WO2010113984A1 - リポソーム組成物 - Google Patents

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WO2010113984A1
WO2010113984A1 PCT/JP2010/055770 JP2010055770W WO2010113984A1 WO 2010113984 A1 WO2010113984 A1 WO 2010113984A1 JP 2010055770 W JP2010055770 W JP 2010055770W WO 2010113984 A1 WO2010113984 A1 WO 2010113984A1
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liposome
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dispersion
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菊池　寛
健治 兵頭
比呂之 石原
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エーザイ・アール・アンド・ディー・マネジメント株式会社
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Definitions

  • the present invention relates to a novel liposome composition containing eribulin or a pharmacologically acceptable salt thereof.
  • the present invention also relates to a method for producing the liposome composition.
  • Liposomes are fine closed vesicles having an internal phase surrounded by one or more lipid bilayers, and can retain a water-soluble substance in the internal phase and a fat-soluble substance in the lipid bilayer.
  • When encapsulating an active compound in a liposome and delivering it to a target tissue how to encapsulate the active compound in the liposome with high efficiency and how to ensure the retention stability of the active compound by the liposome It becomes an important point.
  • lipid-soluble compounds are encapsulated in liposomes, a high encapsulation rate can be achieved relatively easily.
  • lipid film method vortex method
  • reverse phase evaporation method surfactant removal method
  • freeze-thaw method remote loading method
  • remote loading method pH gradient method, ion gradient method
  • the pH gradient method which is a remote loading method utilizing a pH gradient, is a technique for incorporating a compound into a liposome by utilizing the movement of a molecular / ionic dissociation equilibrium depending on the pH of the target compound.
  • An example of a compound encapsulated in liposomes by the pH gradient method is, for example, doxorubicin (DOX, pKa: 8.2). After preparing a liposome solution with a pH 4 buffer, the liposome outer phase is replaced with a pH 7 buffer.
  • DOX When DOX is added to this liposome solution, the molecular type DOX becomes lipid-soluble in the added pH 7 solution, and therefore migrates to the liposome membrane instead of the aqueous phase. Further, when DOX transferred to the liposome membrane comes into contact with the liposome internal phase at pH 4, it becomes an ionic form and dissolves in the liposome internal phase. Thus, DOX is transported from the outer phase of the liposome to the inner phase by the movement of the dissociation equilibrium (see Non-Patent Document 1, Non-Patent Document 2, and Patent Document 1).
  • Non-Patent Document 3 discloses a technique for improving the encapsulation rate of an active compound by adding ethanol together with the active compound to the liposome external phase when performing a pH gradient method on a liposome having a special composition called cholesterol-free liposome.
  • Patent Document 2 discloses a technique for improving the encapsulation rate of an active compound by causing copper ions to be present in the liposome internal phase in addition to the pH gradient.
  • the ammonium sulfate method which is a remote loading method using an ammonium sulfate ion gradient, is a technique for incorporating an active compound into the liposome internal phase using an ion gradient such as divalent ammonium sulfate instead of the pH gradient in the pH gradient method (See Non-Patent Document 1 and Patent Document 3.)
  • Patent Document 4 discloses a technique for incorporating an active compound into a liposome by adding a boronic acid together with the active compound to the liposome external phase in addition to an ion gradient by ammonium sulfate.
  • Patent Document 5 discloses that the active compound is incorporated into liposomes by using an ion gradient caused by glucuronic acid anions instead of an ion gradient caused by ammonium sulfate, so that the release rate of the active compound is increased as compared with the case where ammonium sulfate is used. Techniques for improving are disclosed.
  • the remote loading method is an excellent encapsulation method in terms of the encapsulation rate.
  • Doxil DOX's liposomal formulation
  • the active compound tends to leak from the liposome in the plasma when the remote loading method is used.
  • the retention stability of the active compound is low.
  • the problem to be solved by the present invention is to provide a liposome composition having high retention stability and high encapsulation rate of an active compound.
  • a liposome composition comprising eribulin or a pharmacologically acceptable salt thereof as an active compound has the retention stability of the active compound in the liposome composition and It was found that the encapsulation rate was extremely high, and the present invention was completed.
  • a liposome composition comprising liposomes and containing an active compound in the liposome internal phase, wherein the active compound is eribulin or a pharmaceutically acceptable salt thereof.
  • the liposome composition according to any one of 1 to 12 comprising a saccharide, an electrolyte, and / or an amino acid in the liposome external phase.
  • the liposome composition according to any one of 1 to 13, comprising a saccharide or electrolyte and an amino acid in the liposome external phase.
  • the liposome composition according to any one of 1 to 16 comprising sucrose or sodium chloride and histidine in the liposome external phase.
  • 18 The liposome composition according to any one of 1 to 17, which is substantially free from cyclodextrin in the liposome internal phase.
  • the liposome composition according to 23, comprising 10 to 80% of the hydrogenated phosphatidylcholine, 1 to 60% of the cholesterol, and 0 to 50% of the distearoylphosphatidylethanolamine-polyethylene glycol condensate.
  • 30. The method according to 28 or 29, wherein the pH is the pH of the liposome external phase of the liposomal acid solution in the step of mixing the liposome dispersion and the active compound.
  • Providing the liposome dispersion liquid comprises a liposome, and a liposome preparation liquid containing an ammonium salt in the liposome internal phase and the liposome external phase; Replacing or diluting the liposome external phase of the liposome preparation solution.
