WO2016199904A1 - ワクチン用アジュバント、ワクチン、及び免疫誘導方法 - Google Patents

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Definitions

  • the present invention relates to a vaccine adjuvant capable of efficiently inducing antigen-specific IgA production in the mucosa, a vaccine containing the same, and the like.
  • Patent Document 1 As one method for effectively inducing both mucosal and systemic immune responses via the mucosal surface, the use of various adjuvants for enhancing the immune response has been studied.
  • a vaccine for mucosal administration it has been proposed to combine an inactivated antigen of a pathogen with an adjuvant containing double-stranded RNA and glucans (Patent Document 1). It has also been proposed to use a culture of microorganisms belonging to the genus Aureobasidium sp. As an immune adjuvant to be administered intranasally (Patent Document 2). This culture of microorganisms contains ⁇ -1,3-1,6-glucan, and Patent Document 2 proposes to combine the culture with Poly (I: C).
  • vaccines administered to local mucous membranes such as the nasal cavity have low efficiency of penetrating the antigen, and it is difficult to appropriately reach the antigen to dendritic cells present in the mucosa.
  • an effect is expected only around the administration site, and there is also a problem that induction of a systemic immune response is weak.
  • the nasal immune response has a problem that the mucosal immune response cannot be induced in other mucosal tissues such as the digestive tract.
  • the present invention provides a vaccine adjuvant capable of simultaneously inducing antigen-specific IgA antibody and Th17 response and antigen-specific IgG antibody and Th1 response as a completely new immunization method, and such an adjuvant. It is an object to provide a vaccine including the same.
  • Non-Patent Document 1 shows that the intestinal tract is different from the dendritic cells present in the spleen and bone marrow, and the antigen It is disclosed that specific dendritic cells that can induce specific IgA antibodies and Th17 cells exist. And this special intestinal dendritic cell expresses retinoic acid synthase Raldh2, can synthesize retinoic acid, and this retinoic acid synthesizing ability is essential for the induction of IgA antibody. It is disclosed in Document 1. In addition, Yokota A. et al. Int Immunol. 2009 Apr; 21 (4): 361-377.
  • Non-patent Document 2 shows that intestinal dendritic cells are composed of mononuclear cells in the blood in the intestinal mucosa lamina basement. It is disclosed that it is produced by differentiation under the influence of GM-CSF and IL-4 in the intestine.
  • the present inventors first treated dendritic cells present in the spleen with GM-CSF, the dendritic cells expressed Raldh2, and antigen-specific IgA antibodies were detected. I found out that I could be guided. Furthermore, it was found that glucans such as ⁇ -1,3-glucan induce Raldh2 expression in dendritic cells, and as a result, dendritic cells acquire the ability to induce antigen-specific IgA antibodies.
  • an antigen-specific IgG antibody is induced in the blood, and in the stool It was found that antigen-specific IgA antibodies were induced. In this method, the induction of antigen-specific IgG antibody production lasted for a long time, but IgA antibody production transiently increased and then disappeared. However, when booster immunization was performed by administering only the antigen to the mucosal surface, it was found that a large amount of antigen-specific IgA antibody was induced and IgA production persisted for more than 3 months.
  • ⁇ -1,3-glucan used by the present inventors has been reported to activate innate immune receptors other than Dectin-1, but ⁇ -1,3-glucan and CpG oligodeoxynucleotides have also been reported. Since the induction of antigen-specific IgA antibody disappeared in Dectin-1 knockout (KO) mice administered with an adjuvant in combination with an antigen, ⁇ -1,3-glucan was the target of action to induce IgA antibody production It was found that the receptor is Dectin-1. This suggests that a substance that stimulates Dectin-1 has the same effect as that of ⁇ -1,3-glucan.
  • the present invention provides [1] Dectin-1 ligand, An adjuvant for a vaccine comprising a TLR agonist; [2] The adjuvant for vaccine according to [1], wherein the Dectin-1 ligand is a Raldh2 gene expression inducer. [3] The adjuvant for vaccines according to [2], wherein the Raldh2 gene expression inducer is granulocyte monocyte colony stimulating factor (GM-CSF) or glucan. [4] Furthermore, the adjuvant for vaccines in any one of [1] to [3] containing incomplete Freund's adjuvant. [5] The adjuvant for vaccine according to any one of [1] to [4], which is administered together with at least one antigen.
  • GM-CSF granulocyte monocyte colony stimulating factor
  • At least one antigen A vaccine comprising the vaccine adjuvant according to any one of [1] to [5].
  • the at least one antigen is a virus, or a part thereof, or a component thereof inactivated or attenuated, a bacterium, a part thereof, or a component thereof inactivated or attenuated, or an allergen.
  • [6] or [7] vaccine [9] The vaccine according to any one of [6] to [8], which induces antigen-specific IgA production.
  • Administration of the vaccine is performed by administering the vaccine by a method selected from the group consisting of transdermal administration, subcutaneous administration, intradermal administration, and intramuscular administration, according to any one of [6] to [11] The vaccine described.
  • the vaccine according to any one of [6] to [12] which is used in an immunization induction method in which booster immunization is performed at least once after a certain period of time has elapsed after administration of the vaccine.
  • the booster is performed by administering an antigen by a method selected from the group consisting of oral administration, nasal administration, transmucosal administration, vaginal administration, ophthalmic administration, and intrarectal administration, [13] The vaccine described. [15] The vaccine according to [13] or [14], wherein the booster immunization is performed by administering an antigen without using an adjuvant. [16] At least one antigen; A method of inducing immunity comprising the step of administering a vaccine comprising a vaccine adjuvant comprising a Dectin-1 ligand and a TLR agonist.
  • systemic immunity represented by Th1 response and antigen-specific IgG antibody production against a desired antigen by a simple method using a combination of a Dectin-1 ligand and a TLR agonist as an adjuvant. It is possible to effectively induce both the response and the mucosal immune response typified by Th17 response and antigen-specific IgA antibody production, so that both invasion of pathogens and suppression of disease progression can be realized. .
  • the immune response is induced using the above adjuvant, the induction of the systemic immune response persists for a long time, while the induction of the mucosal immune response disappears in a relatively short period of time.
  • Induction of mucosal immune response can be sustained for a long period of time by boosting by administering to the above. During booster immunization, it is possible to induce a mucosal immune response in a desired site such as the intestinal tract or the respiratory tract by appropriately selecting the administration route of the antigen.
  • FIG. 1 shows that spleen-derived dendritic cells stimulated with antigen (OVA), CpG ODN, and GM-CSF were intraperitoneally administered to mice, then antigen was orally administered, and antigen-specific serum total IgG and fecal IgA The result of having measured is shown.
  • FIG. 2 shows the results of stimulation of spleen-derived dendritic cells with glucans (zymozan or curdlan) or various TLR agonists and measuring the expression of Raldh2.
  • FIG. 3 shows that an IFA emulsion containing an antigen (OVA) and an adjuvant (CpG ODN and / or curdlan) was intramuscularly administered to mice, and antigen-specific serum total IgG and fecal IgA were measured over time. Results are shown.
  • Fig. 4 shows the results of intramuscular administration of an IFA emulsion containing an antigen (cholera toxin) and an adjuvant (CpG ⁇ ⁇ ⁇ ODN and curdlan) to mice and antigen-specific serum total IgG and fecal IgA measured 3 weeks later. Show.
  • FIG. 5 shows the results of confirming the symptoms of diarrhea after oral administration of cholera toxin to mice after the experiment of FIG.
  • FIG. 5 shows the results of confirming the symptoms of diarrhea after oral administration of cholera toxin to mice after the experiment of FIG.
  • FIG. 6 shows that an IFA emulsion containing an antigen (OVA) and an adjuvant (CpG ODN and / or curdlan) was intramuscularly administered to mice, boosted with the antigen after 42 days, and antigen-specific on that day and 1 week later The results of measurement of typical serum total IgG and fecal IgA are shown.
  • FIG. 7 shows that IFA emulsion containing an antigen (OVA) and an adjuvant (CpG ODN and / or curdlan) was intramuscularly administered to mice and boosted with the antigen after 42 days. The result of measuring serum total IgG and fecal IgA is shown. After the first boost, a second boost was given at 13 weeks.
  • FIG. 8 shows that an IFA emulsion containing an antigen (OVA) and an adjuvant (CpG ODN and / or curdlan) was intramuscularly administered to mice, boosted after 42 days, and spleen and intestinal mucosa from mice 7 days later The results show that the lamina intestinal cells were excised and cultured in the presence of antigen, and the production of IFN- ⁇ , IL-4 and IL-17 was measured after 4 days.
  • FIG. 9 shows that an IFA emulsion containing an antigen (OVA) and an adjuvant (CpG ODN and / or curdlan) was intramuscularly administered to mice, and 35 days later, the antigens were administered intranasally for booster immunization.
  • FIG. 10 shows that an IFA emulsion containing an antigen (OVA) and an adjuvant (CpG ODN and / or curdlan) was intramuscularly administered to mice, and 35 days later, the antigen was administered intranasally to perform booster immunization. One day later, lamina intestinal cells were extracted from the mouse and cultured in the presence of antigen, and IFN- ⁇ and IL-17 production were measured by ELISA after 4 days.
  • OVA antigen
  • CpG ODN and / or curdlan an adjuvant
  • FIG. 11 shows that an IFA emulsion containing an antigen (OVA) and an adjuvant (CpG ODN and / or curdlan) is intramuscularly administered to mice, Medroxyprogesterone is administered 35 days later, and the antigen is administered intravaginally 42 days later.
  • 7 shows the result of measuring antigen-specific IgA in the vaginal lavage fluid 7 days after booster immunization.
  • FIG. 12 shows the results of measurement of expression of spleen-derived dendritic cells of dectin-1, which is a receptor for ⁇ -1,3-glucan, with or without stimulation with CpG ODN.
  • FIG. 13 shows that an IFA emulsion containing an antigen (OVA) and an adjuvant (R-848 alone, or R-848 and curdlan) was intramuscularly administered to mice, and the antigen was orally administered on day 28 for booster immunization.
  • 3 shows the results of measuring antigen-specific serum total IgG and stool IgA over time. A second boost was given 4 weeks after the first boost.
  • FIG. 14 shows the results of intramuscular administration of an IFA emulsion containing an antigen (OVA) and an adjuvant (CpG ODN and / or lentinan) to mice, and measuring antigen-specific serum total IgG and fecal IgA over time. Indicates.
  • FIG. 1 shows that an IFA emulsion containing an antigen (OVA) and an adjuvant (R-848 alone, or R-848 and curdlan) was intramuscularly administered to mice, and the antigen was orally administered on day 28 for booster immunization.
  • FIG. 15 shows that an IFA emulsion containing an antigen (OVA) and an adjuvant (CpG ODN and / or lentinan) was intramuscularly administered to mice, boosted with the antigen 42 days later, and antigen-specific on that day and 1 week later 1 shows the results of measuring serum total IgG and fecal IgA.
  • FIG. 16 shows that an IFA emulsion containing an antigen (OVA) and an adjuvant (CpG ODN and / or lentinan) was intramuscularly administered to mice and boosted after 42 days. The results show that the cells in the layer were excised and cultured in the presence of the antigen, and the production of IFN- ⁇ and IL-17 was measured after 4 days.
  • FIG. 17 shows that IFA emulsion containing an antigen (OVA) and an adjuvant (CpGNODN and curdlan) was intramuscularly administered to a Dectin-1-deficient mouse, and antigen-specific serum total IgG and fecal IgA were measured 21 days later. The results are shown.
  • FIG. 18 shows that an IFA emulsion containing an antigen (OVA) and an adjuvant (CpG ODN and lentinan) was intramuscularly administered to a Dectin-1-deficient mouse, boosted with the antigen 42 days later, and antigens on that day and 1 week later The result of measuring specific serum total IgG and fecal IgA is shown.
  • FIG. 18 shows that an IFA emulsion containing an antigen (OVA) and an adjuvant (CpG ODN and lentinan) was intramuscularly administered to a Dectin-1-deficient mouse, boosted with the antigen 42 days later, and antigen
  • the adjuvant for vaccines according to the present invention includes a Dectin-1 ligand and a TLR agonist.
  • the term “vaccine” is a pharmaceutical product used for the purpose of preventing infectious diseases, and includes inactivated or attenuated antigens.
