WO2021172595A1 - 抗原提示細胞外小胞、それを含む組成物、及びそれらを製造するための方法 - Google Patents

抗原提示細胞外小胞、それを含む組成物、及びそれらを製造するための方法 Download PDF

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力成 華山
友義 山野
一隆 的場
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Definitions

  • the present invention relates to antigen-presenting extracellular vesicles, compositions containing them, and methods for producing them.
  • Antigen-specific T cells are central to immune responses such as elimination of cancer cells by the living body and regulation of responses to self-antigens, allergic substances, etc. It is known that it works well.
  • Antigen-specific T cells recognize a binding complex of MHC molecules on the cell surface of antigen-presenting cells such as dendritic cells and macrophages with antigens derived from cancer, allergens, etc. by T cell receptors. Activation, proliferation, differentiation, etc. Activated antigen-specific T cells specifically injure cancer cells and the like presenting the antigen, and regulate responses to self-antigens, allergic substances, and the like. Therefore, it is considered that activation, proliferation, differentiation and the like of antigen-specific T cells are particularly important in the immune response.
  • Patent Document 1 discloses that nanoparticles containing an MHC molecule and a T cell co-stimulating molecule on the surface proliferate antigen-specific T cells.
  • Non-Patent Document 1 discloses that exosomes expressing IL-12 on a membrane via PTGFRN proliferate tumor antigen-specific CD8-positive T cells.
  • the present inventors have attempted a method of using extracellular vesicles containing an MHC molecule and a T cell co-stimulating molecule in a membrane as a new method capable of activating antigen-specific T cells.
  • we tried to activate antigen-specific T cells using these extracellular vesicles we found for the first time that antigen-specific T cells could not be activated satisfactorily.
  • an object of the present invention is to provide extracellular vesicles capable of satisfactorily activating antigen-specific T cells.
  • the present inventor unexpectedly obtained antigen-specific T cells by using extracellular vesicles containing MHC molecule and T cell-stimulating cytokine in the membrane. We have found that it can be activated satisfactorily, and have completed the present invention.
  • the present invention includes: [0] Extracellular vesicles that present antigen-presenting MHC molecules and T cell-stimulating cytokines extramembranely.
  • a fusion protein capable of presenting the first T cell stimulating cytokine extramembranely including a transmembrane domain thereof or a protein capable of binding to the membrane of an extracellular vesicle or a domain thereof;
  • Antigen-presenting extracellular vesicles including.
  • a fusion protein capable of presenting the first T cell-stimulating cytokine extramembranely which comprises a cell-stimulating cytokine or a subunit thereof and a partial sequence of tetraspanin, wherein the partial sequence of tetraspanin is two membranes.
  • a fusion protein capable of presenting the first T cell stimulating cytokine extramembranely including the unit and MFG-E8 or its domain; Antigen-presenting extracellular vesicles, including.
  • [4] The antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1] to [3], wherein the following: (A) A fusion protein capable of presenting an antigen peptide extramembranely, from the N-terminal side. (A-1) MHC molecule-restricting antigen peptide, (A-2) Spacer array that may be present, (A-3) Single-chain MHC molecule, A protein complex capable of presenting a fusion protein or (A) antigen peptide extramembranely, which comprises (A-4) a spacer sequence which may be present and (A-5) an amino acid sequence consisting of tetraspanin.
  • A-1) MHC molecule-restricting antigen peptide, (A-2) Spacer array that may be present, (A-3) MHC class I ⁇ chain, ⁇ 2 microglobulin, MHC class II ⁇ chain, or MHC class II ⁇ chain (A-4) Spacer sequence that may be present, and (A-5) Amino acid sequence consisting of tetraspanin. Including fusion proteins and (A-6) A protein complex containing a protein containing the amino acid sequence of ⁇ 2 microglobulin, MHC class I ⁇ chain, MHC class II ⁇ chain, or MHC class II ⁇ chain; and (B) from the N-terminal side.
  • the first T cell-stimulating cytokine extramembrane ly comprises (B-4) a spacer sequence that may be present and (B-5) an amino acid sequence consisting of a partial sequence of tetraspanin containing a transmembrane domain 4.
  • the first T cell-stimulating cytokine is IL-2, IL-4, IL-6, IL-12, IL-12 subunit or TGF- ⁇ , [1] to [6].
  • the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one.
  • [8] The antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1] to [7], wherein the following: (C) A protein in which the T cell co-stimulator molecule and the T cell can interact with each other, including the T cell co-stimulator molecule; Antigen-presenting extracellular vesicles, including.
  • Antigen-presenting extracellular vesicles including.
  • a polynucleotide which is as follows: (I) The fusion protein or protein complex of (A) defined in any of [2] to [6]; (Ii) Fusion protein of (B) defined by any of [2] to [4]; or (ii) Fusion protein of (C) defined by any of [9] to [11]; A polynucleotide that encodes one of the above. [14] A vector containing at least one polynucleotide selected from the polynucleotides described in [13].
  • Antigen-presenting extracellular vesicles obtained from the culture supernatant according to [16].
  • a method for producing an antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1] to [12], and a culture supernatant obtained by culturing the cells according to [15] is collected.
  • a pharmaceutical composition comprising the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1] to [12] and [17], or the culture supernatant according to [16].
  • Pharmaceutical composition comprising the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1] to [12] and [17], or the culture supernatant according to [16], for treating or preventing an infectious disease.
  • a pharmaceutical composition comprising the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [5] and [7] to [12] for treating or preventing cancer.
  • a pharmaceutical composition comprising the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [6] to [12] for treating or preventing an autoimmune disease.
  • a pharmaceutical composition comprising the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [6] to [12] for treating or preventing allergic diseases.
  • a method for activating and / or proliferating T cells against a specific antigen which comprises the antigen-presenting extracellular vesicles and T cells according to any one of [1] to [12] and [17].
  • a method comprising contacting cells in vitro or ex vivo.
  • the immune checkpoint inhibitor is selected from the group consisting of an anti-PD-1 antibody or an active fragment thereof; an anti-CTLA-4 antibody or an active fragment thereof; and a PD-L1 antibody or an active fragment thereof.
  • the pharmaceutical composition according to [31] is selected from the group consisting of an anti-PD-1 antibody or an active fragment thereof; an anti-CTLA-4 antibody or an active fragment thereof; and a PD-L1 antibody or an active fragment thereof.
  • Antigen-presenting extracellular vesicles on its membrane (D) Antigen-presenting extracellular antigen-presenting cell containing an antigen-presenting MHC molecule and at least one T cell-stimulating cytokine or subsystem thereof, and containing the antigen and a fusion protein capable of presenting the T-cell-stimulating cytokine extramembranely. Cytokine.
  • the fusion protein is the antigen-presenting MHC molecule, at least one T cell-stimulating cytokine or a subunit thereof, and a membrane protein capable of localizing to the membrane of an extracellular vesicle or a transmembrane domain thereof.
  • An antigen-presenting extracellular vesicle containing a protein capable of binding to the membrane of an extracellular vesicle or a membrane-binding domain thereof.
  • An antigen-presenting extracellular vesicle, wherein the membrane protein capable of localizing to the membrane of the extracellular vesicle or the protein capable of binding to the membrane of the extracellular vesicle is tetraspanin or MFG-E8.
  • the fusion protein is released from the N-terminal side.
  • D-1 A fusion peptide (D-2) containing tetraspanin or its transmembrane domain or MFG-E8 or its transmembrane domain and at least one T cell-stimulating cytokine or subunit thereof (D-2) Good spacer array, (D-3) Single-chain MHC molecule, (D-4) a spacer sequence that may be present, and (D-5) an MHC molecule-restricting antigen peptide. Antigen-presenting extracellular vesicles containing an amino acid sequence encoding in this order.
  • the fusion peptide (1) Partial sequence of tetraspanin including transmembrane domain 1, small extracellular loop, transmembrane domain 2, small intracellular loop and transmembrane domain 3, (2) Spacer array that may exist, (3) At least one T cell-stimulating cytokine or subunit thereof, The antigen-presenting cell according to [4A] or [5A], which comprises (4) a spacer sequence which may be present, and (5) an amino acid sequence which encodes a partial sequence of tetraspanin including a transmembrane domain 4 in this order. External vesicle.
  • the fusion peptide (1) At least one T cell-stimulating cytokine or subunit thereof, (2) Spacer arrangement that may be present, and (3) MFG-E8 The antigen-presenting extracellular vesicle according to [4A] or [5A], which comprises an amino acid sequence encoding in this order.
  • the MHC molecule-binding antigen peptide is an MHC class II molecule-binding antigen peptide, and the single-chain MHC molecule contains an extracellular domain of an MHC class II ⁇ chain and / or an extracellular domain of an MHC class II ⁇ chain [4A. ] Or the antigen-presenting extracellular vesicle according to [5A].
  • the membrane further contains a protein capable of interacting with the T cell co-stimulator molecule, which comprises at least one T cell co-stimulator molecule.
  • the protein capable of interacting with the T cell is formed on at least one T cell costimulatory molecule and a membrane protein that can be expressed on the membrane of the extracellular vesicle or its transmembrane domain or the membrane of the extracellular vesicle.
  • the antigen-presenting extracellular vesicle according to [10A] which comprises a protein capable of binding or a domain thereof.
  • the antigen-presenting extracellular vesicle according to [11A], wherein the protein capable of interacting with the T cell comprises at least one T cell co-stimulating molecule and tetraspanin or a transmembrane domain thereof or MFG-E8 or a domain thereof.
  • Vesicle. [13A] The protein that can interact with the T cells (C) From the N-terminal side (C-1) At least one T cell co-stimulating molecule, The antigen-presenting extracellular vesicle according to [12A], which comprises (C-2) a spacer sequence that may be present, and (C-3) an amino acid sequence that encodes tetraspanin in this order.
  • [14A] The antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [10A] to [13A], wherein the fusion protein (A) and a protein capable of interacting with the T cell (C) are fused.
  • [15A] The antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1A] to [14A], wherein the extracellular vesicle is an exosome.
  • [1B] A pharmaceutical composition comprising the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1A] to [15A] and a pharmacologically acceptable carrier.
  • [1C] A pharmaceutical composition comprising the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1A] to [15A] for treating or preventing cancer; where the antigen peptide is preferably a cancer antigen peptide. including.
  • [2C] A pharmaceutical composition comprising the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1A] to [15A] for treating or preventing an autoimmune disease; where the antigen peptide is preferably self. Contains antigenic peptides.
  • [3C] A pharmaceutical composition comprising the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1A] to [15A] for treating or preventing an allergic disease; where the antigen peptide is preferably an allergen. including.
  • [4C] The pharmaceutical composition according to [1C], which comprises an immune checkpoint inhibitor.
  • [5C] The pharmaceutical composition according to [4C], wherein the immune checkpoint inhibitor is present on the membrane of the antigen-presenting extracellular vesicle.
  • the immune checkpoint inhibitor is selected from the group consisting of an anti-PD-1 antibody or an active fragment thereof; an anti-CTLA-4 antibody or an active fragment thereof; and a PD-L1 antibody or an active fragment thereof, [4C].
  • a pharmaceutical composition for treating or preventing an infectious disease comprising the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1A] to [15A] and a pharmacologically acceptable carrier;
  • the antigenic peptide is derived from an infectious agent that causes the infectious disease.
  • [1D] The antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1A] to [15A] for use in the treatment or prevention of cancer; where the antigen peptide preferably comprises a cancer antigen peptide.
  • [2D] The antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1A] to [15A] for use in the treatment or prevention of autoimmune diseases; where the antigen peptide preferably comprises an autoantigen peptide. ..
  • [3D] The antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1A] to [15A] for use in the treatment or prevention of allergic diseases; where the antigen peptide preferably comprises an allergen.
  • the immune checkpoint inhibitor is selected from the group consisting of an anti-PD-1 antibody or an active fragment thereof; an anti-CTLA-4 antibody or an active fragment thereof; and a PD-L1 antibody or an active fragment thereof, [4D].
  • [1E] Use of the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1A] to [15A] in the manufacture of a medicament for treating or preventing cancer; here, preferably, the antigen peptide is a cancer antigen peptide.
  • the antigen peptide is an autoantigen. Contains peptides.
  • [3E] Use of the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1A] to [15A] in the manufacture of a drug for treating or preventing an allergic disease; where the antigen peptide preferably contains an allergen.
  • the antigen peptide preferably contains an allergen.
  • the immune checkpoint inhibitor is present on the membrane of the antigen-presenting extracellular vesicle.
  • the immune checkpoint inhibitor is selected from the group consisting of an anti-PD-1 antibody or an active fragment thereof; an anti-CTLA-4 antibody or an active fragment thereof; and a PD-L1 antibody or an active fragment thereof, [4E].
  • [7E] Use of the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1A] to [15A] in the manufacture of a medicament for treating or preventing an infection; where the antigen peptide is preferably the infection. It is derived from the infectious agent that causes the disease.
  • [1F] A method of treating or preventing cancer in a subject.
  • An effective amount of the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1A] to [15A] is administered to the subject to activate and / or proliferate the T cells in the subject that recognize the cancer antigen.
  • a method of treating or preventing cancer by causing activated and / or proliferated T cells to attack the cancer cells; where the activated and / or proliferated T cells are preferably CD8-positive cytotoxic. It is a sex T cell, preferably the antigen peptide contains a cancer antigen peptide.
  • [2F] A method for treating or preventing an autoimmune disease in a subject, wherein an effective amount of the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1A] to [15A] is administered to the subject, and the antigen-presenting extracellular vesicle in the subject is administered.
  • a method of treating or preventing an autoimmune disease by activating and / or proliferating T cells that recognize the self-antigen and desensitizing the immune response to the self-antigen in the subject here preferably.
  • the activated and / or proliferated T cells are CD4-positive regulatory T cells (Tregs), preferably the antigenic peptide comprises an autoantigen peptide.
  • [3F] A method for treating or preventing an allergen disease in a subject, wherein an effective amount of the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1A] to [15A] is administered to the subject, and the subject is administered.
  • the activated and / or proliferated T cells are CD4-positive regulatory T cells (Tregs), preferably the antigenic peptide comprises an allergen.
  • [4F] The method according to [1F], wherein the antigen-presenting extracellular vesicle is administered together with an immune checkpoint inhibitor.
  • [5F] The method according to [4F], wherein the immune checkpoint inhibitor is present on the membrane of the antigen-presenting extracellular vesicle.
  • the immune checkpoint inhibitor is selected from the group consisting of an anti-PD-1 antibody or an active fragment thereof; an anti-CTLA-4 antibody or an active fragment thereof; and a PD-L1 antibody or an active fragment thereof, [4F]. Or the method according to [5F].
  • [7F] A method for treating or preventing an infectious disease in a subject, wherein an effective amount of the antigen-presenting extracellular vesicle according to any one of [1A] to [15A] is administered to the subject. 1) secrete inflammatory cytokines to activate the subject's innate immunity, and / or 2) give the subject acquired immunity to the infectious agent that causes the infection.
  • a method of treating or preventing an infectious disease which comprises eliminating the infectious agent causing the infectious disease in the body and / or suppressing its growth.
  • [1G] A method for activating and / or proliferating T cells against a specific antigen, wherein the antigen-presenting extracellular vesicles and T cells according to any one of [1A] to [15A] are in vitro.
  • a method comprising contacting in vitro or ex vivo.
  • [1H] (i) The fusion protein or protein complex of (D) defined in any of [1A] to [9A]; (Ii) A protein capable of interacting with T cells of (C) defined in any of [10A] to [13A]; or the fusion protein of (D) according to (iii) [14A] and (C). A polynucleotide encoding a fusion protein of a protein that can interact with T cells. [2H] A vector containing the nucleic acid according to [1G].
  • antigen-specific T cells can be satisfactorily activated by using extracellular vesicles (antigen-presenting extracellular vesicles) containing MHC molecules and T cell-stimulating cytokines in the membrane. Can be done.
  • a model diagram of an antigen peptide-single chain MHC class I molecule (sc-Trimer) -CD81 fusion protein is shown.
  • the amino acid sequence of the antigen peptide-single chain MHC class I molecule (sc-Trimer) -CD81 fusion protein is shown.
  • a model diagram of the CD80-CD9 fusion protein is shown.
  • the amino acid sequence of the CD80-CD9 fusion protein is shown.
  • a model diagram of the CD63-IL-2 fusion protein is shown.
  • the amino acid sequence of the CD63-IL-2 fusion protein is shown.
  • a model diagram of an antigen peptide-MHC class II ⁇ chain (sc-Dimer) -CD81 fusion protein is shown.
  • the amino acid sequence of the antigen peptide-MHC class II ⁇ chain (sc-Dimer) -CD81 fusion protein is shown.
  • the amino acid sequence of MHC class II ⁇ chain is shown.
  • a model diagram of the TGF- ⁇ -MFG-E8 fusion protein is shown.
  • the amino acid sequence of the TGF- ⁇ -MFG-E8 fusion protein is shown.
  • a model diagram of the CD81-IL-4 fusion protein is shown.
  • the amino acid sequence of the CD81-IL-4 fusion protein is shown.
  • the model figure of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 1 is shown.
  • the model figure of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 2 is shown.
  • the model figure of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 3 is shown.
  • the model figure of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 4 is shown.
  • the model figure of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 5 is shown.
  • the model figure of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 6 is shown.
  • the model figure of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 7 is shown.
  • the model figure of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 8 is shown.
  • the model figure of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 9 is shown.
  • a model diagram of antigen-presenting extracellular vesicles of other embodiments is illustrated.
  • Test Example 1-1 The results of flow cytometry analysis of the fusion protein contained in the membrane of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 2 in Test Example 1-1 are shown.
  • Test Example 1-2 the result of flow cytometry analysis of the fusion protein contained in the membrane of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 3 is shown.
  • Test Example 4 the results of flow cytometry analysis of the fusion protein contained in the membrane of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 4 in Test Example 1-3 are shown.
  • Test Example 1-4 the result of flow cytometry analysis of the fusion protein contained in the membrane of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 5 is shown.
  • the results of flow cytometry analysis of the fusion protein contained in the membrane of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 6 in Test Example 1-5 are shown.
  • the results of flow cytometry analysis of the fusion protein contained in the membrane of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 7 in Test Example 1-6 are shown.
  • the results of flow cytometry analysis of the fusion protein contained in the membrane of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 8 in Test Example 1-7 are shown.
  • the results of flow cytometry analysis of the fusion protein contained in the membrane of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 9 in Test Example 1-8 are shown.
  • Test Example 2 the results of in vitro evaluation of whether the antigen-presenting extracellular vesicles of Examples 1 and 2 activate antigen-specific CD8-positive T cells (OT-1 T cells) are shown.
  • Test Example 3 the result of in vivo evaluation of whether or not the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 2 activates antigen-specific CD8-positive T cells (OT-1) is shown.
  • Test Example 4 the result of in vitro evaluation of whether or not the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 3 activates antigen-specific CD4-positive T cells is shown.
  • Test Example 8 whether or not the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 7 induces differentiation of antigen-specific CD4-positive T cells into Th17 cells is shown by in vitro evaluation.
  • Test Example 9 it is shown that the antigen-presenting extracellular vesicles of Examples 1 and 8 proliferated the antigen-specific CD8-positive T cells remarkably.
  • Test Example 10 it is shown that the antigen-presenting extracellular vesicles of Example 8 significantly suppressed the proliferation of B16 melanoma cells.
  • extracellular vesicle is not particularly limited as long as it is a vesicle secreted from a cell, but for example, Exosomes (exosomes) and Microvesicles (MV; microvesicles). , Apoptotic Bodies (apoptotic bodies) and the like.
  • exosome is derived from an endocytotic pathway and is about 20 to about 500 nm (preferably about 20 to about 200 nm, more preferably about 25 to about 150 nm, even more preferably about. It means vesicles (30 to about 100 nm).
  • components of exosomes include proteins, nucleic acids (mRNA, miRNA, non-coated RNA) and the like. Exosomes can have the function of controlling cell-cell communication.
  • the exosome marker molecule include Alix, Tsg101, tetraspanin, flotillin, phosphatidylserine and the like.
  • microvesicles means vesicles of about 50 to about 1000 nm derived from the cytoplasmic membrane.
  • the constituent components of the microvesicles include proteins, nucleic acids (mRNA, miRNA, non-coated RNA, etc.) and the like.
  • Microvesicles may have a function of controlling cell-cell communication and the like.
  • the marker molecule for microvesicles include integrin, selectin, CD40, CD154 and the like.
  • apoptotic body means a vesicle of about 500 to about 2000 nm derived from the cytoplasmic membrane.
  • constituents of apoptotic bodies include fragmented nuclei, organelles, and the like. Apoptotic bodies may have a function of inducing phagocytosis and the like.
  • the marker molecule for apoptotic bodies include Annexin V, phosphatidylserine and the like.
  • antigen-presenting extracellular vesicle means an extracellular vesicle that presents an antigen outside its membrane.
  • MHC major histocompatibility complex
  • HLA corresponding to MHC class I molecule may be classified into subtypes such as HLA-A, HLA-B, HLA-Cw, HLA-F, and HLA-G. Polymorphisms (alleles) are known for these subtypes. Examples of the HLA-A polymorphism include HLA-A1, HLA-A0201, HLA-A24 and the like, and examples of the HLA-B polymorphism include HLA-B7, HLA-B40, HLA-B4403 and the like. Examples of the HLA-Cw polymorphism include HLA-Cw0301, HLA-Cw0401, and HLA-Cw0602.
  • HLA corresponding to MHC class II molecule may be classified into subtypes such as HLA-DR, HLA-DQ, and HLA-DP.
  • the MHC molecule described in the present specification can exert its function, its wild type amino acid sequence (for example, in the case of MHC class I molecule: for example, MHC class I ⁇ such as SEQ ID NO: 9) Chain, ⁇ 2 microglobulin such as SEQ ID NO: 7, single chain MHC class I molecule such as SEQ ID NO: 65; in the case of MHC class II molecule: for example, MHC class II ⁇ chain such as SEQ ID NO: 71, MHC such as SEQ ID NO: 37 Class II ⁇ chain, single chain MHC class II molecule, etc.), the amino acid sequence identity is 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably.
  • the MHC molecules described herein are deleted, inserted, or added to one or more amino acids in their wild-type amino acid sequence, as long as they are capable of exerting their function. And / or may be replaced or the like.
  • the "antigen-presenting MHC molecule” used in the present specification is not particularly limited as long as it is an antigen-presenting MHC molecule, but for example, an antigen-presenting MHC class I molecule, an antigen-presenting MHC class II molecule, and the like. Can be mentioned.
  • Examples of the "antigen-presenting MHC class I molecule” include a complex of an antigen and an MHC class I ⁇ chain or an extracellular domain thereof and ⁇ 2 microglobulin; a complex of an antigen and a single-chain MHC class I molecule; an antigen and a single.
  • Fusion protein to which a chain MHC class I molecule is bound a fusion protein of an antigen and an extracellular domain of an MHC class I ⁇ chain and another protein or a domain thereof or a fragment thereof (for example, an extracellular domain of an MHC class I ⁇ chain and an antibody).
  • the "antigen-presenting MHC class II molecule” includes, for example, a complex of an antigen and an MHC class II ⁇ chain or an extracellular domain thereof and an MHC class II ⁇ chain or an extracellular domain thereof; a complex of an antigen and a single-chain MHC class II molecule.
  • Body A complex of a fusion protein to which an antigen and an MHC class II ⁇ chain are bound and an MHC class II ⁇ chain; a fusion protein of an antigen, an extracellular domain of an MHC class II ⁇ chain, another protein, a domain thereof, or a fragment thereof, etc.
  • a fusion protein of an extracellular domain of MHC class II ⁇ chain and the Fc portion of an antibody a fusion protein of an extracellular domain of MHC class II ⁇ chain and a transmembrane domain of another membrane protein, etc.
  • Fusion protein of the extracellular domain of MHC class II ⁇ chain or a fragment thereof or the like for example, fusion protein of the extracellular domain of MHC class II ⁇ chain and the Fc portion of the antibody; the extracellular domain of MHC class II ⁇ chain and others (Fusion protein with an amino acid sequence containing the transmembrane domain of the membrane protein, etc.) and a complex of the above.
  • the term "single-chain MHC molecule,”"single-chain MHC class I molecule,” or “single-chain MHC class II molecule” refers to the ⁇ of an MHC molecule (or MHC class I molecule or MHC class II molecule). It means a fusion protein in which a chain or its extracellular domain and a ⁇ chain or its extracellular domain or ⁇ 2 microglobulin are linked via a spacer sequence or the like, if necessary.
  • Examples of the "single-chain MHC class I molecule” include a fusion protein in which an MHC class I ⁇ chain and ⁇ 2 microglobulin are linked via a spacer sequence, if necessary.
  • Examples of the "single-chain MHC class II molecule” include a fusion protein in which an MHC class II ⁇ chain and an MHC class II ⁇ chain are linked via a spacer sequence, if necessary.
  • the term "protein (or fusion protein, protein complex, etc.) capable of presenting the antigen (or antigen peptide) extramembranely, including the antigen-presenting MHC molecule” refers to at least the antigen-presenting MHC molecule. It means a protein (or fusion protein, protein complex, etc.) capable of presenting an antigen to T cells or the like by containing and presenting an antigen (or antigen peptide) outside the membrane.
  • Proteins (or fusion proteins, protein complexes, etc.) capable of presenting an antigen (or antigen peptide) extracellularly, including an antigen-presenting MHC molecule are such that they are expressed on the membrane of extracellular vesicles, such as a plasmid. It may be expressed in the form of a fusion protein, a protein complex, or the like using.
  • a protein (or fusion protein, protein complex, etc.) capable of presenting an antigen (or antigen peptide) extramembranely, including an antigen-presenting MHC molecule is a soluble antigen-presenting MHC molecule (limited to these).
  • the soluble antigen-presenting MHC molecule and the extracellular vesicle may be bound to the membrane of the extracellular vesicle via a lipid linker, a peptide linker, or the like, if necessary ().
  • the method described in JP-A-2018-104341 may be referred to).
  • a soluble antigen-presenting MHC molecule to which a desired tag for example, His tag, FLAG tag, PNE tag (SEQ ID NO: 79: NYHLENEVARLKKL), etc.
  • a desired tag for example, His tag, FLAG tag, PNE tag (SEQ ID NO: 79: NYHLENEVARLKKL), etc.
  • the tag is, for example,
  • It may be expressed as a fusion protein together with other components, or it may be bound to a separately prepared soluble antigen-presenting MHC molecule via a linker or the like, if necessary), and an antibody against the tag or an antibody thereof.
  • an antibody against the tag or an antigen-binding fragment thereof eg, an antibody against the tag or an antigen-binding fragment thereof, which is bound to the membrane of extracellular vesicles via a linker or the like, if necessary, via a protein containing an antigen-binding fragment (eg, scFv, Fab or nanobody) or the like (eg, scFv, Fab or nanobody).
  • a protein containing an antigen-binding fragment eg, scFv, Fab or nanobody
  • scFv, Fab or nanobody eg, scFv, Fab or nanobody
  • Extracellular vesicles containing (protein, etc.) in the membrane may be mixed under desired conditions (for example, Raj D, et al., Gut., 2019 Jun; 68 (6): 1052-1064. Etc., the method using a PNE tag and an antibody or the like against the tag may be referred to).
  • the term "antigen” is not particularly limited as long as it can have antigenicity, and is not limited to peptide antigens, but also non-peptide antigens such as phospholipids and complex carbohydrates (for example, Bacterial membrane components such as mycolic acid and lipoarabinoantigen) are also included.
  • the "antigen peptide” used in the present specification is not particularly limited as long as it is a peptide that can be an antigen, and whether it is naturally derived or synthetically derived, it is commercially available. It may be a thing.
  • the antigenic peptides are, but are not limited to, for example, WT-1, ⁇ -fetal protein, MAGE-1, MAGE-3, placental alkaline phosphatase sialyl-Lewis X, CA-125, CA-19, TAG.
  • the antigenic peptide may contain an allergen that causes allergic symptoms.
  • Allergens include exogenous peptides such as house dust, mites, animals (for example, companion animals such as cats and dogs), and peptides other than the above-mentioned peptides derived from protozoa, bacteria, fungi, intracellular parasites and worms. Examples thereof include peptides derived from pollen (for example, cedar and hinoki). More specifically, proteins contained in Japanese cedar pollen such as Cryj1 are exemplified.
  • the allergen that causes allergic symptoms may be of food origin. Examples of allergens that enhance allergic symptoms to food include chicken eggs, milk, wheat, buckwheat, crab, shrimp and peptides derived from peanuts.
  • MHC molecule-binding antigen peptide used in the present specification means an antigen peptide capable of binding to an MHC molecule, such as in vitro, in vivo and / or ex vivo.
  • the number of amino acid residues of "MHC molecule-restricting antigen peptide” is usually about 7 to about 30.
  • Examples of the "MHC molecule-restricted antigen peptide” include MHC class I molecule-restricted antigen peptide, MHC class II molecule-restricted antigen peptide and the like.
  • the "MHC class I molecule-binding antigenic peptide” means an antigenic peptide capable of binding to an MHC class I molecule, such as in vitro, in vivo and / or ex vivo.
  • the antigen peptide can be recognized by precursor T cells or the like and induce cytotoxic T cells or the like.
  • the number of amino acid residues of "MHC class I molecular restrictive antigen peptide" is usually about 7 to about 30, preferably about 7 to about 25, more preferably about 7 to about 20, and even more preferably. Is about 7 to about 15, and even more preferably about 7 to about 12.
  • the "MHC class II molecule-binding antigenic peptide” means an antigenic peptide capable of binding to an MHC class II molecule, such as in vitro, in vivo and / or ex vivo.
  • the antigen peptide can be recognized by precursor T cells or the like and induce helper T cells or the like.
  • the number of amino acid residues of "MHC class II molecular restrictive antigen peptide" is usually about 7 to about 30, preferably about 10 to about 25, and more preferably about 12 to about 24.
  • MHC molecule-binding antigen peptide As “MHC molecule-binding antigen peptide”, “MHC class I molecule-binding antigen peptide”, or “MHC class II molecule-binding antigen peptide”, it binds to MHC molecule, MHC class I molecule or MHC class II molecule. As long as it is an antigenic peptide capable of, it is not particularly limited.
  • T cell-stimulating cytokine used in the present specification can stimulate (for example, activate, suppress, etc.) T cells via a receptor or the like expressed on the membrane of T cells.
  • a cytokine it is not particularly limited.
  • T cell-stimulating cytokines include, but are not limited to, IL-2, IL-4, IL-6, IL-12, TGF- ⁇ , IFN- ⁇ , IFN- ⁇ and the like. Be done.
  • those capable of forming multimers of homo or hetero subunits eg, IL-12, TGF- ⁇ , etc.
  • they may be a continuous amino acid sequence linked via a peptide linker or the like.
  • the T cell-stimulating cytokines described herein may be of any animal species.
  • rodents such as mice and rats; rabbits such as rabbits; ungulates such as pigs, cows, goats, horses and sheep; cats such as dogs and cats; humans, monkeys, red-tailed monkeys, crab monkeys, marmosets, etc. Examples thereof include those derived from animals such as mammals such as primates such as orangutans and chimpanzees.
  • the T cell-stimulating cytokines described herein are preferably derived from rodents or mammals, and more preferably derived from mice or humans.
  • the T cell-stimulating cytokines described herein are wild-type amino acid sequences (eg, in the case of IL-2, eg, SEQ ID NO: 25, etc.; IL-, as long as they are capable of exerting their function.
  • the amino acid sequence identity is 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% with respect to, for example, SEQ ID NO: 53). It may be the above.
  • the T cell-stimulating cytokines described herein have a deletion of one or more amino acids in their wild-type amino acid sequence, as long as they are capable of exerting their function. It may be inserted, added and / or replaced.
  • a protein capable of presenting the (first, second) T cell-stimulating cytokines extramembranely, including (first, second) T cell-stimulating cytokines Means a protein that contains at least a T cell-stimulating cytokine and is capable of presenting the T-cell stimulating cytokine extramembranely of an extracellular vesicle.
  • Proteins capable of transmembranely presenting the (first, second) T cell-stimulating cytokines, including (first, second) T-cell-stimulating cytokines are those of extracellular vesicles.
  • a protein capable of presenting the (first, second) T cell-stimulating cytokine extramembranely, including the (first, second) T-cell stimulating cytokine is a soluble T cell.
  • Stimulating cytokines for example, but not limited to, T-cell-stimulating cytokines themselves; fusion proteins of T-cell-stimulating cytokines and the Fc portion of an antibody; T-cell-stimulating cytokines and their T-cell stimulating
  • an antibody that recognizes cytokines or a complex thereof with an antigen-binding fragment thereof for example, scFv, Fab or nanobody
  • a soluble T cell-stimulating cytokine and extracellular vesicle are required.
  • the antibody may be bound to the membrane of extracellular vesicles via a lipid linker, a peptide linker, or the like (for example, the method described in JP-A-2018-104341 may be referred to). ..
  • a soluble T cell-stimulating cytokine with a desired tag eg, His tag, FLAG tag, PNE tag added
  • the tag is, for example, a fusion protein together with other components.
  • may be expressed as, or it may be bound to a separately prepared soluble T cell-stimulating cytokine via a linker or the like, if necessary), and an antibody against the tag or an antigen-binding fragment thereof (for example, An antibody against the tag or an antigen-binding fragment thereof (eg, scFv, Fab or nanobody) bound to the membrane of extracellular vesicles via a linker or the like, if necessary, containing a protein containing scFv, Fab or nanobody, etc. ) Etc.
  • an antibody against the tag or an antigen-binding fragment thereof for example, An antibody against the tag or an antigen-binding fragment thereof (eg, scFv, Fab or nanobody) bound to the membrane of extracellular vesicles via a linker or the like, if necessary, containing a protein containing scFv, Fab or nanobody, etc.
  • An extracellular vesicle may be mixed under desired conditions (for example, PNE tag described in Raj D, et al., Gut., 2019 Jun; 68 (6): 1052-1064, etc.).
  • one of the subunits is the membrane of extracellular vesicles.
  • the remaining subunits need not be in a mode that can be presented to the outside of the membrane.
  • One of the subunits may be presented to the outside of the membrane of extracellular vesicles.
  • Functional T-cell stimulating cytokines can be constructed extramembranely of extracellular vesicles by adding or co-expressing other subunits, if possible.
  • the "T cell co-stimulating molecule" used in the present specification refers to a molecule that can contribute to the activation of T cells by interacting with molecules existing on the membrane of T cells such as CD28 and CD134.
  • the T cell costimulatory molecule is not limited to these, for example, a molecule such as CD80 or CD86, or an extracellular domain thereof or a functional fragment thereof; an antibody such as an anti-CD28 antibody or an anti-CD134 antibody. , Or these antigen-binding fragments (eg, scFv, Fab or nanobody); fusion proteins (or complexes, aggregates) of these with transmembrane domains of other proteins, Fc portions of antibodies, etc. Be done.
  • the T cell co-stimulating molecule described herein may be of any animal species.
  • rodents such as mice, rats, hamsters and guinea pigs; rabbits such as rabbits; ungulates such as pigs, cows, goats, horses and sheep; cats such as dogs and cats; humans, monkeys, orangutans, Examples thereof include those derived from animals such as mammals such as primates such as crab monkeys, marmosets, orangutans, and chimpanzees.
  • the T cell co-stimulatory molecules described herein are preferably derived from rodents or mammals, and more preferably derived from mice or humans.
  • the T cell co-stimulating molecule described herein is relative to its wild-type amino acid sequence (eg, in the case of CD80, eg, SEQ ID NO: 67, etc.) as long as it is capable of exerting the above-mentioned functions.
  • the amino acid sequence identity may be 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the T cell co-stimulatory molecule described herein has a deletion of one or more amino acids in its wild-type amino acid sequence, as long as it is capable of exerting its function. It may be inserted, added and / or replaced.
  • a protein containing a T cell co-stimulator molecule capable of interacting with the T cell co-stimulator molecule includes at least a T cell co-stimulator molecule and is on the membrane of the T cell. Means a protein that can interact with the molecules present in. That is, it means that at least the portion capable of interacting with T cells existing in the T cell co-stimulating molecule is located outside the membrane of the extracellular vesicle.
  • the "protein in which the T cell co-stimulator molecule and the T cell can interact with each other, including the T cell co-stimulator molecule” is expressed using a plasmid or the like so that it is expressed on the membrane of the extracellular vesicle. It may be.
  • the "protein in which the T cell co-stimulator and the T cell can interact with each other, including the T cell co-stimulator” is a soluble T cell co-stimulator (but not limited to, for example, for example.
  • a soluble T cell co-stimulator but not limited to, for example, for example.
  • an anti-CD28 antibody or an antigen-binding fragment thereof eg, scFv, Fab or nanobody
  • a soluble T cell co-stimulating molecule and extracellular a soluble T cell co-stimulating molecule and extracellular.
  • the vesicles may be bound to the membrane of extracellular vesicles via a lipid linker, spacer sequence or the like, if necessary (for example, the method described in JP-A-2018-104341).
  • a soluble T cell costimulatory molecule with a desired tag eg, His tag, FLAG tag, PNE tag added
  • a desired tag eg, His tag, FLAG tag, PNE tag added
  • may be expressed as, or it may be bound to a separately prepared soluble T cell costimulatory molecule via a linker or the like, if necessary), and an antibody against the tag or an antigen-binding fragment thereof (for example, An antibody against the tag or an antigen-binding fragment thereof (eg, scFv, Fab or nanobody) bound to the membrane of extracellular vesicles via a linker or the like, if necessary, containing a protein containing scFv, Fab or nanobody, etc. ) Etc.
  • an antibody against the tag or an antigen-binding fragment thereof for example, An antibody against the tag or an antigen-binding fragment thereof (eg, scFv, Fab or nanobody) bound to the membrane of extracellular vesicles via a linker or the like, if necessary, containing a protein containing scFv, Fab or nanobody, etc.
  • An extracellular vesicle may be mixed under desired conditions (for example, PNE tag described in Raj D, et al., Gut., 2019 Jun; 68 (6): 1052-1064, etc.). And a method using an antibody against the tag or the like may be referred to).
  • the "membrane protein that can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle or its transmembrane domain” is as long as it can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle. Any membrane protein or its transmembrane domain can be selected.
  • a "membrane protein that can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle or its transmembrane domain” is a membrane protein known that it can be expressed on an extracellular vesicle (eg, exosome, etc.) (eg, tetraspanin).
  • CD58, ICAM-1, PTGFRN see, for example, Non-Patent Document 1, International Publication No. 2019/183578, etc.), etc.
  • these transmembrane domains are preferable.
  • the "protein or domain thereof capable of binding to the membrane of extracellular vesicles” is any protein as long as it can bind to the membrane of extracellular vesicles. Or the domain can be selected.
  • a "protein or domain thereof capable of binding to the membrane of extracellular vesicles” is known to be capable of binding to the membrane of extracellular vesicles (eg, exosomes, etc.) (eg, MFG-E8).
  • its domain for example, C1 and C2 domains of MFG-E8 described in Alain Delcayre, et al., Blood Cells, Molecules, and Diseases 35 (2005) 158-168) and the like are preferable.
  • a membrane protein that can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle or a transmembrane domain thereof or "a protein that can bind to the membrane of an extracellular vesicle or a domain thereof” is used.
  • a membrane protein capable of expressing on the membrane of extracellular vesicles or a transmembrane domain thereof or "a protein capable of binding to the membrane of extracellular vesicles or a domain thereof” is used.
  • markers for mammalian extracellular vesicles are classified as follows.
  • a membrane protein or GPI anchor protein that can be used as a marker protein for extracellular vesicles
  • Tissue-non-specific substances Tetraspanin (CD63, CD9, CD81, CD82), other multitransmembrane membrane proteins (CD47, heterotrimeric G protein (GNA: Guanine nucleotide-binding proteins, etc.), etc.
  • MHC class I HLA-A / B / C, H2-K / D / Q), Integrin (ITGA / ITGB), transferrin receptor (TFR2); LAMP1 / 2; Heparan sulfate proteoglycan (including Cindecane (SDC)); Extracellular matrix metalloproteinase inducer (EMMPRIN) (also called BSG or CD147); ADAM10; CD73 (NT5E), a GPI anchor type 5'nucleotidase, CD
  • binding a protein that is a marker of extracellular vesicles to "a membrane protein that can be expressed on the membrane of extracellular vesicles" or "the membrane of extracellular vesicles” in the present invention. May be used as a "protein capable of”.
  • tetraspanin means a protein belonging to the tetraspanin family (for example, but not limited to, CD9, CD53, CD63, CD81, CD82, CD151, etc.). Tetraspanins are usually transmembrane domain 1 (hereinafter, also referred to as "TM1”), small extracellular loop (hereinafter, also referred to as "SEL"), and transmembrane domain 2 (hereinafter, "TM2”) from the N-terminal side.
  • TM1 transmembrane domain 1
  • SEL small extracellular loop
  • TM2 transmembrane domain 2
  • SIL small intracellular loop
  • TM3 transmembrane domain 3
  • LEL large extracellular loop
  • TM4 transmembrane domain 4
  • amino acid sequence 1 to 238 amino acid sequence 1 to 238: SEQ ID NO: 27
  • the amino acid sequence usually contains TM1, SEL, TM2, SIL and TM3 in the amino acid sequence of about 1 to about 110, and the amino acid sequence is about 111 to about 200.
  • LEL may be included
  • TM4 may be included in the amino acid sequences of about 201 to about 238.
  • Each domain in "tetraspanin” described herein may be derived from the same tetraspanin, or may be derived in whole or in part from different tetraspanins. It may be.
  • the tetraspanins described herein can be expressed on the membrane of extracellular vesicles, their wild-type amino acid sequences (for example, in the case of full-length CD9, for example, SEQ ID NO: 21; etc.; full-length.
  • the amino acid sequence identity is 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more. It may be more preferably 98% or more, and even more preferably 99% or more.
  • the tetraspanins described herein are deleted from one or more amino acids with respect to their wild-type amino acid sequence, as long as they can be expressed on the membrane of extracellular vesicles. , Inserted, added and / or replaced.
  • Partial sequences of tetraspanin described herein (eg, each domain; TM1, SEL, TM2, SIL and TM3 (eg, for CD63, SEQ ID NO: 57, etc .; for CD81, SEQ ID NO: 61, etc.) );
  • the partial sequence containing TM4 (for example, in the case of CD63, SEQ ID NO: 59, etc .; in the case of CD81, SEQ ID NO: 63, etc.)) has 80% or more amino acid sequence identity with respect to the wild-type amino acid sequence. It may be preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the partial sequence of tetraspanin described herein is a deletion, insertion, addition and / or substitution of one or more amino acids with respect to the wild-type amino acid sequence. May be good.
  • the MFG-E8 described herein has an amino acid sequence relative to its wild-type amino acid sequence (eg, SEQ ID NO: 49, etc.) as long as it can bind to the membrane of extracellular vesicles.
  • the identity may be 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the MFG-E8 described herein is of one or more amino acids relative to its wild-type amino acid sequence, as long as it is capable of binding to the membrane of extracellular vesicles. It may be deleted, inserted, added and / or substituted.
  • CD58, PTGFRN, etc. described in the present specification can be expressed on the membrane of extracellular vesicles or can bind to the membrane of extracellular vesicles.
  • the amino acid sequence identity is 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more with respect to the wild-type amino acid sequence.
  • the CD58, PTGFRN, etc. described herein can be expressed on the membrane of extracellular vesicles or can bind to the membrane of extracellular vesicles.
  • the wild-type amino acid sequence may be deleted, inserted, added and / or substituted with one or more amino acids.
  • spacer sequence means any sequence having at least one amino acid residue that is present between two or more proteins or a partial sequence or domain thereof.
  • the spacer sequence can be used, for example, when linking two or more proteins or their partial sequences or domains.
  • the spacer sequence comprises a peptide linker.
  • the spacer sequence usually has an amino acid residue length of 1 to about 50, preferably about 2 to about 28, and more preferably about 4 to about 25.
  • the spacer arrangement is not limited to these, but for example, (GGGXS) n G m (in the formula, X is A or G independently each time it appears, and n is 1 to 8).
  • m is 0 to 3) (eg, SEQ ID NOs: 5, 11, 29, 39, etc.); (GGGS) n G m (in the formula, n is 1 to 10, m is 0 to 3); T a S b (GGX) n G m (In the formula, X is S or T independently each time it appears, n is 1 to 8, and m is 0 to 3).
  • A is 0 or 1
  • b is 0 or 1) (eg, SEQ ID NO: 77, etc.); and the like.
  • extracellular vesicles that present antigen-presenting MHC molecules and T cell-stimulating cytokines extramembranely are provided (the model is illustrated in FIG. 2J (1)).
  • Such extracellular vesicles may be allowed to present antigen-presenting MHC molecules and T cell-stimulating cytokines extramembrane by containing the proteins defined in (A) and (B) below in the membrane.
  • the protein defined in D) in the membrane the antigen-presenting MHC molecule and the T cell-stimulating cytokine may be presented extramembranely.
  • the antigen-presenting MHC molecule and T cell-stimulating cytokine may be attached to the membrane surface of the isolated extracellular vesicle later.
  • the method of attachment is not particularly limited, but the antigen-presenting MHC molecule is attached to the membrane surface by binding the phospholipid to each of the antigen-presenting MHC molecule and the T cell-stimulating cytokine and incorporating the new lipid portion into the membrane of the extracellular vesicle.
  • T cell stimulating cytokines may be attached. Phosphatidylserine is present on the surface of extracellular vesicles.
  • a protein in which an antigen-presenting MHC molecule or a T cell-stimulating cytokine to be presented is fused with MFG-E8 that binds to phosphatidylserine is synthesized and purified, and the fused protein and extracellular vesicle are mixed. This makes it possible to prepare extracellular vesicles that present antigen-presenting MHC molecules and T cell-stimulating cytokines on the surface of the membrane.
  • an antigen-presenting MHC molecule and a T cell-stimulating cytokine with PNEtag were added to the extracellular vesicles on which the Peptide Neoepitope (PNE) Nanobody was previously expressed, and the cells were presented on the membrane surface of the extracellular vesicles. May be good.
  • Biotinylated antigen-presenting MHC molecules and T cell-stimulating cytokines may be added to the extracellular vesicles expressing streptavidin and presented on the membrane surface of the extracellular vesicles.
  • a plurality of types (2, 3, 4, 5 types) of antigen-presenting MHC molecules and a plurality of types (2, 3, 4, 5 types) of T cell-stimulating cytokines (each T cell stimulation)
  • T cell-stimulating cytokines each T cell stimulation
  • they may be referred to as a first T cell-stimulating cytokine, a second T-cell-stimulating cytokine, a higher T-cell-stimulating cytokine, etc.) outside the membrane. It may be an extracellular vesicle.
  • Fig. 2J (3) shows one type of antigen-presenting MHC molecule and two types of T. Illustrates a model of extracellular vesicles that present cell-stimulating cytokines extracellularly).
  • the antigen-presenting extracellular vesicle is on its membrane: (A) A protein capable of presenting the antigen extramembranely, including an antigen-presenting MHC molecule; and (B) presenting the first T cell-stimulating cytokine extramembranely, including a first T cell-stimulating cytokine.
  • Possible proteins Provide antigen-presenting extracellular vesicles, including.
  • (A) binds an antigen-presenting MHC molecule to a membrane protein that can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle or a transmembrane domain thereof or the membrane of an extracellular vesicle.
  • the above (A) is a fusion protein or protein capable of presenting the antigen extramembranely, comprising an antigen-presenting MHC molecule and tetraspanin or a transmembrane domain thereof or MFG-E8 or a domain thereof. It is a complex.
  • the above (A) is (A) A fusion protein capable of presenting an antigen peptide extramembranely, from the N-terminal side.
  • A-1 MHC molecule-restricting antigen peptide,
  • A-2) Spacer array that may be present,
  • A-3) Single-chain MHC molecule,
  • A) antigen peptide extramembranely which comprises (A-4) a spacer sequence which may be present and (A-5) an amino acid sequence consisting of tetraspanin.
