WO2021002195A1 - グルタチオンからシステインを生成する方法 - Google Patents

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Definitions

  • the present invention relates to a method for producing cysteine from glutathione and its use.
  • This application claims priority based on Japanese Patent Application No. 2019-124052 filed on July 2, 2019, and the entire contents of the patent application are incorporated by reference.
  • Amino acids and peptides in foods are important factors not only as nutrients but also in the taste and flavor of foods.
  • glutamic acid and aspartic acid exhibit umami and sourness
  • glycine, alanine, threonine and the like exhibit sweetness
  • tryptophan, isoleucine, valine and the like exhibit bitterness.
  • some amino acids react with other components (such as sugars and lipids) to produce a unique flavor.
  • cysteine and the Maillard reaction of cysteine imparts meat flavor.
  • the taste can be enhanced by heat-treating foods and foods containing cysteine.
  • cysteine is added to foods and the like and the same treatment is performed, umami can be expected to be imparted or enhanced.
  • cysteine is mainly extracted from animal-derived raw materials (hair and feathers), and it is not preferable to use cysteine as an additive in foods and the like.
  • cysteine compound glutathione By the way, some foods contain a relatively large amount of the cysteine compound glutathione. Therefore, if cysteine can be produced from glutathione, the above-mentioned problem when cysteine is added can be solved.
  • Glutathione undergoes stepwise degradation by enzymes in vivo (see, for example, Non-Patent Documents 1 and 2). Specifically, first, ⁇ -glutamyl transpeptidase cleaves the ⁇ -glutamyl bond of glutathione to produce glutamic acid (Glu) and the dipeptide cystenylglycine (CysGly). CysGly is then degraded by dipeptidase to cysteine (Cys) and glycine (Gly). If such two-step decomposition in a living body can be applied to foods and the like, cysteine can be produced from the component (glutathione) originally contained in the foods and the like, and it becomes possible to impart or enhance the flavor.
  • Glu glutamic acid
  • CysGly dipeptide cystenylglycine
  • Non-Patent Document 1 As a technique related to the first-step reaction, it has been proposed to generate CysGly from glutathione using microbial glutaminase to enhance the flavor of foods and the like (Patent Document 1).
  • the second-stage reaction there are reports of degradation of CysGly by enzymes derived from animals (for example, derived from rats, rabbits, pigs, and horses) (Non-Patent Documents 1 and 2).
  • animal-derived enzymes are difficult to use in foods and the like.
  • cysteine from glutathione originally present in foods and the like is promising as a means for imparting or enhancing the flavor of foods and the like, it has not been realized.
  • the second step of producing cysteine by the action of a microorganism-derived acidic protease on the cysteinylglycine A method of producing cysteine from glutathione, including. [2] The glutathione-containing composition or a solution thereof or a glutathione solution is added with a microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolase and a microbial-derived acidic protease, and then reacted at pH 3 to 9 and a temperature of 15 ° C to 70 ° C. The method according to [1], wherein the first step is performed, and then the reaction solution is adjusted to pH 2 to 7 and reacted at a temperature of 20 ° C. to 70 ° C. to perform the second step.
  • the first step is performed by adding a microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolase to a glutathione-containing composition or a solution thereof or a glutathione solution, and then reacting the mixture at pH 3 to 9 and a temperature of 15 ° C to 70 ° C.
  • a glutathione-containing composition or a solution thereof or a glutathione solution is added with a microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolase and a microorganism-derived acidic protease, and then reacted at pH 3 to 6 and a temperature of 15 ° C to 70 ° C.
  • the reaction conditions of the first step are pH 4 to 8 and the temperature is 30 ° C. to 60 ° C.
  • the reaction conditions of the second step are pH 3 to 6 and the temperature is 20 ° C. to 60 ° C. [2].
  • the reaction conditions of the first step are pH 5 to 7 and a temperature of 30 ° C. to 50 ° C.
  • the reaction conditions of the second step are pH 3 to 5 and a temperature of 30 ° C. to 50 ° C. [2].
  • the method according to [3]. [7] The method according to any one of [1] to [6], wherein the microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolase is glutaminase, ⁇ -glutamyltransferase or ⁇ -glutamylcyclotransferase.
  • microorganism-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolase is a Bacillus microorganism-derived glutaminase.
  • microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolase is Bacillus amyloliquefaciens-derived glutaminase.
  • microorganism-derived acidic protease is an Aspergillus-derived microorganism-derived acidic protease.
  • the glutathione-containing composition is meat, processed meat products, seafood, processed seafood products, vegetables, processed vegetable products, yeast extract or meat extract. The method described.
  • the present invention relates to a method for producing cysteine from glutathione (hereinafter, also referred to as "the cysteine production method of the present invention").
  • the cysteine production method of the present invention is highly versatile and can be used for the purpose of producing cysteine from glutathione present in foods and foodstuffs, and for the purpose of obtaining cysteine from purified or crudely purified glutathione.
