WO2011052621A1 - シアニジウム類由来のプロトンatpアーゼ遺伝子を用いた耐性植物体の作出方法及び該遺伝子の用途 - Google Patents

シアニジウム類由来のプロトンatpアーゼ遺伝子を用いた耐性植物体の作出方法及び該遺伝子の用途 Download PDF

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常祥 黒岩
修己 三角
芙美 八木沢
晴子 黒岩
昌樹 吉田
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学校法人立教学院
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    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/82—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
    • C12N15/8241—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology
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    • C12N15/8271—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield for stress resistance, e.g. heavy metal resistance
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
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    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14—Hydrolases (3)

Definitions

  • the present invention is a single-cell photosynthetic eukaryote living in a high temperature (42 ° C.), strongly acidic (pH 2.5) environment.
  • Cyanidioschyzon merolae Plant stress tolerance (eg, acid resistance, oxidative stress) of a gene derived from the National Institute for Environmental Studies, 16-2 Onogawa, Tsukuba, Ibaraki, Japan, as strain number NIES-1332 (hereinafter referred to as “schizon”) Tolerance, salt tolerance, metal ion tolerance) and other uses of the gene.
  • Non-patent Document 1 cloning of the gene encoding the proton ATPase from Cyanidium caldarium that proliferates best at pH 2 and the elucidation of the structure of the enzyme were performed by Ohta et al.
  • Non-patent Document 1 The detailed molecular mechanism and function of was not clear.
  • the cell membrane proton ATPase gene was isolated from the monocotyledonous seaweed seaweed ( Zostera marina ), and when introduced into single-cell yeast to function the protein, the acid resistance of yeast cells was improved. There are reports (Patent Documents 1 and 2).
  • the stop1 gene of Arabidopsis thaliana As a gene related to acid resistance of plants, the stop1 gene of Arabidopsis thaliana has been reported. Usually, Arabidopsis thaliana can grow even in acidic soil at pH 4.3, as in neutral soil. However, when this stop1 gene stops functioning, root elongation is significantly suppressed at pH 4.3. Reported by Iuchi et al. (Non-Patent Document 2). Moreover, Sawaki et al. Suggested that the stop1 gene product is involved in the regulation of genes that respond to aluminum ions and protons, which are thought to function in acidic soil environments, based on transcriptome analysis of the stop1 mutant (non-patented). Reference 3).
  • the stop1 gene contributes to the growth limit region in an acidic soil environment up to about pH 4.5, which is inherently provided by Arabidopsis thaliana.
  • the discovery of this gene has not improved the acid resistance ability of Arabidopsis thaliana. Absent.
  • Enami et al. (Non-Patent Document 6) have analyzed and reported on their acid resistance mechanism and their photosynthetic properties in Ideyukogome.
  • Ideyukogome is different from schizon in that cells form internal spores and divide and proliferate into four daughter cells in two successive cell divisions, and have a very strong cell wall. The structure is similar to schizon. It has been shown that the proton ATPase in the cell membrane is activated depending on oxidative phosphorylation or intracellular ATP concentration produced by photosynthesis, and intracellular pH decreases when the intracellular ATP concentration decreases. Was found to acidify rapidly.
  • the proton ATPase activity regulation mechanism is different from the regulation mechanism of land plants that phosphorylates the threonine residue at the C-terminal of the protein to regulate the activity, and is a unique feature.
  • schizon also lives in a strongly acidic hot spring (pH 0.5-1, °C 45 °C -55 °C), which is an extreme environment for photosynthetic eukaryotes, and proton ATP similar to ideukogome due to the similarity of the amino acid sequence of the protein.
  • Non-patent Document 7 has extremely high tolerance against various high-concentration metal ions as compared with land plants.
  • the base sequences of all the schizon genomes (nucleus (16,546,747 bp), mitochondria (32,211 bp) and plastid (149,987 bp)) have already been determined (Non-patent Documents 8 and 9).
  • Morishita T Kabeya Y, Terasawa K, Suzuki Y, Ishii H, T Kuroiwa H, Tanaka K, Shimizu N, Sugano S, Sato N, Nozaki H, Ogasawara N, Kohara Y, Kuroiwa T, "Genome sequence of the ultrasmall unicellular red alga Cyanidioschyzon merolae 10. 657.
  • An object of the present invention is to search for genes involved in acidic environmental compatibility from schizon genes, and from the searched genes, transform (transgenic) plants having excellent stress resistance such as acid resistance and metal ion resistance. It is to provide a gene useful for production and to provide a plant transformed with the gene. Another object of the present invention is to provide a gene involved in stress resistance such as acid resistance and metal ion resistance as a research tool.
  • the present inventors are partially homologous to proteins containing the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing among proteins involved in the acidic environmental compatibility of schizon with cell membrane proton ATPases of various plants. However, it has been found that it has structurally and evolutionarily unique characteristics and is useful for improving acid resistance and metal ion resistance of a host such as a plant, and the present invention has been completed.
  • a method for imparting acid tolerance and metal ion tolerance to a plant by introducing the gene of the following (a) or (b) into the plant.
  • a gene encoding a protein comprising the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing (A) A gene encoding a protein comprising the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing.
  • B a gene encoding a protein comprising an amino acid sequence in which a part of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing is deleted, substituted or added, A gene having the property of imparting resistance and metal ion resistance.
  • the above method of the present invention can be carried out, for example, by incorporating the gene (a) or (b) into a vector and introducing it into a plant.
  • the present invention provides a transformed plant produced by the above method.
  • the present invention includes a vector characterized in that it comprises the above gene as a marker gene and imparts acid resistance and metal ion resistance to the introduced host organism, and the vector.
  • a transformant is provided.
  • the vector is introduced into a host organism for transformation, and the host organism is grown under acidic conditions and / or stress conditions such as the presence of metal ions.
  • a method for screening transformants which comprises selecting transformants having acid resistance and / or metal ion resistance.
  • the present invention it is possible to confer acid resistance and metal ion resistance to a plant using a specific gene that is derived from a schizon growing in an extreme environment and can be expressed in a host organism such as a plant.
  • the gene is introduced into a host such as a plant for transformation. Then, by expressing the gene in the host, its acid resistance and / or metal ion resistance can be improved.
  • CmPMA gene CMQ247, hereinafter also referred to as CmPMA gene
  • SEQ ID NO: 2 SEQ ID NO: 2.
  • the alignment figure which compared the C-terminal amino acid sequence of CmPMA gene, the proton ATPase gene OsPMA (Os12g0638700) of rice ( Oryza sativa ), and the proton ATPase gene PMA (AHA4) of Arabidopsis thaliana.