  • an immune response is induced, and thereafter, infections (including allergic reactions) caused by antigens contained in the vaccine can be prevented from becoming ill or severe.
  • infections including allergic reactions
  • the adjuvant for vaccine according to the present invention has the effect of the present invention will be described mainly through the effect of the vaccine of the prior art (or the adjuvant for vaccine) and the physiological function of animals.
  • vaccines administered to mucous membranes such as nasal or oral induce mucosal immune response and systemic immune response
  • vaccines administered by conventional intramuscular injection do not induce mucosal immune response
  • Only a systemic immune response is induced.
  • dendritic cells are present throughout the tissue, and when an antigen that has entered the body is recognized, it moves to nearby lymph nodes, induces an antigen-specific response including antibody production, and propagates throughout the body.
  • dendritic cells in mucosal tissues and lymph nodes attached thereto have a function of inducing IgA antibody production, unlike dendritic cells in non-mucosal tissues.
  • the induced IgA antibody-producing cells are promoted to migrate to the accompanying mucosal tissue under the influence of such dendritic cells and exert strong local protection. It is speculated that this difference in the characteristics of the dendritic cells greatly affects the difference in effect between when the vaccine is administered to the mucosa and when the vaccine is administered intramuscularly. Therefore, in conventional vaccines, even when administered intramuscularly, there are no dendritic cells that can induce IgA, so mucosal immune responses cannot be induced, and mucosal membranes must be immunized without immunization through the mucosal surface. Immune response is not induced.
  • the efficiency of inducing an immune response is lower in a mucosal tissue than when a vaccine is administered to a mucosa and a vaccine is administered to a non-mucosal tissue.
  • One of the factors is that it is difficult to efficiently pass the antigen through the mucosa to reach the dendritic cells inside.
  • the epithelial layer is a physical barrier on the surface of the mucous membrane (for example, the epithelial cells are tightly bonded to form a small gap layer), and the fluid mucus Examples include diffusion of the antigen and degradation of the antigen by digestive enzymes.
  • nasal immunization is often performed because the nasal mucosa is relatively thinner than other mucous membranes, but the immunity induction efficiency is still insufficient.
  • a bacterial toxin that destroys the epithelial layer can be used as an adjuvant, but in the case of the nasal cavity, the nerve is damaged and the olfactory disturbance (because the olfactory bulb is close) or the face May cause paralysis.
  • Another factor is the development of a mechanism that causes an immune response (immune tolerance) to antigens in mucosal tissues.
  • the mucous membranes such as the nasal cavity and intestinal tract are exposed to a wide variety of foreign antigens on a regular basis, and usually maintain a negative response to them.
  • the digestive tract has a system called oral tolerance, and has a mechanism for strongly suppressing immunity to food. For this reason, an oral vaccine does not activate immunity but conversely suppresses it.
  • the defense response is induced when the pathogen invades because the body component of the pathogen activates the innate immune receptor to induce inflammation and release the negative response. Therefore, in order to increase the induction efficiency of the immune response, the combined use of conventional adjuvants that activate innate immune receptors is attempted, but there is also a problem with the above-mentioned permeability, compared to intramuscular immunization that directly injects the antigen into the body. The effect is not enough.
  • adjuvants are sometimes used in combination with the purpose of activating dendritic cells to increase the efficiency of induction of immune responses, which mainly enhances the Th1 response effective to combat infected pathogens. It is aimed.
  • non-mucosal tissue dendritic cells usually have no IgA-inducing function, and the idea of combining adjuvants with the purpose of adding IgA-inducing function to such dendritic cells is known. Absent.
  • antigen administration to the mucosal surface in addition to intramuscular immunization.
  • Systemic immune response including strong antigen-specific Th1 response, and antigen-specificity in combination with Dectin-1 ligand that transforms dendritic cells into mucosal type and TLR agonists that activate dendritic cells IgA-producing memory cells and antigen-specific Th17 cells can be induced and transferred to the mucosa throughout the body.
  • a larger amount of antigen-specific IgA can be induced by loading at least the antigen on the mucosal surface where IgA induction is desired.
  • the vaccine adjuvant and immunity induction method according to the present invention have the characteristics of dendritic cells present in the mucous membranes and, if memory IgA is present, IgA-producing cells proliferate rapidly due to antigen loading, and a large amount of It is an epoch-making thing that was devised after knowing the details of the mucosal immune response that induces IgA, and can acquire all the advantages of conventional intramuscular immunization and mucosal immunity.
  • the term “adjuvant” means a substance that, when administered together with an antigen, enhances its antigenicity and facilitates an immune response.
  • Dectin-1 ligand and TLR agonist described in detail below are used as an adjuvant.
  • the vaccine adjuvant may be a composition containing a Dectin-1 ligand and a TLR agonist, but from the viewpoint of storage stability of the adjuvant, the Dectin-1 ligand and the TLR agonist may be separate.
  • the term “Dectin-1” is a receptor in dendritic cells, and is a receptor specific for a substance having a glucan skeleton represented by ⁇ -1,3-glucan.
  • the “Raldh2 gene” is known as an enzyme whose translation product catalyzes the synthesis of retinoic acid from retinal.
  • the “Raldh2 gene” may be a gene in any organism, but is known as ALDH1A2 in humans.
  • Human Raldh2 mRNA is indicated by Genbank accession number: NM_001206897
  • human Raldh2 protein is indicated by Genbank accession number: NP_001193826
  • mouse Raldh2 mRNA is indicated by Genbank accession number: NM_009022
  • mouse Raldh2 protein is Genbank accession number. : NP_033048
  • Dectin-1 ligand means a substance that specifically binds to Dectin-1 and includes agonists that bind to Dectin-1. Further, since it is presumed that the Dectin-1 ligand exerts the action of the present invention through the induction of Raldh2 expression, it is preferably a Raldh2 expression inducer.
  • Raldh2 expression inducer means a substance that significantly increases the expression of Raldh2 in at least dendritic cells by administration, or a composition containing the substance.
  • expression includes both the concept of transcription in which mRNA is synthesized based on the sequence of DNA and translation in which protein is synthesized based on the sequence of mRNA. Used.
  • the Raldh2 expression inducer is not particularly limited as long as it significantly increases Raldh2 expression (transcription or translation) in dendritic cells.
  • Raldh2 expression transcription or translation
  • GM-CSF granulocyte monocyte colony stimulating factor
  • glucan is not particularly limited as long as it is a substance having a glucan skeleton generally called glucan and can obtain the effects of the present invention, for example, ⁇ -1,3-glucan Is mentioned.
  • ⁇ -1,3-glucan may have a structure in which the main chain is a structure in which glucose is connected by ⁇ -1,3 bonds, and the side chain may have a structure in which glucose is connected by ⁇ 1-6 bonds or the like. Good.
  • Specific examples of ⁇ -1,3-glucan include curdlan, carboxymethylated curdlan, schizophyllan, zymosan, and lentinan.
  • ⁇ -1,3-glucan is preferable from the viewpoint of acting more reliably as a Dectin-1 ligand.
  • TLR agonist refers to a molecule that, when bound to TLR, provides the same stimulation as when a natural ligand is bound to TLR.
  • TLR agonists also include natural ligands.
  • the TLR agonist may be an agonist for any TLR.
  • a known or commercially available TLR agonist can be used.
  • Examples of TLR agonists include TLR1-9 agonists. These TLR agonists exhibit a common action because, for example, TLR1 to 9 have homology between human and mouse.
  • TLR1 agonists include various triacyl lipopeptides, functional fragments or analogs thereof, Pam3Cys-Ser- (Lys) 4, and the like.
  • TLR2 agonists include various lipopeptides, peptidoglycans, heat shock proteins, functional fragments or analogs thereof, Pam3Cys-Ser- (Lys) 4, MALP-2, FSL-1, and Hib-OMPC.
  • TLR3 agonist include double-stranded RNA analogs such as double-stranded RNA and polyinosine polycytidic acid (Poly (I: C)).
  • TLR4 agonists include various lipopolysaccharides, heat shock proteins, fibrinogen, heparin sulfate, hyaluronic acid, and functional fragments or analogs thereof, aminoalkyl glucosaminide phosphate (AGP), monophosphoryl lipid A (MPLA), RC- 529 etc. are mentioned.
  • AGP aminoalkyl glucosaminide phosphate
  • MPLA monophosphoryl lipid A
  • RC- 529 etc. are mentioned.
  • TLR5 is specifically expressed in CD11c-positive cells in the lamina limbal of the small intestine, and is known to recognize the pathogen bacterial flagellin and induce an immune response.
  • TLR5 agonists include recombinant flagellin and CBLB502.
  • TLR6 agonists include various diacyl lipopeptides, functional fragments or analogs thereof, FSL-1, Pam2Cys, and the like.
  • TLR7 recognizes virus-derived single-stranded RNA and activates the innate immune system.
  • TLR7 agonists include Imiquimod and its derivatives R-848, Loxoribine, Bropirimine, and Gardiquimod. Imiquimod, Loxoribine, Gardiquimod, and R-848 are also known as human TLR8 agonists.
  • TLR9 recognizes bacterial and viral CpG oligodeoxynucleotides (CpG ODN) and activates the innate immune system.
  • CpG ODN refers to a short synthetic oligodeoxynucleotide containing a CpG motif.
  • CpG ODN can also be used as the TLR9 agonist used in the vaccine adjuvant according to the present invention, but is not limited thereto.
  • a person skilled in the art can appropriately design CpG ODN to be a TLR9 agonist, and a commercially available one can also be used.
  • CpG ODN may be a salt thereof, for example, a sodium salt.
  • CpG ODN may be unmethylated CpG ODN.
  • CpG-ODN 1668, 2006, 1826, 2395 and the like can be mentioned.
  • TLR7 agonists TLR2 agonists, TLR4 agonists, TLR5 agonists, TLR7 agonists, and TLR9 agonists that can exhibit a similar response in cells are preferable from the viewpoint of reliably achieving the effects of the present invention, TLR7 agonists, and More preferred are TLR9 agonists.
  • the TLR7 agonist may be a TLR8 agonist.
  • One embodiment of the vaccine adjuvant according to the present invention includes incomplete Freund's adjuvant in addition to the Dectin-1 ligand and the TLR agonist.
  • “Freund's adjuvant” is an adjuvant that forms a water-in-oil emulsion.
  • incomplete Freund's adjuvant an agent that does not contain heat-killed Mycobacterium tuberculosis is called incomplete Freund's adjuvant. Call.
  • the vaccine adjuvant according to the present invention may contain an additional adjuvant substance other than the Dectin-1 ligand and the TLR agonist as long as the effects of the present invention are obtained.
  • additional adjuvant substances include aluminum hydroxide, sodium hydroxide, aluminum phosphate, calcium phosphate, alum, carboxyvinyl polymer and other precipitating adjuvants, Freund's complete adjuvant, liquid paraffin, lanolin, montanaide ISA763AV, montanaide ISA51 Etc.
  • the adjuvant for vaccines according to the present invention is preferably an adjuvant for administration together with at least one antigen in order to achieve the effects of the present invention more reliably.
  • the antigen used here is the same as the antigen used in the vaccine below.
  • the vaccine according to the present invention comprises at least one antigen in addition to the vaccine adjuvant according to the present invention.
  • the vaccine may be a vaccine composition containing the vaccine adjuvant and the antigen.
  • the vaccine adjuvant and the antigen may be separate from the viewpoint of storage stability of the vaccine.
  • antigen is a generic term for foreign substances that enter the living body from the outside or a part thereof and that cause an immune reaction in the living body.
  • Antigens include foreign pathogens such as bacteria and viruses that cause various infectious diseases, and allergens that cause allergic reactions among pollen and food.
  • Non-limiting examples of viral antigens include influenza virus, norovirus, rotavirus, human papilloma virus, varicella virus, measles virus, mumps virus, poliovirus, adenovirus, herpes virus, human coronavirus, rubella virus, HIV, smallpox Examples include at least one virus selected from the group consisting of virus, Ebola virus, hepatitis virus, Japanese encephalitis virus, parvovirus, cowpox virus, or a part thereof, or a component thereof inactivated or attenuated.
  • Non-limiting examples of bacterial antigens include the group consisting of E. coli such as H.
