412.5) 및 mTOR(NM_004958.3) 유전자의 발현을 동시에 감소(억제)시킬 수 있는 이중 표적 siRNA(double strand) 세트를 하기 표 4의 서열로 제작하였다 (Bioneer, Daejeon, Korea).
set siRNA Sequence(sense), 5'-3' 서열번호 Sequence(antisense), 5'-3' 서열번호
29 si-MM GCAGCUUGGAGGCAGAGCG 57 CGCUCUCCCUCCAUGCUGC 58
1-5. BCL2 및 MCL1 이중 표적 siRNA
BCL2(NM_000633.2) 및 MCL1(MCL1 apoptosis regulator, NM_021960.5) 유전자의 발현을 동시에 감소(억제)시킬 수 있는 이중 표적 siRNA(double strand) 세트를 하기 표 5의 서열로 제작하였다 (Bioneer, Daejeon, Korea).
set siRNA Sequence(sense), 5'-3' 서열번호 Sequence(antisense), 5'-3' 서열번호
30 si-BM GCCAAGGCCACACAGCCAA 59 UUGGCUUUGUGUCCUUGGC 60
1-6. STAT3 및 TFEB 이중 표적 siRNA
STAT3(NM_139276.2) 및 TFEB(transcription factor EB, NM_007162.2) 유전자의 발현을 동시에 감소(억제)시킬 수 있는 이중 표적 siRNA(double strand) 세트를 하기 표 6의 서열로 제작하였다 (Bioneer, Daejeon, Korea).
set siRNA Sequence(sense), 5'-3' 서열번호 Sequence(antisense), 5'-3' 서열번호
31 si-ST CCAGCCAGACCCAGAAGGA 61 UCCUUCUUGGACAGGCUGG 62
1-7. c-MET 및 PD-L1 이중 표적 siRNA
c-MET(Homo sapiens MET proto-oncogene) 및 PD-L1(Programmed death-ligand 1)을 동시에 억제할 수 있는 이중 표적 siRNA(double strand) 세트를 하기 표 7의 서열로 제작하였다 (Bioneer, Daejeon, Korea). 구체적으로, 서열번호 63 및 64로 이루어진 19mer의 siRNA 세트 32는 15mer가 서로 상보적이며, 하기 표 7의 서열번호 63의 siRNA (Antisense c-MET)가 c-MET의 mRNA에 상보적으로 결합하며, 서열번호 64의 siRNA (Antisense PD-L1)가 PD-L1의 mRNA에 상보적으로 결합한다. 따라서, 본 발명의 siRNA 세트는 c-MET 및 PD-L1 유전자의 발현을 동시에 감소시킨다.
set siRNA Sequence(sense)
5'-3' 		서열번호 siRNA Sequence(antisense)
5'-3' 		서열번호 length
(mer) 		상보적 결합 길이
(mer)
32 c-MET ACCACACAUCUGACUUGGU 63 PD-L1 ACCAAUUCAGCUGUAUGGU 64 19 15
실시예 2. 이중 표적 shRNA 제작
2-1. mTOR 및 STAT3 표적 shRNA
상기 실시예에서 제작한 siRNA를 세포 내에서 발현할 수 있게 하기 위하여, shRNA를 발현하는 발현 카세트를 제작하였다. 구체적으로, siRNA들 중 세트 1의 이중 표적 siRNA (서열번호 1 및 2) siRNA 이중 가닥의 서열과 루프 서열을 포함하는 shRNA들 (TTGGATCCAA 루프 shRNA 및 TTCAAGAGAG 루프 shRNA)을 대표로 제작하였다 (표 8). 제작한 각각의 shRNA 발현 카세트들을 각각 pE3.1 벡터 (도 1)의 제한효소 PstⅠ 및 EcoRⅤ 절단 위치에 U6 프로모터 (서열번호 65) 이후에 오도록 배치하여, mTOR 및 STAT3를 표적으로 하는 이중 표적 siRNA를 포함하는 두 종의 shRNA를 세포 내에서 발현하는 재조합 발현 벡터를 제작하였다.
mTOR 및 STAT3
이중 표적 shRNA		 서열 (5'→3') 서열번호
TTGGATCCAA loop shRNA gactgtggcatccacctgcatTTGGATCCAAatgcaggtaggcgcctcagtcTT 66
TTCAAGAGAG loop shRNA gactgtggcatccacctgcatTTCAAGAGAGatgcaggtaggcgcctcagtcTT 67
2-2. BCL2 및 BI-1 표적 shRNA
상기 실시예에서 제작한 siRNA를 세포 내에서 발현할 수 있게 하기 위하여, shRNA를 발현하는 발현 카세트를 제작하였다. 구체적으로, siRNA들 중 세트 10의 이중 표적 siRNA (서열번호 19 및 20) siRNA 이중 가닥의 서열과 루프 서열을 포함하는 shRNA들 (TTGGATCCAA 루프 shRNA 및 TTCAAGAGAG 루프 shRNA)을 대표로 제작하였다 (표 9). 제작한 각각의 shRNA를 발현하는 발현 카세트들을 각각 pE3.1 벡터 (도 1)의 제한효소 PstⅠ 및 EcoRⅤ 절단 위치에 U6 프로모터 (서열번호 65) 이후에 오도록 배치하여, BCL2 및 BI-1을 표적으로 하는 이중 표적 siRNA를 포함하는 두 종의 shRNA를 세포 내에서 발현하는 재조합 발현 벡터를 제작하였다.
BCL2 및 BI-1
이중 표적 shRNA 		서열 (5'→3') 서열번호
TTGGATCCAA loop shRNA aagaagaggagaaaaaaatgaTTGGATCCAAtcatttcttctctttcttcttTT 68
TTCAAGAGAG loop shRNA aagaagaggagaaaaaaatgaTTCAAGAGAGtcatttcttctctttcttcttTT 69
2-3. AR 및 mTOR 표적 shRNA
상기 실시예에서 제작한 siRNA를 세포 내에서 발현할 수 있게 하기 위하여, shRNA를 발현하는 발현 카세트를 제작하였다. 구체적으로, siRNA들 중 세트 16의 이중 표적 siRNA (서열번호 31 및 32) siRNA 이중 가닥의 서열과 루프 서열을 포함하는 shRNA들 (TTGGATCCAA 루프 shRNA 및 TTCAAGAGAG 루프 shRNA)을 대표로 제작하였다 (표 10). 제작한 각각의 shRNA를 발현하는 발현 카세트들을 각각 pE3.1 벡터 (도 1)의 제한효소 PstⅠ 및 EcoRⅤ 절단 위치에 U6 프로모터 (서열번호 65) 이후에 오도록 배치하여, AR 및 mTOR를 표적으로 하는 이중 표적 siRNA를 포함하는 두 종의 shRNA를 세포 내에서 발현하는 재조합 발현 벡터를 제작하였다.
AR 및 mTOR
이중 표적 shRNA 		서열 (5'→3') 서열번호
TTGGATCCAA loop shRNA GCTGCTGCTGCTGCCTGGGGTTGGATCCAACCCCATGCAGCTGCAGCAGCTT 70
TTCAAGAGAG loop shRNA GCTGCTGCTGCTGCCTGGGGTTCAAGAGAGCCCCATGCAGCTGCAGCAGCTT 71
2-4. c-MET 및 PD-L1 표적 shRNA
상기 실시예에서 제작한 siRNA를 세포 내에서 발현할 수 있게 하기 위하여, 이중 표적 siRNA siRNA 이중 가닥의 서열과 루프 서열을 포함하는 shRNA 발현 카세트들 (TTGGATCCAA 루프 shRNA 및 TTCAAGAGAG 루프 shRNA)를 제작하였다. 구체적으로, 5'에서 3' 방향으로 상기 표 7의 siRNA 세트 (서열번호 63 및 64)의 센스 가닥의 3'에 TTGGATCCAA (TTGGATCCAA 루프) 또는 TTCAAGAGAG (TTCAAGAGAG 루프), 안티센스 가닥 및 TT를 연결하여 shRNA를 코딩하는 DNA 서열을 제작하여 표 11에 표시하였다 (siRNA는 대문자로 추가 서열은 소문자로 표시). 제작한 shRNA 발현 카세트들을 각각 pE3.1 벡터 (도 1)의 제한효소 PstⅠ 및 EcoRⅤ 절단 위치에 U6 프로모터 (서열번호 65) 이후에 오도록 배치하여, c-MET 및 PD-L1을 표적으로 하는 이중 표적 siRNA를 포함하는 두 종의 shRNA를 세포 내에서 발현하는 재조합 발현 벡터를 제작하였다.
c-MET 및 PD-L1
이중 표적 shRNA 		서열 (5'→3') 서열번호
TTGGATCCAA loop shRNA ACCACACAUCUGACUUGGUttggatccaaACCAAUUCAGCUGUAUGGUtt 72
TTCAAGAGAG loop shRNA ACCACACAUCUGACUUGGUttcaagagagACCAAUUCAGCUGUAUGGUtt 73
실시예 3. 이중 표적 siRNA의 유전자 발현 억제 효과 확인
3-1. mTOR 및 STAT3 발현 억제
12-웰 플레이트에 Hela 세포를 분주한 뒤, 세포 밀도가 50%가 될 때까지 10% FBS (Hyclone 사)가 첨가된 RPMI 배지 (Hyclone 사)에서 37℃, 5% CO2 조건으로 배양하였다. 그 후, 상기 세포에 상기 실시예 1에서 제작한 세트 1 내지 9의 이중 표적 siRNA를 각각 lipofectamine3000 (Invitrogen, Carlsbad, CA, USA)으로 트랜스펙션하여 mTOR 및 STAT3를 동시에 낙다운하였다. 트랜스펙션 48시간 후, 세포를 파쇄하여 GeneJET RNA Purification Kit (Invitrogen)로 총 RNA를 추출하였다. 추출한 총 RNA를 주형으로 사용하여 RevoScriptTM RT PreMix(iNtRON BIOTECHNOLOGY)로 역전사 반응을 수행하였다. 역전사된 cDNA를 25 내지 200ng 함유한 시료 20㎕와 AmpONE taq DNA polymerase (GeneAll) 및 TaqMan Gene Expression assays (Applied Biosystems)를 이용하여 mTOR (Hs00234522_m1), STAT3 (Hs01047580_m1) 및 GAPDH (Hs02758991_g1)에 대하여, ABI PRISM 7700 Sequence Detection System 및 QS3 Real-time PCR(Biosystems)을 이용하여 반응을 수행하였다. Real-time PCR 반응 조건은 [50℃에서 2분, 95℃에서 10분, 및 95℃에서 15초 및 60℃에서 60초의 두 단계 사이클]을 총 40 사이클로 수행하였다. 모든 반응은 3회씩 반복수행되고 이들의 평균값이 취해졌다. 이렇게 얻은 결과들은 하우스키핑 유전자인 GAPDH의 mRNA 값에 대해 정규화하였다.
