WO2020022272A1 - インフルエンザワクチンを含む組成物 - Google Patents

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悠 安達
学 阿戸
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    • C12N2760/16171—Demonstrated in vivo effect

Definitions

  • the present invention relates to a composition comprising a vaccine adjuvant and a universal influenza vaccine antigen.
  • Component vaccines consisting of virus-derived proteins or their partial peptides are superior in safety to live vaccines and whole-particle inactivated vaccines.
  • component vaccines tend to have low efficacy of immunostimulation.
  • An adjuvant is an additive that enhances a humoral immune response and / or a cellular immune response to an antigen, and Alum, saponin, and the like have been used as vaccine adjuvants.
  • TLR Toll-like receptor
  • TLR7 and TLR8 small molecules that mimic single-stranded RNA of a virus that is a natural ligand are known as Activators.
  • synthetic compounds such as pyrimidine compounds (see Patent Documents 1 and 2) and imidazoquinoline compounds (see Patent Document 3) have been reported.
  • TLR7 and / or TLR8 Activation of TLR7 and / or TLR8 by its agonist activates dendritic cells (DC) via TLR and myeloid differentiation factor 88 (MyD88) -dependent signaling pathways.
  • DC dendritic cells
  • MyD88 myeloid differentiation factor 88
  • T-cell co-stimulatory molecules co-stimulatory molecules CD80, CD86, CD40
  • inflammatory cytokines including type I interferon (especially IFN ⁇ ), TNF ⁇ , IL-6 or IL-12 are produced. .
  • TLR7 and / or TLR8 agonist is known to have an activity of activating T cells and B cells in addition to activating DC, and further stimulating NK cells to promote IFN ⁇ production. It is expected to have vaccine adjuvant activity. Indeed, vaccine adjuvant activity of TLR7 and / or TLR8 agonists such as resiquimod or imiquimod has been reported (see Non-Patent Document 2).
  • Examples of the complex between the TLR7 and / or 8 agonist and other substances include a vaccine adjuvant in which a fatty acid and an imidazoquinoline compound are covalently linked (see Patent Documents 4, 5, 6, and Non-Patent Document 4), A conjugate compound of a phospholipid and an adenine compound (see Patent Literatures 7, 8, and 9), a conjugate compound of a fatty acid and an adenine compound (Non-Patent Literature 5), a fatty acid glyceride or a polyethylene glycol of a phospholipid and an adenine compound A conjugate compound (see Patent Document 10), a conjugate compound of squalene and an adenine compound (see Patent Document 11), and a conjugate compound of squalene and a pyrimidine compound (see Patent Document 12) are known.
  • influenza hemagglutinin also called influenza HA split vaccine
  • the HA antibody binds to a portion of the hemagglutinin that is exposed from the viral membrane, called the head region, which is the region having the most structural change among the virus strains.
  • the head region which is the region having the most structural change among the virus strains.
  • stem cell antibody's ability to protect infection not only depends on its antigen binding property and antibody amount, but also strongly depends on the subclass of the induced IgG antibody (see Non-Patent Document 3).
  • stem IgG2 antibodies are functional and cross-reactive, indicating that a vaccine that strongly induces stem IgG2 antibodies is effective in protecting a wide range of influenza infections.
  • no method has been found to effectively enhance the ability to induce stem IgG2 antibodies.
  • the problem to be solved by the present invention is to find an influenza HA split vaccine that effectively produces an antibody that binds to the HA stem region of an influenza virus that is unlikely to cause antigen mutation, and a method for improving the inducing ability of an IgG2 antibody. It is to provide.
  • the present inventors have conducted intensive studies and found that the stem region of hemagglutinin is exposed to the outside by subjecting the current influenza HA split vaccine to acidic treatment, and the influenza HA split vaccine after the acid treatment has an HA stem region. It has been found that it can function as a universal influenza vaccine antigen by producing a cross-reactive antibody that binds to LAH (long alpha alpha helix). Furthermore, it has been found that by adding a compound that enhances the physiological activity of TLR7 to the influenza HA split vaccine after the acid treatment, the compound functions as a vaccine adjuvant, and its IgG2 antibody-inducing ability is improved. Was completed.
  • the present invention relates to the following.
  • composition comprising the following (1) and (2); (1) a universal influenza vaccine antigen; and (2) a vaccine adjuvant.
  • composition according to Item 1 wherein the universal influenza vaccine antigen is an influenza HA split vaccine antigen capable of producing an antibody that binds to LAH in the HA stem region.
  • composition according to Item 2 wherein the HA stem region of the influenza HA split vaccine antigen is in a form exposed to the outside.
  • the universal influenza vaccine antigen is a vaccine antigen containing two or more influenza HA split vaccine antigens produced by subjecting an influenza HA split vaccine, each of which is a single HA subtype, to an acidic treatment.
  • Item 8. The composition according to any one of Items 1 to 7.
  • the vaccine adjuvant is a substance that enhances the physiological activity of one or more TLRs selected from the group consisting of TLR7, TLR8, and TLR9.
  • Composition [Item 12] The composition according to any one of Items 1 to 11, wherein the vaccine adjuvant is a substance that enhances at least the physiological activity of TLR7.
  • the vaccine adjuvant is a substance that enhances at least the physiological activity of TLR9.
  • the substance that enhances the biological activity of TLR7 is a low molecular weight compound that enhances the biological activity of TLR7, or a low molecular weight compound that enhances the biological activity of TLR7 is chemically bound to a lipid via a spacer.
  • Item 13 The composition according to Item 11 or 12, which is a conjugate compound.
  • the low molecular weight compound that enhances the physiological activity of TLR7 or the low molecular weight compound that enhances the physiological activity of TLR7 contained in the conjugate compound has a molecular weight of 200 to 600, and has an adenine skeleton and a pyrimidine. Item 16.
  • composition according to Item 15 having a skeleton, an imidazoquinoline skeleton, an imidazopyridine skeleton, or a quinazoline skeleton.
  • the low molecular weight compound that enhances the physiological activity of TLR7 or the low molecular weight compound that enhances the physiological activity of TLR7 contained in the conjugate compound has a pyrimidine skeleton, an adenine skeleton, or an imidazoquinoline skeleton.
  • the conjugate compound wherein the compound that enhances the biological activity of TLR7 is a low molecular weight compound having an adenine skeleton and a lipid derived from squalene or squalane chemically bonded via a spacer, or a pharmaceutically acceptable compound thereof Item 19.
  • a conjugate compound or a pharmaceutical thereof, wherein the compound that enhances the biological activity of TLR7 is a low molecular weight compound having a pyrimidine skeleton and a squalene or squalane-derived lipid chemically bonded via a spacer.
  • Item 19 The composition according to any one of Items 15 to 18, which is a physiologically acceptable salt.
  • the compound that enhances the physiological activity of TLR7 is represented by the following formula (1): [In the formula (1), X represents methylene, R 1 represents a hydrogen atom or an alkyl group having 1 to 3 carbon atoms which may be substituted with a hydroxy group; R 2 represents a hydrogen atom or an alkyl group having 1 to 6 carbon atoms, R 3 represents an alkyl group having 1 to 3 carbon atoms, R 4 represents a hydrogen atom, a halogen atom, a hydroxy group, an alkyl group having 1 to 3 carbon atoms or an alkoxy group having 1 to 3 carbon atoms, Y 1 represents a single bond or methylene, Y 2 represents a single bond or —C (O) —, L represents a straight-chain alkylene having 2 or 3 carbon atoms, R 5 and R 6 independently represent a hydrogen atom or an alkyl group having 1 to 3 carbon atoms, or R 5 together with R 6 is a substituted or unsub
  • the conjugate compound is (4E, 8E, 12E, 16E, 20E) -N- ⁇ 2-[ ⁇ 4-[(2-amino-4- ⁇ [(3S) -1-hydroxyhexane-3-yl] amino ⁇ -6-methyl Pyrimidin-5-yl) methyl] benzyl ⁇ (methyl) amino] ethyl ⁇ -4,8,12,17,21,25-hexamethylhexacosa-4,8,12,16,20,24-hexaenamide ; (4E, 8E, 12E, 16E, 20E) -1- (4- ⁇ 4-[(2-amino-4- ⁇ [(2S) -1-hydroxypentan-2-yl] amino ⁇ -6-methylpyrimidine -5-yl) methyl] -3-methoxybenzyl ⁇ piperazin-1-yl) -4,8,12,17,21,25-hexamethylhexacosa-4,8,12,16,20,24
  • [Item 25] A method for preventing influenza, comprising administering a prophylactically effective amount of the composition according to any of Items 1 to 23 to a warm-blooded animal in need of prevention.
  • a prophylactically effective amount of a universal influenza vaccine antigen and a prophylactically effective amount of a vaccine adjuvant eg, a substance that enhances the biological activity of TLR7
  • a vaccine adjuvant eg, a substance that enhances the biological activity of TLR7
  • a kit for preventing influenza comprising a universal influenza vaccine antigen and a vaccine adjuvant (for example, a substance that enhances the biological activity of TLR7).
  • a vaccine adjuvant for example, a substance that enhances the biological activity of TLR7.
  • a vaccine adjuvant for example, a substance that enhances the biological activity of TLR7 for use in preventing influenza in combination with a universal influenza vaccine antigen.
  • a universal influenza vaccine antigen for use in the prevention of influenza in combination with a vaccine adjuvant eg, a substance that enhances the biological activity of TLR7.
  • [Item 30] Use of a vaccine adjuvant (for example, a substance which enhances the biological activity of TLR7) in the manufacture of a composition for preventing influenza containing a universal influenza vaccine antigen.
  • a vaccine adjuvant for example, a substance which enhances the biological activity of TLR7
  • a universal influenza vaccine antigen in the manufacture of a composition for preventing influenza comprising a vaccine adjuvant (for example, a substance that enhances the biological activity of TLR7).
  • a method for producing a composition comprising an influenza HA split vaccine antigen and a vaccine adjuvant (for example, a substance that enhances the biological activity of TLR7), comprising the following steps: a) a step of producing an influenza HA split vaccine antigen that produces an antibody that binds to LAH in the HA stem region by subjecting an influenza HA split vaccine that has not been subjected to formalin treatment to an acidic treatment; and b) the step (a). Mixing the obtained vaccine antigen with a vaccine adjuvant.
  • a vaccine adjuvant for example, a substance that enhances the biological activity of TLR7
  • a method for producing a composition comprising an influenza HA split vaccine antigen and a vaccine adjuvant (for example, a substance that enhances the biological activity of TLR7), comprising the following steps: a) a step of subjecting the influenza HA split vaccine to acidic treatment; b) subsequently performing formalin treatment to produce an influenza HA split vaccine antigen that produces an antibody that binds to LAH in the HA stem region; and c) combining the vaccine antigen obtained in step b) with a vaccine adjuvant. Mixing.
  • a vaccine adjuvant for example, a substance that enhances the biological activity of TLR7
  • a method for producing a kit containing an influenza HA split vaccine antigen and a vaccine adjuvant comprising the following steps: a) a step of producing an influenza HA split vaccine antigen that produces an antibody that binds to LAH in the HA stem region by subjecting an influenza HA split vaccine that has not been subjected to formalin treatment to an acidic treatment; and b) the step (a). A step of combining the obtained vaccine and a vaccine adjuvant into a kit.
  • a vaccine adjuvant for example, a substance that enhances the biological activity of TLR7
  • a method for producing a kit comprising an influenza HA split vaccine antigen and a vaccine adjuvant comprising the following steps: a) a step of subjecting the influenza HA split vaccine to acidic treatment; b) a step of producing an influenza HA split vaccine antigen that produces an antibody that binds to LAH in the HA stem region by subsequent formalin treatment; and c) combining the vaccine obtained in step b) with a vaccine adjuvant.
  • a vaccine adjuvant for example, a substance that enhances the biological activity of TLR7
  • a universal influenza vaccine antigen is provided, and the vaccine activity can be further improved by adding a vaccine adjuvant.
  • FIG. 3 is a diagram showing the improvement of cross-protection ability of an mouse against which an H3N2-type membrane fusion HA split vaccine has been inoculated with an antigen mutant strain. It is a figure which shows the rise of LAH antibody titer in the serum of the mouse
  • FIG. 3 is a diagram showing the improvement of cross-protection ability of an mouse against which an H3N2-type membrane fusion HA split vaccine has been inoculated with an antigen mutant strain. It is a figure which shows the rise of LAH antibody titer in the serum of the mouse
  • FIG. 3 is a diagram showing the improvement of cross-protection ability of an mouse against which an H1N1 membrane fusion HA split vaccine has been inoculated with an antigen mutant strain.
  • FIG. 4 shows that LAH-binding monoclonal antibodies bind more strongly to membrane-fused HA split vaccines than current HA split vaccines.
  • FIG. 2 is a view showing the cross-reactive IgG2c-inducing activity of a membrane-fused HA split vaccine to which A-1, A-2, or CpG has been added.
  • FIG. 2 is a view showing the cross-reactive IgG1 inducing activity of a membrane fusion HA split vaccine to which A-1, A-2, or CpG has been added.
  • FIG. 4 shows the cross-reactive IgG2c-inducing activity of a membrane-fused HA split vaccine to which A-1, A-3, or AddaVax (TM) has been added.
  • FIG. 2 is a view showing the cross-reactive IgG1 inducing activity of a membrane-fused HA split vaccine to which A-1, A-3, or AddaVax (TM) has been added.
  • FIG. 4 is a view showing a cross-reactive IgG2c / IgG1 ratio of a membrane fusion HA split vaccine to which A-1, A-3, or AddaVax (TM) is added.
  • FIG. 2 is a view showing the cross-protection ability of an mouse against which an H3N2 membrane-fused HA split vaccine supplemented with A-1, A-3, or AddaVax (TM) has been inoculated against an antigen mutant.
  • FIG. 4 is a graph showing the inhibitory effect of H3N2 membrane-fused HA split vaccine to which A-1, A-3, or AddaVax (TM) has been added, on weight loss in mice due to infection with an antigenic mutant.
  • FIG. 4 shows that LAH-binding monoclonal antibodies strongly bind to membrane-fused HA split vaccine that has been subjected to formalin treatment after acid treatment. It is a figure which shows the rise of the LAH antibody titer in the serum of the mouse
  • FIG. 4 shows the cross-reactive IgG2c-inducing activity of a membrane-fused HA split vaccine to which A-1, A-3, or AddaVax (TM) has been added.
  • FIG. 2 is a view showing the cross-reactive IgG1 inducing activity of a membrane-fused HA split vaccine to which A-1, A-3, or AddaVax (TM) has been added.
  • FIG. 4 is a view showing a cross-reactive IgG2c / IgG1 ratio of a membrane fusion HA split vaccine to which A-1, A-3, or AddaVax (TM) is added.
  • FIG. 4 is a diagram showing the cross-protection ability of mice vaccinated with the H1N1 membrane-fused HA split vaccine to which A-1, A-3, or AddaVax (TM) has been added, against antigen mutants.
  • FIG. 3 is a graph showing the inhibitory effect of H1N1 membrane-fused HA split vaccine to which A-1, A-3, or AddaVax (TM) has been added on weight loss in mice due to antigen mutant infection.
  • a vaccine adjuvant is a substance having an immunopotentiating action or a preparation containing the same, and means a substance that improves the immunogenicity of an antigen when added to the antigen.
  • the vaccine adjuvants herein include alum, emulsions (eg, Freund's adjuvant, MF59 (registered trademark), AddaVax (TM), AS03, etc.), substances that enhance the physiological activity of NOD receptors, RIG-I receptors Substances that enhance physiological activity, substances that enhance the biological activity of C-type lectin receptor, substances that enhance the biological activity of cytoplasmic DNA receptor, substances that enhance the biological activity of STING, and substances that enhance the biological activity of TLR Etc. are included.
  • Preferred examples of the vaccine adjuvant in the present specification include substances that enhance the physiological activity of TLR.
  • the substance that enhances the physiological activity of TLR means a TLR agonist having TLR receptor agonist activity, and is not particularly limited as long as it is a substance that enhances the function of TLR receptor.
  • Examples of the substance that enhances the physiological activity of TLR in the present specification include monophosphoryl lipid A and its derivatives, adenine compounds, pyrimidine compounds, imidazoquinoline compounds, benzapine compounds, imidazopyridine compounds, quinazoline compounds, guanine compounds, dihydropteridine compounds , CpG ODN and the like.
  • the substance that enhances the biological activity of TLR in the present specification preferably includes a substance that enhances the biological activity of one or more TLRs selected from the group consisting of TLR7, TLR8, and TLR9, more preferably And a substance that enhances at least the physiological activity of TLR7.
  • the substance that enhances the physiological activity of TLR7 means a TLR7 agonist having TLR7 receptor agonist activity, and is not particularly limited as long as it is a substance that enhances the function of TLR7 receptor.
  • the substance that enhances the biological activity of TLR8 means a TLR8 agonist having TLR8 receptor agonist activity, and is not particularly limited as long as it is a substance that enhances the function of TLR8 receptor.
  • the substance that enhances the biological activity of TLR9 means a TLR9 agonist having TLR9 receptor agonist activity, and is not particularly limited as long as it is a substance that enhances the function of TLR9 receptor.
  • Examples of the substance that enhances the biological activity of TLR7 in the present specification include a substance that enhances the biological activity of TLR7 or a substance that enhances the biological activity of TLR7 and TLR8.
  • TLR7-selective means that TLR receptor agonist activity other than TLR7 is weaker than TLR7 receptor agonist activity.
  • TLR7 receptor agonist activity is TLR8 receptor activity using single-stranded RNA as an endogenous ligand.
  • the case where the activity is stronger than the body agonist activity more specifically, the case where the TLR7 receptor agonist activity (EC50 value) is 10 times or more the TLR8 receptor agonist activity can be exemplified.
  • Examples of the substance that enhances the biological activity of TLR7 in the present specification include a low molecular weight compound that enhances the biological activity of TLR7, and a low molecular weight compound that enhances the biological activity of TLR7 and a lipid are chemically bonded via a spacer. Conjugate compounds that are bound to are included.
  • the low molecular weight compound that enhances the biological activity of TLR7 in the present specification include those having a molecular weight of 200 to 600, preferably 250 to 500, more preferably 300 to 500.
  • a compound having an adenine skeleton, a pyrimidine skeleton, an imidazoquinoline skeleton, an imidazopyridine skeleton, a quinazoline skeleton, a guanine skeleton, or a dihydropteridine skeleton is used.
  • a compound having an adenine skeleton, a pyrimidine skeleton, or an imidazoquinoline skeleton is used.
  • Examples of the compound having an adenine skeleton include a compound having a 4-amino-8-oxo-purine (8-oxoadenine) skeleton, for example, an aromatic carbon ring having 5 to 6 members at the 9-position, and 5 to 6 members. Substituted with an alkyl group which may be substituted with a 4-membered aromatic heterocyclic ring or a 4- to 7-membered aliphatic nitrogen-containing heterocyclic ring (for example, a linear alkyl group having 1 to 6 carbon atoms). Examples include compounds having an oxo-purine skeleton.
  • GSK-2245035 [6-amino-2- ⁇ [(1S) -1-methylbutyl] oxy ⁇ -9- [5- (1-piperidinyl) pentyl] -7,9-dihydro-8H-purine -8-one], PF-4171455 [4-amino-1-benzyl-6-trifluoromethyl-1,3-dihydroimidazo [4,5-c] pyridin-2-one] and the like.
  • the compounds having an adenine skeleton preferably include the following compounds or pharmaceutically acceptable salts thereof: 6-amino-9-( ⁇ 6- [2- (dimethylamino) ethoxy] pyridin-3-yl ⁇ methyl) -2-ethoxy-7,9-dihydro-8H-purin-8-one; 6-amino-2- (butylamino) -9-( ⁇ 6- [2- (dimethylamino) ethoxy] pyridin-3-yl ⁇ methyl) -7,9-dihydro-8H-purin-8-one; N- (4- ⁇ [6-amino-2- (butylamino) -8-oxo-7,8-dihydro-9H-purin-9-yl] methyl ⁇ benzoyl) glycine; Methyl (3- ⁇ [[3- (6-amino-2-butoxy-8-oxo-7,8-dihydro-9H-purin-9-yl) propyl]
  • Examples of the compound having a pyrimidine skeleton include a compound having a 2,4-diaminopyrimidine skeleton.
  • the 6-position is appropriately substituted with an alkyl group or the like
  • the 5-position is a 5- to 6-membered aromatic carbon ring.
  • 2,4 substituted with an alkyl group which may be substituted with a 5- to 6-membered aromatic heterocycle or a 4- to 7-membered aliphatic nitrogen-containing heterocycle (for example, a linear alkyl group having 1 to 6 carbon atoms) -Diaminopyrimidine.
  • Specific examples include the compounds described in WO00 / 12487, WO2010 / 133885, WO2013 / 172479 or WO2012 / 136834.
