WO2011157222A1 - 淋巴瘤融合基因的联合检测方法及其诊断试剂盒 - Google Patents

淋巴瘤融合基因的联合检测方法及其诊断试剂盒 Download PDF

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WO2011157222A1
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lymphoma
seq
api2
malt1
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邵棠
袁福美
陈庆
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江苏迈迪基因生物科技有限公司
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    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6883—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material
    • C12Q1/6886—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material for cancer
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/158—Expression markers
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/16—Primer sets for multiplex assays

Definitions

  • the invention relates to the technical field of in vitro diagnostic detection, in particular to a liquid crystal chip combined detection method for a plurality of lymphoma-related fusion genes and a diagnostic kit thereof.
  • Lymphoma is a group of malignant tumors that originate in lymph nodes or other lymphoid tissues and can be divided into Hodgkin's disease (HD) and non-Hodgkin's lymphoma ( NHL) has become one of the top ten most common malignancies. Histology can be seen in the neoplastic proliferation of lymphocytes and/or histiocytes, clinically painless, progressive lymphadenopathy For the main performance.
  • HD Hodgkin's disease
  • NHL non-Hodgkin's lymphoma
  • Mucosa-associated lymphoid tissue (MALT) lymphoma is a malignant lymphoma that originates outside the lymph nodes and accounts for approximately 40% of all lymphomas. Among them, gastrointestinal MALT lymphoma is the most common.
  • API2-MALT1 is a fusion gene produced by chromosomal translocation of MALT lymphoma, which can be found in about 50% of MALT lymphomas and is currently considered to be a characteristic genetic alteration of MALT lymphoma.
  • the variants formed by the API2-MALT1 fusion gene are mainly found to be API2-MALT1 (A1446-M541) and API2-MALT1 (A1446-M814). , API2-MALT1 (A1446-M1123), API2-MALT1 (A1446-M1150); wherein API2-MALT1 (A1446-M541) is relatively small, accounting for only about 9%.
  • Anaplastic large cell lymphoma is an independent type of non-Hodgkin's lymphoma, often characterized by anatropy. It is a highly malignant lymphoma with a 5-year survival rate of 52%.
  • Anaplastic lymphoma kinase anaplastic in about 60%-85% of cases of degenerative large cell lymphoma Lymphoma kinase, ALK) fusion protein due to aberrations in the ALK locus on chromosome 2.
  • NPM-ALK is a chromosomal translocation in anaplastic large cell lymphoma
  • the most common fusion gene formed is formed by the fusion of the nucleolar phosphoprotein (NPM) gene located on chromosome 5 with the ALK gene located on chromosome 2.
  • NPM nucleolar phosphoprotein
  • FISH fluorescence in situ hybridization
  • Biochip solid-phase biochip technology
  • xMAP liquid phase chip
  • the liquid phase chip also known as the liquid chip, can perform qualitative and quantitative detection on a small number of samples, and has the outstanding advantages of high throughput, simple operation, good repeatability, high sensitivity, and wide linear range.
  • the system consists of a number of microspheres as the main matrix. During the manufacturing process of the microspheres, two different red-classified fluorescences are incorporated. According to the ratio of the two kinds of fluorescence, the spherical matrix is divided into two. 100 species, can label up to 100 different probe molecules, can simultaneously up to 100 in one sample Different target molecules are detected.
  • the surface of the microspheres can be covalently bound to a variety of nucleic acid detection probes, and fluorescent labels are added as the hybridization reaction proceeds.
  • a variety of different detection microspheres can be added simultaneously in the same reaction system, so that a small amount of sample can be used for rapid, high-throughput detection.
  • the microspheres are arranged into a single column and flow through the liquid phase chip detector by microfluidic technology. Each microsphere can be detected by two lasers at the same time, and the red laser excites the red classified fluorescence on the microsphere. Differentiate different reactions Qualitative; the green laser excites the fluorescent label bound to the sample to be tested for quantification.
  • the labeled sample to be tested When the labeled sample to be tested is combined with the probe on a specific microsphere, the light excited by the two lasers can be detected. Finally, through the computer's high-speed digital signal processor, the average fluorescence intensity on a particular microsphere can be automatically statistically analyzed to determine the type and amount of the analyte.
  • the invention is based on the high-throughput, easy-to-operate, reproducible, high-sensitivity, wide linear range and the like of the liquid-phase chip technology, and the combined detection of various fusion genes related to lymphoma can be better in clinical detection. Applications.
  • the technical problem to be solved by the present invention is to provide a combined detection method and diagnostic kit for a lymphoma-associated fusion gene.
  • the method and kit comprise API2-MALT1 (A1446-M814), API2-MALT1 (A1446-M1123), API2-MALT1 (A1446-M1150), NPM-ALK Combined detection of fusion genes, can be used for lymphoma Clinical classification was performed, and patients were monitored dynamically for efficacy observation, prognosis and minimal residual disease.
  • the detection method and the diagnostic kit have the advantages of high sensitivity, high specificity, high accuracy, and rapid detection.
  • a A combined detection method for lymphoma-associated fusion genes comprising the following steps:
  • (1) Contains a variety of different fluorescently encoded carboxyl (-COOH) microspheres (Beads); specific nucleic acid probes designed to covalently bind to mRNAs of various fusion genes formed by chromosomal translocations in lymphoma, respectively, on each microsphere
  • the plurality of fusion genes formed by chromosomal translocation in the lymphoma include any one or any of the following genes or a combination of other genes: API2-MALT1 (A1446-M814) , API2-MALT1 (A1446-M1123), API2-MALT1 (A1446-M1150), NPM-ALK;
  • Upstream and downstream primers were designed for mRNAs of various fusion genes formed by chromosomal translocations in different lymphoma types, one of which contained biotin (Biotin) label; and the mRNA of different fusion genes was amplified by reverse transcription PCR. Corresponding product;
  • microspheres described in the step (1) of the above detection method may be polyphenylene microspheres having an average diameter of 5.6 ⁇ m combined with different fluorescent dyes, that is, color-coded beads (Color-coded Beads);
  • the specific nucleic acid probe designed to covalently bind to the mRNA of the plurality of fusion genes formed on the chromosomal translocation in the lymphoma including the following sequence (including the 5' end) Amino modification):
  • API2-MALT1 (A1446-M814) : 5'- AminolinkerC12 GCTTTGATTCTTTTTCCTCAG-3', as shown in SEQ ID NO.
  • API2-MALT1 (A1446-M1123) : 5'- AminolinkerC12 CCAAGATTATTTAATTCATTTG-3', as shown in SEQ ID NO. 2;
  • API2-MALT1 (A1446-M1150) : 5'- AminolinkerC12 TGCTCTTTATTATTTGATTCTT-3', as shown in SEQ ID NO.
  • NPM-ALK 5' - AminolinkerC12 CCTATAGTTGTTTTAAATGC -3' as shown in SEQ ID NO. 4;
  • any one or a combination of more than one of the above sequences may be used.
  • the upstream and downstream primers designed for mRNAs of different fusion genes include the following sequences (wherein the upstream primer has a biotin label at the 5' end):
  • API2-MALT1 (A1446-M814) : upstream primer 5'-biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG -3', as shown in SEQ ID NO. 5; downstream primer 5' -TTGGGAAGTTGGTTCAACACAG-3' as shown in SEQ ID NO. 6;
  • API2-MALT1 (A1446-M1123) : upstream primer 5'- biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG 3', as shown in SEQ ID NO. 7; downstream primer 5'-CGCCAAAGGCTGGTCAGTT-3', As shown in SEQ ID NO.
  • API2-MALT1 (A1446-M1150) : upstream primer 5'-biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG -3', as shown in SEQ ID NO. 9; downstream primer 5'-CGCCAAAGGCTGGTCAGTT-3', As shown in SEQ ID NO.
  • NPM-ALK upstream primer 5' -biotin TGTTGCCCAGATTGGACTCTT-3' , as shown in SEQ ID NO. 11; downstream primer 5' - GCAGCTTCAGTGCAATCACAG-3', such as SEQ ID NO. Shown
  • any one or a combination of more than one of the above sequences may be used.
  • the primers and probe sequences of the internal reference gene ⁇ -actin gene are as follows:
  • Upstream primer 5' -biotin TGGGTCAGAAGGATTCCTATGTG -3' as SEQ ID NO. 13;
  • any one or a combination of more than one of the above sequences may be used.
  • a diagnostic kit for detecting a plurality of fusion genes associated with lymphoma comprising a mixture of microspheres covalently bound to a lymphoma fusion gene mRNA-specific probe, combined with a ⁇ -actin gene probe Needle microspheres, upstream and downstream primers for lymphoma fusion gene mRNA, upstream and downstream primers for ⁇ -actin gene, streptavidin-PE, control (negative control and positive control).
  • the controls described in the above kits contain a positive control and a negative control, wherein the positive control is a mixture containing various lymphoma-associated fusion gene plasmids (including plasmids containing the ⁇ -actin gene), and the negative control is no.
  • the positive control is a mixture containing various lymphoma-associated fusion gene plasmids (including plasmids containing the ⁇ -actin gene), and the negative control is no.
  • a plasmid containing a lymphoma-associated fusion gene and a ⁇ -actin gene; the microsphere mixture is freely combined according to the needs of different test samples.
  • Another aspect of the invention provides A diagnostic kit for detecting a variety of fusion genes associated with lymphomas in the detection of in vitro samples, for lymphoma typing, early diagnosis, efficacy observation, prognosis and dynamic monitoring of minimal residual disease.
  • the invention utilizes The liquid phase chip technology enables the detection method and kit to have the advantages of high sensitivity, high specificity, high throughput, good stability, rapid detection and accuracy, and can qualitatively and quantitatively detect lymphoma-associated fusion genes. Better application in clinical testing.