그 결과, 세트 1 내지 9의 이중 표적 siRNA에 의해 mTOR 및 STAT3는 대조군과 비교하여, 잔여 발현이 약 20 내지 40%인 것으로 확인되어, 이중 표적 siRNA가 두 유전자 모두 동시에 발현 억제하는 것을 알 수 있었다 (도 2).
3-2. BCL2 및 BI-1 발현 억제
12웰 플레이트에 Hela 세포를 각각 분주한 뒤, 세포 밀도가 50%가 될 때까지 10% FBS (Hyclone 사)가 첨가된 RPMI 배지 (Hyclone 사)에서 37℃, 5% CO2 조건으로 배양하였다. 그 후, 상기 Hela 세포가 배양된 웰에 상기 실시예 1 (표 2)에서 제작한 이중 표적 siRNA 세트 10을 (si-BB1) 및 이중 표적 siRNA 세트 11 내지 15을 웰당 80 pmole씩 3㎕의 리포펙타민(lipofectamine)3000 (Invitrogen, Carlsbad, CA, USA)으로 트랜스펙션하여 BCL2 및 BI-1를 동시에 낙다운하였다. 트랜스펙션 48시간 후, 세포를 파쇄하여 GeneJET RNA Purification Kit (Invitrogen)로 총 RNA를 추출하였다. 추출한 총 RNA를 주형으로 사용하여 RT-PCR 반응을 통해 cDNA로 역전사 한 뒤, q-PCR 반응을 통해 이중 표적 siRNA에 의한 BCL2 및 BI-1의 mRNA 발현량을 확인하였다. 참고로, 사용한 프로브는 Bcl2(Thermo, Hs00608023_m1), BI-1(Thermo, Dm01835892_g1), GAPDH(Thermo, Hs02786624_g1)이며, QS3 장비를 이용하여 수행하였다. 모든 반응은 3회씩 반복수행되고 이들의 평균값이 취해졌다. 이렇게 얻은 결과들은 하우스키핑 유전자인 GAPDH의 mRNA 값에 대해 정규화하였다.
그 결과, 이중 표적 siRNA 세트에 의해 BCL2 및 BI-1의 발현이 모두 감소하여, 본 발명의 이중 표적 siRNA가 두 유전자의 발현을 동시에 억제하는 것을 알 수 있었다 (도 3 및 도 4).
따라서, 본 발명의 이중 표적 siRNA는 두 유전자의 발현을 동시에 억제하는 것으로, 이를 통해 암세포의 사멸을 촉진하여 현저한 항암 활성이 나타남을 확인한 바, 다양한 암종에 항암용 조성물 또는 항암보조제로서 유용하게 이용될 수 있음을 시사한다.
3-3. AR 및 mTOR 발현 억제
12웰 플레이트에 PC3 세포주, h460 및 A549 세포주를 각각 분주한 뒤, 세포 밀도가 50%가 될 때까지 10% FBS (Hyclone 사)가 첨가된 RPMI 배지 (Hyclone 사)에서 37℃, 5% CO2 조건으로 배양하였다. 그 후, 상기 세포가 배양된 웰에 상기 실시예 1에서 제작한 이중 표적 siRNA 세트 16 내지 28 (표 3)을 각각 웰당 80 pmole씩 3㎕의 리포펙타민(lipofectamine)3000 (Invitrogen, Carlsbad, CA, USA)으로 트랜스펙션하여 AR 및 mTOR를 동시에 낙다운하였다. 여기에서, 세트 16은 h460 세포에, 세트 17은 PC3 세포에 트랜스펙션하여 낙다운하였으며, 이에 대한 양성 대조군으로서 하기 표 12에 기재된 AR에 대한 siRNA와 mTOR에 대한 siRNA를 각각 트랜스펙션하였다. 트랜스펙션 48시간 후, 세포를 파쇄하여 GeneJET RNA Purification Kit (Invitrogen)로 총 RNA를 추출하였다. 추출한 총 RNA를 주형으로 사용하여 RT-PCR 반응을 통해 cDNA로 역전사 한 뒤, q-PCR 반응을 통해 각각의 siRNA와 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트 16 내지 28 (si-AT1 내지 siAT13)에 의한 AR 및 mTOR의 mRNA 발현량을 확인하였다. mRNA 발현량을 확인하기 위해, AR 또는 mTOR에 대한 프라이머 세트와 반응 혼합물[10X reaction Buffer 2 ㎕, HQ Buffer 2 ㎕, dNTP 1.6㎕, Primer(F, R, 10 pmole/ul) 각각 1㎕, Template(500 ng) 2㎕, Taq 0.2㎕, DW 10.2㎕, Total vol. 20㎕]을 이용하였다. PCR 조건으로[95℃에서 2분, 95℃에서 20초로 30 사이클, 60℃에서 10초 및 72℃에서 30-60초, 72℃에서 5분] 낙다운한 세포 파쇄물에서의 AR 및 mTOR의 mRNA를 cDNA로 변환하였다. 또한, 역전사된 cDNA를 주형으로 이용하여, 반응 혼합물을[Template(RT-PCR product) 6㎕, Taqman probe 3㎕, 10X reaction Buffer 6㎕, HQ Buffer 6㎕, dNTP 4.8㎕, Taq 0.6㎕, DW 10.2㎕, Total vol.60㎕] 준비하고 qPCR을 수행하였다[95℃에서 10분, 95℃에서 15초 및 로60℃에서 1분당 40사이클]. 참고로, 사용한 프로브는 AR(Thermo, Hs00171172_m1), mTOR(Thermo, Hs00234508_m1), GAPDH(Thermo, Hs02786624_g1)이며, QS3 장비를 이용하여 수행하였다. 모든 반응은 3회씩 반복수행되고 이들의 평균값이 취해졌다. 이렇게 얻은 결과들은 하우스키핑 유전자인 GAPDH의 mRNA 값에 대해 정규화하였다.
서열 (5'→3')
AR siRNA sense CACAAGUCCCGGAUGUACA(dTdT)
anti-sense UGUACAUCCGGGACUUGUG(dTdT)
mTOR siRNA sense GUGGAAACAGGACCCAUGA(dTdT)
anti-sense UCAUGGGUCCUGUUUCCAC(dTdT)
그 결과, PC3 세포 및 h460 세포주 모두에서 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트 16 및 17에 의해 AR 및 mTOR의 발현이 모두 감소하였으며 (도 5), 감소 정도는 각각의 siRNA에 의한 효과와 유사하거나 더 우수하게 나타났다. 또한, 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트 17 및 28에 의해 AR 및 mTOR의 발현이 모두 감소하였다 (도 6). 이를 통해, 본 발명의 이중 표적 siRNA가 두 유전자의 발현을 동시에 효과적으로 억제할 수 있음을 알 수 있었다.
3-4. c-MET 및 PD-L1 발현 억제
12웰 플레이트에 교모세포종 세포주 U-87, 전립선암 세포주 CWR22Rv-1(22Rv-1), 흑색종 세포주 A431 및 비소세포폐암 세포주 HCC827을 각각 분주한 뒤, 세포 밀도가 50%가 될 때까지 10% FBS (Hyclone 사)가 첨가된 RPMI 배지 (Hyclone 사)에서 37℃, 5% CO2 조건으로 배양하였다. 그 후, 상기 세포가 배양된 웰에 상기 실시예에서 제작한 이중 표적 siRNA 세트 (표 7)를 웰당 80 pmole씩 3㎕의 리포펙타민(lipofectamine)3000 (Invitrogen, Carlsbad, CA, USA)으로 트랜스펙션하여 c-MET 및 PD-L1을 동시에 낙다운하였다. 트랜스펙션 48시간 후, 세포를 각각 파쇄하여 GeneJET RNA Purification Kit (Invitrogen)로 총 RNA를 추출하였다. 추출한 총 RNA를 주형으로 사용하여 RT-PCR 반응을 통해 cDNA로 역전사 한 뒤, q-PCR 반응을 통해 각각의 siRNA와 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트에 의한 c-MET 및 PD-L1의 mRNA 발현량을 확인하였다. mRNA 발현량을 확인하기 위해, PD-L1 또는 c-MET에 대한 프라이머 세트와 반응 혼합물[10X reaction Buffer 2 ㎕, HQ Buffer 2 ㎕, dNTP 1.6㎕, Primer(F, R, 10 pmole/ul) 각각 1㎕, Template(500 ng) 2㎕, Taq 0.2㎕, DW 10.2㎕, Total vol. 20㎕]을 이용하였다. PCR 조건으로 [95℃에서 2분, 95℃에서 20초로 30 사이클, 60℃에서 10초 및 72℃에서 30-60초, 72℃에서 5분] 낙다운한 세포 파쇄물에서의 c-MET 및 PD-L1의 mRNA를 cDNA로 변환하였다. 또한, 역전사된 cDNA를 주형으로 이용하여, 반응 혼합물을 [Template(RT-PCR product) 6㎕, Taqman probe 3㎕, 10X reaction Buffer 6㎕, HQ Buffer 6㎕, dNTP 4.8㎕, Taq 0.6㎕, DW 10.2㎕, Total vol.60㎕] 준비하고 QS3 장비를 이용하여 qPCR을 수행하였다[95℃에서 10분, 95℃에서 15초 및 로60℃에서 1분당 40사이클]. 모든 반응은 3회씩 반복수행되고 이들의 평균값이 취해졌다. 이렇게 얻은 결과들은 하우스키핑 유전자인 GAPDH의 mRNA 값에 대해 정규화하였다.
