WO2020209267A1

WO2020209267A1 - タンパク質含有溶液精製用ポリアミド媒体及びその製造方法

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Publication number: WO2020209267A1
Application number: PCT/JP2020/015741
Authority: WO
Inventors: 弘樹谷口; 純臣日高
Original assignee: 旭化成メディカル株式会社
Priority date: 2019-04-08
Filing date: 2020-04-07
Publication date: 2020-10-15
Also published as: JPWO2020209267A1; EP3954725A4; CN113692420B; EP3954725A1; JP7295943B2; EP3954725B1; US20220212167A1; CN113692420A

Abstract

タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法であって、　酸性又はアルカリ性水溶液で処理前のポリアミド媒体を、酸性又はアルカリ性水溶液で処理する工程を有する、　タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法。

Description

タンパク質含有溶液精製用ポリアミド媒体及びその製造方法

　本発明は、タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法、タンパク質含有溶液を精製する方法、及びタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体に関する。

　近年、医薬品においてタンパク質を応用したバイオ医薬品が注目されている。
　その中でも特に注目されているのが免疫グロブリン、すなわち抗体であり、医薬品、診断薬、あるいは対応する抗原タンパク質の分離精製材料等の用途において、その利用価値が高まっている。
　抗体は、免疫反応を司る生理活性物質であり、免疫した動物の血液、抗体産生能を保有する細胞の細胞培養液又は動物の腹水培養液から取得される。
　なお、それらの抗体を含有する血液、細胞培養液、及び腹水培養液は、抗体以外のタンパク質又は細胞培養に用いた原料液に由来する複雑な夾雑成分（以下、これらを夾雑物と記載する場合がある。）を包含しており、多段階の工程を経て、夾雑物が除去される。

　前記血液や細胞培養液及び腹水培養液からの夾雑物の除去方法としては、従来から、吸着メカニズムを利用した、イオン交換カラムを用いる方法や、疎水ゲルを用いる方法（例えば、下記非特許文献１参照）、更にはポリアミド含有成形体を用いる方法（例えば、下記特許文献１参照）等が提案されている。

　また、前記夾雑物の除去方法の他の形態としては、サイズ排除カラムを用いる方法（例えば、下記特許文献２参照）や、ナノフィルターを用いて濾過を行う方法等、サイズ排除のメカニズムにより、夾雑物を除去する方法が提案されている。

特許第６４５５８５１号公報特許第２６３８６８０号公報

ＨＬＣ　ＭＡＩＬＧＲＡＭ，東ソー株式会社，２００３年８月２５日，第９７巻，第３号，ｐ．１０

　しかしながら、上述した吸着メカニズムを利用して夾雑物の除去を行う方法、及び、サイズ排除のメカニズムによって夾雑物の除去を行う方法のいずれにおいても、目的タンパク質の吸着も起こることにより、目的タンパク質の回収率が低下してしまう、という問題点を有している。

　そこで本発明においては、目的タンパク質の回収率がより高いタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法、及びタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体を提供することを課題とする。
　また、別の課題として、酸又はアルカリ処理後でもその強度が維持された、タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法、及びタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体を提供する。
　さらに、別の課題として、前記ポリアミド媒体を用いたタンパク質含有溶液を精製する方法を提供する。

　本発明者らは、前記課題を解決するために鋭意研究を行った結果、ポリアミド媒体に所定の処理を行うことにより、上述した従来技術の課題を解決し得るタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体が得られることを見出し、本発明を完成するに至った。
　すなわち、本発明は以下のとおりである。

〔１〕
　タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法であって、
　酸性又はアルカリ性水溶液で処理前のポリアミド媒体を、酸性又はアルカリ性水溶液で処理する工程を有する、
　タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法。
〔２〕
　前記ポリアミド媒体が多孔質体である、前記〔１〕に記載のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法。
〔３〕
　前記多孔質体が、膜状の多孔質体である、前記〔２〕に記載のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法。
〔４〕
　前記酸性又はアルカリ性水溶液が、ｐＨ５以下の酸性水溶液である、前記〔１〕乃至〔３〕のいずれか一に記載のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法。
〔５〕
　前記酸性又はアルカリ性水溶液が、ｐＨ１０以上のアルカリ性水溶液である、前記〔１〕乃至〔３〕のいずれか一に記載のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法。
〔６〕
　前記タンパク質含有溶液が、抗体含有溶液である、前記〔１〕乃至〔５〕のいずれか一に記載のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法。
〔７〕
　酸性又はアルカリ性水溶液で処理されたタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体に、タンパク質含有溶液を接触させる工程を有する、
　タンパク質含有溶液を精製する方法。
〔７－１〕
　前記〔１〕乃至〔６〕のいずれか一に記載のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法により得られる酸性又はアルカリ性水溶液で処理されたタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体に、タンパク質含有溶液を接触させる工程を有する、
　タンパク質含有溶液を精製する方法。
〔８〕
　前記ポリアミド媒体にタンパク質含有溶液を接触させる工程が、前記ポリアミド媒体によりタンパク質含有溶液を濾過する工程である、前記〔７〕又は〔７－１〕に記載のタンパク質含有溶液を精製する方法。
〔９〕
　アルカリ処理前のポリアミド媒体を、ｐＨ１０以上のアルカリ性水溶液で４℃以上１００℃以下、５分以上７０時間以下の条件で処理する工程と、
　前記ポリアミド媒体を洗浄する工程と、
　前記洗浄後のポリアミド媒体に、タンパク質含有溶液を接触させる工程と、
を、有する、タンパク質含有溶液を精製する方法。
〔９－１〕
　アルカリ処理前のポリアミド媒体を、ｐＨ１３以上のアルカリ性水溶液で１０℃以上３０℃以下、０．５時間以上４０時間以下の条件で処理する工程と、
前記ポリアミド媒体を洗浄する工程と、前記ポリアミド媒体にタンパク質含有溶液を接触させる工程と、
を、有するタンパク質含有溶液を精製する方法。
〔１０〕
　タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体であって、
　当該ポリアミド媒体の表面のアミノ基及びカルボキシル基の和が、前記ポリアミド媒体の内部におけるアミノ基及びカルボキシル基の和よりも１．０１倍以上多い、
　タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体。
〔１０－１〕
　前記〔１〕乃至〔６〕のいずれか一に記載のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法により得られるタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体であって、
　当該ポリアミド媒体の表面のアミノ基及びカルボキシル基の和が、前記ポリアミド媒体の内部におけるアミノ基及びカルボキシル基の和よりも１．０１倍以上多い、
　タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体。
〔１１〕
　タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体であって、
　当該ポリアミド媒体の表面のポリマーの数平均分子量Ｍｎ（Ｓ）と、
　前記ポリアミド媒体の内部のポリマーの数平均分子量Ｍｎ（Ｉ）が、
下記の式で表される、
　タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体。
　　　　Ｍｎ（Ｓ）／Ｍｎ（Ｉ）　≦　０．９９
〔１１－１〕
　前記〔１〕乃至〔６〕のいずれか一に記載のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法により得られるタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体であって、
　当該ポリアミド媒体の表面のポリマーの数平均分子量Ｍｎ（Ｓ）と、
　前記ポリアミド媒体の内部のポリマーの数平均分子量Ｍｎ（Ｉ）が、
下記の式で表される、
　タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体。
　　　　Ｍｎ（Ｓ）／Ｍｎ（Ｉ）　≦　０．９９
〔１２〕
　前記〔１０〕、〔１０－１〕、〔１１〕、又は〔１１－１〕に記載のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体に、タンパク質含有溶液を接触させる工程を有する、タンパク質含有溶液を精製する方法。
〔１３〕
　前記タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体にタンパク質含有溶液を接触させる工程が、前記ポリアミド媒体によりタンパク質含有溶液を濾過する工程である、前記〔１２〕に記載のタンパク質含有溶液を精製する方法。
〔１４〕
　抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法であって、
　アルカリ性水溶液に浸漬前のポリアミド媒体を、ｐＨ５以下の酸性水溶液又はｐＨ１０以上のアルカリ性水溶液に５分以上浸漬する工程を有する、
　抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法。
〔１５〕
　前記ポリアミド媒体が多孔質体である、前記〔１４〕に記載の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法。
〔１６〕
　前記多孔質体が、膜状の多孔質体である、前記〔１５〕に記載の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法。
〔１７〕
　前記アルカリ性水溶液が、水酸化ナトリウム水溶液又は水酸化カリウム水溶液である、前記〔１４〕乃至〔１６〕のいずれか一に記載の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法。
〔１８〕
　前記抗体凝集体が、モノクローナル抗体の凝集体である、前記〔１４〕乃至〔１７〕のいずれか一に記載の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法。
〔１９〕
　酸性又はアルカリ性水溶液で処理されたポリアミド媒体に、抗体凝集体を含む抗体溶液を接触させる工程を有する、抗体単量体の純度が向上した抗体溶液を回収する方法。
〔１９－１〕
　前記〔１４〕乃至〔１８〕のいずれか一に記載の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法により得られるポリアミド媒体に、抗体凝集体を含む抗体溶液を接触させる工程を有する、抗体単量体の純度が向上した抗体溶液を回収する方法。
〔２０〕　酸性又はアルカリ性水溶液で処理されたポリアミド媒体に、抗体凝集体を含む抗体溶液を接触させる工程を有する、抗体溶液から抗体凝集体を除去する方法。
〔２０－１〕
　前記〔１４〕乃至〔１８〕のいずれか一に記載の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法により得られるポリアミド媒体に、抗体凝集体を含む抗体溶液を接触させる工程を有する、抗体溶液から抗体凝集体を除去する方法。
〔２１〕
　前記抗体がモノクローナル抗体である、前記〔１９〕又は〔１９－１〕に記載の抗体単量体の純度が向上した抗体溶液を回収する方法。
〔２２〕
　前記抗体がモノクローナル抗体である、前記〔２０〕又は〔２０－１〕に記載の抗体溶液から抗体凝集体を除去する方法。
〔２３〕
　抗体凝集体除去用のポリアミド媒体であって、
　当該ポリアミド媒体の表面のアミノ基及びカルボキシル基の和が、前記ポリアミド媒体の内部におけるアミノ基及びカルボキシル基の和よりも、１．０１倍以上多い、抗体凝集体除去用のポリアミド媒体。
〔２３－１〕
　前記〔１４〕乃至〔１８〕のいずれか一に記載の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法により得られる抗体凝集体除去用のポリアミド媒体であって、
　当該ポリアミド媒体の表面のアミノ基及びカルボキシル基の和が、前記ポリアミド媒体の内部におけるアミノ基及びカルボキシル基の和よりも、１．０１倍以上多い、抗体凝集体除去用のポリアミド媒体。
〔２４〕
　抗体凝集体除去用のポリアミド媒体であって、
　当該ポリアミド媒体の表面のポリマーの数平均分子量Ｍｎ（Ｓ）と、
　前記ポリアミド媒体の内部のポリマーの数平均分子量Ｍｎ（Ｉ）が、
下記の式で表される、
　抗体凝集体除去用のポリアミド媒体。
　　　　Ｍｎ（Ｓ）／Ｍｎ（Ｉ）　≦　０．９９
〔２４－１〕
　前記〔１４〕乃至〔１８〕のいずれか一に記載の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法により得られる抗体凝集体除去用のポリアミド媒体であって、
　当該ポリアミド媒体の表面のポリマーの数平均分子量Ｍｎ（Ｓ）と、
　前記ポリアミド媒体の内部のポリマーの数平均分子量Ｍｎ（Ｉ）が、
下記の式で表される、
　抗体凝集体除去用のポリアミド媒体。
　　　　Ｍｎ（Ｓ）／Ｍｎ（Ｉ）　≦　０．９９
〔２５〕
　前記〔２３〕、〔２３－１〕、〔２４〕、又は〔２４－１〕に記載の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体と、抗体凝集体を含む抗体溶液とを接触させる工程を、有する、純度が向上した抗体溶液を回収する方法。
〔２６〕
　前記〔２３〕、〔２３－１〕、〔２４〕、又は〔２４－１〕に記載の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体と、抗体凝集体を含む抗体溶液とを接触させる工程を、有する、抗体溶液から抗体凝集体を除去する方法。

