WO2013027770A1 - ルシフェラーゼの発光基質 - Google Patents

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WO2013027770A1
WO2013027770A1 PCT/JP2012/071207 JP2012071207W WO2013027770A1 WO 2013027770 A1 WO2013027770 A1 WO 2013027770A1 JP 2012071207 W JP2012071207 W JP 2012071207W WO 2013027770 A1 WO2013027770 A1 WO 2013027770A1
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luciferin
firefly
acid
luciferase
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繁 西山
毅 斉藤
昌次郎 牧
治樹 丹羽
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国立大学法人電気通信大学
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    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
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    • G01N21/75—Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated
    • G01N21/76—Chemiluminescence; Bioluminescence
    • G01N21/763—Bioluminescence

Definitions

  • the present invention relates to a luciferin analog. More specifically, the present invention relates to a luciferin analog modified so that the emission wavelength by luciferase is shifted to the longer wavelength side.
  • the firefly bioluminescence system is said to have a very high luminous efficiency and to convert energy into light most efficiently.
  • the interpretation of the molecular mechanism of bioluminescence is also progressing.
  • luciferin which is a luminescent substrate, emits light through a chemical reaction by the action of a luminescent enzyme luciferase.
  • the luminescent substrate is adenylylated (AMP) in the presence of adenosine triphosphate (ATP) and divalent magnesium ion (Mg 2+ ) in the luminescent enzyme, and the adenylyl derivative is the active substrate.
  • AMP adenylylated
  • ATP adenosine triphosphate
  • Mg 2+ divalent magnesium ion
  • firefly bioluminescence has very high luminous efficiency, and the elucidation of the molecular mechanism of bioluminescence is progressing, so a wide variety of luminescent materials using firefly bioluminescence systems are sold by many companies. Yes.
  • the development of firefly bioluminescence-related luminescent materials is progressing mainly in the medical biochemical field, research and development from the protein (enzyme) side is generally active, but low molecular weight compounds (substrates) There is very little approach from the side. In particular, there is almost no research on the relationship between structure and activity, such as skeleton transformation of luminescent substrates.
  • the luminescent enzyme can be supplied inexpensively by recombinant technology
  • the luminescent labeling material using the firefly bioluminescent system supplied as a kit product is not cheap. This is due to the fact that the luminescent substrate is luciferin.
  • D-form luciferin which is a natural luminescent substrate, is synthesized from D-cysteine, which is an unnatural amino acid, but D-cysteine is very expensive.
  • ⁇ Needs and Status of Long Wavelength Luminescence Using Bioluminescence System> In order to observe multi-phenomena, multi-color emission is also required in detection systems using labels. For this reason, it is desirable that the wavelength range of the labeling material that can be used in the detection system is wider. For example, for research using multicolor light emission, it is desirable to prepare a labeling material having light emission at a wavelength of about 450 nm to 650 nm or more, particularly 680 nm or more, as a label. Further, for use in deep in vivo labeling, a red light emitting labeling material is desired from the viewpoint that long wavelength light has better light transmittance than short wavelength light.
  • near-infrared light having a wavelength of 650 to 900 nm is used for optical measurement of living tissue.
  • Visible light 400 to 700 nm
  • the absorption of water increases, so light cannot travel through the living body.
  • the near-infrared wavelength region is easily transmitted through a living body, and is also called a “biological window”.
  • firefly bioluminescence is generated by a chemical reaction between luciferin and luciferase.
  • genetically modified so that a luminescent enzyme is made in advance in the target organ, and then luciferin is intravenously administered to the individual or administered to the whole body by intraperitoneal administration.
  • the expressed target organ emits light.
  • cancer if cancer is transplanted into a target organ, it can be used for visualization of cancer and as basic research for regenerative medicine if the target organ is an organ of another organism.
  • a long wavelength material that emits light in the window region of a living body is considered to have high in vivo permeability and facilitate observation from outside the living body.
  • Non-patent Document 1 Promega Corporation: Chroma-Luc: About 613nm (Non-patent Document 1) This system uses a mutant of clicked beetle (click beetle) and a natural firefly luminescent substrate. 2. Toyobo Co., Ltd .: MultiReporter Assay System-Tripluc: About 630nm (Non-patent document 2) This system is a system using a railworm red luminescent enzyme and a natural firefly luminescent substrate.
  • the luminescent color is changed using luciferase genes of green luminescence luciferase (SLG, maximum emission wavelength 550 nm), orange luminescence luciferase (SLO, 580 nm) and red luminescence luciferase (SLR, 630 nm).
  • SLG maximum emission wavelength 550 nm
  • SLO orange luminescence luciferase
  • SLR red luminescence luciferase
  • the present inventors also disclosed a luciferin-like compound in Patent Document 2. These compounds are compounds having the same skeleton as luciferin. Furthermore, the present inventors have disclosed in Patent Document 4 that luciferin-like compounds having a skeleton different from luciferin have various emission wavelengths. Also in these luciferin-like compounds, it is desired to further shift the emission wavelength to the longer wavelength side.
  • an object of the present invention is to provide a novel luminescent substrate in which the emission wavelength in the firefly bioluminescence system is shifted to a longer wavelength side compared to a conventional luminescent substrate.
  • the present inventors prepared a group of analogs of a luminescent substrate having a structure similar to luciferin, and analyzed the emission wavelength. As a result, it has been found that the emission wavelength shifts to the longer wavelength side by having a modification at a specific position in the structure of luciferin and luciferin analog.
  • the present invention provides a compound having the following general formula I or a salt thereof: Where Z is And R 1 is H or C 1-4 alkyl; R 4 is OH or NR 2 R 3 , wherein R 2 and R 3 are H or C 1-4 alkyl, n is 0, 1, 2 or 3.
  • the present invention also provides the above compound or a salt thereof, wherein R 1 , R 2 and R 3 are H and R 4 is OH.
  • the present invention provides a luciferase luminescent substrate comprising the above-described compound.
  • the present invention provides a luminescence detection kit comprising the described compound.
  • the present invention provides a luciferin and a luciferin analog that are modified without impairing the luminescence activity.
  • the present invention provides a novel luminescent substrate in which the emission wavelength in the firefly bioluminescence system is shifted to a longer wavelength side compared to conventional luminescent substrates.
  • the present invention provides a luciferin analog having luminescence activity.
  • the luciferin analog refers to a substance that generates luminescence by reacting with luciferase or a luciferase variant.
  • the modified luciferase refers to a luciferase protein whose substrate characteristics and emission wavelength are changed by modifying the luciferase gene.
  • the present invention provides compounds having the following general formula or salts thereof: Where Z is And R 1 is H or C 1-4 alkyl; R 4 is OH or NR 2 R 3 , wherein R 2 and R 3 are H or C 1-4 alkyl, n is 0, 1, 2 or 3.
  • R 1 , R 2 and R 3 can be H and R 4 can be OH.
  • the compound marked with Markush on the benzene ring indicates that the binding site is arbitrary, but in the compound of the present invention, Z can be the following compound: Where R 4 is OH or NR 2 R 3 , where R 2 and R 3 are H or C 1-4 alkyl.
  • the present invention provides a firefly luciferin analog in which the 7-position of the benzothiazole moiety is modified with an allyl group.
  • luciferin has the following structure.
  • Modification may be performed on the firefly luciferin analog.
  • the modification means that an arbitrary group is bonded to an arbitrary compound.
  • the modification site can be the site corresponding to position 7 of the benzothiazole moiety.
  • it can be a compound having the following general formula I:
  • R 1 is H or C 1-4 alkyl
  • X and Y are each independently C, N, S or O.
  • C 1-4 alkyl refers to a saturated linear or branched alkyl group containing 1 to 4 carbon atoms, such as methyl, ethyl, n-propyl, iso-propyl, n-butyl. , Iso-butyl, sec-butyl and tert-butyl.
  • C 1 -C 3 alkyl refers to a saturated linear or branched alkyl group containing from 1 to 3 carbon atoms (eg, methyl, ethyl or iso-propyl).
  • R 1 may be C 1-4 alkyl.
  • Patent Document 2 shows that a luciferin-like compound in which the portion corresponding to the R 1 portion of the compound of the present invention is AMP can serve as a substrate for a firefly bioluminescence system. Therefore, such lower alkyls as substitutions are unlikely to affect activity.
  • X and Y can each independently be C, N, S or O.
  • the heteroatoms of X and Y may be C, N, S or O.
  • the various luciferin-like compounds described in the above-mentioned Patent Document 2 by the present inventors include luciferin-like compounds in which the corresponding parts of the compound of the present invention are various heteroatoms as a substrate for a firefly bioluminescence system. The results obtained are shown.
  • the invention provides the following compound, wherein in general formula I R 1 is H, X is N and Y is S:
  • the compound having the above formula emits light at an emission wavelength of approximately 605 nm by reaction with firefly luciferase.
  • the present invention provides a compound having the following general formula II:
  • R 1 is H or C 1-4 alkyl
  • X and Y are each independently C, N, S or O
  • n is 0, 1, 2 or 3.
  • R 1 may be C 1-4 alkyl in general formula II.
  • X and Y can be each independently C, N, S or O.
  • heteroatoms of X and Y may be C, N, S or O.
  • olefin chain unit represented as “n” in the general formula II can be changed to a desired length.
  • the invention provides the following compound, wherein R 1 is H, X is N, Y is S and n is 1 in general formula II To:
  • the compound having the above formula emits light at an emission wavelength of about 690 nm by reaction with firefly luciferase.
  • the present invention provides a compound having the following general formula III:
  • R 1 is independently H or C 1-4 alkyl
  • X and Y are each independently C, N, S or O
  • n is 0, 1, 2 or 3.
  • R 1 may be C 1-4 alkyl.
  • X and Y can each independently be C, N, S or O.
  • heteroatoms of X and Y may be C, N, S or O.
  • olefin chain unit represented as “n” in the general formula III can be changed to a desired length.
  • the —OH group may be substituted with a —NR 2 R 3 group.
  • R 2 and R 3 can each independently be H or C 1-4 alkyl.
  • R 2 and R 3 may be C 1-4 alkyl.
  • a luciferin-like compound in which the moiety corresponding to the —OH group of the compound of the present invention is —N (CH 3 ) 2 group can be a substrate of a firefly bioluminescence system. Results are shown. Therefore, such NR 2 R 3 groups as substitutions are unlikely to affect activity.
  • the modified luciferin and the luciferin analog include salts thereof.
  • a “salt” is envisioned only in the compounds of the present invention where any portion of the compound can form a base.
  • salt includes hydrochloric acid, hydrobromic acid, hydroiodic acid, sulfuric acid, sulfamic acid, phosphoric acid, nitric acid, phosphorous acid, nitrous acid, citric acid, formic acid, acetic acid, oxalic acid, maleic acid, lactic acid , Tartaric acid, fumaric acid, benzoic acid, mandelic acid, cinnamic acid, pamoic acid, stearic acid, glutamic acid, aspartic acid, methanesulfonic acid, ethanedisulfonic acid, p-toluenesulfonic acid, salicylic acid, succinic acid, trifluoroacetic acid and Any salt with an inorganic or organic acid that is non-toxic to living organisms, or where the nature of the compound of formula I is acidic, an alkali or alkaline earth base such as hydroxylated Also included are salts with inorganic bases such as sodium, potassium hydroxide
  • modified luciferin and luciferin analog of the present invention can be produced, for example, according to the procedures described in the following examples. More detailed procedures are described in the examples below, but compounds of general formula I can be prepared, for example, according to the following procedures.
  • a hydroxyl group of 2-cyano-6-hydroxybenzothiazole obtained by demethoxylation of commercially available 2-cyano-6-methoxybenzothiazole is allylated, and an allyl group is introduced at the 7-position by Claisen rearrangement.
