WO2021015196A1 - 生体組織の処理方法及び処理用組成物 - Google Patents
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Definitions
- the present invention relates to a method for treating a living tissue capable of simultaneously staining and clearing the living tissue, and a composition for use in the treatment. It also relates to a method of observing a living tissue treated by the treatment method.
- a fixed or embedded organ or organ piece
- the tissue is observed under an optical microscope. It has been broken.
- observing a tissue structure such as a neural circuit three-dimensionally using such a mechanical method, it is necessary to prepare a large number of continuous tissue sections and stack their fluorescence images, which is extremely difficult. It is laborious.
- observation depth limit is about 0.15 mm for a confocal laser scanning microscope and about 4 mm at the maximum for a two-photon excitation microscope.
- the thickness of the superficial cortex is about 1 mm, so in order to observe the hippocampus and thalamus inside the brain than the cortex, the observation depth limit is several millimeters. Need to be extended to.
- Non-Patent Document 1 reports that the cerebrospinal cord was made transparent by a method using tetrahydrofuran. Further, Patent Document 1 and Non-Patent Document 2 describe that the brain could be made transparent by a method (scale method) using a high concentration of urea.
- these transparency techniques have problems such as insufficient degree of transparency, long time (about 2 weeks) for the transparency process, and the need for a special device.
- it was not sufficiently suitable for clinical diagnosis and biological research because it was necessary to use an organic solvent such as dichloromethane, which is suspected to be carcinogenic, and the specimen after the clearing treatment deteriorated or collapsed.
- Patent Document 2 an organ clearing method using 2,2'-thiodiethanol
- animal and plant specimens such as organs can be made transparent simply by immersing them in a solution containing 2,2'-thiodiethanol, and the transparent state can be maintained for a long period of time.
- this method when staining a sample, since staining and transparency are performed in separate steps, there is a problem that it takes a relatively long time to complete the treatment.
- it is necessary to replace the treatment solution used in each of the staining and clearing steps there is a risk of sample mistaking and sample damage.
- HE staining hematoxylin / eosin staining
- the present inventors have obtained a biological tissue by using a treatment solution containing 2,2'-thiodiethanol, a nonionic organic iodine compound, and a fluorescent staining reagent. It has been found that staining and clearing of the biological tissue sample can be performed in one step and in a short time without pretreatment of the sample. Furthermore, it has been found that by using such a treatment method, it is possible to observe the deep part of the living tissue three-dimensionally, which is suitable for pathological diagnosis and the like. Based on these findings, the present invention has been completed.
- the present invention relates to a method for treating a living tissue, in more detail.
- a method for treating a biological tissue which comprises simultaneously staining and clearing the biological tissue, and is a mixture containing 2,2'-thiodiethanol, a nonionic organic iodine compound, and a staining reagent.
- the treatment method comprising the step of immersing the biological tissue in a solution, wherein the staining reagent is a compound whose fluorescence intensity is increased by binding to the biomolecule in the biological tissue; ⁇ 2> The treatment method according to ⁇ 1> above, wherein the biomolecule is a nucleic acid or a protein; ⁇ 3> The staining reagent is 4', 6-diamidino-2-phenylindole or a derivative thereof; or N', N'-dimethyl-N- [4-[(E)-(3-methyl-1,).
- the treatment according to ⁇ 1> above which is 3-benzothiazole-2-iriden) methyl] -1-phenylquinoline-1-ium-2-yl] -N-propylpropane-1,3-diamine or a derivative thereof.
- Method; ⁇ 4> The treatment method according to any one of ⁇ 1> to ⁇ 3> above, wherein the mixed solution further contains glycerol; and ⁇ 5> the living tissue is the brain, spinal cord, liver, lung, heart.
- the present invention relates to a method of observing a living tissue, in more detail.
- a method for observing a living tissue which comprises a step of detecting fluorescence emission from the living tissue treated by the treatment method according to any one of ⁇ 1> to ⁇ 5>above;
- ⁇ 8> The observation method according to ⁇ 7> above, wherein the fluorescence imaging image is a three-dimensional imaging image up to 2000 ⁇ m in the depth direction of the biological tissue; and ⁇ 9> the color in the fluorescence imaging image is converted.
- the present invention relates to a composition for use in staining and clearing of living tissue, in more detail.
- a composition for use in staining and clearing of biological tissues which comprises a mixed solution containing 2,2'-thiodiethanol, a nonionic organic iodine compound, and a staining reagent, and comprises the staining.
- the reagent is a compound whose fluorescence intensity is increased by binding to a biomolecule in the biological tissue; ⁇ 11>
- the staining reagent is 4', 6-diamidino-2-phenylindole or a derivative thereof; or N', N'-dimethyl-N- [4-[(E)-(3-methyl-1,3, 3-Benzothiazole-2-ylidene) Methyl] -1-phenylquinoline-1-ium-2-yl] -N-propylpropane-1,3-diamine or a derivative thereof, according to the above ⁇ 10>.
- the present invention it is possible to stain and clear the biological tissue specimen in one step and in a short time without pretreating the biological tissue specimen. As a result, it is possible to avoid problems such as mistaking the specimen, risk of specimen damage, and generation of a large amount of drainage due to replacement of the treatment solution.
- 2,2'-thiodiethanol which is a clearing reagent, causes decomposition of the fluorescent reagent. Therefore, it has been considered inevitable that staining and clearing of living tissue are performed separately.
- the ability to perform staining and clearing in one step, as in the method is a surprising effect that cannot be inferred from prior art.
- the present invention can be compared with pathological data obtained by HE staining measured in the past by converting the color in the fluorescence imaging image data obtained after the treatment of the biological tissue. Can also provide the advantage of being possible. Therefore, it can be suitably used for applications requiring tissue examination such as clinical pathological diagnosis, basic medical research, pharmacy, and agricultural fields, as well as applications such as cancer diagnosis.
- FIG. 1 is stained and transparent with a mixed solution containing 2,2'-thiodiethanol (TDE), a nonionic organoiodine compound (iomeprol), and 4', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI).
- TDE 2,2'-thiodiethanol
- iomeprol nonionic organoiodine compound
- DAPI 6-diamidino-2-phenylindole
- 3 is a fluorescence imaging image of the transformed myocardial tissue with a confocal microscope (CF).
- FIG. 2 is a fluorescence imaging image of myocardial tissue stained and clarified with a mixed solution containing TDE, a nonionic organoiodine compound, and DAPI by a multiphoton confocal microscope (MF).
- MF multiphoton confocal microscope
- FIG. 3 is a fluorescence imaging image of myocardial tissue stained and clarified with a mixed solution containing TDE, a nonionic organoiodine compound, and "SYBR® Gold” by a confocal microscope (CF). Is.
- the biological tissue to be treated is immersed in a mixed solution containing 2,2'-thiodiethanol, a nonionic organic iodine compound, and a staining reagent. It is characterized in that the living tissue is stained and made transparent at the same time.
