WO2020090822A1 - 核酸の非特異結合抑制剤、ハイブリダイゼーション用試薬および核酸のハイブリダイゼーション方法 - Google Patents

核酸の非特異結合抑制剤、ハイブリダイゼーション用試薬および核酸のハイブリダイゼーション方法 Download PDF

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崇 芹澤
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    • C12Q2527/125Specific component of sample, medium or buffer

Definitions

  • the present invention relates to an inhibitor for suppressing non-specific binding in nucleic acid hybridization, a hybridization reagent containing the inhibitor, a method for nucleic acid hybridization using the inhibitor, and detection of a target nucleic acid including the hybridization step. Regarding the method.
  • DNA and ribonucleic acid are nucleic acids that carry biological information.
  • DNA is adenine (dA), thymine (dT), cytosine (dC) and guanine (dG), and RNA is adenine (A).
  • Each of DNA and RNA has a property of specifically binding to a complementary strand which is a complementary sequence, and its binding affinity and specificity are two specific binding modes of AT (or U) and CG. It is realized by the combination of.
  • the binding affinity and specificity with the complementary strand are defined by the sequence order of each base species contained in the sequence, the composition ratio and the binding chain length, and the higher-order structure depending on the base sequence. It is also controlled by the temperature of the reaction solution, the ionic strength in the reaction solution, and the presence or absence of a nucleic acid denaturing agent such as formamide. Nucleic acid binding to this complementary strand is called hybridization.
  • microRNA which is a short-chain nucleic acid, as non-translated RNA
  • microRNAs are increasingly recognized as one of the important players that play Fine-Tuning in the regulation of gene expression in higher organisms such as humans, as one type of sequence regulates the gene expression level of more than 100 types.
  • the relationship with diseases is being actively studied. It is not easy to search for a gene associated with a disease from these huge candidate genes.
  • comprehensive gene expression search using a nucleic acid array also called a DNA microarray or a DNA chip
  • a nucleic acid probe having a complementary base sequence to a large number of target nucleic acids is immobilized on a substrate serving as a support, and target nucleic acids in a sample extracted from a biological sample are labeled molecules such as fluorescent substances in advance.
  • target nucleic acids in a sample extracted from a biological sample are labeled molecules such as fluorescent substances in advance.
  • the expression amount of the target nucleic acid can be detected as a fluorescent signal of the formed nucleic acid complex.
  • the reaction temperature for hybridization and the composition of the hybridization solution are changed as described above.
  • the composition of the hybridization solution is optimized by each person skilled in the art, and is an essential technique for performing specific nucleic acid detection in a nucleic acid array.
  • complementary strand probes are immobilized on a glass substrate, but glass has the property of adsorbing and binding nucleic acids in a non-sequence-specific manner. Therefore, the target nucleic acid is adsorbed on the glass substrate, resulting in an increase in background signal. If the signal value of the target nucleic acid is low, the high background makes detection difficult.
  • cross-hybridization may occur between the target nucleic acid and a nucleic acid having a complementary strand of a sequence similar to this.
  • the signal value of the cross-hybridized target nucleic acid becomes relatively higher than the signal value of the target nucleic acid, which may make it difficult to detect the expression amount of the target nucleic acid.
  • nucleic acid probe in which the repeat sequence of the target nucleic acid has a complementary strand to the target nucleic acid in the detection of the target nucleic acid When cross-hybridized with, the baseline of the measured value increases, making it difficult to detect the target nucleic acid.
  • the hybridization solution contains a buffer, a salt, and water.
  • a non-specific binding inhibitor for these nucleic acids is added.
  • salmon sperm DNA is one of the most commonly used nonspecific binding inhibitors.
  • Patent Document 1 Human Cot-1 DNA, Escherichia coli tRNA, PCR amplification product (Patent Document 1), poly-dA (Non-Patent Document 1, Non-Patent Document 2), random oligo, and the like, and mixtures thereof (Patent Document 2). ) And the like are used by being added to the hybridization solution as a non-specific binding inhibitor of nucleic acid.
  • salmon sperm DNA is a fragment of salmon testis-derived DNA that is fragmented by ultrasonic disruption or physical shearing. Although it varies depending on the provider, it usually has a molecular weight distribution of several hundred bp to several thousand bp, and it is known that the properties such as the molecular weight distribution vary depending on the production lot.
  • Human Cot-1 DNA is a fragment of human placenta-derived DNA that is subjected to shearing treatment. Since it is also derived from a biological sample, properties such as molecular weight distribution differ depending on the production lot.
  • E. coli tRNA is tRNA extracted from a crushed product of E. coli, but since it is derived from a biological sample, the properties may differ between production lots.
  • the measurement result may be affected each time the manufacturing lot is switched. Therefore, it is necessary to obtain and evaluate non-specific binding inhibitors of multiple production lots, identify specific production lots that can obtain equivalent measurement results, and secure a large number of the production lots. A great deal of effort was required.
  • PCR amplification products are produced by PCR amplification and random oligos are produced by chemical synthesis, so the quality difference between production lots is relatively small.
  • the PCR amplification product has a different mixing rate of the non-target sequence due to a PCR error for each production lot.
  • a chain length of 10 bases or less is generally used for a random oligo, but there is a possibility that the base composition contained in each production lot may not be the same. Therefore, even with these non-specific binding inhibitors, the effect of lot switching remains.
  • poly-dA is a DNA composed of a single base (adenine) and can be chemically synthesized. Poly-dA is used for blocking poly-dT on cDNA generated when mRNA is reverse-transcribed.
  • a cDNA sample is evaluated by a nucleic acid array
  • poly-dT on the cDNA and a complementary strand are used. It has been reported to suppress false positive signals between adenine (A) -rich sequences on the probe (Non-Patent Document 2).
  • Non-Patent Document 2 Human Cot-1 DNA is added at the same time, and the suppressing effect on cross-hybridization between various similar sequences is substantially obtained by Human Cot-1 DNA. Can be said.
  • the present invention is intended to provide a non-specific binding inhibitor that achieves both of these characteristics.
  • the present inventor has found that a nucleic acid containing guanine (G) has a high effect of suppressing non-specific binding, and that the quality of the nucleic acid is stable between production lots, and the present invention was completed. Came to let me. That is, the present invention provides the following (1) to (12).
  • a non-specific binding inhibitor for nucleic acid which comprises a nucleic acid having a base length of 2 to 11 bases and having a guanine base or methylated guanine base content of 70% or more in the entire base sequence.
  • the nonspecific binding inhibitor according to (1) or (2), wherein the guanine base or the methylated guanine base is a guanine base.
  • nucleic acid is DNA.
  • nucleic acid hybridization reagent containing the inhibitor according to any one of (1) to (6).
  • a method for hybridizing nucleic acids which comprises hybridizing a target nucleic acid with a nucleic acid capable of specifically binding to the target nucleic acid, wherein the hybridization is carried out according to any one of (1) to (6).
  • a target comprising a target nucleic acid and a hybridization step of hybridizing a nucleic acid capable of specifically binding to the target nucleic acid, and a detection step of detecting the nucleic acid complex formed in the hybridization step
  • a method for detecting a nucleic acid which comprises allowing the inhibitor according to any one of (1) to (6) to coexist in the hybridization step.
  • the detection method according to (9), which uses a nucleic acid array which uses a nucleic acid array.
  • the non-specific binding inhibitor for nucleic acids of the present invention has a non-specific binding inhibitory effect equal to or higher than that of a conventional inhibitor such as salmon sperm DNA, and has stable quality between production lots. Moreover, the labor of selection and preparation is unnecessary. In particular, in the detection of target nucleic acid by hybridization, it is possible to stably realize the effect of suppressing cross-hybridization.
  • the first aspect of the present invention is a suppressor for suppressing non-specific binding that occurs during nucleic acid hybridization, which has a base length of 2 to 11 bases, and It contains a nucleic acid having a guanine base or methylated guanine base content of 70% or more. When both the guanine base and the methylated guanine base are contained, the total content is 70% or more.
  • guanine is used to include “methylated guanine” unless the context clearly indicates otherwise. However, in the examples (actual working examples), "guanine” means normal guanine that is not methylated. Also, in all the following descriptions, unmethylated normal guanine is preferred over methylated guanine. Examples of methylated guanine include 7-methylguanine (m7G) and O6-methylguanine (O6-MeG).
  • non-specific binding of a nucleic acid refers to a target nucleic acid that occurs during hybridization between a target nucleic acid and a nucleic acid (probe etc.) having a sequence complementary to the sequence of the target nucleic acid. Refers to all binding-type reactions other than the relevant hybridization (specific binding) involving
  • nucleic acid used for detecting a target nucleic acid such as a nucleic acid array (also called a DNA microarray or a DNA chip), and having a base sequence complementary to the target nucleic acid.
  • a target nucleic acid such as a nucleic acid array (also called a DNA microarray or a DNA chip)
  • This is cross-hybridization that occurs between a target nucleic acid and a nucleic acid having a complementary strand of a sequence similar to the target nucleic acid when a support (substrate or the like) on which (nucleic acid probe) is immobilized is used.
