WO2011105394A1 - 制御性樹状細胞の作製方法 - Google Patents

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dendritic cells
regulatory
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健一郎 山下
晋 柴崎
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    • C12N2506/115—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells from blood or immune system cells from monocytes, from macrophages

Definitions

  • the present invention is a control used for the prevention and treatment of diseases such as transplant rejection, graft-versus-host disease, autoimmune diseases, allergic diseases, chronic inflammatory diseases and sepsis caused by abnormal and excessive responses of the immune system.
  • the present invention relates to a method for producing a dendritic cell. More particularly, the present invention relates to [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivatives, particularly (S)-(+)-1- (5-hydroxy-1,5-dimethylhexyl). ) Method for producing regulatory dendritic cells using 3- [7- (4-methoxyphenyl)-[1,2,4] triazole [1,5- ⁇ ] pyrimidin-2-yl] urea (NK026680) About.
  • this invention relates to the pharmaceutical composition or pharmaceutical kit containing the regulatory dendritic cell produced by the said method, and the said regulatory dendritic cell.
  • the invention further relates to the use of [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivatives for the production of regulatory dendritic cells.
  • Dendritic cells are antigen-presenting cells having dendrites and are widely present as immature dendritic cells in peripheral non-lymphoid tissues and lymphoid tissues. In inflammatory tissues that are invaded by foreign antigens such as microorganisms, viruses, and foreign substances, these antigens are phagocytosed to differentiate into mature dendritic cells and transferred to the secondary lymphoid tissue.
  • mature dendritic cells give antigen stimulation and costimulation to naive T cells, induce differentiation into antigen-specific effector T cells, and induce an immune response.
  • dendritic cells are powerful antigen-presenting cells that connect innate and acquired immunity.
  • dendritic cells in which the expression of costimulatory molecules is decreased even in an inflammatory environment, and these dendritic cells suppress T cells in a suppressive manner and induce immune tolerance against self tissues and the like. It has been suggested. Such dendritic cells are called regulatory dendritic cells. Immune cell therapy using regulatory dendritic cells showed therapeutic effects by inducing antigen-specific unresponsive T cells and regulatory T cells in graft versus host disease, autoimmune disease, and allergic disease models in mice ( Non-patent documents 1, 2, and 3). Furthermore, in a mouse sepsis model, regulatory dendritic cells inhibited the production of inflammatory cytokines through the production of IL-10 and showed a life-prolonging effect (Non-patent Document 4).
  • Patent Document 1 discloses a method for inducing human immunoregulatory dendritic cells by culturing human dendritic cells or their progenitor cells in vitro with cytokines containing at least IL-10 and TGF- ⁇ , and obtained by the method. Human immunoregulatory dendritic cells have been described. Patent Document 2 attempts to use regulatory dendritic cells as a promoter for IL-10 production and to systemic inflammatory response syndrome.
  • Non-Patent Document 1 cytokines and the like containing IL-10 and TGF- ⁇ are used for the production of regulatory dendritic cells reported to date. Since it is produced from genetically modified organisms such as Escherichia coli, there are problems of production cost and safety that prevent mass preparation.
  • [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivatives are substances that inhibit the function of dendritic cells and have an inhibitory effect on mouse delayed-type hypersensitivity reactions.
  • Patent Document 4 one of its derivatives is (S)-(+)-1- (5-hydroxy-1,5-dimethylhexyl) -3- [7- (4-methoxyphenyl)-[1,2,4] triazolo.
  • NK026680 When dendritic cells are cultured in the presence of [1,5- ⁇ ] pyrimidin-2-yl] urea (hereinafter referred to as “NK026680”), the expression of costimulatory molecules decreases, and NK026680 is a graft versus host disease model. And an effect on an autoimmune vasculitis model (Non-patent Documents 5 and 6).
  • the present invention has an object to be solved to establish a method capable of safely and easily producing a large amount of regulatory dendritic cells. Furthermore, this invention makes it the problem which should be solved to provide a control dendritic cell useful for the prevention and treatment of the immune system disease which maintains a patient's QOL.
  • the present inventors have cultured cells that can be induced into regulatory dendritic cells in the presence of [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivatives. As a result, it was found that regulatory dendritic cells can be produced, and the present invention has been completed.
  • a method for producing regulatory dendritic cells comprising culturing cells inducible into regulatory dendritic cells in the presence of a [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivative.
  • the [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivative is converted to (S)-(+)-1- (5-hydroxy-1,5-dimethylhexyl) -3- [7-
  • the method for producing a regulatory dendritic cell according to (1) which is (4-methoxyphenyl)-[1,2,4] triazolo [1,5- ⁇ ] pyrimidin-2-yl] urea.
  • a method for producing dendritic cells. The method for producing a regulatory dendritic cell according to any one of (1) to (5), comprising culturing the cell in the presence of GM-CSF and IL-4. (7) The method for producing a regulatory dendritic cell according to any one of (1) to (6), comprising culturing the cell in the presence of TNF- ⁇ and / or LPS.
  • Regulatory dendritic cells produced by the production method according to any one of (1) to (7).
  • (9) Compared to cells obtained by culturing cells inducible to regulatory dendritic cells in the absence of [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivatives, CD40, The regulatory dendritic cell according to (8), wherein the expression level of CD80 and CD86 is low.
  • (10) Compared with cells obtained by culturing cells inducible to regulatory dendritic cells in the absence of [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivatives, IL- The regulatory dendritic cell according to (8) or (9), wherein the production amount of 6 and IL-12p40 is low.
  • the regulatory dendritic cell according to any one of (8) to (10), which has a low ability of inducing T cell activation to an antigen.
  • a pharmaceutical composition or a pharmaceutical kit comprising the regulatory dendritic cell according to any one of (8) to (11). (13) used for the prevention and / or treatment of transplant rejection, graft-versus-host disease, autoimmune disease, allergic disease, chronic inflammatory disease and sepsis caused by abnormal and excessive responses of the immune system ( The pharmaceutical composition or pharmaceutical kit according to 12).
  • a control dendritic cell induction reagent comprising a [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivative.
  • the [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivative is converted to (S)-(+)-1- (5-hydroxy-1,5-dimethylhexyl) -3- [7-
  • the control dendritic cell induction reagent according to (16) which is (4-methoxyphenyl)-[1,2,4] triazolo [1,5- ⁇ ] pyrimidin-2-yl] urea.
  • the [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivative is useful for inducing regulatory dendritic cells from mononuclear cells contained in peripheral blood cells, bone marrow cells, etc. in vitro. is there.
  • the [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivative is a low-molecular compound that has low production costs and can ensure mass production and safety.
  • a large amount of regulatory dendritic cells can be prepared at low cost without using expensive and unstable recombinant cytokines.
  • the drug used for production does not remain in the regulatory dendritic cells of the present invention, bone marrow suppression, organ transplantation, autoimmune disease, allergy without causing side effects caused by the drug used for production It is very effective in the prevention and treatment of diseases caused by abnormalities and excessive responses of immune systems such as diseases and shocks.
  • FIG. 1 shows the 3H-TdR uptake of regulatory dendritic cells (NK-DC), untreated dendritic cells (CTR-DC) and immature dendritic cells (unstim-DC) of the present invention.
  • Black circles indicate NK-DC
  • white circles indicate CTR-DC
  • x indicates unstim-DC.
  • FIG. 2 shows C3He / J mice transplanted with C57He / 6 mice transplanted with C3He / J mice into which regulatory dendritic cells (NK-DC) and untreated dendritic cells (CTR-DC) were transferred, respectively.
  • the survival rate of J mice is shown.
  • a solid line indicates NK-DC, and a dotted line indicates CTR-DC.
  • regulatory dendritic cells for example, dendritic cells or progenitor cells thereof
  • regulatory dendritic cells can be generated by treatment with cytokines and / or inflammatory stimulators.
  • cytokines and / or inflammatory stimulators e.g., IL-4, [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivatives
  • cytokines and / or inflammatory stimulators e.g., TNF- ⁇ , LPS, etc.
  • the order of stimulation of these cytokines and / or inflammatory stimuli and [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivatives is not particularly limited, and the order of stimulation is performed in any order.
  • regulatory dendritic cells can be prepared.
  • monocytes are cultured in vitro in the presence of GM-CSF and IL-4 to differentiate monocytes into dendritic cells, and the resulting dendritic cells are [1,2,4] triazolo [1 , 5-a] pyrimidine derivatives can induce regulatory dendritic cells.
  • monocytes may be first stimulated with GM-CSF and IL-4 to differentiate into dendritic cells and then stimulated with [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivatives.
  • GM-CSF, IL-4, [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivatives may be stimulated simultaneously.