  • Example 2 DNA extracted from the wild strain and the transformed strains 1 to 5 was amplified by PCR using the upstream sequence SF specific to the CmPMA gene and the downstream sequence CR as primers, and then electrophoresed. It is a photograph of a band around 0.5 kb showing the results.
  • W represents a wild strain
  • numerals 1 to 5 represent transformed strains.
  • the upper row shows the cDNA synthesized by reverse transcription of the RNA extracted from the wild strain and the transformed strains 1 to 5 using random primers in Example 2 below, and a sequence specific to the AtGAPDH gene as a primer.
  • the left side shows the case of treatment with MS medium containing 100 ⁇ M aluminum chloride not containing sucrose at pH 3.0
  • the right side shows the case of treatment with the same medium as the left side except for pH 2.3.
  • WT represents a wild strain
  • PMA2 and PMA5 represent transformed strains 2 and 5, respectively.
  • cotyledons treated with MS media of pH 5.8, 4.0, 3.0, and 2.3 are shown.
  • WT represents a wild strain
  • PMA2 and PMA5 represent transformed strains 2 and 5, respectively.
  • FIG. 4 is a photograph showing experimental results relating to root elongation of wild-type strains and transformed strains 1 to 5 introduced with CmPMA gene in Example 4 below.
  • the upper row is a photograph showing the state on the seventh day after seeding on the MS agar medium
  • the lower row is a photograph showing the state on the 21st day after seeding on the MS agar medium
  • the left column is the pH 5.8 aluminum chloride concentration
  • An example of culturing in 100 ⁇ M MS agar medium is shown
  • the right column shows an example of culturing in 3.0MS agar medium having a pH 3.0 aluminum chloride concentration of 100 ⁇ M.
  • WT represents a wild strain
  • PMA1-5 represents transformed strains 1 to 5, respectively.
  • the results of treatment at pH 5.8, 4.0, 3.0, and 2.35 are shown from left to right.
  • WT represents a wild strain
  • PMA2 and PMA5 represent transformed strains 2 and 5, respectively.
  • a transformed plant that expresses a protein containing the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing (hereinafter referred to as “protein (a)”) can be produced.
  • the DNA sequence of SEQ ID NO: 2 in the sequence listing which is the protein of protein (a) and the gene encoding it, is presumed to be a schizon proton ATPase and the gene encoding it from homology search. It is easy for those skilled in the field of genetic engineering and protein engineering to obtain a modified protein in which a part of the amino acid sequence of protein (a) is deleted, substituted or added.
  • protein (b) a protein containing an amino acid sequence in which a part of the amino acid sequence of protein (a) has been deleted, substituted or added
  • protein (b) a protein containing an amino acid sequence in which a part of the amino acid sequence of protein (a) has been deleted, substituted or added
  • Such modification is usually performed by deleting, substituting or adding 20 amino acids or less, preferably 10 amino acids or less, more preferably 5 amino acids or less in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 in the Sequence Listing.
  • Is included in the category of protein (b) as long as it imparts acid resistance or metal ion resistance to organisms such as plants.
  • Examples of the gene encoding protein (a) include those consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 2 in the sequence listing, but it is clear that the gene is not limited to this in view of the degeneracy of codons. In addition, not only DNA but also RNA is included.
  • the modified protein (b) can be obtained, for example, by modifying the gene sequence shown in SEQ ID NO: 2 in the sequence listing by a genetic engineering technique and expressing it in an appropriate host.
  • the gene of the present invention As a method for transforming a plant using a gene encoding the protein (a) or (b) of the present invention (hereinafter referred to as “the gene of the present invention”), a usual method in this technical field can be used.
  • the gene of the present invention is incorporated into a plasmid vector equipped with a drug resistance gene, the recombinant plasmid is introduced into Agrobacterium, and then the target plant is infected to produce a transformed plant. Then, transformation can be performed by selecting a transformed plant exhibiting drug resistance.
  • the gene of the present invention can be directly introduced into plant cells using a method such as a particle gun method or an electroporation method for transformation.
  • the gene of the present invention is preferably introduced into a plant after being linked to an appropriate promoter gene so as to be overexpressed in the plant.
  • an appropriate promoter gene it is considered that those used for expression vectors introduced into plants can be used, and examples thereof include cauliflower mosaic virus 35S promoter. In germline, other tissue / organ-specific promoters such as the actin promoter may be used.
  • plants that can be transformed according to the present invention include cereals and vegetables such as rice, barley, wheat, tomato, soybean, alfalfa, corn, sugarcane, and potato in addition to Arabidopsis thaliana.
  • the gene of the present invention can be used not only for plants but also for transformation of hosts such as yeast and Escherichia coli, which are mainly used as research tools.
  • the gene of the present invention is considered to be able to confer stress resistance such as acid resistance and resistance to metal ions such as aluminum ions to the host, so it can also be used as a marker gene for vectors such as transformation or expression vectors. it can.
  • the vector in addition to the plasmid vector used for transformation of Agrobacterium as described above, a known vector used as a research tool can be used.
  • a vector having an acid resistance gene or a metal ion resistance gene as a marker can be provided by incorporating and modifying the gene of the present invention into a known vector instead of the original drug resistance marker gene.
  • a transformant can be collected by introducing the vector of the present invention into a host for transformation, and growing the host under stress conditions such as acidic conditions or high metal ion concentration conditions. That is, the vector of the present invention can be used for production and / or screening of transformants.
  • the gene of the present invention can impart acid resistance to the host, it is considered that not only aluminum ions but also many metal ions eluted under acidic conditions can be imparted to the host.
  • Example 1 (EST analysis) According to the method of Matsuzaki et al. (See Non-Patent Document 8 above), EST analysis of schizon was performed. The results are shown in Table 1.
  • Table 1 shows the growth of schizone at various growth stages (logarithmic growth phase, stationary phase, light phase, dark phase) under laboratory culture conditions (double concentration Allen medium, pH 2.3, temperature 42 ° C).
  • a total length mRNA library was extracted from the template, and a full-length cDNA library was prepared using the extracted mRNA as a template. It is. That is, these genes can be said to be housekeeping genes essential for schizone to grow normally under high temperature, strong acidity and high metal ion concentration environment.
  • CMQ247C was estimated to be a cell membrane proton ATPase gene as a result of homology search.
  • Sizone is a unicellular eukaryotic cell, and the cell membrane is thought to play a role in partitioning the strongly acidic environment and the intracellular environment to keep the cytoplasmic pH near neutral.
  • the difference in the proton concentration inside and outside the cell through the cell membrane of schizon is thought to be about 100,000 times, and it is the pumping activity of the proton ATPase protein that maintains the concentration gradient.