  • non-specific binding is that the target nucleic acid is adsorbed on the material itself of the support on which the nucleic acid having a sequence complementary to the target nucleic acid is immobilized (physical adsorption by Van der Waals force, hydrophobic interaction). It includes any of the chemical adsorption by.).
  • the “non-specific binding” of the nucleic acid in the present invention includes any of these aspects.
  • the nucleic acid contained in the non-specific binding inhibitor of the present invention (hereinafter, also referred to as “the nucleic acid of the present invention” in the present specification) has a base length of 2 to 11 bases, more preferably 5 to 7 bases. Yes, and more preferably 5 bases.
  • the content rate of guanine bases in the entire base sequence of the nucleic acid is 70% or more.
  • a preferred mode of the nucleic acid of the present invention is that a plurality of guanine bases are continuously arranged, and among them, it is more preferable that five guanine bases are continuously arranged in parallel.
  • the nucleic acid of the present invention can contain a base other than a guanine base according to the above conditions.
  • a base other than a guanine base according to the above conditions.
  • a non-target sequence is Since the nucleic acid may be mixed with a certain probability, it is more preferable that the nucleic acid is composed of only one guanine base.
  • the nucleic acid contained in the non-specific binding inhibitor of the present invention can be synthesized by a commonly used nucleic acid synthesis method, and both the solid phase synthesis method and the liquid phase synthesis method can be used for the synthesis of the nucleic acid.
  • a modified nucleotide monomer called amidite is immobilized on a bead, and the nucleotide monomer is added from the 3′-end side to the 5′-end of the oligonucleotide sequence. Progresses. Separation from the solid phase beads after completion of all chain length extensions provides the target nucleic acid.
  • a target nucleic acid can be obtained by adding a nucleotide monomer to a highly dispersible liquid phase support or the like.
  • the synthesized nucleic acid may be purified by a commonly used purification method such as desalting purification, reverse phase column purification, HPLC purification, PAGE purification and the like.
  • a nucleic acid purified by reverse phase column purification, HPLC purification or PAGE purification, more preferably HPLC purification or PAGE purification is used.
  • the nucleic acid contained in the non-specific binding inhibitor of the present invention may be DNA, RNA or artificial nucleic acid.
  • artificial nucleic acids include LNA (Locked Nucleic Acid), PNA (Peptide Nucleic Acid), and ENA (Ethylene-Bridged Nucleic Acid). It is also possible to use a nucleic acid synthesized by combining a plurality of nucleic acid species. Artificial nucleic acids such as LNA, PNA, and ENA have high enzyme stability but also high production cost. Therefore, the nucleic acid of the present invention is preferably DNA or RNA, and more preferably DNA having relatively high enzyme stability.
  • the nucleic acid contained in the non-specific binding inhibitor of the present invention contains inosine (I) in addition to adenine (A), thymine (T), cytosine (C), guanine (G) and uracil (U) as bases. It is also possible to contain.
  • the nucleic acid of the present invention may contain a modified base.
  • C can also be included as 5-methylcytosine (5mC), 5-hydroxymethylcytosine (5hmC), 5-formylcytosine (5fC), 5-carboxylcytosine (5caC), and the like.
  • G can be contained as 7-methylguanine (m7G), O6-methylguanine (O6-MeG) or the like, or as 2'-O-methylribonucleoside.
  • the nucleic acid of the present invention has one or both of its 5 ′ end and 3 ′ end, which may have a phosphate group, an alkyl group, an alkoxy group, an amino group, an adenyl group, biotin, a thiol, a halogen, a fluorescent dye, or the like. It may be modified and is not limited to this, and any modifying group can be used depending on the purpose of use.
  • the nucleic acid contained in the non-specific binding inhibitor of the present invention is entirely composed of guanine bases when the base length is 2 bases or 3 bases.
  • the nucleic acid of the present invention is composed of 3 bases of guanine base and 1 base (or guanine base), and the position where the 1 base is arranged is arbitrary in the sequence. is there.
  • the one base is a guanine base
  • all of them are composed of only a guanine base (that is, the base sequence is "GGGG"), which is a more preferable sequence.
  • the base length of the nucleic acid of the present invention is 5 bases, it is composed of 4 guanine bases and 1 arbitrary base (may be a guanine base), and the position where the 1 base is arranged is in the sequence. Is optional.
  • a nucleic acid in which the one base is an adenine base and is located at the third position from the 5'end (nucleic acid name (DNA): "GGAGG)
  • the one base is an adenine base and is located at the fourth position from the 5'end
  • a nucleic acid (nucleic acid name (DNA): "TGGGGG) in which the one base is a thymine base and is located first from the 5'end, and the like are included in these.
  • nucleic acid name (DNA): composed of consecutive 5 bases that are all guanine bases (that is, the base sequence is “GGGGG”)). "Poly-dG5").
  • the nucleic acid is composed of 5 guanine bases and 1 arbitrary base (may be a guanine base), and the position where the 1 base is arranged is in the sequence. Is optional. Among these, a configuration having a continuous sequence of 5 bases of guanine and containing an arbitrary 1 base at either end thereof is preferable. Further, when the arbitrary one base is a guanine base, it is composed of 6 consecutive bases which are all guanine bases (that is, the base sequence is “GGGGGG”), which is a more preferable sequence.
  • the base length of the nucleic acid of the present invention is 7 bases, it is composed of 5 guanine bases and 2 arbitrary bases (may be guanine bases), and the position where the 2 bases are arranged is in the sequence. Is optional. Of these, it is preferable to have a sequence of 5 consecutive guanine bases, and to include any one base at both ends or any two bases at either end. Further, when both of the two bases are guanine bases, all are composed of 7 consecutive bases that are only guanine bases (that is, the base sequence is “GGGGGGGG”), which is a more preferable sequence.
  • the base length of the nucleic acid of the present invention is 8 bases, it is composed of 6 guanine bases and 2 arbitrary bases (may be guanine bases), and the position where the 2 bases are arranged is in the sequence. Is optional. Of these, it is preferable to have a sequence of 6 bases of guanine that are continuous and contain one arbitrary base at both ends or any two bases at either end. Further, when both of the two bases are guanine bases, all of them are composed of consecutive 8 bases which are only guanine bases (that is, the base sequence is “GGGGGGGG”), which is a more preferable sequence (nucleic acid name (DNA ): “Poly-dG8”).
  • the base length of the nucleic acid of the present invention is 9 bases, it is composed of 7 guanine bases and 2 arbitrary bases (including guanine base), and the position where the 2 bases are arranged is arbitrary in the sequence. is there.
  • both of the two bases are guanine bases, all are composed of 9 consecutive bases that are only guanine bases (that is, the base sequence is “GGGGGGGGGG”), which is a more preferable sequence.
  • the nucleic acid is composed of 7 bases of guanine base and 3 bases (including guanine base), and the position where the 3 bases are arranged is arbitrary in the sequence. is there.
  • all of the 3 bases are guanine bases, all are composed of 10 consecutive bases that are only guanine bases, which is a more preferable sequence (nucleic acid name (DNA): “poly-dG10”, SEQ ID NO: 1).
  • the nucleic acid of the present invention is composed of 8 bases of guanine base and 3 bases (including guanine base), and the position where the 3 bases are arranged is arbitrary in the sequence. is there. Of these, it is preferable to have a sequence of 8 bases of guanine, and to contain any 1 base or 2 bases at both ends thereof or to contain any 3 bases at either end thereof.
  • all of the three bases are guanine bases, all are composed of 11 consecutive guanine bases, which is a more preferable sequence (SEQ ID NO: 2).
  • the second aspect of the present invention is a hybridization reagent used in nucleic acid hybridization, which comprises the nucleic acid of the present invention.
  • the hybridization reagent of the present invention can be prepared as a solution containing the nucleic acid of the present invention.
  • the concentration of the nucleic acid of the present invention contained in the hybridization reagent of the present invention is preferably 0.3 ⁇ M-100 ⁇ M. Since a high-concentration nucleic acid solution has a viscosity, it is more preferable to use 0.3 ⁇ M-30 ⁇ M from the viewpoint of experimental operation and production control.
  • the concentration of the nucleic acid of the present invention can be appropriately selected depending on the purpose of use and method of use.
  • the hybridization reagent of the present invention can contain a polysaccharide, and preferably can contain dextran sulfate sodium. Since dextran sulfate sodium can mimic the state in which the concentration of the target nucleic acid is increased by its hydration action, an effect of increasing the reaction rate of hybridization can be expected.
  • the concentration of sodium dextran sulfate is preferably 1 to 30% by weight, more preferably 1 to 20% by weight, and most preferably 3 to 10% by weight.
  • the molecular weight of dextran sulfate sodium can be used in the range of 3,000-100,000 Da. More preferably, dextran sulfate sodium having a molecular weight of 5,000-30,000 Da is used.
  • the hybridization reagent of the present invention may contain a denaturing agent.
  • a denaturing agent for example, formamide or dimethyl sulfoxide can be included.
  • Formamide or dimethylsulfoxide has the effect of weakening hydrogen bonds between nucleobases, and improves the binding specificity of hybridization by adjusting the binding affinity between AT and GC with different numbers of hydrogen bonds. You can expect the effect to make it.