　本発明によれば、一態様において目的タンパク質の回収率が高いタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法を提供することができる。また、一態様において当該製造方法により得られるポリアミド媒体を用いたタンパク質含有溶液を精製する方法を提供することができる。さらに、一態様においてタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体を提供することができる。

実施例１の、抗体単量体と抗体凝集体を含む抗体含有溶液のクロマトチャートを示す。図１のクロマトチャートのピーク部の拡大図を示す。実施例１０、比較例１０の、ＦＴ－ＩＲのスペクトルを示す。１６３９ｃｍ^－１、１５４４ｃｍ^－１のピークが大きい方（「水」と記載されている方）が比較例１０の測定結果を示し、前記ピークが小さい方（「水酸化ナトリウム」と記載されている方）が実施例１０の測定結果を示す。

　以下、本発明を実施するための形態（以下、「本実施形態」とも記載する。）について詳細に説明する。
　なお、以下の本実施形態は、本発明を説明するための例示であり、本発明を以下の内容に限定する趣旨ではない。本発明は、その要旨の範囲内で種々変形して実施することができる。

〔タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法〕
　本実施形態のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法は、ポリアミド原料を、酸性又はアルカリ性水溶液で処理する工程を有する。
　上記構成を有することにより、目的タンパク質の回収率が高い、ポリアミド媒体が得られる。
　ここで、ポリアミド原料、すなわち酸性又はアルカリ性水溶液で処理前のポリアミド媒体は、酸性又はアルカリ性水溶液で処理する工程を実施する前段階の、未処理のポリアミド媒体のことをいう。ポリアミド原料は、ポリアミドのみを含む媒体でもよく、ポリアミド以外の化合物を含んだ媒体でもよい。
　本実施形態の製造方法により得られるタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体を用いてタンパク質含有溶液を精製することにより、目的タンパク質のポリアミド媒体への吸着量を低減することができ、目的タンパク質を高い回収率で回収することができる。

　目的タンパク質を高い回収率で回収できるとの効果を生み出すメカニズムの一つとして、処理前のポリアミド媒体を酸性又はアルカリ性水溶液で処理することによりポリアミド表面上のアミド結合が加水分解し、親水性官能基であるカルボキシ基又はアミノ基が現れることにより、ポリアミド媒体へのタンパク質吸着の低減化が図られたものと考えられるが、本発明は、当該メカニズムに拘泥されるものではない。
　また、本実施形態の製造方法により得られるタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体は、酸性又はアルカリ性水溶液で処理する前の状態の強度は維持されたものであることが好ましい態様である。
　すなわち、本実施形態の製造方法により得られるタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体は、目的タンパク質のポリアミド媒体への吸着量が低減し、かつ酸性又はアルカリ性水溶液で処理する前の状態に比べ、その強度が維持されたポリアミド媒体であることが好ましい態様である。

（抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法）
　本実施形態の製造方法により得られるタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体は、抗体凝集体除去用のポリアミド媒体であってもよい。
　すなわち、本実施形態のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体は、抗体溶液精製用のポリアミド媒体であってもよい。詳細には、精製対象となる抗体含有溶液が、抗体単量体に加え、抗体凝集体を含んでいるとき、ポリアミド媒体により凝集体を除去するものであってもよい。
　本実施形態のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法を、抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法とする場合は、当該製造方法においては、アルカリ性水溶液に浸漬前のポリアミド媒体を、ｐＨ５以下の酸性水溶液又はｐＨ１０以上のアルカリ性水溶液に５分以上浸漬する工程を有するものとする。これにより抗体凝集体を効果的に除去可能なポリアミド媒体が得られる。

（タンパク質及び抗体）
　本実施形態において、精製対象となるタンパク質含有溶液に含まれるタンパク質としては、本実施形態の製造方法により得られるポリアミド媒体により、目的タンパク質を高い回収率で回収可能なタンパク質であれば特に限定されない。以下に限定されるものではないが、例えば、アルブミン、グロブリン、又はフィブリノゲン等が挙げられる。
　また、精製対象となるタンパク質含有溶液に含まれるタンパク質としては、抗体が好ましい例として挙げられる。すなわち、精製対象となるタンパク質含有溶液の好適な例としては、抗体含有溶液が挙げられる。
　本実施形態の製造方法により得られるタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体を、タンパク質凝集体を含む所定のタンパク質含有溶液と接触させることにより、高選択的にタンパク質凝集体が除去され、タンパク質単量体の純度が向上したタンパク質溶液を高い回収率で回収できる。
　すなわち、本実施形態の製造方法により得られるポリアミド媒体に、抗体凝集体を含む抗体溶液を接触させることにより、抗体溶液から抗体凝集体が除去され、抗体単量体の純度が向上した抗体溶液を高い回収率で回収できる。
　抗体としては、生化学における一般的な定義のとおり、脊椎動物の感染防禦機構としてＢリンパ球が産生する糖タンパク質分子（ガンマグロブリン又は免疫グロブリンともいう）が挙げられる。
　例えば、本実施形態で精製される抗体溶液中の抗体は、ヒトの医薬品として使用でき、かかる場合、投与対象であるヒトの体内にある抗体と実質的に同一の構造を有する。

　抗体は、ヒト抗体であってもよく、ヒト以外のウシ及びマウス等の哺乳動物由来抗体タンパク質であってもよい。
　また、抗体は、ヒトＩｇＧとのキメラ抗体タンパク質や、ヒト化抗体であってもよい。
　前記ヒトＩｇＧとのキメラ抗体とは、可変領域がマウス等のヒト以外の生物由来であるが、その他の定常領域がヒト由来の免疫グロブリンに置換された抗体である。
　前記ヒト化抗体とは、可変領域のうち、相補性決定領域（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ－ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ　ｒｅｇｉｏｎ：ＣＤＲ）がヒト以外の生物由来であるが、その他のフレームワーク領域（ｆｒａｍｅｗｏｒｋ　ｒｅｇｉｏｎ：ＦＲ）がヒト由来である抗体である。ヒト化抗体は、キメラ抗体よりも免疫原性がさらに低減される。

　本実施形態において、抗体のクラス（アイソタイプ）及びサブクラスは特に限定されない。例えば、抗体は、定常領域の構造の違いにより、ＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＭ、ＩｇＤ、及びＩｇＥの５種類のクラスに分類される。しかし、本実施形態の製造方法により得られるタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体を、抗体凝集体除去用として用いて抗体凝集体を除去し、抗体単量体の純度の高い抗体溶液を得る際、精製対象とする抗体溶液に含まれる抗体は、５種類のクラスのいずれであってもよい。
　また、ヒト抗体においては、ＩｇＧにはＩｇＧ１からＩｇＧ４の４つのサブクラスがあり、ＩｇＡにはＩｇＡ１とＩｇＡ２の２つのサブクラスがある。しかし、本実施形態においては、抗体のサブクラスは、いずれであってもよい。なお、Ｆｃ領域にタンパク質を結合したＦｃ融合タンパク質等の抗体関連タンパク質も、本実施形態において精製対象とする抗体に含まれ得る。

　さらに、抗体は、由来によっても分類することができる。しかし、本実施形態において精製対象とする抗体は、天然のヒト抗体、遺伝子組換え技術により製造された組換えヒト抗体、モノクローナル抗体、又はポリクローナル抗体のいずれであってもよい。
　これらの抗体の中でも、本実施形態において精製対象とする抗体としては、抗体医薬としての需要や重要性の観点から、モノクローナル抗体が好適であるが、本実施形態は、これに限定されない。

　また、抗体としては、ＩｇＭ、ＩｇＤ、ＩｇＧ、ＩｇＡ、又はＩｇＥのいずれかを含むモノクローナル抗体もしくはポリクローナル抗体が挙げられる。さらに、抗体は、血漿生成物由来であってもよく、あるいは細胞培養液由来であってもよい。
　細胞培養によって抗体を得る場合は細胞として動物細胞もしくは微生物を使用することができる。
　動物細胞としては、種類は特に限定されないが、ＣＨＯ細胞、Ｓｐ２／０細胞、ＮＳ０細胞、Ｖｅｒｏ細胞、ＰＥＲ．Ｃ６細胞等が挙げられる。
　微生物としては、種類は特に限定されないが、大腸菌や酵母等が挙げられる。

（抗体凝集体）
　本実施形態により製造されるタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体を用いて精製される溶液が抗体溶液であり、抗体溶液が凝集体を含んでいる場合、除去対象である抗体凝集体としては、目的抗体の単量体が２つ会合した二量体、目的抗体の単量体が３つ会合した三量体、又は目的抗体の単量体が４つ以上会合した多量体、あるいはその混合物が挙げられる。
　なお、多量体は二量体及び三量体がいずれも含まれる場合がある。
　また、抗体凝集体には、目的とする抗体以外のタンパク質が含まれる場合もある。
　さらに、タンパク質の凝集体は、不可逆的な会合体であってもよく、可逆的な会合体であってもよい。

（ポリアミド媒体）
　本実施形態のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法、又は抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法において用いる、酸性又はアルカリ性水溶液による処理前のポリアミド媒体を構成するポリアミドは、アミド結合からなる繰り返し単位から構成されるポリマーであって、モノマー単位は脂肪族ポリアミド、芳香族ポリアミドのいずれでもよく、その混合物でもよく、複数種の脂肪族モノマー及び芳香族モノマーからなってもよい。
　ポリアミドとしては、以下に限定されるものではないが、例えば、εカプロラクタム、ウンデカンカプロラクタム、ラウリルラクタムの重縮合反応により得られる、ナイロン６、ナイロン１１、ナイロン１２や、ヘキサメチレンジアミンとアジピン酸の共縮重合反応により得られるナイロン６６、ヘキサメチレンジアミンとセバシン酸との共縮重合反応により得られるナイロン６１０、ヘキサメチレンジアミンとテレフタル酸の共縮重合反応により得られるナイロン６Ｔ、ヘキサメチレンジアミンとイソフタル酸の共縮重合反応により得られるナイロン６Ｉ、ノナンジアミンとテレフタル酸の共縮重合反応により得られるナイロン９Ｔ、メチルペンタジアミンとテレフタル酸の共縮重合反応により得られるナイロンＭ５Ｔ、εカプロラクタムとラウリルラクタムの共縮重合反応により得られるナイロン６１２、パラフェニレンジアミンとテレフタル酸の共重合反応により得られるポリアミド、メタフェニレンジアミンとイソフタル酸の共重合反応により得られるポリアミド等が挙げられる。
　前記酸性又はアルカリ性水溶液による処理前のポリアミド媒体としては、特に限定されないが、例えば、ポリアミド媒体（但しグラフト鎖を有するポリアミド媒体を除く）が例示される。また、別の態様としてグラフト鎖を有さないポリアミド媒体が例示される。

　本実施形態のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法、又は抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法において用いる、酸性又はアルカリ性水溶液で処理前のポリアミド媒体を構成するポリアミドの重量平均分子量は、特に限定されないが、ポリアミド媒体の強度の観点から、より大きいほうが好ましい。具体的には、ポリアミド媒体の強度の観点から、２０００以上が好ましく、より好ましくは５０００以上、１００００以上、５００００以上、６００００以上、７００００以上、８００００以上であり、さらに好ましくは９００００以上、９５０００以上、１０００００以上である。
　また、ポリアミド媒体が繊維である場合の紡糸性及び末端官能基量の観点から、２００００００以下が好ましく、より好ましくは１００００００以下であり、さらに好ましくは５０００００以下、３０００００以下、２０００００以下である。
　ポリアミドの重量平均分子量は、例えば、ＧＰＣ（ゲル浸透クロマトグラフィー、Ｇｅｌ　Ｐｅｒｍｅａｔｉｏｎ　Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）のような公知の手法で測定できる。