  • Examples of the compound having an imidazoquinoline skeleton include imiquimod, resiquimod or 852A [N- [4- (4-amino-2-ethyl-1H-imidazo [4,5-c] quinoline-1). -Yl) butyl] methanesulfonamide] and other compounds having a 4-amino-1H-imidazo [4,5-c] quinoline skeleton, for example, a C1-6 alkyl group or C1-6 alkoxy at the 1-position. 4-amino-1H [4,5-c] quinoline substituted with a C1-6 alkyl group or a C1-6 alkoxy group.
  • the compound having an imidazoquinoline skeleton is preferably Imiquimod.
  • Examples of the compound having an imidazopyridine skeleton include a compound having a 4-amino-1,3-dihydro-2H-imidazo [4,5-c] pyridin-2-one skeleton.
  • a compound having a 6- or 7-position Is substituted with a C1-6 alkyl group or a C1-6 alkoxy group which may be substituted with a halogen atom, and the 1-position is a 5- to 6-membered aromatic carbocycle, a 5- to 6-membered aromatic heterocycle or 4-amino-1,3-dihydro-2H-imidazo [substituted with an alkyl group which may be substituted with a 7-membered aliphatic nitrogen-containing heterocyclic ring (eg, a linear alkyl group having 1 to 4 carbon atoms)] 4,5-c] pyridin-2-one.
  • a 7-membered aliphatic nitrogen-containing heterocyclic ring eg, a linear alkyl
  • Examples of the compound having a quinazoline skeleton include a derivative having a 2,4-diaminoquinazoline skeleton, and an alkyl group optionally substituted at the 4-position with a hydroxyl group or a halogen atom (for example, a linear or branched alkyl group).
  • Examples of the compound having a guanine skeleton include a compound having a 2-amino-6-oxopurine skeleton, and specifically, loxoribine.
  • Examples of the compound having a dihydropteridine skeleton include compounds having a 4-amino-7,8-dihydropteridin-6 (5H) -one skeleton, and specifically, besatrimod [4-amino-2-butoxy-8- [[3-[(pyrrolidin-1-yl) methyl] phenyl] methyl] -7,8-dihydropteridin-6 (5H) -one].
  • low molecular weight compounds that are TLR7 agonists include Isatoribine, ANA-773, and the compounds described in WO2010 / 077613.
  • Examples of the lipid in the conjugate compound in which a low molecular weight compound that promotes the biological activity of TLR7 and the lipid are chemically bonded via a spacer herein include saturated or unsaturated fatty acids having less than 100 carbon atoms.
  • a saturated or unsaturated fatty acid having 18 to 30 carbon atoms is used, and more preferably, a fatty acid derived from squalene or squalane is used.
  • Fatty acids derived from squalene include (4E, 8E, 12E, 16E, 20E) -4,8,12,17,21,25-hexamethylhexacosa-4,8,12,16,20,24- Hexanoic acid ((4E, 8E, 12E, 16E, 20E) -4,8,12,17,21,25-Hexamethylhexacosa-4,8,12,16,20,24-hexaenoic acid) and the like.
  • Examples of lipids derived from squalane include 4,8,12,17,21,25-hexamethylhexacosanoic acid (4,8,12,17,21,25-hexamethylhexacosanoic acid).
  • Examples of the low molecular weight compound moiety that enhances the biological activity of TLR7 in the conjugate compound in which the low molecular weight compound that enhances the biological activity of TLR7 and the lipid of the present invention are chemically bonded via a spacer include the above-mentioned compounds. Low molecular weight compounds that enhance the biological activity of TLR7.
  • Examples of the conjugate compound in which a low molecular weight compound that enhances the biological activity of TLR7 and a lipid are chemically bonded via a spacer in the present specification include a vaccine in which a fatty acid and an imidazoquinoline compound are covalently linked.
  • Adjuvants (Patent Literatures 4, 5, 6 and Non-Patent Literature 4), Conjugate Compounds of Phospholipids and Adenine Compounds (Patent Literatures 7, 8, 9), Conjugate Compounds of Fatty Acids and Adenine Compounds (Non-Patent Literature 5) , A conjugate compound of a fatty acid glyceride and an adenine compound via polyethylene glycol (Patent Document 10), a conjugate compound of a squalene compound and an adenine compound (Patent Document 11), a conjugate compound of a squalene compound and a pyrimidine compound (Patent Document 12) And the like.
  • conjugate compound in which a low-molecular weight compound that promotes the biological activity of TLR7 and a lipid are chemically bonded via a spacer for example, a low-molecular weight compound having an adenine skeleton and squalene or squalane are preferably used.
  • Conjugate compounds in which derived lipids are chemically bonded via a spacer low molecular weight compounds having a pyrimidine skeleton and squalene or squalane-derived lipids are chemically bonded through a spacer Conjugate compounds and pharmaceutically acceptable salts thereof are included.
  • conjugate compound in which a low molecular weight compound having an adenine skeleton and a lipid derived from squalene or squalane are chemically bonded via a spacer include a compound described in Patent Document 11 and the like.
  • Preferred examples of the conjugate compound in which a low-molecular weight compound having a pyrimidine skeleton and a lipid derived from squalene or squalane are chemically bonded via a spacer include a compound described in Patent Document 12. More preferably, a compound represented by the following formula (1) or a pharmaceutically acceptable salt thereof is used.
  • X represents methylene
  • R 1 represents a hydrogen atom or an alkyl group having 1 to 3 carbon atoms which may be substituted with a hydroxy group
  • R 2 represents a hydrogen atom or an alkyl group having 1 to 6 carbon atoms
  • R 3 represents an alkyl group having 1 to 3 carbon atoms
  • R 4 represents a hydrogen atom, a halogen atom, a hydroxy group, an alkyl group having 1 to 3 carbon atoms or an alkoxy group having 1 to 3 carbon atoms
  • Y 1 represents a single bond or methylene
  • Y 2 represents a single bond or —C (O) —
  • L represents a straight-chain alkylene having 2 or 3 carbon atoms
  • R 5 and R 6 independently represent a hydrogen atom or an alkyl group having 1 to 3 carbon atoms, or R 5 together with R 6 is a substituted or unsubstituted 5- to 8-membered nitrogen-containing nitrogen-containing compound A saturated heterocycl
  • Halogen atom includes a fluorine atom, a chlorine atom, a bromine atom and an iodine atom, preferably a fluorine atom or a chlorine atom.
  • straight alkylene having 2 or 3 carbon atoms examples include, but are not limited to, ethylene and n-propylene.
  • alkyl group having 1 to 3 carbon atoms a linear or branched alkyl group having 1 to 3 carbon atoms can be mentioned. Examples include, but are not limited to, methyl, ethyl, propyl, and isopropyl.
  • alkoxy group having 1 to 3 carbon atoms a straight or branched alkoxy group having 1 to 3 carbon atoms can be mentioned. Examples include, but are not limited to, methoxy, ethoxy, propoxy, isopropoxy.
  • the “5- to 8-membered nitrogen-containing saturated heterocycle” includes at least 2 nitrogen atoms selected from 2 or 3 nitrogen atoms, 0 or 1 oxygen atom and 0 or 1 sulfur atom.
  • a 5- to 8-membered nitrogen-containing saturated heterocycle containing 1 to 3 heteroatoms in the ring is mentioned. Specific examples include pyrrolidine, piperidine, perhydroazepine, imidazolidine, piperazine, morpholine, thiomorpholine, perhydro-1,4-diazepine and the like.
  • the substituent when the nitrogen-containing saturated hetero ring is substituted preferably a methyl group, an ethyl group, a propyl group, a hydroxymethyl group, a hydroxyethyl group, a carbonyl group, a hydroxy group or a halogen atom, more preferably a hydroxy group Or a halogen atom, and may be substituted with the same or different 1 to 4 substituents.
  • conjugate compound in which a low molecular weight compound having a pyrimidine skeleton and a lipid derived from squalene or squalane are chemically bound via a spacer
  • examples of the pharmaceutically acceptable salt include an acid addition salt and a base addition salt.
  • examples of the acid addition salt include an acid addition salt with an inorganic or organic acid (such as hydrochloric acid, hydrobromic acid, sulfuric acid, trifluoroacetic acid, citric acid, and maleic acid).
  • examples of the base addition salt include an alkali metal salt such as a sodium salt or a potassium salt, an alkaline earth metal salt such as a calcium salt, and an ammonium salt.
  • the universal influenza vaccine antigen means an influenza vaccine antigen that induces an antibody capable of broadly protecting influenza (including a mutant virus) (for example, a cross-protective antibody).
  • Examples of the universal influenza vaccine antigen include a particle antigen containing an influenza virus-derived protein described in Patent Document 14 and an influenza HA antigen shown in Non-Patent Documents 6, 7, and 8.
  • an influenza HA split vaccine antigen that produces an antibody that binds to the HA stem region LAH. More preferably, "an influenza HA split vaccine antigen that has an HA stem region in an externally exposed form and produces an antibody that binds to the HA stem region LAH" (hereinafter, referred to as the influenza HA split vaccine of the present invention), Can be produced, for example, by a method including a step of performing an acid treatment described below.
  • influenza HA split vaccine of the present invention induces an antibody that binds to LAH in the stem region of hemagglutinin, which is unlikely to cause antigen mutation, so that the antigen site to which the antibody induced by the conventional influenza HA split vaccine binds (this is the hemagglutinin (In the bulb region) may also be effective against mutated influenza viruses.
  • influenza HA split vaccine of the present invention binds more strongly to the LAH-binding monoclonal antibody than the current HA split vaccine.
  • it preferably binds to LAH binding monoclonal antibody 1.05 times or more, preferably 1.1 times or more, more preferably 1.5 times or more, and still more preferably 2 times or more stronger than the current HA split vaccine.
  • binding 1.05 times, 1.1 times, 1.5 times, or 2 times or more stronger than the current HA split vaccine means that, for example, the reciprocal of the antibody concentration when the absorbance obtained by regression is 0.7 indicates that the current HA split is 1.05 times, 1.1 times, 1.5 times, or 2 times or more of the reciprocal of the antibody concentration of the vaccine.
  • the influenza HA split vaccine of the present invention has a higher binding property to the LAH-binding monoclonal antibody as compared with the current HA split vaccine, and the upper limit is not particularly limited, but is, for example, 1.05 to 200 times, 1.1 to 150 times. , 1.5 to 100 times, and 2 to 50 times.
  • the range of binding of the influenza HA split vaccine of the present invention to the LAH-binding monoclonal antibody as compared to the current HA split vaccine is 1.05, 1.1, 1.5, 2, 3, 4, and 5 with a lower limit selected from 200. , 150, 100, 50, 30, and 20 in combination with an upper limit.
  • the method for measuring the binding property of the influenza HA split vaccine to the LAH-binding monoclonal antibody is not particularly limited, and can be performed by a general method known to those skilled in the art. .
  • the LAH-binding monoclonal antibody means a monoclonal antibody that binds to LAH, and its production method is not particularly limited, and can be produced by a general method known to those skilled in the art.
  • the LAH binding monoclonal antibody can bind to a peptide corresponding to at least a portion of LAH of the influenza virus from which the influenza HA split vaccine is derived. Means something.
  • the current HA split vaccine means a whole particle vaccine which has been treated with ether to remove a lipid component that becomes a pyrogen, and can be produced by, for example, the method of Example 1 of the present application.
  • the current HA split vaccine may be an influenza HA split vaccine produced without applying an acid treatment to the influenza HA split vaccine of the present invention produced by a method having the following acidic treatment step.
  • the production method includes a step of subjecting the influenza HA split vaccine to acidic treatment.
  • the influenza HA split vaccine is obtained by treating the whole-particle vaccine with ether to remove lipid components, which are pyrogens.
  • the HA protein on the surface of virus particles required for immunization is recovered by density gradient centrifugation. HA protein is the main component for production.
  • Influenza A virus has two types of spike proteins, HA and NA (neuraminidase), and plays a role in causing the virus to cause infection.
  • HA binds to the cells to be infected and takes up the virus into the cells.
  • HA frequently causes antigenic mutations.
  • NA plays a role in breaking HA from infected cells and releasing the replicated virus from the cells.
  • the HA protein changes into a structure called a membrane fusion type.
  • the membrane-fused HA protein has a shape in which the stem region is exposed to the outside from the viral membrane instead of the globular region, with a large change in the antigen stem three-dimensional structure.
  • fused HA was used as a vaccine, an antibody that binds to LAH in the stem region was induced, and it was found in vivo that this antibody has a protective effect against antigen-mutated viruses.
  • the acidic treatment is not particularly limited, but is, for example, pH 3.0 to 6.5, preferably 4.0 to 6.0, and more preferably 4.4 to 5.8.
  • the acid used for performing the acid treatment is not particularly limited, but for example, phosphoric acid, citric acid, maleic acid and the like can be used.
  • the timing of applying the acid treatment to the influenza HA split vaccine is preferably before the formalin treatment.
  • the HA fraction used for the current influenza HA split vaccine is subjected to acidic treatment.
  • the formalin treatment followed by formalin treatment it is possible to obtain an influenza HA split vaccine antigen that has a strong effect of producing a cross-reactive antibody, and thus is more preferable as a universal influenza vaccine antigen. That is, in the present application, it is preferred that the virus fraction is treated with ether or the like, and the HA fraction from which the lipophilic solvent is removed is subjected to an acidic treatment and then to a formalin treatment.
  • influenza HA split vaccine before the acidic treatment is preferably a split vaccine that has not been subjected to formalin treatment.
  • Commercially available influenza HA vaccine (brand name) is described in the standard for biological products (March 30, 2004 Notification of Ministry of Health, Labor and Welfare No. 155, last revision: November 30, 2018 Notification of Ministry of Health, Labor and Welfare No. 409) As described above, a step of decomposing a virus with ether or the like, removing a lipophilic solvent, and then treating with formaldehyde or a substance having an equivalent action has been already performed.
  • a commercially available influenza HA vaccine (trade name) is an influenza HA split vaccine, it is preferably not used for the production of the influenza HA split vaccine of the present invention since it has been treated with formaldehyde or the like.
  • the concentration of formalin in the formalin-treated solution when formalin is applied to the acid-treated influenza HA split vaccine is, for example, 0.0005 v / v% to 10 v / v%, preferably 0.001 v / v% to 1 v / v%, More preferably, 0.003 v / v% to 0.5 v / v%, and still more preferably, 0.005 v / v% to 0.1 v / v%.
  • the grade of formalin used is preferably a grade usable for medical use.
  • HA of influenza A virus is divided into 18 subtypes (H1 to H18) and NA is divided into 9 subtypes (N1 to N9). Subtypes can be targeted.
  • the method for producing an influenza HA split vaccine of the present invention can produce not only type A but also a type B vaccine having HA, the type A and type B vaccines fall under the category of the influenza HA split vaccine of the present invention. It is.
  • Preferred examples of the influenza HA split vaccine of the present invention include those derived from H3N2 influenza virus and H1N1 influenza virus.
  • influenza HA split vaccine that is a single HA subtype refers to one subtype of influenza A virus selected from 18 subtypes (H1 to H18) or influenza B virus. Influenza HA split vaccine. If a single HA subtype, the NA subtype may be the same or different. Preferred HA subtypes include H1, H3 and B types.
  • an influenza HA split vaccine consisting of a single HA subtype is subjected to acid treatment, and the obtained influenza HA split vaccines are treated in a plurality (two or more).
  • a plurality two or more
  • it can be manufactured by mixing.
  • it can be produced by first subjecting an influenza HA split vaccine obtained by mixing two or more HA subtypes to acidic treatment.
  • one to three subtypes selected from the group consisting of H1, H3 and B types are included.
  • influenza HA split vaccine of the present invention produces antibodies that bind to LAH with few mutations, cross-protection against influenza viruses known as antigenic mutants is possible within the same HA subtype. Can be Further, cross-reactivity may be exhibited between HA subtypes having similar amino acid sequences of LAH (eg, H3 type and H7 type).
  • the influenza HA split vaccine obtained by the above-mentioned production method has a protective effect on an antigen-mutated virus strain.
  • the current HA split vaccine is prepared from H3N2 influenza virus particles (A / Fujian / 411/02 (H3N2)) and subjected to acidic treatment, not only A / Fujian / 411/02 (H3N2), but also , A / Guizhou / 54/89 (H3N2), A / OMS / 5389/88 (H3N2), A / Beijing / 32/92 (H3N2), A / England / 427/88 (H3N2), A / Africa / 33 / 94 (H3N2), A / Leningrad / 360/86 (H3N2), A / Mississippi / 1/85 (H3N2), A / Philippines / 2/82 (H3N2), A / Shangdong / 9/93 (H3N2), A / Shanghai / 16
  • the current HA split vaccine is prepared from H1N1 influenza virus particles (A / Puerto Rico / 8/34 (H1N1)) and subjected to acidic treatment, not only A / Puerto Rico / 8/34 (H1N1)
  • the influenza HA split vaccine of the present invention has an enhanced ability to induce a stem IgG2 antibody by combining a compound that enhances the biological activity of TLR7, and exhibits excellent vaccine activity.
  • Another embodiment of the combination of the universal influenza vaccine antigen and the vaccine adjuvant includes a combination of an influenza HA split vaccine antigen that produces an antibody that binds to the HA stem region LAH, and a substance that enhances the biological activity of TLR.
  • the influenza HA split vaccine antigen which has an HA stem region exposed to the outside and produces an antibody that binds to the HA stem region LAH, and the biological activity of TLR7 Combination of a low molecular weight compound that enhances or a substance that enhances the biological activity of TLR7 selected from conjugate compounds in which a lipid and a low molecular weight compound that enhances the biological activity of TLR7 are chemically bonded via a spacer Is mentioned.
  • an influenza HA split vaccine antigen that has an HA stem region exposed to the outside and produces an antibody that binds to the HA stem region LAH, and a molecular weight of 200 to 600 A conjugate comprising a lipid and a low molecular weight compound that enhances the biological activity of TLR7 having an adenine skeleton, a pyrimidine skeleton, an imidazoquinoline skeleton, an imidazopyridine skeleton, or a quinazoline skeleton, and a lipid chemically bound via a spacer Combinations with compounds are mentioned.
  • the HA stem region has a shape that is exposed to the outside, thereby enhancing the antigenicity of the HA stem region LAH.
  • an influenza HA split vaccine antigen capable of producing a binding antibody, and a conjugate compound in which a low molecular weight compound having a pyrimidine skeleton and a lipid derived from squalene or squalane are chemically bound via a spacer Is mentioned.
  • the HA stem region has a shape that is exposed to the outside, thereby enhancing the antigenicity of the HA stem region LAH.
  • a combination of an influenza HA split vaccine antigen capable of producing a binding antibody and a compound that enhances the biological activity of TLR7 represented by the following formula (1): Equation (1): [In the formula (1), X represents methylene, R 1 represents a hydrogen atom or an alkyl group having 1 to 3 carbon atoms which may be substituted with a hydroxy group; R 2 represents a hydrogen atom or an alkyl group having 1 to 6 carbon atoms, R 3 represents an alkyl group having 1 to 3 carbon atoms, R 4 represents a hydrogen atom, a halogen atom, a hydroxy group, an alkyl group having 1 to 3 carbon atoms or an alkoxy group having 1 to 3 carbon atoms, Y 1 represents a single bond or methylene, Y 2 represents a single
  • the HA stem region has a shape that is exposed to the outside, thereby enhancing the antigenicity of the HA stem region LAH.
  • a combination of an influenza HA split vaccine antigen capable of producing a binding antibody and a compound that enhances the biological activity of TLR7 selected from the following: (4E, 8E, 12E, 16E, 20E) -N- ⁇ 2-[ ⁇ 4-[(2-amino-4- ⁇ [(3S) -1-hydroxyhexane-3-yl] amino ⁇ -6-methyl Pyrimidin-5-yl) methyl] benzyl ⁇ (methyl) amino] ethyl ⁇ -4,8,12,17,21,25-hexamethylhexacosa-4,8,12,16,20,24-hexaenamide ; (4E, 8E, 12E, 16E, 20E) -1- (4- ⁇ 4-[(2-amino-4- ⁇ [(2S) -1-hydroxypentan-2-yl] amino ⁇ -6-methylpyrimidine -5-yl) methyl] -3-methoxybenzyl ⁇ piperazin-1-yl) -4,8,
  • the HA stem region has a shape that is exposed to the outside, thereby enhancing the antigenicity of the HA stem region LAH.
  • a combination of an influenza HA split vaccine antigen capable of producing a binding antibody and a compound that enhances the biological activity of TLR7 selected from the following: (4E, 8E, 12E, 16E, 20E) -N- ⁇ 2-[ ⁇ 4-[(2-amino-4- ⁇ [(3S) -1-hydroxyhexane-3-yl] amino ⁇ -6-methyl Pyrimidin-5-yl) methyl] benzyl ⁇ (methyl) amino] ethyl ⁇ -4,8,12,17,21,25-hexamethylhexacosa-4,8,12,16,20,24-hexaenamide ; 4-[(2-amino-4- ⁇ [(2S) -1-hydroxypentan-2-yl] amino ⁇ -6-methylpyrimidin-5
  • an influenza HA split vaccine antigen capable of producing an antibody that binds to LAH in the HA stem region produced by subjecting an influenza HA split vaccine to acidic treatment.
