WO2020050303A1 - リパーゼ加水分解反応を用いる高度不飽和脂肪酸含有グリセリドの製造方法 - Google Patents

リパーゼ加水分解反応を用いる高度不飽和脂肪酸含有グリセリドの製造方法 Download PDF

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lipase
glyceride
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microorganism
derived
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勇二 廣内
潔大 山▲崎▼
菜採子 渡邊
降旗　清代美
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日本水産株式会社
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    • C12P7/6427—Polyunsaturated fatty acids [PUFA], i.e. having two or more double bonds in their backbone
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14—Hydrolases (3)
    • C12N9/16—Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
    • C12N9/18—Carboxylic ester hydrolases (3.1.1)
    • C12N9/20—Triglyceride splitting, e.g. by means of lipase

Definitions

  • the present invention relates to a method for producing a highly unsaturated fatty acid-containing glyceride using a lipase hydrolysis reaction.
  • Polyunsaturated fatty acids are not only essential nutrients for the growth of vertebrates including humans, but in recent years there have been many reports of their involvement in cardiovascular and inflammatory diseases. In particular, there are many reports that ingestion of n-3 highly unsaturated fatty acids such as docosahexaenoic acid (DHA) and eicosapentaenoic acid (EPA) is useful for human health. It has been reported that the ratio of the intake of n-3 polyunsaturated fatty acids to the intake of n-6 polyunsaturated fatty acids is important. In modern society, energy intake, saturated fatty acid intake and n-6 polyunsaturated fatty acid intake tend to increase and n-3 polyunsaturated fatty acid intake tend to decrease, It has been thought to be related to diseases.
  • DHA docosahexaenoic acid
  • EPA eicosapentaenoic acid
  • n-3 polyunsaturated fatty acids Fish oil is a fat and oil rich in n-3 polyunsaturated fatty acids, and their intake is widely recommended.
  • n- A device for concentrating tertiary highly unsaturated fatty acids has been devised. Enrichment of polyunsaturated fatty acids using the lipase reaction is one of them.
  • Lipase is an enzyme that catalyzes the reaction of hydrolyzing oils and fats into free fatty acids and glycerin, and it is known that various animals, plants and microorganisms have lipase. Certain lipases do not act on all fatty acids in the same way, and their reactivity varies depending on the bonding position in glyceride, the carbon chain length of the fatty acid, the number of double bonds, and the like. Therefore, fatty acids can be selectively hydrolyzed using such a lipase, and as a result, specific fatty acids can be concentrated in the glyceride fraction. For example, a technique for enriching a polyunsaturated fatty acid in a glyceride fraction using a lipase derived from Candida cylindracea has been known for a long time (Patent Document 1).
  • Hydrolysis by lipase is an effective method for enriching polyunsaturated fatty acids. As the hydrolysis of a fatty acid other than the target polyunsaturated fatty acid proceeds, the polyunsaturated fatty acid in the glyceride fraction is more concentrated.
  • Patent Document 2 In the method of enriching highly unsaturated fatty acids in a glyceride fraction by a hydrolysis reaction with lipase, a method of reducing the ratio of saturated fatty acids in the glyceride fraction by performing the hydrolysis reaction at a low temperature of 25 ° C. or lower. has been reported (Patent Document 2).
  • Patent Document 3 discloses that the use of a combination of a lipase derived from Candida dicilindose, a lipase derived from the genus Rhizopus, and a chromobacterium lipase allows the use of each lipase more than when each lipase is used alone. It is stated that glycerides with a high DHA content are obtained.
  • Patent Document 4 discloses that a lipase derived from Mucor miehei, a lipase derived from Candida cylindrase, or a lipase derived from Rhizopus oryzae is used in combination with a lipase derived from Penicillium camermberti, so that DHA to a glyceride fraction is obtained. It is disclosed that the selective enrichment of EPA is improved, thereby producing oils and fats containing highly unsaturated fatty acids with an increased ratio of DHA to EPA.
  • Patent Document 5 discloses that after enriching polyunsaturated fatty acids in glyceride with a lipase that acts on triglycerides, DHA is used as a free fatty acid by hydrolyzing a lipase that acts on triglycerides in combination with a partial glyceride lipase. A method for obtaining a composition containing a high concentration is disclosed.
  • Patent Document 6 discloses that a free fatty acid containing a high concentration of DHA is obtained by hydrolyzing a combination of a lipase derived from the genus Alcaligenes, which preferentially hydrolyzes the sn-1,3 positions of triglyceride, and a partial glyceride lipase. A method of obtaining is disclosed.
  • JP-A-58-165796 International Publication No. 2011/149040 JP-A-7-268382 WO 98/18952 JP 2004-208546 A JP 2017-73980 A
  • An object of the present invention is to provide a novel means for concentrating DHA in a glyceride fraction using a plurality of lipases in combination.
  • the present inventors have conducted intensive studies to achieve the above-mentioned object, and as a result, by using a specific lipase that concentrates docosahexaenoic acid in glyceride in combination with a partial glyceride lipase, compared with the case where the glyceride is used alone. Also found that DHA concentration in the glyceride fraction could be significantly increased. As described above, lipase derived from Candida cylindrase and the like are used to concentrate DHA in the glyceride fraction. However, although the DHA concentration can be increased by repeating the reaction multiple times, the lipase that can stably increase the DHA concentration in the glyceride fraction to a sufficient concentration in one hydrolysis reaction is limited. ing.
  • the present invention is as follows.
  • a method for producing a composition containing docosahexaenoic acid as a constituent fatty acid of glyceride Performing a hydrolysis reaction by applying a first lipase and a second lipase to a raw oil containing glyceride containing docosahexaenoic acid as a constituent fatty acid, thereby increasing the proportion of docosahexaenoic acid in the glyceride fraction.
  • the first lipase is at least one lipase selected from the group consisting of lipases derived from Thermomyces microorganisms, lipases derived from Pseudomonas microorganisms, lipases derived from Burkholderia microorganisms, and lipases derived from Alcaligenes microorganisms.
  • the above method, wherein the second lipase is a partial glyceride lipase.
  • thermomyces genus microorganism is Thermomyces lanuginosus
  • the Pseudomonas microorganism is Pseudomonas fluorescens
  • Burkholderia microorganism is Burkholderia cepacia
  • the Alcaligenes microorganism is Alcaligenes sp.
  • Method. [3] The method of [1] or [2], wherein the partial glyceride lipase is a lipase derived from a microorganism of the genus Penicillium.
  • the microorganism of the genus Penicillium is Penicillium camemberti.
  • a third lipase which concentrates docosahexaenoic acid other than the first lipase, is applied to the raw material oil simultaneously with the first lipase and the second lipase or at a time lag, [1] to [7] ]
  • a composition in which the proportion of DHA in the constituent fatty acids of the glyceride fraction is increased by using a plurality of lipases in combination is increased by using a plurality of lipases in combination.
  • DHA can be concentrated to the same degree as a lipase derived from Candida cylindrase conventionally used industrially.
  • BRIEF DESCRIPTION OF THE DRAWINGS It is a figure which shows the ratio of DHA and SFA in a glyceride fraction of the lipase reaction liquid prepared from tuna deacidified oil by various lipases alone or in combination with lipase G.
  • BRIEF DESCRIPTION OF THE DRAWINGS It is a figure which shows the ratio of DHA, EPA, MUFA, and SFA in a glyceride fraction of a lipase reaction liquid prepared from tuna deacidified oil by using lipozyme TL # 100L and lipase G in combination.
  • DHA docosahexaenoic acid
  • EPA Eicosapentaenoic acid
  • MUFA monounsaturated fatty acids
  • SFA Saturated fatty acids
  • TAG triacylglycerol or triglyceride
  • DAG diacylglycerol or diglyceride
  • MAG monoacylglycerol or monoglyceride
  • the present invention is a method for producing a composition containing docosahexaenoic acid as a constituent fatty acid of glyceride, wherein a first lipase and a second lipase are allowed to act on a feedstock oil containing glyceride containing docosahexaenoic acid as a constituent fatty acid.
  • a hydrolysis reaction thereby increasing the proportion of docosahexaenoic acid in the glyceride fraction, wherein the first lipase is a lipase that concentrates docosahexaenoic acid in glyceride, specifically, a microorganism of the genus Thermomyces.
  • the method (hereinafter referred to as lipase) Relates may be referred to the production method of the present invention).
  • a polyunsaturated fatty acid is a fatty acid having 18 or more carbon atoms and 3 or more double bonds, for example, a fatty acid having 20 or more carbon atoms, 3 or 4 or more double bonds, or 20 or more carbon atoms and 2 A fatty acid having 5 or more heavy bonds.
  • ⁇ -linolenic acid (18: 3, n-3), ⁇ -linolenic acid (18: 3, n-6), dihomo- ⁇ -linolenic acid (20: 3, n-6), arachidonic acid (20: 4, n-6), eicosapentaenoic acid (20: 5, n-3), docosapentaenoic acid (22: 5, n-6), docosahexaenoic acid (22: 6, n-3), etc.
  • These are known to be contained in large amounts in certain microbial oils, vegetable oils, marine animal oils, and the like.
  • fish oils such as sardines, tuna, bonito, crustaceans such as krill, marine animal oils of sea animals such as seals, sesame, flax, soybeans, vegetable oils collected from rapeseed, etc.
  • Mortierella (Mortierella) genus examples include oils produced by microorganisms belonging to the genus Penicillium, the genus Aspergillus, the genus Rhodotorula, and the genus Fusarium.
  • a composition containing docosahexaenoic acid as a constituent fatty acid of glyceride means a glyceride composition containing glyceride to which docosahexaenoic acid is bound.
  • the glyceride composition is a composition containing glyceride as a main component, and the glyceride is, for example, 80% by mass or more, 85% by mass or more, 90% by mass or more, 95% by mass or more, 99% by mass or more, 99.5% by mass or more, or 99.9% by mass or more.