  • this proton ATPase is a protein consisting of 954 amino acid residues shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing, and the DNA sequence encoding the protein is shown in SEQ ID NO: 2 in the sequence listing.
  • Example 2 Transformation of Arabidopsis thaliana using CmPMA gene
  • aaC1 binary vector pPZP221 containing the gentamicin resistance (aaC1) gene, cauliflower mosaic virus 35S promoter (CaMV35S- ⁇ ) and NOS terminator (NOS3 ′) as shown in 35S: CmPMA in FIG.
  • the full length of the gene encoding the proton ATPase (CmPMA) shown was cloned so as to be located under the control of the promoter (CaMV35S- ⁇ ).
  • the obtained vector was introduced into Arabidopsis thaliana by the floral dip method using Agrobacterium tumefaciens containing the helper plasmid pMP90.
  • Transformed Arabidopsis seeds were sown on MS medium (containing 1% agar, 1% sucrose, 100 ⁇ g / ml gentamicin and 500 ⁇ g / ml carbenicillin), and five different transformants 1-5 were selected.
  • the expected 0.5 kb DNA fragment was amplified from transformants 1-5 (FIG. 2B).
  • RNA was extracted from each of the wild strain and the transformed strains 1 to 5, and cDNA synthesized by reverse transcription using random primers was used as a template, and an upstream sequence (SF) specific to CmPMA and a downstream sequence (CR) ) was used as a primer.
  • the expected 0.5 kb DNA fragment was amplified from transformants 2-5 (FIG. 2C).
  • Example 3 (Tolerant acid / aluminum ion tolerance of transformed plants) According to the results of Example 2, it was confirmed that all of the resulting transformed strains 1 to 5 had the schizon PMA gene, although their expression levels differed.
  • a verification experiment was conducted on acid / aluminum ion resistance by acid treatment. The seeds of Arabidopsis thaliana from wild and transformed strains 1 to 5 were treated at 4 ° C for about 3 days to break the dormancy, and the liquid MS medium without sucrose adjusted to pH 5.8 was soaked in filter paper on a plastic petri dish. And germination in an incubator under continuous light irradiation at 23 ° C.
  • FIG. 4A shows that wild type and transformants 2 and 5 were incubated for 36 hours in liquid MS medium containing sucrose at pH 5.8, 4.0, 3.0, and 2.3 and containing aluminum chloride at a final concentration of 100 ⁇ M.
  • the cotyledon chlorophyll was observed and photographed using a fluorescence microscope (BX51 (trade name) manufactured by Olympus). Place the cotyledons on a slide glass, cover with a cover glass and irradiate with G excitation light, capture the autofluorescence of chlorophyll emitted from chloroplasts with a high sensitivity CCD camera (C7780 (trade name) manufactured by Hamamatsu Photonics) and image it did.
  • CCD camera C7780 (trade name) manufactured by Hamamatsu Photonics
  • FIG. 4A For the autofluorescence of chlorophyll imaged in FIG. 4A, the amount of photons actually emitted from the sample by irradiation with G excitation using a microphotometer (VIMPCS (trade name) manufactured by Hamamatsu Photonics) connected to a microscope.
  • FIG. 4B is a graph in which the total amount of chlorophyll is measured and expressed as a relative value.
  • the amount of chlorophyll is almost halved at pH 4.0, whereas in transformants 2 and 5 into which the CmPMA gene has been introduced, the amount of chlorophyll is maintained even under acidic conditions. The difference is particularly pronounced in a strongly acidic environment compared to the wild type, indicating that the damage of chloroplasts in the cells is reduced by the expression of the CmPMA gene.
  • Example 4 (Experiment on root elongation of transformed plant)
  • the wild strain and the CmPMA transformed strains 1 to 5 were analyzed for root elongation.
  • aluminum chloride was also added and the effect was examined.
  • seeds were treated at 4 ° C for 3 days to break dormancy, then sown on MS agar medium containing aluminum chloride with a final concentration of 100 ⁇ M, adjusted to pH 5.8 and 3.0, respectively, and irradiated continuously at 23 ° C. Germinated below.
  • Example 5 (Acid tolerance of transformed plants) Regarding the acid tolerance in the seedling and the root elongation in the acidic environment, it was revealed from the above Examples 3 and 4 that the CmPMA transformed strain has an excellent trait with respect to the wild strain. In addition, the wild strain and CmPMA transformants 2 and 5 were examined for resistance to acid and aluminum. First, the seeds were treated at 4 ° C. for 3 days to break dormancy, then sown in normal soil for plant cultivation, germinated under continuous light irradiation at 23 ° C., and grown for 21 days.
  • FIG. 6 The upper part of FIG. 6 is a photograph showing a state of a plant individual when one week (7 days) has passed after returning to normal soil after 48 hours of transient acid treatment.
  • the lower part of FIG. 6 is a photograph showing a state of a plant individual when 3 weeks (21 days) have passed after returning to normal soil after 48 hours of transient acid treatment.
  • the present invention provides a plant excellent in stress resistance such as acid resistance and metal ion resistance by transforming a plant using a proton ATPase gene derived from schizone that grows in an extreme environment, At present, there is concern about acidification, it can be used to improve the productivity of plants in the field of agriculture, and can also be applied as a research tool.