  • the concentration of formamide is preferably 1-50% by volume, more preferably 1-30% by volume, and most preferably 3-25% by volume.
  • the concentration of dimethyl sulfoxide is preferably 1-40% by volume, more preferably 1-20% by volume, and most preferably 3-10% by volume.
  • the hybridization reagent of the present invention may also contain a non-specific adsorption inhibitor for proteins.
  • a non-specific adsorption inhibitor for proteins As the inhibitor, bovine serum albumin (BSA) is preferably used. BSA can be expected to have an effect of improving the signal / noise ratio by suppressing non-specific adsorption that becomes background noise.
  • the concentration of the non-specific adsorption inhibitor such as BSA is preferably 1-100 mg / mL, more preferably 5-50 mg / mL, and most preferably 10 mg / mL.
  • the hybridization reagent of the present invention may contain a substance useful for increasing the sensitivity of the hybridization reaction.
  • the bubbles generated during the hybridization reaction may physically inhibit the hybridization reaction, and thus may contain an antifoaming agent or the like that suppresses the generation of bubbles.
  • the antifoaming agent include Tween 20 (trade name), Tween 60 (trade name), Triton X-100 (trade name), silicone oil, and the like which are surfactants.
  • the concentration of the defoaming agent used is not particularly limited and is usually about 0.001-10% by weight, preferably about 0.01-1% by weight.
  • the hybridization reagent of the present invention may have a well-known composition except that it contains the above-described nucleic acid of the present invention.
  • Specific preparation examples include, for example, “KuWC. Et al., Biochemical and Biophysical Research”. Communications, 2004, Vol. 315, No. 1, p. 30-37 ", with reference to” 6 x SSPE, 0.1% SDS, 25% formamide, 10 mg / mL BSA, 10% dextran sulfate. Sodium, 15 ⁇ M poly-dG5 ”can be used.
  • a third aspect of the present invention is a method for hybridizing nucleic acids, which comprises coexisting with a non-specific binding inhibitor for nucleic acids of the present invention or using the hybridization reagent of the present invention. Is the way.
  • the nucleic acid hybridization method itself can be performed by a well-known method except that the nucleic acid of the present invention described above is allowed to coexist.
  • “Sambrook, J. et al. (1998) Molecular Cloning: A Laboratory Manual (2nd). ed.), Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York ” can be used.
  • the target nucleic acid and the nonspecific binding inhibitor of the present invention or the hybridization reagent of the present invention are added to a support on which a complementary strand nucleic acid probe is immobilized in advance, and the mixture is incubated at a constant temperature. By this, hybridization can be performed.
  • the target nucleic acid it is also possible to further improve the specificity of nucleic acid binding by subjecting the target nucleic acid to heat denaturation at a high temperature for a certain time before adding the non-specific binding inhibitor of the present invention or the hybridization reagent of the present invention. ..
  • the target nucleic acid and the complementary strand nucleic acid probe are mixed with the nonspecific binding inhibitor or the reagent for hybridization of the present invention and incubated at a constant temperature for hybridization, the complementary strand nucleic acid probe is supported. It can also be immobilized on the body.
  • a fourth aspect of the present invention is a method for detecting a nucleic acid, which comprises coexisting with a non-specific binding inhibitor of the nucleic acid of the present invention or using a hybridization reagent of the present invention, and a target nucleic acid and a target nucleic acid specific thereto. And a step of detecting a nucleic acid complex formed by the hybridization.
  • the step of hybridizing the target nucleic acid with the nucleic acid capable of specifically binding to the target nucleic acid can be carried out by directly applying the nucleic acid hybridization method described in the third aspect of the present invention.
  • the well-known nucleic acid detection method can be applied to the step itself of detecting the nucleic acid complex formed in the hybridization step.
  • the amount of the nucleic acid complex can be detected as the amount of the labeling molecule by previously labeling the target nucleic acid with the labeling molecule.
  • Labeling molecules include organic fluorescent dyes, phosphorescent dyes, quantum dots, fluorescent substances such as fluorescent proteins, chemiluminescent proteins, radioisotopes, redox species capable of electron transfer, and enzymes themselves such as alkaline phosphatase and horseradish peroxidase.
  • nucleic acid monomers containing these labeling molecules can be used.
  • a nucleic acid monomer containing a labeling molecule can be labeled by enzymatically introducing it into the end of the target nucleic acid.
  • the amount of the nucleic acid complex is measured as a fluorescence signal value emitted by the fluorophore by a fluorescence microscope or a plate reader. It is possible to
  • the nucleic acid complex For the detection of the nucleic acid complex, it is possible to detect the binding between the target nucleic acid and the nucleic acid probe capable of specifically binding to the target nucleic acid as a change in the fluorescence wavelength of the nucleic acid intercalator.
  • the nucleic acid intercalator ethidium bromide, "SYBR (registered trademark) Green", or a substitute product thereof can be used.
  • the nucleic acid array in which the complex of the target nucleic acid and the nucleic acid probe is formed is immersed in the nucleic acid intercalator solution and washed with a buffer solution, etc., and then the amount of the nucleic acid complex is adjusted.
  • the fluorescence signal value emitted by the nucleic acid intercalator can be measured with a fluorescence microscope or a plate reader.
  • the complex nucleic acid can be detected by known methods such as in situ hybridization, colony hybridization, dot blotting, Southern blotting and Northern blotting, and a nucleic acid that specifically binds to the target nucleic acid and is complementary to the target nucleic acid. It can be carried out using a nucleic acid array (DNA macro array, DNA chip, etc.) in which a nucleic acid having a base sequence (nucleic acid probe) is immobilized on a support.
  • a nucleic acid array DNA macro array, DNA chip, etc.
  • nucleic acid array As the nucleic acid array, a commercially available one can be used. For example, “GeneChip (registered trademark) Arrays” manufactured by Affymetrix, oligo DNA chip manufactured by Agilent Technologies, “3D-Gene (registered trademark)” manufactured by Toray, etc. are mentioned, but the support is made of resin. It is preferable to use “3D-Gene (registered trademark)” manufactured by Toray Industries Inc., which has little physical adsorption of nucleic acid and has improved stirring efficiency by stirring the hybridization solution with microbeads.
  • Examples 1, 2 and Comparative Examples 1, 2 As the nucleic acid array, a DNA microarray “3D-Gene (registered trademark) human miRNA oligo chip (corresponding to miRBase release 21)” manufactured by Toray Industries, Inc. is used, and hsa-miR-6858-5p (miRBase) which is a miRNA capable of causing cross-hybridization. Accession No. MIMAT0027616, SEQ ID NO: 3) was selected as a target nucleic acid, and the cross-hybridization inhibitory effect of the non-specific binding inhibitor of the nucleic acid of the present invention in the hybridization reaction was evaluated.
  • 3D-Gene registered trademark human miRNA oligo chip (corresponding to miRBase release 21)” manufactured by Toray Industries, Inc.
  • hsa-miR-6858-5p miRBase which is a miRNA capable of causing cross-hybridization. Accession No. MIMAT0027616,
  • the target nucleic acid hsa-miR-6858-5p was chemically synthesized as a modified 5'terminal phosphate group (Fasmac company commissioned synthesis, HPLC purification grade). This target nucleic acid was dissolved in distilled water to prepare 2.5 fmol / ⁇ L, and 5 fmol of the target nucleic acid was fluorescently labeled with “3D-Gene (registered trademark) miRNA labeling kit” (Toray) and according to its standard protocol. Hybridization was performed using the nucleic acid array.
  • Poly-dG5" (synthesized by Fasmac, reverse phase column purification grade) was used as a non-specific binding inhibitor for nucleic acids, and the final concentration was 1 ⁇ M (Example 1) and 10 ⁇ M for "miRNA Hybridization buffer V3", respectively.
  • a hybridization solution was prepared so as to be (Example 2) and used for hybridization.
  • Fluorescence intensity was measured by subjecting the DNA microarray after hybridization to a "microarray scanner” (Toray).
  • the scanner was set so that the laser output was 100% and the voltage of the photomultiplier was set to AUTO.
  • the digitizing software ““ 3D-Gene ”Extraction” Toray
  • the ratio (hsa-miR-6858-5p) of the signal value of the target nucleic acid to the signal value of hsa-miR-4498 (miRBase Accession No. MIMAT0019033, SEQ ID NO: 4), which was the highest among the signals detected as cross-hybridization.
  • Signal value / hsa-miR-4498 signal value was calculated as the S / N ratio.
  • Example 3-8 As a non-specific binding inhibitor of nucleic acid, "poly-dG5" (Fusmac company commissioned synthesis, HPLC purification grade) was used at final concentrations of 10 ⁇ M (Example 3) and 15 ⁇ M (Example 4), and "poly-dG5".
  • dG7 (Fasmac company commissioned synthesis, HPLC purification grade) to a final concentration of 10 ⁇ M (Example 5), 15 ⁇ M (Example 6), and” poly-dG10 "(Fasmac company commissioned synthesis, HPLC purification grade).
  • SEQ ID NO: 1 SEQ ID NO: 1 was prepared in the same manner as in Example 1 except that hybridization solutions were prepared and used so that the final concentrations were 10 ⁇ M (Example 7) and 15 ⁇ M (Example 8), respectively.