  • glycerides include triglycerides, diglycerides, and monoglycerides.
  • the raw material oil in the production method of the present invention may be any oil containing glyceride containing docosahexaenoic acid as a constituent fatty acid.
  • Docosahexaenoic acid may be bonded to any of the sn-1, sn-2, and sn-3 positions of glycerin.
  • Examples of the raw material oil include oils derived from natural products that are known to contain a large amount of the above-mentioned highly unsaturated fatty acids.
  • marine animal oils for example, sardine oil, tuna oil, bonito oil, Microorganisms belonging to the genus Krill oil, seal oil, vegetable oils (eg, sesame oil, linseed oil, soybean oil, rapeseed oil, etc.) and microbial oils (eg, Mortierella, Penicillium, Aspergillus, Rhodotorula, Fusarium) Oil produced).
  • microbial oils eg, Mortierella, Penicillium, Aspergillus, Rhodotorula, Fusarium Oil produced. It is preferable to select a raw material oil containing at least a certain amount of docosahexaenoic acid in the constituent fatty acids of glyceride, preferably at least 10 area%, at least 15 area%, more preferably at least 20 area%.
  • the area is preferably 70% by area or less, 65% by area or less, and more preferably 60% by area or less. That is, it is preferable to use a feedstock oil containing docosahexaenoic acid at 10 to 70 area%, 10 to 65 area%, 15 to 65 area%, more preferably 10 to 60 area%, 15 to 60 area%, and 20 to 60 area%. preferable.
  • the feedstock oil in the production method of the present invention is fish oil, preferably tuna oil or bonito oil.
  • these oils can be used as they are, refined or concentrated.
  • processing residues generated from whole fish or fish processing such as the head, skin, bones, and internal organs, are crushed and steamed, then squeezed and separated into broth (stick water, SW) and pressed meal.
  • Crude oil can be prepared by separating the oil or fat obtained with the broth from the broth by centrifugation.
  • Crude oil is refined fish oil through a refining process such as degumming, deacidification, decolorization, and deodorization.
  • Crude oil may be refined by thin-film distillation (for example, molecular distillation or short-path distillation) or alkali deacidification.
  • the feedstock oil in the production method of the present invention is fish oil processed by short-path distillation, preferably tuna oil processed by short-path distillation.
  • the first lipase in the present invention is a lipase that concentrates docosahexaenoic acid in the glyceride fraction, hardly acts on docosahexaenoic acid in the constituent fatty acids of glyceride, and docosahexaenoic acid in the constituent fatty acids of the glyceride fraction after the hydrolysis reaction.
  • Lipases that concentrate docosahexaenoic acid in glycerides and have the above properties are lipases derived from microorganisms of the genus Alcaligenes (Alcaligenes) (eg, Lipase QLM, Lipase QLC, Lipase PL, all manufactured by Meito Sangyo Co., Ltd.), A lipase derived from a microorganism belonging to the genus Burkholderia (eg, Lipase PS Amano SD, manufactured by Amano Enzyme Inc.), a lipase derived from a microorganism belonging to the genus Pseudomonas (eg, Lipase AK Amano, manufactured by Amano Enzyme Inc.), Thermomyces (Thermomyces) ) A lipase derived from a genus microorganism (for example, lipozyme TL @ 100L or lipozyme
  • the lipase derived from a microorganism of the genus Thermomyces is preferably a lipase derived from Thermomyces lanuginosus (eg, lipozyme TL # 100L or lipozyme TL @ IM).
  • the lipase derived from a microorganism belonging to the genus Pseudomonas is preferably a lipase derived from Pseudomonas fluorescens (eg, lipase AK Amano).
  • the lipase derived from a microorganism of the genus Burkholderia is preferably a lipase derived from Burkholderia cepacia (eg, lipase PS Amano SD).
  • the lipase derived from a microorganism belonging to the genus Alcaligenes is preferably a lipase derived from Alcaligenes (sp.) (Eg, lipase QLM).
  • the amount of the first lipase to be used is not particularly limited, but it is more than 10 unit (ie, 10 unit / g oil) per 1 g of raw material oil, and more than 30 unit / g oil in consideration of practicality considering reaction rate. It is preferable to add to the reaction system, for example, 100 unit / g oil or more, 200 unit / g oil or more, 400 unit / g oil or more, 800 unit / g oil or more, or 1,600 unit / g oil or more. be able to.
  • the amount of lipase used can be 10-2,000 lunit / goil, 100-1600 lunit / goil, 200-1,200 unit / goil, or 300-1,000 lunit / goil.
  • immobilized lipase can be used repeatedly, instead of adding the required amount like lipase that is not immobilized, add an excess amount of immobilized lipase to the reaction system, collect it after the reaction, and use it repeatedly. Can be. Therefore, at least the amount used for 1 g of the above feedstock may be added to the reaction system, and a reasonable amount may be used depending on whether it is used in a batch process, used in a column process, or used repeatedly. May be changed to For example, immobilized lipase of 3 to 30% (w / w), 4 to 25% (w / w), more preferably 5 to 20% (w / w) based on the feedstock oil can be used.
  • One unit of these lipases is an amount of an enzyme that produces 1 micromol of free fatty acid per minute, and is defined in 3.17 of General Test Method "4.03 Digestion Test Method" of the 17th revised Japanese Pharmacopoeia. It is measured by the fat digestibility test. Specifically, olive oil is used as a substrate. Olive oil is mixed with the emulsion and emulsified to form a substrate solution. After the lipase is allowed to act on olive oil, sodium hydroxide is added to neutralize the produced fatty acid, and the remaining excess sodium hydroxide is titrated with hydrochloric acid. The sodium hydroxide is also titrated with hydrochloric acid for the blank solution without addition of lipase. From these differences, fat digestion (unit / g) is determined.
  • the second lipase in the present invention is a partial glyceride lipase.
  • the partial glyceride lipase refers to a lipase that hydrolyzes monoglyceride and diglyceride but hardly hydrolyzes triglyceride.
  • Examples of the partial glyceride lipase include a lipase derived from a microorganism belonging to the genus Penicillium (eg, Lipase G Amano 50, manufactured by Amano Enzyme Co., Ltd.).
  • the second lipase of the present invention is a lipase derived from a microorganism belonging to the genus Penicillium, preferably a lipase derived from Penicillium @camemberti (eg, Lipase G Amano 50).
  • the amount of the second lipase to be used is not particularly limited, but is 0.01 or more, 0.02 or more, 0.05 or more, and 0.1 or more in terms of the activity ratio (the ratio of the number of units) to the first lipase. It can be 1 or more, 0.2 or more, or 0.25 or more, 20 or less, 10 or less, 4 or less, 2 or less, or 1 or less.
  • the first lipase: the second lipase may be 1: 0.01-20, 1: 0.02-10, 1: 0.05-5, 1: 0.1-3, 1: 0.2.
  • the second lipase can be used to be ⁇ 2, 1: 0.1-2, or 1: 0.25-1.
  • one unit of the partial glyceride lipase is measured by the LV emulsification method, and the amount of the enzyme that causes an increase of 1 micromol of fatty acid per minute is defined as one unit (unit).
  • the LV emulsification method lipase is allowed to act on an emulsion of vinyl laurate, the reaction is stopped with a mixed solvent of ethanol / acetone, the produced fatty acid is neutralized with sodium hydroxide, and the remaining sodium hydroxide is titrated with hydrochloric acid. This is a method for determining the number of units by quantifying the generated fatty acids.
  • the first lipase and the second lipase are allowed to act on the raw material oil to carry out a hydrolysis reaction.
  • the first lipase and the second lipase may be present in the reaction system from the start of the reaction, or may be sequentially added to the reaction system with a time lag. In the latter case, the second lipase is usually added after the first lipase is added. Since the first lipase hardly acts on docosahexaenoic acid in the constituent fatty acids of glyceride, it is possible to increase the ratio of docosahexaenoic acid in the glyceride fraction by acting on the raw material oil.
  • the second lipase is a partial glyceride lipase, it does not directly act on the raw material oil when the raw material oil does not contain the partial glyceride, but in the present invention, the lipase is added to the partial glyceride generated from the raw material oil. Is also included in causing lipase to act on the raw material oil.
  • the first lipase is a lipase from Thermomyces ranuginosus (eg, lipozyme TL 100L or lipozyme TL IM), and the second lipase is a lipase from Penicillium cammberti (eg, lipase G Amano 50);
  • a third lipase capable of further concentrating DHA other than the first lipase can be used.
  • the combined use of the first lipase and the second lipase does not impair the combined use of the third lipase.
  • the third lipase can be caused to act on the feedstock at the same time as the first lipase or the second lipase, or at an interval. Two or more third lipases may be used.
  • the third lipase includes a lipase derived from Candida, and is preferably a lipase derived from Candida cylindrase.
  • lipases derived from Candida cylindracea also known as Candida rugosa
  • lipases derived from Candida rugosa include lipase OF and lipase AY Amano 30SD (Amano Enzyme Co., Ltd.).
  • the amount of the third lipase to be used is not particularly limited, but the activity ratio is 0.02 or more, 0.05 or more, 0.1 or more, 0.2 or more, or 0.1 to 0.1% of the first lipase. It can be 25 or more, 50 or less, 20 or less, 10 or less, 4 or less, 2 or less, or 1 or less.
  • the first lipase: the third lipase is 1: 0.02-50, 1: 0.05-20, 1: 0.1-10, 1: 0.1-2, 1: 0.25
  • the third lipase can be used to be 44, 1: 0.2 ⁇ 2, or 1: 0.25 ⁇ 1.
  • the hydrolysis reaction by lipase needs to be performed in the presence of water in an amount sufficient to exhibit the hydrolysis activity of lipase.
  • the amount of water to be added is 0.1 to 2.5 parts by weight, or 0.2 to 1.5 parts by weight, preferably 0.3 to 1 part by weight based on 1 part by weight of the feedstock oil.