  • influenzae pneumococci, pertussis, tetanus, diphtheria, tuberculosis, enterohemorrhagic E. coli, cholera, salmonella, and methicillin-resistant Staphylococcus aureus
  • allergens include pollen (cedar pollen, grass pollen, asteraceae pollen, etc.), fungi, insects, food (soybeans, eggs, milk, etc.), and drugs (penicillin etc.).
  • the vaccine according to the present invention induces a mucosal immune response typified by antigen-specific IgA antibody production and Th17 response in addition to systemic immune response typified by antigen-specific IgG antibody production and Th1 response.
  • a mucosal immune response typified by antigen-specific IgA antibody production and Th17 response in addition to systemic immune response typified by antigen-specific IgG antibody production and Th1 response.
  • Whether or not a mucosal immune response has been induced can be confirmed by a known in-vitro or in-vivo method. For example, in the case of in vivo, the amount of antigen-specific IgA antibody in serum or stool is measured by ELISA or the like, and if the amount of antibody increases, it can be determined that a mucosal immune response has been induced.
  • IgA antibody-producing cells such as Peyer's patch cells are cultured, and the amount of antigen-specific IgA antibody contained in the culture supernatant is measured by ELISA or the like, and if the amount of the antibody increases It can be determined that a mucosal immune response was induced.
  • Whether or not a systemic immune response has been induced can also be confirmed by a known in-vitro or in-vivo method.
  • the amount of antigen-specific IgG antibody in serum is measured by ELISA or the like, and if the amount of antibody increases, it can be determined that a systemic immune response has been induced.
  • the vaccine according to the present invention may be administered by any method as long as it can induce a systemic immune response and a mucosal immune response, and includes, for example, transdermal administration, subcutaneous administration, intradermal administration, and intramuscular administration. It can be administered by a method selected from the group.
  • transdermal administration by a method selected from the group consisting of transdermal administration, subcutaneous administration, intradermal administration, and intramuscular administration
  • systemic Th1 response and IgG antibody production are more efficiently induced.
  • intramuscular administration is a concept including terms such as intramuscular injection, intramuscular injection, intramuscular administration, and intramuscular immunity.
  • the production of antigen-specific IgG antibody lasts for a long period (at least 10 weeks), and the production of antigen-specific IgA antibody peaks at 2-3 weeks after administration. It will last to the extent that the present inventors can maintain a very high titer of antigen-specific IgA antibody production for about 3 months by performing additional immunization in which only the antigen is administered to the mucosal surface after a certain period of time has elapsed since the vaccine administration, Further, it was found that antigen-specific IgA antibody production can be repeatedly recovered and maintained by repeating booster immunization in which at least an antigen is administered to various mucosal surfaces. It was also found that a strong antigen-specific Th17 response can be induced on the mucosal surface by administration of antigen in booster immunization.
  • booster immunization with administration of antigen may be performed by any method as long as IgA antibody production can be recovered and maintained, such as oral administration, nasal administration, transmucosal administration, Examples include administration methods applied directly to the mucosa, such as vaginal administration, ophthalmic administration, or rectal administration.
  • administration methods applied directly to the mucosa such as vaginal administration, ophthalmic administration, or rectal administration.
  • the antigen may be administered without using an adjuvant, or the antigen may be administered together with an adjuvant.
  • antigen-specific IgA production in the lung can be induced by boosting nasally, and antigen-specific IgA production in the digestive tract can be induced by oral administration. It has been confirmed to induce.
  • it is a vaccine against human papillomavirus that causes cervical cancer, it may be possible to prevent infection by administering vaginal administration.
  • booster immunization may be performed when it is desired to induce a mucosal immune response.
  • a vaccine containing several kinds of antigens is administered in advance, and if a booster immunization is performed with an antigen that is expected to be prevalent in that year prior to the season when influenza is prevalent every year, Mucosal immunity can suppress influenza virus infection itself.
  • the present invention also includes an immunity induction method including a step of administering the vaccine according to the present invention.
  • an immunity induction method further comprising a step of administering an antigen and performing booster at least once after a certain period of time after the step of administering the vaccine.
  • the present invention relates to a viral or bacterial infection comprising the step of administering a vaccine comprising an antigen derived from at least one virus or bacterium, a Dectin-1 ligand, and an adjuvant for a vaccine comprising a TLR agonist. Also includes prevention methods. Moreover, the method of preventing the infection of the virus or bacteria further including the process which administers an antigen and performs additional immunization after progress for a fixed period after the process of administering the said vaccine is also included. “Prevention method” means a method of preventing an infection or allergic reaction caused by an antigen before it develops.
  • the term “vaccine” is a pharmaceutical product used for the purpose of preventing infectious diseases, and includes inactivated or attenuated antigens. When a vaccine is administered to an animal such as a human, it induces an immune response, and thereafter can prevent the disease from becoming serious or serious due to an antigen contained in the vaccine.
  • the present invention also provides a method for treating a viral infection or bacterial infection, comprising a step of administering an immunity-inducing agent comprising a Dectin-1 ligand and a TLR agonist to a subject infected with a viral or bacterial infection.
  • an immunity-inducing agent comprising a Dectin-1 ligand and a TLR agonist
  • the treatment method of the viral infection or the bacterial infection which further includes the process of administering an antigen and performing additional immunization after progress for a fixed period after the process of administering the said immunity inducer is included.
  • “Therapeutic method” means a method of treating an infection or allergic reaction caused by an antigen after it has developed.
  • the step of administering the vaccine may be performed by any method as long as it can induce a systemic immune response and a mucosal immune response. It can be administered by a method selected from the group consisting of administration, subcutaneous administration, intradermal administration, and intramuscular administration.
  • the vaccine By administering the vaccine by a method selected from the group consisting of transdermal administration, subcutaneous administration, intradermal administration, and intramuscular administration, the vaccine consists of transdermal administration, subcutaneous administration, intradermal administration, and intramuscular administration.
  • Administration by a method selected from the group induces a systemic Th1 response and IgG antibody production more efficiently. Among them, it is preferable to administer the vaccine for intramuscular administration.
  • “after a certain period of time” may be any time after the disappearance of IgA antibody production induction by the first vaccine administration. For example, it can be 3 weeks, 2 to 3 months, 1 year, or several years after administration of the vaccine, and boosting may be performed when it is desired to induce a mucosal immune response.
  • the antigen may be administered by any method as long as the step of boosting at least once by administering the antigen can recover and maintain IgA antibody production.
  • examples include oral administration, nasal administration, transmucosal administration, vaginal administration, ophthalmic administration, and rectal administration.
  • the administration method applied directly to the mucous membrane Th17 response and IgA antibody production is more efficiently induced in the desired mucosa such as intestinal tract and airway, and more easily by oral administration Can be administered.
  • the antigen may be administered, or the antigen may be administered together with an adjuvant.
  • IgA-induced splenic cDC from spleen-derived classical dendritic cells (“spleen cDC”) stimulated with GM-CSF were treated with ovalbumin (OVA; 100 ⁇ g / ml) as an antigen and CpG ODN 1668 (1 ⁇ g / ml) as an adjuvant. ) Stimulated for 24 hours using alone or a combination of CpG ODN and GM-CSF (10 ng / ml).
  • R2 dendritic cells were stimulated with OVA (100 ⁇ g / ml) and CpG ODN 1668 (1 ⁇ g / ml).
  • Spleen cDCs were stimulated with and without OVA (100 ⁇ g / ml) and CpG ODN 1668 (1 ⁇ g / ml) plus GM-CSF (10 ng / ml).
  • dendritic cells (5 ⁇ 10 4 cells each) incorporating antigen (or PBS) were injected into the abdominal cavity of CD57BL / 6 mice. From day 21 to day 25, OVA was orally administered daily at 1 mg / mouse.
  • antigen-specific serum total IgG and fecal IgA were measured by ELISA.
  • splenic cDC SPDC in the figure
  • OVA and CpG ODN alone induced little IgA production, but when GM-CSF, which is known to induce Raldh2 expression, was added (in the figure) IgA production was induced more than SPDC + GM-CSF) and R2 dendritic cells (LPDC in the figure).
  • Figure 2 shows the outline of the experiment and the results. Curdlan and zymozan induced Raldh2 expression in splenic cDCs, similar to GM-CSF.
  • Fig. 3 shows the outline of the experiment and the results.
  • Antigen-specific IgG was induced with any adjuvant except the control without OVA, and the condition persisted for at least 7 weeks.
  • IgA was induced only when it contained both CpGNODN and curdlan.
  • CT cholera toxin
  • Figure 4 shows the outline and results of the experiment.
  • IgG was equally induced in both cases of IFA and CT alone and when CpG ODN and curdlan were also added.
  • IgA was remarkably induced when CpG ODN and curdlan were added compared to IFA and CT alone.
  • Figure 8 shows the outline of the experiment and the results.
  • IFN- ⁇ production and IL-17 production are induced, and by booster by oral administration of OVA, Th1 in the gastrointestinal tract It was confirmed that responses and Th17 responses were induced.
  • IL-4 was not induced, and it was considered that the Th2 response was not induced.
  • IFA, IFA + OVA + CpG ODN, IFA + OVA + curdlan, IFA + OVA + CpG ODN + curdlan were administered intramuscularly to mice, and 35 days later, OVA was administered intranasally at 1 ⁇ g / mouse, and 7 days later, antigen specific Serum total IgG and IgA in bronchoalveolar lavage fluid were measured by ELISA.
  • Fig. 9 shows the outline and results of the experiment.
  • CpG and curdlan were included in the adjuvant, it was confirmed that antigen-specific IgA production in the lung could be induced by booster immunization with nasal administration of OVA.
  • Figure 10 shows the outline and results of the experiment. It was confirmed that if at least one of CpGNODN and curdlan was included in the adjuvant, IFN- ⁇ production was induced and a Th1 response was induced in the lung. On the other hand, IL-17 production was significantly increased when both CpGpODN and curdlan were included in the adjuvant, and it was confirmed that the Th17 response was strongly induced when this adjuvant was used. On the other hand, IL-4 was not induced, and it was considered that the Th2 response was not induced (not shown).
  • Antigen-specific IgG was induced with any adjuvant except the control without OVA, and the condition persisted for at least 5 weeks.
  • IgA was induced only when it contained both CpGNODN and lentinan, and this induction rapidly disappeared after peaking at 3 weeks.
  • booster immunization with antigen only after immunization (intramuscular injection) with CpG ODN + lentinan
  • booster immunization was performed by single oral administration of OVA at 1 mg / mouse on day 42
  • antigen-specific fecal IgA was measured by ELISA
  • antigen-specific IgA-producing cells were measured by ELISpot.
  • IgG production was induced in all mice, and the effect was maintained before and after the boost.
  • IgA was hardly detected on the day of oral administration of OVA in any mouse, but antigen-specific IgA production was induced significantly higher in Dectin-1 hetero-deficient mice one week after the booster immunization.
  • the induction of IgA production was markedly reduced in Dectin-1 homo-deficient mice.
  • IFN- ⁇ production and IL-17 production were induced in intestinal mucosal lamina intestinal cells of Dectin-1 hetero-deficient mice, and Th1 and Th17 responses were induced in the digestive tract by booster immunization by oral administration of OVA. It was confirmed to be induced. However, IFN- ⁇ production and IL-17 production were markedly decreased in Dectin-1 homozygous mice. In all tissues, IL-4 was not induced, and it was considered that the Th2 response was not induced.
  • the vaccine adjuvant according to the present invention is industrially useful as an adjuvant for vaccines used for various infectious diseases caused by foreign pathogens such as bacteria and viruses, as well as allergic reactions caused by pollen and food as allergens. is there.