- the staining reagent used in the mixed solution is a compound whose fluorescence intensity increases by binding to a biomolecule in a biological tissue.
- the term "living tissue” includes “organ (or organ piece)” and broadly means living tissue.
- the biological tissues to be processed in the present invention include brain, spinal cord, liver, lung, heart, blood vessel, muscle, digestive tract, pancreas, spleen, bone, kidney, bladder, thymus, lymph node, tendon, testis, etc. It may include ovaries, uterus, connective tissue, adipose tissue, articular cartilage, and eyeballs.
- the bone can also be the target of the tissue clearing method according to the present invention as long as it is a bone in which calcium deposition has not progressed, such as fetal or newborn bone.
- These living tissues may be those in which at least a part of them is tumorized, that is, those containing cancer cells.
- the mixed solution used in the method for treating living tissue of the present invention contains at least 2,2'-thiodiethanol, a nonionic organic iodine compound, and a staining reagent as constituents.
- 2,2'-thiodiethanol and nonionic organic iodine compound is a clearing reagent for clearing living tissue.
- a “staining reagent” is a component contained in a mixed solution for staining a living tissue, and is a compound whose fluorescence intensity is increased by binding to a biomolecule in the living tissue.
- staining means labeling a specific region of living tissue by fluorescent staining or dye staining.
- the mixed solution contains a staining reagent together with the above-mentioned clearing reagent 2,2'-thiodiethanol and a nonionic organic iodine compound to stain and clear the biological tissue in one step.
- a staining reagent together with the above-mentioned clearing reagent 2,2'-thiodiethanol and a nonionic organic iodine compound to stain and clear the biological tissue in one step.
- 2,2'-thiodiethanol is used as a clearing reagent
- a dyeing reagent such as a fluorescent reagent
- a biological tissue is prepared by using a mixed solution of a certain fluorescent reagent together with a clearing reagent which is a mixed solution of 2,2'-thiodiethanol and a nonionic organic iodine compound. It was found that not only the dyeing step and the clearing step can be performed in one step, but also the dyeing / clearing can be achieved in a shorter time than when the dyeing step and the clearing step are performed in separate steps.
- the staining reagent used in the method for treating biological tissue of the present invention is a compound whose fluorescence intensity increases by binding to biomolecules in biological tissue.
- the "biomolecule” is not particularly limited as long as it is a component of the above-mentioned biological tissue, and examples of such a biomolecule include nucleic acids (DNA or RNA), proteins, cell nuclei, mitochondria, and the like. Can be done.
- the staining reagent is a nuclear staining reagent. More preferably, a compound capable of staining and labeling both nucleic acid and protein can be used.
- the staining reagent used in the method for treating biological tissue of the present invention only labels the biological tissue with a fluorescent label and does not have an absorption band in the visible light region to the extent that coloring can be visually recognized.
- the staining reagent used in the method for treating biological tissue of the present invention only labels the biological tissue with a fluorescent label and does not have an absorption band in the visible light region to the extent that coloring can be visually recognized.
- staining reagent used in the present invention are not necessarily limited to these, but 4', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) or a derivative thereof; or N', N'-.
- DAPI 6-diamidino-2-phenylindole
- N', N'-dimethyl-N- [4-[(E)-(3-methyl-1,3-benzothiazole-2-ylidene) methyl] -1-phenylquinoline-1-ium-2 -Il] -N-propylpropane-1,3-diamine and its derivatives are commercially available as "SyBR (registered trademark)", for example, “SYBR (registered trademark) Green” and "SYBR (registered trademark)”. "Gold” and the like can be used.
- nuclear staining reagents known in the art such as acrylic orange can be used.
- a labeled compound known in the art that exhibits a fluorescent response by binding to a biomolecule such as a fluorescent compound using FRET (fluorescence resonance energy transfer), can be used.
- the ratio in the mixed solution and with the staining reagent can be appropriately adjusted according to the biological tissue to be treated, and can be used at the specified concentration for the staining reagent.
- the staining reagent is DAPI, it can be in the range of 0.1 to 10 ⁇ g per 1 ml of the mixed solution.
- the mixed solution used in the method for treating biological tissue of the present invention contains a nonionic organic iodine compound, so that even when the content of 2,2'-thiodiethanol is reduced, the staining reagent is used even after clearing. Fluorescent signal can be kept at a good level.
- the mixed solution may further contain glycerol. By containing glycerol, it is possible to make the organ transparent while suppressing the disappearance or attenuation of the fluorescent signal by the staining reagent even under the condition of a relatively high thiodiethanol concentration.
- Nonionic organic iodine compound for example, a nonionic iodine contrast medium in which hydrophilicity is imparted to an organic compound containing an iodine atom at a high concentration can be used.
- Nonionic iodo contrast agents include diatrizoate, amidtrizoic acid, ioxalic acid, ioxylan, iotaramic acid, meglumine iotroxate, iotrolan, iopanoic acid, iopamidol, iopromide, iohexol, iomeprol, iopodatosodium, methrizoic acid, iodamide, Examples thereof include conventionally known contrasting agents such as iodoxic acid and iodinated poppy oil fatty acid ethyl ester.
- the volume ratio of 2,2'-thiodiethanol, aqueous nonionic organoiodine compound and / or glycerol in the mixed solution is adjusted over a wide range depending on the degree of transparency desired for the biological tissue to be treated. obtain. For example, when a 2,2'-thiodiethanol solution and a nonionic organic iodine compound solution are mixed and used, the volume ratio of the 2,2'-thiodiethanol solution and the nonionic organic iodine compound solution having an iodine content of 40% is used. Can be 20 to 80% and 80 to 20%, respectively.
- the mixed solution used in the present invention may further contain monosaccharides and / or polysaccharides, if desired, depending on the biological tissue to be treated.
- sucrose is preferable.
- saccharides such as sucrose
- the penetrance of the mixed solution can be improved and the transparency of the organ can be increased.
- this factor is not bound by any logic, it is presumed that the addition of saccharides can prevent opacity of cell membranes and cytoplasm due to excessive fixation of tissues.
- the volume ratio of the 30% sucrose aqueous solution is preferably 2 to 10%.
- the solvent of the mixed solution used in the present invention is preferably water.
- the content of water in the mixed solution is preferably 10% by weight or less, more preferably 1% by weight or less, based on the entire mixed solution. Since 2,2'-thiodiethanol itself is a liquid at room temperature, it can be used as a mixed solution that does not use a solvent such as water as long as the staining reagent or the like can be dissolved therein. By reducing the proportion of water in the mixed solution, the fat solubility of the mixed solution is increased and the osmotic pressure is increased. As a result, the penetration into the living tissue is increased and the transparency is increased, so that it is possible to observe the deeper part of the living tissue.
- dimethyl sulfoxide which is an organic solvent
- DMSO dimethyl sulfoxide
- concentration of DMSO added is, for example, 0.1 to 10%.
- polyhydric alcohols, polyhydric alcohol derivatives, nitrogen-containing solvents, alcohols, sulfur-containing solvents, and mixed solvents thereof can be used.