  • Example 1 Liquid phase chip combined detection method for two kinds of lymphoma-associated fusion genes
  • the specific detection method includes the following steps:
  • API2-MALT1 (A1446-M1123) : 5'- AminolinkerC12 CCAAGATTATTTAATTCATTTG -3' , as shown in SEQ ID NO. 2;
  • NPM-ALK 5' - AminolinkerC12 CCTATAGTTGTTTTAAATGC -3' as shown in SEQ ID NO. 4;
  • Three kinds of carboxyl microsphere storage suspensions with full-speed vortex numbers 25, 50, and 64 are respectively at least 3 min to produce a uniform microsphere suspension;
  • the coupled microspheres were diluted 1:100 with d H 2 O;
  • Microspheres/ ⁇ l (4 large microspheres total) ⁇ 2.5 ⁇ 100 (dilution factor).
  • microspheres coupled with an oligonucleotide probe are as follows: API2-MALT1 (A1446-M1123)
  • the probe microspheres 25, the NPM-ALK probe microspheres 50, and the ⁇ -actin probe microspheres 64 were mixed in equal proportions, and the final concentration of each microsphere was 1500/ ⁇ l, and was stored at 2-8 ° C in the dark.
  • the clinical sample of patients was a frozen tissue block of non-Hodgkin's lymphoma (NHL), including clinical samples of patients with mucosa-associated lymphoid tissue (MALT) lymphoma or anaplastic large cell lymphoma (ALCL).
  • NDL non-Hodgkin's lymphoma
  • MALT mucosa-associated lymphoid tissue
  • ACL anaplastic large cell lymphoma
  • the multiplex PCR was performed on the mRNA of sample No. 1-5 as follows:
  • the tube was incubated at 70 ° C for 5 minutes, then quickly taken out and cooled in ice, and the reaction liquid on the tube wall was collected by a centrifugal centrifuge to the bottom of the tube;
  • AAPI2-MALT1 (A1446-M1123) : Upstream Primer 5'- biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG 3', as shown in SEQ ID NO. 7; downstream primer 5'-CGCCAAAGGCTGGTCAGTT-3', As shown in SEQ ID NO.
  • NPM-ALK upstream primer 5' -biotin TGTTGCCCAGATTGGACTCTT-3' , as shown in SEQ ID NO. 11; downstream primer 5' - GCAGCTTCAGTGCAATCACAG-3', such as SEQ ID NO. Shown
  • the 2 ⁇ QIAGEN Multiplex PCR Master Mix contains hot-start Taq DNA, MgCl 2 and dNTP Mix.
  • PCR amplification procedure 95 ° C for 15 min; 94 ° C for 30 s, 55 ° C for 90 s, 72 ° C 90s, 35 cycles; 72 ° C 10 min; 4 ° C insulation.
  • microsphere working solution was prepared, and the coupled microspheres were diluted with a 1.5 ⁇ TMAC hybridization solution to a concentration of 150 microspheres/ ⁇ l. (Note: 33 ⁇ l of microsphere working solution is required for each reaction);
  • Types 2 and 5 are fusion gene NPM-ALK positive
  • the fluorescent MFI value of the positive fusion gene is compared with the fluorescent MFI value of the internal reference ⁇ -actin gene, and the expression status of the fusion gene can be obtained.
  • Example 2 Liquid crystal chip combined detection method for three kinds of lymphoma related fusion genes
  • the specific detection method includes the following steps:
  • API2-MALT1 (A1446-M814), API2-MALT1 Preparation of microsphere mixture of (A1446-M1123) and NPM-ALK fusion gene
  • API2-MALT1 (A1446-M814) : 5'- AminolinkerC12 GCTTTGATTCTTTTTCCTCAG -3', as shown in SEQ ID NO.
  • API2-MALT1 (A1446-M1123) : 5'- AminolinkerC12 CCAAGATTATTTAATTCATTTG -3', as shown in SEQ ID NO. 2;
  • NPM-ALK 5' - AminolinkerC12 CCTATAGTTGTTTTAAATGC -3' as shown in SEQ ID NO. 4;
  • the coupled microspheres were diluted 1:100 with d H 2 O;
  • Microspheres/ ⁇ l (4 large microspheres total) ⁇ 2.5 ⁇ 100 (dilution factor).
  • microspheres coupled with oligonucleotide probes are as follows: API2-MALT1 (A1446 - M814) probe microsphere 11, API2-MALT1 (A1446-M1123) probe microsphere 25, NPM-ALK probe microsphere 50, ⁇ -actin probe microsphere 64, In a proportional mixture, the final concentration of each microsphere is 1500/ ⁇ l, and it is stored at 2-8 °C in the dark.
  • the clinical sample of patients was a frozen tissue block of non-Hodgkin's lymphoma (NHL), including clinical samples of patients with mucosa-associated lymphoid tissue (MALT) lymphoma or anaplastic large cell lymphoma (ALCL).
  • NDL non-Hodgkin's lymphoma
  • MALT mucosa-associated lymphoid tissue
  • ACL anaplastic large cell lymphoma
  • Trizol solution was added to a ratio of 0.2 ml to add chloroform, the tube was tightly capped, and the tube was vigorously shaken by hand for 15 seconds.
  • the multiplex PCR was performed on the mRNA of sample No. 1-6 as follows:
  • the tube was incubated at 70 ° C for 5 minutes, then quickly taken out and cooled in ice, and the reaction liquid on the tube wall was collected by a centrifugal centrifuge to the bottom of the tube;
  • API2-MALT1 (A1446-M814) : upstream primer 5'-biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG -3', as shown in SEQ ID NO. 5; downstream primer 5' -TTGGGAAGTTGGTTCAACACAG-3' as shown in SEQ ID NO. 6;
  • API2-MALT1 (A1446-M1123) : upstream primer 5'-biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG 3', as shown in SEQ ID NO. 7; downstream primer 5'-CGCCAAAGGCTGGTCAGTT-3', As shown in SEQ ID NO.
  • NPM-ALK upstream primer 5' -biotin TGTTGCCCAGATTGGACTCTT-3' , as shown in SEQ ID NO. 11; downstream primer 5' - GCAGCTTCAGTGCAATCACAG-3', such as SEQ ID NO. Shown
  • the 2 ⁇ QIAGEN Multiplex PCR Master Mix contains hot-start Taq DNA, MgCl 2 and dNTP Mix.
  • PCR amplification procedure 95 ° C for 15 min; 94 ° C for 30 s, 55 ° C for 90 s, 72 ° C 90s, 35 cycles; 72 ° C 10 min; 4 ° C insulation.
  • microsphere working solution was prepared, and the coupled microspheres were diluted with a 1.5 ⁇ TMAC hybridization solution to a concentration of 150 microspheres/ ⁇ l. (Note: 33 ⁇ l of microsphere working solution is required for each reaction);
  • test results Fives. Test results and analysis The test results (fluorescence MFI values) are shown in Table 5:
  • API2-MALT (A1446-M814) API2-MALT (A1446-M1123) NPM-ALK 1 negative negative Positive 2 negative Positive negative 3 Positive negative negative 4 negative negative Positive 5 Positive negative negative 6 negative Positive negative
  • Types 3 and 5 were positive for fusion gene API2-MALT1 (A1446-M814)
  • Type 1 and 4 patients are type fusion gene NPM-ALK positive
  • the fluorescent MFI value of the positive fusion gene is compared with the fluorescent MFI value of the internal reference ⁇ -actin gene, and the expression status of the fusion gene can be obtained.
  • Example 3 Liquid phase chip combined detection method for four lymphoma-associated fusion genes
  • the specific detection method includes the following steps:
  • API2-MALT1 A1446-M814
  • API2-MALT1 A1446-M1123
  • API2-MALT1 A1446-M1150
  • API2-MALT1 (A1446-M814) : 5' - AminolinkerC12 GCTTTGATTCTTTTTCCTCAG -3' as shown in SEQ ID NO.
  • API2-MALT1 (A1446-M1123) : 5' - AminolinkerC12 CCAAGATTATTTAATTCATTTG -3' , as shown in SEQ ID NO. 2;
  • API2-MALT1 (A1446-M1150) : 5' - AminolinkerC12 TGCTCTTTATTATTTGATTCTT -3' as shown in SEQ ID NO. 3;
  • NPM-ALK 5' - AminolinkerC12 CCTATAGTTGTTTTAAATGC -3' as shown in SEQ ID NO. 4;
  • the coupled microspheres were diluted 1:100 with d H 2 O;
  • Microspheres/ ⁇ l (4 large microspheres total) ⁇ 2.5 ⁇ 100 (dilution factor).
  • microspheres coupled with oligonucleotide probes are as follows: API2-MALT1 (A1446 - M814 Probe microsphere 11, API2-MALT1 (A1446-M1123) probe microsphere 25, API2-MALT1 (A1446-M1150) probe microsphere 37, NPM-ALK probe microspheres 50, ⁇ -actin probe microspheres 64, are mixed in equal proportions, and the final concentration of various microspheres is 1500/ ⁇ l, and stored at 2-8 °C in the dark.
  • the clinical sample of patients was a frozen tissue block of non-Hodgkin's lymphoma (NHL), including clinical samples of patients with mucosa-associated lymphoid tissue (MALT) lymphoma or anaplastic large cell lymphoma (ALCL). 1-20 The clinical samples of patients with lymphoma were extracted according to the following steps:
  • Trizol solution was added to a ratio of 0.2 ml to add chloroform, the tube was tightly capped, and the tube was vigorously shaken by hand for 15 seconds.
  • the tube was incubated at 70 ° C for 5 minutes, then quickly taken out and cooled in ice, and the reaction liquid on the tube wall was collected by a centrifugal centrifuge to the bottom of the tube;
  • API2-MALT1 (A1446-M814) : upstream primer 5'-biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG -3', as shown in SEQ ID NO. 5; downstream primer 5' -TTGGGAAGTTGGTTCAACACAG-3' as shown in SEQ ID NO. 6;
  • API2-MALT1 (A1446-M1123) : upstream primer 5'- biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG 3', as shown in SEQ ID NO. 7; downstream primer 5'-CGCCAAAGGCTGGTCAGTT-3', As shown in SEQ ID NO.