　本実施形態のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法、又は抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法において用いる、酸性又はアルカリ性水溶液で処理前のポリアミド媒体を構成するポリアミドの数平均分子量は、特に限定されないが、ポリアミド媒体の強度の観点から、より大きいほうが好ましい。具体的には、１０００以上が好ましく、より好ましくは５０００以上、６０００以上、７０００以上、８０００以上、９０００以上、１００００以上であり、さらに好ましくは２００００以上、２５０００以上、３００００以上である。
　また、ポリアミド媒体が繊維である場合の紡糸性及び末端官能基量の観点から、１００００００以下が好ましく、より好ましくは５０００００以下であり、さらに好ましくは１０００００以下、５００００以下、４００００以下、３００００以下である。
　ポリアミドの数平均分子量は、例えば、ＧＰＣ（ゲル浸透クロマトグラフィー、Ｇｅｌ　Ｐｅｒｍｅａｔｉｏｎ　Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）のような公知の手法で測定できる。

＜タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法の処理条件＞
　本実施形態のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法においては、原料である所定の処理前のポリアミド媒体を、酸性又はアルカリ性水溶液により処理する工程を有する。
　本実施形態のポリアミド媒体の製造方法において、原料であるポリアミドに生じる変化は特に限定されないが、加水分解、官能基の導入等が挙げられる。前記導入される官能基としては、例えば、ヒドロキシ基、カルボキシ基、アミノ基、スルホ基、アルデヒド基、カルボニル基、ニトロ基が挙げられる。
　処理方法としては、浸漬でもよく、多孔質体である場合、通液でもよい。
　酸性水溶液により処理する場合、酸性水溶液のｐＨは、上限として、加水分解の進行速度の観点から、５以下であることが好ましく、４以下、３以下、２以下、１．５以下等がより好ましい。また、下限として、ポリアミド媒体の強度の観点から、１．０以上であることが例示される。

　酸性水溶液としては、例えば、塩酸、硫酸、硝酸等の無機酸、トリフルオロ酢酸等の有機酸の水溶液が挙げられる。酸性水溶液中には、前記無機酸もしくは有機酸以外の化合物が含まれていてもよい。

　処理方法として酸性水溶液への浸漬を行う場合の浸漬時間は、原料である所定の処理前のポリアミド媒体の表面のアミド結合の分解の観点から、下限として５分以上が好ましく、より好ましくは１０分以上、２０分以上、３０分以上、４０分以上、５０分以上、５５分以上であり、さらに好ましくは、ポリアミド媒体の種類、形態、適用する抗体の種類に応じて、順次１時間以上、２時間以上、３時間以上、５時間以上、１０時間以上、１５時間以上、２０時間以上、４０時間以上、７０時間以上を適宜選択できる。
　また、上限として、ポリアミド媒体の強度の観点から、７０時間以下、４０時間以下、２０時間以下、１５時間以下、１０時間以下、５時間以下、３時間以下、２時間以下、１時間以下、３０分以下、２０分以下、１０分以下が適宜選択できる。

　処理方法として酸性水溶液への浸漬を行う場合の浸漬温度は、原料である処理前のポリアミド媒体の表面のアミド結合の分解進行速度の観点から、下限として４℃以上が好ましく、より好ましくは１０℃以上、１５℃以上であり、さらに好ましくは２０℃以上である。
　また、上限として、ポリアミド媒体の強度の観点から、１００℃以下、８０℃以下、５０℃以下が好ましく、より好ましくは４０℃以下、さらに好ましくは３０℃以下である。

　処理方法として酸性水溶液の通液を行う場合の通液時間は、原料である所定の処理前のポリアミド媒体の表面のアミド結合の分解の観点から、下限として５分以上が好ましく、より好ましくは１０分以上、２０分以上、３０分以上、４０分以上、５０分以上、５５分以上であり、さらに好ましくは、ポリアミド媒体の種類、形態、適用する抗体の種類に応じて、順次１時間以上、２時間以上、３時間以上、５時間以上、１０時間以上、１５時間以上、２０時間以上、４０時間以上、７０時間以上等を適宜選択できる。
　また、上限としては、ポリアミド媒体の種類、形態、適用する抗体の種類に応じて、７０時間以下、４０時間以下、２０時間以下、１５時間以下、１０時間以下、５時間以下、３時間以下、２時間以下、１時間以下、３０分以下、２０分以下、１０分以下等が適宜選択できる。

　処理方法として酸性水溶液の通液を行う場合の通液温度は、原料である所定の処理前のポリアミド媒体の表面のアミド結合の分解進行速度の観点から、下限として４℃以上が好ましく、より好ましくは１０℃以上、１５℃以上であり、さらに好ましくは２０℃以上である。
　また、上限としては、ポリアミド媒体の強度の観点から、１００℃以下、８０℃以下、５０℃以下が好ましく、より好ましくは４０℃以下、さらに好ましくは３０℃以下である。

　ポリアミド媒体をアルカリ性水溶液により処理する場合、アルカリ性水溶液のｐＨは、ポリアミド媒体表面のアミド結合の分解効率の観点から、下限として、ｐＨ１０．０以上が好ましく、より好ましくは１１．０以上、さらに好ましくは１２．０以上、さらにより好ましくは１２．５以上、よりさらに好ましくは１３．０以上、特に好ましくは１３．５以上である。
　また、上限として、ポリアミド媒体の強度の観点から、好ましくは１４．０以下であり、より好ましくは１３．５以下である。
　アルカリ性水溶液としては、例えば、水酸化ナトリウム水溶液や水酸化カリウム水溶液、水酸化リチウム水溶液等が挙げられ、入手コストの観点から、水酸化ナトリウム水溶液、又は水酸化カリウム水溶液が好ましい。
　ポリアミド媒体処理用のアルカリ性水溶液中には、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、水酸化リチウム以外の化合物が含まれていてもよい。

　処理方法として、ポリアミド媒体をアルカリ性水溶液へ浸漬する場合の浸漬時間は、原料である所定の処理前のポリアミド媒体の表面のアミド結合の加水分解を十分に起こす観点から、下限として５分以上が好ましく、より好ましくは１０分以上、２０分以上、３０分以上であり、さらに好ましくは、４０分以上、５０分以上、５５分以上であり、ポリアミド媒体の種類、形態、適用するタンパク質の種類に応じて、順次１時間以上、２時間以上、３時間以上、５時間以上、１０時間以上、１５時間以上、２０時間以上、４０時間以上、７０時間以上等を適宜選択できる。
　また、上限として、ポリアミド媒体の強度の観点から、７０時間以下、４０時間以下、２０時間以下、１５時間以下、１０時間以下、５時間以下、３時間以下、２時間以下、１時間以下、３０分以下、２０分以下、１０分以下等を適宜選択できる。

　処理方法として、ポリアミド媒体をアルカリ性水溶液へ浸漬する場合の浸漬温度は、原料である所定の処理前のポリアミド媒体の表面のアミド結合の分解進行速度の観点から、下限として４℃以上が好ましく、より好ましくは１０℃以上、１５℃以上、さらに好ましくは２０℃以上である。また、上限として、ポリアミド媒体の強度の観点から、１００℃以下、８０℃以下、５０℃以下、より好ましくは４０℃以下、さらに好ましくは３０℃以下が例示される。

　処理方法として、ポリアミド媒体に対してアルカリ性水溶液の通液を行う場合の通液時間は、原料である所定の処理前のポリアミド媒体の表面のアミド結合の分解の観点から、下限として５分以上が好ましく、より好ましくは１０分以上、２０分以上、３０分以上、４０分以上、５０分以上、５５分以上であり、さらに好ましくは、ポリアミド媒体の種類、形態、適用する抗体の種類に応じて、順次１時間以上、２時間以上、３時間以上、５時間以上、１０時間以上、１５時間以上、２０時間以上、４０時間以上、７０時間以上を適宜選択できる。
　また、上限として、ポリアミド媒体の強度の観点から、７０時間以下、４０時間以下、２０時間以下、１５時間以下、１０時間以下、５時間以下、３時間以下、２時間以下、１時間以下、３０分以下、２０分以下、１０分以下等が適宜選択できる。

　処理方法として、ポリアミド媒体に対してアルカリ性水溶液への通液を行う場合の通液温度は、原料である所定の処理前のポリアミド媒体の表面のアミド結合の分解進行速度の観点から、下限として４℃以上が好ましく、より好ましくは１０℃以上、１５℃以上、さらに好ましくは２０℃以上である。また、上限として、ポリアミド媒体の強度の観点から、１００℃以下、８０℃以下、５０℃以下、より好ましくは４０℃以下、さらに好ましくは３０℃以下である。

　本実施形態のタンパク質含有溶液を精製する方法においては、アルカリ処理前のポリアミド媒体を、ｐＨ１０以上のアルカリ性水溶液で４℃以上１００℃以下、５分以上７０時間以下の条件で処理する工程と、前記ポリアミド媒体を洗浄する工程と、前記洗浄後のポリアミド媒体に、タンパク質含有溶液を接触させる工程とを有することが好ましい。
　また、アルカリ処理前のポリアミド媒体を、ｐＨ１３以上のアルカリ性水溶液で１０℃以上３０℃以下、０．５時間以上４０時間以下の条件で処理する工程と、前記ポリアミド媒体を洗浄する工程と、前記ポリアミド媒体にタンパク質含有溶液を接触させる工程と、を、有することがさらに好ましい。
　これにより、原料である所定の処理前のポリアミド媒体の表面のアミド結合の加水分解を、高い効率で十分な速度で起こすことができ、かかる処理後のポリアミド媒体を用いてタンパク質含有溶液を精製することにより、目的タンパク質のポリアミド媒体への吸着量を低減でき、目的タンパク質を高い回収率で回収することができる。

＜抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法の処理条件＞
　本実施形態のポリアミド媒体の製造方法が、特に、抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法である場合においては、原料となる所定の処理前のポリアミド媒体を、ｐＨ５以下の酸性水溶液に５分以上又はｐＨ１０以上のアルカリ性水溶液に１０分以上浸漬する。
　本実施形態のポリアミド媒体の製造方法において、原料であるポリアミドに生じる変化は特に限定されないが、加水分解、官能基の導入等が挙げられる。前記導入される官能基としては、例えば、ヒドロキシ基、カルボキシ基、アミノ基、スルホ基、アルデヒド基、カルボニル基、ニトロ基が挙げられる。
　酸性水溶液により処理する場合、酸性水溶液のｐＨは、上限としては、原料である所定の処理前のポリアミド媒体の表面のアミド結合の分解進行速度の観点から５以下であることが好ましく、４以下、３以下、２以下、１．５以下がより好ましい。また、下限としては、ポリアミド媒体の強度の観点から、１．０以上であることが好ましい。

　酸性水溶液としては、例えば、塩酸、硫酸、硝酸等の無機酸、トリフルオロ酢酸等の有機酸の水溶液が挙げられる。酸性水溶液中には、前記無機酸又は有機酸以外の化合物が含まれていてもよい。

　処理方法として酸性水溶液への浸漬を行う場合の浸漬時間は、原料である所定の処理前のポリアミド媒体の表面のアミド結合の分解の観点から、下限として５分以上が好ましく、より好ましくは１０分以上、２０分以上、３０分以上、４０分以上、５０分以上、５５分以上であり、さらに好ましくは、ポリアミド媒体の種類、形態、適用する抗体の種類に応じて、順次１時間以上、２時間以上、３時間以上、５時間以上、１０時間以上、１５時間以上、２０時間以上、４０時間以上、７０時間以上等を適宜選択できる。
　また、上限として、ポリアミド媒体の強度の観点から、７０時間以下、４０時間以下、２０時間以下、１５時間以下、１０時間以下、５時間以下、３時間以下、２時間以下、１時間以下、３０分以下、２０分以下、又は１０分以下等を適宜選択できる。