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Abstract

【課題】シアニディオシゾン（Cyanidioschyzon merolae）の遺伝子から酸性環境適合性に関与する遺伝子を探索し、耐酸性及び金属イオン耐性などのストレス耐性に優れた形質転換植物を作出するに有用な遺伝子を見出して植物体に耐性を付与する方法を提供するとともに、該遺伝子を用いて形質転換した植物を提供し、該遺伝子をリサーチツールとして提供する。 【解決手段】下記（a）または（b）の遺伝子を植物に導入することにより、植物に酸耐性および金属イオン耐性を付与する方法および該方法により作出される形質転換体を提供する。 （a）配列表の配列番号1に示されるアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする遺伝子。 （b）上記（a）のアミノ酸配列の一部が欠失、置換または付加されたアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする遺伝子であって、該植物に酸耐性および金属イオン耐性を付与する性質を有する遺伝子。

Description

シアニジウム類由来のプロトンATPアーゼ遺伝子を用いた耐性植物体の作出方法及び該遺伝子の用途
　本発明は、高温（42℃）、強酸性（pH2.5）環境下に生息する単細胞光合成真核生物であるシアニディオシゾン（Cyanidioschyzon merolae）（原産地：イタリア サルジニア島（サルデーニャ自治州）、例えば、日本国茨城県つくば市小野川１６－２の国立環境研究所から株番号NIES-1332として入手可能、以下、「シゾン」という）に由来する遺伝子の、植物のストレス耐性（例えば、耐酸性、酸化ストレス耐性、塩耐性、金属イオン耐性）を改善するための用途、及び、該遺伝子のその他の用途に関する。
　植物は、環境ストレスによって成長と生産性が制限されるので、地球の環境悪化が懸念される現在、特に地球全土の３割を占め、不毛土壌とされる酸性土壌における植物の生産性の改善は、農業全体の生産性を向上させ、さらには食料危機などの問題を回避するためにも重要である。特に、酸性土壌環境におけるアルミニウムイオンの植物に対する成長阻害効果が植物の生産性に重大な影響を与えることが知られており、酸性土壌問題と関連した陸上植物のアルミニウムイオン耐性に関わる遺伝子等が、既に幾つか報告されている。また、日本においても酸性雨の影響で植物が枯死する例も報告されており、耐酸性植物の研究が急務となっている。
　従来、pH2で最もよく増殖するイデユコゴメ（Cyanidium caldarium） 由来のプロトンATPアーゼをコードする遺伝子のクローニング及び同酵素の構造解明がOhta等によって行われたが（非特許文献1）、その遺伝子由来のタンパク質の詳細な分子機構と機能は明らかではなかった。また、単子葉植物に属する海草アマモ（Zostera marina）から細胞膜型のプロトンATPアーゼ遺伝子が単離され、単細胞の酵母に導入してそのタンパク質を機能させると、酵母細胞の耐酸性能力が向上したという報告がある（特許文献１及び２）。
　植物の耐酸性に関わる遺伝子としては、シロイヌナズナ（Arabidopsis thaliana）のstop1遺伝子が報告されている。通常シロイヌナズナはpH4.3程度の酸性土壌下でも、根は中性土壌と同様に伸長可能であるが、このstop1遺伝子が機能しなくなると、pH4.3において根の伸長が著しく抑制されることがIuchi等によって報告されている（非特許文献２）。また、Sawaki等はstop1変異体のトランスクリプトーム解析により、stop1遺伝子産物が酸性土壌環境で機能すると考えられるアルミニウムイオンやプロトンに応答する遺伝子の調節に関わっていることを示唆している（非特許文献３）。しかしながら、stop1遺伝子はシロイヌナズナが元来備え持つpH4.5程度までの酸性土壌環境下における生育限界領域に寄与しているが、この遺伝子の発見により従来以上にシロイヌナズナの耐酸性能力が向上したわけではない。
　酸性土壌環境における植物のプロトンATPアーゼの機能解析についてはShen等によるダイズ（Glycine max）を用いた実験で報告があり、アルミニウムイオンのストレスが植物の根に影響すると、クエン酸の分泌によるアルミニウムイオンのキレート作用と共に、細胞膜のプロトンATPアーゼの転写、翻訳、リン酸化などが促進されることが明らかにされ、アルミニウムイオンストレスとプロトンATPアーゼ活性に密接な関係があることが示唆されている（非特許文献４）。また、Yang等はツルアズキ（Vigna umbellata）を用いた実験で、土壌へのマグネシウムの添加が根からクエン酸の放出を促進させ、アルミニウムイオンによって不活化される細胞膜のプロトンATPアーゼの活性を回復させることを報告している（非特許文献５）。また、Ma等はオオムギのアルミニウム耐性品種よりアルミニウム耐性に関与する遺伝子（HvMATE遺伝子）を同定し、報告している（特許文献３）。
　しかしながら、上記した従来の研究及び報告は何れも、通常環境下での陸上植物の基本的な耐酸性機構を示したか、あるいは普通の環境で生育する生物の遺伝子を外来遺伝子として用いて酸耐性を付与したものに限られている。
　一方、強酸性、高金属イオン濃度環境などの極限環境で生育する生物は、そのような環境への高い生育適合性を保証する遺伝子を備えているものと考えられ、そのゲノムや遺伝子の発現プロファイルを解析することにより、酸耐性や金属イオン耐性などのストレス耐性が高められた形質転換植物の生産に利用できる遺伝子情報が得られる可能性がある。
　Enami等（非特許文献６）は、イデユコゴメにおいてその耐酸性機構とその光合成特性について解析を行い、報告をしている。イデユコゴメは細胞が内性胞子を形成して連続する２回の細胞分裂で４つの娘細胞に分裂増殖すること、またきわめて強固な細胞壁を持つことがシゾンとの大きな違いであるが、個々の細胞構造はシゾンと類似している。イデユコゴメでは酸化的リン酸化、あるいは光合成によって作られた細胞内のATP濃度に依存して、細胞膜のプロトンATPアーゼが活性化されることが示されており、細胞内ATP濃度が減少すると細胞内pHが急速に酸性化することが明らかとなった。このような細胞内のATP濃度依存的な胞膜のプロトンATPアーゼの活性機構がイデユコゴメの細胞内pHを中性付近に保つことに重要な役割を果たしていることが示唆された。このプロトンATPアーゼの活性調節機構は、タンパク質のＣ末端にあるスレオニン残基をリン酸化して活性を調節する陸上植物の調節機構とは異なっており、ユニークな特徴である。一方、シゾンも、光合成真核生物にとっては極限環境である強酸性の温泉（pH 0.5-1, 45℃-55℃）に生息し、そのタンパク質のアミノ酸配列の類似性からイデユコゴメと同様のプロトンATPアーゼ活性調節機構を備えていると考えられる。また、各種の高濃度の金属イオンに対しても、陸上植物と比較して極めて強い耐性を備えていることがMisumi等によって報告されている（非特許文献７）。このシゾンの全てのゲノム（核(16,546,747bp)、ミトコンドリア(32,211bp)及び色素体(149,987bp)の塩基配列は、既に決定されている（非特許文献８及び９）。