  • API2-MALT1 (A1446-M1150) : upstream primer 5'-biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG -3', as shown in SEQ ID NO. 9; downstream primer 5'-CGCCAAAGGCTGGTCAGTT-3', As shown in SEQ ID NO.
  • NPM-ALK upstream primer 5' -biotin TGTTGCCCAGATTGGACTCTT-3' , as shown in SEQ ID NO. 11; downstream primer 5' - GCAGCTTCAGTGCAATCACAG-3', such as SEQ ID NO. Shown
  • the 2 ⁇ QIAGEN Multiplex PCR Master Mix contains hot-start Taq DNA, MgCl 2 and dNTP Mix.
  • PCR amplification procedure 95 ° C for 15 min; 94 ° C for 30 s, 55 ° C for 90 s, 72 ° C 90s, 35 cycles; 72 ° C 10 min; 4 ° C insulation.
  • microsphere working solution was prepared, and the coupled microspheres were diluted with a 1.5 ⁇ TMAC hybridization solution to a concentration of 150 microspheres/ ⁇ l. (Note: 33 ⁇ l of microsphere working solution is required for each reaction);
  • test results Fives. Test results and analysis The test results (fluorescence MFI values) are shown in Table 7:
  • Types 1, 4, 6, 9, 12, 20 are Fusion gene API2-MALT1 (A1446-M1123) positive
  • Types 7 and 16 were positive for fusion gene API2-MALT1 (A1446-M1150)
  • Types 3, 8, 10, 13, 14, 17, 19 are fusion gene NPM-ALK positive
  • the fluorescent MFI value of the positive fusion gene is compared with the fluorescent MFI value of the internal reference ⁇ -actin gene, and the expression status of the fusion gene can be obtained.
  • the detection method and kit have high sensitivity, high specificity, high throughput, It has outstanding advantages such as good stability, rapid detection and accuracy, and can be used for qualitative and quantitative detection of lymphoma-associated fusion genes, which can be better applied in clinical detection.

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Description

[根据细则37.2由ISA制定的发明名称]　淋巴瘤融合基因的联合检测方法及其诊断试剂盒 Technical Field
本发明涉及体外诊断检测技术领域，具体涉及多种淋巴瘤相关的融合基因的液相芯片联合检测方法及其诊断试剂盒。
Background Art
淋巴瘤是一组起源于淋巴结或其他淋巴组织的恶性肿瘤，可分为 霍奇金病 （ HD ）和 非霍奇金淋巴瘤 （ NHL ）两大类， 目前已成为最常见的十大恶性肿瘤之一。 组织学可见淋巴细胞和（或）组织细胞的肿瘤性增生，临床以无痛性、进行性 淋巴结肿大 为主要表现。
黏膜相关淋巴组织（MALT）淋巴瘤是一种原发于淋巴结外的恶性淋巴瘤，其发生率约占整个淋巴瘤的40%，其中以胃肠道MALT淋巴瘤最常见。API2-MALT1是MALT淋巴瘤染色体易位产生的融合基因，在约50%的MALT淋巴瘤中可被发现，目前被看作MALT淋巴瘤特征性的遗传学改变。目前发现API2-MALT1融合基因形成的变异体主要有API2-MALT1（A1446-M541）、API2-MALT1（A1446-M814） 、 API2-MALT1 （A1446-M1123）、API2-MALT1（A1446-M1150）；其中API2-MALT1（A1446-M541）相对较少，只占9%左右。
间变性大细胞淋巴瘤（ALCL）是非霍奇金淋巴瘤的一种独立类型，常呈间变性特征，是一种高度恶性淋巴瘤，5年生存率为52%。约60%-85%左右间变性大细胞淋巴瘤病例表达间变性淋巴瘤激酶（anaplastic lymphoma kinase，ALK）融合蛋白，这是由于2号染色体上的ALK基因位点的畸变所致。NPM-ALK是间变性大细胞淋巴瘤中 染色体易位 而形成的最常见的融合基因，由位于5号染色体上的核仁磷酸蛋白（NPM）基因与位于2号染色体的ALK基因相融合形成。
当前国内外广泛使用的分子生物学检测 淋巴瘤 融合基因的方法中，荧光原位杂交技术（FISH）只能进行定性检测、操作复杂；荧光定量PCR存在着检测通量的局限性，所以都还不能真正满足临床诊断检测的需要。传统的固相生物芯片（Biochip）技术存在着可重复性差、灵敏度不够好以及操作繁琐的突出弱点。 因此临床上需要有一种检测方法，能够 迅速 、 稳定、 准确地对 淋巴瘤 的多种融合基因 进行联合并行检测， 液相芯片（ xMAP ）技术正是这样一种新型检测技术 。
液相芯片又称液态芯片，能够对少量样本进行定性、定量检测，具有高通量、操作简便、重复性好、灵敏度高、线性范围宽等突出优点。该系统是由许多微球为主要基质构成的，在微球的制造过程当中，掺入了两种不同的红色分类荧光，根据这两种荧光的比例不同，把球形基质分为 100 种 ，可以标记上 100 种不同的探针分子，能同时对一个样品中多达 100 种不同的目标分子进行检测。根据检测物的不同，微球表面可以共价结合各种各样的核酸检测探针，在杂交反应进行时再加上荧光标记。在同一反应体系中可以同时加入各种不同的检测微球，这样就可以利用少量的样本进行快速、高通量的检测。反应结束后，通过微流体技术将微球排成单列快速流经液相芯片检测仪，每个微球可同时被两束激光检测到，红色激光激发微球上的红色分类荧光， 将各个不同的反应区分开来而 定性；绿色激光则激发结合在待测样本上的荧光标记进行定量。当标记好的待测样本与特定微球上的探针结合在一起时，两束激光所激发的光均可被检测到。最后，通过计算机的高速数字信号处理器，可以自动统计分析得出特定微球上的平均荧光强度，从而确定检测物的种类和数量。
本发明基于液相芯片技术的高通量、操作简便、重复性好、灵敏度高、线性范围宽等突出优点，对淋巴瘤相关的多种融合基因进行联合检测，能够在临床检测上得到更好的应用。
 Technical Problem
本发明需要解决的技术问题是提供一种淋巴瘤相关的融合基因的联合检测方法及诊断试剂盒。该方法及试剂盒包含对 API2-MALT1 （ A1446-M814 ）、 API2-MALT1 （ A1446-M1123 ）、 API2-MALT1 （ A1446-M1150 ）、 NPM-ALK 多种 融合基因联合检测，可以对淋巴瘤 进行临床分型，同时对患者进行疗效观察、预后及微小残留疾病进行动态监测。本检测方法及诊断试剂盒具有高灵敏度、高特异性、高准确度、检测迅速等优点。
Technical Solution
为解决上述技术问题，在本发明的一方面，提供一种 淋巴瘤相关的融合基因的联合检测方法，包括以下步骤：
(1) 包含多种不同荧光编码的羧基（-COOH）微球（Beads）；每种微球上分别共价结合针对淋巴瘤中染色体易位形成的多种融合基因的mRNA所设计的特异性核酸探针；所述的淋巴瘤中染色体易位形成的多种融合基因包含以下基因的任意一种或任意多种或加上其它基因的组合：API2-MALT1（A1446-M814） 、 API2-MALT1 （A1446-M1123）、API2-MALT1（A1446-M1150） 、 NPM-ALK ；
(2) 针对不同淋巴瘤类型中染色体易位所形成的多种融合基因的mRNA，分别设计上下游引物，其中一条引物含有生物素（Biotin）标记；对不同的融合基因mRNA，通过逆转录PCR扩增出相应的产物；
（3）含有特异性核酸探针的微球与融合基因mRNA的逆转录扩增产物杂交后，加入链霉亲和素-藻红蛋白（Streptavidin-PE），通过液相芯片法（xMAP）检测荧光信号；
（4）将检测到的荧光信号与内参基因的荧光信号进行比较，从而确定检测样品中是否含有淋巴瘤相关的融合基因，和/或样品中融合基因的表达状况。
以上检测方法的步骤（1）中所述的微球可以是平均直径为5.6μm，结合了不同荧光染料的聚苯烯微球，即色彩编码微球（Color-coded Beads）；
步骤（1）中，所述的共价结合于微球上的针对淋巴瘤中染色体易位形成的多种融合基因的mRNA所设计的特异性核酸探针，包括如下序列（其中5'端含氨基修饰）：
API2-MALT1 （A1446-M814） ： 5'- AminolinkerC12 GCTTTGATTCTTTTTCCTCAG-3'，如 SEQ ID NO.1 所示；
API2-MALT1 （A1446-M1123） ： 5'- AminolinkerC12 CCAAGATTATTTAATTCATTTG-3'，如 SEQ ID NO.2 所示；
API2-MALT1 （A1446-M1150） ： 5'- AminolinkerC12 TGCTCTTTATTATTTGATTCTT-3'，如 SEQ ID NO.3 所示；
NPM-ALK ： 5' - AminolinkerC12 CCTATAGTTGTTTTAAATGC -3' ， 如 SEQ ID NO.4 所示；
或者包含有上述序列（含互补序列）的向5'端或/和3'端延长的序列；
或者与上述序列（含互补序列）同源性大于85%的序列；
或者与上述序列的碱基互补序列；
或者使用上述所有序列中的任意一种或一种以上的组合。
步骤（2）中，所述的针对不同融合基因的mRNA所设计的上下游引物，包括如下序列（其中上游引物5'端含生物素标记）：