그 결과, U-87 세포주, 22Rv-1 세포주, A431 세포주 및 HCC827 세포주 모두에서 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트에 의해 c-MET 및 PD-L1의 발현이 모두 감소하는 것으로 나타났다 (도 7a 내지 7d). 이를 통해, 본 발명의 이중 표적 siRNA가 두 유전자의 발현을 동시에 효과적으로 억제할 수 있음을 알 수 있었다.
실시예 4. 이중 표적 siRNA 및 shRNA의 유전자 발현 억제 효과 확인
4-1. 이중 표적 shRNA의 유전자 발현 억제 효과
상기 실시예 2에서 제작한 mTOR 및 STAT3 표적 shRNA를 코딩하는 서열번호 66의 TTGGATCCAA 루프 shRNA 서열 또는 서열번호 67의 TTCAAGAGAG 루프 shRNA 서열 (표 8)을 포함하는 벡터를 lipofectamine3000을 이용하여 A549 세포 및 교모세포종 세포 U-87(U87MG)에 각각 0, 1 및 2㎍씩 트랜스펙션하였다. 트랜스펙션 48시간 후, 상기 실시예에 기재된 Real time PCR 분석 방법을 이용하여 mTOR와 STAT3의 유전자 발현 감소 정도를 확인하였다.
그 결과, mTOR 및 STAT3의 발현은 본원발명의 이중 표적 siRNA를 포함하는 두 종의 shRNA 모두에서 감소하였으며, shRNA의 DNA 양에 비례하여 20% 정도까지 감소하는 경향을 나타냈다 (도 8).
4-2. 단일 표적 siRNA 및 이중 표적 shRNA의 유전자 발현 억제 효과 비교
두 가지의 단일 표적 siRNA를 2 개의 프로모터를 이용하여 직렬로 연결한 것과 본 발명의 이중 표적 shRNA의 유전자 발현 억제 효과를 비교하였다. 구체적으로, mTOR에 대한 siRNA 및 STAT3에 대한 siRNA를 mTOR-STAT3 또는 STAT3-mTOR의 순서로 직렬 연결한 뒤 이의 mTOR 및 STAT3에 대한 유전자 발현 억제 효과를 본 발명의 mTOR/STAT3 이중 표적 shRNA와 비교하였다.
그 결과, 293T 세포주에서, 각 유전자에 대한 siRNA 2개를 프로모터를 이용하여　직렬로 연결한 경우 (direct shmTOR-STAT3 또는 direct shSTAT3-mTOR)보다, 본 발명의 이중 타겟 shRNA를 이용한 경우, 유전자 발현 억제 효과가 현저히 높은 것으로 나타났다 (도 9).
실시예 5. 이중 표적 siRNA에 의한 암세포 사멸 효과 확인
본 발명의 세트 1 내지 9의 이중 표적 siRNA에 의한 암세포에 대한 사멸 효과를 확인하기 위하여, 인간 폐암세포주 A549 세포를 96-웰 플레이트에 5×103cell/웰로 각각 분주한 뒤, lipofectamine 3000으로 세트 1 내지 9의 이중 표적 siRNA 각각을 세포에 트랜스펙션하였다. 트랜스펙션 48시간 후, 추가로 24시간 뒤에 5mg/mL MTT (Promega, Ltd.)를 세포에 처리하고 4시간 동안 인큐베이션하였다. 그 후, 배지를 제거하고 가용화 용액(solubilization solution) 및 정지 용액(stop solution) 150㎕을 처리하고 37℃에서 4시간 동안 인큐베이션 하였다. 반응 용액의 흡광도를 570nm에서 측정하고 하기 수학식을 이용하여 세포 생존율을 계산하였다.
Figure PCTKR2021003488-appb-M000001
그 결과, 본 발명의 세트 1 내지 9의 이중 표적 siRNA로 mTOR 및 STAT3를 동시에 억제하였을 때, 세포 생존율이 대조군과 비교하여 유의적으로 감소됨을 확인하였다. 따라서, 본 발명의 세트 1 내지 9의 이중 표적 siRNA가 효과적으로 암세포를 사멸함을 확인하였다 (도 10).
실시예 6. 이중 표적 siRNA와 항암제 병용 처리에 의한 암세포 사멸 효과 확인
6-1. mTOR 및 STAT3 이중 표적 siRNA의 항암제와의 병용 처리
6-1-1. 시스플라틴(cisplatin)과의 병용 처리
인간 폐암세포주 A549 세포를 96-웰 플레이트에 5×103cell/웰로 분주한 뒤, lipofectamine3000으로 본 발명의 세트 1 내지 9의 이중 표적 siRNA (mTOR 및 STAT3 동시 낙다운)을 각각 세포에 트랜스펙션하였다. 트랜스펙션 48시간 후, 시스플라틴 5μM을 처리하고 10시간 동안 인큐베이션하였다. 그 후, 상기 실시예에서와 같이 MTT 반응을 수행하고, 이의 흡광도를 570nm에서 측정하여 세포 생존율을 계산하였다.
그 결과, 시스플라틴과의 병용 처리하고, 본 발명의 세트 1 내지 9의 이중 표적 siRNA로 mTOR 및 STAT3를 동시에 억제하였을 때, 세포 생존율이 약 50-70%까지 감소하고, 대조군과 비교하여 유의적인 차이를 보임을 확인하였다. 따라서, 항암제와의 병용 처리에서도 두 유전자를 동시에 억제할 때 세포사멸효과가 현저히 향상됨을 확인하였다 (도 11).
6-1-2. 파클리탁셀(paclitaxel)과의 병용 처리
인간 폐암세포주 A549 세포를 96-웰 플레이트에 5×103cell/웰로 분주한 뒤, lipofectamine3000으로 본 발명의 세트 1 내지 9의 이중 표적 siRNA (mTOR 및 STAT3 동시 낙다운)을 각각 세포에 트랜스펙션하였다. 트랜스펙션 48시간 후, 파클리탁셀 5μM을 처리하고 10시간 동안 인큐베이션하였다. 그 후, 상기 실시예 4에서와 같이 MTT 반응을 수행하고, 이의 흡광도를 570nm에서 측정하여 세포 생존율을 계산하였다.
그 결과, 파클리탁셀과의 병용 처리하고, 본 발명의 세트 1 내지 9의 이중 표적 siRNA로 mTOR 및 STAT3를 동시에 억제하였을 때, 세포 생존율이 약 30-50%까지 감소하고, 대조군과 비교하여 유의적인 차이를 보임을 확인하였다. 따라서, 항암제와의 병용 처리에서도 두 유전자를 동시에 억제할 때 세포사멸효과가 현저히 향상됨을 확인하였다 (도 12).
6-1-3. 5-플루오로우라실(5-FU, 5-fluorouracil)과의 병용 처리
인간 폐암세포주 A549 세포를 96-웰 플레이트에 5×103cell/웰로 분주한 뒤, lipofectamine3000으로 본 발명의 세트 1 내지 9의 이중 표적 siRNA (mTOR 및 STAT3 동시 낙다운)을 각각 세포에 트랜스펙션하였다. 트랜스펙션 48시간 후, 파클리탁셀 5μM을 처리하고 10시간 동안 인큐베이션하였다. 그 후, 상기 실시예 4에서와 같이 MTT 반응을 수행하고, 이의 흡광도를 570nm에서 측정하여 세포 생존율을 계산하였다.
그 결과, 5-플루오로우라실과 병용 처리하고, 본 발명의 세트 1 내지 9의 이중 표적 siRNA로 mTOR 및 STAT3를 동시에 억제하였을 때, 세포 생존율이 약 30%까지 감소하고, 대조군과 비교하여 유의적인 차이를 보임을 확인하였다. 따라서, 항암제와의 병용 처리에서도 두 유전자를 동시에 억제할 때 세포사멸효과가 현저히 향상됨을 확인하였다 (도 13).
6-2. BCL2 및 BI-1 이중 표적 siRNA의 항암제와의 병용 처리
6-2-1. BCL2 및 BI-1 이중 표적 siRNA의 시너지적 항암 효과
인간 자궁경부암 세포주인 Hela 세포에 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트 1(si-BB1), 또는 대조군으로 개별 BCL2 siRNA 및 BI-1 siRNA를 각각 트랜스펙션한 뒤, 항암제를 종류별로 6시간 동안 처리한 뒤 암세포주의 사멸 정도를 MTT 분석을 통해 확인하였다. 구체적으로, 6웰 플레이트에 분주한 Hela 세포에 웰당 200 pmole의 siRNA를 리포펙타민 7.5㎕로 트랜스펙션한 뒤 48시간 동안 인큐베이션하고, 세포주를 다시 96웰-플레이트에 재분주하고 50% 세포밀도 (2.5×104)가 되도록 배양한 뒤, 대조군의 경우 항암제의 농도를 택솔 0.5μM, 시스플라틴 20μM 및 에토포사이드 10μM로 각각 처리하고, 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트를 처리한 세포에는 이의 절반 농도인 택솔 0.25μM, 시스플라틴 10μM 및 에토포사이드 5μM로 각각 처리한 뒤 6시간 후 상기 실시예에서와 같이 MTT 분석을 수행하여 암세포의 사멸 정도를 확인하였다.
그 결과, BCL2 또는 BI-1 각각에 대한 siRNA를 함께 트랜스펙션한 대조군의 경우 암세포의 사멸이 거의 일어나지 않고, 항암제와 병용 처리시에만 항암제에 의한 암세포 사멸 효과가 일부 발생하였다 (도 14A). 반면, 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트 1(si-BB1)의 경우 암세포의 사멸이 현저히 발생하였으며, BCL2 siRNA 및 BI-1 siRNA를 함께 처리한 대조군보다 현저히 적은 농도의 항암제와의 병용 처리에도 암세포 사멸 효과가 시너지적으로 증가하는 것을 알 수 있었다 (도 14B). 이를 통해, 본 발명의 이중 표적 siRNA 자체가 항암 활성을 나타내고, 항암제와의 병용 처리에 의한 시너지 효과도 이중 표적 siRNA에 특이적임을 유추할 수 있었다.