  • A-1) MHC molecule-restricting antigen peptide
  • A-2) Spacer array that may be present
  • A-3) MHC class I ⁇ chain, ⁇ 2 microglobulin, MHC class II ⁇ chain, or MHC class II ⁇ chain
  • A-4) Spacer sequence that may be present
  • A-5) Amino acid sequence consisting of tetraspanin.
  • fusion proteins A protein complex containing a protein containing the amino acid sequence of ⁇ 2 microglobulin, MHC class I ⁇ chain, MHC class II ⁇ chain, or MHC class II ⁇ chain.
  • the above (A) is (A) A fusion protein capable of presenting an antigen peptide extramembranely, from the N-terminal side.
  • A-1 MHC class I molecular restrictive antigen peptide (A-2) Spacer array that may be present, (A-3) Single-chain MHC class I molecule, It is a fusion protein capable of presenting the antigen peptide extramembranely, which comprises (A-4) a spacer sequence which may be present and (A-5) an amino acid sequence consisting of tetraspanin.
  • the above (A) is (A) A fusion protein capable of presenting an antigen peptide extramembranely, from the N-terminal side.
  • A-1 MHC class II molecular restrictive antigen peptide (A-2) Spacer array that may be present, (A-3) Single-chain MHC class II molecule, It is a fusion protein capable of presenting the antigen peptide extramembranely, which comprises (A-4) a spacer sequence which may be present and (A-5) an amino acid sequence consisting of tetraspanin.
  • the above (A) is (A) A protein complex capable of presenting an antigen peptide extramembranely. From the N-terminal side (A-1) MHC class I molecular restrictive antigen peptide, (A-2) Spacer array that may be present, (A-3) ⁇ 2 microglobulin, A fusion protein comprising (A-4) a spacer sequence that may be present and (A-5) an amino acid sequence consisting of tetraspanin. (A-6) A protein complex containing a protein containing an amino acid sequence of MHC class I ⁇ chain. Further, in one embodiment of the present invention, the above (A) is (A) A protein complex capable of presenting an antigen peptide extramembranely.
  • A-1) MHC class I molecular restrictive antigen peptide From the N-terminal side (A-1) MHC class I molecular restrictive antigen peptide, (A-2) Spacer array that may be present, (A-3) MHC class I ⁇ chain, A fusion protein comprising (A-4) a spacer sequence that may be present and (A-5) an amino acid sequence consisting of tetraspanin. (A-6) A protein complex containing a protein containing the amino acid sequence of ⁇ 2 microglobulin. Further, in one embodiment of the present invention, the above (A) is (A) A protein complex capable of presenting an antigen peptide extramembranely.
  • A-1) MHC class II molecular restrictive antigen peptide From the N-terminal side (A-1) MHC class II molecular restrictive antigen peptide, (A-2) Spacer array that may be present, (A-3) MHC class II ⁇ chain, A fusion protein comprising (A-4) a spacer sequence that may be present and (A-5) an amino acid sequence consisting of tetraspanin. (A-6) A protein complex containing a protein containing an amino acid sequence of MHC class II ⁇ chain. Further, in one embodiment of the present invention, the above (A) is (A) A protein complex capable of presenting an antigen peptide extramembranely.
  • A-1) MHC class II molecular restrictive antigen peptide (A-2) Spacer array that may be present, (A-3) MHC class II ⁇ chain, A fusion protein comprising (A-4) a spacer sequence that may be present and (A-5) an amino acid sequence consisting of tetraspanin. (A-6) A protein complex containing a protein containing an amino acid sequence of MHC class II ⁇ chain.
  • the "single-chain MHC class I molecule” is a ⁇ 2 microglobulin (for example, SEQ ID NO:) from the N-terminal side. 7 mag, or an amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more), existing.
  • the spacer sequence if present, eg, SEQ ID NO: 5, 11, 29, 39, 77, etc.
  • the MHC class I ⁇ chain eg, SEQ ID NO: 9, etc., or amino acid sequence identity thereto may be present.
  • the "single-chain MHC class I molecule” has SEQ ID NO: 65 or amino acid sequence identity. It is 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the "single-chain MHC class II molecule” when the above (A-3) is a "single-chain MHC class II molecule", the “single-chain MHC class II molecule” is present as an MHC class II ⁇ chain from the N-terminal side. It consists of a good spacer sequence and an MHC class II ⁇ chain.
  • ⁇ 2 microglobulin is SEQ ID NO: 7 or an amino acid relative to it.
  • the sequence identity is 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the "MHC class I ⁇ chain” is SEQ ID NO: 9 or an amino acid relative thereto.
  • the sequence identity is 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • MHC class II ⁇ chain is SEQ ID NO: 37, or an amino acid relative thereto.
  • sequence identity is 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the "MHC class II ⁇ chain” is SEQ ID NO: 71, or an amino acid relative thereto.
  • the sequence identity is 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the "possibly present spacer sequences" of (A-2) and (A-4) in each of the above embodiments can be independently selected if they exist.
  • (A-2), if present, may be, for example, a spacer sequence of SEQ ID NOs: 5, 11, 29, 39, 77 and the like.
  • (A-4), if present, may be, for example, a spacer sequence of SEQ ID NOs: 5, 11, 29, 39, 77 and the like.
  • the tetraspanin (A-5) in each of the above embodiments is selected from the group consisting of CD9, CD63 and CD81.
  • the tetraspanin (A-5) in each of the above embodiments has a CD81 (preferably SEQ ID NO: 15 or the like, or an amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90%). Above, more preferably 95% or more, further preferably 98% or more, still more preferably 99% or more).
  • the above (A) is (A) A fusion protein capable of presenting an antigen peptide extramembranely, from the N-terminal side.
  • A-1 MHC class I molecular restrictive antigen peptide (A-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 5, (A-3) SEQ ID NO: 65 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • A-5 SEQ ID NO: 15 or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferable. Is an amino acid sequence consisting of 98% or more, more preferably 99% or more) tetraspanin, which is a fusion protein.
  • the above (A) is (A) A protein complex capable of presenting an antigen peptide extramembranely. From the N-terminal side (A-1) MHC class II molecular restrictive antigen peptide, (A-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 39, (A-3) SEQ ID NO: 37 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more. MHC class II ⁇ chain (of) and (A-5) SEQ ID NO: 15 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98).
  • a protein complex comprising% or more, more preferably 99% or more) of an MHC class II ⁇ chain.
  • the above (B) is the first T cell stimulating cytokine and a membrane protein capable of expressing on the membrane of an extracellular vesicle or a transmembrane domain thereof or an extracellular vesicle.
  • the above (B) is (B) A fusion protein capable of presenting the first T cell-stimulating cytokine extramembranely, which comprises a first T cell-stimulating cytokine and a partial sequence of tetraspanin.
  • MFG-E8 or a domain thereof which is a fusion protein capable of presenting the first T cell-stimulating cytokine extramembranely.
  • a partial sequence of tetraspanins has at least two transmembrane domains and the first T cell stimulating cytokine is located between the two transmembrane domains.
  • the partial sequence of tetraspanin contains at least TM1 and TM2 of tetraspanin and the first T cell-stimulating cytokine is located between TM1 and TM2
  • the partial sequence of tetraspanin is that of tetraspanin. Examples thereof include a case where TM3 and TM4 are contained at least and the first T cell-stimulating cytokine is arranged between TM3 and TM4.
  • the above (B) is (B) From the N-terminal side (B-1) From the N-terminal side, a partial sequence of tetraspanin containing a transmembrane domain 1, a small extracellular loop, a transmembrane domain 2, a small intracellular loop and a transmembrane domain 3, (B-2) Spacer array that may be present, (B-3) First T cell stimulating cytokine,
  • the first T cell-stimulating cytokine extramembrane ly comprises (B-4) a spacer sequence that may be present and (B-5) an amino acid sequence consisting of a partial sequence of tetraspanin containing a transmembrane domain 4.
  • B N-terminal side
  • B-3 First T cell stimulating cytokine
  • B-5) MFG-E8 It is a fusion protein capable of presenting the first T cell-stimulating cytokine extramembranely, which comprises an amino acid sequence consisting of.
  • tetraspanins can be expressed on the membrane even if their large extracellular loops (LELs) have been replaced with different amino acid sequences in whole or in part. It has been reported. Therefore, the first T cell stimulating cytokine of (B-3) may be inserted in place of the tetraspanin LEL via a spacer sequence that may be present, or in the tetraspanin LEL or the like. It may be inserted at any position in the subarray.
  • the "partial sequence of tetraspanin including transmembrane domain 1, small extracellular loop, transmembrane domain 2, small intracellular loop and transmembrane domain 3" in (B-1) usually comprises the transmembrane domain 4 of tetraspanin.
  • No. (B-1) "Partial sequence of tetraspanin including transmembrane domain 1, small extracellular loop, transmembrane domain 2, small intracellular loop and transmembrane domain 3" includes a large extracellular loop or a partial sequence thereof. You may be.
  • Each of the transmembrane domain 1, the small extracellular loop, the transmembrane domain 2, the small intracellular loop, and the transmembrane domain 3 in (B-1) may have different tetraspanin-derived sequences. They may all have the same tetraspanin-derived sequence.
  • the transmembrane domain 1, the small extracellular loop, the transmembrane domain 2, the small intracellular loop, and the transmembrane domain 3 in (B-1) are all sequences derived from the same tetraspanin.
  • the partial sequences of the tetraspanin comprising the transmembrane domain 1, the small extracellular loop, the transmembrane domain 2, the small intracellular loop and the transmembrane domain 3 in (B-1) are all CD9. Subsequence from origin, CD63 or CD81. In one embodiment of the invention, the partial sequences of the tetraspanin comprising the transmembrane domain 1, the small extracellular loop, the transmembrane domain 2, the small intracellular loop and the transmembrane domain 3 of (B-1) are all CD63 or CD81.
  • Derived partial sequence (preferably SEQ ID NO: 57 or SEQ ID NO: 61, etc., or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more. , More preferably 99% or more).
  • the "partial sequence of tetraspanin containing transmembrane domain 4" in (B-5) usually includes transmembrane domain 1, small extracellular loop, transmembrane domain 2, small intracellular loop and transmembrane domain 3 of tetraspanin. No.
  • the "partial sequence of tetraspanin containing the transmembrane domain 4" in (B-5) may include a large extracellular loop or a partial sequence thereof.
  • the transmembrane domain 4 in (B-5) may have a tetraspanin-derived sequence different from that of (B-1), or may have the same tetraspanin-derived sequence as (B-1).
  • the transmembrane domain 4 in (B-5) is the same tetraspanin-derived sequence as in (B-1).
  • the partial sequence of tetraspanin containing the transmembrane domain 4 in (B-5) is a partial sequence derived from CD9, CD63 or CD81.
  • the partial sequence of tetraspanin containing the transmembrane domain 4 of (B-5) is a partial sequence derived from CD63 or CD81 (preferably SEQ ID NO: 59 or SEQ ID NO: 63, etc., or relative to this.
  • the amino acid sequence identity is 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more).
  • (B-1) "partial sequence of tetraspanin including transmembrane domain 1, small extracellular loop, transmembrane domain 2, small intracellular loop and transmembrane domain 3" is derived from CD63.
  • the "partial sequence of tetraspanin containing transmembrane domain 4" in (B-5) is a partial sequence derived from CD63 (preferably SEQ ID NO: 59, etc., or relative to this.
  • the amino acid sequence identity is 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more).
  • (B-1) "partial sequence of tetraspanin including transmembrane domain 1, small extracellular loop, transmembrane domain 2, small intracellular loop and transmembrane domain 3" is derived from CD81.
  • the "partial sequence of tetraspanin containing transmembrane domain 4" in (B-5) is a partial sequence derived from CD81 (preferably SEQ ID NO: 63, etc., or relative to this.
  • the amino acid sequence identity is 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more).
  • the fusion protein of (B) above is a fusion protein containing a partial sequence of tetraspanin, and one or more of (A) above and (C) present in some cases described later contains a fusion protein containing an amino acid sequence of tetraspanin.
  • the fusion protein of the above (B) may be a fusion protein separate from the fusion protein of the above (A) and / or the fusion protein of (C) which is present in some cases described later, or the fusion protein of the above (A) and / or described later. May form part of the fusion protein of (C) that is present in some cases.
  • tetraspanin of (A-5) is (B).
  • the case where the fusion protein of (C-3) is formed, and / or the case where the tetraspanin of (C-3) present in some cases described later constitutes the fusion protein of (B) and the like can be mentioned.
  • the "MFG-E8" of the above (B-5) preferably has SEQ ID NO: 49 or the like, or an amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, and further. It is preferably 98% or more, and even more preferably 99% or more.
  • the first T cell stimulating cytokine in (B-3) of each of the above embodiments is IL-2, IL-4, IL-6, IL-12 or TGF- ⁇ . ..
  • the first T cell stimulating cytokine in (B-3) of each of the above embodiments has IL-2 (preferably SEQ ID NO: 25, or amino acid sequence identity relative to it). 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, even more preferably 99% or more), IL-4 (preferably SEQ ID NO: 53, or the like).
  • the "possibly present spacer sequence" in (B-2) and (B-4) of each of the above embodiments can be independently selected if present.
  • (B-2), if present, may be, for example, a spacer sequence of SEQ ID NOs: 5, 11, 29, 39, 77 and the like.
  • (B-4), if present, may be, for example, a spacer sequence of SEQ ID NOs: 5, 11, 29, 39, 77 and the like.
  • the above (B) is (B) From the N-terminal side (B-1) SEQ ID NO: 57 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • Partial sequence of tetraspanin, (B-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 29, (B-3) SEQ ID NO: 25 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the first amino acid sequence consisting of a partial sequence of tetraspanin (80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more). It is a fusion protein capable of presenting T cell-stimulating cytokines extramembranely.
  • the above (B) has SEQ ID NO: 31 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98%). Above, even more preferably 99% or more), which is a fusion protein capable of presenting the first T cell-stimulating cytokine extramembranely.
  • the above (B) is (B) From the N-terminal side (B-1) SEQ ID NO: 61 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • Partial sequence of tetraspanin, (B-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 29, (B-3) SEQ ID NO: 53 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the first T cell stimulating cytokine which is IL-4 of (B-4) the spacer sequence of SEQ ID NO: 29, and (B-5) SEQ ID NO: 63 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, further It is a fusion protein capable of presenting the first T cell stimulating cytokine extramembranely, which is an amino acid sequence consisting of a partial sequence of tetraspanin (preferably 98% or more, more preferably 99% or more).
  • the above (B) has SEQ ID NO: 55 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98%). Above, even more preferably 99% or more), which is a fusion protein capable of presenting the first T cell-stimulating cytokine extramembranely.
  • the above (B) is (B) From the N-terminal side (B-3) SEQ ID NO: 73 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • TGF- ⁇ the first T cell-stimulating cytokine
  • B-4 Spacer sequence of SEQ ID NO: 29, and (B-5) SEQ ID NO: 49 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, further MFG-E8 of (preferably 98% or more, more preferably 99% or more)
  • It is a fusion protein capable of presenting the first T cell-stimulating cytokine extramembranely, which is an amino acid sequence consisting of.
  • the above (B) has SEQ ID NO: 75 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98%). Above, even more preferably 99% or more), which is a fusion protein capable of presenting the first T cell-stimulating cytokine extramembranely.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein include a second (or higher) T cell in addition to the first T cell stimulating cytokine. It may further contain stimulating cytokines. Therefore, in one embodiment of the invention, the antigen-presenting extracellular vesicles described herein further comprise a second T cell stimulating cytokine.
  • the antigen-presenting MHC molecule is an antigen-presenting MHC class II molecule
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein preferably contain a second T cell-stimulating cytokine.
  • the second (or higher) T cell-stimulating cytokine may be inserted, for example, into (B) above (eg, N of the "first T cell-stimulating cytokine" of (B-3).
  • a second (or higher) T cell-stimulating cytokine may be linked to the terminal side and / or the C-terminal side, if necessary, via a spacer sequence or the like).
  • the second (or higher) T cell-stimulating cytokine has a configuration similar to that of the constituent requirement (B) described herein, thereby having the constituent requirement (B) described herein.
  • a protein As a protein (or fusion protein) separate from the protein (or fusion protein) of the above, it is contained in the membrane of the antigen-presenting extracellular vesicles described herein, as well as the first T cell-stimulating cytokine. You may.
  • the second T cell stimulating cytokine is IL-2, IL-4, IL-6, IL-12 or TGF- ⁇ .
  • the second T cell stimulating cytokine is TGF- ⁇ (preferably SEQ ID NO: 73, or 80% or more, preferably 90% or more, amino acid sequence identity relative to it. It is preferably 95% or more, more preferably 98% or more, and even more preferably 99% or more).
  • the first T cell stimulating cytokine is IL-2 or IL-4 (preferably SEQ ID NO: 25 or SEQ ID NO: 53, or 80% or more amino acid sequence identity relative to this.
  • the second T cell-stimulating cytokine is TGF- ⁇ (preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, even more preferably 99% or more).
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are on the membrane: (A) Includes an antigen-presenting MHC molecule and a membrane protein or transmembrane domain thereof that can be expressed on the membrane of extracellular vesicles or a protein or domain thereof that can bind to the membrane of extracellular vesicles. , A fusion protein or protein complex capable of presenting the antigen extramembrane; and (B) a first T-cell stimulating cytokine and a membrane protein or transmembrane protein capable of being expressed on the membrane of an extracellular vesicle.
  • a fusion protein capable of extramembrane presentation of the first T cell stimulating cytokine including a protein capable of binding to the membrane of a domain or extracellular vesicle or a domain thereof; It is an antigen-presenting extracellular vesicle containing.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are on the membrane: (A) A fusion protein or protein complex capable of presenting the antigen extramembranely, comprising an antigen-presenting MHC molecule and tetraspanin or a transmembrane domain thereof or MFG-E8 or a domain thereof; and (B) a first T.
  • the fusion protein or (B) the first T cell stimulating cytokine, which has the first T cell stimulating cytokine and is located between the two transmembrane domains, and MFG-E8 or a combination thereof.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are on the membrane: (A) A fusion protein capable of presenting an antigen peptide extramembranely, from the N-terminal side. (A-1) MHC molecule-restricting antigen peptide, (A-2) Spacer array that may be present, (A-3) Single-chain MHC molecule, A protein complex capable of presenting a fusion protein or (A) antigen peptide extramembranely, which comprises (A-4) a spacer sequence which may be present and (A-5) an amino acid sequence consisting of tetraspanin.
  • A-1) MHC molecule-restricting antigen peptide, (A-2) Spacer array that may be present, (A-3) MHC class I ⁇ chain, ⁇ 2 microglobulin, MHC class II ⁇ chain, or MHC class II ⁇ chain (A-4) Spacer sequence that may be present, and (A-5) Amino acid sequence consisting of tetraspanin. Including fusion proteins and (A-6) A protein complex containing a protein containing the amino acid sequence of ⁇ 2 microglobulin, MHC class I ⁇ chain, MHC class II ⁇ chain, or MHC class II ⁇ chain; and (B) from the N-terminal side.
  • the first T cell-stimulating cytokine extramembrane ly comprises (B-4) a spacer sequence that may be present and (B-5) an amino acid sequence consisting of a partial sequence of tetraspanin containing a transmembrane domain 4.
  • B N-terminal side
  • B-3 First T cell stimulating cytokine
  • B-5) MFG-E8
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are on the membrane: (A) A fusion protein capable of presenting an antigen peptide extramembranely, from the N-terminal side. (A-1) MHC class I molecular restrictive antigen peptide, (A-2) Spacer array that may be present, (A-3) Single-chain MHC class I molecule, It is an antigen-presenting extracellular vesicle containing a fusion protein containing (A-4) a spacer sequence that may be present and (A-5) an amino acid sequence consisting of tetraspanin.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are on the membrane:
  • a protein complex capable of presenting an antigen peptide extramembranely From the N-terminal side (A-1) MHC class II molecular restrictive antigen peptide, (A-2) Spacer array that may be present, (A-3) MHC class II ⁇ chain, A fusion protein comprising (A-4) a spacer sequence that may be present and (A-5) an amino acid sequence consisting of tetraspanin.
  • A-6 A protein complex containing a protein containing the amino acid sequence of MHC class II ⁇ chain; It is an antigen-presenting extracellular vesicle containing.
  • the antigen-presenting cells described herein wherein the first T cell stimulating cytokine is IL-2, IL-4, IL-6, IL-12 or TGF- ⁇ . Donate outer vesicles.
  • the extracellular vesicles described herein further present a T cell co-stimulating molecule extracellularly (exemplifying that model in FIG. 2J (2)).
  • Such extracellular vesicles may cause the T cell co-stimulating molecule to be presented extracellularly by containing the protein defined in (C) below in the membrane.
  • a T cell co-stimulating molecule may be attached to the surface of the membrane of the isolated extracellular vesicle later.
  • the method of attachment is not particularly limited, but by binding each phospholipid to a T cell co-stimulating molecule and incorporating a new lipid moiety into the membrane of extracellular vesicles, an antigen-presenting MHC molecule and T cell stimulating property are exhibited on the membrane surface. Cytokines may be attached.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are on the membrane: (C) A protein in which the T cell co-stimulator molecule and the T cell can interact with each other, including the T cell co-stimulator molecule; It is an antigen-presenting extracellular vesicle containing.
  • the above-mentioned (C) "protein in which the T cell co-stimulator molecule and T cell can interact with each other, including the T cell co-stimulator molecule” is a protein in which the T cell co-stimulator molecule and T cell can interact with each other. As long as it is present, other proteins or their domains may be contained in addition to the T cell co-stimulating molecule.
  • the T cell costimulatory molecule binds to a membrane protein that can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle or a transmembrane domain thereof or the membrane of an extracellular vesicle.
  • the T cell co-stimulating molecule and the T cell which comprises a T cell co-stimulating molecule and a tetraspanin or a transmembrane domain thereof or MFG-E8 or a domain thereof, interact with each other. It is an actionable fusion protein.
  • the above (C) is (C) From the N-terminal side (C-1) T cell co-stimulatory molecule, It is a fusion protein capable of interacting with the T cell co-stimulating molecule, which comprises (C-2) a spacer sequence which may be present and (C-3) an amino acid sequence consisting of tetraspanin.
  • the T cell co-stimulating molecule (C-1) is CD80 or CD86. In one embodiment of the present invention, the T cell co-stimulating molecule in (C-1) has CD80 (preferably SEQ ID NO: 67, etc., or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more). , More preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more).
  • the "possible spacer sequence" in (C-2) above may be, for example, a spacer sequence of SEQ ID NO: 5, 11, 29, 39, 77, etc., if it exists.
  • the tetraspanin (C-3) is selected from the group consisting of CD9, CD63 and CD81.
  • the tetraspanin in (C-3) has CD9 (preferably SEQ ID NO: 21 or the like, or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 90% or more). 95% or more, more preferably 98% or more, even more preferably 99% or more).
  • the above (C) is (C) From the N-terminal side (C-1) SEQ ID NO: 67 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the above (C) has SEQ ID NO: 69 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98%). Above, even more preferably 99% or more), which is a fusion protein capable of interacting with the T cell co-stimulating molecule and T cells.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are on the membrane:
  • A A fusion protein capable of presenting an antigen peptide extramembranely, from the N-terminal side.
  • A-1 MHC class I molecular restrictive antigen peptide,
  • A-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 5,
  • A-3) SEQ ID NO: 65 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • SEQ ID NO: 15 or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferable. Is an amino acid sequence consisting of tetraspanin (98% or more, more preferably 99% or more); and (B) from the N-terminal side.
  • B-1) SEQ ID NO: 57 or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • Partial sequence of tetraspanin, (B-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 29, (B-3) SEQ ID NO: 25 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the first T cell stimulating cytokine, IL-2 of (B-4) Spacer sequence of SEQ ID NO: 29, and (B-5) SEQ ID NO: 59 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, further
  • a fusion protein capable of presenting the first T cell stimulating cytokine extramembranely which is an amino acid sequence consisting of a partial sequence of tetraspanin (preferably 98% or more, more preferably 99% or more); It is an antigen-presenting extracellular vesicle containing.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are on the membrane:
  • A A fusion protein capable of presenting an antigen peptide extramembranely, from the N-terminal side.
  • A-1 MHC class I molecular restrictive antigen peptide,
  • A-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 5,
  • A-3) SEQ ID NO: 65 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • SEQ ID NO: 15 or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferable. Is an amino acid sequence consisting of tetraspanin of 98% or more, more preferably 99% or more); and (B) SEQ ID NO: 31 (or 80% or more amino acid sequence identity, preferably 80% or more). Is 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, even more preferably 99% or more), a fusion protein capable of presenting the first T cell-stimulating cytokine extramembranely; It is an antigen-presenting extracellular vesicle containing.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are on the membrane:
  • A A fusion protein capable of presenting an antigen peptide extramembranely, from the N-terminal side.
  • A-1 MHC class I molecular restrictive antigen peptide,
  • A-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 5,
  • A-3) SEQ ID NO: 65 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • SEQ ID NO: 15 or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferable. Is an amino acid sequence consisting of 98% or more, more preferably 99% or more) tetraspanin;
  • B From the N-terminal side (B-1) SEQ ID NO: 57 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • Partial sequence of tetraspanin, (B-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 29, (B-3) SEQ ID NO: 25 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • SEQ ID NO: 67 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • CD80, T cell co-stimulatory molecule, and (C-3) SEQ ID NO: 21 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more). , More preferably 98% or more, even more preferably 99% or more), a fusion protein in which the T cell co-stimulator molecule and T cells can interact with each other; It is an antigen-presenting extracellular vesicle containing.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are on the membrane:
  • A A fusion protein capable of presenting an antigen peptide extramembranely, from the N-terminal side.
  • A-1 MHC class I molecular restrictive antigen peptide,
  • A-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 5,
  • A-3) SEQ ID NO: 65 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • SEQ ID NO: 15 or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferable. Is an amino acid sequence consisting of 98% or more, more preferably 99% or more) tetraspanin;
  • SEQ ID NO: 31 or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • fusion protein capable of presenting the first T cell-stimulating cytokine extramembrane; and (C) SEQ ID NO: 69 (or 80% or more, preferably 90% or more) of amino acid sequence identity. More preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, even more preferably 99% or more), a fusion protein capable of interacting with the T cell co-stimulating molecule; It is an antigen-presenting extracellular vesicle containing.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are on the membrane:
  • B-1 From the N-terminal side (B-1) SEQ ID NO: 57 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • Partial sequence of tetraspanin, (B-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 29, (B-3) SEQ ID NO: 25 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the spacer sequence of the first T cell-stimulating cytokine (B-4) SEQ ID NO: 29, which is IL-2 of (B-5), and (B-5) SEQ ID NO: 59 (or amino acid sequence identity relative to this).
  • the first amino acid sequence consisting of a partial sequence of tetraspanin (80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more).
  • CD80, T cell co-stimulatory molecule, and (C-3) SEQ ID NO: 21 or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more. , More preferably 98% or more, even more preferably 99% or more), a fusion protein in which the T cell co-stimulator molecule and T cells can interact with each other; It is an antigen-presenting extracellular vesicle containing.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are on the membrane:
  • a protein complex consisting of MHC class II ⁇ chains of% or more, more preferably 99% or more; (B) SEQ ID NO: 31 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more; (C) SEQ ID NO: 69 (or 80% or more, preferably 90% or more) amino acid sequence identity.
  • a fusion protein capable of interacting with the T cell co-stimulating molecule; It is an antigen-presenting extracellular vesicle containing.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are on the membrane:
  • B-1 From the N-terminal side (B-1) SEQ ID NO: 57 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • Partial sequence of tetraspanin, (B-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 29, (B-3) SEQ ID NO: 25 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • TGF- ⁇ TGF- ⁇ , a second T cell-stimulating cytokine
  • B-4 Spacer sequence of SEQ ID NO: 29, and (B-5) SEQ ID NO: 49 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, further MFG-E8 of (preferably 98% or more, more preferably 99% or more)
  • C-1 SEQ ID NO: 67 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are on the membrane:
  • B SEQ ID NO: 31 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more. ),
  • B' SEQ ID NO: 75 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • a fusion protein capable of presenting the second T cell-stimulating cytokine extramembranely and (C) SEQ ID NO: 69 (or 80% or more, preferably 90% or more) of amino acid sequence identity. , More preferably 95% or more, even more preferably 98% or more, even more preferably 99% or more), a fusion protein capable of interacting with the T cell co-stimulating molecule; It is an antigen-presenting extracellular vesicle containing.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are on the membrane:
  • B-1 From the N-terminal side (B-1) SEQ ID NO: 61 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • Partial sequence of tetraspanin, (B-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 29, (B-3) SEQ ID NO: 53 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the spacer sequence of the first T cell-stimulating cytokine (B-4) SEQ ID NO: 29, which is IL-4 of (B-5), and (B-5) SEQ ID NO: 63 (or amino acid sequence identity with respect to this).
  • the first amino acid sequence consisting of a partial sequence of tetraspanin (80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more).
  • CD80, T cell co-stimulatory molecule, and (C-3) SEQ ID NO: 21 or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more). , More preferably 98% or more, even more preferably 99% or more), a fusion protein in which the T cell co-stimulator molecule and T cells can interact with each other; It is an antigen-presenting extracellular vesicle containing.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are on the membrane:
  • a protein complex consisting of MHC class II ⁇ chains of% or more, more preferably 99% or more; (B) SEQ ID NO: 55 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more; (C) SEQ ID NO: 69 (or 80% or more, preferably 90% or more) amino acid sequence identity.
  • a fusion protein capable of interacting with the T cell co-stimulating molecule; It is an antigen-presenting extracellular vesicle containing.
  • (A) and (B) may be fused to form one molecule, or (B) and (C).
  • Such fusion molecules may be translated as a single protein molecule with or without a spacer sequence between (A), (B) and (C), or (A), (B) and (C).
  • Proteins may be fused into one molecule by chemically cross-linking (for example, a disulfide bond between cysteine residues).
  • the above (A), (B) and (C) are elements for the protein to localize to extracellular vesicles, that is, "a membrane protein that can be expressed on the membrane of extracellular vesicles or It may be functionally fused by sharing a portion of "the transmembrane domain” or "a protein capable of binding to the membrane of extracellular vesicles or its domain".
  • a membrane protein that can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle or its transmembrane domain or "a protein that can bind to the membrane of an extracellular vesicle or its domain”.
  • Fusion in the form of sharing parts (1) Antigen-presenting MHC molecule; (2) At least one T-cell stimulating cytokine; and (3) "Membrane protein that can be expressed on the membrane of extracellular vesicles or its transmembrane domain" or “Binds to the membrane of extracellular vesicles” It may contain a fusion protein (D) that contains a "capable protein or domain thereof"; In (A) and (C), "a membrane protein that can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle or its transmembrane domain” or "a protein that can bind to the membrane of an extracellular vesicle or its domain".
  • Fusion in the form of sharing parts (1) Antigen-presenting MHC molecule; (2) T-cell costimulatory molecule; and (3) "membrane protein that can be expressed on the membrane of extracellular vesicles or its transmembrane domain” or “capable of binding to the membrane of extracellular vesicles” It may contain a fusion protein (F) containing a protein or its domain; In (B) and (C), "a membrane protein that can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle or its transmembrane domain” or "a protein that can bind to the membrane of an extracellular vesicle or its domain".
  • Fusion in the form of sharing parts (1) At least one T cell-stimulating cytokine; (2) T-cell costimulatory molecule; and (3) "membrane protein that can be expressed on the membrane of extracellular vesicles or its transmembrane domain” or “capable of binding to the membrane of extracellular vesicles” It may contain a fusion protein (G) containing a protein or its domain; Alternatively, in (A) to (C), "a membrane protein that can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle or a transmembrane domain thereof" or "a protein that can bind to the membrane of an extracellular vesicle or a domain thereof".
  • Fusion protein that can be expressed on the membrane of extracellular vesicles or its transmembrane domain" or “capable of binding to the membrane of extracellular vesicles”
  • a fusion protein (E) containing a protein or a domain thereof; may be included.
  • the constitutional requirement (A) "a membrane protein that can be expressed on the membrane of extracellular vesicles or a transmembrane domain thereof or a protein that can bind to the membrane of extracellular vesicles".
  • the constituent requirement (A) is used by using the "protein capable of presenting the first T cell stimulating cytokine extramembranely including the first T cell stimulating cytokine". It may be an antigen-presenting extracellular vesicle cell containing the fusion protein (D) having the functions of the above-mentioned and the constituent requirement (B).
  • the fusion protein (D) having the functions of the constituent requirements (A) and the constituent requirements (B) is (D) Antigen presentation A fusion protein containing an MHC molecule and at least one T cell-stimulating cytokine and capable of presenting the antigen and the T cell-stimulating cytokine extramembranely.
  • the fusion protein includes the antigen-presenting MHC molecule, at least one T cell-stimulating cytokine, and a membrane protein capable of localizing to the membrane of an extracellular vesicle or a transmembrane domain or extracellular vesicle thereof. It may contain a protein capable of binding to a membrane of the same or a membrane binding domain thereof.
  • the fusion protein (D) having the functions of the constituent requirements (A) and the constituent requirements (B), it binds to the membrane protein or the membrane of the extracellular vesicle that can be localized in the membrane of the extracellular vesicle.
  • Possible proteins may be tetraspanin or MFG-E8.
  • the fusion protein is released from the N-terminal side.
  • D-1 A fusion peptide containing tetraspanin or a transmembrane domain thereof or MFG-E8 or a transmembrane domain thereof and at least one T cell-stimulating cytokine (D-2).
  • D-3) Single-chain MHC molecule,
  • D-4) a spacer sequence that may be present, and
  • D-5) an MHC molecule-restricting antigen peptide. Amino acid sequences encoding in this order may be included.
  • the fusion peptide is applied from the N-terminal side.
  • At least one T cell-stimulating cytokine, (2) Spacer arrangement that may be present, and (3) MFG-E8 May include an amino acid sequence encoding in this order.
  • the MHC molecule-binding antigen peptide is an MHC class I molecule-binding antigen peptide
  • the single-chain MHC molecule may contain an extracellular region of the MHC class I ⁇ chain, and the MHC molecule-restricted.
  • the sex antigen peptide is an MHC class II molecule-binding antigen peptide
  • the single-chain MHC molecule may contain an extracellular domain of an MHC class II ⁇ chain and / or an extracellular domain of an MHC class II ⁇ chain.
  • the membrane may further contain a protein capable of interacting with the T cell co-stimulator, which comprises at least one T cell co-stimulator;
  • the protein capable of interacting with the T cell is formed on at least one T cell costimulatory molecule and a membrane protein that can be expressed on the membrane of the extracellular vesicle or its transmembrane domain or the membrane of the extracellular vesicle.
  • the protein capable of interacting with the T cells may include at least one T cell co-stimulating molecule and tetraspanin or a transmembrane domain thereof or MFG-E8 or a domain thereof.
  • the extracellular vesicle is an exosome.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein may contain or bind to a substance that may be therapeutically beneficial (eg, small molecule compound, nucleic acid, etc.) in or in the membrane. It may have been done.
  • the method for encapsulating the substance in the membrane of the extracellular vesicle is not limited to these, but for example, the substance and the extracellular vesicle described herein are mixed in a suitable solvent. The method of doing this can be mentioned.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles may comprise any protein preparation.
  • the protein preparation is not particularly limited, but may be a naturally occurring protein such as erythropoetin or a non-naturally occurring synthetic protein such as an immunoglobulin-CTLA4 fusion protein, and is a monoclonal antibody or an active fragment thereof. It may be.
  • These protein preparations are fused with a membrane protein capable of localizing to the membrane of extracellular vesicles or its transmembrane domain or a protein capable of binding to the membrane of extracellular vesicles or its membrane binding domain. It may be localized on the surface of antigen-presenting extracellular vesicles as a protein.
  • Such antigen-presenting extracellular vesicles can be prepared by transfecting cells producing antigen-presenting extracellular vesicles with a vector for expressing a fusion protein.
  • Each fusion protein or protein complex or protein preparation contained in the membrane of the antigen-presenting extracellular vesicles described herein may contain one or more detectable labels.
  • the fusion protein or protein complex or protein preparation may be labeled with a specific reporter molecule, phosphorylation group, radioactive material, enzyme (eg, peroxidase, phosphatase) or the like in a conventional manner. These may be linked to the N-terminal side or the C-terminal side of the fusion protein or protein complex or protein preparation, for example, as a component of the fusion protein or protein complex or protein preparation.
  • each fusion protein or protein complex in (A) and (B), and optionally in (C), contained in the membranes of antigen-presenting extracellular vesicles described herein. Provide a polynucleotide encoding the. In one embodiment of the invention, a polynucleotide encoding each fusion protein or protein complex in (A)-(G) as defined herein is provided.
  • polynucleotide means a single-stranded or double-stranded DNA molecule, RNA molecule, or the like. Polynucleotides include genomic DNA, cDNA, hnRNA, mRNA and the like, and all of these naturally occurring or artificially modified derivatives and the like. The polynucleotide may be chain-like or cyclic.
  • each fusion protein or protein complex in (A) to (G) described above can be appropriately determined by a person skilled in the art with reference to the amino acid sequence of the fusion protein or protein complex.
  • the amino acid sequence of each fusion protein or protein complex in (A) to (G) is a component of each fusion protein or protein complex (for example, (A-1) in the case of (A)). It can be appropriately determined with reference to the amino acid sequences of (A-5) and, in some cases (A-6)).
  • Any type of codon used in determining the polynucleotide can be selected.
  • the polynucleotide may be determined in consideration of the frequency of codons of cells to be transformed using the vector containing the polynucleotide.
  • a polynucleotide encoding a signal peptide may be added to the N-terminal side of the polynucleotide encoding each fusion protein or protein complex in (A) to (G) described above, if necessary. ..
  • any one can be used as the amino acid sequence of the signal peptide, and for example, the amino acid sequence of the fusion protein to be expressed may be taken into consideration when determining the amino acid sequence.
  • the polynucleotide encoding the signal peptide include a polynucleotide encoding a signal peptide of ⁇ 2 microglobulin (for example, SEQ ID NO: 1) (for example, SEQ ID NO: 2), and a polynucleotide encoding a signal peptide of the MHC class I ⁇ chain.
  • Examples thereof include a nucleotide, a polynucleotide encoding a signal peptide of an MHC class II ⁇ chain, a polynucleotide encoding a signal peptide of an MHC class II ⁇ chain (for example, SEQ ID NO: 33) (for example, SEQ ID NO: 34), and the like.
  • each component of each fusion protein or protein complex in (A) to (G) described above for example, in the case of (A), (A-1) to (A-5), and when present (for example) Information on amino acid sequences such as A-6)
  • signal peptides and polynucleotides encoding them can be found in, for example, known literature and NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/guide/). Etc. may be searched and obtained as appropriate.
  • International Publication No. 2016/139354 may be referred to.
  • the polynucleotide is: (A) A fusion protein capable of presenting an antigen peptide extramembranely, from the N-terminal side. (A-1) MHC molecule-restricting antigen peptide, (A-2) Spacer array that may be present, (A-3) Single-chain MHC molecule, A fusion protein or fusion protein containing (A-4) a spacer sequence that may be present and (A-5) an amino acid sequence consisting of tetraspanin. (A) A fusion protein constituting a protein complex capable of presenting an antigen peptide extramembranely.
  • A-1) MHC molecule-restricting antigen peptide
  • A-2) Spacer array that may be present
  • A-3) MHC class I ⁇ chain, ⁇ 2 microglobulin, MHC class II ⁇ chain, or MHC class II ⁇ chain
  • A-4) Spacer sequence that may be present
  • A-5) Amino acid sequence consisting of tetraspanin.
  • Fusion proteins including; (B) From the N-terminal side (B-1) From the N-terminal side, a partial sequence of tetraspanin containing a transmembrane domain 1, a small extracellular loop, a transmembrane domain 2, a small intracellular loop and a transmembrane domain 3, (B-2) Spacer array that may be present, (B-3) First T cell stimulating cytokine, The first T cell-stimulating cytokine extramembranely comprises (B-4) a spacer sequence that may be present and (B-5) an amino acid sequence consisting of a partial sequence of tetraspanin containing a transmembrane domain 4.
  • the polynucleotide is: (A) A fusion protein capable of presenting an antigen peptide extramembranely, from the N-terminal side.
  • A-1 MHC class I molecular restrictive antigen peptide (A-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 5, (A-3) SEQ ID NO: 65 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • A-5 SEQ ID NO: 15 or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferable.
  • A-1 MHC class II molecular restrictive antigen peptide A-2 Spacer sequence of SEQ ID NO: 39, (A-3) SEQ ID NO: 37 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • MHC class II ⁇ chain (of) and (A-5) SEQ ID NO: 15 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98). % Or more, more preferably 99% or more) of tetraspanin, Fusion protein, which is an amino acid sequence consisting of (B) From the N-terminal side (B-1) SEQ ID NO: 57 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the first amino acid sequence consisting of a partial sequence of tetraspanin (80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more).
  • a fusion protein capable of presenting T cell-stimulating cytokines extramembranely (B) From the N-terminal side (B-1) SEQ ID NO: 61 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the first amino acid sequence consisting of a partial sequence of tetraspanins (80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more).
  • a fusion protein capable of presenting T cell-stimulating cytokines extramembranely, or from the (B') N-terminal side (B-3) SEQ ID NO: 73 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • TGF- ⁇ TGF- ⁇ , a second T cell-stimulating cytokine
  • B-4 Spacer sequence of SEQ ID NO: 29, and (B-5) SEQ ID NO: 49 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, further MFG-E8 of (preferably 98% or more, more preferably 99% or more)
  • C-1 SEQ ID NO: 67 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the polynucleotide is: (A) A fusion protein capable of presenting an antigen peptide extramembranely, from the N-terminal side.
  • A-1 MHC class I molecular restrictive antigen peptide (A-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 5, (A-3) SEQ ID NO: 65 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • A-5 SEQ ID NO: 15 or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferable.
  • A-1 MHC class II molecular restrictive antigen peptide A-2 Spacer sequence of SEQ ID NO: 39, (A-3) SEQ ID NO: 37 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • MHC class II ⁇ chain (of) and (A-5) SEQ ID NO: 15 (or amino acid sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98). % Or more, more preferably 99% or more) of tetraspanin, Fusion protein, which is an amino acid sequence consisting of (B) SEQ ID NO: 31, 75 or 55 (or 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99 in amino acid sequence identity.
  • a fusion protein capable of presenting the first (or second) T cell-stimulating cytokine extramembranely; or (C) SEQ ID NO: 23 (or 80 amino acid sequence identity relative to it).
  • T cell co-stimulatory molecule can interact with the T cell.
  • Fusion protein Provided is a polynucleotide encoding any of the above.
  • the polynucleotide is: (A) A polynucleotide encoding a fusion protein capable of presenting an antigenic peptide extramembranely.
  • A-1 A polynucleotide encoding an MHC class I molecularly restrictive antigenic peptide,
  • A-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 6,
  • A-3) SEQ ID NO: 66 (or sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • a polynucleotide encoding an MHC class II molecularly restrictive antigenic peptide (A-2) Spacer arrangement of SEQ ID NO: 40, (A-3) SEQ ID NO: 38 (or sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • A-5 SEQ ID NO: 16 (or sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more).
  • Polynucleotide which is a sequence consisting of;
  • B A polynucleotide encoding a fusion protein capable of presenting a first T cell-stimulating cytokine extramembranely.
  • B-1 SEQ ID NO: 58 (or sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the above, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more) which is a sequence consisting of a partial sequence of tetraspanin.
  • (B) A polynucleotide encoding a fusion protein capable of presenting a first T cell-stimulating cytokine extramembranely.
  • (B-1) SEQ ID NO: 62 (or sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • Partial sequence of tetraspanin, (B-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 30, (B-3) SEQ ID NO: 54 (or sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • the spacer sequence of the first T cell stimulating cytokine (B-4) SEQ ID NO: 30, which is IL-4 of (B-5), and (B-5) SEQ ID NO: 64 (or 80% sequence identity relative to this). (Preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more) partial sequence of tetraspanin;
  • a polynucleotide encoding a fusion protein capable of presenting a (B') second (or first) T cell-stimulating cytokine out of the membrane which is a sequence consisting of (B-3) SEQ ID NO: 74 (or sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • TGF- ⁇ TGF- ⁇
  • B-4 Spacer sequence of SEQ ID NO: 30 and (B-5) SEQ ID NO: 50 (or sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferable. Is 98% or more, more preferably 99% or more)
  • MFG-E8 A polynucleotide consisting of a sequence consisting of; or (C) a polynucleotide encoding a fusion protein in which the T cell co-stimulator molecule and a T cell can interact with each other.
  • (C-1) SEQ ID NO: 68 (or sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • CD80, T cell co-stimulatory molecule, and (C-3) SEQ ID NO: 22 (or 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, further sequence identity with respect to it.
  • the polynucleotide is: (A) A polynucleotide encoding a fusion protein capable of presenting an antigenic peptide extramembranely.
  • A-1 A polynucleotide encoding an MHC class I molecularly restrictive antigenic peptide,
  • A-2) Spacer sequence of SEQ ID NO: 6,
  • A-3) SEQ ID NO: 66 (or sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • a polynucleotide encoding an MHC class II molecularly restrictive antigenic peptide (A-2) Spacer arrangement of SEQ ID NO: 40, (A-3) SEQ ID NO: 38 (or sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more.
  • A-5 SEQ ID NO: 16 (or sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more).
  • Polynucleotide which is a sequence consisting of; (B) SEQ ID NO: 32, 76 or 56 (or sequence identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99%.
  • the T cell costimulatory molecule and the T cell having an identity of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 98% or more, still more preferably 99% or more).
  • a polynucleotide encoding an interactable fusion protein; I will provide a.
  • the above (A), (B) and (C) may be a polynucleotide encoding a fusion protein in which (A) and (B) are fused to form one molecule. Then, it may be a polynucleotide encoding a fusion protein in which (B) and (C) are fused to form one molecule, or (A), (B) and (C) are fused to form one molecule. It may be a polynucleotide encoding a fusion protein. Such a polynucleotide may encode a fusion protein in the form with or without a spacer sequence between (A), (B) and (C). ..
  • the polynucleotide in one embodiment of the invention is the element (A), (B) and (C) above for the protein to localize to the extracellular vesicle, i.e., "of the extracellular vesicle.
  • a functionally fused fusion by sharing a portion of "a membrane protein that can be expressed on a membrane or its transmembrane domain" or "a protein that can bind to the membrane of extracellular vesicles or its domain". It may encode a protein.
  • a membrane protein that can be expressed on a membrane or its transmembrane domain
  • a protein that can bind to the membrane of extracellular vesicles or its domain It may encode a protein.
  • a protein for example, in one embodiment of the invention.
  • a membrane protein that can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle or its transmembrane domain or "a protein that can bind to the membrane of an extracellular vesicle or its domain”. Fusion in the form of sharing parts, (1) Antigen-presenting MHC molecule; (2) At least one T-cell stimulating cytokine; and (3) "Membrane protein that can be expressed on the membrane of extracellular vesicles or its transmembrane domain" or “Binds to the membrane of extracellular vesicles” It may be a polynucleotide encoding a fusion protein (D), including a capable protein or domain thereof; In (A) and (C), "a membrane protein that can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle or its transmembrane domain” or "a protein that can bind to the membrane of an extracellular vesicle or its domain”.
  • Fusion in the form of sharing parts (1) Antigen-presenting MHC molecule; (2) T-cell costimulatory molecule; and (3) "membrane protein that can be expressed on the membrane of extracellular vesicles or its transmembrane domain” or “capable of binding to the membrane of extracellular vesicles” It may be a polynucleotide encoding a fusion protein (F) containing a protein or domain thereof; In (B) and (C), "a membrane protein that can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle or its transmembrane domain” or "a protein that can bind to the membrane of an extracellular vesicle or its domain".
