WO2019169792A1 - 一种抗torch-IgM型抗体谱芯片及其制备方法与TORCH检测的试剂盒 - Google Patents

一种抗torch-IgM型抗体谱芯片及其制备方法与TORCH检测的试剂盒 Download PDF

Info

Publication number
WO2019169792A1
WO2019169792A1 PCT/CN2018/092768 CN2018092768W WO2019169792A1 WO 2019169792 A1 WO2019169792 A1 WO 2019169792A1 CN 2018092768 W CN2018092768 W CN 2018092768W WO 2019169792 A1 WO2019169792 A1 WO 2019169792A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
torch
chip
igm
control point
coated
Prior art date
Application number
PCT/CN2018/092768
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
张大准
肖川
张永顶
马伟民
王洪涛
马新民
Original Assignee
深圳市伯劳特生物制品有限公司
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 深圳市伯劳特生物制品有限公司 filed Critical 深圳市伯劳特生物制品有限公司
Publication of WO2019169792A1 publication Critical patent/WO2019169792A1/zh

Links

Classifications

    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56905—Protozoa
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
    • G01N21/75—Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated
    • G01N21/76—Chemiluminescence; Bioluminescence
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56911—Bacteria
    • G01N33/56927—Chlamydia
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56983—Viruses
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56983—Viruses
    • G01N33/56994—Herpetoviridae, e.g. cytomegalovirus, Epstein-Barr virus
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/576—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for hepatitis
    • G01N33/5761—Hepatitis B
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/68—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/005—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from viruses
    • G01N2333/08—RNA viruses
    • G01N2333/18—Togaviridae; Flaviviridae
    • G01N2333/19—Rubella virus
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/435—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans
    • G01N2333/44—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans from protozoa
    • G01N2333/45—Toxoplasma
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2469/00—Immunoassays for the detection of microorganisms
    • G01N2469/20—Detection of antibodies in sample from host which are directed against antigens from microorganisms

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Plasma & Fusion (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明属于生物技术领域，公开了一种抗torch-IgM型抗体谱芯片及其制备方法、TORCH检测的试剂盒及检测方法。所述抗torch-IgM型抗体谱芯片包被有TORCH检测相关的病原微生物的抗原的蛋白芯片，能同时定量检测TORCH多种相关病原微生物的感染。所述TORCH检测的试剂盒包含所述抗torch-IgM型抗体谱芯片。