  • the objects to be treated are the objects to be treated (objects to be treated), but at least a part of glutathione in the object to be treated is an enzyme used in the present invention ( Any form (for example, reduced form) in which the ⁇ -glutamyl peptide hydrolase derived from a microorganism can be decomposed may be used.
  • the cysteine production method of the present invention is roughly divided into two types of enzymes, and cysteine is produced from glutathione by a two-step cleavage or decomposition reaction. Specifically, a step (first step) in which a microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolyzer acts on reduced glutathione to produce cystinyl glycine, and a microbial-derived acidic protease acts on the produced cystenyl glycine. By the step of producing cysteine (second step), cysteine is produced from glutathione.
  • the first step is a reaction in which the ⁇ -glutamyl bond of reduced glutathione is cleaved by the action of a microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolase to produce cystenylglycine (CysGly) (glutamic acid is also produced as a by-product).
  • a microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolase is not particularly limited as long as the cleavage of the ⁇ -glutamyl bond of reduced glutathione can be achieved.
  • Examples of ⁇ -glutamyl peptide degrading enzymes derived from microorganisms include glutaminase, ⁇ -glutamyltransferase, and ⁇ -glutamylcyclotransferase derived from Bacillus microorganisms.
  • glutaminase derived from a microorganism of the genus Bacillus is glutaminase derived from Bacillus amyloliquefaciens (for example, glutaminase SD-C100S provided by Amano Enzyme Co., Ltd.).
  • the microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolase does not have to be a refined product, and for example, a culture solution, a crushed solution / extract, or a partially purified product of a microorganism producing the ⁇ -glutamyl peptide hydrolase may be used. It may be. Two or more types of microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolases may be used in combination. In addition, some microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolases are commercially available (for example, the above-mentioned glutaminase SD-C100S), and are easily available and available.
  • the second step is a reaction in which CysGly produced in the first step is decomposed by the action of an acidic protease derived from a microorganism to produce cysteine (glycine is also produced as a by-product).
  • an acidic protease derived from a microorganism to produce cysteine glycine is also produced as a by-product.
  • Microorganism-derived acidic proteases are not particularly limited as long as the degradation of CysGly can be achieved. Examples of microorganism-derived acidic proteases include acidic proteases derived from Aspergillus microorganisms.
  • acidic proteases derived from Aspergillus microorganisms are acidic proteases derived from Aspergillus oryzae (for example, Protease M “Amano” SD and Protease HF “Amano” 150SD provided by Amano Enzyme Co., Ltd.).
  • the microorganism-derived acidic protease does not have to be a refined product, and for example, a culture solution, a crushed solution / extract of a microorganism producing the acidic protease, a partially purified product thereof, or the like may be used. Two or more kinds of microorganism-derived acidic proteases may be used in combination.
  • some microorganism-derived acidic proteases are commercially available (for example, the above-mentioned protease M "Amano” SD and protease HF "Amano” 150S), and are easily available and available.
  • a microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolase and a microbial-derived acidic protease are added to the glutathione-containing composition or a solution thereof or a glutathione solution, and then the microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide is added.
  • the reaction is carried out under the conditions under which the hydrolase acts (referred to as the "first condition") to perform the first step, and then the reaction is changed to the conditions under which the acidic protease derived from the microorganism acts (called the "second condition"). Then, the second step is performed.
  • an enzyme microorganism-derived acidic protease
  • a glutathione-containing composition or a solution thereof is used as one of the objects to be treated.
  • the glutathione-containing composition is not particularly limited, and examples thereof include foods and foodstuffs containing glutathione.
  • the term "ingredients" is interpreted in a broad sense, and includes natural food materials such as meat, fish, and vegetables, as well as processed products, extracts, seasonings, and the like. Specific examples of foods and foodstuffs are meat, processed meat products, seafood, processed seafood products, vegetables, processed vegetable products, yeast extract, and meat extract.
  • the glutathione solution is also the object to be treated of the present invention.
  • glutathione is dissolved in a suitable solvent (for example, water) to prepare a glutathione solution.
  • a suitable solvent for example, water
  • Glutathione is produced by extraction from yeast, organic synthesis, etc., and is provided (commercially available) as a reagent, a drug, a pharmaceutical raw material, or the like.
  • a glutathione solution is prepared using the reduced glutathione.
  • the conditions under which the microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolase acts, that is, the first condition is, for example, pH 3-9 and the reaction temperature 15 ° C-70 ° C.
  • the pH is preferably 4 to 8, more preferably 5 to 7.
  • the reaction temperature is preferably 30 ° C. to 60 ° C., more preferably 30 ° C. to 50 ° C.
  • the reaction time and the amount of enzyme are not particularly limited as long as the expected action is exhibited. An example of the reaction time is 5 minutes to 48 hours.