  • -Cyano-7-allyl 6-hydroxybenzothiazole 4 is obtained.
  • D-cysteine is reacted at room temperature in the presence of potassium carbonate in methanol or neutralized with hydrochloric acid to obtain 7-allyl firefly luciferin 5.
  • 2-cyano-6-methoxybenzothiazole is used as a starting material and reacted with pyridine hydrochloride to obtain 2-cyano-6-hydroxybenzothiazole.
  • 2-Cyano-6-hydroxybenzothiazole is then reacted with allyl bromide to give 6-allyloxy-benzothiazole-2-carbonitrile.
  • 6-allyloxy-benzothiazole-2-carbonitrile is heated and melted at 180 ° C. in an argon atmosphere to cool the reaction mixture, and then 7-allyl-6-hydroxybenzothiazole-2-carbonitrile is obtained. .
  • 7-allyl-6-hydroxybenzothiazole-2-carbonitrile is heated and melted at 180 ° C. under an argon atmosphere to obtain 7-allyl-6-hydroxybenzothiazole-2-carbonitrile.
  • 2-cyano-7-allyl-6-hydroxybenzothiazole and D-cysteine hydrochloride monohydrate are dissolved in methanol: distilled water and 7-allyl-firefly is added by adding potassium carbonate under argon atmosphere. Luciferi can be obtained.
  • Nitric acid is added to commercially available 2-chlorobenzothiazole by adding potassium nitrate under ice-cooling in concentrated sulfuric acid, and the resulting 2-chloro-6-nitrobenzothiazole is reacted with tin in hydrochloric acid to reduce the nitro group to an amino group.
  • 2-chloro 6-aminobenzothiazole Derived from 2-chloro 6-aminobenzothiazole. To this, potassium cyanide is added in DMSO solvent under an argon atmosphere, and heated to reflux overnight to give 2-cyano 6-aminobenzothiazole. Allyl bromide and potassium carbonate are reacted in a DMF solvent to allylate the amino group and introduce an allyl group at the 7-position by azaclizen transition.
  • potassium carbonate and cysteine in methanol, stirring, and neutralizing with hydrochloric acid, a 7-allyl-aminoluciferin type compound can be obtained.
  • the corresponding compounds can be synthesized by procedures similar to the synthetic procedures described above, starting from starting materials in which the substituents of the compounds of general formula I are replaced with the desired substituents. Will. Those skilled in the art will also appreciate that the substituents of the compounds can be substituted with the desired substituents in the appropriate steps of the synthetic procedure. Alternatively, in the last step, the compound having the corresponding R 1 could be obtained by substituting the carboxylic acid moiety with the desired ester.
  • diallyl 12 is obtained by diallylation of commercially available hydroxynaphthoic acid 11.
  • An allyl group is introduced into the aromatic ring by Claisen rearrangement, and the ester moiety is reduced to hydroxymethylene by DIBAL-H to obtain 14.
  • Compound 15 is obtained by carbonization by oxidation and wittig reaction. Similarly, by repeating reduction and carbon increase, the double bond sites can be increased to a desired number.
  • the ester moiety is hydrolyzed to a carboxyl group, amide-bonded with a D-cysteine derivative, and cyclized to obtain compound 20.
  • Compound II can be obtained by hydrolyzing the ester moiety using esterase or lipase.
  • 2-naphthoic acid is dissolved in acetone and reacted with potassium carbonate and allyl bromide under ice cooling to obtain compound 2.
  • Compound 2 is heated at 200 ° C. to give compound 3.
  • Compound 3 is then dissolved in tetrahydrofuran, reacted with t-butyldimethylsilyl chloride and triethylamine at room temperature, and further reacted with diisobutylaluminum hydride at ⁇ 78 ° C. to give compound 14.
  • Compound 14 is then dissolved in dichloromethane, reacted with manga oxide at room temperature, and the product is further dissolved in benzene and reacted with (carbomethoxymethylene) triphenylphosphorane at room temperature to give compound 15. .
  • Compound 15 is then dissolved in isopropyl alcohol and reacted with 1M aqueous sodium hydroxide to give compound 16.
  • D-cysteine-S-trityl compound is dissolved in methanol and reacted with 1,4-dioxane solution of 4N hydrogen chloride to obtain compound 18.
  • Compound 16 and Compound 18 are dissolved in pyridine and reacted with 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride and 1-hydroxybenzotriazole to obtain Compound 19.
  • Compound 19 is then dissolved in dichloromethane and reacted with triphenylphosphine oxide and trifluoromethanesulfonic anhydride at 0 ° C. to give compound 20.
  • compound 20 is dissolved in tetrahydrofuran, ethanol and 10 m ammonium carbonate aqueous solution and reacted with porcine pancreatic lipase at 40 ° C. to obtain compound 21.
  • the amino group of commercially available 6-aminonaphthyl aldehyde is allylated, and the allyl group is introduced at the 7-position by azaclizen transition.
  • the ⁇ -unsaturated ester is obtained by carbon increase by wittig reaction. By repeating the reduction of the ester portion and the increase of carbon, the double bond site (n) can be increased to a desired number.
  • the amino group is dialkylated, the ester moiety is hydrolyzed to a carboxyl group, amide-bonded with a D-cysteine derivative, and cyclized to obtain an ester.
  • the corresponding compounds can be synthesized by procedures similar to the synthetic procedures described above, starting from starting materials in which the substituents of the compounds of general formula II are replaced with the desired substituents. Will. Those skilled in the art will also appreciate that the substituents of the compounds can be substituted with the desired substituents in the appropriate steps of the synthetic procedure. Alternatively, in the last step, the methyl ester moiety could be replaced with the desired ester to obtain the corresponding R 1 compound. Furthermore, by changing the length of the olefin portion of the compound used as the starting material, it would be possible to obtain a compound having the desired length of n in general formula II.
  • the corresponding compound III can be synthesized by a procedure similar to the synthetic procedure described above, starting from a starting material in which the compound of general formula II is replaced with the desired backbone and substituents. Will. Those skilled in the art will also appreciate that the substituents of the compounds can be substituted with the desired substituents in the appropriate steps of the synthetic procedure. Alternatively, in the last step, the methyl ester moiety could be replaced with the desired ester to obtain the corresponding R 1 compound. Furthermore, by changing the length of the olefin moiety of the compound used as the starting material, it would be possible to obtain a compound having the desired length of n in general formula III.
  • the hydroxyl group of commercially available 4-hydroxybenzaldehyde is allylated, and an allyl group is introduced at the 3-position by azaclizen transition.
  • the ⁇ -unsaturated ester is obtained by carbon increase by wittig reaction. By repeating the reduction of the ester portion and the increase of carbon, the number of double bond sites can be increased to a desired number.
  • the ester moiety is hydrolyzed to a carboxyl group, amide-bonded with a D-cysteine derivative, and cyclized to obtain an ester form.
  • Compound III can be obtained by hydrolyzing the ester moiety using esterase or lipase.
  • cyclization can be carried out using a reaction similar to the reaction for obtaining the compound 10.
  • the compound can be hydrolyzed using a reaction similar to that for obtaining compound 11.
  • the amino group of commercially available 4-dimethylaminobenzaldehyde is allylated, and the allyl group is introduced at the 3-position by azaclizen transition.
  • the ⁇ -unsaturated ester is obtained by carbon increase by wittig reaction. By repeating the reduction of the ester portion and the increase of carbon, the double bond site (n) can be increased to a desired number.
  • the ester moiety is hydrolyzed to a carboxyl group, amide-bonded with a D-cysteine derivative, and cyclized to obtain an ester form.
  • a 3-allyl-dimethylaminodiene type compound can be obtained by hydrolyzing the ester moiety using esterase or lipase.
  • 4-aminobenzaldehyde is used instead of 4-dimethylaminobenzaldehyde as a starting material
  • a 3-allyl-dimethylaminodiene type compound can also be obtained by using 4-nitrobenzaldehyde as a starting material and reducing the nitro group to an amino group and conducting the same reaction.
  • luciferin and luciferin analogs are modified with an allyl group at the 7-position of the benzothiazole ring moiety, the 6-position of the phenol moiety, and the 5-position of the naphthol moiety according to the procedure described in JP 2010-180191 A be able to.
  • the compound of the present invention emits light by being oxidized by a luminescent beetle luciferase when added to a system in which luminescent beetle luciferase, ATP and Mg 2+ are present.
  • the compound of the present invention can be used alone as a luminescent substrate, but may be used in combination with other luminescent substrates as necessary.
  • the compounds of the present invention can also be provided as a kit with ATP and Mg 2+ .
  • the kit can also contain other luminescent substrates and solutions prepared at an appropriate pH.
  • the luminescent substrate composition prepared by adjusting the compound of the present invention to an appropriate pH together with ATP and Mg 2+ can be provided as a luminescent agent kit.
  • a hydrophilic organic compound may be present.
  • tetrafluoroacetic acid, acetic acid, formic acid and the like may be present.
  • the compound of the present invention is applied to a luminescent system, it is preferably used at a concentration of a luminescent substrate of 1 ⁇ M or more, for example, 5 ⁇ M or more in order to obtain a suitable luminescence intensity.
  • the pH of the luminescent system is assumed to be 4 to 10, preferably 6 to 8, but is not particularly limited. If necessary, buffering agents such as potassium phosphate, Tris-HCl, glycine and HEPES can be used to stabilize the pH.
  • the compound of the present invention can be made to emit light by various oxidases in the firefly luminescence beetle luciferase luminescence system.
  • Luciferase has been isolated from various organisms such as North American firefly (Photinus pyralis) and railroad worm (Railroad worm), any of which can be used.
  • Oxidases that can be used include, for example, light beetle luciferase, Iriomote luciferase and flavin-containing monooxygenase.
  • Mg ions are effective for stabilizing luminescence in a firefly bioluminescence system.
  • the light-emission behavior changes so that attenuation after rising is suppressed.
  • the luminescence behavior changes greatly.
  • the stabilization of luminescence becomes extremely remarkable, and the luminescence behavior when a large excess of pyrophosphate and Mg ions coexist with the luminescent substrate rises rapidly and is maintained to form a plateau state.
  • Mg ion alone, when the Mg ion concentration of the light emitting system is 0.5 mM or more, the light emission stabilizing effect is remarkable, and is enhanced as the Mg ion concentration increases.
  • magnesium pyrophosphate can be present, for example, at a concentration of 10 ⁇ M or more, preferably 100 ⁇ M or more.
  • the ratio of pyrophosphoric acid and Mg ion does not need to be an equivalent ratio.
  • magnesium pyrophosphate Although magnesium pyrophosphate has low water solubility, it can be used to supply pyrophosphate and Mg ions separately. These can be supplied to the luminescent system in free form and in salt form.
  • Mg salts that can be used include inorganic acid salts such as magnesium sulfate and magnesium chloride, and organic acid salts such as magnesium acetate.
  • Pyrophosphates include salts with alkali metals such as sodium and potassium, salts with alkaline earth metals such as magnesium and calcium, salts with iron and the like. These may be included in the light emitting system in an aqueous solution state.
  • the pH of the luminescent system is preferably 2-10.
  • the compound of the present invention may be used as a substrate for chemiluminescence.
  • Chemiluminescence occurs when the compound of the present invention is oxidized to produce a peroxide, and the decomposition product of the peroxide becomes a luminescent species in an excited state. Oxidation can proceed by air oxidation using, for example, potassium t-butoxy in DMSO. In the case of chemiluminescence, luminescence with a shorter wavelength than that in the firefly bioluminescence system is assumed.
  • the compound of the present invention can be used as a luminescent label in biological measurement / detection.
  • it can be used to label amino acids, polypeptides, proteins, nucleic acids and the like.