Description

一种抗torch-IgM型抗体谱芯片及其制备方法与TORCH检测的试剂盒
本申请要求于2018年03月07日提交中国专利局、申请号为201810188202.1、发明名称为“一种抗torch-IgM型抗体谱芯片及其制备方法与TORCH检测的试剂盒”的中国专利申请的优先权，其全部内容通过引用结合在本申请中。
技术领域
本发明属于生物检测技术领域，具体涉及一种抗torch-IgM型抗体谱芯片及其制备方法与TORCH检测的试剂盒。
背景技术
TORCH是导致先天性宫内感染及围产期感染而引起围产儿畸形的病原体，它是一组病原微生物的英文名称缩写，其中T(Toxoplasma)是弓形虫，O(Others)是其他病原微生物，如梅毒螺旋体、带状疱疹病毒、细小病毒B19、柯萨奇病毒等，R(Rubella.Virus)是风疹病毒，C(Cytomegalo.Virus)是巨细胞病毒，H(Herpes.Virus)即是单纯疱疹I/II型。TORCH感染是严重危害新生儿健康的重要因素之一，在围生医学中称为TORCH综合征，其感染呈世界性分布。我国人群中，TORCH感染广泛存在，孕妇在妊娠期间发生TORCH感染后无明显临床症状，但胎儿感染后，可能引起胎儿或新生儿的肝、肾、心、脑等多个器官出现发育缺陷和功能障碍，有可能引起胚胎/胎儿流产、早产、宫内发育迟缓、畸形、死胎和新生儿死亡等不良后果，对优生优育与人口素质构成极大的威胁。因此，为减少病残儿的出生率及提高出生人口素质，应极做好TORCH感染的血清学筛查以便及早发现不良妊娠并及时处理。对新生儿也应常规开展TORCH检测，了解新生儿TORCH感染情况，以便早干预、早治疗。
TORCH的检测中弓形虫、风疹病毒、巨细胞病毒、单纯疱疹I/II 型四种病原微生物的感染约占90％，其余的10％为其他病原微生物，包括细小病毒B19、柯萨奇病毒、梅毒螺旋体、乙肝病毒、衣原体等感染。目前对TORCH的检测方法主要有ELISA、免疫荧光试验(IFT)、胶体金以及基因芯片等。在我国最方便、最常用的早期筛查方法是采用ELISA诊断技术。ELISA是检测人体血清中的特异性IgM、IgM抗体，由于IgM为早期感染指标，对胎儿影响巨大，所以IgM的检测备受关注，胎盘中特异性IgM的检测是诊断胎儿宫内感染的可靠依据。ELISA试剂因其稳定、灵敏度高、特异性强、成本低等优点而在普通实验室中广泛采用，但通常只能检测单项指标。而IFT一般也是针对单项指标的检测，胶体金的方法一般也只是定性或者半定量，基因芯片技术虽然效果好，但成本高，一般价格昂贵。
发明内容
有鉴于此，本发明针对现有技术中的缺陷，提供了一种抗torch-IgM型抗体谱芯片及其制备方法与TORCH检测的试剂盒。
为实现本发明的目的，本发明采用如下技术方案。
一种抗torch-IgM型抗体谱芯片，包被有TORCH检测相关的病原微生物的抗原的蛋白芯片。
本发明采用蛋白质芯片技术，将TORCH的多种病原体集成在蛋白芯片上制备了高通量、多检测指标、性能稳定、重复性好、准确度高的TORCH相关抗体IgM芯片。
其中，作为优选，所述TORCH检测相关的病原微生物为弓形虫(TOX)、巨细胞病毒(CMV)、风疹病毒(RV)、单纯疱疹病毒(HSV)、人类微小病毒B19、柯萨奇病毒，梅毒螺旋体、乙肝病毒(HBV)、衣原体中至少一种。
在一些实施方案中，所述TORCH检测相关的病原微生物为弓形虫(TOX)、巨细胞病毒(CMV)、风疹病毒(RV)、单纯疱疹病毒(HSV)、人类微小病毒B19、柯萨奇病毒，梅毒螺旋体、乙肝病毒(HBV)和 衣原体，TORCH相关的病原微生物共9种。其中单纯疱疹病毒(HSV)包括单纯疱疹病毒-I型、单纯疱疹病毒-II型。
本发明所述抗torch-IgM型抗体谱芯片，所述蛋白芯片还包含质控点和/或参考点。
其中，所述质控点包含至少一个阳性质控点(PC)、至少一个阴性质控点(NC)、至少一个样品质控点(SC)和/或至少一个酶标质控点(EC)。所述参考点包含不同浓度的参考曲线点(S1-S5)和/或至少一个芯片位置参考点(Loc)。
在一些实施方案中，本发明所述芯片包含一个阳性质控点(PC)、一个阴性质控点(NC)、一个样品质控点(SC)、一个酶标质控点(EC)、5个参考曲线点(S1-S5)和一个芯片位置参考点(Loc)。
在本发明的一些实施例中，所述阳性质控点可以是人IgM，使用的酶联免疫标记物是抗人IgM的酶标。在其他的一些实施例中，所述阳性质控点也可以包被BSA-DNP偶联物，使用的酶联免疫标记物就是酶标记抗人IgM以及抗DNP-BSA的酶标记抗体的混合液。
在本发明的一些实施例中，所述阴性质控点可以是低于反应信号值的微量浓度的人IgM。在其他的一些实施例中也可用其他的无关蛋白来替代。
在本发明的一些实施例中，样品质控点可以是鼠抗人的IgM。在其他的一些实施例中也可使用其他的抗人IgM。
在本发明的一些实施例中，所述酶标质控点可以是人IgM。在其他的一些实施例中也可使用其他的抗兔的抗体(酶标用的是兔抗人IgM)，例如羊抗兔IgM抗体。
本发明的一些实施例中，所述参考曲线点是五种不同浓度的人IgM。如0.5μg/ml、1μg/ml、2.5μg/ml、5μg/ml、10μg/ml的人IgG。
本发明中，所述芯片本身的位置参考点包被的是2μg/ml的人IgM溶液，主要就是对阵列取值时的定位作用。
本发明还提供了所述抗torch-IgM型抗体谱芯片的制备方法，用 包被缓冲液稀释TORCH检测相关的病原微生物的抗原、质控点蛋白和/或参考点蛋白，通过点样仪以点阵列形式包被于芯片基质上。
本发明通过高度精密的点样仪将TORCH检测相关的10种病原微生物的抗原以及所需要的质控点蛋白、参考点蛋白以4×5的点阵列形式包被于芯片基质上
其中，所述包被缓冲液为含PEG、水溶性环糊精、海藻糖、防腐剂和甘油的缓冲液。
在一些实施例中，所述缓存液为pH9.6的CB缓冲液、pH8.5的Tris缓冲液或pH7.4-7.6的PBS缓冲液。
本发明所述包被缓冲液中含有PEG。在一些实施方案中，所述PEG为PEG4000。所述PEG的含量优选为0.5％～1％，更优选为0.5％。
本发明所述包被缓冲液中含有水溶性环糊精，使得包被更稳定、均一、包被的点更规则、更圆，CV更小。作为优选，所述水溶性环糊精为0.01％～0.02％Captisol、0.02％-0.04％的2-羟基-β-环糊精或羧甲基-β-环糊精；
本发明所述包被缓冲液中含有海藻糖。作为优选，所述海藻糖的含量为5％～8％；
本发明所述包被缓冲液中含有防腐剂。在一些实施方案中，所述防腐剂为Proclin300。作为优选，所述防腐剂的含量为0.05％。