  • a prophylactically effective amount is the amount of a universal influenza vaccine antigen and / or vaccine adjuvant required to confer a benefit in preventing influenza on a subject.
  • the universal influenza vaccine antigen and the vaccine adjuvant may be contained together in one composition, or may be prepared as separate compositions, respectively.
  • the universal influenza vaccine antigen and vaccine adjuvant are included in one composition so that they can be administered simultaneously.
  • the administration route of the universal influenza vaccine antigen composition and the vaccine adjuvant composition may be the same or different.
  • the vaccine antigen and the vaccine adjuvant can be administered simultaneously or staggered, ie, the vaccine antigen composition and the vaccine adjuvant composition can be administered simultaneously, separately (eg, prior to administration of the vaccine antigen composition or The vaccine adjuvant composition is administered after administration).
  • the universal influenza vaccine antigen composition and vaccine adjuvant composition may be provided as a kit containing them.
  • a composition comprising a universal influenza vaccine antigen and / or vaccine adjuvant may further comprise one or more pharmaceutically acceptable diluents or carriers, for example, tablets, capsules, granules, powders, troches.
  • Oral preparations such as syrups, emulsions and suspensions, or parenteral preparations such as external preparations, suppositories, injections, eye drops, nasal preparations, pulmonary preparations, etc., can be prepared by ordinary methods.
  • Preferred examples of the formulation include a liquid preparation for injection or nasal drop, and a lyophilized preparation prepared by freeze-drying the liquid preparation.
  • liquid for injection examples include emulsions and liposomes containing aqueous solutions and oily compositions, universal influenza vaccine antigens and / or vaccine adjuvants (eg, the compound represented by the formula (1) or a pharmaceutically acceptable salt thereof). ) Is dissolved or dispersed in water, or an aqueous solution preparation or suspension, or a universal influenza vaccine antigen and / or vaccine adjuvant (eg, a compound represented by the formula (1) or a pharmaceutically acceptable salt thereof) Or an oily suspension in which is dissolved or dispersed in oil.
  • universal influenza vaccine antigens and / or vaccine adjuvants eg, the compound represented by the formula (1) or a pharmaceutically acceptable salt thereof
  • oily suspension in which is dissolved or dispersed in oil.
  • examples of the aqueous solution, aqueous solution preparation or aqueous suspension include distilled water for injection, and an aqueous or aqueous solution containing a buffer, pH adjuster, stabilizer, isotonic agent and / or emulsifier as appropriate. Suspensions and the like.
  • oily compositions examples include compositions containing vegetable oils and fats, animal oils and fats, hydrocarbons, fatty acid esters, phospholipids and the like, and more specifically.
  • a composition containing squalene, squalane and the like can be mentioned.
  • Examples of the emulsifier include a hydrophilic surfactant and a hydrophobic surfactant.
  • composition herein is one or more pharmaceutically acceptable selected from the group consisting of sucrose, sucralose, trehalose, mannitol, glycine, methionine, citric acid, lactic acid, tartaric acid, acetic acid, trifluoroacetic acid and a pH adjuster.
  • Carrier may be included.
  • the administration method of the composition, kit, etc. in the present application can be appropriately selected according to conditions such as the type of disease, the condition of the subject, and the target site.
  • Examples of the administration method include parenteral administration, specifically, intravascular (eg, intravenous), subcutaneous, intradermal, intramuscular, nasal, and transdermal administration.
  • the dose of the vaccine adjuvant and vaccine antigen is not particularly limited, and is appropriately selected depending on the administration method, subject, age of subject, dosage form, administration route, and the like.
  • the dose is usually 5 to 5000 mg / m 2 (body surface area) for a warm-blooded animal.
  • Ie administered in a unit dose ranging from about 0.1 ng / kg to 100 mg / kg, which usually results in a prophylactically effective dose.
  • a unit dosage form such as an injection, tablet or capsule usually contains, for example, 1 ng to 250 mg of the compound represented by the formula (1) or a pharmaceutically acceptable salt thereof.
  • it is used in a dose ranging from 1 ng to 50 mg / kg per day.
  • the daily dose also has to be varied according to the host to be treated, the particular route of administration and the severity of the disease to be treated.
  • the optimal dosage can also be determined by the practitioner treating the individual patient or warm-blooded animal.
  • the vaccine adjuvant is administered concurrently with a universal influenza vaccine antigen, for example, according to the universal influenza vaccine antigen administration schedule described below.
  • the vaccine adjuvant can be administered in consideration of, for example, the administration schedule of the universal influenza vaccine antigen described below.
  • the dose of the universal influenza vaccine antigen (eg, the influenza HA split vaccine of the present invention), the dosage form of the composition, the number of administrations, the time required for one administration, and the like depend on the age of the subject, the target site, and other conditions. It can be appropriately selected depending on the situation.
  • the universal influenza vaccine antigen (eg, the influenza HA split vaccine of the present invention) can be administered, for example, only once, or can be used so as to be boosted after a predetermined period of time after the initial vaccination. It is possible.
  • the period from the initial inoculation to the additional inoculation is not particularly limited, but is, for example, 20 days to 3 years, preferably 3 months to 2 years, and more preferably 6 months to 1 year. Year.
  • the amount of the universal influenza vaccine antigen for the first vaccination and the booster vaccination is not particularly limited, but is, for example, 1 ⁇ g to 200 ⁇ g, preferably 10 ⁇ g to 30 ⁇ g, and more preferably 15 ⁇ g per dose.
  • One dose is, for example, 0.5 mL.
  • the amount of the substance that enhances the biological activity of TLR7 in the initial inoculation and the booster inoculation is usually 0.0001 mg to 1000 mg, preferably 0.001 mg to 1000 mg, more preferably 0.1 mg to 10 mg.
  • the administration method is not particularly limited, but for example, nasal, subcutaneous, intradermal, transdermal, intraocular, mucosal or oral administration, preferably intramuscular administration.
  • warm-blooded animals include humans and non-human animals.
  • Non-human animals include, but are not limited to, mammals such as, for example, non-human primates, sheep, dogs, cats, horses, and cows.
  • warm-blooded animals humans, particularly those in need of influenza prevention, are preferred.
  • An embodiment of the method for preventing influenza in the present application includes a method comprising administering a composition comprising the above-mentioned universal influenza vaccine antigen and a vaccine adjuvant. Another embodiment includes a method comprising administering a universal influenza vaccine antigen composition and a vaccine adjuvant composition.
  • Example 1 Influenza HA split vaccine of the present invention
  • H3N2 influenza virus particles X31 strain
  • H1N1 influenza virus particles A / Puerto Rico / 8/34 strain
  • phosphate buffered saline have a final concentration of 0.1 v Tween 80 was added and suspended so as to be / v%.
  • Diethyl ether was added and the mixture was further suspended and allowed to stand until the aqueous layer and the diethyl ether layer were completely separated, and then the diethyl ether layer was removed. After repeating the ether extraction, diethyl ether remaining in the collected aqueous layer was distilled off at normal pressure to obtain an HA split vaccine.
  • H3N2 influenza vaccine BALB / c mice (female, 6 to 12 weeks old) were given H3N2-type current HA split vaccine or membrane-fused HA split vaccine ( 10 ⁇ g vaccine + 10 v / v% AddaVax adjuvant (InvivoGen) was dissolved in phosphate buffered saline to make a volume of 200 ⁇ l) intraperitoneally. Twenty-eight days after the first vaccination, the membrane-fused HA vaccine (only 10 ⁇ g vaccine was dissolved in phosphate-buffered saline to make a volume of 200 ⁇ l) was intraperitoneally inoculated. After 14 days from the additional vaccination, blood was collected from the vaccinated mice, and the serum was collected.
  • a synthetic peptide (H3; @ Ac-RIQDLEKYVEDTKIDLWSYNAELLVALENQHTIDLTDSEMNKLFEKTRRQLRENADYKDDDDKC) (SEQ ID NO: 1) corresponding to a part of the stem portion (long @ alpha @ helix) was dissolved in phosphate buffered saline (pH@7.3) at 10 .mu.g / ml, 100 ⁇ l each was added to a 96-well plate. After standing at 4 ° C.
  • each well is washed three times with a phosphate buffered saline (containing 0.05 v / v% of Tween 20) and contains 0.05 v / v% Tween 20 and 1 v / v% bovine serum albumin Peroxidase-labeled anti-mouse IgG antibody (Southern Biotech) diluted with phosphate buffered saline was added to each well in an amount of 100 ⁇ l.
  • a phosphate buffered saline containing 0.05 v / v% of Tween 20
  • 0.05 v / v% Tween 20 contains 0.05 v / v% Tween 20 and 1 v / v% bovine serum albumin Peroxidase-labeled anti-mouse IgG antibody (Southern Biotech) diluted with phosphate buffered saline was added to each well in an amount of 100 ⁇ l.
  • the LAH antibody titer in the serum of BALB / c mice intraperitoneally inoculated with the membrane fusion HA split vaccine was determined by the LAH antibody titer in BALB / c mice inoculated intraperitoneally with the current HA split vaccine. It was significantly higher than the antibody titer.
  • H3N2 influenza virus ⁇ ⁇ ⁇ (A / Guizhou / 54/89) with a different antigenicity from the vaccine strain was lethal dose 50 (5% of the virus that causes lethal infection in 50% of mice).
  • the virus infection was performed by intranasal administration under anesthesia in (2).
  • H1N1 influenza virus particles C57BL / 6 mice (female, 6 to 12 weeks old) were treated with the current H1N1 HA split vaccine or membrane-fused HA split vaccine (10 ⁇ g vaccine + 10 ⁇ g CpG-ODN1760 was suspended in phosphate buffered saline and mixed with an equal volume of Freund's incomplete adjuvant (ROCKLAND) to a volume of 200 ⁇ l) intraperitoneally.
  • ROCKLAND Freund's incomplete adjuvant
  • a membrane fusion HA split vaccine (similar to the first vaccination, 10 ⁇ g vaccine + 10 ⁇ g CpG-ODN was suspended in phosphate buffered saline, and an equal volume of Freund's incomplete adjuvant (ROCKLAND) To make a volume of 200 ⁇ l). After 14 days from the additional vaccination, blood was collected from the vaccinated mice, and the serum was collected.
  • H1 Ac-RIENLNKKVDDGFLDIWTYNAELLVLLENERTLDYHDSNVKNLYEKVRSQLKNNADYKDDDDKC
  • H1 clone name F2
  • the LAH antibody titer in the sera of C57BL / 6 mice inoculated intraperitoneally with the membrane fusion HA split vaccine was determined by the LAH antibody titer in C57BL / 6 mice inoculated intraperitoneally with the current HA split vaccine. It was significantly higher than the antibody titer.
  • H1N1 influenza virus ⁇ ⁇ ⁇ (A / Narita / 1/09) with a different antigenicity from the vaccine strain was lethal dose 50 (5% of the amount of virus that causes lethal infection in 50% of mice).
  • the virus infection was performed by intranasal administration under anesthesia in (2).
  • mice were observed daily for 20 days after virus infection to determine their survival rates. As shown in FIG. 5, in the C57BL / 6 mice inoculated with the membrane fusion HA split vaccine, the decrease in survival rate was significantly suppressed from day 9 after infection with another H1N1 influenza virus having different antigenicity.
  • each well was washed three times with phosphate buffered saline, and 150 ⁇ l of phosphate buffered saline containing 1 v / v% bovine serum albumin was added. After allowing to stand at room temperature for 2 hours, each well is washed three times with phosphate buffered saline (containing 0.05 v / v% of Tween 20), and stepwise with a phosphate buffer containing 1 v / v% bovine serum albumin. 50 ⁇ l of the diluted LAH-binding monoclonal antibody was added. After standing at 4 ° C.
  • LAAs shown in FIG. 6 the LAH binding monoclonal antibody bound 1.05 to 21 times stronger to the membrane-fused HA split vaccine than the current HA split vaccine. These results indicate that the acidic treatment of the HA split vaccine enhances antibody binding to LAH epitope.
  • Example 2 Composition comprising a TLR agonist of the present application and an influenza HA split vaccine
  • TLR7 A-1 Preparation of an adjuvant composition containing a compound that enhances the biological activity of TLR7 A-1
  • Preparation method 2.96 g dimyristoyl phosphatidylcholine (DMPC), 2.04 g egg yolk phosphatidylglycerol (EPG), and 0.5 g TLR7 agonist ((4E, 8E, 12E, 16E, 20E) -N- ⁇ 2-[ ⁇ 4- [(2-amino-4- ⁇ [(3S) -1-hydroxyhexane-3-yl] amino ⁇ -6-methylpyrimidin-5-yl) methyl] benzyl ⁇ (methyl) amino] ethyl ⁇ -4,8 , 12,17,21,25-Hexamethylhexacosa-4,8,12,16,20,24-hexaenamide) (hereinafter, referred to as compound A) were weighed, and further, cyclohexane 20 g, ethanol 0.4 g Was added
  • Filtration was performed using a 0.2 ⁇ m membrane filter and freeze-dried. The dispersion was added using a 9 v / v% aqueous sucrose solution. A liposome solution was prepared using an extruder, passed through a 0.22 ⁇ m filtration filter, and lyophilized. Condensation was performed as needed using distilled water for injection.
  • TLR7 agonist methyl (4- ⁇ [[3- (6-amino-2-butoxy-8-oxo-7,8-dihydro-9H-purin-9-yl) propyl] (3-piperidin-1- (Ilpropyl) amino] methyldiphenyl) acetate / hydrochloride (hereinafter referred to as compound B) was weighed, and 0.6 mL / v% phosphate buffered saline containing 1 mL of 0.1 V / V% Tween80 (pH 6) was added and suspended.
  • compositions containing the influenza HA split vaccine of the present application and a compound that enhances the biological activity of TLR7 X31-type membrane fusion HA split vaccine (10 ⁇ g), phosphate buffered saline, A-1 containing 50 ⁇ g TLR7 agonist (compound A), A-2 containing 200 ⁇ g TLR7 agonist (compound B), 10 ⁇ g A-3 containing the TLR7 agonist (Compound A), an X31-type membrane-fused HA split vaccine solution and an equal volume of AddaVax adjuvant (InvivoGen) or 10 ⁇ g of CpG-ODN1760 are suspended in phosphate buffered saline.
  • AddaVax adjuvant InvivoGen
  • mice Female, 6 to 12 weeks old were inoculated intradermally or intramuscularly in the thigh (50 ⁇ l per side, total 100 ⁇ l). Three weeks later, the same mouse was boosted with the same antigen and the same conditions, and two weeks after the booster immunization, blood was collected and serum was collected.
  • the HA antibody concentration in the serum of the mouse was measured by the ELISA method according to the following method. That is, the recombinant HA protein (X3 strain of H3N2 influenza virus or A / convinced / 716/2007) was dissolved at 10 ⁇ g / ml in phosphate buffered saline (pH 7.3), and 100 ⁇ l was added to a 96-well plate. Was added. After standing at 4 ° C. overnight, each well was washed three times with phosphate buffered saline, and 150 ⁇ l of phosphate buffered saline containing 1 v / v% bovine serum albumin was added.
  • each well was washed three times with phosphate buffered saline, and Tween 20 was serially diluted with a phosphate buffer containing 0.05 v / v% and 1 v / v% bovine serum albumin.
  • Mouse serum and a standard monoclonal antibody of known concentration (H3; clone name V15-5) were added to each well in an amount of 100 ⁇ l.
  • each well is washed three times with phosphate buffered saline (containing 0.05 v / v% of Tween 20), and contains 0.05 v / v% Tween 20 and 1 v / v% bovine serum albumin Peroxidase-labeled anti-mouse IgG1 antibody or anti-IgG2c antibody (Southern Biotech) diluted with phosphate buffered saline was added to each well in an amount of 100 ⁇ l.
  • phosphate buffered saline containing 0.05 v / v% of Tween 20
  • 1 v / v% bovine serum albumin Peroxidase-labeled anti-mouse IgG1 antibody or anti-IgG2c antibody Southern Biotech
  • the X31 type HA IgG2c antibody titer of the membrane fusion type HA split vaccination group to which all adjuvants were added was significantly higher than that of the group fusion type HA split vaccination group to which no adjuvant was added.
  • the A-1 administration group induced a higher X31 type HA IgG2c antibody titer than CpG-ODN1760 / Freund's incomplete adjuvant (CpG / IFA).
  • the A-1 administration group induced the highest X31 type HA ⁇ IgG2c antibody titer.
  • it showed completely the same reactivity with the Urg-type HA That is, these results show that the inoculation of the composition of the present application induces a cross-reactive IgG2 antibody having a high protective effect against infection.
  • the type X31-derived HA ⁇ IgG1 antibody titer of all the adjuvant-added membrane-fused HA split vaccination groups was significantly increased as compared to the adjuvant-free membrane-fused HA split vaccination group.
  • CpG-ODN1760 / Freund's ⁇ incomplete ⁇ adjuvant CpG / IFA
  • CpG / IFA CpG-ODN1760 / Freund's ⁇ incomplete ⁇ adjuvant
  • the A-1 administered group showed a higher X31 type HA IgG2c / IgG1 antibody ratio than CpG-ODN1760 / Freund's incomplete adjuvant (CpG / IFA). Furthermore, the same ratio of HA-IgG2c / IgG1 antibody to Urg-type HA was obtained. That is, these results show that the inoculation of the composition of the present application induces a cross-reactive antibody with a high protective effect against infection.
  • the type X31-derived HAcIgG2c antibody titer of the membrane-fused HA split vaccination group to which all adjuvants were added was significantly lower than that of the group without adjuvant-added membrane-fused HA split vaccination.
  • the A-1 and A-3 administration groups induced a higher X31 type HA2IgG2c antibody titer than the AddaVax adjuvant administration group.
  • it showed completely the same reactivity with the Urg-type HA. That is, these results show that the inoculation of the composition of the present application induces a cross-reactive IgG2 antibody having a high protective effect against infection.
  • the type X31-derived HA ⁇ IgG1 antibody titer of the membrane-fused HA split vaccination group to which all adjuvants were added was significantly lower than that of the group without adjuvant-added membrane-fused HA split vaccination.
  • the A-3 and AddaVax adjuvant administration groups induced the highest X31 type HA IgG1 antibody titer.
  • it showed completely the same reactivity with the Urg-type HA. That is, these results indicate the induction of cross-reactive antibodies by inoculation of the composition of the present application.
  • the A-1 and A-3 administration groups exhibited a higher X31 type HA IgG2c / IgG1 antibody ratio than the AddaVax adjuvant administration group. Furthermore, the same ratio of HA-IgG2c / IgG1 antibody to Urg-type HA was obtained. That is, these results show that the inoculation of the composition of the present application induces a cross-reactive antibody with a high protective effect against infection.
  • mice inoculated with the membrane fusion HA split vaccine to which all adjuvants were added the decrease in survival rate was significantly suppressed from day 7 after infection with another H3N2 influenza virus having different antigenicity.
  • A-1 and A-3 showed 100% survival rate and showed the strongest protective action against infection.
  • mice inoculated with the membrane fusion HA split vaccine to which all adjuvants were added weight loss due to infection with another H3N2 influenza virus having different antigenicity was suppressed.
  • A-3 showed a stronger weight loss suppressing effect than the AddaVax adjuvant administration group.
  • composition containing the influenza HA split vaccine of the present application and a compound that enhances the biological activity of TLR7 H1N1 influenza virus PR8-derived membrane-fused HA split vaccine (10 ⁇ g) contains phosphate buffered saline, 50 ⁇ g of TLR7 agonist (Compound A) containing A-1, and 10 ⁇ g of TLR7 agonist (Compound A) A-3 or PR8 strain-derived membrane-fused HA split vaccine solution was mixed with an equal volume of AddaVax adjuvant (InvivoGen), respectively.
  • mice Male, 6 to 12 weeks old were inoculated intradermally or intramuscularly in the thigh (50 ⁇ l per side, total 100 ⁇ l). Three weeks later, the same mouse was boosted with the same antigen and the same conditions, and two weeks after the booster immunization, blood was collected and serum was collected.
  • the HA antibody concentration in the serum of the mouse was measured by the ELISA method according to the following method. That is, the recombinant HA protein (H1N1 influenza virus PR8 strain or A / Narita / 1/09) was dissolved at 10 ⁇ g / ml in phosphate buffered saline (pH 7.3), and 100 ⁇ l was placed in a 96-well plate. Was added. After standing at 4 ° C. overnight, each well was washed three times with phosphate buffered saline, and 150 ⁇ l of phosphate buffered saline containing 1 v / v% bovine serum albumin was added.
  • each well was washed three times with phosphate buffered saline, and Tween 20 was serially diluted with a phosphate buffer containing 0.05 v / v% and 1 v / v% bovine serum albumin.
  • Mouse serum and a standard monoclonal antibody of known concentration were added to each well in an amount of 100 ⁇ l.
  • each well is washed three times with phosphate buffered saline (containing 0.05 v / v% of Tween 20), and contains 0.05 v / v% Tween 20 and 1 v / v% bovine serum albumin Peroxidase-labeled anti-mouse IgG1 antibody or anti-IgG2c antibody (Southern Biotech) diluted with phosphate buffered saline was added to each well in an amount of 100 ⁇ l.