Ohta H, Shirakawa H, Uchida K, Yoshida M, Matuo Y, Enami I., "Cloning and sequencing of the gene encoding the plasma membrane H(+)-ATPase from an acidophilic red alga, Cyanidium caldarium.", Biochim Biophys Acta. (1997) 1319:9-13. Iuchi S, Koyama H, Iuchi A, Kobayashi Y, Kitabayashi S, Kobayashi Y, Ikka T, Hirayama T, Shinozaki K, Kobayashi M., "Zinc finger protein STOP1 is critical for proton tolerance in Arabidopsis and coregulates a key gene in aluminum tolerance.", Proc Natl Acad Sci U S A. (2007) 104:9900-9905. Sawaki Y, Iuchi S, Kobayashi Y, Kobayashi Y, Ikka T, Sakurai N, Fujita M, Shinozaki K, Shibata D, Kobayashi M, Koyama H., "STOP1　Regulates Multiple Genes which Protect Arabidopsis from Proton and Aluminum Toxicities.", Plant Physiol. (2009) 150: 281-294. Shen H, He LF, Sasaki T, Yamamoto Y, Zheng SJ, Ligaba A, Yan XL, Ahn SJ, Yamaguchi M, Sasakawa H, Matsumoto H. "Citrate secretion coupled with the modulation of soybean root tip under aluminum stress. Up-regulation of transcription, translation, and threonine-oriented phosphorylation of plasma membrane H+-ATPase.", Plant Physiol. (2005) 138:287-296. Yang JL, You JF, Li YY, Wu P, Zheng SJ., "Magnesium enhances aluminum-induced citrate secretion in rice bean roots (Vigna umbellata) by restoring plasma membrane H+-ATPase activity.", Plant Cell Physiol. (2007) 48:66-73. Enami E, Adachi H, Shen JR., "Mechanisms of acid-tolerance and characteristics of photosystems in an acido- and thermo-philic red alge Cyanidium caldarium." In Red Algae in Genomic Age. Joseph Sechbach, David J. Chapman and Andreas Weber (eds.) Springer, 2009). Misumi O, Sakajiri T, Hirooka S, Kuroiwa H, Kuroiwa T., "Cytological studies of metal ion tolerance in the red alga Cyanidioschyzon merolae.", Cytologia　(2008) 73: 437-443. Matsuzaki M, Misumi O, Shin-I T, Maruyama S, Takahara M, Miyagishima SY, Mori T, Nishida K, Yagisawa F, Nishida K, Yoshida Y, Nishimura Y, Nakao S, Kobayashi T, Momoyama Y, Higashiyama T, Minoda A, Sano M, Nomoto H, Oishi K, Hayashi H, Ohta F, Nishizaka S Haga S, Miura S. Morishita T, Kabeya Y, Terasawa K, Suzuki Y, Ishii Y, Asakawa S, Takano H, Ohta N, Kuroiwa H, Tanaka K, Shimizu N, Sugano S, Sato N, Nozaki H, Ogasawara N, Kohara Y, Kuroiwa T, "Genome sequence of the ultrasmall unicellular red alga Cyanidioschyzon merolae 10D." Nature, (2004) 428: 653-657. Nozaki H, Takano H, Misumi O, Terasawa K, Matsuzaki M, Maruyama S, Nishida K, Yagisawa F, Yoshida Y, Fujiwara T, Takio S, Tamura K, Chung S J, Nakamura S, Kuroiwa H, Tanaka K, Sato N and Kuroiwa T, "A 100%-complete sequence reveals unusually simple genomic features in the hot-spring red alga Cyanidioschyzon merolae.", BMC Biol., (2007) 5: 28.
特開２００７－１６６９２１号公報 特開２００８－２５９４７５号公報 特開２００８－２２０３０８号公報
　本発明の目的は、シゾンの遺伝子から酸性環境適合性に関与する遺伝子を探索し、探索した遺伝子の中から、耐酸性及び金属イオン耐性などのストレス耐性に優れた形質転換（トランスジェニック）植物を作出するに有用な遺伝子を提供するとともに、該遺伝子を用いて形質転換した植物を提供することにある。
　また、本発明の他の目的は、上記耐酸性及び金属イオン耐性などのストレス耐性に関与する遺伝子をリサーチツールとして提供することにある。
　本発明者らは、シゾンの酸性環境適合性に関与するタンパク質のうち、配列表の配列番号１に示されるアミノ酸配列を含むタンパク質が、多種の植物の細胞膜型プロトンATPアーゼと部分的に相同性を有する一方で、構造的、また進化的に独自の特徴を持ち、植物等の宿主の耐酸性及び金属イオン耐性を改善するために有用であること見出し、本発明が完成するに至った。
　したがって、本発明は、その一局面によれば、下記の方法を提供する。
下記（a）または（b）の遺伝子を植物に導入することにより、植物に酸耐性および金属イオン耐性を付与する方法。
（a）配列表の配列番号1に示されるアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする遺伝子。