　処理方法として酸性水溶液への浸漬を行う場合の浸漬温度は、原料である所定の処理前のポリアミド媒体の表面のアミド結合の分解進行速度の観点から、下限として４℃以上が好ましく、より好ましくは１０℃以上、１５℃以上であり、さらに好ましくは２０℃以上である。
　また、上限として、ポリアミド媒体の強度の観点から、１００℃以下、８０℃以下、５０℃以下が好ましく、より好ましくは４０℃以下であり、さらに好ましくは３０℃以下である。

　処理方法として酸性水溶液の通液を行う場合の通液時間は、原料である所定の処理前のポリアミド媒体の表面のアミド結合の分解の観点から、下限として５分以上が好ましく、より好ましくは１０分以上、２０分以上、３０分以上、４０分以上、５０分以上、５５分以上であり、さらに好ましくは、ポリアミド媒体の種類、形態、適用する抗体の種類に応じて、順次１時間以上、２時間以上、３時間以上、５時間以上、１０時間以上、１５時間以上、２０時間以上、４０時間以上、７０時間以上を適宜選択できる。
　また、上限としては、ポリアミド媒体の種類、形態、適用する抗体の種類に応じて、７０時間以下、４０時間以下、２０時間以下、１５時間以下、１０時間以下、５時間以下、３時間以下、２時間以下、１時間以下、３０分以下、２０分以下、１０分以下を適宜選択できる。

　ポリアミド媒体をアルカリ性水溶液により処理する場合、アルカリ性水溶液のｐＨは、ポリアミド媒体表面のアミド結合の分解効率の観点から、下限としてｐＨ１０．０以上が好ましく、より好ましくは１１．０以上、さらに好ましくは１２．０以上、さらにより好ましくは１２．５以上、よりさらに好ましくは１３．０以上、特に好ましくは１３．５以上である。
　また、上限としては、ポリアミド媒体の強度の観点から、１４以下が好ましく、１３．５以下がより好ましい。
　アルカリ性水溶液としては、例えば、水酸化ナトリウム水溶液、水酸化カリウム水溶液、水酸化リチウム水溶液が好ましいものとして挙げられる。
　アルカリ性水溶液中には、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、水酸化リチウム以外の化合物が含まれていてもよい。

　処理方法として、ポリアミド媒体をアルカリ性水溶液へ浸漬する場合の浸漬時間は、原料であるポリアミド媒体表面のアミド結合の加水分解を十分に起こす観点から、下限として５分以上が好ましく、より好ましくは１０分以上、さらに好ましくは２０分以上、さらにより好ましくは３０分以上、４０分以上、５０分以上、５５分以上であり、よりさらに好ましくは、ポリアミド媒体の種類、形態、適用する抗体の種類に応じて、順次１時間以上、２時間以上、３時間以上、５時間以上、１０時間以上、１５時間以上、２０時間以上、４０時間以上等を適宜選択できる。
　また、上限としては、ポリアミド媒体の強度の観点から、４０時間以下、２０時間以下、１５時間以下、１０時間以下、５時間以下、３時間以下、２時間以下、１時間以下、３０分以下、２０分以下、１０分以下等を適宜選択できる。

　処理方法として、ポリアミド媒体をアルカリ性水溶液へ浸漬する場合の浸漬温度は、原料である所定の処理前のポリアミド媒体の表面のアミド結合の分解進行速度の観点から、下限として４℃以上が好ましく、より好ましくは１０℃以上であり、さらに好ましくは１５℃以上であり、さらにより好ましくは２０℃以上である。
　また、上限としては、ポリアミド媒体の強度の観点から、１００℃以下、８０℃以下、５０℃以下が好ましく、より好ましくは４０℃以下、さらに好ましくは３０℃以下である。

　処理方法として、ポリアミド媒体に対してアルカリ性水溶液の通液を行う場合の通液時間は、原料である所定の処理前のポリアミド媒体の表面のアミド結合の分解の観点から、下限として５分以上が好ましく、より好ましくは１０分以上、２０分以上、３０分以上、４０分以上、５０分以上、５５分以上であり、さらに好ましくは、ポリアミド媒体の種類、形態、適用する抗体の種類に応じて、順次１時間以上、２時間以上、３時間以上、５時間以上、１０時間以上、１５時間以上、２０時間以上、４０時間以上、７０時間以上等を適宜選択できる。
　また、上限として、ポリアミド媒体の強度の観点から、７０時間以下、４０時間以下、２０時間以下、１５時間以下、１０時間以下、５時間以下、３時間以下、２時間以下、１時間以下、３０分以下、２０分以下、１０分以下等を適宜選択できる。

　処理方法として、ポリアミド媒体に対してアルカリ性水溶液への通液を行う場合の通液温度は、原料である所定の処理前のポリアミド媒体の表面のアミド結合の分解進行速度の観点から、下限として４℃以上が好ましく、より好ましくは１０℃以上、さらに好ましくは１５℃以上、さらにより好ましくは２０℃以上である。
　また、上限として、ポリアミド媒体の強度の観点から、１００℃以下、８０℃以下、５０℃以下が好ましく、より好ましくは４０℃以下、さらに好ましくは３０℃以下である。

　本実施形態の製造方法により得られるポリアミド媒体は、タンパク質含有溶液精製用、抗体凝集体除去用のいずれにおいても、夾雑物を吸着により除去する場合、表面積の大きさの観点から、多孔質体であることが好ましい。また、夾雑物をサイズ排除により除去する場合も、多孔質体であることが好ましい。
　多孔質体の形態としては、例えば、膜状、粒子状、モノリス、キャピラリー、焼結体等が挙げられ、具体的には、微多孔中空糸膜、微多孔平膜、不織布、織布が挙げられる。多孔質体は、膜状であることにより、タンパク質含有溶液の通液により、高速でタンパク質含有溶液を精製できる効果が得られるため好ましい。
　ポリアミド媒体が多孔質膜である場合、夾雑物を吸着もしくはサイズ排除により除去する観点から、多孔質膜の孔径は小さいほうが好ましい。ポリアミド多孔質膜の平均孔径は、上限として１０００ｎｍ以下が好ましく、より好ましくは５００ｎｍ以下、さらに好ましくは４００ｎｍ以下、さらにより好ましくは３００ｎｍ以下である。また、下限としては、ろ過速度の観点から、１ｎｍ以上、５ｎｍ以上、１０ｎｍ以上、２０ｎｍ以上、３０ｎｍ以上が好ましい。

〔タンパク質含有溶液を精製する方法〕
　本実施形態のタンパク質含有溶液を精製する方法は、酸性又はアルカリ性水溶液で処理されたポリアミド媒体に、タンパク質含有溶液を接触させる工程を有する。
　具体的には、上述した本実施形態のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法により得られたタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体に、タンパク質含有溶液を接触させる工程を有する。
　前記ポリアミド媒体にタンパク質含有溶液を接触させる工程とは、例えば、後述するようにタンパク質含有溶液をポリアミド媒体に通過させる工程、タンパク質溶液中にポリアミド媒体を浸漬する工程等が含まれる。また、タンパク質含有溶液をポリアミド媒体に通過させる工程として、ポリアミド媒体によりタンパク質含有溶液を濾過する工程が例示される。
　これにより、純度の向上したタンパク質含有溶液が得られる。
　前記ポリアミド媒体にタンパク質含有溶液を接触させることで除去できる夾雑物として、タンパク質凝集体、抗体凝集体、バイオ医薬品製造工程における細胞宿主由来のタンパク質（ＨＣＰ；Ｈｏｓｔ　Ｃｅｌｌ　Ｐｒｏｔｅｉｎｓ）、ウイルス粒子等が挙げられる。ウイルス粒子はエンベロープを有していてもよい。

〔抗体溶液を回収する方法、抗体溶液から抗体凝集体を除去する方法〕
　また、本実施形態の抗体溶液を回収する方法及び抗体溶液から抗体凝集体を除去する方法は、酸性又はアルカリ性水溶液で処理されたポリアミド媒体に、抗体凝集体を含む抗体溶液を接触させる工程を有する。
　具体的には、上述した本実施形態の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法により得られた抗体凝集体除去用のポリアミド媒体と、抗体凝集体を含む抗体溶液とを接触させる工程を有する。
　前記ポリアミド媒体と抗体凝集体を含む抗体溶液とを接触させる工程とは、例えば、後述するように抗体溶液をポリアミド媒体に通過させる工程、抗体溶液中にポリアミド媒体を浸漬する工程等が含まれる。また、タンパク質含有溶液をポリアミド媒体に通過させる工程として、ポリアミド媒体によりタンパク質含有溶液を濾過する工程が例示される。
　これにより、抗体溶液から抗体凝集体を効果的に除去でき、純度が向上した抗体溶液を得ることができる。

　本実施形態において、タンパク質含有溶液が抗体溶液であってもよいし、その抗体溶液が抗体凝集体を含んでいてもよい。その場合、上述したように、抗体溶液から抗体凝集体を除去し、抗体単量体の純度が向上した抗体溶液を高い回収率で得ることができる。

　本実施形態において用いるタンパク質含有溶液が抗体溶液である場合、当該抗体溶液は、目的抗体を溶解している溶液を意味する。
　抗体溶液に用いる溶媒は、純水であってもよいし、緩衝液であってもよい。
　溶液として使用できる緩衝液の種類は、以下に限定されないが、例えば、ｔｒｉｓ塩、酢酸塩、Ｔｗｅｅｎ、ソルビトール、マルトース、グリシン、アルギニン、リジン、ヒスチジン、スルホン酸塩、リン酸塩、クエン酸、又は塩化ナトリウムが溶解した緩衝液が挙げられる。

　本実施形態において用いる抗体溶液の濃度としては、抗体が溶液に溶解されていれば特に限定されない。
　抗体溶液の濃度の下限値としては、０．０１ｍｇ／ｍＬ以上が例示され、他の態様としては０．０５ｍｇ／ｍＬ以上が例示され、また他の態様として０．１ｍｇ／ｍＬ以上が例示され、さらに他の態様としては０．５ｍｇ／ｍＬ以上が例示され、さらにまた他の態様としては１．０ｍｇ／ｍＬ以上が例示され、またさらに他の態様としては５．０ｍｇ／ｍＬ以上が例示される。
　抗体溶液の濃度の上限値としては、１００ｍｇ／ｍＬ以下が例示され、他の態様としては９０ｍｇ／ｍＬ以下が例示され、また他の態様としては８０ｍｇ／ｍＬ以下が例示され、さらに他の態様としては７０ｍｇ／ｍＬ以下が例示され、さらにまた他の態様としては６０ｍｇ／ｍＬ以下が例示され、またさらに態様としては５０ｍｇ／ｍＬ以下が例示され、さらに他の態様としては４０ｍｇ／ｍＬ以下が例示され、さらにまた他の態様としては３０ｍｇ／ｍＬ以下が例示され、またさらに他の態様としては２５ｍｇ／ｍＬ以下が例示され、さらに他の態様としては２０ｍｇ／ｍＬ以下が例示される。

　前記緩衝液の濃度は、上述した所定の溶解物が溶解していれば特に限定されない。
　緩衝液の濃度の下限値としては、緩衝液の種類に応じて、０ｍｍｏｌ／Ｌ以上が例示され、他の態様としては０．５ｍｍｏｌ／Ｌ以上が例示され、また他の態様としては１．０ｍｍｏｌ／Ｌ以上が例示され、さらに他の態様としては５ｍｍｏｌ／Ｌ以上が例示され、さらにまた他の態様としては１０ｍｍｏｌ／Ｌ以上が例示され、またさらに他の態様としては１５ｍｍｏｌ／Ｌ以上が例示され、さらに他の態様としては２５ｍｍｏｌ／Ｌ以上が例示される。