  • T cell-stimulating cytokine at least one T cell-stimulating cytokine; (2) T-cell costimulatory molecule; and (3) "membrane protein that can be expressed on the membrane of extracellular vesicles or its transmembrane domain" or “capable of binding to the membrane of extracellular vesicles" It may be a polynucleotide encoding a fusion protein (G) containing a protein or domain thereof; Alternatively, in (A) to (C), "a membrane protein that can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle or a transmembrane domain thereof" or "a protein that can bind to the membrane of an extracellular vesicle or a domain thereof".
  • Fusion protein that can be expressed on the membrane of extracellular vesicles or its transmembrane domain" or “capable of binding to the membrane of extracellular vesicles” It may be a polynucleotide encoding a fusion protein (E) containing a protein or domain thereof.
  • One embodiment of the present invention is a membrane protein that can be expressed on the membrane of the extracellular vesicle of the constituent requirement (A) or a transmembrane domain thereof or a protein that can bind to the membrane of the extracellular vesicle.
  • a protein capable of presenting the first T-cell stimulating cytokine out of the membrane, including the first T-cell stimulating cytokine of constituent (B), is used in the constituents (A) and the constituents (A).
  • the fusion protein (D) having the functions of the constituent requirements (A) and the constituent requirements (B) contains an antigen-presenting MHC molecule and at least one T cell-stimulating cytokine, and the antigen and the T cell-stimulating cytokine. May be a fusion protein that can be presented extramembranely.
  • the fusion protein includes the antigen-presenting MHC molecule, at least one T cell-stimulating cytokine, and a membrane protein capable of localizing to the membrane of an extracellular vesicle or a transmembrane domain or extracellular vesicle thereof. It may contain a protein capable of binding to a membrane of the same or a membrane binding domain thereof.
  • the fusion protein (D) having the functions of the constituent requirements (A) and the constituent requirements (B), it binds to the membrane protein or the membrane of the extracellular vesicle that can be localized in the membrane of the extracellular vesicle.
  • Possible proteins may be tetraspanin or MFG-E8.
  • the fusion protein is released from the N-terminal side.
  • D-1 A fusion peptide containing tetraspanin or a transmembrane domain thereof or MFG-E8 or a transmembrane domain thereof and at least one T cell-stimulating cytokine (D-2).
  • D-3) Single-chain MHC molecule,
  • D-4) a spacer sequence that may be present, and
  • D-5) an MHC molecule-restricting antigen peptide. Amino acid sequences encoding in this order may be included.
  • the fusion peptide is applied from the N-terminal side.
  • At least one T cell-stimulating cytokine, (2) Spacer arrangement that may be present, and (3) MFG-E8 May include an amino acid sequence encoding in this order.
  • the MHC molecule-binding antigen peptide is an MHC class I molecule-binding antigen peptide
  • the single-chain MHC molecule may contain an extracellular region of the MHC class I ⁇ chain, and the MHC molecule-restricted.
  • the sex antigen peptide is an MHC class II molecule-binding antigen peptide
  • the single-chain MHC molecule may contain an extracellular domain of an MHC class II ⁇ chain and / or an extracellular domain of an MHC class II ⁇ chain.
  • the membrane may further contain a protein capable of interacting with the T cell co-stimulator, which comprises at least one T cell co-stimulator;
  • the protein capable of interacting with the T cell is formed on at least one T cell costimulatory molecule and a membrane protein that can be expressed on the membrane of the extracellular vesicle or its transmembrane domain or the membrane of the extracellular vesicle.
  • the protein capable of interacting with the T cells may include at least one T cell co-stimulating molecule and tetraspanin or a transmembrane domain thereof or MFG-E8 or a domain thereof.
  • One embodiment of the present invention provides a vector comprising at least one polynucleotide selected from the polynucleotides described herein.
  • the term "vector” refers to any vector, such as, but not limited to, a plasmid vector, a cosmid vector, a phage vector such as a phage, an adenovirus vector, a baculovirus vector, and the like. (Including viral vector, artificial chromosome vector, etc.).
  • the vector includes an expression vector, a cloning vector and the like.
  • Expression vectors are generally the appropriate polynucleotides required for the expression of the desired coding sequence and the operably linked coding sequence in the host organism (eg, plant, insect, animal, etc.) or expression system in vitro. May be contained.
  • Cloning vectors may be used to manipulate and / or amplify the desired polynucleotide fragment.
  • the cloning vector may lack the functional sequence required for expression of the desired polynucleotide fragment.
  • the polynucleotides described herein may all be inserted into the same vector as long as they can be operably inserted, or two or more polynucleotides are separate. It may be inserted in the vector.
  • a kit that combines two or more vectors comprising at least one polynucleotide selected from the polynucleotides described herein.
  • a vector comprising a polynucleotide encoding a fusion protein of (C) described herein. Provides transformed cells.
  • (iii) provide cells transformed by a single vector or a combination of two or more vectors comprising a polynucleotide encoding the fusion protein of (C) described herein.
  • a vector containing a polynucleotide encoding a fusion protein in which (A) and (B) are fused to form one molecule in which (A) and (B) are fused to form one molecule.
  • (B) and (C) are fused to form a single molecule, or a vector containing a polynucleotide encoding a fusion protein, or (A), (B) and (C) are fused to form a single molecule. It may be transformed with a vector containing a polynucleotide encoding a protein.
  • Such a polynucleotide may encode a fusion protein in the form with or without a spacer sequence between (A), (B) and (C).
  • the above (A), (B) and (C) are elements for the protein to localize to the extracellular vesicle, that is, "a membrane protein that can be expressed on the membrane of the extracellular vesicle or"
  • a functionally fused fusion protein may be encoded.
  • a functionally fused fusion protein may be encoded.
  • the invention in one embodiment of the invention.
  • a membrane protein that can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle or its transmembrane domain or "a protein that can bind to the membrane of an extracellular vesicle or its domain”. Fusion in the form of sharing parts, (1) Antigen-presenting MHC molecule; (2) At least one T-cell stimulating cytokine; and (3) "Membrane protein that can be expressed on the membrane of extracellular vesicles or its transmembrane domain" or “Binds to the membrane of extracellular vesicles”
  • a membrane protein that can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle or its transmembrane domain or "a protein that can bind to the membrane of an extracellular vesicle or its domain”.
  • Fusion in the form of sharing parts (1) Antigen-presenting MHC molecule; (2) T-cell costimulatory molecule; and (3) "membrane protein that can be expressed on the membrane of extracellular vesicles or its transmembrane domain" or “capable of binding to the membrane of extracellular vesicles”
  • F fusion protein containing a protein or domain thereof
  • a membrane protein that can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle or its transmembrane domain or "a protein that can bind to the membrane of an extracellular vesicle or its domain”.
  • Fusion in the form of sharing parts (1) At least one T cell-stimulating cytokine; (2) T-cell costimulatory molecule; and (3) "membrane protein that can be expressed on the membrane of extracellular vesicles or its transmembrane domain" or “capable of binding to the membrane of extracellular vesicles”
  • G a polynucleotide encoding a fusion protein (G) containing a protein or domain thereof
  • a membrane protein that can be expressed on the membrane of an extracellular vesicle or a transmembrane domain thereof or "a protein that can bind to the membrane of an extracellular vesicle or a domain thereof.
  • Fusion in the form of sharing the part (1) Antigen-presenting MHC molecule; (2) At least one T cell-stimulating cytokine; (3) T-cell costimulatory molecule; and (4) "membrane protein that can be expressed on the membrane of extracellular vesicles or its transmembrane domain” or “capable of binding to the membrane of extracellular vesicles” It may be transformed with a vector containing a polynucleotide encoding a fusion protein (E) containing a protein or domain thereof.
  • E fusion protein
  • the constituent requirement In place of the membrane protein of (A) capable of expressing on the membrane of the extracellular vesicle or its transmembrane domain or protein capable of binding to the membrane of the extracellular vesicle, the constituent requirement.
  • the functions of the constituent requirements (A) and the constituent requirements (B) are performed by using a protein capable of presenting the first T cell-stimulating cytokine extramembranely, including the first T-cell stimulating cytokine of (B).
  • a fusion protein provided, A poly encoding an antigen-presenting MHC molecule of (D) described herein and at least one T cell-stimulating cytokine and encoding an antigen and a fusion protein capable of presenting the T-cell stimulating cytokine extramembranely.
  • Cells transformed with a vector containing nucleotides are provided.
  • Transformed by a single vector or a combination of two or more vectors means, for example, that cells are transformed by inserting all the polynucleotides (i) to (iv) above into the same vector. It means that it may be transformed, or two or more of these may be transformed by a combination of two or more vectors inserted into separate vectors.
  • Examples of the "single vector or combination of two or more vectors" when (A) is a fusion protein include: A vector comprising a polynucleotide encoding the fusion protein of (A) and a polynucleotide encoding the fusion protein of (B); -A combination of a vector containing a polynucleotide encoding the fusion protein of (A) and a vector containing a polynucleotide encoding the fusion protein of (B); A vector comprising a polynucleotide encoding a fusion protein of (A), a polynucleotide encoding a fusion protein of (B), and a polynucleotide encoding a fusion protein of (C); A vector containing a polynucleotide encoding a fusion protein of (A) and a polynucleotide encoding a fusion protein of (B), and a vector containing a poly
  • examples of the "single vector or combination of two or more vectors" when (A) is a protein complex include, for example: • A polynucleotide encoding a fusion protein comprising an amino acid sequence consisting of (A-1) to (A-5), a polynucleotide encoding a protein containing (A-6), and a fusion protein of (B).
  • Vector containing polynucleotide A polynucleotide encoding a fusion protein comprising an amino acid sequence consisting of (A-1) to (A-5), a vector comprising a polynucleotide encoding a protein containing (A-6), and (B).
  • Combination with a vector comprising a polynucleotide encoding a fusion protein of A vector containing a polynucleotide encoding a fusion protein containing an amino acid sequence consisting of (A-1) to (A-5) and a vector containing a polynucleotide encoding a protein containing (A-6).
  • a vector comprising a nucleotide and a polynucleotide encoding a fusion protein of (C); • A polynucleotide encoding a fusion protein comprising an amino acid sequence consisting of (A-1) to (A-5), a polynucleotide encoding a protein containing (A-6), and a fusion protein of (B).
  • a vector comprising a polynucleotide encoding a fusion protein of (B) and a polynucleotide encoding a fusion protein of (C);
  • the cells to be transformed are not particularly limited as long as the antigen-presenting extracellular vesicles described in the present specification can be obtained after transformation, and even primary cultured cells are subcultured. It may be a progenitor cell or a transformed cell, and these may be normal cells or lesion cells containing cancerous or tumorigenic cells.
  • the origin of the cells to be transformed is not particularly limited, but for example, rodents such as mice, rats, hamsters and guinea pigs, rabbit eyes such as rabbits, pigs, cows, goats, horses, sheep and the like.
  • the cell to be transformed is preferably an animal-derived cell.
  • the animal-derived cells are not limited to these, for example, human embryo-kidney cells (including HEK293T cells, etc.), human FL cells, Chinese hamster ovary cells (CHO cells), COS-7, Vero, and the like. Examples thereof include mouse L cells and rat GH3.
  • the method for transforming a cell is not particularly limited as long as it is a method capable of introducing the desired polynucleotide into the cell.
  • a method capable of introducing the desired polynucleotide into the cell For example, an electroporation method, a microinjection method, a calcium phosphate method, a cationic lipid method, a method using liposomes, a method using a non-liposomal substance such as polyethyleneimine, a virus infection method, or the like may be used.
  • Transformed cells transiently express the fusion protein or protein complex of (A), (B), (C), (D), (E), (F) and / or (G). It may be a transformed cell that exhibits stably, or it may be a transformed cell (stable cell line) that expresses stably.
  • the culture conditions for the transformed cells are not particularly limited.
  • a medium generally used for cell culture or the like for example, RPMI1640 medium, Eagle's MEM medium, Dalveco-modified Eagle's medium (DMEM medium), Ham F12).
  • a medium, or any combination thereof, etc.) or a medium to which other components such as bovine fetal serum, antibiotics, amino acids, etc. are added is used, and for example, about 1 to about 10% (preferably about 2 to 2 to).
  • the desired time eg, about 0.5 hours to about 240 hours (preferably about 5 to about 120 hours)).
  • culture eg, standing or shaking).
  • the culture supernatant obtained by culturing transformed cells may contain the antigen-presenting extracellular vesicles described herein. Therefore, when culturing transformed cells for the purpose of obtaining the antigen-presenting extracellular vesicles described in the present specification, if necessary, a medium from which extracellular vesicles such as exosomes have been removed (for example, exosomes have been removed). Dalveco-modified Eagle's medium containing about 1 to about 5% bovine fetal serum) may be used.
  • a culture supernatant obtained by culturing the transformed cells described in the present specification is provided.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles contained in the culture supernatant described in the present specification are obtained by, for example, purifying (for example, centrifugation, chromatography, etc.), concentrating, isolating, etc. of the culture supernatant. , Can be recovered more.
  • an antigen-presenting extracellular vesicle obtained from the culture supernatant described herein is provided.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are not limited to these, but are, for example, by means such as genetic recombination techniques known to those skilled in the art (for example, by the methods described below, or by means such as those described below. It may be obtained by the method described in the examples or by a method similar thereto. Conventional genetic recombination techniques are used to obtain polynucleotides encoding the proteins (A) and (B) (or (D) instead of (A) and (B)), and optionally (C), respectively. These can be operably inserted into the same or separate vectors.
  • the obtained single or two or more vectors are transformed into cells simultaneously or sequentially, and transformed cells (transformed cells that transiently express these fusion proteins may be used or are stable. Transformed cells (stable strains) that are specifically expressed) can be obtained.
  • the obtained transformed cells are cultured under desired conditions to obtain a culture supernatant, and the obtained culture supernatant is purified as necessary (for example, centrifugation, antibody (for example, on the membrane of extracellular vesicles).
  • a soluble protein is used as the above-mentioned (A) and (B) (or (D) instead of (A) and (B)) and, in some cases, as the protein of (C), for example, the following method.
  • Extracellular vesicles are then obtained from the desired cells, for example by known methods, by the methods described herein, or by similar methods.
  • the obtained extracellular vesicle is reacted with one or more of the above-mentioned soluble proteins in a desired solvent under desired conditions (for example, described in JP-A-2018-104341). You may refer to the method). This operation is performed until the soluble protein of (A) and (B) (or (D) instead of (A) and (B)) and optionally (C) is contained in the membrane of the extracellular vesicle.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described in the present specification can be obtained by carrying out the procedure while appropriately changing the conditions.
  • a soluble protein is used as the above-mentioned (A) and (B) (or (D) instead of (A) and (B)) and, in some cases, as the protein of (C), for example, the following method.
  • Tags for example, His tag, FLAG tag, PNE tag of SEQ ID NO: 79, etc., which may be the same tag or all different types of tags
  • An extracellular vesicle is then obtained from the desired cell, for example by a known method, by a method described herein, or by a method similar thereto, to which an antibody against the tag or its antigen binding.
  • Sex fragments eg, scFv, Fab or nanobody, eg, anti-PNE tag nanobody of SEQ ID NO: 83
  • Sex fragments eg, scFv, Fab or nanobody, eg, anti-PNE tag nanobody of SEQ ID NO: 83
  • An antibody against the tag or an antigen-binding fragment thereof binds to the N-terminal side or C-terminal side of the membrane protein that can be expressed on the membrane of the outer vesicle or the transmembrane domain thereof.
  • a polynucleotide encoding a fusion protein eg, a fusion protein of an anti-PNE tag nanobody (SEQ ID NO: 83), CD8a (SEQ ID NO: 85), and CD81 (SEQ ID NO: 15) of SEQ ID NO: 89) (eg, sequence).
  • the obtained transformed cell is cultured or the like, and extracellular vesicles are collected by the above-mentioned method or the like.
  • a protein containing a tagged soluble (A) and (B), and optionally (C) protein and an antibody against the tag or an antigen-binding fragment thereof (eg, scFv, Fab or Nanobody) is applied to the membrane.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein may be obtained by mixing the containing extracellular vesicles under desired conditions.
  • transformation is performed using a combination of polynucleotides encoding the fusion proteins (A) to (G) described above, and the obtained transformed cells are used to obtain the antigen-presenting extracellular vesicles described in the specification. You may get it.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described in the present specification may be obtained by a method combining two or more of the above-mentioned methods.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are used instead of (A) and (B) (or (A) and (B) by techniques such as flow cytometry, ELISA, Western blotting, etc. It may be confirmed that the protein of D)) and, in some cases (C), is contained in the membrane.
  • a method for producing the antigen-presenting extracellular vesicles described herein obtained by culturing the transformed cells described herein.
  • a method comprising collecting the culture supernatant.
  • it is a method for producing the antigen-presenting extracellular vesicles described herein.
  • To transform (preferably at the same time), Provided are a method comprising culturing the obtained transformed cells and collecting the obtained culture supernatant.
  • a method for producing the antigen-presenting extracellular vesicles described herein (Iv) A fusion protein containing the antigen-presenting MHC molecule of (D) described herein and at least one T cell-stimulating cytokine and capable of presenting the antigen and the T-cell-stimulating cytokine extramembranely. Simultaneously in a cell a single vector or a combination of two or more vectors comprising the cytokine encoding and optionally (iii) the polynucleotide encoding the fusion protein of (C) described herein.
  • a method comprising culturing the obtained transformed cells and collecting the obtained culture supernatant.
  • a method for producing the antigen-presenting extracellular vesicles described herein (V) The antigen-presenting MHC molecule of (E) described herein and at least one T cell-stimulating cytokine and T-cell co-stimulating molecule are contained, and the antigen and the T cell-stimulating cytokine are put out of the membrane.
  • a vector which comprises a polynucleotide encoding a presentable fusion protein, into a cell.
  • Provided are a method comprising culturing the obtained transformed cells and collecting the obtained culture supernatant.
  • an antigen-presenting extracellular vesicle obtained from the culture supernatant described herein is provided.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles are: (I) A polynucleotide encoding a fusion protein or protein complex of (A) described herein, and (ii) a polynucleotide encoding a fusion protein of (B) described herein, and , And optionally (iii) a single vector or a combination of two or more vectors comprising the polynucleotide encoding the fusion protein of (C) described herein simultaneously or sequentially (iiii).
  • To transform (preferably at the same time), Provided are antigen-presenting extracellular vesicles obtained by a method including culturing the obtained transformed cells and collecting the obtained culture supernatant.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles (Iv) A fusion protein containing the antigen-presenting MHC molecule of (D) described herein and at least one T cell-stimulating cytokine and capable of presenting the antigen and the T-cell-stimulating cytokine extramembranely. Simultaneously in a cell a single vector or a combination of two or more vectors comprising the cytokine encoding and optionally (iii) the polynucleotide encoding the fusion protein of (C) described herein.
  • antigen-presenting extracellular vesicles obtained by a method including culturing the obtained transformed cells and collecting the obtained culture supernatant.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles (V) The antigen-presenting MHC molecule of (E) described herein and at least one T cell-stimulating cytokine and T-cell co-stimulating molecule are contained, and the antigen and the T cell-stimulating cytokine are put out of the membrane.
  • To transform cells with a polynucleotide encoding a presentable fusion protein Provided are antigen-presenting extracellular vesicles obtained by a method including culturing the obtained transformed cells and collecting the obtained culture supernatant.
  • a composition comprising the antigen-presenting extracellular vesicles described herein, a polynucleotide and / or a vector containing the same, and / or a transformed cell and / or a culture supernatant thereof.
  • a pharmaceutical composition comprising the antigen-presenting extracellular vesicles described herein or the culture supernatant described herein.
  • compositions described herein are, but are not limited to, for example, excipients, lubricants, binders, disintegrants, pH regulators, solvents, etc.
  • Additives such as solubilizers, suspending agents, tonicity agents, buffers, soothing agents, preservatives, antioxidants, colorants, sweeteners, surfactants and the like can be included.
  • solubilizers such as solubilizers, suspending agents, tonicity agents, buffers, soothing agents, preservatives, antioxidants, colorants, sweeteners, surfactants and the like can be included.
  • these additives are preferably pharmacologically acceptable carriers.
  • composition described in the present specification contains a polynucleotide, it is not essential, but preferably contains a carrier suitable for DD (drug delivery) of nucleic acid, and lipid nanoparticles (LNP) are used as these carriers.
  • DD drug delivery
  • LNP lipid nanoparticles
  • polymers eg PEI
  • compositions for example, pharmaceutical compositions
  • pharmaceutical compositions are prepared by a method known per se, for example, tablets, coated tablets, orally disintegrating tablets, chewable agents, pills, granules. , Fine granules, powders, hard capsules, soft capsules, liquids (including, for example, syrups, injections, lotions, etc.), suspending agents, emulsions, jellies, patches, ointments, creams, It can be formulated as an inhalant, a suppository, or the like. These may be oral preparations or parenteral preparations.
  • the formulation may further contain other beneficial ingredients (eg, other therapeutically beneficial ingredients), depending on its purpose.
  • the composition according to one embodiment of the present invention can enhance acquired immunity (cell-mediated immunity and / or humoral immunity) against a specific antigen, and is infected as an antigen.
  • a peptide derived from a pathogen pathogen, virus, etc.
  • the composition according to one embodiment of the present invention enables the induction of inflammatory cytokines and activates innate immunity (mobilizes and activates neutrophils, monocytes, macrophages, etc.), as shown in Test Examples. It is possible to eliminate infectious pathogens by feeding on pathogens and the like, and it can be used as a pharmaceutical composition for treating or preventing infectious diseases caused by infectious pathogens.
  • antigen-presenting extracellular vesicles described herein preferably antigen-presenting extracellular vesicles containing MHC class I-binding antigenic peptides and MHC class I molecules on the membrane
  • Vectors and / or transformed cells and / or culture supernatants thereof, or compositions containing them can be useful for treating or preventing cancer.
  • antigen-presenting extracellular vesicles, polynucleotides and / or vectors containing them, and / or transformed cells and / or transformed cells described herein for treating or preventing cancer. / Or a culture supernatant thereof, or a composition containing these (for example, a pharmaceutical composition) is provided.
  • the antigen-presenting extracellular vesicle or the like which is one embodiment of the present invention, can proliferate and activate the antigen-specific cytotoxic T cells to be used, and can be used as an antigen.
  • the proliferated and activated cytotoxic T cells can kill the cancer cells by recognizing and attacking the cancer cells.
  • antigen-presenting extracellular vesicles, polynucleotides and / or vectors containing them, as described herein, and / or vectors for producing a medicament for treating or preventing cancer is provided.
  • transformed cells and / or a culture supernatant thereof, or a composition containing them for example, a pharmaceutical composition
  • a method for treating or preventing cancer in which an effective amount of an antigen-presenting extracellular vesicle, polynucleotide described herein, is given to a subject in need thereof. And / or a vector containing the same, and / or a method comprising administering a transformed cell and / or a culture supernatant thereof, or a composition containing the same.
  • Cancers include, but are not limited to, solid cancers and blood cancers, such as small cell lung cancer, non-small cell lung cancer, breast cancer, esophageal cancer, stomach cancer, small intestinal cancer, and large intestine. Cancer, colon cancer, rectal cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, bone marrow cancer, kidney cancer (including renal cell cancer, etc.), parathyroid cancer, adrenal cancer, urinary tract cancer, liver cancer, bile duct cancer, cervical cancer, ovary Cancer (for example, its tissue type is serous gland cancer, mucinous gland cancer, clear cell gland cancer, etc.), testis cancer, bladder cancer, genital cancer, penis cancer, thyroid cancer, head and neck cancer, craniopharyngeal cancer, pharyngeal cancer , Tongue cancer, skin cancer, merkel cell cancer, melanoma (malignant melanoma, etc.), epithelial cancer, squamous epithelial cell cancer, basal cell cancer, childhood cancer, cancer of unknown primary origin, fibro
  • immune checkpoint inhibitors can be used in combination to treat or prevent cancer.
  • Immune checkpoint inhibitors may be administered to patients simultaneously or sequentially, or may be included in the medicament according to the present invention.
  • Immune checkpoint inhibitors include PD-1 inhibitors (eg, anti-PD-1 antibodies such as nibulumab, bembrolidimab), CTLA-4 inhibitors (eg, anti-CTLA-4 antibodies such as ipilimumab), PD-L1 inhibitors.
  • PD-1 inhibitors eg, anti-PD-1 antibodies such as nibulumab, bembrolidimab
  • CTLA-4 inhibitors eg, anti-CTLA-4 antibodies such as ipilimumab
  • PD-L1 inhibitors eg, anti-PD-L1 antibodies such as durvalumab, atezolizumab, avelumab
  • anti-PD-L1 antibodies such as durvalumab, atezolizumab, avelumab
  • the membrane protein or its transmembrane domain or the membrane of the extracellular vesicle capable of localizing the antibody or the active fragment thereof to the membrane of the extracellular vesicle. It may be present on the membrane of the extracellular vesicle according to the present invention by binding to a protein capable of binding to or a membrane binding domain thereof.
  • the combined use of such immune checkpoint inhibitors enhances cytotoxicity against cancer cells.
  • Antigen-presenting extracellular vesicles described herein preferably antigen-presenting extracellular vesicles containing MHC class II-binding antigenic peptides and MHC class II molecules on the membrane, their polynucleotides and / or these.
  • Vectors containing, and / or transformed cells and / or culture supernatants thereof, or compositions containing them, may be useful for treating or preventing autoimmune diseases.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles according to one embodiment of the present invention can proliferate and activate the antigen-specific regulatory T cells (Tregs) to be used, and are used. When an autoantigen peptide is used as an antigen, the proliferated and activated Treg induces immune tolerance to the self-antigen, and the autoimmune disease can be treated or prevented.
  • Tregs antigen-specific regulatory T cells
  • antigen-presenting extracellular vesicles, polynucleotides and / or vectors containing them, and / or transformations described herein for treating or preventing autoimmune disorders A cell and / or a culture supernatant thereof, or a composition containing these (for example, a pharmaceutical composition) is provided.
  • an antigen-presenting extracellular vesicle, polynucleotide and / or a vector comprising the antigen-presenting extracellular vesicles, polynucleotides and / or vectors described herein for producing a medicament for treating or preventing an autoimmune disease.
  • a composition containing them eg, a pharmaceutical composition
  • an effective amount of an antigen-presenting extracellular vesicle described herein a method for treating or preventing an autoimmune disease, for a subject in need thereof.
  • methods comprising administering a polynucleotide and / or a vector containing the same, and / or a transformed cell and / or a culture supernatant thereof, or a composition containing the same.
  • Autoimmune disorders include, but are not limited to, asthma, psoriasis, systemic lupus erythematosus, Guillain-Barré syndrome, Sjogren's syndrome, multiple sclerosis, myasthenia gravis, pernicious anemia, Graves' disease, Hashimoto. Examples thereof include thyroiditis, type I diabetes, Crohn's disease, inflammatory bowel disease, and rheumatoid arthritis.
  • Antigen-presenting extracellular vesicles described herein preferably antigen-presenting extracellular vesicles containing MHC class II-binding antigenic peptides and MHC class II molecules on the membrane, their polynucleotides and / or these.
  • Vectors containing and / or transformed cells and / or culture supernatants thereof, or compositions containing them (eg, pharmaceutical compositions) can be useful for treating or preventing allergic diseases.
  • the antigen-presenting extracellular vesicle or the like which is one embodiment of the present invention, can proliferate and activate the antigen-specific regulatory T cells (Treg) to be used, and is used.
  • Treg antigen-specific regulatory T cells
  • the proliferated and activated Treg induces immune tolerance to the allergen, and allergic diseases can be treated or prevented.
  • antigen-presenting extracellular vesicles, polynucleotides and / or vectors containing them, and / or transformations described herein for treating or preventing allergic diseases A cell and / or a culture supernatant thereof, or a composition containing these (for example, a pharmaceutical composition) is provided.
  • an antigen-presenting extracellular vesicle, polynucleotide and / or a vector comprising the antigen-presenting extracellular vesicles, polynucleotides and / or vectors described herein for producing a medicament for treating or preventing an allergic disease.
  • a medicament for treating or preventing an allergic disease.
  • transformed cells and / or their culture supernatants, or compositions containing them eg, pharmaceutical compositions.
  • an effective amount of an antigen-presenting extracellular vesicle described herein a method for treating or preventing an allergic disease, to a subject in need thereof.
  • methods comprising administering a polynucleotide and / or a vector containing the same, and / or a transformed cell and / or a culture supernatant thereof, or a composition containing the same.
  • Allergic diseases include, but are not limited to, allergic rhinitis, atopic dermatitis, allergic asthma, allergic conjunctivitis, allergic gastroenteritis, food allergies, drug allergies, urticaria, etc. Can be mentioned.
  • mice such as mice, rats, hamsters and guinea pigs
  • primates such as rabbits
  • Goats, horses, sheep and other hoofed animals dogs, cats and other cats
  • humans monkeys, red-tailed monkeys, crab monkeys, marmosets, orangutans, chimpanzees and other primates
  • they are preferably animals, more preferably rodents or primates, and even more preferably mice or humans.
  • the dose of the substance may be appropriately determined in consideration of the sex, age, weight, health condition, degree of medical condition or diet of the subject to be administered; administration time; administration method; combination with other drugs; and other factors. can.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles described herein are obtained from in vitro, ex vivo, and / or T cells (but not limited to, for example, peripheral blood, spleen, etc.). By contacting with T cells or T cell populations), T cells can be activated, proliferated, differentiated, etc. against specific antigens.
  • T cells are activated and proliferated against a specific antigen, comprising contacting the antigen-presenting extracellular vesicles described herein with T cells in vitro or ex vivo. And / or provide a method for differentiating.
  • T cells obtained by the method described above are provided.
  • the T cells obtained by the above method may be administered to a subject in order to treat and / or prevent a disease (for example, cancer, autoimmune disease, allergic disease, etc.).
  • a disease for example, cancer, autoimmune disease, allergic disease, etc.
  • plasmid 1 Using the pCAG-puro vector, a vector for expressing an MHC class I molecule capable of presenting an antigen extracellularly on the membrane of extracellular vesicles was prepared.
  • the established cloning technique encodes a polynucleotide (SEQ ID NO: 2) encoding a ⁇ 2 microglobulin signal peptide (amino acids 1 to 20; SEQ ID NO: 1) and an OVA peptide (SEQ ID NO: 3) which is a model antigen peptide.
  • the full-length sequence of ⁇ 2 microglobulin excluding the polynucleotide (SEQ ID NO: 4), peptide linker (amino acid sequence: SEQ ID NO: 5, polynucleotide: SEQ ID NO: 6), and signal peptide (amino acids 21 to 119; SEQ ID NO: 7) is encoded.
  • a single chain trimer consisting of a polynucleotide encoding (SEQ ID NO: 10) was prepared (amino acid sequence: SEQ ID NO: 13; polynucleotide: SEQ ID NO: 14).
  • a polynucleotide SEQ ID NO: 18; corresponding amino acid sequence: sc SEQ ID NO: 17 was inserted into the pCAG-puro vector (FIGS. 1A, 1B: hereinafter, sc-Trimer-CD81).
  • a polynucleotide (sequence) encoding the full-length sequence of CD80 (amino acids 1 to 306; SEQ ID NO: 19) is used.
  • IL-2 which is one of the T cell-stimulating cytokines
  • CD80-CD9 a pCAG-puro or pMX vector
  • the full-length sequence excluding the signal peptide of IL-2 (amino acids 21 to 169; SEQ ID NO:
  • the polynucleotide encoding 25) (SEQ ID NO: 26) is located between amino acids 170C and 171I in the large extracellular loop of the tetraspanin mouse CD63 (amino acids 1-238: SEQ ID NO: 27; polynucleotide: SEQ ID NO: 28).
  • plasmid 2 Using the pCAG-puro vector, a vector for expressing an MHC class II molecule capable of presenting an antigen extracellularly on the membrane of extracellular vesicles was prepared.
  • the established cloning technique encodes a polynucleotide (SEQ ID NO: 34) encoding a signal peptide (amino acids 1-27; SEQ ID NO: 33) of the MHC class II ⁇ chain, and an OVA peptide (SEQ ID NO: 35) which is a model antigen peptide.
  • polypeptide (SEQ ID NO: 38) encoding the full-length sequence (amino acids 28-265; SEQ ID NO: 37) of the MHC class II ⁇ chain excluding the polynucleotide (SEQ ID NO: 36) and the signal peptide is encoded by the peptide linker (SEQ ID NO: 39).
  • a single-chain dimer (sc-Dimer) was prepared by connecting with a polypeptide (SEQ ID NO: 40) to be used (amino acid sequence: SEQ ID NO: 41; polynucleotide: SEQ ID NO: 42).
  • a polynucleotide (SEQ ID NO: 44; corresponding amino acid sequence: SEQ ID NO: 43) was inserted into the pCAG-puro vector (Fig. 1G, 1H: hereinafter, sc-Dimer-CD81).
  • TGF- ⁇ 1 which is one of the T cell-stimulating cytokines
  • TGF in which the three Cs at positions 33, 223, and 225 of the LAP domain were changed to S.
  • IL-4 which is one of the T cell-stimulating cytokines
  • the full-length sequence excluding the signal peptide of IL-4 (amino acids 21 to 140; SEQ ID NO: The polynucleotide encoding 53) (SEQ ID NO: 54) is located between amino acids 177S and 178G in the large extracellular loop of the tetraspanin mouse CD81 (amino acids 1-236: SEQ ID NO: 15; polynucleotide: SEQ ID NO: 16).
  • sc-Dimer-CD81-IL-12p40 A polynucleotide (SEQ ID NO: 92) encoding a protein (SEQ ID NO: 91) in which CD81 and IL-12p40, which is a subunit of IL-12, which is a T cell-stimulating cytokine, are fused to the above sc-Dimer is pCAG-puro.
  • a vector expressing the fusion protein was prepared by inserting into the vector.
  • IL-12p35 A polynucleotide (SEQ ID NO: 98) encoding another subunit of IL-12, IL-12p35 (SEQ ID NO: 97), is inserted into and inserted into a pCAG-puro or pMX vector to provide IL-12p35. A vector to be expressed was prepared.
  • CD81-IL-6 In order to express IL-6, which is one of the T cell-stimulating cytokines, on the membrane of extracellular vesicles, a polynucleotide encoding the full-length sequence (SEQ ID NO: 99) excluding the signal peptide of IL-6 (SEQ ID NO: 99). 100) is introduced into a polynucleotide encoding the extracellular loop of CD81, which is tetraspanin, and the polynucleotide (SEQ ID NO: 102) encoding the CD81-IL-6 fusion protein (SEQ ID NO: 101) is pCAG-puro or A vector expressing the fusion protein was prepared by inserting into a pMX vector and inserting into.
  • hCD80-hCD9 In order to express human CD80, which is one of the T cell costimulatory molecules, on the membrane of extracellular vesicles, a polynucleotide (sequence number 107) encoding a fusion protein (SEQ ID NO: 107) of human CD80 and human CD9, which is tetraspanin, is used. No. 108) was inserted into a pCAG-puro or pMX vector to prepare a vector expressing the fusion protein.
  • sc-Trimer-CD81-IL-2 In order to express IL-2, which is one of the T cell-stimulating cytokines, on the membrane of extracellular vesicles, a polynucleotide encoding a fusion peptide of CD81-IL2 was prepared in the same manner as CD81-IL-4 described above. , The polynucleotide sequence and the nucleotide encoding sc-Trimer- are combined to prepare a polynucleotide encoding sc-Trimer-CD81-IL-2 (SEQ ID NO: 135) (SEQ ID NO: 136), and pCAG-puro. Alternatively, it was inserted into a pMX vector to prepare a vector expressing the fusion protein.
  • hsc-Trimer-hCD81 Using the above sc-Trimer-CD81 as a human gene sequence (HLA-A2402 was used as the sequence of MHC-I), a polynucleotide (SEQ ID NO: 132) encoding hsc-Trimer-hCD81 (SEQ ID NO: 131) was used. It was prepared and inserted into a pCAG-puro or pMX vector to prepare a vector expressing the fusion protein.
  • SARS-CoV2sc-Trimer-hCD81 Using the SARS-CoV-2 peptide (amino acid sequence: SEQ ID NO: 141; polynucleotide sequence: SEQ ID NO: 142) as an antigen and HLA-A0201 as the MHC molecule, the antigen-presenting MHC molecule (SARS-CoV2sc-Trimer; amino acid sequence) : A polynucleotide encoding SEQ ID NO: 147) is prepared and further combined with a polynucleotide encoding hCD81 to encode a polynucleotide encoding SARS-CoV2sc-Trimer-hCD81 (SEQ ID NO: 149) (sequence). No.
  • the prepared polynucleotide was inserted into a pCAG-puro or pMX vector to prepare a vector expressing the fusion protein.
  • hCD63-hIL-2 The above CD63-IL-2 was prepared using a human gene sequence.
  • a polynucleotide (SEQ ID NO: 116) encoding hCD63-hIL-2 (SEQ ID NO: 115) was prepared and inserted into a pCAG-puro or pMX vector to prepare a vector expressing the fusion protein.
  • CD63-Akaluc As a negative control, CD63 and Akaluc luciferase were fused to prepare a polynucleotide (SEQ ID NO: 140) for localizing the AlkaLuc fusion protein (SEQ ID NO: 139) in extracellular vesicles, which was inserted into the pCAG-puro or pMX vector. Then, a vector expressing the fusion protein was prepared.
  • Example 1 Antigen-presenting extracellular vesicle HEK293T cells containing MHC class I molecule and T cell-stimulating cytokine in the membrane were seeded in a cell culture dish, and 2% fetal bovine serum and penicillin / streptomycin were added to the Dalveco-modified Eagle. It was cultured in a medium. Approximately 50% confluence cells were subjected to plasmids (pCAG vectors encoding sc-Trimer-CD81 and CD63-IL-2, respectively) according to the manufacturer's instructions using Polyethylenimine "Max" (manufactured by Polysciences). Two were transfected at the same time.
  • plasmids pCAG vectors encoding sc-Trimer-CD81 and CD63-IL-2, respectively
  • the medium was changed 3 hours after transfection and 24 hours after transfection with Dalveco-modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum from which exosomes had been removed and penicillin / streptomycin. After 72 hours of transfection, the supernatant was collected, passed through a 0.22 ⁇ m filter and centrifuged at 300 g for 5 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 2,000 g for 20 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 10,000 g for 30 minutes.
  • the supernatant was collected, the supernatant was centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet was washed with PBS. PBS was added to the pellet, centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet suspended in 100 ⁇ L PBS was used as the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 1 (Fig.). 2A).
  • the concentration of extracellular vesicles was measured using a BCA protein assay kit (manufactured by Thermo Fisher Scientific) according to the manufacturer's instructions.
  • Example 2 Antigen-presenting extracellular vesicle HEK293T cells containing MHC class I molecule, T cell co-stimulatory molecule, and T cell-stimulating cytokine in the membrane were seeded in a cell culture dish, and 2% bovine fetal serum and penicillin / The cells were cultured in a Dalveco-modified eagle medium supplemented with streptomycin. In cells of about 50% confluence, follow the manufacturer's instructions and apply the plasmids (pCAG vectors encoding sc-Trimer-CD81, CD80-CD9, and CD63-IL-2, respectively) prepared above to Polyethylenimine "Max" ( Three were transfected simultaneously using Polysciences).
  • the medium was changed 3 hours after transfection and 24 hours after transfection with Dalveco-modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum from which exosomes had been removed and penicillin / streptomycin. After 72 hours of transfection, the supernatant was collected, passed through a 0.22 ⁇ m filter and centrifuged at 300 g for 5 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 2,000 g for 20 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 10,000 g for 30 minutes.
  • the supernatant was collected, the supernatant was centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet was washed with PBS. PBS was added to the pellet, centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet suspended in 100 ⁇ L PBS was used as the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 2 (Fig.). 2B).
  • the concentration of antigen-presenting extracellular vesicles was measured using a BCA protein assay kit (manufactured by Thermo Fisher Scientific) according to the manufacturer's instructions.
  • Example 3 Antigen-presenting extracellular vesicles containing MHC class II molecules, T cell co-stimulatory molecules, and T cell-stimulating cytokines in the membrane 1 HEK293T cells were seeded in cell culture dishes and cultured in Dulbecco's modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum and penicillin / streptomycin. Approximately 50% confluence cells were loaded with the plasmids prepared above (pCAG vector encoding sc-Dimer-CD81, MHC class II ⁇ chain, CD80-CD9, and CD63-IL-2, respectively) according to the manufacturer's instructions.
  • the supernatant was collected, the supernatant was centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet was washed with PBS. PBS was added to the pellet, centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet suspended in 100 ⁇ L PBS was used as an antigen-presenting extracellular vesicle of Example 3 (Fig.). 2C).
  • the concentration of antigen-presenting extracellular vesicles was measured using a BCA protein assay kit (manufactured by Thermo Fisher Scientific) according to the manufacturer's instructions.
  • Example 4 Antigen-presenting extracellular vesicles containing MHC class II molecules, T cell co-stimulatory molecules, and T cell-stimulating cytokines in the membrane 2 HEK293T cells were seeded in cell culture dishes and cultured in Dulbecco's modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum and penicillin / streptomycin.
  • a pCAG vector encoding plasmids sc-Dimer-CD81, MHC class II ⁇ chain, CD80-CD9, TGF- ⁇ -MFGE8, and CD63-IL-2, respectively, in cells of approximately 50% confluence, according to the manufacturer's instructions.
  • the supernatant was collected, the supernatant was centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet was washed with PBS. PBS was added to the pellet, centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet suspended in 100 ⁇ L PBS was used as the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 4 (Fig.). 2D).
  • the concentration of antigen-presenting extracellular vesicles was measured using a BCA protein assay kit (manufactured by Thermo Fisher Scientific) according to the manufacturer's instructions.
  • Example 5 Antigen-presenting extracellular vesicles containing MHC class II molecules, T cell co-stimulatory molecules, and T cell-stimulating cytokines in the membrane 3 HEK293T cells were seeded in cell culture dishes and cultured in Dulbecco's modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum and penicillin / streptomycin. Approximately 50% confluence cells were loaded with the plasmids prepared above (pCAG vector encoding sc-Dimer-CD81, MHC class II ⁇ chain, CD80-CD9, and CD81-IL-4, respectively) according to the manufacturer's instructions.
  • the supernatant was collected, the supernatant was centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet was washed with PBS. PBS was added to the pellet, centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet suspended in 100 ⁇ L PBS was used as an antigen-presenting extracellular vesicle of Example 5 (Fig.). 2E).
  • the concentration of antigen-presenting extracellular vesicles was measured using a BCA protein assay kit (manufactured by Thermo Fisher Scientific) according to the manufacturer's instructions.
  • Control extracellular vesicle HEK293T cells were seeded in a cell culture dish and cultured in Dulbecco-modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum and penicillin / streptomycin. The medium was replaced with cells of approximately 50% confluence, and after 24 hours the medium was replaced with Dulbecco-modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum from which exosomes had been removed and penicillin / streptomycin. After 48 hours of replacement with the medium from which exosomes had been removed, the supernatant was collected, passed through a 0.22 ⁇ m filter, and then centrifuged at 300 g for 5 minutes.
  • the supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 2,000 g for 20 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 10,000 g for 30 minutes. The supernatant was collected, the supernatant was centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet was washed with PBS. PBS was added to the pellet, centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet suspended in 100 ⁇ L PBS was used as the extracellular vesicle of Reference Example 1. The concentration of antigen-presenting extracellular vesicles was measured using a BCA protein assay kit (manufactured by Thermo Fisher Scientific) according to the manufacturer's instructions.
  • the medium was changed 3 hours after transfection and 24 hours after transfection with Dalveco-modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum from which exosomes had been removed and penicillin / streptomycin. After 72 hours of transfection, the supernatant was collected, passed through a 0.22 ⁇ m filter and centrifuged at 300 g for 5 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 2,000 g for 20 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 10,000 g for 30 minutes.
  • the supernatant was collected, the supernatant was centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet was washed with PBS. PBS was added to the pellet, centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet suspended in 100 ⁇ L PBS was used as the extracellular vesicle of Reference Example 2.
  • the concentration of extracellular vesicles was measured using a BCA protein assay kit (manufactured by Thermo Fisher Scientific) according to the manufacturer's instructions.
  • the medium was changed 3 hours after transfection and 24 hours after transfection with Dalveco-modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum from which exosomes had been removed and penicillin / streptomycin. After 72 hours of transfection, the supernatant was collected, passed through a 0.22 ⁇ m filter and centrifuged at 300 g for 5 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 2,000 g for 20 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 10,000 g for 30 minutes.
  • the supernatant was collected, the supernatant was centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet was washed with PBS. PBS was added to the pellet, centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet suspended in 100 ⁇ L PBS was used as the extracellular vesicle of Reference Example 3.
  • the concentration of extracellular vesicles was measured using a BCA protein assay kit (manufactured by Thermo Fisher Scientific) according to the manufacturer's instructions.
  • Extracellular HEK293T cells containing T cell-stimulating cytokines in the membrane were seeded in a cell culture dish and cultured in Dalveco-modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum and penicillin / streptomycin. Approximately 50% confluence cells were transfected with a plasmid (pCAG vector encoding CD63-IL-2) using Polyethylenimine "Max" (Polysciences) according to the manufacturer's instructions. The medium was changed 3 hours after transfection and 24 hours after transfection with Dalveco-modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum from which exosomes had been removed and penicillin / streptomycin.
  • the supernatant was collected, passed through a 0.22 ⁇ m filter and centrifuged at 300 g for 5 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 2,000 g for 20 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 10,000 g for 30 minutes. The supernatant was collected, the supernatant was centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet was washed with PBS. PBS was added to the pellet, centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet suspended in 100 ⁇ L PBS was used as the extracellular vesicle of Reference Example 4. The concentration of extracellular vesicles was measured using a BCA protein assay kit (manufactured by Thermo Fisher Scientific) according to the manufacturer's instructions.
  • the medium was changed 3 hours after transfection and 24 hours after transfection with Dalveco-modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum from which exosomes had been removed and penicillin / streptomycin. After 72 hours of transfection, the supernatant was collected, passed through a 0.22 ⁇ m filter and centrifuged at 300 g for 5 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 2,000 g for 20 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 10,000 g for 30 minutes.
  • the supernatant was collected, the supernatant was centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet was washed with PBS. PBS was added to the pellet, centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet suspended in 100 ⁇ L PBS was used as the extracellular vesicle of Reference Example 5.
  • the concentration of extracellular vesicles was measured using a BCA protein assay kit (manufactured by Thermo Fisher Scientific) according to the manufacturer's instructions.
  • Test Example 1-1 Flow cytometry analysis of fusion protein contained in the membrane of extracellular vesicles
  • the antigen-presenting extracellular vesicles of Example 2 were subjected to PS Capture TM exosome flow cytometry kit (Fujifilm Wakojun). Immunostaining was performed according to the manufacturer's instructions (manufactured by Yakuhin Co., Ltd.). The antibodies used for staining are as follows (staining time: 15 minutes, temperature: 4 ° C.). After staining, the expression of each fusion protein was detected with a flow cytometer FACSCantoII (manufactured by BD Bioscience).
  • Example 2 contains MHC class I molecules, CD80, and IL-2 that present OVA antigens in their membranes (FIG. 3A). ..
  • Test Example 1-2 Flow cytometry analysis of fusion protein contained in the membrane of extracellular vesicles
  • the antigen-presenting extracellular vesicles of Example 3 were subjected to PS Capture TM exosome flow cytometry kit (Fujifilm Wakojun). Immunostaining was performed according to the manufacturer's instructions (manufactured by Yakuhin Co., Ltd.). The antibodies used for staining are as follows. After staining, the expression of each fusion protein was detected with a flow cytometer FACSCantoII (manufactured by BD Bioscience).