  • the concentration of the microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolase in the reaction solution is, for example, 0.001% (W / W) to 10% (W / W), preferably 0.01% (W / W) to 1.
  • the amount is% (W / W).
  • particularly preferable reaction conditions are pH 5 to 7 and a reaction temperature of 35 ° C to 45 ° C.
  • the conditions under which the microbial-derived acidic prosthesis acts are, for example, pH 2 to 7 and a reaction temperature of 20 ° C to 70 ° C.
  • the pH is preferably 3 to 6, more preferably 3 to 5.
  • the reaction temperature is preferably 20 ° C. to 60 ° C., more preferably 30 ° C. to 50 ° C.
  • the reaction time and the amount of enzyme are not particularly limited as long as the expected action is exhibited. An example of the reaction time is 5 minutes to 12 hours. If the reaction time is long, there is concern about oxidation of the produced cysteine, so it is preferable to increase the reaction efficiency by increasing the amount of enzyme, optimizing the reaction conditions (particularly pH and temperature), and the like.
  • the concentration of the microorganism-derived acidic protease in the reaction solution is, for example, 0.001% (W / W) to 10% (W / W), preferably 0.01% (W / W) to 2% (W / W). ).
  • particularly preferable reaction conditions are pH 3 to 5 and a reaction temperature of 30 ° C to 50 ° C.
  • Acids eg hydrochloric acid, sulfuric acid, nitric acid, acetic acid
  • alkalis eg sodium hydroxide, potassium hydroxide, sodium carbonate, carbonate
  • Potassium, calcium hydroxide, magnesium hydroxide may be used.
  • the produced cysteine is recovered or purified as needed.
  • recovery / purification is performed to obtain highly pure cysteine.
  • column chromatography can be used for recovery / purification.
  • the microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolase acts.
  • the reaction is carried out under the conditions (referred to as "first condition") to carry out the first step, and then the acid protease derived from the microorganism is added to the reaction solution, and the condition under which the acidic protease derived from the microorganism acts (referred to as "second condition"). ), And the second step is performed.
  • the microbial-derived acidic protease is not present in the reaction solution during the first step (cleavage of the ⁇ -glutamyl bond by the microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolase), and the microbial-derived acidic protease is derived from the microorganism.
  • the first condition and the second condition of the second aspect are based on the first condition and the second condition of the first aspect, respectively.
  • the reaction time and the amount of enzyme are the same.
  • a microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolase and a microbial-derived acidic protease are added to a glutathione-containing composition or a solution thereof or a glutathione solution, and then the microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide is added.
  • Both the hydrolase and the microbially-derived acidic protease are reacted under conditions in which they can act. That is, the first step and the second step are performed at the same time. According to this aspect, it is not necessary to add an enzyme on the way, and it is not necessary to change the reaction conditions, so that the workability is improved.
  • the conditions under which the microbial-derived ⁇ -glutamyl peptide hydrolase and the microbial-derived acidic prosthesis can act simultaneously are, for example, pH 3 to 6 and a reaction temperature of 20 ° C to 70 ° C.
  • the pH is preferably 4-6.
  • the reaction temperature is preferably 20 ° C. to 60 ° C., more preferably 30 ° C. to 50 ° C.
  • the reaction time and the amount of enzyme are not particularly limited as long as the expected action is exhibited. An example of the reaction time is 5 minutes to 24 hours. If the reaction time is long, there is a concern that the produced cysteine will be oxidized. Therefore, it is preferable to increase the reaction efficiency by increasing the amount of enzyme, optimizing the reaction conditions (particularly pH and temperature), and the like.
  • the present invention is useful, for example, for increasing the amount of cysteine in foods or foodstuffs.
  • the present invention can be regarded as a method for producing a composition having an increased cysteine content (for example, food, foodstuff).
  • the present invention can also be used to obtain cysteine from purified or crudely purified glutathione.
  • the present invention is highly versatile and is expected to be used in various fields.