（b）配列表の配列番号1に示されるアミノ酸配列の一部が欠失、置換または付加されたアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする遺伝子であって、植物に導入することにより、該植物に酸耐性および金属イオン耐性を付与する性質を有する遺伝子。
　本発明の上記方法は、例えば、上記（a）または（b）の遺伝子をベクターに組み込んで植物に導入することによって実施できる。
　また、本発明は、さらに他の局面によれば、上記方法により作出された形質転換植物を提供する。
　また、本発明は、さらに他の局面によれば、上記遺伝子をマーカー遺伝子として含み、導入された宿主生物に酸耐性および金属イオン耐性を付与する事を特徴とするベクター、および、該ベクターを含む形質転換体を提供する。
　また、本発明は、さらに他の局面によれば、上記ベクターを宿主生物に導入して形質転換し、該宿主生物を酸性条件下及び／又は金属イオン存在下などのストレス条件下で生育させることにより、酸耐性及び／又は金属イオン耐性を備えた形質転換体を選抜することを特徴とする、形質転換体のスクリーニング方法を提供する。
　本発明によれば、極限環境で生育するシゾンに由来し、植物等の宿主生物中で発現可能な特定の遺伝子を用いて、植物に酸耐性および金属イオン耐性を付与することができる。このシゾンに由来する遺伝子が植物中で発現するタンパク質と植物の各種ストレス耐性との関係は未だ不明な点も多いが、本発明によれば、該遺伝子を植物等の宿主に導入して形質転換して、該宿主中で該遺伝子を発現させることにより、その耐酸性及び／又は金属イオン耐性などを向上させることができる。
配列番号２に示すシゾンのプロトンATPアーゼ遺伝子(CMQ247、以下CmPMA遺伝子とも表記)のドメイン構造を示す概略図。 CmPMA遺伝子と、イネ（Oryza sativa）のプロトンATPアーゼ遺伝子OsPMA(Os 12g0638700)と、シロイヌナズナのプロトンATPアーゼ遺伝子PMA(AHA4)のＣ末端のアミノ酸配列を比較したアライメントの図。 バイナリーベクターpPZP221に配列表の配列番号２のCmPMA遺伝子を挿入して構築した発現ベクター(35S:CmPMA)（下記実施例２）の模式図である。 下記実施例２で、野生株及び形質転換株１～５から抽出したDNAを、CmPMA遺伝子に特異的な上流配列SF及び同じく下流配列CRをプライマーとして用いてPCR法で増幅した後、電気泳動した結果を示す0.5kb付近のバンドの写真である。図中、Wは野生株を示し、数字１～５は形質転換株を示す。 上段（対照実験）は、下記実施例２で、野生株及び形質転換株１～5から抽出したRNAを、ランダムプライマーを用いて逆転写して合成したcDNAを、AtGAPDH遺伝子に特異的な配列をプライマーとして用いてPCR法で増幅した後、電気泳動した結果を示す0.6kb付近のバンドの写真である。下段は、上段で用いたものと同じcDNAを鋳型として、CmPMA遺伝子に特異的な上流配列SF及び同じく下流配列CRをプライマーとして用いてPCR法で増幅した後、電気泳動した結果を示す0.5kb付近のバンドの写真である。図中、Wは野生株を示し、数字１～５は形質転換株を示す。 下記実施例３における野生株並びにCmPMA遺伝子が導入された形質転換株２及び５の芽生えの酸耐性の実験結果を示す写真である。左側はpH3.0のショ糖を含まない塩化アルミニウム濃度100μMのMS培地で処理した場合を示し、右側は、pH2.3とした以外左側と同様の培地で処理した場合を示す。WTは野生株を示し、PMA2及びPMA5はそれぞれ形質転換株２及び５を示す。 野生株並びにCmPMA遺伝子が導入された形質転換株２及び５を用いて下記実施例３で得たクロロフィルの自家蛍光を示す写真である。図中、左から右に向かって、pH5.8, 4.0, 3.0, 2.3のMS培地で処理した子葉を示す。また、図中、WTは野生株を示し、PMA2及びPMA5はそれぞれ形質転換株２及び５を示す。 下記実施例３において高感度顕微測光装置によりクロロフィル量を計測した結果を示すグラフである。グラフの値は相対的な全クロロフィル量で示されている。図中、wild typeは野生株を示し、PMA2及びPMA5はそれぞれ形質転換株２及び５を示す。 下記実施例４における野生株並びにCmPMA遺伝子が導入された形質転換株１～５の根の伸長に関する実験結果を示す写真である。図中、上段がMS寒天培地に播種後７日目の状態を示す写真であり、下段がMS寒天培地に播種後２１日目の状態を示す写真であり、左欄がpH5.8塩化アルミニウム濃度100μMの MS寒天培地で培養した例を示し、右欄がpH3.0塩化アルミニウム濃度100μMの MS寒天培地で培養した例を示す。図中、WTは野生株を示し、PMA1-5はそれぞれ形質転換株１～５を示す。 下記実施例５におけるシロイヌナズナの野生株並びに形質転換株２及び５の土壌生育試験結果を示す写真である。図中、左から右に向かって、pH5.8, 4.0, 3.0, 2.35で処理した結果を示す。図中、WTは野生株を示し、PMA2及びPMA5はそれぞれ形質転換株２及び５を示す。
　本発明によれば、配列表の配列番号１に示されるアミノ酸配列を含むタンパク質（以下「タンパク質（ａ）」という）を発現する形質転換植物を作出することができる。タンパク質（ａ）のタンパク質およびそれをコードする遺伝子である配列表の配列番号２のDNA配列は、ホモロジー検索からシゾンのプロトンATPアーゼおよびそれをコードする遺伝子であると推定されている。遺伝子工学及びタンパク質工学の分野における当業者にとって、タンパク質（ａ）のアミノ酸配列の一部を欠失、置換または付加させた改質タンパク質を得ることは容易である。したがって、タンパク質（ａ）のアミノ酸配列の一部が欠失、置換または付加されたアミノ酸配列を含むタンパク質（以下「タンパク質（ｂ）」という）も、本発明の形質転換植物を作出するために使用することができると考えられる。かかる改変は、通常、配列表の配列番号１に示すアミノ酸配列において２０個以下、好ましくは１０個以下、更に好ましくは５個以下のアミノ酸を削除、置換または付加することにより行われ、得られるタンパク質が植物等の生物に酸耐性または金属イオン耐性を付与する限り、タンパク質（ｂ）の範疇に含まれる。
　タンパク質（ａ）をコードする遺伝子としては、配列表の配列番号２に示される塩基配列からなるものが例示されるが、コドンの縮重に鑑みれば、これのみに限定されるものでないことは明らかであり、また、DNAだけでなくRNAも含まれる。また、上記改変タンパク質（ｂ）は、例えば、配列表の配列番号２に示される遺伝子配列を遺伝子工学的手法によって改変し、適当な宿主中で発現させることにより得ることができる。
　本発明のタンパク質（ａ）または（ｂ）をコードする遺伝子（以下、「本発明の遺伝子」という）を用いて植物を形質転換する方法としては、本技術分野における通常の方法を用いる事ができる。例えば、本発明の遺伝子を薬剤耐性遺伝子を備えたプラスミドベクターに組み込み、この組み換えプラスミドをアグロバクテリウム菌に導入した後、このアグロバクテリウム菌を目的とする植物に感染させて形質転換植物を作製し、薬剤耐性を示す形質転換植物を選抜する事により、形質転換を行うことができる。また、パーティクルガン法、電気穿孔法等の方法を用いて本発明の遺伝子を直接植物細胞に導入して形質転換を行うこともできる。