API2-MALT1 （A1446-M814） ：上游引物 5'-biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG -3'，如 SEQ ID NO.5 所示； 下游引物 5' -TTGGGAAGTTGGTTCAACACAG-3' ， 如 SEQ ID NO.6 所示；
API2-MALT1 （A1446-M1123） ：上游引物 5'- biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG 3'，如 SEQ ID NO.7 所示； 下游引物 5' -CGCCAAAGGCTGGTCAGTT-3' ， 如 SEQ ID NO.8 所示；
API2-MALT1 （A1446-M1150） ：上游引物 5'-biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG -3'，如 SEQ ID NO.9 所示； 下游引物 5'-CGCCAAAGGCTGGTCAGTT-3' ， 如 SEQ ID NO.10 所示；
NPM-ALK ：上游引物 5' -biotin TGTTGCCCAGATTGGACTCTT-3' ， 如 SEQ ID NO.11 所示； 下游引物 5' - GCAGCTTCAGTGCAATCACAG-3' ， 如 SEQ ID NO.12 所示；
或者包含有上述序列（含互补序列）的向5'端或/和3'端延长的序列；
或者与上述序列（含互补序列）同源性大于85%的序列；
或者与上述序列的碱基互补序列；
或者使用上述所有序列中的任意一种或一种以上的组合。
步骤（4）中，所述的内参基因β-actin基因的引物和探针序列如下：
上游引物 5' -biotin TGGGTCAGAAGGATTCCTATGTG -3' ， 如 SEQ ID NO.13 所示；
下游引物 5'-GCTGGGGTGTTGAAGGTCTC -3'， 如 SEQ ID NO.14 所示；
探针 5' - AminolinkerC12 TCATTGTAGAAGGTGTGGTG -3' ， 如 SEQ ID NO.15 所示；
或者包含有上述序列（含互补序列）的向5'端或/和3'端延长的序列；
或者与上述序列（含互补序列）同源性大于85%的序列；
或者与上述序列的碱基互补序列；
或者使用上述所有序列中的任意一种或一种以上的组合。
在本发明另一方面，提供一种检测淋巴瘤相关的多种融合基因的诊断试剂盒，包含共价结合了淋巴瘤融合基因mRNA特异性探针的微球混合物、结合了β-actin基因探针的微球、淋巴瘤融合基因mRNA的上下游引物、β-actin基因的上下游引物、链霉亲和素-藻红蛋白（Streptavidin-PE）、质控品（阴性对照和阳性对照）。
以上试剂盒中所述的质控品包含阳性对照和阴性对照，其中阳性对照为含有各种淋巴瘤相关的融合基因质粒的混合液（包括含β-actin基因的质粒），阴性对照品为不含有淋巴瘤相关的融合基因及β-actin基因的质粒；所述的微球混合物，根据不同检测样品的需要自由组合。
本发明的 另一方面，提供 一种检测淋巴瘤相关的多种融合基因的诊断试剂盒在检测体外样品，对淋巴瘤进行分型，早期诊断，疗效观察，预后与微小残留疾病的动态监测中的应用。
 Advantageous Effects
由于本发明利用了 液相芯片技术，使检测方法及试剂盒具有高灵敏度、高特异性、高通量、稳定性好、检测迅速、准确等突出优点，能够对淋巴瘤相关的融合基因进行定性和定量检测，能在临床检测上得到更好的应用。
Description of Drawings
Best Mode
Mode for Invention
下面结合具体实施例详细说明本发明，但并不能理解为对本发明的限制。所述的实施例只提供阐明核酸探针、试剂盒及其制作和应用方法而不为其所限制。期间各种变化形式在本发明和所述的权项的范围内是可预期的。
实验材料：
引物和探针均由Invitrogen公司合成； Trizol 购自 Invitrogen公司；逆转录cDNA合成试剂盒购置于Fermentas公司；多重PCR试剂盒、不同编号的羧基微球（表面羧基修饰）、链霉亲和素-藻红蛋白均购置于QIAGEN公司；1-乙基-（3-二甲基氨基丙基）-3-乙基碳二亚胺盐酸盐（EDC）购置于Pierce公司；2-（N-吗啉）-乙磺酸（MES）、N-月桂酰基氨酸钠（Sarkosyl）、四甲基氯化铵（TMAC）均购置于Sigma公司。
缓冲液和杂交液的配制：
偶联缓冲液，pH4.5 250 ml
MES 4.88g ；
1.5 ×TMAC杂交溶液 250 ml
5M TMAC 225 ml
20% Sarkosyl 1.88 ml
1M Tris-HCl ，pH8.0 18.75 ml
0.5M EDTA ，pH8.0 3.0 ml
H2O 1.37 ml ；
1.5 ×TMAC杂交溶液 250 ml
5M TMAC 150 ml
20% Sarkosyl 1.25 ml
1M Tris-HCl ，pH8.0 12.5 ml
0.5M EDTA ，pH8.0 2.0 ml
H2O 84.25 ml ；
TE 缓冲液，pH8.0 500 ml
1M Tris-HCl ，pH8.0 5 ml
0.5M EDTA ，pH8.0 1 ml
H2O 444 ml
实施例1：2种淋巴瘤相关的融合基因的液相芯片联合检测方法
具体的检测方法包括如下步骤：
一．检测API2-MALT1（A1446-M1123）、 NPM-ALK 融合基因的微球混合液的制备
1. 按照以下序列合成寡核苷酸探针：
API2-MALT1 （A1446-M1123） ： 5'- AminolinkerC12 CCAAGATTATTTAATTCATTTG -3' ， 如 SEQ ID NO.2 所示；
NPM-ALK ： 5' - AminolinkerC12 CCTATAGTTGTTTTAAATGC -3' ， 如 SEQ ID NO.4 所示；
β-actin基因： 5' - AminolinkerC12 TCATTGTAGAAGGTGTGGTG -3' ， 如 SEQ ID NO.15 所示；
2 ．将含有氨基修饰的寡核苷酸探针分别与编号为25、50、64号的3种羧基微球偶联
2.1 取出一小份-20℃保存的新鲜干粉状EDC平衡到室温；
2.2 用d H2O 分别 溶解API2-MALT1（A1446-M1123） 、 NPM-ALK 、β-actin的寡核苷酸探针，浓度为1mM(1nmol/μl)；
2.3 分别全速涡旋编号为25、50、64号的3种羧基微球储存悬液至少3min，产生均一的微球悬液；
2.4 分别取2.5×106微球储存悬液到三个离心管中；
2.5 10,000g ，离心，1-2min；
2.6 移除上清液，用50μl 0.1M MES，pH4.5的偶联缓冲液，重悬微球，涡旋震荡20秒；
2.7 将三种浓度为1mM寡核苷酸探针分别用d H2O 以1:10的比例稀释，使其浓度为0.1nmol/μl；
2.8 每种探针各加入2μl（浓度为0.1nmol/μl）到混匀的相应的微球里，涡旋混合；
2.9 用d H2O 配制 10mg/ml 的新鲜EDC溶液（注意：保持EDC粉末干燥，便于下一步EDC的使用）；
2.10 加入2.5μl 10mg/ml EDC的的新鲜EDC溶液分别到三种微球中（25μg终浓度约为0.5μg/μl）涡旋混匀；
2.11 室温避光孵育30min；
2.12 用d H2O 配制第二份10mg/ml的EDC新鲜溶液（注意：EDC粉末如果潮解，则应丢弃，建议每一步偶联过程都使用新鲜的EDC粉末）；
2.13 三种微球中各加入2.5μl 10mg/ml的EDC新鲜溶液，涡旋混匀；
2.14 室温避光孵育30min；
2.15 三种偶联微球中各加入1 ml 0.02% Tween-20；
2.16 10,000g ，离心，1-2min；
2.17 移除上清，分别用1 ml 0.1%SDS重悬三种偶联微球，振荡混匀；
2.18 10,000g ，离心，1-2min；
2.19 移除上清，分别加入100μl TE，pH8.0，涡旋混合20s，重悬微球；
2.20 用细胞计数器计数三种偶联了寡核苷酸探针的微球；
a. 用d H2O 将 偶联微球以1：100稀释；
b. 涡旋震荡充分混匀；
c. 取10μl到细胞计数器上；
d. 数细胞计数器上4个角大格的微球总量；
e. 微球/μl=（4大格微球总量）×2.5×100（稀释倍数）。
3. 微球混合液的配制
将上述偶联了寡核苷酸探针的微球，如下列： 分别为API2-MALT1（A1446-M1123） 探针微球25、 NPM-ALK 探针微球50、 β-actin探针微球64， 等比例混合，各种微球的终浓度为1500 个/μl，2-8℃避光保存。
二．样本的制备
1-5 号患者的临床样本为非霍奇金淋巴瘤（NHL）的冰冻组织块，其中包括黏膜相关淋巴组织（MALT）淋巴瘤或间变性大细胞淋巴瘤（ALCL）患者的临床样本。1-5号淋巴瘤患者的临床样本分别按照下面的步骤提取RNA:
1. 将冷冻的组织在液氮中磨成粉末后，再以50-100mg组织加入1ml Trizol液研磨，注意样品总体积不能超过所用Trizol体积的10%。
2. 研磨液室温放置5分钟，然后以每1ml Trizol液加入0.2ml的比例加入氯仿，盖紧离心管，用手剧烈摇荡离心管15秒。
3. 取上层水相于一新的离心管，按每ml Trizol液加0.5ml异丙醇的比例加入异丙醇，室温放置10分钟，12000g离心10分钟。
4.弃去上清液，按每mlTrizol液加入至少1ml的比例加入75%乙醇，涡旋混匀，4℃下8,000g离心5分钟。
5. 小心弃去上清液，然后室温晾干或真空干燥5-10min。
6. 用50ul RNase-free dH2O溶解RNA样品，55-60℃，5-10min；
7. 测OD值定量RNA浓度。
三．多重RT-PCR
按照如下方法对上述的1-5号样本的mRNA进行多重逆转录PCR扩增：
1.cDNA 第一链的合成
① 取一经DEPC处理过的微量离心管，置于冰上，建立下列反应体系；
Total RNA 5 ～10µg/3µl
Oligo(dT)18 Primer(0.5µg/µl) 1µl
RNase-free water forward to 12µl
轻轻混匀反应液，用冷冻离心机稍微离心收集管壁上的反应液到管底；
② 离心管于70℃温育5分钟，之后迅速取出置于冰中冷却，用冷冻离心机稍微离心收集管壁上的反应液到管底；
③将离心管放置于冰上，按顺序加入以下反应液；
5×reaction buffer 4µl
RNase Inhibitor(20U/µl) 1µl
10mM dNTPs Mix 2µl
轻轻混匀反应液，用冷冻离心机稍微离心收集管壁上的反应液到管底；
④ 离心管于37℃温育5分钟；
⑤ 加入1µl RevertAidTM Reverse Transcriptase(200U/µl)，终体积为20µl；
⑥ 离心管于42℃反应60分钟；
⑦ 离心管于70℃加热10分钟终止反应，之后迅速取出置于冰中冷却；
2. 多重PCR
2.1 按照如下序列合成引物：
AAPI2-MALT1 （A1446-M1123） ：上游引物 5'- biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG 3'，如 SEQ ID NO.7 所示； 下游引物 5' -CGCCAAAGGCTGGTCAGTT-3' ， 如 SEQ ID NO.8 所示；
