WO2011151494A1 - Uso de bacterias lácticas para conservar los flavanoles de un producto alimenticio y prevenir el pardeamiento del vino - Google Patents

Uso de bacterias lácticas para conservar los flavanoles de un producto alimenticio y prevenir el pardeamiento del vino Download PDF

Info

Publication number
WO2011151494A1
WO2011151494A1 PCT/ES2011/070357 ES2011070357W WO2011151494A1 WO 2011151494 A1 WO2011151494 A1 WO 2011151494A1 ES 2011070357 W ES2011070357 W ES 2011070357W WO 2011151494 A1 WO2011151494 A1 WO 2011151494A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
wine
wines
catechin
flavanols
model
Prior art date
Application number
PCT/ES2011/070357
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Félix LÓPEZ DE FELIPE TOLEDANO
M. Rosario MUÑOZ MORENO
J. Antonio Curiel Gamiz
Original Assignee
Consejo Superior De Investigaciones Científicas (Csic)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Consejo Superior De Investigaciones Científicas (Csic) filed Critical Consejo Superior De Investigaciones Científicas (Csic)
Publication of WO2011151494A1 publication Critical patent/WO2011151494A1/es

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12G—WINE; PREPARATION THEREOF; ALCOHOLIC BEVERAGES; PREPARATION OF ALCOHOLIC BEVERAGES NOT PROVIDED FOR IN SUBCLASSES C12C OR C12H
    • C12G1/00—Preparation of wine or sparkling wine
    • C12G1/02—Preparation of must from grapes; Must treatment and fermentation
    • C12G1/0203—Preparation of must from grapes; Must treatment and fermentation by microbiological or enzymatic treatment
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23B—PRESERVING, e.g. BY CANNING, MEAT, FISH, EGGS, FRUIT, VEGETABLES, EDIBLE SEEDS; CHEMICAL RIPENING OF FRUIT OR VEGETABLES; THE PRESERVED, RIPENED, OR CANNED PRODUCTS
    • A23B7/00—Preservation or chemical ripening of fruit or vegetables
    • A23B7/14—Preserving or ripening with chemicals not covered by groups A23B7/08 or A23B7/10
    • A23B7/153—Preserving or ripening with chemicals not covered by groups A23B7/08 or A23B7/10 in the form of liquids or solids
    • A23B7/154—Organic compounds; Microorganisms; Enzymes
    • A23B7/155—Microorganisms; Enzymes; Antibiotics
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12G—WINE; PREPARATION THEREOF; ALCOHOLIC BEVERAGES; PREPARATION OF ALCOHOLIC BEVERAGES NOT PROVIDED FOR IN SUBCLASSES C12C OR C12H
    • C12G1/00—Preparation of wine or sparkling wine
    • C12G1/02—Preparation of must from grapes; Must treatment and fermentation
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12H—PASTEURISATION, STERILISATION, PRESERVATION, PURIFICATION, CLARIFICATION OR AGEING OF ALCOHOLIC BEVERAGES; METHODS FOR ALTERING THE ALCOHOL CONTENT OF FERMENTED SOLUTIONS OR ALCOHOLIC BEVERAGES
    • C12H1/00—Pasteurisation, sterilisation, preservation, purification, clarification, or ageing of alcoholic beverages
    • C12H1/003—Pasteurisation, sterilisation, preservation, purification, clarification, or ageing of alcoholic beverages by a biochemical process
    • C12H1/006—Pasteurisation, sterilisation, preservation, purification, clarification, or ageing of alcoholic beverages by a biochemical process using bacterial cultures