　前記緩衝液のｐＨは、特に限定されないが、緩衝液の種類に応じて、ｐＨの下限値としては４．０以上が例示され、他の態様としては４．５以上が例示され、また他の態様としては５．０以上が例示され、さらに他の態様としては５．５以上が例示され、さらにまた他の態様としては６．０以上が例示される。ｐＨの上限値としては、１０．０以下が例示され、他の態様としては９．０以下が例示され、また他の態様としては８．０以下が例示され、さらに他の態様としては８．５以下が例示され、さらにまた他の態様としては８．０以下が例示され、またさらに他の態様としては７．５以下が例示され、さらに他の態様としては７．０以下が例示される。

　前記緩衝液の電気伝導度は、特に限定されないが、電気伝導度の下限値としては、緩衝液の種類に応じて、０ｍＳ／ｃｍ以上が例示され、他の態様としては１ｍＳ／ｃｍ以上が例示され、また他の態様としては２ｍＳ／ｃｍ以上が例示され、さらに他の態様としては３ｍＳ／ｃｍ以上が例示され、さらにまた他の態様としては４ｍＳ／ｃｍ以上が例示され、またさらに他の態様としては５ｍＳ／ｃｍ以上が例示される。
　電気伝導度の上限値としては、１００ｍＳ／ｃｍ以下が例示され、他の態様としては９０ｍＳ／ｃｍ以下が例示され、また他の態様としては８０ｍＳ／ｃｍ以下が例示され、さらに他の態様としては７０ｍＳ／ｃｍ以下が例示され、さらにまた他の態様としては６０ｍＳ／ｃｍ以下が例示され、またさらに他の態様としては５０ｍＳ／ｃｍ以下が例示され、さらに他の態様としては４０ｍＳ／ｃｍ以下が例示される。

　本実施形態のタンパク質含有溶液を精製する方法において、当該タンパク質含有溶液として抗体溶液を適用し、抗体溶液から抗体凝集体を除去し、抗体単量体の純度が向上した抗体溶液を回収する際には、上述したようにポリアミド媒体と、抗体凝集体を含む抗体溶液を接触させる。
　ポリアミド媒体と抗体溶液との接触方法は、抗体溶液をポリアミド媒体と接触させることができれば特に限定されないが、上述したように、抗体溶液をポリアミド媒体に通過させる方法、抗体溶液中にポリアミド媒体を浸漬する方法等が挙げられる。また、タンパク質含有溶液をポリアミド媒体に通過させる方法として、ポリアミド媒体によりタンパク質含有溶液を濾過する方法が例示される。

　抗体溶液をポリアミド媒体に通過させる方法としては、シリンジ又はポンプ等により抗体溶液をポリアミド媒体に通過させる方法が挙げられる。抗体溶液をポリアミド媒体に通過させる方法としては、ポリアミド媒体の所定の部分に向けて流した抗体溶液がポリアミド媒体を通過し、ポリアミド媒体の他の部分から抗体溶液が回収できればよい。また、抗体溶液をポリアミド媒体に通過させる前後において、抗体溶液とは別に緩衝液をポリアミド媒体に通過させてもよい。タンパク質含有溶液をポリアミド媒体に通過させる方法としては、ポリアミド媒体によりタンパク質含有溶液を濾過する方法が好ましい例として挙げられる。
　抗体溶液の回収の際、ポリアミド媒体に通過させた抗体溶液を全て回収してもよく、一定体積ごとにフラクションを取得してもよい。
　上述のようにして精製された抗体を含有するフラクションを収集して一つにすることにより、精製された抗体を回収することができる。
　また、抗体溶液をポリアミド媒体に通過させる流速としては特に限定されないが、抗体溶液の種類に応じて、下限値としてポリアミド媒体１ｍＬに対して０．１ｍＬ／ｍｉｎ以上が例示され、他の態様としては０．５ｍＬ／ｍｉｎ以上が例示され、また他の態様としては１．０ｍＬ／ｍｉｎ以上が例示され、さらに他の態様としては５ｍＬ／ｍｉｎ以上が例示される。

〔タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体、抗体凝集体除去用のポリアミド媒体〕
　本実施形態のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体、及び本実施形態の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体は、ポリアミド媒体の表面のポリマーのアミノ基及びカルボキシル基の和（合計数）が、ポリアミド媒体の内部におけるポリマーのアミノ基及びカルボキシル基の和（合計数）よりも、１．０１倍以上多いことが好ましい。
　これにより、タンパク質凝集体、例えば抗体凝集体の除去選択性が高く、かつ、強度特性にも優れたポリアミド媒体が得られる。
　上記のようなポリアミド媒体は、上述した本実施形態のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法及び本実施形態の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法により得られるが、上記アミノ基及びカルボキシル基の和の条件を満たせば、ポリアミドの製造工程は任意に選択でき、上述した本実施形態の製造方法に限定されるものではない。
　なお、表面とは、ポリアミド媒体が多孔質体である場合には、孔の表面も含む。
　また、ポリアミド媒体の表面のポリマーとは、用いる酸性又はアルカリ性水溶液の種類、濃度、浸漬時間、抗体の種類、ポリアミド媒体の種類、形態等に適宜応じて、表面から１０ｎｍ、又は５ｎｍ、３ｎｍ、あるいは２ｎｍ、１ｎｍの媒体中に存在するポリマーのことを意味する。
　ポリアミド媒体内部のポリマーとは、上記により定義されるポリアミド媒体の表面以外のポリマーのことを意味する。

　本実施形態のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体、及び抗体凝集体除去用のポリアミド媒体は、ポリアミドであるため、ポリマー末端にアミノ基及びカルボキシ基の官能基を有する。
　ポリアミド媒体の表面におけるアミノ基とカルボキシル基の官能基の和と、ポリアミド媒体内部における官能基の和が異なる傾向にあり、タンパク質凝集体、例えば抗体凝集体の除去選択性とポリアミド媒体の強度の両立の観点から、表面のアミノ基及びカルボキシル基の和が、内部におけるアミノ基及びカルボキシル基の和の１．０１倍以上であることが好ましく、より好ましくは１．０２倍以上、さらに好ましくは１．０３倍以上、さらにより好ましくは１．０４倍以上、１．０５倍以上、１．０６倍以上、１．０７倍以上、１．０８倍以上、１．０９倍以上、１．１倍以上、１．１５倍以上、１．２倍以上、１．３倍以上、１．４倍以上、１．５倍以上、２．０倍以上、２．５倍以上、３．０倍以上、３．５倍以上、４．０倍以上、４．５倍以上、５．０倍以上、６．０倍以上、７．０倍以上、８．０倍以上、９．０倍以上、１０．０倍以上、１５倍以上、２０倍以上、３０倍以上、４０倍以上、５０倍以上、１００倍以上である。
　アミノ基とカルボキシル基の官能基の和は、アミノ基とカルボキシル基をそれぞれ測定し、その合計数を算出すればよい。また、ポリアミド媒体におけるアミド結合の加水分解により、アミノ基とカルボキシル基が一対一で生ずるメカニズムに照らし、アミノ基又はカルボキシル基のいずれか一方の量を測定し、当該量を２倍とすることで和とすることができる。
　本実施形態のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体及び抗体除去用のポリアミド媒体は、酸性又はアルカリ性水溶液のｐＨや、アルカリ性水溶液への浸漬時間の調整、浸漬温度等を適宜設定することにより、表面のアミノ基及びカルボキシル基の和が、内部のアミノ基及びカルボキシル基の和よりも、上記に示す倍率で多いものに制御することができる。

　ポリアミド媒体の所定の官能基の割合は、質量あたりの官能基密度により求めることができる。
　ポリアミド媒体全体の官能基量は、例えば、ＮＭＲ等で定量することができる。
　また、ポリアミド媒体の表面の官能基量は、例えば、ＸＰＳ（Ｘ線光電子分光分析）のような公知の手法で分析することができる。

　本実施形態のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体及び抗体凝集体除去用のポリアミド媒体は、ポリアミド媒体の表面のポリマーの数平均分子量と、ポリアミド媒体内部のポリマーの数平均分子量が異なっていてもよく、内部の方が大きいことが好ましい。
　なお、表面とは、ポリアミド媒体が多孔質状である場合には、孔の表面も含む。
　また、ポリアミド媒体の表面のポリマーとは、用いる酸性又はアルカリ性水溶液の種類、濃度、浸漬時間、抗体の種類、ポリアミド媒体の種類、形態等に適宜応じて、表面から１０ｎｍ、又は５ｎｍ、３ｎｍ、あるいは２ｎｍ、１ｎｍの媒体中に存在するポリマーのことを意味する。
　ポリアミド媒体内部のポリマーとは、ポリアミド媒体の表面以外のポリマーのことを意味する。
　その際の数平均分子量の比率は、ポリアミド媒体の表面のポリマーの数平均分子量をＭｎ（Ｓ）、内部のポリマーの数平均分子量をＭｎ（Ｉ）とした時、Ｍｎ（Ｓ）／Ｍｎ（Ｉ）と表すことができ、タンパク質凝集体、例えば抗体凝集体の選択性と強度の両立の観点から、Ｍｎ（Ｓ）／Ｍｎ（Ｉ）の値が０．９９以下であることが好ましい。すなわち、Ｍｎ（Ｓ）／Ｍｎ（Ｉ）≦０．９９であることが好ましい。
　より好ましくは０．９８以下、さらに好ましくは０．９７以下、さらにより好ましくは０．９６以下、よりさらに好ましくは０．９５以下、０．９４以下、０．９３以下、０．９２以下、０．９１以下、０．９０以下、０．８８以下、０．８６以下、０．８４以下、０．８２以下、０．８０以下、０．７５以下、０．７０以下、０．６０以下、０．５０以下である。
　ポリアミド媒体の数平均分子量は、公知の方法のゲル浸透クロマトグラフィーなどにより求めることができ、この場合は標準物質の換算分子量となる。
　上記のような、表面のポリマーと内部のポリマーの数平均分子量の比（Ｍｎ（Ｓ）／Ｍｎ（Ｉ））が０．９９以下である本実施形態のポリアミド媒体は、上述した本実施形態のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法及び本実施形態の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法により得られる。具体的には、ポリアミド媒体を酸性又はアルカリ性水溶液で処理することによって、表面ポリマーの一部の結合鎖が切れることにより、内部の方が数平均分子量が大きくなる傾向にある。
　なお、上記数平均分子量の比の条件を満たせば、ポリアミドの製造工程は任意に選択でき、上述した本実施形態の製造方法に限定されるものではない。具体的には、本実施形態のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体及び抗体凝集体除去用のポリアミド媒体は、酸性又はアルカリ性水溶液のｐＨや、アルカリ性水溶液への浸漬時間の調整、浸漬温度等を適宜設定することにより、表面のポリマーの数平均分子量と、内部のポリマーの数平均分子量との比を上記に示す数値に制御することができる。

　以下、具体的な実施例及び比較例を用いて本実施形態についてさらに詳しく説明するが、本実施形態は、以下の実施例及び比較例により何ら限定されるものではない。

〔実施例１〕
（１）　ポリアミド媒体としてのポリアミド膜のアルカリ性水溶液浸漬
　直径２．５ｃｍの円形であり、膜厚１６０μｍ、平均孔径０．２μｍの、多孔質ポリアミド媒体としてのポリアミド膜（Ｗｈａｔｍａｎ（登録商標）：７４０２－００２、ジーイーヘルスケア社製、材質：ポリアミド６６）を、１．０ｍｏｌ／Ｌの水酸化ナトリウム溶液（ｐＨ１４）に室温で２４時間浸漬した。
　次に、純水で５回洗浄し、水酸化ナトリウムを完全に取り除いた。
　得られたポリアミド膜を、ステンレスホルダーＫＳ－２５（Ａｄｖａｎｔｅｃｈ社製、有効膜面積３．８ｃｍ²）に２枚セットし、ポリアミド膜１とした。
　なお、ポリアミド膜の膜厚はデジマチックインジケータＩＤ－Ｃ１１２ＸＢＳ（Ｍｉｔｕｔｏｙｏ社製）で測定した。