  • [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivatives and cytokines for example, IL-10 and TGF- ⁇
  • mature regulatory dendritic cells can be obtained by applying inflammatory stimuli such as TNF- ⁇ and LPS.
  • cytokines include those having an action of inducing differentiation of dendritic cells such as GM-CSF, IL-4, IL-10, and TGF- ⁇ .
  • inflammatory stimulating substances include lipopolysaccharides typified by LPS and cytokines that give inflammatory stimuli such as TNF- ⁇ .
  • Dendritic cells can be obtained by culturing monocytes in the presence of GM-CSF and / or IL-4 as described above.
  • the monocytes at this time may be derived from peripheral blood, bone marrow, spleen cells, or umbilical cord blood.
  • dendritic cells from these tissues and organs can be isolated by using a cell sorter or the like as an indicator of expression of dendritic cell-specific surface antigens such as CD1a. Isolation of a specific cell population using a cell sorter may be performed by a known method.
  • the monocytes for obtaining the regulatory dendritic cells of the present invention may be derived from mammals, such as primates, rodents, carnivores, cloven-hoofers, and territorials, such as humans, monkeys, mice, rats, Examples include rabbits, cats, cows, dogs, horses, goats and the like, most preferably humans. Among the above, preferably, it is derived from the same species as the animal to be prevented or treated for diseases by the regulatory dendritic cells of the present invention.
  • Monocytes and dendritic cells can be cultured by well-known lymphatic cell culture techniques.
  • As the culture solution for example, RPMI1640 or DMEM can be used, and an appropriate antibiotic or animal serum may be added to these basic media and cultured.
  • the culture vessel is not limited, and commercially available plates, dishes, and flasks can be appropriately selected and used depending on the culture scale.
  • [1,2,4] Triazolo [1,5-a] pyrimidine derivatives used in the present invention are specifically compounds described in JP-A-2005-154335 and International Publication No. 2004/108729. It is. That is, the [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivative used in the present invention is preferably a compound represented by the following general formula (1) or a pharmaceutically acceptable salt thereof. .
  • Ar represents an optionally substituted aromatic hydrocarbon group or an aromatic heterocyclic group containing 1 to 4 heteroatoms
  • X represents O, S, NH, N— CH 3 or N—CN
  • Y represents a phenyl group or RNH group which may have a substituent
  • R represents a hydrogen atom, a cyano group or a linear or branched chain which may have a substituent Or 1 to 4 heteroatoms independently selected from a cyclic alkyl group, an optionally substituted aromatic hydrocarbon group, or an optionally substituted N, O and S
  • the phenyl group or the aromatic heterocyclic group is a halogeno group, a hydroxyl group, a cyano group, a nitro group, a (C1-C6) alkyl
  • X may be O
  • R may be a halogeno group, a hydroxyl group, a (C1 to C6) alkyl group, (C1 -C6) alkoxyl group, (C1-C7) phenyl optionally substituted with 1 to 3 different or identical groups selected from the substituent group consisting of acyloxy group, trifluoromethyl group and trifluoromethoxy group Group or general formula (2)
  • R1 represents a hydrogen atom or a (C1-C6) alkyl group
  • R2 represents a hydrogen atom or a methyl group
  • R3 represents a hydrogen atom
  • a phenyl group (the phenyl group is a halogeno group, a hydroxyl group, (C1-C6 )
  • An alkyl group and (C1-C6) which may be substituted with one group selected from the group consisting of alkoxyl groups) or (C1-C10) alkyl groups (the alkyl group is a halogeno group, a hydroxyl group, (C1 To C6) an alkoxyl group, (C1 to C7) optionally substituted by the same or different 1 or 2 groups selected from the group consisting of an acyloxy group and a trifluoromethyl group ⁇ 2,4] triazolo [1, 5-a] pyrimidin-2-ylurea derivative, or a pharmaceutically acceptable salt thereof.
  • [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivative used in the present invention include the following compounds, but are not limited thereto.
  • the most preferred specific example of the [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivative used in the present invention is (S)-(+)-1- (5-hydroxy-1,5-dimethylhexyl). -3- [7- (4-methoxyphenyl)-[1,2,4] triazolo [1,5- ⁇ ] pyrimidin-2-yl] urea.
  • the concentration of the [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivative used for the culture is 1 ng / mL to 5000 ng / mL, preferably 10 ng / mL to 500 ng / mL.
  • the concentrations of GM-CSF, IL-4, IL-10, TGF- ⁇ , TNF- ⁇ , and LPS are 1 ng / mL to 1000 ng / mL, preferably 10 ng / mL to 100 ng / mL.
  • the number of culture days required for stimulation is not limited.
  • monocytes can be combined with [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivatives, cytokines and / or inflammatory stimuli for several to 10 days. What is necessary is just to culture
  • the culture period during which cells with the desired degree of differentiation can be obtained can be determined as appropriate.
  • Conditions such as the concentration of [1,2,4] triazolo [1,5-a] pyrimidine derivative, cytokines and / or inflammatory stimuli used for stimulation, and the duration of stimulation are the antigen unresponsiveness of foreign CD4-positive T cells.
  • the dendritic cell phenotype can be determined as indicators.
  • the regulatory dendritic cell of the present invention is stimulated with an antigen related to the disease to be treated.
  • an antigen if it is an autoimmune disease or an allergic disease, an antigen protein or peptide present in a tissue / organ associated with the disease, or RNA, DNA, or a variant thereof encoding the same is used.
  • dendritic cells endogenously express foreign antigens and do not need to be reapplied.
  • donor- or recipient-derived antigens may be used. It is possible.
  • the regulatory dendritic cells of the present invention may be cultured together with the antigen in vitro.
  • the period is from 10 days to 1 day including the last day of culture.
  • 1 ng / ml to 10 mg / ml, preferably 10 ng / ml Apply in vitro at a concentration of 5 mg / ml.
  • the antigen is usually given simultaneously with or before the inflammatory stimulus.
  • the regulatory dendritic cells of the present invention can be used for therapeutic and prophylactic agents for immune diseases caused by immune abnormalities.
  • immune diseases include transplant rejection, autoimmune diseases, allergic diseases, inflammatory diseases, sepsis, shock and the like.
  • transplant rejection examples include acute rejection in transplant, graft-versus-host disease, and chronic rejection.
  • the regulatory dendritic cells of the present invention can be used for induction of immune tolerance, in addition to treatment and prevention of transplant rejection.
  • the transplanted organ can be any organ such as bone marrow, kidney, liver, heart and pancreas.
  • the relationship between donor hosts is possible in any case such as transplantation between different species, transplantation between different strains, transplantation between blood incompatibility and the like.
  • the regulatory dendritic cells of the present invention are immunosuppressive for organ transplantation such as bone marrow transplantation, peripheral blood stem cell transplantation, and cord blood stem cell transplantation used in cancer treatment, autoimmune disease treatment, gene therapy, regenerative medicine and the like. It can also be used for the purpose of long-term engraftment of transplanted organs.
  • Rheumatoid arthritis multiple sclerosis, systemic lupus erythematosus, Sjogren's syndrome, Crohn's disease, ulcerative colitis, idiopathic thrombocytopenia, aplastic anemia, autoimmune hepatitis, letters Trans-autoimmune myocarditis, idiopathic thrombocytopenia purpura, Behcet's disease, autoimmune gastritis, insulin-dependent diabetes mellitus, myasthenia gravis, polymyositis, scleroderma, mixed connective tissue disease, ankylosing spine Inflammation, chronic thyroiditis, pemphigus, Guillain-Barre syndrome, HTLV-1-related myelopathy and the like.
  • Inflammatory diseases include polyarteritis, sarcoidosis, glomerulonephritis, nephrotic syndrome, refractory vasculitis, Wegener's syndrome and the like.
  • the dose of the regulatory dendritic cell of the present invention is appropriately set to a dose at which a desired effect is observed in the administration subject. Specifically, about 0.5 ⁇ 10 5 to 10 9 regulatory dendritic cells of the present invention are administered intravenously, subcutaneously or intradermally (preferably intravenously) to the administration subject (individual). Is done.
  • the medium for administration is not particularly limited as long as it is a medium that does not give side effects to the administration subject and does not impair the function of the regulatory dendritic cells of the present invention, and may be usually used. Examples thereof include culture media such as RPMI 1640 and DMEM, Hank's buffer, phosphate buffered saline (PBS), physiological saline, and glucose solution.
  • the administration target is not particularly limited as long as it is a mammal.
  • it is a human.
  • the timing of administration of preventive or therapeutic agents for various diseases to the administration subject is not particularly limited and can be performed as needed.
  • administration prior to treatment for which onset is expected is preferable.
  • the administration time and dose of human immunoregulatory dendritic cells can be appropriately determined according to the type of disease, the severity of the disease, the condition of the patient, and the like.