Definitions

  • the present invention falls within the field of the food sector, specifically, the present invention relates to the use of at least one GRAS (Generally Regarded As Safe) grade lactic bacterium to conserve a greater amount of flavanols in at least one such food product. as well as to reduce browning of at least one wine, with respect to a control.
  • GRAS Generally Regarded As Safe
  • Flavanols are a class of flavonoids that have the structure 2-phenyl-3,4-dihydro-2H-chromen-3-ol. These compounds include catechin and epicatechin. In nature, the (+) catechin and (-) epicatechin forms are mostly found. Flavanols, unlike flavonols, do not contain the ketone group. Flavonoids that do not contain the polyphenol polyhydroxy ketone group are more specifically known by the term flavanoid or flavan-3-ol. Flavanols are precursors of proanthocyanidins. They have two chiral carbons, that is, there are 4 diastereoisomers for each of them.
  • Flavonoids both flavonols and flavanols are known for their antioxidant activity. Catechins have been linked to cancer prevention and these compounds have been found in strawberries, green tea and black tea. Epicatechin has been linked to the inhibition of diarrhea (Schuier et al., 2005. J. Nutr., 135 (10): 2320-5). In addition, epicatechin improves blood flow and therefore may involve the improvement of patients with heart disease. Epicatechin has been found in cocoa, reaching almost twice the concentration in wine and more than three times as in green tea (Lee et al., 2003. J. Agrie. Food Chem., 51 (25): 7292-5). Therefore, in the state of the art there is a clear interest in the generation of food products with 9 beneficial properties for health, especially for the prevention of cancer and cardiovascular diseases.
  • Ascorbic acid has been widely used as a substitute for sulphites to prevent wine browning.
  • ascorbic acid is oxidized to dehydroascorbic acid, quinones can accumulate and undergo browning.
  • recent studies are providing evidence that ascorbic acid has pro-oxidant activity and may cause acceleration of browning in combination with sulphites.
  • other less frequent or expensive practices have been described to avoid wine browning, such as subjecting the wine to contact with ion exchange resins, the use of activated carbon, the use of chitosan (a byproduct of fishing industry) or the use of bovine scleroproteins.
  • Another method is based on the hyperoxidation of the must to oxidize its phenolic compounds, however this method is difficult to standardize and also destroys the phenolic compounds, so the method would decrease the nutritional value of the wine.
  • yeasts could work in Sherry type wines in which yeasts are present after alcoholic fermentation. This property has been attributed to the ability of cell walls to adsorb brown polymers (Razmkhab et al., 2002. J. Agrie. Food Chem., 50: 7432-7437; Morata et al., 2003. J. Agrie Food Chem., 51: 4084-4088) or decrease its production by adsorption of colorless reaction intermediates (Mazauric et al., 2005. J. Agrie. Food Chem., 53: 5647-5653; Mazauric et al., 2006. J. Agrie. Food Chem., 54: 3876-3881).
  • the present invention provides the use of at least one GRAS grade lactic bacterium (Generally Regarded As Safe) to conserve more flavanols in at least one food product, with respect to a control.
  • it also refers to the use of said lactic bacteria to reduce browning of at least one wine, with respect to a control.
  • the present invention shows the technical effect produced by the addition of a type of lactic bacteria to a food product such as wine. Said technical effect is the greater conservation of the flavanols present in said food product, with respect to a control.
  • another associated technical problem that is solved by the process of the present invention is the decrease in browning of the wines to which said lactic bacterium is added.
  • one aspect of the present invention relates to the use of at least one GRAS (Generally Regarded As Safe) grade lactic bacterium to conserve more flavanols in at least one food product, with respect to a control.
  • said bacterium can be used to increase the amount of proanthocyanidin, also referred to as procyanidin, oligomeric proanthocyanidin, leukocyanidin or leucoanthocyanin.
  • Proanthocyanidins are dimers, trimers, oligomers or polymers of flavanols.
  • GRAS comes from the acronym of the expression "Generally Recognized As Safe". This GRAS designation is the work of the FDA (American Food and Drug Administration) and means that the addition of the chemical or substance to which it refers is considered safe by the experts of that organization.
  • the lactic bacterium belongs to the order Lactobacillales.
  • the known lactic bacteria belong to this order.
  • Lactic acid bacteria has the following phylogenetic classification:
  • Bacteria / Phylum Firmicutes / Class: Bacillil Order: Lactobacillales.
  • the lactic acid bacterium of the order Lactobacillales produces lactic acid as a major metabolite of sugar fermentation. These bacteria are routinely used in the production of fermented dairy products, such as yogurt, cheese, butter, cream, kefir, koumiss, or wine (to carry out malolactic fermentation).
  • This order is formed by the families Aerococcaceae, Carnobacter ⁇ aceae, Enterococcaceae, Lactobacillaceae, Leuconostocaceae and Streptococcaceae.
  • the Lactobacillae family consists of the genera Lactobacillus, Paralactobacillus and Pediococcus. They are found regularly in the lining of the intestinal tract of humans and other animals, in food and dairy products, as well as in fermented vegetable juices.
  • Several previous studies have shown that both catechin and epicatechin interact with different types of lipid bilayers that were used as model cell membranes (Nakayama et al., 2000. Biofactors 13: 147-151; Caturla et al., 2003.
  • a preferred embodiment of the present invention relates to the use of at least one GRAS grade lactic bacterium to conserve more flavanols in at least one food product, with respect to a control, where the GRAS grade lactic bacterium is a bacterium of the genus Lactobacillus.
  • the species of the genus Lactobacillus is selected from the list that includes, but is not limited to, Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus bulgaricus, Lactobacillus brevis, Lactobacillus casei, Lactobacillus delbrueckii, Lactobacillus fermentum, Lactobacillus gascitabacillus Lactobacbabacisusus, Lactobacbababacbabacisusus Lactobacbabacusus Lactobacbabacusus Lactobacbabacusus Lactobacbacbacusus Lactobacillus Lactobacillus Lactobacillus plantarum, Lactobacillus reuteri, Lactobacillus rhamnosus or Lactobacillus salivarius.
  • the lactic bacterium is selected from the list comprising Lactobacillus plantarum, Lactobacillus brevis and Lactobacillus mali.
  • the Leuconostocaceae family is formed by the genera Leuconostoc, Oenococcus or Weissella.
  • Another preferred embodiment of the present invention relates to the use of at least one GRAS grade lactic bacterium to conserve more flavanols in at least one food product, with respect to a control, where GRAS grade lactic bacteria is a bacterium of the genus Leuconostoc.
  • the species of the genus Leuconostoc is selected from the list that includes, but is not limited to, Leuconostoc carnosum, Leuconostoc citreum, Leuconostoc durionis, Leuconostoc fallax, Leuconostoc ficulneum, Leuconostoc fructosum, Leuconostoc garlicum, Leuconostoc gasostocchostoid, Leuconostoconchostoch, Leuconostochum, Leuconostochum, Leuconostochum, Leuconostoc Lech, Conch Leuconostoc lactis, Leuconostoc mesenteroides, Oenococcus oeni, Leuconostoc pseudoficuineum or Leuconostoc pseudomesenteroides.
  • the lactic bacterium is Leuconostoc mesenteroides.
  • the present invention relates to the preservation of a greater amount of flavanols in at least one food product, with respect to a control.
  • control refers to a food product to which GRAS lactic acid is not added.
  • the control food product is an aliquot of the treated food product.
  • Flavanols are compounds that belong to the group of flavonoids, which are polyphenolic compounds, and that share a common nucleus. Inside the flavanols are the flavan-3-oles, whose basic chemical structure is,
  • the (+) - catechin which has the following structure
  • the (-) - catechin which has the following structure,
  • catechin it is called e from now on (+) - catechin or (-) - catechin.
  • the (-) - epicatechin which has the following structure,
  • (+) - ep ⁇ catechin which has the following structure
  • epicatechin it is hereinafter referred to as ⁇ +) - epicatechin or (-) - epicatechin.
  • Another preferred embodiment relates to the use of at least one GRAS grade lactic bacterium to conserve a greater amount of flavanols in at least one food product, with respect to a control, where the flavanols are catechin and / or epicatechin.
  • the flavanols are (+) - catechin and / or (-) - epicatechin. These flavanols are those found mostly in nature.
  • the term "food product” as used in the present invention refers to a food as an article of human or animal consumption. Preferably the food product is for human consumption.
  • the food product is selected from the list comprising, but not limited to, industrially manufactured food products by fermentation of lactic bacteria ⁇ for example, but not limited to, products derived from milk, juices, wine or beer), non-fermented vegetable products such as, but not limited to, juices or fruits (such as, but not limited to, apple, pear, banana, eggplant, avocado or lychee) .
  • Another preferred embodiment of the present invention relates to the use of at least one GRAS grade lactic bacterium to conserve more flavanols in at least one food product, with respect to a control, where the food product comprises at least one product of origin vegetable. That is, the food product contains a product of plant origin only or together with other products of plant origin or with other products of different origin (such as, but not limited to, of animal origin) or with other compounds.
  • the compounds that accompany the product of plant origin can be of natural or artificial origin and can improve the conservation conditions of the product of plant origin.
  • a more preferred embodiment relates to the use of at least one GRAS grade lactic bacterium to preserve more flavanols in at least one food product, with respect to a control, where the food product is wine.
  • the food product is wine.
  • the wine is red or white.
  • the wine is organic.
  • the red wine can come from a wine made with the fruit of any of the red vitis vin ⁇ fera varieties known by the person skilled in the art or any of its combinations.
  • Organic wine is that wine that comes from organic grapes.
  • Organic grapes come from vineyards managed with the organic farming method, as also defined at European level, by Regulation EC 2092/91.
  • Wines made from organic grapes are those contained in Regulation EC 1493/1999 (Annexes 4 and 5) and 1622/2000, which It defines the oenological practices and the treatments allowed for wines in Europe.
  • Another preferred embodiment of the present invention relates to the use of at least one GRAS grade lactic bacterium to conserve a greater amount of flavanols in at least one wine, with respect to a control, where the lactic bacterium is added to the wine at any time of the elaboration of it.
  • the lactobacillus genus lactic bacterium is added when the wine has at least 9% alcohol content.
  • Microb., 56: 2936-2938 bacteria of this genus are naturally present in wines, after alcoholic fermentation, and in these conditions said bacteria are not able to proliferate, therefore there are no changes in the organoleptic characteristics of the wines.
  • the end of the alcoholic fermentation may be due to the depletion of the source of sugars that the yeast uses, or as a consequence of the addition of inhibitors or suppressors of the fermentative activity of the yeasts or their lysis.
  • the sugar content usually measured as Baumé degrees or Brix degrees, different alcohol contents can be achieved.
  • the percentage established in this preferred embodiment is intended to cover white or red wines with low alcohol content, as a consequence, for example, of coming from grapes with low Baumé or Brix grades because they were collected early or because of the geographical location of the cultivation of the vines, or by other consequences not described in the present invention.
  • the lactobacillus genus lactic bacterium is added when the wine has at least 10%, 1 1%, 12%, 13%, 14%, 15%, 16%, 17%, 18%, 19% or 20% of alcoholic content with respect to the volume of the wine.
  • the percentage is measured in volume / volume, that is, for example, a 9% alcohol content means that of every 100 ml of wine, 9 ml are of alcohol (any combination of alcohols) and 81 ml are water and others components.
