WO2018212288A1 - パーキンソン病の判定マーカーおよび判定方法 - Google Patents

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崇 朝原
康二 野本
正昭 平山
欽司 大野
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株式会社ヤクルト本社
国立大学法人名古屋大学
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    • G01N2800/2835—Movement disorders, e.g. Parkinson, Huntington, Tourette

Definitions

  • the present invention relates to a determination marker and a determination method for Parkinson's disease.
  • Parkinson's disease is known as a neurodegenerative disease that increases with aging, and is estimated to reach 10 million people worldwide by 2030.
  • ⁇ -synuclein-positive Lewy bodies were found in the digestive tract, olfactory tissue, and heart despite the absence of PD symptoms. These tissue lesions occurred before the onset, and gradually It has been suggested that PD pathology also progresses in the center.
  • Non-patent Document 1 it was revealed that ⁇ -synuclein appears in the intestines of PD patients 20 years before the onset (Non-patent Document 1).
  • olfactory examination Non-Patent Document 2
  • MIBG myocardial scintigraphy Non-Patent Document 3
  • Constipation is a symptom observed before the onset of PD
  • Honolulu cohort studies have revealed that constipation occurs on average more than 10 years before the onset of PD (Non-patent Document 4).
  • the present inventors have examined whether changes in the flora over time in the same patient are involved in the change in the pathology. Intestinal microbiota and blood components were measured and a 2-year prospective study was conducted on patients and their cohabitants. As a result, the inventors have found that the degree of deterioration of PD pathology can be determined by measuring the increase or decrease of intestinal bacteria in the body of PD patients, and that the present invention has been completed. It has also been found that the deterioration of PD pathology can be determined using blood lipopolysaccharide (LPS) concentration and blood lipopolysaccharide-binding protein (LBP) concentration as indicators.
  • LPS blood lipopolysaccharide
  • LBP blood lipopolysaccharide-binding protein
  • the present invention relates to the following [1] to [14].
  • a Parkin's disease consisting of one or more enteric bacteria and / or a total number of enteric bacteria selected from the group consisting of Bifidobacterium, Bacteroides fragilis group, Lactobacillus brevis, and Lactobacillus plantarum subgroup.
  • the marker according to [2] wherein the worsening of Parkinson's disease is a worsening of constipation symptoms or psychiatric symptoms.
  • the risk of PD deterioration can be reduced. Can be determined. Moreover, the deterioration of PD can be determined by comparing the LPS concentration and LBP concentration in blood.
  • the correlation between serum LBP concentration and excretion frequency is shown (A: PD group, B: control group).
  • A: PD group, B: control group The correlation between the change in the UPDRS Part 1 score (change at the time point two years after the start of observation) and the number of bacteria at the start of observation of Bacteroides fragilis group (A) and Bifidobacterium (B) is shown.
  • the correlation between the change in serum LBP concentration (change after 2 years from the start of observation) and the number of bacteria at the start of observation of Lactobacillus plantarum subgroup (A) or Lactobacillus brevis (B) is shown.
  • (C) shows Lactobacillus plantarum subgroup
  • (D) shows the respective correlations obtained by excluding samples with the number of bacteria less than the detection limit of Lactobacillus brevis.
  • the correlation between the change in serum LBP concentration (change at the time point 2 years after the start of observation) and the number of bacteria at the start of observation of Lactobacillus gasseri subgroup is shown.
  • the correlation between the amount of change in LED (equivalent amount of L-dopa) and the amount of change in the total number of enterobacteria in Bifidobacterium (A) and whole feces (B) is shown.
  • the PD determination marker of the present invention is Bifidobacterium, Bacteroides fragilis group, Lactobacillus brevis and Lactobacillus plantarum subgroup, or a total number of enterobacteria and / or a number of enteric bacteria.
  • the total number of enteric bacteria includes, for example, the total number of bacteria measured by the DAPI count method, but is not limited thereto, and is the sum of a plurality of dominant bacteria in the intestine, The number of bacteria corresponding to about 70% or more of the total number of bacteria measured by the counting method may be used.
  • the total number of bacteria of 19 types of bacterial groups shown in Examples (Table 1) described later is Can be mentioned.
  • the number of enteric bacteria in the feces of PD patients there was a significant correlation between the number of enteric bacteria in the feces of PD patients and the worsening of the pathology of PD.
  • the number of Bifidobacterium, Bacteroides fragilis group, Lactobacillus brevis and Lactobacillus plantarum subgroup is preferably at least 1, and / or the total number of enteric bacteria is small. It can be determined that the risk of PD deterioration is increasing.
  • the worsening of PD or the worsening of the medical condition of the PD patient means that the medical condition is actually progressing and becoming severe, and the worsening risk of the PD or the worsening of the pathological condition of the PD patient is the pathological condition that has actually appeared. In comparison, it refers to the possibility that the pathology of PD will worsen in the future.
  • the number of enteric bacteria in a sample is measured, and an equation of an approximate straight line (for example, an example described later (FIG. (2), FIG. 3, FIG. 5, FIG.
  • the specimen include biological samples derived from a subject, for example, digestive tract contents such as intestinal fluid and stool, but it is preferable to use stool as a specimen because it is non-invasive.
  • the blood LBP concentration and constipation which is a typical symptom of PD. That is, in the group in which the frequency of defecation is low (which is a constipation symptom) and the condition of PD is exacerbated, the LBP concentration is low, and the frequency of defecation is high (instead of the constipation symptom) It is assumed that the LBP concentration is high. In PD patients, the LBP concentration and the LPS concentration are inversely correlated. Therefore, it is presumed that the LPS concentration is high in the group in which the PD pathology is aggravated and the LPS concentration is low in the group in which the PD pathology is light. Therefore, the deterioration of PD can be determined by examining changes in blood LPS and / or blood LBP concentration.
  • At least two different time points of the patient are selected from the group consisting of Bifidobacterium, Bacteroides fragilis group, Lactobacillus brevis and Lactobacillus plantarum subgroup. This can be done by measuring the number of enterobacteria and / or the total number of enterobacteria and comparing the measured number of bacteria.
  • two or more time points means that the above-mentioned enteric bacteria are measured at a certain time point and then measured at one or more time points after a certain interval.
  • the interval may depend on the patient's physical condition and pathology, and is not particularly limited, but may be any period of 1 week to 5 years, for example, 1 week, 2 weeks, 3 weeks, 4 weeks, 1 month For example, 2 months, 3 months, 6 months, 9 months, 1 year, 2 years, 3 years, 4 years, 5 years, etc. are suitably selected.
  • the PD When determining the number of enteric bacteria at two or more different time points of the same PD patient, the PD is serious if the number of enteric bacteria tends to decrease. On the contrary, if the number of intestinal bacteria tends to increase, it can be determined that PD is mild. Specifically, when the number of one or more bacteria selected from the group consisting of Bifidobacterium, Bacteroides fragilis group, Lactobacillus brevis and Lactobacillus plantarum subgroup and / or the total number of enterobacteria is reduced, PD If the number increases, it can be determined that the condition has become milder.
  • the number of intestinal bacteria in the sample is measured, and the number of intestinal bacteria (vertical axis) and the deterioration of disease state
  • the horizontal axis can be determined by comparing the magnitudes on the basis of the value (Q) on the vertical axis at time 0.
  • the risk of PD deterioration is high or the PD symptoms deteriorate when one or more of the following criteria is satisfied from the approximate straight line equation shown in the examples (FIGS. 2, 3, 5, 6, etc.) described later. It can be determined that there is a high possibility that These criteria can also be used in combination.