本发明所述包被缓冲液中含有甘油。作为优选，所述甘油的含量为15％。
作为优选，本发明所述芯片的制备方法中所述包被为2-8℃，静置包被16-24h。
本发明所述芯片基质包括但不限于为酶标反应板、玻璃片、化学膜、多孔硅胶。其它适合蛋白质附着的载体也可以作为芯片基质。
进一步的，本发明所述芯片的制备方法还包括用封闭稳定剂封闭的步骤。
作为优选，所述封闭稳定剂为含1％-4％甘露醇，2％-5％的 PVP40000、1％-3％NH2-PEG、0.05％NaN3的pH7.4的0.01M磷酸氢二钠溶液。在一些实施例中，所述封闭稳定剂为1％甘露醇，2％的PVP40000、1％NH 2-PEG、0.05％NaN3的pH7.4的0.01M磷酸氢二钠溶液。
所述封闭优选为室温封闭1h。
本发明还提供了一种TORCH检测的试剂盒，包括所述的抗torch-IgM型抗体谱芯片。
进一步，所述TORCH检测的试剂盒还包括酶标记物、酶标稀释稳定剂、样品稀释液、洗涤液、显色液中的至少一种。在一些实施例中，所述TORCH检测的试剂盒还包括酶标记物、酶标稀释稳定剂、样品稀释液、洗涤液和显色液。
作为优选，所述酶标记物为辣根过氧化物酶标记的抗人IgM抗体，如羊抗人IgM抗体。
作为优选，所述酶标稀释稳定剂为包含0.05M的柠檬酸、3％-5％的牛血清γ球蛋白、2％-4％的PEG10000、0.05％-0.2％的阿拉伯树胶1％-2％的甜菜碱、0.05％的Proclin3000的pH7.4的100mM的Tris溶液。更优选的，所述酶标稀释稳定剂为包含0.05M的柠檬酸、3％的牛血清γ球蛋白、2％的PEG10000、0.05％的阿拉伯树胶1％的甜菜碱、0.05％的Proclin3000的pH7.4的100mM的Tris溶液。
作为优选，所述样品稀释液为包含0.15M NaCl、0.05％Tween20、0.01％酪蛋白的pH7.4的0.02M Tris溶液。
作为优选，所述洗涤液为包含0.15M NaCl、0.05％Tween20的pH7.4的0.02M Tris溶液。
作为优选，所述显色液为沉降型TMB。
本发明还提供了一种TORCH检测方法，待测样品用样品稀释液稀释后加入所述的抗torch-IgM型抗体谱芯片上，加入酶标记物，加入显色液避光显色，荧光检测装置检测结果，计算待测样品中的抗torch-IgM型抗体信号值。
进一步的，所述检测方法在加入酶标记物和加入显色液之前包括温育后洗涤液洗涤的步骤。
本发明所述检测方法通过抗原抗体反应的免疫学原理来检测受试者样本中TORCH感染的相关抗体IgM的水平。本发明所述检测方法的信号检测体系是化学发光的方式，可用底物是如鲁米诺等的化学发光底物，通过荧光检测装置或仪器来进行结果的读取。
由上述技术方案可知，本发明提供了一种抗torch-IgM型抗体谱芯片及其制备方法与TORCH检测的试剂盒及检测方法。本发明所述抗torch-IgM型抗体谱芯片，包被有TORCH检测相关的病原微生物的抗原的蛋白芯片。进一步还包含质控点和/或参考点。所述抗torch-IgM型抗体谱芯片用包被缓冲液稀释TORCH检测相关的病原微生物的抗原、质控点蛋白和/或参考点蛋白，通过点样仪以点阵列形式包被于芯片基质上，进一步采用封闭稳定剂封闭。相较于传统的酶联免疫、胶体金检测以及现有的基因芯片技术，本发明不仅能同时定量检测TORCH多种相关病原微生物的感染，而且通过优化芯片的包被液和包被条件、封闭稳定剂，使抗torch-IgM型抗体谱芯片稳定性更好(2-8℃冷藏2年，室温可储存8个月)，使用周期更长。本发明所述TORCH检测的试剂盒，包括所述的抗torch-IgM型抗体谱芯片以及酶标记物、酶标稀释稳定剂、样品稀释液、洗涤液、显色液中的至少一种。该试剂盒不仅能有效降低相关抗原的使用量，减少抗原成本，同时优化了试剂盒，使其稳定期更长，2-8℃可放置两年，室温可放置8个月，试剂盒的整体性能更好，使用周期更长，也能进一步降低运输成本，提高储存、运输的方便性。本发明所述TORCH检测方法能同时定量检测TORCH多种相关病原微生物的感染，灵敏度高，特异性好，为优生优育提供了一种新的高效、快捷的检测手段。
具体实施方式
本发明公开了一种抗torch-IgM型抗体谱芯片及其制备方法与 TORCH检测的试剂盒。本领域技术人员可以借鉴本文内容，适当改进工艺参数实现。特别需要指出的是，所有类似的替换和改动对本领域技术人员来说是显而易见的，它们都被视为包括在本发明。本发明的方法及产品已经通过较佳实施例进行了描述，相关人员明显能在不脱离本发明内容、精神和范围内对本文所述的方法进行改动或适当变更与组合，来实现和应用本发明技术。
为了进一步理解本发明，下面将结合本发明实施例，对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。
如无特殊说明，本发明实施例中所涉及的试剂均为市售产品，均可以通过商业渠道购买获得。其中，BSA的含量为质量体积比，按g/ml计，如5％BSA为100ml PBS中含5gBSA；吐温-20的含量为体积比，如0.05％吐温-20为1ml PBS含0.5μl吐温-20；PEG4000的含量质量体积比，按g/ml计，如0.5％PEG为100ml缓冲液中含0.5g PEG4000；海藻糖为质量体积比，按g/ml计，如5％海藻糖为100ml缓冲液中含5g海藻糖；Captisol为质量体积比，按g/ml计，如0.02％的Captisol为100ml缓冲液中含0.02gCaptisol；Proclin300为质量体积比，按g/ml计，如0.05％的Proclin300为100ml缓冲液中含0.05g Proclin300。此外，PVA、甜菜碱、NaN3、对羟基苯甲酸钠、阿拉伯树胶、酪蛋白为质量体积比，按g/ml计。
实施例1、抗torch-IgM型抗体谱芯片试剂盒的制备
1、抗原的包被：
1)芯片的阵列设计以及抗原及参考点的具体分布如下(不仅限于如下的安排设计)：
Figure PCTCN2018092768-appb-000001
Figure PCTCN2018092768-appb-000002
2)、具体的包被过程：
先按下所述稀释抗原和相关参考点蛋白：
阵列中的PC、NC、S1、S2、S3、S4、S5、EC点分别包被的是2μg/ml、0.01μg/ml、0.5μg/ml、1μg/ml、2.5μg/ml、5μg/ml、10μg/ml、2.5μg/ml的人IgM，稀释缓冲液为pH9.6的CB缓冲液(其中含0.5％的PEG4000、5％的海藻糖，0.02％的Captisol，0.05％的Proclin300，以及15％的甘油)。