  • phosphate buffered saline containing 0.05 v / v% of Tween 20
  • 1 v / v% bovine serum albumin Peroxidase-labeled anti-mouse IgG1 antibody or anti-IgG2c antibody Southern Biotech
  • the PR8 strain-derived HAGIgG2c antibody titer of the membrane fusion HA split vaccination group to which all adjuvants were added was significantly lower than that of the group without adjuvant added membrane fusion HA split vaccination.
  • the A-1 administration group induced a higher PR8 strain-derived HA2IgG2c antibody titer than the AddaVax adjuvant administration group.
  • the A-3 administration group induced the highest HA IgG2c antibody titer derived from the PR8 strain. Furthermore, it showed completely the same reactivity with HA derived from A / Narita / 1/09. That is, these results show that the inoculation of the composition of the present application induces a cross-reactive IgG2 antibody having a high protective effect against infection.
  • the HA IgG1 antibody titer derived from the PR8 strain of all the adjuvant-added membrane-fused HA split vaccination groups was significantly increased as compared with the adjuvant-free membrane-fused HA split vaccination group.
  • the A-3 administration group induced the highest HA IgG1 antibody titer derived from the PR8 strain. Furthermore, it showed completely the same reactivity with HA derived from A / Narita / 1/09. That is, these results indicate the induction of cross-reactive antibodies by inoculation of the composition of the present application.
  • the groups administered with A-1 and A-3 exhibited a higher ratio of the HA IgG2c / IgG1 antibody derived from the PR8 strain than the group administered with AddaVax adjuvant. Furthermore, the HA-IgG2c / IgG1 antibody ratio was exactly the same for HA derived from A / Narita / 1/09. That is, these results show that the inoculation of the composition of the present application induces a cross-reactive antibody with a high protective effect against infection.
  • mice vaccinated with the membrane-fused HA split vaccine supplemented with A-1 or A-3 adjuvant significantly different from day 7 after infection with another H1N1 influenza virus with different antigenicity. It was able to suppress the decrease in survival rate and showed a strong protective effect on infection.
  • mice inoculated with the membrane fusion HA split vaccine to which all adjuvants were added weight loss due to infection with another H1N1 influenza virus having different antigenicity was suppressed.
  • the A-1 and A-3 administration groups showed a stronger weight loss suppressing effect than the AddaVax adjuvant administration group.
  • the vaccine (post-fix) subjected to formalin treatment after the acid treatment was compared with the vaccine (Pre-fix) treated before the acid treatment.
  • LAH binding monoclonal antibody bound more strongly.
  • the LAH antibody titer in the serum of BALB / c mice inoculated intraperitoneally with the membrane fusion HA split vaccine was the same as the LAH antibody titer in BALB / c mice inoculated intraperitoneally with the current HA split vaccine. It was higher than the antibody titer. Further, the membrane fusion HA split vaccine (post-fix) had an increased LAH antibody titer compared to the membrane fusion split vaccine (Pre-fix).
  • the present invention can be used in the field of influenza vaccine development or production.
  • SEQ ID NOs: 1 and 2 synthetic peptide

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Abstract

本発明はユニバーサルインフルエンザワクチン抗原とワクチンアジュバントを含む組成物を提供する。

Description

インフルエンザワクチンを含む組成物
　本発明は、ワクチンアジュバントとユニバーサルインフルエンザワクチン抗原を含む組成物に関する。
　ウイルス由来のタンパク質もしくはその部分ペプチドからなる成分ワクチンは、生ワクチンや全粒子不活化ワクチンよりも安全性の面で優れている。しかし、一方で、成分ワクチンは、免疫賦活の効能が低い傾向がある。このことから、エピトープの免疫原性を強化し、ワクチンの免疫賦活活性を向上させるために、アジュバントと抗原を併用する方法が検討されている。アジュバントは、抗原に対する液性免疫応答および／または細胞性免疫応答を高める添加剤であり、アラム（Alum）、サポニン（saponin）等がワクチンアジュバントとして用いられている。
　最近、Toll様受容体（Toll-like Receptor; TLR）が微生物に対する生体の防御機構の一つである、自然免疫の賦活に重要な役割を果たしており、モノホスホリルリピッドA (MPL)、非メチル化シチジルグアノシル（CpG）配列を含むオリゴデオキシヌクレオチド（CpG ODN）等が、TLRを介して免疫賦活作用を示していることが判明した。ヒトで特定されている既知の13のTLRのうち、５つは細菌の構成成分の認識に関連し（TLR1, 2, 4, 5, 6）、他の４つ（TLR3, 7, 8, 9）はウイルスの核酸の認識にも関与すると言われる（非特許文献１を参照）。さらに、TLR7およびTLR8の場合、その作動薬（Activator）として、天然リガンドであるウイルスの一本鎖ＲＮＡを模倣した低分子が知られている。例えば、ピリミジン化合物（特許文献１および２を参照）およびイミダゾキノリン化合物（特許文献３を参照）等の合成化合物が報告されている。
　TLR7および／またはTLR8がその作動薬で活性化されることにより、TLRおよびミエロイド系分化因子88（MyD88）依存性のシグナル伝達経路を介して樹状細胞（DC）が活性化される。その結果、Ｔ細胞共刺激分子群co-stimulatory molecules（CD80, CD86, CD40）の発現増強やI型インターフェロン（特にIFNα）、TNFα、IL-6またはIL-12を含む炎症性サイトカインが産生される。
　また、TLR7および/またはTLR8作動薬（Activator）は、DC活性化に加えて、T細胞やＢ細胞を活性化し、さらにＮＫ細胞を刺激してIFNγ産生を促すなどの活性が知られており、ワクチンアジュバント活性を有することが期待される。実際に、レジキモド（Resiquimod）またはイミキモド（Imiquimod）などのTLR7および/またはTLR8作動薬のワクチンアジュバント活性が報告されている（非特許文献２を参照）。
　TLR7および／または8作動薬と他の物質との複合体としては、脂肪酸とイミダゾキノリン化合物を共有結合で連結させたワクチンアジュバント（特許文献４、５、６および非特許文献４を参照）や、リン脂質とアデニン化合物のコンジュゲート化合物（特許文献７、８、９を参照）、脂肪酸とアデニン化合物のコンジュゲート化合物（非特許文献５）、脂肪酸グリセリドやリン脂質とアデニン化合物のポリエチレングリコールを介したコンジュゲート化合物（特許文献１０を参照）、スクワレン類とアデニン化合物のコンジュゲート化合物（特許文献１１を参照）、スクワレン類とピリミジン化合物のコンジュゲート化合物（特許文献１２を参照）が知られている。
　現行のインフルエンザヘマグルチニン（以下、ヘマグルチニンを「HA」と記載することがある。）ワクチンはインフルエンザHAスプリットワクチンとも呼ばれ、HA抗体を誘導することで感染防御効果を発揮する。HA抗体は、ヘマグルチニンにおける球状部領域（head region）と呼ばれるウイルス膜から外側に露出した部分に結合するが、この部分はウイルス株間で最も構造変化に富む領域となる。その結果、ワクチン株と異なる抗原変異ウイルス感染に対して、HA抗体が結合できずワクチンが奏功しないケースがある。
　近年、抗原変異を起こしにくいヘマグルチニンの幹領域（stem region）に結合する抗体（ステム抗体）の中に、感染防御抗体が含まれることが明らかにされた(特許文献１３を参照)。ステム抗体を効率的に誘導するために、ヘマグルチニンに人工的な変異やリンカーを結合させることで、不安定なステム部分の安定化に成功したHAステムタンパクが開発され、ヒト臨床試験が実施されている。しかし、当該HAステムタンパクの実用化においては依然、免疫原性の向上および製造面での課題が残されている。
　ステム抗体の感染防御能はその抗原結合性と抗体量に依存するのみならず、誘導されるIgG抗体のサブクラスにも強く依存することが報告されている（非特許文献３を参照）。具体的には、ステムIgG2抗体は機能性かつ交差反応性であり、ステムIgG2抗体を強く誘導するワクチンは広い範囲のインフルエンザの感染防御に効果的であることが示された。しかしながら、ステムIgG2抗体の誘導能を効果的に高める方法は見出されていない。
国際公開第００／１２４８７号 国際公開第２００９／０６７０８１号 米国特許公報第４６８９３３８号 国際公開第２００５／００１０２２号 国際公開第２００５／０１８５５５号 国際公開第２０１２／０２４２８４号 国際公開第２０１０／０４８５２０号 国際公開第２０１１／０１７６１１号 国際公開第２０１１／１３９３４８号 国際公開第２０１０／０９３４３６号 国際公開第２０１７－０６１５３２号 国際公開第２０１７－０５６４９４号 特表２０１６－５１６０９０号公報 国際公開第２０１６／１０９７９２号
Iwasaki, A., Nat. Immunol. 2004, 5, 987 Vaccine 2011, 29, 3341・M. A. Tomai et al, Exp. Rev. Vaccine, 6, 835 DiLillo, DJ., Nat. Medicine 2014, 20, 143 Vaccine. 2011 Jul 26;29(33):5434-42 Bioconjugate Chem. 2009, 20, 1194-1200 Curr Opin Virol. 2016, 17, 95-103 Nat Med. 2015, 21, 1065-70 Science. 2015, 349, 1301-6
　本発明が解決しようとする課題は、抗原変異を起こしにくいインフルエンザウイルスのHA幹領域に結合する抗体を効果的に産生するインフルエンザHAスプリットワクチンを見出し、そのIgG2抗体の誘導能を向上するための方法を提供することである。
　本発明者らは、鋭意検討の結果、現行のインフルエンザHAスプリットワクチンに酸性処理を施すことによりヘマグルチニンの幹領域が外部に露出した形状となり、当該酸性処理後のインフルエンザHAスプリットワクチンは、HA幹領域のLAH(long alpha helix)に結合する交差反応性抗体を産生できることにより、ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原として機能し得ることを見出した。さらに、当該酸性処理後のインフルエンザHAスプリットワクチンにＴＬＲ７の生理活性を亢進する化合物を添加することにより、その化合物がワクチンアジュバントとして機能し、そのIgG2抗体誘導能は向上されることを見出し、本発明を完成するに至った。
　すなわち、本発明は、以下のものに関する。
［項１］以下の（１）および（２）を含む組成物；
（１）ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原；および
（２）ワクチンアジュバント。
［項２］該ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原が、ＨＡ幹領域のＬＡＨに結合する抗体を産生することができるインフルエンザＨＡスプリットワクチン抗原である、項１に記載の組成物。
［項３］該インフルエンザＨＡスプリットワクチン抗原のＨＡ幹領域が外部に露出した形状である、項２に記載の組成物。
［項４］該ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原が、ＨＡ幹領域が外部に露出した形状であることによりＨＡ幹領域のＬＡＨの抗原性が高められており、かつ、ＨＡ幹領域のＬＡＨに結合する抗体を産生することができる、インフルエンザＨＡスプリットワクチン抗原である、項１に記載の組成物。
［項５］該ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原が、インフルエンザＨＡスプリットワクチンに酸性処理を施すことにより製造される、項１～４のいずれか１項に記載の組成物。
［項６］該ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原が、ホルマリン処理をしていないインフルエンザＨＡスプリットワクチンに酸性処理を施すことにより製造される、項１～５のいずれか１項に記載の組成物。
［項７］該ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原が、インフルエンザＨＡスプリットワクチンに酸性処理を施す工程と、その後ホルマリン処理を施す工程とを含む製造プロセスにより製造される、項１～６のいずれか１項に記載の組成物。
［項８］該ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原が、単独のHA亜型であるインフルエンザＨＡスプリットワクチンに酸性処理を施すことにより製造される、項１～７のいずれか１項に記載の組成物。
［項９］該ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原が、それぞれ単独のHA亜型であるインフルエンザＨＡスプリットワクチンに酸性処理を施すことにより製造されるインフルエンザＨＡスプリットワクチン抗原の二種またはそれ以上を含むワクチン抗原である、項１～７のいずれか１項に記載の組成物。
［項１０］該ワクチンアジュバントが、ＴＬＲの生理活性を亢進する物質である、項１～９のいずれか一項に記載の組成物。
［項１１］該ワクチンアジュバントが、ＴＬＲ７、ＴＬＲ８、およびＴＬＲ９からなる群から選択される一つもしくはそれ以上のＴＬＲの生理活性を亢進する物質である、項１～１０のいずれか一項に記載の組成物。
［項１２］該ワクチンアジュバントが、少なくともＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質である、項１～１１のいずれか一項に記載の組成物。
［項１３］該ワクチンアジュバントが、少なくともＴＬＲ８の生理活性を亢進する物質である、項１～１２のいずれか一項に記載の組成物。
［項１４］該ワクチンアジュバントが、少なくともＴＬＲ９の生理活性を亢進する物質である、項１～１３のいずれか一項に記載の組成物。
［項１５］該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質が、ＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物、またはＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物と脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物である、項１１または１２に記載の組成物。
［項１６］該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物または該コンジュゲート化合物に含まれる該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物が、分子量２００～６００を有し、かつ、アデニン骨格、ピリミジン骨格、イミダゾキノリン骨格、イミダゾピリジン骨格、またはキナゾリン骨格を有する、項１５に記載の組成物。
［項１７］該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物または該コンジュゲート化合物に含まれる該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物が、ピリミジン骨格、アデニン骨格またはイミダゾキノリン骨格を有する、項１６に記載の組成物。
［項１８］該脂質が、スクワレンまたはスクワランから誘導される脂質である、項１５～１７のいずれか一項に記載の組成物。
［項１９］該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する化合物が、アデニン骨格を有する低分子量化合物とスクワレンまたはスクワランから誘導される脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物またはその製薬学的に許容される塩である、項１５～１８のいずれか一項に記載の組成物。
［項２０］該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する化合物が、ピリミジン骨格を有する低分子量化合物とスクワレンまたはスクワランから誘導される脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物またはその製薬学的に許容される塩である、項１５～１８のいずれか一項に記載の組成物。
［項２１］該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する化合物が、下記式（１）：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
 ［式（１）中、Xは、メチレンを表し、
R1は水素原子、またはヒドロキシ基で置換されていてもよい炭素数１～３のアルキル基を表し、
R2は、水素原子、または炭素数１～６のアルキル基を表し、
R3は、炭素数１～３のアルキル基を表し、
R4は、水素原子、ハロゲン原子、ヒドロキシ基、炭素数１～３のアルキル基または炭素数１～３のアルコキシ基を表し、
Y1は、単結合またはメチレンを表し、
Y2は、単結合または－C(O)－を表し、
Lは、炭素数２または３の直鎖アルキレンを表し、
R5およびR6は、独立して水素原子または炭素数１～３のアルキル基を表すか、あるいは、R5は、R6と一緒になって置換もしくは無置換の５～８員の含窒素飽和ヘテロ環を形成してもよく、前記５～８員の含窒素飽和ヘテロ環が置換されている場合、ヒドロキシ基およびハロゲン原子から選択される同一もしくは異なる１～４個の置換基で置換されていてもよく、
ｍは０または１を表し、
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000004
 は、全て二重結合を表す］
で示される化合物、またはそれらの製薬学的に許容される塩である、項１５～１８、および２０のいずれか一項に記載の組成物。
［項２２］該コンジュゲート化合物が、
(4E,8E,12E,16E,20E)-N-{2-[{4-[(2-アミノ-4-{[(3S)-1-ヒドロキシヘキサン-3-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]ベンジル}(メチル)アミノ]エチル}-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエンアミド；
(4E,8E,12E,16E,20E)-1-(4-{4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-3-メトキシベンジル}ピペラジン-1-イル)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエン-1-オン；
(4E,8E,12E,16E,20E)-1-(4-{4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-3-メトキシベンゾイル}ピペラジン-1-イル)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエン-1-オン；
4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-N-(2-{[(4E,8E,12E,16E,20E)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエノイル]アミノ}エチル)-3-メトキシベンズアミド；
4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-N-(2-{[(4E,8E,12E,16E,20E)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエノイル](メチル)アミノ}エチル)-3-メトキシベンズアミド；
またはそれらの製薬学的に許容される塩である、項１５～１８、２０および２１のいずれか一項に記載の組成物。
［項２３］該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する化合物が、
(4E,8E,12E,16E,20E)-N-{2-[{4-[(2-アミノ-4-{[(3S)-1-ヒドロキシヘキサン-3-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]ベンジル}(メチル)アミノ]エチル}-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエンアミド；
4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-N-(2-{[(4E,8E,12E,16E,20E)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエノイル]アミノ}エチル)-3-メトキシベンズアミド；
またはそれらの製薬学的に許容される塩である、項１５～１８、および２０～２２のいずれか一項に記載の組成物。
［項２４］項１～２３のいずれか一項に記載の組成物を含む、インフルエンザワクチン。