  • the number of Bifidobacterium at an arbitrary time point is less than P 1 cells per gram of specimen (P 1 : the horizontal axis in FIG. 2B is the value on the vertical axis at time 0)
  • the number of bacteria of Bacteroides fragilis group at an arbitrary time point is less than P 2 cells per 1 g of sample (P 2 : the value on the vertical axis when the horizontal axis in FIG. 2A is 0 time point)
  • the number of bacteria of Lactobacillus brevis at an arbitrary time point is less than P 3 cells per 1 g of the specimen (P 3 : the value on the vertical axis when the horizontal axis in FIG.
  • the number of bacteria of Lactobacillus plantarum subgroup at an arbitrary time point is less than P 4 cells per gram of specimen (P 4 : the vertical axis in FIG. 3A or C is the value on the vertical axis at time 0) (5) The amount of change in the total number of enteric bacteria per gram of the sample at 2 or more time points is less than Q 1 cells (Q 1 : the horizontal axis in FIG. 5B is the value of the vertical axis at time 0) (6) The amount of change in the number of Bifidobacterium per gram of the sample at 2 or more time points is less than Q 2 cells (Q 2 : the horizontal axis in FIG. 5A is the value on the vertical axis at time 0)
  • the blood LPS concentration and / or the blood LBP concentration are measured at two or more different time points of the same PD patient, and the PD of the patient is compared by comparing the measured concentrations (LPS concentrations and LBP concentrations). It can be determined whether the condition is getting worse. Two or more time points have the same meaning as described above.
  • the blood concentration of LPS and / or LBP is preferably a serum concentration.
  • PD if the LPS concentration and / or LBP concentration is measured at two or more different time points of the same PD patient, it is determined that PD is severe if LPS tends to increase. On the contrary, if there is a tendency to decrease, it can be determined that PD is mild. Further, if LBP tends to decrease, it can be determined that PD is severe, and conversely if PD tends to increase, it can be determined that PD is mild.
  • the measurement of enteric bacteria in a sample includes measurement (quantification) of the number of enteric bacteria.
  • Means for measuring the number of intestinal bacteria in a specimen include, for example, a method of culturing intestinal bacteria in an appropriate medium and measuring the number of bacteria, a method of culturing intestinal bacteria in a selective liquid medium and measuring turbidity and absorbance , FISH method, quantitative RT-PCR method (RT-qPCR method), etc., among which the RT-qPCR method is preferable.
  • the analysis method using the RT-PCR method includes, for example, (1) a step of extracting RNA of a target bacterium in a specimen, and (2) reverse transcription using a nucleic acid fragment (primer) that hybridizes to the extracted RNA ( RT) can be performed by a step of synthesizing cDNA by a reaction and subsequently performing PCR using the cDNA as a template, and a step of detecting the DNA fragment amplified in step (3) (2).
  • a DNA fragment (PCR product) specific to the target enteric bacterium can be obtained by combining the nucleic acid fragment with the template cDNA derived from the specimen and performing an amplification reaction.
  • Observation of the amplified PCR product over time can be performed by labeling the PCR product with an intercalating fluorescent dye such as SYBR (R) Green I and measuring the fluorescence intensity at each PCR stage.
  • Intercalating dyes have the property of increasing fluorescence intensity by intercalating into double-stranded nucleic acids, so that PCR products generated by PCR reaction from the cDNA of target bacteria can be accurately measured, especially SYBR (R) Green I is preferably used.
  • a TaqMan probe or a molecular beacon labeled with a fluorescent dye can be used.
  • the TaqMan probe and Molecular Beacon are probes in which a fluorescent dye and a quencher are bound to an oligonucleotide having homology with the internal sequence of the region amplified by PCR, and are used in the PCR reaction together.
  • the PCR product amplified over time can be observed by measuring the fluorescence intensity at each PCR stage. it can.
  • Intestinal bacterial quantitation of interest in a subject can be determined by a calibration curve of the number of bacteria logarithm and C T value measured by DAPI counting method and the culture method. That is, the logarithm of the number of bacteria to target the horizontal axis, and the C T value in advance to create the plotted calibration curve on the vertical axis, to apply the C T values obtained as a result of the PCR reactions calibration curve, Quantify the desired intestinal bacteria in the sample.
  • kits including a protocol for measuring the intestinal bacteria in a sample contains the measurement reagent and protocol for the marker of the present invention (for example, the method for measuring enterobacteria, the method for determining PD, particularly the criteria for determining the severity, the factors affecting the measurement results, and the effects thereof) Is included).
  • the determination can be performed using the reference as in the determination method.
  • the measuring reagent for the marker include the aforementioned intestinal bacterial count measuring reagent, mRNA detecting reagent, and DNA detecting reagent.
  • the number of bacteria in the body depends on the living environment and diet of each patient.
  • the progress of PD can be determined by comparing the number of bacterial cells in the same patient sample measured in time series.
  • Bacterial strains used The strains shown in Table 1, which were stored at Yakult Honsha Central Research Laboratory, were used. The initial bacterial count of each strain was adjusted to be about 1 ⁇ 10 4 cells.
  • the culture conditions for each strain are shown in Table 1.
  • the details of the culture conditions A and B are as follows.
  • Condition A Static culture was performed for 24 to 72 hours under anaerobic conditions at 37 ° C. in GAM broth supplemented with 1% glucose.
  • Condition B Static culture was performed in MRS broth at 37 ° C. under anaerobic conditions for 24 to 72 hours.
  • Condition C Static culture was performed in BHI broth at 37 ° C. under aerobic conditions for 18 hours. After measuring the number of cells by the DAPI method, these cells were appropriately diluted so as to have a certain number of cells to prepare a bacterial solution.
  • Table 2 shows the primers used for the measurement of the number of enteric bacteria. In addition, Table 2 also shows documents describing each primer.
  • Reference example 2 Preparation of calibration curve to be used in RT-PCR A calibration curve to be used for quantifying the target intestinal bacteria in the sample was prepared. Specifically, a calibration curve was prepared by plotting the number of intestinal bacteria measured by the DAPI count method on the horizontal axis and the CT value on the vertical axis according to the following procedure. 1) 400 ⁇ L of RNAlater (Ambion) was added to 200 ⁇ L of the bacterial solution of each strain prepared with the strains used, and allowed to stand at room temperature for 5 minutes. Thereafter, the mixture was centrifuged at 13,000 g for 5 minutes, and the supernatant was removed by decantation.
  • RNAlater Ambion
  • lysis buffer prepared by mixing 346.5 ⁇ L RLT buffer, 100 ⁇ L TE and 3.5 ⁇ L ⁇ -mercaptomethanol
  • 0.1 mm diameter glass to the residue 300 mg of beads (TOMY Seiko) was added.
  • 500 ⁇ L of water-saturated phenol was added and vortexed for 5-10 seconds.
  • a sample tube was set in a heat block at 60 ° C. and reacted for 10 minutes (hot phenol method).
  • RT-qPCR was performed using QIAGEN OneStep RT-PCR Kit (QIAGEN), and the reaction solution composition was 1 ⁇ QIAGEN OneStep RT-PCR Buffer, 0.5 ⁇ Q-Solution, 0.4 mM dNTP Mix, 1 / 25 volumes of QIAGEN OneStep RT-PCR Enzyme Mix, 1 / 100,000 volumes of SYBR® Green I (Molecular Probes), 1 ⁇ ROX Reference Dye (Invitrogen), 0.60 ⁇ M of each primer shown in Table 2, And 5 ⁇ L of the reaction solution containing the RNA sample prepared in 13) above (total amount: 10 ⁇ L). 15) The reaction solution was first subjected to a reverse transcription reaction at 50 ° C.