- ⁇ Immersion process> By immersing the living tissue in the above-mentioned mixed solution for a predetermined time, staining and clearing can be performed at the same time.
- the immersion is preferably performed at about 4 to 60 ° C., particularly preferably at about 20 to 42 ° C.
- the viscosity of the mixed solution is lowered and the degree of penetration into the living tissue is improved.
- the immersion time varies depending on the size and type of the biological tissue to be treated, but is, for example, 6 hours to 5 days, preferably 6 to 24 hours.
- an immobilization procedure by a conventionally known histopathological method may be performed before staining / transparency by the above-mentioned immersion step. Further, the immobilization procedure may be combined with a conventionally known degreasing treatment or the like, if necessary.
- the organ is perfused and fixed with a formalin solution (10 to 20% neutral formalin solution, 4 to 10% paraformaldehyde buffer), and then the organ is excised, and the same solution is used for about 24 hours or.
- a method of immersing for a longer time can be adopted.
- a method of immersing the excised organ without perfusion fixation in a formalin solution for about 48 hours or more can be adopted.
- the present invention also relates to a method for observing living tissue, which comprises a step of detecting fluorescence emission from the living tissue stained and transparentized by the above-mentioned treatment method.
- the fluorescence emission from the staining reagent labeled in the living tissue does not disappear or be attenuated, so that highly accurate fluorescence observation is possible.
- the observation method of the present invention provides the advantage that deep tissue can be observed with a multiphoton microscope.
- a conventionally known fluorescence detecting means such as observation with a fluorescence microscope, a fluorescence stereomicroscope, a confocal microscope or a multiphoton microscope can be used. Fluorescence emission can be visualized as a fluorescence imaging image by using these fluorescence imaging means. In particular, from the viewpoint of three-dimensional observation, it is preferable to use a confocal microscope or a multiphoton microscope.
- the fluorescence imaging image is a three-dimensional imaging image up to 200 ⁇ m, more preferably up to 2000 ⁇ m in the depth direction of the biological tissue.
- the tissue observation method according to the present invention further includes a step of performing data processing for converting the color of the obtained fluorescence imaging image to obtain an imaging image corresponding to hematoxylin / eosin staining (HE staining).
- HE staining hematoxylin / eosin staining
- hematoxylin mainly stains the cell nucleus
- eosin stains tissues containing negatively charged molecules such as cytoplasm and cell membrane.
- DAPI 6-diamidino-2-phenylindole
- the fluorescence imaging image obtained by DAPI is processed into an image similar to that in the case of HE staining. be able to.
- the observation method of the present invention can obtain three-dimensional information including a deep part in the treated structure.
- compositions for use in dyeing and clearing biological tissues corresponds to the mixed solution described for the above-mentioned treatment method, and specifically, a mixed solution containing 2,2'-thiodiethanol, a nonionic organic iodine compound, and a staining reagent.