  • Means for conjugating the compounds of the present invention to these materials are well known to those of skill in the art.
  • the compounds of the present invention can be coupled to the carboxyl and amino groups of the target substance using methods well known to those skilled in the art.
  • the compound of the present invention can be used for measurement / detection utilizing detection of luminescent beetle luciferase activity by luminescence of a luminescent substrate.
  • a compound of the present invention is reacted under conditions suitable for reaction with a luminescent beetle luciferase as described above.
  • the luminescence from the compound is then detected.
  • the expression of a target gene or protein in vivo can be measured / detected.
  • the compounds of the present invention can emit light at different emission wavelengths. Therefore, by using a plurality of compounds, luminescence from a plurality of targets can be measured / detected simultaneously.
  • luciferins and luciferin analogs modified with an allyl group of the present invention have longer wavelength emission as compared to luciferins and luciferin analogs not modified with an allyl group.
  • the emission wavelength can be shifted to the longer wavelength side by modifying the 7-position of the benzothiazole ring moiety, the 6-position of the phenol moiety, and the 5-position of the naphthol moiety with an allyl group.
  • luciferins and luciferin analogs modified with allyl groups are useful for in vivo deep labeling.
  • 1 H nuclear magnetic resonance spectrum ( 1 H NMR): Measured using a Lambda-270 type apparatus (270 MHz) manufactured by JEOL Ltd. “ 1 H NMR (measurement frequency, measurement solvent): ⁇ chemical shift value (number of hydrogen, multiplicity, spin coupling constant)”.
  • the spin coupling constant (J) is described in Hz.
  • Mass spectrum Measured by electron impact method (EI, ionization energy: 70 eV) using a JMS-600H mass spectrometer manufactured by JEOL Ltd. It measured by the electron spray ionization method (ESI) using the JEOL company JMS-T100LC type TOF mass spectrometer AccuTOF.
  • the apparatus was set to a solvent removal gas of 250 ° C., an orifice 1 temperature of 80 ° C., a needle voltage of 2000 V, a ring lens voltage of 10 V, an orifice 1 voltage of 85 V, and an orifice 2 voltage of 5 V.
  • Sample feeding was performed by the infusion method, and the flow rate was 10 ⁇ l / min. It was described as “MS (measurement method) m / z mass number (relative intensity)”.
  • TLC Chromatography Analytical thin layer chromatography
  • Preparative thin layer chromatography E. Merck TLC plate, silica gel 60F 254 (Art.5744) 0.5 mm thick, or E. Merck silica gel 60GF for thin layer chromatography 254 (Art. 7730) was prepared on a 20 cm ⁇ 20 cm glass plate adjusted to a thickness of 1.75 mm.
  • silica gel column chromatography silica gel 60F 254 (Art. 7734) manufactured by E. Merck was used.
  • Solvent Distilled water was distilled and ion-exchanged using a GS-200 type distilled water production apparatus manufactured by Advantech Toyo Corporation.
  • CDCl 3 99.7 ATOM% D, 0.03% TMS manufactured by ISOTEC Inc.
  • CD 3 OD 99.8 ATOM% D ( ⁇ 0.7 ATOM% 13 C) manufactured by ISOTEC Inc., 0.05% TMS.
  • 6-allyloxy-benzothiazole-2-carbonitrile 33 (201.0 mg, 0.93 mmol) was heated and melted at 180 ° C. under an argon atmosphere and stirred for 1 hour. The reaction mixture was allowed to cool and then purified by preparative thin layer silica gel chromatography ⁇ 20 cm x 20 cm x 1.75 mm x 1; hexane-ethyl acetate (1: 1) ⁇ , 7-allyl-6-hydroxybenzothiazole -2-Carbonitrile 34 (100.0 mg, 50%) was obtained as a pale yellow solid.
  • Compound 21 was eluted at around 19.60 min.
  • 6-Cyano-2-naphthol 31 (50.2 mg, 0.297 mmol), t-butyldimethylsilyl chloride (143 mg, 0.95 mmol), imidazole (160.7 mg, 2.37 mmol) were dissolved in DMF (0.5 mL), and 1 at room temperature. Stir for hours. Water (40 mL) was added to the reaction mixture and extracted with ethyl acetate (3 ⁇ 60 mL). The organic layer was dried over sodium sulfate and concentrated under reduced pressure. The obtained residue was purified by column chromatography ⁇ silica gel 36 g; hexane-ethyl acetate (8: 1) ⁇ to obtain TBS protector 32 (69.9 mg, 83%) as a colorless oil.
  • TBS protector 32 99.3 mg, 0.35 mmol
  • 1M diisobutylaluminum 1M diisobutylaluminum (toluene solution)
  • dehydrated toluene (10 mL) under an argon atmosphere and stirred for 1 hour.
  • the reaction mixture was ice-cooled, acetone (10 mL), saturated aqueous Rochelle salt solution (20 mL), water (30 mL) were added, and the mixture was extracted with ethyl acetate (3 ⁇ 50 mL).
  • the organic layer was dried by adding sodium sulfate, and concentrated under reduced pressure.
  • the ester 34 (90.8 mg, 0.253 mmol) was dissolved in isopropyl alcohol (3 mL), 1 M aqueous sodium hydroxide solution (5 mL) was added, and the mixture was stirred for 5 hours.
  • the reaction mixture was neutralized by adding cation exchange resin IR-120BNa. The resin was filtered off, and the filtrate was concentrated under reduced pressure to obtain carboxylic acid 35 (54.9 mg, quant.) As a pale yellow solid.
  • D-cysteine-S-trityl compound (504 mg, 1.39 mmol) was dissolved in methanol (100 ml), and a 4N hydrogen chloride solution in 1,4-dioxane (5.4 ml) was added. The mixture was stirred at room temperature for 17 days, and then neutralized with an anion exchange resin “IRA400 OH AG. The resin was filtered off and the resulting solution was concentrated under reduced pressure. The residue was purified by silica gel column chromatography ⁇ silica gel 33.6 g; hexane-ethyl acetate (1: 1) ⁇ to obtain methyl ester 36 (455 mg, 86%) as a pale yellow oil.
  • Carboxylic acid 35 (54.9 mg, 0.254 mmol), 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) hydrochloride in an N, N-dimethylformamide solution (1 ml) of methyl ester 36 (145 mg, 0.381 mmol) under an argon atmosphere
  • Carbodiimide (145 mg, 0.762 mmol) and 4-dimethylaminopyridine (155 mg, 1.27 mmol) were added, and the mixture was stirred at room temperature for 4 hours.
  • Water 50 ml was added to the reaction mixture, and the mixture was extracted with ethyl acetate (3 ⁇ 50 ml). The organic layer was dried over anhydrous sodium sulfate and concentrated under reduced pressure.
  • Triphenylphosphine oxide (91 mg, 0.327 mmol) and trifluoromethanesulfonic anhydride (100 ⁇ L, 0.546 mmol) were added to a dichloromethane solution (3 ml) of amide 37 (60.3 mg, 0.109 mmol) under an argon atmosphere, and 1 hour at room temperature. Stir. Water (50 ml) was added to the reaction mixture, and the mixture was extracted with chloroform (3 ⁇ 50 ml). The organic layer was dried over anhydrous sodium sulfate and concentrated under reduced pressure.
  • the obtained residue was purified by preparative thin layer chromatography (20 cm ⁇ 20 cm ⁇ 0.5 mm ⁇ 2 sheets; hexane-ethyl acetate (1: 2) ⁇ to obtain thiazoline 38 (17.4 mg, 55%) as a yellow solid. Obtained.
  • Bioluminescence spectrum In a 200 ⁇ L polystyrene tube, potassium phosphate buffer (0.5 M, pH 8.0, 20 ⁇ l), substrate solution (2.5 mM, 20 ⁇ l), enzyme solution (20 ⁇ l), then ATP-Mg solution (10 mM, 40 ⁇ l) The mixture was mixed and the emission spectrum was measured. The concentration of the enzyme solution used was 17 ⁇ M. However, firefly luciferin used 1.7 ⁇ M, and phenol-type luciferin used 170 ⁇ M. The exposure time for emission spectrum measurement was 60 seconds. However, firefly luciferin was performed in 5 seconds.
  • luciferin and luciferin analogs can shift the emission wavelength to the longer wavelength side by modification with an allyl group.
  • In vivo bioimaging Luminescence can be produced by administering the luciferin analogs of the invention to transgenic cells, tissues and organisms into which luciferase has been introduced. Utilizing this reaction, the in vivo emission can be easily detected by using the compound of the present invention having an emission wavelength of about 690 nm which is a living body window. For example, by introducing luciferase into a transplanted tissue or transplanted cells and then administering the compound of the present invention to the transplanted animal, the transplanted tissue in the transplanted living body, which is particularly difficult in the living body, is currently difficult. Can be imaged non-invasively in vivo.
  • luciferase transgenic cells can be generated according to the procedures described in, for example, Experimental Medicine, Vol. 26, No. 17 (extra edition), 2008, pages 110-117. .
  • the luciferin analog of the present invention is administered for imaging transplanted tissues and the like. Subsequently, the luminescence by the compound of the present invention can be detected by an apparatus such as IVIS Imaging System (Xenogen).