NPM-ALK ：上游引物 5' -biotin TGTTGCCCAGATTGGACTCTT-3' ， 如 SEQ ID NO.11 所示； 下游引物 5' - GCAGCTTCAGTGCAATCACAG-3' ， 如 SEQ ID NO.12 所示；
β-actin基因 ： 上游引物 5' -biotin TGGGTCAGAAGGATTCCTATGTG -3' ， 如 SEQ ID NO.13 所示；下游引物 5'-GCTGGGGTGTTGAAGGTCTC -3'， 如 SEQ ID NO.14 所示；
2.2 多重PCR反应：
采用的是QIAGEN公司的Multiplex PCR试剂盒，体系如下
Template cDNA 10µl
2 ×QIAGEN Multiplex PCR Master Mix 25µl
10 ×Primer mix 5µl
RNase-free water 10µl
终体积为50 µl
（2×QIAGEN Multiplex PCR Master Mix中含热启动TaqDNA酶、MgCl2和 dNTP Mix。）
PCR 扩增程序：95℃ 15min；94℃ 30 s，55℃ 90s，72℃ 90s，35个循环； 72℃10 min；4℃保温。
四．寡核苷酸探针和PCR产物的杂交
1 ．选取步骤一中配制的寡核苷酸探针微球混合物；
2 ．涡旋震荡20s，混匀微球；
3 ．制备微球工作液，用1.5×TMAC杂交溶液稀释偶联微球至浓度为150个微球/μl。（注：每个反应需要33μl的微球工作液）；
4 ．涡旋震荡20s，混匀微球工作液；
5 ．向样本孔、阳性对照孔、阴性对照孔内分别加入33μl微球工作液；
6. 向每个样品孔内分别加入1-5号患者样本的PCR扩增产物和TE溶液（pH为8.0），总体积为17μl；
7. 用排枪上下吸打，温柔混匀反应液；
8. 盖上反应盖避免蒸发，在95-100℃下孵育1-3min，使样品中的寡核苷酸去掉二级结构；
9. 在杂交温度下孵育反应板15min；
10. 制备新鲜的检测混合液，用1×TMAC杂交溶液稀释链霉亲和素藻红蛋白溶液至10μg/ml（每个反应需要25μl的检测混合液）；
11. 向每孔加入25μl的检测混合液，用排枪上下吸打，温柔混匀；
12. 在杂交温度下孵育5min；
上述步骤可以通过PCR仪按以下方案编程将其合并:
95 ℃ ，1-3min；
杂交温度，forever；
13. 在液相芯片仪（ LiquiChip 200 或 Luminex 200 ）上，保持杂交温度，对各反应孔进行检测分析，测定荧光MFI值（ 平均荧光强度 ）。
五．检测结果及分析
检测结果（荧光MFI值）如表3所示：
表3
患 者 /基 因 API2-MALT (A1446-M1123) NPM-ALK β-actin 内参基因
1 2783 97 3248
2 115 3657 4291
3 3549 104 3735
4 4023 78 2876
5 73 3861 3502
阳性对照 3158 2917 3369
阴性对照 94 101 86
结果分析如表4所示：
表4
患 者 /基 因 API2-MALT (A1446-M1123) NPM-ALK
1 阳性 阴性
2 阴性 阳性
3 阳性 阴性
4 阳性 阴性
5 阴性 阳性
1 、3、4号患者 类型为融合基因API2-MALT1（A1446-M1123）阳性
2 、5 号患者类型为融合基因NPM-ALK阳性
同时，将 患者呈现 阳性的融合基因的荧光MFI值与内参β-actin基因的荧光MFI值相比，可得出融合基因的表达状况。
实施例2：3种淋巴瘤 相关的融合基因的液相芯片联合检测方法
具体的检测方法包括如下步骤：
一．检测API2-MALT1（A1446-M814） 、 API2-MALT1 （A1446-M1123）、 NPM-ALK 融合基因的微球混合液的制备
1. 按照以下序列合成寡核苷酸探针：
API2-MALT1 （A1446-M814） ： 5'- AminolinkerC12 GCTTTGATTCTTTTTCCTCAG -3'，如 SEQ ID NO.1 所示；
API2-MALT1 （A1446-M1123） ： 5'- AminolinkerC12 CCAAGATTATTTAATTCATTTG -3'，如 SEQ ID NO.2 所示；
NPM-ALK ： 5' - AminolinkerC12 CCTATAGTTGTTTTAAATGC -3' ， 如 SEQ ID NO.4 所示；
β-actin基因： 5' - AminolinkerC12 TCATTGTAGAAGGTGTGGTG -3' ， 如 SEQ ID NO.15 所示；
2 ．将含有氨基修饰的寡核苷酸探针分别与编号为11、25、50、64号的4种羧基微球偶联
2.1 取出一小份-20℃保存的新鲜干粉状EDC平衡到室温；
2.2 用d H2O 分别 溶解API2-MALT1（A1446-M814）、API2-MALT1（A1446-M1123）、NPM-ALK、β-actin的寡核苷酸探针，浓度为1mM(1nmol/μl)；
2.3 分别全速涡旋编号为11、25、50、64号的4种羧基微球储存悬液至少3min，产生均一的微球悬液；
2.4 分别取2.5×106微球储存悬液到四个离心管中；
2.5 10,000g ，离心，1-2min；
2.6 移除上清液，用50μl 0.1M MES，pH4.5的偶联缓冲液，重悬微球，涡旋震荡20秒；
2.7 将四种浓度为1mM寡核苷酸探针分别用d H2O 以1:10的比例稀释，使其浓度为0.1nmol/μl；
2.8 每种探针各加入2μl（浓度为0.1nmol/μl）到混匀的相应的微球里，涡旋混合；
2.9 用d H2O 配制 10mg/ml 的新鲜EDC溶液（注意：保持EDC粉末干燥，便于下一步EDC的使用）；
2.10 加入2.5μl 10mg/ml EDC的的新鲜EDC溶液分别到四种微球中（25μg终浓度约为0.5μg/μl）涡旋混匀；
2.11 室温避光孵育30min；
2.12 用d H2O 配制第二份10mg/ml的EDC新鲜溶液（注意：EDC粉末如果潮解，则应丢弃，建议每一步偶联过程都使用新鲜的EDC粉末）；
2.13 四种微球中各加入2.5μl 10mg/ml的EDC新鲜溶液，涡旋混匀；
2.14 室温避光孵育30min；
2.15 四种偶联微球中各加入1 ml 0.02% Tween-20；
2.16 10,000g ，离心，1-2min；
2.17 移除上清，分别用1 ml 0.1%SDS重悬四种偶联微球，振荡混匀；
2.18 10,000g ，离心，1-2min；
2.19 移除上清，分别加入100μl TE，pH8.0，涡旋混合20s，重悬微球；
2.20 用细胞计数器计数四种偶联了寡核苷酸探针的微球；
a. 用d H2O 将 偶联微球以1：100稀释；
b. 涡旋震荡充分混匀；
c. 取10μl到细胞计数器上；
d. 数细胞计数器上4个角大格的微球总量；
e. 微球/μl=（4大格微球总量）×2.5×100（稀释倍数）。
3. 微球混合液的配制
将上述偶联了寡核苷酸探针的微球，如下列： 分别为 API2-MALT1 （ A1446 - M814 ） 探针微球11、 API2-MALT1 （ A1446-M1123 ） 探针微球25、NPM-ALK 探针微球50、 β-actin探针微球64， 等比例混合，各种微球的终浓度为1500 个/μl，2-8℃避光保存。
二．样本的制备
1-6 号患者的临床样本为非霍奇金淋巴瘤（NHL）的冰冻组织块，其中包括黏膜相关淋巴组织（MALT）淋巴瘤或间变性大细胞淋巴瘤（ALCL）患者的临床样本。1-6号淋巴瘤患者的临床样本分别按照下面的步骤提取RNA:
1.将冷冻的组织在液氮中磨成粉末后，再以50-100mg组织加入1ml Trizol液研磨，注意样品总体积不能超过所用Trizol体积的10%。
2.研磨液室温放置5分钟，然后以每1ml Trizol液加入0.2ml的比例加入氯仿，盖紧离心管，用手剧烈摇荡离心管15秒。
3.取上层水相于一新的离心管，按每ml Trizol液加0.5ml异丙醇的比例加入异丙醇，室温放置10分钟，12000g离心10分钟。
4.弃去上清液，按每mlTrizol液加入至少1ml的比例加入75%乙醇，涡旋混匀，4℃下8,000g离心5分钟。
5.小心弃去上清液，然后室温晾干或真空干燥5-10min。
6. 用50ul RNase-free dH2O溶解RNA样品，55-60℃，5-10min；
7. 测OD值定量RNA浓度。
三．多重RT-PCR
按照如下方法对上述的1-6号样本的mRNA进行多重逆转录PCR扩增：
1.cDNA 第一链的合成
① 取一经DEPC处理过的微量离心管，置于冰上，建立下列反应体系；
Total RNA 5 ～10µg/3µl
Oligo(dT)18 Primer(0.5µg/µl) 1µl
RNase-free water forward to 12µl
轻轻混匀反应液，用冷冻离心机稍微离心收集管壁上的反应液到管底；
② 离心管于70℃温育5分钟，之后迅速取出置于冰中冷却，用冷冻离心机稍微离心收集管壁上的反应液到管底；
③将离心管放置于冰上，按顺序加入以下反应液；
5×reaction buffer 4µl
RNase Inhibitor(20U/µl) 1µl
10mM dNTPs Mix 2µl
轻轻混匀反应液，用冷冻离心机稍微离心收集管壁上的反应液到管底；
④ 离心管于37℃温育5分钟；
⑤ 加入1µl RevertAidTM Reverse Transcriptase(200U/µl)，终体积为20µl；
⑥ 离心管于42℃反应60分钟；
⑦ 离心管于70℃加热10分钟终止反应，之后迅速取出置于冰中冷却；
2. 多重PCR
2.1 按照如下序列合成引物：
API2-MALT1 （A1446-M814） ：上游引物 5'-biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG -3'，如 SEQ ID NO.5 所示； 下游引物 5' -TTGGGAAGTTGGTTCAACACAG-3' ， 如 SEQ ID NO.6 所示；
API2-MALT1 （A1446-M1123） ：上游引物 5'-biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG 3'，如 SEQ ID NO.7 所示； 下游引物 5' -CGCCAAAGGCTGGTCAGTT-3' ， 如 SEQ ID NO.8 所示；
NPM-ALK ：上游引物 5' -biotin TGTTGCCCAGATTGGACTCTT-3' ， 如 SEQ ID NO.11 所示； 下游引物 5' - GCAGCTTCAGTGCAATCACAG-3' ， 如 SEQ ID NO.12 所示；
β-actin基因 ： 上游引物 5' -biotin TGGGTCAGAAGGATTCCTATGTG -3' ， 如 SEQ ID NO.13 所示；下游引物 5'-GCTGGGGTGTTGAAGGTCTC -3'， 如 SEQ ID NO.14 所示；
2.2 多重PCR反应：
采用的是QIAGEN公司的Multiplex PCR试剂盒，体系如下