6-2-2. BCL2 및 BI-1 이중 표적 siRNA의 Bcl2 억제제와의 효과 비교
본 발명의 BCL2 및 BI-1에 대한 이중 표적 siRNA (세트 1 si-BB1)의 암세포 사멸 억제 효과를 BCL2의 억제를 통한 암세포 치료제로 이용되고 있는 ABT-737 약물과 비교하였다. 구체적으로, 상기 실시예들에서와 같이 전립선 암 세포인 LnCap 세포주를 분주한 뒤, 본 발명의 BCL2 및 BI-1에 대한 siRNA 세트 1 (si-BB1)를 트랜스펙션하고 ABT-737 3μM을 처리하고 12시간 동안 인큐베이션한 후, MTT 분석으로 암세포주의 사멸 정도를 확인하였다.
그 결과, ABT-737 또는 본 발명의 BCL2 및 BI-1에 대한 siRNA 세트 1 (si-BB1) 처리에 의해 LnCap 세포주의 사멸이 증가하였으며, 특히, ABT-737와 본 발명의 이중 표적 siRNA를 병용 처리한 경우 시너지적으로 암세포의 사멸이 현저하게 증가한 것을 알 수 있었다 (도 15).
6-2-3. BCL2 및 BI-1 이중 표적 siRNA와 각 siRNA의 항암 효과 비교
인간 전립선 암세포주인 PC3 세포주를 6웰 플레이트에 각각 배양한 뒤, 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트 10 (si-BB1)과, 대조군으로 하기 표 13의 BCL2 또는 BI-1 각각에 대한 siRNA를 각각 트랜스펙션한 뒤 48시간 뒤에 시스플라틴을 10 ~ 20 uM로 처리하였다. 시스플라틴 처리 12시간 뒤에 5mg/mL MTT (Promega, Ltd.)를 세포에 처리하고 4시간 동안 인큐베이션하였다. 그 후, 배지를 제거하고 가용화 용액(solubilization solution) 및 정지 용액(stop solution) 150㎕을 처리하고 37℃에서 4시간 동안 인큐베이션 하였다. 반응 용액의 흡광도를 570nm에서 측정하고 상기 수학식 1을 이용하여 세포 생존율을 계산하였다.
서열 (5'→3')
BCL2 siRNA
 sense CAGAAGUCUGGGAAUCGAU(dTdT)
anti-sense AUCGAUUCCCAGACUUCUG(dTdT)
BI-1 siRNA sense GGAUCGCAAUUAAGGAGCA(dTdT)
anti-sense UGCUCCUUAAUUGCGAUCC(dTdT)
그 결과, 시스플라틴을 처리하지 않고, 대조군 siRNA를 처리한 대조군에 비해 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트 10을 시스플라틴과 병용 처리한 군이 암세포 사멸이 현저히 증가하였으며, 그 정도가 BCL2 및 BI-1 각각에 대한 siRNA를 처리한 군들에 비해 현저히 증가한 것을 알 수 있었다 (도 16).
6-3. AR 및 mTOR 이중 표적 siRNA의 항암제와의 병용 처리
DU145 세포주 및 H460 세포주를 6웰 플레이트에 각각 배양한 뒤, 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트 16 (si-AT1)를 각각 트랜스펙션한 뒤 48시간 뒤에 시스플라틴 50uM, 에토포사이드 20uM 또는 택솔 1uM을 처리하고 16시간 동안 인큐베이션 하였다. 그 후, 5mg/mL MTT (Promega, Ltd.)를 세포에 처리하고 4시간 동안 인큐베이션한 뒤, 배지를 제거하고 가용화 용액(solubilization solution) 및 정지 용액(stop solution) 150㎕을 처리하여 37℃에서 4시간 동안 인큐베이션하였다. 반응 용액의 흡광도를 570nm에서 측정하고 세포 생존율을 계산하였다.
그 결과, 전립선암 세포주인 DU145 세포주에 대해 본 발명의 이중 표적 siRNA가 단독으로도 세포사멸을 유발하고 (항암제 무처리군 (no treat)), 세포사멸 효과를 나타내지 않는 시스플라틴 처리군에서도 본 발명의 이중 표적 siRNA가 세포사멸을 유발하는 것을 알 수 있었다. 또한, 약간의 항암 활성을 나타낸 에토포사이드와 택솔에 대해서도 본 발명의 이중 표적 siRNA 세트 16 (si-AT1)를 병용처리함으로써 DU145 세포사멸을 현저히 향상시키는 것을 확인할 수 있었다 (도 17A). 또한, 폐암세포주인 H460에 대해서도 DU145 세포주와 유사하게 본 발명의 이중 표적 siRNA 자체가 세포사멸 효과를 나타냈으며, 에토포사이드와 택솔과 병용처리시 현저하게 항암활성을 나타내는 것을 알 수 있었다 (도 17B).
실시예 7. 이중 표적 shRNA 코딩 아데노바이러스 제작
hTERT 프로모터 (서열번호 74)-E1A (서열번호 75)-IRES (서열번호 76)-E1B 서열 (서열번호 77) (전체 서열: 서열번호 78)을 아데노바이러스 벡터의 SpeⅠ과 ScaⅠ사이에 삽입한 후, U6 프로모터와 상기 실시예에서 제작한 BCL2 및 BI-1 이중 표적 shRNA (U6 프로모터+BCL2 및 BI-1 이중 표적 shRNA 코딩 서열: 서열번호 79), mTOR 및 STAT3 이중 표적 shRNA (U6 프로모터+mTOR 및 STAT3 이중 표적 shRNA 코딩 서열: 서열번호 80) 및 AR 및 mTOR 이중 표적 shRNA 서열 (U6 프로모터+AR 및 mTOR 이중 표적 shRNA 코딩 서열: 서열번호 81)을 각각 E3 영역(region)에 SpeⅠ사이에 삽입함으로써 hTERT 프로모터 및 이중 표적 shRNA를 코딩 및 발현하고, 감염성이 있는 재조합 아데노바이러스를 제작하였다 (BCL2 및 BI-1 이중 표적 shRNA 코딩 및 발현 아데노바이러스: CA101; mTOR 및 STAT3 이중 표적 shRNA 코딩 및 발현 아데노바이러스: CA102; AR 및 mTOR 이중 표적 shRNA 코딩 및 발현 아데노바이러스: CA103; 및 c-MET 및 PD-L1 이중 표적 shRNA 코딩 (발현) 아데노바이러스: CA104) (도 19 참조). 아울러, 대조군으로 hTERT만 삽입한 재조합 아데노바이러스도 제작하였다 (CA10G). 그 후, 제작된 아데노바이러스 벡터의 서열을 분석하여, 이상이 없을 경우 PacⅠ제한효소를 이용하여 바이러스 유전체를 선형화하여 293A 세포에 CaCl2 법을 이용하여 형질도입하여 각 바이러스를 생산하였다.
실시예 8. 이중 표적 shRNA 코딩 아데노바이러스의 유전자 발현 억제 확인
8-1. CA102의 mTOR 및 STAT3 발현 억제 확인
8-1-1. mRNA 수준 확인
8-1-1-1. 방광암
상기 실시예 7에서 제작한 재조합 아데노바이러스 CA102의 표적 유전자 mTOR 및 STAT3에 대한 발현 억제 효과를 방광암 세포주에서 확인하였다. 구체적으로, 인간 방광암 세포주인 T24 세포 (0.5X105/well) 및 253JBV 세포 (1X105/well)를 각각 12 웰 플레이트에 분주한 뒤 1시간 후에 CA10G 및 CA102를 각각의 웰에 10 MOI가 되도록 처리하고 72시간 뒤에 RNA prep kit(Takara, 9767A)를 이용하여 RNA prep을 수행하였다. 그 후, Nanodirp을 이용하여 RNA 정량하고 RT 프리믹스 (intron, 25081)를 이용하여 튜브 당 400 ng/20 ul를 넣고 프리믹스(premix) 내용물과 잘 섞어 준 뒤 PCR 기기를 이용하여 45℃에서 1hr 및 95℃에서 5 분간 반응시켜 cDNA을 합성하였다. 합성된 cDNA 2 ul를 주형으로 이용하여 실험군에 해당하는 PCR 혼합물 (총 부피, 20 ul)을 만들었다 (주형 2 ul, 정방향 프라이머 0.5 ul (10 pmole/ul), 역방향 프라이머 0.5 ul (10 pmole/ul), 10 ul 2X master mix(Bioline, BIO-94005) 및 7 ul DW). 만든 PCR 혼합물을 볼텍싱하여 잘 섞고 원심분리한 후 qPCR 기기 (Applied Biosystems, QS3)에서 95℃에서 5분, 95℃에서 10초 및 60℃에서 30초를 40사이클 반응시켰다. 결과는 qPCR 기기에 있는 프로그램을 이용하여 분석하였다.
그 결과, T24 세포 및 253JBV 세포 모두에서, hTERT 프로모터와 mTOR 및 STAT3 이중 표적 shRNA를 코딩 및 발현하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102는 hTERT 프로모터만 포함하는 재조합 아데노바이러스 CA10G에 비해 현저하게 mTOR 및 STAT3 유전자의 발현을 억제하는 것으로 나타났다 (도 20).
8-1-1-2. 두경부암
상기 실시예 7에서 제작한 재조합 아데노바이러스 CA102의 표적 유전자 mTOR 및 STAT3에 대한 발현 억제 효과를 상기 실시예의 방법으로 두경부암 세포주인 HSC-2 및 Fadu에서 확인한 결과, 두 세포주 모두에서, hTERT 프로모터와 mTOR 및 STAT3 이중 표적 shRNA를 코딩 및 발현하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102는 hTERT 프로모터만 포함하는 재조합 아데노바이러스 CA10G에 비해 현저하게 mTOR 및 STAT3 유전자의 발현을 억제하는 것으로 나타났다 (도 21).
8-1-1-3. 피부 편평상피암(Skin squamous carcinoma)
상기 실시예 7에서 제작한 재조합 아데노바이러스 CA102의 표적 유전자 mTOR 및 STAT3에 대한 발현 억제 효과를 상기 실시예의 방법으로 피부 편평상피암 세포주인 A431 및 HSC-5에서 확인한 결과, 두 세포주 모두에서, hTERT 프로모터와 mTOR 및 STAT3 이중 표적 shRNA를 코딩 및 발현하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102는 hTERT 프로모터만 포함하는 재조합 아데노바이러스 CA10G에 비해 현저하게 mTOR 및 STAT3 유전자의 발현을 억제하는 것으로 나타났다 (도 22).