  • the present invention also includes a pharmaceutical composition or a pharmaceutical kit containing the regulatory dendritic cells of the present invention.
  • the pharmaceutical composition of the present invention is not particularly limited as long as it contains the regulatory dendritic cell of the present invention.
  • the regulatory dendritic cell of the present invention gives side effects to the administration subject as described above. And those suspended in a medium that does not impair the function of the regulatory dendritic cells of the present invention.
  • the pharmaceutical kit of the present invention refers to a combination of the regulatory dendritic cells of the present invention or the pharmaceutical composition of the present invention and other drugs.
  • the other drugs are not limited as long as they are known for the treatment and prevention of immune diseases caused by abnormal immunity.
  • immune diseases caused by abnormal immunity.
  • Immunomodulators such as Actarit, Robenzalid, methotrexate, leflunomide, tacrolimus, mizoribine, cyclophosphamide, azathioprine, cyclosporine, mycophenolate mofetil, and other immunosuppressants, infliximab, etanercept, adalimumab, tocilizumab, etc.
  • NSAIDs such as mefenamic acid, mefenamic acid, diclofenac sodium, nabumetone, etodolac, loxoprofen sodium, meloxicam, prednisolone, methylprednisolone, methylprednisolone Steroid drugs such as acetate ester, methylprednisolone succinate sodium, dexamethasone, betamethasone, hydrocortisone, zidovudine, lamivudine, abacavir, emtricitabine and other NRTIs, nucleotide reverse transcriptase inhibitors such as tenofovir, NNRTIs such as efavirenz, atazanavir, Examples include protease inhibitors such as amprenavir, lovinavir, ritonavir, darunavir, and integrase inhibitors such as raltegravir.
  • the regulatory dendritic cells of the present invention will be described with reference to some embodiments. However, the present invention is not limited to these examples.
  • C57BL / 6 mouse bone marrow cells were derived from 20 ng / mL GM-CSF (Peprotech, derived: rabbit) and 20 ng / mL IL-4 (Peprotech, derived). : Rabbit) was cultured in 10% FCS-RPMI1640 medium for 7 days to differentiate into dendritic cells, and then 20 ng / mL TNF- ⁇ (Peprotech, derived: rabbit) was added to mature.
  • NK026680 treatment was performed by adding 50 ng / mL on the second and fourth days of culture and 250 ng / mL on the sixth day.
  • C57BL / 6 mice Spleens were removed from C57BL / 6 mice (SLC, male, 10-12 weeks old), and spleen cells were removed from the spleen in RPMI 1640 medium and single using a 26G syringe.
  • C57BL / 6 mouse spleen cells were obtained by cell transformation.
  • C57BL / 6 mouse T cells were isolated and collected from C57BL / 6 mouse spleen cells using nylon wool (R & D systems).
  • C57BL / 6 mouse spleen cell extract C57BL / 6 mouse spleen cells were pulverized with an ultrasonic grinder and frozen at ⁇ 80 ° C. Thereafter, thawing was performed, cell debris was removed by centrifugation (300 g, 5 minutes), and the supernatant was used as an extract.
  • C3He / J mouse bone marrow cells were cultured in 10% FCS-RPMI1640 medium containing 20 ng / mL GM-CSF and 20 ng / mL IL-4 for 7 days. Differentiated into dendritic cells.
  • NK026680 treatment was performed by adding 50 ng / mL on the 2nd and 4th days of culture and 250 ng / mL on the 6th day. On the 6th day, C57BL / 6 mouse spleen cell extract was also added.
  • BALB / c mouse spleen cell extract The spleen is removed from BALB / c mice (SLC, male, 10-12 weeks old), and the spleen cells are removed from the spleen in RPMI1640 medium and made into single cells using a 26G syringe. BALB / c mouse spleen cells were obtained. The spleen cells were shattered with an ultrasonic grinder and frozen at ⁇ 80 ° C. Thereafter, thawed cells were removed by centrifugation (300 g, 5 minutes), and the supernatant was used as an extract.
  • Example 1 BALB / c mouse-derived spleen cell extract was added to bone marrow cell-derived dendritic cells collected from C57BL / 6 mice to present BALB / c antigen.
  • the BALB / c antigen uptake effect was confirmed by measuring the expression of BALB / c major histocompatibility antigen (MHC) I-Ad (antibody: BD pharmingen) by flow cytometry. At this time, the cells were cultured in the presence or absence of NK026680 and then matured with TNF- ⁇ (Peprotech, origin: rabbit). Maturation of dendritic cells was confirmed by analysis of expression of mature dendritic cell markers by flow cytometry).
  • MHC major histocompatibility antigen
  • NK-DC NK026680-treated dendritic cells
  • CTR-DC untreated dendritic cells
  • Example 1 The results of Example 1 are shown in Table 1.
  • MFI which is the binding amount of fluorescently labeled antibodies of CD40, CD80, and CD86
  • the expression levels of CD40, CD80, and CD86 of NK026680-treated dendritic cells (NK-DC) of the present invention are untreated dendritic cells ( Less than CTR-DC).
  • Low expression of costimulatory molecules is a property of regulatory dendritic cells, indicating that NK026680-treated dendritic cells of the present invention are regulatory dendritic cells.
  • Example 2 The results of Example 2 are shown in Table 2.
  • the concentrations of IL-6 and IL-12p40 contained in the culture supernatant of NK026680-treated dendritic cells were lower than that of untreated dendritic cells.
  • Low production of the immune response stimulating cytokines IL-6 and IL-12p40 is a property of regulatory dendritic cells, indicating that the NK026680-treated dendritic cells of the present invention are regulatory dendritic cells.
  • Example 3 In this Example 3, as in Example 1, NK026680 treatment (NK-DC), which is a regulatory dendritic cell of the present invention differentiated and matured from C57BL / 6 mouse bone marrow cells, and untreated dendritic cells (CTR) -DC) was obtained. Further, after differentiation from C57BL / 6 mouse bone marrow cells into dendritic cells, BALB / c antigen was presented in the same manner as in Example 1, but immature dendritic cells that had not been matured by TNF- ⁇ (unstim- DC) was also obtained. After these C57BL / 6 mouse T cells were mixed with these three dendritic cells, the uptake of 3H-TdR (GE healthcare) was measured. The amount of 3H-TdR uptake indicates the ability of T cells to induce activation of dendritic cells against foreign antigens.
  • NK026680 treatment which is a regulatory dendritic cell of the present invention differentiated and matured from C57BL / 6 mouse bone
  • Example 3 The results of Example 3 are shown in FIG. NK-DC was less capable of inducing T cell activation against BALB / c antigen than CTR-DC. Further, the ability of NK-DC to induce T cell activation was equivalent to that of unstim-DC. That is, it was shown that NK-DC has a T cell-inducing activity reduced to the same extent as that of immature dendritic cells even when stimulated with a foreign antigen.
  • Example 4 In Example 4, a C57BL / 6 mouse spleen cell extract was added to dendritic cells derived from C3He / J mouse bone marrow cells to present C57BL / 6 antigen. The C57BL / 6 antigen uptake effect was confirmed by measuring the expression of BALB / c MHC I-Ab (antibody: BD farmingen) by flow cytometry. At this time, the cells were cultured in the presence or absence of NK026680.
  • BALB / c MHC I-Ab antibody: BD farmingen
  • NK026680-treated (NK-DC) and untreated dendritic cells (CTR-DC) were intravenously administered and transferred to C3He / J mice (SLC, male, 10-12 weeks old) (dose number 3 ⁇ 10 6 / animal, medium: phosphate buffered saline (PBS)).
  • PBS phosphate buffered saline
  • Example 4 The results of Example 4 are shown in FIG. In the NK-DC transfer group, the survival rate and the survival period were significantly improved as compared with the CTR-DC transfer group and the No-treat group.
  • the method for producing regulatory dendritic cells according to the present invention a large amount of regulatory dendritic cells can be obtained in a simple manner. Moreover, the regulatory dendritic cells produced by the method for producing regulatory dendritic cells of the present invention are useful for the prevention and treatment of diseases caused by immune abnormalities and excessive responses.