Template cDNA 10µl
2 ×QIAGEN Multiplex PCR Master Mix 25µl
10 ×Primer mix 5µl
RNase-free water 10µl
终体积为50 µl
（2×QIAGEN Multiplex PCR Master Mix中含热启动TaqDNA酶、MgCl2和 dNTP Mix。）
PCR 扩增程序：95℃ 15min；94℃ 30 s，55℃ 90s，72℃ 90s，35个循环； 72℃10 min；4℃保温。
四．寡核苷酸探针和PCR产物的杂交
1 ．选取步骤一中配制的寡核苷酸探针微球混合物；
2 ．涡旋震荡20s，混匀微球；
3 ．制备微球工作液，用1.5×TMAC杂交溶液稀释偶联微球至浓度为150个微球/μl。（注：每个反应需要33μl的微球工作液）；
4 ．涡旋震荡20s，混匀微球工作液；
5 ．向样本孔、阳性对照孔、阴性对照孔内分别加入33μl微球工作液；
6. 向每个样品孔内分别加入1-6号患者样本的PCR扩增产物和TE溶液（pH为8.0），总体积为17μl；
7. 用排枪上下吸打，温柔混匀反应液；
8. 盖上反应盖避免蒸发，在95-100℃下孵育1-3min，使样品中的寡核苷酸去掉二级结构；
9. 在杂交温度下孵育反应板15min；
10. 制备新鲜的检测混合液，用1×TMAC杂交溶液稀释链霉亲和素藻红蛋白溶液至10μg/ml（每个反应需要25μl的检测混合液）；
11. 向每孔加入25μl的检测混合液，用排枪上下吸打，温柔混匀；
12. 在杂交温度下孵育5min；
上述步骤可以通过PCR仪按以下方案编程将其合并:
95 ℃ ，1-3min；
杂交温度，forever；
13. 在液相芯片仪（ LiquiChip 200 或 Luminex 200 ）上，保持杂交温度，对各反应孔进行检测分析，测定荧光MFI值（ 平均荧光强度 ）。
五．检测结果及分析
Figure PCTCN2011075849-appb-I000001
检测结果（荧光MFI值）如表5所示：
表5
患 者/基 因 API2-MALT (A1446-M814) API2-MALT (A1446-M1123) NPM-ALK β-actin 内参基因
1 79 92 2751 3564
2 105 3493 98 4082
3 3826 84 102 3659
4 91 108 4327 3946
5 2905 76 85 2813
6 94 3618 110 3257
阳性对照 2974 3152 4460 3591
阴性对照 87 96 113 81
结果分析如表6所示：
表6
患 者/基 因 API2-MALT (A1446-M814) API2-MALT (A1446-M1123) NPM-ALK
1 阴性 阴性 阳性
2 阴性 阳性 阴性
3 阳性 阴性 阴性
4 阴性 阴性 阳性
5 阳性 阴性 阴性
6 阴性 阳性 阴性
3 、5号患者类型为融合基因API2-MALT1（A1446-M814）阳性
2 、6号患者 类型 为 融合基因API2-MALT1（A1446-M1123）阳性
1 、4 号患者 类型 为 融合基因NPM-ALK阳性
同时，将 患者呈现 阳性的融合基因的荧光MFI值与内参β-actin基因的荧光MFI值相比，可得出融合基因的表达状况。
实施例3：4种淋巴瘤相关的融合基因的液相芯片联合检测方法
具体的检测方法包括如下步骤：
一．检测API2-MALT1（A1446-M814）、API2-MALT1（A1446-M1123）、API2-MALT1（A1446-M1150）、 NPM-ALK 融合基因的微球混合液的制备
1. 按照以下序列合成寡核苷酸探针：
API2-MALT1 （A1446-M814） ： 5' - AminolinkerC12 GCTTTGATTCTTTTTCCTCAG -3' ， 如 SEQ ID NO.1 所示；
API2-MALT1 （A1446-M1123） ： 5' - AminolinkerC12 CCAAGATTATTTAATTCATTTG -3' ， 如 SEQ ID NO.2 所示；
API2-MALT1 （A1446-M1150） ： 5' - AminolinkerC12 TGCTCTTTATTATTTGATTCTT -3' ， 如 SEQ ID NO.3 所示；
NPM-ALK ： 5' - AminolinkerC12 CCTATAGTTGTTTTAAATGC -3' ， 如 SEQ ID NO.4 所示；
β-actin基因： 5' - AminolinkerC12 TCATTGTAGAAGGTGTGGTG -3' ， 如 SEQ ID NO.15 所示；
2 ．将含有氨基修饰的寡核苷酸探针分别与编号为11、25、37、50、64号的5种羧基微球偶联
2.1 取出一小份-20℃保存的新鲜干粉状EDC平衡到室温；
2.2 用d H2O 分别溶解API2-MALT1（A1446-M814）、API2-MALT1（A1446-M1123）、 API2-MALT1（A1446-M1150）、NPM-ALK、β-actin的寡核苷酸探针，浓度为1mM(1nmol/μl)；
2.3分别全速涡旋编号为11、25、37、50、64号的5种羧基微球储存悬液至少3min，产生均一的微球悬液；
2.4 分别取2.5×106微球储存悬液到五个离心管中；
2.5 10,000g ，离心，1-2min；
2.6 移除上清液，用50μl 0.1M MES，pH4.5的偶联缓冲液，重悬微球，涡旋震荡20秒；
2.7 将五种浓度为1mM寡核苷酸探针分别用d H2O 以1:10的比例稀释，使其浓度为0.1nmol/μl；
2.8 每种探针各加入2μl（浓度为0.1nmol/μl）到混匀的相应的微球里，涡旋混合；
2.9 用d H2O 配制 10mg/ml 的新鲜EDC溶液（注意：保持EDC粉末干燥，便于下一步EDC的使用）；
2.10 加入2.5μl 10mg/ml EDC的的新鲜EDC溶液分别到五种微球中（25μg终浓度约为0.5μg/μl）涡旋混匀；
2.11 室温避光孵育30min；
2.12 用d H2O 配制第二份10mg/ml的EDC新鲜溶液（注意：EDC粉末如果潮解，则应丢弃，建议每一步偶联过程都使用新鲜的EDC粉末）；
2.13 五种微球中各加入2.5μl 10mg/ml的EDC新鲜溶液，涡旋混匀；
2.14 室温避光孵育30min；
2.15 五种偶联微球中各加入1 ml 0.02% Tween-20；
2.16 10,000g ，离心，1-2min；
2.17 移除上清，分别用1 ml 0.1%SDS重悬五种偶联微球，振荡混匀；
2.18 10,000g ，离心，1-2min；
2.19 移除上清，分别加入100μl TE，pH8.0，涡旋混合20s，重悬微球；
2.20 用细胞计数器计数五种偶联了寡核苷酸探针的微球；
a. 用d H2O 将 偶联微球以1：100稀释；
b. 涡旋震荡充分混匀；
c. 取10μl到细胞计数器上；
d. 数细胞计数器上4个角大格的微球总量；
e. 微球/μl=（4大格微球总量）×2.5×100（稀释倍数）。
3. 微球混合液的配制
将上述偶联了寡核苷酸探针的微球，如下列： 分别为 API2-MALT1（A1446 - M814 ）探针微球11、 API2-MALT1（A1446-M1123）探针微球25、API2-MALT1 （ A1446-M1150 ） 探针微球37、 NPM-ALK 探针微球50、 β-actin探针微球64， 等比例混合，各种微球的终浓度为1500个/μl，2-8℃避光保存。
二．样本的制备
1-20 号患者的临床样本为非霍奇金淋巴瘤（NHL）的冰冻组织块，其中包括黏膜相关淋巴组织（MALT）淋巴瘤或间变性大细胞淋巴瘤（ALCL）患者的临床样本。 1-20 号淋巴瘤患者的临床样本分别按照下面的步骤提取RNA:
1.将冷冻的组织在液氮中磨成粉末后，再以50-100mg组织加入1ml Trizol液研磨，注意样品总体积不能超过所用Trizol体积的10%。
2.研磨液室温放置5分钟，然后以每1ml Trizol液加入0.2ml的比例加入氯仿，盖紧离心管，用手剧烈摇荡离心管15秒。
3.取上层水相于一新的离心管，按每ml Trizol液加0.5ml异丙醇的比例加入异丙醇，室温放置10分钟，12000g离心10分钟。
4.弃去上清液，按每mlTrizol液加入至少1ml的比例加入75%乙醇，涡旋混匀，4℃下8,000g离心5分钟。
5.小心弃去上清液，然后室温晾干或真空干燥5-10min。
6. 用50ul RNase-free dH2O溶解RNA样品，55-60℃，5-10min；
7. 测OD值定量RNA浓度。
三．多重RT-PCR
按照如下方法对上述的1-20号样本的mRNA进行多重逆转录PCR扩增：
1.cDNA 第一链的合成
① 取一经DEPC处理过的微量离心管，置于冰上，建立下列反应体系；
Total RNA 5 ～10µg/3µl
Oligo(dT)18 Primer(0.5µg/µl) 1µl
RNase-free water forward to 12µl
轻轻混匀反应液，用冷冻离心机稍微离心收集管壁上的反应液到管底；
② 离心管于70℃温育5分钟，之后迅速取出置于冰中冷却，用冷冻离心机稍微离心收集管壁上的反应液到管底；
③将离心管放置于冰上，按顺序加入以下反应液；
5×reaction buffer 4µl
RNase Inhibitor(20U/µl) 1µl
10mM dNTPs Mix 2µl
轻轻混匀反应液，用冷冻离心机稍微离心收集管壁上的反应液到管底；
④ 离心管于37℃温育5分钟；
⑤ 加入1µl RevertAidTM Reverse Transcriptase(200U/µl)，终体积为20µl；
⑥ 离心管于42℃反应60分钟；
⑦ 离心管于70℃加热10分钟终止反应，之后迅速取出置于冰中冷却；
2. 多重PCR
2.1 按照如下序列合成引物：
API2-MALT1 （A1446-M814） ：上游引物 5'-biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG -3'，如 SEQ ID NO.5 所示； 下游引物 5' -TTGGGAAGTTGGTTCAACACAG-3' ， 如 SEQ ID NO.6 所示；
API2-MALT1 （A1446-M1123） ：上游引物 5'- biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG 3'，如 SEQ ID NO.7 所示； 下游引物 5' -CGCCAAAGGCTGGTCAGTT-3' ， 如 SEQ ID NO.8 所示；
API2-MALT1 （A1446-M1150） ：上游引物 5'-biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG -3'，如 SEQ ID NO.9 所示； 下游引物 5'-CGCCAAAGGCTGGTCAGTT-3' ， 如 SEQ ID NO.10 所示；
NPM-ALK ：上游引物 5' -biotin TGTTGCCCAGATTGGACTCTT-3' ， 如 SEQ ID NO.11 所示； 下游引物 5' - GCAGCTTCAGTGCAATCACAG-3' ， 如 SEQ ID NO.12 所示；