  • the hydrolysis is preferably performed in an atmosphere of an inert gas such as dry nitrogen in order to suppress the deterioration of fatty acids and the inactivation of lipase.
  • an antioxidant such as tocopherol, ascorbic acid, and t-butylhydroquinone may be contained in the raw material oil.
  • the reaction temperature in the hydrolysis is not particularly limited as long as it is a temperature at which the lipase exhibits activity, but is, for example, 10 to 50 ° C, and preferably about 10 to 40 ° C.
  • the reaction is performed at 25 ° C. or lower, preferably 10 to 25 ° C., more preferably 15 to 25 ° C. Saturated fatty acids are prone to overeating in modern diets. Since the composition obtained by enriching docosahexaenoic acid obtained by the production method of the present invention can be used as a raw material for health foods, pharmaceuticals and the like, the content of the saturated fatty acid is preferably lower.
  • the reaction temperature is about 15 to 25 ° C. Is most preferred.
  • the reaction may be carried out while setting the temperature in the reaction tank to an average of 15 to 25 ° C. and keeping the change in the reaction temperature within a range of about ⁇ 5 ° C.
  • the hydrolysis reaction can be performed under a fluidized state by mechanical stirring or blowing of an inert gas or the like.
  • reaction is performed until the ratio of docosahexaenoic acid in the constituent fatty acids of the glyceride fraction reaches the target ratio.
  • Reaction conditions may vary depending on the feedstock, amount of enzyme and the like. For example, when the amount of the first lipase used is large, the reaction time may be shortened, and when the amount of the first lipase used is small, the reaction time may be prolonged.
  • the reaction time is, for example, 5 hours or more, 6 hours or more, 7 hours or more, 8 hours or more, 9 hours or more, or 10 hours or more, 24 hours or less, 20 hours or less, 18 hours or less, 16 hours Hereinafter, it may be 15 hours or less, 14 hours or less, 13 hours or less, 12 hours or less, or 11 hours or less.
  • tuna oil containing about 23% DHA
  • the reaction time is preferably 7 hours or more.
  • the ratio of docosahexaenoic acid can be increased to 35 area% or more in one lipase reaction.
  • the ratio of docosahexaenoic acid in the glyceride fraction is 35 area% or more, 40 area% or more, 45 area% or more, 46 area% or more, 47 area% or more. It can be increased to at least area%, at least 48 area%, at least 49 area%, at least 50 area%, or at least 51 area%.
  • the proportion (area%) of docosahexaenoic acid in the glyceride fraction is formed by methyl esterification of glyceride in the oil layer of the lipase reaction product by the sodium methylate method and then by lipase reaction. It is calculated based on the value (peak area) measured by gas chromatography after removing free fatty acids.
  • the analysis conditions for gas chromatography are as follows. Model: Agilent 6890N GC system (Agilent) Column: DB-WAX J & W 122-7032 Column temperature: After holding at 180 ° C. for 0 minutes, the temperature was raised from 180 ° C. to 230 ° C.
  • Injection temperature 250 ° C.
  • Injection method split Split ratio: 30: 1 Detector temperature: 250 ° C
  • Detector FID Carrier gas: Helium (1 mL / min, constant flow)
  • the acid value (AV) can be used as an index indicating the degree of hydrolysis.
  • the acid value is a numerical value measured by a method according to the standard method for analyzing fats and oils (2013 edition) (edited by the Japan Oil Chemists' Society). Specifically, the acid value is measured as follows. About 100 mg of a sample is dissolved in 20 mL of a neutral solvent (ethanol: diethyl ether (1: 1 v / v)), a phenolphthalein solution is added, and neutralization titration is performed with a 0.1 M potassium hydroxide standard solution. The acid value is calculated by the following formula.
  • AV titration (mL) ⁇ 56.11 ⁇ factor of potassium hydroxide standard solution / sample weight (g) ⁇ (1/10)
  • factor of potassium hydroxide standard solution means “true concentration of standard solution (determined by standardization) / displayed concentration of prepared standard solution”.
  • the ratio of docosahexaenoic acid in the constituent fatty acids of the glyceride fraction can generally be sufficiently increased by performing the hydrolysis reaction so that the acid value becomes 90 to 160. If the reaction is performed until the acid value exceeds 160, the recovery rate of docosahexaenoic acid may decrease. Therefore, in the production method of the present invention, the hydrolysis reaction can be terminated when the acid value of the reaction solution becomes 90 to 160, 100 to 150, or 110 to 140.
  • the proportion of docosahexaenoic acid in the constituent fatty acids of the glyceride fraction is at least 35 area%, for example, at least 40 area%, at least 45 area%, at least 46 area%, at least 47 area%, at least 48 area% , 49 area% or more, 50 area% or more, or 51 area% or more.
  • free fatty acids are mostly occupied by fatty acids other than docosahexaenoic acid.
  • the production method of the present invention may further include a step of recovering glyceride after the hydrolysis reaction with lipase.
  • the proportion of docosahexaenoic acid in the constituent fatty acids of the glyceride fraction is higher than in the feedstock.
  • the glyceride can be recovered by inactivating the lipase by heating or adding an acid after the completion of the hydrolysis reaction time, and removing the aqueous layer, free fatty acids and glycerin from the reaction solution.
  • the aqueous layer, free fatty acids and glycerin can be removed by a known method.
  • the lipase was inactivated by adding an acid
  • the aqueous layer containing lipase and glycerin was removed from the reaction solution by centrifugation or the like, and water washing was repeated until the aqueous layer became neutral.
  • free fatty acids are removed from the obtained oil layer.
  • known methods such as a method of removing as an alkali salt, a method of using a liquid chromatography device, and a method of removing by distillation can be employed.
  • a method of removing by distillation using step distillation or the like is preferable.
  • the production method of the present invention can provide a composition in which the proportion of triglyceride in the glyceride fraction is higher than when lipase is used alone.
  • the proportion of triglycerides is 70 area% or more, 75 area% or more, 80 area% or more, or 85 area% or more. Therefore, according to the present invention, it is not necessary to further remove the partial glyceride from the recovered glyceride, and the purification step can be simplified.
  • the recovered glyceride can be further deoxidized, decolorized, or deodorized.
  • Deoxidation, decolorization, and deodorization may be performed by any method, but distillation treatment is used as deoxidation treatment, treatment with activated clay, activated carbon, or silica gel is used as decolorization treatment, and steam distillation is used as deodorization treatment. Is exemplified. When the deacidification treatment is performed by distillation, the monoglyceride is also removed at the same time, so that the triglyceride ratio of the obtained oil can be further increased.
  • the area% refers to each component of a chart obtained by analyzing a mixture of glycerides containing various fatty acids as constituents using gas chromatography or thin-layer chromatography / flame ionization detector (TLC / FID). It is the ratio of the peak area to the total peak area and indicates the content ratio of the component of the peak.
  • the fatty acid composition was calculated from the result of analysis by gas chromatography according to the method described in the examples, and the lipid composition was calculated from the result of analysis using TLC / FID.
  • fatty acid composition of the fish oil used as a raw material was measured by gas chromatography after methyl esterification of the fish oil. That is, 1 mL of a 1N sodium methylate / methanol solution was added to 40 ⁇ L of fish oil, and the mixture was stirred at 80 ° C. for 1 minute. Thereafter, 1 mL of 1N hydrochloric acid was added to neutralize, 2 mL of hexane and 3 mL of a saturated saline solution were added, and the mixture was stirred and allowed to stand, and then the upper layer was measured by gas chromatography.
  • the fatty acid composition of the glyceride fraction of the oil subjected to the lipase reaction was measured by gas chromatography after methyl esterification of the glyceride fraction and removal of free fatty acids generated by the lipase reaction. That is, 1 mL of a 1N sodium methylate / methanol solution was added to 70 ⁇ L of the reaction solution, and the mixture was stirred at 80 ° C. for 1 minute. Thereafter, 1 mL of 1N hydrochloric acid was added for neutralization, 700 ⁇ L of hexane and 3 mL of a saturated saline solution were added, and the mixture was stirred and allowed to stand.
  • an upper layer containing a methyl ester and a free fatty acid was recovered.
  • the operation of removing free fatty acids from the obtained upper layer was performed as follows. Triethylamine (10 to 20 ⁇ L) is added to 700 ⁇ L of the hexane solution in which the methyl ester and free fatty acid are dissolved as the collected upper layer, and the mixture is shaken. Then, the whole amount is loaded on a solid phase extraction cartridge (Agilent Technologies, BOND ELUT SI, 100 mg, 1 mL).
  • AV ⁇ Measurement of acid value (AV)>
  • the test was performed in accordance with the standard method for analyzing fats and oils (2013 edition) (edited by the Japan Oil Chemists' Society). About 100 mg of the sample was dissolved in 20 mL of a neutral solvent (ethanol: diethyl ether (1: 1 volume ratio)), a phenolphthalein solution was added, and neutralization titration was performed with a 0.1 M potassium hydroxide standard solution. It was calculated by the following equation.
  • AV titration (mL) ⁇ 56.11 ⁇ factor of potassium hydroxide standard solution / sample weight (g) ⁇ (1/10)
  • Example 1 ⁇ Raw oil> Tuna deoxidized oil (DHA 24.6%), prepared by removing sterols and fatty acids from water-washed tuna crude oil by short-path distillation, was used as a feedstock oil.
  • DHA 24.6% Tuna deoxidized oil
  • Lipase PS Amano SD also referred to herein as Lipase PS. Amano Enzyme Co., Ltd.
  • Lipase AK Amano also referred to herein as Lipase AK.
  • Lipase OF (Meito Sangyo Co., Ltd.) Lipozyme TL 100L (Novozyme Japan Co., Ltd.) Lipozyme TL IM (Novozyme Japan Co., Ltd.) Lipozyme RM IM (Novozyme Japan KK) Lipase QLM (Meito Sangyo Co., Ltd.) Lipase G Amano 50 (also referred to herein as Lipase G. Amano Enzyme Co., Ltd.)