  • amplification product was obtained by performing 45 cycles of 55 ° C. and SEQ ID NOs: 35 to 38 for 60 ° C.) ⁇ 20 seconds and 72 ° C. ⁇ 50 seconds.
  • the amount of amplification product was measured as the fluorescence intensity of SYBR (R) Green I every cycle, and a PCR curve was prepared.
  • the fluorescence intensity baseline and threshold were set, and the number of cycles (CT value) at which the PCR curve and threshold crossed was determined.
  • CT value was plotted on the vertical axis, and the number of sample bacteria used in the PCR reaction was plotted on the horizontal axis.
  • SDS Sequence Detection System
  • denaturation temperature was measured separately. The denaturation temperature was measured by reacting at 94 ° C. for 15 seconds after obtaining the amplification product, and then gradually increasing the temperature from 55 ° C. or from 60 ° C. to 99 ° C. at a rate of 0.2 ° C./second.
  • the fluorescence intensity of SYBR (R) Green I was plotted on the vertical axis to prepare a denaturation curve of the amplification product, and the temperature at which the fluorescence intensity rapidly decreased was measured. These series of reactions were carried out by the ABI PRISM® 7900HT system (Applied Biosystems). 16) The number of bacteria in each intestinal bacteria measured by DAPI method on the horizontal axis, is plotted on the vertical axis the C T values obtained by RT-qPCR corresponding thereto, a calibration curve was prepared.
  • Example 1 (1) Relationship between PD and gut microbiota The gut microbiota of PD patients was examined and the relationship between PD and gut microbiota was evaluated. 52 PD patients (21 males, 31 females, 68.9 ⁇ 6.8 years old) and 36 patient spouses (21 males, 15 females, 68.4 ⁇ 9.7 years old) were recruited as controls. Clinical symptoms of PD were evaluated using the Hoehn-Yahr (HY) severity classification, Unified Parkinson's Disease Rating Scale (UPDRS) Part 1 to Part 4. Of the recruited PD patients, 42 have been followed for 2 years. In addition, a total of 36 patients were examined except for 6 patients who were found to have another disease during follow-up.
  • HY Hoehn-Yahr
  • UPDRS Unified Parkinson's Disease Rating Scale
  • LPS Biochemical test Serum lipopolysaccharide
  • DAO diamine oxidase
  • RNAlater (Ambion) was added to 4 mg of feces collected from patients and controls for 5 minutes Allowed to stand at room temperature. Thereafter, the mixture was centrifuged at 14,000 g for 10 minutes, the supernatant was removed by decantation, and the residue was used as a sample for RNA extraction.
  • B Nucleic acid extraction RNA extraction operation was performed according to the following procedure.
  • RNA extraction sample prepared in (a) was mixed with 450 ⁇ L of lysis buffer (prepared by mixing 346.5 ⁇ L of RLT buffer, 100 ⁇ L of TE and 3.5 ⁇ L of ⁇ -mercaptoethanol) and a diameter of 0.001. 300 mg of 1 mm glass beads were added. 2)
  • the nucleic acid extraction operation was performed in the same manner as described in 2) to 12) of Reference Example 2.
  • C Measurement of the number of bacteria The number of bacteria was measured using the RT-qPCR method for the RNA sample obtained in (b). RT-qPCR was performed in the same manner as described in 14) to 15) of Reference Example 2.
  • Patient information Table 3 shows each parameter score information when divided into healthy subjects and PD patients.
  • FIG. 1 shows the correlation between serum LBP concentration and excretion frequency (A: PD group, B: control group).
  • A PD group
  • B control group
  • FIG. 3 shows changes in serum LBP concentration (change in time point 2 years after the start of observation), and observation of Lactobacillus brevis and Lactobacillus plantarum subgroup.
  • the result of having investigated the correlation with the number of bacteria at the start (0 years) is shown.
  • the change in serum LBP concentration was significantly positively correlated with the number of bacteria at the start of observation of Lactobacillus plantarum subgroup and Lactobacillus brevis (0 year) (FIGS. 3A and 3B).
  • a strong correlation was observed in the group (FIG. 3C, FIG. 3D) excluding samples below the detection limit of Lactobacillus plantarum subgroup and Lactobacillus brevis.
  • FIG. 4 shows the results of examining the correlation between the change in serum LBP concentration (change at the time point 2 years after the start of observation) and the number of bacteria at the start of observation of Lactobacillus gasseri subgroup (0 year).
  • intestinal bacterium of the present invention there was no significant correlation between changes in serum LBP concentration and Lactobacillus gasseri subgroup.
  • As a result of analysis of various intestinal bacteria by the present inventors there was no significant correlation with the deterioration (particularly the deterioration risk) of Parkinson's disease for other enteric bacteria (15 types) including Lactobacillus gasseri subgroup. From these facts, it was confirmed that these intestinal bacteria cannot be used as the determination marker of the present invention.
  • the number (change amount) of Bifidobacterium can be used as a marker for determining the risk of PD deterioration.
  • enteric bacteria can be used to determine the progression of PD pathology.

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Abstract

パーキンソン病患者の病状の進行を簡便に診断する方法。Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ、Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ　ｆｒａｇｉｌｉｓ　ｇｒｏｕｐ、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓおよびＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐからなる群より選ばれる１以上の腸内細菌および／または腸内細菌の総菌数をマーカーとするパーキンソン病の判定方法を提供する。また、パーキンソン病患者において、血中ＬＰＳ濃度および／または血中ＬＢＰ濃度を指標とするパーキンソン病の判定方法に関する。

Description

パーキンソン病の判定マーカーおよび判定方法
　本発明はパーキンソン病の判定マーカーおよび判定方法に関する。
　パーキンソン病（Ｐａｒｋｉｎｓｏｎ’ｓ ｄｉｓｅａｓｅ：ＰＤ）は、加齢に伴い増加する神経変性疾患として知られ、２０３０年までに世界で１０００万人に到達すると推定されている。健常者を対象にした研究でも、ＰＤ症状がないにもかかわらず消化管、嗅覚組織、心臓でα－シヌクレイン陽性のレビー小体が発見されており、発症前にこれらの組織病変が生じ、次第に中枢にもＰＤ病態が進行することが示唆されている。
　同様に、ＰＤ患者の腸内では発症の２０年前からα－シヌクレインが出現することが明らかになった（非特許文献１）。これらの発見に加えて、嗅覚検査（非特許文献２）、ＭＩＢＧ心筋シンチグラフィ（非特許文献３）が早期ＰＤの判別に有用であるとされ、末梢臓器での病変の存在が示唆されている。便秘はＰＤの発症前から見られる症状であり、ホノルルのコホート研究では便秘は平均してＰＤ発症の１０年以上前から起こっていることが明らかになっている（非特許文献４）。
Hawkes CH, et al. Parkinsonism Relat Disord 2010;16(2):79-84. Katzenschlager R, et al. Curr Opin Neurol 2004;17(4):417-423. Hirayama M, et al. J Auton Nerv Syst 1995;53(2-3):230-234. Abbott RD, et al. Neurology 2001;57(3):456-462.