β-actin基因 ： 上游引物 5' -biotin TGGGTCAGAAGGATTCCTATGTG -3' ， 如 SEQ ID NO.13 所示；下游引物 5'-GCTGGGGTGTTGAAGGTCTC -3'， 如 SEQ ID NO.14 所示；
2.2 多重PCR反应：
采用的是QIAGEN公司的Multiplex PCR试剂盒，体系如下
Template cDNA 10µl
2 ×QIAGEN Multiplex PCR Master Mix 25µl
10 ×Primer mix 5µl
RNase-free water 10µl
终体积为50 µl
（2×QIAGEN Multiplex PCR Master Mix中含热启动TaqDNA酶、MgCl2和 dNTP Mix。）
PCR 扩增程序：95℃ 15min；94℃ 30 s，55℃ 90s，72℃ 90s，35个循环； 72℃10 min；4℃保温。
四．寡核苷酸探针和PCR产物的杂交
1 ．选取步骤一中配制的寡核苷酸探针微球混合物；
2 ．涡旋震荡20s，混匀微球；
3 ．制备微球工作液，用1.5×TMAC杂交溶液稀释偶联微球至浓度为150个微球/μl。（注：每个反应需要33μl的微球工作液）；
4 ．涡旋震荡20s，混匀微球工作液；
5 ．向样本孔、阳性对照孔、阴性对照孔内分别加入33μl微球工作液；
6.向每个样品孔内分别加入1-20号患者样本的PCR扩增产物和TE溶液（pH为8.0），总体积为17μl；
7. 用排枪上下吸打，温柔混匀反应液；
8. 盖上反应盖避免蒸发，在95-100℃下孵育1-3min，使样品中的寡核苷酸去掉二级结构；
9. 在杂交温度下孵育反应板15min；
10. 制备新鲜的检测混合液，用1×TMAC杂交溶液稀释链霉亲和素藻红蛋白溶液至10μg/ml（每个反应需要25μl的检测混合液）；
11. 向每孔加入25μl的检测混合液，用排枪上下吸打，温柔混匀；
12. 在杂交温度下孵育5min；
上述步骤可以通过PCR仪按以下方案编程将其合并:
95 ℃ ，1-3min；
杂交温度，forever；
13. 在液相芯片仪（ LiquiChip 200 或 Luminex 200 ）上，保持杂交温度，对各反应孔进行检测分析，测定荧光MFI值（ 平均荧光强度 ）。
五．检测结果及分析
Figure PCTCN2011075849-appb-I000002
检测结果（荧光MFI值）如表7所示：
表7
患 者/基 因 API2-MALT (A1446-M814) API2-MALT (A1446-M1123) API2-MALT (A1446-M1150) NPM-ALK β-actin 内参基因
1 85 3297 107 98 3624
2 4068 112 90 103 3157
3 77 69 86 2674 2805
4 84 3512 101 97 3931
5 3196 79 92 105 3480
6 93 2941 81 67 2793
7 118 102 3825 89 4562
8 87 111 104 3603 3347
9 75 3376 96 88 2859
10 109 97 115 4318 3526
11 3450 84 99 113 3078
12 116 4289 123 94 4295
13 82 108 91 3940 3716
14 95 114 100 3157 3481
15 2724 80 73 89 2932
16 102 98 3291 107 3654
17 79 72 90 2869 3278
18 3956 103 117 109 4169
19 105 78 85 3542 3013
20 88 3605 81 76 3982
阳性对照 3713 2849 4152 3276 3547
阴性对照 95 83 106 91 78
结果分析如表8所示：
表8
患 者/基 因 API2-MALT (A1446-M814 API2-MALT (A1446-M1123) API2-MALT (A1446-M1150) NPM-ALK
1 阴性 阳性 阴性 阴性
2 阳性 阴性 阴性 阴性
3 阴性 阴性 阴性 阳性
4 阴性 阳性 阴性 阴性
5 阳性 阴性 阴性 阴性
6 阴性 阳性 阴性 阴性
7 阴性 阴性 阳性 阴性
8 阴性 阴性 阴性 阳性
9 阴性 阳性 阴性 阴性
10 阴性 阴性 阴性 阳性
11 阳性 阴性 阴性 阴性
12 阴性 阳性 阴性 阴性
13 阴性 阴性 阴性 阳性
14 阴性 阴性 阴性 阳性
15 阳性 阴性 阴性 阴性
16 阴性 阴性 阳性 阴性
17 阴性 阴性 阴性 阳性
18 阳性 阴性 阴性 阴性
19 阴性 阴性 阴性 阳性
20 阴性 阳性 阴性 阴性
2 、5、11、15、18号患者类型为融合基因API2-MALT1（A1446-M814）阳性
1 、4、6、9、12、20号患者 类型 为 融合基因API2-MALT1（A1446-M1123）阳性
7 、16号患者 类型 为 融合基因API2-MALT1（A1446-M1150）阳性
3 、8、10、13、14、17、19 号患者 类型 为 融合基因NPM-ALK阳性
同时，将 患者呈现 阳性的融合基因的荧光MFI值与内参β-actin基因的荧光MFI值相比，可得出融合基因的表达状况。
在阅读了以上关于本发明的陈述内容之后，本领域的技术人员可以对本发明作各种修改或变化，其中包括引物或探针的各种变化以及引物或探针标记的各种变化，这些等价形式同样归属于本申请所附权利要求书中所限定的范围。
 Industrial Applicability
由于本发明利用了 液相芯片技术，使检测 方法及试剂盒具有 高灵敏度、 高特异性、 高通量、 稳定性好、 检测迅速、 准确 等突出优点， 能够对淋巴瘤相关的融合基因进行定性和定量检测，能 在临床检测上得到更好的应用。
Sequence List Text
序列表
<110> 江苏迈迪基因生物科技有限公司
<120> 淋巴瘤相关的融合基因的联合检测方法及诊断试剂盒
<130> DAPCT-1612
<160> 15
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> misc_feature
<223> （1）...（21）
<400> 1
gctttgattc tttttcctca g 21
<210> 2
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> misc_feature
<223> （1）...（22）
<400> 2
ccaagattat ttaattcatt tg 22
<210> 3
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> misc_feature
<223> （1）...（22）
<400> 3
tgctctttat tatttgattc tt 22
<210> 4
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> misc_feature
<223> （1）...（20）
<400> 4
cctatagttg ttttaaatgc 20
<210> 5
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> misc_feature
<223> 引物
<400> 5
cgtggaaatg ggctttagta gaag 24
<210> 6
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> misc_feature
<223> 引物
<400> 6
ttgggaagtt ggttcaacac ag 22
<210> 7
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> misc_feature
<223> 引物
<400> 7
cgtggaaatg ggctttagta gaag 24
<210> 8
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> misc_feature
<223> 引物
<400> 8
cgccaaaggc tggtcagtt 19
<210> 9
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> misc_feature
<223> 引物
<400> 9
cgtggaaatg ggctttagta gaag 24
<210> 10
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> misc_feature
<223> 引物
<400> 10
cgccaaaggc tggtcagtt 19
<210> 11
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> misc_feature
<223> 引物
<400> 11
tgttgcccag attggactct t 21
<210> 12
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> misc_feature
<223> 引物
<400> 12
gcagcttcag tgcaatcaca g 21
<210> 13
<211> 23
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> misc_feature
<223> 引物
<400> 13
tgggtcagaa ggattcctat gtg 23
<210> 14
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> misc_feature
<223> 引物
<400> 14
gctggggtgt tgaaggtctc 20
<210> 15
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> misc_feature
<223> （1）...（20）
<400> 15
tcattgtaga aggtgtggtg 20

Claims (1)

1. 一种淋巴瘤相关的融合基因的联合检测方法，其特征在于，包括以下步骤：
(1) 包含多种不同荧光编码的微球Beads，每种微球上分别共价结合针对淋巴瘤中染色体易位形成的多种融合基因的mRNA所设计的特异性核酸探针；所述的淋巴瘤中染色体易位形成的多种融合基因包含以下基因的任意一种或任意多种或加上其它基因的组合：API2-MALT1（A1446-M814） 、 API2-MALT1 （A1446-M1123）、API2-MALT1（A1446-M1150） 、 NPM-ALK ；
(2)针对不同淋巴瘤类型中染色体易位所形成的多种融合基因的mRNA，分别设计上下游引物，其中一条引物含有生物素Biotin标记；对不同的融合基因mRNA，通过逆转录PCR扩增出相应的产物；