  • a novel liposome composition can be provided.
  • the liposome composition of the present invention encapsulates the active compound in the liposome internal phase with high efficiency, and has high retention stability of the active compound.
  • FIG. 6 shows the antitumor activity of eribulin mesylate by liposomes in nude mice bearing in vivo Fadu.
  • FIG. 5 shows the antitumor activity of eribulin mesylate by liposomes in nude mice bearing in vivo ACHN.
  • Liposome means a microclosed vesicle having an internal phase surrounded by a lipid bilayer.
  • the liposome is a small unilamellar vesicle (SUV), a large unilamellar vesicle (LUV), a larger unilamellar vesicle (GUV), or a concentric circle.
  • Multilamellar vesicles (MLV) having a plurality of membranes, liposomes having a plurality of membranes irregularly (MVV: Multivesicular vesicles) and the like are included.
  • “Liposome internal phase” means an aqueous region surrounded by the lipid bilayer of the liposome, and is used synonymously with “internal aqueous phase” and “intraliposomal aqueous phase”.
  • “Liposome external phase” means a region that is not surrounded by the lipid bilayer of the liposome (ie, a region other than the internal phase and the lipid bilayer) when the liposome is dispersed in a liquid.
  • “Liposome composition” means a composition containing liposomes and further containing eribulin mesylate in the liposome internal phase.
  • the liposome composition includes solid and liquid forms.
  • “Liposome dispersion” means a composition containing liposomes before the active compound is introduced into the liposome internal phase.
  • the “liposome preparation liquid” means a composition containing liposomes, which is before adjusting the liposome external phase in order to encapsulate eribulin mesylate in the liposome internal phase.
  • the “liposome reagent” means a liposome dispersion when in a liquid state, and a reagent that can be obtained by dissolving or suspending in a predetermined solvent when in a solid state.
  • the solvent will be described later.
  • the solid liposome reagent can be obtained, for example, by drying a liposome dispersion.
  • mixing the solid and the liquid includes dissolving the solid in the liquid and suspending, and the mixing, dissolution, and suspension are used interchangeably.
  • the solvent and the dispersion medium are used interchangeably.
  • the liposome composition, liposome dispersion, liposome preparation, and liposome reagent of the present invention are substantially free of cyclodextrin.
  • “Substantially free of cyclodextrin” means that no cyclodextrin is added. It should be noted that the cyclodextrin may not contain an amount of cyclodextrin in which an improvement in solubility (apparent solubility) of the active compound is significantly recognized, and an amount in which an improvement in the solubility of the active compound is not significantly recognized may be added. It is not excluded as an implementation of the invention. Furthermore, as a preferred embodiment of the present invention, the fact that the liposome dispersion in the liposome dispersion does not substantially contain an ammonium salt in the liposome outer phase means that no ammonium salt is added to the liposome outer phase of the liposome dispersion. .
  • the addition of an ammonium salt in an amount that can achieve the object of the present invention is not excluded as the practice of the present invention.
  • the liposome substantially free of ammonium salt is obtained by substituting or diluting the liposome external phase of the liposome preparation liquid with a solution that does not substantially contain the ammonium salt. A dispersion can be prepared.
  • the active compound in the present invention is eribulin or a pharmacologically acceptable salt thereof (hereinafter sometimes referred to as “eribulin etc.”).
  • the pharmacologically acceptable salt is not particularly limited as long as it forms a salt with eribulin, whether it is an inorganic acid salt or an organic acid salt.
  • the active compound in the present invention is preferably eribulin mesylate.
  • the pharmacologically acceptable salt of eribulin may be a salt of eribulin with aluminum, calcium, lithium, magnesium, calcium, sodium, zinc, or diethanolamine.
  • Eribulin or a pharmacologically acceptable salt thereof is a compound described in WO99 / 65894 or US Pat. No. 6,214,865 (the contents described in these patent documents are incorporated by reference) or its It is a salt and has pharmacological activity including antitumor and antimitotic activity.
  • Eribulin or a pharmacologically acceptable salt thereof is used as an antitumor agent as a melanoma, fibrosarcoma, monocytic leukemia, colon cancer, ovarian cancer, breast cancer, osteosarcoma, prostate cancer, lung cancer, and ras- Has antitumor activity on transformed fibroblasts and the like.
  • the active compound that can be combined with eribulin and the like can be selected from compounds used in the fields of pharmaceuticals (including diagnostic agents), cosmetics, foods and the like.
  • the active compound may be one compound other than eribulin or a combination of two or more compounds.
  • Examples of the active compound include low molecular weight compounds, among which compounds used as antitumor agents, antibacterial agents, anti-inflammatory agents, anti-myocardial infarction agents, and contrast agents are suitable.
  • the active compound preferably has a molecular weight of 100 to 2000, more preferably 200 to 1500, and still more preferably 300 to 1000. Generally in these ranges, the liposome membrane permeability of the active compound is good, and the present invention can be suitably applied.
  • the present invention can be applied to any active compound as long as it contains a water-soluble compound and a fat-soluble compound and is at least somewhat soluble in water or an aqueous solvent.