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Abstract

食品分野への利用にも適した、グルタチオンからシステインを生成するための実用的な手段を提供することを課題とする。還元型グルタチオンに微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素が作用してシステイニルグリシンを生成する第１ステップと、前記システイニルグリシンに微生物由来酸性プロテアーゼが作用してシステインを生成する第２ステップによって、グルタチオンからシステインを生成させる。

Description

グルタチオンからシステインを生成する方法
　本発明はグルタチオンからシステインを生成する方法及びその用途に関する。本出願は、２０１９年７月２日に出願された日本国特許出願第２０１９－１２４０５２号に基づく優先権を主張するものであり、当該特許出願の全内容は参照により援用される。
　食品中のアミノ酸やペプチドは栄養素としてだけでなく、食品の味や風味にも重要な要素となる。例えばグルタミン酸やアスパラギン酸は旨味や酸味を、グリシン、アラニン、トレオニン等は甘みを、トリプトファン、イソロイシン、バリン等は苦みを呈する。また、アミノ酸の中には他の成分（糖類や脂質など）と反応して独特の風味を生じるものがある。その具体例はシステインであり、システインのメイラード反応物は肉の風味を付与する。例えば、システインを含有する食品や食材を加熱処理すれば旨味の増強を図ることができる。また、食品等にシステインを添加して同様の処理を行えば、旨味の付与ないし増強を期待できる。しかしながら、主にシステインは動物由来の原料（毛髪や羽毛）から抽出されており、食品等に添加物としてシステインを使用することは好まれない。
　ところで、一部の食品等にはシステイン化合物のグルタチオンが比較的多く含まれている。従って、グルタチオンからシステインを生成できれば、システインを添加する場合の上記問題を解消することができる。
　生体内ではグルタチオンは酵素によって段階的な分解を受ける（例えば、非特許文献１、２を参照）。具体的には、まず、γ-グルタミルトランスペプチターゼがグルタチオンのγ-グルタミル結合を切断し、グルタミン酸（Glu）と、ジペプチドのシステイニルグリシン（CysGly）が生成する。続いてCysGlyがジペプチターゼによって分解され、システイン（Cys）とグリシン（Gly）となる。このような生体での２段階の分解を食品等にも利用できれば食品等に元々含まれている成分（グルタチオン）からシステインを生成し、風味の付与や増強を図ることが可能となる。ここで、一段階目の反応に関連した技術として、微生物由来グルタミナーゼを用いてグルタチオンからCysGlyを生成し、食品等の風味を増強することが提案されている（特許文献１）。一方、２段階目の反応に関しては、動物由来（例えばラット、ウサギ、ブタ、ウマ由来）の酵素によるCysGlyの分解の報告がある（非特許文献１、２）。しかしながら、動物由来の酵素は食品等へは利用し難い。食品分野での使用に適した酵素によってCysGlyの分解に成功した例はない。
特許第４４５３０５７号広報
J. Biol. Chem. 1950, 186:731-735. J. Biol. Chem. 1937, 120:209-217.
　食品等に元々存在するグルタチオンからシステインを生成することは食品等の風味の付与ないし増強の手段として有望であるものの、実現できていない。この状況に鑑み本発明は、食品分野（食品用途）への利用にも適した、グルタチオンからシステインを生成するための実用的な手段を提供することを課題とする。
　上記課題の下で本発明者らは、食品分野での利用を想定しつつ、微生物由来の酵素によってグルタチオンからシステインを効率的に生成することを目指して検討を重ねた。その結果、γ－グルタミルペプチド加水分解酵素の一つであるグルタミナーゼと酸性プロテアーゼの併用によって効率的にグルタチオンからシステインを生成することに成功した。また、特に有効な反応条件や実用化する上で有益な情報が見出された。これらの成果に基づき以下の発明が提供される。
　［１］還元型グルタチオンに微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素が作用してシステイニルグリシンを生成する第１ステップと、
　前記システイニルグリシンに微生物由来酸性プロテアーゼが作用してシステインを生成する第２ステップと、
　を含む、グルタチオンからシステインを生成する方法。
　［２］グルタチオン含有組成物若しくはその溶液又はグルタチオン溶液に微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素と微生物由来酸性プロテアーゼを添加した後、pH 3～9、温度15℃～70℃で反応させることにより前記第１ステップを行い、その後、反応液をpH 2～7に調整し、温度20℃～70℃で反応させることにより前記第２ステップを行う、［１］に記載の方法。
　［３］グルタチオン含有組成物若しくはその溶液又はグルタチオン溶液に微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素を添加した後、pH 3～9、温度15℃～70℃で反応させることにより前記第１ステップを行い、その後、反応液に微生物由来酸性プロテアーゼを添加し、pH 2～7、温度20℃～70℃で反応させることにより前記第２ステップを行う、［１］に記載の方法。
　［４］グルタチオン含有組成物若しくはその溶液又はグルタチオン溶液に微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素と微生物由来酸性プロテアーゼを添加した後、pH 3～6、温度15℃～70℃で反応させることにより、前記第１ステップ及び前記第２ステップを行う、請求項１に記載の方法。
　［５］前記第１ステップの反応条件がpH 4～8、温度30℃～60℃であり、前記第２ステップの反応条件がpH 3～6、温度20℃～60℃である、［２］又は［３］に記載の方法。
　［６］前記第１ステップの反応条件がpH 5～7、温度30℃～50℃であり、前記第２ステップの反応条件がpH 3～5、温度30℃～50℃である、［２］又は［３］に記載の方法。