  • the target nucleic acid hsa-miR-6858-5p is hybridized to suppress the cross-hybridization. It was evaluated.
  • nucleic acid having a guanine base continuous sequence having a base length of 5-10 has a cross-hybridization-suppressing effect
  • poly-dG5 (15 ⁇ M) has a remarkably high cross-hybridization-suppressing effect. It turned out to show an effect.
  • Examples 9-12 As a non-specific binding inhibitor of nucleic acid, “poly-dG5” (Fasmac company commissioned synthesis, reverse phase column purification grade) (Example 9), “GGAGG” (Fasmac company commissioned synthesis, HPLC purification grade) (Example) 10), “GGGAG” (Fasmac company commissioned synthesis, HPLC purification grade) (Example 11), “TGGGG” (Fasmac company commissioned synthesis, HPLC purification grade) (Example 12) to a final concentration of 15 ⁇ M.
  • the target nucleic acid hsa-miR-6858-5p was hybridized in the same manner as in Example 1 except that a hybridization solution was prepared and used for hybridization, and the effect of suppressing cross-hybridization was evaluated. ..
  • nucleic acids containing a high proportion of guanine bases generally have a high cross-hybridization-suppressing effect even if the nucleic acid is not composed of only guanine bases such as poly-dG5 that showed a high cross-hybridization suppressing effect. Found to have.
  • Example 13 The influence of the production lot difference of the nonspecific binding inhibitor of the nucleic acid of the present invention on the cross-hybridization inhibition effect was evaluated.
  • the results are shown in Figure 4.
  • the nucleic acid non-specific binding inhibitor of the present invention exhibited a stable cross-hybridization inhibitory effect without a large performance difference between production lots.
  • the results are shown in Figure 5.
  • the CV value was 7.75%. It has been shown that salmon sperm DNA that has been conventionally used has a large lot-to-lot difference in the inhibitory effect on cross-hybridization, as compared with the non-specific binding inhibitor for nucleic acids of the present invention.
  • Sequence number 1 Designed Sequence
  • poly-dG10 Sequence number 2 Designed Sequence

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Abstract

要約 ハイブリダイゼーションによって標的核酸を検出する際に、標的核酸とその類似配列相補鎖を有する核酸との間のクロスハイブリダイゼーションを効果的に抑制し、かつ、製造ロット間での品質が安定した非特異結合抑制剤、及びそれを用いた核酸のハイブリダイゼーション方法が開示されている。核酸の非特異結合抑制剤は、塩基長が2~11塩基であって、全塩基配列中のグアニン塩基又はメチル化グアニン塩基の含有率が70%以上である核酸を含む。

Description

核酸の非特異結合抑制剤、ハイブリダイゼーション用試薬および核酸のハイブリダイゼーション方法
 本発明は、核酸ハイブリダイゼーションにおける非特異結合を抑制するための抑制剤、当該抑制剤を含むハイブリダイゼーション用試薬、当該抑制剤を用いる核酸のハイブリダイゼーション方法、当該ハイブリダイゼーション工程を含む標的核酸の検出方法に関する。
 デオキシリボ核酸(DNA)およびリボ核酸(RNA)は、生体情報を担う核酸であり、DNAはアデニン(dA)、チミン(dT)、シトシン(dC)およびグアニン(dG)を、RNAはアデニン(A)、ウラシル(U)、シトシン(C)およびグアニン(G)を塩基として含む。DNAおよびRNAは、それぞれ相補配列である相補鎖と特異的に結合する性質を有し、その結合親和性および特異性はA-T(またはU)およびC-Gの2種類の特異的結合様式の組合せによって実現される。相補鎖との結合親和性および特異性は、配列に含まれる各塩基種の配列順序、構成比率および結合鎖長、また塩基配列に依存した高次構造などによって規定されるが、さらに外部要因として反応液の温度および反応液中のイオン強度、さらにホルムアミドなどの核酸変性剤の存在有無によっても調節される。この相補鎖との核酸結合はハイブリダイゼーションと呼ばれる。
 近年、各種の生体試料において特定の核酸を標的核酸としてその発現量を測定することにより、疾患の発症予測や診断を行う研究がなされている。例えば、ヒトでは総遺伝子が26000以上も存在すると報告されている。また、近年では、非翻訳RNAとして短鎖核酸であるマイクロRNAにも注目されており、ヒトでは2600種以上のマイクロRNAが存在すると報告されている。特に、マイクロRNAは、1種類の配列が最大100種類超の遺伝子発現量を調節するなど、ヒトなどの高等生物の遺伝子発現調節においてFine-Tuningを担う重要なプレーヤーであるとの認識が高まっており、疾患との関連が精力的に研究されている。これら膨大な候補遺伝子の中から、疾患に関連する遺伝子を探索することは容易ではない。その目的のために多用されている技術として、核酸アレイ(DNAマイクロアレイまたはDNAチップとも呼ばれる。)を用いた網羅的遺伝子発現探索が挙げられる。
 核酸アレイは、支持体となる基板上に多数の標的核酸に対する相補的塩基配列を有する核酸プローブが固定化されており、生体試料から抽出された試料中の標的核酸を予め蛍光物質等の標識分子で標識しておき、核酸アレイにアプライし、標的核酸と核酸プローブの間でハイブリダイゼーションさせることにより、標的核酸の発現量を、形成された核酸複合体の蛍光シグナルとして検出することができる。核酸アレイにおいて標的核酸と相補鎖の間の結合親和性および特異性を調節する方法として、前述の通りハイブリダイゼーションの反応温度の変更や、ハイブリダイゼーション溶液の組成変更が行われる。特にハイブリダイゼーション溶液の組成は当業者ごとに最適化されており、核酸アレイにおいて特異的な核酸検出を行うためには必須の技術である。
 しかし、一般的な核酸アレイは、ガラス基板上に相補鎖プローブが固定化されているが、ガラスは核酸をその配列非特異的に吸着結合する性質を有する。そのため、ガラス基板上に標的核酸が吸着してしまい、その結果、バックグラウンドシグナルの増加をもたらす。標的核酸のシグナル値が低い場合には、高バックグラウンドのために検出が困難となる。
 また、核酸アレイ等を用いて標的核酸を検出しようとする場合、標的核酸とこれと類似する配列の相補鎖を有する核酸との間でクロスハイブリダイゼーションが生じることがある。その場合、標的核酸のシグナル値に比してクロスハイブリダイズした標的核酸のシグナル値が相対的に高くなり、標的核酸の発現量の検出が困難となるおそれがある。
 また、特にゲノム配列の解析において、ゲノム中には特定配列が高度に繰り返したリピート配列が多く含まれるため、標的核酸の検出において、当該標的核酸のリピート配列が標的核酸に対する相補鎖を有する核酸プローブとクロスハイブリダイズする場合には、測定値のベースラインが上昇し、標的核酸を検出することが困難となる。
 以上のような、核酸アレイ基板に対する非特異的な吸着や、標的核酸と類似する配列の相補鎖を有する核酸とのクロスハイブリダイゼーションを抑制するため、ハイブリダイゼーション溶液には、緩衝剤、塩、水和剤、核酸変性剤等のほかに、これら核酸の非特異結合の抑制剤(ブロッキング剤)が添加される。例えば、サケ精子DNAは、最も汎用される非特異結合抑制剤の1つである。また、この他に、Human Cot-1 DNA、大腸菌tRNA、PCR増幅物(特許文献1)、poly-dA(非特許文献1、非特許文献2)、ランダムオリゴ等、これらの混合物(特許文献2)などが、核酸の非特異結合抑制剤として、ハイブリダイゼーション溶液に添加して用いられている。