  • a wine with at least 16% alcohol content is usually a wine to which alcohol has been added artificially, that is, said added alcohol does not come from the fermentation activity of yeasts.
  • Lactic acid bacteria can be added to the wine during the aging process.
  • the aging process has a variable duration of time, but usually takes months, and depends on the initial composition of wine components (mainly antioxidants), on the amount of oxygen that diffuses in said wine (depends on the pore size of the wood with which the barrels are built) as well as other factors.
  • two phases can be highlighted: a) the oxidative phase: in which the microoxygenation of the wine takes place and b) the reducing phase, in which oxygen is prevented from being in contact with the wine.
  • the oxidative phase takes place in wooden barrels, usually of oak of one or different types.
  • the wine reduction phase is usually carried out in bottles, covered to prevent the entry of oxygen.
  • the addition of lactic bacteria to the wine during the aging process can also produce an oenological product of interest since, in addition to carrying out the malolactic fermentation (provided it has not been produced before), these microorganisms favor the presence of flavanols (antioxidants ) that act by buffering the oxidation, therefore, the wines are kept longer in the barrels or in the container used for the oxidative phase of aging, without causing chopped or unwanted browning.
  • the purpose of the use of GRAS grade lactic acid bacteria is both to conserve more flavanols in at least one food product, with respect to a control, as to reduce browning of said wine, with respect to a control.
  • the addition of GRAS grade lactic bacteria such as, but not limited to, of the genus Lactobacillus or Leuconostoc, decreases the browning of model wines with respect to control wines to which no the corresponding microorganism is added.
  • the inventors have demonstrated the mechanism by which said browning of the wine is reduced, which consists essentially in the prevention of the formation of xanthile salts by the prevention of the oxidation of flavanoies such as catechin and / or epicatechin.
  • another preferred embodiment of the present invention relates to the use of GRAS grade lactic bacteria to conserve a greater amount of flavanols in at least one wine, with respect to a control, wherein said lactic bacterium is also used to decrease browning. of said wine, with respect to a control.
  • Said wine can be white, red, organic or the bacterium can be added to the wine at any time of its elaboration, or the bacterium of the genus Lactobacillus is added when the wine has at least 9% alcohol content ⁇ or any of the percentages described above).
  • a preferred embodiment refers to the use of GRAS grade lactic bacteria to conserve a greater amount of flavanols in at least one wine, with respect to a control, where said lactic bacterium is also used to decrease browning of said wine, with respect to a control, where said wine is white.
  • FiG. 1 It shows the inhibitory effect of Lactobacillus plantarum RM71 on the browning of model wines containing (+) - catechin (A) and (-) - epicatechin (B).
  • Model wines were incubated for 42 days at 25 s C, over a period of 42 days.
  • O Cell-free model control wines
  • ⁇ Model wines supplemented with Lactobacillus plantarum RM71. The values represent the average of triplicates that do not show significant differences when using non-parametric tests (P ⁇ 0.05).
  • FiG. 2 Shows chromatograms obtained by HPLC-DAD recorded at 440 nm.
  • FIG. 3 Shows the UV-visible spectra of the degradation products of (+) - catechin and (-) - epicatechin.
  • FIG. 4 Shows the mass spectra of the degradation peak 1 of the (+) - catechin (A) and the degradation peak b of the (-) - epicatechin (B). Such spectra are obtained after incubation of the cell-free control model wines for 42 days at 25 S C.
  • FIG. 5. It shows the inhibitory effect of Lactobacillus plantarum RM71 on the formation of xantiiium pigments derived from ia (+) - catechin (A) and ia (-) - epicatechin (B) in model wines.
  • O Cell-free model wines
  • Each point indicates the combined areas (obtained by HPLC-DAD 440 nm) of the peaks that represent the xantii pigments formed in the respective model wines (peaks 1-4 in wines with (+) - catechin or af peaks in wines with ( -) - epicatechin) at the indicated times. Means and standard deviations of triplicates that do not show significant differences when using non-parametric tests (P ⁇ 0.05) are represented.
  • FIG. 6 It shows the preventive effect of Lactobacillus plantarum RM71 on the oxidative degradation of (+) - catechin (A) and (-) - epicatechin (B) in model wines.
  • FIG. 7 Shows the comparison of the inhibitory effect of several lactic bacteria (BAL) on the browning of model wines containing (+) - catechin (A) and (-) - epicatechin (B).
  • FIG. 1 shows how model wines that contain well (+) - catechin or (-) - ep ⁇ catequ ⁇ na are browned during incubation in the presence of ferrous sulfate at 10 mg / l.
  • the browning speed of the model wines was calculated up to 23 days of incubation because subsequently the browning of all the model wines lost linearity.
  • a similar trend was observed in model wines containing (-) - ep ⁇ catequina which showed a browning rate of 0.044 AU / day ⁇ i 2 of 0.9881) in the presence of bacteria with respect to a rate of 0.060 AU / day (i 2 of 0.9957) of controls without bacteria.
  • FIG. 2A shows the chromatograms obtained by HPLC-DAD of model-free control cells containing cells (+) - catechin.
  • the browning of wines normally begins with the formation of colorless dimers composed of two units of flavanol.
  • the condensation of these dimers may be catalyzed by acetaldehyde or glyoxylic acid.
  • glyoxylic acid is the catalyst for the condensation of catechin dimers since despite the different chromatographic conditions used, the elution pattern of peaks 1 -4 is practically identical to that observed in other works for degradation products of the catechin formed in model systems that use glyoxylic acid as a catalyst.
  • brown pigments formed in model solutions of (+) - catechin / glyoxylic acid are xanthyl salts (Clark et al., 2003. J. Agrie. Food Chem ,.
  • salts are pigments that show a characteristic UV-visible spectrum with a maximum absorbance at 440 nm, a "shoulder" at 310 nm and a peak at 278 nm (Es-Safi et al., 1999. J. Agrie. Food Chem ., Al: 521 1-5217).
  • FIG. 3 A shows the spectral characteristics in the UV-visible range of peaks 1 and 3 extracted from the chromatogram obtained by HPLC-DAD and coincide with the characteristics of xanthile salts, that is, maximum absorbance at 440 nm, a " shoulder "at 310 nm and a peak at 278 nm.
  • peak 4 shows the spectral characteristics of esterified xanthile salts, maximum absorbance at 460 nm instead of 440 nm and a "shoulder" at 310 nm, characteristics previously described (Es-Safi et al., 1999. Tetrahedron Lett., 40: 5869-5872).
  • the spectral characteristics of catechin degradation products are a first evidence that they are xanthile pigments.
  • FIG. 2B shows a chromatogram obtained by HPLC-DAD recorded at 440 nm from a cell-free model wine that contains ep ⁇ catechin after 42 days of incubation.
  • the a-d peaks extracted from the chromatogram obtained by HPLC-DAD had characteristic spectral properties of xanthile salts, ⁇ max at 440 nm, a "shoulder” at 310 nm and a peak at 278 nm.
  • the e-f peaks show the spectral characteristics of esterified xanthyl salts, maximum absorbance at 460 nm instead of 440 nm and a "shoulder" at 310 nm.
  • Xanthile pigments in model wines that contain ep ⁇ catechin represented in ad peaks are analogous to those represented in peaks 1 -3 formed in model wines that contain catechin, because they showed signs at a value of m / z 615.
  • the xanthile pigments derived from the ep ⁇ catechin exhibited practically the same fragmentation pattern as that shown by the xanthile pigments derived from the catechin with major fragments at values of m / z 571 and 419.
  • the isomer that is preferably formed is the decarboxylated ion (m / z 571) of the xanthile cation
  • the one corresponding to a fission of the retro type is preferably formed Diels-Alder of the carboxylated cation (m / z 419).
  • the mass spectrum of peak c of a model wine containing (+) - epicatechin is shown after 42 days of incubation (FIG. 4B).
  • FIG. 6A and 6B show that the presence of L plantarum RM71 inhibits the oxidative degradation of (+) - catechin and (-) - epicatechin. Accordingly, the generation of xanthile pigments derived from catechin (FIG. 5A) and (-) - epicatechin (FIG. 5B) was inhibited in model wines supplemented with this bacterium with respect to control model wines (free of cells).
  • L. plantarum to prevent the formation of both types of xanthile pigments could be useful regardless of the seasonal conditions, type of grapes and practices in winemaking which have been shown to influence the content of catechin and of epicatechin in wine (Simpson, 1982. Vitis, 21: 233-239).
  • Xanthyl salts derived from flavanols are pigments that i) occur in white and red wines (Es-Safi et al., 2000. J. Agrie. Food Chem., 48: 4233-4240) and ii) can act as transient species in the formation of colored quinoidal compounds that contribute to color change in grape-derived foods (Es-Safi et al., 1999. Tetrahedron Lett., 40: 5869-5872.
  • the preventive inhibition of routes which give rise to xanthile pigments contributes to the inhibition of the browning processes associated with these pigments.
  • the percentage of browning inhibition provided by Lactobacillus brevis, Lactobacillus mali and Leuconostoc mesenteroides with respect to cell-free control wines is, respectively, 15.3, 10.7 and 16.8% in model wines containing (+) - catechins and 5.2, 3.3 and 8.6% in model wines containing (-) - epicatechin.
  • Lactobacillus plantarum RM71 strain used in this study was originally isolated from wine at the Institute of Industrial Fermentations (CSIC) (Moreno-Arribas et al., 2003. Int. J. Food Microb, 84: 1 17-123). Lactobacillus plantarum RM71 was routinely grown in the MRS medium (19) at 30 s C. 2. Preparation of model wines for the simulation of browning.
  • CSIC Institute of Industrial Fermentations
  • Two model wines containing 400 mg / L of (+) - catechin or (-) - epicatechin were prepared in a medium similar to wine containing 5 g / l tartaric acid, 0.6 g / L acetic acid, 1.75 g / 1 of malic acid in 12% ethanol.
  • the model wines were adjusted to a pH of 3.5 with NaOH.
  • Ferrous sulfate was added to the model wines as a catalyst for the oxidation reaction until reaching a final concentration of 10 mg / l.
  • Colonies of Lactobacillus plantarum RM71 grown in MRS medium plates were inoculated in MRS medium broth and incubated 24 hours at 30 9 C.
  • (+) - catechin, (-) - epicatechin and its degradation products were extracted twice from filtered aliquots with one third of the ethyl acetate reaction volume.
  • the analysis was carried out as previously described (Rodr ⁇ guez et al., 2008. Food Chem., 107: 1393-1398) in a Thermo chromatographic system ⁇ Thermo Electron Corporation, Waltham, Massachusetts, USA) equipped with a P400 pump SpectraSystem, an AS3000 autosampler, and a UV6000LP detector.
  • a gradient of solvent A (water / acetic acid, 98: 2, v / v) and solvent B (water / acetonitrile / acetic acid, 78: 20: 2, v / v / v) was applied to a reverse phase cartridge Nova-pack Ci 8 (25 cm x 4.0 mm id; 4.6 ⁇ particle size) at room temperature.
  • the elution program was as follows: 0-55 min, 80% linear B, 1.1 ml / min; 55-57 min, 90% linear B; 1.2 ml / min; 57-70 min, 90% Socratic, 1.2 ml / min; 70-80 min, 95% linear B, 1.2 ml / min; 80-90 min, 100% linear, 1.2 ml / min; 100-120 min, wash at 1.0 ml / min.
  • the detection was carried out by scanning from 220 to 380 nm. Samples were injected in duplicate into the cartridge after being filtered through a PVDF filter (0.45 ⁇ ). Chromatograms were generated at 280 nm for quantification and at 440 nm to follow the formation of pigments resulting from the flavanols during oxidation of the model wines.
  • Mass measurements were carried out in a Hewlett-Packard series 1 100 chromatographic system (Palo Alto, CA) equipped with a detector (DAD) and a quadruple mass spectrometer (Hewlett-Packard series 1 100 MSD) with an electrospray interface. Chromatographic separations were carried out with the same column and solvent conditions used in the LC-DAD experiments. DAD detection was carried out from 210 to 500 nm, with a flow of 0.7 ml / min. For the mass (MS), nitrogen was used as a drying and nebulizing gas, and the ionic parameters were: fogging pressure, 55 psi; drying gas, 11 l / min; and drying temperature, 350 ⁇ C. The capillary voltage was - 4 kV. A voltage hole at -90 V in the experiments of fragmentation products research. The spectra were acquired in the negative ion mode in a range of 100 to 1,500 m / z.