8-1-2. 단백질 발현 억제 확인
상기 실시예 7에서 제작한 재조합 아데노바이러스 CA102를 방광암 세포주 T24 세포 및 253JBV 세포에 처리한 후 웨스턴 블롯 분석으로 표적 유전자 mTOR 및 STAT3에 대한 발현 억제 효과를 단백질 수준에서 확인하였다. 그 결과, 두 세포주 모두에서, 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102가 mTOR 및 STAT3의 단백질 발현을 억제하는 것을 확인할 수 있었다 (도 23).
8-2. CA101의 BCL2 및 BI-1 발현 억제 확인
상기 실시예 7에서 제작한 재조합 아데노바이러스 CA101의 표적 유전자 BCL2 및 BI-1에 대한 발현 억제 효과를 확인하였다. 구체적으로, U-87 세포 (1X105/well)를 12 웰 플레이트에 분주한 뒤 1시간 후에 CA10G 및 CA101을 각각의 웰에 10 MOI가 되도록 처리하고 72시간 뒤에 RNA prep kit(Takara, 9767A)를 이용하여 RNA prep을 수행하였다. 그 후, Nanodirp을 이용하여 RNA 정량하고 RT 프리믹스 (intron, 25081)를 이용하여 튜브 당 400 ng/20 ul를 넣고 프리믹스(premix) 내용물과 잘 섞어 준 뒤 PCR 기기를 이용하여 45℃에서 1hr 및 95℃에서 5 분간 반응시켜 cDNA을 합성하였다. 합성된 cDNA 2 ul를 주형으로 이용하여 실험군에 해당하는 PCR 혼합물 (총 부피, 20 ul)을 만들었다 (주형 2 ul, 정방향 프라이머 0.5 ul (10 pmole/ul), 역방향 프라이머 0.5 ul (10 pmole/ul), 10 ul 2X master mix(Bioline, BIO-94005) 및 7 ul DW). 만든 PCR 혼합물을 볼텍싱하여 잘 섞고 원심분리한 후 qPCR 기기 (Applied Biosystems, QS3)에서 95℃에서 5분, 95℃에서 10초 및 60℃에서 30초를 40사이클 반응시켰다. 결과는 qPCR 기기에 있는 프로그램을 이용하여 분석하였다.
그 결과, U-87 세포에서, hTERT 프로모터와 BCL2 및 BI-1 이중 표적 shRNA를 코딩 및 발현하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA101은 hTERT 프로모터만 포함하는 재조합 아데노바이러스 CA10G에 비해 현저하게 BCL2 및 BI-1 유전자의 발현을 억제하는 것으로 나타났다 (도 24).
8-3. CA103의 AR 및 mTOR 발현 억제 확인
8-3-1. in vitro
상기 실시예 7에서 제작한 재조합 아데노바이러스 CA103의 표적 유전자 AR 및 mTOR에 대한 발현 억제 효과를 확인하였다. 구체적으로, 인간 전립선암 세포주인 LNcap, C42B 및 22Rv1를 각각 1X105/well로 12 웰 플레이트에 분주한 뒤 1시간 후에 CA10G 및 CA103을 각각의 웰에 2 또는 5 MOI가 되도록 처리하고 72시간 뒤에 RNA prep kit (Takara, 9767A)를 이용하여 RNA prep을 수행하였다. 그 후, Nanodirp을 이용하여 RNA 정량하고 RT 프리믹스 (intron, 25081)를 이용하여 튜브 당 400 ng/20 ul를 넣고 프리믹스(premix) 내용물과 잘 섞어 준 뒤 PCR 기기를 이용하여 45℃에서 1hr 및 95℃에서 5 분간 반응시켜 cDNA을 합성하였다. 합성된 cDNA 2 ul를 주형으로 이용하여 실험군에 해당하는 PCR 혼합물 (총 부피, 20 ul)을 만들었다 (주형 2 ul, 정방향 프라이머 0.5 ul (10 pmole/ul), 역방향 프라이머 0.5 ul (10 pmole/ul), 10 ul 2X master mix(Bioline, BIO-94005) 및 7 ul DW). 만든 PCR 혼합물을 볼텍싱하여 잘 섞고 원심분리한 후 qPCR 기기 (Applied Biosystems, QS3)에서 95℃에서 5분, 95℃에서 10초 및 60℃에서 30초를 40사이클 반응시켰다. 결과는 qPCR 기기에 있는 프로그램을 이용하여 분석하였다.
그 결과, LNcap 세포주에서, hTERT 프로모터와 AR 및 mTOR 이중 표적 shRNA를 코딩 및 발현하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA103은 hTERT 프로모터만 포함하는 재조합 아데노바이러스 CA10G에 비해 현저하게 AR 및 mTOR 유전자의 발현을 억제하는 것으로 나타났다 (도 25). 또한, C42B 및 22Rv1 세포주에서도 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA103가 CA10G에 비해 현저하게 AR 및 mTOR 유전자의 발현을 억제하는 것으로 나타났다 (도 26).
8-3-2. in vivo
balb c nu/nu 마우스에 전립선암 세포주 (22Rv-1)를 피하 이식하여 전립선암 마우스 모델을 구축한 뒤, 상기 실시예 7에서 제작한 재조합 아데노바이러스 CA10G 및 CA103를 각각 종양내 1회 직접 투여 (2×108 pfu/spot, 3 times)하고, 21일 후 종양을 적출하여 종양 내 AR 및 mTOR 유전자의 발현 정도를 웨스턴 블롯 분석 및 IHC 분석으로 확인하였다. 웨스턴 블롯 분석 결과, CA103를 투여한 군에서 대조군 및 CA10G 투여군에 비해 mTOR 및 AR의 발현이 감소한 것으로 나타났으며, IHC 분석 결과에서도 CA103를 투여한 군에서 mTOR 및 AR의 형광 발현이 대조군 및 CA10G 투여군에 비해 70~90% 이상 감소한 것으로 나타나, CA103이 종양 내 표적 유전자인 mTOR 및 AR의 발현을 효과적으로 억제하는 것을 확인하였다 (도 27)
8-4. CA104의 c-MET 및 PD-L1 발현 억제 확인
상기 실시예 7에서 제작한 재조합 아데노바이러스 CA104의 표적 유전자 c-MET 및 PD-L1에 대한 발현 억제 효과를 확인하였다. 구체적으로, A431 세포주 (1X105/well)를 12 웰 플레이트에 분주한 뒤 1시간 후에 CA10G 및 CA104을 각각의 웰에 2 또는 5 MOI가 되도록 처리하고 72시간 뒤에 RNA prep kit (Takara, 9767A)를 이용하여 RNA prep을 수행하였다. 그 후, Nanodirp을 이용하여 RNA 정량하고 RT 프리믹스 (intron, 25081)를 이용하여 튜브 당 400 ng/20 ul를 넣고 프리믹스(premix) 내용물과 잘 섞어 준 뒤 PCR 기기를 이용하여 45℃에서 1hr 및 95℃에서 5 분간 반응시켜 cDNA을 합성하였다. 합성된 cDNA 2 ul를 주형으로 이용하여 실험군에 해당하는 PCR 혼합물 (총 부피, 20 ul)을 만들었다 (주형 2 ul, 정방향 프라이머 0.5 ul (10 pmole/ul), 역방향 프라이머 0.5 ul (10 pmole/ul), 10 ul 2X master mix(Bioline, BIO-94005) 및 7 ul DW). 만든 PCR 혼합물을 볼텍싱하여 잘 섞고 원심분리한 후 qPCR 기기 (Applied Biosystems, QS3)에서 95℃에서 5분, 95℃에서 10초 및 60℃에서 30초로 40사이클 반응시켰다. 결과는 qPCR 기기에 있는 프로그램을 이용하여 분석하였다.
그 결과, A431 세포에서, hTERT 프로모터와 c-MET 및 PD-L1 이중 표적 shRNA를 코딩 및 발현하는 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA104는 hTERT 프로모터만 포함하는 재조합 아데노바이러스 CA10G에 비해 현저하게 c-MET 및 PD-L1 유전자의 발현을 억제하는 것으로 나타났다 (도 28).
실시예 9. 이중 표적 shRNA 코딩 아데노바이러스의 항암 효과 확인
9-1. CA101의 항암 효과 확인
상기 실시예 7에서 제작한 재조합 아데노바이러스 CA10G 및 CA101의 암세포 사멸 효과를 비교하였다. 구체적으로, U87MG 세포 (5X103/well)를 96 웰 플레이트에 각각 깔아준 뒤 1시간 후에 CA10G 및 CA101을 각각의 웰에 1, 2, 5, 10, 30 또는 50 MOI가 되도록 처리한 후 72시간 뒤에 MTT 시약을 넣고 37℃에서 3시간 동안 인큐베이션하였다. 3시간 후 각 웰에서 배지를 제거하고 DMSO를 100 ul씩 넣은 뒤, 바로 마이크로플레이트 리더기를 사용해 파장 540 nm에서 흡광도를 측정하여 MTT 분석을 수행하였다.
그 결과, CA10G에 비해 본 발명의 CA101이 현저하게 암세포들을 사멸하는 것을 확인할 수 있었다 (도 29).
9-2. CA102의 항암 효과 확인
9-2-1. 방광암
상기 실시예 7에서 제작한 재조합 아데노바이러스 CA10G 및 CA102의 암세포 사멸 효과를 비교하였다. 구체적으로, T24 세포 (2.5X103/well), 253J-BV 세포 (5X103/well) 및 인간 방광상피세포주 RT4 세포 (5X103/well)를 96 웰 플레이트에 각각 깔아준 뒤 1시간 후에 CA10G 및 CA102를 각각의 웰에 1, 2, 5, 10, 20 또는 50 MOI가 되도록 처리한 후 72시간 뒤에 MTT 시약을 넣고 37℃에서 3시간 동안 인큐베이션하였다. 3시간 후 각 웰에서 배지를 제거하고 DMSO를 100 ul씩 넣은 뒤, 바로 마이크로플레이트 리더기를 사용해 파장 540 nm에서 흡광도를 측정하여 MTT 분석을 수행하였다.
그 결과, CA10G에 비해 본 발명의 CA102가 현저하게 암세포들을 사멸하는 것을 확인할 수 있었다 (도 30).