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Abstract

本発明は、Dectin-1リガンドと、TLRアゴニストとを含むワクチン用アジュバント、及び、当該ワクチン用アジュバントと少なくとも1つの抗原とを備えるワクチン等を提供する。

Description

ワクチン用アジュバント、ワクチン、及び免疫誘導方法
　本発明は、粘膜における抗原特異的IgA産生を効率よく誘導できるワクチン用アジュバント、及びこれを含むワクチン等に関する。
　従来、ウイルスや細菌による感染症に対するワクチンが数多く開発されているが、そのほとんどは、Th1またはTh2応答の誘導を通じてIgG抗体を産生させる全身性免疫応答を誘導するものである。このようなワクチンは、感染後の重症化を防ぐことに大きく貢献しているものの、感染の成立自体を阻止することはできない。多くの病原体の侵入経路は、目、鼻腔、口腔、咽頭、気道、消化器、泌尿生殖器などの粘膜で覆われた組織や臓器であることから、感染の成立自体を防ぐためには、粘膜における免疫応答を強化し侵入を阻止する必要がある。そのため、IgA抗体を代表とする粘膜免疫応答と、IgG抗体を代表とする全身性免疫応答の双方を誘導できるワクチンが求められている。
　粘膜面を介して、粘膜免疫応答と全身性免疫応答の両方を効果的に誘導する方法の一つとして、免疫応答を増強するための様々なアジュバントの利用が検討されている。例えば、粘膜投与のワクチンとして、病原体の不活化抗原と、2本鎖RNA及びグルカン類を含むアジュバントを組み合わせることが提案されている（特許文献１）。また、経鼻投与する免疫アジュバントに、アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する微生物の培養物を利用することも提案されている（特許文献２）。この微生物の培養物には、β-1,3-1,6-グルカンが含まれており、特許文献２では、当該培養物とPoly(I:C)を組み合わせることも提案されている。
特開２００９－２４２３６７号公報 特許第５２４２８５５号公報
　しかしながら、鼻腔などの局所の粘膜に投与するワクチンは、抗原を浸透させる効率が低く、粘膜内に存在する樹状細胞に適切に抗原を到達させることが困難である。また、投与部位の周辺にしか効果が期待されず、全身性の免疫応答の誘導が弱いという問題もある。加えて、経鼻免疫応答では、消化管などの他の粘膜組織で粘膜免疫応答の誘導はできないという問題もある。
　また、従来開発されてきたワクチンでは、とりわけ感染防御に有効なTh1応答の増強できるようなアジュバントが用いられてきたが、かかるアジュバントでは粘膜免疫応答を誘導する機能が得られない。
　そこで、本発明者らは、粘膜免疫応答の誘導に必要な機能を樹状細胞に与えることを基準としてアジュバントを選択することにより、全身性免疫応答に加えて粘膜免疫応答をも効率よく誘導できる全く新しい免疫法が開発できるのではないかと考え、検討を行った。
　すなわち、本発明は、全く新しい免疫法として、抗原特異的なIgA抗体とTh17応答の誘導、及び抗原特異的なIgG抗体とTh1応答の誘導を同時に行うことができるワクチン用アジュバント、及びかかるアジュバントを含むワクチンを提供することを課題とする。
　Uematsu, S. et al., Nat Immunol. 2008 Jul;9(7):769-76.（非特許文献１）には、腸管には、脾臓や骨髄に存在する樹状細胞とは異なり、抗原特異的なIgA抗体とTh17細胞を誘導できる特殊な樹状細胞が存在することが開示されている。そして、かかる特殊な腸管樹状細胞は、レチノイン酸合成酵素Raldh2を発現しており、レチノイン酸を合成することができ、このレチノイン酸合成能がIgA抗体の誘導には必須であることも非特許文献１には開示されている。
　また、Yokota A. et al. Int Immunol. 2009 Apr;21(4):361-377.（非特許文献２）には、腸管樹状細胞は、血中の単核球が腸管粘膜固有層に入り、腸内でGM-CSFとIL-4の影響を受けて分化することによって産生されることが開示されている。
　そこで、本発明者らは、これら文献に開示された内容を踏まえ、まず脾臓に存在する樹状細胞をGM-CSFで処理したところ、樹状細胞がRaldh2を発現し、抗原特異的IgA抗体を誘導できるようになることを見出した。また、β-1,3-グルカン等のグルカン類が樹状細胞におけるRaldh2の発現を誘導し、その結果、樹状細胞が抗原特異的IgA抗体誘導能を獲得することを見出した。
　さらに、β-1，3-グルカンと、TLR9アゴニストであるCpGオリゴデオキシヌクレオチドとを組み合わせたアジュバントを使用して抗原と共に投与すると、血中に抗原特異的なIgG抗体が誘導されるとともに、糞便中に抗原特異的なIgA抗体が誘導されることを見出した。この方法では、抗原特異的なIgG抗体産生の誘導は長期間持続したが、IgA抗体産生は一過性に上昇した後、消退した。しかしながら、抗原のみ粘膜面に投与することによって追加免疫を行ったところ、大量の抗原特異的IgA抗体が誘導され、IgA産生も3か月以上持続することを見出した。
　また、本発明者らが用いたβ-1,3-グルカンはDectin-1以外の自然免疫受容体を活性化することも報告されているが、β-1,3-グルカンとCpGオリゴデオキシヌクレオチドとを組み合わせたアジュバントを抗原と共に投与したDectin-1 ノックアウト（KO）マウスでは抗原特異的IgA抗体産生の誘導が消失したことから、IgA抗体産生を誘導するにあたってβ-1,3-グルカンが作用標的とする受容体はDectin-1であることを見出した。これは、Dectin-1を刺激する物質ならば、β-1,3-グルカンに限らず同様の作用効果を奏することを示唆する。
　このように、樹状細胞におけるDectin-1リガンドとTLRアゴニストとの組み合わせをアジュバントとして用いれば、全身性のTh1応答及びIgG抗体産生並びに粘膜のTh17応答及びIgA抗体産生が誘導されると共に、追加免疫を行う際に投与ルートを選択することにより腸管や気道など所望の粘膜でTh17応答とIgA抗体産生が再誘導されることを見出し、本発明を完成するに至った。
　すなわち、本発明は
〔１〕Ｄｅｃｔｉｎ－１リガンドと、
　ＴＬＲアゴニストと
を含むワクチン用アジュバント；
〔２〕
　前記Ｄｅｃｔｉｎ－１リガンドが、Ｒａｌｄｈ２遺伝子の発現誘導剤である、〔１〕に記載のワクチン用アジュバント。
〔３〕
　前記Ｒａｌｄｈ２遺伝子の発現誘導剤が、顆粒球単球コロニー刺激因子（ＧＭ－ＣＳＦ）又はグルカン類である、〔２〕に記載のワクチン用アジュバント。
〔４〕
　さらに、不完全フロイントアジュバントを含む、〔１〕から〔３〕のいずれかに記載のワクチン用アジュバント。
〔５〕
　少なくとも１つの抗原と共に投与するための、〔１〕から〔４〕のいずれかに記載のワクチン用アジュバント。
〔６〕
　少なくとも１つの抗原と、
　〔１〕から〔５〕のいずれかに記載のワクチン用アジュバントとを備えるワクチン。
〔７〕
　前記ワクチンは、前記抗原と、前記ワクチン用アジュバントとを含むワクチン組成物である、〔６〕に記載のワクチン。
〔８〕
　前記少なくとも１つの抗原は、ウイルス、若しくはその一部、若しくはその成分を不活化若しくは弱毒化したもの、細菌、若しくはその一部、若しくはその成分を不活化又は弱毒化したもの、又はアレルゲンである、〔６〕又は〔７〕に記載のワクチン。
〔９〕
　抗原特異的ＩｇＡ産生を誘導する、〔６〕から〔８〕のいずれかに記載のワクチン。
〔１０〕
　抗原特異的ＩｇＡ産生及び抗原特異的ＩｇＧ産生を誘導する、〔６〕から〔９〕のいずれかに記載のワクチン。
〔１１〕
　粘膜免疫応答を誘導する、〔６〕から〔１０〕のいずれかに記載のワクチン。
〔１２〕
　前記ワクチンの投与は、ワクチンを経皮投与、皮下投与、皮中投与、及び筋肉内投与からなる群より選択される方法で投与することによって行われる、〔６〕～〔１１〕のいずれかに記載のワクチン。
〔１３〕
　前記ワクチンの投与後、一定期間経過後に、抗原を投与する追加免疫を少なくとも１回行う免疫誘導方法に用いられる、〔６〕から〔１２〕のいずれかに記載のワクチン。
〔１４〕
　前記追加免疫は、経口投与、経鼻投与、経粘膜投与、経膣投与、経眼投与、及び直腸内投与からなる群より選択される方法で抗原を投与することによって行われる、〔１３〕に記載のワクチン。
〔１５〕
　前記追加免疫は、アジュバントを使用せずに抗原を投与することによって行われる、〔１３〕又は〔１４〕に記載のワクチン。
〔１６〕
　少なくとも１つの抗原と、
　Ｄｅｃｔｉｎ－１リガンドと、ＴＬＲアゴニストとを含むワクチン用アジュバントとを備えるワクチンを投与する工程
を含む免疫誘導方法。
〔１７〕
　前記ワクチンを投与する工程は、ワクチンを経皮投与、皮下投与、皮中投与、及び筋肉内投与からなる群より選択される方法で投与することによって行われる、〔１６〕に記載の免疫誘導方法。
〔１８〕
　前記ワクチンを投与する工程後、一定期間経過後に、抗原を投与して追加免疫を行う工程
をさらに含む、〔１６〕又は〔１７〕に記載の免疫誘導方法。
〔１９〕
　前記追加免疫を行う工程は、経口投与、経鼻投与、経粘膜投与、経膣投与、経眼投与、及び直腸内投与からなる群より選択される方法で抗原を投与することによって行われる、〔１８〕に記載の免疫誘導方法。
〔２０〕
　前記追加免疫を行う工程は、アジュバントを使用せずに抗原を投与することによって行われる、〔１８〕又は〔１９〕に記載の免疫誘導方法。
〔２１〕
　少なくとも１つのウイルス、細菌又はアレルゲンに由来する抗原と、
　Ｄｅｃｔｉｎ－１リガンドと、ＴＬＲアゴニストとを含むワクチン用アジュバントと、
を備えるワクチンを投与する工程
を含む、ウイルス感染症、細菌感染症又はアレルギーの予防方法。
　本発明によれば、アジュバントとして、Dectin-1リガンドとTLRアゴニストの組み合わせを使用するという簡単な方法で、所望の抗原に対して、Th1応答及び抗原特異的IgG抗体産生に代表される全身性免疫応答と、Th17応答及び抗原特異的IgA抗体産生に代表される粘膜免疫応答の双方を効果的に誘導することができるので、病原体の侵入と、病状の悪化の抑制の双方を実現することができる。
　また、上記アジュバントを使用して免疫応答の誘導を行うと全身性免疫応答の誘導は長期間持続する一方、粘膜免疫応答の誘導は比較的短期間で消失するが、さらに、抗原のみを粘膜面に投与して追加免疫を行うことにより、粘膜免疫応答の誘導も長期間持続させることができる。追加免疫の際、抗原の投与ルートを適宜選択することにより、腸管や気道など所望の部位に粘膜免疫応答を誘導することも可能である。