　本発明の遺伝子は、植物で過剰発現するように適当なプロモーター遺伝子に連結させて植物に導入することが好ましい。プロモーター遺伝子としては、植物に導入して使用する発現ベクターに用いられているものが使用できると考えられ、例えば、カリフラワーモザイクウイルス35Sプロモーターなどが挙げられる。生殖細胞系列ではアクチンプロモーターなど、その他の組織・器官特異的なプロモーターの利用も考えられる。
　本発明で形質転換可能な植物としては、シロイヌナズナの他、イネ、オオムギ、コムギ、トマト、大豆、アルファルファ、トウモロコシ、サトウキビ、ジャガイモなどの穀類、野菜類が挙げられる。
　本発明の遺伝子は、植物以外にも、酵母、大腸菌等の主としてリサーチツールとして用いられている宿主の形質転換にも使用することができる。例えば、本発明の遺伝子は、宿主に酸耐性、アルミニウムイオン等の金属イオン耐性等のストレス耐性を付与することができると考えられるので、形質転換又は発現用ベクター等のベクターのマーカー遺伝子としても使用できる。ベクターとしては、上記のようなアグロバクテリウム菌の形質転換に用いられるプラスミドベクターの他、リサーチツールとして使用されている公知のベクターを使用することができる。例えば、公知のベクターに本発明の遺伝子をその本来の薬剤耐性マーカー遺伝子の代わりに組み込んで改変することにより、酸耐性遺伝子又は金属イオン耐性遺伝子をマーカーとして備えたベクターを提供することができる。かかる本発明のベクターを宿主に導入して形質転換し、該宿主を酸性条件又は高金属イオン濃度条件下などのストレス条件下で生育させることにより、形質転換体を採取することができる。すなわち、本発明のベクターは、形質転換体の製造及び／又はスクリーニングに使用することができる。なお、本発明の遺伝子は、宿主に耐酸性を付与することができるので、アルミニウムイオンだけでなく、酸性条件下で溶出する多くの金属イオンに対する耐性を宿主に付与することができると考えられる。
実施例１（EST解析）
　Matsuzaki等（上記非特許文献８参照）の方法に従い、シゾンのEST解析を行った。その結果を表１に示す。
　表１には、様々な生育段階（対数増殖期、定常期、明期、暗期）でシゾンを実験室の培養条件下（2倍濃度のアレン培地、pH2.3、温度42℃）で生育させ、そこから全mRNAを抽出して、それを鋳型として完全長cDNAライブラリーを作製し、個々のクローンのベクターの末端より解読した32917リード中、重複の多かった遺伝子上位10個についてまとめたものである。すなわち、これら遺伝子はシゾンが高温、強酸性、高金属イオン濃度環境下で通常に生育するために必須なハウスキーピング遺伝子ということができる。その結果、シゾンの細胞内において最も高発現している遺伝子はCMQ247Cであった。この遺伝子CMQ247Cは、ホモロジー検索の結果、細胞膜プロトンATPアーゼ遺伝子と推定された。シゾンは単細胞の真核細胞であり、細胞膜が強酸性の外界と細胞内環境を区画し、細胞質のpHを中性付近に保つ役割を果たしていると考えられる。シゾンの細胞膜を介した細胞内外のプロトン濃度の差はおよそ10万倍と考えられ、その濃度勾配を保っているのが、プロトンATPアーゼタンパク質のポンプ活性である。そのために、シゾンの全遺伝子の中でプロトンATPアーゼ遺伝子の発現量が最も高かったものと考えられ、シゾンの耐酸性、金属イオン耐性などの環境耐性に重要な役割を担っているものと考えられる。したがって、以後、シゾンのゲノム中に唯一１コピーのみコードされているこのプロトンATPアーゼ（CmPMA）の遺伝子を解析することとした。解析の結果、このプロトンATPアーゼ（CmPMA）は、配列表の配列番号１に示される954個のアミノ酸残基からなるタンパク質であり、該タンパク質をコードするDNA配列は配列表の配列番号２に示されるものであることがわかった。配列番号１のアミノ酸配列には、N末端からカチオンのATPaseドメイン、続いてP-タイプのATPaseドメイン、Hydrolaseのドメインそして膜貫通ドメインが続くことが明らかとなった（図１Ａ、図１Ｂ）。従って、このプロトンATPアーゼ（CmPMA）は、細胞膜に局在するものと推定した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
実施例２（CmPMA遺伝子を用いたシロイヌナズナの形質転換）
　図２Ａの35S:CmPMAに示すように、ゲンタマイシン耐性（aaC1）遺伝子、カリフラワーモザイクウイルス35Sプロモーター（CaMV35S-Ω）及びNOSターミネーター（NOS3’）を含むバイナリーベクターpPZP221中に、配列表の配列番号２に示されるプロトンATPアーゼ（CmPMA）をコードする遺伝子の全長を、上記プロモーター（CaMV35S-Ω）の制御下に位置するようにクローニングした。得られたベクターを、ヘルパープラスミドpMP90を含むアグロバクテリウム（Agrobacterium tumefaciens）を用いたフローラルディップ法によって、シロイヌナズナに導入した。形質転換したシロイヌナズナの種子をMS培地（１％寒天、１％スクロース、１００μｇ／ｍｌゲンタマイシン及び５００μｇ／ｍｌカルベニシリン含有）上に蒔き、異なる５つの形質転換株１～５を選択した。
　野生株及び形質転換株１～５のそれぞれからDNAを抽出し、CmPMA遺伝子に特異的な上流配列(SF)及び同じく下流配列(CR)をプライマーとして用いてPCR法によりシゾン由来のCmPMA遺伝子の断片を増幅させた。予想される0.5kbのDNA断片が形質転換株１～５から増幅された（図２Ｂ）。また、野生株及び形質転換株１～５のそれぞれからRNAを抽出し、ランダムプライマーを用いて逆転写して合成したcDNAを鋳型とし、CmPMAに特異的な上流配列(SF)及び同じく下流配列(CR)をプライマーとして用いたPCR法により増幅させた。予想される0.5kbのDNA断片が形質転換株２～５から増幅された（図２Ｃ）。これらの結果を図２Ｂ及び図２Ｃに示す。図２Ｂ及び図２Ｃから、CmPMA遺伝子は、野生株と系統１では発現していなかったが、系統２～５の４つの形質転換株では発現していることが確認された。
実施例３（形質転換植物の芽生えの酸・アルミニウムイオン耐性）
　実施例２の結果によって、得られた導入形質転換株１～５は発現の程度の差はあれ、何れもシゾンのPMA遺伝子を保持していることが確認出来たため、その芽生えの一過的な酸処理による酸・アルミニウムイオン耐性について検証実験を行った。野生株及び形質転換株１～５のシロイヌナズナの種子を４℃で３日間ほど処理して休眠打破を行い、プラスチックシャーレ上の濾紙にpH5.8に調整したショ糖を含まない液体MS培地を浸し、２３℃の連続光照射下のインキュベータ内で発芽させた。播種後23℃で６日を経過し、丁度子葉が展開した程度の芽生えを、今度はそれぞれ、pH5.8, 4.0, 3.0, 2.3のショ糖を含まない、最終濃度100μM濃度の塩化アルミニウムを含む液体MS培地で36時間インキュベートした。その結果、概ねCmPMA遺伝子が導入された形質転換シロイヌナズナは野生株に比べて子葉の白化が抑制されて、目視で葉の緑色が残っていることが確認された。一方野生株ではpH3.0以下の処理で完全に子葉が不可逆的な白化を起こし、死滅した。特に繰り返し実験を行った結果、形質転換株２及び５の系統が、芽生えの一過的酸処理において再現性を持って比較的強い耐性能を示すことが判った。その様子を図３に示す。図３から、特に、形質転換株２の系統は芽生えでは非常に強い耐性を示したことがわかる。