  • the antitumor agent is not particularly limited, and for example, irinotecan hydrochloride, nogitecan hydrochloride, exatecan, RFS-2000, Lurutecan, BNP-1350, Bay-383441, PNU-166148, IDEC-132, BN-80915 Camptothecin derivatives such as DB-38, DB-81, DB-90, DB-91, CKD-620, T-0128, ST-1480, ST-1481, DRF-1042, DE-310; Taxane derivatives such as docetaxel, paclitaxel, IND-5109, BMS-184476, BMS-188797, T-3782, TAX-1011, SB-RA-31012, SBT-1514, DJ-927; ifosfamide, nimustine hydrochloride, Ruvocon, cyclophosphamide, dacarbazine, thiotepa, busulfan, melphalan, rani
  • the antibacterial agent is not particularly limited, and examples include amphotericin B, cefothia muhexyl, cephalosporin, chloramphenicol, diclofenac and the like.
  • the compound may be any salt.
  • the anti-inflammatory agent is not particularly limited, and examples thereof include prostaglandins (PGE1, PGE2), dexamethasone, hydrocortisone, piroxicam, indomethacin, prednisolone and the like.
  • PGE1, PGE2 prostaglandins
  • dexamethasone hydrocortisone
  • piroxicam indomethacin
  • prednisolone prednisolone and the like.
  • the compound may be any salt.
  • the anti-myocardial infarction agent is not particularly limited, and examples thereof include adenosine, atenolol, pilcainide and the like, and examples of the contrast agent include iopamidol, ioxaglic acid, iohexol, iomeprol and the like.
  • the compound may be any salt.
  • the liposome of the present invention preferably contains a phospholipid and / or a phospholipid derivative as a membrane constituent.
  • phospholipids and phospholipid derivatives include phosphatidylethanolamine, phosphatidylcholine, phosphatidylserine, phosphatidylinositol, phosphatidylglycerol, cardiolipin, sphingomyelin, ceramide phosphorylethanolamine, ceramide phosphorylglycerol, ceramide phosphorylglycerol phosphate, 1,2- Examples include dimyristoyl-1,2-deoxyphosphatidylcholine, plasmalogen, and phosphatidic acid.
  • a phospholipid and a phospholipid derivative may be one or a combination of two or more thereof.
  • Fatty acid residues in phospholipids and phospholipid derivatives are not particularly limited, and examples thereof include saturated or unsaturated fatty acid residues having 12 to 20 carbon atoms. Specific examples include lauric acid, myristic acid, and palmitic acid. Examples include acyl groups derived from fatty acids such as acids, stearic acid, oleic acid, and linoleic acid.
  • phospholipids derived from natural products such as egg yolk lecithin and soybean lecithin, and partially hydrogenated egg yolk lecithin partially or completely hydrogenated to unsaturated fatty acid residues, (fully) hydrogenated egg yolk lecithin, partially hydrogenated soybean Lecithin, (completely) hydrogenated soybean lecithin, etc. can also be used.
  • the blending amount (molar fraction) of the phospholipid and / or phospholipid derivative used in preparing the liposome is not particularly limited, but is preferably 10 to 80%, more preferably 30 to 60%, based on the entire liposome membrane component. preferable.
  • the liposome of the present invention contains sterols such as cholesterol and cholestanol as a membrane stabilizer, and a saturated or unsaturated acyl group having 8 to 22 carbon atoms, as a membrane constituent. It may also contain an antioxidant such as fatty acids and ⁇ -tocopherol.
  • the blending amount (molar fraction) of these sterols used in preparing the liposome is not particularly limited, but is preferably 1 to 60%, more preferably 10 to 50%, more preferably 30 to 50% is more preferable.
  • the blending amount (molar fraction) of the fatty acids is not particularly limited, but is preferably 0 to 30%, more preferably 0 to 20%, still more preferably 0 to 10% with respect to the entire liposome membrane component.
  • the blending amount (molar fraction) of the antioxidant is sufficient if it is added in such an amount that an antioxidant effect is obtained, but it is preferably 0 to 15%, more preferably 0 to 10% of the total liposome membrane component, 0 More preferably, it is ⁇ 5%.
  • the liposome of the present invention may contain a functional lipid or a modified lipid as a membrane constituent component.
  • functional lipids include blood retention lipid derivatives, temperature change sensitive lipid derivatives, pH sensitive lipid derivatives, and the like.
  • modified lipids include PEGylated lipids, glycolipids, antibody-modified lipids, and peptide-modified lipids.
  • blood-retaining lipid derivatives examples include glycophorin, ganglioside GM1, ganglioside GM3, glucuronic acid derivatives, glutamic acid derivatives, polyglycerin phospholipid derivatives, and a condensate of phosphoethanolamine and methoxypolyethylene glycol, N- ⁇ Carbonyl-methoxypolyethyleneglycol-2000 ⁇ -1,2-dipalmitoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine, N- ⁇ carbonyl-methoxypolyethyleneglycol-5000 ⁇ -1,2-dipalmitoyl-sn-glycero- 3-phosphoethanolamine, N- ⁇ carbonyl-methoxypolyethylene glycol-750 ⁇ -1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine, N- ⁇ carbonyl-methoxypoly Tylene glycol-2000 ⁇ -1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine (MPEG
  • temperature change sensitive lipid derivatives examples include dipalmitoyl phosphatidylcholine and the like.
  • the liposome can be disintegrated at a specific temperature, or the surface characteristics of the liposome can be changed. Furthermore, by combining with heating of a target site such as a tumor, the liposome can be disintegrated at the target site, and the active compound can be released to the target site.