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Abstract

　本発明の目的は、大量の制御性樹状細胞を安全かつ簡易に作製できる方法を確立することである。本発明によれば、制御性樹状細胞に誘導可能な細胞を［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の存在下で培養することを含む、制御性樹状細胞の作製方法が提供される。

Description

制御性樹状細胞の作製方法
　本発明は、免疫系の異常応答及び過剰応答に起因する移植拒絶反応、移植片対宿主病、自己免疫疾患、アレルギー疾患、慢性炎症性疾患及び敗血症などの疾患の予防及び治療に利用される制御性樹状細胞の作製方法に関する。より詳細には、本発明は、［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体、特には（Ｓ）－(＋)－１－（５－ヒドロキシ－１，５－ジメチルヘキシル）－３－［７－（４－メトキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾール［１，５－α］ピリミジン－２－イル］ウレア（ＮＫ０２６６８０）を用いた制御性樹状細胞の作製方法に関する。更に本発明は、上記方法により作製される制御性樹状細胞、並びに上記制御性樹状細胞を含む医薬組成物又は医薬キットに関する。更に本発明は、制御性樹状細胞の作製のための、［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の用途に関する。
　免疫性の異常及び過剰応答に起因する疾患の予防及び治療にはこれまで免疫抑制剤、抗炎症剤及び抗アレルギー剤等の薬剤によるものが主なものであった。薬剤治療は有効ではあるものの、副作用により患者のＱＯＬの低下も問題となっていた。
　これらの薬剤は標的免疫細胞以外の組織にも移行する。この標的外組織で薬物が非特異的作用を示すことにより、副作用が出現する。この副作用により免疫抑制効果を示したにも関わらずやむなく投与を中止せざるを得ない場合が多々あり、また副作用軽減のための医療処置などが行われて患者のＱＯＬが低下することもある。局所投与による副作用の軽減も試みられているが、疾患部位が特定の組織もしくは器官に局在するアトピー性皮膚炎や気管支喘息などに限られる。
　そこで、制御性樹状細胞を用いた前記疾患等の予防及び治療が試みられている。樹状細胞は樹状突起を有する抗原提示細胞であり、末梢非リンパ組織やリンパ組織に未熟樹状細胞として広く存在する。微生物、ウイルス、異物等の外来抗原に侵襲された炎症組織では、これらの抗原を貪食して成熟樹状細胞へと分化し、所属二次リンパ組織に移行する。ここで、成熟樹状細胞はナイーブＴ細胞に抗原刺激と共刺激を与え、抗原特異的エフェクターＴ細胞に分化誘導して免疫応答を惹起する。このように樹状細胞は自然免疫と獲得免疫をつなぐ強力な抗原提示細胞である。
　一方、炎症環境下においても共刺激分子の発現が低下している樹状細胞が存在し、これらの樹状細胞がＴ細胞を抑制的に制御して自己組織等に対する免疫寛容を誘導していることが示唆されている。このような樹状細胞は制御性樹状細胞と呼ばれている。制御性樹状細胞を用いた免疫細胞療法は、マウスにおいて移植片対宿主病、自己免疫疾患、アレルギー疾患モデルにおいて抗原特異的不応答Ｔ細胞や制御性Ｔ細胞の誘導により治療効果を示した（非特許文献１、２及び３）。さらに、マウス敗血症モデルにおいて制御性樹状細胞はＩＬ－１０の産生を介して炎症性サイトカインの産生を阻害して延命効果を示した（非特許文献４）。
　特許文献１にはヒト樹状細胞またはその前駆細胞をｉｎ　ｖｉｔｒｏで少なくともＩＬ－１０およびＴＧＦ－βを含むサイトカイン類と共に培養し、ヒト免疫制御性樹状細胞を誘導する方法および該方法により得られたヒト免疫制御性樹状細胞が記載されている。特許文献２には制御性樹状細胞をＩＬ－１０産生促進剤として使用し、全身性炎症反応症候群に用いることが試みられている。
　これまでに、前記のような制御性樹状細胞を用いた免疫細胞療法の免疫疾患への臨床応用への取り組みが行われてきたが、実際に臨床応用するためには制御性樹状細胞の安全性を含めた大量調製法の確立が必要である。非特許文献１で示されたように、現在まで報告されている制御性樹状細胞の作製にはＩＬ－１０及びＴＧＦ－βを含むサイトカイン類等が使用されているが、これらのサイトカイン類は大腸菌などの遺伝子組み換え体からの製造であることから、大量調製を阻む製造コストや安全性の問題が残されている。
　一方で、［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体（特許文献３及び４）は樹状細胞の機能を阻害する物質であり、マウス遅延型過敏反応に対して抑制作用を示した（特許文献４）。特に、その誘導体の一つである（Ｓ）－(＋)－１－（５－ｈｙｄｒｏｘｙ－１，５－ｄｉｍｅｔｈｙｌｈｅｘｙｌ）－３－［７－（４－ｍｅｔｈｏｘｙｐｈｅｎｙｌ）－［１，２，４］ｔｒｉａｚｏｌｏ［１，５－α］ｐｙｒｉｍｉｄｉｎ－２－ｙｌ］ｕｒｅａ（以下「ＮＫ０２６６８０」という）の存在下、樹状細胞を培養すると共刺激分子の発現が低下し、またＮＫ０２６６８０は、移植片対宿主病モデル及び自己免疫性の血管炎モデルに対して効果を示した（非特許文献５及び６）。
特開２００４－２９８１８１号公報 特開２００６－２９０７６１号公報 特開２００５－１５４３３５号公報 国際公開２００４／１０８７２９号公報
Sato K, Yamashita N, Yamashita N, Baba M, Matsuyama T. Regulatory dendritic cells protect mice from murine acute graft-versus-host disease and leukemia relapse. Immunity 2003; 18(3): 367-379. Sato K, Yamashita N, Baba M, Matsuyama T. Modified myeloid dendritic cells act as regulatory dendritic cells to induce anergic and regulatory T cells. Blood 2003; 101(9): 3581-3589. Fujita S, Yamashita N, Ishii Y, Sato Y, Sato K, Eizumi K, Fukaya T, Nozawa R, Takamoto Y, Yamashita N, Taniguchi M, Sato K. Regulatory dendritic cells protect against allergic airway inflammation in a murine athmatic model. J Allergy Clin Immunol 2008; 121(1): 95-104. Fujita S, Seino K, Sato K, Sato Y, Eizumi K, Yamashita N, Taniguchi M, Sato K. Regulatory dendritic cells act as regulators of acute lethal systemic inflammatory response. Blood 2006; 107(9): 3656-3664. Saiga K, Toyoda E, Tokunaka K, Masuda A, Matsumoto S, Mashiba H, Kuramochi H, Nemoto K, Abe F, Kawagishi N, Furukawa H, Ono M. NK026680, a novel compound suppressive of dendritic cell function, ameliorates mortality in acute lethal graft-versus-host reaction in mice. Bone Marrow Transplant 2006; 37(3): 317-323. Saiga K, Yoshida M, Nakamura I, Toyoda E, Tokunaka K, Morohashi H, Abe F, Nemoto K, Nose M. Evaluation of the ameliorative effects of immunosuppressants on crescentic glomerulonephritis in SCG/Kj mice. Int Immunopharmacol 2008; 8(9): 1183-1189.