（3）含有特异性核酸探针的微球与融合基因mRNA的逆转录扩增产物混合杂交，加入链霉亲和素-藻红蛋白Streptavidin-PE后，通过液相芯片xMAP方法检测荧光信号；
（4）将检测到的荧光信号与内参基因的荧光信号进行比较，从而确定检测样品中是否存在淋巴瘤相关的融合基因，和/或样品中融合基因的表达状况。
2. 如权利要求1所述的淋巴瘤相关的融合基因的联合检测方法，其特征在于，步骤（1）中，所述的微球是一种颜色编码微球Color-coded Beads，且结合了不同荧光染料的聚苯烯微球。
3. 如权利要求1所述的淋巴瘤相关的融合基因的联合检测方法，其特征在于，步骤（1）中，所述的共价结合于微球上的针对淋巴瘤中染色体易位形成的多种融合基因的mRNA所设计的特异性核酸探针，包括如下序列，其中5'端含氨基修饰：
API2-MALT1 （A1446-M814） ： 5' - AminolinkerC12 GCTTTGATTCTTTTTCCTCAG -3' ， 如 SEQ ID NO.1 所示；
API2-MALT1 （A1446-M1123） ： 5' - AminolinkerC12 CCAAGATTATTTAATTCATTTG -3' ，如 SEQ ID NO.2 所示；
API2-MALT1 （A1446-M1150） ： 5' - AminolinkerC12 TGCTCTTTATTATTTGATTCTT -3' ，如 SEQ ID NO.3 所示；
NPM-ALK ： 5' - AminolinkerC12 CCTATAGTTGTTTTAAATGC -3' ，如 SEQ ID NO.4 所示；
或者包含有上述序列或其互补序列的向5'端或/和3'端延长的序列；
或者与上述序列或其互补序列的同源性大于85%的序列；
或者与上述序列的碱基互补序列；
或者使用上述所有序列中的任意一种或一种以上的组合。
4. 如权利要求1所述的 淋巴瘤相关的融合基因的联合检测 方法，其特征在于， 步骤（2）中，所述的针对不同融合基因的mRNA所设计的上下游引物，包括如下序列，其中上游引物5'端含生物素Biotin标记：
API2-MALT1 （A1446-M814） ：上游引物 5'-biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG -3'，如 SEQ ID NO.5 所示； 下游引物 5' -TTGGGAAGTTGGTTCAACACAG-3' ，如 SEQ ID NO.6 所示；
API2-MALT1 （A1446-M1123）： 上游引物 5'-biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG 3'，如 SEQ ID NO.7 所示； 下游引物 5' -CGCCAAAGGCTGGTCAGTT-3' ，如 SEQ ID NO.8 所示；
API2-MALT1 （A1446-M1150）： 上 游引物 5'-biotin CGTGGAAATGGGCTTTAGTAGAAG -3'，如 SEQ ID NO.9 所示； 下游引物 5'-CGCCAAAGGCTGGTCAGTT-3' ，如 SEQ ID NO.10 所示；
NPM-ALK ：上游引物 5' -biotinTGTTGCCCAGATTGGACTCTT-3'，如 SEQ ID NO.11 所示； 下游引物 5'-GCAGCTTCAGTGCAATCACAG-3' ，如 SEQ ID NO.12 所示；
或者包含有上述序列或其互补序列的向5'端或/和3'端延长的序列；
或者与上述序列或其互补序列的同源性大于85%的序列；
或者与上述序列的碱基互补序列；
或者使用上述所有序列中的任意一种或一种以上的组合。
5. 如权利要求1所述的淋巴瘤相关的融合基因的联合检测方法，其特征在于，步骤（4）中，所述的内参基因为β-actin基因，其引物和探针序列如下：
上游引物 5' -biotin TGGGTCAGAAGGATTCCTATGTG -3' ，如 SEQ ID NO.13 所示；
下游引物 5'-GCTGGGGTGTTGAAGGTCTC -3' ，如 SEQ ID NO.14 所示；
探针 5' - AminolinkerC12 TCATTGTAGAAGGTGTGGTG -3' ，如 SEQ ID NO.15 所示；
或者包含有上述序列或其互补序列的向5'端或/和3'端延长的序列；
或者与上述序列或其互补序列的同源性大于85%的序列；
或者与上述序列的碱基互补序列；
或者使用上述所有序列中的任意一种或一种以上的组合。
6. 一种检测淋巴瘤相关的融合基因的诊断试剂盒，其特征在于，包含了权利要求1中所述的共价结合了淋巴瘤融合基因特异性探针的微球混合物及结合了β-actin基因探针的微球、权利要求1中所述的淋巴瘤融合基因mRNA的上下游引物及β-actin基因的上下游引物、链霉亲和素-藻红蛋白Streptavidin-PE和质控品。
7. 如权利要求6所述的检测淋巴瘤相关的融合基因的诊断试剂盒，其特征在于，所述的微球混合物，根据不同检测样品的需要自由组合。
8. 如权利要求6所述的检测淋巴瘤相关的融合基因的诊断试剂盒，其特征在于，所述的质控品包含阳性对照和阴性对照，其中阳性对照为含有各种淋巴瘤相关的融合基因质粒的混合液，包括含β-actin基因的质粒；阴性对照品为不含有淋巴瘤相关的融合基因及β-actin基因的质粒溶液。
9. 一种如权利要求6所述的检测淋巴瘤相关的融合基因的诊断试剂盒在检测体外样品，对淋巴瘤进行分型、早期诊断、疗效观察、预后与微小残留疾病的动态监测中的应用。
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2015110406A1 (en) * 2014-01-21 2015-07-30 Helmholtz Zentrum München Means and methods for detecting activated malt1

Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101955995B (zh) * 2010-06-17 2013-06-26 江苏迈迪基因生物科技有限公司 淋巴瘤相关的融合基因的诊断试剂盒
CN102888452B (zh) * 2012-05-18 2014-08-27 复旦大学附属肿瘤医院 一种筛查alk融合基因的方法
CN103805686B (zh) * 2012-11-09 2016-05-18 益善生物技术股份有限公司 Ros1融合基因检测的pcr引物、试剂盒和液相芯片
CN103805688B (zh) * 2012-11-09 2016-04-27 益善生物技术股份有限公司 Ret融合基因检测的pcr引物、试剂盒和液相芯片
CN103805684B (zh) * 2012-11-09 2016-04-27 益善生物技术股份有限公司 Eml4-alk融合基因检测的pcr引物、试剂盒和液相芯片
CN104357558B (zh) * 2014-10-24 2016-08-03 邵棠 焦磷酸测序法同时检测api2-malt1和npm-alk融合基因的引物对及试剂盒
CN111235148A (zh) * 2020-03-26 2020-06-05 迈杰转化医学研究(苏州)有限公司 一种dna探针池、包含其的淋巴瘤检测试剂盒及其制备方法和应用

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB2463401A (en) * 2008-11-12 2010-03-17 Caris Mpi Inc Diagnostic methods using exosomes
CN101955995A (zh) * 2010-06-17 2011-01-26 江苏迈迪基因生物科技有限公司 淋巴瘤相关的融合基因的联合检测方法及诊断试剂盒

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DK1454992T3 (da) * 2003-03-07 2006-10-02 Ist Naz Stud Cura Dei Tumori Anaplastisk lymfomakinaseassay, reagenser og sammensætninger deraf
ES2458497T3 (es) * 2006-04-14 2014-05-05 Cell Signaling Technology, Inc. Defectos de genes y quinasa ALK mutante en tumores sólidos humanos
CN1995386A (zh) * 2006-08-22 2007-07-11 上海复星医药（集团）股份有限公司 Bcr－abl基因荧光定量rt－pcr引物和探针及试剂盒

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB2463401A (en) * 2008-11-12 2010-03-17 Caris Mpi Inc Diagnostic methods using exosomes
CN101955995A (zh) * 2010-06-17 2011-01-26 江苏迈迪基因生物科技有限公司 淋巴瘤相关的融合基因的联合检测方法及诊断试剂盒

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
YANG WEN-XIU: "Expression of the Variants of API2-MALT 1 Fusion Gene and Its Significance in Primary MALT Lymphoma.", CHINESE JOURNAL OF CLINICAL ONCOLOGY., vol. 31, no. 10, 2004, pages 550 - 553 *
ZHAO YAN-XIA, EFFECTS OF RNA INTERFERENCE ON NPM-ALK FUSION GENE EXPRESSION IN ANAPLASTIC LARGE-CELL LYMPHOMA CELLS., vol. 7, no. 3, June 2005 (2005-06-01), pages 202 - 206 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2015110406A1 (en) * 2014-01-21 2015-07-30 Helmholtz Zentrum München Means and methods for detecting activated malt1
US10502741B2 (en) 2014-01-21 2019-12-10 Helmholtz Zentrum München Deutsches Forschungszentrum für Gesundheit und Umweld (GmbH) Means and methods for detecting activated MALT1

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