［項２５］予防が必要な温血動物に、予防上の有効量の項１～２３のいずれかに記載の組成物を投与することを含む、インフルエンザを予防するための方法。
［項２６］予防が必要な温血動物に、予防上の有効量のユニバーサルインフルエンザワクチン抗原と、予防上の有効量のワクチンアジュバント（例えばＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質）を投与することを含む、インフルエンザを予防するための方法。
［項２７］ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原、およびワクチンアジュバント（例えばＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質）を含む、インフルエンザを予防するためのキット。
［項２８］ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原と組み合わせたインフルエンザの予防における使用ための、ワクチンアジュバント（例えばＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質）。
［項２９］ワクチンアジュバント（例えばＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質）と組み合わせたインフルエンザの予防における使用のための、ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原。
［項３０］ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原を含むインフルエンザの予防のための組成物の製造における、ワクチンアジュバント（例えばＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質）の使用。
［項３１］ワクチンアジュバント（例えばＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質）を含むインフルエンザの予防のための組成物の製造における、ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原の使用。
［項３２］ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原とワクチンアジュバント（例えばＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質）とが、同時にまたは別々に投与される、項２５および２６に記載の方法、項２７に記載のキット、項２８に記載のワクチンアジュバント、または項２９に記載の該抗原。
［項３２－１］ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原がワクチンアジュバント（例えばＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質）の投与前にもしくは投与後に、または同時に投与される、項２５および２６に記載の方法、項２７に記載のキット、項２８に記載のワクチンアジュバント、または項２９に記載の該抗原。
［項３３］以下の工程を含む、インフルエンザHAスプリットワクチン抗原およびワクチンアジュバント（例えばＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質）を含む組成物の製造方法：
ａ）ホルマリン処理をしていないインフルエンザHAスプリットワクチンに酸性処理を施すことにより、HA幹領域のLAHに結合する抗体を産生するインフルエンザHAスプリットワクチン抗原を製造する工程；および
ｂ）工程ａ）で得られたワクチン抗原と、ワクチンアジュバントとを混合する工程。
［項３４］以下の工程を含む、インフルエンザHAスプリットワクチン抗原およびワクチンアジュバント（例えばＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質）を含む組成物の製造方法：
ａ）インフルエンザHAスプリットワクチンに酸性処理を施す工程、
ｂ）その後ホルマリン処理を施すことにより、HA幹領域のLAHに結合する抗体を産生するインフルエンザHAスプリットワクチン抗原を製造する工程；および
ｃ）工程ｂ）で得られたワクチン抗原と、ワクチンアジュバントとを混合する工程。
［項３５］以下の工程を含む、インフルエンザHAスプリットワクチン抗原およびワクチンアジュバント（例えばＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質）を含むキットの製造方法：
ａ）ホルマリン処理をしていないインフルエンザHAスプリットワクチンに酸性処理を施すことにより、HA幹領域のLAHに結合する抗体を産生するインフルエンザHAスプリットワクチン抗原を製造する工程；および
ｂ）工程ａ）で得られたワクチンと、ワクチンアジュバントとを組み合わせてキットとする工程。
［項３６］以下の工程を含む、インフルエンザHAスプリットワクチン抗原およびワクチンアジュバント（例えばＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質）を含むキットの製造方法：
ａ）インフルエンザHAスプリットワクチンに酸性処理を施す工程、
ｂ）その後ホルマリン処理を施すことにより、HA幹領域のLAHに結合する抗体を産生するインフルエンザHAスプリットワクチン抗原を製造する工程；および
ｃ）工程ｂ）で得られたワクチンと、ワクチンアジュバントとを組み合わせてキットとする工程。
　本発明により、ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原が提供され、加えて、ワクチンアジュバントを添加することにより、さらにそのワクチン活性を向上することができる。
インフルエンザウイルスを説明する模式図である。 H3N2型の膜融合型HAスプリットワクチンを接種したマウスの血清中のLAH抗体価の上昇を示す図である。 H3N2型の膜融合型HAスプリットワクチンを接種したマウスの抗原変異株に対する交差防御能の向上を示す図である。 H1N1型の膜融合型HAスプリットワクチンを接種したマウスの血清中のLAH抗体価の上昇を示す図である。 H1N1型の膜融合型HAスプリットワクチンを接種したマウスの抗原変異株に対する交差防御能の向上を示す図である。 LAH結合性モノクローナル抗体が、現行HAスプリットワクチンよりも膜融合型HAスプリットワクチンに対して強く結合することを示す図である。 A-1、A-2、もしくはCpGを添加した膜融合型HAスプリットワクチンの交差反応性IgG2c誘導活性を示す図である。 A-1、A-2、もしくはCpGを添加した膜融合型HAスプリットワクチンの交差反応性IgG1誘導活性を示す図である。 A-1、A-2、もしくはCpGを添加した膜融合型HAスプリットワクチンの交差反応性IgG2c/IgG1比を示す図である。 A-1、A-3、もしくはAddaVax（TM）を添加した膜融合型HAスプリットワクチンの交差反応性IgG2c誘導活性を示す図である。 A-1、A-3、もしくはAddaVax（TM）を添加した膜融合型HAスプリットワクチンの交差反応性IgG1誘導活性を示す図である。 A-1、A-3、もしくはAddaVax（TM）を添加した膜融合型HAスプリットワクチンの交差反応性IgG2c/IgG1比を示す図である。 A-1、A-3、もしくはAddaVax（TM）を添加したH3N2膜融合型HAスプリットワクチンを接種したマウスの抗原変異株に対する交差防御能を示す図である。 A-1、A-3、もしくはAddaVax（TM）を添加したH3N2膜融合型HAスプリットワクチンの、抗原変異株感染によるマウス体重減少に対する抑制作用を示す図である。 LAH結合性モノクローナル抗体が、酸性処理後にホルマリン処置を施した膜融合型HAスプリットワクチンに対して強く結合することを示す図である。 H3N2型の膜融合型HAスプリットワクチン（（pre-fix）および（post-fix））を接種したマウスの血清中のLAH抗体価の上昇を示す図である。 A-1、A-3、もしくはAddaVax（TM）を添加した膜融合型HAスプリットワクチンの交差反応性IgG2c誘導活性を示す図である。 A-1、A-3、もしくはAddaVax（TM）を添加した膜融合型HAスプリットワクチンの交差反応性IgG1誘導活性を示す図である。 A-1、A-3、もしくはAddaVax（TM）を添加した膜融合型HAスプリットワクチンの交差反応性IgG2c/IgG1比を示す図である。 A-1、A-3、もしくはAddaVax（TM）を添加したH1N1膜融合型HAスプリットワクチンを接種したマウスの抗原変異株に対する交差防御能を示す図である。 A-1、A-3、もしくはAddaVax（TM）を添加したH1N1膜融合型HAスプリットワクチンの、抗原変異株感染によるマウス体重減少に対する抑制作用を示す図である。
　以下、本発明の実施形態について詳細に説明する。当該実施形態は本発明の原理の理解を容易にするためのものであり、本発明の範囲は、下記の実施形態に限られるものではなく、当業者が以下の実施形態の構成を適宜置換した他の実施形態も、本発明の範囲に含まれる。
　本明細書において、ワクチンアジュバントとは、免疫増強作用を有する物質もしくはそれを含む製剤等であり、抗原に添加することによって抗原の免疫原性を向上させる物質を意味する。
　本明細書におけるワクチンアジュバントには、ミョウバン、エマルション（例えば、フロイントアジュバント、MF59（登録商標）、AddaVax（TM）、AS03など）、NOD受容体の生理活性を亢進する物質、RIG-I受容体の生理活性を亢進する物質、Cタイプレクチン受容体の生理活性を亢進する物質、細胞質内DNA受容体の生理活性を亢進する物質、STINGの生理活性を亢進する物質、ＴＬＲの生理活性を亢進する物質等が含まれる。
　本明細書におけるワクチンアジュバントとして好ましくは、ＴＬＲの生理活性を亢進する物質が挙げられる。
　本明細書においてＴＬＲの生理活性を亢進する物質とは、ＴＬＲ受容体アゴニスト活性を有するＴＬＲアゴニストを意味し、ＴＬＲ受容体の機能を亢進する物質である限り、特に限定されない。
　本明細書におけるＴＬＲの生理活性を亢進する物質の例として、モノホスホリルリピドAやその誘導体、アデニン化合物、ピリミジン化合物、イミダゾキノリン化合物、ベンザピン化合物、イミダゾピリジン化合物、キナゾリン化合物、グアニン化合物、ジヒドロプテリジン化合物、CpG ODN等が挙げられる。
　本明細書におけるＴＬＲの生理活性を亢進する物質として好ましくは、ＴＬＲ７、ＴＬＲ８、およびＴＬＲ９からなる群から選択される一つもしくはそれ以上のＴＬＲの生理活性を亢進する物質が挙げられ、より好ましくは、少なくともＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質が挙げられる。
　本明細書においてＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質とは、ＴＬＲ７受容体アゴニスト活性を有するＴＬＲ７アゴニストを意味し、ＴＬＲ７受容体の機能を亢進する物質である限り、特に限定されない。
　本明細書においてＴＬＲ８の生理活性を亢進する物質とは、ＴＬＲ８受容体アゴニスト活性を有するＴＬＲ８アゴニストを意味し、ＴＬＲ８受容体の機能を亢進する物質である限り、特に限定されない。
　本明細書においてＴＬＲ９の生理活性を亢進する物質とは、ＴＬＲ９受容体アゴニスト活性を有するＴＬＲ９アゴニストを意味し、ＴＬＲ９受容体の機能を亢進する物質である限り、特に限定されない。
　本明細書におけるＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質の例には、ＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質、またはＴＬＲ７およびＴＬＲ８の生理活性を亢進する物質が含まれる。
　本明細書におけるＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質として好ましくは、ＴＬＲ７選択的アゴニストが挙げられる。ここでＴＬＲ７選択的とは、ＴＬＲ７以外のＴＬＲ受容体アゴニスト活性が、ＴＬＲ７受容体アゴニスト活性よりも弱いことを意味し、例えばＴＬＲ７受容体アゴニスト活性が、単鎖ＲＮＡを内在性リガンドとするＴＬＲ８受容体アゴニスト活性よりも強い場合、更に具体的にはＴＬＲ７受容体アゴニスト活性（ＥＣ５０値）がＴＬＲ８受容体アゴニスト活性の１０倍以上である場合を例示することができる。
　本明細書におけるＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質の例には、ＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物、および該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物と脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物が含まれる。
　本明細書におけるＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物の例として、具体的には分子量２００～６００、好ましくは分子量２５０～５００、より好ましくは分子量３００～５００を有するものが挙げられる。
　本明細書におけるＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物として好ましくは、アデニン骨格、ピリミジン骨格、イミダゾキノリン骨格、イミダゾピリジン骨格、キナゾリン骨格、グアニン骨格、またはジヒドロプテリジン骨格を有する化合物が挙げられ、更に好ましくは、アデニン骨格、ピリミジン骨格、イミダゾキノリン骨格を有する化合物が挙げられる。
　アデニン骨格を有する化合物の例としては、４－アミノ－８－オキソ－プリン（８－オキソアデニン）骨格を有する化合物が挙げられ、例えば９位が５～６員の芳香族炭素環、５～６員の芳香族複素環もしくは４～７員の脂肪族含窒素複素環で置換されていてもよいアルキル基（例えば炭素数１～６の直鎖アルキル基）で置換された４－アミノ－８－オキソ－プリン骨格を有する化合物が挙げられる。具体的には、GSK-2245035〔６－アミノ－２－｛［（１Ｓ）－１－メチルブチル］オキシ｝－９－［５－（１－ピペリジニル）ペンチル］－７，９－ジヒドロ－８Ｈ－プリン－８－オン〕、PF-4171455〔４－アミノ－１－ベンジル－６－トリフルオロメチル－１，３－ジヒドロイミダゾ［４，５－ｃ］ピリジン－２－オン〕等のMedChemComm 2011, 2, 185. に記載された化合物、または、WO98/01448、WO99/28321、WO02/085905、WO2008/114008、WO2008/114819、WO2008/114817、WO2008/114006、WO2010/018131、WO2010/018134、WO2008/101867、WO2010/018133、WO2009/005687、WO2012/080730等に記載された化合物が挙げられる。
　アデニン骨格を有する化合物として好ましくは、以下の化合物またはそれらの製薬学的に許容される塩が挙げられる：
６－アミノ－９－（｛６－［２－（ジメチルアミノ）エトキシ］ピリジン－３－イル｝メチル）－２－エトキシ－７，９－ジヒドロ－８Ｈ－プリン－８－オン；
６－アミノ－２－（ブチルアミノ）－９－（｛６－［２－（ジメチルアミノ）エトキシ］ピリジン－３－イル｝メチル）－７，９－ジヒドロ－８Ｈ－プリン－８－オン；
Ｎ－（４－｛［６－アミノ－２－（ブチルアミノ）－８－オキソ－７，８－ジヒドロ－９Ｈ－プリン－９－イル］メチル｝ベンゾイル）グリシン；
メチル　（３－｛［［３－（６－アミノ－２－ブトキシ－８－オキソ－７，８－ジヒドロ－９Ｈ－プリン－９－イル）プロピル］（３－モルホリン－４－イルプロピル）アミノ］メチル｝フェニル）アセテート（英語名：Methyl (3-{[[3-(6-amino-2-butoxy-8-oxo-7,8-dihydro-9H-purin-9-yl)propyl](3-morpholin-4-ylpropyl)amino]methyl}phenyl)acetate）；または
メチル　（４－｛［［３－（６－アミノ－２－ブトキシ－８－オキソ－７，８－ジヒドロ－９Ｈ－プリン－９－イル）プロピル］（３－ピペリジン－１－イルプロピル）アミノ］メチル｝フェニル）アセテート（英語名：methyl (4-{[[3-(6-amino-2-butoxy-8-oxo-7,8-dihydro-9H-purin-9-yl)propyl](3-piperidin-1-ylpropyl)amino]methyl}phenyl)acetate）。
　ピリミジン骨格を有する化合物の例としては、２，４－ジアミノピリミジン骨格を有する化合物が挙げられ、例えば、６位は適宜アルキル基等で置換され、5位は５～６員の芳香族炭素環、５～６員の芳香族複素環もしくは４～７員の脂肪族含窒素複素環で置換されていてもよいアルキル基（例えば炭素数１～６の直鎖アルキル基）で置換された２，４－ジアミノピリミジンが挙げられる。具体的には、WO00/12487、WO2010/133885、WO2013/172479またはWO2012/136834に記載された化合物を挙げることができる。
　イミダゾキノリン骨格を有する化合物の例としては、イミキモド（Imiquimod）、レジキモド（resiquimod）または８５２Ａ〔Ｎ－［４－（４－アミノ－２－エチル－１Ｈ－イミダゾ［４，５－ｃ］キノリン－１－イル）ブチル］メタンスルホンアミド〕をはじめとする４－アミノ－１H－イミダゾ［４，５－ｃ］キノリン骨格を有する化合物が挙げられ、例えば１位がC１－６アルキル基もしくはC１－６アルコキシ基で置換され、２位がC１－６アルキル基もしくはC１－６アルコキシ基で置換された４－アミノ－１H［４，５－ｃ］キノリンが挙げられる。具体的には、WO2010/48520、WO2008/135791、US4689338、US 4698348、またはWO2007/030777に記載された化合物を挙げることができる。イミダゾキノリン骨格を有する化合物として好ましくは、イミキモド（Imiquimod）が挙げられる。
　イミダゾピリジン骨格を有する化合物の例としては、４－アミノ－１，３－ジヒドロ－２H－イミダゾ［４，５－ｃ］ピリジン－２－オン骨格を有する化合物が挙げられ、例えば６位または７位がハロゲン原子で置換されていてもよいC１－６アルキル基もしくはC１－６アルコキシ基で置換され、１位は５～６員の芳香族炭素環、５～６員の芳香族複素環もしくは４～７員の脂肪族含窒素複素環で置換されていてもよいアルキル基（例えば炭素数１～４の直鎖アルキル基）で置換されている４－アミノ－１，３－ジヒドロ－２H－イミダゾ［４，５－ｃ］ピリジン－２－オン骨格を有する化合物が挙げられる。具体的には、WO2007/93901に記載された化合物またはPF-4171455〔4-アミノ-1-ベンジル-6-(トリフルオロメチル)-1,3-ジヒドロ-2H-イミダゾ[4,5-c]ピリジン-2-オン〕を例示することができる。
　キナゾリン骨格を有する化合物の例としては、２，４－ジアミノキナゾリン骨格を有する誘導体が挙げられ、４位が適宜水酸基もしくはハロゲン原子等で置換されていてもよいアルキル基（例えば直鎖もしくは分枝の炭素数１～８のアルキル基）で置換された２，４-ジアミノキナゾリン骨格を有する化合物が挙げられる。具体的には、WO2012/156498またはWO2014/76221に記載された化合物が挙げられる。
　グアニン骨格を有する化合物の例としては、２－アミノ－６－オキソプリン骨格を有する化合物が挙げられ、具体的にはロキソリビン（Loxoribine）が挙げられる。
　ジヒドロプテリジン骨格を有する化合物としては、４－アミノ－７，８－ジヒドロプテリジン－６（５Ｈ）－オン骨格を有する化合物が挙げられ、具体的にはベサトリモド〔４－アミノ－２－ブトキシ－８－［［３－［（ピロリジン－１－イル）メチル］フェニル］メチル］－７，８－ジヒドロプテリジン－６（５Ｈ）－オン〕が挙げられる。
　ＴＬＲ７アゴニストである低分子量化合物の別の例として、イサトリビン（Isatoribine）、ＡＮＡ－７７３、およびWO2010/077613に記載の化合物を例示することができる。
　本明細書のＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物と脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物における脂質の例としては、炭素数１００未満の飽和または不飽和の脂肪酸；炭素数１０～３０の飽和または不飽和の脂肪酸とグリセリンのジグリセリド；炭素数１０～３０の飽和または不飽和の脂肪酸とグリセリンのジグリセリドに更にリン酸が結合したホスファチジン酸を含むリン脂質等が挙げられる。好ましくは、炭素数１８～３０の飽和または不飽和の脂肪酸が挙げられ、さらに好ましくは、スクワレンまたはスクワランから誘導される脂肪酸が挙げられる。
　スクワレンから誘導される脂肪酸としては、(4E,8E,12E,16E,20E)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエン酸（(4E,8E,12E,16E,20E)-4,8,12,17,21,25-Hexamethylhexacosa-4,8,12,16,20,24-hexaenoic acid）などが挙げられる。スクワランから誘導される脂質としては、4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサン酸（4,8,12,17,21,25-hexamethylhexacosanoic acid）などが挙げられる。適宜当業者に周知の方法で、スクワレンまたはスクワランから導かれる化合物をスペーサーと連結することにより、当該コンジュゲート化合物へ導くことができる。
　本明細書のＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物と脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物におけるＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物部分の例としては、上記のＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物が挙げられる。
　本明細書のＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物と脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物の例としては、脂肪酸とイミダゾキノリン化合物を共有結合で連結させたワクチンアジュバント（特許文献４、５、６、および非特許文献４）、リン脂質とアデニン化合物のコンジュゲート化合物（特許文献７、８、９）、脂肪酸とアデニン化合物のコンジュゲート化合物（非特許文献５）、脂肪酸グリセリドとアデニン化合物のポリエチレングリコールを介したコンジュゲート化合物（特許文献１０）、スクワレン類とアデニン化合物のコンジュゲート化合物（特許文献１１）、スクワレン類とピリミジン化合物のコンジュゲート化合物（特許文献１２）等が挙げられる。
　本明細書のＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物と脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物として好ましくは、例えば、アデニン骨格を有する低分子量化合物とスクワレンまたはスクワランから誘導される脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物、ピリミジン骨格を有する低分子量化合物とスクワレンまたはスクワランから誘導される脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物、およびその製薬学的に許容される塩が挙げられる。
　アデニン骨格を有する低分子量化合物とスクワレンまたはスクワランから誘導される脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物の好ましい例として、特許文献１１に記載の化合物等が挙げられる。
　ピリミジン骨格を有する低分子量化合物とスクワレンまたはスクワランから誘導される脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物の好ましい例として、特許文献１２に記載の化合物等が挙げられる。さらに好ましくは、下記式（１）で示される化合物またはその製薬学的に許容される塩が挙げられる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000005
 ［式（１）中、Xは、メチレンを表し、
R1は水素原子、またはヒドロキシ基で置換されていてもよい炭素数１～３のアルキル基を表し、
R2は、水素原子、または炭素数１～６のアルキル基を表し、
R3は、炭素数１～３のアルキル基を表し、
R4は、水素原子、ハロゲン原子、ヒドロキシ基、炭素数１～３のアルキル基または炭素数１～３のアルコキシ基を表し、
Y1は、単結合またはメチレンを表し、
Y2は、単結合または－C(O)－を表し、
Lは、炭素数２または３の直鎖アルキレンを表し、
R5およびR6は、独立して水素原子または炭素数１～３のアルキル基を表すか、あるいは、R5は、R6と一緒になって置換もしくは無置換の５～８員の含窒素飽和ヘテロ環を形成してもよく、前記５～８員の含窒素飽和ヘテロ環が置換されている場合、ヒドロキシ基およびハロゲン原子から選択される同一もしくは異なる１～４個の置換基で置換されていてもよく、
ｍは０または１を表し、