（２）　タンパク質含有溶液としての抗体含有溶液の調製
　ＣＨＯ細胞ＣＲＬ１２４４５から発現させたモノクローナル抗体（以下、ＣＲＬ１２４４５抗体と略すことがある）を０．７４ｇ／Ｌ含む培養液上澄みを用意した。
　ＣＲＬ１２４４５から発現させたモノクローナル抗体生産細胞を含む培養液を、ろ過膜（旭化成メディカル社製、商品名　ＢｉｏＯｐｔｉｍａｌ（登録商標）　ＭＦ－ＳＬ）を用いてろ過し、不純物と抗体を含む抗体含有溶液（培養上澄）を取得した。

（３）　アフィニティーカラムによる抗体含有溶液の精製
　リン酸緩衝液（２０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸ナトリウム＋１５０ｍｍｏｌ／ＬＮａＣｌ（ｐＨ８．０））で平衡化したプロテインＡカラム（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス製、ＭａｂＳｅｌｅｃｔ　Ｓｕｒｅを充填したカラム）に、前記（２）で取得した抗体含有溶液（培養上澄）を添加し、プロテインＡに抗体を吸着させた。
　次に、カラムにリン酸緩衝液（２０ｍｍｏｌ／Ｌのリン酸ナトリウム＋１５０ｍｍｏｌ／Ｌ　ＮａＣｌ（ｐＨ８．０））を通液して洗浄した後、カラムに溶出緩衝液（１００ｍｍｏｌ／Ｌクエン酸ナトリウム（ｐＨ３．６））を通液して、プロテインＡカラムから抗体を溶出させて、不純物がある程度低減された抗体含有溶液を回収した。
　なお、本抗体タンパク質を、下記の（８）に記載の方法で測定したところ、単量体としての抗体タンパク質のピーク（下記（８）に記載する、図２中の（３）のピーク）のみ確認され、図２中に示す、３量体以上の凝集体（１）、２量体である凝集体（２）のピークは確認できなかった。
　また、緩衝液のｐＨの測定には、ｐＨメータであるＨＭ－３０Ｒ（東亜ディーケーケー社製）を使用した。下記の緩衝液のｐＨも同様に測定を行った。

（４）　多量の抗体凝集体を含む抗体含有溶液の調製
　前記（（３）アフィニティーカラムによる抗体の精製）で得られた、不純物がある程度低減された抗体含有溶液の一部に塩酸を加え、ｐＨ２．５に調整し、一時間維持した。
　その後、水酸化ナトリウム水溶液を用いて中和し、多量の抗体凝集体を含む抗体含有溶液を調製した。

（５）　抗体凝集体を含む抗体含有溶液の調製
　前記（（３）アフィニティーカラムによる抗体の精製）で得られた、不純物がある程度低減された抗体含有溶液を、任意の量の塩化ナトリウムを含む１５ｍｍｏｌ／Ｌ　ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．０、５ｍＳ／ｃｍ）にバッファー交換した溶液と、前記（（４）多量の抗体凝集体を含む抗体含有溶液の調製）で得られた多量の凝集体を含む抗体含有溶液を任意の量の塩化ナトリウムを含む１５ｍｍｏｌ／Ｌ　ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．０、５ｍＳ／ｃｍ）にバッファー交換した溶液とを、任意の割合で混合し、抗体凝集体と抗体単量体を含む抗体含有溶液（以降、「ＳＭ」と略すことがある。）を調製した。
　前記緩衝液の電気伝導度は電気伝導率計ＣＭ－４０Ｓ（東亜ディーケーケー社製）を使用し、測定した。

（６）　ポリアミド膜への抗体含有溶液の通液
　前記（（１）ポリアミド膜のアルカリ性水溶液浸漬）で得たポリアミド膜１に、前記（（５）凝集体を含む抗体含有溶液の調製）で作製した抗体凝集体と抗体単量体を含む抗体含有溶液（ＳＭ）を通過させた。
　抗体含有溶液の通過には、分離・精製装置であるＡＫＴＡ　ｐｕｒｉｆｉｅｒ（ＧＥヘルスケア社製）を用い、抗体含有溶液を通過させ、抗体含有溶液を回収した。
　加えた量は１３ｍＬ（４．８ｍｇ／ｍＬの濃度、抗体の総量６２．７ｍｇ）、流速は３．９ｍＬ／分であった。

（７）　凝集体除去性能の評価
　凝集体除去性能は、抗体凝集体除去量、及び抗体単量体の回収量により評価した。

（８）　凝集体除去性能の具体的な評価方法
　前記（（６）ポリアミド膜への抗体含有溶液の通液）で回収した抗体含有溶液、及び前記（（５）凝集体を含む抗体含有溶液の調製）で作製した抗体凝集体と抗体単量体を含む抗体含有溶液（ＳＭ）を、下記の条件により、サイズ排除クロマトグラフィー（ＳＥＣ：Ｓｉｚｅ　Ｅｘｃｌｕｓｉｏｎ　Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）装置を用いて測定した。
　測定結果を下記〔表１〕に示し、図１に抗体凝集体と抗体単量体とを含む抗体含有溶液のクロマトチャートを示す。図２は、図１のクロマトチャートの拡大図である。
　カラム：ＡＣＱＵＩＴＹ　ＵＰＬＣ　ＢＥＨ２００　ＳＥＣ１．７μｍ（Ｗａｔｅｒｓ社製）カラム温度：３０℃　システム：ＡＣＱＵＩＴＹ　ＵＰＬＣ　Ｈ　ＣＬＡＳＳ（Ｗａｔｅｒｓ社製）
　移動相：０．１ｍｏｌ／Ｌリン酸水素二ナトリウム＋０．２ｍｏｌ／Ｌ　Ｌ（＋）－アルギニン水溶液（塩酸でｐＨ６．７に調整）
　図１及び図２に示すように、抗体単量体（ピーク（３））、２量体（ピーク（２））、３量体以上（ピーク（１））の凝集体に分かれた。

（９）　抗体単量体回収率の算出
　抗体単量体の回収率は、分光光度計；ＳｐｅｃｔｒａＭａｘ　Ｐｌｕｓ３８４　（モレキュラーデバイスジャパン社製）を用いた抗体濃度及びサイズ排除クロマトグラフィーの結果より算出した。
　具体的には、ポリアミド膜１通過前の抗体含有溶液濃度をＣ０、抗体含有溶液量をＶ０、サイズ排除クロマトグラフィーより求められる抗体単量体割合をＲ０とし、同様にポリアミド膜１通過後の抗体含有溶液の濃度をＣ１、抗体含有溶液量をＶ１、抗体単量体割合をＲ１とし、以下の式（１）により求めた。
　算出結果を下記〔表１〕に示す。
　抗体単量体回収率（％）＝Ｃ１Ｖ１Ｒ１／Ｃ０Ｖ０Ｒ０・・・（式（１））

〔比較例１〕
　ポリアミド膜を水酸化ナトリウム水溶液に浸漬しないこと以外は前記ポリアミド膜１と同じ条件で作製したポリアミド膜２を用いた。
　なお、比較例１においては、水に浸漬した。
　その他の条件は、実施例１と同様に操作を行った。
　ポリアミド膜２通過後のサイズ排除クロマトグラフィーによる分析結果、及び抗体単量体回収率を下記〔表１〕に示す。

　実施例１、及び比較例１の結果を比較すると、ポリアミド膜を水酸化ナトリウム水溶液に浸漬する処理を行ったことにより、抗体凝集体除去量は維持したまま、抗体単量体回収率が向上したことが分かった。

〔実施例２〕
（１）ポリアミド媒体としてのポリアミド膜のアルカリ性水溶液処理
　水酸化ナトリウム溶液への浸漬溶液と浸漬時間を変更し、その他の条件は、前記〔実施例１〕中の、「（１）　ポリアミド媒体としてのポリアミド膜のアルカリ性水溶液浸漬）」と同じ方法でポリアミド膜３～６、及びポリアミド膜８を作製した。
　ポリアミド膜７に関しては、前記〔実施例１〕と同様のポリアミド膜（Ｗｈａｔｍａｎ（登録商標）：７４０２－００２、ジーイーヘルスケア社製、材質：ポリアミド６６）を、前記〔実施例１〕と同様にステンレスホルダーＫＳ－２５（Ａｄｖａｎｔｅｃｈ社製、有効膜面積３．８ｃｍ²）に２枚セットし、続いて、分離・精製装置であるＡＫＴＡ　ｐｕｒｉｆｉｅｒ（ＧＥヘルスケア社製）を用いて、０．５ｍｏｌ／Ｌの水酸化ナトリウム溶液を流速１．１ｍＬ／ｍｉｎ、室温で１時間通液した後、純水を通液し、水酸化ナトリウムを完全に取り除いて作製した。
　作製したポリアミド膜を下記〔表２〕に示す。

（２）　ポリアミド膜への抗体含有溶液の通液
　前記〔実施例１〕の（（２）抗体含有溶液の調製）、及び（（３）アフィニティーカラムによる抗体含有溶液の精製）で得られた溶液を１５ｍｍｏｌ／Ｌ　ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．０、５ｍＳ／ｃｍ）にバッファー交換し、抗体含有溶液を得た。
　前記〔実施例２〕の（（１）ポリアミド媒体としてのポリアミド膜のアルカリ性水溶液処理）で得られたポリアミド膜３～７に、ＡＫＴＡ　ｐｕｒｉｆｉｅｒを用いて、　流速０．６ｍＬ／ｍｉｎで、前記抗体含有溶液を通過させ、抗体含有溶液を回収した。
　なお、前記で得られたポリアミド膜３～７に、抗体含有溶液を通過させる前、１５ｍｍｏｌ／Ｌ　ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．０、５ｍＳ／ｃｍ）を通液し、回収した液を分光光度計；ＮａｎｏＤｒｏｐ　Ｏｎｅ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）で分析したところ、一般的にタンパク質などベンゼン環を持つ化合物が吸収する波長２８０ｎｍの光の吸収は確認されなかった。
　そのため、抗体含有溶液を通過させる前のポリアミド膜からは、波長２８０ｎｍの光を吸収するような化合物の溶出がなく、抗体含有溶液をポリアミド膜に通過させ回収した溶液の光の吸収は、抗体由来であると特定した。

（３）　抗体単量体回収率の評価
　前記〔実施例２〕の（２）で調製した抗体含有溶液と、〔実施例２〕の（２）で、ポリアミド膜に通過させて回収した抗体含有溶液の凝集体割合と抗体濃度を測定した。
　得られた測定値から、調製した抗体含有溶液、及び各ポリアミド膜に吸着した抗体単量体質量、抗体単量体の回収率を算出した。
　具体的には、調製した抗体含有溶液、及び各ポリアミド膜に吸着した抗体単量体質量は、以下の式（２）、（３）により求めた。
　下記（２）、（３）では、ポリアミド膜３～８を通過前の抗体含有溶液濃度をＣ２、抗体含有溶液量をＶ２、サイズ排除クロマトグラフィーより求められる抗体単量体割合をＲ２とし、同様にポリアミド膜３～８通過後の抗体含有溶液の濃度をＣ３、抗体含有溶液量をＶ３、抗体単量体割合をＲ３とした。
　抗体単量体の回収率は、前記〔実施例１〕の（（９）抗体単量体回収率の算出）と同様の方法で算出した。
　算出結果を下記〔表３〕に示す。
　調製抗体含有溶液中の抗体単量体の質量（ｍｇ）＝Ｃ２Ｖ２Ｒ２・・・（式（２））
　ポリアミド膜に吸着した抗体単量体質量（ｍｇ）＝Ｃ２Ｖ２Ｒ２－Ｃ３Ｖ３Ｒ３・・・（式（３））
　抗体含有溶液中の凝集体割合と、抗体濃度の測定方法としては、前者は前記〔実施例１〕の（（８）凝集体除去性能の具体的な評価）と同様の方法で測定し、後者は分光光度計；ＮａｎｏＤｒｏｐ　Ｏｎｅ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）を用いて測定した。