図１は、抗原（OVA）、CpG ODN、及びGM-CSFで刺激した脾臓由来樹状細胞をマウスに腹腔内投与した後、抗原を経口投与し、抗原特異的な血清total IgGと糞便中IgAを測定した結果を示す。 図２は、脾臓由来樹状細胞をグルカン類（ザイモザン又はカードラン）又は各種TLRアゴニストで刺激し、Raldh2の発現を測定した結果を示す。 図３は、抗原（OVA）と、アジュバント（CpG ODN及び／又はカードラン）とを含むIFAエマルジョンをマウスに筋注投与し、経時的に抗原特異的な血清total IgGと糞便中IgAを測定した結果を示す。 図４は、抗原（コレラトキシン）と、アジュバント（CpG ODN及びカードラン）を含むIFAエマルジョンをマウスに筋注投与し、3週間後に抗原特異的な血清total IgGと糞便中IgAを測定した結果を示す。 図５は、図４の実験の後、マウスにコレラトキシンを経口投与し、下痢の症状を確認した結果を示す。 図６は、抗原（OVA）と、アジュバント（CpG ODN及び／又はカードラン）とを含むIFAエマルジョンをマウスに筋注投与し、42日後に抗原で追加免疫し、その日及び1週間後の抗原特異的な血清total IgGと糞便中IgAを測定した結果を示す。 図７は、抗原（OVA）と、アジュバント（CpG ODN及び／又はカードラン）とを含むIFAエマルジョンをマウスに筋注投与し、42日後に抗原で追加免疫した後、経時的に抗原特異的な血清total IgGと糞便中IgAを測定した結果を示す。最初の追加免疫の後、13週目に2度目の追加免疫を行った。 図８は、抗原（OVA）と、アジュバント（CpG ODN及び／又はカードラン）とを含むIFAエマルジョンをマウスに筋注投与し、42日後に追加免疫し、その7日後にマウスから脾臓と腸管粘膜固有層の細胞を摘出して抗原存在下で培養し、4日後にIFN-γ、IL-4及びIL-17の産生を測定した結果を示す。 図９は、抗原（OVA）と、アジュバント（CpG ODN及び／又はカードラン）とを含むIFAエマルジョンをマウスに筋注投与し、35日後に抗原を経鼻投与して追加免疫を行い、その7日後に抗原特異的な血清total IgGと気管支肺胞洗浄液中IgAを測定した結果を示す。 図１０は、抗原（OVA）と、アジュバント（CpG ODN及び／又はカードラン）とを含むIFAエマルジョンをマウスに筋注投与し、35日後に抗原を経鼻投与して追加免疫を行い、その7日後に、マウスから肺粘膜固有層細胞を摘出して抗原存在下で培養し、4日後にIFN-γ及びIL-17産生をELISAで測定した。 図１１は、抗原（OVA）と、アジュバント（CpG ODN及び／又はカードラン）とを含むIFAエマルジョンをマウスに筋注投与し、35日後にMedroxyprogesteroneを投与し、42日後に抗原を膣内投与して追加免疫を行い、その7日後に、膣洗浄液中の抗原特異的IgAを測定した結果を示す。 図１２は、CpG ODNで刺激を加えて、又は加えずに、β-1，3-グルカンの受容体であるdectin-1の脾臓由来樹状細胞における発現を測定した結果を示す。 図１３は、抗原（OVA）とアジュバント（R-848単独、又はR-848とカードラン）を含むIFAエマルジョンをマウスに筋注投与し、28日目に抗原を経口投与して追加免疫を行った後、経時的に抗原特異的な血清total IgGと糞便中IgAを測定した結果を示す。最初の追加免疫から4週間後に2度目の追加免疫を行った。 図１４は、抗原（OVA）と、アジュバント（CpG ODN及び／又はレンチナン）とを含むIFAエマルジョンをマウスに筋注投与し、経時的に抗原特異的な血清total IgGと糞便中IgAを測定した結果を示す。 図１５は、抗原（OVA）と、アジュバント（CpG ODN及び／又はレンチナン）とを含むIFAエマルジョンをマウスに筋注投与し、42日後に抗原で追加免疫し、その日及び1週間後の抗原特異的な血清total IgGと糞便中IgAを測定した結果を示す。 図１６は、抗原（OVA）と、アジュバント（CpG ODN及び／又はレンチナン）とを含むIFAエマルジョンをマウスに筋注投与し、42日後に追加免疫し、その7日後にマウスから脾臓と腸管粘膜固有層の細胞を摘出して抗原存在下で培養し、4日後にIFN-γ、及びIL-17の産生を測定した結果を示す。 図１７は、抗原（OVA）と、アジュバント（CpG ODN及びカードラン）を含むIFAエマルジョンをDectin-1欠損マウスに筋注投与し、21日後に抗原特異的な血清total IgGと糞便中IgAを測定した結果を示す。 図１８は、抗原（OVA）と、アジュバント（CpG ODN及びレンチナン）とを含むIFAエマルジョンをDectin-1欠損マウスに筋注投与し、42日後に抗原で追加免疫し、その日及び1週間後の抗原特異的な血清total IgGと糞便中IgAを測定した結果を示す。 図１９は、抗原（OVA）と、アジュバント（CpG ODN及びカードラン）とを含むIFAエマルジョンをDectin-1欠損マウスに筋注投与し、42日後に追加免疫し、その7日後にマウスから脾臓と腸管粘膜固有層の細胞を摘出して抗原存在下で培養し、4日後にIFN-γ、及びIL-17の産生を測定した結果を示す。
（ワクチン用アジュバント）
　本発明に係るワクチン用アジュバントは、Dectin-1リガンドと、TLRアゴニストを含む。
　本明細書において用語「ワクチン」は、感染症の予防を目的として用いられる医薬品であり、失活又は弱毒化した抗原を含む。ワクチンは、ヒトなどの動物に投与されると、免疫応答を誘導し、以後、そのワクチンに含まれる抗原による感染症（アレルギー反応を含む）の罹患や重症化を防ぐことができる。以下に、本発明に係るワクチン用アジュバントが、本発明に係る作用効果を奏する理由等を、主として従来技術のワクチン（又はワクチン用アジュバント）の作用効果や動物の生理作用を介して説明する。
　まず、経鼻、経口などの粘膜に投与するワクチンは、粘膜免疫応答と全身性免疫応答が誘導されるのに対して、従来の筋注で投与するワクチンでは、粘膜免疫応答は誘導されず、全身性免疫応答のみが誘導される。ここで、樹状細胞はあまねく組織に存在しており、体内に侵入した抗原を認識すると、近傍のリンパ節に移動して抗体産生を含めた抗原特異的応答を誘導し、全身に波及させる。ただし、粘膜組織やそれに付属するリンパ節の樹状細胞は、非粘膜組織の樹状細胞とは違って、IgA抗体産生を誘導する機能をも備えている。誘導されたIgA抗体産生細胞は、このような樹状細胞の影響によって、付属する粘膜組織への移行を促進され、局所的に強い防御を発揮する。この樹状細胞の特性の違いが、粘膜にワクチンを投与した際と筋注によりワクチンを投与した際とのそれぞれ効果の差に大きく影響していると推察される。そのため、従来のワクチンでは、筋注で投与しても、そこにIgAが誘導できる樹状細胞が存在しないため、粘膜免疫応答が誘導することはできず、粘膜面を介して免疫をしないと粘膜免疫応答が誘導されない。なお、一般には、呼吸器でIgAを誘導したい場合は気道粘膜で、消化器でIgAを誘導したい場合は消化管粘膜で、生殖器でIgAを誘導したい場合は生殖器粘膜を介して免疫を付ける必要がある。一方、本発明に係るワクチンアジュバントを用いれば、抗原を粘膜組織ではない筋肉内に投与しても、粘膜組織での抗原特異的なIgA抗体の誘導ができ、加えて抗原特異的なIgG抗体の誘導をも同時に行うことができる。
　次に、粘膜に投与することで、全身性免疫応答を誘導することの困難性を説明する。一般に粘膜にワクチンを投与する場合と非粘膜組織にワクチンを投与する場合とを比較して、粘膜組織では免疫応答の誘導効率が低い。この要因の一つとしては、抗原を効率よく粘膜を透過させて内部の樹状細胞に到達させることが困難なことにある。さらにこの要因としては、粘膜の表面では上皮層が物理的障壁となっていること（例えば、上皮細胞同士が固く結合して隙間の小さい層を形成していること）、流動性のある粘液によって抗原が拡散してしまうこと、消化酵素によって抗原が分解されてしまうことなどが挙げられる。従来のワクチンにおいて経鼻免疫がよく行われるのは、他の粘膜に比べて比較的鼻粘膜が薄いからであるが、それでも免疫誘導効率は十分ではない。これを打開する手段の一つとして、例えば上皮層を破壊する細菌毒素がアジュバントとして用いられることもできるが、経鼻の場合で言えば神経を傷害して嗅覚障害（嗅球が近いため）や顔面麻痺を招く場合がある。また他の要因の一つとしては、粘膜組織では抗原に対して免疫不応答（免疫寛容）になる機構が発達している点がある。鼻腔や腸管などの粘膜は、常日頃から多種多様の外来抗原に曝されており、通常はそれらに対して負の応答を維持する。特に、消化管は経口免疫寛容というシステムを有しており、食べ物に対して免疫を強力に抑制する機構を有している。このため、経口ワクチンは免疫を活性化するのではなく、逆に抑制してしまう。一方、病原体が侵入した際に防御応答が誘導されるのは、病原体の体成分が自然免疫受容体を活性化して炎症を誘導し、負の応答を解除するためである。そのため、免疫応答の誘導効率を上げるために、自然免疫受容体を活性化する従来のアジュバントの併用が試みられるが、上記透過率の問題もあり、体内に抗原を直接打ち込む筋注免疫に比べると効果が十分ではない。
　また、本発明に係るワクチン用アジュバントを筋注投与する場合において、上述のような障害を克服するための工夫を述べる。従来においても樹状細胞を活性化して免疫応答の誘導効率を上げることが目的でアジュバントが併用されることがあるが、それは感染した病原体を駆除するために有効なTh1応答を増強することを主たる目的としている。上述のように、非粘膜組織の樹状細胞はIgA誘導機能がないというのが通常であり、そのような樹状細胞にIgA誘導機能を付加する目的でアジュバントを併用するという着想は知られていない。この着想に加えて、本発明において注目すべきは、筋注免疫に加えて行う粘膜面への抗原投与である。樹状細胞を粘膜型に変換するDectin-1リガンドと、樹状細胞を活性化するTLRアゴニストとを併用することにより、強い抗原特異的Th1応答を含む全身免疫応答と、それに加えて抗原特異的IgA産生メモリー細胞、抗原特異的Th17細胞を誘導し、全身の粘膜に移行させることができる。また、より高い抗原特異的IgA抗体価を得るために、その後少なくとも抗原をIgA誘導を望む粘膜面に負荷することで、より大量の抗原特異的IgAを誘導することができる。従来において、何も免疫をしていない粘膜に抗原だけを負荷しても、免疫は付きにくく、逆に免疫寛容が誘導される。しかし、筋注免疫によってIgAのメモリー細胞が全身に所定量誘導されているので、その後の追加免疫により爆発的に増えてIgAを産生する。一方、従来のTLRアゴニスト単独使用など、全身免疫系を活性化するアジュバントを用いてもIgGやTh1応答は誘導されるが、本発明のようにDectin-1リガンドを併用しないとIgAのメモリー細胞は作られない。
　このように本発明に係るワクチン用アジュバントや免疫誘導法は、粘膜に存在する樹状細胞の特性や、メモリーIgAが存在していると、抗原負荷によって速やかにIgA産生細胞が増殖し、大量のIgAを誘導するという粘膜免疫応答の詳細を熟知した上で練られた画期的なものであり、従来の筋注免疫や粘膜免疫の利点を全て獲得することができる。
　本明細書において用語「アジュバント」は、抗原と一緒に投与することにより、その抗原性を高めて免疫応答を誘導しやすくする物質を意味する。本発明においては、アジュバントとして、以下に詳述するDectin-1リガンド及びTLRアゴニストとを用いる。ワクチン用アジュバントとしては、Dectin-1リガンド及びTLRアゴニストを含む組成物であってもよいが、アジュバントの保存安定性の観点から、Dectin-1リガンドとTLRアゴニストとが別体であってもよい。
　本明細書において用語「Dectin-1」は、樹状細胞における受容体であり、β-1,3-グルカンに代表されるグルカン骨格を有する物質に特異的な受容体である。また、「Raldh2遺伝子」は、その翻訳産物が、レチナールからのレチノイン酸合成を触媒する酵素として知られる。本明細書において、「Raldh2遺伝子」はいずれの生物における遺伝子であってもよいが、ヒトにおいてはALDH1A2として知られている。ヒトRaldh2 mRNAはGenbankアクセッション番号：NM_001206897で示され、ヒトRaldh2タンパク質はGenbankアクセッション番号：NP_001193826で示され、マウスRaldh2 mRNAはGenbankアクセッション番号：NM_009022で示され、マウスRaldh2タンパク質はGenbankアクセッション番号：NP_033048で示される。
　本明細書において用語「Dectin-1リガンド」は、Dectin-1に特異的に結合する物質を意味し、Dectin-1に結合するアゴニストも包含する。また、Dectin-1リガンドは、Raldh2の発現誘導を介して本発明の作用を奏していることが推察されるため、Raldh2の発現誘導剤であることが好ましい。
　本明細書において用語「Raldh2の発現誘導剤」は、投与することによって少なくとも樹状細胞におけるRaldh2の発現を有意に上昇させる物質、又は当該物質を含む組成物を意味する。本明細書において用語「発現」は、特に断りが無い限り、DNAの配列に基づいてmRNAが合成される転写と、mRNAの配列に基づいてタンパク質が合成される翻訳の双方の概念を含むものとして用いられる。