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Abstract

【課題】　本発明は、ホタル生物発光系において、ルシフェラーゼによる発光活性を維持した修飾されたホタルルシフェリンおよびホタルルシフェリン類似体を提供することを目的とする。特に、本発明は、ホタル生物発光系における発光波長が、従来の発光基質と比較してより長波長側へシフトした新規発行基質を提供することを目的とする。 【解決手段】　本発明は、ベンゾチアゾール環部分の7位が修飾されたルシフェリンを提供する。また、本発明は、ベンゼン環部分の6位が修飾されたルシフェリン類似体を提供する。さらに、本発明は、6-（ジアルキルアミノ）-2-ナフタレニル部分の5位が修飾されたルシフェリン類似体を提供する。

Description

ルシフェラーゼの発光基質
　本発明は、ルシフェリン類似体に関する。より詳細には、本発明は、ルシフェラーゼによる発光波長が長波長側にシフトするよう修飾されたルシフェリン類似体に関する。
　＜ホタルルシフェリンについて＞
　近年、生物学的事象および現象の可視化が重要視され、可視化のための材料の拡大が望まれてきている。これに伴い、標識技術にも多様化が求められている。特に分子イメージングのための標識技術は、診断および検査機器の進歩と相まって大きく発展している。たとえば、癌や心疾患などに対する個別化医療などの先端技術に応用するための標識技術が精力的に研究されている。また、計測技術の進歩に伴い、より高感度および高性能な機器や標識材料に対する需要が急速に高まっている。
　可視化技術の中で、ホタル生物発光系は、発光効率が非常に高く、最も効率よくエネルギーを光に変換することができる系といわれている。また、生物発光の分子機構解釈も進んでいる。
　このホタル生物発光は、発光基質であるルシフェリンが発光酵素ルシフェラーゼの作用で化学反応することによって光を放出することが知られている。この反応では、発光基質が発光酵素内でアデノシン三リン酸（ATP）および2価のマグネシウムイオン（Mg2+）の存在下で、アデニリル化（AMP化）されて、活性型基質であるアデニリル体へと誘導される。次に、これが酸素化されてペルオキシドアニオンとなり、高エネルギー過酸化物であるジオキセタノンへと変換される。不安定なジオキセタノンは、分解しながらプロトンと二酸化炭素とを放出し、励起1重項状態となる。このジアニオン型励起1重項状態からの発光は、黄緑色であり、これがホタルの発光であるとされている。また、発光後の生成物は、オキシルシフェリンと称される。
　上記のように、ホタル生物発光は、発光効率が非常に高く、また生物発光の分子機構の解明が進んでいるため、ホタル生物発光系を利用した多岐にわたる発光材料が多くの企業から販売されている。しかし、ホタル生物発光関連の発光材料開発は、医学生化学的分野を中心に実用化が進んでいるため、一般にタンパク質（酵素）側からの研究開発は盛んであるが、低分子化合物（基質）側からのアプローチは非常に少ない。特に、発光基質の骨格変換を行ったような構造と活性の相関研究はほとんど存在しない。
　さらに、発光酵素は組換え技術によって安価に供給できるにもかかわらず、キット製品などで供給されているホタル生物発光系を応用した発光標識材料は安価ではない。これは、発光基質がルシフェリンであることに起因する。現在、天然の発光基質であるD体のルシフェリンは、非天然アミノ酸であるD-システインから合成されているが、D-システインは、非常に高価である。
　＜生物発光系を利用した長波長発光のニーズと状況＞
　多現象を観測するために、標識を利用した検出系においても、多色発光が求められている。このため、検出系に利用できる標識材料の波長域は、幅広い方が望ましい。たとえば、多色発光を利用した研究には、標識として450nm程度～650nm以上の波長、特に680nm以上において発光を有する標識材料が準備されることが望ましい。また、生体内深部標識における用途では、短波長光よりも長波長光のほうが優れた光透過性を有するという観点から、赤色発光標識材料が望まれている。特に、生体組織の光計測には、波長が650～900nmの近赤外光が使用されている。可視光(400～700nm)は、ヘモグロビンやそのほかの生体構成物質の吸収が大きく、また近赤外光よりも長い波長では、水の吸収が大きくなるため、生体内を光が進むことができない。これに対して近赤外線の波長の領域は生体を透過しやすいため、「生体の窓」とも呼ばれている。
　上記のように、ホタル生物発光は、ルシフェリンとルシフェラーゼが化学反応することで生じる。これを利用して、たとえば、標的臓器にあらかじめ発光酵素をつくるように遺伝子組み換えを行っておき、その後に個体にルシフェリンを静注するか、腹腔内投与することによって全身に巡らせると、発光酵素を発現している標的臓器が発光する。また、標的臓器に癌を移植しておけば、癌の可視化、標的臓器が他生物の臓器であれば再生医療の基礎研究として利用することができる。特に、生体の窓領域に発光する長波長材料であれば、生体内透過性が高く、生体外から観測しやすくなると考えられる。
　現在、ホタル生物発光系のための発光基質として入手可能なものには、いくつかの発光波長をもつ基質が存在する。これらの基質の最短および最長の両端の波長として、セレンテラジン系の青色（約480nm）とホタル系の赤色（約613nm）が挙げられる。また、鉄道虫発光酵素を利用した、より長波長の赤色発光材料（約630nm）が、最近市販されている。しかし、長波長光のほうが優れた光透過性を有することから、これらの発光波長だけでなく、発光波長の最長の波長のさらなる拡張には、潜在的需要が見込まれる。
　生物発光系を利用した赤色と青色発光の既存製品の例を以下に示す：
1．プロメガ株式会社：Chroma-Luc：約613nm（非特許文献1）
　この系は、ヒカリコメツキ虫（クリックビートル）の突然変異体および天然型ホタル発光基質を利用した系である。
2．東洋紡績株式会社：MultiReporter Assay System-Tripluc：約630nm（非特許文献2）
　この系は、鉄道虫赤色発光酵素および天然型ホタル発光基質を利用した系である。緑色発光ルシフェラーゼ（SLG、最大発光波長550nm）、橙色発光ルシフェラーゼ（SLO、580nm）および赤色発光ルシフェラーゼ（SLR、630nm）の色のルシフェラーゼ遺伝子を使用して発光色を変化させている。これは、異なる発光色を与える発光酵素を利用している。
3．東京大学：アミノルシフェリン：約610nm（特許文献1）
　これは、ルシフェリン誘導体を開示している。
4．プロメガ株式会社：Chroma-Luc： 約480nm（非特許文献3）
　この系は、セレンテラジンおよびウミシイタケルシフェラーゼを利用した系である。
5．アトー株式会社：ウミホタル生物発光　約460nm（非特許文献4）
　セレンテラジン系基質およびウミホタルルシフェラーゼを利用した系である。
　また、本発明者らも、特許文献2において、ルシフェリン類似化合物を開示している。これらの化合物は、ルシフェリンと同様の骨格を有する化合物である。
　さらに、本発明者らは、特許文献4において、ルシフェリンとは異なる骨格を有するルシフェリン類似化合物が、様々な発光波長を有することを開示している。これらのルシフェリン類似化合物においても、さらに発光波長を長波長側にシフトさせることが望まれる。
特開2007-091695号公報 国際公開公報第2007/116687号 特開2006-219381号公報 特開2010-215795号公報 プロメガ株式会社総合カタログ2008-9　12.6 Upload vol. 79, 2005 p 1-10, Toyobo Biochemicals for Lifescience 2006/2007 p4-67. プロメガ株式会社総合カタログ2008-9　12.14 アトー株式会社総合カタログ2008-2009　p 247
　上記した状況に鑑み、本発明は、ホタル生物発光系における発光波長が、従来の発光基質と比較してより長波長側へシフトした新規発光基質を提供することを目的とする。
　上記の目的を達成するために、本発明者らは、ルシフェリンに類似する構造を有する発光基質の類似体群を作製し、その発光波長の解析を行った。その結果、ルシフェリンおよびルシフェリン類似体の構造において、特定の位置に修飾を有することにより、発光波長が長波長側にシフトすることを見いだした。
　本発明は、以下の一般式Iを有する化合物またはその塩を提供する：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
 　式中、
　Zは、
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000004
 であり、
　R1は、HまたはC1-4アルキルであり、
　R4は、OHまたはNR2R3であり、式中R2およびR3は、HまたはC1-4アルキルであり、
　nは、0、1、2または3である。
　また、本発明は、R1、R2およびR3は、Hであり、R4は、OHである、上記化合物またはその塩を提供する。
　さらに、本発明は、上記記載の化合物を含む、ルシフェラーゼの発光基質を提供する。
　さらに、本発明は、記載の化合物を含む、発光検出キットを提供する。
　本発明により、発光活性を損なわずに修飾されたルシフェリンおよびルシフェリン類似体が提供される。特に、本発明により、ホタル生物発光系における発光波長が、従来の発光基質と比較して、より長波長側へシフトした新規発光基質が提供される。
本発明の修飾されたホタルルシフェリンの発光波長を示す図。 本発明の修飾されたホタルルシフェリン類似体の発光波長を示す図。
　本発明は、発光活性を有するルシフェリン類似体が提供される。本明細書において、ルシフェリン類似体とは、ルシフェラーゼまたはルシフェラーゼ改変体と反応することによって発光を生じる物質をいう。ルシフェラーゼ改変体は、ルシフェラーゼの遺伝子を改変等することによって、その基質特性およびその発光波長が変化されたルシフェラーゼタンパク質をいう。
　本発明は、以下の一般式を有する化合物またはその塩を提供する：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000005
 　式中、
　Zは、
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000006
 であり、
　R1は、HまたはC1-4アルキルであり、
　R4は、OHまたはNR2R3であり、式中R2およびR3は、HまたはC1-4アルキルであり、
　nは、0、1、2または3である。特に、上記化合物において、R1、R2およびR3は、Hであり、R4は、OHであることができる。
　また、上記化合物において、ベンゼン環においてマーカッシュ表記された化合物は、結合部位が任意であることを示しているが、本発明の化合物において、Zは、以下の化合物であることができる：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000007
 　式中、R4は、OHまたはNR2R3であり、式中R2およびR3は、HまたはC1-4アルキルである。
　具体的態様において、本発明は、ベンゾチアゾール部分の7位がアリル基で修飾されたホタルルシフェリン類似体を提供する。本明細書において、ルシフェリンは、以下の構造を有する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000008
　修飾は、ホタルルシフェリン類似体に対して行ってもよい。本明細書において、修飾とは、任意の化合物に対して任意の基を結合させることをいう。修飾部位は、ベンゾチアゾール部分の7位に対応する部位であることができる。たとえば、以下の一般式Iを有する化合物であることができる：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000009
 　式中、
　R1は、HまたはC1-4アルキルであり、
　XおよびYは、それぞれ独立してC、N、SまたはOである。
　本明細書において、「C1-4アルキル」という用語は、1～4炭素原子を含む飽和直鎖状または分枝鎖アルキル基、たとえばメチル、エチル、n-プロピル、イソ-プロピル、n-ブチル、イソ-ブチル、sec-ブチルおよびtert-ブチルをいう。同様に、「C1-C3アルキル」という用語は、1～3炭素原子を含む飽和直鎖状または分枝鎖アルキル基（たとえば、メチル、エチルまたはイソ-プロピル）をいう。
　上記のように、R1がC1-4アルキルであってもよいことは、当業者であれば容易に想到することができるであろう。たとえば、本発明者らによる上記特許文献2には、本発明の化合物のR1部分に対応する部分がAMPであるルシフェリン類似化合物が、ホタル生物発光系の基質となり得る結果が示されている。したがって、置換としてのこのような低級アルキルは、活性に影響を及ぼす可能性が低いと考えられる。
　上記一般式Iにおいて、XおよびYは、それぞれ独立してC、N、SまたはOであることができる。XおよびYのヘテロ原子がC、N、SまたはOであってもよいことは、当業者であれば容易に想到することができるであろう。たとえば、本発明者らによる上記特許文献2に記載された種々のルシフェリン類似化合物には、本発明の化合物と対応する部分が種々のヘテロ原子であるルシフェリン類似化合物が、ホタル生物発光系の基質となり得る結果が示されている。
　一つの態様において、本発明は、一般式IにおいてR1は、Hであり、Xは、Nであり、Yは、Sである、以下の化合物を提供する：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000010