〔比較例２〕
　ポリアミド膜を水酸化ナトリウム水溶液に浸漬しないこと以外は、前記ポリアミド膜３と同様の方法でポリアミド膜αを作製した。
　なお、比較例２においては、水に浸漬した。
　ポリアミド膜αの作製条件を、前記〔表２〕に示す。
　ポリアミド膜αに対して、前記〔実施例２〕と同様の操作を行った。
　抗体単量体回収率を下記〔表３〕に示す。

　実施例２、及び比較例２の結果を比較すると、ポリアミド膜を水酸化ナトリウム水溶液に浸漬することにより、抗体単量体回収率が向上したことが分かった。
　ポリアミド膜３～６、ポリアミド膜８は、いずれにおいても、ポリアミド膜αに比べて抗体単量体回収率が高いことから、本発明のポリアミド媒体の抗体単量体回収率の向上効果は、アルカリ溶液のｐＨ、浸漬時間によらないことが明らかとなった。
　また、ポリアミド膜７においても同様の効果が得られていることから、本発明のポリアミド媒体の抗体単量体回収率の向上効果は、アルカリ溶液の処理方法によらないことが示された。

〔実施例３〕
　抗体含有溶液のｐＨ、電気伝導度、及び緩衝液を変更し、他の条件は、前記〔実施例２〕と同様の実験を、ポリアミド膜３～５、ポリアミド膜８に対して行った。
　抗体含有溶液については、前記〔実施例１〕の（（２）抗体含有溶液の調製）、（（３）アフィニティーカラムによる抗体含有溶液の精製）で得られた抗体含有溶液を１５ｍｍｏｌ／Ｌ　酢酸緩衝液（ｐＨ５．５、１５ｍＳ／ｃｍ）にバッファー交換し、抗体含有溶液を得た。
　抗体単量体回収率の算出結果を、下記〔表４〕に示す。

〔比較例３〕
　前記〔比較例２〕で作製したポリアミド膜αに対し、前記〔実施例３〕と同様の操作を行った。
　抗体単量体回収率の算出結果を、下記〔表４〕に示す。

　実施例３、及び比較例３の結果を比較すると、ポリアミド膜を水酸化ナトリウム水溶液に浸漬することにより、抗体単量体回収率が向上したことが分かった。
　実施例２、３と比較例２、３との結果を対比することにより、抗体含有溶液の液性によらず、ポリアミド膜を水酸化ナトリウム水溶液に浸漬することによる抗体単量体回収量増加の効果が得られることが分かった。

〔実施例４〕
　抗体含有溶液の抗体種を変更し、その他は、前記〔実施例３〕と同様の実験を行った。
　エボロクマブ（アステラス製薬社製）を１５ｍｍｏｌ／Ｌ　酢酸緩衝液（ｐＨ５．５、１５ｍＳ／ｃｍ）にバッファー交換し、抗体含有溶液を得た。
　抗体単量体回収率の算出結果を、下記〔表５〕に示す。

〔比較例４〕
　前記〔比較例２〕で作製したポリアミド膜αに対し、前記〔実施例４〕と同様の操作を行った。
　抗体単量体回収率の算出結果を、下記〔表５〕に示す。

　実施例４、及び比較例４の結果を比較すると、ポリアミド膜を水酸化ナトリウム水溶液に浸漬することにより、抗体単量体回収率が向上したことが分かった。
　実施例３、４と、比較例３、４との結果の比較により、抗体種によらず、ポリアミド膜を水酸化ナトリウム水溶液に浸漬することによる抗体単量体回収量の向上効果が得られることが分かった。

〔実施例５〕
　ポリアミド膜の作製方法を変更し、その他は、前記〔実施例４〕と同様の実験を行った。
　具体的には、浸漬溶液と浸漬時間を変更し、その他は、前記（〔実施例１〕ポリアミド媒体としてのポリアミド膜のアルカリ性水溶液処理）と同様の方法でポリアミド膜９～１１を作製した。
　ポリアミド膜の作製条件を下記〔表６〕に示す。
　また、抗体単量体回収率の算出結果を下記〔表７〕に示す。

〔比較例５〕
　ポリアミド膜を水酸化ナトリウム水溶液に浸漬しないこと以外は、前記〔実施例５〕中のポリアミド膜９～１１と同じ条件で作製したポリアミド膜αを用いた。
　なお、比較例５においては、水に浸漬した。
　ポリアミド膜αに対し、前記〔実施例５〕と同様の操作を行った。ポリアミド膜の作製条件を前記〔表６〕に示す。
　また、抗体単量体回収率を、下記〔表７〕に示す。

　実施例５、及び比較例５の結果を比較すると、ポリアミド膜を水酸化ナトリウム水溶液に浸漬することにより、抗体単量体回収率が向上したことが分かった。
　このことから、本発明は、ポリアミド媒体の処理に用いる溶液が酸性水溶液、アルカリ性水溶液のいずれであっても、抗体単量体回収率の向上効果が得られ、浸漬の溶液濃度や浸漬時間も限定されないことが分かった。

〔実施例６〕
　ポリアミド膜の作製方法のみを変更し、その他の条件は、前記〔実施例４〕と同様の実験を行った。
　浸漬温度のみを変更し、前記〔実施例１〕の（（１）ポリアミド媒体としてのポリアミド膜のアルカリ性水溶液浸漬）と同様の方法でポリアミド膜１２を作製した。
　ポリアミド膜の作製条件を下記〔表８〕に示す。
　また、抗体単量体回収率の算出結果を、下記〔表９〕に示す。

〔比較例６〕
　ポリアミド膜を水酸化ナトリウム水溶液に浸漬しないこと以外は前記ポリアミド膜１２と同じ条件で作製したポリアミド膜βを用いた。
　なお、比較例６においては、水に浸漬した。
　ポリアミド膜βに対し、前記〔実施例６〕と同様の操作を行った。
　ポリアミド膜の作製条件を前記〔表８〕に示す。
　また、抗体単量体回収率を、下記〔表９〕に示す。

　実施例６、及び比較例６の結果を比較すると、ポリアミド膜を水酸化ナトリウム水溶液に浸漬することにより、抗体単量体回収率が向上したことが分かった。
　このことから、本発明は、水酸化ナトリウム水溶液による処理温度に限定されず、所期の効果が得られることが分かった。

〔実施例７〕
（１）　ポリアミド膜のアルカリ性水溶液浸漬
　直径９．０ｃｍの円形であり、膜厚１７０μｍ、平均孔径０．２μｍの、多孔質ポリアミド媒体としてのポリアミド膜（Ｗｈａｔｍａｎ（登録商標）：７４０２－００９、ジーイーヘルスケア社製、材質：ポリアミド６６）を、１．０ｍｏｌ／Ｌの水酸化ナトリウム溶液（ｐＨ１４）に室温で１時間浸漬した。
　次に、純水で５回洗浄し、水酸化ナトリウムを完全に取り除いた。
　得られたポリアミド膜をメタノールで置換し、真空乾燥により溶媒を完全に除去して得られた膜をポリアミド膜１３とした。
　また、浸漬時間を変更し、上記と同じ条件でポリアミド膜１４、１５を作製した。
　ポリアミド膜の作製条件を下記〔表１０〕に示す。

（２）　ポリアミド膜の引張強度評価
　前記で得られたポリアミド膜を、２．０ｃｍ　×　７．０ｃｍの長方形となるように切片を作製した。
　作製した切片の引張強度を引張圧縮試験機；ＴＧ－１ＫＮ（ミネベア社製）を用いて評価した。
　この評価において、測定した部屋の環境に関し、温度は２２．５℃、湿度は３５～４０％であり、測定条件に関し、引張速度は１０ｍｍ／ｍｉｎ、初期長は６．０ｃｍであった。
　測定結果を下記〔表１１〕に示す。なお、各パラメータの数値は６回試験を行った平均値と標準誤差を示す。
　ヤング率は試料にかかる応力とひずみのプロットをとった時の弾性領域における傾きを示し、最大応力は試験開始から試料が破断するまでの間で試料にかかった応力の最大値を示す。

〔比較例７〕
　ポリアミド膜を水酸化ナトリウム水溶液に浸漬しないこと以外は、前記ポリアミド膜１３と同じ条件で作製したポリアミド膜γを用いた。
　なお、比較例７においては、水に浸漬した。
　その他の条件は、前記〔実施例７〕と同様に操作を行った。
　ポリアミド膜γの作製条件を前記〔表１０〕に示す。
　測定結果を下記〔表１１〕に示す。

　実施例７、及び比較例７の結果を比較すると、水酸化ナトリウム水溶液への浸漬の有無にかかわらず、ポリアミド膜のヤング率と最大応力が変化しないことが分かった。
　すなわち、本発明によれば、実用上十分な機械的強度を維持できることが分かった。
　抗体医薬品などタンパク製剤の製造工程において、特にウイルス除去フィルターとそのプレフィルターでは、膜に圧力がかかっても変形しにくく、かつ膜に高い圧力がかかっても破れにくいことが性質として求められる。その観点からアルカリ性水溶液で浸漬しても、ヤング率、最大応力ともに変化せず、タンパク質精製フィルターとして膜強度を維持でき、実用上、好ましいことが分かった。

〔実施例８〕
（１）　ポリアミド膜のアルカリ性水溶液浸漬
　直径２．５ｃｍの円形であり、膜厚１６０μｍ、平均孔径０．２μｍの、多孔質ポリアミド媒体としてのポリアミド膜（Ｗｈａｔｍａｎ（登録商標）：７４０２－００２、ジーイーヘルスケア社製）を、１．０ｍｏｌ／Ｌの水酸化ナトリウム溶液（ｐＨ１４）に室温で１時間浸漬した。
　次に、純水で５回洗浄し、水酸化ナトリウムを完全に取り除いた。
　得られたポリアミド膜をメタノールで置換し、真空乾燥により溶媒を完全に除去し、ポリアミド膜１６を得た。ポリアミド膜の作製条件を下記〔表１２〕に示す。

（２）　ポリアミド膜の重量平均分子量及び数平均分子量の測定
　前記（１）で得られたポリアミド膜を試料とし、その分子量を、ゲル浸透クロマトグラフィー（ＧＰＣ：Ｇｅｌ　Ｐｅｒｍｅａｔｉｏｎ　Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）を用いて測定した。
　ポリアミド膜を約５ｍｇ測り採り、そこにトリフルオロ酢酸Ｎａ（ＨＦＩＰ）５ｍｍｏｌ／Ｌを５ｍＬ添加後、一晩静置した。
　前記試料が完全に溶解していることを確認した後、０．４５μｍ（ポリテトラフルオロエチレン、ＰＴＦＥ）のフィルターを用いてろ過したものを測定用試料とした。
　測定結果を下記〔表１３〕に記す（Ｍｗ：重量平均分子量、Ｍｎ：数平均分子量）。
＜測定条件＞
　測定装置：ＨＬＣ－８３２０ＧＰＣ（東ソー社製）
　カラム：ＴＳＫｇｅｌ　ＧＭＨ_ＨＲ－Ｈ（Ｓ）×３本（４．６ｍｍＩ．Ｄ．×１５ｃｍ）
　カラム温度：４０℃
　溶離液：トリフルオロ酢酸Ｎａ　５ｍｍｏｌ／Ｌ
　較正曲線：ｐｏｌｙｍｅｔｈｙｌ　ｍｅｔｈａｃｒｙｌａｔｅ（１２点）