  • Test Example 1-3 Flow cytometry analysis of fusion protein contained in the membrane of extracellular vesicles
  • the antigen-presenting extracellular vesicles of Example 4 were subjected to PS Capture TM exosome flow cytometry kit (Fujifilm Wakojun). Immunostaining was performed according to the manufacturer's instructions (manufactured by Yakuhin Co., Ltd.). The antibodies used for staining are as follows. After staining, the expression of each fusion protein was detected with a flow cytometer FACSCantoII (manufactured by BD Bioscience).
  • Example 4 contains MHC class II molecules, CD80, IL-2, and TGF- ⁇ 1 that present OVA antigens in their membranes. (Fig. 3C).
  • Test Example 1-4 Flow cytometry analysis of fusion protein contained in the membrane of extracellular vesicles
  • the antigen-presenting extracellular vesicles of Example 5 were subjected to PS Capture TM exosome flow cytometry kit (Fujifilm Wakojun). Immunostaining was performed according to the manufacturer's instructions (manufactured by Yakuhin Co., Ltd.). The antibodies used for staining are as follows. After staining, the expression of each fusion protein was detected with a flow cytometer FACSCantoII (manufactured by BD Bioscience).
  • Example 5 contains MHC class II molecules, CD80, and IL-4 that present OVA antigens in their membranes (Fig. 3D). ..
  • Test Example 2 Activation experiment of OVA-specific CD8-positive T cells (OT-1 T cells) by antigen-presenting extracellular vesicles in vitro Antigen-presenting extracellular vesicles activate antigen-specific CD8-positive T cells
  • Lymph nodes removed from OT-1 mice which are OVA-reactive TCR transgenic mice, were disrupted on a 100 ⁇ m filter to obtain a lymph node cell suspension.
  • Cell suspensions were stained with Cell Race Violet (manufactured by Thermo Fisher Scientific), a cell proliferation assay reagent, according to the manufacturer's instructions.
  • the antibodies used for staining are as follows (staining time: 15 minutes, temperature: 4 ° C.). After staining, the luminescence intensity of CellTrace Violet, which is a cell proliferation assay reagent in OT-1 T cells, was detected by a flow cytometer FACSCantoII (manufactured by BD Bioscience). -APC-conjugated anti-mouse CD8 antibody (53-6.7 Biolegend) -PE-conjugated anti-mouse TCR Vb5.1, 5.2 antibody (manufactured by MR9-4 Biolegend) The results are shown in FIG.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles of Examples 1 and 2 are a mixture of 3 types of extracellular vesicles of Reference Examples 2 to 4, or extracellular vesicles of Reference Examples 1, 2 and 5.
  • Antigen-specific CD8-positive T cells were significantly differentiated and / or proliferated as compared to (Fig. 4).
  • Test Example 3 Activation experiment of OVA-specific CD8-positive T cells (OT-1 T cells) by antigen-presenting extracellular vesicles in vivo Antigen-presenting extracellular vesicles activate antigen-specific CD8-positive T cells
  • Lymph nodes were removed from OT-1 mice, which are OVA-reactive TCR transgenic mice, and lymphocyte suspensions were prepared in the same manner as in Test Example 2. Lymph nodes were similarly removed from CD45.1 congenic mice to prepare a lymphocyte suspension. Each lymphocyte suspension was mixed at a ratio of 1: 1 and stained with CellTrace Violet, a cell proliferation assay reagent.
  • a 1 ⁇ 10 7 CellTrace Violet-stained mixed lymphocyte suspension suspended in PBS was transferred from the tail vein of CD45.1 / CD45.2 congenic mice.
  • a mixture with (manufactured by X Cell) (IL-2 / anti-IL-2 antibody complex) was transferred into CD45.1 / CD45.2 congenic mice from the tail vein.
  • lymph nodes were removed from recipient mice, lymphocyte suspensions were prepared, and immunostaining was performed.
  • the antibodies used for staining are as follows (staining time: 15 minutes, temperature: 4 ° C.). After staining, the luminescence intensity of CellTrace Violet, which is a cell proliferation assay reagent, in the transferred OT-1 T cells and wild-type CD8 T cells was detected by a flow cytometer FACSCantoII (manufactured by BD Bioscience).
  • Example 2 From the results of Test Example 3, the antigen-presenting extracellular vesicles of Example 2 were compared with the extracellular vesicles of Reference Example 1 in vivo to other CD8-positive T cells (antigen-nonspecific CD8-positive). It can be seen that antigen-specific CD8-positive T cells were significantly differentiated and / or proliferated with almost no activation of T cells) (FIG. 5). In addition, the antigen-presenting extracellular vesicles of Example 2 almost activated other CD8-positive T cells (antigen-nonspecific CD8-positive T cells) as compared with the IL-2 / anti-IL-2 antibody complex. Since it was not converted, it is possible that serious side effects such as cytokine storms are low (Fig. 5).
  • Test Example 4 Activation experiment of OVA-specific CD4-positive T cells (OT-2 T cells) by antigen-presenting extracellular vesicles in vitro Antigen-presenting extracellular vesicles activate antigen-specific CD4-positive T cells
  • Lymph nodes removed from OT-2 mice which are OVA-reactive CD4 TCR transgenic mice, were disrupted on a 100 ⁇ m filter to obtain a lymph node cell suspension.
  • Cell suspensions were stained with Cell Race Violet (manufactured by Thermo Fisher Scientific), a cell proliferation assay reagent, according to the manufacturer's instructions.
  • Example 3 in which 5 stained lymph node cells 2 ⁇ 10 were suspended in 200 ⁇ L of RPMI1640 medium containing 10% bovine fetal serum, 50 ⁇ M 2-mercaptoethanol and penicillin / streptomycin so that the final concentration was 10 ⁇ g / mL.
  • Antigen-presenting extracellular vesicles or extracellular vesicles of Reference Example 1 were added and cultured on a 96-well round bottom plate for 4 days. After 4 days, cells were harvested and immunostained.
  • the antibodies used for staining are as follows (staining time: 15 minutes, temperature: 4 ° C.).
  • Example 3 From the results of Test Example 4, the antigen-presenting extracellular vesicles of Example 3 significantly differentiated and / or proliferated antigen-specific CD4T cells as compared with the extracellular vesicles of Reference Example 1 (FIG. 6). ).
  • Test Example 5 Experiment to induce differentiation of OVA-specific CD4-positive T cells (OT-2 T cells) into regulatory T cells by antigen-presenting extracellular vesicles in vitro Antigen-presenting extracellular vesicles are antigen-specific CD4
  • the following tests were performed in vitro to determine whether positive T cells were induced into regulatory T cells (Tregs). Lymph nodes removed from OT-2 mice, which are OVA-reactive CD4 TCR transgenic mice, were disrupted on a 100 ⁇ m filter to obtain a lymph node cell suspension. Cell suspensions were stained with Cell Race Violet (manufactured by Thermo Fisher Scientific), a cell proliferation assay reagent, according to the manufacturer's instructions.
  • Cell Race Violet manufactured by Thermo Fisher Scientific
  • Example 4 in which 5 stained lymph node cells 2 ⁇ 10 were suspended in 200 ⁇ L of RPMI1640 medium supplemented with 10% bovine fetal serum, 50 ⁇ M 2-mercaptoethanol and penicillin / streptomycin to a final concentration of 10 ⁇ g / mL.
  • Antigen-presenting extracellular vesicles or extracellular vesicles of Reference Example 1 were added and cultured on a 96-well round bottom plate for 4 days. After 4 days, cells were harvested and extracellular immunostained.
  • the antibodies used for staining are as follows (staining time: 15 minutes, temperature: 4 ° C.).
  • intracellular immunostaining was performed using True-Nuclear Transcription Factor Buffer Set (manufactured by Biolegend) and an anti-mouse FOXP3 antibody according to the manufacturer's instructions. After intracellular staining, the expression of CD25 molecule and FOXP3 molecule, which are markers of regulatory T cells on OT-2 T cells, was detected with a flow cytometer FACSCantoII (manufactured by BD Bioscience).
  • Test Example 6 Experiment of in vitro differentiation of OVA-specific CD4-positive T cells (OT-2 T cells) into Th2T cells by antigen-presenting extracellular vesicles Antigen-presenting extracellular vesicles are antigen-specific CD4-positive T
  • the following tests were performed in vitro to determine whether the cells were induced to differentiate into Th2T cells. Lymph nodes removed from OT-2 mice, which are OVA-reactive CD4 TCR transgenic mice, were disrupted on a 100 ⁇ m filter to obtain a lymph node cell suspension. Cell suspensions were stained with Cell Race Violet (manufactured by Thermo Fisher Scientific), a cell proliferation assay reagent, according to the manufacturer's instructions.
  • Example 3 in which 5 stained lymph node cells 2 ⁇ 10 were suspended in 200 ⁇ L of RPMI1640 medium containing 10% bovine fetal serum, 50 ⁇ M 2-mercaptoethanol and penicillin / streptomycin so that the final concentration was 10 ⁇ g / mL.
  • 5 antigen-presenting extracellular vesicles or extracellular vesicles of Reference Example 1 were added, and the cells were cultured on a 96-well round bottom plate for 4 days. After 4 days, cells were harvested and extracellular immunostained.
  • the antibodies used for staining are as follows (staining time: 15 minutes, temperature: 4 ° C.).
  • the antigen-presenting extracellular vesicles of Examples 3 and 5 converted antigen-specific CD4-positive T cells into Th2 cells in vitro as compared with the extracellular vesicles of Reference Example 1. It can be seen that differentiation was induced (Fig. 8). Th2 cells secrete cytokines such as IL-4 and IL-5, activate differentiation and activation of naive B cells that recognize the same antigen, and promote antigen-specific IgE production induction (that is, activation of humoral immunity).
  • cytokines such as IL-4 and IL-5
  • Example 6 Antigen-presenting extracellular vesicles containing MHC class II molecules, T cell co-stimulatory molecules, and T cell-stimulating cytokines in the membrane 4 HEK293T cells were seeded in cell culture dishes and cultured in Dulbecco's modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum and penicillin / streptomycin.
  • a pCAG vector encoding the plasmids sc-Dimer-CD81-IL-12p40, MHC class II ⁇ chain, CD80-CD9, and IL-12p35, respectively, prepared above, in cells of approximately 50% confluence, according to the manufacturer's instructions.
  • the supernatant was collected, the supernatant was centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet was washed with PBS. PBS was added to the pellet, centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet suspended in 100 ⁇ L PBS was used as an antigen-presenting extracellular vesicle of Example 6.
  • the concentration of antigen-presenting extracellular vesicles was measured using a BCA protein assay kit (manufactured by Thermo Fisher Scientific) according to the manufacturer's instructions.
  • Test Example 1-5 Flow cytometry analysis of fusion protein contained in the membrane of extracellular vesicles
  • the antigen-presenting extracellular vesicles of Example 6 were subjected to PS Capture TM exosome flow cytometry kit (Fujifilm Wakojun). Immunostaining was performed according to the manufacturer's instructions (manufactured by Yakuhin Co., Ltd.). The antibodies used for staining are as follows. After staining, the expression of each fusion protein was detected with a flow cytometer FACSCantoII (manufactured by BD Bioscience).
  • Example 7 Antigen-presenting extracellular vesicles containing MHC class II molecules, T cell co-stimulatory molecules, and T cell-stimulating cytokines in the membrane 5 HEK293T cells were seeded in cell culture dishes and cultured in Dulbecco's modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum and penicillin / streptomycin. Encode approximately 50% confluence cells with the plasmids (sc-Dimer-CD81, MHC class II ⁇ chain, CD80-CD9, CD81-IL-6 and TGF- ⁇ -MFGE8) prepared above according to the manufacturer's instructions.
  • the pCAG vector was transfected with 5 plasmids simultaneously using Polyethylenimine “Max” (manufactured by Polysciences). The medium was changed 3-12 hours after transfection, and 24 hours after transfection, the medium was changed to Dulbecco-modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum from which exosomes had been removed and penicillin / streptomycin. After 72 hours of transfection, the supernatant was collected, passed through a 0.22 ⁇ m filter and centrifuged at 300 g for 5 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 2,000 g for 20 minutes.
  • the supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 10,000 g for 30 minutes. The supernatant was collected, the supernatant was centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet was washed with PBS. PBS was added to the pellet, centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet suspended in 100 ⁇ L PBS was used as the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 7. The concentration of antigen-presenting extracellular vesicles was measured using a BCA protein assay kit (manufactured by Thermo Fisher Scientific) according to the manufacturer's instructions.
  • Test Example 1-6 Flow cytometry analysis of fusion protein contained in the membrane of extracellular vesicles The antigen-presenting extracellular vesicles of Example 7 were subjected to PS Capture TM exosome flow cytometry kit (Fujifilm Wakojun). Immunostaining was performed according to the manufacturer's instructions (manufactured by Yakuhin Co., Ltd.). The antibodies used for staining are as follows. After staining, the expression of each fusion protein was detected with a flow cytometer FACSCantoII (manufactured by BD Bioscience).
  • Example 7 contains MHC class II molecules, CD80, IL-6, and TGFb that present OVA antigens in their membranes (Fig. 3F)
  • Example 8 Establishment of a cell line that stably expresses MHC class I molecule, T cell costimulatory molecule, and T cell stimulating cytokine and preparation of antigen-presenting extracellular vesicles
  • PLAT-A cells are seeded in a cell culture dish. The cells were cultured in Dalbecco-modified eagle medium containing 2% bovine fetal serum and penicillin / streptomycin. Approximately 50% confluence cells were each transfected with a pMX vector encoding CD80-CD9 or sc-Trimer-CD81-IL-2 using Polyethylenimine "Max" (manufactured by Polysciences) according to the manufacturer's instructions. ..
  • HEK293 cells were seeded in cell culture dishes and cultured in Dulbecco's modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum and penicillin / streptomycin.
  • DOTAP transfection reagent (Roche) was added to the virus particles incorporating the CD80-CD9 prepared above in cells having about 50% confluence according to the manufacturer's instructions, and added to HEK293 cells. The cells to which the virus particles were added were centrifuged at 2500 rpm for 3 hours.
  • CD80-positive cells were sorted by FACSMeloidy (manufactured by BD Bioscience). Sorted CD80-positive cells were cultured for 1 week, then seeded in a dish and cultured in Dulbecco-modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum and penicillin / streptomycin.
  • DOTAP transfection reagent was added to the virus particles in which sc-Trimer-CD81-IL-2 prepared above was incorporated into cells having about 50% confluence according to the manufacturer's instructions, and added to CD80-positive HEK293 cells. The cells to which the virus particles were added were centrifuged at 2500 rpm for 3 hours.
  • CD80-positive and MHCI-positive cells were sorted by FACSMelody (manufactured by BD Bioscience). Sorted cells were used as stable expression cells. Stable expression cells were seeded in a dish and cultured in Dulbecco's modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum and penicillin / streptomycin. The medium was replaced with Dulbecco-modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum from which exosomes had been removed and penicillin / streptomycin from the cell supernatant of approximately 50% confluence.
  • the supernatant was collected, passed through a 0.22 ⁇ m filter, and then centrifuged at 300 g for 5 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 2,000 g for 20 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 10,000 g for 30 minutes. The supernatant was collected, the supernatant was centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet was washed with PBS. PBS was added to the pellet, centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet suspended in 100 ⁇ L PBS was used as an antigen-presenting extracellular vesicle of Example 8.
  • Test Example 1-7 Flow cytometry analysis of fusion protein contained in the membrane of extracellular vesicles
  • the antigen-presenting extracellular vesicles of Example 8 were subjected to PS Capture TM exosome flow cytometry kit (Fujifilm Wakojun). Immunostaining was performed according to the manufacturer's instructions (manufactured by Yakuhin Co., Ltd.). The antibodies used for staining are as follows (staining time: 15 minutes, temperature: 4 ° C.). After staining, the expression of each fusion protein was detected with a flow cytometer FACSCantoII (manufactured by BD Bioscience).
  • Example 8 contains MHC class I molecules, CD80, and IL-2 that present OVA antigens in their membranes (Fig. 3G). ..
  • HEK293T cells lacking antigen-presenting extracellular vesicle B2m containing HLA class I molecule, human T cell co-stimulating molecule, and human T cell stimulating cytokine in the membrane were seeded in a cell culture dish, and 2 % The cells were cultured in Dalbecco modified eagle medium supplemented with fetal bovine serum and penicillin / streptomycin. Polyethylenimine “Max” the plasmids prepared above (pCAG vectors encoding HLAsc-Trimer-human CD81, human CD80-human CD9 and human CD63-IL2, respectively) in cells of approximately 50% confluence according to the manufacturer's instructions.
  • the medium was changed 3-12 hours after transfection, and 24 hours after transfection, the medium was changed to Dulbecco-modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum from which exosomes had been removed and penicillin / streptomycin.
  • the supernatant was collected, passed through a 0.22 ⁇ m filter and centrifuged at 300 g for 5 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 2,000 g for 20 minutes. The supernatant was collected and the supernatant was centrifuged at 10,000 g for 30 minutes.
  • the supernatant was collected, the supernatant was centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet was washed with PBS. PBS was added to the pellet, centrifuged at 100,000 g for 2 hours, the supernatant was removed, and the pellet suspended in 100 ⁇ L PBS was used as the humanized antigen-presenting extracellular vesicle of Example 9. ..
  • the concentration of antigen-presenting extracellular vesicles was measured using a BCA protein assay kit (manufactured by Thermo Fisher Scientific) according to the manufacturer's instructions.
  • SARS-CoV2sc-Trimer-hCD81 instead of hsc-Trimer-hCD81, an antigen-presenting MHC molecule that presents the SARS-CoV2 peptide as an antigen, and a humanized antigen that presents hCD80 and hIL-2 on its surface. Presenting extracellular vesicles can be produced.
  • Test Example 1-8 Flow cytometry analysis of fusion protein contained in the membrane of extracellular vesicles
  • the antigen-presenting extracellular vesicles of Example 9 were subjected to PS Capture TM exosome flow cytometry kit (Fujifilm Wakojun). Immunostaining was performed according to the manufacturer's instructions (manufactured by Yakuhin Co., Ltd.). The antibodies used for staining are as follows (staining time: 15 minutes, temperature: 4 ° C.). After staining, the expression of each fusion protein was detected with a flow cytometer FACSCantoII (manufactured by BD Bioscience).
  • Example 9 contains MHC class I molecules presenting the WT1 antigen, hCD80, and hIL-2 in their membranes (FIG. 3H). ..
  • Test Example 7 In vitro differentiation induction experiment of OVA-specific CD4-positive T cells (OT-2 T cells) into Th1 T cells by antigen-presenting extracellular vesicles Antigen-presenting extracellular vesicles are antigen-specific CD4-positive T
  • the following tests were performed in vitro to determine whether the cells were induced to differentiate into Th1T cells. Lymph nodes removed from OT-2 mice, which are OVA-reactive CD4 TCR transgenic mice, were disrupted on a 100 ⁇ m filter to obtain a lymph node cell suspension. Cell suspensions were stained with Cell Race Violet (manufactured by Thermo Fisher Scientific), a cell proliferation assay reagent, according to the manufacturer's instructions.
  • Example 3 in which 5 stained lymph node cells 2 ⁇ 10 were suspended in 200 ⁇ L of RPMI1640 medium containing 10% bovine fetal serum, 50 ⁇ M 2-mercaptoethanol and penicillin / streptomycin so that the final concentration was 10 ⁇ g / mL.
  • 6 antigen-presenting extracellular vesicles or extracellular vesicles of Reference Example 1 were added, and the cells were cultured on a 96-well round bottom plate for 4 days. After 4 days, cells were harvested and extracellular immunostained.
  • the antibodies used for staining are as follows (staining time: 15 minutes, temperature: 4 ° C.).
  • the antigen-presenting extracellular vesicles of Example 6 induce differentiation of antigen-specific CD4-positive T cells into Th1 cells in vitro as compared with the extracellular vesicles of Reference Example 1.
  • Th1 cells produce IFN- ⁇ , IL-2, etc., and promote activation of macrophages and cytotoxic T cells that destroy pathogen cells, virus-infected cells, cancer cells, etc. (that is, cell-mediated immunity). Activation).
  • Test Example 8 In vitro differentiation induction experiment of OVA-specific CD4-positive T cells (OT-2 T cells) into Th17T cells by antigen-presenting extracellular vesicles Antigen-presenting extracellular vesicles are antigen-specific CD4-positive T
  • the following tests were performed in vitro to determine whether the cells were induced to differentiate into Th17T cells. Lymph nodes removed from mice obtained by multiplying OVA-reactive CD4 TCR transgenic mice with RORrt-GFP mice were disrupted on a 100 ⁇ m filter to obtain a lymph node cell suspension. Cell suspensions were stained with Cell Race Violet (manufactured by Thermo Fisher Scientific), a cell proliferation assay reagent, according to the manufacturer's instructions.
  • Example 7 5 stained lymph node cells were suspended in 200 ⁇ L of RPMI1640 medium supplemented with 10% fetal bovine serum, 50 ⁇ M 2-mercaptoethanol and penicillin / streptomycin to a final concentration of 10 ⁇ g / mL.
  • the antigen-presenting vesicles of Reference Example 1 or the extracellular vesicles of Reference Example 1 were added, and the cells were cultured on a 96-well round bottom plate for 4 days. After 4 days, cells were harvested and extracellular immunostained.
  • the antibodies used for staining are as follows (staining time: 15 minutes, temperature: 4 ° C.).
  • the antigen-presenting extracellular vesicles of Example 7 induce differentiation of antigen-specific CD4-positive T cells into Th17 cells in vitro as compared with the extracellular vesicles of Reference Example 1. It can be seen that it was made (Fig. 10). Unlike Th1 and Th2 cells, Th17 cells produce inflammatory cytokines such as IL-17, IL-21, IL-22, and TNF- ⁇ to induce inflammation of neutrophils and monocytes. It promotes mobilization and proliferation, and contributes to the protection against infection of fungi (including pathogenic fungi such as candita, yellow staphylococcus, and lytic fungi).
  • Test Example 9 In vitro activation experiment of OVA-specific CD8-positive T cells (OT-1 T cells) by antigen-presenting extracellular vesicles purified from stable cell line Antigen-presenting extracellular small purified from stable cell line The following tests were performed in vitro to investigate whether the vesicles activate antigen-specific CD8-positive T cells. Lymph nodes removed from OT-1 mice, which are OVA-reactive TCR transgenic mice, were disrupted on a 100 ⁇ m filter to obtain a lymph node cell suspension. Cell suspensions were stained with Cell Race Violet (manufactured by Thermo Fisher Scientific), a cell proliferation assay reagent, according to the manufacturer's instructions.
  • OT-1 T cells OVA-reactive TCR transgenic mice
  • Example 1 in which 5 stained lymph node cells 2 ⁇ 10 were suspended in 200 ⁇ L of RPMI1640 medium containing 10% bovine fetal serum, 50 ⁇ M 2-mercaptoethanol and penicillin / streptomycin so that the final concentration was 9 ⁇ g / mL.
  • 8 antigen-presenting extracellular vesicles or extracellular vesicles of Reference Example 1 were added, and the cells were cultured on a 96-well round bottom plate for 4 days. After culturing on a 96-well round bottom plate for 3 days, immunostaining was performed.
  • the antibodies used for staining are as follows (staining time: 15 minutes, temperature: 4 ° C.).
  • Test Example 10 Evaluation experiment of antitumor effect by antigen-presenting extracellular vesicles To investigate whether antigen-presenting extracellular vesicles purified from stable cell lines have antitumor effects, CD45.1 / CD45.2 congenic Mice were subcutaneously ingested 1 ⁇ 10 5 B16 melanoma cells expressing OVA, and 3 days later, 1 ⁇ 10 5 OT-1T cells were transferred. One day, four days, and seven days after the transfer of OT-1T cells, 50 ⁇ g of the antigen-presenting extracellular vesicle of Example 8 or the extracellular vesicle of Reference Example 1 was transferred from the tail vein of a recipient mouse, and B16 melanoma cells were transferred. The size of was observed.
  • Example 8 From the results of Test Example 10, the antigen-presenting extracellular vesicles of Example 8 significantly suppressed the proliferation of B16 melanoma cells as compared with the extracellular vesicles of Reference Example 1 (FIG. 12).
  • This is not only an extracellular vesicle in which the constituent requirement (A) exemplified by sc-Trimer-CD81 and the constituent requirement (B) exemplified by CD81-IL-2 are present as separate proteins, but also sc-Trimer. It is shown that even extracellular vesicles in which a fusion protein having both functions as exemplified by -CD81-IL-2 is present exerts the same pharmaceutical effect.
  • Example 10 Antigen-presenting extracellular vesicle HEK293T cells containing the sc-Trimer-CD81-IL-2 fusion protein in the membrane were seeded in a cell culture dish, and 2% fetal bovine serum and penicillin / streptomycin were added to the Dalveco modification. Incubate in Eagle's medium. Transfection of approximately 50% confluence cells with the plasmid (sc-Trimer-CD81-IL-2) prepared above using Polyethylenimine "Max" (manufactured by Polysciences) according to the manufacturer's instructions. The antigen-presenting extracellular vesicles are prepared from the cells after transfection by the above-mentioned method.
  • Antigen-presenting extracellular vesicles HEK293T cells contained in the CD63-AkaLuc fusion protein membrane are seeded in a cell culture dish and cultured in Dalveco-modified Eagle's medium supplemented with 2% fetal bovine serum and penicillin / streptomycin. Approximately 50% confluence cells are transfected with the plasmid prepared above (an expression vector expressing CD63-AkaLuc) using Polyethylenimine "Max" (manufactured by Polysciences) according to the manufacturer's instructions. After transfection. An antigen-presenting extracellular vesicle is prepared from cells by the above method.
  • Test Example 11 In vivo activation experiment of OVA-specific CD8-positive T cells (OT-1 T cells) by antigen-presenting extracellular vesicles containing the sc-Trimer-CD81-IL-2 fusion protein in the membrane OVA reaction
  • Lymph nodes are removed from OT-1 mice, which are sex TCR transgenic mice, and disrupted on a 100 ⁇ m filter to obtain a lymph node cell suspension.
  • Lymph nodes were similarly removed from CD45.1 congenic mice to prepare a lymphocyte suspension. Each lymphocyte suspension is mixed at a ratio of 1: 1 and stained with CellTrace Violet, a cell proliferation assay reagent.
  • a 1 ⁇ 10 7 CellTrace Violet-stained mixed lymphocyte suspension suspended in PBS is transferred from the tail vein of a CD45.1 / CD45.2 congenic mouse.
  • 50 ⁇ g of extracellular vesicles of Example 11 or Reference Example 6 are transferred from the tail vein into CD45.1 / CD45.2 congenic mice.
  • the spleen is removed from the recipient mouse, a lymphocyte suspension is prepared, and immunostaining is performed. The following antibodies are used for staining (staining time: 15 minutes, temperature: 4 ° C.).
  • Example 10 The extracellular vesicles of Example 10 almost activate other CD8-positive T cells (antigen-nonspecific CD8-positive T cells) in vivo as compared with the extracellular vesicles of Reference Example 6. Instead, antigen-specific CD8-positive T cells can be significantly differentiated and / or proliferated. ..
  • Test Example 12 Activation experiment of endogenous OVA-reactive T cells by extracellular vesicles expressing sc-Trimer-CD81-IL-2 fusion protein 50 ⁇ g of extracellular vesicles of Example 10 or Reference Example 6 was added to C57BL. / 6 Transferred from the tail vein of mice. Four days after transfer, the spleen is removed from the recipient mouse, a lymphocyte suspension is prepared, and OVA-reactive T cells are immunostained with tetramer according to the manufacturer's instructions. The following antibodies are used for staining. After staining, tetramer-positive cells are detected with a flow cytometer FACSCantoII (manufactured by BD Bioscience).
  • the extracellular vesicles of Example 10 can proliferate OVA-reactive CD8T cells that are significantly endogenous as compared with the extracellular vesicles of Reference Example 6.
  • the antigen-presenting extracellular vesicles and polynucleotides described in the present specification are antigen-specific T cells (for example, antigen-specific CD8-positive T cells, antigen-specific CD4 positive). Cells, etc.) can be satisfactorily activated, proliferated and / or differentiated.

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Abstract

抗原特異的なT細胞を満足に活性化等することが可能な細胞外小胞を提供すること。 抗原提示MHC分子及びT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示する該抗原提示細胞外小胞を提供する。

Description

抗原提示細胞外小胞、それを含む組成物、及びそれらを製造するための方法
 本発明は、抗原提示細胞外小胞、それを含む組成物、及びそれらを製造するための方法に関する。
 生体によるガン細胞等の排除や、自己抗原、アレルギー性物質等に対する応答の調節等の免疫反応には、抗原特異的なT細胞(例えば、細胞傷害性T細胞、ヘルパーT細胞等)が中心的な働きをしていることが知られている。抗原特異的なT細胞は、樹状細胞やマクロファージ等の抗原提示細胞の細胞表面のMHC分子と、ガン、アレルギー性物質等に由来する抗原との結合複合体をT細胞受容体で認識して活性化、増殖、分化等する。活性化等した抗原特異的なT細胞は、抗原を提示しているガン細胞等を特異的に傷害することや、自己抗原、アレルギー性物質等に対する応答を調節する。したがって、抗原特異的なT細胞を活性化、増殖、分化等させることが、免疫反応において特に重要であると考えられている。
 抗原特異的なT細胞を活性化等させる方法としては、既に実用化されているT細胞にキメラ抗原受容体を発現させる方法だけでなく、その他の方法も開発されている。例えば、特許文献1は、MHC分子とT細胞共刺激分子とを表面上に含むナノ粒子が、抗原特異的なT細胞を増殖させることを開示している。また、非特許文献1は、PTGFRNを介してIL-12を膜上に発現させたエクソソームが、腫瘍抗原特異的なCD8陽性T細胞を増殖させることを開示している。
特表2016-520518号公報
Katherine Kirwin, et al., "Exosome Surface Display of IL-12 Results in Tumor-Retained Pharmacology with Superior Potency and Limited Systemic Exposure Compared to Recombinant IL-12", 令和1年11月6日, 34th Annual Meeting of the Society for Immuno-therapy of Cancer Journal of Extracellular Vesicles(2018);7:1535750
 本発明者らは、抗原特異的なT細胞を活性化等しうる新たな方法として、MHC分子とT細胞共刺激分子とを膜に含む細胞外小胞を使用する方法を試みた。しかし、この細胞外小胞を用いて抗原特異的なT細胞の活性化等を試みたところ、抗原特異的なT細胞を満足に活性化等することができないことを初めて見出した。
 したがって、本発明は、抗原特異的なT細胞を満足に活性化等することが可能な細胞外小胞を提供することを目的とする。
 上記課題に鑑み、鋭意検討を重ねたところ、本発明者は、意外にも、MHC分子、及びT細胞刺激性サイトカインを膜に含む細胞外小胞を用いることで、抗原特異的なT細胞を満足に活性化等することができることを見出し、本発明を完成するに至った。
 したがって、本発明は、以下のものを含む:
〔0〕 抗原提示MHC分子及びT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示する細胞外小胞。
〔1〕 抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原提示MHC分子を含む、該抗原を膜外に提示可能なタンパク質;及び
(B)第1のT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニットを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能なタンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞。
〔2〕 〔1〕に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原提示MHC分子と、細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメインとを含む、該抗原を膜外に提示可能な融合タンパク質又はタンパク質複合体;及び
(B)第1のT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニットと、細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメインとを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞。