9-2-2. 두경부암
본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102의 두경부암 세포 사멸 효과를 확인하기 위해, 상기 실시예 4에서 제작한 재조합 아데노바이러스 CA10G 및 CA102를 두경부암 세포주인 HSC-2 및 Fadu 처리하고 MTT 분석을 통해 세포사멸 효과를 비교하였다. 그 결과, 10MOI 처리 기준으로 CA10G 처리 시 약 40% 정도의 세포가 사멸한 반면, mTOR 및 STAT3 이중 표적 shRNA를 코딩 및 발현하는 CA102는 70% 이상의 세포 사멸을 유도한 것으로 나타났다 (도 31).
9-2-3. 피부 편평세포암
본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102의 피부 편평세포암 세포 사멸 효과를 확인하기 위해, 상기 실시예 4에서 제작한 재조합 아데노바이러스 CA10G 및 CA102를 피부 편평상피암 세포주인 A431 및 HSC-5에 처리하고 MTT 분석을 통해 세포사멸 효과를 비교하였다. 그 결과, 10MOI 처리 기준으로 CA10G에 비해 CA102의 세포 사멸 효과가 현저히 높은 것으로 나타났다 (도 32).
9-3. CA103의 항암 효과 확인
상기 실시예 7에서 제작한 재조합 아데노바이러스 CA10G 및 CA103의 암세포 사멸 효과를 비교하였다. 구체적으로, LNcap, C42B 및 22Rv1 세포주를 각각 5X103/well로 96 웰 플레이트에 각각 분주한 뒤 1시간 후에 CA10G 및 CA103을 각각의 웰에 1, 2, 5, 10, 20, 40 또는 50 MOI가 되도록 처리한 후 72시간 뒤에 MTT 시약을 넣고 37℃에서 3시간 동안 인큐베이션하였다. 3시간 후 각 웰에서 배지를 제거하고 DMSO를 100 ul씩 넣은 뒤, 바로 마이크로플레이트 리더기를 사용해 파장 540 nm에서 흡광도를 측정하여 MTT 분석을 수행하였다.
그 결과, LNcap 세포주의 경우 CA10G에 비해 본 발명의 CA103이 현저하게 암세포들을 사멸하는 것을 확인할 수 있었으며 (도 33), C42B 및 22Rv1 세포주의 경우에도 본 발명의 CA103이 현저하게 암세포들을 사멸하는 것을 확인할 수 있었다 (도 34).
실시예 10. 이중 표적 shRNA 코딩 아데노바이러스의 in vivo 항암 효과 확인
10-1. CA102의 항암 효과 확인
10-1-1. 생체 내 암세포에 대한 항암 효과
본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA102의 체내 암세포에 대한 항암 효과를 확인하기 위해, 100mm3 플레이트에 1.0 x107 개의 방광암 세포주 253J-BV 및 두경부암 세포주 FaDu를 각각 배양한 뒤, 본 발명의 재조합 아데노바이러스 CA10G 및 CA102를 각각 2 MOI 및 5 MOI으로 1시간 동안 처리하고 (대조군은 PBS 처리), 새로운 배지로 교체하여 2시간 동안 배양하였다. 그 후, 세포를 수거하고 마트리젤(Matrigel)과 1:1 (v/v)의 비율로 혼합하여 6주령 수컷 Balb/c nu-nu 마우스에 이식(Xenograft)한 후, 32일 동안 관찰하였다. 그 결과, 253J-BV의 경우 CA10G를 2 MOI 처리한 군에서 암세포의 크기가 유의하게 감소하였으며, CA102를 2 MOI 처리한 군에서는 암세포가 종식된 것으로 나타났다 (도 35). 또한, FaDu의 경우 CA10G를 5 MOI 처리한 군의 암세포의 크기는 대조군에 비해 큰 차이를 보이지 않았으나, CA102를 5MOI 처리한 군에서는 암세포가 종식된 것으로 나타났다 (도 36).
10-1-2. 생체 내 형성된 종양에 대한 항암 효과
Balb/c nu-nu 6주령 수컷 마우스에 5.0 x 106개의 방광암 세포주 253J-BV를 이식한 후, 일주일에 두 번씩 크기를 관찰하고, 종양의 크기가 평균적으로 150~200 mm3가 되었을 때 각 종양의 크기의 평균값이 일정하게 각 군으로 나누고, 3일 동안 매일 1번씩 총 3회 2.0 x 108 PFU의 CA10G와 CA102 바이러스를 각각 종양에 주입(Intratumoral injection)하였다. 그 후, 종양의 크기를 일주일에 두 번씩 43일 동안 관찰하였다. 그 결과, CA10G을 투여한 경우에는 대조군에 비하여 종양 크기가 감소하지만 시간에 따라 암세포의 성장률이 다시 증가하는 것으로 나타난 반면, CA102를 투여한 경우에는 대조군 및 CA10G에 비해 종양 크기가 유의미하게 감소하였고 시간이 지나도 암세포의 성장이 유의미하게 억제되는 것을 확인하였다 (도 37).
10-1-3. 투여 횟수에 따른 생체 내 형성된 종양에 대한 항암 효과
Balb/c nu-nu 6주령 수컷 마우스에 5.0 x 106개의 방광암 세포주 253J-BV를 이식한 후, 일주일에 두 번씩 크기를 관찰하고, 종양의 크기가 평균적으로 200 mm3가 되었을 때 각 종양의 크기의 평균값이 일정하게 각 군으로 나누고, 3일 동안 매일 1번씩 총 5회 1.0 x 108 PFU의 CA10G와 CA102 바이러스를 각각 종양에 주입(Intratumoral injection)하였다. 그 후, 종양의 크기를 일주일에 두 번씩 42일 동안 관찰하였다. 그 결과, 종양의 크기가 CA102를 투여한 횟수에 따라 감소하여, 투여 횟수에 따라 암세포의 성장이 억제되는 것을 확인하였다 (도 38).
10-1-4. 투여량에 따른 생체 내 형성된 종양에 대한 항암 효과
Balb/c nu-nu 6주령 수컷 마우스에 교모세포종 세포주 (U-87)를 피하 이식한 후, 종양의 크기를 관찰한 뒤, 종양의 크기가 평균적으로 200 mm3이 되었을 때, 각 종양의 크기의 평균값이 일정하게 각 군으로 나누고, 각 군별로 CA102의 투여량을 변화시켜 종양 내 직접 투여하여 종양의 부피 및 무게를 관찰하였다. 그 결과, CA10G 처리군 대비 CA102 처리군에서 종양의 부피 및 무게가 크게 감소하였으며, 투여량이 증가함에 따라 항암 효과가 더 증가하는 것을 확인하였다 (도 39).
10-2. CA103의 항암 효과 확인
balb c nu/nu 마우스에 전립선암 세포주 (22Rv-1)를 피하 이식하여 전립선암 마우스 모델을 구축한 뒤, 상기 실시예 7에서 제작한 재조합 아데노바이러스 CA10G 및 CA103를 각각 종양내 직접 투여 (2×108 pfu/spot, 3 times)하여 그 생장을 관찰한 결과, 무처리 대조군 (buffer 처리군) 및 벡터 대조군 (CA10G 처리군)에 비해 CA103를 처리한 군에서 종양의 부피 및 무게가 크게 감소하는 것을 확인할 수 있었다 (도 40).
실시예 11. 이중 표적 shRNA 코딩 아데노바이러스의 항암제와의 병용 처리 효과 확인
balb c nu/nu 마우스에 방광암 세포주 (253J-BV)를 피하 이식하여 방광암 마우스 모델을 각각 구축한 뒤, 상기 실시예 7에서 제작한 재조합 아데노바이러스 CA10G 및 CA102를 각각 종양 내 직접 투여하여 종양의 생장을 관찰한 결과, 무처리 대조군 (buffer 처리군) 및 벡터 대조군 (CA10G 처리군)에 비해 CA102 처리군에서 종양의 부피 및 무게가 현저히 감소하는 것으로 나타났으며, 항암제인 시스플라틴을 병용 투여한 경우에는 항암 효과가 시너지적으로 증가하는 것을 확인하였다 (도 41).

Claims (31)

  1. 인간 텔로미어 프로모터(hTERT); 및
    제 1 핵산을 표적서열로 하는 염기 서열 및 제 2 핵산을 표적서열로 하는 염기 서열을 포함하는 발현 카세트를 포함하는 항종양 아데노바이러스에 있어서,
    상기 제 1 핵산을 표적서열로 하는 염기 서열과 제 2 핵산을 표적서열로 하는 염기서열은 세포 또는 조직에서 발현하는 경우, 부분적으로 이중가닥을 이루어 제 1 핵산 및 제 2 핵산을 타겟하는 siRNA 또는 shRNA를 형성하는 것인, 항종양 아데노바이러스.
  2. 제 1항에 있어서, 인간 텔로미어 프로모터는 아데노바이러스의 내재적 유전자와 작동 가능하게 연결된, 항종양 아데노바이러스.
  3. 제 2항에 있어서, 아데노바이러스의 내재적 유전자는 5'ITR-C1-C2-C3-C4-C5 3'ITR의 구조를 가지며;
    상기 C1은 E1A, E1B 또는 E1A-E1B를 포함하고;
    상기 C2는 E2B-L1-L2-L3-E2A-L4를 포함하며;
    상기 C3는 E3가 포함하지 않거나 E3를 포함하고;
    상기 C4는 L5를 포함하며; 및
    상기 C5는 E4를 포함하지 않거나 E4를 포함하는, 항종양 아데노바이러스.
  4. 제 1항에 있어서, 발현 카세트가 아데노바이러스의 내재적 유전자의 C3 부위에 위치하는, 항종양 아데노바이러스.
  5. 제 1항에 있어서, hTERT 프로모터가 아데노바이러스의 내재적 유전자의 E1A 및 E1B와 작동가능하게 연결된, 항종양 아데노바이러스.
  6. 제 5항에 있어서, E1A 및 E1B 사이에 IRES 서열이 추가로 포함된, 항종양 아데노바이러스.
  7. 제 1항에 있어서, 발현 카세트는 shRNA를 코딩하는, 항종양 아데노바이러스.
  8. 제 7항에 있어서, shRNA는 동시에 제 1 핵산 및 제 2 핵산을 억제하는, 항종양 아데노바이러스.