  • pH-sensitive lipid derivatives examples include dioleoylphosphatidylethanolamine and the like. Liposomes containing pH-sensitive lipid derivatives can facilitate membrane fusion between liposomes and endosomes when liposomes are taken into cells by endocytosis, improving the delivery of active compounds to the cytoplasm, etc. .
  • glycolipid, antibody-modified lipid and peptide-modified lipid examples include lipids bound with a sugar, antibody or peptide having affinity for a target cell or target tissue.
  • modified lipids liposomes can be actively delivered to target cells or tissues.
  • the blending amount (molar fraction) of the blood-retaining lipid derivative used in preparing the liposome is not particularly limited, but is preferably 0 to 50%, more preferably 0 to 30% of the total liposome membrane component lipid, 0 to 20% is more preferable.
  • liposomes are microclosed vesicles having an internal phase surrounded by a lipid bilayer.
  • the liposome preferably has a barrier ability that a) eribulin or the like is once encapsulated in the inner phase and the eribulin or the like does not leak into the outer phase of the liposome.
  • the liposome when used as a medicine, is preferably stable in vivo, and the liposome preferably has a barrier ability such that eribulin or the like does not leak into the liposome external phase in the blood when administered to the living body. .
  • composition of membrane constituents for liposomes having such membrane permeability at a practical level can be obtained by those skilled in the art by referring to the examples described later as necessary, such as active compounds and target tissues.
  • Liquid I-Preparation method and assay method- “, Cell Engineering, (1983), 2 (9): pp.1136-1149 and cited in the document) Refer to literature etc.).
  • eribulin or the like When used as a medicine, it is preferable that eribulin or the like is released from the liposome after the liposome reaches the target tissue, cell or intracellular organelle.
  • Liposomes generally have biodegradable membrane constituents themselves, and are eventually degraded in a target tissue or the like. Thereby, it is considered that encapsulated eribulin and the like are released.
  • the liposome itself may be taken up by the cell.
  • the liposome composition can be used not only for targeting to target tissues such as solid cancers but also for delivery of active compounds to blood cancers, etc., and can be used in slow release formulations and release in blood. It can also be used as a controlled release formulation.
  • the particle diameter of the liposome can be set according to the purpose.
  • the liposome particle size is preferably 30 to 400 nm, more preferably 50 to 200 nm. It is.
  • the particle size of the liposome is preferably 30 to 1000 nm, more preferably 100 to 400 nm.
  • the particle diameter of the liposome can be several microns.
  • the particle diameter of the liposome means a weight average particle diameter by a dynamic light scattering method (quasi-elastic light scattering method).
  • a dynamic light scattering measuring instrument for example, Zetasizer Nano ZS model manufactured by Malvern Instruments Ltd or ELS-8000 manufactured by Otsuka Electronics Co., Ltd.
  • the instrument measures the Brownian motion of the particles and determines the particle size based on established dynamic light scattering theory.
  • the liposome internal phase solvent is not particularly limited.
  • a buffer solution such as a phosphate buffer solution, a citrate buffer solution, and a phosphate buffered saline solution, a physiological saline solution, and a cell culture solution.
  • a culture medium etc. can be mentioned.
  • the concentration of the buffering agent is preferably 5 to 300 mM, more preferably 10 to 100 mM.
  • the pH of the liposome internal phase is not particularly limited, but is preferably 3 to 11, and more preferably 4 to 9.
  • a liposome composition contains liposomes and further contains eribulin and the like in the liposome internal phase.
  • the liposome composition includes a solid form and a liquid form.
  • the liposome composition can be made liquid by dissolving or suspending in a predetermined solvent as described later.
  • the liposome composition is a frozen solid, it can be made into a liquid form by thawing by standing at room temperature or the like.
  • the concentration of the liposome and the concentration of the active compound in the liposome composition can be appropriately set according to the purpose, dosage form, etc. of the liposome composition.
  • the concentration of the liposome can be 0.2 to 100 mM, preferably 1 to 30 mM, as the concentration of the total lipid that is a constituent of the liposome.
  • concentration (dose) of the active compound when the liposome composition is used as a pharmaceutical will be described later.
  • the amount of cyclodextrin in the liposome composition is preferably less than 0.1 molar equivalent with respect to eribulin and the like, more preferably below the detection limit.
  • eribulin and the like may be distributed in the lipid bilayer.
  • the solvent (dispersion medium) of the liposome composition when the liposome composition is a liquid preparation is not particularly limited, and examples thereof include a phosphate buffer solution, a citrate buffer solution, and a phosphate buffered physiological saline solution. Buffer solution, physiological saline, medium for cell culture, and the like.
  • the pH of the liposome external phase in the liposome composition is not particularly limited, but is preferably 3 to 11, and more preferably 4 to 9.
  • the liposome composition further includes monosaccharides such as glucose, galactose, mannose, fructose, inositol, ribose and xylose, disaccharides such as lactose, sucrose, cellobiose, trehalose and maltose, trisaccharides such as raffinose and melezitose, cyclo Polysaccharides such as dextrin, sugars such as sugar alcohols such as erythritol, xylitol, sorbitol, mannitol, maltitol, glycerin, diglycerin, polyglycerin, propylene glycol, polypropylene glycol, ethylene glycol, diethylene glycol, triethylene glycol, polyethylene glycol , Polyhydric alcohols such as ethylene glycol monoalkyl ether, diethylene glycol monoalkyl ether, 1,3-butylene glycol It may be added.