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Physiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

La presente invención se refiere al uso de al menos una bacteria láctica de grado GRAS (Generally Regarded As Safe) para conservar mayor cantidad de flavanoles, preferiblemente (+)-catequina y/o (-)-epicatequina, en al menos un producto alimenticio así como también para disminuir el pardeamiento de al menos un tipo de vino, con respecto a un control, donde preferiblemente dicho vino es blanco.

Description

Uso de bacterias lácticas para conservar los flavanoles de un producto alimenticio y prevenir el pardeamiento dei vino
La presente invención se encuadra dentro del campo del sector alimentario, en concreto, la presente invención se refiere al uso de al menos una bacteria láctica de grado GRAS (Generally Regarded As Safe) para conservar mayor cantidad de flavanoles en al menos un producto alimenticio así como también para disminuir el pardeamiento de al menos un vino, con respecto a un control.
ESTADO DE LA TÉCNICA ANTERIOR
Los flavanoles (también conocidos como flavan-3-ol) son una clase de flavonoides que tienen la estructura 2-fenil-3,4-dihídro-2H-cromen-3-ol. Estos compuestos incluyen catequina y epicatequina. En la naturaleza se encuentran mayoritariamente las formas (+) catequina y (-) epicatequina. Los flavanoles, al contrario que los flavonoles, no contienen el grupo cetona. Los flavonoides que no contienen el grupo polifenol poli-hídroxi cetona se conocen más específicamente con el término de flavanoide o flavan-3-ol. Los flavanoles son precursores de proantocíanídinas. Tienen dos carbonos quirales, es decir, que hay 4 diastereoisómeros para cada uno de ellos.
Los flavonoides (tanto los flavonoles como los flavanoles) son conocidos por su actividad antioxidante. Las catequinas han sido relacionadas con la prevención de cáncer y dichos compuestos se han encontrado en fresas, té verde y té negro. La epicatequina se ha relacionado con la inhibición de la diarrea (Schuier et al., 2005. J. Nutr., 135(10): 2320-5). Además, la epicatequina mejora el flujo sanguíneo y por tanto puede suponer la mejora de pacientes con enfermedades del corazón. La epicatequina se ha encontrado en el cacao, alcanzando casi el doble de concentración que en el vino y más de tres veces que en el té verde (Lee et al., 2003. J. Agrie. Food Chem., 51 (25): 7292-5). Por tanto, en el estado de la técnica se muestra un interés claro en la generación de productos alimenticios con 9 propiedades beneficiosas para la salud, especialmente para la prevención de cáncer y enfermedades cardiovasculares.
Por otra parte, es conocido que la degradación oxidativa de catequina y epícatequina en vinos es responsable del pardeamiento de los mismos. Los métodos utilizados para prevenir el oscurecimiento o pardeamiento del vino, así como de alimentos vegetales, se agrupan en métodos físico-químicos y biológicos. El método más importante y ampliamente utilizado para prevenir el pardeamiento es el uso de sulfitos debido a su capacidad antioxidante. Sin embargo, debido a las objeciones relacionadas con la salud derivadas del uso de sulfitos, la Organización Mundial de la Salud (W.H.O) y la Organización Mundial de la Viña y el Vino (O.I.V) han implementado restricciones regulatorias sobre su uso. Además, los productores de vino han encontrado que el uso extensivo de sulfitos compromete la calidad del vino al proporcionar cualidades organolépticas no deseables al producto. Como sustituto de los sulfitos para prevenir el pardeamiento del vino se ha utilizado ampliamente el ácido ascórbico. No obstante una vez que el ácido ascórbico se oxida a ácido dehidroascórbico, las quinonas se pueden acumular y sufrir pardeamiento. Además estudios recientes están aportando evidencia de que el ácido ascórbico posee actividad pro-oxidante y puede causar una aceleración del pardeamiento en combinación con los sulfitos. Aparte de estos métodos ampliamente utilizados, para evitar el pardeamiento del vino se han descrito otras prácticas menos frecuentes o caras, como someter el vino al contacto con resinas de intercambio iónico, el uso de carbón activo, el uso de quitosano (un subproducto de la industria pesquera) o el uso de escleroproteínas bovinas. Otro método está basado en la hiperoxidación del mosto para oxidar sus compuestos fenólicos, sin embargo este método es difícil de estandarizar y además destruye los compuestos fenólicos, por lo que el método disminuiría el valor nutritivo del vino.
Es conocida la capacidad de levaduras fermentativas para prevenir el pardeamiento de soluciones vínicas modelo y del vino (López-Toledano et al., 2002. J. Agrie. Food Chem., 50: 1631 -1635; Chamka et al., 2003. J. Agrie. Food Chem., 51 : 3179-3184; Shinohara et al., 2000. J. Biosci. Bioeng., 90: 90-97; Fugelsang et al., 2007. Microbial Ecology During Vinification. In Wine Microbiolgy. Practical Applications and Procedures. Second Edition: Fugelsang, K., Edwards, Ch., Eds. Springer US: New York, pp. 90). El uso de levaduras podría funcionar en vinos del tipo Sherry en los cuales las levaduras están presentes después de la fermentación alcohólica. Esta propiedad ha sido atribuida a la capacidad de las paredes celulares para adsorber polímeros de color marrón (Razmkhab et al., 2002. J. Agrie. Food Chem., 50: 7432-7437; Morata et al., 2003. J. Agrie. Food Chem., 51 : 4084-4088) o disminuir su producción por adsorción de intermediarios incoloros de la reacción (Mazauric et al., 2005. J. Agrie. Food Chem., 53: 5647-5653; Mazauric et al., 2006. J. Agrie. Food Chem., 54: 3876- 3881 ). Basándose en estas capacidades de las levaduras varios autores han desarrollado estrategias (Bonilla et al., 2001 . J. Agrie. Food Chem., 49: 1928- 1933) para reducir el pardeamiento del vino. Sin embargo el uso de levaduras para este fin podría alterar las cualidades organolépticas del vino debido a su capacidad para la formación de aromas indeseables.
Por tanto, hay un interés creciente en la búsqueda de productos alimenticios que tengan flavonoides, entre los cuales se encuentran los flavanoles catequína y/o epicatequina para la mejora de la salud de los consumidores. Así mismo, el pardeamiento del vino es un problema que debe ser solucionado con herramientas no perjudiciales para la salud de los consumidores y que no alteren las características organolépticas de los mismos.
EXPLICACIÓN DE LA INVENCIÓN
La presente invención provee el uso de al menos una bacteria láctica de grado GRAS (Generally Regarded As Safe) para conservar mayor cantidad de flavanoles en al menos un producto alimenticio, con respecto a un control. Además también se refiere al uso de dicha bacteria láctica para disminuir el pardeamiento de al menos un vino, con respecto a un control. En la presente invención se muestra el efecto técnico producido por la adición de un tipo de bacteria láctica a un producto alimentario como por ejemplo el vino. Dicho efecto técnico es la mayor conservación de los flavanoles presentes en dicho producto alimenticio, respecto de un control. Además, otro problema técnico asociado que se soluciona mediante el procedimiento de la presente invención es la disminución del pardeamiento de los vinos a los que se les añade dicha bacteria láctica.
Las ventajas técnicas que presenta conservar mayor cantidad de flavanoles en al menos un producto alimenticio, con respecto a un control, como consecuencia de la adición de una bacteria láctica a dicho producto alimenticio son:
- La obtención de productos alimenticios con capacidad antioxidante mayor. La ingestión de estos alimentos supone el refuerzo de la salud del consumidor.
- Prevenir la formación de pigmentos de xantilío ya que se impide la oxidación de dichos flavanoles. Dicha prevención va asociada con la prevención de la aparición de pardeamiento en el vino.
- De esta manera se evita la adición de compuestos tóxicos para la salud como la adición de sulfitos a productos alimenticios como por ejemplo el vino. Esto permite el uso de dichas bacterias lácticas en vinos ecológicos.
- La adición de bacterias lácticas al vino no produce alteraciones organolépticas del producto.
- Mejor aceptación por el consumidor de los productos alimenticios obtenidos por el procedimiento que se describe en la presente invención frente a los obtenidos con los métodos basados en preservativos químicos tradicionales.
Así pues, un aspecto de la presente invención se refiere al uso de al menos una bacteria láctica de grado GRAS (Generally Regarded As Safe) para conservar mayor cantidad de flavanoles en al menos un producto alimenticio, con respecto a un control. Así mismo, dicha bacteria puede usarse para aumentar la cantidad de proantocianidina, también denominada como procianidina, proantocianidina oligomérica, leukocianidina o leucoantocianina. Las proantocianidinas son dímeros, trímeros, oligómeros o polímeros de flavanoles. El término GRAS procede de las siglas de la expresión "Generally Recognized As Safe". Esta designación GRAS es obra de la FDA (American Food and Drug Administration) y significa que la adición del producto químico o la sustancia a la que se refiere, es considerada segura por los expertos de dicha organización.
La bacteria láctica pertenece al orden Lactobacillales. Las bacterias lácticas conocidas pertenecen a este orden. La bacteria láctica tiene la siguiente clasificación filogenética:
Dominio: Bacteria / Filo: Firmicutes / Clase: Bacillil Orden: Lactobacillales.
La bacteria láctica del orden Lactobacillales produce ácido láctico como metabolito mayoritario de la fermentación del azúcar. Estas bacterias se usan de forma habitual en la producción de productos lácteos fermentados, como yogur, queso, manteca, crema de leche, kéfir, koumiss, o vino (para llevar a cabo la fermentación maloláctica).
Este orden está formado por las familias Aerococcaceae, Carnobacteríaceae, Enterococcaceae, Lactobacillaceae, Leuconostocaceae y Streptococcaceae. La familia Lactobacillae está formada por los géneros Lactobacillus, Paralactobacillus y Pediococcus. Se encuentran regularmente en la mucosa del tracto intestinal de humanos y de otros animales, en alimentos y productos lácteos, así como en zumos vegetales fermentados. Varios trabajos previos han demostrado que tanto la catequina como la epicatequina interaccionan con distintos tipos de bicapas lipídicas que se utilizaron como membranas celulares modelo (Nakayama et al., 2000. Biofactors 13: 147-151 ; Caturla et al., 2003. Free Radical Biology & Medicine, 34: 648-662; Sírk et al., 2008. Journal of Agrícultural and Food Chemistry, 56: 7750-7758). En uno de estos trabajos (Caturla et al., 2003. Free Radical Biology & Medicine, 34: 648-662), entre las diferentes bicapas lipídicas utilizadas, algunas se usaron como membranas bacterianas modelo debido a su composición en fosfolípidos. En todos los casos examinados, y a pesar de que las membranas modelo tenían diferente composición lipídica, catequina y epicatequina se incorporan en la bicapa lipídica. La absorción de catequina y epicatequina en la bicapa lipídica es por tanto un mecanismo general de interacción de estos flavanoles con las membranas celulares y consecuentemente puede ser extendido al grupo de bacterias lácticas.
Una realización preferida de la presente invención se refiere al uso de al menos una bacteria láctica de grado GRAS para conservar mayor cantidad de flavanoles en al menos un producto alimenticio, con respecto a un control, donde la bacteria láctica de grado GRAS es una bacteria del género Lactobacillus. La especie del género Lactobacillus se selecciona de las lista que comprende, pero sin limitarse, Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus bulgaricus, Lactobacillus brevis, Lactobacillus casei, Lactobacillus delbrueckii, Lactobacillus fermentum, Lactobacillus gasseri, Lactobacillus johnsonii, Lactobacillus lactis, Lactobacillus mali, Lactobacillus paracasei, Lactobacillus plantarum, Lactobacillus reuteri, Lactobacillus rhamnosus o Lactobacillus salivarius. Según una realización más preferida, la bacteria láctica se selecciona de la lista que comprende Lactobacillus plantarum, Lactobacillus brevis y Lactobacillus mali.