  9. 제 1항에 있어서, 핵산은 암과 관련된 유전자인, 항종양 아데노바이러스.
  10. 제 9항에 있어서, 암과 관련된 유전자는 암에서 발현이 증가되는 암유전자(oncogene)인, 항종양 아데노바이러스.
  11. 제 10항에 있어서, 암유전자는 아폽토시스(Apoptosis) 관련 유전자, 전사인자(Trnscription Factor) 유전자, 전이(Metastasis) 관련 유전자, 혈관신생(Angiogenesis) 관련 유전자 또는 티로신-카이네이즈(Tyrosine-Kinase) 유전자인, 항종양 아데노바이러스.
  12. 제 11항에 있어서, 아폽토시스 관련 유전자는 ABL1, AKT1, AKT2, BARD1, BAX, BCL11B, BCL2, BCL2A1, BCL2L1, BCL2L12, BCL3, BCL6, BIRC2, BIRC3, BIRC5, BRAF, CARD11, CAV1, CBL, CDC25A, CDKN1A, CFLAR, CNR2, CTNNB1, CUL4A, DAXX, DDIT3, E2F1, E2F3, E2F5, ESPL1, FOXO1, HDAC1, HSPA5, IGF1R, IGF2, JUN, JUNB, JUND, MALT1, MAP3K7, MCL1, MDM2, MDM4, MYB, MYC, NFKB2, NPM1, NTRK1, PAK1, PAX3, PML, PRKCA, PRKCE, PTK2B, RAF1, RHOA, TGFB1, TNFRSF1B, TP73, TRAF6, YWHAG, YWHAQ 또는 YWHAZ인, 항종양 아데노바이러스.
  13. 제 11항에 있어서, 전사인자 유전자는 AR, ARID3A, ASCL1, ATF1, ATF3, BCL11A, BCL11B, BCL3, BCL6, CDC5L, CDX2, CREB1, CUX1, DDIT3, DLX5, E2F1, E2F3, E2F5, ELF4, ELK1, ELK3, EN2, ERG, ETS1, ETS2, ETV1, ETV3, ETV4, ETV6, FEV, FEZF1, FLI1, FOS, FOSL1, FOXA1, FOXG1, FOXM1, FOXO1, FOXP1, FOXQ1, GATA1, GATA6, GFI1, GFI1B, GLI1, GLI2, GLI3, HES6, HHEX, HLF, HMGA1, HMGA2, HOXA1, HOXA9, HOXD13, HOXD9, ID1, ID2, IKZF1, IRF2, IRF4, JUN, JUNB, JUND, KAT6A, KDM2A, KDM5B, KLF2, KLF4, KLF5, KLF6, KLF8, KMT2A, LEF1, LHX1, LMX1B, MAF, MAFA, MAFB, MBD1, MECOM, MEF2C, MEIS1, MITF, MYB, MYC, MYCL, MYCN, NANOG, NCOA3, NFIB, NFKB2, NKX2-1, OTX2, PATZ1, PAX2, PAX3, PAX4, PAX8, PBX1, PBX2, PITX2, PLAG1, PLAGL2, PPARG, PPP1R13L, PRDM10, PRDM13, PRDM14, PRDM15, PRDM16, PRDM6, PRDM8, PRDM9, RARA, REL, RERE, RUNX1, RUNX3, SALL4, SATB1, SFPQ, SIX1, SNAI1, SOX2, SOX4, SPI1, SREBF1, STAT3, TAF1, TAL1, TAL2, TBX2, TBX3, TCF3, TFCP2, TFE3, THRA, TLX1, TP63, TP73, TWIST1, WT1, YBX1, YY1, ZBTB16, ZBTB7A, ZIC2, ZNF217 또는 ZNF268인, 항종양 아데노바이러스.
  14. 제 11항에 있어서, 전이 관련 유전자는 AKT1, AKT2, AR, CBL, CDH1, CRK, CSF1, CTNNB1, CTTN, CXCR4, EGFR, FGFR1, FLT3, FYN, GLI1, ILK, ITGA3, JAK2, MET, PDGFRB, PLXNB1, PRKCI, PTCH1, PTPN11, RAC1, RHOA, RHOC, ROCK1, SMO, SNAI1, SRC, TCF3 또는 WT1인, 항종양 아데노바이러스.
  15. 제 11항에 있어서, 혈관신생 관련 유전자는 BRAF, CAV1, CTGF, EGFR, ERBB2, ETS1, FGF4, FGF6, FGFR1, FGFR3, FGFR4, ID1, NRAS, PDGFB, PDGFRA, PDGFRB 또는 SPARC인, 항종양 아데노바이러스.
  16. 제 11항에 있어서, 티로신-카이네이즈 유전자는 ABL1, ABL2, ALK, AXL, BLK, EGFR, EPHA2, ERBB2, ERBB3, ERBB4, FES, FGFR1, FGFR2, FGFR3, FGFR4, FGR, FLT3, FYN, ITK, JAK1, JAK2, KIT, LCK, MERTK, MET, MST1R, NTRK1, NTRK3, PDGFRA, PDGFRB, PTK2B, PTK7, RET, ROS1, SRC, SYK, TEC 또는 YES1인, 항종양 아데노바이러스.
  17. 제 10항에 있어서, 암유전자는 SEPTIN9, ACOD1, ACTN4, ADAM28, ADAM9, ADGRF1, ADRBK2, AFF1, AFF3, AGAP2, AGFG1, AGRN, AHCYL1, AHI1, AIMP2, AKAP13, AKAP9, AKIRIN2, AKTIP, ALDH1A1, ALL1, ANIB1, ANP32C, ANP32D, AQP1, ARAF, ARHGEF1, ARHGEF2, ARHGEF5, ASPSCR1, AURKA, BAALC, BAIAP2L1, BANP, BCAR4, BCKDHB, BCL9, BCL9L, BCR, BMI1, BMP7, BOC, BRD4, BRF2, CABIN1, CAMK1D, CAPG, CBFB, CBLB, CBLL1, CBX7, CBX8, CCDC28A, CCDC6, CCNB1, CCNB2, CCND1, CCNE1, CCNL1, CD24, CDC25C, CDC6, CDH17, CDK1, CDK14, CDK4, CDK5R2, CDK6, CDK8, CDKN1B, CDKN3, CDON, CEACAM6, CENPW, CHD1L, CHIC1, CHL1, CKS1B, CMC4, CNTN2, COPS3, COPS5, CRKL, CRLF2, CROT, CRTC1, CRYAB, CSF1R, CSF3, CSF3R, CSNK2A1, CSNK2A2, CT45A1, CTBP2, CTNND2, CTSZ, CUL7, CXCL1, CXCL2, CXCL3, CYGB, CYP24A1, DCD, DCUN1D1DDB2, DDHD2, DDX6, DEK, DIS3, DNPH1, DPPA2, DPPA4, DSG3, DUSP12, DUSP26, ECHS1, ECT2, EEF1A1, EEF1A2, EEF1D, EIF3E, EIF3I, EIF4E, EIF5A2, ELAVL1, ELL, EML4, EMSY, ENTPD5, EPCAM, EPS8, ERAS, ERGIC1, ERVW-1, EVI2A, EVI5, EWSR1, EZH2, FAM189B, FAM72A, FAM83D, FASN, FDPS, FGF10, FGF3, FGF5, FGF8, FR1OP, FHL2, FIP1L1, FNDC3B, FRAT1, FUBP1, FUS, FZD2, GAB2, GAEC1, GALNT10, GALR2, GLO1, GMNN, GNA12, GNA13, GNAI2, GNAQ, GNAS, GOLPH3, GOPC, GPAT4, GPM6A, GPM6B, GPR132, GREM1, GRM1, GSK3A, GSM1, H19, HAS1, HAX1, HDGFRP2, HMGN5, HNRNPA1, HOTAIR, HOTTIP, HOXA-AS2, HRAS, HSPA1A, HSPA4, HSPB1, HULC, IDH1, IFNG, IGF2BP1, IKBKE, IL7R, INPPL1, INTS1, INTS2, INTS3, INTS4, INTS5, INTS7, INTS8, IRS2, IST1, JUP, KDM4C, KIAA0101, KIAA1524, KIF14, KRAS, KSR2, LAMTOR5, LAPTM4B, LCN2, LDHB, LETMD1, LIN28A, LIN28B, LMO1, LMO2, LMO3, LMO4, LSM1, LUADT1, MACC1, MACROD1, MAGEA11, MALAT1, MAML2, MAP3K8, MAPRE1, MAS1, MCC, MCF2, MCF2L, MCTS1, MEFV, MFHAS1, MFNG, MIEN1, MINA, MKL2, MLANA, MLLT1, MLLT11, MLLT3, MLLT4, MMP12, MMS22L, MN1, MNAT1, MOS, MPL, MPST, MRAS, MRE11A, MSI1, MTCP1, MTDH, MTOR, MUC1, MUC4, MUM1, MYD88, NAAA, NANOGP8, NBPF12, NCOA4, NEAT1, NECTIN4, NEDD4, NEDD9, NET1, NINL, NME1, NOTCH1, NOTCH4, NOV, NSD1, NUAK2, NUP214, NUP98, NUTM1, OLR1, PA2G4, PADI2, PAK7, PARK7, PARM1, PBK, PCAT1, PCAT5, PDGFA, PDZK1IP1, PELP1, PFN1P3, PIGU, PIK3CA, PIK3R1, PIM1, PIM2, PIM3, PIR, PIWIL1, PLAC8, PLK1, PPM1D, PPP1R10, PPP1R14A, PPP2R1A, PRAME, PRDM12, PRMT5, PSIP1, PSMD10, PTCH2, PTMA, PTP4A1, PTP4A2, PTP4A3, PTTG1, PTTG1IP, PTTG2, PVT1, RAB11A, RAB18, RAB22A, RAB23, RAB8A, RALGDS, RAP1A, RASSF1, RBM14, RBM15, RBM3, RBMY1A1, RFC3, RGL4, RGR, RHO, RING1, RINT1, RIT1, RNF43, RPL23, RRAS, RRAS2, RSF1, RUNX1T1, S100A4, S100A7, S100A8, SAG, SART3, SBSN, SEA, SEC62, SERTAD1, SERTAD2, SERTAD3, SET, SETBP1, SETDB1, SGK1, SIRT1, SIRT6, SKI, SKIL, SKP2, SLC12A5, SLC3A2, SMR3B, SMURF1, SNCG, SNORA59A, SNORA80E, SPAG9, SPATA4, SPRY2, SQSTM1, SRSF1, SRSF2, SRSF3, SRSF6, SS18, SSX1, SSX2, SSX2B, STIL, STMN1, STRA6, STYK1, SUZ12, SWAP70, SYT1, TAC1, TACSTD2, TAF15, TALDO1, TAZ, TBC1D1, TBC1D15, TBC1D3, TBC1D3C, TBC1D7, TCL1A, TCL1B, TCL6, TCP1, TFG, TGM3, TINCR, TKTL1, TLE1, TMEM140, TMPOP2, TMPRSS2, TNS4, TPD52, TPR, TRE17, TREH, TRIB1, TRIB2, TRIM28, TRIM32, TRIM8, TRIO, TRIP6, TSPAN1, TSPY1, TXN, TYMS, TYRP1, UBE2C, UBE3C, UCA1, UCHL1, UHRF1, URI1, USP22, USP4, USP6, VAV1, VAV2, VAV3, VIM, WAPL, WHSC1, WHSC1L1, WISP1, WNT1, WNT10A, WNT10B, WNT2, WNT3, WNT5A, WWTR1, XCL1, XIAP, YAP1, YEATS4, YY1AP1, ZEB1-AS1, ZFAND4, ZFAS1, ZMYM2, ZNF703 또는 ZNHIT6인, 항종양 아데노바이러스.