  • a combination of sugar and alcohol may be used.
  • the concentration of the sugar or polyhydric alcohol contained in the liposome composition is not particularly limited, but in the state where the liposome is dispersed in a solvent, for example, the concentration of sugar is preferably 2 to 20% (W / V), and 5 to 10 % (W / V) is more preferable.
  • the concentration of the polyhydric alcohol is preferably 1 to 5% (W / V), more preferably 2 to 2.5% (W / V).
  • These solvents can also be used as the liposome external phase in the liposome dispersion, and the liposome external phase solution can be made into these solutions by substituting or diluting the liposome external phase of the liposome preparation liquid with these solvents.
  • Solid preparations of liposome compositions include, for example, glucose, galactose, mannose, fructose, inositol, ribose, xylose sugar monosaccharides, lactose, sucrose, cellobiose, trehalose, maltose, etc., disaccharides, raffinose, merezinose, etc.
  • sugars such as cyclodextrin and other polysaccharides, sugar alcohols such as erythritol, xylitol, sorbitol, mannitol, maltitol, etc., more preferably glucose, lactose, sucrose, trehalose, sorbitol More preferably, it is a combination of lactose, sucrose, and trehalose.
  • solid preparations are glycerin, diglycerin, polyglycerin, propylene glycol, polypropylene glycol, ethylene glycol, diethylene glycol, triethylene glycol, polyethylene glycol, ethylene glycol monoalkyl ether, diethylene glycol monoalkyl ether, 1
  • a polyhydric alcohol aqueous solution
  • the polyhydric alcohol (aqueous solution) is more preferably glycerin, propylene glycol, or polyethylene glycol, and more preferably glycerin or propylene glycol.
  • a method for producing a liposome composition comprises the steps of providing a liposome dispersion containing liposomes, mixing the liposome dispersion and the active compound (eribulin or a pharmaceutically acceptable salt thereof), and the liposome. Introducing the active compound into the liposome internal phase of the dispersion.
  • the step of providing the liposome dispersion containing liposomes preferably includes the step of providing a liposome preparation solution and the step of replacing or diluting the liposome external phase of the liposome preparation solution.
  • the liposome preparation liquid can be provided by preparing liposomes in a solution containing an ammonium salt, for example.
  • a liposome dispersion liquid further containing an ammonium salt in the liposome internal phase can be obtained.
  • the solution containing an ammonium salt in preparing the liposome preparation liquid is not particularly limited as long as it is a solution containing any ammonium salt.
  • ammonium salts include ammonium chloride, ammonium borate, ammonium sulfate, ammonium formate, ammonium acetate, ammonium citrate, ammonium tartrate, ammonium succinate, and ammonium phosphate, preferably ammonium sulfate, ammonium acetate, citric acid.
  • Ammonium, ammonium tartrate, and ammonium phosphate are preferable, ammonium sulfate, ammonium citrate, and ammonium tartrate are more preferable, and ammonium sulfate is particularly preferable.
  • any two or more ammonium salts may be used in combination.
  • the concentration of the ammonium salt in the solution containing the ammonium salt can be appropriately set according to the amount of eribulin to be encapsulated, but the higher the better, preferably 10 mM or more, more preferably 20 mM or more, More preferably, it is 50 mM or more.
  • the pH of the solution containing the ammonium salt is preferably 3 to 9, more preferably 4 to 9, and still more preferably 5 to 8 from the balance of encapsulation rate and stability.
  • a pH adjuster can be used to adjust the pH of the solution containing the ammonium salt.
  • the concentration of each pH adjuster in the solution containing an ammonium salt is not particularly limited, but is preferably 1 to 300 mM, more preferably 5 to 100 mM.
  • pH adjusters include, for example, amino acids such as arginine, histidine, glycine, ascorbic acid, benzoic acid, citric acid, glutamic acid, phosphoric acid, acetic acid, propionic acid, tartaric acid, carbonic acid, lactic acid, boric acid, maleic acid, fumaric acid, Acids such as malic acid, adipic acid, hydrochloric acid and sulfuric acid, salts such as sodium salt, potassium salt and ammonium salt of the above acids, alkalis such as trishydroxymethylaminomethane, aqueous ammonia (ammonia), sodium hydroxide and potassium hydroxide A compound (base) etc. are mentioned.
  • amino acids such as arginine, histidine, glycine, ascorbic acid, benzoic acid, citric acid, glutamic acid, phosphoric acid, acetic acid, propionic acid, tartaric acid, carbonic acid, lactic acid, boric acid, maleic acid, fumaric acid
  • the pH adjuster is preferably sodium hydroxide, hydrochloric acid, aqueous ammonia, acetic acid, lactic acid, tartaric acid, succinic acid, citric acid, and phosphoric acid, and more preferably sodium hydroxide, aqueous ammonia, hydrochloric acid, acetic acid, Citric acid and phosphoric acid are preferable, and sodium hydroxide, aqueous ammonia, hydrochloric acid, citric acid, and phosphoric acid are more preferable.
  • the pH adjuster may be used in combination of any two or more ammonium salts.
  • the liposome preparation solution it is preferable to use a solution obtained by preparing liposomes substantially free of cyclodextrin.
  • the liposome preparation liquid may further contain a salt, an acid, a base and / or an amino acid in the liposome internal phase.