　同一のＰＤ患者での腸内における菌叢の経時的な変化についての知見はない。簡便に、ＰＤの病態の進行を判別する方法が求められている。
　前記の課題に鑑み、本発明者らは、ＰＤの病態変化と腸内細菌の関係を明らかにするため、同一患者での菌叢の経時的変化が病状変化に関与するかを検討し、ＰＤ患者およびその同居者を対象に腸内細菌叢と血中成分の測定および２年間の前向き研究を行った。その結果、ＰＤ患者の体内における腸内細菌の増減を測定することにより、ＰＤ病状の悪化の程度が判定できること、腸内細菌がＰＤの検出マーカーとなりうることを見出し、本発明を完成した。また、血中リポポリサッカライド（ＬＰＳ）濃度や血中リポポリサッカライド－結合タンパク（ＬＢＰ）濃度を指標としてＰＤ病状の悪化の判定を行うことができることも見出した。
　すなわち、本発明は以下の［１］～［１４］にかかるものである。
［１］　Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ、Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ　ｆｒａｇｉｌｉｓ　ｇｒｏｕｐ、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓおよびＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐからなる群より選ばれる１以上の腸内細菌および／または腸内細菌の総菌数からなるパーキンソン病の判定マーカー。
［２］　パーキンソン病の判定が、パーキンソン病の悪化リスクの判定である前項［１］記載のマーカー。
［３］　パーキンソン病の悪化が、便秘症状または精神症状の悪化である前項［２］記載のマーカー。
［４］　精神症状が、幻覚、認知および意欲からなる群より選ばれる１以上である前項［３］記載のマーカー。
［５］　パーキンソン病患者の病状が悪化しているかを判定するため、異なる２以上の時点において該患者のＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ、Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ　ｆｒａｇｉｌｉｓ　ｇｒｏｕｐ、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓおよびＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐからなる群より選ばれる１以上の腸内細菌および／または腸内細菌の総菌数を測定し、それらを比較する方法。
［６］　パーキンソン病患者の病状の悪化が、便秘症状または精神症状の悪化である前項［５］記載の方法。
［７］　精神症状が、幻覚、認知および意欲からなる群より選ばれる１以上である前項［６］記載の方法。
［８］　血中ＬＰＳ濃度および／または血中ＬＢＰ濃度からなるパーキンソン病の判定マーカー。
［９］　パーキンソン病の判定が、パーキンソン病の悪化リスクの判定である前項［８］記載のマーカー。
［１０］　パーキンソン病の悪化が、便秘症状または精神症状の悪化である前項［９］記載のマーカー。
［１１］　精神症状が、幻覚、認知および意欲からなる群より選ばれる１以上である前項［１０］記載のマーカー。
［１２］　パーキンソン病患者の病状が悪化しているかを判定するため、異なる２以上の時点において該患者の血中ＬＰＳ濃度および／または血中ＬＢＰ濃度を測定し、それらを比較する方法。
［１３］　パーキンソン病患者の病状の悪化が、便秘症状または精神症状の悪化である前項［１２］記載の方法。
［１４］　精神症状が、幻覚、認知および意欲からなる群より選ばれる１以上である前項［１３］記載の方法。
［１５］　前項［１］～［４］のいずれか１項記載の腸内細菌を測定するためのプロトコールを含むことを特徴とする前項［５］～［７］のいずれか１項記載の方法を実施するためのキット。
　本発明によれば、特定の腸内細菌の菌数を測定すること、または異なる２以上の時点における特定の腸内細菌の菌数を測定し、それらを比較することにより、ＰＤの悪化リスクを判定することができる。また、血中のＬＰＳ濃度やＬＢＰ濃度を比較することによって、ＰＤの悪化を判定することができる。
血清中ＬＢＰ濃度と、排泄頻度との相関を示す（Ａ：ＰＤ群、Ｂ：対照群）。 ＵＰＤＲＳ第１部スコアの変化（観察開始時から２年後の時点の変化）と、Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ　ｆｒａｇｉｌｉｓ　ｇｒｏｕｐ（Ａ）およびＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ（Ｂ）の観察開始時における菌数との相関を示す。 血清中ＬＢＰ濃度の変化（観察開始時から２年後の時点の変化）と、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐ（Ａ）またはＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓ（Ｂ）の観察開始時における菌数との相関を示す。（Ｃ）はＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐ、（Ｄ）はＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓの検出限界未満の菌数のサンプルを除外して得たそれぞれの相関を示す。 血清中ＬＢＰ濃度の変化（観察開始時から２年後の時点の変化）と、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｇａｓｓｅｒｉ　ｓｕｂｇｒｏｕｐの観察開始時における菌数との相関を示す。 ＬＥＤ（Ｌ－ｄｏｐａの使用換算量）の変化量と、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ（Ａ）および全糞中の腸内細菌の総菌数（Ｂ）の変化量の相関を示す。 知的機能の障害スコア（ＵＰＤＲＳ１．１）の変化（観察開始時から２年後の時点の変化）とＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍの観察開始時における菌数との相関（Ａ）、思考の障害のスコア（ＵＰＤＲＳ１．２）の変化（観察開始時から２年後の時点の変化）とＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍの観察開始時における菌数との相関（Ｂ）、および意欲・自発性のスコア（ＵＰＤＲＳ１．４）の変化（観察開始時から２年後の時点の変化）とＢａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ　ｆｒａｇｉｌｉｓ　ｇｒｏｕｐの観察開始時における菌数との相関（Ｃ）を示す。
　本発明のＰＤの判定マーカーは、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ、Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ　ｆｒａｇｉｌｉｓ　ｇｒｏｕｐ、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓおよびＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐからなる群より選ばれる１以上の腸内細菌および／または腸内細菌の総菌数である。これらの腸内細菌がヒトの腸内に存在することは知られているが、これらの腸内細菌とＰＤの病状進行との関係は全く報告されていない。ここで、腸内細菌の総菌数としては、例えば、ＤＡＰＩカウント法により測定した総菌数が挙げられるが、これに限定されず、腸内の複数の優勢菌群の総和であって、ＤＡＰＩカウント法により測定した総菌数の約７０％以上の菌数に相当する菌数であってもよく、例えば、後記実施例（表１）に示す１９種の菌群の菌数の総和等が挙げられる。