特表2009-518004号公報 特開2010-29174号公報
Technical Note,"Implementation of DNA Microarray Hybridization Protocols, Translation of Manual Methods to Tecan Hybridization Station"、[online]、テカンジャパン株式会社、[2018年10月22日検索]、インターネット〈URL:http://www.tecan.co.jp/pdf/technote_hs.pdf〉 Pan SJ.ら、BMC Genomics、2002年、第3巻、35号、p.1-12
 上記のような従来使用されている核酸の非特異結合抑制剤のうち、サケ精子DNAは、サケ精巣由来のDNAを超音波破砕または物理剪断処理することにより断片化したものである。提供者によって異なるが、通常、数百bp~数千bpの分子量分布を有しており、製造ロットによりその分子量分布等の性状が異なることが知られている。また、Human Cot-1 DNAは、ヒト胎盤由来のDNAを剪断処理することにより断片化したものであり、同じく生物試料由来であることから、製造ロットごとに分子量分布等の性状は異なる。また、大腸菌tRNAは、大腸菌破砕物より抽出されたtRNAであるが、生物試料由来であることから、製造ロット間で性状が異なるおそれがある。
 以上のように、生物試料由来の非特異結合抑制剤を使用して標的核酸の検出をする場合には、製造ロットが切り替わる度に測定結果も影響を受ける可能性がある。そのため、複数の製造ロットの非特異結合抑制剤を入手して比較評価し、同等の測定結果を得られる特異的な製造ロットを特定し、また当該製造ロットを大量に確保する必要があるなど、多大な労力が必要であった。
 それに対して、PCR増幅物はPCR増幅により、ランダムオリゴは化学合成によって、それぞれ製造されるため、製造ロットごとの品質差は比較的小さい。しかし、PCR増幅物は、厳密には、PCRエラーによる目的外配列の混入率が製造ロットごとに異なる。また、ランダムオリゴは、一般に10塩基以下の鎖長が使用されるが、やはり製造ロットごとに含まれる塩基構成が同一とはならないおそれがある。したがって、これら非特異結合抑制剤においても、ロット切り替えの影響は残存している。
 一方、poly-dAは、単一塩基(アデニン)により構成されるDNAであり、化学合成可能であるため、製造ロット間差は少ないと期待される。poly-dAは、mRNAを逆転写した際に生じるcDNA上のpoly-dTをブロッキングする用途で使用されており、cDNAサンプルを核酸アレイで評価する際には、cDNA上のpoly-dTと相補鎖プローブ上のアデニン(A)リッチな配列間での擬陽性シグナルを抑制することが報告されている(非特許文献2)。しかしながら、核酸アレイでは、様々な類似配列間でのクロスハイブリダイゼーションも生じており、poly-dA単独ではこれらの様々な類似配列間でのクロスハイブリダイゼーションに対する抑制効果は期待できない。そのため、非特許文献2においても、Human Cot-1 DNAが同時に添加されており、様々な類似配列間でのクロスハイブリダイゼーションに対する抑制効果は、実質的にはHuman Cot-1 DNAによって得られているといえる。
 以上のとおり、従来、ハイブリダイゼーションによって標的核酸を検出する際に、標的核酸とその類似配列相補鎖を有する核酸との間のクロスハイブリダイゼーションを効果的に抑制し、かつ、製造ロット間での品質が安定した非特異結合抑制剤は存在していない。本発明は、これら特性を両立する非特異結合抑制剤を提供しようとするものである。
 本発明者は鋭意研究の結果、グアニン(G)を含む核酸が非特異結合を抑制する効果が高く、かつ、当該核酸の製造ロット間での品質が安定であることを見出し、本発明を完成させるに至った。すなわち、本発明は、以下の(1)~(12)を提供する。
(1) 塩基長が2~11塩基であって、全塩基配列中のグアニン塩基又はメチル化グアニン塩基の含有率が70%以上である核酸を含む、核酸の非特異結合抑制剤。
(2) 前記核酸の塩基長が5~7塩基である、(1)に記載の抑制剤。
(3) 前記グアニン塩基又はメチル化グアニン塩基が、グアニン塩基である(1)又は(2)記載の非特異結合抑制剤。
(4) 前記核酸が連続する5塩基のグアニン塩基配列を有する、(1)~(3)のいずれか1項に記載の抑制剤。
(5) 前記核酸の全塩基がグアニンである、(1)~(3)のいずれか1項に記載の抑制剤。
(6) 前記核酸がDNAである、(1)~(5)のいずれかに記載の抑制剤。
(7) (1)~(6)のいずれかに記載の抑制剤を含む、核酸のハイブリダイゼーション用試薬。
(8) 標的核酸と、当該標的核酸と特異的に結合可能な核酸とをハイブリダイズさせる、核酸のハイブリダイゼーション方法であって、当該ハイブリダイゼーションにおいて(1)~(6)のいずれかに記載の抑制剤を共存させることを含む、方法。
(9) 標的核酸と、当該標的核酸と特異的に結合可能な核酸とをハイブリダイズさせるハイブリダイゼーション工程、および、当該ハイブリダイゼーション工程で形成された核酸複合体を検出する検出工程、とを含む標的核酸の検出方法であって、当該ハイブリダイゼーション工程において(1)~(6)のいずれかに記載の抑制剤を共存させることを含む、検出方法。
(10) 核酸アレイを用いる、(9)に記載の検出方法。
(11) 塩基長が2~11塩基であって、全塩基配列中のグアニン塩基又はメチル化グアニン塩基の含有率が70%以上である核酸の、核酸の非特異結合抑制剤としての使用。
(12) 塩基長が2~11塩基であって、全塩基配列中のグアニン塩基又はメチル化グアニン塩基の含有率が70%以上である核酸の、核酸の非特異結合抑制剤の製造のための使用。
 本発明の核酸の非特異結合抑制剤は、サケ精子DNA等の従来の抑制剤と同等またはそれ以上の非特異結合の抑制効果を有し、かつ、製造ロット間での品質が安定であるためにその選定や調製の労力を不要とするものである。特に、ハイブリダイゼーションによる標的核酸の検出において、クロスハイブリダイゼーションの抑制効果を安定して実現することが可能である。
サケ精子DNA、ランダムプライマーとpoly-dG5のクロスハイブリダイゼーション抑制効果を示す図である(実施例1、2、比較例1、2)。 poly-dG5、poly-dG7およびpoly-dG10のクロスハイブリダイゼーション抑制効果を示す図である(実施例3-8)。 poly-dG5、GGAGG,GGGAGおよびTGGGGのクロスハイブリダイゼーション抑制効果を示す図である(実施例9-12)。 poly-dG5のロット間でのクロスハイブリダイゼーション抑制効果の安定性を示す図である(実施例13)。 サケ精子DNAのロット間でのクロスハイブリダイゼーション抑制効果の不安定性を示す図である(比較例3)。
 本発明の第一の態様(aspect)は、核酸のハイブリダイゼーションの際に生じる非特異結合を抑制するための抑制剤であって、塩基長が2~11塩基であり、当該全塩基配列中のグアニン塩基又はメチル化グアニン塩基の含有率が70%以上である核酸を含むものである。グアニン塩基とメチル化グアニン塩基の両方が含まれる場合には、その合計の含有率が70%以上である。以下の全ての説明において、文脈からそうでないことが明らかな場合を除き、「グアニン」という語は「メチル化グアニン」をも包含する意味で用いている。ただし、実施例(actual working examples)では、「グアニン」は、メチル化されていない通常のグアニンを意味する。また、以下の全ての説明において、メチル化されていない通常のグアニンの方が、メチル化グアニンよりも好ましい。なお、メチル化グアニンの例としては、7-メチルグアニン(m7G)、O6-メチルグアニン(O6-MeG)等を挙げることができる。
 ここで、核酸の「非特異結合」とは、標的とする核酸と、当該標的核酸の配列に相補的な配列を有する核酸(プローブ等)との間でのハイブリダイゼーションの際に生じる、標的核酸の関与する当該ハイブリダイゼーション(特異的結合)以外の全ての結合型反応をいう。
 この核酸の非特異結合の一の態様は、核酸アレイ(DNAマイクロアレイ、DNAチップともいう。)など、標的核酸を検出するために用いる核酸であって当該標的核酸に相補的な塩基配列を有する核酸(核酸プローブ)が固定化された支持体(基板等)を用いる場合に、標的核酸と、標的核酸と類似する配列の相補鎖を有する核酸との間で生じるクロスハイブリダイゼーションである。また、非特異結合の別の態様は、前記標的核酸に相補的な配列を有する核酸が固定化された支持体の材料自体に標的核酸が吸着(ファンデルワールス力による物理吸着、疎水性相互作用による化学吸着のいずれも含まれる。)するものである。本発明における核酸の「非特異結合」には、これらいずれの態様も含まれる。
 本発明の非特異結合抑制剤に含まれる核酸(以下、本明細書において「本発明の核酸」ともいう。)は、その塩基長が2~11塩基であり、より好ましくは5~7塩基であり、さらに好ましくは5塩基である。また、当該核酸の全塩基配列中のグアニン塩基の含有率は70%以上である。
 本発明の核酸の好ましい様態は、複数のグアニン塩基が連続して配列しているものであり、その中でも5塩基のグアニン塩基が連続して並列しているものがより好ましい。
 本発明の核酸は、グアニン塩基以外の塩基を前記の条件に従って含むことが可能であるが、複数種の塩基を混合して目的の配列を有する核酸を合成する場合には、目的外の配列が一定確率で混入する可能性があるので、当該核酸はグアニン塩基1種のみで構成されることがより好ましい。