　Raldh2の発現誘導剤は、樹状細胞におけるRaldh2の発現（転写又は翻訳）を有意に上昇させる限り特に限定されないが、例えば、顆粒球単球コロニー刺激因子（GM-CSF）又はグルカン類とすることができる。
　本明細書において用語「グルカン類」は、一般にグルカン類と呼ばれるグルカン骨格を有する物質であって、本発明の効果を得られる物質である限り特に限定されないが、例えば、β-1,3-グルカンが挙げられる。β-1,3-グルカンは、その主鎖がグルコースをβ-1,3結合で連結した構造であればよく、側鎖にグルコースをβ1-6結合等で連結した構造を有していてもよい。具体的に、β-1,3-グルカンとしては、例えば、カードラン、カルボキシメチル化カードラン、シゾフィラン、ザイモザン、及びレンチナンが挙げられる。グルカン類の中でも、β-1,3-グルカンが、Dectin-1リガンドとしてより確実に作用する観点から好ましい。
　本明細書において用語「TLRアゴニスト」は、TLRに結合すると、TLRに天然のリガンドが結合したときと同様の刺激を与える分子をいう。TLRアゴニストには、天然のリガンドも含まれる。本明細書において、TLRアゴニストは、いずれのTLRに対するアゴニストであってもよい。TLRアゴニストは、公知のものや市販のものを使用することができる。
　TLRアゴニストとしては、例えば、TLR1～9アゴニストが挙げられる。これらのTLRアゴニストは、例えばヒトとマウスとで、TLR1～9が相同性を有していることから、共通した作用を示す。
　TLR1アゴニストとしては、各種トリアシルリポペプチド、その機能的フラグメント又はアナログ、Pam3Cys-Ser-(Lys)4等が挙げられる。
　TLR2アゴニストとしては、各種リポペプチド、ペプチドグリカン、熱ショックタンパク質、それらの機能的フラグメント又はアナログ、Pam3Cys-Ser-(Lys)4、MALP-2、FSL-1、Hib-OMPC等が挙げられる。
　TLR3アゴニストとしては、二本鎖RNA、ポリイノシンポリシチジン酸（Poly(I:C)）等の二本鎖RNAアナログが挙げられる。
　TLR4アゴニストとしては、各種リポ多糖、熱ショックタンパク質、フィブリノーゲン、ヘパリン硫酸、ヒアルロン酸、及びこれらの機能的フラグメント又はアナログ、アミノアルキルグルコサミニドホスフェート（AGP）、モノホスホリルリピドA（MPLA）、RC-529等が挙げられる。
　TLR5は小腸粘膜固有層のCD11c陽性細胞に特異的に発現し、病原細菌のフラジェリンを認識して免疫応答を誘導することが知られている。TLR5アゴニストとしては、例えばリコンビナントフラジェリン、CBLB502等が挙げられる。
　TLR6アゴニストとしては、各種ジアシルリポペプチド、その機能的フラグメント又はアナログ、FSL-1、Pam2Cys等が挙げられる。
　TLR7は、ウイルス由来の一本鎖RNAを認識し、自然免疫系を活性化する。TLR7アゴニストとしては、例えば、Imiquimod、その誘導体であるR-848、Loxoribine、Bropirimine、Gardiquimodが挙げられる。Imiquimod、Loxoribine、Gardiquimod、及びR-848はヒトTLR8アゴニストとしても知られる。
　TLR9は、生体内では、細菌やウイルス由来のCpGオリゴデオキシヌクレオチド（CpG ODN）を認識し、自然免疫系を活性化する。CpG ODNとは、CpGモチーフが含まれた短い合成オリゴデオキシヌクレオチドをいう。本発明に係るワクチン用アジュバントに用いられるTLR9アゴニストとしても、CpG ODNを用いることができるが、これに限定されない。TLR9アゴニストとなるCpG ODNは、当業者が適宜設計することができ、市販のものを用いることもできる。本発明に用いる場合、CpG ODNはその塩であってもよく、例えばナトリウム塩とすることができる。CpG ODNは、非メチル化CpG ODNとしてもよい。例えば、CpG-ODN 1668、2006、1826、2395等が挙げられる。
　TLRアゴニストの中でも、本発明の作用効果を確実に奏する観点から、細胞内で類似した応答を示すことのできるTLR2アゴニスト、TLR4アゴニスト、TLR5アゴニスト、TLR7アゴニスト、及びTLR9アゴニストが好ましく、TLR7アゴニスト、及びTLR9アゴニストがより好ましい。TLR7アゴニストは、TLR8アゴニストであってもよい。
　本発明に係るワクチン用アジュバントの一態様は、Dectin-1リガンドとTLRアゴニストに加えて、不完全フロイントアジュバントを含む。「フロイントアジュバント」とは、油中水型エマルジョンを形成させるアジュバントであり、結核菌の加熱死菌を含む完全フロイントアジュバントに対して、結核菌の加熱死菌を含まないものを不完全フロイントアジュバントと呼ぶ。
　本発明に係るワクチン用アジュバントには、本発明の効果が得られる限り、Dectin-1リガンドとTLRアゴニスト以外の追加のアジュバント物質を含んでいてもよい。かかるアジュバント物質の非限定的な例として、水酸化アルミニウム、水酸化ナトリウム、リン酸アルミニウム、リン酸カルシウム、ミョウウバン、カルボキシビニルポリマー等の沈降性アジュバント、フロイント完全アジュバント、流動パラフィン、ラノリン、モンタナイドISA763AV、モンタナイドISA51等が挙げられる。
　本発明に係るワクチン用アジュバントは、少なくとも１つの抗原と共に投与するためのアジュバントであることが、本発明の作用をより確実に奏するために好ましい。ここで用いる抗原は、下記でワクチンに用いる抗原と同様である。
（ワクチン）
　本発明に係るワクチンは、本発明に係るワクチン用アジュバントに加えて、少なくとも１つの抗原を備える。ワクチンは、上記ワクチン用アジュバントと、上記抗原とを含むワクチン組成物であってもよいが、ワクチンの保存安定性の観点から、上記ワクチン用アジュバントと上記抗原とが別体であってもよい。
　本明細書において用語「抗原」は、外部から生体内に侵入する異物又はその一部であって、生体内で免疫反応を引き起こす物質の総称をいう。抗原には、各種感染症を引き起こす細菌やウイルスなどの外来病原体のほか、花粉や食物などのうちアレルギー反応を生じさせるアレルゲンも含まれる。
　ウイルス抗原の非限定的な例として、インフルエンザウイルス、ノロウイルス、ロタウイルス、ヒトパピローマウイルス、水痘ウイルス、麻疹ウイルス、ムンプスウイルス、ポリオウイルス、アデノウイルス、ヘルペスウイルス、ヒトコロナウイルス、風疹ウイルス、ＨＩＶ、天然痘ウイルス、エボラウイルス、肝炎ウイルス、日本脳炎ウイルス、パルボウイルス、牛痘ウイルス、からなる群より選択される少なくとも１つのウイルス、又はその一部、又はその成分を、不活化若しくは弱毒化したものが挙げられる。
　細菌抗原の非限定的な例として、インフルエンザ菌、肺炎球菌、百日咳菌、破傷風菌、ジフテリア菌、結核菌、腸管出血性大腸菌等の大腸菌、コレラ菌、サルモネラ菌、及びメチシリン耐性黄色ブドウ球菌からなる群より選択される少なくとも１つの細菌、又はその一部、又はその成分を、不活化若しくは弱毒化したものが挙げられる。
　アレルゲンの非限定的な例として、花粉（スギ花粉、イネ科花粉、キク科花粉等）、真菌、昆虫、食物（大豆、卵、牛乳等）、及び薬剤（ペニシリン等）が挙げられる。
　本発明に係るワクチンは、抗原特異的IgG抗体産生及びTh1応答に代表される全身性免疫応答に加えて、抗原特異的IgA抗体産生及びTh17応答に代表される粘膜免疫応答を誘導する。粘膜免疫応答が誘導されたか否かは、公知のin vitro又はin vivoの方法によって確認することができる。例えば、in vivoの場合、血清中や糞便中の抗原特異的IgA抗体量をELISA法等で測定し、当該抗体量が増大していれば粘膜免疫応答が誘導されたと判断することができる。また、in vitroの場合、例えばパイエル板細胞等のIgA抗体産生細胞を培養し、培養上清に含まれる抗原特異的IgA抗体量をELISA法等で測定し、当該抗体量が増大していれば粘膜免疫応答が誘導されたと判断することができる。
　全身性免疫応答が誘導されたか否かも、公知のin vitro又はin vivoの方法によって確認することができる。例えば、in vivoの場合、血清中の抗原特異的IgG抗体量をELISA法等で測定し、当該抗体量が増大していれば全身性免疫応答が誘導されたと判断することができる。
　本発明に係るワクチンは、全身性免疫応答及び粘膜免疫応答を誘導できる限り、どのような方法で投与してもよく、例えば、経皮投与、皮下投与、皮中投与、及び筋肉内投与からなる群より選択される方法で投与することができる。ワクチンを経皮投与、皮下投与、皮中投与、及び筋肉内投与からなる群より選択される方法で投与することにより、全身性のTh1応答及びIgG抗体産生がより効率的に誘導される。中では、筋肉内投与にワクチンを投与することが好ましい。なお、本明細書において、筋肉内投与は、筋肉内注射、筋注、筋中投与、及び筋注免疫といった用語を包含する概念である。
　後述する実施例に示されるとおり、本発明に係るワクチンを投与すると、抗原特異的IgG抗体産生は長期間（少なくとも10週間）持続し、抗原特異的IgA抗体産生は投与後2～3週間でピークとなる程度に持続する。また、本発明者らは、ワクチン投与から一定期間経過後に抗原だけを粘膜面に投与する追加免疫を行うことにより、非常に高力価の抗原特異的IgA抗体産生をさらに3ヶ月程度維持できること、また、各種粘膜面に少なくとも抗原を投与する追加免疫を繰り返すことにより、抗原特異的IgA抗体産生を繰り返し回復させ、維持できることを見出した。また、追加免疫における抗原の投与により粘膜面において強い抗原特異的Th17応答も誘導できることを見出した。
　本発明においては、樹状細胞におけるDectin-1リガンドとTLRアゴニストとの組み合わせをアジュバントとして用いることで、全身性のTh1応答及びIgG抗体産生並びに粘膜のTh17応答及びIgA抗体産生が誘導されると共に、追加免疫を行う際に投与ルートを選択することにより腸管や気道など所望の粘膜でTh17応答とIgA抗体産生が再誘導することができ、病原体の侵入と病状の悪化の双方を効果的に防ぐことができる。
　本明細書において「抗原を投与する追加免疫」は、IgA抗体産生を回復・維持できる限り、どのような方法で抗原を投与してもよく、例えば、経口投与、経鼻投与、経粘膜投与、経膣投与、経眼投与、又は直腸内投与等、粘膜に直接適用される投与方法が挙げられる。粘膜に直接適用される投与方法で投与することにより、腸管や気道など所望の粘膜でTh17応答とIgA抗体産生がより効率的に誘導され、また、経口投与で投与することにより、より簡易に対象に投与することができる。
　抗原を投与する追加免疫では、アジュバントを使用せずに抗原を投与してもよく、抗原をアジュバントと共に投与してもよい。
　例えば、後述する実施例に示されるとおり、追加免疫を経鼻投与で行うことにより肺における抗原特異的IgA産生を誘導することができ、経口投与で行うことにより消化管における抗原特異的IgA産生を誘導することが確認されている。その他、子宮頸がんを引き起こすヒトパピローマウイルスに対するワクチンであれば、経膣投与を行って感染を防ぐことが考えられる。
　ワクチン投与から、抗原のみを投与する追加免疫までの期間は特に限定されず、例えば、3週間、2～3ヶ月、1年、又は数年等とすることができる。一度ワクチンを投与すれば、その後、粘膜免疫応答を誘導したいときに追加免疫を行えばよい。
　例えば、抗原としてインフルエンザウイルスを用いる場合、予め数種の抗原を含むワクチンを投与しておき、毎年インフルエンザが流行する季節に先立って、その年に流行すると予想される抗原で追加免疫を行えば、粘膜免疫によってインフルエンザウイルスの感染自体を抑制することが可能となる。
（免疫誘導方法）