　本発明は、大量の制御性樹状細胞を安全かつ簡易に作製できる方法を確立することを解決すべき課題とする。更に本発明は、患者のＱＯＬを維持する免疫系疾患の予防及び治療に有用な制御性樹状細胞を提供することを解決すべき課題とする。
　本発明者らは上記課題を解決するために鋭意検討した結果、制御性樹状細胞に誘導可能な細胞を［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の存在下で培養することによって制御性樹状細胞を作製できることを見出し、本発明を完成するに至った。
　即ち、本発明によれば以下の発明が提供される。
（１）　制御性樹状細胞に誘導可能な細胞を［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の存在下で培養することを含む、制御性樹状細胞の作製方法。
（２）　［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体が、（Ｓ）－(＋)－１－（５－ヒドロキシ－１，５－ジメチルヘキシル）－３－［７－（４－メトキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－α］ピリミジン－２－イル］ウレアである、（１）に記載の制御性樹状細胞の作製方法。
（３）　制御性樹状細胞に誘導可能な細胞が、樹状細胞又はその前駆細胞である、（１）又は（２）に記載の制御性樹状細胞の作製方法。
（４）　樹状細胞の前駆細胞が、単球である、（３）に記載の制御性樹状細胞の作製方法。
（５）　制御性樹状細胞に誘導可能な細胞が、末梢血、骨髄、脾臓、又は臍帯血に由来する細胞である、（１）から（４）の何れか１項に記載の制御性樹状細胞の作製方法。
（６）　細胞をＧＭ－ＣＳＦ及びＩＬ－４の存在下で培養することを含む、（１）から（５）の何れか１項に記載の制御性樹状細胞の作製方法。
（７）　細胞をＴＮＦ-α及び／またはＬＰＳの存在下で培養することを含む、（１）から（６）のいずれか１項に記載の制御性樹状細胞の作製方法。
（８）　（１）から（７）の何れか１項に記載の作製方法で作製された制御性樹状細胞。
（９）　制御性樹状細胞に誘導可能な細胞を［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の非存在下で培養することにより得られる細胞と比較して、ＣＤ４０、ＣＤ８０及びＣＤ８６の発現量が低い、（８）に記載の制御性樹状細胞。
（１０）　制御性樹状細胞に誘導可能な細胞を［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の非存在下で培養することにより得られる細胞と比較して、ＩＬ－６及びＩＬ－１２ｐ４０の産生量が低い、（８）又は（９）に記載の制御性樹状細胞。
（１１）　制御性樹状細胞に誘導可能な細胞を［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の非存在下で培養することにより得られる細胞と比較して、異系抗原に対するＴ細胞の活性化誘導能が低い、（８）から（１０）の何れか１項に記載の制御性樹状細胞。
（１２）　（８）から（１１）の何れか１項に記載の制御性樹状細胞を含む医薬組成物又は医薬キット。
（１３）　免疫系の異常応答及び過剰応答に起因する移植拒絶反応、移植片対宿主病、自己免疫疾患、アレルギー疾患、慢性炎症性疾患及び敗血症の予防及び／又は治療のために使用する、（１２）に記載の医薬組成物又は医薬キット。
（１４）　制御性樹状細胞の作製のための、［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の使用。
（１５）　［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体が、（Ｓ）－(＋)－１－（５－ヒドロキシ－１，５－ジメチルヘキシル）－３－［７－（４－メトキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－α］ピリミジン－２－イル］ウレアである、（１４）に記載の使用。
（１６）　［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体を含む、制御性樹状細胞誘導試薬。
（１７）　［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体が、（Ｓ）－(＋)－１－（５－ヒドロキシ－１，５－ジメチルヘキシル）－３－［７－（４－メトキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－α］ピリミジン－２－イル］ウレアである、（１６）に記載の制御性樹状細胞誘導試薬。
　本発明において［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体は、生体外で末梢血細胞、骨髄細胞などに含まれる単核球から制御性樹状細胞を誘導するのに有用である。［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体は、製造コストが低く大量生産と安全性を確保できる低分子化合物である。［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体を制御性樹状細胞の作製に用いることにより、大量の制御性樹状細胞を安全かつ簡易に得ることができる。本発明では、高価で物性が不安定な遺伝子組み換えサイトカイン類を用いることなく低コストで大量の制御性樹状細胞を調製することができる。また、本発明の制御性樹状細胞には製造に用いた薬剤が残留することがないため、製造に用いた薬剤に起因する副作用を生じることなく、骨髄抑制、臓器移植、自己免疫疾患、アレルギー疾患及びショック等の免疫系の異常及び過剰応答に起因する疾患の予防及び治療に非常に有効である。
図１は、本発明制御性の樹状細胞（ＮＫ－ＤＣ）、未処理樹状細胞（ＣＴＲ－ＤＣ）及び未成熟樹状細胞（ｕｎｓｔｉｍ－ＤＣ）の３Ｈ－ＴｄＲの取り込みを示す。黒丸はＮＫ－ＤＣを示し、白丸はＣＴＲ－ＤＣを示し、×はｕｎｓｔｉｍ－ＤＣを示す。 図２は、本発明制御性樹状細胞（ＮＫ－ＤＣ）と未処理樹状細胞（ＣＴＲ－ＤＣ）をそれぞれ移入したＣ３Ｈｅ／Ｊマウスに、Ｃ５７ＢＬ／６マウスの心臓を移植した心移植Ｃ３Ｈｅ／Ｊマウスの生存率を示す。実線はＮＫ－ＤＣを示し、点線はＣＴＲ－ＤＣを示す。
　本発明においては、制御性樹状細胞に誘導可能な細胞（例えば、樹状細胞又はその前駆細胞など）を、試験管内で［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体、並びに所望によりサイトカイン類及び／または炎症性刺激物質を用いて処理することによって、制御性樹状細胞を作製することができる。具体的には、末梢血もしくは骨髄等から採取された単球に、ＧＭ－ＣＳＦ、ＩＬ－４、［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体を添加して誘導される樹状細胞、及び当該樹状細胞にサイトカイン類及び／または炎症性刺激（例えばＴＮＦ－α、ＬＰＳ等）を処理することによって、制御性樹状細胞を得ることができる。また、これらのサイトカイン類及び／または炎症性刺激、及び［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の刺激の順番は特に限定されず、刺激の順番は任意の順番で行うことにより、制御性樹状細胞を調製できる。一例としては、単球をＧＭ－ＣＳＦおよびＩＬ－４の存在下ｉｎ　ｖｉｔｒｏにおいて培養することにより単球を樹状細胞に分化せしめ、得られる樹状細胞は［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体によって、制御性樹状細胞を誘導することができる。この際、単球を最初にＧＭ－ＣＳＦおよびＩＬ－４で刺激し樹状細胞に分化させた後に［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体で刺激してもよいし、ＧＭ－ＣＳＦ、ＩＬ－４、［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体で同時に刺激してもよい。この際、［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体と共に制御性樹状細胞を分化させるサイトカイン類（例えばＩＬ－１０及びＴＧＦ－βなど）が共存してもよい。さらに、ＴＮＦ－αやＬＰＳ等により炎症性刺激を与えることにより、成熟した制御性樹状細胞を得ることができる。
　本発明の制御性樹状細胞の作製に用いられるサイトカイン類や炎症性刺激物質には特段の限定はない。サイトカイン類としては例えばＧＭ－ＣＳＦ、ＩＬ－４、ＩＬ－１０、ＴＧＦ－β等の樹状細胞を分化誘導する作用のあるものが挙げられる。炎症性刺激物質としては例えばＬＰＳに代表されるリポ多糖やＴＮＦ－α等の炎症性刺激を与えるサイトカインが挙げられる。
　樹状細胞は前述のように単球をＧＭ－ＣＳＦ及び／またはＩＬ－４の存在下で培養することにより得られる。この際の単球は末梢血由来でも、骨髄由来でも、脾臓細胞由来でも、臍帯血由来でもよい。さらに、これらの組織、器官から樹状細胞をセルソーター等によりＣＤ１ａ等の樹状細胞特異的な表面抗原の発現を指標に単離することもできる。セルソーターによる特定の細胞集団の単離は公知の方法により行えばよい。本発明の制御性樹状細胞を得るための単球は哺乳動物由来であればよく、霊長目、齧歯目、食肉目、偶蹄目、奇蹄目等、例えばヒト、サル、マウス、ラット、ウサギ、ネコ、ウシ、イヌ、ウマ、ヤギ等が挙げられ、最も好ましくはヒトである。上記の中でも好ましくは、本発明の制御性樹状細胞により疾患の予防又は治療を施される動物と同種由来である。