SC点包被的是2μg/ml的羊抗Ig M抗体，稀释缓冲液为pH9.6的CB缓冲液。
Loc点包被的是2μg/ml的人IgM，稀释缓冲液是pH9.6的CB缓冲液。
包被抗原的稀释：Tox提纯抗原50μg/ml，HSV-I重组抗原20μg/ml，HSV-II重组抗原20μg/ml，RV重组抗原15μg/ml，CMV重组抗原10μg/ml，HBV抗原8μg/ml，TP重组抗原40μg/ml，B19重组抗原25μg/ml，CV重组抗原30μg/ml，CT重组抗原25μg/ml。
将稀释好的抗原分别用0.22μm的滤膜过滤，然后用BioDot精密点样仪进行阵列的包被。全部阵列完成点样之后，将芯片置于2-8℃，包被16-24h。
2、封闭:
取出包被的芯片，用pH7.4的PBST洗涤液清洗3次，然后每孔加入150μl的封闭稳定剂(1％甘露醇、2％的PVA40000、1％NH2-PEG、0.05％NaN3防腐剂pH7.4的磷酸氢二钠溶液)，室温封闭1h，然后拍干，于湿度15％以下，室温放置，干燥4h后密封，2-8℃保存。
3、制备酶标试剂
用酶标稀释稳定剂(100mM的Tris，其中含50mM的柠檬酸、3％的牛血清γ球蛋白、2％的PEG10000、0.05％的阿拉伯树胶1％的甜菜碱、以及0.05％的Proclin300)将辣根过氧化物酶标记的兔抗人IgM抗体稀释至6000倍。
4、试剂盒的反应体系的建立
取出芯片试剂，平衡至室温；
加样：将阴性和阳性对照血清以及用样品稀释液(0.02M Tris，0.15M NaCl，0.05％Tween20，0.01％酪蛋白，pH7.4)稀释了101倍的待测样品，每孔100μl加入待测芯片孔中反应。
温育：室温反应30min。加300μl洗涤液(0.02M Tris，0.15M NaCl，0.05％Tween20，pH7.4)，洗涤3次，每次1min。
加酶标二抗(酶标记物)：每孔加入50μl酶标抗体。
温育：室温反应30min。加300μl洗涤液，洗涤3次，每次1min。
显色：每孔加入TMB显色剂50μl，室温避光反应30min。
测定：30min内，用检测仪读取并计算每个反应孔对应抗体的信号值。
实施例2、抗torch-IgM型抗体谱芯片试剂盒准确性评价
1、用Diasorin公司ELISA试剂盒筛选的10例确定抗弓形虫IgM阳性血清和10例抗弓形虫IgM阴性血清，用实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片进行测试，结果如下表1(+表示阳性，-表示阴性)。
表1实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片测试抗弓形虫IgM血清结果
Figure PCTCN2018092768-appb-000003
2、用Diasorin公司ELISA试剂盒筛选的10例确定抗风疹病毒IgM阳性血清和10例抗风疹病毒IgM阴性血清，用实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片测试，结果如下表2(+表示阳性，-表示阴性)。
表2实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片测试抗风疹病毒IgM血清结果
Figure PCTCN2018092768-appb-000004
3、用Diasorin公司ELISA试剂盒筛选的10例确定抗巨细胞病毒IgM阳性血清和10例抗巨细胞病毒IgM阴性血清，实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片进行测试，结果如下表3(+表示阳性，-表示阴性)。
表3实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片测试抗巨细胞病毒IgM血清结果
Figure PCTCN2018092768-appb-000005
4、用Diasorin公司ELISA试剂盒筛选的10例确定抗单纯疱疹病毒-I IgM阳性血清和10例单纯疱疹病毒-I IgM阴性血清，用实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片测试，结果如下表4(+表示阳性，-表示阴性)。
表4实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片测试抗单纯疱疹病毒-I IgM血清结果
Figure PCTCN2018092768-appb-000006
5、用Diasorin公司ELISA试剂盒筛选的10例确定抗单纯疱疹病毒-II IgM阳性血清和10例抗单纯疱疹病毒-II IgM阴性血清，实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片进行测试，结果如下表5(+表示阳性，-表示阴性)。
表5实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片测试抗单纯疱疹病毒-II IgM血清结果
Figure PCTCN2018092768-appb-000007
6、用EUROIMMUN公司ELISA试剂盒筛选的10例确定感染感染抗细小病毒B1IgM阳性血清和10例抗细小病毒B1IgM阴性血清，用实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片进行测试，结果如下表6(+表示阳性，-表示阴性)。
表6实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片测试抗细小病毒B1IgM血清结果
Figure PCTCN2018092768-appb-000008
7、用EUROIMMUN公司ELISA试剂盒筛选的10例确定抗柯萨奇病毒IgM阳性血清和10例抗柯萨奇病毒IgM阴性血清，用实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片进行测试，结果如下表7(+表示阳性，-表示阴性)。
表7实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片测试抗柯萨奇病毒IgM血清结果
Figure PCTCN2018092768-appb-000009