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000006
 は、全て二重結合を表す］。
　「ハロゲン原子」としては、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、およびヨウ素原子が挙げられ、好ましくは、フッ素原子又は塩素原子が挙げられる。
　「炭素数２または３の直鎖アルキレン」の例として、エチレンおよびｎ－プロピレンが挙げられるがこれらに限定されない。
　「炭素数１～３のアルキル基」としては、炭素数１～３の直鎖もしくは分枝のアルキル基が挙げられる。例として、メチル、エチル、プロピル、およびイソプロピルが挙げられるがこれらに限定されない。
　「炭素数１～３のアルコキシ基」としては、炭素数１～３の直鎖もしくは分枝のアルコキシ基が挙げられる。例として、メトキシ、エトキシ、プロポキシ、イソプロポキシが挙げられるがこれらに限定されない。
　「５～８員の含窒素飽和ヘテロ環」としては、２もしくは３個の窒素原子、０もしくは１個の酸素原子及び０もしくは１個の硫黄原子から選択される少なくとも２個の窒素原子を含む１～３個のヘテロ原子を環内に含む、５～８員の含窒素飽和ヘテロ環が挙げられる。具体的には、ピロリジン、ピペリジン、パーヒドロアゼピン、イミダゾリジン、ピペラジン、モルホリン、チオモルホリン、パーヒドロ－１，４－ジアゼピン等が挙げられる。
　当該含窒素飽和ヘテロ環が置換される場合の置換基として、好ましくは、メチル基、エチル基、プロピル基、ヒドロキシメチル基、ヒドロキシエチル基、カルボニル基、ヒドロキシ基又はハロゲン原子、更に好ましくはヒドロキシ基又はハロゲン原子が挙げられ、同一もしくは異なる１～４個の置換基で置換されていてもよい。
　ピリミジン骨格を有する低分子量化合物とスクワレンまたはスクワランから誘導される脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物のより好ましい例として、
(4E,8E,12E,16E,20E)-N-{2-[{4-[(2-アミノ-4-{[(3S)-1-ヒドロキシヘキサン-3-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]ベンジル}(メチル)アミノ]エチル}-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエンアミド（特許文献１２、実施例１の化合物、下記式（２））；
(4E,8E,12E,16E,20E)-1-(4-{4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-3-メトキシベンジル}ピペラジン-1-イル)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエン-1-オン（特許文献１２、実施例２の化合物）；
(4E,8E,12E,16E,20E)-1-(4-{4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-3-メトキシベンゾイル}ピペラジン-1-イル)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエン-1-オン（特許文献１２、実施例３の化合物）；
4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-N-(2-{[(4E,8E,12E,16E,20E)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエノイル]アミノ}エチル)-3-メトキシベンズアミド（特許文献１２、実施例４の化合物、下記式（３））；
4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-N-(2-{[(4E,8E,12E,16E,20E)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエノイル](メチル)アミノ}エチル)-3-メトキシベンズアミド（特許文献１２、実施例５の化合物）；
またはそれらの製薬学的に許容される塩が挙げられる。
　ピリミジン骨格を有する低分子量化合物とスクワレンまたはスクワランから誘導される脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物のさらにより好ましい例として、(4E,8E,12E,16E,20E)-N-{2-[{4-[(2-アミノ-4-{[(3S)-1-ヒドロキシヘキサン-3-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]ベンジル}(メチル)アミノ]エチル}-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエンアミド（特許文献１２、実施例１の化合物、下記式（２））、または4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-N-(2-{[(4E,8E,12E,16E,20E)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエノイル]アミノ}エチル)-3-メトキシベンズアミド（特許文献１２、実施例４の化合物、下記式（３））、またはそれらの製薬学的に許容される塩が挙げられる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000007
　本願において、製薬学的に許容される塩としては、例えば、酸付加塩又は塩基付加塩が挙げられる。酸付加塩としては、例えば無機又は有機酸（塩酸、臭化水素酸、硫酸、トリフルオロ酢酸、クエン酸又はマレイン酸等）との酸付加塩等が挙げられる。塩基付加塩としては、例えばナトリウム塩もしくはカリウム塩等のアルカリ金属塩、カルシウム塩等のアルカリ土類金属塩、アンモニウム塩等が挙げられる。
　本願において、ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原とは、インフルエンザ（変異ウイルスを含む）を幅広く防御しうる抗体（例えば交差防御抗体）を誘導するインフルエンザワクチン抗原を意味する。
　ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原として、例えば特許文献１４に示されるインフルエンザウイルス由来蛋白質を含む粒子抗原や、非特許文献６、７、８に示されるインフルエンザHA抗原等が挙げられる。
　ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原の好ましい例としては、「HA幹領域LAHに結合する抗体を産生するインフルエンザHAスプリットワクチン抗原」が挙げられる。さらに好ましくは「HA幹領域が外部に露出した形状であり、HA幹領域LAHに結合する抗体を産生するインフルエンザHAスプリットワクチン抗原」（以下、本発明のインフルエンザHAスプリットワクチンという）が挙げられ、これは例えば下記に説明する酸性処理を施す工程を含む方法で製造されうる。
　本発明のインフルエンザHAスプリットワクチンは、抗原変異を起こしにくいヘマグルチニンの幹領域のLAHに結合する抗体を誘導するため、従来のインフルエンザHAスプリットワクチンによって誘導される抗体が結合する抗原部位（これはヘマグルチニンにおける球状部領域にある）が変異したインフルエンザウイルスに対しても有効でありうる。
　本発明のインフルエンザHAスプリットワクチンは、LAH結合性モノクローナル抗体に対して、現行HAスプリットワクチンよりも強く結合することが好ましい。例えば、LAH結合性モノクローナル抗体に対して、現行HAスプリットワクチンよりも1.05倍以上、好ましくは1.1倍以上、より好ましくは1.5倍以上、更に好ましくは2倍以上強く結合することが好ましい。ここで、現行HAスプリットワクチンよりも1.05倍、1.1倍、1.5倍、または2倍以上強く結合するとは、例えば、回帰によって求めた吸光度が0.7を示した時の抗体濃度の逆数が、現行HAスプリットワクチンの抗体濃度の逆数の、それぞれ1.05倍、1.1倍、1.5倍、または2倍以上であることをいう。現行HAスプリットワクチンと比較した本発明のインフルエンザHAスプリットワクチンのLAH結合性モノクローナル抗体に対する結合性は高い方が好ましく、上限は特に限定されるものではないが、例えば1.05～200倍、1.1～150倍、1.5～100倍、2～50倍の範囲が例示される。あるいは現行HAスプリットワクチンと比較した本発明のインフルエンザHAスプリットワクチンのLAH結合性モノクローナル抗体に対する結合性の範囲は、1.05、1.1、1.5、2、3、4、および5から選択される下限値と200、150、100、50、30、および20から選択される上限値との組合せにより示されうる。LAH結合性モノクローナル抗体に対するインフルエンザHAスプリットワクチンの結合性の測定方法は特に限定されず、当業者に知られる一般的な方法で行うことができるが、例えば本願実施例の方法に従って測定することができる。
　本願において、LAH結合性モノクローナル抗体とは、LAHに結合するモノクローナル抗体を意味し、その製造方法は特に限定されず、当業者に知られる一般的な方法により製造することができる。LAH結合性モノクローナル抗体に対するインフルエンザHAスプリットワクチンの結合性の測定においては、LAH結合性モノクローナル抗体は当該インフルエンザHAスプリットワクチンが由来するインフルエンザウイルスのLAHの少なくとも一部に相当するペプチドに結合することができるものであることを意味する。
　本願において、現行HAスプリットワクチンとは、エーテルで全粒子ワクチンを処理して発熱物質となる脂質成分を除いたものを意味し、例えば本願実施例１の方法により製造することができる。また、現行HAスプリットワクチンは、以下の酸性処理を施す工程を有する方法により製造された本発明のインフルエンザHAスプリットワクチンに対して、酸性処理を施さずに製造されたインフルエンザHAスプリットワクチンであり得る。
　本発明のインフルエンザHAスプリットワクチンの製造方法の例を以下に説明する。当該製造方法は、インフルエンザHAスプリットワクチンに酸性処理を施す工程を有する。
　インフルエンザHAスプリットワクチンは、エーテルで全粒子ワクチンを処理して発熱物質となる脂質成分を除いたものであり、また、免疫に必要なウイルス粒子表面のHA蛋白を密度勾配遠沈法により回収して製造するためHA蛋白が主成分となっている。
　インフルエンザウイルスの表面には、スパイクタンパクという糖タンパク質が突き出ている(図１)。Ａ型インフルエンザウイルスには、HAとNA(ノイラミニダーゼ)の二種類のスパイクタンパクがあり、ウイルスが感染を起こすための役割を果たす。HAは感染しようとする細胞に結合し、ウイルスを細胞の中に取り込む役割をする。HAは頻繁に抗原変異を起こす。NAは、感染した細胞とHAの結合を切って、複製されたウイルスを細胞から放出させる役割を持つ。
　インフルエンザHAスプリットワクチンに酸性処理を施すことにより、HAタンパクは膜融合型と呼ばれる構造に変化する。膜融合型HAタンパクでは、抗原ステム立体構造の大きな変化を伴いながら、球状部領域に代わり幹領域がウイルス膜から外部に露出した形状となる。融合型HAをワクチンとして使用したとき、幹領域のLAHに結合する抗体が誘導され、この抗体が抗原変異ウイルスへの防御効果を有することをin vivoで新知見として見出した。
　酸性処理は、特に限定されないが、例えばｐH３．０～６．５、好ましくは４．０～６．０、更に好ましくは４．４～５．８である。酸性処理を施すために使用される酸は、特に限定されるものではないが、例えばリン酸、クエン酸、マレイン酸等を使用することが可能である。
　本発明のインフルエンザHAスプリットワクチンの製造において、ホルマリン処理を行ってもよい。インフルエンザHAスプリットワクチンに酸性処理を施す際のタイミングとしては、ホルマリン処理を施す前が好ましい。本発明のインフルエンザＨＡスプリットワクチン抗原（ＨＡ幹領域のＬＡＨに結合する抗体を産生することができるインフルエンザＨＡスプリットワクチン抗原）の製造に際しては、現行のインフルエンザHAスプリットワクチンに用いるHA画分に酸性処理を施し、その後ホルマリン処理をするという工程を経ることにより、交差反応性抗体を産生する作用が強く、したがってユニバーサルインフルエンザワクチン抗原としてより好ましいインフルエンザＨＡスプリットワクチン抗原を得ることができる。すなわち、本願において、エーテル等でウイルス粒子を処理し、脂溶剤を除いたHA画分に対して、酸性処理を施した後にホルマリン処理を施すことが好ましい。
　本願において、酸性処理を施す前のインフルエンザHAスプリットワクチンは、ホルマリン処理をしていないスプリットワクチンであることが好ましい。
　市販のインフルエンザHAワクチン（販売名）は、生物学的製剤基準（平成16年3月30日　厚生労働省告示　第155号，最終改正：平成30年11月30日　厚生労働省告示　第409号）に記載の通り、エーテル等でウイルスを分解後、脂溶剤を除去した後にホルムアルデヒド又はこれと同等な作用を有する物質により処理する工程が既に施されている。市販のインフルエンザHAワクチン（販売名）はインフルエンザHAスプリットワクチンであるものの、既にホルムアルデヒド等の処理が施されているため、本発明のインフルエンザHAスプリットワクチンの製造には用いないことが好ましい。
　酸性処理を施したインフルエンザHAスプリットワクチンにホルマリンを施す際のホルマリン処理液におけるホルマリンの濃度としては、例えば0.0005v/v％～10v/v％、好ましくは0.001v/v％～1v/v％、さらに好ましくは0.003v/v％～0.5v/v％、さらにより好ましくは0.005v/v％～0.1v/v％が挙げられる。
　使用されるホルマリンのグレードとしては、医療用として使用可能なグレードであることが好ましい。
　抗原性の違いからＡ型インフルエンザウイルスのHAは18の亜型(Ｈ１～Ｈ１８)に、NAは９の亜型(Ｎ１～Ｎ９)に分けられるが、本発明のインフルエンザHAスプリットワクチンはこれら全ての亜型を対象とすることが可能である。また本発明のインフルエンザHAスプリットワクチンの製造方法ではＡ型のみならず、HAを有するＢ型のワクチンも製造可能であることから、A型およびB型のワクチンが本発明のインフルエンザHAスプリットワクチンの範疇である。
　本発明のインフルエンザHAスプリットワクチンの好ましい例として、H3N2型インフルエンザウイルスおよびH1N1型インフルエンザウイルスに由来するものが挙げられる。
　本願において「単独のHA亜型であるインフルエンザＨＡスプリットワクチン」とは、Ａ型インフルエンザウイルスの18の亜型(Ｈ１～Ｈ１８)、または、B型インフルエンザウイルスから選択される、１種のHA亜型であるインフルエンザＨＡスプリットワクチンを意味する。単独のHA亜型であれば、NAの亜型は同一であっても異なっていてもよい。
好ましいHA亜型としてはH1型、H3型およびB型が挙げられる。
　二種以上のHA亜型が含まれる混合ワクチンである場合は、それぞれ単独のHA亜型からなるインフルエンザＨＡスプリットワクチンに酸性処理を施し、得られたインフルエンザＨＡスプリットワクチンを複数種（二種またはそれ以上）混合して製造する事ができる。また、最初に二種以上のHA亜型を混合したインフルエンザＨＡスプリットワクチンに酸性処理を施して製造する事もできる。
複数種の亜型を含むワクチンとして接種される場合には、H1型、H3型およびB型からなる群から選択される１～３種の亜型が含まれていることが好ましい。
　本発明のインフルエンザHAスプリットワクチンは、変異の少ないLAHに結合する抗体を産生することから、同一のHAの亜型内であれば、抗原変異株として知られるインフルエンザウイルスに対しても交差防御が可能であり得る。さらに、LAHのアミノ酸配列が類似しているHA亜型間（例えば、H3型とH7型）では交差反応性を示しうる。
　上記の製造方法で得られたインフルエンザHAスプリットワクチンは、抗原変異ウイルス株への防御効果を有する。例えば、H3N2型インフルエンザウイルス粒子(A/Fujian/411/02(H3N2))から現行HAスプリットワクチンを調整し、酸性処理を施した場合、A/Fujian/411/02(H3N2)のみならず、例えば、A/Guizhou/54/89(H3N2)、A/OMS/5389/88(H3N2)、A/Beijing/32/92(H3N2)、A/England/427/88(H3N2)、A/Johannesburg/33/94(H3N2)、A/Leningrad/360/86(H3N2)、A/Mississippi/1/85(H3N2)、A/Philippines/2/82(H3N2)、A/Shangdong/9/93(H3N2)、A/Shanghai/16/89(H3N2)、A/Shanghai/24/90(H3N2)、A/Sichuan/2/87(H3N2)、A/Kitakyushyu/159/93(H3N2)、A/Akita/1/94(H3N2)、A/Panama/2007/99(H3N2)、A/Wyoming/03/03(H3N2)、A/New York/55/2004(H3N2)またはA/Hiroshima/52/2005(H3N2)等に
対しても感染防御効果を有しうる。また例えばH1N1型インフルエンザウイルス粒子(A/Puerto Rico/8/34(H1N1))から現行HAスプリットワクチンを調整し、酸性処理を施した場合、A/Puerto Rico/8/34(H1N1)のみならず、例えば、A/Narita/1/09（H1N1）、A/Beijing/262/95（H1N1）、A/Brazil/11/78（H1N1）、A/Chile/1/83（H1N1）、A/New Jersey/8/76（H1N1）、A/Taiwan/1/86（H1N1）、A/Yamagata/32/89（H1N1）、A/New Caledonia/20/99（H1N1）、A/Solomon Islands/3/2006（H1N1）、A/Brisbane/59/2007（H1N1）またはA/Mexico/4108/2009（H1N1）等に対しても感染防御効果を有しうる。
　本発明のインフルエンザHAスプリットワクチンは、TLR7の生理活性を亢進する化合物を組み合わせることによりステムIgG2抗体の誘導能が高められ、優れたワクチン活性を示す。
　本願におけるユニバーサルインフルエンザワクチン抗原とワクチンアジュバントの組み合わせの一態様として、特許文献１４に示されるインフルエンザウイルス由来蛋白質を含む粒子抗原、非特許文献６、７、８に示されるインフルエンザHA抗原、または膜融合型インフルエンザHAスプリットワクチン抗原から選択されるユニバーサルインフルエンザワクチン抗原と、ミョウバン、エマルション（例えば、フロイントアジュバント、MF59（登録商標）、AddaVax（TM）、AS03など）、NOD受容体の生理活性を亢進する物質、RIG-I受容体の生理活性を亢進する物質、Cタイプレクチン受容体の生理活性を亢進する物質、細胞質内DNA受容体の生理活性を亢進する物質、STINGの生理活性を亢進する物質、またはＴＬＲの生理活性を亢進する物質から選択されるワクチンアジュバントの組み合わせが挙げられる。
　ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原とワクチンアジュバントの組み合わせの別の態様として、HA幹領域LAHに結合する抗体を産生するインフルエンザHAスプリットワクチン抗原と、ＴＬＲの生理活性を亢進する物質との組み合わせが挙げられる。
　ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原とワクチンアジュバントの組み合わせの別の態様として、HA幹領域が外部に露出した形状であり、HA幹領域LAHに結合する抗体を産生するインフルエンザHAスプリットワクチン抗原と、ＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物、またはＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物と脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物から選択されるＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質との組み合わせが挙げられる。
　ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原とワクチンアジュバントの組み合わせの別の態様として、HA幹領域が外部に露出した形状であり、HA幹領域LAHに結合する抗体を産生するインフルエンザHAスプリットワクチン抗原と、分子量２００～６００を有し、かつ、アデニン骨格、ピリミジン骨格、イミダゾキノリン骨格、イミダゾピリジン骨格、またはキナゾリン骨格を有するＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物と脂質がスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物との組み合わせが挙げられる。
　ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原とワクチンアジュバントの組み合わせの別の態様として、ＨＡ幹領域が外部に露出した形状であることによりＨＡ幹領域のＬＡＨの抗原性が高められており、かつ、ＨＡ幹領域のＬＡＨに結合する抗体を産生することができるインフルエンザHAスプリットワクチン抗原と、ピリミジン骨格を有する低分子量化合物とスクワレンまたはスクワランから誘導される脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物の組み合わせが挙げられる。
　ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原とワクチンアジュバントの組み合わせの別の態様として、ＨＡ幹領域が外部に露出した形状であることによりＨＡ幹領域のＬＡＨの抗原性が高められており、かつ、ＨＡ幹領域のＬＡＨに結合する抗体を産生することができるインフルエンザHAスプリットワクチン抗原と、下記式（１）で表されるＴＬＲ７の生理活性を亢進する化合物との組み合わせが挙げられる；
式（１）：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000008
 ［式（１）中、Xは、メチレンを表し、
R1は水素原子、またはヒドロキシ基で置換されていてもよい炭素数１～３のアルキル基を表し、
R2は、水素原子、または炭素数１～６のアルキル基を表し、
R3は、炭素数１～３のアルキル基を表し、
R4は、水素原子、ハロゲン原子、ヒドロキシ基、炭素数１～３のアルキル基または炭素数１～３のアルコキシ基を表し、
Y1は、単結合またはメチレンを表し、
Y2は、単結合または－C(O)－を表し、
Lは、炭素数２または３の直鎖アルキレンを表し、
R5およびR6は、独立して水素原子または炭素数１～３のアルキル基を表すか、あるいは、R5は、R6と一緒になって置換もしくは無置換の５～８員の含窒素飽和ヘテロ環を形成してもよく、前記５～８員の含窒素飽和ヘテロ環が置換されている場合、ヒドロキシ基およびハロゲン原子から選択される同一もしくは異なる１～４個の置換基で置換されていてもよく、
ｍは０または１を表し、
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000009
 は、全て二重結合を表す］
で示される化合物、またはそれらの製薬学的に許容される塩。
ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原とワクチンアジュバントの組み合わせの別の態様として、ＨＡ幹領域が外部に露出した形状であることによりＨＡ幹領域のＬＡＨの抗原性が高められており、かつ、ＨＡ幹領域のＬＡＨに結合する抗体を産生することができるインフルエンザHAスプリットワクチン抗原と、以下から選択されるＴＬＲ７の生理活性を亢進する化合物との組み合わせが挙げられる；
(4E,8E,12E,16E,20E)-N-{2-[{4-[(2-アミノ-4-{[(3S)-1-ヒドロキシヘキサン-3-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]ベンジル}(メチル)アミノ]エチル}-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエンアミド；
(4E,8E,12E,16E,20E)-1-(4-{4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-3-メトキシベンジル}ピペラジン-1-イル)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエン-1-オン；
(4E,8E,12E,16E,20E)-1-(4-{4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-3-メトキシベンゾイル}ピペラジン-1-イル)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエン-1-オン；
4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-N-(2-{[(4E,8E,12E,16E,20E)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエノイル]アミノ}エチル)-3-メトキシベンズアミド；
4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-N-(2-{[(4E,8E,12E,16E,20E)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエノイル](メチル)アミノ}エチル)-3-メトキシベンズアミド；