La familia Leuconostocaceae está formada por los géneros Leuconostoc, Oenococcus o Weissella. Otra realización preferida de la presente invención se refiere al uso de al menos una bacteria láctica de grado GRAS para conservar mayor cantidad de flavanoles en al menos un producto alimenticio, con respecto a un control, donde la bacteria láctica de grado GRAS es una bacteria del género Leuconostoc. La especie del género Leuconostoc se selecciona de las lista que comprende, pero sin limitarse, Leuconostoc carnosum, Leuconostoc citreum, Leuconostoc durionis, Leuconostoc fallax, Leuconostoc ficulneum, Leuconostoc fructosum, Leuconostoc garlicum, Leuconostoc gasicomitatum, Leuconostoc gelidum, Leuconostoc inhae, Leuconostoc kimchii, Leuconostoc lactis, Leuconostoc mesenteroides, Oenococcus oeni, Leuconostoc pseudoficuineum o Leuconostoc pseudomesenteroides. Según una realización más preferida, la bacteria láctica es Leuconostoc mesenteroides.
En cualquier producto alimenticio que contenga flavanoles se produce la oxidación de los mismos, por tanto, como consecuencia, dichos productos pierden flavanoles y, como última consecuencia, el producto alimenticio disminuye su capacidad de actuar como antioxidante por medio de la acción de algunos de sus compuestos. Por tanto, la presente invención se refiere a la conservación de mayor cantidad de flavanoles en al menos un producto alimenticio, con respecto a un control.
En la presente invención, el término "control" se refiere a un producto alimenticio al que no se añade la bacteria láctica GRAS. El producto alimenticio control es una alícuota del producto alimenticio tratado.
Los flavanoles son compuestos que pertenecen al grupo de los flavonoides, que son compuestos polifenólicos, y que comparten un núcleo común. Dentro de los flavanoles se encuentran los flavan-3-oles, cuya estructura química básica es,
Figure imgf000009_0001
Y dentro de los compuestos flavan-3-oles se encuentran las catequinas, que tienen dos centros quirales pudíendo formar los siguientes cuatro diasteroisomeros: La (+)-catequina, que tiene la siguiente estructura,
Figure imgf000010_0001
La (-)-catequina, que tiene la siguiente estructura,
Figure imgf000010_0002
Por "catequina" se denomina e a partir de ahora a (+)-catequina ó (-)-catequina. La (-)-epicatequina, que tiene la siguiente estructura,
Figure imgf000010_0003
Y la (+)-epícatequina, que tiene la siguiente estructura,
Figure imgf000011_0001
Por "epicatequina" se denomina a partir de ahora a {+)-epicatequina ó (-)- epicatequina.
Otra realización preferida se refiere al uso de al menos una bacteria láctica de grado GRAS para conservar mayor cantidad de flavanoles en al menos un producto alimenticio, con respecto a un control, donde los flavanoles son catequina y/o epicatequina. Según una realización más preferida, los flavanoles son (+)-catequina y/o (-)-epicatequina. Estos flavanoles son los que se encuentran de forma mayoritaria en la naturaleza. El término "producto alimenticio" tal como se emplea en la presente invención se refiere a un alimento como artículo de consumo humano o animal. Preferiblemente el producto alimenticio es para consumo humano. En este sentido conviene diferenciar este término del término "producto alimentario" que se refiere a cualquier materia no nociva, en sentido absoluto o relativo, que, sin valor nutritivo, puedan ser utilizadas en la alimentación, tanto humana como animal, incluyendo por tanto, aditivos, desinfectantes, envases, embalajes o útiles alimentarios.
El producto alimenticio se selecciona de la lista que comprende, pero sin limitarse, productos alimenticios manufacturados industrialmente por fermentación de bacterias lácticas {por ejemplo, pero sin limitarse, productos derivados de ia leche, zumos, vino o cerveza), productos de origen vegetal no fermentados como por ejemplo, pero sin limitarse, zumos o frutas (como por ejemplo, pero sin limitarse, manzana, pera, plátano, berenjena, aguacate o lichi).
Otra realización preferida de la presente invención se refiere al uso de al menos una bacteria láctica de grado GRAS para conservar mayor cantidad de flavanoles en al menos un producto alimenticio, con respecto a un control, donde el producto alimenticio comprende al menos un producto de origen vegetal. Es decir, el producto alimenticio contiene un producto de origen vegetal sólo o junto con otros productos de origen vegetal o con otros productos de distinto origen (como por ejemplo, pero sin limitarse, de origen animal) o con otros compuestos. Los compuestos que acompañan al producto de origen vegetal pueden ser de origen natural o artificial y pueden mejorar las condiciones de conservación del producto de origen vegetal.
Una realización más preferida se refiere al uso de al menos una bacteria láctica de grado GRAS para conservar mayor cantidad de flavanoles en al menos un producto alimenticio, con respecto a un control, donde el producto alimenticio es vino. Según una realización aún más preferida, el vino es tinto o blanco. Según otra realización aún más preferida, el vino es ecológico.
El vino tinto puede proceder de un vino elaborado con el fruto de cualquiera de las variedades tintas de vitis vinífera conocidas por el experto en la materia o de cualquiera de sus combinaciones.
El vino ecológico es aquel vino que procede de uva ecológica. Las uvas ecológicas provienen de viñas manejadas con el método de la agricultura ecológica, como se define también a nivel Europeo, por el Reglamento CE 2092/91. Los vinos elaborados a partir de uva ecológica son aquellos contenidos en el Reglamento CE 1493/1999 (anexos 4 y 5) y 1622/2000, que define las prácticas enológicas y los tratamientos permitidos para vinos en Europa.
Otra realización preferida de la presente invención se refiere al uso de al menos una bacteria láctica de grado GRAS para conservar mayor cantidad de flavanoles en al menos un vino, con respecto a un control, donde la bacteria láctica se añade al vino en cualquier momento de la elaboración del mismo. Según una realización más preferida, la bacteria láctica del género Lactobacillus se añade cuando el vino tiene al menos un 9 % de contenido alcohólico. Tal como se ha demostrado en el estado de la técnica (Sieiro et al., 1990. Appl. Envíron. Microb., 56: 2936-2938), las bacterias de este género se encuentran presentes de forma natural en los vinos, después de la fermentación alcohólica, y en dichas condiciones dichas bacterias no son capaces de proliferar, por tanto no se producen cambios en las características organolépticas de los vinos. El fin de la fermentación alcohólica puede ser debido al agotamiento de la fuente de azúcares que la levadura utiliza, o como consecuencia de la adición de inhibidores o supresores de la actividad fermentativa de las levaduras o la lisis de las mismas. Por otra parte, dependiendo del contenido de azúcares, medido generalmente como grados Baumé o grados Brix, se pueden alcanzar diferentes contenidos de alcohol. El porcentaje establecido en esta realización preferida pretende cubrir vinos blancos o tintos con poco contenido alcohólico, como consecuencia, por ejemplo, de proceder de uvas con grados Baumé o Brix bajos por haber sido recolectadas de forma temprana o por la ubicación geográfica del cultivo de las vides, o por otras consecuencias no descritas en la presente invención. Más preferiblemente la bacteria láctica del género Lactobacillus se añade cuando el vino tiene al menos un 10%, 1 1 %, 12%, 13%, 14%, 15%, 16%, 17%, 18%, 19% ó 20% de contenido alcohólico respecto del volumen del vino. El porcentaje se mide en volumen/volumen, es decir, por ejemplo, un 9% de contenido alcohólico significa que de cada 100 mi de vino, 9 mi son de alcohol (cualquiera de las combinaciones de alcoholes) y 81 mi son agua y otros componentes. Generalmente, un vino con al menos un 16% de contenido alcohólico suele ser un vino al que se ha añadido alcohol de forma artificial, es decir, que dicho alcohol añadido no procede de la actividad fermentativa de las levaduras.
La bacteria láctica puede añadirse al vino durante el proceso de crianza. El proceso de crianza tiene una duración de tiempo variable, pero normalmente comporta meses, y depende de la composición inicial de componentes del vino (principalmente antioxidantes), de la cantidad de oxígeno que difunde en dicho vino (depende del tamaño de poro de la madera con las que están construidas las barricas) así como de otros factores. A modo de síntesis, en dicho proceso de crianza convencional se pueden destacar dos fases: a) la fase oxidativa: en la que tiene lugar la microoxígenación del vino y b) la fase reductora, en la que se evita que el oxígeno esté en contacto con el vino. Lo más común es que la fase oxidativa tenga lugar en barricas de madera, generalmente de madera de roble de uno o de distintos tipos. Dependiendo del tamaño medio de poro de dicha madera este proceso se puede alargar más o menos así como también el aporte de componentes de la madera puede variar dependiendo del tipo de madera empleado. La fase reductora del vino suele llevarse a cabo en botellas, tapadas para evitar la entrada de oxígeno. La adición de bacterias lácticas al vino durante el proceso de crianza puede producir además un producto enológico de interés ya que, además de llevar a cabo la fermentación maloláctica (siempre que no se haya producido antes), estos microorganismos favorecen la presencia de flavanoles (antioxidantes) que actúan tamponando la oxidación, por tanto, los vinos mantenerse por más tiempo en las barricas o en el recipiente empleado para la fase oxidativa de la crianza, sin producirse picado o pardeamíento indeseado. Por tanto, esto permitiría llevar a cabo la fase oxidativa de la crianza en vinos con poco contenido de compuestos antioxidantes como son los vinos blancos y no limitarse exclusivamente a la fase anaerobia. Tal como se ha mencionado en párrafos precedentes, el propósito del uso de la bacteria láctica de grado GRAS es, tanto conservar mayor cantidad de flavanoles en al menos un producto alimenticio, con respecto a un control, como para disminuir el pardeamiento de dicho vino, con respecto a un control. Tal como se demuestra en los ejemplos de la presente invención, la adición de bacterias lácticas de grado GRAS como por ejemplo, pero sin limitarse, del género Lactobacillus o Leuconostoc, disminuyen el pardeamiento de vinos modelo con respecto a los vinos control a los que no se adiciona el microorganismo correspondiente. Los inventores han demostrado el mecanismo por el cual se disminuye dicho pardeamiento del vino, que consiste esencialmente en la prevención de la formación de sales de xantilio por la prevención de la oxidación de flavanoies como catequina y/o epicatequina.
Por tanto, otra realización preferida de la presente invención se refiere al uso de la bacteria láctica de grado GRAS para conservar mayor cantidad de flavanoles en al menos un vino, con respecto a un control, donde además dicha bacteria láctica se usa para disminuir el pardeamiento de dicho vino, con respecto a un control. Dicho vino puede ser blanco, tinto, ecológico o la bacteria se puede añadir al vino en cualquier momento de la elaboración del mismo, o la bacteria del género Lactobacillus se añade cuando el vino tiene al menos un 9 % de contenido alcohólico {o cualquiera de los porcentajes descritos anteriormente). Una realización preferida se refiere al uso de la bacteria láctica de grado GRAS para conservar mayor cantidad de flavanoles en al menos un vino, con respecto a un control, donde además dicha bacteria láctica se usa para disminuir el pardeamiento de dicho vino, con respecto a un control, donde dicho vino es blanco. A lo largo de la descripción y las reivindicaciones la palabra "comprende" y sus variantes no pretenden excluir otras características técnicas, aditivos, componentes o pasos. Para los expertos en la materia, otros objetos, ventajas y características de la invención se desprenderán en parte de la descripción y en parte de la práctica de la invención. Las siguientes figuras y ejemplos se proporcionan a modo de ilustración, y no se pretende que sean limitativos de la presente invención. DESCRIPCION DE LAS FIGURAS