　上記の式を有する化合物は、ホタルルシフェラーゼとの反応により、およそ605nmの発光波長にて発光する。
　もう一つの具体的態様において、本発明は、以下の一般式IIを有する化合物を提供する：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000011
 　式中、
　R1は、HまたはC1-4アルキルであり、
　XおよびYは、それぞれ独立してC、N、SまたはOであり、
　nは、0、1、2または3である。
　上記のように、一般式IIにおいて、R1がC1-4アルキルであってもよいことは、当業者であれば容易に想到することができるであろう。
　上記のように、一般式IIにおいて、XおよびYは、それぞれ独立してC、N、SまたはOであることができる。XおよびYのヘテロ原子がC、N、SまたはOであってもよいことは、当業者であれば容易に想到することができるであろう。
　上記のように、一般式IIにおいて、「n」として表されたオレフィン鎖単位は、所望の長さに変更することができることは、当業者であれば容易に想到することができるであろう。
　一つの具体的態様において、本発明は、一般式IIにおいてR1は、Hであり、Xは、Nであり、Yは、Sであり、かつnは、1である、以下の化合物を提供する：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000012
　上記の式を有する化合物は、ホタルルシフェラーゼとの反応により、およそ690nmの発光波長にて発光する。
　もう一つの具体的態様において、本発明は、以下の一般式IIIを有する化合物を提供する：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000013
 　式中、
　R1は、それぞれ独立してHまたはC1-4アルキルであり、
　XおよびYは、それぞれ独立してC、N、SまたはOであり、
　nは、0、1、2または3である。
　上記のように、一般式IIIにおいて、R1がC1-4アルキルであってもよいことは、当業者であれば容易に想到することができるであろう。
　上記のように、一般式IIIにおいて、XおよびYは、それぞれ独立してC、N、SまたはOであることができる。XおよびYのヘテロ原子がC、N、SまたはOであってもよいことは、当業者であれば容易に想到することができるであろう。
　上記のように、一般式IIIにおいて、「n」として表されたオレフィン鎖単位は、所望の長さに変更することができることは、当業者であれば容易に想到することができるであろう。
　また、上記一般式I、一般式IIおよび一般式IIIにおいて、-OH基は、-NR2R3基で置換されていてもよい。-NR2R3基において、R2およびR3は、それぞれ独立してHまたはC1-4アルキルであることができる。
　上記のように、R2およびR3がC1-4アルキルであってもよいことは、当業者であれば容易に想到することができるであろう。たとえば、本発明者らによる上記特許文献4には、本発明の化合物の-OH基に対応する部分が-N（CH3）2基であるルシフェリン類似化合物が、ホタル生物発光系の基質となり得る結果が示されている。したがって、置換としてのこのようなNR2R3基は、活性に影響を及ぼす可能性が低いと考えられる。
　本発明において、修飾されたルシフェリンおよびルシフェリン類似体には、その塩が含まれる。「塩」とは、本発明の化合物において、該化合物のいずれかの部分が塩基を形成することができる場合にのみ想定される。
　「塩」という表現には、塩酸、臭化水素酸、ヨウ化水素酸、硫酸、スルファミン酸、リン酸、硝酸、亜燐酸、亜硝酸、クエン酸、ギ酸、酢酸、シュウ酸、マレイン酸、乳酸、酒石酸、フマル酸、安息香酸、マンデル酸、ケイ皮酸、パモ酸、ステアリン酸、グルタミン酸、アスパラギン酸、メタンスルホン酸、エタンジスルホン酸、p-トルエンスルホン酸、サリチル酸、コハク酸、トリフルオロ酢酸および生きた生物に対して非中毒性であるその他のような無機酸または有機酸とのいずれかの塩、または式Iの化合物の性質が酸性である場合、アルカリまたはアルカリ土類塩基、たとえば水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、水酸化カルシウムその他のような無機塩基との塩も包含する。
　本発明の修飾されたルシフェリンおよびルシフェリン類似体は、たとえば以下の実施例に記載した手順に従って製造することができる。より詳細な手順は、下記の実施例に記載してあるが、一般式Iの化合物は、たとえば以下の手順に従って製造することができる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000014
　簡潔には、市販の2-シアノ-6-メトキシベンゾチアゾールの脱メトキシにより得られる2-シアノ-6-ヒドロキキシベンゾチアゾールの水酸基をアリル化し、クライゼン転移により7位にアリル基を導入して2-シアノ-7-アリル6-ヒドロキシベンゾチアゾール4を得る。続いて、D-システインをメタノール中炭酸カリウム存在か室温で反応させ、塩酸で中和することで、7-アリルホタルルシフェリン5を得る。
　より具体的には、開始物質として2-シアノ-6-メトキシベンゾチアゾールを使用し、ピリジン塩酸塩と反応させて、2-シアノ-6-ヒドロキシベンゾチアゾールを得る。次いで、2‐シアノ‐6‐ヒドロキシベンゾチアゾールを臭化アリルと反応させて、6‐アリルオキシ‐ベンゾチアゾール‐2-カルボニトリルを得る。
　得られた6‐アリルオキシ‐ベンゾチアゾール‐2-カルボニトリルをアルゴン雰囲気下180℃にて加熱融解して反応混合物を放冷した後、7‐アリル-6-ヒドロキシベンゾチアゾール‐2-カルボニトリルを得る。次いで、7‐アリル-6-ヒドロキシベンゾチアゾール‐2-カルボニトリルをアルゴン雰囲気下、180℃で加熱融解し、7-アリル-6-ヒドロキシベンゾチアゾール-2-カルボニトリルを得る。次いで、2-シアノ-7-アリル-6-ヒドロキシベンゾチアゾールおよびD-システイン塩酸塩一水和物をメタノール:蒸留水に溶解し、アルゴン雰囲気下、炭酸カリウムを加えることにより、7-アリル-ホタルルシフェリを得ることができる。
　また、下記の一般式の化合物：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000015
 は、たとえば以下の手順に従って製造することができる：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000016
　市販の2-クロロベンゾチアゾールに濃硫酸中氷冷下硝酸カリウムを加えてニトロ化し、生成した2-クロロ6-ニトロベンゾチアゾールを塩酸中で錫と反応させることでニトロ基をアミノ基に還元して、2-クロロ6-アミノベンゾチアゾールと誘導する。これに、DMSO溶媒中、アルゴン雰囲気下でシアン化カリウムを加え、一晩加熱還流させることで2-シアノ6-アミノベンゾチアゾールとする。DMF溶媒中で臭化アリルと炭酸カリウムを反応させ、アミノ基をアリル化し、アザクライゼン転移により7位にアリル基を導入する。メタノール中炭酸カリウムとシステインを加え撹拌し、塩酸で中性にすることで、7-アリルーアミノルシフェリン型化合物を得ることができる。
　当業者であれば、上記一般式Iの化合物の置換基を所望の置換基と置き換えた開始物質から開始して、上記合成手順と同様の手順によって対応する化合物を合成することができることを理解するであろう。また、当業者であれば、上記合成手順の適切な工程において、化合物の置換基を所望の置換基に置換することもできることを理解するであろう。また、最後の工程において、カルボン酸部分を所望のエステルに置換することにより、対応するR1を有する化合物を得ることができるであろう。
　また、詳細な手順は、下記の実施例に記載してあるが、一般式IIの化合物は、たとえば以下の手順に従って製造することができる：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000017
　簡潔には、市販のヒドロキシナフトエ酸11のジアリル化によりジアリル体12を得る。クライゼン転移により芳香環にアリル基を導入し、DIBAL-Hによりエステル部をヒドロキシメチレンに還元して14を得る。酸化とwittig反応による増炭で化合物15を得る。同様に還元と増炭を繰り返すことで、二重結合部位を所望の数に増やすことができる。エステル部位を加水分解してカルボキシル基とし、D-システイン誘導体とアミド結合させ、環化して化合物20を得る。エステラーゼやリパーゼを用いてエステル部位を加水分解して化合物IIを得ることができる。
　より具体的には、2-ナフトエ酸をアセトンに溶解し、氷冷下にて炭酸カリウムおよび臭化アリルと反応させて、化合物2を得る。化合物2を200℃にて加熱して、化合物3を得る。次いで、化合物3をテトラヒドロフランに溶解させ、室温にて塩化t-ブチルジメチルシリルおよびトリエチルアミンと反応させて、さらに-78℃にて水素化ジイソブチルアルミニウムと反応させて、化合物14を得る。
　次いで、化合物14をジクロロメタンに溶解し、室温にて酸化マンガと反応させて、さらに生成物をベンゼンに溶解させ、室温にて（カルボメトキシメチレン）トリフェニルホスホランと反応させて、化合物15を得る。次いで、化合物15をイソプロピルアルコールに溶解させ、1M水酸化ナトリウム水溶液と反応させて、化合物16を得る。
　一方、D-システイン-S-トリチル化合物をメタノールに溶解させ、4N塩化水素の1,4-ジオキサン溶液都反応させて、化合物18を得る。
　次いで、化合物16と化合物18をピリジンに溶解し、塩酸1-エチル-3-（3-ジメチルアミノプロピル）カルボジイミドおよび1-ヒドロキシベンゾトリアゾールと反応させて、化合物19を得る。次いで、化合物19をジクロロメタンに溶解し、0℃にてトリフェニルホスフィンオキシドおよび無水トリフルオロメタンスルホン酸と反応させて、化合物20を得る。
　最後に、化合物20をテトラヒドロフラン、エタノールおよび10m炭酸アンモニウム水溶液に溶解し、40℃にてブタ膵臓リパーゼと反応させて、化合物21を得る。
　また、下記の一般式の化合物：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000018
 は、たとえば以下の手順に従って製造することができる。市販の6-アミノナフチルアルデヒドのアミノ基をアリル化し、アザクライゼン転移により7位にアリル基を導入する。wittig反応による増炭でαβ-不飽和エステル体を得る。エステル部の還元と増炭を繰り返すことで、二重結合部位（n）を所望の数に増やすことができる。アミノ基をジアルキル化し、エステル部位を加水分解してカルボキシル基とし、D-システイン誘導体とアミド結合させ、環化してエステル体を得る。エステラーゼやリパーゼを用いてエステル部位を加水分解して7-アリルージメチルアミノナフトール型化合物得ることができる。同様の工程で、アミノ基をアルキル化しなければ、R1=R2=Hの4-アミノタイプ（-NH2）7-アリルーアミノナフトール型化合物得ることができる。さらに、4-ニトロナフチルアルデヒドを出発物質にして、ニトロ基をアミノ基に還元して同様の反応を行うことでも7-アリルーアミノナフトール型化合物得ることができる。
　当業者であれば、上記一般式IIの化合物の置換基を所望の置換基と置き換えた開始物質から開始して、上記合成手順と同様の手順によって対応する化合物を合成することができることを理解するであろう。また、当業者であれば、上記合成手順の適切な工程において、化合物の置換基を所望の置換基に置換することもできることを理解するであろう。また、最後の工程において、メチルエステル部分を所望のエステルに置換することにより、対応するR1を有する化合物を得ることができるであろう。さらに、開始物質として使用する化合物のオレフィン部分の長さを変更することにより、一般式IIにおいて所望の長さのnを有する化合物を得ることができるであろう。
　当業者であれば、上記一般式IIの化合物を所望の骨格および置換基と置き換えた開始物質から開始して、上記合成手順と同様の手順によって対応する化合物IIIを合成することができることを理解するであろう。また、当業者であれば、上記合成手順の適切な工程において、化合物の置換基を所望の置換基に置換することもできることを理解するであろう。また、最後の工程において、メチルエステル部分を所望のエステルに置換することにより、対応するR1を有する化合物を得ることができるであろう。さらに、開始物質として使用する化合物のオレフィン部分の長さを変更することにより、一般式IIIにおいて所望の長さのnを有する化合物を得ることができるであろう。
　たとえば、市販の4-ヒドロキシベンズアルデヒドの水酸基をアリル化し、アザクライゼン転移により3位にアリル基を導入する。wittig反応による増炭でαβ-不飽和エステル体を得る。エステル部の還元と増炭を繰り返すことで、二重結合部位を所望の数に増やすことができる。エステル部位を加水分解してカルボキシル基とし、D-システイン誘導体とアミド結合させ、環化してエステル体を得る。エステラーゼやリパーゼを用いてエステル部位を加水分解して化合物III得ることができる。出発物質に4-ヒドロキシベンズアルデヒドではなく、4-アミノベンズアルデヒドをもちいれば、同様の工程で、R1=R2=Hの4-アミノ型（-NH2）の化合物が得られる。さらに、上記化合物10を得るための反応と同様の反応を使用して、環化を行うことができる。また、化合物11を得るための反応と同様の反応を使用して、化合物の加水分解を行うことができる。