 本発明の非特異結合抑制剤に含まれる核酸は、一般に使用される核酸合成法によって合成することができ、固相合成法および液相合成法のいずれも当該核酸の合成に使用することが可能である。例えば、固相合成法では、アミダイトと呼ばれる修飾ヌクレオチドモノマーをビーズ上に固相化しておき、オリゴヌクレオチドの配列の3’末端側から5’末端に向けてヌクレオチドモノマーを付加していくことで合成が進行する。すべての鎖長伸長が完了した後に固相ビーズから分離を行うことで、目的の核酸が得られる。液相合成法では、高分散性液相支持体等に同じくヌクレオチドモノマーを付加することで目的の核酸が得られる。
 合成した核酸は、一般に使用される脱塩精製、逆相カラム精製、HPLC精製、PAGE精製等の精製方法により精製して用いてもよい。好ましくは、逆相カラム精製、HPLC精製またはPAGE精製、より好ましくはHPLC精製またはPAGE精製により精製された核酸を用いる。
 本発明の非特異結合抑制剤に含まれる核酸は、DNA、RNAであっても、人工核酸であってよい。人工核酸としては、LNA(Locked Nucleic Acid)、PNA(Peptide Nucleic Acid)、ENA(Ethylene‐Bridged Nucleic Acid)等が挙げられる。また、複数の核酸種を組み合わせて合成した核酸を用いることも可能である。LNA、PNA、ENA等の人工核酸は、酵素安定性が高い一方で、製造コストも高い。したがって、本発明の核酸は、DNAまたはRNAが好ましく、酵素安定性が比較的高いDNAがより好ましい。また、本発明の非特異結合抑制剤に含まれる核酸には、塩基としてアデニン(A)、チミン(T)、シトシン(C)、グアニン(G)、ウラシル(U)以外にイノシン(I)を含有することも可能である。
 本発明の核酸は、修飾塩基を含んでいてもよい。例えば、Cは、5-メチルシトシン(5mC)、5-ヒドロキシメチルシトシン(5hmC)、5-ホルミルシトシン(5fC)、5-カルボキシルシトシン(5caC)等としても含むこともできる。また、上記のとおり、Gは、7-メチルグアニン(m7G)、O6-メチルグアニン(O6-MeG)等として、または2’-O-メチルリボヌクレオシドとして含むことも可能である。
 また、本発明の核酸は、その5’末端、3’末端のいずれか一方または両方が、リン酸基、アルキル基、アルコキシ基、アミノ基、アデニル基、ビオチン、チオール、ハロゲン、蛍光色素等により修飾されていてもよく、これに限定されず、その使用目的に応じて任意の修飾基を用いることができる。
 本発明の非特異結合抑制剤に含まれる核酸は、その塩基長が2塩基または3塩基の場合は、すべてがグアニン塩基により構成される。
 本発明の核酸は、その塩基長が4塩基の場合は、グアニン塩基3塩基および任意の1塩基(グアニン塩基でもよい)で構成され、当該1塩基の配置される位置は当該配列中で任意である。当該1塩基がグアニン塩基である場合は、全てがグアニン塩基のみにより構成され(すなわち、塩基配列が「GGGG」)、より好ましい配列である。
 本発明の核酸は、その塩基長が5塩基の場合は、グアニン塩基4塩基および任意の1塩基(グアニン塩基であってもよい)で構成され、当該1塩基の配置される位置は当該配列中で任意である。例えば、当該1塩基がアデニン塩基でかつ5’末端から3番目に位置する核酸(核酸名(DNA):「GGAGG」)、および当該1塩基がアデニン塩基でかつ5’末端から4番目に位置する核酸(核酸名(DNA):「GGGAG」)、および当該1塩基がチミン塩基でかつ5’末端から1番目に位置する核酸(核酸名(DNA):「TGGGG」)等がこれらに含まれる。また、当該1塩基がグアニン塩基である場合は、全てがグアニン塩基のみである連続する5塩基により構成され(すなわち、塩基配列が「GGGGG」)、特に好ましい核酸である(核酸名(DNA):「poly-dG5」)。
 本発明の核酸は、その塩基長が6塩基の場合は、グアニン塩基5塩基および任意の1塩基(グアニン塩基であってもよい)で構成され、当該1塩基の配置される位置は当該配列中で任意である。このうち、連続するグアニン5塩基の配列を有し、そのいずれかの末端に任意の1塩基を含む構成が好ましい。また、当該任意の1塩基がグアニン塩基である場合は、全てがグアニン塩基のみである連続する6塩基により構成され(すなわち、塩基配列が「GGGGGG」)、より好ましい配列である。
 本発明の核酸は、その塩基長が7塩基の場合は、グアニン塩基5塩基および任意の2塩基(グアニン塩基であってもよい)で構成され、当該2塩基の配置される位置は当該配列中で任意である。このうち、連続するグアニン5塩基の配列を有し、その両末端に任意の1塩基ずつを含むことまたはいずれかの末端に任意の2塩基を含むことが好ましい。また、当該2塩基がどちらもグアニン塩基である場合は、全てがグアニン塩基のみである連続する7塩基により構成され(すなわち、塩基配列が「GGGGGGG」)、より好ましい配列である。
 本発明の核酸は、その塩基長が8塩基の場合は、グアニン塩基6塩基および任意の2塩基(グアニン塩基であってもよい)で構成され、当該2塩基の配置される位置は当該配列中で任意である。このうち、連続するグアニン6塩基の配列を有し、その両末端に任意の1塩基ずつを含むことまたはそのいずれかの末端に任意の2塩基を含むことが好ましい。また、当該2塩基がどちらもグアニン塩基である場合は、全てがグアニン塩基のみである連続する8塩基により構成され(すなわち、塩基配列が「GGGGGGGG」)、より好ましい配列である(核酸名(DNA):「poly-dG8」)。
 本発明の核酸は、その塩基長が9塩基の場合は、グアニン塩基7塩基および任意の2塩基(グアニン塩基を含む)で構成され、当該2塩基の配置される位置は当該配列中で任意である。このうち、連続するグアニン7塩基の配列を有し、その両末端に任意の1塩基ずつを含むことまたはそのいずれかの末端に任意の2塩基を含むことが好ましい。また当該2塩基がどちらもグアニン塩基である場合は、全てがグアニン塩基のみである連続する9塩基により構成され(すなわち、塩基配列が「GGGGGGGGG」)、より好ましい配列である。
 本発明の核酸は、その塩基長が10塩基の場合は、グアニン塩基7塩基および任意の3塩基(グアニン塩基を含む)で構成され、当該3塩基の配置される位置は当該配列中で任意である。このうち、連続するグアニン7塩基の配列を有し、その両末端に任意の1塩基もしくは2塩基を含むことまたはそのいずれかの末端に任意の3塩基を含むことが好ましい。また、当該3塩基の全てがグアニン塩基である場合は、全てがグアニン塩基のみである連続する10塩基により構成され、より好ましい配列である(核酸名(DNA):「poly-dG10」、配列番号1)。
 本発明の核酸は、その塩基長が11塩基の場合は、グアニン塩基8塩基および任意の3塩基(グアニン塩基を含む)で構成され、当該3塩基の配置される位置は当該配列中で任意である。このうち、連続するグアニン8塩基の配列を有し、その両末端に任意の1塩基もしくは2塩基を含むことまたはそのいずれかの末端に任意の3塩基を含むことが好ましい。また、当該3塩基の全てがグアニン塩基である場合は、全てがグアニン塩基のみである連続する11塩基により構成され、より好ましい配列である(配列番号2)。
 本発明の第二の態様は、核酸のハイブリダイゼーションにおいて使用するハイブリダイゼーション用試薬であって、本発明の核酸を含む試薬である。
 本発明のハイブリダイゼーション用試薬は、本発明の核酸を含む溶液として調製できる。本発明のハイブリダイゼーション用試薬に含まれる本発明の核酸の濃度は、0.3μM-100μMが好ましい。高濃度の核酸溶液は粘性を有するために、実験操作および製造管理の観点から、0.3μM-30μMで使用することがより好ましい。本発明の核酸の濃度は、使用目的や使用方法に応じて適宜選択することができる。
 本発明のハイブリダイゼーション用試薬は、多糖を含むことができ、好ましくはデキストラン硫酸ナトリウムを含むことができる。デキストラン硫酸ナトリウムは、その水和作用により標的核酸の濃度を高めた状態を模倣できることから、ハイブリダイゼーションの反応速度を高める効果が期待できる。デキストラン硫酸ナトリウムの濃度は、1-30重量%が好ましく、より好ましくは1-20重量%であり、さらに3-10重量%で使用することが最も好ましい。また、デキストラン硫酸ナトリウムの分子量は3,000-100,000Daの範囲で利用することが可能である。より好ましくは、分子量5,000-30,000Daのデキストラン硫酸ナトリウムを使用する。
 本発明のハイブリダイゼーション用試薬には、変性剤を含むことができる。例えば、ホルムアミドまたはジメチルスルホキシドを含むことができる。ホルムアミドまたはジメチルスルホキシドは、核酸塩基間の水素結合を弱める作用があり、水素結合数の異なるA-T間、G-C間の結合親和性を調節することにより、ハイブリダイゼーションの結合特異性を向上させる効果が期待できる。ホルムアミドの濃度は、1-50容量%が好ましく、より好ましくは1-30容量%であり、さらに3-25容量%で使用することが最も好ましい。ジメチルスルホキシドの濃度は、1-40容量%が好ましく、より好ましくは1-20容量%であり、3-10容量%で使用することが最も好ましい。
 本発明のハイブリダイゼーション用試薬には、タンパク質に対する非特異的吸着の抑制剤を含むこともできる。当該抑制剤としては、牛血清アルブミン(BSA)を用いることが好ましい。BSAは、バックグラウンドノイズとなる非特異的吸着を抑制することにより、シグナル/ノイズ比が向上する効果が期待できる。BSA等の非特異的吸着抑制剤の濃度は、1-100mg/mLが好ましく、より好ましくは5-50mg/mLであり、10mg/mLで使用することが最も好ましい。
 本発明のハイブリダイゼーション用試薬には、ハイブリダイゼーション反応の感度を高めるために有用な物質を含んでもよい。例えば、ハイブリダイゼーション反応中に生じる気泡は、ハイブリダイゼーション反応を物理的に阻害するおそれがあるため、気泡の発生を抑制する消泡剤等を含んでいてもよい。消泡剤の例としては、界面活性剤であるTween20(商品名)、Tween60(商品名)、Triton X-100(商品名)、あるいはシリコーンオイル等を挙げることができる。また、消泡剤の使用濃度は、特に限定されず、通常、0.001-10重量%程度、好ましくは0.01-1重量%程度である。