  • the liposome internal phase may contain an active compound, an ammonium salt, and an acid. preferable.
  • an ammonium salt ammonium sulfate is mentioned as a preferable example, and as an acid, citric acid is mentioned as a preferable example.
  • Liposomes were prepared by the lipid film method (vortex method), reverse phase evaporation method, ultrasonic method, pre-vessel method, ethanol injection method, French Press method, cholic acid removal method, Triton X-100 batch method, Ca 2+ fusion method , Ether injection method, annealing method, freeze-thaw fusion method and the like.
  • Various conditions (the amount of membrane constituents, temperature, etc.) in the preparation of liposomes can be appropriately set according to the preparation method of the liposome, the composition of the target liposome, the particle size, etc. (supra, Kikuchi (1983), etc.) reference).
  • the particle size of the liposome can be adjusted arbitrarily.
  • the particle diameter can be adjusted, for example, by performing extrusion (extrusion filtration) under a high pressure using a membrane filter having a uniform pore diameter.
  • the particle diameter can be adjusted at any timing in the production of the liposome composition of the present invention. For example, before adjusting the liposome external phase in the liposome preparation liquid, after adjusting the liposome external phase in the liposome preparation liquid, or activity This can be done after introducing the compound into the liposome internal phase.
  • the particle size is preferably adjusted before introducing the active compound into the liposome internal phase, more preferably before adjusting the liposome external phase in the liposome preparation liquid.
  • a liposome dispersion can be obtained by substituting or diluting the liposome external phase of the obtained liposome preparation.
  • the substitution or dilution of the liposome external phase may be performed once, or may be performed a plurality of times by combining various substitution or dilution methods.
  • Examples of a method for replacing the liposome external phase of the liposome preparation liquid include dialysis, centrifugation, and gel filtration.
  • the present invention can be carried out so that the liposome outer phase is substantially free of cyclodextrin or ammonium salt.
  • Dialysis can be performed using, for example, a dialysis membrane.
  • the dialysis membrane include a membrane fractionated by molecular weight such as a cellulose tube and Spectrapore. Centrifugation can be performed, for example, at a centrifugal acceleration of preferably 100,000 g or more, more preferably 300,000 g or more. By substituting the liposome outer phase by centrifugation, the liposome can be concentrated together with the replacement of the liposome outer phase. Gel filtration can be implemented by fractionating based on molecular weight using columns, such as Sephadex and Sepharose, for example.
  • Examples of the solvent (dispersion medium) used when substituting and / or diluting the liposome external phase include sucrose solution, saline, and a medium for cell culture. By using these solvents, a stable liposome composition can be prepared.
  • the pH of the solvent is not particularly limited, but can be set in the range of 2 to 11, preferably 3 to 10, more preferably 6 to 10, and further preferably 7 to 10.
  • a pH gradient can also be used for introduction into the liposome internal phase such as eribulin.
  • the pH of the solvent can be set so that the liposome outer phase has a target pH.
  • a pH adjuster can be used to adjust the pH of the solvent.
  • concentration to be used is not particularly limited, but is preferably 1 to 300 mM, more preferably 5 to 100 mM.
  • pH adjusters include amino acids such as arginine, histidine, and glycine, ascorbic acid, benzoic acid, citric acid, glutamic acid, phosphoric acid, acetic acid, propionic acid, tartaric acid, carbonic acid, lactic acid, boric acid, maleic acid, and fumaric acid.
  • Alkaline acids such as malic acid, adipic acid, hydrochloric acid, sulfuric acid, etc., sodium salts of the above acids, potassium salts, ammonium salts, trishydroxymethylaminomethane, aqueous ammonia, sodium hydroxide, potassium hydroxide, etc.
  • Sodium hydroxide, hydrochloric acid, histidine, tartaric acid, succinic acid, citric acid, and phosphoric acid more preferably sodium hydroxide, hydrochloric acid, histidine, tartaric acid, citric acid, and phosphoric acid, More preferred are sodium hydroxide, hydrochloric acid, histidine, and phosphoric acid. .
  • a solution containing an electrolyte is added to the liposome external phase to increase the ionic strength, thereby increasing the encapsulation rate.
  • the electrolyte (salts) contained in the liposome external phase is not particularly limited, but is preferably sodium chloride or potassium chloride, more preferably sodium chloride.
  • physiological saline can also be used.
  • the liposome external phase such as a liposome dispersion may contain a sugar, an electrolyte, and / or an amino acid, and may contain a sugar or an electrolyte and an amino acid. Examples of the sugar include sucrose, preferable examples of the electrolyte include physiological saline and sodium chloride, and examples of the amino acid include histidine.
  • the obtained liposome dispersion preferably contains substantially no cyclodextrin or ammonium salt in the liposome outer phase and the liposome inner phase.
  • the cyclodextrin is added to the liposome outer phase of the liposome dispersion for some reason.
  • eliplin or a pharmacologically acceptable salt thereof can be introduced into the liposome internal phase even when the liposome dispersion contains a cyclodextrin or ammonium salt in the liposome external phase, such as when an ammonium salt is added. .
  • the lipid concentration of the liposome in the liposome dispersion is preferably 1 to 100 mM, and more preferably 1 to 50 mM. Within these ranges, more liposome particles can be suitably formed without impairing the physical properties of the liposome dispersion.