　後記実施例に示すように、ＰＤ患者の糞便中の前記腸内細菌の菌数と、ＰＤの病状悪化との間には有意な相関が見られた。具体的には、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ、Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ　ｆｒａｇｉｌｉｓ　ｇｒｏｕｐ、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓおよびＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐの少なくとも１、好ましくは２以上の腸内細菌の菌数および／または腸内細菌の総菌数が少なくなっている場合には、ＰＤの悪化リスクが高まっていると判定することができる。
　ここで、ＰＤの悪化ないしＰＤ患者の病状の悪化とは、現に病状が進行し重症化していることをいい、ＰＤの悪化リスクないしＰＤ患者の病状の悪化リスクとは、現に現れている病状と比較して、将来的にＰＤの病状がさらに悪化する可能性をいう。
　ＰＤの悪化リスクを判定するには、検体中の前記腸内細菌数を測定し、当該腸内細菌数と病状の悪化との相関について予め作成した近似直線の方程式（例えば、後記実施例（図２、図３、図５、図６等）に示す近似直線の方程式）に当てはめて判定すればよい。検体としては、被験者由来の生体試料、例えば腸液、糞便等の消化管内容物が挙げられるが、非侵襲的であることから糞便を検体とすることが好ましい。
　また、血中ＬＢＰ濃度と、ＰＤの代表的な症状である便秘との間に、有意な相関関係も見られた。すなわち、排便頻度が低く（便秘症状であり）ＰＤの病状が悪化していると考えられる群ではＬＢＰ濃度が低くなり、排便頻度が高く（便秘症状ではなく）ＰＤの病状が軽いと考えられる群ではＬＢＰ濃度が高くなっていると推察される。ＰＤ患者においては、ＬＢＰ濃度とＬＰＳ濃度は逆相関するので、ＰＤの病状が悪化している群ではＬＰＳ濃度が高くなり、ＰＤの病状が軽い群ではＬＰＳ濃度が低くなると推察される。したがって、血中ＬＰＳおよび／または血中ＬＢＰ濃度の変化を調べることによってＰＤの悪化を判定することができる。
　具体的には、ＰＤ患者の病状が悪化しているかを判定するために、該患者の異なる２以上の時点においてＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ、Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ　ｆｒａｇｉｌｉｓ　ｇｒｏｕｐ、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓおよびＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐからなる群より選ばれる１以上の腸内細菌数および／または腸内細菌の総菌数を測定し、測定された細菌数を比較することによって行うことができる。
　２以上の時点とは、ある時点において上記腸内細菌を測定し、次いで一定の間隔を置いた後の１以上の時点において測定することをいう。間隔は患者の体調や病態などに左右されることもあり、特に限定されないが、１週間～５年間の任意の期間が挙げられ、例えば、１週間、２週間、３週間、４週間、１月間、２月間、３月間、６月間、９月間、１年間、２年間、３年間、４年間、５年間などが好適に選択される。
　ＰＤ患者の病状が悪化しているかの判定においては、同一のＰＤ患者の異なる２以上の時点において上記腸内細菌数を測定した際に、腸内細菌数が減少傾向にあればＰＤが重症になっていると判断することができ、逆に腸内細菌数が増加傾向にあればＰＤが軽症になっていると判断することができる。具体的には、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ、Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ　ｆｒａｇｉｌｉｓ　ｇｒｏｕｐ、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓおよびＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐからなる群より選択される１以上の菌数および／または腸内細菌の総菌数が減少した場合、ＰＤの病状が重症化していると判断することができ、逆に増加した場合、軽症化していると判断することができる。
　ＰＤの判定（ＰＤの悪化リスクの判定またはＰＤの症状が悪化しているかの判定）においては、検体中の前記腸内細菌数を測定し、当該腸内細菌数（縦軸）と病状の悪化（横軸）との相関について予め作成した近似直線の方程式において、横軸が０時点における縦軸の値（Ｐ）を基準として、大小を比べることで判定できる。また、同一のＰＤ患者の異なる２以上の時点において測定した上記腸内細菌数の変化量（縦軸）と病状の悪化（横軸）との相関について予め作成した近似直線の方程式において、横軸が０時点における縦軸の値（Ｑ）を基準として、大小を比べることで判定できる。例えば、後記実施例（図２、図３、図５、図６等）に示す近似直線の方程式から、以下の基準の１以上を満たす場合にＰＤの悪化リスクが高い、またはＰＤの症状が悪化している可能性が高いと判定できる。これらの基準は、組み合わせて使用することもできる。
　（１）任意の時点におけるＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍの菌数が検体１ｇあたりＰ１ｃｅｌｌｓ未満（Ｐ１：図２Ｂでの横軸が０時点における縦軸の値）
　（２）任意の時点におけるＢａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ　ｆｒａｇｉｌｉｓ　ｇｒｏｕｐの菌数が検体１ｇあたりＰ２ｃｅｌｌｓ未満（Ｐ２：図２Ａでの横軸が０時点における縦軸の値）
　（３）任意の時点におけるＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓの菌数が検体１ｇあたりＰ３ｃｅｌｌｓ未満（Ｐ３：図３ＢまたはＤでの横軸が０時点における縦軸の値）
　（４）任意の時点におけるＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐの菌数が検体１ｇあたりＰ４ｃｅｌｌｓ未満（Ｐ４：図３ＡまたはＣでの横軸が０時点における縦軸の値）
　（５）２以上の時点における検体１ｇあたりの腸内細菌の総菌数の変化量がＱ１ｃｅｌｌｓ未満（Ｑ１：図５Ｂでの横軸が０時点における縦軸の値）
　（６）２以上の時点における検体１ｇあたりのＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍの菌数の変化量がＱ２ｃｅｌｌｓ未満（Ｑ２：図５Ａでの横軸が０時点における縦軸の値）
　また、同一のＰＤ患者の異なる２以上の時点において血中ＬＰＳ濃度および／または血中ＬＢＰ濃度を測定し、測定された濃度（ＬＰＳ濃度同士、ＬＢＰ濃度同士）を比較することによって該患者のＰＤが悪化しているかを判定することができる。２以上の時点とは、前記と同じ意味を表す。ＬＰＳおよび／またはＬＢＰの血中濃度は、好ましくは血清中濃度である。
　ＰＤの重症度の判定においては、同一のＰＤ患者の異なる２以上の時点において上記ＬＰＳ濃度および／またはＬＢＰ濃度を測定した際に、ＬＰＳが増加傾向にあればＰＤが重症になっていると判断することができ、逆に減少傾向にあればＰＤが軽症になっていると判断することができる。また、ＬＢＰが減少傾向にあればＰＤが重症になっていると判断することができ、逆に増加傾向にあればＰＤが軽症になっていると判断することができる。
　本発明において、検体中の腸内細菌の測定には、腸内細菌数の測定（定量）が含まれる。検体中の腸内細菌数を測定する手段は、例えば適切な培地で腸内細菌を培養し菌数を計測する方法、選択液体培地中で腸内細菌を培養し濁度や吸光度を測定する方法、ＦＩＳＨ法、定量的ＲＴ－ＰＣＲ法（ＲＴ－ｑＰＣＲ法）等が挙げられ、このうちＲＴ－ｑＰＣＲ法で行うことが好ましい。
　ここで、ＲＴ－ＰＣＲ法について説明する。ＲＴ－ＰＣＲ法を用いる分析方法は、例えば、（１）検体中の目的とする細菌のＲＮＡを抽出する工程、（２）抽出したＲＮＡにハイブリダイズする核酸断片（プライマー）を用いて逆転写（ＲＴ）反応によりｃＤＮＡを合成し、引き続きｃＤＮＡを鋳型としてＰＣＲを行う工程、および（３）工程（２）により増幅されたＤＮＡ断片を検出する工程により行うことができる。検体由来の鋳型ｃＤＮＡに上記核酸断片を組み合わせ、増幅反応を行うことにより、目的とする腸内細菌に特異的なＤＮＡ断片（ＰＣＲ産物）を得ることができる。ＰＣＲ産物を経時的に観察し、一定のＤＮＡ量に達した時のＰＣＲサイクル数を特定することにより、検体中の目的とする腸内細菌数を定量することが可能となる。