〔3〕 〔1〕又は〔2〕に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原提示MHC分子と、テトラスパニン若しくはその膜貫通ドメイン又はMFG-E8若しくはそのドメインとを含む、該抗原を膜外に提示可能な融合タンパク質又はタンパク質複合体;及び
(B)第1のT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニットと、テトラスパニンの部分配列とを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、該テトラスパニンの部分配列が、2つの膜貫通ドメインを少なくとも有し、該第1のT細胞刺激性サイトカインが、該2つの膜貫通ドメインの間に配置されている、融合タンパク質、又は
(B)第1のT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニットと、MFG-E8又はそのドメインとを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞。
〔4〕 〔1〕~〔3〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、N末端側から、
 (A-1)MHC分子拘束性抗原ペプチド、
 (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (A-3)単鎖MHC分子、
 (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質、又は
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHC分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
  (A-3)MHCクラスIα鎖、βミクログロブリン、MHCクラスIIα鎖、又はMHCクラスIIβ鎖
  (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
  (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質と、
 (A-6)βミクログロブリン、MHCクラスIα鎖、MHCクラスIIβ鎖、又はMHCクラスIIα鎖のアミノ酸配列を含む、タンパク質と
を含む、タンパク質複合体;並びに
(B)N末端側から、
 (B-1)N末端側から、膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3を含むテトラスパニンの部分配列、
 (B-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (B-3)第1のT細胞刺激性サイトカイン、
 (B-4)存在していてもよいスペーサー配列、並びに
 (B-5)膜貫通ドメイン4を含むテトラスパニンの部分配列
からなるアミノ酸配列を含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質、又は
(B)N末端側から、
 (B-3)第1のT細胞刺激性サイトカイン、
 (B-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (B-5)MFG-E8
からなるアミノ酸配列を含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞。
〔5〕 〔4〕に記載の抗原提示細胞外小胞であって、膜に以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、N末端側から、
 (A-1)MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチド、
 (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (A-3)単鎖MHCクラスI分子、
 (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質
を含む、抗原提示細胞外小胞。
〔6〕 〔4〕に記載の抗原提示細胞外小胞であって、膜に以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
  (A-3)MHCクラスIIβ鎖、
  (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
  (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質と、
 (A-6)MHCクラスIIα鎖のアミノ酸配列を含む、タンパク質と
を含む、タンパク質複合体
を含む、抗原提示細胞外小胞。
〔7〕 第1のT細胞刺激性サイトカインが、IL-2、IL-4、IL-6、IL-12、IL-12のサブユニット又はTGF-βである、〔1〕~〔6〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞。
〔8〕 〔1〕~〔7〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(C)T細胞共刺激分子を含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能なタンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞。
〔9〕 〔1〕~〔8〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(C)T細胞共刺激分子と、細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメインとを含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞。
〔10〕 〔1〕~〔9〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(C)T細胞共刺激分子と、テトラスパニン若しくはその膜貫通ドメイン又はMFG-E8若しくはそのドメインとを含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞。
〔11〕 〔1〕~〔10〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(C)N末端側から、
 (C-1)T細胞共刺激分子、
 (C-2)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (C-3)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞。
〔12〕 細胞外小胞が、エクソソームである、〔1〕~〔11〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞。
〔13〕 ポリヌクレオチドであって、以下:
 (i)〔2〕~〔6〕のいずれかで定義される(A)の融合タンパク質若しくはタンパク質複合体;
 (ii)〔2〕~〔4〕のいずれかで定義される(B)の融合タンパク質;又は
 (iii)〔9〕~〔11〕のいずれかで定義される(C)の融合タンパク質;
のいずれかをコードする、ポリヌクレオチド。
〔14〕 〔13〕に記載のポリヌクレオチドから選択される少なくとも1種のポリヌクレオチドを含んでなるベクター。
〔15〕 以下:
 (i)〔2〕~〔6〕のいずれかで定義される(A)の融合タンパク質若しくはタンパク質複合体をコードするポリヌクレオチド;及び
 (ii)〔2〕~〔4〕のいずれかで定義される(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、並びに、任意で
 (iii)〔9〕~〔11〕のいずれかで定義される(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド
を含んでなる、単一のベクター又は2以上のベクターの組み合わせにより形質転換された細胞。
〔16〕 〔15〕に記載の細胞を培養して得られてなる、培養上清。
〔17〕 〔16〕に記載の培養上清から得られてなる、抗原提示細胞外小胞。
〔18〕 〔1〕~〔12〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞を製造するための方法であって、〔15〕に記載の細胞を培養して得られる培養上清を回収する工程を含む、方法。
〔19〕 〔1〕~〔12〕及び〔17〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞、又は〔16〕に記載の培養上清を含む、医薬組成物。
〔20〕 感染症を処置又は予防するための、〔1〕~〔12〕及び〔17〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞、又は〔16〕に記載の培養上清を含む、医薬組成物。
〔21〕 ガンを処置又は予防するための、〔5〕及び〔7〕~〔12〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞を含む、医薬組成物。
〔22〕 自己免疫疾患を処置又は予防するための、〔6〕~〔12〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞を含む、医薬組成物。
〔23〕 アレルギー性疾患を処置又は予防するための、〔6〕~〔12〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞を含む医薬組成物。
〔24〕 特異的な抗原に対するT細胞を活性化及び/又は増殖させるための方法であって、〔1〕~〔12〕及び〔17〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞とT細胞とをin vitro又はex vivoにおいて接触させることを含む、方法。
〔25〕
 (A)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体と(B)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体とが融合している、〔1〕~〔11〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞。
〔26〕
 (A)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体と(C)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体とが融合している、〔8〕~〔11〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞。
〔27〕
 (B)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体と(C)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体とが融合している、〔8〕~〔11〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞。
〔28〕
 (A)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体と、(B)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体と(C)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体とが融合している、〔8〕~〔11〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞。
〔29〕 細胞外小胞が、エクソソームである、〔25〕~〔27〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞。
〔30〕 免疫チェックポイント阻害剤を含む、〔21〕に記載の医薬組成物。
〔31〕 前記免疫チェックポイント阻害剤が、前記抗原提示細胞外小胞の膜上に存在している、〔30〕に記載の医薬組成物。
〔32〕 前記免疫チェックポイント阻害剤が抗PD-1抗体又はその活性断片;抗CTLA-4抗体又はその活性断片;及びPD-L1抗体又はその活性断片からなる群から選択される、〔30〕又は〔31〕に記載の医薬組成物。
〔1A〕
 抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(D)抗原提示MHC分子と、すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカインまたはそのサブユニットを含み、該抗原と該T細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質を含む、抗原提示細胞外小胞。
〔2A〕 〔1A〕に記載の抗原提示細胞外小胞であって、
 前記融合タンパク質が、前記抗原提示MHC分子と、前記すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニットと、細胞外小胞の膜に局在することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはその膜結合ドメインとを含む、抗原提示細胞外小胞。
〔3A〕 〔2A〕に記載の抗原提示細胞外小胞であって、
 前記細胞外小胞の膜に局在することが可能な膜タンパク質又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質が、テトラスパニン又はMFG-E8である、抗原提示細胞外小胞。
〔4A〕 〔3A〕に記載の抗原提示細胞外小胞であって、
前記融合タンパク質が、N末端側から、
 (D-1)MHC分子拘束性抗原ペプチド、
 (D-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (D-3)単鎖MHC分子、
 (D-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (D-5)テトラスパニン又はその膜貫通ドメインあるいはMFG-E8又はその膜貫通ドメインと、前記すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニットを含む融合ペプチド、
を、この順番でコードするアミノ酸配列を含む、抗原提示細胞外小胞、
〔5A〕 〔3A〕に記載の抗原提示細胞外小胞であって、
前記融合タンパク質が、N末端側から、
 (D-1)テトラスパニン又はその膜貫通ドメインあるいはMFG-E8又はその膜貫通ドメインと、前記すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニットを含む融合ペプチド
 (D-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (D-3)単鎖MHC分子、
 (D-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (D-5)MHC分子拘束性抗原ペプチドを、
この順にコードするアミノ酸配列を含む、抗原提示細胞外小胞。
〔6A〕
 前記融合ペプチドが、N末端側から、
  (1)膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3を含むテトラスパニンの部分配列、
  (2)存在していてもよいスペーサー配列、
  (3)前記すくなくとも1つのT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニット、
  (4)存在していてもよいスペーサー配列、並びに
  (5)膜貫通ドメイン4を含むテトラスパニンの部分配列
をこの順番でコードするアミノ酸配列を含む、〔4A〕又は〔5A〕に記載の抗原提示細胞外小胞。
〔7A〕
 前記融合ペプチドが、N末端側から、
 (1)前記すくなくとも1のT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニット、
 (2)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (3)MFG-E8
をこの順番でコードするアミノ酸配列を含む、〔4A〕又は〔5A〕に記載の抗原提示細胞外小胞。
〔8A〕
 前記MHC分子拘束性抗原ペプチドがMHCクラスI分子拘束性抗原ペプチドであり、前記単鎖MHC分子が、MHCクラスIα鎖の細胞外領域を含む、〔4A〕又は〔5A〕に記載の抗原提示細胞外小胞。
〔9A〕
 前記MHC分子拘束性抗原ペプチドがMHCクラスII分子拘束性抗原ペプチドであり、前記単鎖MHC分子が、MHCクラスIIα鎖の細胞外ドメイン及び/又はMHCクラスIIβ鎖の細胞外ドメインを含む、〔4A〕又は〔5A〕に記載の抗原提示細胞外小胞。
〔10A〕
 (C)すくなくとも1つのT細胞共刺激分子を含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能なタンパク質をさらにその膜に含む、〔1A〕~〔9A〕のいずれか一項に記載の抗原提示細胞外小胞。
〔11A〕
 前記T細胞と相互作用可能なタンパク質が、前記すくなくとも1つのT細胞共刺激分子と、細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメインとを含む、〔10A〕に記載の抗原提示細胞外小胞。
〔12A〕
 前記T細胞と相互作用可能なタンパク質が、前記すくなくとも1つのT細胞共刺激分子と、テトラスパニン若しくはその膜貫通ドメイン又はMFG-E8若しくはそのドメインとを含む、〔11A〕に記載の抗原提示細胞外小胞。
〔13A〕
 前記T細胞と相互作用可能なタンパク質が、
(C)N末端側から、
 (C-1)前記すくなくとも1つのT細胞共刺激分子、
 (C-2)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (C-3)テトラスパニンを
この順にコードするアミノ酸配列を含む、〔12A〕に記載の抗原提示細胞外小胞。
〔14A〕 前記(A)融合タンパク質と前記(C)T細胞と相互作用可能なタンパク質が融合している、〔10A〕~〔13A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞。
〔15A〕 細胞外小胞が、エクソソームである、〔1A〕~〔14A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞。
〔1B〕 〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞と薬理学的に許容される担体を含む、医薬組成物。
〔1C〕 ガンを処置又は予防するための、〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞を含む、医薬組成物;ここで、好ましくは前記抗原ペプチドがガン抗原ペプチドを含む。
〔2C〕 自己免疫疾患を処置又は予防するための、〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞を含む、医薬組成物;ここで、好ましくは前記抗原ペプチドが自己抗原ペプチドを含む。
〔3C〕 アレルギー性疾患を処置又は予防するための、〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞を含む、医薬組成物;ここで、好ましくは前記抗原ペプチドがアレルゲンを含む。
〔4C〕 免疫チェックポイント阻害剤を含む、〔1C〕に記載の医薬組成物。
〔5C〕 前記免疫チェックポイント阻害剤が、前記抗原提示細胞外小胞の膜上に存在している、〔4C〕に記載の医薬組成物。
〔6C〕 前記免疫チェックポイント阻害剤が抗PD-1抗体又はその活性断片;抗CTLA-4抗体又はその活性断片;及びPD-L1抗体又はその活性断片からなる群から選択される、〔4C〕又は〔5C〕に記載の医薬組成物。
〔7C〕 〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞と薬理学的に許容される担体を含む、感染症を処置又は予防するための医薬組成物;ここで、好ましくは前記抗原ペプチドが前記感染症を引きおこす感染病原体由来である。
〔1D〕 ガンの処置又は予防における使用のための〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞;ここで、好ましくは前記抗原ペプチドがガン抗原ペプチドを含む。
〔2D〕 自己免疫疾患の処置又は予防における使用のための、〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞;ここで、好ましくは前記抗原ペプチドが自己抗原ペプチドを含む。
〔3D〕 アレルギー性疾患の処置又は予防における使用のための、〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞;ここで、好ましくは前記抗原ペプチドがアレルゲンを含む。
〔4D〕 免疫チェックポイント阻害剤とともに使用される、〔1D〕に記載の使用のための抗原提示細胞外小胞。
〔5D〕 前記免疫チェックポイント阻害剤が、前記抗原提示細胞外小胞の膜上に存在している、〔4D〕に記載の使用のための抗原提示細胞外小胞。
〔6D〕 前記免疫チェックポイント阻害剤が抗PD-1抗体又はその活性断片;抗CTLA-4抗体又はその活性断片;及びPD-L1抗体又はその活性断片からなる群から選択される、〔4D〕又は〔5D〕に記載の使用のための抗原提示細胞外小胞。
〔7D〕 感染症を処置又は予防における使用のための〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞;ここで、好ましくは前記抗原ペプチドが前記感染症を引きおこす感染病原体由来である。
〔1E〕 ガンを処置又は予防するための医薬の製造における〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞の使用;ここで、好ましくは前記抗原ペプチドがガン抗原ペプチドを含む。
〔2E〕 自己免疫疾患の処置又は予防するための医薬の製造における〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞の使用;ここで、好ましくは前記抗原ペプチドが自己抗原ペプチドを含む。
〔3E〕 アレルギー性疾患の処置又は予防するための医薬の製造における〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞の使用;ここで、好ましくは前記抗原ペプチドがアレルゲンを含む。
〔4E〕 前記医薬が、免疫チェックポイント阻害剤とともに使用される、〔1E〕に記載の使用。
〔5E〕 前記免疫チェックポイント阻害剤が、前記抗原提示細胞外小胞の膜上に存在している、〔4E〕に記載の使用。
〔6E〕 前記免疫チェックポイント阻害剤が抗PD-1抗体又はその活性断片;抗CTLA-4抗体又はその活性断片;及びPD-L1抗体又はその活性断片からなる群から選択される、〔4E〕又は〔5E〕に記載の使用。
〔7E〕 感染症を処置又は予防するための医薬の製造における〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞の使用;ここで、好ましくは前記抗原ペプチドが前記感染症を引きおこす感染病原体由来である。
〔1F〕 対象においてガンを処置又は予防する方法であって、
 有効量の〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞を対象に投与して、対象内の、ガン抗原を認識するT細胞を活性化及び/又は増殖させ、該活性化及び/又は増殖したT細胞にガン細胞を攻撃させることにより、ガンを処置又は予防する、方法;ここで、好ましくは、前記該活性化及び/又は増殖したT細胞がCD8陽性の細胞傷害性T細胞であり、好ましくは前記抗原ペプチドがガン抗原ペプチドを含む。
〔2F〕 対象において自己免疫疾患を処置又は予防する方法であって、有効量の〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞を対象に投与して、対象内の、自己抗原を認識するT細胞を活性化及び/又は増殖させ、対象内で前記自己抗原に対して免疫反応を脱感作させることにより、自己免疫疾患を処置又は予防する方法;ここで、好ましくは、前記該活性化及び/又は増殖したT細胞がCD4陽性の制御性T細胞(Treg)であり、好ましくは前記抗原ペプチドが自己抗原ペプチドを含む。
〔3F〕 対象においてアレルギー性疾患を処置又は予防する方法であって、有効量の〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞を対象に投与して、対象内の、アレルゲンを認識するT細胞を活性化及び/又は増殖させ、対象内で前記自己抗原に対して免疫反応を脱感作させることにより、自己免疫疾患を処置又は予防する方法;ここで、好ましくは、前記該活性化及び/又は増殖したT細胞がCD4陽性の制御性T細胞(Treg)であり、好ましくは前記抗原ペプチドがアレルゲンを含む。
〔4F〕 前記抗原提示細胞外小胞が免疫チェックポイント阻害剤とともに投与される、〔1F〕に記載の方法。
〔5F〕 前記免疫チェックポイント阻害剤が、前記抗原提示細胞外小胞の膜上に存在している、〔4F〕に記載の方法。
〔6F〕 前記免疫チェックポイント阻害剤が抗PD-1抗体又はその活性断片;抗CTLA-4抗体又はその活性断片;及びPD-L1抗体又はその活性断片からなる群から選択される、〔4F〕又は〔5F〕に記載の方法。
〔7F〕 対象において感染症を処置又は予防する方法であって、有効量の〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞を対象に投与して、
1)炎症性サイトカインを分泌させ、対象の自然免疫を活性化させて、及び/又は
2)前記感染症を引きおこす感染病原体に対する獲得免疫を前記対象にもたせて、
体内での前記感染症を引きおこす感染病原体を排除すること、及び/又はその増殖を抑えることを含む、感染症を処置又は予防する方法。
〔1G〕 特異的な抗原に対するT細胞を活性化及び/又は増殖させるための方法であって、〔1A〕~〔15A〕のいずれかに記載の抗原提示細胞外小胞とT細胞とをin vitro又はex vivoにおいて接触させることを含む、方法。
〔1H〕 (i)〔1A〕~〔9A〕のいずれかで定義される(D)の融合タンパク質若しくはタンパク質複合体; 
 (ii)〔10A〕~〔13A〕のいずれかで定義される(C)のT細胞と相互作用可能なタンパク質;又は
 (iii)〔14A〕に記載の(D)の融合タンパク質と(C)のT細胞と相互作用可能なタンパク質の融合タンパク質をコードする、ポリヌクレオチド。
〔2H〕 〔1G〕に記載の核酸を含むベクター。
 本発明によれば、MHC分子、及びT細胞刺激性サイトカインを膜に含む細胞外小胞(抗原提示細胞外小胞)を用いることで、抗原特異的なT細胞を満足に活性化等することができる。
抗原ペプチド-単鎖MHCクラスI分子(sc-Trimer)-CD81融合タンパク質のモデル図を示す。 抗原ペプチド-単鎖MHCクラスI分子(sc-Trimer)-CD81融合タンパク質のアミノ酸配列を示す。 CD80-CD9融合タンパク質のモデル図を示す。 CD80-CD9融合タンパク質のアミノ酸配列を示す。 CD63-IL-2融合タンパク質のモデル図を示す。 CD63-IL-2融合タンパク質のアミノ酸配列を示す。 抗原ペプチド-MHCクラスIIβ鎖(sc-Dimer)-CD81融合タンパク質のモデル図を示す。 抗原ペプチド-MHCクラスIIβ鎖(sc-Dimer)-CD81融合タンパク質のアミノ酸配列を示す。 MHCクラスIIα鎖のアミノ酸配列を示す。 TGF-β-MFG-E8融合タンパク質のモデル図を示す。 TGF-β-MFG-E8融合タンパク質のアミノ酸配列を示す。 CD81-IL-4融合タンパク質のモデル図を示す。 CD81-IL-4融合タンパク質のアミノ酸配列を示す。 実施例1の抗原提示細胞外小胞のモデル図を示す。 実施例2の抗原提示細胞外小胞のモデル図を示す。 実施例3の抗原提示細胞外小胞のモデル図を示す。 実施例4の抗原提示細胞外小胞のモデル図を示す。 実施例5の抗原提示細胞外小胞のモデル図を示す。 実施例6の抗原提示細胞外小胞のモデル図を示す。 実施例7の抗原提示細胞外小胞のモデル図を示す。 実施例8の抗原提示細胞外小胞のモデル図を示す。 実施例9の抗原提示細胞外小胞のモデル図を示す。 その他の実施態様の抗原提示細胞外小胞のモデル図を例示する。 試験例1-1において、実施例2の抗原提示細胞外小胞の膜に含まれる融合タンパク質をフローサイトメトリーで解析した結果を示す。 試験例1-2において、実施例3の抗原提示細胞外小胞の膜に含まれる融合タンパク質をフローサイトメトリーで解析した結果を示す。 試験例1-3において、実施例4の抗原提示細胞外小胞の膜に含まれる融合タンパク質をフローサイトメトリーで解析した結果を示す。 試験例1-4において、実施例5の抗原提示細胞外小胞の膜に含まれる融合タンパク質をフローサイトメトリーで解析した結果を示す。 試験例1-5において、実施例6の抗原提示細胞外小胞の膜に含まれる融合タンパク質をフローサイトメトリーで解析した結果を示す。 試験例1-6において、実施例7の抗原提示細胞外小胞の膜に含まれる融合タンパク質をフローサイトメトリーで解析した結果を示す。 試験例1-7において、実施例8の抗原提示細胞外小胞の膜に含まれる融合タンパク質をフローサイトメトリーで解析した結果を示す。 試験例1-8において、実施例9の抗原提示細胞外小胞の膜に含まれる融合タンパク質をフローサイトメトリーで解析した結果を示す。 試験例2において、実施例1,2の抗原提示細胞外小胞が、抗原特異的CD8陽性T細胞(OT-1 T細胞)を活性化等するかを、in vitroで評価した結果を示す。 試験例3において、実施例2の抗原提示細胞外小胞が、抗原特異的CD8陽性T細胞(OT-1)を活性化等するかを、in vivoで評価した結果を示す。 試験例4において、実施例3の抗原提示細胞外小胞が、抗原特異的CD4陽性T細胞を活性化等するかを、in vitroで評価した結果を示す。 試験例5において、実施例4の抗原提示細胞外小胞が、抗原特異的CD4陽性T細胞(OT-2 T細胞)を制御性T細胞へと分化誘導するかを、in vitroで評価した結果を示す。 試験例6において、実施例3,5の抗原提示細胞外小胞が、抗原特異的CD4陽性T細胞(OT-2 T細胞)をTh2T細胞へと分化誘導するかどうかを、in vitroで評価した結果を示す。 試験例7において、実施例6の抗原提示細胞外小胞が、抗原特異的CD4陽性T細胞をTh1細胞へと分化誘導するかどうかを、in vitroで評価した結果を示す。 試験例8において、実施例7の抗原提示細胞外小胞が、抗原特異的CD4陽性T細胞をTh17細胞へと分化誘導するかどうかを、in vitroで評価した結果を示す。 試験例9において、実施例1と実施例8の抗原提示細胞外小胞が、抗原特異的CD8陽性T細胞を顕著に増殖させたことを示す。 試験例10において、実施例8の抗原提示細胞外小胞が、B16メラノーマ細胞の増殖を顕著に抑制したことを示す。
定義
細胞外小胞
 本明細書中で用いられる「細胞外小胞」とは、細胞から分泌される小胞である限り特段限定されるものではないが、例えば、Exosomes(エクソソーム)、Microvesicles(MV;微小小胞体)、Apoptotic Bodies(アポトーシス小体)等が挙げられる。
 本明細書中で用いられる「エクソソーム」とは、エンドサイト-シス・パスウエイに由来する、約20~約500nm(好ましくは約20~約200nm、より好ましくは約25~約150nm、更に好ましくは約30~約100nm)の小胞を意味する。エクソソームの構成成分としては、例えば、タンパク質、核酸(mRNA、miRNA、ノン・コーティングRNA)等が挙げられる。エクソソームは、細胞間コミュニケーションを司る機能を有しうる。エクソソームのマーカー分子としては、例えば、Alix、Tsg101、テトラスパニン、flotillin、フォスファチジルセリン等が挙げられる。
 本明細書中で用いられる「微小小胞体」とは、細胞質膜に由来する、約50~約1000nmの小胞を意味する。微小小胞体の構成成分としては、例えば、タンパク質、核酸(mRNA、miRNA、ノン・コーティングRNA等)等が挙げられる。微小小胞体は、細胞間コミュニケーションを司る機能等を有しうる。微小小胞体のマーカー分子としては、例えば、インテグリン、セレクチン、CD40、CD154等が挙げられる。
 本明細書中で用いられる「アポトーシス小体」とは、細胞質膜に由来する、約500~約2000nmの小胞を意味する。アポトーシス小体の構成成分としては、例えば、断片化された核、細胞小器官(オルガネラ)等が挙げられる。アポトーシス小体は、ファゴサイトーシスを誘導する機能等を有しうる。アポトーシス小体のマーカー分子としては、例えば、Annexin V、フォスファチジルセリン等が挙げられる。
 本明細書中で用いられる「抗原提示細胞外小胞」とは、その膜外に抗原を提示する細胞外小胞を意味する。
主要組織適合遺伝子複合体分子
 本明細書中で用いられる「主要組織適合遺伝子複合体(Major Histocompatibility Complex、以下、「MHC」ともいう。)分子」は、抗原結合間隙を含み、T細胞、T細胞前駆体等へ提示する抗原と結合することができるものである限り特段限定されるものではない。MHC分子としては、例えば、MHCクラスI分子、MHCクラスII分子等が挙げられる。MHC分子は、任意の動物種由来のものであってもよい。例えば、ヒトでは、ヒト白血球型抗原(HLA)、マウスでは、H2系が挙げられる。
 MHCクラスI分子に相当するHLAは、例えば、HLA-A、HLA-B、HLA-Cw、HLA-F、HLA-G等のサブタイプに分類されることがある。これらサブタイプについては、多型(対立遺伝子)が知られている。HLA-Aの多型としては、例えば、HLA-A1、HLA-A0201、HLA-A24等が挙げられ、HLA-Bの多型としては、例えば、HLA-B7、HLA-B40、HLA-B4403等が挙げられ、HLA-Cwの多型としては、例えば、HLA-Cw0301、HLA-Cw0401、HLA-Cw0602等が挙げられる。
 MHCクラスII分子に相当するHLAは、例えば、HLA-DR、HLA-DQ、HLA-DP等のサブタイプに分類されることがある。
 本明細書中に記載のMHC分子は、その機能を発揮することができるものである限り、その野生型のアミノ酸配列(例えば、MHCクラスI分子の場合:例えば、配列番号9等のMHCクラスIα鎖、配列番号7等のβミクログロブリン、配列番号65等の単鎖MHCクラスI分子等;MHCクラスII分子の場合:例えば、配列番号71等のMHCクラスIIα鎖、配列番号37等のMHCクラスIIβ鎖、単鎖MHCクラスII分子等)に対して、アミノ酸配列同一性が、80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のものであってもよい。或いは、本明細書中に記載のMHC分子は、その機能を発揮することができるものである限り、その野生型のアミノ酸配列に対して、1個又は複数個のアミノ酸の欠失、挿入、付加及び/又は置換等されたものであってもよい。
 本明細書中で用いられる「抗原提示MHC分子」とは、抗原を提示するMHC分子である限り特段限定されるものではないが、例えば、抗原提示MHCクラスI分子、抗原提示MHCクラスII分子等が挙げられる。「抗原提示MHCクラスI分子」としては、例えば、抗原とMHCクラスIα鎖又はその細胞外ドメインとβミクログロブリンとの複合体;抗原と単鎖MHCクラスI分子との複合体;抗原及び単鎖MHCクラスI分子が結合した融合タンパク質;抗原と、MHCクラスIα鎖の細胞外ドメインと他のタンパク質又はそのドメイン若しくはそのフラグメント等との融合タンパク質(例えば、MHCクラスIα鎖の細胞外ドメインと抗体のFc部分との融合タンパク質;MHCクラスIα鎖の細胞外ドメインと他の膜タンパク質の膜貫通ドメインとの融合タンパク質等)と、の複合体;等が挙げられる。「抗原提示MHCクラスII分子」としては、例えば、抗原とMHCクラスIIα鎖又はその細胞外ドメインとMHCクラスIIβ鎖又はその細胞外ドメインとの複合体;抗原と単鎖MHCクラスII分子との複合体;抗原及びMHCクラスIIβ鎖が結合した融合タンパク質と、MHCクラスIIα鎖との複合体;抗原と、MHCクラスIIα鎖の細胞外ドメインと他のタンパク質又はそのドメイン若しくはそのフラグメント等との融合タンパク質(例えば、MHCクラスIIα鎖の細胞外ドメインと抗体のFc部分との融合タンパク質;MHCクラスIIα鎖の細胞外ドメインと他の膜タンパク質の膜貫通ドメインとの融合タンパク質等)と、MHCクラスIIβ鎖の細胞外ドメインと他のタンパク質又はそのドメイン若しくはそのフラグメント等との融合タンパク質(例えば、MHCクラスIIβ鎖の細胞外ドメインと抗体のFc部分との融合タンパク質;MHCクラスIIβ鎖の細胞外ドメインと他の膜タンパク質の膜貫通ドメインを含むアミノ酸配列との融合タンパク質等)と、の複合体等が挙げられる。
 本明細書中で用いられる「単鎖MHC分子」、「単鎖MHCクラスI分子」又は「単鎖MHCクラスII分子」とは、MHC分子(又はMHCクラスI分子若しくはMHCクラスII分子)のα鎖若しくはその細胞外ドメインと、β鎖若しくはその細胞外ドメイン又はβミクログロブリンとが、必要に応じてスペーサー配列等を介して連結した融合タンパク質を意味する。「単鎖MHCクラスI分子」としては、例えば、MHCクラスIα鎖とβミクログロブリンとが必要に応じてスペーサー配列を介して連結した融合タンパク質等が挙げられる。「単鎖MHCクラスII分子」としては、例えば、MHCクラスIIα鎖とMHCクラスIIβ鎖とが必要に応じてスペーサー配列を介して連結した融合タンパク質等が挙げられる。
 本明細書中で用いられる「抗原提示MHC分子を含む、該抗原(若しくは抗原ペプチド)を膜外に提示可能なタンパク質(若しくは融合タンパク質、タンパク質複合体等)」とは、抗原提示MHC分子を少なくとも含み、かつ抗原(若しくは抗原ペプチド)を膜外に提示することで、T細胞等に抗原を提示することが可能なタンパク質(若しくは融合タンパク質、タンパク質複合体等)を意味する。「抗原提示MHC分子を含む、抗原(若しくは抗原ペプチド)を膜外に提示可能なタンパク質(若しくは融合タンパク質、タンパク質複合体等)」は、これが細胞外小胞の膜に発現するように、プラスミド等を用いて融合タンパク質、タンパク質複合体等の形態で発現させたものであってもよい。或いは、「抗原提示MHC分子を含む、抗原(若しくは抗原ペプチド)を膜外に提示可能なタンパク質(若しくは融合タンパク質、タンパク質複合体等)」は、可溶性の抗原提示MHC分子(これらに限定されるものではないが、例えば、特許文献1に記載されている、MHCクラスIα鎖及び免疫グロブリン重鎖を含む融合タンパク質等;特開2007-161719号公報に記載されている、可溶性のMHCクラスI分子等)を用いる場合、可溶性の抗原提示MHC分子と細胞外小胞とを、必要に応じて脂質リンカー、ペプチドリンカー等を介して、細胞外小胞の膜に結合させたものであってもよい(例えば、特開2018-104341号公報等に記載の方法を参考にしてもよい)。或いは、可溶性の抗原提示MHC分子のN末端側又はC末端側に所望のタグ(例えば、Hisタグ、FLAGタグ、PNEタグ(配列番号79:NYHLENEVARLKKL)等)を付加したもの(該タグは、例えば、他の構成要素とともに融合タンパク質として発現させてもよいし、別途用意した可溶性の抗原提示MHC分子に、必要に応じてリンカー等を介して結合させてもよい)と、該タグに対する抗体又はその抗原結合性フラグメント(例えば、scFv、Fab若しくはナノボディ)等を含むタンパク質(例えば、必要に応じてリンカー等を介して細胞外小胞の膜に結合した、該タグに対する抗体又はその抗原結合性フラグメント(例えば、scFv、Fab若しくはナノボディ)等自体;細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質又はその膜貫通ドメインのN末端側又はC末端側に、該タグに対するナノボディが結合した、融合タンパク質等)を膜に含む細胞外小胞とを、所望の条件で混合したものであってもよい(例えば、Raj D, et al., Gut., 2019 Jun;68(6):1052-1064等に記載の、PNEタグと該タグに対する抗体等とを用いる方法を参考にしてもよい)。
抗原
 本明細書中で用いられる「抗原」とは、抗原性を有しうるものである限り特段限定されるものではなく、ペプチド抗原だけでなく、リン脂質、複合炭水化物等の非ペプチド抗原(例えば、ミコール酸、リポアラビノアンナン等の細菌性膜構成要素等)も包含される。
 本明細書中で用いられる「抗原ペプチド」は、抗原となりうるペプチドである限り特段限定されるものではなく、天然由来のものであっても、合成由来のものであっても、市販されているものであってもよい。抗原ペプチドは、これらに限定されるものではないが、例えば、WT-1、α-胎児タンパク質、MAGE-1、MAGE-3、胎盤アルカリ性ホスファターゼシアリル-ルイスX、CA-125、CA-19、TAG-72、上皮糖タンパク質2、5T4、α胎児タンパク質受容体、M2A、チロシナーゼ、Ras、p53、Her-2/neu、EGF-R、エストロゲン受容体、プロゲステロン受容体、myc、BCR-ABL、HPV型16、メラノトランスフェリン、MUC1、CD10、CD19、CD20、CD37、CD45R、IL-2受容体α鎖、T細胞受容体、前立腺酸性ホスファターゼ、GP100、MelanA/Mart-1、gp75/ブラウン、BAGE、S-100、イトケラチン、CYFRA21-1、Ep-CAM等の腫瘍関連抗原ペプチド;インスリン、グルタミン酸デカルボキシラーゼ、ICA512/IA-2タンパク質チロシンホスファターゼ、ICA12、ICA69、プレプロインスリン、HSP60、カルボキシペプチダーゼH、ペリフェリン、GM1-2、ビトロネクチン、βクリスタリン、カルレティキュリン、セロトランスフェリン、ケラチン、ピルビン酸カルボキシラーゼ、C1、ビリン2、ヌクレオソーム、リボヌクレオタンパク質、ミエリンオリゴデンドロサイト糖タンパク質、ミエリン関連糖タンパク質、ミエリン/オリゴデンドロサイト塩基性タンパク質、オリゴデンドロサイト特異的タンパク質、ミエリン塩基性タンパク質、プロテオリピドアポタンパク質等の自己抗原ペプチド;原生動物(例えば、マラリア原虫、リーシュマニア種、トリパノソーマ種)、細菌(例えば、グラム陽性球菌、グラム陽性桿菌、グラム陰性細菌、嫌気性菌)、真菌(例えば、アスペルギルス、ブラストミセス、カンジダ、コクシジオイデス、クリプトコッカス、ヒストプラスマ、パラコクシジオイデス、スポロスリックス)、ウイルス(例えば、アデノウイルス、単純ヘルペスウイルス、パピローマウイルス、呼吸シンシチアウイルス、ポックスウイルス、HIV、インフルエンザウイルス、SARS-CoVやSARS-CoV2のようなコロナウイルス)、細胞内寄生体(例えば、クラミジア科、マイコプラズマ科、アコレプラスマ科、リケッチア科)、蠕虫(例えば、線虫、吸虫、条虫)等の感染病原体に由来する抗原ペプチド;プリオン等のその他の抗原ペプチド等が挙げられる。
 抗原ペプチドは、アレルギー症状を引き起こすアレルゲンを含んでもよい。アレルゲンとしては、上記原生動物、細菌、真菌、細胞内寄生体及び蠕虫に由来するペプチド以外に、外来性のペプチド、たとえば、ハウスダスト、ダニ、動物(たとえばネコ、イヌなどのコンパニオンアニマル)、及び花粉(たとえば、スギやヒノキ)由来のペプチド等が例示される。より詳細には、 Cryj1などのスギ花粉に含まれるタンパク質が例示される。あるいは、アレルギー症状を引き起こすアレルゲンは、食物由来のものであってよい。食物に対するアレルギー症状を引き超すアレルゲンとしては、鶏卵、牛乳、小麦、そば、かに、えび及び落花生由来のペプチド等が例示される。
 本明細書中で用いられる「MHC分子拘束性抗原ペプチド」とは、in vitro、in vivo及び/又はex vivo等で、MHC分子に結合することが可能な抗原ペプチドを意味する。「MHC分子拘束性抗原ペプチド」のアミノ酸残基数は、通常、約7~約30である。「MHC分子拘束性抗原ペプチド」としては、例えば、MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチド、MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド等が挙げられる。
 本明細書中で用いられる「MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチド」とは、in vitro、in vivo及び/又はex vivo等で、MHCクラスI分子に結合することが可能な抗原ペプチドを意味する。MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチドが細胞外小胞の膜外に提示されると、例えば、該抗原ペプチドが前駆体T細胞等に認識され、細胞傷害性T細胞等を誘導しうる。「MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチド」のアミノ酸残基数は、通常、約7~約30であり、好ましくは約7~約25であり、より好ましくは約7~約20であり、更に好ましくは約7~約15であり、より更に好ましくは約7~約12である。
 本明細書中で用いられる「MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド」とは、in vitro、in vivo及び/又はex vivo等で、MHCクラスII分子に結合することが可能な抗原ペプチドを意味する。MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチドが細胞外小胞の膜外に提示されると、例えば、該抗原ペプチドが前駆体T細胞等に認識され、ヘルパーT細胞等を誘導しうる。「MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド」のアミノ酸残基数は、通常、約7~約30であり、好ましくは約10~約25であり、より好ましくは約12~約24である。
 「MHC分子拘束性抗原ペプチド」、「MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチド」、又は「MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド」としては、MHC分子、MHCクラスI分子又はMHCクラスII分子に結合することが可能な抗原ペプチドである限り、特段限定されるものではない。
T細胞刺激性サイトカイン
 本明細書中で用いられる「T細胞刺激性サイトカイン」とは、T細胞の膜上に発現する受容体等を介して、T細胞を刺激(例えば、活性化、抑制等)することが可能なサイトカインである限り特段限定されるものではない。T細胞刺激性サイトカインとしては、これらに限定されるものではないが、例えば、IL-2、IL-4、IL-6、IL-12、TGF-β、IFN-α、IFN-γ等が挙げられる。これらのうち、ホモ若しくはヘテロのサブユニットの多量体を形成しうるもの(例えば、IL-12、TGF-β等)は、機能的である限り(即ち、所望の薬理活性を有しうる限り)、場合によりペプチドリンカー等を介して連結された、連続したアミノ酸配列のものであってもよい。
 本明細書中に記載のT細胞刺激性サイトカインは、任意の動物種由来のものであってもよい。例えば、マウス、ラット等のげっ歯類;ウサギ等のウサギ目;ブタ、ウシ、ヤギ、ウマ、ヒツジ等の有蹄類;イヌ、ネコ等のネコ目;ヒト、サル、アカゲザル、カニクイザル、マーモセット、オランウータン、チンパンジー等の霊長類等の哺乳動物等の動物に由来するものが挙げられる。本明細書中に記載のT細胞刺激性サイトカインは、好ましくは、げっ歯類又は哺乳類動物に由来するものであり、より好ましくは、マウス又はヒトに由来するものである。
 本明細書中に記載のT細胞刺激性サイトカインは、その機能を発揮することができるものである限り、その野生型のアミノ酸配列(例えば、IL-2の場合、例えば配列番号25等;IL-4の場合、例えば配列番号53等)に対して、アミノ酸配列同一性が、80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のものであってもよい。或いは、本明細書中に記載のT細胞刺激性サイトカインは、その機能を発揮することができるものである限り、その野生型のアミノ酸配列に対して、1個又は複数個のアミノ酸の欠失、挿入、付加及び/又は置換等されたものであってもよい。
 本明細書中で用いられる「(第1の、第2の)T細胞刺激性サイトカインを含む、該(第1の、第2の)T細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能なタンパク質」とは、T細胞刺激性サイトカインを少なくとも含み、細胞外小胞の膜外に該T細胞刺激性サイトカインを提示することが可能なタンパク質を意味する。「(第1の、第2の)T細胞刺激性サイトカインを含む、該(第1の、第2の)T細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能なタンパク質」は、これが細胞外小胞の膜に発現するように、プラスミド等を用いて、T細胞刺激性サイトカインと膜タンパク質又はその膜貫通ドメインを含むフラグメント等とを含む融合タンパク質として発現させたものであってもよい。或いは、「(第1の、第2の)T細胞刺激性サイトカインを含む、該(第1の、第2の)T細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能なタンパク質」は、可溶性のT細胞刺激性サイトカイン(これらに限定されるものではないが、例えば、T細胞刺激性サイトカインそのもの;T細胞刺激性サイトカインと抗体のFc部分との融合タンパク質;T細胞刺激性サイトカインと、該T細胞刺激性サイトカインを認識する抗体、又はその抗原結合性フラグメント(例えば、scFv、Fab若しくはナノボディ)等と、の複合体等)を用いる場合、可溶性のT細胞刺激性サイトカインと細胞外小胞とを、必要に応じて脂質リンカー、ペプチドリンカー等を介して、細胞外小胞の膜に結合させたものであってもよい(例えば、特開2018-104341号公報等に記載の方法を参考にしてもよい)。或いは、可溶性のT細胞刺激性サイトカインのN末端側又はC末端側に所望のタグ(例えば、Hisタグ、FLAGタグ、PNEタグを付加したもの(該タグは、例えば、他の構成要素とともに融合タンパク質として発現させてもよいし、別途用意した可溶性のT細胞刺激性サイトカインに、必要に応じてリンカー等を介して結合させてもよい)と、該タグに対する抗体又はその抗原結合性フラグメント(例えば、scFv、Fab若しくはナノボディ)等を含むタンパク質(例えば、必要に応じてリンカー等を介して細胞外小胞の膜に結合した、該タグに対する抗体又はその抗原結合性フラグメント(例えば、scFv、Fab若しくはナノボディ)等自体;細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質又はその膜貫通ドメインのN末端側又はC末端側に、該タグに対するナノボディが結合した、融合タンパク質等)を膜に含む細胞外小胞とを、所望の条件で混合したものであってもよい(例えば、Raj D, et al., Gut., 2019 Jun;68(6):1052-1064等に記載の、PNEタグと該タグに対する抗体等とを用いる方法を参考にしてもよい)。なお、サブユニットの多量体で形成されるT細胞刺激性サイトカインの場合、そのサブユニットの1つが、細胞外小胞の膜外に提示することが可能なタンパク質であれば、残りのサブユニットは膜外に提示可能な態様である必要はない。そのサブユニットの1つが、細胞外小胞の膜外に提示することが可能なタンパク質であれば、他のサブユニットを添加又は共発現させることにより、機能的なT細胞刺激性サイトカインが細胞外小胞の膜外に構築されうる。
T細胞共刺激分子
 本明細書中で用いられる「T細胞共刺激分子」とは、CD28、CD134等のT細胞の膜上に存在する分子と相互作用することで、T細胞の活性化等に寄与しうる分子を意味する。T細胞共刺激分子としては、これらに限定されるものではないが、例えば、CD80、CD86等の分子、又はこれらの細胞外ドメイン若しくはその機能的なフラグメント;抗CD28抗体、抗CD134抗体等の抗体、又はこれらの抗原結合性フラグメント(例えば、scFv、Fab若しくはナノボディ)等;これらと、他のタンパク質の膜貫通ドメイン若しくは抗体のFc部分等との融合タンパク質(若しくは複合体、会合体)等が挙げられる。
 本明細書中に記載のT細胞共刺激分子は、任意の動物種由来のものであってもよい。例えば、マウス、ラット、ハムスター、モルモット等のげっ歯類;ウサギ等のウサギ目;ブタ、ウシ、ヤギ、ウマ、ヒツジ等の有蹄類;イヌ、ネコ等のネコ目;ヒト、サル、アカゲザル、カニクイザル、マーモセット、オランウータン、チンパンジー等の霊長類等の哺乳動物等の動物に由来するものが挙げられる。本明細書中に記載のT細胞共刺激分子は、好ましくは、げっ歯類又は哺乳類動物に由来するものであり、より好ましくは、マウス又はヒトに由来するものである。
 本明細書中に記載のT細胞共刺激分子は、上述した機能を発揮することができるものである限り、その野生型のアミノ酸配列(例えば、CD80の場合、例えば配列番号67等)に対して、アミノ酸配列同一性が、80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のものであってもよい。或いは、本明細書中に記載のT細胞共刺激分子は、その機能を発揮することができるものである限り、その野生型のアミノ酸配列に対して、1個又は複数個のアミノ酸の欠失、挿入、付加及び/又は置換等されたものであってもよい。
 本明細書中で用いられる「T細胞共刺激分子を含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能なタンパク質」とは、T細胞共刺激分子を少なくとも含み、T細胞の膜上に存在する分子と相互作用可能なタンパク質を意味する。即ち、少なくともT細胞共刺激分子中に存在するT細胞と相互作用可能な部分が、細胞外小胞の膜外に位置していることを意味する。「T細胞共刺激分子を含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能なタンパク質」は、これが細胞外小胞の膜に発現するように、プラスミド等を用いて発現させたものであってもよい。或いは、「T細胞共刺激分子を含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能なタンパク質」は、可溶性のT細胞共刺激分子(これらに限定されるものではないが、例えば、CD80の細胞外ドメインと抗体のFc部分との融合タンパク質;抗CD28抗体、又はその抗原結合性フラグメント(例えば、scFv、Fab若しくはナノボディ)等)を用いる場合、可溶性のT細胞共刺激分子と細胞外小胞とを、必要に応じて脂質リンカー、スペーサー配列等を介して、細胞外小胞の膜に結合させたものであってもよい(例えば、特開2018-104341号公報等に記載の方法を参考にしてもよい)。或いは、可溶性のT細胞共刺激分子のN末端側又はC末端側に所望のタグ(例えば、Hisタグ、FLAGタグ、PNEタグを付加したもの(該タグは、例えば、他の構成要素とともに融合タンパク質として発現させてもよいし、別途用意した可溶性のT細胞共刺激分子に、必要に応じてリンカー等を介して結合させてもよい)と、該タグに対する抗体又はその抗原結合性フラグメント(例えば、scFv、Fab若しくはナノボディ)等を含むタンパク質(例えば、必要に応じてリンカー等を介して細胞外小胞の膜に結合した、該タグに対する抗体又はその抗原結合性フラグメント(例えば、scFv、Fab若しくはナノボディ)等自体;細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質又はその膜貫通ドメインのN末端側又はC末端側に、該タグに対するナノボディが結合した、融合タンパク質等)を膜に含む細胞外小胞とを、所望の条件で混合したものであってもよい(例えば、Raj D, et al., Gut., 2019 Jun;68(6):1052-1064等に記載の、PNEタグと該タグに対する抗体等とを用いる方法を参考にしてもよい)。
 本明細書中で用いられる「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」としては、細胞外小胞の膜に発現することが可能なものである限り、任意の膜タンパク質又はその膜貫通ドメインを選択することができる。「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質又はその膜貫通ドメイン」は、細胞外小胞(例えば、エクソソーム等)に発現しうることが知られている膜タンパク質(例えば、テトラスパニン、CD58、ICAM-1、PTGFRN(例えば、非特許文献1、国際公開第2019/183578号等を参照)等)、又はこれらの膜貫通ドメイン等が好ましい。
 本明細書中で用いられる「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」としては、細胞外小胞の膜に結合することが可能なものである限り、任意のタンパク質又はそのドメインを選択することができる。「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」は、細胞外小胞(例えば、エクソソーム等)の膜に結合しうることが知られているもの(例えば、MFG-E8、又はそのドメイン(例えば、Alain Delcayre, et al., Blood Cells, Molecules, and Diseases 35 (2005) 158-168に記載のMFG-E8のC1、C2ドメイン))等が好ましい。
 本明細書中に記載の「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」は、任意の動物種由来のものであってもよい。例えば、マウス、ラット等のげっ歯類;ウサギ等のウサギ目;ブタ、ウシ、ヤギ、ウマ、ヒツジ等の有蹄類;イヌ、ネコ等のネコ目;ヒト、サル、アカゲザル、カニクイザル、マーモセット、オランウータン、チンパンジー等の霊長類等の哺乳動物等の動物に由来するものが挙げられる。本明細書中に記載の「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」は、好ましくは、げっ歯類又は哺乳類動物に由来するものであり、より好ましくは、マウス又はヒトに由来するものである。
 非特許文献2によると、哺乳動物の細胞外小胞のマーカーは以下のように分類される。
 細胞外小胞のマーカータンパク質として用いることのできる膜タンパク質又はGPIアンカータンパク質としては、
1)組織非特異的なもの
 テトラスパニン(CD63,CD9,CD81,CD82),他の複数膜貫通型の膜タンパク質(CD47やヘテロ3量体Gタンパク質(GNA:Guanine nucleotide-binding proteins)など)
 MHC クラスI(HLA-A/B/C,H2-K/D/Q),
インテグリン(ITGA/ITGB)、トランスフェリン受容体(TFR2);
 LAMP1/2;
 ヘパラン硫酸プロテオグリカン(シンデカン(SDC)を含む);
 細胞外マトリックスメタロプロテアーゼ誘導物質(EMMPRIN)(BSG又はCD147ともいう);
 ADAM10;
 GPIアンカー型の5’ヌクレオチダーゼであるCD73(NT5E),
 GPIアンカー型の補体結合タンパク質であるCD55及びCD59;
 ソニックヘッジホッグタンパク質(SHH)
2)細胞/組織特異的なもの
 いくつかのテトラスパニン:TSPAN8(上皮細胞特異的)、CD37及びCD53(白血球特異的);
 PECAM1(内皮細胞特異的);
 ERBB2(乳癌特異的);
 EPCAM(上皮性特異的);
 CD90(THY1)(間葉系幹細胞特異的);
 CD45(PTPRC)(免疫細胞特異的)、CD41(ITGA2B)又はCD42a(GP9)(血小板特異的);
 グリコホリンA(GYPA)(赤血球特異的);
 CD14(単球特異的),MHCクラスII(HLA-DR/DP/DQ,H2-A);
 CD3(T細胞特異的);
 アセチルコリンエステラーゼ/AChE-S(神経細胞特異的)、AChE-E(赤血球特異的);
 アミロイドβA4/APP(神経細胞特異的);
などが挙げられる。
 従って、これらに限定しないが、細胞外小胞のマーカーであるタンパク質を本発明における「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質」として用いてもよい。
 本明細書中で用いられる「テトラスパニン」とは、テトラスパニンファミリーに属するタンパク質(これらに限定されるものではないが、例えば、CD9、CD53、CD63、CD81、CD82、CD151等)を意味する。テトラスパニンは、通常、N末端側から、膜貫通ドメイン1(以下、「TM1」ともいう。)、小型細胞外ループ(以下、「SEL」ともいう。)、膜貫通ドメイン2(以下、「TM2」ともいう。)、小型細胞内ループ(以下、「SIL」ともいう。)、膜貫通ドメイン3(以下、「TM3」ともいう。)、大型細胞外ループ(以下、「LEL」ともいう。)、及び膜貫通ドメイン4(以下、「TM4」ともいう。)を有することから、4回膜貫通型であり、かつ、N末端側及びC末端側の両方が細胞質側に存在する。例えば、テトラスパニンがマウスCD63(アミノ酸配列 1~238:配列番号27)の場合、通常、アミノ酸配列 約1~約110において、TM1、SEL、TM2、SIL及びTM3を含み、アミノ酸配列 約111~約200において、LELを含み、アミノ酸配列 約201~約238において、TM4を含みうる。
 本明細書中に記載の「テトラスパニン」における各ドメイン(例えば、TM1、SEL、SIL、LTL等)は、同一のテトラスパニン由来のものであってもよいし、全部又は一部が異なるテトラスパニン由来のものであってもよい。
 本明細書中に記載のテトラスパニンは、細胞外小胞の膜に発現することが可能なものである限り、その野生型のアミノ酸配列(例えば、全長のCD9の場合、例えば配列番号21等;全長のCD63の場合、例えば配列番号27等;全長のCD81の場合、例えば配列番号15等)に対して、アミノ酸配列同一性が、80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のものであってもよい。或いは、本明細書中に記載のテトラスパニンは、細胞外小胞の膜に発現することが可能なものである限り、その野生型のアミノ酸配列に対して、1個又は複数個のアミノ酸の欠失、挿入、付加及び/又は置換等されたものであってもよい。
 本明細書中に記載のテトラスパニンの部分配列(例えば、各ドメイン;TM1、SEL、TM2、SIL及びTM3を含む部分配列(例えば、CD63の場合、配列番号57等;CD81の場合、配列番号61等);TM4を含む部分配列(例えば、CD63の場合、配列番号59等;CD81の場合、配列番号63等))は、その野生型のアミノ酸配列に対して、アミノ酸配列同一性が、80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のものであってもよい。或いは、本明細書中に記載のテトラスパニンの部分配列は、その野生型のアミノ酸配列に対して、1個又は複数個のアミノ酸の欠失、挿入、付加及び/又は置換等されたものであってもよい。
 本明細書中に記載のMFG-E8は、細胞外小胞の膜に結合することが可能なものである限り、その野生型のアミノ酸配列(例えば、配列番号49等)に対して、アミノ酸配列同一性が、80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のものであってもよい。或いは、本明細書中に記載のMFG-E8は、細胞外小胞の膜に結合することが可能なものである限り、その野生型のアミノ酸配列に対して、1個又は複数個のアミノ酸の欠失、挿入、付加及び/又は置換等されたものであってもよい。
 本明細書中に記載のCD58、PTGFRN等は、細胞外小胞の膜に発現することが可能なものであるか、又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なものである限り、その野生型のアミノ酸配列に対して、アミノ酸配列同一性が、80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のものであってもよい。或いは、本明細書中に記載のCD58、PTGFRN等は、細胞外小胞の膜に発現することが可能なものであるか、又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なものである限り、その野生型のアミノ酸配列に対して、1個又は複数個のアミノ酸の欠失、挿入、付加及び/又は置換等されたものであってもよい。
スペーサー配列
 本明細書中で用いられる「スペーサー配列」とは、2以上のタンパク質又はその部分配列若しくはドメイン等の間に存在する、少なくとも1つのアミノ酸残基を有する任意の配列を意味する。スペーサー配列は、例えば、2以上のタンパク質又はその部分配列若しくはドメイン等を連結する際に使用されうる。スペーサー配列は、ペプチドリンカーを包含する。スペーサー配列は、アミノ酸残基の長さとして、通常、1~約50であり、好ましくは、約2~約28であり、より好ましくは、約4~約25である。スペーサー配列としては、これらに限定されるものではないが、例えば、(GGGXS)(式中、Xは出現するごとに独立して、A又はGであり、nは、1~8であり、mは、0~3である)(例えば、配列番号5、11、29、39等);(GGGS)(式中、nは、1~10であり、mは、0~3である);T(GGX)(式中、Xは出現するごとに独立して、S又はTであり、nは、1~8であり、mは、0~3であり、aは、0又は1であり、bは、0又は1である)(例えば、配列番号77等);等が挙げられる。
本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞
 本発明の一実施態様では、抗原提示MHC分子及びT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示する細胞外小胞を提供する(図2J(1)にそのモデルを例示する)。
 かかる細胞外小胞は、以下の(A)と(B)に規定されるタンパク質を膜に含むことによって、抗原提示MHC分子及びT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示させてもよいし、(D)に規定されるタンパク質を膜に含むことによって、抗原提示MHC分子及びT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示させてもよい。
 あるいは、単離した細胞外小胞にあとから、その膜表面に抗原提示MHC分子及びT細胞刺激性サイトカインを付着させてもよい。付着させる方法は特に限定しないが、抗原提示MHC分子及びT細胞刺激性サイトカインに各々リン脂質を結合し、細胞外小胞の膜に新脂質部分を取り込ませることにより、膜表面に抗原提示MHC分子及びT細胞刺激性サイトカインを付着させてもよい。細胞外小胞にはフォスファチジルセリンが表面に存在している。従って、フォスファチジルセリンと結合するMFG-E8に、提示させたい抗原提示MHC分子又はT細胞刺激性サイトカインを融合させたタンパク質を各々合成精製して、その融合タンパク質と細胞外小胞を混合することにより、膜表面に抗原提示MHC分子及びT細胞刺激性サイトカインを提示する細胞外小胞を作製することができる。また、ペプチドネオエピトープ(PNE)ナノボディをあらかじめ発現させた細胞外小胞に、後からPNEtagを付けた抗原提示MHC分子及びT細胞刺激性サイトカインを加えて細胞外小胞の膜表面に提示させてもよい。ストレプトアビジンを発現させた細胞外小胞にビオチン化した抗原提示MHC分子及びT細胞刺激性サイトカインを加えて、細胞外小胞の膜表面に提示させてもよい。
 本発明の一実施態様では、複数種類(2、3、4、5種)の抗原提示MHC分子及び複数種類(2、3、4、5種)のT細胞刺激性サイトカイン(各々のT細胞刺激性サイトカインを識別するために、以下、第一のT細胞刺激性サイトカイン、第二のT細胞刺激性サイトカイン、それ以上のT細胞刺激性サイトカイン等と呼称する場合がある)を膜外に提示する細胞外小胞であってもよい。あるいは1種類の抗原提示MHC分子と複数種類の細胞刺激性サイトカインを膜外に提示する細胞外小胞であってもよい(図2J(3)に1種類の抗原提示MHC分子と2種類のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示する細胞外小胞のモデルを例示する)。
 本発明の一実施態様では、抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原提示MHC分子を含む、該抗原を膜外に提示可能なタンパク質;及び
(B)第1のT細胞刺激性サイトカインを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能なタンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞を提供する。
構成要件(A)
 上記(A)の「抗原提示MHC分子を含む、該抗原を膜外に提示可能なタンパク質」は、抗原を細胞外小胞の膜外に提示可能なタンパク質である限り、抗原提示MHC分子の他に、他のタンパク質又はそのドメイン等を含んでいてもよい。
 本発明の一実施態様では、上記(A)は、抗原提示MHC分子と、細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメインを含む、該抗原を膜外に提示可能な融合タンパク質又はタンパク質複合体である。
 本発明の一実施態様では、上記(A)は、抗原提示MHC分子と、テトラスパニン若しくはその膜貫通ドメイン又はMFG-E8若しくはそのドメインとを含む、該抗原を膜外に提示可能な融合タンパク質又はタンパク質複合体である。
 本発明の一実施態様では、上記(A)は、
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、N末端側から、
 (A-1)MHC分子拘束性抗原ペプチド、
 (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (A-3)単鎖MHC分子、
 (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質、又は
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHC分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
  (A-3)MHCクラスIα鎖、βミクログロブリン、MHCクラスIIα鎖、又はMHCクラスIIβ鎖
  (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
  (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質と、
 (A-6)βミクログロブリン、MHCクラスIα鎖、MHCクラスIIβ鎖、又はMHCクラスIIα鎖のアミノ酸配列を含む、タンパク質と
を含む、タンパク質複合体
である。
 本発明の一実施態様では、上記(A)は、
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、N末端側から、
 (A-1)MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチド、
 (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (A-3)単鎖MHCクラスI分子、
 (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、該抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質である。
 また、本発明の一実施態様では、上記(A)は、
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、N末端側から、
 (A-1)MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド、
 (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (A-3)単鎖MHCクラスII分子、