〔比較例８〕
　ポリアミド膜を水酸化ナトリウム水溶液に浸漬しないこと以外は、前記ポリアミド膜１６と同じ条件で作製したポリアミド膜δを用いた。
　なお、比較例８においては、水に浸漬した。
　その他の条件は、前記〔実施例８〕と同様に操作を行った。
　ポリアミド膜の作製条件を前記〔表１２〕に示す。
　測定結果を、下記〔表１３〕に示す。

　実施例８及び比較例８の結果を比較すると、ポリアミド膜を水酸化ナトリウム水溶液に浸漬しても重量平均分子量及び数平均分子量に影響が出ないことが分かった。このことはアルカリ浸漬による加水分解は、ポリアミド膜の内部までは進行していないことを意味する。かつ、実施例１～６、比較例１～６の結果から、抗体のポリアミド膜への吸着挙動がアルカリ性水溶液による処理の有無によって変化することから、ポリアミド膜の表面の性質が変わっていることが示されている。
　よって、実施例１～６、実施例８、及び比較例１～６、比較例８の結果から、アルカリ性水溶液による処理はポリアミド膜の表面の性質を変化させるが、内部の性質には影響しないことが分かった。

〔実施例９〕
（１）　ポリアミド膜のアルカリ性水溶液浸漬
　水酸化ナトリウム水溶液の浸漬時間を４０時間にする以外は、前記〔実施例８〕の（（１）　ポリアミド膜のアルカリ性水溶液浸漬）と同じ方法でポリアミド膜１７を作製した。
　ポリアミド膜１７の作製条件を下記〔表１４〕に示す。

（２）ポリアミド膜のＸＰＳ測定
　前記（１）で得られたポリアミド膜から約２ｍｍ四方の小片を切り出し、０．５×１０^－４ｍｏｌ／ｄｍ^３Ｒｂ_２ＣＯ_３水溶液６０ｍＬに２時間浸漬した。
　１．５ｍＬサンプル管（脱脂綿の下敷きあり）に移し、１００００ｒｐｍで１０分間遠心分離して、ＸＰＳ測定を実施した。測定結果を下記〔表１５〕に示す。
　使用機器：ＰＨＩ５０００　Ｖｅｒｓａ　Ｐｒｏｂｅ　ＩＩ（アルバック・ファイ社製）
　励起源：ｍｏｎｏ．ＡｌＫα　２０ｋＶ×５ｍＡ　１００Ｗ
　分析サイズ：１００μｍ×１．４ｍｍ（データ取り込み時、１００μｍφのｍｏｎｏ．ＡｌＫαを１．４ｍｍ幅で振動）
　光電子取出角：４５°
　取込領域：Ｒｂ　３ｄ
　Ｐａｓｓ　Ｅｎｅｒｇｙ：９３．９ｅＶ

〔比較例９〕
　ポリアミド膜を水酸化ナトリウム水溶液に浸漬しないこと以外は、前記ポリアミド膜１７と同じ条件で作製したポリアミド膜εを用いた。
　なお、比較例９においては、水に浸漬した。
　その他の条件は、前記〔実施例９〕と同様に操作を行った。
　ポリアミド膜εの作製条件を前記〔表１４〕に示す。
　測定結果を下記〔表１５〕に示す。

　実施例９、及び比較例９の結果を比較すると、ポリアミド膜をアルカリ性水溶液により処理することによって、ポリアミド膜の表面のルビジウム濃度が増加していることが分かった。このことから、ポリアミド膜をアルカリ性水溶液で処理することにより、表面のカルボキシル基の量が増加したことが分かった。すなわち、アルカリ性水溶液で処理することにより、ポリアミド膜の表面が親水化され、目的タンパク質の回収量増加につながったことが分かった。

〔実施例１０〕
（１）　ポリアミドシートのアルカリ性水溶液浸漬
　６６ナイロンシート（型番：１０７－１４３０１、厚さ：０．３ｍｍ、コクゴ社製）を１．０ｍｏｌ／Ｌの水酸化ナトリウム水溶液（ｐＨ１４）に室温で１３日間浸漬した。
　次に、純水で５回洗浄し、水酸化ナトリウムを完全に取り除いた。
　得られたシートを０．００１ｍｏｌ／Ｌの塩酸溶液に１時間浸漬させた後、蒸留水で洗浄し、風乾させ、ポリアミドシート（１）を得た。
　ポリアミドシート（１）の作製条件を下記〔表１６〕に示す。

（２）　ポリアミドシートのＦＴ－ＩＲ測定
　前記（１）で得られたポリアミドシート（１）を測定用試料とし、当該試料を、下記の条件でフーリエ変換赤外分光法（ＦＴ－ＩＲ）測定した。
　測定結果を図３に示す。
＜測定条件＞
　測定装置：ＡＬＰＨＡ（Ｂｒｕｋｅｒ社）
　測定法：ＡＴＲ法（結晶：Ｇｅ）
　分解能：４ｃｍ^－１
　積算回数：１６ｓｃａｎｓ

〔比較例１０〕
　ポリアミドシートを水酸化ナトリウム水溶液に浸漬しないこと以外は、前記〔実施例１０〕のポリアミドシート（１）と同じ条件でポリアミドシート（２）を作製し、測定用試料として用いた。
　なお、比較例１０においては、水に浸漬した。
　その他の条件は、前記〔実施例１０〕と同様に操作を行った。
　ポリアミドシート（２）の作製条件を前記〔表１６〕に示す。
　測定結果を図３に示す。
　図３中、「水酸化ナトリウム」とは、水酸化ナトリウム水溶液により浸漬処理を行ったポリアミドシート（１）の測定結果であることを示し、図３中、「水」とは、水酸化ナトリウム水溶液により浸漬処理を行わず、水により浸漬処理を行ったポリアミドシート（２）の測定結果であることを示す。

　実施例１０、及び比較例１０の結果を比較すると、ポリアミドシートをアルカリ性水溶液で処理することにより、１６３９ｃｍ^－１、１５４４ｃｍ^－１のピーク強度が減少していた。このことから、ポリアミドシートのアルカリ性水溶液処理により、表面のアミド結合が減少したことが分かった。
　実施例８、比較例８の結果と合わせると、アルカリ性水溶液による処理によってポリアミドシートの表面で加水分解が進行していることが分かった。

　本出願は、２０１９年４月８日に日本国特許庁に出願された日本特許出願（特願２０１９－０７３５１４）、２０１９年１１月６日に日本国特許庁に出願された日本特許出願（特願２０１９－２０１７２５）に基づくものであり、その内容はここに参照として取り込まれる。

　本発明のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法は、抗体凝集体の除去の選択性を向上させた、抗体含有溶液の製造技術の分野において、産業上の利用可能性を有する。

Claims

　タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法であって、
　酸性又はアルカリ性水溶液で処理前のポリアミド媒体を、酸性又はアルカリ性水溶液で処理する工程を有する、
　タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法。
　前記ポリアミド媒体が多孔質体である、請求項１に記載のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法。
　前記多孔質体が、膜状の多孔質体である、請求項２に記載のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法。
　前記酸性又はアルカリ性水溶液が、ｐＨ５以下の酸性水溶液である、請求項１乃至３のいずれか一項に記載のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法。
　前記酸性又はアルカリ性水溶液が、ｐＨ１０以上のアルカリ性水溶液である、請求項１乃至３のいずれか一項に記載のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法。
　前記タンパク質含有溶液が、抗体含有溶液である、請求項１乃至５のいずれか一項に記載のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体の製造方法。
　酸性又はアルカリ性水溶液で処理されたポリアミド媒体に、タンパク質含有溶液を接触させる工程を有する、
　タンパク質含有溶液を精製する方法。
　前記ポリアミド媒体にタンパク質含有溶液を接触させる工程が、
　前記ポリアミド媒体によりタンパク質含有溶液を濾過する工程である、
　請求項７に記載のタンパク質含有溶液を精製する方法。
　アルカリ処理前のポリアミド媒体を、ｐＨ１０以上のアルカリ性水溶液で４℃以上１００℃以下、５分以上７０時間以下の条件で処理する工程と、
　前記ポリアミド媒体を洗浄する工程と、
　前記洗浄後のポリアミド媒体に、タンパク質含有溶液を接触させる工程と、
を、有する、タンパク質含有溶液を精製する方法。
　タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体であって、
　当該ポリアミド媒体の表面のアミノ基及びカルボキシル基の和が、前記ポリアミド媒体の内部におけるアミノ基及びカルボキシル基の和よりも１．０１倍以上多い、
　タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体。
　タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体であって、
　当該ポリアミド媒体の表面のポリマーの数平均分子量Ｍｎ（Ｓ）と、
　前記ポリアミド媒体の内部のポリマーの数平均分子量Ｍｎ（Ｉ）が、
下記の式で表される、
　タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体。
　　　　Ｍｎ（Ｓ）／Ｍｎ（Ｉ）　≦　０．９９
　請求項１０又は１１に記載のタンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体に、タンパク質含有溶液を接触させる工程を有する、
　タンパク質含有溶液を精製する方法。
　前記タンパク質含有溶液精製用のポリアミド媒体にタンパク質含有溶液を接触させる工程が、前記ポリアミド媒体によりタンパク質含有溶液を濾過する工程である、
　請求項１２に記載のタンパク質含有溶液を精製する方法。
　抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法であって、
　アルカリ性水溶液に浸漬前のポリアミド媒体を、ｐＨ５以下の酸性水溶液又はｐＨ１０以上のアルカリ性水溶液に５分以上浸漬する工程を有する、
　抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法。
　前記ポリアミド媒体が多孔質体である、請求項１４に記載の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法。
　前記多孔質体が、膜状の多孔質体である、請求項１５に記載の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法。
　前記アルカリ性水溶液が、水酸化ナトリウム水溶液又は水酸化カリウム水溶液である、請求項１４乃至１６のいずれか一項に記載の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法。
　前記抗体凝集体が、モノクローナル抗体の凝集体である、請求項１４乃至１７のいずれか一項に記載の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体の製造方法。
　酸性又はアルカリ性水溶液で処理されたポリアミド媒体に、抗体凝集体を含む抗体溶液を接触させる工程を有する、
　抗体単量体の純度が向上した抗体溶液を回収する方法。
　酸性又はアルカリ性水溶液で処理されたポリアミド媒体に、抗体凝集体を含む抗体溶液を接触させる工程を有する、
　抗体溶液から抗体凝集体を除去する方法。
　前記抗体がモノクローナル抗体である、請求項１９に記載の抗体単量体の純度が向上した抗体溶液を回収する方法。
　前記抗体がモノクローナル抗体である、請求項２０に記載の抗体溶液から抗体凝集体を除去する方法。
　抗体凝集体除去用のポリアミド媒体であって、
　当該ポリアミド媒体の表面のアミノ基及びカルボキシル基の和が、前記ポリアミド媒体の内部におけるアミノ基及びカルボキシル基の和よりも、１．０１倍以上多い、抗体凝集体除去用のポリアミド媒体。
　抗体凝集体除去用のポリアミド媒体であって、
　当該ポリアミド媒体の表面のポリマーの数平均分子量Ｍｎ（Ｓ）と、
　前記ポリアミド媒体の内部のポリマーの数平均分子量Ｍｎ（Ｉ）が、
下記の式で表される、
　抗体凝集体除去用のポリアミド媒体。
　　　　Ｍｎ（Ｓ）／Ｍｎ（Ｉ）　≦　０．９９
　請求項２３又は２４に記載の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体と、抗体凝集体を含む抗体溶液とを接触させる工程を有する、
　純度が向上した抗体溶液を回収する方法。
　請求項２３又は２４に記載の抗体凝集体除去用のポリアミド媒体と、抗体凝集体を含む抗体溶液とを接触させる工程を有する、
　抗体溶液から抗体凝集体を除去する方法。