FiG. 1. Muestra el efecto inhibidor de Lactobacillus plantarum RM71 sobre el pardeamiento de vinos modelo que contienen (+)-catequina (A) y (-)- epicatequina (B).
Las muestras de vino modelo fueron incubadas durante 42 días a 25s C, en un periodo de 42 días. (O) Vinos modelo control libres de células, (■) Vinos modelo suplementados con Lactobacillus plantarum RM71 . Los valores representan la media de triplicados que no presentan diferencias significativas al usar test no-paramétrícos (P<0.05).
FiG. 2. Muestra cromatogramas obtenidos por HPLC-DAD registrados a 440 nm.
Dichos cromatogramas corresponden a vinos modelo control que contienen (+)- catequina (A) o (-)-epicatequina (B) y que fueron incubados durante 42 días a 25 °C. FIG. 3. Muestra ios espectros UV-visible de ios productos de degradación de(+)-catequina y (-)-epicatequina.
En la figura se muestran los productos de degradación de la (+)-catequina (picos 1 , 3 y 4){A) y de la (-)-epicatequina (picos a-f) (B) en vinos modelo control libres de células después de la incubación durante 42 días a 25 SC.
FiG. 4. Muestra los espectros de masa del pico 1 de degradación de la (+)- catequina (A) y del pico b de degradación de la (-)-epicatequina (B). Dichos espectros se obtienen después de la incubación de los vinos modelo control libres de células durante 42 días a 25 SC. FIG. 5. Muestra el efecto inhibidor de Lactobacillus plantarum RM71 sobre la formación de pigmentos de xantiiio derivados de ia (+)-catequina (A) y de ia (-)-epicatequina (B) en vinos modelo. (O) Vinos modelo libres de células, (■) Vinos modelo suplementados con Lactobacillus plantarum RM71 . Cada punto indica las áreas combinadas (obtenidas por HPLC-DAD 440 nm) de los picos que representan los pigmentos de xantiiio formados en los respectivos vinos modelo (picos 1 -4 en vinos con (+)-catequina o picos a-f en vinos con (-)-epicatequina) a los tiempos indicados. Se representan las medias y las desviaciones estándar de triplicados que no presentan diferencias significativas al usar test no-paramétricos (P<0.05).
FIG. 6. Muestra el efecto preventivo de Lactobacillus plantarum RM71 sobre ia degradación oxidativa de (+)-catequina (A) y (-)-epicatequina (B) en vinos modelo.
Se muestran las variaciones durante 42 días en las concentraciones de ambos flavanoles en vinos control libres de células (O) y vinos modelo suplementados con Lactobacillus plantarum RM71 . Se representan las medias y las desviaciones estándar de triplicados que no presentan diferencias significativas al usar test no-paramétricos (P<0.05).
FIG. 7. Muestra la comparación del efecto inhibidor de varias bacterias lácticas (BAL) sobre el pardeamiento de vinos modelo que contienen (+)- catequina (A) y (-)-epicatequina (B).
Las muestras de vono modelo fueron incubadas durante 20 días a 30s C en presencia de 20 mg/L de sulfato ferroso. (♦) Vinos modelo control libres de células. Vinos modelo suplementados con: Lactobacillus brevis (□); Lactobacillus mali (X); Leuconostoc mesenteroides (+). EJEMPLOS
A continuación se ilustrará la invención mediante unos ensayos realizados por los inventores. Los siguientes ejemplos específicos que se proporcionan en este documento de patente sirven para ilustrar la naturaleza de la presente invención. Estos ejemplos se incluyen solamente con fines ilustrativos y no han de ser interpretados como limitaciones a la invención que aquí se reivindica. Por tanto, los ejemplos descritos no pretenden limitar el campo de aplicación de la misma.
EJEMPLO 1.
1.1. Efecto de L. plantarum RM 71 en el desarrollo del color de vinos modelo.
Para mimetizar el proceso de oxidación del vino se utilizaron los vinos modelo, descritos en el apartado de Material y Métodos. Estos vinos fueron suplementados con sulfato ferroso debido a su efectividad para acelerar la oxidación de flavanoles (Oszmianski, et al., 1996. J. Agrie. Food Chem., 44: 1712-1715). El pardeamiento de las bebidas habitualmente se examina siguiendo las variaciones de absorbancia a 420 nm (Λ20 nm) debido a que los pigmentos marrones que se producen como resultado de la oxidación de los fenoles presentes en las bebidas, incrementan el color en la región amarillo-marrón del espectro visible (lland et al., 2000. White wine spectral measures. In Techniques for Chemical Analysis and Quality Monitoring duríng Winemaking; Patrick lland Wine Promotions: Campbelltown, Australia, p 100). Por ello, para examinar la influencia de L. plantarum RM71 en el pardeamiento, las variaciones en los valores de A4 0 nm mostrados por los vinos modelo que contenían (+)-catequina o (-)-epicatequina fueron examinadas en función de la presencia o ausencia de este microorganismo. La FIG. 1 muestra cómo se pardean los vinos modelo que contienen bien (+)- catequina o (-)-epícatequína durante la incubación en presencia de sulfato ferroso a 10 mg/l. El valor de A420 nm en los vinos control, libres de L plantarum RM71 se incrementó notablemente en el tiempo, revelando la formación de pigmentos coloreados en la región visible del espectro. La incubación de los vinos modelo que contenían bien (+)-catequina o (-)-epicatequina en presencia de L plantarum RM71 , produjo una inhibición parcial del proceso de pardeamíento como se puede observar al examinar los valores finales de A20 nm y la velocidad de formación de pigmentos marrones (FIG. 1A y 1 B). El porcentaje de inhibición del pardeamíento proporcionado por L plantarum RM71 respecto de los controles libres de células es del 21.5 % en los vinos modelo que contienen (+)-catequína y del 29.2 % en los vinos modelo que contienen (-)-epicatequina. La velocidad de pardeamíento de los vinos modelo fue calculada hasta los 23 días de incubación debido a que posteriormente el pardeamíento de todos los vinos modelo perdía linearidad. La presencia de L plantarum RM71 en los vinos modelo que contenían catequina mostraron una velocidad de pardeamíento más lenta (ΔΑΙΙ/día =0.036; i2 de 0.9816) que sus controles (AAU/día=0.045; i2 de 0.9927). Una tendencia similar se observó en los vinos modelo que contenían (-)-epícatequina los cuales mostraron una velocidad de pardeamíento de 0.044 AU/día {i2 of 0.9881) en presencia de bacteria respecto a una velocidad de 0.060 AU/día (i2 of 0.9957) de los controles sin bacteria. Una de las rutas de formación de pigmentos coloreados es la oxidación de flavanoles catalizada por trazas de cobre y/o hierro y la subsiguiente polimerización de los productos oxidados. Sin embargo cuando el ácido tartárico está en el medio, como ocurre en nuestros vinos modelo y en vinos no modelo, la oxidación no ocurre directamente en los flavanoles sino en el ácido tartárico el cual se convierte en ácido glioxílico. El ácido glioxílico reacciona con dos unidades de flavanol para dar lugar a dímeros incoloros que sufren posteriormente deshidratación y oxidación para formar pigmentos marrones (Fulcrand et al., 1997. Phytochemistry, 46: 223-227).
1.2. Identificación de productos de reacción de pardeamíento en vinos modelo que contienen (+)-catequina. Para tener mas información acerca de los cambios de color observados, se registraron a 280 nm y 440 nm cromatogramas obtenidos por HPLC-DAD de vinos modelo que contenían (+)-catequína o (-)-epicatequina. Después de 42 días de incubación los cromatogramas registrados a 280 nm revelaron la presencia de (+)- catequina y de productos resultantes de su degradación. L. plantarum RM71 no determinó el patrón de degradación de la catequina, ya que los picos observados eran los mismos (aunque con diferente intensidad) que los observados en los controles libres de células. La FIG. 2A muestra los cromatogramas obtenidos por HPLC-DAD de vinos modelo control libres de células que contienen (+)-catequina. Estos cromatogramas se registraron a 440 nm después de 42 días de incubación. Se observan 4 picos (1 -4) que revelan la formación de compuestos de degradación de la (+)-catequina y que no se observaron al comienzo de la incubación. La presencia de L plantarum RM71 en los vinos modelo no afectó al perfil de los cromatogramas pero si a la intensidad de los picos.
El pardeamiento de los vinos comienza normalmente con la formación de dímeros incoloros compuestos por dos unidades de flavanol. La condensación de estos dímeros puede estar catalizada por acetaldehído o por ácido glioxílico. Asumimos que el ácido glioxílico es el catalizador de la condensación de los dímeros de catequina ya que a pesar de las diferentes condiciones cromatográficas utilizadas, el patrón de elución de los picos 1 -4 es prácticamente idéntico al observado en otros trabajos para productos de degradación de la catequina formados en sistemas modelo que utilizan el ácido glioxílico como catalizador. Ha sido previamente establecido que los pigmentos marrones formados en soluciones modelo de (+)-catequina/ácido glioxílico son sales de xantilio (Clark et al., 2003. J. Agrie. Food Chem,. 51 : 6204-6210; Es-Safi et al., 1999. J. Agrie. Food Chem., 47: 521 1-5217; Es-Safi et al., 1999. Tetrahedron Lett., 40: 5869-5872; Es-Safi et al., 2000. J. Agrie. Food Chem., 48: 4233-4240). Estas sales son pigmentos que muestran un espectro UV-visible característico con un máximo de absorbancía a 440 nm, un "hombro" a 310 nm y un pico a 278 nm (Es-Safi et al., 1999. J. Agrie. Food Chem., Al: 521 1 -5217). Para comprobar si los pigmentos formados en los vinos modelo que contienen catequina son sales de xantilio, se realizaron barndos de cada pico de degradación de la (+)-catequina en el espectro UV-vis. En la FIG. 3 A se muestran las características espectrales en el rango UV-visible de los picos 1 y 3 extraídos del cromatograma obtenido por HPLC-DAD y coinciden con las características de las sales de xantilio, esto es, máximo de absorbancía a 440 nm, un "hombro" a 310 nm y un pico a 278 nm. Respecto al pico 4, éste muestra las características espectrales de sales de xantilio esterificadas, máximo de absorbancía a 460 nm en lugar de a 440 nm y un "hombro" a 310 nm, características previamente descritas (Es-Safi et al., 1999. Tetrahedron Lett., 40: 5869-5872). Las características espectrales de los productos de degradación de la catequina son una primera evidencia de que son pigmentos de xantilio.
Para identificar más claramente los productos de degradación de la catequina (picos 1 -4) como pigmentos de xantilio derivados de la catequina, se determinaron sus masas correspondientes mediante experimentos de HPLC-MS. Los espectros de masas de los picos 1 , 2 y 3 en el modo de ión negativo mostraron señales a valores de m/z 615. Esta señal se fragmentó en dos iones principales: uno con una señal a un valor de m/z 571 (correspondiente a la decarboxilación del ión principal. -44 amu [unidad de masa atómica]) y otro con una señal a un valor de m/z 419 (correspondiente a una fisión del tipo retro Diels-Alder. -152 amu). Estos datos revelan, de acuerdo a estudios precedentes (Clark et al., 2003. J. Agrie. Food Chem,. 51 : 6204-6210; Es-Safi et al., 2000. J. Agrie. Food Chem., 48: 4233-4240; Labrouche et al., 2005. J. Agrie. Food Chem., 53: 9993-9998), que los productos de degradación de la catequina representados en los picos 1 , 2 y 3 de los cromatogramas obtenidos por HPLC-DAD son pigmentos de xantilio. En la FIG. 4A se muestra como ejemplo el espectro de masas del pico 1 de una muestra extraída de un vino modelo que contiene (+)-catequína después de 42 días de incubación. El espectro de masas del pico 4 muestra las características típicas descritas (Labrouche et al., 2005. J. Agrie. Food Chem., 53: 9993-9998) de un éster de una sal de xantilio con una señal en el modo de ión negativo a un valor de m/z 643 y un fragmento principal a un valor de m/z 597. 1.3. identificación de productos de reacción de pardeamiento en vinos modelo que contienen (+)-epicatequina.