  • a liposome composition can be obtained by mixing the resulting liposome dispersion and an active compound such as eribulin and introducing the active compound into the liposome internal phase of the liposome dispersion.
  • the step of introducing preferably includes the step of increasing the membrane permeability of the liposome in the mixture of the liposome dispersion and the active compound.
  • eribulin or the like dissolved in a solvent or solid can be used.
  • the solvent is not particularly limited, and for example, the same solvent as the liposome external phase in the liposome dispersion can be used.
  • a pH gradient can also be used for introduction into the liposome internal phase such as eribulin.
  • the pH of the liposome internal phase in the liposome dispersion is preferably from 3 to 9, more preferably from 4 to 9, and even more preferably from 5 to 8.
  • a pH gradient can be imparted by setting the pH of the liposome outer phase higher than the pH of the liposome inner phase.
  • a preferred pH gradient is from 1 to 5, more preferably from 2 to 3.
  • the liposome preparation solution it is preferable to use a solution obtained by preparing liposomes substantially free of cyclodextrin.
  • Examples of a method for increasing the membrane permeability of the liposome in the obtained mixed solution include a method of heating the mixed solution and a method of adding a membrane fluidizing agent to the mixed solution.
  • the active compound can be more efficiently introduced into the liposome internal phase by raising the temperature to a higher temperature.
  • it is preferable to set the temperature for raising the temperature in consideration of the thermal stability of the active compound and the liposome membrane constituent used.
  • the temperature to be raised is preferably equal to or higher than the phase transition temperature of the lipid bilayer membrane of the liposome.
  • the “phase transition temperature” of the lipid bilayer membrane of the liposome means the endothermic start temperature (temperature when the endothermic reaction starts) in the differential thermal analysis in the elevated temperature state.
  • Differential thermal analysis is a technique that can analyze the thermal characteristics of a sample by measuring the temperature difference between the sample and the reference material as a function of time or temperature while changing the temperature of the sample and the reference material.
  • differential thermal analysis is performed on the membrane constituent components of the liposome, fluidization of the liposome membrane component occurs as the temperature rises, and an endothermic reaction is observed.
  • the temperature range where the endothermic reaction is observed varies greatly depending on the membrane components of the liposome.
  • the temperature range where the endothermic reaction is observed is very narrow, and the endothermic reaction is often observed within a range of ⁇ 1 ° C with respect to the endothermic peak temperature.
  • the temperature range in which the endothermic reaction is observed tends to be widened.
  • the temperature may be observed within a range of ⁇ 5 ° C. (that is, a broad peak is observed).
  • the membrane fluidity of the liposome is increased and the membrane permeability of the active compound is increased by raising the temperature to a temperature higher than the phase transition temperature of the lipid bilayer membrane of the liposome.
  • the temperature range is from the phase transition temperature of the lipid bilayer of the liposome to the phase transition temperature + 20 ° C.
  • a temperature range of the phase transition temperature + 10 ° C. is more preferable, and a temperature range of the phase transition temperature + 5 ° C. to the phase transition temperature + 10 ° C. is more preferable.
  • the temperature for raising the temperature is usually 20 to 100 ° C., preferably 40 to 80 ° C., more preferably 45 to 65 ° C.
  • the temperature rising temperature is generally 40-60 ° C., although it depends on its composition. Preferably, 45 to 50 ° C. is more preferable.
  • the temperature rise temperature is generally 50 to 70, depending on the composition. ° C is preferred, and 55 to 65 ° C is more preferred.
  • these temperature raising temperatures do not limit the present invention.
  • the time for maintaining the temperature above the phase transition temperature is not particularly limited, and can be appropriately set within a range of, for example, several seconds to 30 minutes. In consideration of mechanical stability and efficient mass production, it is desirable to process in a short time. That is, the temperature rising maintenance time is preferably 1 minute to 30 minutes, and more preferably 2 minutes to 5 minutes. However, these temperature maintaining times do not limit the present invention.
  • the membrane permeability of the liposome can also be increased by adding a membrane fluidizing agent to the resulting mixture (that is, adding it to the outer phase side of the liposome).
  • membrane fluidizing agents include organic solvents soluble in aqueous solvents, surfactants, enzymes, and the like. More specifically, examples of the organic solvent include monohydric alcohols such as ethyl alcohol and benzyl alcohol, polyhydric alcohols such as glycerin and propylene glycol, and aprotic polar solvents such as dimethyl sulfoxide (DMSO). be able to.
  • Surfactants include anionic surfactants such as fatty acid sodium, monoalkyl sulfates, monoalkyl phosphates, cationic surfactants such as alkyltrimethylammonium salts, and amphoteric surfactants such as alkyldimethylamine oxide. And nonionic surfactants such as polyoxyethylene alkyl ether, alkyl monoglyceryl ether, and fatty acid sorbitan ester. Examples of the enzyme include cholinesterase and cholesterol oxidase.
  • the person skilled in the art considers the degree of efficiency of encapsulation of the active compound by adding a membrane fluidizing agent, the stability of the liposome, etc., depending on the composition of the liposome membrane constituent, the membrane fluidizing agent, etc.
  • the amount of the membrane fluidizing agent can be set.
  • the method for producing a liposome composition of the present invention can include a step of adjusting the pH of the liposome external phase of the obtained liposome composition, subsequent to the introducing step.