- the staining reagent is a compound whose fluorescence intensity is increased by binding to a biomolecule in a biological tissue.
- the staining reagent, and other optional components, those already described in the treatment method of the present invention are applied as they are.
- Example 1 Staining and clearing of myocardial tissue A clearing solution (containing glycerol) containing 2,2'-thiodiethanol (TDE) and a nonionic organic iodine compound (iomeprol), and 4', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) as a staining reagent.
- TDE 2,2'-thiodiethanol
- iomeprol nonionic organic iodine compound
- DAPI 4-', 6-diamidino-2-phenylindole
- rat myocardial tissue was excised and further immersed in the same solution for 24 hours for fixation.
- the fixed myocardial tissue (diameter 3 mm) was immersed in the above mixed solution for 1, 3, 5, 24, and 48 hours, and stained and made transparent in one step.
- the TDE: glycerol: organoiodine compound had a weight ratio of 1: 0.15: 2
- DAPI had a concentration of 1 ⁇ g / ml of the clearing solution.
- Table 1 shows the nuclear penetration rate and transparency depth of DAPI for each immersion time.
- Example 2 Staining and clearing of myocardial tissue
- the staining reagent used was changed from DAPI used in Example 1 to "SYBR (registered trademark) Gold", and the same staining / clearing treatment was performed.
- SYBR® Gold is N', N'-dimethyl-N- [4-[(E)-(3-methyl-1,3-benzothiazole-2-ylidene) methyl] -1-phenyl. It is a derivative of quinoline-1-ium-2-yl] -N-propylpropane-1,3-diamine.
- a confocal microscope is shown in FIG.
- an image when DAPI is used as a staining reagent is also shown for comparison.
Abstract
【課題】 本発明は、臓器等の生体組織標本の染色と透明化を簡便な操作で、かつ短時間に行う手法を提供することを課題とする。 【解決手段】 生体組織の染色と透明化を同時に行うことを特徴とする生体組織の処理方法であって、２，２'－チオジエタノールと、非イオン性有機ヨウ素化合物と、染色試薬とを含む混合溶液中に前記生体組織を浸漬する工程を含み、前記染色試薬は、前記生体組織中の生体分子と結合することで蛍光強度が増大する化合物である、該処理方法。
Description
本発明は、生体組織の染色と透明化を同時に行うことが可能な生体組織の処理方法、及び、当該処理に用いるための組成物に関する。また、当該処理方法によって処理された生体組織の観察方法にも関する。
従来、臓器等の生体組織の内部を観察するためには、固定、包埋した臓器（あるいは臓器片）を機械的に薄切して組織切片を作成し、光学顕微鏡下で観察することにより行われてきた。このような機械的手法を用いて神経回路等の組織構造を３次元的に観察する場合、連続的な組織切片を多数作成し、それらの蛍光画像等を積み上げていくことが必要となり、非常な労力を伴う。
これに対し、近年、共焦点レーザー顕微鏡や多光子励起顕微鏡等の測定機器の発達により、非破壊で臓器等の内部組織の深部を測定し、光学的手法により３次元的な観察像を得ることが可能となっている。しかしながら、このような光学的手法では、光が臓器内部で散乱するため、観察する部位が臓器表面から深くなるにつれて蛍光画像の取得が困難となるという観察深度限界の問題がある。一般に、観察深度限界は、共焦点レーザー顕微鏡で０．１５ｍｍ程度、二光子励起顕微鏡で最大４ｍｍ程度とされている。例えば、研究に汎用されるマウスの脳の場合、表層の皮質の厚さが約１ｍｍであるので、皮質よりも脳の内側にある海馬や視床を観察するためには、観察深度限界を数ミリメートルまで広げる必要がある。
そこで、臓器内部での光の散乱を抑制して観察深度限界を広げるための技術として、臓器を透明化する技術が検討されてきている。例えば、非特許文献１には、テトラヒドロフランを用いた手法によって脳脊髄を透明化したことが報告されている。また、特許文献１及び非特許文献２には、高濃度の尿素を用いた手法（Ｓｃａｌｅ法）によって脳を透明化できたことが記載されている。しかしながら、これらの透明化技術では、透明化の程度が不十分であるうえ、透明化処理に長期間（２週間程度）を要し、特殊な装置を必要とする等に問題があった。さらに、発癌性が疑われるジクロロメタン等の有機溶媒を使用する必要があったり、透明化処理後の標本が劣化や崩壊するなど、臨床診断や生物学的な研究には十分適していなかった。
一方で、本願発明者は、２，２’－チオジエタノールを用いる臓器透明化手法を既に開発している（特許文献２）。かかる手法によれば、臓器等の動植物標本を２，２’－チオジエタノールを含む溶液中に浸漬するだけで透明化することができ、しかも透明状態を長期間維持できる。しかしながら、当該手法では、標本の染色を行う場合には、染色と透明化を別々の工程で行うため、処理完了に比較的長時間を要するという課題があった。また、染色と透明化のそれぞれの工程で用いる処理溶液を交換する必要があるため、標本の取り違えや検体損傷の危険性もあった。また、染色工程において、伝統的に汎用されてきたヘマトキシリン・エオシン染色（ＨＥ染色）を用いる場合には、染色完了まで長時間を要し、染色のバラつきも生じるうえ、標本の表面（切断表面）についての２次元的な情報しか得られないという問題があった。
"Three-dimensional imaging of the unsectioned adult spinal cord to assess axon regeneration and glial responses after injury." Nature Medicine,2011, Vol.18, No.1, pp.166-71