　単球、樹状細胞の培養は、周知のリンパ系細胞の培養技術により行なうことができる。培養液としては例えばＲＰＭＩ１６４０やＤＭＥＭを用いることができ、これらの基本培地に適当な抗生物質や動物血清等を添加して培養すればよい。培養容器も限定されず、培養規模に応じて市販のプレート、ディッシュ、フラスコを適宜選択して用いることができる。
　本発明で用いる［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体は、具体的には、特開２００５－１５４３３５号公報、及び国際公開２００４／１０８７２９号公報に記載されている化合物である。即ち、本発明で用いる［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体は、好ましくは、下記一般式（１）で表される化合物又はその薬学的に許容される塩である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
［式中、Ａｒは置換基を有していてもよい、芳香族炭化水素基又は１～４個のヘテロ原子を含有する芳香族複素環基を示し、ＸはＯ、Ｓ、ＮＨ、Ｎ－ＣＨ3又はＮ－ＣＮを示し、Ｙは置換基を有していてもよいフェニル基又はＲＮＨ基を示し、Ｒは水素原子、シアノ基、置換基を有していてもよい直鎖又は分岐鎖又は環状のアルキル基、置換基を有していてもよい芳香族炭化水素基、若しくは置換基を有していてもよいＮ、Ｏ及びＳから独立して選択される１～４個のヘテロ原子を含有する５～７員の複素環基を示す］。
具体的には例えば、Ａｒは置換基を有していてもよいフェニル基若しくは置換基を有していてもよいＮ、Ｏ及びＳから選択される１個のヘテロ原子を含有する５～６員の芳香族複素環基であり、該フェニル基若しくは該芳香族複素環基はハロゲノ基、水酸基、シアノ基、ニトロ基、（Ｃ１～Ｃ６）アルキル基、（Ｃ１～Ｃ６）アルコキシル基及びアルキレンジオキシ基からなる置換基群より選ばれる同一又は異なった１又は２個の基で置換されていてもよく、ＸはＯであり、Ｒはハロゲノ基、水酸基、（Ｃ１～Ｃ６）アルキル基、（Ｃ１～Ｃ６）アルコキシル基、（Ｃ１～Ｃ７）アシルオキシ基、トリフルオロメチル基及びトリフルオロメトキシ基からなる置換基群より選ばれる同一又は異なった１～３個の基で置換されていてもよいフェニル基又は
一般式（２）
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
｛式中、Ｒ１は水素原子又は（Ｃ１～Ｃ６）アルキル基を示し、Ｒ２は水素原子又はメチル基を示し、Ｒ３は水素原子、フェニル基（当該フェニル基はハロゲノ基、水酸基、（Ｃ１～Ｃ６）アルキル基及び（Ｃ１～Ｃ６）アルコキシル基からなる群から選ばれる１個の基で置換されていてもよい）又は（Ｃ１～Ｃ１０）アルキル基（当該アルキル基は、ハロゲノ基、水酸基、（Ｃ１～Ｃ６）アルコキシル基、（Ｃ１～Ｃ７）アシルオキシ基及びトリフルオロメチル基からなる群から選ばれる同一又は異なった１又は２個の基で置換されていてもよい）を示す｝である［１，２，４］トリアゾロ［１， ５－ａ］ピリミジン－２－イルウレア誘導体、又はその薬学的に許容される塩である。
　本発明で用いる［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の具体例としては、以下の化合物を挙げることができるが、これらに限定されるものではない。
（Ｓ）－１－（３－エトキシ－１－メチルプロピル）－３－［７－（３，４－メチレンジオキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル］ウレア，
（Ｓ）－１－（４－メトキシ－１－メチルブチル）－３－［７－（４－メトキシフェニル－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル］ウレア，
（Ｓ）－１－（４－ヒドロキシ－１，４－ジメチルペンチル）－３－［７－（４－メトキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル］ウレア，
（Ｓ）－１－（５－ヒドロキシ－１，５－ジメチルヘキシル）－３－［７－（４－メトキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル］ウレア，
（Ｓ）－１－（５－ヒドロキシ－１，５－ジメチルヘキシル）－３－｛７－［３－（ピリジン－３－イルメトキシ）フェニル］－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル｝ウレア，
（Ｓ）－１－（５－ヒドロキシ－１，５－ジメチルヘキシル）－３－（７－チオフェン－２－イル［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル）ウレア，
（Ｓ）－１－［１－（３－メトキシフェニル）エチル］－３－［７－（４－メトキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル］ウレア，
（Ｓ）－１－［７－（３，４－メチレンジオキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル］－３－［１－（３－メトキシフェニル）エチル］ウレア，
（Ｓ）－１－［７－（３，４－メチレンジオキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル］－３－［１－（３，４，５－トリメトキシフェニル）エチル］ウレア，
（Ｓ）－１－（７－チオフェン－２－イル［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル）－３－［１－（３，４，５－トリメトキシフェニル）エチル］ウレア，
（Ｓ）－１－［１－（３，４－メチレンジオキシフェニル）エチル］－３－｛７－［３－（ピリジン－３－イルメトキシ）フェニル］－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル｝ウレア，
（Ｓ）－１－（１，５－ジメチルヘキシル）－３－［７－（４－ヒドロキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル］ウレア，
（Ｓ）－１－［７－（４－メトキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル］－３－（１－フェニルエチル）ウレア，
４－クロロ－２－メトキシ－Ｎ－（７－チオフェン－２－イル［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル）ベンズアミド，
（Ｓ）－１－（１，５－ジメチルヘキシル）－３－［７－（４－メトキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル］ウレア，
１－（２－メトキシフェニル）－３－（７－チオフェン－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル）ウレア，
１－イソプロピル－３－（７－チオフェン－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル）ウレア，
（Ｒ）－１－［７－（４－メトキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－２－イル］－３－（１－フェニルエチル）ウレア又は
（Ｒ）－１－（５－ヒドロキシ－１，５－ジメチルヘキシル）－３－［７－（４－メトキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－α］ピリミジン－２－イル］ウレア
　本発明で用いる［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の最も好ましい具体例は、（Ｓ）－(＋)－１－（５－ヒドロキシ－１，５－ジメチルヘキシル）－３－［７－（４－メトキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－α］ピリミジン－２－イル］ウレアである。
　本発明によれば、制御性樹状細胞の作製のための、［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の使用、並びに［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体を含む、制御性樹状細胞誘導試薬が提供される。