 本発明のハイブリダイゼーション用試薬は、上記した本発明の核酸を含むこと以外は周知の組成を採用することができ、具体的な調製例としては、例えば、「Ku WC.ら、Biochemical and Biophysical Research Communications、2004年、第315巻、1号、p.30-37」に記載の組成を参考として、「6×SSPE、0.1%SDS、25%ホルムアミド、10mg/mL BSA、10%デキストラン硫酸ナトリウム、15μM poly-dG5」とすることができる。
 本発明の第三の態様は、核酸のハイブリダイゼーション方法であって、本発明の核酸の非特異結合抑制剤を共存させて、または本発明のハイブリダイゼーション用試薬を使用して、ハイブリダイゼーションを行う方法である。
 核酸のハイブリダイゼーション方法自体は、上記した本発明の核酸を共存させること以外は、周知の方法で行うことができ、例えば、「Sambrook,J.ら、(1998) Molecular Cloning:A Laboratory Manual (2nd ed.),Cold Spring Harbor Laboratory Press,New York」に記載された方法を用いることができる。具体的には、予め相補鎖核酸プローブが固定化された支持体に、標的核酸と本発明の非特異的結合抑制剤または本発明のハイブリダイゼーション用試薬を添加し、一定温度にてインキュベートすることにより、ハイブリダイゼーションを行うことができる。本発明の非特異的結合抑制剤または本発明のハイブリダイゼーション用試薬の添加前に、標的核酸を高温にて一定時間熱変性させることで、より核酸結合の特異性を向上させることも可能である。また、標的核酸と相補鎖核酸プローブ、および本発明の非特異的結合抑制剤またはハイブリダイゼーション用試薬を混合し、一定温度にてインキュベートすることによりハイブリダイゼーションを行った後に、相補鎖核酸プローブを支持体に固定化することも可能である。
 本発明の第四の態様は、核酸の検出方法であって、本発明の核酸の非特異結合抑制剤を共存させてまたは本発明のハイブリダイゼーション用試薬を用いて、標的核酸とこれに特異的に結合可能な核酸とをハイブリダイゼーションさせる工程と、当該ハイブリダイゼーションで形成された核酸複合体を検出する工程とを含む方法である。
 標的核酸とこれに特異的に結合可能な核酸とをハイブリダイゼーションさせる工程は、上記の本発明の第三の態様に記載した核酸のハイブリダイゼーション方法をそのまま適用して実施することができる。
 ハイブリダイゼーション工程で形成された核酸複合体を検出する工程自体は、周知の核酸の検出方法を適用して行うことができる。例えば、ハイブリダイゼーション工程において、予め標的核酸を標識分子により標識することにより、核酸複合体の量を標識分子の量として検出することができる。標識分子としては、有機蛍光色素、燐光色素、量子ドット、蛍光タンパク質などの蛍光体、化学発光タンパク質、放射性同位体、電子の授受が可能な酸化還元種、アルカリフォスファターゼやホースラディッシュペルオキシダーゼなどの酵素自体、またはこれらの標識分子を含む核酸モノマー等を用いることができる。標識分子を含む核酸モノマーの場合は、標的核酸の末端に酵素反応的に導入することで標識可能である。
 核酸複合体の検出は、感度面や簡便性から標識分子として蛍光体を用いることが好ましく、その場合は、核酸複合体の量を蛍光体の発する蛍光シグナル値として蛍光顕微鏡やプレートリーダー等で測定することが可能である。
 核酸複合体の検出は、標的核酸とこれに特異的に結合可能な核酸プローブとの結合を、核酸インターカレーターの蛍光波長変化として検出することも可能である。核酸インターカレーターとしては、エチジウムブロマイド、「SYBR(登録商標)Green」、またはこれらの代替製品を使用することができる。例えば、核酸アレイを用いたハイブリダイゼーション工程後、標的核酸と核酸プローブとの複合体が形成された核酸アレイを核酸インターカレーター液に浸漬し、緩衝液等で洗浄した後、核酸複合体の量を核酸インターカレーターの発する蛍光シグナル値として蛍光顕微鏡やプレートリーダーで測定することが可能である。
 複合体核酸の検出は、in situ ハイブリダイゼーション、コロニーハイブリダイゼーション、ドットブロッティング、サザンブロッティング、ノーザンブロッティングなどの公知の方法、また、標的核酸に特異的に結合する核酸であって標的核酸に相補的な塩基配列を有する核酸(核酸プローブ)が支持体に固定化された核酸アレイ(DNAマクロアレイ、DNAチップ等)を用いて実施され得る。
 核酸アレイとしては、一般に販売されているものを用いることができる。例えば、アフィメトリックス社の「GeneChip(登録商標)Arrays」、アジレント・テクノロジー社のオリゴDNAチップ、東レ社の「3D-Gene(登録商標)」などが挙げられるが、支持体が樹脂製であるために核酸の物理的吸着が少なく、ハイブリダイゼーション溶液をマイクロビーズで攪拌することにより攪拌効率が向上した東レ社の「3D-Gene(登録商標)」を使用することが好ましい。
 以下の実施例により本発明を具体的に説明するが、本発明は、実施例の範囲に限定されるものではなく、単に特許請求する発明について考えられる多くの実施形態のうちのいくつかを記載したにすぎない。
実施例1、2、比較例1、2
 核酸アレイとして、東レ社製のDNAマイクロアレイ「3D-Gene(登録商標) human miRNA oligo chip(miRBase release 21対応)」を用い、クロスハイブリダイゼーションを生じ得るmiRNAであるhsa-miR-6858-5p(miRBase Accession No.MIMAT0027616、配列番号3)を標的核酸として選択し、ハイブリダイゼーション反応における本発明の核酸の非特異結合抑制剤のクロスハイブリダイゼーション抑制効果を評価した。
 標的核酸hsa-miR-6858-5pは、5’末端リン酸基修飾体として化学合成した(ファスマック社委託合成、HPLC精製グレード)。この標的核酸を蒸留水に溶解して2.5fmol/μLに調製し、その5fmol分を「3D-Gene(登録商標)miRNA labeling kit」(東レ社)を用いて蛍光標識し、その標準プロトコールに従い、前記核酸アレイを用いてハイブリダイゼーションを行った。
 核酸の非特異結合抑制剤として「poly-dG5」(ファスマック社委託合成、逆相カラム精製グレード)を用い、「miRNA Hybridization buffer V3」に対して、それぞれ最終濃度1μM(実施例1)、10μM(実施例2)となるようにハイブリダイゼーション溶液を調製し、ハイブリダイゼーションに用いた。
 また、比較対照として、サケ精子DNA(Invitrogen社、型番:15632011)を最終濃度92μg/mL(比較例1)、「Random Primer(N)9」(タカラバイオ社、型番:3802)を最終濃度6.5μg/mL(2.2μM相当)(比較例2)として、それぞれハイブリダイゼーション溶液を調製し、ハイブリダイゼーションを行った。
 ハイブリダイゼーション後のDNAマイクロアレイを「マイクロアレイスキャナー」(東レ社)に供して蛍光強度を測定した。スキャナーの設定は、レーザー出力100%、フォトマルチプライヤーの電圧設定をAUTO設定にした。数値化ソフトウェア「“3D-Gene” Extraction」(東レ社)を用いて、得られたスキャン画像の各スポットの蛍光強度をシグナル値として数値化した。標的核酸のシグナル値と、クロスハイブリダイゼーションとして検出されたシグナルのうち最も高かったhsa-miR-4498(miRBase Accession No.MIMAT0019033、配列番号4)のシグナル値との比(hsa-miR-6858-5pのシグナル値/hsa-miR-4498のシグナル値)をS/N比として算出した。
 その結果を図1に示す。核酸の非特異結合抑制剤を非添加の場合のS/N比(1.58)と比べて、サケ精子DNAを添加した場合のS/N比は、2.78に向上しており、クロスハイブリダイゼーションの抑制効果が認められた。Random Primer(N)9を添加した場合のS/N比は1.33であり、クロスハイブリダイゼーションの抑制効果が認められなかった。一方、本発明の非特異結合抑制剤であるpoly-dG5を1μM、10μMの濃度で用いた場合には、それぞれS/N比は1.95、2.47となり、添加濃度に応じてクロスハイブリダイゼーションの抑制効果が向上した。つまり、poly-dG5は、少なくとも1μM以上の濃度でクロスハイブリダイゼーションの抑制効果を示すことがわかった。
実施例3-8
 核酸の非特異結合抑制剤として、「poly-dG5」(ファスマック社委託合成、HPLC精製グレード)を最終濃度10μM(実施例3)、15μM(実施例4)となるように、また「poly-dG7」(ファスマック社委託合成、HPLC精製グレード)を最終濃度10μM(実施例5)、15μM(実施例6)となるように、また「poly-dG10」(ファスマック社委託合成、HPLC精製グレード、配列番号1)を最終濃度10μM(実施例7)、15μM(実施例8)となるように、それぞれハイブリダイゼーション溶液を調製し、ハイブリダイゼーションに用いたこと以外は、実施例1と同様にして、標的核酸hsa-miR-6858-5pのハイブリダイゼーションを行い、クロスハイブリダイゼーションの抑制効果を評価した。
 その結果を図2に示す。poly-dG5を10μM、15μMで添加した場合、S/N比はそれぞれ3.11、3.92へと向上し、サケ精子DNA(比較例1)以上のクロスハイブリダイゼーションの抑制効果を発揮した。また、poly-dG7を10μM、15μMで添加した場合、poly-dG10を10μM、15μMで添加した場合、非添加の場合と比べて、それぞれS/N比が向上した。この結果から、塩基長が5-10であるグアニン塩基連続配列を有する核酸は、クロスハイブリダイゼーションの抑制効果を有しており、なかでもpoly-dG5(15μM)は突出して高いクロスハイブリダイゼーションの抑制効果を示すことがわかった。
実施例9-12