"Scale: a chemical approach for fluorescence imaging and reconstruction of transparent mouse brain." Nature Neuroscience, 2011, Vol.14, No.11, pp.1481-1488
これらの従来技術における課題に鑑み、本発明は、生体組織標本の染色と透明化を簡便な操作で、かつ短時間に実現し得る技術を提供することを目的とするものである。
本発明者らは、上記課題を解決するべく鋭意検討を行った結果、２，２’－チオジエタノールと、非イオン性有機ヨウ素化合物と、蛍光染色試薬を含む処理溶液を用いることで、生体組織標本の前処理を行うことなく、当該生体組織標本の染色と透明化をワンステップで、かつ短時間に行うことができること見出した。さらに、かかる処理方法を用いることで、生体組織の深部まで３次元的に観察することができ、病理診断等において好適であることを見出した。これらの知見に基づき、本発明を完成するに至ったものである。
すなわち、本発明は、一態様において、生体組織の処理方法に関し、より詳細には、
＜１＞生体組織の染色と透明化を同時に行うことを特徴とする生体組織の処理方法であって、２，２’－チオジエタノールと、非イオン性有機ヨウ素化合物と、染色試薬とを含む混合溶液中に前記生体組織を浸漬する工程を含み、前記染色試薬は、前記生体組織中の生体分子と結合することで蛍光強度が増大する化合物である、該処理方法；
＜２＞前記生体分子が、核酸又はタンパク質である、上記＜１＞に記載の処理方法；
＜３＞前記染色試薬が、４’，６－ジアミジノ－２－フェニルインドール若しくはその誘導体；又は、Ｎ '，Ｎ'－ジメチル－Ｎ－［４－［（Ｅ）－（３－メチル－１，３－ベンゾチアゾール－２－イリデン）メチル］－１－フェニルキノリン－１－イウム－２－イル］－Ｎ－プロピルプロパン－１，３－ジアミン若しくはその誘導体である、上記＜１＞に記載の処理方法；
＜４＞前記混合溶液が、グリセロールをさらに含有する、上記＜１＞～＜３＞のいずれか１に記載の処理方法；及び
＜５＞前記生体組織が、脳、脊髄、肝臓、肺、心臓、血管、筋、消化管、膵臓、脾臓、骨、腎臓、膀胱、胸腺、リンパ節、腱、精巣、卵巣、子宮、結合織、脂肪組織、関節軟骨、及び眼球よりなる群から選択される１以上である、上記＜１＞～＜４＞のいずれか１に記載の処理方法
を提供するものである。
＜１＞生体組織の染色と透明化を同時に行うことを特徴とする生体組織の処理方法であって、２，２’－チオジエタノールと、非イオン性有機ヨウ素化合物と、染色試薬とを含む混合溶液中に前記生体組織を浸漬する工程を含み、前記染色試薬は、前記生体組織中の生体分子と結合することで蛍光強度が増大する化合物である、該処理方法；
＜２＞前記生体分子が、核酸又はタンパク質である、上記＜１＞に記載の処理方法；
＜３＞前記染色試薬が、４’，６－ジアミジノ－２－フェニルインドール若しくはその誘導体；又は、Ｎ '，Ｎ'－ジメチル－Ｎ－［４－［（Ｅ）－（３－メチル－１，３－ベンゾチアゾール－２－イリデン）メチル］－１－フェニルキノリン－１－イウム－２－イル］－Ｎ－プロピルプロパン－１，３－ジアミン若しくはその誘導体である、上記＜１＞に記載の処理方法；
＜４＞前記混合溶液が、グリセロールをさらに含有する、上記＜１＞～＜３＞のいずれか１に記載の処理方法；及び
＜５＞前記生体組織が、脳、脊髄、肝臓、肺、心臓、血管、筋、消化管、膵臓、脾臓、骨、腎臓、膀胱、胸腺、リンパ節、腱、精巣、卵巣、子宮、結合織、脂肪組織、関節軟骨、及び眼球よりなる群から選択される１以上である、上記＜１＞～＜４＞のいずれか１に記載の処理方法
を提供するものである。
別の態様において、本発明は、生体組織の観測方法に関し、より詳細には、
＜６＞上記＜１＞～＜５＞のいずれか１に記載の処理方法によって処理された生体組織からの蛍光発光を検出する工程を含む、生体組織の観測方法；
＜７＞蛍光イメージング手段を用いて、前記蛍光発光を蛍光イメージング画像として可視化することを特徴とする、上記＜６＞に記載の観測方法；
＜８＞前記蛍光イメージング画像が、前記生体組織の深さ方向で最大２０００μｍまでの３次元イメージング画像である、上記＜７＞記載の観測方法；及び
＜９＞前記蛍光イメージング画像における色彩を変換するデータ処理を行い、ヘマトキシリン・エオシン染色に相当するイメージング画像を得る工程をさらに含む、上記＜７＞又は＜８＞に記載の観測方法。
を提供するものである。
＜６＞上記＜１＞～＜５＞のいずれか１に記載の処理方法によって処理された生体組織からの蛍光発光を検出する工程を含む、生体組織の観測方法；
＜７＞蛍光イメージング手段を用いて、前記蛍光発光を蛍光イメージング画像として可視化することを特徴とする、上記＜６＞に記載の観測方法；
＜８＞前記蛍光イメージング画像が、前記生体組織の深さ方向で最大２０００μｍまでの３次元イメージング画像である、上記＜７＞記載の観測方法；及び
＜９＞前記蛍光イメージング画像における色彩を変換するデータ処理を行い、ヘマトキシリン・エオシン染色に相当するイメージング画像を得る工程をさらに含む、上記＜７＞又は＜８＞に記載の観測方法。
を提供するものである。
更なる態様において、本発明は、生体組織の染色及び透明化処理に用いるための組成物に関し、より詳細には、
＜１０＞生体組織の染色及び透明化処理に用いるための組成物であって、２，２’－チオジエタノールと、非イオン性有機ヨウ素化合物と、染色試薬とを含む混合溶液からなり、前記染色試薬は、前記生体組織中の生体分子と結合することで蛍光強度が増大する化合物である、該組成物；
＜１１＞前記染色試薬が、４’，６－ジアミジノ－２－フェニルインドール若しくはその誘導体；又は、Ｎ '，Ｎ'－ジメチル－Ｎ－［４－［（Ｅ）－（３－メチル－１，３－ベンゾチアゾール－２－イリデン）メチル］－１－フェニルキノリン－１－イウム－２－イル］－Ｎ－プロピルプロパン－１，３－ジアミン若しくはその誘導体である、上記＜１０＞に記載の組成物；及び
＜１２＞前記混合溶液が、グリセロールをさらに含有する、上記＜１０＞又は＜１１＞に記載の組成物；
を提供するものである。
＜１０＞生体組織の染色及び透明化処理に用いるための組成物であって、２，２’－チオジエタノールと、非イオン性有機ヨウ素化合物と、染色試薬とを含む混合溶液からなり、前記染色試薬は、前記生体組織中の生体分子と結合することで蛍光強度が増大する化合物である、該組成物；
＜１１＞前記染色試薬が、４’，６－ジアミジノ－２－フェニルインドール若しくはその誘導体；又は、Ｎ '，Ｎ'－ジメチル－Ｎ－［４－［（Ｅ）－（３－メチル－１，３－ベンゾチアゾール－２－イリデン）メチル］－１－フェニルキノリン－１－イウム－２－イル］－Ｎ－プロピルプロパン－１，３－ジアミン若しくはその誘導体である、上記＜１０＞に記載の組成物；及び
＜１２＞前記混合溶液が、グリセロールをさらに含有する、上記＜１０＞又は＜１１＞に記載の組成物；
を提供するものである。
本発明によれば、生体組織標本の前処理を行うことなく、当該生体組織標本の染色と透明化をワンステップで、かつ短時間に行うことができる。これにより、処理溶液の交換等に伴う、標本の取り違えや検体損傷の危険性、大量の排液の発生等の問題を回避することができる。従来、透明化試薬である２，２’－チオジエタノール存在化では蛍光試薬の分解が生じるため、生体組織の染色と透明化は別々に行われることが不可避と考えていたところ、本発明の処理方法のように染色と透明化をワンステップで行い得ることは、従来技術からは推測し得ない驚くべき効果である。