　増幅されるＰＣＲ産物の経時的な観察は、ＰＣＲ産物をＳＹＢＲ（Ｒ）Ｇｒｅｅｎ　Ｉ等のインターカレーター性蛍光色素により標識し、各ＰＣＲ段階での蛍光強度を測定することにより行うことができる。インターカレーター性色素は二本鎖核酸にインターカレーションすることで蛍光強度が増加する性質を有することから、標的細菌のｃＤＮＡからＰＣＲ反応により生成するＰＣＲ産物を正確に測定することができ、特にＳＹＢＲ（Ｒ）Ｇｒｅｅｎ Ｉが好適に用いられる。
　任意に設定された一定の蛍光強度（ＤＮＡ量）に達した時のＰＣＲサイクル数（Ｔｈｒｅｓｈｏｌｄ　ｃｙｃｌｅ：ＣＴ）を特定することにより、検体中の目的とする腸内細菌の定量が可能となる。また、蛍光色素により標識したＴａｑＭａｎプローブやＭｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｅａｃｏｎ等を使用することもできる。ＴａｑＭａｎプローブやＭｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｅａｃｏｎは、ＰＣＲにより増幅される領域の内部配列と相同性を有するオリゴヌクレオチドに蛍光色素とクエンチャーを結合させたプローブであり、ＰＣＲ反応に共存させて用いる。プローブに結合した蛍光色素とクエンチャーの相互作用でＰＣＲ増幅反応に応じた蛍光を発するため、各ＰＣＲ段階での蛍光強度を測定することにより増幅されるＰＣＲ産物の経時的な観察を行うことができる。
　検体中の目的とする腸内細菌の定量は、ＤＡＰＩカウント法や培養法等により計測した細菌数の対数値とＣＴ値の検量線により求めることができる。すなわち、標的とする細菌数の対数値を横軸に、ＣＴ値を縦軸にプロットした検量線を予め作成し、ＰＣＲ反応の結果得られたＣＴ値を該検量線に適用して、検体中の目的とする腸内細菌の定量を行う。
　本発明のＰＤの判定方法を実施するには、検体中の前記腸内細菌を測定するためのプロトコールを含むキットを用いるのが好ましい。当該キットには、本発明のマーカーの測定試薬およびプロトコール（例えば、腸内細菌の測定方法、並びにＰＤの判定方法、特に重症度を判定するための基準、測定結果に影響を与える要因とその影響の程度等が記載されたもの）が含まれる。当該基準を用いて前記判定方法のように判定することができる。ここで、マーカーの測定試薬としては、前述の腸内細菌数測定用試薬、ｍＲＮＡ検出用試薬、ＤＮＡ検出用試薬等が挙げられる。
　体内の菌数は各患者の生活環境や食生活などによって左右される。時系列的に測定した同一患者の検体における菌体数を比較することで、ＰＤの進行具合を判別することができる。
　以下、実施例により本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されない。
使用菌株
　株式会社ヤクルト本社中央研究所にて保存されていた、表１に示す菌株を使用した。各菌株の初発菌数は、１×１０4ｃｅｌｌｓ程度となるように調整した。
　各菌株の培養条件を表１に示した。培養条件Ａ、Ｂの詳細は以下の通りである。
　条件Ａ：１％グルコース加変法ＧＡＭブロスにて、３７℃、嫌気条件下で２４～７２時間の静置培養を行った。
　条件Ｂ：ＭＲＳブロスにて、３７℃、嫌気条件下で２４時間～７２時間の静置培養を行った。
　条件Ｃ：ＢＨＩブロスにて、３７℃、好気条件下で１８時間の静置培養を行った。
　これらの菌体は、ＤＡＰＩ法により菌数を測定した後、一定の菌数となるように適宜希釈し、菌液を調製した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
参考例１
　特異的プライマーの準備
　前記腸内細菌数の測定に使用した各プライマーを表２に示す。また、各プライマーが記載された文献も表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
1. Matsuki T, Watanabe K, Fujimoto J, Miyamoto Y, Takada T, Matsumoto K, et al. Development of 16S rRNA-gene-targeted group-specific primers for the detection and identification of predominant bacteria in human feces. Appl Environ Microbiol 2002;68: 5445-5451.
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参考例２
　ＲＴ－ＰＣＲで使用する検量線の準備
　検体中の目的とする腸内細菌の定量を行う際に使用する検量線を作成した。具体的には下記の手順に従い、ＤＡＰＩカウント法で計測した腸内細菌数を横軸に、ＣＴ値を縦軸にプロットした検量線を作成した。
１）上記使用菌株で調製した各菌株の菌液２００μＬにＲＮＡｌａｔｅｒ（Ａｍｂｉｏｎ）４００μＬを添加し、５分間室温にて静置した。その後、１３，０００ｇにて５分間遠心分離し、デカンテーションにより上清を除去した。上清を除去した後の残渣に溶菌バッファー　４５０μＬ（１サンプルあたり３４６．５μＬのＲＬＴ　ｂｕｆｆｅｒ、１００μＬのＴＥおよび３．５μＬのβ－メルカプトメタノールを混合して調製する）および直径が０．１ｍｍのガラスビーズ（ＴＯＭＹ精工）を３００ｍｇ添加した。
２）振とう機（ＳｈａｋｅＭａｓｔｅｒ）にサンプルチューブをセットした後、５分間振とうし、菌体を破砕した。
３）５００μＬの水飽和フェノールを加え、ボルテックスにより５～１０秒間撹拌した。
４）６０℃のヒートブロックにサンプルチューブをセットし、１０分間反応させた（ホットフェノール法）。
５）１００μＬのクロロホルム／イソアミルアルコール（２４：１）を加え、ボルテックスにより５～１０秒間撹拌した。
６）遠心分離後（１３，０００ｇ×５分）、上清４７０μＬを新しい蓋付マイクロチューブ（１．５ｍＬ）に移した。
７）４７０μＬ　クロロホルム／イソアミルアルコール（２４：１）を加え、ボルテックスにより５～１０秒間撹拌した。
８）遠心分離後（１３，０００ｇ×５分）、上清４００μＬを新しい蓋付マイクロチューブ（１．５ｍＬ）に移した。
９）３Ｍ　酢酸Ｎａ（ｐＨ５．４）４０μＬおよびイソプロパノール　４００μＬを加え、転倒混和した。
１０）遠心分離（２０，０００ｇ×１０分）を行った。
１１）デカンテーションにて上清を除いた後、８０％エタノール５００μＬを加えた。
１２）遠心分離後（２０，０００ｇ×２分）、デカンテーションにて上清を除いた。
１３）風乾（口を上にして約２０分間）した後、ＤＡＰＩ法による菌数測定に基づき、２×１０8ｃｅｌｌｓ／ｍＬとなるようにＮｕｃｌｅａｓｅ－ｆｒｅｅ　ｗａｔｅｒ（Ａｍｂｉｏｎ）を加えて、撹拌して均一に溶解させた。さらにＮｕｃｌｅａｓｅ－ｆｒｅｅ　ｗａｔｅｒにより１０倍段階希釈を実施し、２×１０-3～２×１０ｃｅｌｌｓ／ｍＬの範囲の希釈したサンプルを次の１４）記載のＲＮＡサンプルとして使用し、ＲＴ－ｑＰＣＲ反応に供試した。
１４）ＲＴ－ｑＰＣＲは、ＱＩＡＧＥＮ　ＯｎｅＳｔｅｐ　ＲＴ-ＰＣＲ　Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ）を用いて実施し、反応液組成は、１×ＱＩＡＧＥＮ　ＯｎｅＳｔｅｐ　ＲＴ-ＰＣＲ　Ｂｕｆｆｅｒ、０．５ｘＱ－Ｓｏｌｕｔｉｏｎ、０．４ｍＭ　ｄＮＴＰ　Ｍｉｘ、１／２５量のＱＩＡＧＥＮ　ＯｎｅＳｔｅｐ　ＲＴ－ＰＣＲ　Ｅｎｚｙｍｅ　Ｍｉｘ、１／１００，０００量のＳＹＢＲ（Ｒ）Ｇｒｅｅｎ　Ｉ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ）、１×ＲＯＸ　Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ　Ｄｙｅ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、０．６０μＭの表２に示した各プライマー、および５μＬの上記１３）で調製したＲＮＡサンプルを含む反応液（総量１０μＬ）で行った。