　また、下記の一般式の化合物：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000019
 は、たとえば以下の手順に従って製造することができる。市販の4-ジメチルアミノベンズアルデヒドのアミノ基をアリル化し、アザクライゼン転移により3位にアリル基を導入する。wittig反応による増炭でαβ-不飽和エステル体を得る。エステル部の還元と増炭を繰り返すことで、二重結合部位（n）を所望の数に増やすことができる。エステル部位を加水分解してカルボキシル基とし、D-システイン誘導体とアミド結合させ、環化してエステル体を得る。エステラーゼやリパーゼを用いてエステル部位を加水分解して3-アリルージメチルアミノジエン型化合物得ることができる。出発物質に4-ジメチルアミノベンズアルデヒドではなく、4-アミノベンズアルデヒドをもちいれば、同様の工程で、R1=R2=Hの4-アミノ型（-NH2）の化合物が得られる。4-ニトロベンズアルデヒドを出発物質にして、ニトロ基をアミノ基に還元して同様の反応を行うことでも3-アリルージメチルアミノジエン型化合物得ることができる。
　また、特開2010-180191号公報に記載された手順に従って、ルシフェリンおよびルシフェリン類似体を、それらのベンゾチアゾール環部分の7位、フェノール部分の6位およびナフトール部分の5位においてアリル基で修飾することができる。
　本発明の化合物は、発光甲虫ルシフェラーゼ、ATPおよびMg2+の存在する系に添加することによって、発光甲虫ルシフェラーゼにより酸化して発光する。本発明の化合物は、単独で発光基質として利用可能であるが、必要に応じて、その他の発光基質と組み合わせて使用してもよい。本発明の化合物は、ATPおよびMg2+と共にキットとして提供することもできる。また、キットには、その他の発光基質や適切なpHに調製した溶液を含めることもできる。さらに、本発明の化合物は、ATPおよびMg2+と共に本発明の化合物を適切なpHに調製した発光基質組成物を発光剤キットとして提供することもできる。
　ホタル生物発光系は、水性系であるので、親水性有機化合物が存在していてもよい。たとえば、テトラフルオロ酢酸、酢酸およびギ酸などが存在していてもよい。本発明の化合物を発光系に応用する場合、好適な発光強度を得るためには、1μM以上の発光基質の濃度で使用されることが好ましく、たとえば5μM以上で使用される。また、発光系のpHは、4～10、好ましくは6～8であることが想定されるが、特に限定されない。必要に応じて、pHを安定化させるために、リン酸カリウム、トリス塩酸、グリシンおよびHEPESなどの緩衝剤を使用することができる。
　また、本発明の化合物は、ホタル発光甲虫ルシフェラーゼ発光系において、種々の酸化酵素によって発光させることができる。ルシフェラーゼは、北アメリカ産ホタル（Photinus pyralis）および鉄道虫（Railroad worm）などの種々の生物から単離されており、それらのいずれを使用することもできる。使用可能な酸化酵素には、たとえばヒカリコメツキムシルシフェラーゼ、イリオモテボタルルシフェラーゼおよびフラビン含有モノオキシゲナーゼなどを含む。
　本発明の化合物を発光基質とする生物発光は、発光系にコエンザイムA（CoA）、ピロリン酸またはMgイオン（Mg2+）が存在すると、その発光が増強されることが知られている。したがって、これらを発光甲虫ルシフェラーゼ発光系の発光増強剤として利用することができる。これらの化合物の発光増強効果は、発光系におけるCoA、ピロリン酸またはMg2+の濃度がそれぞれ5μM以上において顕著であり、濃度の増加にしたがって増強されることが知られている。
　ホタル生物発光系を測定／検出に使用するためには、酵素の失活を防止してプラトーな発光挙動を示すように、発光を安定化させることが重要である。たとえば、ホタル生物発光系における発光の安定化には、Mgイオンが有効である。発光系にMgイオンが存在すると、立ち上がった後の減衰が抑制されるように発光挙動が変化する。特に、ピロリン酸およびMgイオンが発光系に共存すると、発光挙動が大きく変化する。すなわち、発光安定化がきわめて顕著となり、発光基質に対して大過剰のピロリン酸およびMgイオンが共存する場合の発光挙動は、急速に立ち上がり、これが維持されてプラトーな状態が形成される。Mgイオン単独の場合、発光系のMgイオン濃度が0.5mM以上において、発光安定化効果が顕著であり、Mgイオンの濃度の増加にしたがって増強される。プラトーな発光挙動を達成するために、たとえば10μM以上、好ましくは100μM以上の濃度のピロリン酸マグネシウムを存在させることができる。また、ピロリン酸とMgイオンとの割合は、当量比である必要はない。ピロリン酸マグネシウムは、水溶性が低いものの、これを使用することにより、ピロリン酸およびMgイオンをそれぞれ別個に供給することができる。これらは、遊離形態および塩の形態で発光系に供給することができる。使用可能なMg塩には、硫酸マグネシウムおよび塩化マグネシウムなどの無機酸塩、並びに酢酸マグネシウムなどの有機酸塩を含む。ピロリン酸塩には、ナトリウムおよびカリウムなどのアルカリ金属との塩、並びにマグネシウムおよびカルシウムなどのアルカリ土類金属との塩、鉄などとの塩を含む。これらは、水溶液状態で発光系に含めてもよい。また、酵素に対する影響を考慮して、発光系のpHは、2～10になるように含めることが好ましい。
　本発明の化合物は、化学発光における基質として使用してもよい。化学発光は、本発明の化合物を酸化して過酸化物を生成し、この過酸化物の分解物が励起状態の発光種となることによって生じる。酸化は、たとえばDMSO中でt-ブトキシカリウムを使用して空気酸化させることによって進行させることができる。化学発光の場合、ホタル生物発光系における発光よりも短波長の発光が想定される。
　本発明の化合物は、生物学的測定／検出における発光標識として利用することができる。たとえば、アミノ酸、ポリペプチド、タンパク質および核酸などを標識するために使用することができる。本発明の化合物をこれらの物質に結合させるための手段は、当業者に周知である。たとえば、本発明の化合物は、当業者に周知の方法を使用して、目的の物質のカルボキシル基およびアミノ基に対して結合させることができる。
　また、本発明の化合物は、発光基質の発光によって発光甲虫ルシフェラーゼ活性を検出することを利用した測定／検出に利用することができる。たとえば、本発明の化合物を、上記のような発光甲虫ルシフェラーゼとの反応に適した条件下で反応させる。次いで、該化合物からの発光を検出する。たとえば、ルシフェラーゼ遺伝子を導入した細胞または動物に対して本発明の化合物を投与することにより、インビボにおける標的遺伝子またはタンパク質の発現などを測定／検出することができる。本発明の化合物は、それぞれ異なる発光波長で発光させることができる。したがって、複数の化合物を使用することにより、複数の標的による発光を同時に測定／検出することができる。
　また、波長は、長波長であるほど光透過性を有するため、組織透過性も高い。したがって、本発明のアリル基で修飾されたルシフェリンおよびルシフェリン類似体は、アリル基で修飾されていないルシフェリンおよびルシフェリン類似体と比較して、より長波長の発光を有する。特に、ルシフェリンおよびルシフェリン類似体において、ベンゾチアゾール環部分の7位、フェノール部分の6位およびナフトール部分の5位をアリル基で修飾することにより、その発光波長を長波長側にシフトさせることができるので、アリル基で修飾されたルシフェリンおよびルシフェリン類似体は、生体内深部標識のために有用である。
　以下の実施例において、本発明を具体的に説明してあるが、本発明は、これらの範囲に限定されるわけではない。
　1）機器分析および測定装置
　pH測定：東洋濾紙株式会社製pH試験紙UNIVを使用して測定した。また、pHメータとして、堀場社製pH/ION METER F-23を使用して測定した。
　1H核磁気共鳴スペクトル（1H NMR）：日本電子社製Lambda-270型装置（270MHz）を使用して測定した。“1H NMR（測定周波数，測定溶媒）：δケミカルシフト値（水素の数, 多重度, スピン結合定数）”と記載した。ケミカルシフト値（δ）はテトラメチルシラン（δ=0）を内部基準とし、ppで表記した。多重度は、s（単一線）、d（二重線）、t（三重線）、q（四重線）、m（多重線または複雑に重なったシグナル）で表示し、幅広いシグナルは、brと記した。スピン結合定数（J）は、Hzで記載した。
　13C核磁気共鳴スペクトル（13C NMR）：日本電子社製Lambda-270型装置（67.8MHz）を使用して測定した。“13C NMR（測定周波数，測定溶媒）：δケミカルシフト値（多重度）”と記載した。ケミカルシフト値（δ）は、テトラメチルシラン（δ= 0）を内部基準とし、ppmで表記した。多重度は、s（単一線）、d（二重線）、t（三重線）、q（四重線）で表示した。
　質量スペクトル（MS）：日本電子社製JMS-600H型質量分析計を用い、電子衝撃法（EI、イオン化エネルギー：70eV）により測定した。日本電子社製JMS-T100LC型TOF質量分析計AccuTOFを用い、エレクトロンスプレーイオン化法（ESI）により測定した。なお、装置の設定は、脱溶媒ガス250℃、オリフィス1温度80℃、ニードル電圧2000V、リングレンズ電圧10V、オリフィス１電圧85V、オリフィス2電圧5Vとした。サンプル送液は、インフュージョン法で行い、流速10μl/minとした。“MS（測定法）m/z質量数（相対強度）”と記載した。
　比旋光度：日本分光社製DIP-1000型旋光計を使用して測定した。光源は、ナトリウムランプを使用し、セルは、円筒型ガラスセル（Φ10×100mm）を使用した。測定値は未補正であり、データは5回測定の平均値である。それぞれD体、L体について“DまたはL：[α]温度測定値（濃度, 測定溶媒）”と記載した。
　2）クロマトグラフィー
　分析用薄層クロマトグラフィー（TLC）：E. Merck社製のTLCプレート、シリカゲル60F254（Art.5715）厚さ0.25mmを使用した。TLC上の化合物の検出はUV照射（254nmまたは365nm）および発色剤に浸した後に加熱して発色させることによって行った。発色剤としてはp-アニスアルデヒド（9.3ml）と酢酸（3.8ml）をエタノール（340ml）に溶解し、濃硫酸（12.5ml）を添加したものを使用した。
　分取用薄層クロマトグラフィー（PTLC）：E. Merck社製のTLCプレート、シリカゲル60F254（Art.5744）厚さ0.5mmを用いるか、またはE. Merck社製の薄層クロマトグラフィー用シリカゲル60GF254（Art.7730）を20cm×20cmのガラスプレート上に、厚さ1.75mmに調整したものを使用して行った。
　シリカゲルカラムクロマトグラフィー：E. Merck社製のシリカゲル60F254（Art.7734）を使用して行った。
　3）基本操作
　反応溶液の冷却は、冷媒を満たしたジュワー瓶に反応容器を浸して行った。室温～4℃では、氷水、4～-90℃では、液体窒素－アセトンを冷媒として用いた。反応後の抽出溶液の乾燥は、飽和食塩水にて洗浄後、無水硫酸ナトリウムまたは無水硫酸マグネシウムを加えることで行った。反応後の中和を樹脂で行ったものについては、オルガノ株式会社製陽イオン交換樹脂アンバーライトIR120B NAまたは陰イオン交換樹脂アンバーライトIRA400 OH AGを使用した。溶液の減圧濃縮は、アスピレーターの減圧下（20～30mmHg）、ロータリーエバポレーターを使用して行った。痕跡量の溶媒の除去は、液体窒素浴で冷却したトラップを装着させた真空ポンプ（約1mmHg）を使用して行った。溶媒の混合比は全て体積比で表した。
　4）溶媒
　蒸留水は、アドバンテック東洋株式会社製GS-200型蒸留水製造装置を使用して蒸留およびイオン交換処理したものを使用した。
　トルエン、メタノール、エタノール、イソプロパノール、ジクロロメタン、テトラヒドロフラン、N,N-ジメチルホルムアミド、2-ブタノンは、関東化学株式会社製の有機合成用脱水溶媒または特級溶媒を、モレキュラーシーブス（4A）を使用して乾燥させて使用した。
　NMR測定用溶媒は、以下に示すものをそのまま使用した。CDCl3：ISOTEC Inc.製99.7 ATOM%D、0.03% TMS、CD3OD：ISOTEC Inc.製99.8 ATOM%D（～0.7 ATOM%13C）、0.05% TMS。
　実施例1　7-アリル-ホタルルシフェリンの合成
　7-アリル-ホタルルシフェリンは、以下の合成スキームに従って合成した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000020
  
　2-シアノ-6-ヒドロキシベンゾチアゾール32の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000021
　2-シアノ-6-メトキシベンゾチアゾール31（51.4mg、0.271mmol）にピリジン塩酸塩（2.32g）を加え、アルゴン雰囲気下で200℃に加熱し、ピリジン塩酸塩を融解させ30分間撹拌した。反応混合物を放冷した後、1M塩酸（50ml）を加え、酢酸エチル（3×50ml）で抽出し、有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥後、減圧濃縮した。得られた残渣を分取薄層シリカゲルクロマトグラフィー{20cm×20cm×1.75mm×1枚;ヘキサン-酢酸エチル（1:1）}にて精製し、2-シアノ-6-ヒドロキシベンゾチアゾール32（47.2mg、99%）を薄黄色固体として得た。