さらに、本発明によれば、これまで汎用されてきた伝統的なヘマトキシリン・エオシン染色（ＨＥ染色）では不可能であった、生体組織の深部領域までを含む３次元的観察が可能となる。また、本発明は、かかるＨＥ染色の欠点を解消できることに加えて、生体組織の処理後に得られる蛍光イメージング画像データにおける色彩を変換することにより、過去に測定されたＨＥ染色による病理データとの比較も可能となるという利点も提供できる。このため、癌診断等の用途をはじめ、臨床病理診断、基礎医学研究、薬学、農学分野など、組織検査が必要となる用途に好適に活用することができる。
以下、本発明の実施形態について説明する。本発明の範囲はこれらの説明に拘束されることはなく、以下の例示以外についても、本発明の趣旨を損なわない範囲で適宜変更し実施することができる。
１．生体組織の処理方法
本発明の生体組織の処理方法は、２，２’－チオジエタノールと、非イオン性有機ヨウ素化合物と、染色試薬とを含む混合溶液中に、処理対象である生体組織を浸漬する工程を含み、これにより、生体組織の染色と透明化を同時に行うことを特徴とするものである。ここで、混合溶液に用いられる染色試薬は、生体組織中の生体分子と結合することで蛍光強度が増大する化合物である。
本発明の生体組織の処理方法は、２，２’－チオジエタノールと、非イオン性有機ヨウ素化合物と、染色試薬とを含む混合溶液中に、処理対象である生体組織を浸漬する工程を含み、これにより、生体組織の染色と透明化を同時に行うことを特徴とするものである。ここで、混合溶液に用いられる染色試薬は、生体組織中の生体分子と結合することで蛍光強度が増大する化合物である。
＜生体組織＞
本発明において「生体組織」の用語は、「臓器（あるいは臓器片）」を包含し、生体組織を広く意味する。例えば、本発明の処理対象となる生体組織には、脳、脊髄、肝臓、肺、心臓、血管、筋、消化管、膵臓、脾臓、骨、腎臓、膀胱、胸腺、リンパ節、腱、精巣、卵巣、子宮、結合織、脂肪組織、関節軟骨、及び眼球が含まれ得る。骨も、胎仔又は新生仔の骨のように、カルシウム沈着が進んでいない骨であれば本発明に係る組織透明化方法等の対象とできる。これらの生体組織が、少なくとも一部が腫瘍化されているもの、すなわち、癌細胞を含むものであってもよい。
本発明において「生体組織」の用語は、「臓器（あるいは臓器片）」を包含し、生体組織を広く意味する。例えば、本発明の処理対象となる生体組織には、脳、脊髄、肝臓、肺、心臓、血管、筋、消化管、膵臓、脾臓、骨、腎臓、膀胱、胸腺、リンパ節、腱、精巣、卵巣、子宮、結合織、脂肪組織、関節軟骨、及び眼球が含まれ得る。骨も、胎仔又は新生仔の骨のように、カルシウム沈着が進んでいない骨であれば本発明に係る組織透明化方法等の対象とできる。これらの生体組織が、少なくとも一部が腫瘍化されているもの、すなわち、癌細胞を含むものであってもよい。
＜処理溶液＞
本発明の生体組織の処理方法において用いられる混合溶液は、上述のように、少なくとも、２，２’－チオジエタノールと、非イオン性有機ヨウ素化合物と、染色試薬とを構成成分として含むものである。「２，２’－チオジエタノールと非イオン性有機ヨウ素化合物」は、生体組織を透明化するための透明化試薬である。一方、「染色試薬」は、生体組織を染色するために混合溶液中に含まれる成分であって、生体組織中の生体分子と結合することで蛍光強度が増大する化合物である。本発明において「染色」という用語は、生体組織の特定の領域を蛍光染色又は色素染色により標識することを意味する。
本発明の生体組織の処理方法において用いられる混合溶液は、上述のように、少なくとも、２，２’－チオジエタノールと、非イオン性有機ヨウ素化合物と、染色試薬とを構成成分として含むものである。「２，２’－チオジエタノールと非イオン性有機ヨウ素化合物」は、生体組織を透明化するための透明化試薬である。一方、「染色試薬」は、生体組織を染色するために混合溶液中に含まれる成分であって、生体組織中の生体分子と結合することで蛍光強度が増大する化合物である。本発明において「染色」という用語は、生体組織の特定の領域を蛍光染色又は色素染色により標識することを意味する。
本発明では、混合溶液が、上記透明化試薬である２，２’－チオジエタノール及び非イオン性有機ヨウ素化合物と共に、染色試薬を含むことにより、生体組織の染色と透明化をワンステップで行うことができる。従来、透明化試薬として２，２’－チオジエタノールを用いる場合、同じ溶液中に蛍光試薬等の染色試薬を含有させると当該蛍光試薬の分解が生じるため、染色と透明化は別々の工程として行われることが不可避と考えていた。これに対し、本発明では、かかる従来の常識に反し、２，２’－チオジエタノールと非イオン性有機ヨウ素化合物との混合液である透明化試薬と共にある種の蛍光試薬の混合溶液で生体組織を処理することにより、染色工程と透明化工程をワンステップで行うことができるだけでなく、別々の工程で行う場合よりも短時間で染色・透明化を達成できることを見出したものである。
上述のように、本発明の生体組織の処理方法において用いられる染色試薬は、生体組織中の生体分子と結合することで蛍光強度が増大する化合物である。ここで、「生体分子」とは、上記生体組織の構成要素であれば特に限定はなく、例えば、そのような生体分子としては、核酸（ＤＮＡ又はＲＮＡ）、タンパク質、細胞核、ミトコンドリア等を挙げることができる。好ましくは、染色試薬は、核染色試薬である。より好ましくは、核酸とタンパク質のいずれをも染色・標識化できる化合物を用いることができる。
また、好ましくは、本発明の生体組織の処理方法において用いられる染色試薬は、生体組織の蛍光標識のみを行い、着色を視認できる程度には可視光領域には吸収帯を有しないことが好ましい。これにより、透明化及び染色処理後の生体組織について、深部方向における蛍光測定が可能となり、当該生体組織の３次元的観測が好適に得られる。
本発明において用いられる染色試薬の具体例としては、必ずしもこれらに限定されるものではないが、４’，６－ジアミジノ－２－フェニルインドール（ＤＡＰＩ）若しくはその誘導体；又は、Ｎ '，Ｎ'－ジメチル－Ｎ－［４－［（Ｅ）－（３－メチル－１，３－ベンゾチアゾール－２－イリデン）メチル］－１－フェニルキノリン－１－イウム－２－イル］－Ｎ－プロピルプロパン－１，３－ジアミン若しくはその誘導体を挙げることができる。
ここで、Ｎ '，Ｎ'－ジメチル－Ｎ－［４－［（Ｅ）－（３－メチル－１，３－ベンゾチアゾール－２－イリデン）メチル］－１－フェニルキノリン－１－イウム－２－イル］－Ｎ－プロピルプロパン－１，３－ジアミン及びその誘導体は、「ＳｙＢＲ（登録商標）」として市販されており、例えば、「ＳＹＢＲ（登録商標） Ｇｒｅｅｎ」や、「ＳＹＢＲ（登録商標） Ｇｏｌｄ」などを用いることができる。
これら他にも、アクリルオレンジ等の当該技術分野で公知の核染色試薬を用いることができる。また、ＦＲＥＴ（蛍光共鳴エネルギー移動）を利用した蛍光化合物など、生体分子と結合することで蛍光応答を示す当該技術分野で公知の標識化合物を用いることができる。
混合溶液における及び染色試薬との比率は、処理対象とする生体組織に応じて適宜調整することができ、染色試薬についての指定濃度で用いることができる。例えば、染色試薬がＤＡＰＩの場合、混合溶液１ｍｌ当たり０．１～１０μｇの範囲であることができる。２，２’－チオジエタノールと非イオン性有機ヨウ素化合物の混合比を変えることで，各臓器の透明化度を高めることができる。
本発明の生体組織の処理方法において用いられる混合溶液は、非イオン性有機ヨウ素化合物を含有することで、２，２’－チオジエタノールの含有量を低減させた場合でも、透明化後も染色試薬による蛍光シグナルを良好なレベルに保つことができる。また、好ましい態様において、当該混合溶液は、グリセロールをさらに含有することもできる。グリセロールを含有することで、比較的高いチオジエタノール濃度の条件であっても、染色試薬による蛍光シグナルの消失又は減衰を抑制しながら、臓器を透明化することが可能となる。