  • the reaction using lipase G in combination with the first lipase shown in Table 1 has a 1/4 activity ratio to lipase G (that is, 200 unit / g oil in combination with lipase OF, and other lipases).
  • a 1/4 activity ratio to lipase G that is, 200 unit / g oil in combination with lipase OF, and other lipases.
  • 250 l / g / oil was further added to the reaction system, and a lipase reaction solution was prepared in the same manner as in the case of single use described above.
  • FIG. 1 shows the ratio (area%) of DHA and SFA in the glyceride fraction of the obtained lipase reaction solution.
  • lipase OF or lipozyme RM IM was used in combination with lipase G, the proportion of DHA increased slightly.
  • lipase PS, lipase AK, lipozyme TL 100L, lipozyme TLIM, or lipase QLM were used in combination with lipase G, a significant increase in the proportion of DHA was observed. The effect of such a combination was particularly remarkable in Lipozyme TL 100L and Lipozyme TL IM.
  • Example 2 A lipase reaction solution was prepared in the same manner as in Example 1 except that the mixing ratio of lipozyme TL 100L and lipase G was 4: 0, 4: 1, 4: 2, or 4: 4 in terms of the activity ratio.
  • the reaction time was 20 hours. However, when the mixing ratio was 4: 2 and 4: 4, the reaction temperature was 15 ° C.
  • the amount of Lipozyme TL 100L used was 100, 200, 400, 800, or 1,600 units / g oil.
  • lipozyme TLL100L and lipase G could increase the proportion (area%) of triglyceride in the glyceride fraction (Table 2).
  • Example 3 A lipase reaction solution was prepared in the same manner as in Example 1, except that the mixing ratio of lipozyme TL 100L and lipase G was set at an activity ratio of 4: 1, and the reaction temperature was set at 18 ° C or 39 ° C.
  • the amount of Lipozyme TL 100L used was 100, 200, 400, 800, or 1,600 units / g oil.
  • Example 4 A lipase reaction solution was prepared in the same manner as in Example 1 except that the mixing ratio of lipozyme TL 100L, lipase G, and lipase AY was set at an activity ratio of 4: 1: 1 or 4: 1: 4, and the reaction temperature was set at 15 to 16 ° C. did.
  • the amount of Lipozyme TL 100L used was 100, 200, 400, 800, or 1,600 units / g oil.
  • Example 5 The reaction was carried out at a reaction temperature of 15 to 16 ° C. for 20 hours using Lipozyme TL 100 L (400 unit / g) and lipase G (100 unit / g), and then the amount of lipase G shown in FIG. 5 (ie, 25 to 400 unit / g) g) and the same amount (1: 1) or 4 times (1: 4) of lipase AY was added thereto, and the mixture was reacted at a reaction temperature of 17 ° C. for 8 hours.
  • Lipozyme TL 100 L 400 unit / g
  • lipase G 100 unit / g
  • the amount of lipase G shown in FIG. 5 ie, 25 to 400 unit / g) g
  • the same amount (1: 1) or 4 times (1: 4) of lipase AY was added thereto, and the mixture was reacted at a reaction temperature of 17 ° C. for 8 hours.
  • compositions containing docosahexaenoic acid as a constituent fatty acid of glyceride by using a plurality of lipases having a weak effect alone to concentrate docosahexaenoic acid in the glyceride fraction.
  • the composition can be used as a raw material for health foods, pharmaceuticals, and the like.

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Abstract

本発明は、ドコサヘキサエン酸をグリセリドの構成脂肪酸として含有する組成物の製造方法であって、ドコサヘキサエン酸を構成脂肪酸として含むグリセリドを含有する原料油に第一のリパーゼおよび第二のリパーゼを作用させて加水分解反応を行い、それによりグリセリド画分中のドコサヘキサエン酸の割合を高める工程、を含み、第一のリパーゼは、サーモマイセス属微生物由来のリパーゼ、シュードモナス属微生物由来のリパーゼ、バークホルデリア属微生物由来のリパーゼ、およびアルカリゲネス属微生物由来のリパーゼからなる群から選択される少なくとも１種類のリパーゼであり、第二のリパーゼは、部分グリセリドリパーゼである、前記方法を提供する。

Description

リパーゼ加水分解反応を用いる高度不飽和脂肪酸含有グリセリドの製造方法
　本発明はリパーゼ加水分解反応を利用した高度不飽和脂肪酸含有グリセリドの製造方法に関する。
　高度不飽和脂肪酸はヒトを含む脊椎動物の成長に必須の栄養素であるばかりでなく、近年、心血管系疾患、炎症性疾患への関与について多く報告されている。特にドコサヘキサエン酸（DHA）、エイコサペンタエン酸（EPA）のようなn-3系の高度不飽和脂肪酸の摂取はヒトの健康に有用であるとの知見が多く報告されている。n-3系の高度不飽和脂肪酸の摂取量とn-6系高度不飽和脂肪酸の摂取量の比率が重要であるという報告もある。現代社会では、エネルギー摂取量、飽和脂肪酸摂取量及びn-6系高度不飽和脂肪酸摂取量の増加傾向とn-3系高度不飽和脂肪酸摂取量の減少傾向という特徴があり、それが各種生活習慣病などと関係していると考えられてきた。
　魚油はn-3系高度不飽和脂肪酸を豊富に含む油脂であり、それらの摂取が広く推奨されるとともに、より効率よくn-3系高度不飽和脂肪酸を摂取するために、魚油中のn-3系高度不飽和脂肪酸を濃縮する工夫がされている。リパーゼ反応を用いる高度不飽和脂肪酸の濃縮はそのひとつである。
　リパーゼは油脂を遊離脂肪酸とグリセリンに加水分解する反応を触媒する酵素であり、種々の動植物や微生物がリパーゼを有していることが知られている。ある種のリパーゼは全ての脂肪酸に同じように作用するわけではなく、グリセリド中の結合位置や脂肪酸の炭素鎖長、二重結合数などによって反応性が異なる。したがって、このようなリパーゼを用いて脂肪酸を選択的に加水分解することが可能であり、その結果、グリセリド画分中に特定の脂肪酸を濃縮することが可能である。例えばカンディダ　シリンドラセ（Candida cylindracea）由来のリパーゼにより高度不飽和脂肪酸をグリセリド画分中に濃縮する技術は、古くから知られている（特許文献１）。