1H NMR（270MHz, CD3OD）δ7.17（1H, dd, J=2.7, 9.2Hz）, 7.41（1H, d, J=2.7Hz）, 7.99（1H, d, J=9.2Hz）
　6-アリルオキシ-ベンゾチアゾール-2-カルボニトリル33の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000022
　2-シアノ-6-ヒドロキシベンゾチアゾール32（336.2mg、1.91mmol）、臭化アリル（331μl、3.82mmol）をN,N-ジメチルホルムアミド（1.5ml）に溶解し、アルゴン雰囲気下、炭酸カリウム（404.6mg、1.53mmol）を加え、室温で一時間撹拌した。反応混合物に水（20ml）を加え、酢酸エチル（3×50ml）を抽出し、有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥後、減圧濃縮した。得られた残渣を分取薄層シリカゲルカラムクロマトグラフィー{20cm×20cm×1.75mm×1枚;ヘキサン-酢酸エチル（1:1）}にて精製し、6-アリルオキシ-ベンゾチアゾール-2-カルボニトリル33（418.1mg、90%）を薄黄色固体として得た。
1H NMR（270MHz, CDCl3）δ8.07（1H, d, J=9.2Hz）, 7.36（1H, d, J=2.4Hz）, 7.26（1H, dd, J=2.4, 9.2Hz）, 6.08（1H, m）, 5.41（comp. 2H, m）
　7-アリル-6-ヒドロキシベンゾチアゾール-2-カルボニトリル34の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000023
　6-アリルオキシ-ベンゾチアゾール-2-カルボニトリル33（201.0mg、0.93mmol）を、アルゴン雰囲気下、180℃で加熱融解し、一時間撹拌した。反応混合物を放冷した後、分取薄層シリカゲルクロマトグラフィー{20cm×20cm×1.75mm×1枚;ヘキサン-酢酸エチル（1:1）}にて精製し、7-アリル-6-ヒドロキシベンゾチアゾール-2-カルボニトリル34（100.0mg、50%）を薄黄色固体として得た。
1H NMR（270MHz, CDCl3）δ7.98（1H, d, J=8.9Hz）, 7.17（1H, d, J=2.7Hz）, 5.97（1H, m）, 5.74（1H, s）, 5.17-5.25（comp. 2 H）, 3.65（1H, dt, J=1.3, 6.2Hz）
　7-アリル-ホタルルシフェリン35の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000024
　2-シアノ-7-アリル-6-ヒドロキシベンゾチアゾール34（50mg、0.23mmol）、D-システイン塩酸塩一水和物（45mg、0.25mmol）をメタノール:蒸留水（2:1.6ml）に溶解し、アルゴン雰囲気下、炭酸カリウム（50mg、0.36mmol）を加え、室温で40分間撹拌した。得られた固体をろ過し、蒸留水で洗浄して7-アリル-ホタルルシフェリン35（64mg、84%）を黄色固体として得た。
1H NMR（270MHz, CD3OD）δ7.78（1H, d, J =8.9Hz）, 7.10（1H, dd, J =8.9Hz）, 5.92（1H, m）, 5.42（1H, t, J=8.9Hz）, 5.15-5.03（comp. 2 H）, 3.75（2 H, d, J=8.1Hz）, 3.59（2 H, J=6.2Hz）
　実施例2　ナフトール部分の5位がアリル基で修飾された化合物の合成。
　以下の化合物
は、以下の合成スキームに従って合成した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000026
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000027
　2-ナフトエ酸11（500mg、2.66mmol）をアセトン（10ml）に溶解し、氷冷下にて炭酸カリウム（793mg、5.32mmol）、臭化アリル（0.7ml、8.0mmol）を加え、室温で1時間撹拌した。反応液に、水（100ml）を加え、酢酸エチルで抽出し、有機層を無水硫酸マグネシウムで脱水した。溶媒を減圧留去して得られる粗生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ヘキサン:酢酸エチル=5:1）にて精製し、化合物12（713mg、100%）を淡黄色固体として得た。
1H NMR（400 MHz, CDCl3） δ 4.67（2H, d, J=4.8Hz）, 5.33（2H, t, J=10.8Hz）, 5.46（2H, m）, 6.11（2H, m）, 7.16（1H, d, J=2.4Hz）, 7.22（1H, dd, J=2.4, 8.8Hz）, 7.74（1H, d, J=8.8Hz）, 7.85（1H, d, J=9.2Hz）, 8.04（1H, dd, J=1.6, 8.8Hz）, 8.55（1H, d，J=1.6Hz）
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000028
　化合物12（760mg、2.83mmol）を200℃にて加熱し、18時間撹拌した。反応混合物をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ヘキサン:酢酸エチル=6:1）にて精製し、化合物13（546mg、71%）を淡黄色固体として得た。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000029
　化合物13（165mg、0.38mmol）をテトラヒドロフラン（1ml）に溶解させ、室温にて塩化t-ブチルジメチルシリル（180mg、1.0mmol）、トリエチルアミン（0.14ml、0.99mmol）を加え、1時間撹拌した。薄層クロマトグラフィーにより、原料の消失を確認したのち、-78℃にて反応液に水素化ジイソブチルアルミニウム（1.0M、n-ヘキサン溶液、1.0ml）を加え1時間攪拌した。反応液を0℃に昇温した後、水（10ml）を加え、酢酸エチルで抽出し、有機層を無水硫酸マグネシウムで脱水した。溶媒を減圧留去して得られる残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ヘキサン:酢酸エチル=6:1）にて精製し、図中の化合物14（130mg、100%）を黄色油状として得た。
1H NMR（400 MHz, CDCl3） δ 0.29（6H, s）, 1.08（9H, s）, 3.85（2H, d, 6.0Hz）, 4.77（2H, s）, 4.97（1H, d, J=30.0Hz）, 5.01（1H, d, J=23.2Hz） , 6.02（1H, m）, 6.02（1H, m）, 7.12（1H, d, J=8.8Hz）, 7.44（1H, d, J=8.8Hz）, 7.62（1H, d, J=8.8Hz）, 7.70（1H, s）, 7.90（1H, J=8.8Hz）
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000030
　化合物14（130mg、0.38mmol）をジクロロメタン（10ml）に溶解し、室温にて酸化マンガン（400mg、4.60mmol）を加え、4時間撹拌した。薄層クロマトグラフィーにより、原料の消失を確認したのち、セライトにて不溶物を除去した。溶媒を減圧留去してアルデヒドの粗生成物を得た。粗生成物をベンゼン（5ml）に溶解させ、室温にて（カルボメトキシメチレン）トリフェニルホスホラン（1.2g、3.8mmol）を加え、6時間攪拌した。溶媒を減圧留去して得られる残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ヘキサン:酢酸エチル=4:1）にて精製し、化合物15（145mg、100%）を淡黄色固体として得た。
1H NMR（400 MHz, CDCl3） δ 0.26（6H, s）, 1.04（9H, s）, 3.80（complex 5H）, 4.94（1H, d, J=38.5Hz）, 4.98（1H, d, J=30.5Hz）, 5.99（1H, m）, 6.02（1H, m）, 6.49（1H, d, J=16.0Hz）, 7.11（1H, d, J=8.8Hz）, 7.64（complex 2H）, 7.84（complex 3H）
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000031
　化合物15（53mg、0.14mmol）をイソプロピルアルコール（6ml）に溶解させ、1M水酸化ナトリウム水溶液（3ml、3mmol）を加え室温で12時間攪拌した。反応液を放冷した後、陽イオン交換樹脂（アンバーライトIR-120H）を用いて中和した。樹脂を濾別し、溶媒を減圧留去し、化合物16（51mg、100%）を淡黄色固体として単一の生成物で得た。
1H NMR（400 MHz, CD3OD） δ 3.83（2H, d, J=6.1Hz）, 4.96（complex 2H）, 6.00（1H, m）, 6.56（1H, d, J=16.0Hz）, 7.26（1H, d, J=8.8Hz）, 7.76（complex 3H）, 8.97（complex 2H）
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000032
　D-システイン-S-トリチル化合物17（504mg、1.39mmol）をメタノール（100ml）に溶解させ、4N塩化水素1,4-ジオキサン溶液（5.4ml）を加えた。室温で17日間撹拌した後、陰イオン交換樹脂アンバーライトIRA400を用いて中和した。樹脂を濾別し、溶媒を減圧留去し得られる残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ヘキサン:酢酸エチル=1:1）にて精製し、化合物18（455mg、86%）を淡黄色油状として得た。
1H NMR（400MHz, CDCl3） δ 2.47（1H, dd, J=8.1, 13Hz）, 2.60（1H, dd, J=5.1, 13Hz）, 3.21（1H, dd, J=5.1, 8.1Hz）, 3.66（3H, s）, 7.18-7.32（9H, complex）, 7.40-7.54（6H, complex）
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000033
　化合物16（50mg、0.13mmol）と化合物18（67mg、0.17mmol）をピリジン（2ml）に溶解し、塩酸1-エチル-3-（3-ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド（42ml、0.21mmol）、1-ヒドロキシベンゾトリアゾール（29mg、0.21mmol）を加え、室温で2時間撹拌した。反応溶媒を減圧留去し、酢酸エチル（50ml）で希釈し、水（50ml）を加えた。有機層を飽和食塩水（20ml）にて洗浄し、さらに水層を酢酸エチル（50ml）で洗浄した後、有機層を合わせ無水硫酸マグネシウムで脱水した。溶媒を減圧留去してアミドの粗生成物（図中の化合物19）を得た。化合物19は不安定であり、精製せずに次の反応を行った。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000034
　アミドの粗生成物（図中の化合物19）をジクロロメタン（35ml）に溶解し、0℃にてトリフェニルホスフィンオキシド（106mg、0.37mmol）、無水トリフルオロメタンスルホン酸（160μl、0.88mmol）を加えた。2時間撹拌した後、反応液をクロロホルム（50ml）で希釈し、水（50ml）を加えた。有機層を飽和食塩水（20ml）にて洗浄し、さらに水層を酢酸エチル（50ml）で洗浄した後、有機層を合わせ無水硫酸マグネシウムで脱水した。溶媒を減圧留去し得られる残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（クロロホルム:メタノール=9:1）にて精製し、化合物20（36mg、2段階収率80%）を淡黄色油状として得た。
1H NMR（400 MHz, CD3OD） δ 3.62（2H, m）, 3.82（complex 5H）, 5.05（complex 2H） 5.23（1H, t, J=19.0Hz）, 6.05（1H, m）, 7.14（complex 2H, , J=8.7, 16.2Hz）, 7.26（1H, d, J=16.2Hz）, 7.66（complex 3H）, 7.77（1H, s）, 7.86（1H, d, J=9.0Hz）
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000035