　［７］前記微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素がグルタミナーゼ、γ－グルタルトランスフェラーゼ又はγ－グルタミルシクロトランスフェラーゼである、［１］～［６］のいずれか一項に記載の方法。
　［８］前記微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素がバチルス属微生物由来グルタミナーゼである、［１］～［６］のいずれか一項に記載の方法。
　［９］前記微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素がバチルス・アミロリケファシエンス由来グルタミナーゼである、［１］～［６］のいずれか一項に記載の方法。
　［１０］前記微生物由来酸性プロテアーゼがアスペルギルス属微生物由来酸性プロテアーゼである、［１］～［９］のいずれか一項に記載の方法。
　［１１］前記微生物由来酸性プロテアーゼがアスペルギルス・オリゼ由来酸性プロテアーゼである、［１］～［９］のいずれか一項に記載の方法。
　［１２］前記グルタチオン含有組成物が食肉、食肉加工品、魚介類、魚介類加工品、野菜、野菜加工品、酵母エキス又は肉エキスである、［１］～［１１］のいずれか一項に記載の方法。
　本発明はグルタチオンからシステインを生成する方法（以下、「本発明のシステイン生成法」とも呼ぶ）に関する。本発明のシステイン生成法は汎用性が高く、食品や食材中に存在するグルタチオンからシステインを生成させる目的や、精製した又は粗精製のグルタチオンからシステインを得る目的などに利用できる。後述の通り、本発明ではグルタチオンを含む食品や食材、或いはグルタチオン溶液等が処理対象（被処理物）となるが、被処理物中のグルタチオンはその少なくとも一部が、本発明で使用する酵素（微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素）が分解可能な形態（例えば還元型）であればよい。
　本発明のシステイン生成法は大別して２種類の酵素を使用し、２段階の切断ないし分解反応によってグルタチオンからシステインを生成する。具体的には、還元型グルタチオンに微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素が作用してシステイニルグリシンを生成するステップ（第１ステップ）と、生成したシステイニルグリシンに微生物由来酸性プロテアーゼが作用してシステインを生成するステップ（第２ステップ）によって、グルタチオンからシステインを生成する。
　第１ステップは、微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素の作用によって還元型グルタチオンのγ－グルタミル結合を切断し、システイニルグリシン（CysGly）を生成する反応である（副産物としてグルタミン酸も生成する）。還元型グルタチオンのγ－グルタミル結合の切断を達成できる限り、微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素は特に限定されない。微生物由来のγ－グルタミルペプチド分解酵素の例として、バチルス属微生物由来のグルタミナーゼ、γ－グルタミルトランスフェラーゼ、γ－グルタミルシクロトランスフェラーゼを挙げることができる。バチルス属微生物由来のグルタミナーゼの例はバチルス・アミロリケファシエンス（Bacillus amyloliquefaciens）由来グルタミナーゼ（例えば天野エンザイム株式会社が提供するグルタミナーゼSD-C100S）である。微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素は精製品でなくてもよく、例えば、γ－グルタミルペプチド加水分解酵素を産生する微生物の培養液、破砕液／抽出物、これらの部分精製物等を用いることにしてもよい。２種類以上の微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素を併用することにしてもよい。尚、いくつかの微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素が市販されており（例えば、上記のグルタミナーゼSD-C100S）、容易に入手及び利用可能である。
　第２ステップは、第１ステップによって生成したCysGlyを微生物由来酸性プロテアーゼの作用によって分解し、システインを生成する反応である（副産物としてグリシンも生成する）。CysGlyの分解を達成できる限り、微生物由来酸性プロテアーゼは特に限定されない。微生物由来酸性プロテアーゼの例として、アスペルギルス属微生物由来の酸性プロテアーゼを挙げることができる。アスペルギルス属微生物由来の酸性プロテアーゼの例はアスペルギルス・オリゼ（Aspergillus oryzae）由来酸性プロテアーゼ（例えば天野エンザイム株式会社が提供するプロテアーゼM「アマノ」SD及びプロテアーゼHF「アマノ」150SD）である。微生物由来酸性プロテアーゼは精製品でなくてもよく、例えば、酸性プロテアーゼを産生する微生物の培養液、破砕液／抽出物、これらの部分精製物等を用いることにしてもよい。２種類以上の微生物由来酸性プロテアーゼを併用することにしてもよい。尚、いくつかの微生物由来酸性プロテアーゼが市販されており（例えば、上記のプロテアーゼM「アマノ」SD、プロテアーゼHF「アマノ」150S）、容易に入手及び利用可能である。
　本発明では、その全体のプロセスの中で第１ステップの後に第２ステップが行われる状態が形成されればよい。そこで、本発明の一態様（第１態様）では、グルタチオン含有組成物若しくはその溶液又はグルタチオン溶液に微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素と微生物由来酸性プロテアーゼを添加した後、微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素が作用する条件（「第１条件」と呼ぶ）で反応させて第１ステップを行い、その後、微生物由来酸性プロテアーゼが作用する条件（「第２条件」と呼ぶ）に変更して反応させ、第２ステップを行う。この態様によれば、途中で酵素（微生物由来酸性プロテアーゼ）を添加する必要がなくなり、作業性が良くなる。