　このようにリパーゼによる加水分解反応は高度不飽和脂肪酸の濃縮に有効な方法である。目的の高度不飽和脂肪酸以外の脂肪酸に対する加水分解が進行するほどグリセリド画分中の高度不飽和脂肪酸が濃縮される。
　またグリセリド画分中に、リパーゼによる加水分解反応により高度不飽和脂肪酸を濃縮する方法において、加水分解反応を25℃以下の低温で行うことにより、グリセリド画分中の飽和脂肪酸の割合を低下させる方法が報告されている（特許文献２）。
　２種類のリパーゼを組み合わせて使用して高度不飽和脂肪酸をグリセリド画分中に濃縮する方法も報告されている。例えば、特許文献３には、カンディダ　シリンドラセ由来のリパーゼ、リゾプス（Rhizopus）属由来のリパーゼ、およびクロモバクテリウムリパーゼのうち２種類を組み合わせて使用することにより、各リパーゼを単独で使用した場合よりもDHA含量の高いグリセリドが得られると記載されている。また特許文献４には、ムコール　ミーハイ（Mucor miehei）由来リパーゼ、カンディダ　シリンドラセ由来リパーゼ、またはリゾプス　オリゼー（Rhizopus oryzae）由来リパーゼをペニシリウム　カマンベルティ由来リパーゼと組み合わせて使用することにより、グリセリド画分へのDHAの選択的濃縮が向上し、それによりEPAに対するDHAの比率が上昇した高度不飽和脂肪酸含有油脂が製造されることが開示されている。
　一方、リパーゼを使用して、DHAをグリセリド画分中に濃縮するのではなく、DHAを高濃度に含有する遊離脂肪酸を製造する方法も報告されている。例えば、特許文献５には、トリグリセリドに作用するリパーゼでグリセリド中に高度不飽和脂肪酸を濃縮した後に、トリグリセリドに作用するリパーゼと部分グリセリドリパーゼを併用して加水分解することにより、遊離脂肪酸としてDHAを高濃度に含有する組成物を得る方法が開示されている。また特許文献６には、トリグリセリドのsn-1,3位を優先的に加水分解するアルカリゲネス属由来のリパーゼと部分グリセリドリパーゼを組み合わせて加水分解することにより、DHAを高濃度に含有する遊離脂肪酸を得る方法が開示されている。
特開昭５８－１６５７９６号公報 国際公開第２０１１／１４９０４０号 特開平７－２６８３８２号公報 国際公開第９８／１８９５２号 特開２００４－２０８５４６号公報 特開２０１７－７３９８０号公報
　本発明は、グリセリド画分中にDHAを濃縮するための、複数のリパーゼを併用する新規手段を提供することを課題とする。
　本発明者らは、上記目的を達成するために鋭意研究を重ねた結果、グリセリド中にドコサヘキサエン酸を濃縮する特定のリパーゼと部分グリセリドリパーゼとを組み合わせて使用することにより、単独で使用した場合よりもグリセリド画分中のDHA濃度を大幅に高めることができることを見出した。上述のとおり、カンディダ　シリンドラセ由来のリパーゼなどが、グリセリド画分中にDHAを濃縮するために使用されている。しかしながら、複数回反応を繰り返せばDHA濃度を高めることはできるが、1回の加水分解反応で十分な濃度にまで、安定してグリセリド画分中のDHA濃度を上昇させることができるリパーゼは限られている。
　本発明者らは、上記知見に基づきさらに研究を重ね、本発明を完成するに至った。
　即ち、本発明は以下の通りである。
　〔１〕ドコサヘキサエン酸をグリセリドの構成脂肪酸として含有する組成物の製造方法であって、
　ドコサヘキサエン酸を構成脂肪酸として含むグリセリドを含有する原料油に第一のリパーゼおよび第二のリパーゼを作用させて加水分解反応を行い、それによりグリセリド画分中のドコサヘキサエン酸の割合を高める工程、を含み、
　第一のリパーゼは、サーモマイセス属微生物由来のリパーゼ、シュードモナス属微生物由来のリパーゼ、バークホルデリア属微生物由来のリパーゼ、およびアルカリゲネス属微生物由来のリパーゼからなる群から選択される少なくとも１種類のリパーゼであり、
　第二のリパーゼは、部分グリセリドリパーゼである、前記方法。
　〔２〕サーモマイセス属微生物がサーモマイセス　ラヌギノサスであり、シュードモナス属微生物がシュードモナス　フルオレッセンスであり、バークホルデリア属微生物がバークホルデリア　セパシアであり、アルカリゲネス属微生物がアルカリゲネス　エスピーである、〔１〕に記載の方法。
　〔３〕部分グリセリドリパーゼが、ペニシリウム属微生物由来のリパーゼである、〔１〕又は〔２〕に記載の方法。
　〔４〕ペニシリウム属微生物がペニシリウム　カマンベルティである、〔３〕に記載の方法。
　〔５〕第二のリパーゼの使用量が、活性比で、第一のリパーゼ１に対して、０．０１～２０である、〔１〕～〔４〕のいずれかに記載の方法。
　〔６〕反応液の酸価が90～160となった時点で加水分解反応を終了させる、〔１〕～〔５〕のいずれかに記載の方法。
　〔７〕加水分解反応を10～50℃の温度で行う、〔１〕～〔６〕のいずれかに記載の方法。
　〔８〕第一のリパーゼ以外のドコサヘキサエン酸を濃縮する第三のリパーゼを、第一のリパーゼおよび第二のリパーゼと同時に、または時間差をおいて、原料油に作用させる、〔１〕～〔７〕のいずれかに記載の方法。
　〔９〕第三のリパーゼが、カンディダ　シリンドラセ由来のリパーゼである、〔８〕に記載の方法。
　〔１０〕反応後、グリセリドを回収する工程をさらに含む、〔１〕～〔９〕のいずれかに記載の方法。
　本発明によれば、複数のリパーゼを併用して、グリセリド画分の構成脂肪酸中のDHAの割合が高められた組成物を製造することができる。特にサーモマイセス属微生物由来のリパーゼとペニシリウム属微生物由来のリパーゼとを組み合わせることにより、従来から工業的に使用されているカンディダ　シリンドラセ由来リパーゼと同程度にまでDHAを濃縮できる。
各種リパーゼ単独、またはリパーゼGとの併用によりマグロ脱酸油から調製したリパーゼ反応液の、グリセリド画分中のDHAおよびSFAの割合を示す図である。 リポザイムTL 100LとリパーゼGとの併用によりマグロ脱酸油から調製したリパーゼ反応液の、グリセリド画分中のDHA、EPA、MUFA、およびSFAの割合を示す図である。 18℃または39℃の反応温度でリポザイムTL 100LとリパーゼGとを併用してマグロ脱酸油から調製したリパーゼ反応液の、グリセリド画分中のDHA、EPA、MUFA、およびSFAの割合を示す図である。 リポザイムTL 100L、リパーゼG、およびリパーゼAYの併用によりマグロ脱酸油から調製したリパーゼ反応液の、グリセリド画分中のDHA、EPA、MUFA、およびSFAの割合を示す図である。 リポザイムTL 100LとリパーゼGとの併用による反応後に、リパーゼGとリパーゼAYとの併用による反応を行って得られたリパーゼ反応液の、グリセリド画分中のDHA、EPA、MUFA、およびSFAの割合を示す図である。
　以下、本発明をより具体的に説明する。
　なお本明細書中、以下の略号を使用する場合がある。
DHA：ドコサヘキサエン酸
EPA：エイコサペンタエン酸
MUFA：モノ不飽和脂肪酸
SFA：飽和脂肪酸
TAG：トリアシルグリセロールまたはトリグリセリド
DAG：ジアシルグリセロールまたはジグリセリド
MAG：モノアシルグリセロールまたはモノグリセリド
　本発明は、ドコサヘキサエン酸をグリセリドの構成脂肪酸として含有する組成物の製造方法であって、ドコサヘキサエン酸を構成脂肪酸として含むグリセリドを含有する原料油に第一のリパーゼおよび第二のリパーゼを作用させて加水分解反応を行い、それによりグリセリド画分中のドコサヘキサエン酸の割合を高める工程、を含み、第一のリパーゼは、グリセリド中にドコサヘキサエン酸を濃縮するリパーゼであり、具体的には、サーモマイセス属微生物由来のリパーゼ、シュードモナス属微生物由来のリパーゼ、バークホルデリア属微生物由来のリパーゼ、およびアルカリゲネス属微生物由来のリパーゼからなる群から選択される少なくとも１種類のリパーゼであり、第二のリパーゼは、部分グリセリドリパーゼである、前記方法（以下、本発明の製造方法という場合がある）に関する。
　本明細書中、高度不飽和脂肪酸とは、炭素数１８以上、二重結合数３以上の脂肪酸、例えば炭素数２０以上、二重結合数３または４以上の脂肪酸、あるいは炭素数２０以上、二重結合数５以上の脂肪酸をいう。具体的にはα‐リノレン酸（１８：３，ｎ‐３）、γ‐リノレン酸（１８：３，ｎ‐６）、ジホモ－γ－リノレン酸（２０：３，ｎ－６）、アラキドン酸（２０：４，ｎ‐６）、エイコサペンタエン酸（２０：５，ｎ‐３）、ドコサペンタエン酸（２２：５，ｎ‐６）、ドコサヘキサエン酸（２２：６，ｎ‐３）などが例示される。これらはある種の微生物油、植物油や海産動物油などに多く含まれることが知られている。具体的には、イワシ、マグロ、カツオなどの魚類、オキアミなどの甲殻類、アザラシなどの海獣類の海産動物油、エゴマ、アマ、大豆、菜種などから採取される植物油、モルティエレラ（Mortierella）属、ペニシリウム（Penicillium）属、アスペルギルス（Aspergillus）属、ロードトルラ（Rhodotorula）属、フザリウム（Fusarium）属に属する微生物が産生する油などが例示される。
　本明細書中、ドコサヘキサエン酸をグリセリドの構成脂肪酸として含有する組成物は、ドコサヘキサエン酸が結合したグリセリドを含有するグリセリド組成物を意味する。ここで、グリセリド組成物とは、グリセリドを主要な構成成分とする組成物であり、グリセリドを例えば８０質量％以上、８５質量％以上、９０質量％以上、９５質量％以上、９９質量％以上、９９．５質量％以上、または９９．９質量％以上含有し得る。
　本発明において、グリセリドには、トリグリセリド、ジグリセリド、およびモノグリセリドが含まれる。