8、用EUROIMMUN公司ELISA试剂盒筛选的10例确定抗梅毒螺旋体(TP)IgM阳性血清和10例抗梅毒螺旋体(TP)IgM阴性血清，用实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片进行测试，结果如下表8(+表示阳性，-表示阴性)。
表8实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片测试抗梅毒螺旋体IgM血清结果
Figure PCTCN2018092768-appb-000010
9、用Diasorin公司ELISA试剂盒筛选的10例确定抗乙肝病毒(HBV)核心抗体IgM阳性血清和10例抗乙肝病毒核心抗体IgM阴性血清，用实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片进行测试，结果如下表9(+表示阳性，-表示阴性)。
表9实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片测试抗乙肝病毒核心抗体IgM血清结果
Figure PCTCN2018092768-appb-000011
10、用IBL公司ELISA试剂盒筛选的10例确定抗沙眼衣原体(CT)IgM阳性血清和10例抗沙眼衣原体(CT)IgM阴性血清，用实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片进行测试，结果如下表10(+表示阳性，-表示阴性)。
表10实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片测试抗沙眼衣原体IgM血清结果
Figure PCTCN2018092768-appb-000012
综上所述，本发明制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片测试各项抗病原体IgM的准确性符合要求，准确性高。
实施例3、抗torch-IgM型抗体谱芯片试剂盒特异性评价
比较本发明所述抗torch-IgM型抗体谱芯片试剂盒与传统ELISA试剂盒特异。以弓形虫项目为例，选取20例抗弓形虫IgM抗体临床阴性血清，用实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片与Diasorin 公司ELISA试剂盒同时进行测试，测试数据如下表11(“+”表示阳性，“±”表是弱阳“-”表示阴性)。
表11实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片特异性比较结果
Figure PCTCN2018092768-appb-000013
结果显示，实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片测试20例阴性血清没有出现假阳，而市场上的Diasorin公司ELISA试剂盒测试20例阴性血清出现2例假阳。表明本发明所述抗torch-IgM型抗体谱芯片特异性较Diasorin公司ELISA试剂盒更好。
实施例4、抗torch-IgM型抗体谱芯片试剂盒的稳定性评价
将实施例1制备抗torch-IgM型抗体谱芯片试剂盒分别放置在2-8℃0个月后、6个月后、12个月后、18个月后、24个月，放置在18-28℃0个月后、2个月后、4个月后、6个月后、8个月后用抗相应抗原IgM质控血清分别测试信号值数据，结果如表12和13。
表12实施例1制备抗torch-IgM型抗体谱芯片试剂盒2-8℃稳定性评价结果
Figure PCTCN2018092768-appb-000014
表13实施例1制备抗torch-IgM型抗体谱芯片试剂盒18-28℃稳定性评价结果
Figure PCTCN2018092768-appb-000015
结果显示，本发明所述抗torch-IgM型抗体谱芯片试剂盒在2-8℃稳定期为两年，在18-28℃稳定期为一年。
实施例5、抗torch-IgM型抗体谱芯片试剂盒中封闭稳定剂和酶标稀释液对稳定性的影响
采用本发明实施例1制备的抗torch-IgM型抗体谱芯片试剂盒中与采用一般封闭液(pH＝7.4 0.01M PBS含5％BSA)、酶标稀释液(pH＝7.4 0.01M PBS含0.05％吐温-20、1％BSA)组成的抗torch-IgM型抗体谱芯片对比试剂盒(试剂盒其他方法步骤同实施例1)，分别放置在2-8℃6个月后、12个月后、18个月后、24个月，放置在18-28℃、2个月后、4个月后、6个月后、8个月后用抗相应抗原IgM质控血清分别测试信号值数据，结果如表14和15。
表14 2-8℃封闭稳定剂、酶标稀释稳定剂稳定性评价结果
Figure PCTCN2018092768-appb-000016
Figure PCTCN2018092768-appb-000017
表15 18-28℃封闭稳定剂、酶标稀释稳定剂稳定性评价结果
Figure PCTCN2018092768-appb-000018
Figure PCTCN2018092768-appb-000019
结果显示，使用一般封闭液和酶标稀释液制备抗torch-IgM型抗体谱芯片检测试剂盒2-8℃放置12个月后或18-28℃放置2个月后使用相应的质控血清测试信号强度明显下降，而本发明的抗torch-IgM型抗体谱芯片试剂盒放置2-8℃放置12个月或18-28℃放置2个月后用相应的质控血清测试还显示很好的性能。表明本发明的抗torch-IgM型抗体谱芯片检测试剂盒中的封闭稳定剂、酶标稀释稳定剂比一般封闭液和酶标稀释液好，能很大程度提高产品的稳定性。
实施例6、抗torch-IgM型抗体谱芯片试剂盒与胶体金试剂盒所使用的抗原成本的比较
与申请号为201110220541的中国专利中公开的胶体金快速检测试纸比较抗原成本：
荧光免疫层析试剂盒所使用的抗原用量计算：
以弓形虫抗原包被为例：CN201110220541专利中提到弓形虫抗原包被浓度1.5mg/ml,按1μl/cm包被，每个试纸条宽0.4cm，因此平均每人份抗原的用量约为0.6μg。
本发明所述试剂盒所使用的抗原用量计算：
本发明使用的是BioDot精密点样仪进行抗原的包被，每个点的包被体积仅为10nL，因此包被每人份所用抗原的量为：弓形虫提纯抗原用量：50μg/ml×10nL×10-6＝0.005μg。
由此可知，本发明中弓形虫抗原的使用量明显要低于胶体金快速检测试纸2个数量级。其他抗原用量情况与此相似。综上所述，表明本发明所述抗torch-IgM型抗体谱芯片试剂盒能有效的减少相关抗原的使用量，在保证试剂盒的灵敏性和特异性的同时，降低相关的抗原使用成本。