　本発明は、本発明に係るワクチンを投与する工程を含む免疫誘導方法も包含する。また、上記ワクチンを投与する工程後、一定期間経過後に、抗原を投与して追加免疫を少なくとも１回行う工程をさらに含む免疫誘導方法も包含する。
（予防方法）
　本発明は、少なくとも１つのウイルス又は細菌に由来する抗原と、Ｄｅｃｔｉｎ－１リガンドと、ＴＬＲアゴニストとを含むワクチン用アジュバントと、を備えるワクチンを投与する工程を含む、ウイルス感染症又は細菌感染症の予防方法も包含する。また、上記ワクチンを投与する工程後、一定期間経過後に、抗原を投与して追加免疫を行う工程をさらに含むウイルス又は細菌の感染症の予防方法も包含する。
　「予防方法」とは、抗原により引き起こされる感染症又はアレルギー反応を、発現する前に予防する方法を意味する。
（治療方法）
　本明細書において用語「ワクチン」は、感染症の予防を目的として用いられる医薬品であり、失活又は弱毒化した抗原を含む。ワクチンは、ヒトなどの動物に投与されると、免疫応答を誘導し、以後、そのワクチンに含まれる抗原による感染症の罹患や重症化を防ぐことができる。
　本発明は、ウイルス又は細菌の感染症に感染している対象に、Ｄｅｃｔｉｎ－１リガンドと、ＴＬＲアゴニストとを含む免疫誘導薬を投与する工程を含む、ウイルス感染症又は細菌感染症の治療方法も包含する。また、上記免疫誘導薬を投与する工程後、一定期間経過後に、抗原を投与して追加免疫を行う工程をさらに含むウイルス感染症又は細菌感染症の治療方法も包含する。
　「治療方法」とは、抗原により引き起こされる感染症又はアレルギー反応を、発現した後に治療する方法を意味する。
　上述した免疫誘導方法、予防方法及び治療方法において、ワクチンを投与する工程は、全身性免疫応答及び粘膜免疫応答を誘導できる限り、どのような方法で投与してもよく、例えば、ワクチンを経皮投与、皮下投与、皮中投与、及び筋肉内投与からなる群より選択される方法で投与することができる。ワクチンを経皮投与、皮下投与、皮中投与、及び筋肉内投与からなる群より選択される方法で投与することにより、ワクチンを経皮投与、皮下投与、皮中投与、及び筋肉内投与からなる群より選択される方法で投与することにより、全身性のTh1応答及びIgG抗体産生がより効率的に誘導される。中では、筋肉内投与にワクチンを投与することが好ましい。
　上述した免疫誘導方法、予防方法及び治療方法において、「一定期間経過後」とは、最初のワクチンの投与によるIgA抗体産生誘導が消失した以降、どの時期であってもよい。例えば、ワクチンの投与後、3週間、2～3ヶ月、1年、又は数年等とすることができ、粘膜免疫応答を誘導したいときに追加免疫を行えばよい。
　上述した免疫誘導方法、予防方法及び治療方法において、抗原を投与して追加免疫を少なくとも１回行う工程は、IgA抗体産生を回復・維持できる限り、どのような方法で抗原を投与してもよく、例えば、経口投与、経鼻投与、経粘膜投与、経膣投与、経眼投与、又は直腸内投与等、粘膜に直接適用される投与方法が挙げられる。粘膜に直接適用される投与方法で投与することにより、腸管や気道など所望の粘膜でTh17応答とIgA抗体産生がより効率的に誘導され、また、経口投与で投与することにより、より簡易に対象に投与することができる。
　抗原を投与して追加免疫を少なくとも１回行う工程では、抗原を投与してもよく、抗原をアジュバントと共に投与してもよい。
　本明細書において引用されるすべての特許文献及び非特許文献の開示は、全体として本明細書に参照により組み込まれる。
　以下、本発明を実施例に基づいて具体的に説明するが、本発明は何らこれに限定されるものではない。当業者は、本発明の意義を逸脱することなく様々な態様に本発明を変更することができ、かかる変更も本発明の範囲に含まれる。
１．GM-CSFで刺激した脾臓由来古典的樹状細胞（「脾臓cDC」）によるIgA誘導
　脾臓cDCを、抗原としてオボアルブミン（OVA; 100 μg/ml）と、アジュバントとしてCpG ODN 1668（1 μg/ml）単独、又はCpG ODNとGM-CSF（10 ng/ml）の組み合わせとを用いて、24時間刺激した。
　ここで、マウス小腸粘膜固有層細胞を、樹状細胞マーカーのCD11cとマクロファージマーカーのCD11bで分画すると、R1（樹状細胞）（CD11chighCD11blow）、R2（樹状細胞）（CD11chighCD11bhigh）、R3（マクロファージ）（CD11cintCD11bint）、R4（好酸球）（CD11cintCD11bhigh）の4群に分かれる。このR2樹状細胞が特異的にRaldh2を発現し、Th17応答及びIgA産生を誘導する（非特許文献１）。そこで、陽性コントロールとして、R2樹状細胞をOVA（100 μg/ml）及びCpG ODN 1668（1 μg/ml）で刺激した。脾臓cDCを、OVA（100 μg/ml）及びCpG ODN 1668（1 μg/ml）さらにGM-CSF (10 ng/ml)ありなしで刺激した。
　刺激後0日目と14日目に、抗原を取り込んだ樹状細胞（それぞれ5×104個）（またはPBS）を、CD57BL/6マウスの腹腔内に注射投与した。21日目から25日目に経口でOVAを1 mg/mouseで毎日投与し、32日目に抗原特異的な血清total IgGと、糞便中IgAをELISAで測定した。
　実験の概要と結果を図１に示す。脾臓cDC（図中SPDC）をOVAとCpG ODNのみで刺激してもIgA産生の誘導はわずかであったが、Raldh2の発現を誘導することが知られているGM-CSFを加えると（図中SPDC+GM-CSF）、R2樹状細胞（図中LPDC）以上にIgA産生が誘導された。
２．グルカン類による脾臓cDCにおけるRaldh2の発現誘導
　次に、グルカン類としてザイモザン（Zymosan：Saccharomyces cerevisiae由来の酵母細胞壁由来の成分; 25 ng/ml）及びカードラン（Curdlan：Agrobacterium spp., Alcaligenes spp.由来のβ-1,3-グルカン; 25 ng/ml）を用い、これらの物質で脾臓cDCを24時間刺激し、RNAを回収後、Raldh2のmRNAの発現をRT-PCRで測定した。
　実験の概要と結果を図２に示す。カードラン及びザイモザンは、GM-CSFと同様に、脾臓cDCにおけるRaldh2の発現を誘導した。
３．CpG ODN＋カードランの免疫（筋注）による消化管特異的なIgA誘導
　不完全フロイントアジュバント（IFA）に、抗原としてOVA（500 μg/ml）、アジュバントとしてCpG ODN 1668（5 μg/ml）及び／又はカードラン（5 mg /ml）を加えたIFAエマルジョンを、200 μl/mouseで筋注により投与した。その後、経時的（一週間に一回）に血清と糞便を採取し、抗原(OVA)特異的な血清total IgGと糞便中IgAをELISAで測定した。
　実験の概要と結果を図３に示す。OVAを含まないコントロール以外、いずれのアジュバントを用いても抗原特異的IgGは誘導され、その状態が少なくとも7週間持続した。一方、IgAは、CpG ODNとカードランの双方を含む場合にのみ誘導された。
４．CpG ODN＋カードランの免疫（筋注）によるコレラトキシン（CT）特異的なIgAの誘導
　次に、３．と同様の実験を、抗原としてCT（1 μg/mouse）を用いて行った。筋注による免疫後、3週間経過時に、抗原特異的な血清total IgGと糞便中IgAをELISAで測定した。
　実験の概要と結果を図４に示す。図中左に示されるとおり、IgGは、IFAとCTのみの場合と、CpG ODN及びカードランも加えた場合で、いずれでも同等に誘導された。一方、IgAは、IFAとCTのみの場合に比較して、CpG ODN及びカードランを加えた場合に、著しく高く誘導された。
５．CpG ODN＋カードランの免疫（筋注）によるCTに生じた下痢の改善
　４．の実験の後、マウスに20 μgのCTを経口投与し、下痢の症状を検討した。実験の概要と結果を図５に示す。正常な腸管では、固形の便が見られ、盲腸も小さい。一方、IFAのみ、又はIFAとCTのみ投与した場合には、便が水状となり、盲腸が肥大しているのが観察された。これに対し、IFA、CT、CpG ODN及びカードランを投与したマウスでは、固形の便が見られ、盲腸の肥大も見られなかった。
６．CpG ODN＋カードランの免疫（筋注）後の、抗原のみによる追加免疫の効果（１）
　IFAにOVAと、CpG ODN及び／又はカードランを加えて、又はいずれも加えずに、筋注によりマウスを免疫した後、42日目にOVAを1 mg/mouseで単回経口投与して追加免疫を行い、経口投与した日、及びその1週間後に、抗原特異的な糞便中IgAをELISAで、抗原特異的なIgA産生細胞をELISpotで測定した。
　実験の概要と結果を図６に示す。いずれの場合もIgG産生が誘導され、その効果は追加免疫の前後にわたって維持された。一方、IgAは、OVAを経口投与した日にはほとんど検出されなかったが、追加免疫から1週間後には、アジュバントにCpG ODNとカードランの双方を含む場合、他のアジュバントを使用した場合に比較して抗原特異的IgA産生が著しく高く誘導された。抗原特異的IgA産生細胞も、CpG ODNとカードランの双方を含む場合に、他のアジュバントを使用した場合に比較して、著しく増加した。
７．CpG ODN＋カードランの免疫（筋注）後の、抗原のみによる追加免疫の効果（２）
　６．と同様の実験を行った後、さらに長期間にわたって、抗原特異的な血清total IgGと糞便中IgAを経時的に測定した。実験の概要と結果を図７に示す。抗原特異的IgG量は追加免疫からその後13週間ほとんど低下せず、13週目に2度目の追加免疫を行うことによりわずかに上昇して当初の値まで回復した。一方、糞便中の抗原特異的IgA量は、徐々に低下して13週目にほとんどゼロとなったが、13週目にOVAを1 mg/mouseで単回経口投与して2度目の追加免疫を行うことにより著しく回復した。
８．CpG ODN＋カードランの免疫（筋注）後の、抗原のみによる追加免疫の効果（３）
　６．と同様の実験を行い、OVA経口投与による追加免疫後、7日目に、マウスから脾臓と腸管粘膜固有層の細胞を摘出して抗原存在下（OVA 100 μg/ml）で培養し、4日後にIFN-γ、IL-4及びIL-17の産生をELISAで測定した。
　実験の概要と結果を図８に示す。図示される通り、腸管粘膜固有層細胞では、アジュバントにカードラン及びCpG ODNを含む場合に、IFN-γ産生とIL-17産生が誘導され、OVAの経口投与による追加免疫で、消化管にTh1応答及びTh17応答が誘導されることが確認された。一方、IL-4は誘導されず、Th2応答は誘導されていないものと考えられた。
９．CpG ODN＋カードランの免疫（筋注）後の、抗原のみによる追加免疫の効果（４）
　IFA、IFA＋OVA＋CpG ODN、IFA＋OVA＋カードラン、IFA＋OVA＋CpG ODN＋カードランのそれぞれをマウスに筋注投与し、35日後にOVAを1 μg/mouseで経鼻投与して追加免疫を行い、7日後に、抗原特異的な血清total IgGと気管支肺胞洗浄液中IgAをELISAで測定した。
　実験の概要と結果を図９に示す。アジュバントにCpGとカードランの双方を含む場合、OVAの経鼻投与による追加免疫で、肺における抗原特異的IgA産生を誘導できることが確認された。
１０．CpG ODN＋カードランの免疫（筋注）後の、抗原のみによる追加免疫の効果（５）
　９．の実験において、OVAの経鼻投与から7日後に、マウスから肺粘膜固有層細胞を摘出し、抗原存在下（OVA 100 μg/ml）で培養して、4日後にIFN-γ、IL-4、及びIL-17産生をELISAで測定した。
　実験の概要と結果を図１０に示す。CpG ODNとカードランの少なくとも一方をアジュバントに含めば、IFN-γ産生が誘導され、肺においてTh1応答が誘導されることが確認された。一方、IL-17産生は、CpG ODNとカードランの双方をアジュバントに含む場合に、著しく高く誘導され、このアジュバントを使用するとTh17応答が強く誘導されることが確認された。一方、IL-4は誘導されず、Th2応答は誘導されていないものと考えられた（図示せず）。