　培養に用いる［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の濃度は、１ｎｇ／ｍＬ～５０００ｎｇ／ｍＬ、好ましくは１０ｎｇ／ｍＬ～５００ｎｇ／ｍＬである。ＧＭ－ＣＳＦ、ＩＬ－４、ＩＬ－１０、ＴＧＦ－β、ＴＮＦ－α、ＬＰＳの濃度は、１ｎｇ／ｍＬ～１０００ｎｇ／ｍＬ 、好ましくは１０ｎｇ／ｍＬ～１００ｎｇ／ｍＬである。また、刺激に必要な培養日数は、限定されないが、例えば単球を［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体、サイトカイン類及び／または炎症性刺激と共に数日から１０日間程度培養すればよい。単球または樹状細胞 の表面抗原の発現をフローサイトメトリー等で調べることにより、目的の分化程度の細胞が得られる培養期間を適宜決定することができる。刺激に用いる［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体、サイトカイン類及び／または炎症性刺激の濃度、刺激期間等の条件は、異系ＣＤ４陽性Ｔ細胞の抗原不応答性の誘導や樹状細胞表現型を指標として決定できる。
　本発明の制御性樹状細胞を疾患の治療に用いる場合、本発明の制御性樹状細胞を治療しようとする疾患に関連した抗原で刺激する。抗原としては、自己免疫疾患やアレルギー性疾患であれば、疾患と関連する組織・臓器に存在する抗原タンパク、またはペプチド、また、それらをコードするＲＮＡ、ＤＮＡ類、およびその改変体を用いる。移植片拒絶や移植片対宿主病であれば、樹状細胞が内在的に異系抗原を発現しているため抗原を改めて付与する必要はないが、ドナーあるいはレシピエント由来の抗原を用いる場合も有り得る。この際の刺激は、本発明の制御性樹状細胞をｉｎ　ｖｉｔｒｏで抗原と共に培養すればよい。
　自己免疫疾患やアレルギー性疾患治療における樹状細胞への抗原付与については培養最終日を含む１０日間から１日間の期間、蛋白抗原の場合、１ｎｇ／ｍｌ～１０ｍｇ／ｍｌ、好ましくは１０ｎｇ／ｍｌ～５ｍｇ／ｍｌの濃度でｉｎ　ｖｉｔｒｏで付与する。炎症性刺激物質によって更に刺激した御性樹状細胞を用いる場合は、通常、炎症性刺激と同時或いは刺激前に抗原を付与する。
　本発明の制御性樹状細胞は，免疫の異常に起因する免疫疾患等の治療薬及び予防薬等に使用できる。免疫疾患として、移植拒絶反応、自己免疫疾患、アレルギー疾患、炎症性疾患、敗血症、ショックなどが挙げられる。
　移植拒絶反応としては，移植における急性拒絶反応、移植片対宿主病、慢性拒絶反応等が上げられる。本発明の制御性樹状細胞は移植拒絶反応に対する治療及び予防の他、免疫寛容の誘導等に使用できる。移植臓器は、骨髄、腎臓、肝臓、心臓、膵臓等いずれの臓器でも可能である。供与者宿主間の関係は、異種間移植、異系統間移植、血液不適合間移植等、いずれの場合でも可能である。また本発明の制御性樹状細胞は、癌治療、自己免疫疾患治療、遺伝子治療、再生医療等で用いられる骨髄移植、末梢血幹細胞移植、臍帯血幹細胞移植等の臓器移植に対して、免疫抑制、移植臓器の長期生着等を目的として使用することもできる。
　自己免疫疾患として、関節リウマチ、多発性硬化症、全身性エリテマトーデス、円板状エリテマトーデス、シェーグレン症候群、クローン病、潰瘍性大腸炎、特発性血小板減少症、再生不良性貧血、自己免疫性肝炎、字越自己免疫性心筋炎、突発性血小板減少症紫斑病、ベーチェット病、自己免疫性胃炎、インスリン依存性糖尿病、重症筋無力症、多発性筋炎、強皮症、混合性結合組織病、強直性脊椎炎、慢性甲状腺炎、天疱瘡、ギラン・バレー症候群、ＨＴＬＶ－１関連脊髄症等が挙げられる。また、アレルギー性疾患として、アトピー性皮膚疾患、花粉症、接触性過敏症、喘息、乾癬、アナフィラキシー等が可能である。炎症性疾患としては、多発動脈炎、サルコードーシス、糸球体腎炎、ネフローゼ症候群、難治性血管炎、ウェゲナー症候群等が挙げられる。
　本発明の制御性樹状細胞の投与量は、投与対象に所望する効果が認められる用量に適宜設定される。具体的には、投与対象（個体）に対して０．５×１０5 ～１０9個程度の本発明の制御性樹状細胞が、静脈内あるいは皮下、皮内（ 好ましくは静脈内） に投与される。投与の際の媒体としては、投与対象に副作用等を与えず、本発明の制御性樹状細胞の機能を損なわない媒体であれば特段の限定はなく、通常用いられるものでよい。例えば、ＲＰＭＩ１６４０やＤＭＥＭなどの培地、ハンクス緩衝液、燐酸緩衝塩液（ＰＢＳ）、生理食塩水、ブドウ糖液などが挙げられる。投与対象としては、哺乳動物であれば特段の限定はなく、霊長目、齧歯目、食肉目、偶蹄目、奇蹄目等、例えばヒト、サル、マウス、ラット、ウサギ、ネコ、ウシ、イヌ、ウマ、ヤギ等が挙げられる。好ましくはヒトである。
　投与対象への各種疾患の予防又は治療剤の投与時期に関しては特に限定されず随時行うことができる。特に臓器・組織移植に伴う移植片拒絶、移植片対宿主病については、発症が予想される処置以前での投与が好ましい。ヒト免疫制御性樹状細胞の投与時期、投与量は、疾患の種類、疾患の重篤度、患者の状態等に応じて適宜決定することができる。
　本発明は、本発明の制御性樹状細胞を含む医薬組成物又は医薬キットをも含む。本発明の医薬組成物とは本発明の制御性樹状細胞を含むものであれば特段の限定はなく、例えば、本発明の制御性樹状細胞を前記したような投与対象に副作用等を与えず、本発明の制御性樹状細胞の機能を損なわない媒体に懸濁させたものなどが挙げられる。本発明の制御性樹状細胞の状態を維持する医薬上許容し得る添加物や、その他の薬剤を添加したものも含まれる。本発明の医薬キットとは本発明の制御性樹状細胞又は本発明の医薬組成物とその他の薬剤を組み合わせたものを指す。その他の薬剤としては公知の免疫の異常に起因する免疫疾患等の治療薬及び予防薬であれば限定はなく、例えばサラゾスルファピリジン、ブシラミン、金チオりんご酸ナトリウム、Ｄ－ペニシラミン、オーラノフィン、アクタリット、ロベンザリッド等の免疫調節薬、メトトレキサレート、レフルノミド、タクロリムス、ミゾリビン、シクロフォスファミド、アザチオプリン、シクロスポリン、ミコフェノール酸モフェチル等の免疫抑制薬、インフリキシマブ、エタネルセプト、アダリムマブ、トシリズマブ、リツキシマブ等の生物学的製剤、メフェナム酸、ジクロフェナクナトリウム、ナブメトン、エトドラク、ロキソプロフェンナトリウム、メロキシカム等のＮＳＡＩＤｓ、プレドニゾロン、メチルプレドニゾロン、メチルプレドニゾロン酢酸エステル、メチルプレドニゾロンコハク酸エステルナトリウム、デキサメタゾン、ベタメサゾン、ヒドロコルチゾン等のステロイド薬、ジドブジン、ラミブジン、アバカビル、エムトリシタビン等のＮＲＴＩ、テノホビル等のヌクレオチド系逆転写酵素阻害薬、エフェビレンツ等のＮＮＲＴＩ、アタザナビル、ホスアンプレナビル、ロビナビル、リトナビル、ダルナビル等のプロテアーゼ阻害薬、ラルテグラビル等のインテグラーゼ阻害薬等が挙げられる。なお、本発明の医薬キットにおいては本発明の制御性樹状細胞と又は本発明の医薬組成物とその他の薬剤の投与順序は限定されない。
　以下の実施例において、本発明の制御性樹状細胞について、いくつかの実施形態を例示して説明する。しかしながら、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
Ｃ５７ＢＬ／６マウス骨髄細胞の採取
　Ｃ５７ＢＬ／６マウス（ＳＬＣ、雄、１０～１２週齢）から大腿骨を取り出し、ＲＰＭＩ１６４０培地中で大腿骨の両端を切断して骨内部にある骨髄組織を取り出した。２６Ｇシリンジを用いて、この骨髄組織を単一細胞化して、Ｃ５７ＢＬ／６マウス骨髄細胞を得た。
Ｃ５７ＢＬ／６マウス骨髄細胞の樹状細胞への分化及び成熟刺激
　Ｃ５７ＢＬ／６マウス骨髄細胞は、２０ｎｇ/ｍＬのＧＭ－ＣＳＦ（Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ、由来：ラビット）及び２０ｎｇ/ｍＬのＩＬ－４（Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ、由来：ラビット）を含む１０％ＦＣＳ－ＲＰＭＩ１６４０培地で７日間培養して樹状細胞に分化させ、その後２０ｎｇ／ｍＬのＴＮＦ－α（Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ、由来：ラビット）を添加して成熟させた。ＮＫ０２６６８０処理は、培養２日目及び4日目に５０ｎｇ／ｍＬ、６日目に２５０ｎｇ／ｍＬを添加して行った。
Ｃ５７ＢＬ／６マウス脾臓細胞及びＴ細胞の採取
　Ｃ５７ＢＬ／６マウス（ＳＬＣ、雄、１０～１２週齢）から脾臓を取り出し、脾臓内から脾臓細胞をＲＰＭＩ１６４０培地中で取り出し、２６Ｇシリンジを用いて単一細胞化してＣ５７ＢＬ／６マウス脾臓細胞を得た。Ｃ５７ＢＬ／６マウスＴ細胞は、Ｃ５７ＢＬ／６マウス脾臓細胞からナイロンウール（Ｒ＆Ｄ　ｓｙｓｔｅｍｓ）を用いて分離採取した。
Ｃ５７ＢＬ／６マウス脾臓細胞抽出液
　Ｃ５７ＢＬ／６マウス脾臓細胞を超音波粉砕器で粉々にし、－８０℃に凍結させた。その後解凍し、遠心（３００ｇ・５分）にて細胞破片を除去し、その上清を抽出液とした。
Ｃ３Ｈｅ／Ｊマウス骨髄細胞の採取
　Ｃ３Ｈｅ／Ｊマウス（ＳＬＣ、雄、１０～１２週齢）から大腿骨を取り出し、ＲＰＭＩ１６４０培地中で大腿骨の両端を切断して骨内部にある骨髄組織を取り出した。２６Ｇシリンジを用いて、この骨髄組織を単一細胞化してＣ３Ｈｅ／Ｊマウス骨髄細胞を得た。
Ｃ３Ｈｅ／Ｊマウス骨髄細胞の樹状細胞への分化
　Ｃ３Ｈｅ／Ｊマウス骨髄細胞は、２０ｎｇ／ｍＬのＧＭ－ＣＳＦ及び２０ｎｇ／ｍＬのＩＬ－４を含む１０％ＦＣＳ－ＲＰＭＩ１６４０培地で７日間培養して樹状細胞に分化させた。ＮＫ０２６６８０処理は、培養２日目及び4日目に５０ｎｇ／ｍＬ、６日目に２５０ｎｇ/ｍＬを添加して行った。また、６日目に、Ｃ５７ＢＬ／６マウス脾細胞抽出液も加えた。
ＢＡＬＢ／ｃマウス脾臓細胞抽出液