Claims (13)

  1. 一种抗torch-IgM型抗体谱芯片，包被有TORCH检测相关的病原微生物的抗原的蛋白芯片。
  2. 根据权利要求1所述的芯片，所述TORCH检测相关的病原微生物为弓形虫(TOX)、巨细胞病毒(CMV)、风疹病毒(RV)、单纯疱疹病毒(HSV)、人类微小病毒B19、柯萨奇病毒，梅毒螺旋体、乙肝病毒(HBV)、衣原体中至少一种。
  3. 根据权利要求1或2所述的芯片，所述蛋白芯片还包含质控点和/或参考点；所述质控点包含至少一个阳性质控点(PC)、至少一个阴性质控点(NC)、至少一个样品质控点(SC)和/或至少一个酶标质控点(EC)；所述参考点包含不同浓度的参考曲线点(S1-S5)和/或至少一个芯片位置参考点(Loc)。
  4. 根据权利要求3所述的芯片，所述阳性质控点包被人IgM或包被BSA-DNP偶联物；所述阴性质控点包被低于反应信号值的微量浓度的人IgM或其他的与TORCH检测病原微生物无关的蛋白；所述样品质控点为包被抗人IgM；所述酶标质控点包被人IgM或抗兔的抗体；所述参考曲线点包被不同浓度的人IgM；所述芯片位置参考点包被已知浓度的人IgM溶液。
  5. 权利要求1-4任意一项所述的芯片的制备方法，用包被缓冲液稀释TORCH检测相关的病原微生物的抗原、质控点蛋白和/或参考点蛋白，通过点样仪以点阵列形式包被于芯片基质上。
  6. 根据权利要求5所述的制备方法，所述包被缓冲液为含PEG、水溶性环糊精、海藻糖、防腐剂和甘油的缓冲液；所述包被为2-8℃，静置包被16-24h；所述芯片基质为酶标反应板、玻璃片、化学膜、多孔硅胶。
  7. 根据权利要求6所述的制备方法，所述缓存液为pH9.6的CB缓冲液、pH8.5的Tris缓冲液或pH7.4-7.6的PBS缓冲液；所述PEG为PEG4000；所述PEG的含量为0.5％～1％；所述水溶性环糊精为 0.01％～0.02％Captisol、0.02％-0.04％的2-羟基-β-环糊精或羧甲基-β-环糊精；所述海藻糖的含量为5％～8％；所述防腐剂为Proclin300；所述防腐剂的含量为0.05％；所述甘油的含量为15％～20％。
  8. 根据权利要求5-7任意一项所述的制备方法，还包括用封闭稳定剂封闭的步骤。
  9. 根据权利要求8所述的制备方法，所述封闭稳定剂为含1％-4％甘露醇，2％-5％的PVP40000、1％-3％NH 2-PEG、0.05％NaN3的pH7.4的0.01M磷酸氢二钠溶液。
  10. 一种TORCH检测的试剂盒，包括权利要求1-4任意一项所述的抗torch-IgM型抗体谱芯片。
  11. 根据权利要求10所述的试剂盒，还包括酶标记物、酶标稀释稳定剂、样品稀释液、洗涤液、显色液中的至少一种。
  12. 根据权利要求11所述的试剂盒，所述酶标记物为辣根过氧化物酶标记的抗人IgM抗体；酶标稀释稳定剂为包含0.05M的柠檬酸、3％-5％的牛血清γ球蛋白、2％-4％的PEG10000、0.05％-0.2％的阿拉伯树胶1％-2％的甜菜碱、0.05％的Proclin3000的pH7.4的100mM的Tris溶液；样品稀释液为包含0.15M NaCl、0.05％Tween20、0.01％酪蛋白的pH7.4的0.02M Tris溶液；洗涤液为包含0.15M NaCl、0.05％Tween20的pH7.4的0.02M Tris溶液；所述显色液为沉降型TMB。
  13. 一种TORCH检测方法，待测样品用样品稀释液稀释后加入权利要求1-4任意一项所述的抗torch-IgM型抗体谱芯片上，加入酶标记物，加入显色液避光显色，荧光检测装置检测结果，计算待测样品中的抗torch-IgM型抗体信号值。
PCT/CN2018/092768 2018-03-07 2018-06-26 一种抗torch-IgM型抗体谱芯片及其制备方法与TORCH检测的试剂盒 WO2019169792A1 (zh)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201810188202.1A CN108398554B (zh) 2018-03-07 2018-03-07 一种抗torch-IgM型抗体谱芯片及其制备方法与TORCH检测的试剂盒
CN201810188202.1 2018-03-07