　被処理物の一つとして、グルタチオン含有組成物又はその溶液が用いられる。グルタチオン含有組成物は特に限定されず、例えば、グルタチオンを含有した食品や食材が該当する。用語「食材」は広義に解釈され、肉、魚、野菜などの天然の食品材料の他、これらの加工品や抽出物、調味料等も食材に含まれる。食品及び食材の具体例を挙げると、食肉、食肉加工品、魚介類、魚介類加工品、野菜、野菜加工品、酵母エキス、肉エキスである。
　グルタチオン含有組成物又はその溶液の他、グルタチオン溶液も本発明の被処理物となる。通常、グルタチオンを適当な溶媒（例えば水）に溶解し、グルタチオン溶液を調製する。グルタチオンは酵母からの抽出や有機合成等によって製造されており、試薬、医薬、医薬原料等として提供（市販）されている。尚、上記の通り、被処理物中のグルタチオンはその少なくとも一部が還元型である必要があり、通常は、還元型グルタチオンを用いてグルタチオン溶液が調製される。
　微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素が作用する条件、即ち第１条件は、例えばpH 3～9、反応温度15℃～70℃とする。pHは、好ましくは4～8、更に好ましくは5～7である。反応温度は、好ましくは30℃～60℃、更に好ましくは30℃～50℃である。反応時間及び酵素量は、期待される作用が発揮される限り特に限定されない。反応時間の例として5分～48時間を挙げることができる。酵素量については、反応液中の微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素の濃度が、例えば0.001％(W/W)～10％(W/W)、好ましくは0.01％(W/W)～1％(W/W)となる量とする。尚、微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素としてバチルス・アミロリケファシエンス由来グルタミナーゼを用いる場合の特に好ましい反応条件はpH 5～7、反応温度35℃～45℃である。
　微生物由来酸性プロテーゼが作用する条件、即ち第２条件は、例えばpH 2～7、反応温度20℃～70℃とする。pHは、好ましくは3～6、更に好ましくは3～5である。反応温度は、好ましくは20℃～60℃、更に好ましくは30℃～50℃である。反応時間及び酵素量は、期待される作用が発揮される限り特に限定されない。反応時間の例として5分～12時間を挙げることができる。反応時間が長いと、生成したシステインの酸化が懸念されるため、酵素量の増大、反応条件（特にpH及び温度）の最適化等によって反応効率を上げることが好ましい。酵素量については、反応液中の微生物由来酸性プロテアーゼの濃度が、例えば0.001％(W/W)～10％(W/W)、好ましくは0.01％(W/W)～2％(W/W)となる量とする。尚、微生物由来酸性プロテアーゼとしてアスペルギルス・オリゼ由来酸性プロテアーゼを用いる場合の特に好ましい反応条件はpH 3～5、反応温度30℃～50℃である。
　第１条件から第２条件への変更の際の反応液のpH調整には、通常、酸（例えば塩酸、硫酸、硝酸、酢酸）、アルカリ（例えば水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、炭酸ナトリウム、炭酸カリウム、水酸化カルシウム、水酸化マグネシウム）を用いればよい。
　生成したシステインは必要に応じて回収ないし精製される。例えば、被処理物としてグルタチオン溶液を使用した場合において、純度の高いシステインを得るために回収／精製を行う。回収／精製には例えばカラムクロマトグラフィーを利用することができる。
　本発明の他の一態様（第２態様）では、グルタチオン含有組成物若しくはその溶液又はグルタチオン溶液に微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素を添加した後、微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素が作用する条件（「第１条件」と呼ぶ）で反応させて第１ステップを行い、その後、反応液に微生物由来酸性プロテアーゼを添加し、微生物由来酸性プロテアーゼが作用する条件（「第２条件」と呼ぶ）で反応させ、第２ステップを行う。この態様によれば、第１ステップ（微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素によるγ－グルタミル結合の切断）の際に微生物由来酸性プロテアーゼが反応液中に存在せず、微生物由来酸性プロテアーゼによって微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素が分解（消化）されるおそれがない。従って、微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素による良好ないし効率的なγ－グルタミル結合の切断を期待できる。尚、第２態様の第１条件及び第２条件は、各々、上記第１態様の第１条件及び第２条件に準じる。反応時間及び酵素量も同様である。
　本発明の他の一態様（第３態様）では、グルタチオン含有組成物若しくはその溶液又はグルタチオン溶液に微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素と微生物由来酸性プロテアーゼを添加した後、微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素と微生物由来酸性プロテアーゼの両方が作用可能な条件で反応させる。即ち、第１ステップと第２ステップを同時に行う。この態様によれば、途中で酵素を添加する必要がなく、且つ反応条件を変更する必要がなくなり、作業性が良くなる。微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素と微生物由来酸性プロテーゼが同時に作用可能な条件は、例えばpH 3～6、反応温度20℃～70℃とする。pHは、好ましくは4～6である。反応温度は、好ましくは20℃～60℃、更に好ましくは30℃～50℃である。反応時間及び酵素量は、期待される作用が発揮される限り特に限定されない。反応時間の例として5分～24時間を挙げることができる。反応時間が長いと、生成したシステインの酸化が懸念されるため、酵素量の増大、反応条件（特にpH及び温度）の最適化等によって反応効率を上げることが好ましい。