 (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、該抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質である。
 本発明の一実施態様では、上記(A)は、
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
  (A-3)βミクログロブリン、
  (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
  (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質と、
 (A-6)MHCクラスIα鎖のアミノ酸配列を含む、タンパク質と
を含む、タンパク質複合体である。
 また、本発明の一実施態様では、上記(A)は、
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
  (A-3)MHCクラスIα鎖、
  (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
  (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質と、
 (A-6)βミクログロブリンのアミノ酸配列を含む、タンパク質と
を含む、タンパク質複合体である。
 また、本発明の一実施態様では、上記(A)は、
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
  (A-3)MHCクラスIIβ鎖、
  (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
  (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質と、
 (A-6)MHCクラスIIα鎖のアミノ酸配列を含む、タンパク質と
を含む、タンパク質複合体である。
 また、本発明の一実施態様では、上記(A)は、
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
  (A-3)MHCクラスIIα鎖、
  (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
  (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質と、
 (A-6)MHCクラスIIβ鎖のアミノ酸配列を含む、タンパク質と
を含む、タンパク質複合体である。
 本発明の一実施態様では、上記(A-3)が「単鎖MHCクラスI分子」の場合、「単鎖MHCクラスI分子」は、N末端側から、βミクログロブリン(例えば、配列番号7等、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)、存在していてもよいスペーサー配列(存在する場合、例えば、配列番号5、11、29、39、77等)、及びMHCクラスIα鎖(例えば、配列番号9等、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)からなる。本発明の一実施態様では、上記(A-3)が「単鎖MHCクラスI分子」の場合、「単鎖MHCクラスI分子」は、配列番号65、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のものである。
 本発明の一実施態様では、上記(A-3)が「単鎖MHCクラスII分子」の場合、「単鎖MHCクラスII分子」は、N末端側から、MHCクラスIIβ鎖、存在していてもよいスペーサー配列、及びMHCクラスIIα鎖からなる。
 本発明の一実施態様では、上記(A-3)及び/又は(A-6)が「βミクログロブリン」の場合、「βミクログロブリン」は、配列番号7、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のものである。
 本発明の一実施態様では、上記(A-3)及び/又は(A-6)が「MHCクラスIα鎖」の場合、「MHCクラスIα鎖」は、配列番号9、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のものである。
 本発明の一実施態様では、上記(A-3)及び/又は(A-6)が「MHCクラスIIβ鎖」の場合、「MHCクラスIIβ鎖」は、配列番号37、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のものである。
 本発明の一実施態様では、上記(A-3)及び/又は(A-6)が「MHCクラスIIα鎖」の場合、「MHCクラスIIα鎖」は、配列番号71、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のものである。
 上記各実施態様における(A-2)及び(A-4)の「存在していてもよいスペーサー配列」は、存在する場合、独立して選択されうる。(A-2)は、存在する場合、例えば、配列番号5、11、29、39、77等のスペーサー配列であってもよい。(A-4)は、存在する場合、例えば、配列番号5、11、29、39、77等のスペーサー配列であってもよい。
 本発明の一実施態様では、上記各実施態様における(A-5)のテトラスパニンは、CD9、CD63及びCD81からなる群より選択される。本発明の一実施態様では、上記各実施態様における(A-5)のテトラスパニンは、CD81(好ましくは、配列番号15等、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)である。
 本発明の一実施態様では、上記(A)は、
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、N末端側から、
 (A-1)MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチド、
 (A-2)配列番号5のスペーサー配列、
 (A-3)配列番号65(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の単鎖MHCクラスI分子、及び
 (A-5)配列番号15(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン
からなるアミノ酸配列である、融合タンパク質である。
 本発明の一実施態様では、上記(A)は、
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)配列番号39のスペーサー配列、
  (A-3)配列番号37(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIβ鎖、及び
  (A-5)配列番号15(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン、
からなるアミノ酸配列である、融合タンパク質と
 (A-6)配列番号71(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIα鎖と
を含む、タンパク質複合体である。
構成要件(B)
 上記(B)の「第1のT細胞刺激性サイトカインを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能なタンパク質」は、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能なタンパク質である限り、第1のT細胞刺激性サイトカインの他に、他のタンパク質若しくはそのドメイン等を含んでいてもよい。
 本発明の一実施態様では、上記(B)は、第1のT細胞刺激性サイトカインと、細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメインを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質である。
 本発明の一実施態様では、上記(B)は、
(B)第1のT細胞刺激性サイトカインと、テトラスパニンの部分配列とを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、該テトラスパニンの部分配列が、2つの膜貫通ドメインを少なくとも有し、該第1のT細胞刺激性サイトカインが、該2つの膜貫通ドメインの間に配置されている、融合タンパク質、又は
(B)第1のT細胞刺激性サイトカインと、MFG-E8又はそのドメインとを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質である。
 本明細書中で用いられる「テトラスパニンの部分配列が、2つの膜貫通ドメインを少なくとも有し、該第1のT細胞刺激性サイトカインが、該2つの膜貫通ドメインの間に配置されている」とは、例えば、テトラスパニンの部分配列がテトラスパニンのTM1とTM2とを少なくとも含み、かつ該第1のT細胞刺激性サイトカインがTM1とTM2との間に配置されている場合、テトラスパニンの部分配列がテトラスパニンのTM3とTM4とを少なくとも含み、かつ該第1のT細胞刺激性サイトカインがTM3とTM4との間に配置されている場合等が挙げられる。
 本発明の一実施態様では、上記(B)は、
(B)N末端側から、
 (B-1)N末端側から、膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3を含むテトラスパニンの部分配列、
 (B-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (B-3)第1のT細胞刺激性サイトカイン、
 (B-4)存在していてもよいスペーサー配列、並びに
 (B-5)膜貫通ドメイン4を含むテトラスパニンの部分配列
からなるアミノ酸配列を含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質、又は
(B)N末端側から、
 (B-3)第1のT細胞刺激性サイトカイン、
 (B-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (B-5)MFG-E8
からなるアミノ酸配列を含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質である。
 国際公開第2016/139354号で開示されているとおり、テトラスパニンは、その大型細胞外ループ(LEL)が全体的に又は部分的に異なるアミノ酸配列に置き換えられていても、膜に発現しうることが報告されている。したがって、(B-3)の第1のT細胞刺激性サイトカインは、存在していてもよいスペーサー配列を介して、テトラスパニンのLELに替えて挿入されていてもよいし、テトラスパニンのLEL中又はその部分配列中の任意の位置に挿入されていてもよい。
 (B-1)の「膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3を含むテトラスパニンの部分配列」は、通常、テトラスパニンの膜貫通ドメイン4を含まない。(B-1)の「膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3を含むテトラスパニンの部分配列」は、大型細胞外ループ又はその部分配列を含んでいてもよい。(B-1)における、膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3の各ドメインは、それぞれ別のテトラスパニン由来の配列であってもよいし、全て同じテトラスパニン由来の配列であってもよい。好ましくは、(B-1)における、膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3の各ドメインは、全て同じテトラスパニン由来の配列である。
 本発明の一実施態様では、(B-1)における、膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3を含むテトラスパニンの部分配列が、全て、CD9由来、CD63由来又はCD81由来の部分配列である。本発明の一実施態様では、(B-1)の膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3を含むテトラスパニンの部分配列は、全てCD63又はCD81由来の部分配列(好ましくは、配列番号57又は配列番号61等、或いはこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)である。
 (B-5)の「膜貫通ドメイン4を含むテトラスパニンの部分配列」は、通常、テトラスパニンの膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3を含まない。(B-5)の「膜貫通ドメイン4を含むテトラスパニンの部分配列」は、大型細胞外ループ又はその部分配列を含んでいてもよい。(B-5)における膜貫通ドメイン4は、(B-1)とは別のテトラスパニン由来の配列であってもよいし、(B-1)と同じテトラスパニン由来の配列であってもよい。好ましくは、(B-5)における膜貫通ドメイン4は、(B-1)と同じテトラスパニン由来の配列である。本発明の一実施態様では、(B-5)における、膜貫通ドメイン4を含むテトラスパニンの部分配列が、CD9由来、CD63由来又はCD81由来の部分配列である。本発明の一実施態様では、(B-5)の膜貫通ドメイン4を含むテトラスパニンの部分配列は、CD63又はCD81由来の部分配列(好ましくは、配列番号59又は配列番号63等、或いはこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)である。
 本発明の一実施態様では、(B-1)の「膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3を含むテトラスパニンの部分配列」は、CD63由来の部分配列(好ましくは、配列番号57等、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)であり、かつ、(B-5)の「膜貫通ドメイン4を含むテトラスパニンの部分配列」が、CD63由来の部分配列(好ましくは、配列番号59等、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)である。本発明の一実施態様では、(B-1)の「膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3を含むテトラスパニンの部分配列」は、CD81由来の部分配列(好ましくは、配列番号61等、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)であり、かつ、(B-5)の「膜貫通ドメイン4を含むテトラスパニンの部分配列」が、CD81由来の部分配列(好ましくは、配列番号63等、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)である。
 上記(B)の融合タンパク質がテトラスパニンの部分配列を含む融合タンパク質であり、かつ上記(A)及び後述の場合により存在する(C)のうちの1以上がテトラスパニンのアミノ酸配列を含む融合タンパク質を含む場合、上記(B)の融合タンパク質は、上記(A)及び/又は後述の場合により存在する(C)の融合タンパク質と別個の融合タンパク質であってもよいし、上記(A)及び/又は後述の場合により存在する(C)の融合タンパク質の一部を構成していてもよい。上記(B)の融合タンパク質が「上記(A)及び/又は後述の場合により存在する(C)の融合タンパク質の一部を構成」するとは、例えば、(A-5)のテトラスパニンが(B)の融合タンパク質を構成する場合、及び/又は後述の場合により存在する(C-3)のテトラスパニンが(B)の融合タンパク質を構成する場合等が挙げられる。
 上記(B-5)の「MFG-E8」は、好ましくは、配列番号49等、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のものである。
 本発明の一実施態様では、上記各実施態様の(B-3)における第1のT細胞刺激性サイトカインが、IL-2、IL-4、IL-6、IL-12又はTGF-βである。本発明の一実施態様では、上記各実施態様の(B-3)における第1のT細胞刺激性サイトカインが、IL-2(好ましくは、配列番号25、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)、IL-4(好ましくは、配列番号53、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)、又はTGF-β(好ましくは、配列番号73、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)である。
 上記各実施態様の(B-2)及び(B-4)における「存在していてもよいスペーサー配列」は、存在する場合、独立して選択されうる。(B-2)は、存在する場合、例えば、配列番号5、11、29、39、77等のスペーサー配列であってもよい。(B-4)は、存在する場合、例えば、配列番号5、11、29、39、77等のスペーサー配列であってもよい。
 本発明の一実施態様では、上記(B)は、
(B)N末端側から、
 (B-1)配列番号57(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列、
 (B-2)配列番号29のスペーサー配列、
 (B-3)配列番号25(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のIL-2である、第1のT細胞刺激性サイトカイン
 (B-4)配列番号29のスペーサー配列、並びに
 (B-5)配列番号59(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列
からなるアミノ酸配列である、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質である。
 本発明の一実施態様では、上記(B)は、配列番号31(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質である。
本発明の一実施態様では、上記(B)は、
(B)N末端側から、
 (B-1)配列番号61(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列、
 (B-2)配列番号29のスペーサー配列、
 (B-3)配列番号53(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のIL-4である、第1のT細胞刺激性サイトカイン、
 (B-4)配列番号29のスペーサー配列、並びに
 (B-5)配列番号63(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列
からなるアミノ酸配列である、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質である。
 本発明の一実施態様では、上記(B)は、配列番号55(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質である。
本発明の一実施態様では、上記(B)は、
(B)N末端側から、
 (B-3)配列番号73(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のTGF-βである、第1のT細胞刺激性サイトカイン、
 (B-4)配列番号29のスペーサー配列、及び
 (B-5)配列番号49(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMFG-E8
からなるアミノ酸配列である、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質である。
 本発明の一実施態様では、上記(B)は、配列番号75(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質である。
第2(又はそれ以上)のT細胞刺激性サイトカイン
 本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞は、第1のT細胞刺激性サイトカインに加えて、第2(又はそれ以上)のT細胞刺激性サイトカインを更に含んでいてもよい。したがって、本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞は、第2のT細胞刺激性サイトカインを更に含む。特に、抗原提示可能なMHC分子が抗原提示可能なMHCクラスII分子である場合、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞は、第2のT細胞刺激サイトカインを含むことが好ましい。
 第2(又はそれ以上)のT細胞刺激性サイトカインは、例えば、上記(B)中に挿入されていてもよい(例えば、(B-3)の「第1のT細胞刺激性サイトカイン」のN末端側及び/又はC末端側に、必要に応じてスペーサー配列等を介して、第2(又はそれ以上)のT細胞刺激性サイトカインが連結されていてもよい)。或いは、第2(又はそれ以上)のT細胞刺激性サイトカインは、本明細書中に記載の構成要件(B)と同様の構成を有することにより、本明細書中に記載の構成要件(B)のタンパク質(又は融合タンパク質)とは別個のタンパク質(又は融合タンパク質)として、第1のT細胞刺激性サイトカインと同様に、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞の膜に含まれていてもよい。
 本発明の一実施態様では、第2のT細胞刺激性サイトカインが、IL-2、IL-4、IL-6、IL-12又はTGF-βである。本発明の一実施態様では、第2のT細胞刺激性サイトカインが、TGF-β(好ましくは、配列番号73、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)である。
 本発明の一実施態様では、第1のT細胞刺激性サイトカインが、IL-2又はIL-4(好ましくは、配列番号25又は配列番号53、或いはこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)であり、かつ第2のT細胞刺激性サイトカインが、TGF-β(好ましくは、配列番号73、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)である。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原提示MHC分子と、細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメインとを含む、該抗原を膜外に提示可能な融合タンパク質又はタンパク質複合体;及び
(B)第1のT細胞刺激性サイトカインと、細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメインとを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞である。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原提示MHC分子と、テトラスパニン若しくはその膜貫通ドメイン又はMFG-E8若しくはそのドメインとを含む、該抗原を膜外に提示可能な融合タンパク質又はタンパク質複合体;及び
(B)第1のT細胞刺激性サイトカインと、テトラスパニンの部分配列とを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、該テトラスパニンの部分配列が、2つの膜貫通ドメインを少なくとも有し、該第1のT細胞刺激性サイトカインが、該2つの膜貫通ドメインの間に配置されている、融合タンパク質、又は
(B)第1のT細胞刺激性サイトカインと、MFG-E8又はそのドメインとを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞である。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、N末端側から、
 (A-1)MHC分子拘束性抗原ペプチド、
 (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (A-3)単鎖MHC分子、
 (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質、又は
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHC分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
  (A-3)MHCクラスIα鎖、βミクログロブリン、MHCクラスIIα鎖、又はMHCクラスIIβ鎖
  (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
  (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質と、
 (A-6)βミクログロブリン、MHCクラスIα鎖、MHCクラスIIβ鎖、又はMHCクラスIIα鎖のアミノ酸配列を含む、タンパク質と
を含む、タンパク質複合体;並びに
(B)N末端側から、
 (B-1)N末端側から、膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3を含むテトラスパニンの部分配列、
 (B-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (B-3)第1のT細胞刺激性サイトカイン、
 (B-4)存在していてもよいスペーサー配列、並びに
 (B-5)膜貫通ドメイン4を含むテトラスパニンの部分配列
からなるアミノ酸配列を含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質、又は
(B)N末端側から、
 (B-3)第1のT細胞刺激性サイトカイン、
 (B-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (B-5)MFG-E8
からなるアミノ酸配列を含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞である。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、N末端側から、
 (A-1)MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチド、
 (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (A-3)単鎖MHCクラスI分子、
 (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質
を含む、抗原提示細胞外小胞である。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
  (A-3)MHCクラスIIβ鎖、
  (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
  (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質と、
 (A-6)MHCクラスIIα鎖のアミノ酸配列を含む、タンパク質と
を含む、タンパク質複合体;
を含む、抗原提示細胞外小胞である。
 本発明の一実施態様では、第1のT細胞刺激性サイトカインが、IL-2、IL-4、IL-6、IL-12又はTGF-βである、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞を提供する。
 本発明の一実施態様では、さらにT細胞共刺激分子をその膜外に提示する、本明細書中に記載の細胞外小胞である(図2J(2)のそのモデルを例示する)。
  かかる細胞外小胞は、以下の(C)に規定されるタンパク質を膜に含むことによって、T細胞共刺激分子を膜外に提示させてもよい。
 あるいは、単離した細胞外小胞にあとから、その膜表面にT細胞共刺激分子を付着させてもよい。付着させる方法は特に限定しないが、T細胞共刺激分子に各々リン脂質を結合し、細胞外小胞の膜に新脂質部分を取り込ませることにより、膜表面に抗原提示MHC分子及びT細胞刺激性サイトカインを付着させてもよい。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(C)T細胞共刺激分子を含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能なタンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞である。
構成要件(C)
 上記(C)の「T細胞共刺激分子を含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能なタンパク質」は、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能なタンパク質である限り、T細胞共刺激分子の他に、他のタンパク質又はそのドメイン等を含んでいてもよい。
 本発明の一実施態様では、上記(C)は、T細胞共刺激分子と、細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメインとを含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質である。
 本発明の一実施態様では、上記(C)は、T細胞共刺激分子と、テトラスパニン若しくはその膜貫通ドメイン又はMFG-E8若しくはそのドメインとを含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質である。
 本発明の一実施態様では、上記(C)は、
(C)N末端側から、
 (C-1)T細胞共刺激分子、
 (C-2)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (C-3)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質である。
 本発明の一実施態様では、(C-1)のT細胞共刺激分子が、CD80又はCD86である。本発明の一実施態様では、(C-1)におけるT細胞共刺激分子が、CD80(好ましくは、配列番号67等、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)である。
 上記(C-2)の「存在していてもよいスペーサー配列」は、存在する場合、例えば、配列番号5、11、29、39、77等のスペーサー配列であってもよい。
 本発明の一実施態様では、(C-3)のテトラスパニンは、CD9、CD63及びCD81からなる群より選択される。本発明の一実施態様では、(C-3)におけるテトラスパニンは、CD9(好ましくは、配列番号21等、又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)である。
 本発明の一実施態様では、上記(C)は、
(C)N末端側から、
 (C-1)配列番号67(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のCD80である、T細胞共刺激分子、及び
 (C-3)配列番号21(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン
からなるアミノ酸配列である、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質である。
 本発明の一実施態様では、上記(C)は、配列番号69(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質である。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、N末端側から、
 (A-1)MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチド、
 (A-2)配列番号5のスペーサー配列、
 (A-3)配列番号65(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の単鎖MHCクラスI分子、及び
 (A-5)配列番号15(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン
からなるアミノ酸配列である、融合タンパク質;並びに
(B)N末端側から、
 (B-1)配列番号57(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列、
 (B-2)配列番号29のスペーサー配列、
 (B-3)配列番号25(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のIL-2である、第1のT細胞刺激性サイトカイン、
 (B-4)配列番号29のスペーサー配列、及び
 (B-5)配列番号59(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列
からなるアミノ酸配列である、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞である。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、N末端側から、
 (A-1)MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチド、
 (A-2)配列番号5のスペーサー配列、
 (A-3)配列番号65(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の単鎖MHCクラスI分子、及び
 (A-5)配列番号15(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン
からなるアミノ酸配列である、融合タンパク質;並びに
(B)配列番号31(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞である。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、N末端側から、
 (A-1)MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチド、
 (A-2)配列番号5のスペーサー配列、
 (A-3)配列番号65(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の単鎖MHCクラスI分子、及び
 (A-5)配列番号15(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン
からなるアミノ酸配列である、融合タンパク質;
(B)N末端側から、
 (B-1)配列番号57(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列、
 (B-2)配列番号29のスペーサー配列、
 (B-3)配列番号25(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のIL-2である、第1のT細胞刺激性サイトカイン、
 (B-4)配列番号29のスペーサー配列、及び
 (B-5)配列番号59(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列
からなるアミノ酸配列である、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;並びに
(C)N末端側から、
 (C-1)配列番号67(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のCD80である、T細胞共刺激分子、及び
 (C-3)配列番号21(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン
からなるアミノ酸配列である、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞である。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、N末端側から、
 (A-1)MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチド、
 (A-2)配列番号5のスペーサー配列、
 (A-3)配列番号65(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の単鎖MHCクラスI分子、及び
 (A-5)配列番号15(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン
からなるアミノ酸配列である、融合タンパク質;
(B)配列番号31(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;並びに
(C)配列番号69(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞である。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)配列番号39のスペーサー配列、
  (A-3)配列番号37(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIβ鎖、及び
  (A-5)配列番号15(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン、
からなるアミノ酸配列である、融合タンパク質と
 (A-6)配列番号71(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIα鎖と
からなる、タンパク質複合体;
(B)N末端側から、
 (B-1)配列番号57(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列、
 (B-2)配列番号29のスペーサー配列、
 (B-3)配列番号25(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のIL-2である、第1のT細胞刺激性サイトカイン
 (B-4)配列番号29のスペーサー配列、及び
 (B-5)配列番号59(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列
からなるアミノ酸配列である、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;並びに
(C)N末端側から、
 (C-1)配列番号67(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のCD80である、T細胞共刺激分子、及び
 (C-3)配列番号21(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン
からなるアミノ酸配列である、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞である。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)配列番号39のスペーサー配列、
  (A-3)配列番号37(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIβ鎖、及び
  (A-5)配列番号15(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン、
からなるアミノ酸配列である、融合タンパク質と
 (A-6)配列番号71(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIα鎖と
からなる、タンパク質複合体;
(B)配列番号31(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;及び
(C)配列番号69(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞である。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)配列番号39のスペーサー配列、
  (A-3)配列番号37(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIβ鎖、及び
  (A-5)配列番号15(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン、
からなるアミノ酸配列である、融合タンパク質と
 (A-6)配列番号71(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIα鎖と
からなる、タンパク質複合体;
(B)N末端側から、
 (B-1)配列番号57(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列、
 (B-2)配列番号29のスペーサー配列、
 (B-3)配列番号25(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のIL-2である、第1のT細胞刺激性サイトカイン、
 (B-4)配列番号29のスペーサー配列、及び
 (B-5)配列番号59(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列
からなるアミノ酸配列である、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;
(B’)N末端側から、
 (B-3)配列番号73(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のTGF-βである、第2のT細胞刺激性サイトカイン、
 (B-4)配列番号29のスペーサー配列、及び
 (B-5)配列番号49(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMFG-E8
からなるアミノ酸配列である、該第2のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;並びに
(C)N末端側から、
 (C-1)配列番号67(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のCD80である、T細胞共刺激分子、及び
 (C-3)配列番号21(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン
からなるアミノ酸配列である、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞である。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)配列番号39のスペーサー配列、
  (A-3)配列番号37(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIβ鎖、及び
  (A-5)配列番号15(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン、
からなるアミノ酸配列である、融合タンパク質と
 (A-6)配列番号71(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIα鎖と
からなる、タンパク質複合体;
(B)配列番号31(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;
(B’)配列番号75(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該第2のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;並びに
(C)配列番号69(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞である。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)配列番号39のスペーサー配列、
  (A-3)配列番号37(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIβ鎖、及び
  (A-5)配列番号15(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン、
からなるアミノ酸配列である、融合タンパク質と
 (A-6)配列番号71(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIα鎖と
からなる、タンパク質複合体;
(B)N末端側から、
 (B-1)配列番号61(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列、
 (B-2)配列番号29のスペーサー配列、
 (B-3)配列番号53(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のIL-4である、第1のT細胞刺激性サイトカイン
 (B-4)配列番号29のスペーサー配列、及び
 (B-5)配列番号63(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列
からなるアミノ酸配列である、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;並びに
(C)N末端側から、
 (C-1)配列番号67(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のCD80である、T細胞共刺激分子、及び
 (C-3)配列番号21(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン
からなるアミノ酸配列である、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞である。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)配列番号39のスペーサー配列、
  (A-3)配列番号37(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIβ鎖、及び
  (A-5)配列番号15(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン、
からなるアミノ酸配列である、融合タンパク質と
 (A-6)配列番号71(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIα鎖と
からなる、タンパク質複合体;
(B)配列番号55(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;及び
(C)配列番号69(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質;
を含む、抗原提示細胞外小胞である。
 本発明の一実施態様では、上記(A)、(B)及び(C)について、(A)と(B)が融合して、1分子となっていてもよいし、(B)と(C)が融合して、1分子となっていてもよいし、(A)、(B)及び(C)が融合して、1分子となっていてもよい。かかる融合分子は、(A)、(B)及び(C)間にスペーサー配列を含む又は含まない形で1つのタンパク質分子として翻訳されていてもよいし、(A)、(B)及び(C)のタンパク質が化学的に架橋されること(たとえばシステイン残基間のジスルフィド結合)によって融合して1分子となっていてもよい。
 あるいは、上記(A)、(B)及び(C)は、そのタンパク質が細胞外小胞に局在するための要素、すなわち、「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」の部分を共有することにより、機能的に融合していてもよい。
 たとえば本発明の一実施態様において、
(A)と(B)で「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」部分を共有する形で融合した、
 (1)抗原提示MHC分子;
 (2)すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカイン;及び
 (3)「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」;を含む融合タンパク質(D)を含んでいてもよいし;
(A)と(C)で「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」部分を共有する形で融合した、
 (1)抗原提示MHC分子;
 (2)T細胞共刺激分子;及び
 (3)「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」;を含む融合タンパク質(F)を含んでいてもよいし;
(B)と(C)で「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」部分を共有する形で融合した、
 (1)すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカイン;
 (2)T細胞共刺激分子;及び
 (3)「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」;を含む融合タンパク質(G)を含んでいてもよいし;
あるいは
(A)~(C)で「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」部分を共有する形で融合した、
 (1)抗原提示MHC分子;
 (2)すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカイン; 
 (3)T細胞共刺激分子;及び
 (4)「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」;を含む融合タンパク質(E)を含んでいてもよい。
 本発明の一実施態様において、構成要件(A)の「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質」の代わりに、構成要件(B)の「第1のT細胞刺激性サイトカインを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能なタンパク質」を用いて、構成要件(A)と構成要件(B)の機能を具備した融合タンパク質(D)を含む抗原提示細胞外小胞細胞であってよい。
 かかる構成要件(A)と構成要件(B)の機能を具備した融合タンパク質(D)は、
(D)抗原提示MHC分子とすくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカインを含み、該抗原と該T細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質であってもよい。
 前記融合タンパク質は、前記抗原提示MHC分子と、前記すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカインと、細胞外小胞の膜に局在することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはその膜結合ドメインとを含んでもよい。
 構成要件(A)と構成要件(B)の機能を具備した融合タンパク質(D)において、前記細胞外小胞の膜に局在することが可能な膜タンパク質又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質は、テトラスパニン又はMFG-E8であってもよい。
 前記融合タンパク質は、N末端側から、
 (D-1)MHC分子拘束性抗原ペプチド、
 (D-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (D-3)単鎖MHC分子、
 (D-4)存在していてもよいスペーサー配列、
 (D-5)テトラスパニン又はその膜貫通ドメインあるいはMFG-E8又はその膜貫通ドメインと、前記すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカインを含む融合ペプチドを、この順番でコードするアミノ酸配列を含んでもよい。
 前記融合タンパク質は、N末端側から、
 (D-1)テトラスパニン又はその膜貫通ドメインあるいはMFG-E8又はその膜貫通ドメインと、前記すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカインを含む融合ペプチド
 (D-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (D-3)単鎖MHC分子、
 (D-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (D-5)MHC分子拘束性抗原ペプチドを、
この順にコードするアミノ酸配列を含んでもよい。
 ここで、前記融合ペプチドは、N末端側から、
  (1)膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3を含むテトラスパニンの部分配列、
  (2)存在していてもよいスペーサー配列、
  (3)前記すくなくとも1つのT細胞刺激性サイトカイン、
  (4)存在していてもよいスペーサー配列、並びに
  (5)膜貫通ドメイン4を含むテトラスパニンの部分配列
をこの順番でコードするアミノ酸配列を含んでもよい。
 前記融合ペプチドは、N末端側から、
 (1)前記すくなくとも1のT細胞刺激性サイトカイン、
 (2)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (3)MFG-E8
をこの順番でコードするアミノ酸配列を含んでもよい。
 本発明の一実施態様において、MHC分子拘束性抗原ペプチドがMHCクラスI分子拘束性抗原ペプチドであり、前記単鎖MHC分子が、MHCクラスIα鎖の細胞外領域を含んでもよく、前記MHC分子拘束性抗原ペプチドがMHCクラスII分子拘束性抗原ペプチドであり、前記単鎖MHC分子が、MHCクラスIIα鎖の細胞外ドメイン及び/又はMHCクラスIIβ鎖の細胞外ドメインを含んでもよい。
 構成要件(A)と構成要件(B)の機能を具備した融合タンパク質(D)を含む態様において;
 (C)すくなくとも1つのT細胞共刺激分子を含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能なタンパク質をさらにその膜に含んでもよく;
 前記T細胞と相互作用可能なタンパク質が、前記すくなくとも1つのT細胞共刺激分子と、細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメインとを含んでもよく;
 前記T細胞と相互作用可能なタンパク質が、前記すくなくとも1つのT細胞共刺激分子と、テトラスパニン若しくはその膜貫通ドメイン又はMFG-E8若しくはそのドメインとを含んでもよい。
 本発明の一実施態様では、細胞外小胞が、エクソソームである。
 本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞は、その膜内又は膜中に、治療上有益でありうる物質(例えば、低分子化合物、核酸等)が包含されていてもよいし、結合されていてもよい。細胞外小胞の膜内に該物質を封入する方法は、これらに限定されるものではないが、例えば、該物質と本明細書中に記載の細胞外小胞とを好適な溶媒中で混合する方法等が挙げられる。
 本発明の一実施態様では、抗原提示細胞外小胞は、任意のタンパク製剤を含んでもよい。タンパク製剤としては、特に限定しないが、エリスロポエチンなどの天然にも存在しうるタンパク質でも、イムノグロブリン-CTLA4融合タンパクのように天然には存在しない合成タンパク質であってもよく、モノクローナル抗体またはその活性断片でもよい。これらのタンパク製剤は、細胞外小胞の膜に局在することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはその膜結合ドメインとの融合タンパク質として抗原提示細胞外小胞の表面に局在させてもよい。かかる抗原提示細胞外小胞は、融合タンパク質を発現させるためのベクターを、抗原提示細胞外小胞を産生する細胞にトランスフェクションすることにより作製することができる。
 本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞の膜に含まれる各融合タンパク質又はタンパク質複合体あるいはタンパク製剤は、1つ又は複数の検出可能な標識を含んでいてもよい。例えば、融合タンパク質又はタンパク質複合体あるいはタンパク製剤は、従来の方法で、特定のリポータ分子、発蛍光団、放射性材料、又は酵素(例えば、ペルオキシダーゼ、ホスファターゼ)等で標識されていてもよい。これらは、例えば、融合タンパク質又はタンパク質複合体あるいはタンパク製剤の構成要素として、該融合タンパク質又はタンパク質複合体あるいはタンパク製剤のN末端側又はC末端側に連結されていてもよい。
ポリヌクレオチド
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞の膜に含まれる(A)及び(B)、並びに場合により存在する(C)における各融合タンパク質又はタンパク質複合体をコードするポリヌクレオチドを提供する。本発明の一実施態様では、本明細書中で定義される(A)~(G)における各融合タンパク質又はタンパク質複合体をコードするポリヌクレオチドを提供する。
 本明細書中で用いられる「ポリヌクレオチド」は、一本鎖又は二本鎖DNA分子又はRNA分子等を意味する。ポリヌクレオチドには、ゲノムDNA、cDNA、hnRNA、mRNA等、及びこれらの全ての天然に存在するか又は人工的に修飾された誘導体等が含まれる。ポリヌクレオチドは、鎖状であっても、環状であってもよい。
 上述した(A)~(G)における各融合タンパク質又はタンパク質複合体をコードするポリヌクレオチドは、当業者であれば、上記融合タンパク質又はタンパク質複合体のアミノ酸配列を参考に適宜決定しうる。なお、(A)~(G)における各融合タンパク質又はタンパク質複合体のアミノ酸配列は、各融合タンパク質又はタンパク質複合体における各構成要素(例えば、(A)の場合であれば、(A-1)~(A-5)、及び場合により(A-6))のアミノ酸配列を参考に適宜決定しうる。ポリヌクレオチドを決定する際に使用されるコドンの種類は、任意のものを選択することができる。例えば、該ポリヌクレオチドを含むベクターを使用して形質転換させる細胞のコドンの頻度等を考慮して、ポリヌクレオチドを決定してもよい。
 上述した(A)~(G)における各融合タンパク質又はタンパク質複合体をコードするポリヌクレオチドのN末端側には、必要に応じてシグナルペプチド(シグナルシークエンス)をコードするポリヌクレオチドを付加してもよい。
 シグナルペプチドのアミノ酸配列は、任意のものを使用することができ、例えば、発現させようとする融合タンパク質のアミノ酸配列等を考慮して決定してもよい。シグナルペプチドをコードするポリヌクレオチドとしては、例えば、βミクログロブリンのシグナルペプチド(例えば、配列番号1)をコードするポリヌクレオチド(例えば、配列番号2)、MHCクラスIα鎖のシグナルペプチドをコードするポリヌクレオチド、MHCクラスIIα鎖のシグナルペプチドをコードするポリヌクレオチド、MHCクラスIIβ鎖のシグナルペプチド(例えば、配列番号33)をコードするポリヌクレオチド(例えば、配列番号34)等が挙げられる。
 上述した(A)~(G)における各融合タンパク質又はタンパク質複合体の各構成要素(例えば、(A)の場合であれば、(A-1)~(A-5)、及び存在する場合(A-6))、及びシグナルペプチド等のアミノ酸配列、並びにこれらをコードするポリヌクレオチドの情報は、例えば、公知の文献やNCBI(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/guide/)等のデータベースを検索して適宜入手してもよい。また、テトラスパニンの部分配列(例えば、(C-1)、(C-5)における部分配列)におけるアミノ酸配列及びこれをコードするポリヌクレオチドは、国際公開第2016/139354号を参考にしてもよい。
 本発明の一実施態様では、ポリヌクレオチドであって、以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、N末端側から、
 (A-1)MHC分子拘束性抗原ペプチド、
 (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (A-3)単鎖MHC分子、
 (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質、若しくは、
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体を構成する融合タンパク質であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHC分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
  (A-3)MHCクラスIα鎖、βミクログロブリン、MHCクラスIIα鎖、又はMHCクラスIIβ鎖
  (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
  (A-5)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質;
(B)N末端側から、
 (B-1)N末端側から、膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3を含むテトラスパニンの部分配列、
 (B-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (B-3)第1のT細胞刺激性サイトカイン、
 (B-4)存在していてもよいスペーサー配列、並びに
 (B-5)膜貫通ドメイン4を含むテトラスパニンの部分配列
からなるアミノ酸配列を含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質、若しくは
(B)N末端側から、
 (B-3)第1のT細胞刺激性サイトカイン、
 (B-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (B-5)MFG-E8
からなるアミノ酸配列を含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;又は
(C)N末端側から、
 (C-1)T細胞共刺激分子、
 (C-2)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (C-3)テトラスパニン
からなるアミノ酸配列を含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質;
のいずれかをコードする、ポリヌクレオチドである。
 本発明の一実施態様では、ポリヌクレオチドであって、以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、N末端側から、
 (A-1)MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチド、
 (A-2)配列番号5のスペーサー配列、
 (A-3)配列番号65(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の単鎖MHCクラスI分子、及び
 (A-5)配列番号15(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン
からなるアミノ酸配列である、融合タンパク質、若しくは
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体を構成する融合タンパク質であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)配列番号39のスペーサー配列、
  (A-3)配列番号37(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIβ鎖、及び
  (A-5)配列番号15(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン、
からなるアミノ酸配列である、融合タンパク質;
(B)N末端側から、
 (B-1)配列番号57(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列、
 (B-2)配列番号29のスペーサー配列、
 (B-3)配列番号25(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のIL-2である、第1のT細胞刺激性サイトカイン
 (B-4)配列番号29のスペーサー配列、及び
 (B-5)配列番号59(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列
からなるアミノ酸配列である、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質、
(B)N末端側から、
 (B-1)配列番号61(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列、
 (B-2)配列番号29のスペーサー配列、
 (B-3)配列番号53(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のIL-4である、第1のT細胞刺激性サイトカイン
 (B-4)配列番号29のスペーサー配列、及び
 (B-5)配列番号63(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列
からなるアミノ酸配列である、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質、若しくは
(B’)N末端側から、
 (B-3)配列番号73(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のTGF-βである、第2のT細胞刺激性サイトカイン、
 (B-4)配列番号29のスペーサー配列、及び
 (B-5)配列番号49(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMFG-E8
からなるアミノ酸配列である、該第2(又は第1)のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;又は
(C)N末端側から、
 (C-1)配列番号67(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のCD80である、T細胞共刺激分子、及び
 (C-3)配列番号21(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン
からなるアミノ酸配列である、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質;
のいずれかをコードする、ポリヌクレオチドを提供する。
 本発明の一実施態様では、ポリヌクレオチドであって、以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、N末端側から、
 (A-1)MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチド、
 (A-2)配列番号5のスペーサー配列、
 (A-3)配列番号65(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の単鎖MHCクラスI分子、及び
 (A-5)配列番号15(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン
からなるアミノ酸配列である、融合タンパク質、若しくは
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体を構成する融合タンパク質であって、
 N末端側から、
  (A-1)MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド、
  (A-2)配列番号39のスペーサー配列、
  (A-3)配列番号37(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIβ鎖、及び
  (A-5)配列番号15(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン、
からなるアミノ酸配列である、融合タンパク質;
(B)配列番号31、75若しくは55(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該第1(又は第2)のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;又は
(C)配列番号23(又はこれに対してアミノ酸配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質;
のいずれかをコードする、ポリヌクレオチドを提供する。
 本発明の一実施態様では、ポリヌクレオチドであって、以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドであって、
 (A-1)MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチドをコードするポリヌクレオチド、
 (A-2)配列番号6のスペーサー配列、
 (A-3)配列番号66(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の単鎖MHCクラスI分子、及び
 (A-5)配列番号16(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン
からなる配列である、ポリヌクレオチド、若しくは
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体を構成する融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドであって、
  (A-1)MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチドをコードするポリヌクレオチド、
  (A-2)配列番号40のスペーサー配列、
  (A-3)配列番号38(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIβ鎖、及び
  (A-5)配列番号16(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン、
からなる配列である、ポリヌクレオチド;
(B)第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドであって、
 (B-1)配列番号58(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列、
 (B-2)配列番号30のスペーサー配列、
 (B-3)配列番号26(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のIL-2である、第1のT細胞刺激性サイトカイン
 (B-4)配列番号30のスペーサー配列、及び
 (B-5)配列番号60(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列
からなる配列である、ポリヌクレオチド、
(B)第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドであって、
 (B-1)配列番号62(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列、
 (B-2)配列番号30のスペーサー配列、
 (B-3)配列番号54(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のIL-4である、第1のT細胞刺激性サイトカイン