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2019169792A1 true WO2019169792A1 (zh) 2019-09-12

Family

ID=63092558

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/CN2018/092768 WO2019169792A1 (zh) 2018-03-07 2018-06-26 一种抗torch-IgM型抗体谱芯片及其制备方法与TORCH检测的试剂盒

Country Status (2)

Country Link
CN (1) CN108398554B (zh)
WO (1) WO2019169792A1 (zh)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN114585920A (zh) * 2019-12-30 2022-06-03 深圳迈瑞生物医疗电子股份有限公司 用于筛查torch感染的试剂盒、方法及免疫分析仪
CN111208298B (zh) * 2020-02-11 2023-10-27 山东康华生物医疗科技股份有限公司 一种2019新型冠状病毒抗体检测试剂盒及其制备方法
CN112213483A (zh) * 2020-09-18 2021-01-12 迪瑞医疗科技股份有限公司 一种检测单纯疱疹病毒1+2型IgM抗体的化学发光免疫分析试剂盒及其制备方法
CN112748242B (zh) * 2020-12-21 2023-07-21 珠海碳云智能科技有限公司 用于多肽芯片技术平台检测的二抗缓冲封闭液、包括其的试剂盒及其应用

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1330271A (zh) * 2001-07-12 2002-01-09 上海晶泰生物技术有限公司 用于产前诊断的蛋白质芯片及制造方法
CN1412557A (zh) * 2001-10-11 2003-04-23 南京集慧科技开发有限责任公司 ToRCH蛋白质芯片及其制备方法
CN1414389A (zh) * 2002-08-19 2003-04-30 上海华冠生物芯片有限公司 Hcv和torch蛋白芯片及其制备和应用方法
CN1595158A (zh) * 2003-09-12 2005-03-16 上海前沿生物技术有限公司 用于同时检测四种致畸胎疾病的试剂盒及其制备方法
CN103808928A (zh) * 2014-02-12 2014-05-21 严银芳 一种ToRCH-ELISA诊断试剂的制备方法