１５）反応液はまず５０℃で３０分間逆転写反応を行い、その後逆転写酵素を失活させるため９５℃で１５分間加熱した。引き続いて、９４℃・２０秒、５５℃あるいは６０℃（表２の配列番号１～２および１５～２８は５５℃、配列番号３～１４および２９～３０は６０℃、配列番号３１～３４は５５℃、配列番号３５～３８は６０℃）・２０秒、７２℃・５０秒を４５サイクル行い、増幅産物を得た。増幅産物の量をサイクルごとにＳＹＢＲ（Ｒ）Ｇｒｅｅｎ　Ｉの蛍光強度として測定し、ＰＣＲ曲線を作製した。蛍光強度のベースラインおよび閾値を設定し、ＰＣＲ曲線と閾値が交差するサイクル数（ＣＴ値）を求めた。得られたＣＴ値を縦軸に、ＰＣＲ反応に供試したサンプル菌数を横軸にプロットした。これらの解析には、Ｓｅｑｕｅｎｃｅ　Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　Ｓｙｓｔｅｍ（ＳＤＳ）ソフトウェア（Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を用いた。なお、ＰＣＲにおける増幅が特異的に行われたか否かを確認するため、変性温度の測定を別途行った。変性温度の測定は、上記増幅産物を得た後、９４℃で１５秒間反応させ、その後５５℃あるいは６０℃から９９℃にかけて０．２℃／秒の速度で緩やかに温度を上昇させ、温度を横軸に、ＳＹＢＲ（Ｒ）Ｇｒｅｅｎ　Ｉの蛍光強度を縦軸にプロットして増幅産物の変性曲線を作製し、蛍光強度が急激に減少する温度を測定することにより行った。これらの一連の反応は、ＡＢＩ　ＰＲＩＳＭ（Ｒ）７９００ＨＴシステム（Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）により行った。
１６）ＤＡＰＩ法により測定した各腸内細菌の菌数を横軸に、それに対応するＲＴ－ｑＰＣＲにより得たＣＴ値を縦軸にプロットし、検量線を作成した。
実施例１
（１）ＰＤと腸内細菌叢の関係
　ＰＤ患者の腸内細菌叢を精査し、ＰＤと腸内細菌叢の関係を評価した。
　ＰＤ患者52人（男性21人、女性31人、68.9 ± 6.8歳）、対照として患者の配偶者36人（男性21人、女性15人、68.4 ± 9.7歳）をリクルートした。ＰＤの臨床症状はＨｏｅｈｎ－Ｙａｈｒ（ＨＹ）重症度分類、パーキンソン病統一スケール（Ｕｎｉｆｉｅｄ　Ｐａｒｋｉｎｓｏｎ’ｓ　Ｄｉｓｅａｓｅ　Ｒａｔｉｎｇ　Ｓｃａｌｅ；ＵＰＤＲＳ）第１部～第４部を用いて評価した。
　リクルートしたＰＤ患者のうち、２年間追跡できたのは４２名である。さらに追跡中に別の疾患が判明した６名を除いた合計３６名の患者を対象に検討を行った。
（２）生化学検査
　血清中リポポリサッカライド（ＬＰＳ）－結合タンパク（ＬＢＰ）濃度はＨｙｃｕｌｔ　Ｂｉｏｔｅｃｈ社ＥＬＩＳＡキット（ＨＫ３１５－０１）、ジアミンオキシダーゼ（ＤＡＯ）濃度は、Ｉｍｍｕｎｄｉａｇｎｏｓｔｉｋ　ＡＧ社ＥＬＩＳＡキット（Ｋ８５００）で測定を行った。
（３）ｒＲＮＡを標的としたＲＴ－ｑＰＣＲによる糞便中細菌数の測定
（ａ）ＲＮＡ抽出用サンプルの調製
　患者および対照から採取した糞便４ｍｇに０．２ｍＬのＲＮＡｌａｔｅｒ（Ａｍｂｉｏｎ）を添加し、５分間室温にて静置した。その後、１４,０００ｇにて１０分間遠心分離し、デカンテーションにより上清を除去した後、残渣をＲＮＡ抽出用サンプルとして使用した。
（ｂ）核酸抽出
　下記手順に従い、ＲＮＡ抽出操作を行った。
　　１）（ａ）で調製したＲＮＡ抽出用サンプルに溶菌バッファー４５０μＬ（１サンプルあたり３４６．５μＬのＲＬＴ　ｂｕｆｆｅｒ、１００μＬのＴＥおよび３.５μＬのβ－メルカプトエタノールを混合して調製）および直径が０．１ｍｍのガラスビーズを３００ｍｇ添加した。
　　２）前記参考例２の２）～１２）記載の方法と同様に核酸の抽出操作を行った。
　　３）風乾（口を上にして約２０分間）した後、２００μＬのＮｕｃｌｅａｓｅ－ｆｒｅｅ　ｗａｔｅｒを加えて、撹拌して均一に溶解させ、ＲＮＡサンプルとした。
（ｃ）菌数の測定
　（ｂ）で得られたＲＮＡサンプルについて、ＲＴ－ｑＰＣＲ法を用いて、菌数を測定した。ＲＴ－ｑＰＣＲは、前記参考例２の１４）～１５）記載の方法と同様に行った。
（４）統計解析
　統計解析はＪＭＰ　Ｐｒｏ　ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ　ｓｏｆｔｗａｒｅ　ｐａｃｋａｇｅ　ｖｅｒｓｉｏｎ　１１．０．０（ＳＡＳ　Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ，　Ｃａｒｙ，　ＮＣ）で行った。解析結果は平均値±標準偏差で示した。群間比較にはＭａｎｎ－ＷｈｉｔｎｅｙのＵ検定およびＳｔｕｄｅｎｔのｔ検定を使用し、相関分析にはＳｐｅａｒｍａｎ相関分析を使用した。ｐ値が0.05以下または相関係数が0.3以上を統計的に有意とした。スミルノフの棄却検定で明らかな外れ値に関しては棄却した。
結果
（１）患者情報
　表３に健常者とＰＤ患者に分けた際の各パラメータ・スコア情報を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
ａ：平均値および標準偏差を示す。
　表３より、排便頻度はＰＤ患者群では健常者群よりも少なかった。
（２）生化学検査
　図１に、血清中ＬＢＰ濃度と、排泄頻度との相関を示す（Ａ：ＰＤ群、Ｂ：対照群）。ＰＤ患者群では血清中ＬＢＰ濃度と排便頻度には正の相関が見られたが、この相関は健常者群では見られなかった（図１Ａおよび図１Ｂ）。これらから、血清中ＬＢＰの濃度が低いほどＰＤの病状が悪化していることが推察される。したがって、同一のＰＤ患者における血中ＬＢＰ濃度をモニタすることによって、ＰＤ患者の病状が悪化しているかを判定することができる。
（３）２年間での病態変化
　ＰＤ患者において、観察開始時（０年）に対する２年経過時の変化を指標とし、ＰＤの病状の悪化が大きい群（悪化群）とそれ以外の群（非悪化群）の２群に分け、比較を行った。ＵＰＤＲＳの合計が15点以上悪化した、もしくはＰＤの病状の悪化のため入所、または通院ができなくなった患者を悪化群とした。ＵＰＤＲＳの合計のスコアの悪化が15点未満である患者を非悪化群とした。
（３－１）悪化群と非悪化群の、スコアの比較
　表４に、悪化群と非悪化群とに分けた際の、スコアの比較を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
（３－２）２年間での臨床パラメータの変化
　表５に、観察開始と２年間経過時点との比較による血清中ＬＢＰ濃度の変化を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　表５より、２年経過後において悪化群では血清中ＬＢＰ濃度が低下し、非悪化群では血清中ＬＢＰ濃度がむしろ上昇する傾向が見られた。
（４）ＰＤの臨床症状の変化と菌組成の変化との相関
　ＰＤの臨床症状としてＵＰＤＲＳ第１部（精神機能、行動および気分）のスコアの変化量（観察開始時から２年後の時点の変化量）を利用し、Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ　ｆｒａｇｉｌｉｓ　ｇｒｏｕｐおよびＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍの観察開始時（０年）の菌数との相関を調べた。結果を図２に示す。２年間のＵＰＤＲＳ第１部のスコアの変化量と有意な負の相関が見られた（図２Ａ、２Ｂ）。このことから、ＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍおよびＢａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ　ｆｒａｇｉｌｉｓ　ｇｒｏｕｐの観察開始時（０年）の菌数は、ＰＤ（特に精神症状）の悪化リスクの判定マーカーとして利用することができると考えられる。
（５）血清中ＬＢＰ濃度の変化と菌組成の変化との相関