 (B-4)配列番号30のスペーサー配列、及び
 (B-5)配列番号64(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニンの部分配列;
からなる配列である、ポリヌクレオチド、若しくは
(B’)第2(又は第1)のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドであって、
 (B-3)配列番号74(又はこれに対し配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のTGF-βである、第2(又は第1)のT細胞刺激性サイトカイン、
 (B-4)配列番号30のスペーサー配列、及び
 (B-5)配列番号50(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMFG-E8
からなる配列である、ポリヌクレオチド;又は
(C)該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドであって、
 (C-1)配列番号68(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のCD80である、T細胞共刺激分子、及び
 (C-3)配列番号22(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン
からなる配列である、ポリヌクレオチド;
を提供する。
 本発明の一実施態様では、ポリヌクレオチドであって、以下:
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドであって、
 (A-1)MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチドをコードするポリヌクレオチド、
 (A-2)配列番号6のスペーサー配列、
 (A-3)配列番号66(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の単鎖MHCクラスI分子、及び
 (A-5)配列番号16(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン
からなる配列である、ポリヌクレオチド、若しくは
(A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体を構成する融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドであって、
  (A-1)MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチドをコードするポリヌクレオチド、
  (A-2)配列番号40のスペーサー配列、
  (A-3)配列番号38(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のMHCクラスIIβ鎖、及び
  (A-5)配列番号16(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)のテトラスパニン、
からなる配列である、ポリヌクレオチド;
(B)配列番号32、76若しくは56(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該第1(又は第2)のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質をコードする、ポリヌクレオチド;又は
(C)配列番号24(又はこれに対して配列同一性が80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、更に好ましくは98%以上、より更に好ましくは99%以上のもの)の、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質をコードする、ポリヌクレオチド;
を提供する。
 本発明の一実施態様では、上記(A)、(B)及び(C)について、(A)と(B)が融合して、1分子となる融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドであってもよいし、(B)と(C)が融合して、1分子となる融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドであってもよいし、(A)、(B)及び(C)が融合して、1分子となる融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドであってもよい。かかるポリヌクレオチドは、(A)、(B)及び(C)間にスペーサー配列を含む又は含まない形の1つの融合タンパク質をコードしていてよい。。
 あるいは、本発明の一実施態様におけるポリヌクレオチドは、上記(A)、(B)及び(C)が、そのタンパク質が細胞外小胞に局在するための要素、すなわち、「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」の部分を共有することにより、機能的に融合した融合タンパク質をコードしていてもよい。
 たとえば本発明の一実施態様において、
(A)と(B)で「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」部分を共有する形で融合した、
 (1)抗原提示MHC分子;
 (2)すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカイン;及び
 (3)「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」;を含む融合タンパク質(D)をコードするポリヌクレオチドであってもよいし;
(A)と(C)で「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」部分を共有する形で融合した、
 (1)抗原提示MHC分子;
 (2)T細胞共刺激分子;及び
 (3)「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」;を含む融合タンパク質(F)をコードするポリヌクレオチドであってもよいし;
(B)と(C)で「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」部分を共有する形で融合した、
 (1)すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカイン;
 (2)T細胞共刺激分子;及び
 (3)「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」;を含む融合タンパク質(G)をコードするポリヌクレオチドであってもよいし;
あるいは
(A)~(C)で「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」部分を共有する形で融合した、
 (1)抗原提示MHC分子;
 (2)すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカイン; 
 (2)T細胞共刺激分子;及び
 (4)「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」;を含む融合タンパク質(E)をコードするポリヌクレオチドであってもよい。
 本発明の一実施態様は、構成要件(A)の細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質の代わりに、構成要件(B)の第1のT細胞刺激性サイトカインを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能なタンパク質を用いて、構成要件(A)と構成要件(B)の機能を具備した融合タンパク質(D)である、
抗原提示MHC分子とすくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカインを含み、該抗原と該T細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質
をコードするポリヌクレオチドであってよい。
 かかる構成要件(A)と構成要件(B)の機能を具備した融合タンパク質(D)は、抗原提示MHC分子とすくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカインを含み、該抗原と該T細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質であってもよい。
 前記融合タンパク質は、前記抗原提示MHC分子と、前記すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカインと、細胞外小胞の膜に局在することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはその膜結合ドメインとを含んでもよい。
 構成要件(A)と構成要件(B)の機能を具備した融合タンパク質(D)において、 前記細胞外小胞の膜に局在することが可能な膜タンパク質又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質は、テトラスパニン又はMFG-E8であってもよい。
 前記融合タンパク質は、N末端側から、
 (D-1)MHC分子拘束性抗原ペプチド、
 (D-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (D-3)単鎖MHC分子、
 (D-4)存在していてもよいスペーサー配列、
 (D-5)テトラスパニン又はその膜貫通ドメインあるいはMFG-E8又はその膜貫通ドメインと、前記すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカインを含む融合ペプチドを、この順番でコードするアミノ酸配列を含んでもよい。
 前記融合タンパク質は、N末端側から、
 (D-1)テトラスパニン又はその膜貫通ドメインあるいはMFG-E8又はその膜貫通ドメインと、前記すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカインを含む融合ペプチド
 (D-2)存在していてもよいスペーサー配列、
 (D-3)単鎖MHC分子、
 (D-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (D-5)MHC分子拘束性抗原ペプチドを、
この順にコードするアミノ酸配列を含んでもよい。
 ここで、前記融合ペプチドは、N末端側から、
  (1)膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3を含むテトラスパニンの部分配列、
  (2)存在していてもよいスペーサー配列、
  (3)前記すくなくとも1つのT細胞刺激性サイトカイン、
  (4)存在していてもよいスペーサー配列、並びに
  (5)膜貫通ドメイン4を含むテトラスパニンの部分配列
をこの順番でコードするアミノ酸配列を含んでもよい。
 前記融合ペプチドは、N末端側から、
 (1)前記すくなくとも1のT細胞刺激性サイトカイン、
 (2)存在していてもよいスペーサー配列、及び
 (3)MFG-E8
をこの順番でコードするアミノ酸配列を含んでもよい。
 本発明の一実施態様において、MHC分子拘束性抗原ペプチドがMHCクラスI分子拘束性抗原ペプチドであり、前記単鎖MHC分子が、MHCクラスIα鎖の細胞外領域を含んでもよく、前記MHC分子拘束性抗原ペプチドがMHCクラスII分子拘束性抗原ペプチドであり、前記単鎖MHC分子が、MHCクラスIIα鎖の細胞外ドメイン及び/又はMHCクラスIIβ鎖の細胞外ドメインを含んでもよい。
 構成要件(A)と構成要件(B)の機能を具備した融合タンパク質(D)を含む態様において;
 (C)すくなくとも1つのT細胞共刺激分子を含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能なタンパク質をさらにその膜に含んでもよく;
 前記T細胞と相互作用可能なタンパク質が、前記すくなくとも1つのT細胞共刺激分子と、細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメインとを含んでもよく;
 前記T細胞と相互作用可能なタンパク質が、前記すくなくとも1つのT細胞共刺激分子と、テトラスパニン若しくはその膜貫通ドメイン又はMFG-E8若しくはそのドメインとを含んでもよい。
ベクター、キット
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載のポリヌクレオチドから選択される少なくとも1種のポリヌクレオチドを含んでなるベクターを提供する。
 本明細書中で用いられる「ベクター」とは、任意のベクター(これらに限定されるものではないが、例えば、プラスミドベクター、コスミドベクター、ファージ等のファージベクター、アデノウイルスベクター、バキュロウイルスベクター等のウイルスベクター、人工染色体ベクター等を含む)を意味する。ベクターは、発現ベクター、クローニングベクター等を含む。発現ベクターは、一般的に、所望のコード配列、及び宿主生物(例えば、植物、昆虫、動物等)又はインビトロでの発現系における作動可能に連結されたコード配列の発現に必要な適切なポリヌクレオチドを含有していてもよい。クローニングベクターは、所望のポリヌクレオチド断片を操作及び/又は増幅させるために使用してもよい。クローニングベクターは、所望のポリヌクレオチド断片の発現に必要とされる機能的な配列を欠失していてもよい。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載のポリヌクレオチドは、これらが作動可能に挿入されうる限り、全て同一のベクター内に挿入されていてもよし、2以上のポリヌクレオチドが別個のベクターに挿入されていてもよい。本発明の一実施態様では、本明細書中に記載のポリヌクレオチドから選択される少なくとも1種のポリヌクレオチドを含んでなる2種以上のベクターを組み合わせたキットを提供する。
形質転換細胞
 本発明の一実施態様では、以下:
 (i)本明細書中に記載の(A)の融合タンパク質又はタンパク質複合体をコードするポリヌクレオチド、
 (ii)本明細書中に記載の(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、又は
 (iii)本明細書中に記載の(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド
を含んでなるベクターにより形質転換された細胞を提供する。
 本発明の一実施態様では、以下:
 (i)本明細書中に記載の(A)の融合タンパク質又はタンパク質複合体をコードするポリヌクレオチド、及び
 (ii)本明細書中に記載の(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、並びに、場合により
 (iii)本明細書中に記載の(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド
を含んでなる、単一のベクター又は2以上のベクターの組み合わせにより形質転換された細胞を提供する。
 本発明の一実施態様の細胞では、上記(A)、(B)及び(C)について、(A)と(B)が融合して、1分子となる融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含むベクター、(B)と(C)が融合して、1分子となる融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含むベクター、あるいは(A)、(B)及び(C)が融合して、1分子となる融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含むベクターで形質転換されていてもよい。かかるポリヌクレオチドは、(A)、(B)及び(C)間にスペーサー配列を含む又は含まない形の1つの融合タンパク質をコードしていてよい。
 あるいは、上記(A)、(B)及び(C)は、そのタンパク質が細胞外小胞に局在するための要素、すなわち、「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」の部分を共有することにより、機能的に融合した融合タンパク質をコードしていてもよい。
 たとえば本発明の一実施態様において、
(A)と(B)で「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」部分を共有する形で融合した、
 (1)抗原提示MHC分子;
 (2)すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカイン;及び
 (3)「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」;を含む融合タンパク質(D)をコードするポリヌクレオチドを含むベクター;
(A)と(C)で「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」部分を共有する形で融合した、
 (1)抗原提示MHC分子;
 (2)T細胞共刺激分子;及び
 (3)「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」;を含む融合タンパク質(F)をコードするポリヌクレオチドを含むベクター;
(B)と(C)で「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」部分を共有する形で融合した、
 (1)すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカイン;
 (2)T細胞共刺激分子;及び
 (3)「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」;を含む融合タンパク質(G)をコードするポリヌクレオチドを含むベクター;
あるいは
(A)~(C)で「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」部分を共有する形で融合した、
 (1)抗原提示MHC分子;
 (2)すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカイン; 
 (3)T細胞共刺激分子;及び
 (4)「細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン」又は「細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメイン」;を含む融合タンパク質(E)をコードするポリヌクレオチドを含むベクター
で形質転換されていてもよい。
 あるいは、本発明の一実施態様では、
 (iv)構成要件(A)の細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質の代わりに、構成要件(B)の第1のT細胞刺激性サイトカインを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能なタンパク質を用いて、構成要件(A)と構成要件(B)の機能を具備した融合タンパク質である、
本明細書中に記載の(D)の抗原提示MHC分子とすくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカインを含み、該抗原と該T細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド
を含むベクターにより形質転換された細胞を提供する。
 「単一のベクター又は2以上のベクターの組み合わせにより形質転換された」とは、例えば、細胞が、上記(i)~(iv)のポリヌクレオチドが全て同一のベクター内に挿入されたものにより形質転換されてもよいし、これらのうち2以上が別個のベクターに挿入された2以上のベクターの組み合わせにより形質転換されてもよいことを意味する。
 「単一のベクター又は2以上のベクターの組み合わせ」としては、(A)が融合タンパク質である場合、例えば、以下のものが挙げられる:
 ・(A)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクター;
 ・(A)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(A)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクター;
 ・(A)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(A)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(A)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;又は
 ・(A)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ。
 或いは、「単一のベクター又は2以上のベクターの組み合わせ」としては、(A)がタンパク質複合体である場合、例えば、以下のものが挙げられる:
 ・(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクター;
 ・(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチド、(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクター;
 ・(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチド、(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;
 ・(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ;又は
 ・(A-1)~(A-5)からなるアミノ酸配列を含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(A-6)を含むタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターと、(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含んでなるベクターとの組み合わせ。
 形質転換させる細胞は、形質転換させた後に本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞を得ることができるものである限り特段限定されるものではなく、初代培養細胞であっても、継代細胞であっても、株化細胞であってもよく、これらは正常細胞であっても、ガン化又は腫瘍化した細胞を含む病変細胞であってもよい。また、形質転換させる細胞の由来は、特段限定されるものではないが、例えば、マウス、ラット、ハムスター、モルモット等のげっ歯類、ウサギ等のウサギ目、ブタ、ウシ、ヤギ、ウマ、ヒツジ等の有蹄類、イヌ、ネコ等のネコ目、ヒト、サル、アカゲザル、カニクイザル、マーモセット、オランウータン、チンパンジー等の霊長類等の哺乳動物等の動物由来の細胞;植物由来の細胞;昆虫由来の細胞等が挙げられる。形質転換させる細胞としては、好ましくは動物由来の細胞である。動物由来の細胞としては、これらに限定されるものではないが、例えば、ヒト胚腎臓細胞(HEK293T細胞等を含む)、ヒトFL細胞、チャイニーズハムスター卵巣細胞(CHO細胞)、COS-7、Vero、マウスL細胞、ラットGH3等が挙げられる。
 細胞を形質転換させる方法は、細胞に目的のポリヌクレオチドを導入しうる方法であれば特に限定されるものではない。例えば、エレクトロポレーション法、マイクロインジェクション法、リン酸カルシウム法、カチオン性脂質法、リポソームを使用する方法、ポリエチレンイミン等の非リポソーム性のものを使用する方法、ウイルス感染法等であってもよい。
 形質転換された細胞は、(A)、(B)、(C)、(D)、(E)、(F)及び/又は(G)の融合タンパク質又はタンパク質複合体を、一過性に発現する形質転換細胞であってもよいし、安定的に発現する形質転換細胞(安定細胞株)であってもよい。
 形質転換された細胞の培養条件は、特段限定されるものではない。例えば、形質転換された細胞が動物由来の細胞である場合、例えば、細胞培養等に一般に使用されている培地(例えば、RPMI1640培地、EagleのMEM培地、ダルベッコ改変イーグル培地(DMEM培地)、Ham F12培地、又はこれらの任意の組み合わせ等)、又はこれにウシ胎児血清、抗生物質、アミノ酸等の他の成分を添加した培地等を使用し、例えば、約1~約10%(好ましくは約2~約5%)COの存在下、約30~約40℃(好ましくは約37℃)で、所望の時間(例えば、約0.5時間~約240時間(好ましくは、約5~約120時間、より好ましくは、約12~約72時間))、培養(例えば、静置下又は振盪下)してもよい。
 形質転換された細胞を培養して得られてなる培養上清中には、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞が含まれうる。そのため、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞を得る目的で形質転換細胞を培養する際、必要に応じて、エクソソーム等の細胞外小胞を除去した培地(例えば、エクソソームを除去した約1~約5%ウシ胎児血清を含むダルベッコ改変イーグル培地等)を用いてもよい。
培養上清
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の形質転換された細胞を培養して得られてなる、培養上清を提供する。
 本明細書中に記載の培養上清中に含まれる抗原提示細胞外小胞は、例えば、該培養上清を精製(例えば、遠心分離、クロマトグラフィー等)、濃縮、単離等をすることにより、より回収することができる。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の培養上清から得られてなる、抗原提示細胞外小胞を提供する。
本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞を製造するための方法
 本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞は、これらに限定されるものではないが、例えば、当業者に公知の遺伝子組み換え技術等の手段により(例えば、以下に記載の方法により、若しくは実施例に記載の方法により、又はこれらに類似する方法により)、得てもよい。
 通常の遺伝子組み換え技術により、上述した(A)及び(B)(あるいは(A)と(B)の代わりに(D))、並びに場合により(C)のタンパク質をそれぞれコードするポリヌクレオチドを得、これらを同一の又は別個のベクターに作動可能に挿入することができる。(A)及び(B)(あるいは(A)と(B)の代わりに(D))、並びに場合により(C)のタンパク質をそれぞれコードするポリヌクレオチドのうちの2種以上を同一のベクターに挿入する場合、それぞれが同一の又は別個のプロモーターに作動可能に連結されていてもよい。得られた単一の又は2以上のベクターを、細胞に同時に又は逐次的に形質転換させ、形質転換細胞(これら融合タンパク質を、一過性に発現する形質転換細胞であってもよいし、安定的に発現する形質転換細胞(安定株)であってもよい)を得ることができる。得られた形質転換細胞を所望の条件下で培養して培養上清を得、得られた培養上清を必要に応じて精製(例えば、遠心分離、抗体(例えば、細胞外小胞の膜に含まれるタンパク質等を認識する抗体)、クロマトグラフィー、フローサイトメトリー等を用いた精製)、濃縮(例えば、限外濾過等)、乾燥等することで、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞を得ることができる。
 或いは、上述した(A)及び(B)(あるいは(A)と(B)の代わりに(D))、並びに場合により(C)のタンパク質として、可溶性のものを用いる場合、例えば、以下の方法により本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞を得てもよい。
 上述した(A)及び(B)(あるいは(A)と(B)の代わりに(D))、並びに場合により(C)を可溶性のタンパク質として、通常の遺伝子組み換え技術によって得たものか、又は市販のものを用いる。次に、所望の細胞から、例えば、公知の方法により若しくは本明細書中に記載の方法により、又はこれらに類似する方法により、細胞外小胞を得る。次に、得られた細胞外小胞と、上述の可溶性のタンパク質の1種以上とを、所望の溶媒中、所望の条件下で反応させる(例えば、特開2018-104341号公報等に記載の方法を参考にしてもよい)。この操作を、(A)及び(B)(あるいは(A)と(B)の代わりに(D))、並びに場合により(C)の可溶性のタンパク質が、細胞外小胞の膜に含まれるまで、条件を適宜変更しながら実施することで、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞を得ることができる。
 或いは、上述した(A)及び(B)(あるいは(A)と(B)の代わりに(D))、並びに場合により(C)のタンパク質として、可溶性のものを用いる場合、例えば、以下の方法により本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞を得てもよい。
 上述した(A)及び(B)(あるいは(A)と(B)の代わりに(D))、並びに場合により(C)の可溶性のタンパク質として、それらのN末端側又はC末端側に所望のタグ(例えば、Hisタグ、FLAGタグ、配列番号79のPNEタグ等が挙げられ、これらは全て同じタグであってもよいし、全て異なる種類のタグであってもよい)を付加したものを、通常の遺伝子組み換え技術によって得る。次に、所望の細胞から、例えば、公知の方法により若しくは本明細書中に記載の方法により、又はこれらに類似する方法により、細胞外小胞を得、これに該タグに対する抗体又はその抗原結合性フラグメント(例えば、scFv、Fab若しくはナノボディ、例えば、配列番号83の抗PNEタグナノボディ)等を、必要に応じてペプチドリンカー等を介して結合させるか;或いは、通常の遺伝子組み換え技術によって、細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質又はその膜貫通ドメインのN末端側又はC末端側に該タグに対する抗体又はその抗原結合性フラグメント(例えば、scFv、Fab若しくはナノボディ)等が結合した融合タンパク質(例えば、配列番号89の、抗PNEタグナノボディ(配列番号83)とCD8a(配列番号85)とCD81(配列番号15)との融合タンパク質等)をコードするポリヌクレオチド(例えば、配列番号88、90等)を得、これをベクターに作動可能に挿入したものを用いて細胞に形質転換させることで、形質転換細胞(融合タンパク質を、一過性に発現する形質転換細胞であってもよいし、安定的に発現する形質転換細胞(安定株)であってもよい)を得、得られた形質転換細胞を培養等し、上述した方法等により細胞外小胞を回収する。タグが付加した可溶性の(A)及び(B)、並びに場合により(C)のタンパク質と、該タグに対する抗体又はその抗原結合性フラグメント(例えば、scFv、Fab若しくはナノボディ)等を含むタンパク質を膜に含む細胞外小胞とを、所望の条件で混合することで、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞を得てもよい。
 あるいは、上述した(A)~(G)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを組み合わせて用いて形質転換を行い、得られた形質転換細胞から、明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞を得てもよい。
 あるいは、上述した方法のうちの2以上を組み合わせた方法により、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞を得てもよい。
 本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞は、例えば、フローサイトメトリー、ELISA、ウェスタンブロッティング等の手法により、(A)及び(B)(あるいは(A)と(B)の代わりに(D))、並びに場合により(C)のタンパク質が膜に含まれていることを確認してもよい。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞を製造するための方法であって、本明細書中に記載の形質転換された細胞を培養して得られてなる培養上清を回収することを含む、方法を提供する。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞を製造するための方法であって、
 (i)本明細書中に記載の(A)の融合タンパク質又はタンパク質複合体をコードするポリヌクレオチド、及び
 (ii)本明細書中に記載の(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、並びに、場合により
 (iii)本明細書中に記載の(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド
を含んでなる、単一のベクター又は2以上のベクターの組み合わせを、細胞に同時又は逐次的に(好ましくは、同時に)形質転換させることと、
 得られた形質転換細胞を培養して得られてなる培養上清を回収することと
を含む、方法を提供する。
 あるいは、本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞を製造するための方法であって、
 (iv)本明細書中に記載の(D)の抗原提示MHC分子とすくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカインを含み、該抗原と該T細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び
場合により
 (iii)本明細書中に記載の(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド
を含んでなる、単一のベクター又は2以上のベクターの組み合わせを、細胞に同時又は逐次的に(好ましくは、同時に)形質転換させることと、
 得られた形質転換細胞を培養して得られてなる培養上清を回収することと
を含む、方法を提供する。
 あるいは、本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞を製造するための方法であって、
 (v)本明細書中に記載の(E)の抗原提示MHC分子とすくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカインとT細胞共刺激分子を含み、該抗原と該T細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド
を含んでなる、ベクターを、細胞に形質転換させることと、
 得られた形質転換細胞を培養して得られてなる培養上清を回収することと
を含む、方法を提供する。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の培養上清から得られてなる抗原提示細胞外小胞を提供する。
 本発明の一実施態様では、抗原提示細胞外小胞であって、以下:
 (i)本明細書中に記載の(A)の融合タンパク質又はタンパク質複合体をコードするポリヌクレオチド、及び
 (ii)本明細書中に記載の(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、並びに、場合により
 (iii)本明細書中に記載の(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド
を含んでなる、単一のベクター又は2以上のベクターの組み合わせを、細胞に同時又は逐次的に(好ましくは、同時に)形質転換させることと、
 得られた形質転換細胞を培養して得られてなる培養上清を回収することと
を含む方法により得られる、抗原提示細胞外小胞を提供する。
 あるいは、本発明の一実施態様では、抗原提示細胞外小胞であって、以下:
 (iv)本明細書中に記載の(D)の抗原提示MHC分子とすくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカインを含み、該抗原と該T細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び
場合により
 (iii)本明細書中に記載の(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド
を含んでなる、単一のベクター又は2以上のベクターの組み合わせを、細胞に同時又は逐次的に(好ましくは、同時に)形質転換させることと、
 得られた形質転換細胞を培養して得られてなる培養上清を回収することと
を含む方法により得られる、抗原提示細胞外小胞を提供する。
 あるいは、本発明の一実施態様では、抗原提示細胞外小胞であって、以下:
 (v)本明細書中に記載の(E)の抗原提示MHC分子とすくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカインとT細胞共刺激分子を含み、該抗原と該T細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを、細胞に形質転換させることと、
 得られた形質転換細胞を培養して得られてなる培養上清を回収することと
を含む方法により得られる、抗原提示細胞外小胞を提供する。
組成物、用途
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞、ポリヌクレオチド及び/又はこれを含むベクター、並びに/又は形質転換細胞及び/又はその培養上清、を含む組成物(例えば、医薬組成物)を提供する。本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞、又は本明細書中に記載の培養上清を含む医薬組成物を提供する。
 本明細書中に記載の組成物(例えば、医薬組成物)は、これらに限定されるものではないが、例えば、賦形剤、滑沢剤、結合剤、崩壊剤、pH調整剤、溶剤、溶解補助剤、懸濁化剤、等張化剤、緩衝剤、無痛化剤、防腐剤、抗酸化剤、着色剤、甘味剤、界面活性剤等の添加剤を含むことができる。これら添加剤の種類、その使用量等は、目的に応じて当業者が適宜選択しうる。医薬組成物として用いる場合、これらの添加剤は薬理学的に許容できる担体であることが好ましい。さらに、本明細書中に記載の組成物がポリヌクレオチドを含む場合、必須ではないが、核酸のDD(ドラッグデリバリー)に適した担体を含むことが好ましく、これらの担体として脂質ナノ粒子(LNP)及びポリマー(たとえばPEI)が挙げられる。
 本明細書中に記載の組成物(例えば、医薬組成物)は、上述した添加剤と共に、自体公知の方法により、例えば、錠剤、被覆錠剤、口腔内崩壊錠、チュアブル剤、丸剤、顆粒剤、細粒剤、散剤、硬カプセル剤、軟カプセル剤、液剤(例えば、シロップ剤、注射剤、ローション剤等を含む)、懸濁剤、乳剤、ゼリー剤、貼付剤、軟膏剤、クリーム剤、吸入剤、坐剤等に製剤化することができる。これらは、経口剤であってもよいし、非経口剤であってもよい。製剤化されたものは、その目的に応じて、有益な他の成分(例えば、治療上有益な他の成分)を更に含んでいてもよい。
 本発明の一実施態様である組成物は、試験例が示すように、特定の抗原に対して獲得免疫(細胞性免疫及び/又は液性免疫)を増強することは可能であり、抗原として感染病原体(病原菌やウイルス等)由来のペプチドを用いれば、感染病原体によって引き起こされる感染症を処置又は予防するための医薬組成物として使用できる。 
 また、本発明の一実施態様である組成物は、試験例が示すように、炎症性サイトカインの誘導を可能にし、自然免疫を活性化(好中球、単球、マクロファージなどを動員、活性化して病原菌などを食菌させることを含む)することにより、感染病原体を排除することが可能であり、感染病原体によって引き起こされる感染症を処置又は予防するための医薬組成物として使用できる。
 本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞(好ましくは、膜にMHCクラスI拘束性抗原ペプチド及びMHCクラスI分子を含む抗原提示細胞外小胞)、そのポリヌクレオチド及び/又はこれを含むベクター、並びに/又は形質転換細胞及び/又はその培養上清、或いはこれらを含む組成物(例えば、医薬組成物)は、ガンを処置又は予防するために有用でありうる。
 したがって、本発明の一実施態様では、ガンを処置又は予防するための、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞、ポリヌクレオチド及び/又はこれを含むベクター、並びに/又は形質転換細胞及び/又はその培養上清、或いはこれらを含む組成物(例えば、医薬組成物)を提供する。試験例が示すように、本発明の一実施態様である抗原提示細胞外小胞等は、用いる抗原特異的な細胞傷害性T細胞の増殖・活性化をすることが可能であり、用いる抗原として腫瘍関連抗原ペプチドを用いれば、増殖・活性化した細胞傷害性T細胞がガン細胞を認識して攻撃することにより、ガン細胞を死滅させることができる。
 本発明の別の実施態様では、ガンを処置又は予防するための医薬を製造するための、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞、ポリヌクレオチド及び/又はこれを含むベクター、並びに/又は形質転換細胞及び/又はその培養上清、或いはこれらを含む組成物(例えば、医薬組成物)の使用を提供する。
 本発明の別の実施態様では、ガンを処置又は予防するための方法であって、これを必要とする被験体に、有効量の本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞、ポリヌクレオチド及び/又はこれを含むベクター、並びに/又は形質転換細胞及び/又はその培養上清、或いはこれらを含む組成物を投与することを含む、方法を提供する。
 ガンとしては、何れの固形ガン及び血液ガンが含まれ、これらに限定されるものではないが、例えば、小細胞肺ガン、非小細胞肺ガン、乳ガン、食道ガン、胃ガン、小腸ガン、大腸ガン、結腸ガン、直腸ガン、膵臓ガン、前立腺ガン、骨髄ガン、腎臓ガン(腎細胞ガン等を含む)、副甲状腺ガン、副腎ガン、尿管ガン、肝ガン、胆管ガン、子宮頸ガン、卵巣ガン(例えば、その組織型が、漿液性腺ガン、粘液性腺ガン、明細胞腺ガン等)、精巣ガン、膀胱ガン、外陰部ガン、陰茎ガン、甲状腺ガン、頭頸部ガン、頭蓋咽頭ガン、咽頭ガン、舌ガン、皮膚ガン、メルケル細胞ガン、黒色腫(悪性黒色腫等)、上皮ガン、扁平上皮細胞ガン、基底細胞ガン、小児ガン、原発不明ガン、繊維肉腫、粘膜肉腫、脂肪肉腫、軟骨肉腫、骨原生肉腫、脊索腫、血管肉腫、リンパ管肉腫、リンパ管内皮肉腫、カポジ肉腫、平滑筋肉腫、横紋筋肉腫、滑膜腫、中皮腫、ユーイング腫瘍、精上皮腫、ウィルムス腫瘍、脳腫瘍、神経膠腫、膠芽腫、星状細胞腫、骨髄芽腫、髄膜腫、神経芽細胞腫、髄芽腫、網膜芽細胞腫、脊椎腫瘍、悪性リンパ腫(例えば、非ホジキンリンパ腫、ホジキンリンパ腫等)、慢性又は急性リンパ球性白血病、成人T細胞白血病等が挙げられる。
 本発明の一実施態様において、ガンを処置又は予防するために、免疫チェックポイント阻害薬を併用することができる。免疫チェックポイント阻害薬を、同時又は順次患者に投与してもよいし、本発明に係る医薬に含まれていてもよい。
 免疫チェックポイント阻害薬としては、PD-1阻害剤(たとえば、ニブルマブ、ベムブロリジマブなどの抗PD-1抗体)、CTLA-4阻害剤(たとえばイピリムマブなどの抗CTLA-4抗体)、PD-L1阻害剤(たとえばデュルバルマブ、アテゾリズマブ、アベルマブなどの抗PD-L1抗体)などが例示されるがこれに限定されない。免疫チェックポイント阻害薬が抗体又はその活性断片の場合、その抗体又はその活性断片を、細胞外小胞の膜に局在することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはその膜結合ドメインと結合させて、本発明に係る細胞外小胞の膜上に存在させてもよい。
 かかる免疫チェックポイント阻害剤の併用は、ガン細胞に対する細胞傷害性を増強する。
 本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞(好ましくは、膜上にMHCクラスII拘束性抗原ペプチド及びMHCクラスII分子を含む抗原提示細胞外小胞)、そのポリヌクレオチド及び/又はこれを含むベクター、並びに/又は形質転換細胞及び/又はその培養上清、或いはこれらを含む組成物は、自己免疫疾患を処置又は予防するために有用でありうる。試験例が例示するように、本発明の一実施態様である抗原提示細胞外小胞は、用いる抗原特異的な制御性T細胞(Treg)の増殖・活性化をすることが可能であり、用いる抗原として自己抗原ペプチドを用いれば、増殖・活性化したTregが自己抗原に対する免疫寛容を引き起こし、自己免疫疾患を処置又は予防できる。
 したがって、本発明の一実施態様では、自己免疫疾患を処置又は予防するための、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞、ポリヌクレオチド及び/又はこれを含むベクター、並びに/又は形質転換細胞及び/又はその培養上清、或いはこれらを含む組成物(例えば、医薬組成物)を提供する。
 本発明の別の実施態様では、自己免疫疾患を処置又は予防するための医薬を製造するための、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞、ポリヌクレオチド及び/又はこれを含むベクター、並びに/又は形質転換細胞及び/又はその培養上清、或いはこれらを含む組成物(例えば、医薬組成物)の使用を提供する。
 本発明の別の実施態様では、自己免疫疾患を処置又は予防するための方法であって、これを必要とする被験体に、有効量の本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞、ポリヌクレオチド及び/又はこれを含むベクター、並びに/又は形質転換細胞及び/又はその培養上清、或いはこれらを含む組成物を投与することを含む、方法を提供する。
 自己免疫疾患としては、これらに限定されるものではないが、例えば、喘息、乾癬、全身性エリテマトーデス、ギランバレー症候群、シェーグレン症候群、多発性硬化症、重症筋無力症、悪性貧血、バセドウ病、橋本甲状腺炎、I型糖尿病、クローン病、炎症性腸疾患、関節リウマチ等が挙げられる。
 本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞(好ましくは、膜上にMHCクラスII拘束性抗原ペプチド及びMHCクラスII分子を含む抗原提示細胞外小胞)、そのポリヌクレオチド及び/又はこれを含むベクター、並びに/又は形質転換細胞及び/又はその培養上清、或いはこれらを含む組成物(例えば、医薬組成物)は、アレルギー性疾患を処置又は予防するために有用でありうる。試験例が示すように、本発明の一実施態様である抗原提示細胞外小胞等は、用いる抗原特異的な制御性T細胞(Treg)の増殖・活性化をすることが可能であり、用いる抗原としてアレルゲンを用いれば、増殖・活性化したTregがアレルゲンに対する免疫寛容を引き起こし、アレルギー疾患を処置又は予防できる。
 したがって、本発明の一実施態様では、アレルギー性疾患を処置又は予防するための、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞、ポリヌクレオチド及び/又はこれを含むベクター、並びに/又は形質転換細胞及び/又はその培養上清、或いはこれらを含む組成物(例えば、医薬組成物)を提供する。
 本発明の別の実施態様では、アレルギー性疾患を処置又は予防するための医薬を製造するための、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞、ポリヌクレオチド及び/又はこれを含むベクター、並びに/又は形質転換細胞及び/又はその培養上清、或いはこれらを含む組成物(例えば、医薬組成物)の使用を提供する。
 本発明の別の実施態様では、アレルギー性疾患を処置又は予防するための方法であって、これを必要とする被験体に、有効量の本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞、ポリヌクレオチド及び/又はこれを含むベクター、並びに/又は形質転換細胞及び/又はその培養上清、或いはこれらを含む組成物を投与することを含む、方法を提供する。
 アレルギー性疾患としては、これらに限定されるものではないが、例えば、アレルギー性鼻炎、アトピー性皮膚炎、アレルギー性喘息、アレルギー性結膜炎、アレルギー性胃腸炎、食物アレルギー、薬物アレルギー、蕁麻疹等が挙げられる。
 上述した各種疾患を処置又は予防する対象となる被験体は、これらに限定されるものではないが、例えば、マウス、ラット、ハムスター、モルモット等のげっ歯類;ウサギ等のウサギ目;ブタ、ウシ、ヤギ、ウマ、ヒツジ等の有蹄類;イヌ、ネコ等のネコ目;ヒト、サル、アカゲザル、カニクイザル、マーモセット、オランウータン、チンパンジー等の霊長類;等の哺乳動物等の動物、或いは植物が挙げられるが、好ましくは動物であり、より好ましくはげっ歯類又は霊長類であり、更に好ましくはマウス又はヒトである。
 本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞、ポリヌクレオチド及び/又はこれを含むベクター、並びに/又は形質転換細胞及び/又はその培養上清、或いはこれらを含む組成物又はこれを製剤化したものの投与量は、投与する被験体の性別、年齢、体重、健康状態、病状の程度若しくは食事;投与時間;投与方法;他の薬物との組み合わせ;その他の要因を考慮して適宜決定することができる。
特異的な抗原に対するT細胞を活性化、増殖及び/又は分化等させるための方法
 本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞は、in vitro、ex vivo、及び/又はin vivoでT細胞(これらに限定されるものではないが、例えば、末梢血、脾臓等から得られたT細胞又はT細胞集団)と接触することで、特異的な抗原に対するT細胞を活性化、増殖、分化等させることができうる。
 本発明の一実施態様では、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞とT細胞とをin vitro又はex vivoにおいて接触させることを含む、特異的な抗原に対するT細胞を活性化、増殖及び/又は分化させるための方法を提供する。
 本発明の一実施態様では、前述した方法によって得られる、T細胞を提供する。
 上記した方法により得られたT細胞を、疾患(例えば、ガン、自己免疫疾患、アレルギー性疾患等)を処置及び/又は予防するために、被験体に投与してもよい。
 以下、実施例を用いて本発明をより詳細に説明するが、これら実施例は、本発明の範囲を何ら限定するものではない。
プラスミドの調製1
 pCAG-puroベクターを使用し、抗原を膜外に提示可能なMHCクラスI分子を細胞外小胞の膜上に発現させるためのベクターを作製した。
 確立されたクローニング技術によって、βミクログロブリンのシグナルペプチド(アミノ酸 1~20;配列番号1)をコードするポリヌクレオチド(配列番号2)、モデル抗原ペプチドであるOVAペプチド(配列番号3)をコードするポリヌクレオチド(配列番号4)、ペプチドリンカー(アミノ酸配列:配列番号5、ポリヌクレオチド:配列番号6)、シグナルペプチドを除いたβミクログロブリンの全長配列(アミノ酸 21~119;配列番号7)をコードするポリヌクレオチド(配列番号8)、ペプチドリンカー(配列番号11)をコードするポリヌクレオチド(配列番号12)、及びシグナルペプチドを除いたMHCクラスIα鎖の全長配列(アミノ酸 22~369;配列番号9)をコードするポリヌクレオチド(配列番号10)からなる、シングルチェーントライマー(sc-Trimer)を作製した(アミノ酸配列:配列番号13;ポリヌクレオチド:配列番号14)。次に、sc-TrimerとテトラスパニンであるCD81の全長配列(アミノ酸 1~236;配列番号15)をコードするポリヌクレオチド(配列番号16)とを連結したポリヌクレオチド(配列番号18;対応するアミノ酸配列:配列番号17)をpCAG-puroベクターに挿入した(図1A、1B:以下、sc-Trimer-CD81)。
 同様の方法により、T細胞共刺激分子の一つであるCD80を細胞外小胞の膜上に発現させるため、CD80の全長配列(アミノ酸 1~306;配列番号19)をコードするポリヌクレオチド(配列番号20)とテトラスパニンであるCD9の全長の全長配列(アミノ酸 1~306;配列番号21)をコードするポリヌクレオチド(配列番号22)とを連結したポリヌクレオチド(配列番号24;対応するアミノ酸配列:配列番号23)をpCAG-puro又はpMXベクターに挿入した(図1C、1D:以下、CD80-CD9)。
 同様の方法により、T細胞刺激性サイトカインの一つであるIL-2を細胞外小胞の膜上に発現させるため、IL-2のシグナルペプチドを除いた全長配列(アミノ酸 21~169;配列番号25)をコードするポリヌクレオチド(配列番号26)を、テトラスパニンであるマウスCD63(アミノ酸 1~238:配列番号27;ポリヌクレオチド:配列番号28)の大型細胞外ループ中にあるアミノ酸170Cと171Iの間に挿入した(即ち、配列番号57のCD63の部分配列をコードするポリヌクレオチド(配列番号58)と、配列番号59のCD63の部分配列をコードするポリヌクレオチド(配列番号60)との間に、IL-2の配列を挿入した)。なお、IL-2のN末端側及びC末端側にはそれぞれ、ペプチドリンカー(アミノ酸配列 GGGGS:配列番号29)をコードするポリヌクレオチド(配列番号30)を付加した。このポリヌクレオチド(配列番号32;対応するアミノ酸配列:配列番号31)をpCAG-puroベクターに挿入した(図1E、1F:以下、CD63-IL-2)。
プラスミドの調製2
 pCAG-puroベクターを使用し、抗原を膜外に提示可能なMHCクラスII分子を細胞外小胞の膜上に発現させるためのベクターを作製した。
 確立されたクローニング技術によって、MHCクラスIIβ鎖のシグナルペプチド(アミノ酸 1~27;配列番号33)をコードするポリヌクレオチド(配列番号34)、モデル抗原ペプチドであるOVAペプチド(配列番号35)をコードするポリヌクレオチド(配列番号36)及びシグナルペプチドを除いたMHCクラスIIβ鎖の全長配列(アミノ酸 28~265;配列番号37)をコードするポリヌクレオチド(配列番号38)をペプチドリンカー(配列番号39)をコードするポリヌクレオチド(配列番号40)で繋ぎ、シングルチェーンダイマー(sc-Dimer)を作製した(アミノ酸配列:配列番号41;ポリヌクレオチド:配列番号42)。次に、sc-DimerとテトラスパニンであるCD81の全長配列(アミノ酸 1~236;配列番号15)をコードするポリヌクレオチド(配列番号16)とを連結したポリヌクレオチド(配列番号44;対応するアミノ酸配列:配列番号43)をpCAG-puroベクターに挿入した(図1G、1H:以下、sc-Dimer-CD81)。
 MHCクラスII分子の構成要素であるMHCクラスIIα鎖の全長配列(アミノ酸 1~256;配列番号45)をコードするポリヌクレオチド(配列番号46)を別のpCAG-puroベクターに挿入した(図1I:以下、MHCクラスIIα鎖)。
 同様の方法により、T細胞刺激性サイトカインの一つであるTGF-β1を細胞外小胞の膜上に発現させるため、LAPドメインの33、223、225番目の3つのCをSに変更したTGF-β1の全長配列(アミノ酸 1~390;配列番号47)をコードするポリヌクレオチド(配列番号48)と、89番目のDをEに変更したMFG-E8のシグナルペプチドを除いた全長配列(アミノ酸 23~463;配列番号49)をコードするポリヌクレオチド(配列番号50)とを、ペプチドリンカー(配列番号29)をコードするポリヌクレオチド(配列番号30)を介して連結させた。このポリヌクレオチド(配列番号52;対応するアミノ酸配列:配列番号51)をpCAG-puroベクターに挿入した(図1J、1K:以下、TGF-β-MFG-E8)。
 同様の方法により、T細胞刺激性サイトカインの一つであるIL-4を細胞外小胞の膜上に発現させるため、IL-4のシグナルペプチドを除いた全長配列(アミノ酸 21~140;配列番号53)をコードするポリヌクレオチド(配列番号54)を、テトラスパニンであるマウスCD81(アミノ酸 1~236:配列番号15;ポリヌクレオチド:配列番号16)の大型細胞外ループ中にあるアミノ酸177Sと178Gの間に挿入した(即ち、配列番号61のCD81の部分配列をコードするポリヌクレオチド(配列番号62)と、配列番号63のCD81の部分配列をコードするポリヌクレオチド(配列番号64)との間に、IL-4の配列を挿入した)。なお、IL-4のN末端側及びC末端側にはそれぞれ、ペプチドリンカー(アミノ酸配列 GGGGS;配列番号29)をコードするポリヌクレオチド(配列番号30)を付加した。このポリヌクレオチド(配列番号56;対応するアミノ酸配列:配列番号55)をpCAG-puroベクターに挿入した(図1L、1M:以下、CD81-IL-4)。
プラスミドの調製3:
sc-Dimer-CD81―IL―12p40
 上記sc-Dimerに、CD81とT細胞刺激性サイトカインであるIL-12のサブユニットであるIL-12p40を融合させたタンパク質(配列番号91)をコードするポリヌクレオチド(配列番号92)をpCAG-puroベクターに挿入して、融合タンパク質を発現するベクターを調製した。
IL―12p35
 IL-12のもう1つのサブユニットであるIL―12p35(配列番号97)をコードするポリヌクレオチド(配列番号98)をpCAG-puro又はpMXベクターに挿入して、に挿入して、IL―12p35を発現するベクターを調製した。
CD81―IL―6
  T細胞刺激性サイトカインの一つであるIL-6を細胞外小胞の膜上に発現させるため、IL-6のシグナルペプチドを除いた全長配列(配列番号99)をコードするポリヌクレオチド(配列番号100)を、テトラスパニンであるCD81の細胞外ループをコードするポリヌクレオチド中に導入して、CD81-IL-6融合タンパク質(配列番号101)をコードするポリヌクレオチド(配列番号102)をpCAG-puro又はpMXベクターに挿入して、に挿入して、融合タンパク質を発現するベクターを調製した。
hCD80-hCD9
 T細胞共刺激分子の一つであるヒトCD80を細胞外小胞の膜上に発現させるため、ヒトCD80と、テトラスパニンであるヒトCD9との融合タンパク質(配列番号107)をコードするポリヌクレオチド(配列番号108)をpCAG-puro又はpMXベクターに挿入して、融合タンパク質を発現するベクターを調製した。
sc-Trimer-CD81―IL―2 
 T細胞刺激性サイトカインの一つであるIL-2を細胞外小胞の膜上に発現させるため、上記CD81―IL―4と同様に、CD81-IL2の融合ペプチドをコードするポリヌクレオチドを作製し、そのポリヌクレオチド配列とsc-Trimer-をコードするヌクレオチドを結合して、sc-Trimer-CD81―IL―2(配列番号135)をコードするポリヌクレオチドを(配列番号136)作製し、pCAG-puro又はpMXベクターに挿入して、融合タンパク質を発現するベクターを調製した。
hsc―Trimer―hCD81
 上記sc-Trimer-CD81をヒトの遺伝子配列(MHC-Iの配列としてHLA-A2402を用いた)を用いて、hsc―Trimer―hCD81(配列番号131)をコードするポリヌクレオチド(配列番号132)を作製し、pCAG-puro又はpMXベクターに挿入して、融合タンパク質を発現するベクターを調製した。
SARS-CoV2sc-Trimer-hCD81
 SARS-CoV-2ペプチド(アミノ酸配列:配列番号141;ポリヌクレオチド配列:配列番号142))を抗原とし、MHC分子としてHLA-A0201を用いて、抗原提示MHC分子(SARS-CoV2sc-Trimer;アミノ酸配列:配列番号147)をコードするポリヌクレオチド(配列番号148)を作製し、さらにhCD81をコードするポリヌクレオチドと結合させて、SARS-CoV2sc-Trimer-hCD81(配列番号149)をコードするポリヌクレオチド(配列番号150)を作製した。作製したポリヌクレオチドをpCAG-puro又はpMXベクターに挿入して、融合タンパク質を発現するベクターを調製した。
hCD63-hIL-2
 上記CD63-IL-2を、ヒト遺伝子配列を用いて作製した。hCD63-hIL-2(配列番号115)をコードするポリヌクレオチド(配列番号116)を作製し、pCAG-puro又はpMXベクターに挿入して、融合タンパク質を発現するベクターを調製した。
CD63―Akaluc
 陰性対照として、CD63とAkalucルシフェラーゼを融合させ、細胞外小胞にAlkaLuc融合タンパク質(配列番号139)を局在させるためのポリヌクレオチド(配列番号140)を作製し、pCAG-puro又はpMXベクターに挿入して、融合タンパク質を発現するベクターを調製した。
 実施例で使用した各配列を、以下の表1~13に示す。なお、各配列における下線部分は、シグナルペプチドを示す。
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エクソソームを除去したウシ胎児血清の調製
 10mLの非働化処理FBSと2mLの50% Poly(ethylene glycol)10,000溶液(Sigma-Aldrich社製、#81280)を4℃、2時間撹拌した後に、1500×g、4℃、30分間の遠心条件でエクソソームを沈殿させ、上清を回収することで、エクソソームを除去したウシ胎児血清を得た。
[実施例1]MHCクラスI分子及びT細胞刺激性サイトカインを膜に含む抗原提示細胞外小胞
 HEK293T細胞を細胞培養ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養した。約50%コンフルエンスの細胞に、製造業者の指示にしたがって、プラスミド(sc-Trimer-CD81、及びCD63-IL-2をそれぞれコードするpCAGベクター)をPolyethylenimine“Max”(Polysciences社製)を用いて、2つ同時にトランスフェクトした。トランスフェクションの3時間後に培地を交換し、トランスフェクションの24時間後にエクソソームを除去した2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地に培地を交換した。トランスフェクションの72時間後、上清を回収し、該上清を0.22μmフィルターに通した後、300gで5分間遠心分離した。上清を回収し、該上清を2,000g、20分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を10,000g、30分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を100,000gで2時間遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットをPBSで洗浄した。ペレットにPBSを加え、100,000gで2時間、遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットを100μLのPBSで懸濁したものを、実施例1の抗原提示細胞外小胞として用いた(図2A)。細胞外小胞の濃度は、BCAタンパクアッセイキット(Thermo Fisher Scientific社製)を用い、製造業者の指示にしたがって測定した。
[実施例2]MHCクラスI分子、T細胞共刺激分子、及びT細胞刺激性サイトカインを膜に含む抗原提示細胞外小胞
 HEK293T細胞を細胞培養ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養した。約50%コンフルエンスの細胞に、製造業者の指示にしたがって、上記で調製したプラスミド(sc-Trimer-CD81、CD80-CD9、及びCD63-IL-2をそれぞれコードするpCAGベクター)をPolyethylenimine“Max”(Polysciences社製)を用いて、3つ同時にトランスフェクトした。トランスフェクションの3時間後に培地を交換し、トランスフェクションの24時間後にエクソソームを除去した2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地に培地を交換した。トランスフェクションの72時間後、上清を回収し、該上清を0.22μmフィルターに通した後、300gで5分間遠心分離した。上清を回収し、該上清を2,000g、20分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を10,000g、30分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を100,000gで2時間遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットをPBSで洗浄した。ペレットにPBSを加え、100,000gで2時間、遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットを100μLのPBSで懸濁したものを、実施例2の抗原提示細胞外小胞として用いた(図2B)。抗原提示細胞外小胞の濃度は、BCAタンパクアッセイキット(Thermo Fisher Scientific社製)を用い、製造業者の指示にしたがって測定した。
[実施例3]MHCクラスII分子、T細胞共刺激分子、及びT細胞刺激性サイトカインを膜に含む抗原提示細胞外小胞1
 HEK293T細胞を細胞培養ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養した。約50%コンフルエンスの細胞に、製造業者の指示にしたがって、上記で調製したプラスミド(sc-Dimer-CD81、MHCクラスIIα鎖、CD80-CD9、及びCD63-IL-2をそれぞれコードするpCAGベクター)をPolyethylenimine“Max”(Polysciences社製)を用いて、4つ同時にトランスフェクトした。トランスフェクションの3時間後に培地を交換し、トランスフェクションの24時間後にエクソソームを除去した2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地に培地を交換した。トランスフェクションの72時間後、上清を回収し、該上清を0.22μmフィルターに通した後、300gで5分間遠心分離した。上清を回収し、該上清を2,000g、20分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を10,000g、30分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を100,000gで2時間遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットをPBSで洗浄した。ペレットにPBSを加え、100,000gで2時間、遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットを100μLのPBSで懸濁したものを、実施例3の抗原提示細胞外小胞として用いた(図2C)。抗原提示細胞外小胞の濃度は、BCAタンパクアッセイキット(Thermo Fisher Scientific社製)を用い、製造業者の指示にしたがって測定した。
[実施例4]MHCクラスII分子、T細胞共刺激分子、及びT細胞刺激性サイトカインを膜に含む抗原提示細胞外小胞2
 HEK293T細胞を細胞培養ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養した。約50%コンフルエンスの細胞に、製造業者の指示にしたがって、プラスミド(sc-Dimer-CD81、MHCクラスIIα鎖、CD80-CD9、TGF-β-MFGE8、及びCD63-IL-2をそれぞれコードするpCAGベクター)をPolyethylenimine“Max”(Polysciences社製)を用いて、5つ同時にトランスフェクトした。トランスフェクションの3時間後に培地を交換し、トランスフェクションの24時間後にエクソソームを除去した2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地に培地を交換した。トランスフェクションの72時間後、上清を回収し、該上清を0.22μmフィルターに通した後、300gで5分間遠心分離した。上清を回収し、該上清を2,000g、20分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を10,000g、30分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を100,000gで2時間遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットをPBSで洗浄した。ペレットにPBSを加え、100,000gで2時間、遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットを100μLのPBSで懸濁したものを、実施例4の抗原提示細胞外小胞として用いた(図2D)。抗原提示細胞外小胞の濃度は、BCAタンパクアッセイキット(Thermo Fisher Scientific社製)を用い、製造業者の指示にしたがって測定した。
[実施例5]MHCクラスII分子、T細胞共刺激分子、及びT細胞刺激性サイトカインを膜に含む抗原提示細胞外小胞3
 HEK293T細胞を細胞培養ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養した。約50%コンフルエンスの細胞に、製造業者の指示にしたがって、上記で調製したプラスミド(sc-Dimer-CD81、MHCクラスIIα鎖、CD80-CD9、及びCD81-IL-4をそれぞれコードするpCAGベクター)をPolyethylenimine“Max”(Polysciences社製)を用いて、4つ同時にトランスフェクトした。トランスフェクションの3時間後に培地を交換し、トランスフェクションの24時間後にエクソソームを除去した2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地に培地を交換した。トランスフェクションの72時間後、上清を回収し、該上清を0.22μmフィルターに通した後、300gで5分間遠心分離した。上清を回収し、該上清を2,000g、20分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を10,000g、30分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を100,000gで2時間遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットをPBSで洗浄した。ペレットにPBSを加え、100,000gで2時間、遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットを100μLのPBSで懸濁したものを、実施例5の抗原提示細胞外小胞として用いた(図2E)。抗原提示細胞外小胞の濃度は、BCAタンパクアッセイキット(Thermo Fisher Scientific社製)を用い、製造業者の指示にしたがって測定した。
[参考例1]コントロール細胞外小胞
 HEK293T細胞を細胞培養ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養した。約50%コンフルエンスの細胞に培地を交換し、24時間後にエクソソームを除去した2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地に培地を交換した。エクソソームを除去した該培地に交換した48時間後、上清を回収し、該上清を0.22μmフィルターに通した後、300gで5分間遠心分離した。上清を回収し、該上清を2,000g、20分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を10,000g、30分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を100,000gで2時間遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットをPBSで洗浄した。ペレットにPBSを加え、100,000gで2時間、遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットを100μLのPBSで懸濁したものを、参考例1の細胞外小胞として用いた。抗原提示細胞外小胞の濃度は、BCAタンパクアッセイキット(Thermo Fisher Scientific社製)を用い、製造業者の指示にしたがって測定した。