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2002502977A (ja) * 1998-02-04 2002-01-29 インビトロジェン コーポレイション マイクロアレイとその使用
CN101769926A (zh) * 2008-12-30 2010-07-07 上海裕隆生物科技有限公司 优生优育五项指标集成检测反应板及试剂盒
EP3028043A4 (en) * 2013-07-30 2017-04-19 Bio-rad Laboratories, Inc. Multiplex blocker beads for immunoassays
CN103616507B (zh) * 2013-12-11 2015-08-19 山东博科生物产业有限公司 无蛋白包被板封闭液
CN103642781B (zh) * 2013-12-12 2016-04-20 山东博科生物产业有限公司 一种辣根过氧化物酶保护剂
JP6582046B2 (ja) * 2015-05-29 2019-09-25 京セラ株式会社 検出方法、および検出装置
CN105606826B (zh) * 2016-02-05 2017-06-20 中国农业大学 一种酶联免疫检测禽鹦鹉热衣原体的试剂盒

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1330271A (zh) * 2001-07-12 2002-01-09 上海晶泰生物技术有限公司 用于产前诊断的蛋白质芯片及制造方法
CN1412557A (zh) * 2001-10-11 2003-04-23 南京集慧科技开发有限责任公司 ToRCH蛋白质芯片及其制备方法
CN1414389A (zh) * 2002-08-19 2003-04-30 上海华冠生物芯片有限公司 Hcv和torch蛋白芯片及其制备和应用方法
CN1595158A (zh) * 2003-09-12 2005-03-16 上海前沿生物技术有限公司 用于同时检测四种致畸胎疾病的试剂盒及其制备方法
CN103808928A (zh) * 2014-02-12 2014-05-21 严银芳 一种ToRCH-ELISA诊断试剂的制备方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN108398554B (zh) 2020-08-07
CN108398554A (zh) 2018-08-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
WO2019169792A1 (zh) 一种抗torch-IgM型抗体谱芯片及其制备方法与TORCH检测的试剂盒
WO2021232712A1 (zh) 新型冠状病毒igm/igg磁微粒化学发光免疫检测试剂盒
DK160108C (da) Fremgangsmåde og udstyr til direkte eller indirekte påvisning af reaktion mellem et specifikt bindingsmiddel og den tilsvarende acceptorsubstans
WO2019169796A1 (zh) 一种抗torch-IgG型抗体谱芯片及其制备方法与TORCH检测的试剂盒
CN111337673B (zh) 一种用于新型冠状病毒免疫检测的合成多肽组合物及应用
WO2019169793A1 (zh) 一种组合物、芯片及其制备方法和包含有该芯片的检测装置
JPH07120470A (ja) 不透明な可塑支持体の使用に基づいたリガンド検出用の視覚的イムノアッセイ
TW562927B (en) Agent for the diagnosis of C-type hepatitis virus infection
CN112585468A (zh) 用于寨卡病毒免疫测定的方法和试剂
US6472160B2 (en) Immunoassay device and immunoassay method using the same
JPH02194360A (ja) カルボキシル基含有重合体を含む免疫化学試験用剤
JP4975601B2 (ja) Ｈｃｖ抗体測定用試薬キット及びｈｃｖ抗体測定方法
JP2013527467A5 (zh)
US20080227111A1 (en) Reagent kit and method for measuring hcv antibody
CN108303543B (zh) 一种猪瘟e2蛋白抗体检测试剂盒及其检测方法
JPS60205367A (ja) 抗‐エプスタイン‐バールビールス抗体の酵素‐免疫螢光試験法
US6337180B1 (en) Peptide reagent enabling a primary Epstein-Barr virus infection to be detected by testing for the corresponding antibodies, and method for using this reagent
US20070026386A1 (en) Method for the detection of newly acquired hiv infection
JPH1123573A (ja) 免疫学的測定方法
CN108303531B (zh) 一种o型口蹄疫抗体检测试剂盒及其检测方法
US20010055757A1 (en) Specificity in the detection of anti-rubella IgM antibodies
CN112129933A (zh) 一种免疫分析系统中抗生物素干扰的试剂、试剂盒及方法
RU2545792C2 (ru) Способ одновременного детектирования антител класса g к антигенам возбудителей torch-инфекций с использованием иммуночипа
JP4975600B2 (ja) Ｈｃｖ抗体測定用試薬キット及びｈｃｖ抗体測定方法
JPH09189698A (ja) 免疫学的測定方法

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 18909162

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

122 Ep: pct application non-entry in european phase

Ref document number: 18909162

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1