　本発明の製造方法における原料油は、ドコサヘキサエン酸を構成脂肪酸として含むグリセリドを含有する油であればよい。ドコサヘキサエン酸は、グリセリンのsn-1位、sn-2位、およびsn-3位のいずれに結合していてもよい。原料油としては、例えば、上記の高度不飽和脂肪酸を多く含むことが知られている天然物由来の油が挙げられ、具体的には、海産動物油（例えば、イワシ油、マグロ油、カツオ油、オキアミ油、アザラシ油など）、植物油（例えば、エゴマ油、アマニ油、大豆油、菜種油など）、および微生物油（例えば、モルティエレラ属、ペニシリウム属、アスペルギルス属、ロードトルラ属、フザリウム属に属する微生物が産生する油など）が例示される。グリセリドの構成脂肪酸中にドコサヘキサエン酸を一定量以上含む原料油を選択するのが好ましく、少なくとも１０面積％以上、１５面積％以上、さらに好ましくは２０面積％以上含むものが好ましい。上限はないが、元々ドコサヘキサエン酸の含有量が高い場合、濃縮する必要性は高くないことも多いので、７０面積％以下、６５面積％以下、さらに６０面積％以下が好ましい。すなわち、ドコサヘキサエン酸を１０～７０面積％、１０～６５面積％、１５～６５面積％、さらに好ましくは１０～６０面積％、１５～６０面積％、２０～６０面積％含む原料油を用いるのが好ましい。一実施形態において、本発明の製造方法における原料油は、魚油であり、好ましくはマグロ油又はカツオ油である。
　本発明においては、これらの油をそのまま、精製して、または濃縮して使用することができる。例えば魚油の場合、魚全体または水産加工から発生する魚の頭、皮、中骨、内臓等の加工残滓を粉砕して蒸煮した後、圧搾して煮汁（スティックウォーター、SW）と圧搾ミールに分離し、煮汁とともに得られる油脂を煮汁から遠心分離により分離することにより、原油を調製することができる。原油は、脱ガム、脱酸、脱色、脱臭工程などの精製工程を経て精製魚油とされる。原油の精製には、薄膜蒸留（例えば分子蒸留または短行程蒸留）やアルカリ脱酸を用いてもよい。一実施形態において、本発明の製造方法における原料油は、短行程蒸留により処理された魚油であり、好ましくは短行程蒸留により処理されたマグロ油である。
　本発明における第一のリパーゼは、グリセリド画分中にドコサヘキサエン酸を濃縮するリパーゼであり、グリセリドの構成脂肪酸中のドコサヘキサエン酸に作用しにくく、加水分解反応後にグリセリド画分の構成脂肪酸中のドコサヘキサエン酸の割合を高める性質を有する。なお、本明細書中、グリセリド画分の構成脂肪酸中のドコサヘキサエン酸の割合を高めることを、グリセリド画分中にドコサヘキサエン酸を濃縮するともいう。
　グリセリド中にドコサヘキサエン酸を濃縮するリパーゼであって上記の性質を有するものは、アルカリゲネス（Alcaligenes）属微生物由来のリパーゼ（例えばリパーゼQLM、リパーゼQLC、リパーゼPL、いずれも名糖産業株式会社製）、バークホルデリア（Burkholderia）属微生物由来のリパーゼ（例えばリパーゼPSアマノSD、天野エンザイム株式会社製）、シュードモナス（Pseudomonas）属微生物由来のリパーゼ（例えばリパーゼAKアマノ、天野エンザイム株式会社製）、サーモマイセス（Thermomyces）属微生物由来のリパーゼ（例えばリポザイムTL 100L、またはリポザイムTL IM、ノボザイムズ製）である。これらはいずれも市販されており容易に入手できる。これらは必要に応じて固定化して使用することもできる。また２種類以上のリパーゼを組み合わせて使用してもよい。
　サーモマイセス属微生物由来のリパーゼは、好ましくはサーモマイセス　ラヌギノサス（Thermomyces lanuginosus）由来のリパーゼ（例えばリポザイムTL 100LまたはリポザイムTL IM）である。シュードモナス属微生物由来のリパーゼは、好ましくはシュードモナス　フルオレッセンス（Pseudomonas fluorescens）由来のリパーゼ（例えばリパーゼAKアマノ）である。バークホルデリア属微生物由来のリパーゼは、好ましくはバークホルデリア　セパシア（Burkholderia cepacia）由来のリパーゼ（例えばリパーゼPSアマノSD）である。アルカリゲネス属微生物由来のリパーゼは、好ましくはアルカリゲネス　エスピー（Alcaligenes sp.）由来のリパーゼ（例えばリパーゼQLM）である。
　第一のリパーゼの使用量は特に限定されないが、原料油1 gに対して10 unit（すなわち10 unit/g oil）以上、反応速度を考えた実用性を考えると30 unit/g oil以上を反応系に添加するのが好ましく、例えば100 unit/g oil以上、200 unit/g oil以上、400 unit/g oil以上、800 unit/g oil以上、または1,600 unit/g oil以上を反応系に添加することができる。例えば、リパーゼの使用量は、10～2,000 unit/g oil、100～1,600 unit/g oil、200～1,200unit/g oil、または300～1,000 unit/g oilであり得る。固定化リパーゼについては、繰り返し使用できるものなので、固定化しないリパーゼのように必要量を添加するのではなく、過剰量の固定化リパーゼを反応系に添加し、反応後に回収して繰り返し使用することができる。したがって、少なくとも上記の原料油1 gに対する使用量を反応系に添加してもよく、さらにバッチ処理で使うか、カラム処理で使うか、何回繰り返して使うかなどに応じて、合理的な量に変更してもよい。例えば、原料油に対して３～３０％(w/w)、４～２５％(w/w)、さらに好ましくは、５～２０％(w/w)の固定化リパーゼを用いることができる。なおこれらリパーゼの１ユニットは、１分間に１マイクロモルの遊離脂肪酸を生成させる酵素量であり、第１７改正日本薬局方の一般試験法「４．０３消化力試験法」の３．脂肪消化力試験法により測定される。具体的には、オリーブ油を基質とする。オリーブ油を乳化液と混合し、乳化して基質溶液とする。オリーブ油にリパーゼを作用させた後、水酸化ナトリウムを加えて生成脂肪酸を中和し、後に残った過剰の水酸化ナトリウムを塩酸で滴定する。リパーゼを添加しないブランクの溶液についても水酸化ナトリウムを塩酸で滴定する。それらの差から、脂肪消化力（ユニット／ｇ）を求める。
　本発明における第二のリパーゼは、部分グリセリドリパーゼである。本明細書中、部分グリセリドリパーゼとは、モノグリセリドおよびジグリセリドを加水分解するが、トリグリセリドを加水分解しにくいリパーゼをいう。部分グリセリドリパーゼとしては、ペニシリウム属微生物由来のリパーゼ（例えばリパーゼGアマノ50、天野エンザイム株式会社製）が例示される。一実施形態において、本発明における第二のリパーゼは、ペニシリウム属微生物由来のリパーゼであり、好ましくはペニシリウム　カマンベルティ（Penicillium camemberti）由来のリパーゼ（例えばリパーゼGアマノ50）である。
　第二のリパーゼの使用量は、特に限定されないが、活性比（ユニット数の比）で、第一のリパーゼ１に対して、０．０１以上、０．０２以上、０．０５以上、０．１以上、０．２以上、または０．２５以上、２０以下、１０以下、４以下、２以下、または１以下であり得る。例えば、第一のリパーゼ：第二のリパーゼが、１：０．０１～２０、１：０．０２～１０、１：０．０５～５、１：０．１～３、１：０．２～２、１：０．１～２、または１：０．２５～１となるように第二のリパーゼを用いることができる。
　ここで部分グリセリドリパーゼの１ユニットは、ＬＶ乳化法によって測定され、１分間に１マイクロモルの脂肪酸の増加をもたらす酵素量を１単位（ユニット）とする。ＬＶ乳化法とは、ラウリン酸ビニルの乳化液にリパーゼを作用させ、エタノール／アセトン混合溶媒で反応を停止し、水酸化ナトリウムで生成脂肪酸を中和後、残存する水酸化ナトリウムを塩酸で滴定することで、生成脂肪酸を定量してユニット数を求める方法である。
　本発明の製造方法では、原料油に第一のリパーゼおよび第二のリパーゼを作用させて加水分解反応を行う。第一のリパーゼおよび第二のリパーゼは、反応の開始時から反応系内に存在していてもよく、時間差をおいて反応系内に順次添加されてもよい。後者の場合、通常、第一のリパーゼを添加した後に第二のリパーゼを添加する。第一のリパーゼはグリセリドの構成脂肪酸中のドコサヘキサエン酸に作用しにくいため、これを原料油に作用させることにより、グリセリド画分中のドコサヘキサエン酸の割合を高めることができる。なお第二のリパーゼは、部分グリセリドリパーゼであるため、原料油が部分グリセリドを含まない場合には原料油に直接作用する訳ではないが、本発明においては、原料油から生じた部分グリセリドにリパーゼを作用させることも、原料油にリパーゼを作用させることに含まれる。
　好ましい態様において、第一のリパーゼは、サーモマイセス　ラヌギノサス由来のリパーゼ（例えばリポザイムTL 100LまたはリポザイムTL IM）であり、第二のリパーゼは、ペニシリウム　カマンベルティ由来のリパーゼ（例えばリパーゼGアマノ50）であり、反応系に添加される第一のリパーゼの酵素量および第二のリパーゼの酵素量の活性比は、第一のリパーゼ：第二のリパーゼ＝１：０．０１～２０、１：０．０２～１０、１：０．０５～５、１：０．１～３、１：０．２～２、１：０．１～２、または１：０．２５～１であり得る。これらのリパーゼを組み合わせて使用することにより、1回のリパーゼ反応で、グリセリド画分の構成脂肪酸中のDHAの割合が実用可能なレベルにまで高められた組成物を安定して製造することができる。なお本明細書中、1回のリパーゼ反応という場合、必要な全てのリパーゼを反応開始時に添加して途中で別のリパーゼを追加しないことだけでなく、1つのリパーゼによる加水分解反応の開始後に同じ反応系内に別のリパーゼを追加することも含まれる。
　本発明における加水分解反応では、第一のリパーゼおよび第二のリパーゼに加えて、さらに第一のリパーゼ以外のDHAを濃縮することができる第三のリパーゼを併用することができる。第三のリパーゼを併用しても、第一のリパーゼと第二のリパーゼの併用効果が損なわれることはない。この場合、第三のリパーゼを、第一のリパーゼまたは第二のリパーゼと同時に、または時間差をおいて、原料油に作用させることができる。２種類以上の第三のリパーゼを使用してもよい。
　第三のリパーゼとしては、カンディダ属由来のリパーゼなどが挙げられ、好ましくはカンディダ　シリンドラセ由来のリパーゼである。カンディダ　シリンドラセ（Candida cylindracea）（別名カンディダ　ルゴサ（Candida rugosa））由来のリパーゼとしては、リパーゼOFおよびリパーゼAYアマノ30SD（天野エンザイム株式会社）が例示される。