非イオン性有機ヨウ素化合物としては、例えばヨウ素原子を高濃度で含有する有機化合物に親水性を付与した非イオン性ヨード造影剤を用いることができる。非イオン性ヨード造影剤には、ジアトリゾ酸、アミドトリゾ酸、イオキサグル酸、イオキシラン、イオタラム酸、イオトロクス酸メグルミン、イオトロラン、イオパノ酸、イオパミドール、イオプロミド、イオヘキソール、イオメプロール、イオポダートナトリウム、メトリゾ酸、ヨーダミド、ヨードキサム酸、ヨード化ケシ油脂肪酸エチルエステル等の従来公知の造影剤が挙げられる。
混合溶液中の２，２’－チオジエタノール、非イオン性有機ヨウ素化合物水溶液及び／又はグリセロールの容量比は、処理対象とする生体組織に関して所望される透明化度の程度に応じ幅広い範囲で調整され得る。例えば、２，２’－チオジエタノール溶液と非イオン性有機ヨウ素化合物溶液を混合して用いる場合、２，２’－チオジエタノール溶液とヨウ素含有量４０％の非イオン性有機ヨウ素化合物溶液の容量比は、それぞれ２０～８０％、８０～２０％とすることができる。
また、本発明で用いる混合溶液は、処理対象とする生体組織に応じて所望により、さらに単糖類及び／又は多糖類を含んでいてもよい。例えば、溶解度の観点からは、スクロースが好ましい。スクロース等の糖類を加えることで、混合溶液の浸透度を向上させて臓器の透明化度を高めることができる。この要因としては、何ら論理に拘束されるわけではないが、糖類を添加することで、組織の過度の固定による細胞膜や細胞質の混濁を防止できるものと推定される。混合溶液中にスクロースを添加する場合、３０％スクロース水溶液の容量比で２～１０％が好ましい。
本発明で用いる混合溶液の溶媒は、水であることが好ましい。この場合、混合溶液中における水の含有量が、混合溶液全体に対して１０重量％以下が好ましく、１重量％以下であることがより好ましい。なお、２，２’－チオジエタノール自体が常温で液体であるため、染色試薬等がこれに溶解し得る限り、水等の溶媒を用いない混合溶液して用いることも可能である。混合溶液中のおける水の割合を低減させることにより、混合溶液の脂溶性が高まり、浸透圧が高くなる。その結果、生体組織への浸透が速くなるとともに、透明化度も高まるため、生体組織のより深部まで観察することが可能となる。
場合により、混合溶液には、有機溶媒であるジメチルスルフォキシド（ＤＭＳＯ）を添加してもよい。ＤＭＳＯは、混合溶液の浸透度を向上させて生体組織の透明化度を高めることに寄与する。ＤＭＳＯの添加濃度は、例えば０．１～１０％とされる。また、多価アルコール類、多価アルコール類誘導体、含窒素溶媒、アルコール類、含硫黄溶媒及びこれらの混合溶媒などを使用できる場合もある。
＜浸漬工程＞
上述の混合溶液中に生体組織を所定時間浸漬することにより、染色と透明化を同時に行うことができる。浸漬は４～６０℃程度にて行うことが好ましく、２０～４２℃程度にて行うことが特に好ましい。処理に用いる混合溶液を室温以上に加温することで、混合溶液の粘性が低下し、生体組織内への浸透度が向上する。低温度下でのスクロースの析出を防止するため、スクロース水溶液には３０％程度の濃度の水溶液を用いることが好ましい。浸漬する時間は処理対象とする生体組織のサイズや種類によって異なるが、例えば６時間～５日間であり、好ましくは、６～２４時間である。
上述の混合溶液中に生体組織を所定時間浸漬することにより、染色と透明化を同時に行うことができる。浸漬は４～６０℃程度にて行うことが好ましく、２０～４２℃程度にて行うことが特に好ましい。処理に用いる混合溶液を室温以上に加温することで、混合溶液の粘性が低下し、生体組織内への浸透度が向上する。低温度下でのスクロースの析出を防止するため、スクロース水溶液には３０％程度の濃度の水溶液を用いることが好ましい。浸漬する時間は処理対象とする生体組織のサイズや種類によって異なるが、例えば６時間～５日間であり、好ましくは、６～２４時間である。
なお、本発明に係る処理方法では、上述の浸漬工程による染色・透明化の前に、従来公知の病理組織学的手法による固定化手順を行ってもよい。また、固定化手順には、必要に応じて従来公知の脱脂処理等を組み合わせてもよい。
固定化手順には、フォルマリン溶液（１０～２０％中性フォルマリン溶液、４～１０％パラフォルムアルデヒド緩衝液）で臓器を灌流固定した後に臓器を摘出し、さらに同溶液に２４時間程度又はそれ以上の時間浸漬する手法を採用できる。あるいは、灌流固定を行うことなく摘出した臓器を、フォルマリン溶液に４８時間程度又はそれ以上の時間浸漬する手法も採用できる。固定化後フォルマリン雰囲気を除去し、染色・透明化（浸漬工程）を行うことが好ましい。
２．生体組織の観測方法
本発明はまた、上述の処理方法によって染色・透明化処理された生体組織からの蛍光発光を検出する工程を含む、生体組織の観測方法にも関する。本発明に係る観察方法では、生体組織中に標識された染色試薬からの蛍光発光が消失又は減衰したりすることがないため、高精度な蛍光観察が可能である。本発明の観察方法は、多光子顕微鏡により組織深部の観察を行うことができるという利点を提供する。
本発明はまた、上述の処理方法によって染色・透明化処理された生体組織からの蛍光発光を検出する工程を含む、生体組織の観測方法にも関する。本発明に係る観察方法では、生体組織中に標識された染色試薬からの蛍光発光が消失又は減衰したりすることがないため、高精度な蛍光観察が可能である。本発明の観察方法は、多光子顕微鏡により組織深部の観察を行うことができるという利点を提供する。
染色試薬から発せられる蛍光の検出には、蛍光顕微鏡、蛍光実体顕微鏡、共焦点顕微鏡又は多光子顕微鏡による観察などの従来公知の蛍光検出手段を用いることができる。これら蛍光イメージング手段を用いて、蛍光発光を蛍光イメージング画像として可視化することができる。特に、３次元的観察を行う観点から、共焦点顕微鏡又は多光子顕微鏡を用いることが好ましい。
本発明に係る処理方法によれば染色とともに臓器の高い透明度を達成できるため、共焦点顕微鏡又は多光子顕微鏡による観察深度限界を数ミリメートルまで広げることが可能である。好ましくは、蛍光イメージング画像が、生体組織の深さ方向で最大２００μｍまで、より好ましくは最大２０００μｍまでの３次元イメージング画像である。
好ましい態様において、本発明に係る組織観察方法では、得られた蛍光イメージング画像における色彩を変換するデータ処理を行い、ヘマトキシリン・エオシン染色（ＨＥ染色）に相当するイメージング画像を得る工程をさらに含む。これにより、過去に測定されたＨＥ染色による病理データとの比較も可能となるという利点も提供できる。
従来用いられているＨＥ染色では、ヘマトキシリンは主に細胞核を染色し、エオシンは、細胞質、細胞膜等の負電荷を有する分子を含む組織を染色する。これに対し、本発明では、例えば、染色試薬として４’，６－ジアミジノ－２－フェニルインドール（ＤＡＰＩ）を用いる場合、紫外領域の励起光により得られる蛍光発光をヘマトキシリン染色に対応する青紫色に変換し、黄・赤色領域の励起光により得られる蛍光発光をエオシン染色に対応するピンク色に変換することで、ＤＡＰＩにより得られた蛍光イメージング画像を、ＨＥ染色の場合と類似した画像に加工することができる。しかも、上述のように、従来のＨＥ染色では２次元情報しか得られないのに対し、本発明の観察方法では処理組織に深部を含む３次元の情報を得ることができる。
３．処理用組成物
更なる態様において、本発明は、生体組織の染色・透明化処理に用いるための組成物にも関する。かかる組成物は、上述の処理方法について説明した混合溶液に相当するものであり、具体的には、２，２’－チオジエタノールと、非イオン性有機ヨウ素化合物と、染色試薬とを含む混合溶液からなり、ここで、染色試薬は、生体組織中の生体分子と結合することで蛍光強度が増大する化合物である。混合溶液の組成や染色試薬、その他の任意成分に関する説明については、本発明の処理方法において既に記載したものがそのまま適用される。