Para comprobar si los pigmentos formados en los vinos modelo que contienen epícatequina son sales de xantilio, se procedió de igual modo que con los vinos modelo suplementados con catequina. La FIG. 2B muestra un cromatograma obtenido por HPLC-DAD registrado a 440 nm de un vino modelo libre de células que contiene epícatequina después de 42 días de incubación. Para obtener una primera evidencia de que los picos resultantes de la degradación de la epícatequina son pigmentos de xantilio se realizó un espectro de cada pico en el rango UV-visíble. Los picos a-d extraídos del cromatograma obtenido por HPLC- DAD presentaron propiedades espectrales características de las sales de xantilio, λ max a 440 nm, un "hombro" a 310 nm y un pico a 278 nm. Los picos e-f muestran las características espectrales de sales de xantilio esterificadas, máximo de absorbancia a 460 nm en lugar de a 440 nm y un "hombro" a 310 nm.
Para determinar que los picos a-f representan pigmentos de xantilio formados a partir de la epícatequina, se determinaron las masas correspondientes mediante experimentos de HPLC-MS. Los pigmentos de xantilio en los vinos modelo que contienen epícatequina representados en los picos a-d, son análogos a los respresentados en los picos 1 -3 formados en los vinos modelo que contienen catequina, debido a que mostraron señales a un valor m/z 615. Los pigmentos de xantilio derivados de la epícatequina exhibieron prácticamente el mismo patrón de fragmentación que el mostrado por los pigmentos de xantilio derivados de la catequina con fragmentos principales a valores de m/z 571 y 419. Debido a que la (+)-catequina y la (-)- epícatequina son diastereoisomeros sus derivados de xantilio conservan una relación diastereoisomerica lo que explica que aunque son análogos, ambos tipo de pigmentos muestran diferentes tiempos de retención en sus cromatogramas (Labrouche et al., 2005. J. Agrie. Food Chem., 53: 9993-9998 . Por otra parte la observación de seis picos correspondientes a productos de degradación de la epícatequina en lugar de los cuatro observados para la catequina puede ser el resultado de la coelución de diferentes isómeros de pigmentos de xantilio o la formación preferente de los mismos. También se observa, por ejemplo, que en el pico b el isómero que se forma preferentemente es el ion decarboxilado (m/z 571 ) del catión de xantilio, mientras que en el pico c se forma preferentemente el correspondiente a una fisión del tipo retro Diels-Alder del catión decarboxilado (m/z 419). A modo de ejemplo se muestra el espectro de masas del pico c de un vino modelo que contiene (+)-epicatequina después de 42 días de incubación (FIG. 4B). Los espectros de masas de los picos e y f mostraron señales de m/z de 643 con iones a m/z de 597 que como se menciona anteriormente para los vinos modelos que contienen catequina, correspondieron a ésteres de pigmentos de xantilio. Estos resultados confirman que los pigmentos de xantilio formados a partir de catequina y epicatequina en sus correspondientes vinos modelo, son análogos.
1.4. Efecto inhibidor de Lactobacillus plantarum RM71 sobre ia formación de pigmentos marrones en ios vinos modelo que contienen (+)-catequina y (- )-epicatequina
Para determinar si la reducción de la velocidad de pardeamíento que produce L plantarum RM71 en los vinos modelo que contienen (+)-catequina o (-)- epicatequina (FIG. 1A y B) es causada por inhibición de las reacciones de polimerización que dan lugar a los pigmentos de xantilio identificados, la generación de estos pigmentos se estudió comparativamente en el tiempo en vinos modelo suplementados o libres de L plantarum. Para este objetivo se comprobó la variación de las áreas que representaban los pigmentos de xantilio durante los 42 días de incubación en los cromatogramas de HPLC-DAD registrados a 440 nm. Las áreas totales de los picos 1 -4 se sumaron en una y este valor se examinó durante el periodo de incubación para seguir la formación de pigmentos de xantilio derivados de la catequina (FIG. 5A). El mismo razonamiento se utilizó para seguir la formación de pigmentos de xantilio derivados de la epicatequina, esta vez examinando las áreas totales sumadas de los picos e-f (FIG. 5B). Como se puede observar al comparar la FIG. 5A y 5B, las áreas totales de los pigmentos de xantilio formados a partir de la epicatequina son aproximadamente el doble que la de los formados a partir de la catequina. Se comprobó, mediante el seguimiento en el tiempo de las áreas de catequina y epicatequína, que la epicatequína (FIG. 6B) se perdía 1.26 veces más rápido que la catequina (FIG. 6A), dato que no explica satisfactoriamente el aumento por un factor de 2 de los pigmentos de xantilio derivados de la epicatequína respecto a los de la catequina. Esta discordancia se debe a que los pigmentos de xantilio derivados de la epicatequína presentan un coeficiente de absorción mayor que los de la catequina (Labrouche et al., 2005. J. Agrie. Food Chem., 53: 9993-9998). Las FIG. 6A y 6B, muestran que la presencia de L plantarum RM71 inhibe la degradación oxidativa de la (+)-catequina y (-)-epicatequina. De acuerdo a ello la generación de pigmentos de xantilio derivados de la catequina (FIG. 5A) y de la (-)- epicatequína (FIG. 5B) se inhibió en vinos modelo suplementados con esta bacteria respecto a los vinos modelo control (libres de células). El incremento de las áreas totales de los picos que representan los pigmentos de xantilio derivados de la catequina o de la epicatequína en los vinos modelo suplementados con L plantarum RM71 , fue menor que el de sus respectivos controles y mostraron la misma tendencia que los incrementos en el valor de A42Q nm observados en la FIG. 1A y 1 B. Estos resultados confirman que los pigmentos de xantilio son los responsables del pardeamíento de los vinos modelo y que L plantarum RM71 inhibía su formación. El efecto inhibitorio de L. plantarum fue más pronunciado sobre la generación de pigmentos de xantilio derivados de la (-)-epicatequina que de la (+)-catequina. En la muestras extraídas en el día 28, L plantarum inhibió un 35.2 % la formación de pigmentos de xantilio derivados de la (-)-epicatequina y un 14.1 % los de la (+)-catequína comparado con sus respectivos controles.
La capacidad de L. plantarum para prevenir la formación de ambos tipos de pigmentos de xantilio podría ser de utilidad independientemente de la condiciones estacionales, tipo de uva y prácticas en la fabricación del vino las cuales se han demostrado que puede influenciar el contenido de catequina y de epicatequína en el vino (Simpson, 1982. Vitis, 21 : 233-239). Las sales de xantilio derivadas de flavanoles son pigmentos que i) ocurren en vinos blancos y tintos (Es-Safi et al., 2000. J. Agrie. Food Chem., 48: 4233-4240) y ii) pueden actuar como especies transitorias en la formación de compuestos quinoidales coloreados que contribuyen al cambio de color en alimentos derivados de la uva (Es-Safi et al., 1999. Tetrahedron Lett., 40: 5869-5872. En vista de ello, la inhibición preventiva de las rutas que dan lugar a los pigmentos de xantilio contribuye a la inhibición de los procesos de pardeamiento asociados a estos pigmentos.
La capacidad de otras bacterias lácticas presentes en el vino como Lactobacillus brevis, Lactobacillus malí y Leuconostoc mesenteroides fue examinada en los mismos vinos modelo que los usados para L plantarum. Con el objeto de acelerar aún más el pardeamiento los vinos se suplementaron con una cantidad más alta de sulfato ferroso (20 mg/l en lugar de 10 mg/l) y fueron incubadas a 30e C en lugar de a 25ς C durante un periodo de 20 días en lugar de 42 días. Los vinos se inocularon con una biomasa liofilízada de la bacteria láctica a examinar correspondiente a 2 x 108 células ml. Los resultados se muestran en la FIG. 7. El porcentaje de inhibición del pardeamiento proporcionado por Lactobacillus brevis, Lactobacillus mali y Leuconostoc mesenteroides respecto de los vinos control libres de células es, respectivamente, del 15.3, 10.7 y 16.8 % en los vinos modelo que contienen (+)- catequína y del 5.2, 3.3 y 8.6 % en los vinos modelo que contienen (-)- epicatequina.
MATERIALES Y METODOS.
1. Cepa y medio de cultivo.
La cepa Lactobacillus plantarum RM71 utilizada en este estudio fue aislada originalmente de vino en el Instituto de Fermentaciones Industriales (CSIC) (Moreno-Arribas et al., 2003. Int. J. Food Microb, 84: 1 17-123). Lactobacillus plantarum RM71 se creció rutinariamente en el medio MRS (19) a 30s C. 2. Preparación de vinos modelo para la simulación del pardeamiento.
Dos vinos modelo conteniendo 400 mg/L de (+)-catequina o de (-)-epicatequina se prepararon en un medio similar al vino que contenía 5 g/l de ácido tartárico, 0.6 g/L de ácido acético, 1.75 g/l de ácido málico en de etanol al 12 %. Los vinos modelo fueron ajustados a un pH de 3.5 con NaOH. Se añadió sulfato ferroso a los vinos modelo como catalizador de la reacción de oxidación hasta llegar a una concentración final de 10 mg/l. Colonias de Lactobacillus plantarum RM71 crecidas en placas de medio MRS fueron inoculadas en caldo de medio MRS e incubadas 24 horas a 30 9 C. Diez mililitros de células ya crecidas se centrifugaron y lavaron tres veces con agua destilada para después ser almacenadas a -40 qC. La biomasa fue liofilizada y almacenada bajo gas argón a temperatura ambiente. Los vinos modelo fueron inoculados con una cantidad de biomasa liofilizada equivalente a 2 x 109 unidades formadoras de colonias (ufc)/ml. Los vinos modelo que contenían bien (+)- catequina o (-)-epicatequina y sus respectivos controles no inoculados fueron incubados sin agitación y en oscuridad a 25° C en un incubador BioRad. Durante 42 días se tomaron muestras periódicamente y se filtraron (filtros con tamaño de poro de 0.45 μιη, Millipore) para posteriores determinaciones analíticas y espectrofotométricas. Los experimentos se llevaron a cabo por triplicado.
3. Métodos analíticos.
3.1. Medidas espectrofotométricas.
Las medidas de la absorbancia a 420 nm que mostraban las soluciones vínicas modelo se llevaron a cabo en un espectrofotómetro modelo Shimadzu UV-Visible 1601 utilizando cubetas de 10 mm de paso. 3.2 Análisis HPLC-DAD.
Para el análisis por HPLC-DAD, la (+)-catequina, la (-)-epicatequina y sus productos de degradación fueron extraídos dos veces a partir de alícuotas filtradas con un tercio del volumen de reacción de etil acetato. El análisis se llevó a cabo como se ha descrito previamente (Rodríguez et al., 2008. Food Chem., 107: 1393- 1398) en un sistema cromatográfico Thermo {Thermo Electron Corporation, Waltham, Massachussets, USA) equipado con una bomba P400 SpectraSystem, un autosampler AS3000, y un detector UV6000LP. Un gradiente de solvente A (agua/ácido acético, 98:2, v/v) y solvente B (agua/acetonitrilo/ácido acético, 78:20:2, v/v/v) se aplicó a un cartucho de fase reversa Nova-pack Ci8 (25 cm x 4.0 mm i.d.; 4.6 μιη tamaño de partícula) a temperatura ambiente. El programa de elución fue el siguiente: 0-55 min, 80% B lineal, 1.1 ml/min; 55-57 min, 90 % B lineal; 1.2 ml/min; 57-70 min, 90 % B ¡socrático, 1.2 ml/min; 70-80 min, 95% B lineal, 1.2 ml/min; 80-90 min, 100% lineal, 1.2 ml/min; 100-120 min, lavado a 1.0 ml/min. La detección fue llevada a cabo por barrido desde 220 a 380 nm. Las muestras fueron inyectadas por duplicado en el cartucho después de ser filtradas a través de un filtro de PVDF (0.45 μιτι). Los cromatogramas se generaron a 280 nm para la cuantificación y a 440 nm para seguir la formación de pigmentos resultantes de los flavanoles durante la oxidación de los vinos modelo.
3.3. Análisis HPLC DAD/ESI-MS.
Las medidas de masa (MS) se llevaron a cabo en un sistema cromatográfico Hewlett-Packard series 1 100 (Palo Alto, CA) equipado con un detector (DAD) y un espectrómetro de masas cuádruple (Hewlett-Packard series 1 100 MSD) con un interfaz electrospray. Las separaciones cromatográficas se llevaron a cabo con la misma columna y condiciones de solvente usadas en los experimentos de LC- DAD. La detección con DAD se llevó a cabo desde 210 a 500 nm, con un flujo de 0.7 ml/min. Para la masa (MS) se utilizó nitrógeno como gas secante y nebulizante, y los parámetros iónicos fueron: presión de nebulización, 55 psi; gas secante, 11 l/min; y temperatura de secado, 350 ^C. El voltaje capilar fue de - 4 kV. Se usó un orificio de voltaje a -90 V en los experimentos de investigación de los productos de fragmentación. Los espectros fueron adquiridos en el modo de ión negativo en un rango de 100 a 1 ,500 m/z.