　第三のリパーゼの使用量は、特に限定されないが、活性比で、第一のリパーゼ１に対して、０．０２以上、０．０５以上、０．１以上、０．２以上、または０．２５以上、５０以下、２０以下、１０以下、４以下、２以下、または１以下であり得る。例えば、第一のリパーゼ：第三のリパーゼが、１：０．０２～５０、１：０．０５～２０、１：０．１～１０、１：０．１～２、１：０．２５～４、１：０．２～２、または１：０．２５～１となるように第三のリパーゼを用いることができる。
　リパーゼによる加水分解反応は、リパーゼの加水分解活性が発現するのに十分な量の水の存在下に行う必要がある。水の添加量としては、原料油1重量部に対して0.1～2.5重量部、または0.2～1.5重量部、好ましくは、0.3～1重量部である。
　加水分解は、脂肪酸の劣化、リパーゼの失活などを抑制するため、乾燥窒素等の不活性ガス雰囲気下で行うことが好ましい。また、原料油にトコフェロール、アスコルビン酸、ｔ－ブチルハイドロキノンなどの抗酸化剤が含まれていてもよい。
　加水分解における反応温度は、リパーゼが活性を示す温度であれば特に限定されないが、例えば10～50℃であり、10～40℃程度が好ましい。グリセリド画分の構成脂肪酸中の飽和脂肪酸の割合を低下させるためには、25℃以下、好ましくは10～25℃、さらに好ましくは15～25℃で行う。飽和脂肪酸は、現代の食生活では摂食過多になりがちである。本発明の製造方法によって得られるドコサヘキサエン酸が濃縮された組成物は、健康食品、医薬品などの原料として用いられ得ることから、飽和脂肪酸の含有量は低い方が好ましい。反応温度が低いほど、飽和脂肪酸の含有率は低下するが、10℃以下ではリパーゼ反応の速度自体が遅くなりすぎる点や油脂の粘度が高くなる点を考慮すると、反応温度は15～25℃前後が最も好ましい。大量反応の場合、反応槽内の温度を平均15～25℃になるよう設定し、反応温度の変化を±5℃程度の範囲に保持しながら反応を行えばよい。加水分解反応は、機械的撹拌や不活性ガス等の吹込による流動状態下で行うことができる。
　加水分解は、グリセリド画分の構成脂肪酸中に占めるドコサヘキサエン酸の割合が目的とする割合になるまで反応を行う。反応条件は原料油、酵素量などにより異なり得る。例えば、第一のリパーゼの使用量が多い場合には、反応時間を短くしてもよく、また第一のリパーゼの使用量が少ない場合には、反応時間を長くしてもよい。一実施形態において、反応時間は、例えば、5時間以上、6時間以上、7時間以上、8時間以上、9時間以上、または10時間以上、24時間以下、20時間以下、18時間以下、16時間以下、15時間以下、14時間以下、13時間以下、12時間以下、または11時間以下であり得る。例えばマグロ油（DHA23％程度含有）などを原料とする場合、反応時間は7時間以上が好ましい。通常、原料油を5～24時間加水分解することにより、1回のリパーゼ反応で、ドコサヘキサエン酸の割合を35面積％以上にまで高めることができる。一実施形態において、本発明の製造方法では、1回のリパーゼ反応で、グリセリド画分中のドコサヘキサエン酸の割合を35面積％以上、40面積％以上、45面積％以上、46面積％以上、47面積％以上、48面積％以上、49面積％以上、50面積％以上、または51面積％以上にまで高めることができる。
　本明細書中、グリセリド画分中のドコサヘキサエン酸の割合（面積％）は、特に明記しない限り、ナトリウムメチラート法により、リパーゼ反応物の油層中のグリセリドをメチルエステル化した後、リパーゼ反応により生成する遊離脂肪酸を除去し、ガスクロマトグラフィーにより測定した値（ピーク面積）に基づいて算出される。ガスクロマトグラフィーの分析条件は以下の通りである。
　機種：Ａｇｉｌｅｎｔ　６８９０Ｎ　ＧＣ　ｓｙｓｔｅｍ (Ａｇｉｌｅｎｔ社)
　カラム：ＤＢ－ＷＡＸ　Ｊ＆Ｗ　１２２－７０３２
　カラム温度：１８０℃で０分間保持した後、１８０℃から２３０℃まで、３℃／分で昇温し、１５分間保持
　注入温度：２５０℃
　注入方法：スプリット
　スプリット比：３０：１
　検出器温度：２５０℃
　検出器：ＦＩＤ
　キャリアーガス：ヘリウム (１ｍＬ／ｍｉｎ、コンスタントフロー)
　また酸価（ＡＶ）を加水分解の程度を示す指標とすることもできる。本発明において、酸価は、基準油脂分析試験法（2013年度版）（社団法人日本油化学会編）に準じた方法により測定される数値である。具体的には、酸価は以下のように測定される。試料約１００ｍｇを２０ｍＬの中性溶剤（エタノール：ジエチルエーテル（1：1 v/v））に溶解させ、フェノールフタレイン溶液を添加した後、０．１Ｍ水酸化カリウム標準液で中和滴定を行い、下式により酸価を算出する。
ＡＶ＝滴定量（ｍＬ）×５６．１１×水酸化カリウム標準液のファクター／試料重量（ｇ）×（１／１０）
　ここで、「水酸化カリウム標準液のファクター」は、「（標定で求めた）標準液の真の濃度／調製した標準液の表示濃度」を意味する。
　本発明においては、通常、酸価が90～160となるように加水分解反応を行うことで、グリセリド画分の構成脂肪酸中のドコサヘキサエン酸の割合を十分に高めることができる。酸価が160を超えるまで反応させるとドコサヘキサエン酸の回収率が低下する可能性がある。したがって、本発明の製造方法においては、反応液の酸価が90～160、あるいは100～150、あるいは110～140となった時点で加水分解反応を終了させることができる。
　このようにして加水分解を行うことにより、未反応のトリグリセリドおよび加水分解物の混合物が反応液として得られる。第一のリパーゼはグリセリンとドコサヘキサエン酸とのエステル結合を加水分解しにくいので、加水分解が進行するに従って、反応液中のグリセリドの構成脂肪酸中に占めるドコサヘキサエン酸の割合は高くなる。加水分解終了時には、グリセリド画分の構成脂肪酸中のドコサヘキサエン酸の割合が、35面積％以上、例えば、40面積％以上、45面積％以上、46面積％以上、47面積％以上、48面積％以上、49面積％以上、50面積％以上、または51面積％以上となる。一方、遊離脂肪酸は大部分がドコサヘキサエン酸以外の脂肪酸で占められる。
　本発明の製造方法は、リパーゼによる加水分解反応後、グリセリドを回収する工程をさらに含んでもよい。その結果得られる組成物では、グリセリド画分の構成脂肪酸中のドコサヘキサエン酸の割合が原料油よりも高められている。グリセリドの回収は、加水分解反応時間終了後、加熱または酸添加によりリパーゼを失活させ、反応液から、水層、遊離脂肪酸およびグリセリンを除去することにより行うことができる。水層、遊離脂肪酸およびグリセリンは、公知の方法により除去することができる。例えば、加水分解反応時間終了後、酸添加によりリパーゼを失活させ、遠心分離などにより反応液からリパーゼおよびグリセリンなどを含む水層を除去し、さらに水層が中性になるまで水洗を繰り返した後、得られた油層から遊離脂肪酸を除去する。遊離脂肪酸の分離除去方法としては、アルカリ塩として除去する方法、液体クロマトグラフィー装置を用いる方法、蒸留により除去する方法など、公知の方法が採用できるが、アルカリ塩として除去する方法、分子蒸留又は短工程蒸留などを用いた蒸留により除去する方法が好ましい。遊離脂肪酸を除去することにより、高濃度でドコサヘキサエン酸を含有するトリグリセリドおよび部分グリセリドのグリセリド混合物が得られる。
　本発明の製造方法は、リパーゼを単独で使用する場合と比較して、グリセリド画分中のトリグリセリドの割合が高い組成物を得ることができる。例えば、本発明の製造方法において回収されたグリセリド中、トリグリセリドの割合は、70面積％以上、75面積％以上、80面積％以上、または85面積％以上である。そのため、本発明によれば、回収されたグリセリドについて部分グリセリドの除去をさらに行わなくてもよく、精製工程を簡略化することができる。
　回収されたグリセリドについて、さらに脱酸、脱色、または脱臭処理を行うこともできる。脱酸、脱色、脱臭はどのような方法で行ってもよいが、脱酸処理としては蒸留処理が、脱色処理としては活性白土、活性炭、シリカゲルなどによる処理が、脱臭処理としては水蒸気蒸留などが例示される。脱酸処理を蒸留で行うと、同時にモノグリセリドも除去されるので、得られる油のトリグリセリド比率をさらに高めることができる。
　次に実施例を挙げて本発明を更に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
　なお実施例中、％表示されているものは、特記なければ、重量％である。
　各実施例において、脂肪酸組成、酸価、および脂質組成の測定は以下の方法で行った。
　本発明において、面積％とは、各種脂肪酸を構成成分とするグリセリドの混合物をガスクロマトグラフィーや薄層クロマトグラフィー／水素炎イオン化検出器（ＴＬＣ／ＦＩＤ）を用いて分析したチャートのそれぞれの成分のピーク面積の全ピーク面積に対する割合であり、そのピークの成分の含有比率を示すものである。脂肪酸組成については、実施例に示す方法によるガスクロマトグラフィーにより分析した結果から算出し、脂質組成については、ＴＬＣ／ＦＩＤを用いて分析した結果から算出した。
＜脂肪酸組成の測定＞
　原料に用いた魚油の脂肪酸組成は、魚油をメチルエステル化してガスクロマトグラフィーにて測定した。すなわち、魚油４０μＬに１Ｎナトリウムメチラート／メタノール溶液１ｍＬを加え、80℃1分間撹拌した。その後、１Ｎ塩酸を１ｍＬ加えて中和し、ヘキサン２ｍＬ、飽和食塩水溶液３ｍＬを加え、撹拌、静置後、上層をガスクロマトグラフィーにて測定した。