  18. 제 1항에 있어서, 핵산은 ABL1, AKT1, AKT2, BARD1, BAX, BCL11B, BCL2, BCL2A1, BCL2L1, BCL2L12, BCL3, BCL6, BIRC2, BIRC3, BIRC5, BRAF, CARD11, CAV1, CBL, CDC25A, CDKN1A, CFLAR, c-MET, CNR2, CTNNB1, CUL4A, DAXX, DDIT3, E2F1, E2F3, E2F5, ESPL1, FOXO1, HDAC1, HSPA5, IGF1R, IGF2, JUN, JUNB, JUND, MALT1, MAP3K7, MCL1, MDM2, MDM4, MYB, MYC, NFKB2, NPM1, NTRK1, PAK1, PAX3, PML, PRKCA, PRKCE, PTK2B, RAF1, RHOA, TGFB1, TNFRSF1B, TP73, TRAF6, YWHAG, YWHAQ, YWHAZ, AR, ARID3A, ASCL1, ATF1, ATF3, BCL11A, BCL11B, BCL3, BCL6, CDC5L, CDX2, CREB1, CUX1, DDIT3, DLX5, E2F1, E2F3, E2F5, ELF4, ELK1, ELK3, EN2, ERG, ETS1, ETS2, ETV1, ETV3, ETV4, ETV6, FEV, FEZF1, FLI1, FOS, FOSL1, FOXA1, FOXG1, FOXM1, FOXO1, FOXP1, FOXQ1, GATA1, GATA6, GFI1, GFI1B, GLI1, GLI2, GLI3, HES6, HHEX, HLF, HMGA1, HMGA2, HOXA1, HOXA9, HOXD13, HOXD9, ID1, ID2, IKZF1, IRF2, IRF4, JUN, JUNB, JUND, KAT6A, KDM2A, KDM5B, KLF2, KLF4, KLF5, KLF6, KLF8, KMT2A, LEF1, LHX1, LMX1B, MAF, MAFA, MAFB, MBD1, MECOM, MEF2C, MEIS1, MITF, MYB, MYC, MYCL, MYCN, NANOG, NCOA3, NFIB, NFKB2, NKX2-1, OTX2, PATZ1, PAX2, PAX3, PAX4, PAX8, PBX1, PBX2, PD-L1, PITX2, PLAG1, PLAGL2, PPARG, PPP1R13L, PRDM10, PRDM13, PRDM14, PRDM15, PRDM16, PRDM6, PRDM8, PRDM9, RARA, REL, RERE, RUNX1, RUNX3, SALL4, SATB1, SFPQ, SIX1, SNAI1, SOX2, SOX4, SPI1, SREBF1, STAT3, TAF1, TAL1, TAL2, TBX2, TBX3, TCF3, TFCP2, TFE3, THRA, TLX1, TP63, TP73, TWIST1, WT1, YBX1, YY1, ZBTB16, ZBTB7A, ZIC2, ZNF217, ZNF268, AKT1, AKT2, AR, CBL, CDH1, CRK, CSF1, CTNNB1, CTTN, CXCR4, EGFR, FGFR1, FLT3, FYN, GLI1, ILK, ITGA3, JAK2, MET, PDGFRB, PLXNB1, PRKCI, PTCH1, PTPN11, RAC1, RHOA, RHOC, ROCK1, SMO, SNAI1, SRC, TCF3, WT1, BRAF, CAV1, CTGF, EGFR, ERBB2, ETS1, FGF4, FGF6, FGFR1, FGFR3, FGFR4, ID1, NRAS, PDGFB, PDGFRA, PDGFRB, SPARC, ABL1, ABL2, ALK, AXL, BLK, EGFR, EPHA2, ERBB2, ERBB3, ERBB4, FES, FGFR1, FGFR2, FGFR3, FGFR4, FGR, FLT3, FYN, ITK, JAK1, JAK2, KIT, LCK, MERTK, MET, MST1R, NTRK1, NTRK3, PDGFRA, PDGFRB, PTK2B, PTK7, RET, ROS1, SRC, SYK, TEC, YES1, SEPTIN9, ACOD1, ACTN4, ADAM28, ADAM9, ADGRF1, ADRBK2, AFF1, AFF3, AGAP2, AGFG1, AGRN, AHCYL1, AHI1, AIMP2, AKAP13, AKAP9, AKIRIN2, AKTIP, ALDH1A1, ALL1, ANIB1, ANP32C, ANP32D, AQP1, ARAF, ARHGEF1, ARHGEF2, ARHGEF5, ASPSCR1, AURKA, BAALC, BAIAP2L1, BANP, BCAR4, BCKDHB, BCL9, BCL9L, BCR, BMI1, BMP7, BOC, BRD4, BRF2, CABIN1, CAMK1D, CAPG, CBFB, CBLB, CBLL1, CBX7, CBX8, CCDC28A, CCDC6, CCNB1, CCNB2, CCND1, CCNE1, CCNL1, CD24, CDC25C, CDC6, CDH17, CDK1, CDK14, CDK4, CDK5R2, CDK6, CDK8, CDKN1B, CDKN3, CDON, CEACAM6, CENPW, CHD1L, CHIC1, CHL1, CKS1B, CMC4, CNTN2, COPS3, COPS5, CRKL, CRLF2, CROT, CRTC1, CRYAB, CSF1R, CSF3, CSF3R, CSNK2A1, CSNK2A2, CT45A1, CTBP2, CTNND2, CTSZ, CUL7, CXCL1, CXCL2, CXCL3, CYGB, CYP24A1, DCD, DCUN1D1DDB2, DDHD2, DDX6, DEK, DIS3, DNPH1, DPPA2, DPPA4, DSG3, DUSP12, DUSP26, ECHS1, ECT2, EEF1A1, EEF1A2, EEF1D, EIF3E, EIF3I, EIF4E, EIF5A2, ELAVL1, ELL, EML4, EMSY, ENTPD5, EPCAM, EPS8, ERAS, ERGIC1, ERVW-1, EVI2A, EVI5, EWSR1, EZH2, FAM189B, FAM72A, FAM83D, FASN, FDPS, FGF10, FGF3, FGF5, 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TSPY1, TXN, TYMS, TYRP1, UBE2C, UBE3C, UCA1, UCHL1, UHRF1, URI1, USP22, USP4, USP6, VAV1, VAV2, VAV3, VIM, WAPL, WHSC1, WHSC1L1, WISP1, WNT1, WNT10A, WNT10B, WNT2, WNT3, WNT5A, WWTR1, XCL1, XIAP, YAP1, YEATS4, YY1AP1, ZEB1-AS1, ZFAND4, ZFAS1, ZMYM2, ZNF703 또는 ZNHIT6인, 항종양 아데노바이러스.
  19. 제 1항에 있어서, 제 1 핵산 및 제 2 핵산은 서로 상이한, 항종양 아데노바이러스.
  20. 제 1항에 있어서, 제 1 핵산은 제 2 핵산의 역상보 서열과 60% 이상의 상보성을 갖는 염기서열을 포함하는, 항종양 아데노바이러스.
  21. 제 1항에 있어서, 제 2 핵산은 제 1 핵산에 대한 역상보 서열과 60% 이상의 상보성을 갖는 염기서열을 포함하는, 항종양 아데노바이러스.
  22. 제 1항에 있어서, 발현 카세트는 제 1 핵산을 표적서열로 하는 염기 서열, 헤어핀 구조를 이룰 수 있는 루프 서열, 및 제 2 핵산을 표적서열로 하는 염기 서열을 순차적으로 코딩하는 염기서열을 포함하는, 항종양 아데노바이러스.
  23. 제 1항에 있어서, 발현 카세트는 U6 프로모터에 의하여 발현이 조절되는, 항종양 아데노바이러스.
  24. 제 1항에 있어서, 아데노바이러스는 그룹 C 아데노바이러스인, 항종양 아데노바이러스.
  25. 제 1항에 있어서, 혈청형이 5 타입인, 항종양 아데노바이러스.
  26. 제 1항에 있어서, 항종양 바이러스는 야생형 아데노바이러스에 비해 종양살상능이 높은, 항종양 아데노바이러스.
  27. 제 1항에 있어서, 항종양 바이러스는 야생형 아데노바이러스에 hTERT 프로모터가 도입된 아데노바이러스에 비해 종양살상능이 높은, 항종양 아데노바이러스.
  28. 제 1항의 항종양 아데노바이러스를 포함하는 암 치료용 조성물.
  29. 제 28항에 있어서, 항암제를 추가로 포함하는, 암 치료용 조성물.
  30. 제 1항의 항종양 아데노바이러스의 종양 예방 또는 치료 용도.
  31. 제 1항의 항종양 아데노바이러스를 이용한 종양의 치료 방법.
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