　図３に、血清中ＬＢＰ濃度の変化（観察開始時から２年後の時点の変化）と、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓおよびＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐの観察開始時（０年）の菌数との相関を調べた結果を示す。血清中ＬＢＰ濃度の変化は、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐおよびＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓの観察開始時（０年）の菌数と有意な正の相関が見られた（図３Ａ、図３Ｂ）。Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐおよびＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓの検出下限値未満のサンプルを除いた群（図３Ｃ、図３Ｄ）に強い相関が見られた。これらのことから、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓの観察開始時（０年）の菌数またはＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐの観察開始時（０年）の菌数が多いほど、その後の血清中ＬＢＰ濃度が高くなり（ＰＤの病状が軽くなる）、逆にＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓの観察開始時（０年）の菌数またはＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐの観察開始時（０年）の菌数が少ないほど、その後の血清中ＬＢＰ濃度が低くなる（ＰＤの病状が重くなる）と考えられる。血清中ＬＢＰ濃度の変化は、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓとＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐの観察開始時（０年）の菌数と有意な正の相関が見られたことから、これらの細菌の観察開始時（０年）の菌数は、ＰＤの悪化リスクの判定マーカーとして利用することができると考えられる。
　図４に、血清中ＬＢＰ濃度の変化（観察開始時から２年後の時点の変化）と、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｇａｓｓｅｒｉ　ｓｕｂｇｒｏｕｐの観察開始時（０年）の菌数との相関を調べた結果を示す。図３に示す菌（本願発明の腸内細菌）と異なり、血清中ＬＢＰ濃度の変化とＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｇａｓｓｅｒｉ　ｓｕｂｇｒｏｕｐとの間には、有意な相関はなかった。本発明者らが、種々の腸内細菌について解析を行った結果、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｇａｓｓｅｒｉ　ｓｕｂｇｒｏｕｐを含む他の腸内細菌（１５種類）については、パーキンソン病の悪化（特に悪化リスク）と有意な相関がなかったことから、これらの腸内細菌は本願発明の判定マーカーとして利用できないことが確認された。
（６）Ｌ－ドーパの使用換算量の変化と菌数の変化との相関
　図５に、Ｌ－ドーパの使用換算量の変化（観察開始時から２年後の時点の変化量）とＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍの菌数（Ａ）、腸内細菌の総菌数（Ｂ）との相関を示す。腸内細菌の総菌数は、表１に示す１９種の菌群の菌数の総和として求めた。ＰＤ治療薬であるＬ－ドーパの使用換算量（ｌ－ｄｏｐａ　ｅｑｕｉｖａｌｅｎｔ　ｄｏｓｅ；ＬＥＤ）の増加に対してＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍの菌数（Ａ）、腸内細菌の総菌数（Ｂ）の減少に有意な負の相関が見られた。Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍの減少者ほど、結果として症状悪化が起きやすく、より多くの薬剤投与を必要とした可能性が考えられる。このことから、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍの菌数（変化量）は、ＰＤの悪化リスクの判定マーカーとして利用することができると考えられる。
（７）ＵＰＤＲＳの変化と菌数の変化との相関
　図６に、ＰＤ統一スケールであるＵＰＤＲＳの下位スケールの変化（観察開始時から２年後の時点の変化量）と観察開始時における菌数との相関を示す。ＵＰＤＲＳ第１部（精神機能、行動および気分）の下位項目のうち、１．１（知的機能の障害）、１．２（思考の障害）、１．４（意欲・自発性）について調べた。その結果、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍと１．１（知的機能の障害）および１．２（思考の障害）（図６Ａ、Ｂ）、Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ　ｆｒａｇｉｌｉｓ　ｇｒｏｕｐと１．４（意欲・自発性）のスコアの変化がそれぞれ負の相関を示した（図６Ｃ）。このことから、これらの菌数を測定することで、ＰＤの病状の悪化を判定することができる。
　以上の通り、腸内細菌はＰＤの病態進行の判定に利用することができる。

Claims (15)

  1. 　Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ、Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ　ｆｒａｇｉｌｉｓ　ｇｒｏｕｐ、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓおよびＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐからなる群より選ばれる１以上の腸内細菌および／または腸内細菌の総菌数からなるパーキンソン病の判定マーカー。
  2. 　パーキンソン病の判定が、パーキンソン病の悪化リスクの判定である請求項１記載のマーカー。
  3. 　パーキンソン病の悪化が、便秘症状または精神症状の悪化である請求項２記載のマーカー。
  4. 　精神症状が、幻覚、認知および意欲からなる群より選ばれる１以上である請求項３記載のマーカー。
  5. 　パーキンソン病患者の病状が悪化しているかを判定するため、異なる２以上の時点において該患者のＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ、Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ　ｆｒａｇｉｌｉｓ　ｇｒｏｕｐ、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓおよびＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ　ｓｕｂｇｒｏｕｐからなる群より選ばれる１以上の腸内細菌および／または腸内細菌の総菌数を測定し、それらを比較する方法。
  6. 　パーキンソン病患者の病状の悪化が、便秘症状または精神症状の悪化である請求項５記載の方法。
  7. 　精神症状が、幻覚、認知および意欲からなる群より選ばれる１以上である請求項６記載の方法。
  8. 　血中ＬＰＳ濃度および／または血中ＬＢＰ濃度からなるパーキンソン病の判定マーカー。
  9. 　パーキンソン病の判定が、パーキンソン病の悪化リスクの判定である請求項８記載のマーカー。
  10. 　パーキンソン病の悪化が、便秘症状または精神症状の悪化である請求項９記載のマーカー。
  11. 　精神症状が、幻覚、認知および意欲からなる群より選ばれる１以上である請求項１０記載のマーカー。
  12. 　パーキンソン病患者の病状が悪化しているかを判定するため、異なる２以上の時点において該患者の血中ＬＰＳ濃度および／または血中ＬＢＰ濃度を測定し、それらを比較する方法。
  13. 　パーキンソン病患者の病状の悪化が、便秘症状または精神症状の悪化である請求項１２記載の方法。
  14. 　精神症状が、幻覚、認知および意欲からなる群より選ばれる１以上である請求項１３記載の方法。
  15. 　請求項１～４のいずれか１項記載の腸内細菌を測定するためのプロトコールを含むことを特徴とする請求項５～７のいずれか１項記載の方法を実施するためのキット。
     
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