[参考例2]MHCクラスI分子を膜に含む細胞外小胞
 HEK293T細胞を細胞培養ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養した。約50%コンフルエンスの細胞に、製造業者の指示にしたがって、プラスミド(sc-Trimer-CD81をコードするpCAGベクター)をPolyethylenimine“Max”(Polysciences社製)を用いて、トランスフェクトした。トランスフェクションの3時間後に培地を交換し、トランスフェクションの24時間後にエクソソームを除去した2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地に培地を交換した。トランスフェクションの72時間後、上清を回収し、該上清を0.22μmフィルターに通した後、300gで5分間遠心分離した。上清を回収し、該上清を2,000g、20分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を10,000g、30分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を100,000gで2時間遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットをPBSで洗浄した。ペレットにPBSを加え、100,000gで2時間、遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットを100μLのPBSで懸濁したものを、参考例2の細胞外小胞として用いた。細胞外小胞の濃度は、BCAタンパクアッセイキット(Thermo Fisher Scientific社製)を用い、製造業者の指示にしたがって測定した。
[参考例3]T細胞共刺激分子を膜に含む細胞外小胞
 HEK293T細胞を細胞培養ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養した。約50%コンフルエンスの細胞に、製造業者の指示にしたがって、プラスミド(CD80-CD9をコードするpCAGベクター)をPolyethylenimine“Max”(Polysciences社製)を用いて、トランスフェクトした。トランスフェクションの3時間後に培地を交換し、トランスフェクションの24時間後にエクソソームを除去した2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地に培地を交換した。トランスフェクションの72時間後、上清を回収し、該上清を0.22μmフィルターに通した後、300gで5分間遠心分離した。上清を回収し、該上清を2,000g、20分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を10,000g、30分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を100,000gで2時間遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットをPBSで洗浄した。ペレットにPBSを加え、100,000gで2時間、遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットを100μLのPBSで懸濁したものを、参考例3の細胞外小胞として用いた。細胞外小胞の濃度は、BCAタンパクアッセイキット(Thermo Fisher Scientific社製)を用い、製造業者の指示にしたがって測定した。
[参考例4]T細胞刺激性サイトカインを膜に含む細胞外小胞
 HEK293T細胞を細胞培養ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養した。約50%コンフルエンスの細胞に、製造業者の指示にしたがって、プラスミド(CD63-IL-2をコードするpCAGベクター)をPolyethylenimine“Max”(Polysciences社)を用いて、トランスフェクトした。トランスフェクションの3時間後に培地を交換し、トランスフェクションの24時間後にエクソソームを除去した2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地に培地を交換した。トランスフェクションの72時間後、上清を回収し、該上清を0.22μmフィルターに通した後、300gで5分間遠心分離した。上清を回収し、該上清を2,000g、20分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を10,000g、30分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を100,000gで2時間遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットをPBSで洗浄した。ペレットにPBSを加え、100,000gで2時間、遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットを100μLのPBSで懸濁したものを、参考例4の細胞外小胞として用いた。細胞外小胞の濃度は、BCAタンパクアッセイキット(Thermo Fisher Scientific社製)を用い、製造業者の指示にしたがって測定した。
[参考例5]MHCクラスI分子及びT細胞共刺激分子を膜に含む細胞外小胞
 HEK293T細胞を細胞培養ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養した。約50%コンフルエンスの細胞に、製造業者の指示にしたがって、プラスミド(sc-Trimer-CD81、及びCD80-CD9をそれぞれコードするpCAGベクター)をPolyethylenimine“Max”(Polysciences社製)を用いて、2つ同時にトランスフェクトした。トランスフェクションの3時間後に培地を交換し、トランスフェクションの24時間後にエクソソームを除去した2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地に培地を交換した。トランスフェクションの72時間後、上清を回収し、該上清を0.22μmフィルターに通した後、300gで5分間遠心分離した。上清を回収し、該上清を2,000g、20分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を10,000g、30分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を100,000gで2時間遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットをPBSで洗浄した。ペレットにPBSを加え、100,000gで2時間、遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットを100μLのPBSで懸濁したものを、参考例5の細胞外小胞として用いた。細胞外小胞の濃度は、BCAタンパクアッセイキット(Thermo Fisher Scientific社製)を用い、製造業者の指示にしたがって測定した。
試験例1-1:細胞外小胞の膜に含まれる融合タンパク質のフローサイトメトリー解析
 実施例2の抗原提示細胞外小胞を、PS Capture(商標) エクソソームフローサイトメトリーキット(富士フイルム和光純薬株式会社製)によって、製造業者の指示にしたがって免疫染色を行った。染色に使用した抗体は以下のとおりである(染色時間:15分、温度:4℃)。染色後、各融合タンパク質の発現を、フローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出した。
 ・APCコンジュゲート抗マウスH-2KbOVA複合体抗体(25-D1.16 Biolegend社製)
 ・PEコンジュゲート抗マウスCD80抗体(16-10A1 Biolegend社製)
 ・Brilliant Violet421コンジュゲート抗マウスIL-2抗体(JES6-5H4 Biolegend社製)
 結果を図3Aに示す。
[結果]
 試験例1-1の結果より、実施例2の抗原提示細胞外小胞は、その膜に、OVA抗原を提示するMHCクラスI分子、CD80、及びIL-2を含むことが分かる(図3A)。
試験例1-2:細胞外小胞の膜に含まれる融合タンパク質のフローサイトメトリー解析
 実施例3の抗原提示細胞外小胞を、PS Capture(商標) エクソソームフローサイトメトリーキット(富士フイルム和光純薬株式会社製)によって、製造業者の指示にしたがって免疫染色を行った。染色に使用した抗体は以下のとおりである。染色後、各融合タンパク質の発現を、フローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出した。
 ・APCコンジュゲート抗マウスIL-2抗体(JES6-5H4 Biolegend社製)
 ・PEコンジュゲート抗マウスCD80抗体(16-10A1 Biolegend社製)
 ・APC―Cy7コンジュゲート抗マウスI-A/I-E抗体(M5/114.15.2 Biolegend社製)
 結果を図3Bに示す。
[結果]
 試験例1-2の結果より、実施例3の抗原提示細胞外小胞は、その膜に、OVA抗原を提示するMHCクラスII分子、CD80、及びIL-2を含むことが分かる(図3B)。
試験例1-3:細胞外小胞の膜に含まれる融合タンパク質のフローサイトメトリー解析
 実施例4の抗原提示細胞外小胞を、PS Capture(商標) エクソソームフローサイトメトリーキット(富士フイルム和光純薬株式会社製)によって、製造業者の指示にしたがって免疫染色を行った。染色に使用した抗体は以下のとおりである。染色後、各融合タンパク質の発現を、フローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出した。
 ・APCコンジュゲート抗マウスIL-2抗体(JES6-5H4 Biolegend社製)
 ・PEコンジュゲート抗マウスCD80抗体(16-10A1 Biolegend社製)
 ・APC―Cy7コンジュゲート抗マウスI-A/I-E抗体(M5/114.15.2 Biolegend社製)
 ・APCコンジュゲート抗マウスLAP(TGF-β1)抗体(TW7-16B4 Biolegend社製)
 結果を図3Cに示す。
[結果]
 試験例1-3の結果より、実施例4の抗原提示細胞外小胞は、その膜に、OVA抗原を提示するMHCクラスII分子、CD80、IL-2、及びTGF-β1を含むことが分かる(図3C)。
試験例1-4:細胞外小胞の膜に含まれる融合タンパク質のフローサイトメトリー解析
 実施例5の抗原提示細胞外小胞を、PS Capture(商標) エクソソームフローサイトメトリーキット(富士フイルム和光純薬株式会社製)によって、製造業者の指示にしたがって免疫染色を行った。染色に使用した抗体は以下のとおりである。染色後、各融合タンパク質の発現を、フローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出した。
 ・Alexa Fluor 488コンジュゲート抗マウスIL-4抗体(11B11 Biolegend社製)
 ・PEコンジュゲート抗マウスCD80抗体(16-10A1 Biolegend社製)
 ・APC―Cy7コンジュゲート抗マウスI-A/I-E抗体(M5/114.15.2 Biolegend社製)
 結果を図3Dに示す。
[結果]
 試験例1-4の結果より、実施例5の抗原提示細胞外小胞は、その膜に、OVA抗原を提示するMHCクラスII分子、CD80、及びIL-4を含むことが分かる(図3D)。
試験例2:in vitroにおける、抗原提示細胞外小胞によるOVA特異的CD8陽性T細胞(OT-1 T細胞)の活性化実験
 抗原提示細胞外小胞が抗原特異的CD8陽性T細胞を活性化等するかどうかを調べるために、in vitroにおいて以下の試験を実施した。
 OVA反応性TCRトランスジェニックマウスであるOT-1マウスから摘出したリンパ節を100μmフィルター上で破砕し、リンパ節細胞懸濁液を得た。細胞懸濁液を、細胞増殖アッセイ試薬であるCellTrace Violet(Thermo Fisher Scientific社製)を用いて、製造業者の指示にしたがって染色した。染色したリンパ節細胞 2×10個を、10%ウシ胎児血清、50μM 2-メルカプトエタノール及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたRPMI1640培地 200μLに懸濁し、実施例1又は2の抗原提示細胞外小胞(最終濃度3μg/mL)、或いは参考例2~4の3種類の細胞外小胞の混合物(3種類の細胞外小胞の各々の最終濃度 3μg/mL)又は参考例1、2又は5の細胞外小胞(最終濃度 3μg/mL)を加え、96穴丸底プレートで3日間培養した後、免疫染色を行った。染色に使用した抗体は以下のとおりである(染色時間:15分、温度:4℃)。染色後、OT-1 T細胞における細胞増殖アッセイ試薬であるCellTrace Violetの発光強度をフローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出した。
 ・APCコンジュゲート抗マウスCD8抗体(53-6.7 Biolegend社製)
 ・PEコンジュゲート抗マウスTCR Vb5.1,5.2抗体(MR9-4 Biolegend社製)
 結果を図4に示す。
[結果]
 試験例2の結果より、実施例1,2の抗原提示細胞外小胞は、参考例2~4の3種の細胞外小胞の混合物、又は参考例1,2,5の細胞外小胞と比較して、抗原特異的CD8陽性T細胞を顕著に分化及び/又は増殖させた(図4)。
試験例3:in vivoにおける、抗原提示細胞外小胞によるOVA特異的CD8陽性T細胞(OT-1 T細胞)の活性化実験
 抗原提示細胞外小胞が抗原特異的CD8陽性T細胞を活性化等するかどうかを調べるために、in vivoにおいて以下の試験を実施した。
 OVA反応性TCRトランスジェニックマウスであるOT-1マウスからリンパ節を摘出し、試験例2と同様にリンパ球懸濁液を調製した。CD45.1コンジェニックマウスからも同様にリンパ節を摘出し、リンパ球懸濁液を調製した。それぞれのリンパ球懸濁液を1:1の割合で混合し、細胞増殖アッセイ試薬であるCellTrace Violetを用いて染色した。PBSに懸濁した1×10個のCellTrace Violet染色した混合リンパ球懸濁液を、CD45.1/CD45.2コンジェニックマウスの尾静脈から移入した。翌日、実施例2の抗原提示細胞外小胞若しくは参考例1の細胞外小胞 50μg、又は1.5μgのIL-2(Biolegend社製)と50μgの抗マウスIL-2抗体(S4B6-1 Bio X Cell社製)との混合物(IL-2/抗IL-2抗体複合体)をCD45.1/CD45.2コンジェニックマウスに尾静脈から移入した。細胞移入4日後、レシピエントマウスからリンパ節を摘出し、リンパ球懸濁液を調製し、免疫染色を行った。染色に使用した抗体は以下のとおりである(染色時間:15分、温度:4℃)。染色後、移入したOT-1 T細胞及び野生型CD8T細胞における細胞増殖アッセイ試薬であるCellTrace Violetの発光強度をフローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出した。
 ・PE-Cy7コンジュゲート抗マウスCD8抗体(53-6.7 Biolegend社製)
 ・PEコンジュゲート抗マウスTCR Vb5.1,5.2抗体(MR9-4 Biolegend社製)
 ・FITCコンジュゲート抗マウスCD45.1抗体(A20 Biolegend社製)
 ・APCコンジュゲート抗マウスCD45.2抗体(104 Biolegend社製)
 結果を図5に示す。
[結果]
 試験例3の結果より、実施例2の抗原提示細胞外小胞は、参考例1の細胞外小胞と比較して、in vivoにおいて、他のCD8陽性T細胞(抗原非特異的なCD8陽性T細胞)をほとんど活性化等することなく、抗原特異的CD8陽性T細胞を顕著に分化及び/又は増殖させたことが分かる(図5)。また、実施例2の抗原提示細胞外小胞は、IL-2/抗IL-2抗体複合体と比較して、他のCD8陽性T細胞(抗原非特異的なCD8陽性T細胞)をほとんど活性化させなかったことから、サイトカインストーム等の重篤な副作用が低い可能性が考えられる(図5)。
試験例4:in vitroにおける、抗原提示細胞外小胞によるOVA特異的CD4陽性T細胞(OT-2 T細胞)の活性化実験
 抗原提示細胞外小胞が抗原特異的CD4陽性T細胞を活性化等するかどうかを調べるために、in vitroにおいて以下の試験を実施した。
 OVA反応性CD4TCRトランスジェニックマウスであるOT-2マウスから摘出したリンパ節を100μmフィルター上で破砕し、リンパ節細胞懸濁液を得た。細胞懸濁液を、細胞増殖アッセイ試薬であるCellTrace Violet(Thermo Fisher Scientific社製)を用いて、製造業者の指示にしたがって染色した。染色したリンパ節細胞 2×10個を、10%ウシ胎児血清、50μM 2-メルカプトエタノール及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたRPMI1640培地 200μLに懸濁し、最終濃度が10μg/mLになるように実施例3の抗原提示細胞外小胞又は参考例1の細胞外小胞を加え、96穴丸底プレートで4日間培養した。4日後、細胞を回収し、免疫染色を行った。染色に使用した抗体は以下のとおりである(染色時間:15分、温度:4℃)。染色後、OT-2 T細胞における細胞増殖アッセイ試薬であるCellTrace Violetの発光強度をフローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出した。
 ・PE-Cy7コンジュゲート抗マウスCD4抗体(RM4-5 Biolegend社製)
 ・APCコンジュゲート抗マウスTCR Vb5.1,5.2抗体(MR9-4 Biolegend社製)
 結果を図6に示す。
[結果]
 試験例4の結果より、実施例3の抗原提示細胞外小胞は、参考例1の細胞外小胞と比較して、抗原特異的CD4T細胞を顕著に分化及び/又は増殖させた(図6)。
試験例5:in vitroにおける、抗原提示細胞外小胞によるOVA特異的CD4陽性T細胞(OT-2 T細胞)の制御性T細胞への分化誘導実験
 抗原提示細胞外小胞が抗原特異的CD4陽性T細胞を制御性T細胞(Treg)へと誘導するかどうかを調べるために、in vitroにおいて以下の試験を実施した。
 OVA反応性CD4TCRトランスジェニックマウスであるOT-2マウスから摘出したリンパ節を100μmフィルター上で破砕し、リンパ節細胞懸濁液を得た。細胞懸濁液を、細胞増殖アッセイ試薬であるCellTrace Violet(Thermo Fisher Scientific社製)を用いて、製造業者の指示にしたがって染色した。染色したリンパ節細胞 2×10個を、10%ウシ胎児血清、50μM 2-メルカプトエタノール及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたRPMI1640培地 200μLに懸濁し、最終濃度が10μg/mLになるように実施例4の抗原提示細胞外小胞又は参考例1の細胞外小胞を加え、96穴丸底プレートで4日間培養した。4日後、細胞を回収し、細胞外免疫染色を行った。染色使用した抗体は以下のとおりである(染色時間:15分、温度:4℃)。細胞外染色後、True-Nuclear Transcription Factor Buffer Set (Biolegend社製)及び抗マウスFOXP3抗体を用いて、製造業者の指示にしたがって細胞内免疫染色を行った。細胞内染色後、OT-2 T細胞上の制御性T細胞のマーカーであるCD25分子とFOXP3分子の発現をフローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出した。
 ・PEコンジュゲート抗マウスCD25抗体(PC61 Biolegend社製)
 ・PE-Cy7コンジュゲート抗マウスCD4抗体(RM4-5 Biolegend社製)
 ・APCコンジュゲート抗マウスTCR Vb5.1,5.2抗体(MR9-4 Biolegend社製)
 ・Alexa Fluor 488コンジュゲート抗マウスFOXP3抗体(MF-14 Biolegend社製)
 結果を図7に示す。
[結果]
 試験例5の結果より、実施例4の抗原提示細胞外小胞は、参考例1の細胞外小胞と比較して、抗原特異的CD4陽性T細胞を制御性T細胞(好ましくは、Foxp3を発現している制御性T細胞)へと分化誘導させたことが分かる(図7)。
試験例6:in vitroにおける、抗原提示細胞外小胞によるOVA特異的CD4陽性T細胞(OT-2 T細胞)のTh2T細胞への分化誘導実験
 抗原提示細胞外小胞が抗原特異的CD4陽性T細胞をTh2T細胞へと分化誘導するかどうかを調べるために、in vitroにおいて以下の試験を実施した。
 OVA反応性CD4TCRトランスジェニックマウスであるOT-2マウスから摘出したリンパ節を100μmフィルター上で破砕し、リンパ節細胞懸濁液を得た。細胞懸濁液を、細胞増殖アッセイ試薬であるCellTrace Violet(Thermo Fisher Scientific社製)を用いて、製造業者の指示にしたがって染色した。染色したリンパ節細胞 2×10個を、10%ウシ胎児血清、50μM 2-メルカプトエタノール及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたRPMI1640培地 200μLに懸濁し、最終濃度が10μg/mLになるように実施例3若しくは5の抗原提示細胞外小胞又は参考例1の細胞外小胞を加え、96穴丸底プレートで4日間培養した。4日後、細胞を回収し、細胞外免疫染色を行った。染色使用した抗体は以下のとおりである(染色時間:15分、温度:4℃)。細胞外染色後、True-Nuclear Transcription Factor Buffer Set(Biolegend社製)及び抗GATA3抗体を用いて、製造業者の指示にしたがって細胞内免疫染色を行った。細胞内染色後、OT-2 T細胞の細胞増殖アッセイ試薬であるCellTrace Violetの発光強度とTh2T細胞のマーカーであるGATA3の発現をフローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出した。
 ・PEコンジュゲート抗マウスTCR Vb5.1,5.2抗体(MR9-4 Biolegend社製)
 ・PE-Cy7コンジュゲート抗マウスCD4抗体(RM4-5 Biolegend社製)
 ・APCコンジュゲート抗GATA3抗体(16E10A23 Biolegend社製)
 結果を図8に示す。
[結果]
 試験例6の結果より、実施例3,5の抗原提示細胞外小胞は、参考例1の細胞外小胞と比較して、in vitroにおいて、抗原特異的CD4陽性T細胞をTh2細胞へと分化誘導させたことが分かる(図8)。Th2細胞は、IL-4やIL-5などのサイトカインを分泌し、同じ抗原を認識するナイーブB細胞を分化活性化させ、抗原特異的IgE産生誘導(すなわち液性免疫の活性化)を促す。
[実施例6]MHCクラスII分子、T細胞共刺激分子、及びT細胞刺激性サイトカインを膜に含む抗原提示細胞外小胞4
 HEK293T細胞を細胞培養ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養した。約50%コンフルエンスの細胞に、製造業者の指示にしたがって、上記で調製したプラスミド(sc-Dimer-CD81―IL―12p40、MHCクラスIIα鎖、CD80-CD9、及びIL―12p35をそれぞれコードするpCAGベクター)をPolyethylenimine“Max”(Polysciences社製)を用いて、4つ同時にトランスフェクトした。トランスフェクションの3-12時間後に培地を交換し、トランスフェクションの24時間後にエクソソームを除去した2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地に培地を交換した。トランスフェクションの72時間後、上清を回収し、該上清を0.22μmフィルターに通した後、300gで5分間遠心分離した。上清を回収し、該上清を2,000g、20分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を10,000g、30分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を100,000gで2時間遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットをPBSで洗浄した。ペレットにPBSを加え、100,000gで2時間、遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットを100μLのPBSで懸濁したものを、実施例6の抗原提示細胞外小胞として用いた。抗原提示細胞外小胞の濃度は、BCAタンパクアッセイキット(Thermo Fisher Scientific社製)を用い、製造業者の指示にしたがって測定した。
試験例1-5:細胞外小胞の膜に含まれる融合タンパク質のフローサイトメトリー解析
 実施例6の抗原提示細胞外小胞を、PS Capture(商標) エクソソームフローサイトメトリーキット(富士フイルム和光純薬株式会社製)によって、製造業者の指示にしたがって免疫染色を行った。染色に使用した抗体は以下のとおりである。染色後、各融合タンパク質の発現を、フローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出した。
 ・Alexa Fluor 488コンジュゲート抗マウスI-A/I-E抗体(M5/114.15.2 Biolegend社製)
 ・PEコンジュゲート抗マウスIL-12抗体(C15.6 Biolegend社製)
 ・APCコンジュゲート抗マウスCD80抗体(16-10A1 Biolegend社製) 結果を図3Eに示す。
[結果]
 試験例1-5の結果より、実施例6の抗原提示細胞外小胞は、その膜に、OVA抗原を提示するMHCクラスII分子、CD80、及び機能的なIL-12を含むことが分かる(図3E)
[実施例7]MHCクラスII分子、T細胞共刺激分子、及びT細胞刺激性サイトカインを膜に含む抗原提示細胞外小胞5
 HEK293T細胞を細胞培養ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養した。約50%コンフルエンスの細胞に、製造業者の指示にしたがって、上記で調製したプラスミド(sc-Dimer-CD81、MHCクラスIIα鎖、CD80-CD9、CD81―IL―6及びTGF-β-MFGE8をそれぞれコードするpCAGベクター)をPolyethylenimine“Max”(Polysciences社製)を用いて、5つ同時にトランスフェクトした。トランスフェクションの3-12時間後に培地を交換し、トランスフェクションの24時間後にエクソソームを除去した2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地に培地を交換した。トランスフェクションの72時間後、上清を回収し、該上清を0.22μmフィルターに通した後、300gで5分間遠心分離した。上清を回収し、該上清を2,000g、20分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を10,000g、30分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を100,000gで2時間遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットをPBSで洗浄した。ペレットにPBSを加え、100,000gで2時間、遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットを100μLのPBSで懸濁したものを、実施例7の抗原提示細胞外小胞として用いた。抗原提示細胞外小胞の濃度は、BCAタンパクアッセイキット(Thermo Fisher Scientific社製)を用い、製造業者の指示にしたがって測定した。
試験例1-6:細胞外小胞の膜に含まれる融合タンパク質のフローサイトメトリー解析
 実施例7の抗原提示細胞外小胞を、PS Capture(商標) エクソソームフローサイトメトリーキット(富士フイルム和光純薬株式会社製)によって、製造業者の指示にしたがって免疫染色を行った。染色に使用した抗体は以下のとおりである。染色後、各融合タンパク質の発現を、フローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出した。
 ・FITCコンジュゲート抗マウスCD80抗体(16-10A1 Biolegend社製)
 ・PEコンジュゲート抗マウスIL-6抗体(MP5-20F3 Biolegend社製)
 ・APC―Cy7コンジュゲート抗マウスI-A/I-E抗体(M5/114.15.2 Biolegend社製)
 ・APCコンジュゲート抗マウスLAP(TGF-β1)抗体(TW7-16B4 Biolegend社製)
 結果を図3Fに示す。
[結果]
 試験例1-6の結果より、実施例7の抗原提示細胞外小胞は、その膜に、OVA抗原を提示するMHCクラスII分子、CD80、IL-6、及びTGFbを含むことが分かる(図3F)
[実施例8]MHCクラスI分子、T細胞共刺激分子、及びT細胞刺激性サイトカインを安定に発現する細胞株の樹立と抗原提示細胞外小胞の調製
 PLAT―A細胞を細胞培養ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養した。約50%コンフルエンスの細胞に、製造業者の指示にしたがって、CD80-CD9またはsc-Trimer-CD81―IL―2をコードするpMXベクターをPolyethylenimine“Max”(Polysciences社製)を用いてそれぞれトランスフェクトした。トランスフェクションの12時間後に培地を交換し、トランスフェクションの60時間後、上清を回収し、300gで5分間遠心分離した。回収した上清をウイルス粒子として用いた。 HEK293細胞を細胞培養ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養した。約50%コンフルエンスの細胞に、上記で調整したCD80-CD9を組み込んだウイルス粒子にDOTAPトランスフェクション試薬(Roche)を製造業者の指示にしたがって加え、HEK293細胞に添加した。ウイルス粒子を加えた細胞は2500rpmで3時間、遠心感染を行った。感染24時間後、培地を交換し1週間後、CD80陽性細胞をFACSMelody(BDバイオサイエンシス社製)でソーティングした。ソーティングしたCD80陽性細胞を1週間培養した後、ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養した。約50%コンフルエンスの細胞に上記で調製したsc-Trimer-CD81―IL―2を組み込んだウイルス粒子にDOTAPトランスフェクション試薬を製造業者の指示にしたがって加え、CD80陽性HEK293細胞に添加した。ウイルス粒子を加えた細胞は2500rpmで3時間、遠心感染を行った。感染24時間後、培地を交換し1週間後、CD80陽性、MHCI陽性細胞をFACSMelody(BDバイオサイエンシス社製)でソーティングした。ソーティングした細胞を安定発現細胞として用いた。安定発現細胞をディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養した。約50%コンフルエンスの細胞の上清をエクソソームを除去した2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地に培地を交換した。培地交換72時間後、上清を回収し、該上清を0.22μmフィルターに通した後、300gで5分間遠心分離した。上清を回収し、該上清を2,000g、20分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を10,000g、30分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を100,000gで2時間遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットをPBSで洗浄した。ペレットにPBSを加え、100,000gで2時間、遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットを100μLのPBSで懸濁したものを、実施例8の抗原提示細胞外小胞として用いた。
試験例1-7:細胞外小胞の膜に含まれる融合タンパク質のフローサイトメトリー解析
 実施例8の抗原提示細胞外小胞を、PS Capture(商標) エクソソームフローサイトメトリーキット(富士フイルム和光純薬株式会社製)によって、製造業者の指示にしたがって免疫染色を行った。染色に使用した抗体は以下のとおりである(染色時間:15分、温度:4℃)。染色後、各融合タンパク質の発現を、フローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出した。
 ・PEコンジュゲート抗マウスH-2KbOVA複合体抗体(25-D1.16 Biolegend社製)
 ・FITCコンジュゲート抗マウスCD80抗体(16-10A1 Biolegend社製)
 ・APCコンジュゲート抗マウスIL-2抗体(JES6-5H4 Biolegend社製)
 結果を図3Gに示す。
[結果]
 試験例1-7の結果より、実施例8の抗原提示細胞外小胞は、その膜に、OVA抗原を提示するMHCクラスI分子、CD80、及びIL-2を含むことが分かる(図3G)。
[実施例9]HLAクラスI分子、ヒトT細胞共刺激分子、及びヒトT細胞刺激性サイトカインを膜に含む抗原提示細胞外小胞
 B2mを欠損させたHEK293T細胞を細胞培養ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養した。約50%コンフルエンスの細胞に、製造業者の指示にしたがって、上記で調製したプラスミド(HLAsc-Trimer-ヒトCD81、ヒトCD80-ヒトCD9およびヒトCD63-IL2をそれぞれコードするpCAGベクター)をPolyethylenimine“Max”(Polysciences社製)を用いて、2つ同時にトランスフェクトした。トランスフェクションの3-12時間後に培地を交換し、トランスフェクションの24時間後にエクソソームを除去した2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地に培地を交換した。トランスフェクションの72時間後、上清を回収し、該上清を0.22μmフィルターに通した後、300gで5分間遠心分離した。上清を回収し、該上清を2,000g、20分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を10,000g、30分間、遠心分離した。上清を回収し、該上清を100,000gで2時間遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットをPBSで洗浄した。ペレットにPBSを加え、100,000gで2時間、遠心分離した後、上清を取り除き、ペレットを100μLのPBSで懸濁したものを、実施例9のヒト化抗原提示細胞外小胞として用いた。抗原提示細胞外小胞の濃度は、BCAタンパクアッセイキット(Thermo Fisher Scientific社製)を用い、製造業者の指示にしたがって測定した。
 hsc―Trimer―hCD81の代わりにSARS-CoV2sc-Trimer-hCD81を用いることにより、SARS-CoV2ペプチドを抗原として提示する抗原提示MHC分子と、hCD80、及びhIL-2をその表面に提示するヒト化抗原提示細胞外小胞を作製することができる。
試験例1-8:細胞外小胞の膜に含まれる融合タンパク質のフローサイトメトリー解析
 実施例9の抗原提示細胞外小胞を、PS Capture(商標) エクソソームフローサイトメトリーキット(富士フイルム和光純薬株式会社製)によって、製造業者の指示にしたがって免疫染色を行った。染色に使用した抗体は以下のとおりである(染色時間:15分、温度:4℃)。染色後、各融合タンパク質の発現を、フローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出した。
 ・APCコンジュゲート抗ヒトIL-2抗体(MQ1-17H12 Biolegend社製)
 ・PEコンジュゲート抗ヒトCD80抗体(2D10 Biolegend社製)
 ・APCコンジュゲート抗ヒトβ2m抗体(2M2 Biolegend社製)
 結果を図3Hに示す。
[結果]
 試験例1-8の結果より、実施例9の抗原提示細胞外小胞は、その膜に、WT1抗原を提示するMHCクラスI分子、hCD80、及びhIL-2を含むことが分かる(図3H)。
試験例7:in vitroにおける、抗原提示細胞外小胞によるOVA特異的CD4陽性T細胞(OT-2 T細胞)のTh1T細胞への分化誘導実験
 抗原提示細胞外小胞が抗原特異的CD4陽性T細胞をTh1T細胞へと分化誘導するかどうかを調べるために、in vitroにおいて以下の試験を実施した。
 OVA反応性CD4TCRトランスジェニックマウスであるOT-2マウスから摘出したリンパ節を100μmフィルター上で破砕し、リンパ節細胞懸濁液を得た。細胞懸濁液を、細胞増殖アッセイ試薬であるCellTrace Violet(Thermo Fisher Scientific社製)を用いて、製造業者の指示にしたがって染色した。染色したリンパ節細胞 2×10個を、10%ウシ胎児血清、50μM 2-メルカプトエタノール及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたRPMI1640培地 200μLに懸濁し、最終濃度が10μg/mLになるように実施例3若しくは6の抗原提示細胞外小胞又は参考例1の細胞外小胞を加え、96穴丸底プレートで4日間培養した。4日後、細胞を回収し、細胞外免疫染色を行った。染色使用した抗体は以下のとおりである(染色時間:15分、温度:4℃)。細胞外染色後、True-Nuclear Transcription Factor Buffer Set(Biolegend社製)及び抗T-bet抗体を用いて、製造業者の指示にしたがって細胞内免疫染色を行った。細胞内染色後、OT-2 T細胞の細胞増殖アッセイ試薬であるCellTrace Violetの発光強度とTh1T細胞のマーカーであるT-betの発現をフローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出した。
 ・PerCP/Cy5.5コンジュゲート抗マウスTCRVa2抗体(B20.1 Biolegend社製)
 ・APC-Cy7コンジュゲート抗マウスCD4抗体(RM4-5 Biolegend社製)
 ・PEコンジュゲート抗T-bet抗体(4B10 Biolegend社製)
 結果を図9に示す。
[結果]
 試験例7の結果より、実施例6の抗原提示細胞外小胞は、参考例1の細胞外小胞と比較して、in vitroにおいて、抗原特異的CD4陽性T細胞をTh1細胞へと分化誘導させた(図9)。Th1細胞はIFN-γやIL-2等を産生し、病原体細胞、ウイルスに感染した細胞、がん細胞等の破壊を行う、マクロファージや細胞傷害性T細胞の活性化を促す(すなわち細胞性免疫の活性化)。
試験例8:in vitroにおける、抗原提示細胞外小胞によるOVA特異的CD4陽性T細胞(OT-2 T細胞)のTh17T細胞への分化誘導実験
 抗原提示細胞外小胞が抗原特異的CD4陽性T細胞をTh17T細胞へと分化誘導するかどうかを調べるために、in vitroにおいて以下の試験を実施した。
 OVA反応性CD4TCRトランスジェニックマウスにRORrt-GFPマウスを掛け合わせたマウスから摘出したリンパ節を100μmフィルター上で破砕し、リンパ節細胞懸濁液を得た。細胞懸濁液を、細胞増殖アッセイ試薬であるCellTrace Violet(Thermo Fisher Scientific社製)を用いて、製造業者の指示にしたがって染色した。染色したリンパ節細胞 2×10個を、10%ウシ胎児血清、50μM 2-メルカプトエタノール及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたRPMI1640培地 200μLに懸濁し、最終濃度が10μg/mLになるように実施例7の抗原提示小胞若しくは参考例1の細胞外小胞を加え、96穴丸底プレートで4日間培養した。4日後、細胞を回収し、細胞外免疫染色を行った。染色使用した抗体は以下のとおりである(染色時間:15分、温度:4℃)。細胞内染色後、OT-2 T細胞の細胞増殖アッセイ試薬であるCellTrace Violetの発光強度とTh17T細胞のマーカーであるRORrtの発現をフローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出した。
 ・APCコンジュゲート抗マウスTCRVa2抗体(B20.1 Biolegend社製)
 ・PE-Cy7コンジュゲート抗マウスCD4抗体(RM4-5 Biolegend社製)
 ・PEコンジュゲート抗マウスTCR Vb5.1,5.2抗体(MR9-4 Biolegend社製)
結果を図10に示す。
[結果]
 試験例8の結果より、実施例7の抗原提示細胞外小胞は、参考例1の細胞外小胞と比較して、in vitroにおいて、抗原特異的CD4陽性T細胞をTh17細胞へと分化誘導させたことが分かる(図10)。Th17細胞はTh1やTh2細胞とは異なり、炎症性サイトカインである、IL-17、IL-21、IL-22、TNF-αなどを産生して、炎症を誘導し、好中球や単球の動員、増殖を促し、真菌(カンジタ菌、黄色ブドウ球菌、溶連菌など病原性真菌を含む)の感染防御に寄与する。
試験例9:in vitroにおける、安定細胞株から精製した抗原提示細胞外小胞によるOVA特異的CD8陽性T細胞(OT-1 T細胞)の活性化実験
 安定細胞株から精製した抗原提示細胞外小胞が抗原特異的CD8陽性T細胞を活性化等するかどうかを調べるために、in vitroにおいて以下の試験を実施した。
 OVA反応性TCRトランスジェニックマウスであるOT-1マウスから摘出したリンパ節を100μmフィルター上で破砕し、リンパ節細胞懸濁液を得た。細胞懸濁液を、細胞増殖アッセイ試薬であるCellTrace Violet(Thermo Fisher Scientific社製)を用いて、製造業者の指示にしたがって染色した。染色したリンパ節細胞 2×10個を、10%ウシ胎児血清、50μM 2-メルカプトエタノール及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたRPMI1640培地 200μLに懸濁し、最終濃度が9μg/mLになるように実施例1若しくは8の抗原提示細胞外小胞又は参考例1の細胞外小胞を加え、96穴丸底プレートで4日間培養した。96穴丸底プレートで3日間培養した後、免疫染色を行った。染色に使用した抗体は以下のとおりである(染色時間:15分、温度:4℃)。染色後、OT-1 T細胞における細胞増殖アッセイ試薬であるCellTrace Violetの発光強度をフローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出した。
 ・APCコンジュゲート抗マウスCD8抗体(53-6.7 Biolegend社製)
 ・PEコンジュゲート抗マウスTCR Vb5.1,5.2抗体(MR9-4 Biolegend社製)
 結果を図11に示す。
[結果]
 試験例9の結果より、実施例1と実施例8の抗原提示細胞外小胞は、参考例1の細胞外小胞と比較して、抗原特異的CD8陽性T細胞を顕著に増殖させた(図11)。これは、sc-Trimer-CD81に例示される構成要件(A)とCD81―IL―2に例示される構成要件(B)が別々のタンパク質として存在する細胞外小胞だけでなく、sc-Trimer-CD81―IL―2に例示される、両者の機能を具備した融合タンパク質が存在する細胞外小胞であっても同等の効果をT細胞に奏することを示す。
試験例10:抗原提示細胞外小胞による抗腫瘍効果の評価実験
 安定細胞株から精製した抗原提示細胞外小胞が抗腫瘍効果を持つかどうかを調べるためにCD45.1/CD45.2コンジェニックマウスにOVAを発現するB16メラノーマ細胞1×10個を皮下に摂取し、3日後1×10個のOT-1T細胞を移入した。OT-1T細胞移入後、1日、4日、7日後に実施例8の抗原提示細胞外小胞若しくは参考例1の細胞外小胞 50μgをレシピエントマウスの尾静脈から移入し、B16メラノーマ細胞の大きさを観察した。
[結果]
 試験例10の結果より、実施例8の抗原提示細胞外小胞は、参考例1の細胞外小胞と比較して、B16メラノーマ細胞の増殖を顕著に抑制した(図12)。これは、sc-Trimer-CD81に例示される構成要件(A)とCD81―IL―2に例示される構成要件(B)が別々のタンパク質として存在する細胞外小胞だけでなく、sc-Trimer-CD81―IL―2に例示される、両者の機能を具備した融合タンパク質が存在する細胞外小胞であっても同等の医薬効果を奏することを示す。
[実施例10]sc-Trimer-CD81―IL―2融合タンパク質を膜に含む抗原提示細胞外小胞
 HEK293T細胞を細胞培養ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養する。約50%コンフルエンスの細胞に、製造業者の指示にしたがって、上記で調製したプラスミド(sc-Trimer-CD81―IL―2を発現する発現ベクターをPolyethylenimine“Max”(Polysciences社製)を用いてトランスフェクションする。トランスフェクション後の細胞から上記の手法により、抗原提示細胞外小胞を調製する。
参考例6CD63-AkaLuc融合タンパク質膜に含む抗原提示細胞外小胞
 HEK293T細胞を細胞培養ディッシュに播種し、2%ウシ胎児血清及びペニシリン/ストレプトマイシンを加えたダルベッコ改変イーグル培地で培養する。約50%コンフルエンスの細胞に、製造業者の指示にしたがって、上記で調製したプラスミド(CD63-AkaLucを発現する発現ベクターをPolyethylenimine“Max”(Polysciences社製)を用いてトランスフェクションする。トランスフェクション後の細胞から上記の手法により、抗原提示細胞外小胞を調製する。
試験例11:in vivoにおける、sc-Trimer-CD81―IL―2融合タンパク質を膜に含む抗原提示細胞外小胞によるOVA特異的CD8陽性T細胞(OT-1 T細胞)の活性化実験
 OVA反応性TCRトランスジェニックマウスであるOT-1マウスからリンパ節を摘出し、100μmフィルター上で破砕し、リンパ節細胞懸濁液を得る。CD45.1コンジェニックマウスからも同様にリンパ節を摘出し、リンパ球懸濁液を調製した。それぞれのリンパ球懸濁液を1:1の割合で混合し、細胞増殖アッセイ試薬であるCellTrace Violetを用いて染色する。PBSに懸濁した1×10個のCellTrace Violet染色した混合リンパ球懸濁液を、CD45.1/CD45.2コンジェニックマウスの尾静脈から移入する。翌日、実施例11若しくは参考例6の細胞外小胞50μgを、CD45.1/CD45.2コンジェニックマウスに尾静脈から移入する。細胞移入4日後、レシピエントマウスから脾臓を摘出し、リンパ球懸濁液を調製し、免疫染色を行う。染色には以下の抗体を用いる(染色時間:15分、温度:4℃)。染色後、移入したOT-1 T細胞及び野生型CD8T細胞における細胞増殖アッセイ試薬であるCellTrace Violetの発光強度をフローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出する。
 ・PE-Cy7コンジュゲート抗マウスCD8抗体(53-6.7 Biolegend社製)
 ・PEコンジュゲート抗マウスTCR Vb5.1,5.2抗体(MR9-4 Biolegend社製)
 ・FITCコンジュゲート抗マウスCD45.1抗体(A20 Biolegend社製)
 ・APCコンジュゲート抗マウスCD45.2抗体(104 Biolegend社製)
 実施例10の細胞外小胞は参考例6の細胞外小胞と比較して、in vivoにおいて、他のCD8陽性T細胞(抗原非特異的なCD8陽性T細胞)をほとんど活性化等することなく、抗原特異的CD8陽性T細胞を顕著に分化及び/又は増殖させることができる。。
試験例12:sc-Trimer-CD81―IL―2融合タンパク質を発現する細胞外小胞による内在性OVA反応性T細胞の活性化実験
 実施例10若しくは参考例6の細胞外小胞50μgを、C57BL/6マウスの尾静脈から移入する。移入4日後、レシピエントマウスから脾臓を摘出し、リンパ球懸濁液を調製し、OVA反応性T細胞を製造業者の指示にしたがって、テトラマーで免疫染色を行う。染色には以下の抗体を用いる。染色後、テトラマー陽性細胞をフローサイトメーターFACSCantoII(BDバイオサイエンシス社製)で検出する。
・APCコンジュゲートH-2Kb OVA Tetramer(TETRAMER SHOP社)
 ・PEコンジュゲートH-2Kb OVA Tetramer(TETRAMER SHOP社)
 ・Brilliant Violet421コンジュゲート抗マウスCD8抗体(53-6.7 Biolegend社製)
 実施例10の細胞外小胞は、参考例6の細胞外小胞と比較して、顕著に内在性に存在するOVA反応性CD8T細胞を増殖させることができる。
 以上、実施例で示されたとおり、本明細書中に記載の抗原提示細胞外小胞ならびにポリヌクレオチドは、抗原特異的なT細胞(例えば、抗原特異的CD8陽性T細胞、抗原特異的CD4陽性細胞等)を満足に活性化、増殖及び/又は分化等することができるものである。
 以下に、配列表に含まれる配列の概要を記載する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000054
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000055
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000056
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000057
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000058
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000059
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000060
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000061
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000062

Figure JPOXMLDOC01-appb-T000063

Claims (47)

  1.  抗原提示MHC分子及びT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示する該抗原提示細胞外小胞。
  2.  請求項1に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
    (A)前記抗原提示MHC分子を含む、該抗原を膜外に提示可能なタンパク質;及び
    (B)第1の前記T細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニットを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能なタンパク質;
    を含む、抗原提示細胞外小胞。
  3.  請求項2記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
    (A)抗原提示MHC分子と、細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメインとを含む、該抗原を膜外に提示可能な融合タンパク質又はタンパク質複合体;及び
    (B)第1のT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニットと、細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメインとを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;
    を含む、抗原提示細胞外小胞。
  4.  請求項2記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
    (A)抗原提示MHC分子と、テトラスパニン若しくはその膜貫通ドメイン又はMFG-E8若しくはそのドメインとを含む、該抗原を膜外に提示可能な融合タンパク質又はタンパク質複合体;及び
    (B)第1のT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニットと、テトラスパニンの部分配列とを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、該テトラスパニンの部分配列が、2つの膜貫通ドメインを少なくとも有し、該第1のT細胞刺激性サイトカインが、該2つの膜貫通ドメインの間に配置されている、融合タンパク質、又は
    (B)第1のT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニットと、MFG-E8又はそのドメインとを含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;
    を含む、抗原提示細胞外小胞。
  5.  請求項2記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
    (A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、N末端側から、
     (A-1)MHC分子拘束性抗原ペプチド、
     (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
     (A-3)単鎖MHC分子、
     (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
     (A-5)テトラスパニン
    からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質、又は
    (A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
     N末端側から、
      (A-1)MHC分子拘束性抗原ペプチド、
      (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
      (A-3)MHCクラスIα鎖、βミクログロブリン、MHCクラスIIα鎖、又はMHCクラスIIβ鎖
      (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
      (A-5)テトラスパニン
    からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質と、
     (A-6)βミクログロブリン、MHCクラスIα鎖、MHCクラスIIβ鎖、又はMHCクラスIIα鎖のアミノ酸配列を含む、タンパク質と
    を含む、タンパク質複合体;並びに
    (B)N末端側から、
     (B-1)N末端側から、膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3を含むテトラスパニンの部分配列、
     (B-2)存在していてもよいスペーサー配列、
     (B-3)第1のT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニット、
     (B-4)存在していてもよいスペーサー配列、並びに
     (B-5)膜貫通ドメイン4を含むテトラスパニンの部分配列
    からなるアミノ酸配列を含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質、又は
    (B)N末端側から、
     (B-3)第1のT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニット、
     (B-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
     (B-5)MFG-E8
    からなるアミノ酸配列を含む、該第1のT細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質;
    を含む、抗原提示細胞外小胞。
  6.  請求項5記載の抗原提示細胞外小胞であって、膜に以下:
    (A)抗原ペプチドを膜外に提示可能な融合タンパク質であって、N末端側から、
     (A-1)MHCクラスI分子拘束性抗原ペプチド、
     (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
     (A-3)単鎖MHCクラスI分子、
     (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
     (A-5)テトラスパニン
    からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質
    を含む、抗原提示細胞外小胞。
  7.  請求項5記載の抗原提示細胞外小胞であって、膜に以下:
    (A)抗原ペプチドを膜外に提示可能なタンパク質複合体であって、
     N末端側から、
      (A-1)MHCクラスII分子拘束性抗原ペプチド、
      (A-2)存在していてもよいスペーサー配列、
      (A-3)MHCクラスIIβ鎖、
      (A-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
      (A-5)テトラスパニン
    からなるアミノ酸配列を含む、融合タンパク質と、
     (A-6)MHCクラスIIα鎖のアミノ酸配列を含む、タンパク質と
    を含む、タンパク質複合体
    を含む、抗原提示細胞外小胞。
  8.  前記T細胞刺激性サイトカインが、IL-2、IL-4、IL-6、IL-12又はTGF-β、あるいはそのサブユニットである、請求項1~7のいずれか一項記載の抗原提示細胞外小胞。
  9.  請求項1~8のいずれか一項記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
    (C)T細胞共刺激分子を含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能なタンパク質;
    を含む、抗原提示細胞外小胞。
  10.  請求項1~9のいずれか一項記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
    (C)T細胞共刺激分子と、細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメインとを含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質;
    を含む、抗原提示細胞外小胞。
  11.  請求項1~9のいずれか一項記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
    (C)T細胞共刺激分子と、テトラスパニン若しくはその膜貫通ドメイン又はMFG-E8若しくはそのドメインとを含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質;
    を含む、抗原提示細胞外小胞。
  12.  請求項1~9のいずれか一項記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
    (C)N末端側から、
     (C-1)T細胞共刺激分子、
     (C-2)存在していてもよいスペーサー配列、及び
     (C-3)テトラスパニン
    からなるアミノ酸配列を含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能な融合タンパク質;
    を含む、抗原提示細胞外小胞。
  13.  (A)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体と(B)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体とが融合している、請求項2~8のいずれか一項に記載の抗原提示細胞外小胞。
  14.  (A)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体と(C)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体とが融合している、請求項9~12のいずれか一項に記載の抗原提示細胞外小胞。
  15.  (B)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体と(C)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体とが融合している、請求項9~12のいずれか一項に記載の抗原提示細胞外小胞。
  16.  (A)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体と、(B)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体と(C)に規定されるタンパク質又はタンパク質複合体とが融合している、請求項9~12のいずれか一項に記載の抗原提示細胞外小胞。
  17.  請求項1に記載の抗原提示細胞外小胞であって、その膜に以下:
    (D)前記抗原提示MHC分子と、すくなくとも1種の前記T細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニットを含み、該抗原と該T細胞刺激性サイトカインを膜外に提示可能な融合タンパク質を含む、抗原提示細胞外小胞。
  18.  請求項17に記載の抗原提示細胞外小胞であって、
     前記融合タンパク質が、前記抗原提示MHC分子と、前記すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニットと、細胞外小胞の膜に局在することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはその膜結合ドメインとを含む、抗原提示細胞外小胞。
  19.  請求項18に記載の抗原提示細胞外小胞であって、
     前記細胞外小胞の膜に局在することが可能な膜タンパク質又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質が、テトラスパニン又はMFG-E8である、抗原提示細胞外小胞。
  20.  請求項19に記載の抗原提示細胞外小胞であって、
    前記融合タンパク質が、N末端側から、
     (D-1)MHC分子拘束性抗原ペプチド、
     (D-2)存在していてもよいスペーサー配列、
     (D-3)単鎖MHC分子、
     (D-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
     (D-5)テトラスパニン又はその膜貫通ドメインあるいはMFG-E8又はその膜貫通ドメインと、前記すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニットを含む融合ペプチド、
    を、この順番でコードするアミノ酸配列を含む、抗原提示細胞外小胞、
  21.  請求項19に記載の抗原提示細胞外小胞であって、
    前記融合タンパク質が、N末端側から、
     (D-1)テトラスパニン又はその膜貫通ドメインあるいはMFG-E8又はその膜貫通ドメインと、前記すくなくとも1種のT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニットを含む融合ペプチド
     (D-2)存在していてもよいスペーサー配列、
     (D-3)単鎖MHC分子、
     (D-4)存在していてもよいスペーサー配列、及び
     (D-5)MHC分子拘束性抗原ペプチドを、
    この順にコードするアミノ酸配列を含む、抗原提示細胞外小胞。
  22.  前記融合ペプチドが、N末端側から、
      (1)膜貫通ドメイン1、小型細胞外ループ、膜貫通ドメイン2、小型細胞内ループ及び膜貫通ドメイン3を含むテトラスパニンの部分配列、
      (2)存在していてもよいスペーサー配列、
      (3)前記すくなくとも1つのT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニット、
      (4)存在していてもよいスペーサー配列、並びに
      (5)膜貫通ドメイン4を含むテトラスパニンの部分配列
    をこの順番でコードするアミノ酸配列を含む、請求項20又は21に記載の抗原提示細胞外小胞。
  23.  前記融合ペプチドが、N末端側から、
     (1)前記すくなくとも1のT細胞刺激性サイトカイン又はそのサブユニット、
     (2)存在していてもよいスペーサー配列、及び
     (3)MFG-E8
    をこの順番でコードするアミノ酸配列を含む、請求項20又は21に記載の抗原提示細胞外小胞。
  24.  前記MHC分子拘束性抗原ペプチドがMHCクラスI分子拘束性抗原ペプチドであり、前記単鎖MHC分子が、MHCクラスIα鎖の細胞外領域を含む、請求項20又は21に記載の抗原提示細胞外小胞。
  25.  前記MHC分子拘束性抗原ペプチドがMHCクラスII分子拘束性抗原ペプチドであり、前記単鎖MHC分子が、MHCクラスIIα鎖の細胞外ドメイン及び/又はMHCクラスIIβ鎖の細胞外ドメインを含む、請求項20又は21に記載の抗原提示細胞外小胞。
  26.  (C)すくなくとも1つのT細胞共刺激分子を含む、該T細胞共刺激分子とT細胞とが相互作用可能なタンパク質をさらにその膜に含む、請求項17~25のいずれか一項に記載の抗原提示細胞外小胞。
  27.  前記T細胞と相互作用可能なタンパク質が、前記すくなくとも1つのT細胞共刺激分子と、細胞外小胞の膜に発現することが可能な膜タンパク質若しくはその膜貫通ドメイン又は細胞外小胞の膜に結合することが可能なタンパク質若しくはそのドメインとを含む、請求項26に記載の抗原提示細胞外小胞。
  28.  前記T細胞と相互作用可能なタンパク質が、前記すくなくとも1つのT細胞共刺激分子と、テトラスパニン若しくはその膜貫通ドメイン又はMFG-E8若しくはそのドメインとを含む、請求項26に記載の抗原提示細胞外小胞。
  29.  前記T細胞と相互作用可能なタンパク質が、
    (C)N末端側から、
     (C-1)前記すくなくとも1つのT細胞共刺激分子、
     (C-2)存在していてもよいスペーサー配列、及び
     (C-3)テトラスパニンを
    この順にコードするアミノ酸配列を含む、請求項26に記載の抗原提示細胞外小胞。
  30.  前記(D)融合タンパク質と前記(C)T細胞と相互作用可能なタンパク質が融合している、請求項26~29のいずれか一項に記載の抗原提示細胞外小胞。
  31.  細胞外小胞が、エクソソームである、請求項1~30のいずれか一項記載の抗原提示細胞外小胞。
  32.  ポリヌクレオチドであって、以下:
     (i)請求項3~7のいずれか一項で定義される(A)の融合タンパク質若しくはタンパク質複合体;
     (ii)請求項3~5のいずれか一項で定義される(B)の融合タンパク質;又は
     (iii)請求項10~12のいずれか一項で定義される(C)の融合タンパク質;
     (iv)請求項18~25のいずれか一項で定義される(D)の融合タンパク質;
    のいずれかをコードする、ポリヌクレオチド。
  33.  請求項32記載のポリヌクレオチドから選択される少なくとも1種のポリヌクレオチドを含んでなるベクター。
  34.  以下:
     (i)請求項2~6のいずれか一項で定義される(A)の融合タンパク質若しくはタンパク質複合体をコードするポリヌクレオチド;及び
     (ii)請求項2~4のいずれか一項で定義される(B)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、並びに、任意で
     (iii)請求項9~11のいずれか一項で定義される(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド
    を含んでなる、単一のベクター又は2以上のベクターの組み合わせにより形質転換された細胞。
  35.  (iv)請求項18~25のいずれか一項で定義される(D)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド;並びに、任意で
     (iii)請求項10~12のいずれか一項で定義される(C)の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド
    を含む、単一のベクター又は2以上のベクターの組み合わせにより形質転換された細胞。
  36.  請求項34又は35記載の細胞を培養して得られてなる、培養上清。
  37.  請求項36記載の培養上清から得られてなる、抗原提示細胞外小胞。
  38.  請求項1~12のいずれか一項記載の抗原提示細胞外小胞を製造するための方法であって、請求項15記載の細胞を培養して得られる培養上清を回収する工程を含む、方法。
  39.  請求項1~31及び37のいずれか一項記載の抗原提示細胞外小胞、又は請求項36記載の培養上清を含む、医薬組成物。
  40.  感染症を処置又は予防するための、請求項1~31及び37のいずれか一項記載の抗原提示細胞外小胞、又は請求項36記載の培養上清を含む、医薬組成物。
  41.  ガンを処置又は予防するための、請求項1~31及び37のいずれか一項記載の抗原提示細胞外小胞、又は請求項36記載の培養上清を含む、医薬組成物。
  42.  免疫チェックポイント阻害剤を含む、請求項41に記載の医薬組成物。
  43.  前記免疫チェックポイント阻害剤が、前記抗原提示細胞外小胞の膜上に存在している、請求項42に記載の医薬組成物。
  44. 前記免疫チェックポイント阻害剤が抗PD-1抗体又はその活性断片;抗CTLA-4抗体又はその活性断片;及びPD-L1抗体又はその活性断片からなる群から選択される、請求項42又は43に記載の医薬組成物。
  45.  自己免疫疾患を処置又は予防するための、請求項1~31及び37のいずれか一項記載の抗原提示細胞外小胞、又は請求項36記載の培養上清を含む、医薬組成物。
  46.  アレルギー性疾患を処置又は予防するための、請求項1~31及び37のいずれか一項記載の抗原提示細胞外小胞、又は請求項36記載の培養上清を含む、医薬組成物。
  47.  特異的な抗原に対するT細胞を活性化及び/又は増殖させるための方法であって、請求項1~31及び37のいずれか一項記載の抗原提示細胞外小胞とT細胞とをin vitro又はex vivoにおいて接触させることを含む、方法。
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