またはそれらの製薬学的に許容される塩。
ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原とワクチンアジュバントの組み合わせの別の態様として、ＨＡ幹領域が外部に露出した形状であることによりＨＡ幹領域のＬＡＨの抗原性が高められており、かつ、ＨＡ幹領域のＬＡＨに結合する抗体を産生することができるインフルエンザHAスプリットワクチン抗原と、以下から選択されるＴＬＲ７の生理活性を亢進する化合物との組み合わせが挙げられる；
(4E,8E,12E,16E,20E)-N-{2-[{4-[(2-アミノ-4-{[(3S)-1-ヒドロキシヘキサン-3-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]ベンジル}(メチル)アミノ]エチル}-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエンアミド；
4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-N-(2-{[(4E,8E,12E,16E,20E)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエノイル]アミノ}エチル)-3-メトキシベンズアミド；
またはそれらの製薬学的に許容される塩。
ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原とワクチンアジュバントの組み合わせの別の態様として、インフルエンザＨＡスプリットワクチンに酸性処理を施すことにより製造される、ＨＡ幹領域のＬＡＨに結合する抗体を産生することができるインフルエンザHAスプリットワクチン抗原と、以下から選択されるＴＬＲ７の生理活性を亢進する化合物との組み合わせが挙げられる；
(4E,8E,12E,16E,20E)-N-{2-[{4-[(2-アミノ-4-{[(3S)-1-ヒドロキシヘキサン-3-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]ベンジル}(メチル)アミノ]エチル}-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエンアミド；
4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-N-(2-{[(4E,8E,12E,16E,20E)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエノイル]アミノ}エチル)-3-メトキシベンズアミド；
またはそれらの製薬学的に許容される塩。
　本願において、予防上の有効量とは、インフルエンザ予防における利益を対象に与えるために必要なユニバーサルインフルエンザワクチン抗原および／またはワクチンアジュバントの量である。
　本願において、ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原とワクチンアジュバントは、１つの組成物中に併せて含まれてもよく、別の組成物としてそれぞれ調製されてもよいが、患者負担の軽減の観点から、投与する際には、同時に投与可能なようにユニバーサルインフルエンザワクチン抗原とワクチンアジュバントは１つの組成物中に含まれていることが好ましい。
　ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原とワクチンアジュバントが別の組成物に調製された場合には、ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原組成物とワクチンアジュバント組成物の投与経路は同じであっても、異なってもよい。本願において、ワクチン抗原とワクチンアジュバントは同時または時間差で投与することができ、すなわち、ワクチン抗原組成物とワクチンアジュバント組成物は同時に投与されても良く、別に（例えばワクチン抗原組成物の投与前にまたは投与後にワクチンアジュバント組成物が投与される）投与されても良い。ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原組成物とワクチンアジュバント組成物はこれらを含むキットとして提供されても良い。
　本願において、ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原および／またはワクチンアジュバントを含む組成物は、１以上の薬学上許容される希釈剤もしくは担体をさらに添加して、例えば、錠剤、カプセル剤、顆粒剤、散剤、トローチ剤、シロップ剤、乳剤、懸濁剤等の経口剤、或いは外用剤、坐剤、注射剤、点眼剤、経鼻剤、経肺剤等の非経口剤の形態に、通常の方法で調製されうる。好ましい製剤形の例として、注射用または点鼻用の液剤、または前記液剤を凍結乾燥して調製される凍結乾燥製剤等が挙げられる。
　注射用液剤としては、例えば水性の溶液および油状組成物を含むエマルションやリポソーム、ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原および/またはワクチンアジュバント（例えば式（１）で表される化合物またはその製薬学的に許容される塩）を水に溶解または分散させた水性溶液製剤もしくは水性懸濁液剤、またはユニバーサルインフルエンザワクチン抗原および/またはワクチンアジュバント（例えば式（１）で表される化合物またはその製薬学的に許容される塩）を油に溶解または分散させた油性溶液製剤もしくは油性懸濁液剤等が挙げられる。
　ここで水性の溶液、水性溶液製剤もしくは水性懸濁液剤の例としては、注射用蒸留水、ならびに適宜緩衝剤、ｐH調節剤、安定化剤、等張化剤および／または乳化剤を含む水溶液もしくは水性懸濁液等が挙げられる。
　油状組成物、油性溶液製剤もしくは油性懸濁液剤の例としては、植物性油脂、動物性油脂、炭化水素類、脂肪酸エステル類、リン脂質類等を含む組成物が挙げられ、更に具体的にはスクワレン、スクワラン等を含む組成物が挙げられる。
　乳化剤の例としては、親水性界面活性剤や疎水性界面活性剤が挙げられる。
　本願における組成物は、スクロース、スクラロース、トレハロース、マンニトール、グリシン、メチオニン、クエン酸、乳酸、酒石酸、酢酸、トリフルオロ酢酸およびｐＨ調整剤からなる群から選択される１以上の製薬学的に許容される担体を含んでいてもよい。
　本願における組成物、キット等の投与方法は、疾患の種類、対象の状態、標的部位などの条件に応じて適宜選択することができる。前記投与方法としては、例えば、非経口投与、具体的には、血管内（例えば静脈内）、皮下、皮内、筋肉内、経鼻、経皮投与が挙げられる。
　本願においてワクチンアジュバントおよびワクチン抗原の投与量は、特に限定されず、投与方法、対象、対象の年齢、剤形、投与ルート等により適宜選択される。
　例えば、ワクチンアジュバントが式（１）で表される化合物またはその製薬学的に許容される塩であるとき、その投与量は、温血動物に対し、通常５～５０００ｍｇ／ｍ2（体表面積）、即ち、約０．１ｎｇ／ｋｇ～１００ｍｇ／ｋｇの範囲の単位用量にて投与され、これは通常、予防上有効な用量をもたらす。注射剤、錠剤またはカプセルのような単位投与形態は、通常、例えば１ｎｇ～２５０ｍｇの式（１）で表される化合物またはその製薬学的に許容される塩を含有する。好ましくは、１日あたり１ｎｇ～５０ｍｇ／ｋｇの範囲の投与量で用いられる。但し、この１日あたりの用量は、処置を受ける宿主、具体的な投与経路および処置される疾患の重症度によって変更する必要もある。したがって、至適用量は、個別の患者もしくは温血動物を処置する施術者が決定することもできる。ワクチンアジュバントがユニバーサルインフルエンザワクチン抗原と同時に投与される場合には、ワクチンアジュバントは例えば下記のユニバーサルインフルエンザワクチン抗原の投与スケジュールに従って投与される。ワクチンアジュバントがユニバーサルインフルエンザワクチン抗原と別に投与される場合にも、例えば下記のユニバーサルインフルエンザワクチン抗原の投与スケジュールを考慮して投与されることができる。
　本願において、ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原（例えば本発明のインフルエンザHAスプリットワクチン）の投与量、組成物の剤形、投与回数、一回の投与にかかる時間などは、対象の年齢、標的部位などの条件に応じて適宜選択できる。ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原（例えば本発明のインフルエンザHAスプリットワクチン）は、例えば一回の接種のみ行うことも可能であるし、初回接種の後、所定期間の経過後に追加接種するように使用されることも可能である。初回接種の後、追加接種されるまでの期間は、特に限定されるのもではないが、例えば20日～3年であり、好ましくは3月～2年であり、より好ましくは6月～1年である。初回接種および追加接種のユニバーサルインフルエンザワクチン抗原の量は、特に限定されるものではないが、１用量あたり例えば１μｇ～２００μｇであり、好ましくは１０μｇ～３０μｇであり、より好ましくは１５μｇである。１用量は例えば０．５ｍＬである。初回接種および追加接種のＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質の量としては、通常、０．０００１ｍｇ～１０００ｍｇ、好ましくは、０．００１ｍｇ～１０００ｍｇ、より好ましくは０．１ｍｇ～１０ｍｇである。初回接種および追加接種では、投与方法は特に限定されるものではないが、例えば経鼻、皮下、皮内、経皮、眼内、粘膜または経口投与であり、好ましくは筋肉内投与である。
　本明細書において、「温血動物」には、ヒトおよび非ヒト動物類が含まれる。非ヒト動物には、特に限定されないが、例えば、非ヒト霊長類、ヒツジ、イヌ、ネコ、ウマ、ウシのような哺乳類が含まれる。温血動物の中では、ヒト、特に、インフルエンザの予防を必要としているヒトが好ましい。
　本願におけるインフルエンザを予防するための方法の実施態様としては、上記のユニバーサルインフルエンザワクチン抗原およびワクチンアジュバントを含む組成物を投与することを含む方法が挙げられる。別の実施形態として、ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原組成物とワクチンアジュバント組成物を投与することを含む方法が挙げられる。
　以下、実施例により本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらによりなんら限定されるものではない。
実施例１：本発明のインフルエンザHAスプリットワクチン
　1.HAスプリットワクチンの調整
　リン酸緩衝生理食塩水に懸濁したH3N2型インフルエンザウイルス粒子（X31株）もしくはH1N1型インフルエンザウイルス粒子（A/Puerto Rico/8/34株）に、最終濃度が0.1v/v%になるようTween80を添加し懸濁した。ジエチルエーテルを加えさらに懸濁し、水層とジエチルエーテル層が完全に分離するまで静置した後、ジエチルエーテル層を取り除いた。このエーテル抽出を繰り返した後、回収した水層に残存するジエチルエーテルを常圧で留去し、HAスプリットワクチンとした。
　2.酸性処理
　HAスプリットワクチンをリン酸緩衝生理食塩水で懸濁後、酸性処理として0.15Mクエン酸緩衝液（pH 3.5）を添加しpHを5.0にした。室温で30分静置した後、1M Tris緩衝液 (pH8.0)を加えて、pHを7.3に戻した。その後、遠心分離を行い、膜融合型HAスプリットワクチンとした。作製した膜融合型HAスプリットワクチンに、最終濃度0.05v/v%になるようホルマリンを加えて数日静置した。
　なお、現行HAスプリットワクチンの場合は、1.で調整したHAスプリットワクチンに対して酸性処理を施さない以外は上記と同様の処理を行った。
　3.ELISA法によるLAH抗体価の測定
　3-1.H3N2型インフルエンザワクチンの接種
　BALB/cマウス（メス、6～12週令）に、H3N2型の現行HAスプリットワクチンまたは膜融合型HAスプリットワクチン（10 μgワクチン + 10 v/v % AddaVaxアジュバント（InvivoGen）をリン酸緩衝生理食塩水に溶解し、液量200 μlにする）を腹腔内接種した。初回ワクチン接種28日後に、膜融合型HAワクチン（10 μgワクチンのみをリン酸緩衝生理食塩水に溶解し、液量200 μlにする）を腹腔内接種した。追加ワクチン接種から14日後以降に、ワクチンを接種したマウスより採血を行い、血清を回収した。
　3-2.ELISA法による測定
　下記に示す手法により、ELISA法(Enzyme-Linked Immuno Sorbent Assay)にて、H3N2型の現行HAスプリットワクチンまたは膜融合型HAスプリットワクチンを腹腔内接種したBALB/cマウスの血清中のLAH抗体濃度を測定した。
　即ち、ステム部分の一部（long alpha helix）に相当する合成ペプチド（H3; Ac-RIQDLEKYVEDTKIDLWSYNAELLVALENQHTIDLTDSEMNKLFEKTRRQLRENADYKDDDDKC）（配列番号１）を10 μg/mlにてリン酸緩衝生理食塩水（pH 7.3）に溶解し、96ウェルプレートに100 μlずつ添加した。4℃で一晩静置した後、リン酸緩衝生理食塩水にて各ウェルを３回洗浄し、1v/v%牛血清アルブミンを含むリン酸緩衝生理食塩水を150 μlずつ添加した。室温で２時間静置後、リン酸緩衝生理食塩水にて各ウェルを３回洗浄し、Tween20を0.05v/v%と1v/v%牛血清アルブミンを含むリン酸緩衝液にて段階希釈したマウス血清と、濃度既知の標準モノクローナル抗体（H3; クローン名V15-5）を各ウェルに100 μlずつ添加した。室温で２時間静置後、リン酸緩衝生理食塩水（Tween20を0.05v/v%含む）にて各ウェルを３回洗浄し、0.05v/v%Tween20と1v/v%牛血清アルブミンを含むリン酸緩衝生理食塩水にて希釈したペルオキシダーゼ標識抗マウスIgG抗体（Southern Biotech）を各ウェルに100 μlずつ添加した。室温で２時間静置後、リン酸緩衝生理食塩水（Tween20を0.05v/v%含む）にて各ウェルを３回洗浄し、基質としてクエン酸緩衝液（pH 5.0） 60 mlにo-phenylendiamine tablet (シグマ) 30 mgと24 μlの30%過酸化水素水(30%w/w; シグマ)を加えたものを調整し、それを各ウェルに100 μlずつ添加した。発色後50 μlの1mol／L硫酸(和光純薬工業)で反応を止め、Microplate Reader 450型(Biorad)を用いて490 nmの吸光値を測定した。
　図２に示されるように、膜融合型HAスプリットワクチンを腹腔内接種したBALB/cマウスの血清中のLAH抗体価は、現行HAスプリットワクチンを腹腔内接種したBALB/cマウスの血清中のLAH抗体価よりも、有意に上昇していた。
　4.抗原変異株に対する交差防御
　H3N2型ウイルス感染防御実験では、ワクチン非接種マウス、または、H3N2型の現行HAスプリットワクチン若しくは膜融合型HAスプリットワクチン接種後のマウスより回収した血清を、BALB/cマウス（メス、6～12週令）に200 μlずつ腹腔内投与した。
　血清投与から3時間後、ワクチン株とは抗原性の異なる別のH3N2型インフルエンザウイルス (A/Guizhou/54/89)を5マウスlethal dose50 (50%のマウスに致死性感染をおこすウイルス量の5倍)にて麻酔下において経鼻投与することでウイルス感染を行った。
　ウイルス感染から21日間、毎日マウスの体重測定および観察を行い、体重の推移と生存率を調べた。25%の体重減少が認められたマウスが生じた場合は、安楽殺処分とした。
　図３に示されるように、膜融合型HAスプリットワクチンを接種したBALB/cマウスでは、抗原性の異なる別のH3N2型インフルエンザウイルス感染後９日目から有意に生存率低下を抑制できた。
　5.ELISA法によるLAH抗体価の測定
　5-1.H1N1型インフルエンザウイルス粒子
　C57BL/6マウス（メス、6～12週令）に、H1N1型の現行HAスプリットワクチンまたは膜融合型HAスプリットワクチン（10 μgワクチン + 10 μg CpG-ODN1760をリン酸緩衝生理食塩水に懸濁し、等量のFreund’s incomplete adjuvant (ROCKLAND) と混合して液量200 μlにする）を腹腔内接種した。初回ワクチン接種28日後に、膜融合型HAスプリットワクチン（初回ワクチン接種と同様に、10 μgワクチン + 10 μg CpG-ODNをリン酸緩衝生理食塩水に懸濁し、等量のFreund’s incomplete adjuvant (ROCKLAND) と混合して液量200 μlにする）を腹腔内接種した。追加ワクチン接種から14日後以降に、ワクチンを接種したマウスより採血を行い、血清を回収した。
　5-2.ELISA法による測定
　下記に示す手法により、ELISA法にて、H1N1型の現行HAスプリットワクチンまたは膜融合型HAスプリットワクチンを腹腔内接種したC57BL/6マウスの血清中のLAH抗体濃度を測定した。
　ステム部分の一部（long alpha helix）に相当する合成ペプチド（H1; Ac-RIENLNKKVDDGFLDIWTYNAELLVLLENERTLDYHDSNVKNLYEKVRSQLKNNADYKDDDDKC）（配列番号２）を使用し、濃度既知の標準モノクローナル抗体（H1; クローン名F2）を使用した以外は、上記と同様の手法を用いた。
　図４に示されるように、膜融合型HAスプリットワクチンを腹腔内接種したC57BL/6マウスの血清中のLAH抗体価は、現行HAスプリットワクチンを腹腔内接種したC57BL/6マウスの血清中のLAH抗体価よりも、有意に上昇していた。
　6.抗原変異株に対する交差防御
　H1N1型ウイルス感染防御実験では、ワクチン非接種マウス、または、H1N1型の現行HAスプリットワクチン若しくは膜融合型HAスプリットワクチン接種後のマウスより回収した血清を、C57BL/6マウス（メス、6～12週令）に200 μlずつ腹腔内投与した。
　血清投与から3時間後、ワクチン株とは抗原性の異なる別のH1N1型インフルエンザウイルス (A/Narita/1/09)を5マウスlethal dose50 (50%のマウスに致死性感染をおこすウイルス量の5倍)にて麻酔下において経鼻投与することでウイルス感染を行った。
　ウイルス感染から20日間、毎日マウスの観察を行い、生存率を調べた。図５に示されるように、膜融合型HAスプリットワクチンを接種したC57BL/6マウスでは、抗原性の異なる別のH1N1型インフルエンザウイルス感染後９日目から有意に生存率低下を抑制できた。
　7. LAH epitopeに対する抗体結合性
　ELISA法(Enzyme-Linked Immuno Sorbent Assay)により、X31株を感染させたマウスもしくはヒト末梢血より作製したLAH結合性モノクローナル抗体（図６における＃１～＃５）の、現行HAスプリットワクチンまたは膜融合型HAスプリットワクチンに対する結合を測定した。H3N2型インフルエンザウイルス（X31株）の現行HAスプリットワクチンまたは膜融合型HAスプリットワクチンをリン酸緩衝生理食塩水（pH 7.3）に溶解し、96ウェルプレートに50 μlずつ添加した。4℃で一晩静置した後、リン酸緩衝生理食塩水にて各ウェルを３回洗浄し、1v/v%牛血清アルブミンを含むリン酸緩衝生理食塩水を150 μlずつ添加した。室温で2時間静置後、リン酸緩衝生理食塩水（Tween20を0.05v/v%含む）にて各ウェルを３回洗浄し、1v/v%牛血清アルブミンを含むリン酸緩衝液にて段階希釈したLAH結合性のモノクローナル抗体を50μlずつ添加した。4℃で一晩静置した後、リン酸緩衝生理食塩水（Tween20を0.05v/v%含む）にて各ウェルを3回洗浄し、0.05v/v%Tween20と1v/v%牛血清アルブミンを含むリン酸緩衝生理食塩水にて希釈したペルオキシダーゼ標識抗マウスIgG抗体（Southern Biotech）を各ウェルに100μlずつ添加した。室温で２時間静置後、リン酸緩衝生理食塩水（Tween20を0.05v/v%含む）にて各ウェルを３回洗浄し、基質としてクエン酸緩衝液（pH 5.0） 60 mlにo-phenylendiamine tablet (シグマ) 30 mgと24 μlの30%過酸化水素水(30%w/w; シグマ)を加えたものを調製し、それを各ウェルに50μlずつ添加した。発色後25μlの１mol/L硫酸(和光純薬工業)で反応を止め、Microplate Reader 450型(Biorad)を用いて490 nmの吸光値を測定した。測定した現行HAスプリットワクチンまたは膜融合型HAスプリットワクチンに対するそれぞれの吸光値より、結合性の変化を算出した。
　図６に示されるように、LAH結合性モノクローナル抗体が膜融合型HAスプリットワクチンに対して現行HAスプリットワクチンよりも1.05～21倍強く結合した。これらの結果は、HAスプリットワクチンの酸性処理により、LAH epitopeに対する抗体結合性が亢進することを示すものである。
実施例２：本願のＴＬＲアゴニストとインフルエンザHAスプリットワクチンを含む組成物
　1.TLR7の生理活性を亢進する化合物を含むアジュバント組成物の調整
　A-1
　調製法
　2.96gのジミリストイルホスファチジルコリン（DMPC）、2.04gの卵黄ホスファチジルグリセロール（EPG）、および0.5gのTLR7アゴニスト（(4E,8E,12E,16E,20E)-N-{2-[{4-[(2-アミノ-4-{[(3S)-1-ヒドロキシヘキサン-3-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]ベンジル}(メチル)アミノ]エチル}-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエンアミド）（以下、化合物Aという）をそれぞれはかり取り、さらに、シクロヘキサン20g、エタノール0.4gを加え、溶解した。0.2μmのメンブランフィルターを用いてろ過を行い、凍結乾燥した。9v/v%スクロース水溶液を用いて添加分散した。エクストルーダーを用いてリポソーム液を調製し、0.22μmのろ過フィルターを通した後、凍結乾燥した。復水は注射用蒸留水を用いて要時行った。
　A-2
　調製法
4mgのTLR7アゴニスト（メチル　（４－｛［［３－（６－アミノ－２－ブトキシ－８－オキソ－７，８－ジヒドロ－９Ｈ－プリン－９－イル）プロピル］（３－ピペリジン－１－イルプロピル）アミノ］メチル｝フェニル）アセテート・塩酸塩）（以下、化合物Bという）を秤量し、1mLの0.1v/v% Tween80を含有する0.6v/v% リン酸緩衝生理食塩水(pH6)を添加して懸濁した。
　A-3
　調製法
　TLR7アゴニスト（化合物A）、スクワラン、トリオレイン酸ソルビタン、α-トコフェロール、が１：225：25：25の重量比となるように、化合物Aを油性成分（スクワラン、トリオレイン酸ソルビタン及びα-トコフェロール）に溶解させた。化合物A、アスコルビン酸Na、ポリソルベート80、スクロースが1：10：25：500の重量比となるように、注射用水に水性成分（スクロース、ポリソルベート80及びアスコルビン酸ナトリウム）を溶解後、上記油性組成物を加えて予備混合を行い、超高圧乳化分散機を用いて乳化分散させた。0.2μmの滅菌フィルターを通してろ過した後、ガラス製バイアルに1 mLずつ充填し、凍結乾燥した。復水は注射用蒸留水を用いて要時行った。
2.本願のインフルエンザHAスプリットワクチンとTLR7の生理活性を亢進する化合物を含む組成物の投与
X31型由来膜融合型HAスプリットワクチン（10μg）に、リン酸緩衝生理食塩水、50μgのTLR7アゴニスト（化合物A）を含むA-1、200μgのTLR7アゴニスト（化合物B）を含むA-2、10μgのTLR7アゴニスト（化合物A）を含むA-3、X31型由来膜融合型HAスプリットワクチン液と等容量のAddaVaxアジュバント（InvivoGen）、もしくは10 μgのCpG-ODN1760をリン酸緩衝生理食塩水に懸濁し等量のFreund’s incomplete adjuvant (ROCKLAND) と混合したものをそれぞれ調製した。C57BL/6マウス（メス、６～12週令）の大腿部皮内もしくは大腿部の筋肉内（片側50 μlで合計100 μl）に接種した。3週間後に同じマウスに同じ抗原および同じ条件で追加免疫を行い、追加免疫2週間後に採血を行い、血清を回収した。
　3.ELISA法による測定
　下記に示す手法により、ELISA法にてマウスの血清中のHA抗体濃度を測定した。
即ち、組換えHA蛋白質（H3N2型インフルエンザウイルスのX31株もしくはA/Uruguay/716/2007）を10 μg/mlにてリン酸緩衝生理食塩水（pH 7.3）に溶解し、96ウェルプレートに100 μlずつ添加した。4℃で一晩静置した後、リン酸緩衝生理食塩水にて各ウェルを３回洗浄し、1v/v%牛血清アルブミンを含むリン酸緩衝生理食塩水を150 μlずつ添加した。室温で２時間静置後、リン酸緩衝生理食塩水にて各ウェルを３回洗浄し、Tween20を0.05v/v%と1v/v%牛血清アルブミンを含むリン酸緩衝液にて段階希釈したマウス血清と、濃度既知の標準モノクローナル抗体（H3; クローン名V15-5）を各ウェルに100 μlずつ添加した。室温で２時間静置後、リン酸緩衝生理食塩水（Tween20を0.05v/v%含む）にて各ウェルを３回洗浄し、0.05v/v%Tween20と1v/v%牛血清アルブミンを含むリン酸緩衝生理食塩水にて希釈したペルオキシダーゼ標識抗マウスIgG1抗体もしくは抗IgG2c抗体（Southern Biotech）を各ウェルに100 μlずつ添加した。室温で２時間静置後、リン酸緩衝生理食塩水（Tween20を0.05v/v%含む）にて各ウェルを３回洗浄し、基質としてクエン酸緩衝液（pH 5.0） 60 mlにo-phenylendiamine tablet (シグマ) 30 mgと24 μlの30%過酸化水素水(30%w/w; シグマ)を加えたものを調整し、それを各ウェルに100 μlずつ添加した。発色後50 μlの１mol/L硫酸(和光純薬工業)で反応を止め、Microplate Reader 450型(Biorad)を用いて490 nmの吸光値を測定した。