更なる態様において、本発明は、生体組織の染色・透明化処理に用いるための組成物にも関する。かかる組成物は、上述の処理方法について説明した混合溶液に相当するものであり、具体的には、２，２’－チオジエタノールと、非イオン性有機ヨウ素化合物と、染色試薬とを含む混合溶液からなり、ここで、染色試薬は、生体組織中の生体分子と結合することで蛍光強度が増大する化合物である。混合溶液の組成や染色試薬、その他の任意成分に関する説明については、本発明の処理方法において既に記載したものがそのまま適用される。
以下、実施例により本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらによって限定されるものではない。
実施例１．心筋組織の染色・透明化
２，２’－チオジエタノール（ＴＤＥ）と非イオン性有機ヨウ素化合物（イオメプロール）を含む透明化溶液（グリセロールを含有）、さらに染色試薬として４’，６－ジアミジノ－２－フェニルインドール（ＤＡＰＩ）を含む混合溶液を用いて、ラットの心筋組織の染色・透明化を行った。
２，２’－チオジエタノール（ＴＤＥ）と非イオン性有機ヨウ素化合物（イオメプロール）を含む透明化溶液（グリセロールを含有）、さらに染色試薬として４’，６－ジアミジノ－２－フェニルインドール（ＤＡＰＩ）を含む混合溶液を用いて、ラットの心筋組織の染色・透明化を行った。
１μg/mLの濃度でトマトレクチン-Ｄｙｌｉｇｈｔ５９４（血管標識のため）、ひきつづき４％パラフォルムアルデヒド緩衝液で灌流固定した後にラットの心筋組織を摘出し、さらに同溶液に２４時間浸漬して固定した。固定後の心筋組織（径３ｍｍ）を、上記混合溶液に１、３、５、２４、４８時間浸漬し、ワンステップで染色及び透明化した。混合溶液中、ＴＤＥ：グリセロール：有機ヨウ素化合物は重量比で１：０．１５：２であり、ＤＡＰＩは、１μｇ／透明化溶液ｍｌの濃度とした。
次いで、染色・透明化処理後の心筋組織について、共焦点顕微鏡（ＣＦ）及び多光子共焦点顕微鏡（ＭＦ）をそれぞれ用いて測定し、組織の深さ方向における蛍光イメージング画像を取得した。浸漬時間を１、３、５、２４時間とした場合のイメージング画像を、ＣＦについて図１に、ＭＦについて図２にそれぞれ示す。なお、図中の「ｎｏｒｍａｌ」は、従来の染色方法の場合である。
また、浸漬時間ごとのＤＡＰＩの核浸透速度、透明化深度を表１に示す。
これらの結果、他の組織よりも染色処理に時間を要する心筋組織において、５時間程度の浸漬により、２００μｍ以上の深部までＤＡＰＩによる蛍光標識を観測できることが分かった。
実施例２．心筋組織の染色・透明化
用いる染色試薬を、実施例１で用いたＤＡＰＩから「ＳＹＢＲ（登録商標）Ｇｏｌｄ」に変更して、同様に染色・透明化処理を行った。「ＳＹＢＲ（登録商標）Ｇｏｌｄ」は、Ｎ '，Ｎ'－ジメチル－Ｎ－［４－［（Ｅ）－（３－メチル－１，３－ベンゾチアゾール－２－イリデン）メチル］－１－フェニルキノリン－１－イウム－２－イル］－Ｎ－プロピルプロパン－１，３－ジアミンの誘導体である。
用いる染色試薬を、実施例１で用いたＤＡＰＩから「ＳＹＢＲ（登録商標）Ｇｏｌｄ」に変更して、同様に染色・透明化処理を行った。「ＳＹＢＲ（登録商標）Ｇｏｌｄ」は、Ｎ '，Ｎ'－ジメチル－Ｎ－［４－［（Ｅ）－（３－メチル－１，３－ベンゾチアゾール－２－イリデン）メチル］－１－フェニルキノリン－１－イウム－２－イル］－Ｎ－プロピルプロパン－１，３－ジアミンの誘導体である。
「ＳＹＢＲ（登録商標）Ｇｏｌｄ」を用いて、染色透明化を同時に行った場合、及び、染色後に別途透明化をする２段階で処理した場合のそれぞれについて、深さ１００～５００μｍにおける蛍光イメージング画像（共焦点顕微鏡）を図３に示す。また、比較として染色試薬としてＤＡＰＩを用いた場合の画像も示している。
図３の結果から、染色試薬として「ＳＹＢＲ（登録商標）Ｇｏｌｄ」を用いることにより、ＤＡＰＩの場合よりもより深部まで観察可能であることが分かった。また、染色と透明化を２段階で行う処理と比較して、本発明のワンステップで行う場合のほうが、より短時間で深部まで染色試薬が浸透していることが分かった。
Claims (12)
- 生体組織の染色と透明化を同時に行うことを特徴とする生体組織の処理方法であって、
２，２’－チオジエタノールと、非イオン性有機ヨウ素化合物と、染色試薬とを含む混合溶液中に前記生体組織を浸漬する工程を含み、
前記染色試薬は、前記生体組織中の生体分子と結合することで蛍光強度が増大する化合物である、該処理方法。 - 前記生体分子が、核酸又はタンパク質である、請求項１に記載の処理方法。
- 前記染色試薬が、４’，６－ジアミジノ－２－フェニルインドール若しくはその誘導体；又は、Ｎ '，Ｎ'－ジメチル－Ｎ－［４－［（Ｅ）－（３－メチル－１，３－ベンゾチアゾール－２－イリデン）メチル］－１－フェニルキノリン－１－イウム－２－イル］－Ｎ－プロピルプロパン－１，３－ジアミン若しくはその誘導体である、請求項１に記載の処理方法。
- 前記混合溶液が、グリセロールをさらに含有する、請求項１～３のいずれか１に記載の処理方法。
- 前記生体組織が、脳、脊髄、肝臓、肺、心臓、血管、筋、消化管、膵臓、脾臓、骨、腎臓、膀胱、胸腺、リンパ節、腱、精巣、卵巣、子宮、結合織、脂肪組織、関節軟骨、及び眼球よりなる群から選択される１以上である、請求項１～４のいずれか１に記載の処理方法。
- 請求項１～５のいずれか１に記載の処理方法によって処理された生体組織からの蛍光発光を検出する工程を含む、生体組織の観測方法。
- 蛍光イメージング手段を用いて、前記蛍光発光を蛍光イメージング画像として可視化することを特徴とする、請求項６に記載の観測方法。
- 前記蛍光イメージング画像が、前記生体組織の深さ方向で最大２０００μｍまでの３次元イメージング画像である、請求項７記載の観測方法。
- 前記蛍光イメージング画像における色彩を変換するデータ処理を行い、ヘマトキシリン・エオシン染色に相当するイメージング画像を得る工程をさらに含む、請求項７又は８に記載の観測方法。
- 生体組織の染色及び透明化処理に用いるための組成物であって、
２，２’－チオジエタノールと、非イオン性有機ヨウ素化合物と、染色試薬とを含む混合溶液からなり、
前記染色試薬は、前記生体組織中の生体分子と結合することで蛍光強度が増大する化合物である、該組成物。 - 前記染色試薬が、４’，６－ジアミジノ－２－フェニルインドール若しくはその誘導体；又は、Ｎ '，Ｎ'－ジメチル－Ｎ－［４－［（Ｅ）－（３－メチル－１，３－ベンゾチアゾール－２－イリデン）メチル］－１－フェニルキノリン－１－イウム－２－イル］－Ｎ－プロピルプロパン－１，３－ジアミン若しくはその誘導体である、請求項１０に記載の組成物。
- 前記混合溶液が、グリセロールをさらに含有する、請求項１０又は１１に記載の組成物。
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| 121 | Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application |
Ref document number: 20843548 Country of ref document: EP Kind code of ref document: A1 |
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| NENP | Non-entry into the national phase |
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| 122 | Ep: pct application non-entry in european phase |
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