１１．CpG ODN＋カードランの免疫（筋注）後の、抗原のみによる追加免疫の効果（６）
　IFAに、OVAのみ、OVAとCpG ODN、OVAとカードラン、又は、OVAとCpG ODNとカードランを加え、それぞれマウスに筋注投与し（0日目）、35日目にMedroxyprogesteroneをマウス1匹あたり2 mg皮下投与し、42日目にOVAをマウス1匹当たり100 μg膣内投与して、その1週間後に抗原特異的な膣洗浄液中IgAをELISAで測定した。
　実験の結果を図１１に示す。アジュバントにCpGとカードランの双方を含む場合、OVAの膣内投与による追加免疫で、膣における抗原特異的IgA産生を誘導できることが確認された。
１２．CpG ODN刺激による脾臓cDCにおけるDectin-1の発現の増強
　次に、β-1，3-グルカンを認識する受容体であるDectin-1の樹状細胞における発現を測定した。実験の概要と結果を図１２に示す。図中左に示されるとおり、脾臓由来樹状細胞では、Dectin-1の発現は多くないが、CpG ODNで刺激することによりDectin-1の発現が3倍以上上昇することが確認された。Dectin-1はTh17応答を誘導することが知られる。これらのことは、CpG ODNとβ-1，3-グルカンの双方をアジュバントに加えることにより、樹状細胞がβ-1，3-グルカンによる刺激を受けやすくなり、Th17応答が誘導されるという本発明のメカニズムを示す。
１３．R-848＋カードランによる免疫（筋注）と、抗原による追加免疫の効果
　IFA、IFA＋OVA＋R-848（100 μg/mouse）、又はIFA＋OVA＋R-848＋カードランをマウスに筋注して免疫し、28日後にOVAを1 mg/mouseで単回経口投与して追加免疫し、経時的に、抗原特異的な血清total IgGと糞便中IgAをELISAで測定した。R-848は、TLR7/8アゴニストである。
　実験の概要と結果を図１３に示す。いずれの場合も抗原特異的なIgG産生が誘導され、その効果は5週間目まで持続した。一方、IgA産生は、筋注から3週間目にピークを迎えてその後低下したが、4週間目の追加免疫によって、最初のピークよりもかなり高くIgA産生が誘導された。
１４．CpG ODN＋レンチナンの免疫（筋注）による消化管特異的なIgA誘導
　IFAに、抗原としてOVA（500 μg/ml）、アジュバントとしてCpG ODN 1668（5 μg/ml）及び／又はレンチナン（5 mg /ml）を加えたIFAエマルジョンを、200 μl/mouseで筋注により投与した。その後、経時的に血清と糞便を採取し、抗原特異的な血清total IgGと糞便中IgAをELISAで測定した。
　実験の概要と結果を図１４に示す。OVAを含まないコントロール以外、いずれのアジュバントを用いても抗原特異的IgGは誘導され、その状態が少なくとも5週間持続した。一方、IgAは、CpG ODNとレンチナンの双方を含む場合しか誘導されず、また、この誘導は3週間目にピークを迎えた後、急激に消失した。
１５．CpG ODN＋レンチナンの免疫（筋注）後の、抗原のみによる追加免疫の効果（１）
　IFAにOVAと、CpG ODN及び／又はレンチナンを加えて、又はいずれも加えずに、筋注によりマウスを免疫した後、42日目にOVAを1 mg/mouseで単回経口投与して追加免疫を行い、経口投与した日、及びその1週間後に、抗原特異的な糞便中IgAをELISAで、抗原特異的なIgA産生細胞をELISpotで測定した。
　実験の概要と結果を図１５に示す。いずれの場合もIgG産生が誘導され、その効果は追加免疫の前後にわたって維持された。一方、IgAは、OVAを経口投与した日にはほとんど検出されなかったが、追加免疫から1週間後には、アジュバントにCpG ODNとレンチナンの双方を含む場合、他のアジュバントを使用した場合に比較して抗原特異的IgA産生が著しく高く誘導された。抗原特異的IgA産生細胞も、CpG ODNとレンチナンの双方を含む場合に、他のアジュバントを使用した場合に比較して、著しく増加した。
１６．CpG ODN＋レンチナンの免疫（筋注）後の、抗原のみによる追加免疫の効果（２）
　１５．と同様の実験を行い、OVA経口投与による追加免疫後、7日目に、マウスから脾臓と腸管粘膜固有層の細胞を摘出して抗原存在下（OVA 100 μg/ml）で培養し、4日後にIFN-γ、IL-4及びIL-17の産生をELISAで測定した。
　実験の概要と結果を図１６に示す。図示される通り、腸管粘膜固有層細胞では、アジュバントにレンチナン及びCpG ODNを含む場合にのみ、IFN-γ産生とIL-17産生が誘導され、OVAの経口投与による追加免疫で、消化管にTh1応答及びTh17応答が誘導されることが確認された。いずれの組織においても、IL-4は誘導されず、Th2応答は誘導されていないものと考えられた。
１７．Dectin-1欠損マウスにおけるCpG ODN＋カードランの免疫（筋注）による消化管特異的なIgA誘導
　IFAに、抗原としてOVA（500 μg/ml）、アジュバントとしてCpG ODN 1668（5 μg/ml）及びカードラン（5 mg /ml）を加えたIFAエマルジョンを、200 μl/mouseでDectin-1ヘテロ欠損マウス（Clec7a+/-）とDectin-1ホモ欠損マウス（Clec7a-/-）に筋注により投与した。その3週後に血清と糞便を採取し、抗原特異的な血清total IgGと糞便中IgAをELISAで測定した。
　実験の概要と結果を図１７に示す。Dectin-1ヘテロ欠損マウスとDectin-1ホモ欠損マウスのいずれにおいても抗原特異的IgGは誘導されていたが、一方でIgAはDectin-1ヘテロ欠損マウスでは検出されるものの、Dectin-1ホモ欠損マウスでは検出されなかった。
１８．Dectin-1欠損マウスにおけるCpG ODN＋カードランの免疫（筋注）後の、抗原のみによる追加免疫の効果（１）
　IFAにOVAと、CpG ODN及びカードランを加えて、筋注によりDectin-1ヘテロ欠損マウスとDectin-1ホモ欠損マウスを免疫した後、42日目にOVAを1 mg/mouseで単回経口投与して追加免疫を行い、経口投与した日、及びその1週間後に、抗原特異的な糞便中IgAをELISAで測定した。
　実験の概要と結果を図１８に示す。いずれのマウスにおいてもIgG産生が誘導され、その効果は追加免疫の前後にわたって維持された。一方、IgAは、いずれのマウスにおいてもOVAを経口投与した日にはほとんど検出されなかったが、追加免疫から1週間後には、Dectin-1ヘテロ欠損マウスにおいて抗原特異的IgA産生が著しく高く誘導されたのに対して、Dectin-1ホモ欠損マウスではIgA産生の誘導が著減していた。
１９．Dectin-1欠損マウスにおけるCpG ODN＋カードランの免疫（筋注）後の、抗原のみによる追加免疫の効果（２）
　１８．と同様の実験を行い、OVA経口投与による追加免疫後、7日目に、マウスから脾臓と腸管粘膜固有層の細胞を摘出して抗原存在下（OVA 100 μg/ml）で培養し、4日後にIFN-γ、IL-4及びIL-17の産生をELISAで測定した。
　実験の概要と結果を図１９に示す。図示される通り、Dectin-1ヘテロ欠損マウスの腸管粘膜固有層細胞では、IFN-γ産生とIL-17産生が誘導され、OVAの経口投与による追加免疫で、消化管にTh1応答及びTh17応答が誘導されることが確認された。ただし、Dectin-1ホモ欠損マウスではIFN-γ産生とIL-17産生のいずれもが著減していた。いずれの組織においても、IL-4は誘導されず、Th2応答は誘導されていないものと考えられた。
　本発明に係るワクチン用アジュバントは、細菌やウイルスなどの外来病原体により引き起こされる各種感染症のほか、花粉や食物などをアレルゲンとして引き起こされるアレルギー反応に対して用いられるワクチン用アジュバントとして、産業上有用である。

Claims (21)

  1. 　Ｄｅｃｔｉｎ－１リガンドと、
    　ＴＬＲアゴニストと
    を含むワクチン用アジュバント。
  2. 　前記Ｄｅｃｔｉｎ－１リガンドが、Ｒａｌｄｈ２遺伝子の発現誘導剤である、請求項１に記載のワクチン用アジュバント。
  3. 　前記Ｒａｌｄｈ２遺伝子の発現誘導剤が、顆粒球単球コロニー刺激因子（ＧＭ－ＣＳＦ）又はグルカン類である、請求項２に記載のワクチン用アジュバント。
  4. 　さらに、不完全フロイントアジュバントを含む、請求項１から３のいずれか１項に記載のワクチン用アジュバント。
  5. 　少なくとも１つの抗原と共に投与するための、請求項１から４のいずれか１項に記載のワクチン用アジュバント。
  6. 　少なくとも１つの抗原と、
    　請求項１から５のいずれか１項に記載のワクチン用アジュバントとを備えるワクチン。
  7. 　前記ワクチンは、前記抗原と、前記ワクチン用アジュバントとを含むワクチン組成物である、請求項６に記載のワクチン。
  8. 　前記少なくとも１つの抗原は、ウイルス、若しくはその一部、若しくはその成分を不活化若しくは弱毒化したもの、細菌、若しくはその一部、若しくはその成分を不活化又は弱毒化したもの、又はアレルゲンである、請求項６又は７に記載のワクチン。
  9. 　抗原特異的ＩｇＡ産生を誘導する、請求項６から８のいずれか１項に記載のワクチン。
  10. 　抗原特異的ＩｇＡ産生及び抗原特異的ＩｇＧ産生を誘導する、請求項６から９のいずれか１項に記載のワクチン。
  11. 　粘膜免疫応答を誘導する、請求項６から１０のいずれか１項に記載のワクチン。
  12. 　前記ワクチンの投与は、ワクチンを経皮投与、皮下投与、皮中投与、及び筋肉内投与からなる群より選択される方法で投与することによって行われる、請求項６～１１のいずれか１項に記載のワクチン。
  13. 　前記ワクチンの投与後、一定期間経過後に、抗原を投与する追加免疫を少なくとも１回行う免疫誘導方法に用いられる、請求項６から１２のいずれか１項に記載のワクチン。
  14. 　前記追加免疫は、経口投与、経鼻投与、経粘膜投与、経膣投与、経眼投与、及び直腸内投与からなる群より選択される方法で抗原を投与することによって行われる、請求項１３に記載のワクチン。
  15. 　前記追加免疫は、アジュバントを使用せずに抗原を投与することによって行われる、請求項１３又は１４に記載のワクチン。
  16. 　少なくとも１つの抗原と、
    　Ｄｅｃｔｉｎ－１リガンドと、ＴＬＲアゴニストとを含むワクチン用アジュバントとを備えるワクチンを投与する工程
    を含む免疫誘導方法。
  17. 　前記ワクチンを投与する工程は、ワクチンを経皮投与、皮下投与、皮中投与、及び筋肉内投与からなる群より選択される方法で投与することによって行われる、請求項１６に記載の免疫誘導方法。
  18. 　前記ワクチンを投与する工程後、一定期間経過後に、抗原を投与して追加免疫を行う工程
    をさらに含む、請求項１６又は１７に記載の免疫誘導方法。
  19. 　前記追加免疫を行う工程は、経口投与、経鼻投与、経粘膜投与、経膣投与、経眼投与、及び直腸内投与からなる群より選択される方法で抗原を投与することによって行われる、請求項１８に記載の免疫誘導方法。
  20. 　前記追加免疫を行う工程は、アジュバントを使用せずに抗原を投与することによって行われる、請求項１８又は１９に記載の免疫誘導方法。
  21. 　少なくとも１つのウイルス又は細菌に由来する抗原と、
    　Ｄｅｃｔｉｎ－１リガンドと、ＴＬＲアゴニストとを含むワクチン用アジュバントと、
    を備えるワクチンを投与する工程
    を含む、ウイルス感染症又は細菌感染症の予防方法。
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