　図４Ａは野生型と形質転換株２及び５をそれぞれ、pH5.8, 4.0, 3.0, 2.3のショ糖を含まない、最終濃度100μM濃度の塩化アルミニウムを含む液体MS培地で36時間インキュベートした後の子葉のクロロフィルの様子を、蛍光顕微鏡（BX51（商品名）オリンパス社製）を用いて観察・撮影したものである。子葉をスライドガラス上に置き、カバーガラスをかけてＧ励起光を照射し、葉緑体から発せられるクロロフィルの自家蛍光を高感度CCDカメラ（C7780（商品名）浜松ホトニクス社製）で取り込み画像化した。野生株ではpH4.0から自家蛍光が子葉の周辺部から減少し、培地のpHが3.0, 2.35と酸性化するに従って、内部組織のクロロフィルまでほぼ完全に消失した。一方、CmPMA遺伝子を導入した形質転換体２と５の系統では培地の酸性度が強くなってもクロロフィルの自家蛍光の減少は殆ど認められなかった。なお、当該子葉は、図３で示した芽生えの子葉に対応する。
　図４Ａで画像化されたクロロフィルの自家蛍光について、顕微鏡に接続した顕微測光装置（VIMPCS（商品名）浜松ホトニクス社製）を用いて、Ｇ励起の照射によりサンプルから実際に放出される光子の量を計測し、全クロロフィル量を数値化し、それを相対値として示したものが図４Ｂのグラフである。野生株ではpH4.0の時点でクロロフィル量がほぼ半減するのに対して、CmPMA遺伝子を導入した形質転換株２及び５では酸性条件下でもクロロフィル量が維持されている。野生株と比較して特に強酸性環境下でその差が顕著に現れており、CmPMA遺伝子の発現により細胞内にある葉緑体の損傷が軽減されていることがわかる。
実施例４（形質転換植物の根の伸長に関する実験）
　次に、酸性土壌下で植物が最も影響を受ける部分は根であるため、野生株とCmPMA形質転換株１～５について、根の伸長について解析を行った。実際の酸性土壌環境下で根が最も影響を受ける要素はアルミニウムイオンであるため、同時に塩化アルミニウムも添加してその効果を調べた。まず、種子を４℃で３日間処理して休眠打破を行い、その後、それぞれpH5.8と3.0に調整した、最終濃度100μMの塩化アルミニウムを含むMS寒天培地に播種し、23℃の連続光照射下で発芽させた。発芽後直ちに、プレートを垂直に立てて根の伸長の様子を経時的に観察した。播種後７日目と２１日目の結果を図５に示す。野生株とCmPMA形質転換株１～５共に、pH5.8の培地の方がpH3.0の培地より根の伸長が良かった。また、pH5.8の方がpH3.0よりも展開した葉が大きく、その色も濃い緑色である。一方同じpH条件内での比較では、pH5.8とpH3.0の両方で、野生株よりCmPMA形質転換株１～５の方が何れも根の伸長がよく野生株の２倍程度の長さになっていた。形質転換株は野生株と比較して、中性領域、酸性領域の両方で根の伸長が促進されていることが明らかとなった。
実施例５（形質転換植物体の酸耐性）
　芽生えにおける酸耐性と、酸性環境における根の伸長に関しては、野生株に対してCmPMA形質転換株が優れた形質を持つことが上記実施例３及び４より明らかとなったので、成長した個体段階においても、野生株とCmPMA形質転換株２及び５について酸およびアルミニウムに対する耐性能を調べた。まず、種子を４℃で３日間処理して休眠打破を行い、その後、通常の植物栽培用の土壌に播種し、２３℃連続光照射下で発芽させ、２１日間生育させた。その後、根を傷つけないように一旦土壌から植物個体を引き抜いてそれぞれ、pH5.8, 4.0, 3.0, 2.3のショ糖を含まない、最終濃度100μM濃度の塩化アルミニウムを含む液体MS培地に根の部分のみを48時間浸し、再びpH5.8近辺に調整した土壌中に戻した。その結果を図６に示す。図６上段は48時間の一過的酸処理後、通常の土壌に戻して１週間（７日）が経過したときの植物個体の様子を示す写真である。一方、図６下段は48時間の一過的酸処理後、通常の土壌に戻して３週間（21日）が経過したときの植物個体の様子を示す写真である。処理後１週間後では野生株及び形質転換株の何れも比較的緑色を保っているが、処理後３週間後では野生株はpH4.0以下で処理した個体は全て枯死してしまったのに対し、CmPMA遺伝子を導入した形質転換株２及び５は何れもpH4.0以下で処理した個体の大部分が生育を続け、一部の個体では花芽を形成した。以上の結果から、CmPMA形質導入株は、生育段階が進んだ個体においても酸・アルミニウムイオン耐性能を獲得していると考えられた。
　本発明は、極限環境で生育するシゾン由来のプロトンATPアーゼ遺伝子を用いて植物を形質転換することにより、耐酸性及び金属イオン耐性などのストレス耐性に優れた植物を提供するものであり、土壌の酸性化が懸念される現在、農業の分野において、植物の生産性を向上させるために利用することができ、また、リサーチツールとしても応用できる。

Claims (8)

  1. 下記（a）または（b）の遺伝子を植物に導入することにより、植物に酸耐性および金属イオン耐性を付与する方法。
    （a）配列表の配列番号1に示されるアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする遺伝子。
    （b）配列表の配列番号1に示されるアミノ酸配列の一部が欠失、置換または付加されたアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする遺伝子であって、植物に導入することにより、該植物に酸耐性および金属イオン耐性を付与する性質を有する遺伝子。
  2. 上記（a）の遺伝子が配列表の配列番号2に示される塩基配列からなる遺伝子である、請求項1に記載の方法。
  3. 上記（a）または（b）の遺伝子をベクターに組み込んで植物に導入する、請求項1または2の方法。
  4. 請求項1乃至3の何れか１項に記載の方法により作出された形質転換植物。
  5. 下記（a）または（b）の遺伝子をマーカー遺伝子として含み、導入された宿主生物に酸耐性および金属イオン耐性を付与する事を特徴とするベクター。
    （a）配列表の配列番号1に示されるアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする遺伝子。
    （b）配列表の配列番号1に示されるアミノ酸配列の一部が欠失、置換または付加されたアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする遺伝子であって、宿主生物に導入することにより、該宿主生物に酸耐性および金属イオン耐性を付与する性質を有する遺伝子。
  6. 上記（a）の遺伝子が配列表の配列番号2に示される塩基配列からなる遺伝子である、請求項5に記載のベクター。
  7. 請求項5または6のベクターを含む形質転換体。
  8. 請求項5または6に記載のベクターを宿主生物に導入して形質転換し、該宿主生物を酸性条件下及び／又は金属イオン存在下で生育させることにより、酸耐性及び／又は金属イオン耐性を備えた形質転換体を選抜することを特徴とする、形質転換体のスクリーニング方法。
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