　リパーゼ反応を行った油のグリセリド画分脂肪酸組成は、グリセリド画分をメチルエステル化してから、リパーゼ反応により生成した遊離脂肪酸を除去し、ガスクロマトグラフィーにて測定した。すなわち、反応液７０μＬに１Ｎナトリウムメチラート/メタノール溶液１ｍＬを加え、80℃1分間撹拌した。その後、１Ｎ塩酸を１ｍＬ加えて中和後、ヘキサン７００μＬおよび飽和食塩水溶液３ｍＬを加え、撹拌、静置後、メチルエステルと遊離脂肪酸を含有する上層を回収した。得られた上層から遊離脂肪酸を除去する操作を以下の通りに行った。回収した上層であるメチルエステルと遊離脂肪酸が溶解したヘキサン溶液７００μＬにトリエチルアミンを１０～２０μL加えて振り混ぜてから、固相抽出カートリッジ（Ａｇｉｌｅｎｔ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社、ＢＯＮＤ　ＥＬＵＴ　ＳＩ、１００ｍｇ、１ｍＬ）に全量を負荷し、ヘキサンと酢酸エチルの混合溶液（ヘキサン：酢酸エチル＝５０：１容積比）１ｍＬにてメチルエステルを溶出させて遊離脂肪酸を除去した。これをガスクロマトグラフィーにて測定した。
ガスクロマトグラフィー分析条件
機種：Ａｇｉｌｅｎｔ　６８９０Ｎ　ＧＣ　ｓｙｓｔｅｍ (Ａｇｉｌｅｎｔ社)
カラム：ＤＢ－ＷＡＸ　Ｊ＆Ｗ　１２２－７０３２
カラム温度：１８０℃で０分間保持した後、１８０℃から２３０℃まで、３℃／分で昇温し、１５分間保持
注入温度：２５０℃
注入方法：スプリット
スプリット比：３０：１
検出器温度：２５０℃
検出器：ＦＩＤ
キャリアーガス：ヘリウム (１ｍＬ／ｍｉｎ、コンスタントフロー)
＜酸価（ＡＶ）の測定＞
　基準油脂分析試験法（2013年度版）（社団法人日本油化学会編）に準じて行った。試料約１００ｍｇを２０ｍＬの中性溶剤（エタノール：ジエチルエーテル（1:1容積比））に溶解させ、フェノールフタレイン溶液を添加した後、０．１Ｍ水酸化カリウム標準液で中和滴定を行い、下式により算出した。
ＡＶ＝滴定量（ｍＬ）×５６．１１×水酸化カリウム標準液のファクター／試料重量（ｇ）×（１／１０）
＜脂質組成の測定＞
　脂質組成は薄層クロマトグラフィー／水素炎イオン化検出器（ＴＬＣ／ＦＩＤ，イアトロスキャン、三菱化学ヤトロン株式会社）にて行った。油２０μＬをヘキサン１ｍＬに溶解し、クロマロッドに０．５μＬを負荷した。ヘキサン、ジエチルエーテル、酢酸の混合溶液（ヘキサン：ジエチルエーテル：酢酸＝７０：３０：１容積比）を展開溶媒として用い、３０分間展開した。これをイアトロスキャンにて分析した。
（実施例１）
＜原料油＞
　原料油として、水洗したマグロ原油から短行程蒸留によりステロール類および脂肪酸を除去して調製した、マグロ脱酸油（DHA 24.6%）を使用した。
＜リパーゼ＞
　以下のリパーゼを使用した。
　リパーゼPSアマノSD（本明細書中、リパーゼPSともいう。天野エンザイム株式会社）
　リパーゼAKアマノ（本明細書中、リパーゼAKともいう。天野エンザイム株式会社）
　リパーゼOF（名糖産業株式会社）
　リポザイム TL 100L（ノボザイムジャパン株式会社）
　リポザイム TL IM（ノボザイムジャパン株式会社）
　リポザイム RM IM（ノボザイムジャパン株式会社）
　リパーゼQLM（名糖産業株式会社）
　リパーゼGアマノ50（本明細書中、リパーゼGともいう。天野エンザイム株式会社）
＜リパーゼ反応液の調製＞
　リパーゼを単独で用いた反応は、マグロ脱酸油3 gに表１に記載の水及び各リパーゼを混合し、18℃（実測18.8℃）で表１に記載の時間反応させた。反応後、85%燐酸を対油1.5%添加し、18℃で1時間撹拌することでリパーゼを失活させた。その後、3回湯洗し、リパーゼ反応液を得た。
　リパーゼGを併用する反応は、表１に記載の第一のリパーゼに対して活性比で4分の1のリパーゼG（すなわち、リパーゼOFとの併用では200 unit/g oil、その他のリパーゼとの併用では250 unit/g oil）を反応系にさらに添加して、上記の単独使用の場合と同様にしてリパーゼ反応液を調製した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
＜結果＞
　得られたリパーゼ反応液のグリセリド画分中のDHAおよびSFAの割合（面積％）を図１に示す。リパーゼOF又はリポザイムRM IMをリパーゼGと併用した場合には、DHAの割合の増加はわずかであった。それに対してリパーゼPS、リパーゼAK、リポザイムTL 100L、リポザイムTL IM、またはリパーゼQLMをリパーゼGと併用した場合には、DHAの割合の大幅な増加が見られた。このような併用の効果は、特にリポザイムTL 100LおよびリポザイムTL IMにおいて顕著であった。
（実施例２）
　リポザイムTL 100LとリパーゼGとの混合比を活性比で４：０、４：１、４：２、または４：４として、実施例１と同様にリパーゼ反応液を調製した。反応時間は、20時間とした。ただし、混合比４：２および４：４の場合には、反応温度は15℃であった。リポザイムTL 100Lの使用量は、100、200、400、800、または1,600 unit/g oilとした。
　得られたリパーゼ反応液のグリセリド画分中のDHA、EPA、MUFA、およびSFAの割合（面積％）を表２および図２に示す。リパーゼGを併用することで、リポザイムTL 100L を単独で使用した場合と比較してDHAの割合を大幅に増加させることができた。特に、リポザイムTL 100LとリパーゼGとの混合比を４：２または４：４とし、リポザイムTL 100Lの使用量を800 unit/g oil以上とした場合には、DHAの割合が1回のリパーゼ加水分解反応で51面積％以上に達した。それに対して、リポザイムTL 100Lのみでは、使用量を増加させてもDHAの割合を大幅に増加させることはなかった。
　またリポザイムTL 100LとリパーゼGとを併用することにより、グリセリド画分中のトリグリセリドの割合（面積％）を高めることができた（表２）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
（実施例３）
　リポザイムTL 100LとリパーゼGとの混合比を活性比で４：１とし、反応温度を18℃または39℃として、実施例１と同様にリパーゼ反応液を調製した。リポザイムTL 100Lの使用量は、100、200、400、800、または1,600 unit/g oilとした。
　得られたリパーゼ反応液のグリセリド画分中のDHA、EPA、MUFA、およびSFAの割合（面積％）を図３に示す。TL100LとリパーゼGの併用において、反応温度18℃と39℃のいずれにおいても、DHAの割合を大幅に増大させることができた。
（実施例４）
　リポザイムTL 100L、リパーゼG、およびリパーゼAYの混合比を活性比で４：１：１または４：１：４とし、反応温度を15～16℃として、実施例１と同様にリパーゼ反応液を調製した。リポザイムTL 100Lの使用量は、100、200、400、800、または1,600 unit/g oilとした。
　得られたリパーゼ反応液のグリセリド画分中のDHA、EPA、MUFA、およびSFAの割合（面積％）を図４に示す。リポザイムTL 100LおよびリパーゼGにリパーゼAYを追加することによって、グリセリド画分中のDHAの割合をさらに高めることができた。
（実施例５）
　リポザイムTL 100L（400 unit/g）およびリパーゼG(100 unit/g)で、反応温度15～16℃で20時間反応を行い、その後、図5に示す量のリパーゼG（すなわち25～400 unit/g）とそれに対して同量（1:1）又は4倍量（1:4）のリパーゼAYを追加し、反応温度17℃8時間、反応した。
　　得られたリパーゼ反応液のグリセリド画分中のDHA、EPA、MUFA、およびSFAの割合（面積％）を図５に示す。リポザイムTL 100LおよびリパーゼGによる反応後に、リパーゼGおよびリパーゼAYによる反応を短時間行うことで、グリセリド画分中のDHAの割合をさらに高めることができた。
　本発明により、グリセリド画分中にドコサヘキサエン酸を濃縮するために単独では効果の弱いリパーゼを複数併用することにより、ドコサヘキサエン酸をグリセリドの構成脂肪酸として含有する組成物を製造することができる。当該組成物は、健康食品、医薬品などの原料として用いることができる。

Claims (10)

  1. 　ドコサヘキサエン酸をグリセリドの構成脂肪酸として含有する組成物の製造方法であって、
    　ドコサヘキサエン酸を構成脂肪酸として含むグリセリドを含有する原料油に第一のリパーゼおよび第二のリパーゼを作用させて加水分解反応を行い、それによりグリセリド画分中のドコサヘキサエン酸の割合を高める工程、を含み、
    　第一のリパーゼは、サーモマイセス属微生物由来のリパーゼ、シュードモナス属微生物由来のリパーゼ、バークホルデリア属微生物由来のリパーゼ、およびアルカリゲネス属微生物由来のリパーゼからなる群から選択される少なくとも１種類のリパーゼであり、
    　第二のリパーゼは、部分グリセリドリパーゼである、前記方法。
  2. 　サーモマイセス属微生物がサーモマイセス　ラヌギノサスであり、シュードモナス属微生物がシュードモナス　フルオレッセンスであり、バークホルデリア属微生物がバークホルデリア　セパシアであり、アルカリゲネス属微生物がアルカリゲネス　エスピーである、請求項１に記載の方法。
  3. 　部分グリセリドリパーゼが、ペニシリウム属微生物由来のリパーゼである、請求項１又は２に記載の方法。
  4. 　ペニシリウム属微生物がペニシリウム　カマンベルティである、請求項３に記載の方法。
  5. 　第二のリパーゼの使用量が、活性比で、第一のリパーゼ１に対して、０．０１～２０である、請求項１～４のいずれか一項に記載の方法。
  6. 　反応液の酸価が90～160となった時点で加水分解反応を終了させる、請求項１～５のいずれか一項に記載の方法。
  7. 　加水分解反応を10～50℃の温度で行う、請求項１～６のいずれか一項に記載の方法。
  8. 　第一のリパーゼ以外のドコサヘキサエン酸を濃縮する第三のリパーゼを、第一のリパーゼおよび第二のリパーゼと同時に、または時間差をおいて、原料油に作用させる、請求項１～７のいずれか一項に記載の方法。
  9. 　第三のリパーゼが、カンディダ　シリンドラセ由来のリパーゼである、請求項８に記載の方法。
  10. 　反応後、グリセリドを回収する工程をさらに含む、請求項１～９のいずれか一項に記載の方法。
     
     
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