Claims

REIVINDICACIONES
1 . Uso de al menos una bactena láctica de grado GRAS para conservar mayor cantidad de flavanoles en al menos un producto alimenticio, con respecto a un control.
2. Uso según la reivindicación 1 , donde la bacteria láctica es una bacteria del género Lactobacillus.
3. Uso según la reivindicación 2, donde la bacteria láctica se selecciona de la lista que comprende Lactobacillus plantarum, Lactobacillus brevis y Lactobacillus malí.
4. Uso según la reivindicación 1 , donde la bacteria láctica es una bacteria del género Leuconostoc.
5. Uso según la reivindicación 4, donde la bacteria láctica es Leuconostoc mesenteroides,
6. Uso según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, donde los flavanoles son catequina y/o epícatequína.
7. Uso según la reivindicación 6, donde los flavanoles son (+)-catequina y/o (-)-epicatequina.
8. Uso según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7, donde el producto alimenticio comprende al menos un producto de origen vegetal.
9. Uso según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 8, donde el producto alimenticio es vino.
10. Uso según la reivindicación 9, donde el vino es tinto o blanco.
1 1 . Uso según cualquiera de las reivindicaciones 9 ó 10, donde el vino es ecológico.
12. Uso según cualquiera de las reivindicaciones 9 a 1 1 , donde la bacteria láctica se añade al vino en cualquier momento de la elaboración del mismo.
13. Uso según la reivindicación 12, donde la bacteria láctica del género LactobacHIus se añade cuando el vino tiene al menos un 9 % de contenido alcohólico.
14. Uso según cualquiera de las reivindicaciones 9 a 12, donde además dicha bacteria láctica se usa para disminuir el pardeamiento de dicho vino, con respecto a un control.
15. Uso según la reivindicación 14, donde dicho vino es blanco.
PCT/ES2011/070357 2010-06-02 2011-05-18 Uso de bacterias lácticas para conservar los flavanoles de un producto alimenticio y prevenir el pardeamiento del vino WO2011151494A1 (es)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ES201030846A ES2370839B1 (es) 2010-06-02 2010-06-02 Uso de bacterias lácticas para conservar los flavanoles de un producto alimenticio y prevenir el pardeamiento del vino.
ESP201030846 2010-06-02

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2011151494A1 true WO2011151494A1 (es) 2011-12-08

Family

ID=45066220

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/ES2011/070357 WO2011151494A1 (es) 2010-06-02 2011-05-18 Uso de bacterias lácticas para conservar los flavanoles de un producto alimenticio y prevenir el pardeamiento del vino

Country Status (2)

Country Link
ES (1) ES2370839B1 (es)
WO (1) WO2011151494A1 (es)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US9277763B2 (en) 2013-06-27 2016-03-08 Starbucks Corporation Biopreservation methods for beverages and other foods
IT202100011609A1 (it) * 2021-05-06 2022-11-06 Perfetti Van Melle Spa Prodotto di confetteria

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ES2430788B1 (es) * 2012-04-20 2014-09-09 Consejo Superior De Investigaciones Científicas (Csic) Cepa y composición de pediococcus damnosus, usos y método para la realización de la fermentación maloláctica

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ES2157155B1 (es) * 1999-03-31 2002-02-16 Consejo Superior Investigacion Microorganismo de la especie lactobacillus casei cepa ly 6 y su uso.

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ES2157155B1 (es) * 1999-03-31 2002-02-16 Consejo Superior Investigacion Microorganismo de la especie lactobacillus casei cepa ly 6 y su uso.

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
FLANZY, C., ENOLOGIA: FUNDAMENTOS CIENTIFICOS AND TECNOLOGICOS., 2003, EDICION. MADRID. EDICIONES AMV AND MUNDI-PRENSA, pages 323 - 345 *
LOPEZ-TOLEDANO A. ET AL.: "Yeast-Induced Inhibition of (+) Catechin and (-) Epicatechin degradation in model solutions", JOURNAL OF AGRICULTURAL AND FOOD CHEMISTRY, vol. 50, 2002, pages 1631 - 1635 *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US9277763B2 (en) 2013-06-27 2016-03-08 Starbucks Corporation Biopreservation methods for beverages and other foods
IT202100011609A1 (it) * 2021-05-06 2022-11-06 Perfetti Van Melle Spa Prodotto di confetteria
WO2022234464A1 (en) * 2021-05-06 2022-11-10 Perfetti Van Melle S.P.A. Confectionery product

Also Published As

Publication number Publication date
ES2370839B1 (es) 2012-12-20
ES2370839A1 (es) 2011-12-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Velićanski et al. Antioxidant and antibacterial activity of the beverage obtained by fermentation of sweetened lemon balm (Melissa offi cinalis L.) tea with symbiotic consortium of bacteria and yeasts
Gramza-Michałowska et al. Research on the effect of culture time on the kombucha tea beverage? s antiradical capacity and sensory value
Wu et al. Antioxidant properties of Lactobacillus-fermented and non-fermented Graptopetalum paraguayense E. Walther at different stages of maturity
Vasilaki et al. A natural approach in food preservation: Propolis extract as sorbate alternative in non-carbonated beverage
Minnaar et al. Schizosaccharomyces pombe and Saccharomyces cerevisiae yeasts in sequential fermentations: Effect on phenolic acids of fermented Kei-apple (Dovyalis caffra L.) juice
Bortolomedi et al. Bioactive compounds in kombucha: A review of substrate effect and fermentation conditions
Puupponen-Pimiä et al. Enzyme-assisted processing increases antimicrobial and antioxidant activity of bilberry
ÖZYURT Changes in the content of total polyphenols and the antioxidant activity of different beverages obtained by Kombucha ‘tea fungus’
JP2008150336A (ja) 薔薇抗酸化物質
Alañón et al. Antimicrobial and antioxidant activity of pressurized liquid extracts from oenological woods
ES2370839B1 (es) Uso de bacterias lácticas para conservar los flavanoles de un producto alimenticio y prevenir el pardeamiento del vino.
Liu et al. Functional properties and sensory characteristics of kombucha analogs prepared with alternative materials
KR20150070933A (ko) 항산화 효능이 있는 오디 유산균 발효물의 제조방법
KR101962570B1 (ko) 유산균을 이용한 항산화 기능성이 향상된 아로니아 발효음료 조성물 및 그 제조방법
Butkhup et al. Phenolic constituents of extract from Mao Luang seeds and skin–pulp residue and its antiradical and antimicrobial capacities
WO2014013122A1 (es) Extracto polifenólico a partir de residuos de uva blanca
KR20230145977A (ko) 저장성 향상을 위한 김치용 선도 유지 조성물
KR101422247B1 (ko) 오미자와 벌꿀을 이용한 기능성 및 관능성이 강화된 멜로멜 제조 방법 및 이로부터 제조되는 오미자 멜로멜
Curiel et al. pH and dose-dependent effects of quercetin on the fermentation capacity of Lactobacillus plantarum
KR102247549B1 (ko) 붉가시나무 도토리 추출물을 유효성분으로 포함하는 항산화 및 항균용 조성물
KR101448138B1 (ko) 발효 뽕잎과 한약재의 혼합물의 추출액을 포함하는 음료
KR101754184B1 (ko) 기능성이 우수한 블루베리 발효액의 제조방법 및 상기 방법으로 제조된 블루베리 발효액
Kadam et al. Fermentation and characterization of wine from dried Ficus carica (L) using Saccharomyces cerevisiae NCIM 3282
KR20170085830A (ko) 유산균을 이용한 항산화 기능성이 향상된 아로니아 발효음료 조성물 및 그 제조방법
KR102464052B1 (ko) 진세노사이드 F2, Rg3, Rd2 및 컴파운드 케이, 클로로제닉산, 쿠마린산, 카테킨 및 쿼르세틴이 증진된 새싹삼 복합발효 조성물 및 그 제조방법

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 11789300

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

122 Ep: pct application non-entry in european phase

Ref document number: 11789300

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1