　図７に示されるように、全てのアジュバントを添加した膜融合型HAスプリットワクチン接種群のX31型由来HA IgG2c抗体価は、アジュバント非添加膜融合型HAスプリットワクチン接種群と比較して、有意に上昇していた。また、A-1投与群は、CpG-ODN1760/Freund’s incomplete adjuvant（CpG/IFA）よりも高いX31型由来HA IgG2c抗体価を誘導した。中でもA-1投与群は、最も高いX31型由来HA IgG2c抗体価を誘導した。さらに、Urg型由来HAに対しても全く同様の反応性を示した。すなわちこれらの結果は、本願の組成物の接種による感染防御効果の高い交差反応性IgG2抗体の誘導を示すものである。
　図８に示されるように、全てのアジュバント添加膜融合型HAスプリットワクチン接種群のX31型由来HA IgG1抗体価は、アジュバント非添加膜融合型HAスプリットワクチン接種群と比較して、有意に上昇していた。中でもCpG-ODN1760/Freund’s incomplete adjuvant（CpG/IFA）は、最も高いX31型由来HA IgG1抗体価を誘導した。さらに、Urg型由来HAに対しても全く同様の反応性を示した。すなわちこれらの結果は、本願の組成物の接種による交差反応性抗体の誘導を示すものである。
　図９に示されるように、A-1投与群は、CpG-ODN1760/Freund’s incomplete adjuvant（CpG/IFA）よりも高いX31型由来HA IgG2c/IgG1抗体比を示した。さらに、Urg型由来HAに対しても全く同様のHA IgG2c/IgG1抗体比を示した。すなわちこれらの結果は、本願の組成物の接種による感染防御効果の高い交差反応性抗体の誘導を示すものである。
　図１０に示されるように、全てのアジュバントを添加した膜融合型HAスプリットワクチン接種群のX31型由来HA IgG2c抗体価は、アジュバント非添加膜融合型HAスプリットワクチン接種群と比較して、有意に上昇していた。また、A-1およびA-3投与群は、AddaVaxアジュバント投与群よりも高いX31型由来HA IgG2c抗体価を誘導した。さらに、Urg型由来HAに対しても全く同様の反応性を示した。すなわちこれらの結果は、本願の組成物の接種による感染防御効果の高い交差反応性IgG2抗体の誘導を示すものである。
　図１１に示されるように、全てのアジュバントを添加した膜融合型HAスプリットワクチン接種群のX31型由来HA IgG1抗体価は、アジュバント非添加膜融合型HAスプリットワクチン接種群と比較して、有意に上昇していた。中でもA-3およびAddaVaxアジュバント投与群は、最も高いX31型由来HA IgG1抗体価を誘導した。さらに、Urg型由来HAに対しても全く同様の反応性を示した。すなわちこれらの結果は、本願の組成物の接種による交差反応性抗体の誘導を示すものである。
図１２に示されるように、A-1およびA-3投与群は、AddaVaxアジュバント投与群よりも高いX31型由来HA IgG2c/IgG1抗体比を示した。さらに、Urg型由来HAに対しても全く同様のHA IgG2c/IgG1抗体比を示した。すなわちこれらの結果は、本願の組成物の接種による感染防御効果の高い交差反応性抗体の誘導を示すものである。
　4. 抗原変異株に対する交差防御
　追加免疫から3週間後、ワクチン株とは抗原性の異なる別のH3N2型インフルエンザウイルス (A/Guizhou/54/89)を5マウスlethal dose50 (50%のマウスに致死性感染をおこすウイルス量の5倍)にて麻酔下において経鼻投与することでウイルス感染を行った。ウイルス感染から14日間、毎日マウスの体重測定および観察を行い、体重の推移と生存率を調べた。25%の体重減少が認められたマウスが生じた場合は、安楽殺処分とした。
図１３に示されるように、全てのアジュバントを添加した膜融合型HAスプリットワクチンを接種したマウスでは、抗原性の異なる別のH3N2型インフルエンザウイルス感染後7日目から有意に生存率低下を抑制できた。中でもA-1およびA-3は、100%の生存率を示し、最も強い感染防御作用を示した。
図１４に示されるように、全てのアジュバントを添加した膜融合型HAスプリットワクチンを接種したマウスにおいて、抗原性の異なる別のH3N2型インフルエンザウイルス感染による体重減少を抑制した。中でもA-3は、AddaVaxアジュバント投与群よりも強い体重減少抑制作用を示した。
5.本願のインフルエンザHAスプリットワクチンとTLR7の生理活性を亢進する化合物を含む組成物の投与
H1N1型インフルエンザウイルスのPR8株由来膜融合型HAスプリットワクチン（10μg）に、リン酸緩衝生理食塩水、50μgのTLR7アゴニスト（化合物A）を含むA-1、10μgのTLR7アゴニスト（化合物A）を含むA-3、もしくはPR8株由来膜融合型HAスプリットワクチン液と等容量のAddaVaxアジュバント（InvivoGen）と混合したものをそれぞれ調製した。C57BL/6マウス（メス、６～12週令）の大腿部皮内もしくは大腿部の筋肉内（片側50 μlで合計100 μl）に接種した。3週間後に同じマウスに同じ抗原および同じ条件で追加免疫を行い、追加免疫2週間後に採血を行い、血清を回収した。
　6.ELISA法による測定
　下記に示す手法により、ELISA法にてマウスの血清中のHA抗体濃度を測定した。
即ち、組換えHA蛋白質（H1N1型インフルエンザウイルスのPR8株もしくはA/Narita/1/09）を10 μg/mlにてリン酸緩衝生理食塩水（pH 7.3）に溶解し、96ウェルプレートに100 μlずつ添加した。4℃で一晩静置した後、リン酸緩衝生理食塩水にて各ウェルを３回洗浄し、1v/v%牛血清アルブミンを含むリン酸緩衝生理食塩水を150 μlずつ添加した。室温で２時間静置後、リン酸緩衝生理食塩水にて各ウェルを３回洗浄し、Tween20を0.05v/v%と1v/v%牛血清アルブミンを含むリン酸緩衝液にて段階希釈したマウス血清と、濃度既知の標準モノクローナル抗体（H1；クローン名F2）を各ウェルに100 μlずつ添加した。室温で２時間静置後、リン酸緩衝生理食塩水（Tween20を0.05v/v%含む）にて各ウェルを３回洗浄し、0.05v/v%Tween20と1v/v%牛血清アルブミンを含むリン酸緩衝生理食塩水にて希釈したペルオキシダーゼ標識抗マウスIgG1抗体もしくは抗IgG2c抗体（Southern Biotech）を各ウェルに100 μlずつ添加した。室温で２時間静置後、リン酸緩衝生理食塩水（Tween20を0.05v/v%含む）にて各ウェルを３回洗浄し、基質としてクエン酸緩衝液（pH 5.0） 60 mlにo-phenylendiamine tablet (シグマ) 30 mgと24 μlの30%過酸化水素水(30%w/w; シグマ)を加えたものを調整し、それを各ウェルに100 μlずつ添加した。発色後50 μlの１mol/L硫酸(和光純薬工業)で反応を止め、Microplate Reader 450型(Biorad)を用いて490 nmの吸光値を測定した。
　図１７に示されるように、全てのアジュバントを添加した膜融合型HAスプリットワクチン接種群のPR8株由来HA IgG2c抗体価は、アジュバント非添加膜融合型HAスプリットワクチン接種群と比較して、有意に上昇していた。また、A-1投与群は、AddaVaxアジュバント投与群よりも高いPR8株由来HA IgG2c抗体価を誘導した。中でもA-3投与群は、最も高いPR8株由来HA IgG2c抗体価を誘導した。さらに、A/Narita/1/09由来HAに対しても全く同様の反応性を示した。すなわちこれらの結果は、本願の組成物の接種による感染防御効果の高い交差反応性IgG2抗体の誘導を示すものである。
　図１８に示されるように、全てのアジュバント添加膜融合型HAスプリットワクチン接種群のPR8株由来HA IgG1抗体価は、アジュバント非添加膜融合型HAスプリットワクチン接種群と比較して、有意に上昇していた。中でもA-3投与群は、最も高いPR8株由来HA IgG1抗体価を誘導した。さらに、A/Narita/1/09由来HAに対しても全く同様の反応性を示した。すなわちこれらの結果は、本願の組成物の接種による交差反応性抗体の誘導を示すものである。
図１９に示されるように、A-1およびA-3投与群は、AddaVaxアジュバント投与群よりも高いPR8株由来HA IgG2c/IgG1抗体比を示した。さらに、A/Narita/1/09由来HAに対しても全く同様のHA IgG2c/IgG1抗体比を示した。すなわちこれらの結果は、本願の組成物の接種による感染防御効果の高い交差反応性抗体の誘導を示すものである。
　7. 抗原変異株に対する交差防御
　追加免疫から4週間後、ワクチン株とは抗原性の異なる別のH1N1型インフルエンザウイルス (A/Narita/1/09)を5マウスlethal dose50 (50%のマウスに致死性感染をおこすウイルス量の5倍)にて麻酔下において経鼻投与することでウイルス感染を行った。ウイルス感染から14日間、毎日マウスの体重測定および観察を行い、体重の推移と生存率を調べた。25%の体重減少が認められたマウスが生じた場合は、安楽殺処分とした。
図２０に示されるように、A-1もしくはA-3のアジュバントを添加した膜融合型HAスプリットワクチンを接種したマウスでは、抗原性の異なる別のH1N1型インフルエンザウイルス感染後7日目から有意に生存率低下を抑制でき、強い感染防御作用を示した。
図２１に示されるように、全てのアジュバントを添加した膜融合型HAスプリットワクチンを接種したマウスにおいて、抗原性の異なる別のH1N1型インフルエンザウイルス感染による体重減少を抑制した。中でもA-1およびA-3投与群は、AddaVaxアジュバント投与群よりも強い体重減少抑制作用を示した。
実施例３：ホルマリン処理順序の抗体結合性および抗体誘導能への影響
　1. ホルマリン前処理HAスプリットワクチンの調製
リン酸緩衝生理食塩水に懸濁したH3N2型インフルエンザウイルス粒子（X31株）に、最終濃度が0.1v/v%になるようTween80を添加し懸濁した。ジエチルエーテルを加えさらに懸濁し、水層とジエチルエーテル層が完全に分離するまで静置した後、ジエチルエーテル層を取り除いた。このエーテル抽出を繰り返した後、回収した水層に残存するジエチルエーテルを常圧で留去した。さらに、最終濃度0.05v/v%になるようホルマリンを加えて数日静置し、ホルマリン前処理HAスプリットワクチンとした。
　2.ホルマリン前処理HAスプリットワクチンの酸性処理
ホルマリン前処理HAスプリットワクチンをリン酸緩衝生理食塩水で懸濁後、酸性処理として0.15Mクエン酸緩衝液（pH 3.5）を添加しpHを5.0にした。室温で30分静置した後、1M Tris緩衝液 (pH8.0)を加えて、pHを7.3に戻した。その後、遠心分離を行った。
3. LAH epitopeに対する抗体結合性
LAH epitopeに対する抗体結合性は、実施例１における7.と同様の操作を実施し、結合性の変化を算出した。ここで、モノクローナル抗体は、図６における＃２、＃４及び＃５と同じ抗体、およびコントロールとしてHAヘッド領域に結合するモノクローナル抗体＃６を用いた。
4. ELISA法によるLAH抗体価の測定
4-1.H3N2型インフルエンザワクチンの接種
BALB/cマウス（メス、6～12週令）に、H3N2型の現行HAスプリットワクチンまたは膜融合型HAスプリットワクチン（10 μgワクチン + 10 v/v % AddaVaxアジュバント（InvivoGen）をリン酸緩衝生理食塩水に溶解し、液量200 μlにする）を腹腔内接種した。接種から12日後以降に、ワクチンを接種したマウスより採血を行い、血清を回収した。
4-2.ELISA法による測定
LAH抗体価は、実施例１における3-2.と同様の操作を実施し、測定した。
図１５に示されるように、膜融合型HAスプリットワクチンの調製工程においてホルマリン処理を酸性処理の後に施したワクチン（post-fix）は、酸性処理の前に施したワクチン（Pre-fix）と比べて、LAH結合性モノクローナル抗体がより強く結合した。これらの結果は、HAスプリットワクチンの酸性処理によるLAH epitopeに対する抗体結合性の亢進において、ホルマリン処理の時期が作用に影響を及ぼし、また、その処置は酸性処理の後が望ましいことを示すものである。ここで、図１５および図１６において、実施例３の手順により、HAスプリットワクチンに対して、ホルマリン処理後に酸性処理を施したワクチンを、「膜融合型スプリットワクチン（Pre-fix）」と表記する。また、実施例１の手順により、HAスプリットワクチンに対して、酸性処理後にホルマリンし処理を施したワクチンを、「膜融合型スプリットワクチン（Post-fix）」と表記する。
図１６に示されるように、膜融合型HAスプリットワクチンを腹腔内接種したBALB/cマウスの血清中のLAH抗体価は、現行HAスプリットワクチンを腹腔内接種したBALB/cマウスの血清中のLAH抗体価よりも上昇した。さらに、膜融合型HAスプリットワクチン（post-fix）は、膜融合型スプリットワクチン（Pre-fix）と比べて、LAH抗体価は上昇した。
　本発明は、インフルエンザワクチンの開発、または製造分野において利用可能である。
　配列番号１、２：合成ペプチド

Claims (30)

  1. 　以下の（１）および（２）を含む組成物；
    （１）ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原；および
    （２）ワクチンアジュバント。
  2. 　該ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原が、ＨＡ幹領域のＬＡＨに結合する抗体を産生することができるインフルエンザＨＡスプリットワクチン抗原である、請求項１に記載の組成物。
  3. 　該インフルエンザＨＡスプリットワクチン抗原のＨＡ幹領域が外部に露出した形状である、請求項２に記載の組成物。
  4. 　該ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原が、ＨＡ幹領域が外部に露出した形状であることによりＨＡ幹領域のＬＡＨの抗原性が高められており、かつ、ＨＡ幹領域のＬＡＨに結合する抗体を産生することができる、インフルエンザＨＡスプリットワクチン抗原である、請求項１に記載の組成物。
  5. 　該ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原が、インフルエンザＨＡスプリットワクチンに酸性処理を施すことにより製造される、請求項１～４のいずれか１項に記載の組成物。
  6. 　該ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原が、インフルエンザＨＡスプリットワクチンに酸性処理を施す工程と、その後ホルマリン処理を施す工程とを含む製造プロセスにより製造される、請求項１～５のいずれか１項に記載の組成物。
  7. 　該ワクチンアジュバントが、ＴＬＲの生理活性を亢進する物質である、請求項１～６のいずれか一項に記載の組成物。
  8. 　該ワクチンアジュバントが、ＴＬＲ７、ＴＬＲ８、およびＴＬＲ９からなる群から選択される一つもしくはそれ以上のＴＬＲの生理活性を亢進する物質である、請求項１～７のいずれか一項に記載の組成物。
  9. 　該ワクチンアジュバントが、少なくともＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質である、請求項１～８のいずれか一項に記載の組成物。
  10. 　該ワクチンアジュバントが、少なくともＴＬＲ８の生理活性を亢進する物質である、請求項１～９のいずれか一項に記載の組成物。
  11. 　該ワクチンアジュバントが、少なくともＴＬＲ９の生理活性を亢進する物質である、請求項１～１０のいずれか一項に記載の組成物。
  12. 　該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する物質が、ＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物、またはＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物と脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物である、請求項８または９に記載の組成物。
  13. 　該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物または該コンジュゲート化合物に含まれる該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物が、分子量２００～６００を有し、かつ、アデニン骨格、ピリミジン骨格、イミダゾキノリン骨格、イミダゾピリジン骨格、またはキナゾリン骨格を有する、請求項１２に記載の組成物。
  14. 　該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物または該コンジュゲート化合物に含まれる該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する低分子量化合物が、ピリミジン骨格、アデニン骨格またはイミダゾキノリン骨格を有する、請求項１３に記載の組成物。
  15. 　該脂質が、スクワレンまたはスクワランから誘導される脂質である、請求項１２～１４のいずれか一項に記載の組成物。
  16. 　該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する化合物が、アデニン骨格を有する低分子量化合物とスクワレンまたはスクワランから誘導される脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物またはその製薬学的に許容される塩である、請求項１２～１５のいずれか一項に記載の組成物。
  17. 　該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する化合物が、ピリミジン骨格を有する低分子量化合物とスクワレンまたはスクワランから誘導される脂質とがスペーサーを介して化学的に結合しているコンジュゲート化合物またはその製薬学的に許容される塩である、請求項１２～１５のいずれか一項に記載の組成物。
  18. 　該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する化合物が、下記式（１）：
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
     ［式（１）中、Xは、メチレンを表し、
    R1は水素原子、またはヒドロキシ基で置換されていてもよい炭素数１～３のアルキル基を表し、
    R2は、水素原子、または炭素数１～６のアルキル基を表し、
    R3は、炭素数１～３のアルキル基を表し、
    R4は、水素原子、ハロゲン原子、ヒドロキシ基、炭素数１～３のアルキル基または炭素数１～３のアルコキシ基を表し、
    Y1は、単結合またはメチレンを表し、
    Y2は、単結合または－C(O)－を表し、
    Lは、炭素数２または３の直鎖アルキレンを表し、
    R5およびR6は、独立して水素原子または炭素数１～３のアルキル基を表すか、あるいは、R5は、R6と一緒になって置換もしくは無置換の５～８員の含窒素飽和ヘテロ環を形成してもよく、前記５～８員の含窒素飽和ヘテロ環が置換されている場合、ヒドロキシ基およびハロゲン原子から選択される同一もしくは異なる１～４個の置換基で置換されていてもよく、
    ｍは０または１を表し、
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
     は、全て二重結合を表す］
    で示される化合物、またはそれらの製薬学的に許容される塩である、請求項１２～１５、および１７のいずれか一項に記載の組成物。
  19. 　該コンジュゲート化合物が、
    (4E,8E,12E,16E,20E)-N-{2-[{4-[(2-アミノ-4-{[(3S)-1-ヒドロキシヘキサン-3-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]ベンジル}(メチル)アミノ]エチル}-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエンアミド；
    (4E,8E,12E,16E,20E)-1-(4-{4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-3-メトキシベンジル}ピペラジン-1-イル)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエン-1-オン；
    (4E,8E,12E,16E,20E)-1-(4-{4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-3-メトキシベンゾイル}ピペラジン-1-イル)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエン-1-オン；
    4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-N-(2-{[(4E,8E,12E,16E,20E)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエノイル]アミノ}エチル)-3-メトキシベンズアミド；
    4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-N-(2-{[(4E,8E,12E,16E,20E)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエノイル](メチル)アミノ}エチル)-3-メトキシベンズアミド；
    またはそれらの製薬学的に許容される塩である、請求項１２～１５、１７および１８のいずれか一項に記載の組成物。
  20. 　該ＴＬＲ７の生理活性を亢進する化合物が、
    (4E,8E,12E,16E,20E)-N-{2-[{4-[(2-アミノ-4-{[(3S)-1-ヒドロキシヘキサン-3-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]ベンジル}(メチル)アミノ]エチル}-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエンアミド；
    4-[(2-アミノ-4-{[(2S)-1-ヒドロキシペンタン-2-イル]アミノ}-6-メチルピリミジン-5-イル)メチル]-N-(2-{[(4E,8E,12E,16E,20E)-4,8,12,17,21,25-ヘキサメチルヘキサコサ-4,8,12,16,20,24-ヘキサエノイル]アミノ}エチル)-3-メトキシベンズアミド；
    またはそれらの製薬学的に許容される塩である、請求項１２～１５、および１７～１９のいずれか一項に記載の組成物。
  21. 　請求項１～２０のいずれか一項に記載の組成物を含む、インフルエンザワクチン。
  22. 　予防が必要な温血動物に、予防上の有効量の請求項１～２０のいずれかに記載の組成物を投与することを含む、インフルエンザを予防するための方法。
  23. 　予防が必要な温血動物に、予防上の有効量のユニバーサルインフルエンザワクチン抗原と、予防上の有効量のワクチンアジュバントを投与することを含む、インフルエンザを予防するための方法。
  24. 　ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原、およびワクチンアジュバントを含む、インフルエンザを予防するためのキット。
  25. 　ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原と組み合わせたインフルエンザの予防における使用ための、ワクチンアジュバント。
  26. 　ワクチンアジュバントと組み合わせたインフルエンザの予防における使用のための、ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原。
  27. 　ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原を含むインフルエンザの予防のための組成物の製造における、ワクチンアジュバントの使用。
  28. 　ワクチンアジュバントを含むインフルエンザの予防のための組成物の製造における、ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原の使用。
  29. 　ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原とワクチンアジュバントとが、同時にまたは別々に投与される、請求項２２および２３に記載の方法、請求項２４に記載のキット、請求項２５に記載のワクチンアジュバント、または請求項２６に記載の該抗原。
  30. 　ユニバーサルインフルエンザワクチン抗原がワクチンアジュバントの投与前にもしくは投与後に、または同時に投与される、請求項２２および２３に記載の方法、請求項２４に記載のキット、請求項２５に記載のワクチンアジュバント、または請求項２６に記載の該抗原。
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