　ＢＡＬＢ／ｃマウス（ＳＬＣ、雄、１０～１２週齢）から脾臓を取り出し、脾臓内から脾臓細胞をＲＰＭＩ１６４０培地中で取り出し、２６Ｇシリンジを用いて単一細胞化してＢＡＬＢ／ｃマウス脾臓細胞を得た。この脾臓細胞を超音波粉砕器で粉々にし、－８０℃に凍結させた。その後解凍し，遠心（３００ｇ・５分）にて細胞破片を除去し、その上清を抽出液とした。
（実施例１）
　Ｃ５７ＢＬ／６マウスから採取した骨髄細胞由来の樹状細胞にＢＡＬＢ／ｃマウス由来の脾臓細胞抽出液を加えてＢＡＬＢ／ｃ抗原を提示させた。ＢＡＬＢ／ｃ抗原取込効果は、ＢＡＬＢ／ｃの主要組織適合性抗原（ＭＨＣ）であるＩ－Ａｄ（抗体：ＢＤ　ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）の発現をフローサイトメトリーで測定することで確認した．この際、ＮＫ０２６６８０の存在下、非存在下で培養した後、ＴＮＦ－α（Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ、由来：ラビット）で成熟させた。フローサイトメトリーによる成熟樹状細胞マーカー発現解析により、樹状細胞の成熟を確認した）。本発明のＮＫ０２６６８０処理樹状細胞（ＮＫ－ＤＣ）と未処理の樹状細胞（ＣＴＲ－ＤＣ）における共刺激分子ＣＤ４０、ＣＤ８０及びＣＤ８６の蛍光標識抗体を反応させ、フローサイトメトリーで平均蛍光強度（ＭＦＩ）を測定することによりＣＤ４０、ＣＤ８０及びＣＤ８６の発現量を比較した。
　実施例１の結果を表１に示す。ＣＤ４０、ＣＤ８０及びＣＤ８６の蛍光標識抗体の結合量であるＭＦＩで比較すると、本発明のＮＫ０２６６８０処理樹状細胞（ＮＫ－ＤＣ）のＣＤ４０、ＣＤ８０及びＣＤ８６の発現量は、未処理の樹状細胞（ＣＴＲ－ＤＣ）に比べて少なかった。共刺激分子の低発現は制御性樹状細胞の性質であり、本発明のＮＫ０２６６８０処理樹状細胞は、制御性樹状細胞であることを示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
（実施例２）
本実施例２では、実施例１と同様にＣ５７ＢＬ／６マウス骨髄細胞から分化成熟させた本発明のＮＫ０２６６８０処理樹状細胞と未処理の樹状細胞を得た。ＴＮＦ刺激後２４時間培養して得た培養上清を採取し，免疫応答刺激サイトカインＩＬ－６及びＩＬ－１２ｐ４０濃度をＥＬＩＳＡ（ＢＤ　ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ）で測定した（ｎ＝３）。
　実施例２の結果を表２に示す。ＮＫ０２６６８０処理樹状細胞の培養上清に含まれるＩＬ－６及びＩＬ－１２ｐ４０濃度は、未処理樹状細胞の培養上清に比較して少なかった。免疫応答刺激サイトカインＩＬ－６及びＩＬ－１２ｐ４０の低産生は制御性樹状細胞の性質であり、本発明のＮＫ０２６６８０処理樹状細胞は制御性樹状細胞であることを示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
（実施例３）
　本実施例３では、実施例１と同様に、Ｃ５７ＢＬ／６マウス骨髄細胞から分化成熟させた本発明の制御性樹状細胞であるＮＫ０２６６８０処理（ＮＫ－ＤＣ）と未処理の樹状細胞（ＣＴＲ－ＤＣ）を得た。また、Ｃ５７ＢＬ／６マウス骨髄細胞から樹状細胞に分化させた後実施例１と同様にＢＡＬＢ／ｃ抗原を提示させたが、ＴＮＦ－αによる成熟を行わなかった未成熟樹状細胞（ｕｎｓｔｉｍ－ＤＣ）も得た。これら３種の樹状細胞に対して、それぞれＣ５７ＢＬ／６マウスＴ細胞を混合した後、３Ｈ－ＴｄＲ（ＧＥヘルスケア）の取り込みを測定した。３Ｈ－ＴｄＲの取り込み量は、樹状細胞の異系抗原に対するＴ細胞の活性化誘導能を示す。
　実施例３の結果を図１に示す。ＮＫ－ＤＣはＣＴＲ－ＤＣに比べて、ＢＡＬＢ／ｃ抗原に対するＴ細胞の活性化誘導能が低かった。また、ＮＫ－ＤＣのＴ細胞活性化誘導能は、ｕｎｓｔｉｍ－ＤＣと同等であった。すなわち、ＮＫ－ＤＣは、異系抗原刺激があっても未成熟樹状細胞と同程度にＴ細胞誘導活性能が低下していることが示された。
（実施例４）
　本実施例４では、Ｃ３Ｈｅ／Ｊマウス骨髄細胞由来の樹状細胞にＣ５７ＢＬ／６マウス脾臓細胞の抽出液を加えてＣ５７ＢＬ／６抗原を提示させた。Ｃ５７ＢＬ／６抗原取込効果は、ＢＡＬＢ／ｃのＭＨＣであるＩ－Ａｂ（抗体：ＢＤ　ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）の発現をフローサイトメトリーで測定することで確認した．この際、ＮＫ０２６６８０の存在下、非存在下で培養した。ＮＫ０２６６８０処理（ＮＫ－ＤＣ）と未処理の樹状細胞（ＣＴＲ－ＤＣ）をそれぞれＣ３Ｈｅ／Ｊマウス（ＳＬＣ、雄、１０～１２週齢）に静脈内投与して移入した（投与数　３×１０6個／匹、媒体：燐酸緩衝塩液（ＰＢＳ））。この際、樹状細胞を移入しない群（Ｎｏ－ｔｒｅａｔ）も準備した（ｎ＝６）。７日後に、ＮＫ－ＤＣ移入群、ＣＴＲ－ＤＣ移入群及びＮｏ－ｔｒｅａｔ群に、Ｃ５７ＢＬ／６マウス（ＳＬＣ、雄、１０～１２週齢）の心臓を移植して３群の生存率を比較した。
　実施例４の結果を図２に示す。ＮＫ－ＤＣ移入群は、ＣＴＲ－ＤＣ移入群及びＮｏ－ｔｒｅａｔ群に比べて顕著に生存率の改善と生存期間の延長が認められた。
　本発明による制御性樹状細胞の作製方法によれば、簡易な方法でありながら大量の制御性樹状細胞を得ることができる。また、本発明の制御性樹状細胞の作製方法により作製される制御性樹状細胞は、免疫性の異常及び過剰応答に起因する疾患の予防及び治療に有用である。

Claims (17)

  1. 制御性樹状細胞に誘導可能な細胞を［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の存在下で培養することを含む、制御性樹状細胞の作製方法。
  2. ［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体が、（Ｓ）－(＋)－１－（５－ヒドロキシ－１，５－ジメチルヘキシル）－３－［７－（４－メトキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－α］ピリミジン－２－イル］ウレアである、請求項１に記載の制御性樹状細胞の作製方法。
  3. 制御性樹状細胞に誘導可能な細胞が、樹状細胞又はその前駆細胞である、請求項１又は２に記載の制御性樹状細胞の作製方法。
  4. 樹状細胞の前駆細胞が、単球である、請求項３に記載の制御性樹状細胞の作製方法。
  5. 制御性樹状細胞に誘導可能な細胞が、末梢血、骨髄、脾臓、又は臍帯血に由来する細胞である、請求項１から４の何れか１項に記載の制御性樹状細胞の作製方法。
  6. 細胞をＧＭ－ＣＳＦ及びＩＬ－４の存在下で培養することを含む、請求項１から５の何れか１項に記載の制御性樹状細胞の作製方法。
  7. 細胞をＴＮＦ-α及び／またはＬＰＳの存在下で培養することを含む、請求項１から６のいずれか１項に記載の制御性樹状細胞の作製方法。
  8. 請求項１から７の何れか１項に記載の作製方法で作製された制御性樹状細胞。
  9. 制御性樹状細胞に誘導可能な細胞を［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の非存在下で培養することにより得られる細胞と比較して、ＣＤ４０、ＣＤ８０及びＣＤ８６の発現量が低い、請求項８に記載の制御性樹状細胞。
  10. 制御性樹状細胞に誘導可能な細胞を［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の非存在下で培養することにより得られる細胞と比較して、ＩＬ－６及びＩＬ－１２ｐ４０の産生量が低い、請求項８又は９に記載の制御性樹状細胞。
  11. 制御性樹状細胞に誘導可能な細胞を［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の非存在下で培養することにより得られる細胞と比較して、異系抗原に対するＴ細胞の活性化誘導能が低い、請求項８から１０の何れか１項に記載の制御性樹状細胞。
  12. 請求項８から１１の何れか１項に記載の制御性樹状細胞を含む医薬組成物又は医薬キット。
  13. 免疫系の異常応答及び過剰応答に起因する移植拒絶反応、自己免疫疾患、アレルギー疾患、炎症性疾患、敗血症又はショックの予防及び／又は治療のために使用する、請求項１２に記載の医薬組成物又は医薬キット。
  14. 制御性樹状細胞の作製のための、［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体の使用。
  15. ［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体が、（Ｓ）－(＋)－１－（５－ヒドロキシ－１，５－ジメチルヘキシル）－３－［７－（４－メトキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－α］ピリミジン－２－イル］ウレアである、請求項１４に記載の使用。
  16. ［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体を含む、制御性樹状細胞誘導試薬。
  17. ［１，２，４］トリアゾロ［１，５－ａ］ピリミジン誘導体が、（Ｓ）－(＋)－１－（５－ヒドロキシ－１，５－ジメチルヘキシル）－３－［７－（４－メトキシフェニル）－［１，２，４］トリアゾロ［１，５－α］ピリミジン－２－イル］ウレアである、請求項１６に記載の制御性樹状細胞誘導試薬。
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