　化合物20（25mg、0.026mmol）をテトラヒドロフラン（1ml）、エタノール（5ml）、10mM炭酸アンモニウム水溶液（30ml）に溶解し、40℃にてブタ膵臓リパーゼ（25mg）を加えた。24時間撹拌した後、反応液をクロロホルム（50ml）で希釈し、水（50ml）を加えた。セライトにて不溶物を除去した後、溶媒を減圧留去した。得られた粗生成物をメタノール/水混合溶媒（1:1,2ml）に溶解し、高速液体クロマトグラフィー（MightsilRP-18GP（3μm）、0.05％TFAaq.:MeCN=9:1→1:9（40min）、20℃、1ml/min、検出440nm（DAD））にて精製したところ、図2のような結果を得た。化合物21は、19.60min付近に溶出された。
1H NMR（500 MHz, CD3OD）δ 3.62-3.70（2H, m）, 3.78（2H, d, J=5.75Hz）, 4.90-4.95（2H, m）, 5.21（1H, t, 8.05Hz）, 5.95-6.02（1H, m）, 7.08（1H, m）, 7.13（1H, d, 9.15Hz）, 7.39（1H, d, 16.0Hz）, 7.67（1H, s）, 7.67（1H, d, 16Hz）, 7.89-7.90（2H, m）
　参考例3：ナフトール-モノエン型のルシフェリン類似体の合成
　TBS保護体32の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000036
　6-シアノ-2-ナフトール31（50.2mg、0.297mmol）、t-ブチルジメチルシリルクロライド（143mg、0.95mmol）、イミダゾール（160.7mg、2.37mmol）をDMF（0.5mL）に溶解させ、室温で1時間攪拌した。反応混合物に水（40mL）を加え、酢酸エチル（3×60mL）で抽出した。有機層を硫酸ナトリウムで乾燥後、減圧濃縮した。得られた残渣をカラムクロマトグラフィー｛シリカゲル36g；ヘキサン-酢酸エチル（8：1）｝にて精製し、TBS保護体32（69.9mg、83%）を無色油状として得た。
　類似体32
1H NMR（270MHz, CDCl3）δ 0.01（6H, s）, 0.74（9H, s）, 6.80-7.80（6H, complex）。
　アルデヒド体33の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000037
　TBS保護体32（99.3mg、0.35mmol）、1M ジイソブチルアルミニウム（トルエン溶液）0.5mLをアルゴン雰囲気下、脱水トルエン（10mL）に溶解させ、1時間攪拌した。反応混合物を氷冷し、アセトン（10mL）、飽和ロッシェル塩水溶液（20mL）、水（30mL）を加え、酢酸エチル（3×50mL）で抽出した。有機層に硫酸ナトリウムを加え乾燥させた後、減圧濃縮した。得られた残渣を分取薄層クロマトグラフィー｛20cm×20cm×0.5mm×1枚；ヘキサン-酢酸エチル（10：1）｝にて精製し、アルデヒド体33（74.4mg、74%）を黄色油状として得た。
　アルデヒド体33
1H NMR（270MHz, CDCl3）δ 0.28（6H, s）, 1.03（9H, s）, 7.00-7.80（6H, complex）, 10.10（1H, s）。
　エステル体34の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000038
　アルデヒド体33（63.9mg、0.22mmol）、カルベトキシメチレントリフェニルホスフォラン（121mg、0.349mmol）をトルエン（2mL）に溶解させ、室温で5時間攪拌した。反応混合物に水（50mL）を加え、酢酸エチル（3×50mL）で抽出した。有機層を硫酸ナトリウムで乾燥後、減圧濃縮した。得られた残渣を分取薄層クロマトグラフィー｛20cm×20cm×0.5mm×1枚；ヘキサン-酢酸エチル（25：1）｝で精製し、エステル体34（76.6mg、97%）を黄色油状として得た。
　エステル体34
1H NMR（270MHz, CDCl3）δ 0.25（6H, s）, 1.00（9H, s）, 1.43（3H, t, J=7.0Hz）, 4.23（2H, q, J=7.1Hz）, 5.95（1H, d, J=12.5Hz）, 6.47（1H, d, J=16.1Hz）, 7.01-7.80（7H, complex）。
　カルボン酸35の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000039
　エステル体34（90.8mg、0.253mmol）をイソプロピルアルコール（3mL）に溶解させ、1M水酸化ナトリウム水溶液（5mL）を加え、5時間攪拌した。反応混合物に陽イオン交換樹脂IR-120BNaを加え中和した。樹脂を濾別し、濾液を減圧濃縮して、カルボン酸35（54.9mg、quant.）を薄黄色固体として得た。
　カルボン酸35
1H NMR（270MHz, CD3OD）δ 6.47（1H, d, J=15.8Hz）, 7.00-7.90（7H, complex）。
　メチルエステル体36の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000040
　D-システイン-S-トリチル化合物（504mg、1.39mmol）をメタノール（100ml）に溶解させ、4N 塩化水素の1,4-ジオキサン溶液（5.4ml）を加えた。室温で17日間撹拌した後、陰イオン交換樹脂 IRA400 OH AGを用いて中和した。樹脂を濾別し、得られた溶液を減圧濃縮した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー｛シリカゲル33.6g；ヘキサン-酢酸エチル（1：1）｝にて精製し、メチルエステル体36（455mg、86%）を薄黄色油状として得た。
　メチルエステル36
IR（neat） 3380, 3320, 1740, 1600cm-1
1H NMR（270MHz, CDCl3）δ2.47（1H, dd, J=8.1, 13Hz）, 2.60（1H, dd, J=5.1, 13Hz）, 3.21（1H, dd, J=5.1, 8.1Hz）, 3.66（3H, s）, 7.18-7.32（9H, complex）, 7.40-7.54（6H, complex）
13C NMR（67.8MHz, CD3OD）δ36.90（t）, 52.16（q）, 53.78（d）, 66.83（s）, 126.8（d）×3, 127.9（d）×6, 129.6（d）×6, 144.5（s）×3, 174.2（s）。
　アミド体3７の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000041
　メチルエステル36（145mg、0.381mmol）のN,N-ジメチルホルムアミド溶液（1ml）にアルゴン雰囲気下、カルボン酸35（54.9mg、0.254mmol）、塩酸1-エチル-3-（3-ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド（145mg、0.762mmol）、4-ジメチルアミノピリジン（155mg、1.27mmol）を加え、室温で4時間撹拌した。反応混合物に水（50ml）を加え、酢酸エチル（3×50ml）で抽出し、有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥後、減圧濃縮した。得られた残渣を分取薄層クロマトグラフィー｛20cm×20cm×0.5mm×2枚；ヘキサン-酢酸エチル（2：1）｝にて精製し、アミド体37（58.4mg、40%）を薄黄色油状として得た。
　アミド体37
1H NMR（270MHz, CDCl3）δ 2.75（2H, dd, J=4.6, 7.9Hz）, δ3.75（3H, s）, 4.77（1H, dd, 2.7, 7.9Hz）, 6.35（1H, d, J=16.1Hz）, 6.90-7.80（22H, complex）。
　チアゾリン38の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000042
　アミド37（60.3mg、0.109mmol）のジクロロメタン溶液（3ml）にアルゴン雰囲気下、トリフェニルホスフィンオキシド（91mg、0.327mmol）、トリフルオロメタンスルホン酸無水物（100μL, 0.546mmol）を加え、室温で1時間撹拌した。反応混合物に水（50ml）を加え、クロロホルム（3×50ml）で抽出し、有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥後、減圧濃縮した。得られた残渣を分取薄層クロマトグラフィー（20cm×20cm×0.5mm×2枚；ヘキサン-酢酸エチル（1：2）｝にて精製し、チアゾリン38（17.4mg、55%）を黄色固体として得た。
　チアゾリン38
1H NMR（270MHz, CD3OD）δ3.63（2H, dd, J=3.1, 8.9Hz）, 3.8 1（3H, s）, 5.27（1H, t, J=8.9Hz）, 7.07-7.13（2H, complex）, 7.33（1H, d, J=16.1Hz）, 7.55-7.83（4H, complex）。
　類似体39の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000043
　チアゾリン38（6.3mg、0.0201mmol）を、エタノール（2mL）と10mM 炭酸水素アンモニウム水溶液（8mL）の混合溶媒に溶解させ、アルゴン雰囲気下、少量のブタ肝臓エステラーゼを加えた。36℃で17時間撹拌した後、反応混合物を濾過し、その濾液を減圧濃縮して、類似体39（7.6mg、quant.）を黄色固体として得た。
　生物発光スペクトル
　200μLポリスチレンチューブ内で、リン酸カリウム緩衝液（0.5 M、pH8.0、20μl）基質溶液（2.5mM、20μl）、酵素溶液（20μl）、次いでATP-Mg溶液（10mM、40μl）を混合して発光スペクトル測定を行った。酵素溶液の濃度は、17μMのものを使用した。ただし、ホタルルシフェリンは、1.7μM、フェノール型ルシフェリンは、170μMの酵素をそれぞれ使用した。また、発光スペクトル測定の露光時間は、60秒とした。ただし、ホタルルシフェリンは、5秒で行った。
　実験結果
　上記手順を使用して、ホタルルシフェリンおよびナフトール-モノエン型のルシフェリン類似体（上記化合物39）、並びに図1および図2に示したアリル基で修飾された化合物の発光波長を測定した。ホタルルシフェリンは、565nmの発光波長を有していた。また、ナフトール-モノエン型のルシフェリン類似体（上記化合物39）は、660nmの発光波長を有していた。図1および図2に示した化合物は、それぞれ605nmおよび690nmの発光波長を有していた。ホタルルシフェリンのベンゾチアゾール環部分の7位をアリル基で修飾することにより、発光波長が長波長側におよそ30～40nmシフトした。また、ナフトール-モノエン型のルシフェリン類似体のナフトール部分の5位をアリル基で修飾することにより、発光波長が長波長側におよそ30～40nmシフトした。
　したがって、ルシフェリンおよびルシフェリン類似体は、アリル基で修飾することにより、その発光波長を長波長側にシフトさせることが可能なことが分かった。
　これにより、実用的な発光波長を変更するための指標を確立することができた。この指標に基づいてルシフェリン誘導体を設計することにより、より長波長の発光波長を有するルシフェラーゼ基質を製造することができる。
　インビボでのバイオイメージング
　ルシフェラーゼが導入されたトランスジェニック細胞、組織および生物に対して本発明のルシフェリン類似体を投与することにより、発光を生じさせことができる。この反応を利用して、生体の窓である690nm付近の発光波長を有する本発明の化合物を使用することにより、インビボにおける発光を検出しやすくなる。たとえば、移植組織や移植細胞にへルシフェラーゼを導入した後、移植動物に対して本発明の化合物を投与すことにより、移植された生体内における、特に現在は難しいとされる生体内深部の移植組織の状態をインビボにおいて非侵襲的にイメージングすることができる。
　ルシフェラーゼを導入した細胞などのインビボにおけるイメージングにおいて、ルシフェラーゼトランスジェニック細胞は、たとえば実験医学、Vol.26、No.17（増刊）、2008、110-117ページに記載された手順に従って作製することができる。
　ルシフェラーゼトランスジェニック細胞、組織および生物を作成後、移植組織等のイメージングのためには、本発明のルシフェリン類似体を投与する。次いで、IVIS Imaging System （Xenogen社）などの装置によって、本発明の化合物による発光を検出することができる。

Claims (4)

  1. 　以下の一般式を有する化合物またはその塩：
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
     　式中、
    　Zは、
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
     であり、
    　R1は、HまたはC1-4アルキルであり、
    　R4は、OHまたはNR2R3であり、式中R2およびR3は、HまたはC1-4アルキルであり、
    　nは、0、1、2または3である。
  2. 　R1、R2およびR3は、Hであり、R4は、OHである、請求項1に記載の化合物またはその塩。
  3. 　請求項1または2に記載の化合物を含む、ルシフェラーゼの発光基質。
  4. 　請求項1または2に記載の化合物を含む、発光検出キット。
     
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