　食品分野での利用を想定しつつ、グルタチオンからシステインを効率的に生成する方法の確立を目指して以下の実験を行った。
１．単独酵素処理によるシステイン生成の検討
（１）方法
　1.0mLの50mmol/L 還元型グルタチオンに0.020mLの5%(w/v)酵素液を加え、37℃で16時間静置反応後、HPLCで分析した。全ピーク面積に対するL-システインのピーク面積の比率でシステイン生成量を評価した。使用した酵素を以下の表（表１）に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
（２）結果
　単独酵素処理ではL-システインはほとんど生成しなかった（表２）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
２．グルタミナーゼと各種酵素の併用によるシステイン生成の検討
（１）方法
　1.0mLの50mmol/L 還元型グルタチオン（pH 4、5、6又は7）に0.02mLの5%(w/v)酵素溶液を加え、37℃で12時間静置反応後、HPLCで分析した。全ピーク面積に対するL-システインのピーク面積の比率でシステイン生成量を評価した。
（２）結果
　pH 4～6においてグルタミナーゼと酸性プロテアーゼの組合せが効率よくシステインを生成していた（表３）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
３．処理条件の検討
（１）方法
　40mLの50mmol/L 還元型グルタチオン（pH 6.0）に0.8mLの5%(w/v)グルタミナーゼ溶液を加え、37℃で12時間静置反応した。その後、塩酸にてpHを4.0に調整し、50mLにメスアップした後、プロテアーゼHF「アマノ」150SDを終濃度0.5%(w/v)又は2.0%(w/v)となるように加え、37℃又は50℃で4～24時間静置反応後、HPLCで分析した。全ピーク面積に対するL-システインのピーク面積の比率でシステイン生成量を評価した。
（２）結果
　プロテアーゼ量が多いほど、システイン生成が早くなった。また、37℃よりも50℃で反応した方がシステイン生成量が増大した（表４）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
４．収率向上の検討
（１）方法
　9mLの0.153g(w/v)還元型グルタチオン（pH 6.0）(終濃度50mM)に100mgのグルタミナーゼSD-C100Sと400mgのプロテアーゼHF「アマノ」150SDを加え、37℃で3時間静置反応後、pH 4.0に調整し、さらに37℃又は50℃で3時間静置反応した。反応液をHPLC分析し、生成したL-システイン濃度を算出した。
（２）結果
　50mMの還元型グルタチオンから約40mMのシステインを生成した（表５）。pH 4.0に調整後の反応温度を50℃にした場合でも十分な生成量となったが、同37℃よりやや生成量が減少した。高温反応によりSH基の酸化が起こり濃度が減少したと推測される。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　本発明は例えば食品又は食材中のシステイン量を増大させることに有用である。言い換えると、本発明によればシステイン含有量が増大した食品又は食材を製造することができる。従って、システイン含有量が増大した組成物（例えば食品、食材）の製造方法として本発明を捉えることもできる。食品又は食材中のシステイン量を増大させることの他、精製した又は粗精製のグルタチオンからシステインを得る目的にも本発明を利用することができる。このように本発明の汎用性は高く、様々な分野での利用が期待される。
　この発明は、上記発明の実施の形態及び実施例の説明に何ら限定されるものではない。特許請求の範囲の記載を逸脱せず、当業者が容易に想到できる範囲で種々の変形態様もこの発明に含まれる。本明細書の中で明示した論文、公開特許公報、及び特許公報などの内容は、その全ての内容を援用によって引用することとする。

Claims (12)

  1. 　還元型グルタチオンに微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素が作用してシステイニルグリシンを生成する第１ステップと、
    　前記システイニルグリシンに微生物由来酸性プロテアーゼが作用してシステインを生成する第２ステップと、
    　を含む、グルタチオンからシステインを生成する方法。
  2. 　グルタチオン含有組成物若しくはその溶液又はグルタチオン溶液に微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素と微生物由来酸性プロテアーゼを添加した後、pH 3～9、温度15℃～70℃で反応させることにより前記第１ステップを行い、その後、反応液をpH 2～7に調整し、温度20℃～70℃で反応させることにより前記第２ステップを行う、請求項１に記載の方法。
  3. 　グルタチオン含有組成物若しくはその溶液又はグルタチオン溶液に微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素を添加した後、pH 3～9、温度15℃～70℃で反応させることにより前記第１ステップを行い、その後、反応液に微生物由来酸性プロテアーゼを添加し、pH 2～7、温度20℃～70℃で反応させることにより前記第２ステップを行う、請求項１に記載の方法。
  4. 　グルタチオン含有組成物若しくはその溶液又はグルタチオン溶液に微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素と微生物由来酸性プロテアーゼを添加した後、pH 3～6、温度15℃～70℃で反応させることにより、前記第１ステップ及び前記第２ステップを行う、請求項１に記載の方法。
  5. 　前記第１ステップの反応条件がpH 4～8、温度30℃～60℃であり、前記第２ステップの反応条件がpH 3～6、温度20℃～60℃である、請求項２又は３に記載の方法。
  6. 　前記第１ステップの反応条件がpH 5～7、温度30℃～50℃であり、前記第２ステップの反応条件がpH 3～5、温度30℃～50℃である、請求項２又は３に記載の方法。