 核酸の非特異結合抑制剤として、「poly-dG5」(ファスマック社委託合成、逆相カラム精製グレード)(実施例9)、「GGAGG」(ファスマック社委託合成、HPLC精製グレード)(実施例10)、「GGGAG」(ファスマック社委託合成、HPLC精製グレード)(実施例11)、「TGGGG」(ファスマック社委託合成、HPLC精製グレード)(実施例12)を最終濃度15μMとなるように、それぞれハイブリダイゼーション溶液を調製し、ハイブリダイゼーションに用いたこと以外は、実施例1と同様にして、標的核酸hsa-miR-6858-5pのハイブリダイゼーションを行い、クロスハイブリダイゼーションの抑制効果を評価した。
 その結果を図3に示す。本発明のいずれの核酸の非特異結合抑制剤を添加した場合にも、非添加の場合と比べて、S/N比が向上した。この結果から、高いクロスハイブリダイゼーションの抑制効果を示したpoly-dG5のようなグアニン塩基のみで構成される核酸ではなくても、グアニン塩基を高率に含む核酸は総じてクロスハイブリダイゼーションの抑制効果を有することがわかった。
実施例13
 本発明の核酸の非特異結合抑制剤の製造ロット差によるクロスハイブリダイゼーション抑制効果への影響を評価した。
 核酸の非特異結合抑制剤として、「poly-dG5」(ファスマック社委託合成、逆相カラム精製グレード)の異なる製造ロットを4ロット用意し、実施例4(または実施例9)と同様にして、それぞれ最終濃度15μMとなるようハイブリダイゼーション溶液を調製し、各ロットについて4回ずつ(N=4;4ロット合計で測定N=16)ハイブリダイゼーションを行った。
 その結果を図4に示す。poly-dG5の各ロット(N=4)のS/N比の平均値およびCV値は、ロット1:平均値3.75およびCV値4.25%、ロット2:平均値3.79およびCV値3.82%、ロット3:平均値3.69およびCV値4.22%、ロット4:平均値3.60およびCV値5.33%であり、4ロット全体では平均値3.71およびCV値4.47%であった。本発明の核酸の非特異結合抑制剤は、製造ロット間での大きな性能差はなく、安定したクロスハイブリダイゼーションの抑制効果を発揮した。
比較例3
 従来使用されてきた核酸の非特異結合抑制剤として、サケ精子DNA(Invitrogen社、型番:15632011)の異なる製造ロットを4ロット用意し、実施例13と同様にして、それぞれ最終濃度92μg/mLとなるようハイブリダイゼーション溶液を調製し、各ロットについて4回ずつ(N=4;4ロット合計で測定N=16)ハイブリダイゼーションを行った。
 その結果を図5に示す。サケ精子DNAの各ロット(N=4)のS/N比の平均値およびCV値は、ロット1:平均値2.43およびCV値3.24%、ロット2:平均値2.72およびCV値5.26%、ロット3:平均値2.90およびCV値3.20%、ロット4:平均値2.63およびCV値5.51%であり、4ロット全体では平均値2.67およびCV値7.75%であった。本発明の核酸の非特異結合抑制剤と比較して、従来使用されてきたサケ精子DNAは、クロスハイブリダイゼーションの抑制効果に大きなロット間差が存在することが示された。
配列番号1: Designed Sequence, poly-dG10
配列番号2: Designed Sequence

Claims (12)

  1.  塩基長が2~11塩基であって、全塩基配列中のグアニン塩基又はメチル化グアニン塩基の含有率が70%以上である核酸を含む、核酸の非特異結合抑制剤。
  2.  前記核酸の塩基長が5~7塩基である、請求項1に記載の抑制剤。
  3.  前記グアニン塩基又はメチル化グアニン塩基がグアニン塩基である請求項1又は2記載の非特異結合抑制剤。
  4.  前記核酸が連続する5塩基のグアニン塩基配列を有する、請求項1~3のいずれか1項に記載の抑制剤。
  5.  前記核酸の全塩基がグアニンである、請求項1~3のいずれか1項に記載の抑制剤。
  6.  前記核酸がDNAである、請求項1~5のいずれかに記載の抑制剤。
  7.  請求項1~6のいずれかに記載の抑制剤を含む、核酸のハイブリダイゼーション用試薬。
  8.  標的核酸と、当該標的核酸と特異的に結合可能な核酸とをハイブリダイズさせる、核酸のハイブリダイゼーション方法であって、当該ハイブリダイゼーションにおいて請求項1~6のいずれかに記載の抑制剤を共存させることを含む、方法。
  9.  標的核酸と、当該標的核酸と特異的に結合可能な核酸とをハイブリダイズさせるハイブリダイゼーション工程、および、当該ハイブリダイゼーション工程で形成された核酸複合体を検出する検出工程、とを含む標的核酸の検出方法であって、当該ハイブリダイゼーション工程において請求項1~6のいずれかに記載の抑制剤を共存させることを含む、検出方法。
  10.  核酸アレイを用いる、請求項9に記載の検出方法。
  11.  塩基長が2~11塩基であって、全塩基配列中のグアニン塩基又はメチル化グアニン塩基の含有率が70%以上である核酸の、核酸の非特異結合抑制剤としての使用。
  12.  塩基長が2~11塩基であって、全塩基配列中のグアニン塩基又はメチル化グアニン塩基の含有率が70%以上である核酸の、核酸の非特異結合抑制剤の製造のための使用。
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EP19877948.0A EP3875586A4 (en) 2018-10-30 2019-10-29 NUCLEIC ACID NON-SPECIFIC BINDING INHIBITOR, HYBRIDIZATION REAGENT AND NUCLEIC ACID HYBRIDIZATION PROCEDURE
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Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010029174A (ja) 2008-06-27 2010-02-12 Toray Ind Inc ハイブリダイゼーション溶液

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6582908B2 (en) * 1990-12-06 2003-06-24 Affymetrix, Inc. Oligonucleotides
AU2004203808A1 (en) * 1998-09-03 2004-09-02 Coley Pharmaceutical Gmbh G-Motif Oligonucleotides and Uses Thereof
EP1432826B1 (en) * 2001-09-24 2012-12-12 Life Technologies Corporation Methods, kits and compositions pertaining to the suppression of detectable probe binding to randomly distributed repeat sequences in genomic nucleic acid
EP1979490A4 (en) 2005-11-18 2009-12-23 Childrens Mercy Hospital REDUCING THE DEFORMATION OF Cot-1 DNA IN THE HYBRIDIZATION OF NUCLEIC ACIDS
EP2125854B1 (en) * 2006-12-12 2016-10-26 Kuros Biosciences AG Oligonucleotides containing high concentrations of guanine monomers
US10662465B2 (en) * 2011-09-30 2020-05-26 Agilent Technologies, Inc. Hybridization compositions and methods using formamide
WO2017121494A1 (en) * 2016-01-15 2017-07-20 Riboxx Gmbh 5'-triphosphated short immunostimulatory nucleotides, oligonucleotides and polynucleotides

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010029174A (ja) 2008-06-27 2010-02-12 Toray Ind Inc ハイブリダイゼーション溶液

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"Implementation of DNA Microarray Hybridization Protocols, Translation of Manual Methods to Tecan Hybridization Station", 22 October 2018, TECAN JAPAN CO., LTD.
KU WC. ET AL., BIOCHEMICAL AND BIOPHYSICAL RESEARCH COMMUNICATIONS, vol. 315, 2004, pages 30 - 37
MATVEEVA, 0. V. ET AL.: "Optimization of signal- to-noise ratio for efficient microarray probe design", BIOINFORMATICS, vol. 32, 2016, pages i552 - i558, XP055704480 *
PAN SJ ET AL., BMC GENOMICS, vol. 3, 2002, pages 1 - 12
SAMBROOK, J. ET AL.: "Molecular Cloning: A Laboratory Manual", 1998, COLD SPRING HARBOR LABORATORY PRESS
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