  7. 　前記微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素がグルタミナーゼ、γ－グルタルトランスフェラーゼ又はγ－グルタミルシクロトランスフェラーゼである、請求項１～６のいずれか一項に記載の方法。
  8. 　前記微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素がバチルス属微生物由来グルタミナーゼである、請求項１～６のいずれか一項に記載の方法。
  9. 　前記微生物由来γ－グルタミルペプチド加水分解酵素がバチルス・アミロリケファシエンス由来グルタミナーゼである、請求項１～６のいずれか一項に記載の方法。
  10. 　前記微生物由来酸性プロテアーゼがアスペルギルス属微生物由来酸性プロテアーゼである、請求項１～９のいずれか一項に記載の方法。
  11. 　前記微生物由来酸性プロテアーゼがアスペルギルス・オリゼ由来酸性プロテアーゼである、請求項１～９のいずれか一項に記載の方法。
  12. 　前記グルタチオン含有組成物が食肉、食肉加工品、魚介類、魚介類加工品、野菜、野菜加工品、酵母エキス又は肉エキスである、請求項１～１１のいずれか一項に記載の方法。
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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2022191303A1 (ja) 2021-03-11 2022-09-15 アマノ エンザイム ユーエスエイ カンパニー リミテッド タンパク質分解物の製造方法、及び酵素剤
WO2024024764A1 (ja) * 2022-07-25 2024-02-01 天野エンザイム株式会社 酵母エキスの製造方法

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000030474A1 (fr) * 1998-11-26 2000-06-02 Ajinomoto Co., Inc. Procede pour produire un renforçateur d'arome pour produits alimentaires
JP2001321118A (ja) * 2000-05-17 2001-11-20 Ajinomoto Co Inc システイン高含有食品素材の製造法
JP2001321117A (ja) * 2000-05-17 2001-11-20 Ajinomoto Co Inc システイニルグリシン高含有食品素材および食品の風味増強剤の製造法
JP2018033424A (ja) * 2016-09-02 2018-03-08 味の素株式会社 呈味改質組成物
JP2019124052A (ja) 2018-01-17 2019-07-25 株式会社アルファ ドア開閉装置及びハンドル装置

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
BRPI0908725B1 (pt) * 2008-03-17 2021-02-17 Givaudan Sa processo para formar um ingrediente realçador de sal
WO2009152627A2 (en) * 2008-06-20 2009-12-23 Givaudan Sa Enzymatic process
CN108208711A (zh) * 2016-12-09 2018-06-29 丰益(上海)生物技术研发中心有限公司 一种天然风味物质的制备及应用
CN106978461A (zh) * 2017-04-14 2017-07-25 无锡金农生物科技有限公司 一种谷氨酸发酵后固渣制备功能活性肽的方法
CN116964214A (zh) * 2021-03-11 2023-10-27 天野酶制剂(美国)有限公司 蛋白质分解物的制造方法和酶剂

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000030474A1 (fr) * 1998-11-26 2000-06-02 Ajinomoto Co., Inc. Procede pour produire un renforçateur d'arome pour produits alimentaires
JP2001321118A (ja) * 2000-05-17 2001-11-20 Ajinomoto Co Inc システイン高含有食品素材の製造法
JP2001321117A (ja) * 2000-05-17 2001-11-20 Ajinomoto Co Inc システイニルグリシン高含有食品素材および食品の風味増強剤の製造法
JP4453057B2 (ja) 2000-05-17 2010-04-21 味の素株式会社 システイニルグリシン高含有食品素材および食品の風味増強剤の製造法
JP2018033424A (ja) * 2016-09-02 2018-03-08 味の素株式会社 呈味改質組成物
JP2019124052A (ja) 2018-01-17 2019-07-25 株式会社アルファ ドア開閉装置及びハンドル装置

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
J. BIOL. CHEM., vol. 120, 1937, pages 209 - 217
J. BIOL. CHEM., vol. 186, 1950, pages 731 - 735
See also references of EP3995585A4

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2022191303A1 (ja) 2021-03-11 2022-09-15 アマノ エンザイム ユーエスエイ カンパニー リミテッド タンパク質分解物の製造方法、及び酵素剤
WO2024024764A1 (ja) * 2022-07-25 2024-02-01 天野エンザイム株式会社 酵母エキスの製造方法

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