  • the pH adjusted by the external phase is not particularly limited, but is preferably 4 to 10, more preferably 5 to 9, and further preferably 6 to 8 from the viewpoint of chemical stability of the phospholipid constituting the liposome. is there.
  • the step of drying the obtained liposome composition can be further included. That is, when the liposome composition is used as a liquid agent, the liquid liposome composition obtained by the introducing step can be used as it is as the final liposome composition, or in the obtained liquid liposome composition
  • the final liposome composition can be obtained by adjusting (substitution, etc.) the liposome external phase. The adjustment of the liposome outer phase at this time can be performed in the same manner as the adjustment of the liposome outer phase in the liposome preparation liquid.
  • the liposome composition is a liquid, it can be used as it is.
  • the liquid liposome composition obtained in the introducing step can be dried to obtain a final solid liposome composition.
  • the method for drying the liposome composition include freeze drying and spray drying.
  • the liposome composition can be used as a solution by dissolving or suspending in a suitable solvent.
  • the solvent can be appropriately set according to the purpose of use of the liposome composition.
  • the solvent is preferably sterile distilled water.
  • the liposome composition When used as a medicine, such a preparation can be performed by a doctor or patient by injecting a solvent into, for example, a vial in which a solid preparation is sealed.
  • a solid preparation in which a liquid liposome composition is frozen it can be stored in a frozen state and used as a liquid preparation by allowing it to stand at room temperature at the time of use or to return to a liquid state by rapid melting by heating. .
  • the liposome composition of the present invention can be used as a therapeutic agent in the pharmaceutical field.
  • the liposome composition of the present invention can be used as a pharmaceutical composition of an antitumor agent.
  • the liposome composition of the present invention can be administered by injection (intravenous injection, intraarterial injection, topical injection), oral, nasal, transdermal, pulmonary, eye drops, In particular, in addition to intravenous injection, subcutaneous injection, intradermal injection, intraarterial injection, injection such as local injection to a target cell or organ is preferable.
  • injection intravenous injection, intraarterial injection, topical injection
  • subcutaneous injection, intradermal injection, intraarterial injection injection such as local injection to a target cell or organ is preferable.
  • Examples of the dosage form of the liposome composition for oral administration include tablets, powders, granules, syrups, capsules, and liquids for internal use.
  • Examples of the dosage form of the liposome composition for parenteral administration include injections, drops, eye drops, ointments, suppositories, suspensions, poultices, lotions, aerosols and plasters. In particular, injections and infusions are preferred.
  • the dosage of the pharmaceutical composition varies greatly depending on the type of disease targeted, the type of active compound, the patient's age, sex, weight, symptom level, etc., but usually eribulin or its pharmacologically acceptable per adult day
  • the dose of the salt to be used is not particularly limited, but a suitable salt, eribulin mesylate, is usually 0.1 to 10 mg. In addition, it can be administered once to several times a day.
  • a liposome composition of the present invention a liposome composition containing, for example, 0.01 to 300 mg / mL of eribulin or its salt-acceptable salt in the liposome internal phase can be administered.
  • kits According to the present invention, a kit for preparing a liposome composition is provided.
  • the kit can be used to prepare a liposome composition as a medicine, and can be used by a doctor or patient in a clinical setting.
  • the kit contains a liposome reagent.
  • the liposome reagent may be either solid or liquid.
  • the liposome dispersion can be used as a liposome reagent.
  • the liposome reagent is a reagent that can be obtained by dissolving or suspending in a suitable solvent, and the liposome reagent can be obtained by drying the liposome dispersion. Obtainable. Drying can be performed in the same manner as the above liposome composition.
  • the liposome reagent when used the kit, when the liposome reagent is in a solid state, the liposome reagent is dissolved or suspended in an appropriate solvent to obtain a liposome dispersion.
  • the solvent at this time is the same as the liposome external phase in the liposome dispersion.
  • the kit of the present invention further contains eribulin or a pharmacologically acceptable salt thereof (a preferred salt is eribulin mesylate).
  • Eribulin or a pharmacologically acceptable salt thereof may be solid or liquid (dissolved or suspended in a solvent).
  • a solvent When using a kit, when eribulin or the like is in a solid state, it is preferable to dissolve or suspend eribulin or the like in an appropriate solvent to form a liquid.
  • the solvent can be appropriately set according to physical properties such as eribulin, and can be the same as the liposome external phase in the liposome dispersion, for example.
  • the kit of the present invention may contain an active compound other than eribulin or a pharmacologically acceptable salt thereof.
  • the liposome reagent and the active compound may be packaged separately, or the liposome reagent and the active compound may be in a solid state and mixed.
  • the kit is a solution of the liposome dispersion and the active compound in the method for producing a liposome composition, except that the liposome dispersion is dissolved or suspended as described above. It can be used by performing the same steps as mixing and introducing the active compound into the liposome internal phase of the liposome dispersion. Thereby, the liposome composition in which the active compound is introduced into the liposome internal phase of the liposome reagent can be produced.
  • the liposome reagent and the active compound are each solid and packaged together, the mixture of the liposome reagent and the active compound is dissolved or suspended in a suitable solvent.
  • the solvent at this time is the same as the liposome external phase in the liposome dispersion.
  • the liposome dispersion liquid and the active compound can be mixed, and then the other steps in the introduction of the active compound into the liposome internal phase of the liposome dispersion liquid in the method for producing the liposome composition are performed.
  • aqueous solution for liposome internal phase 396.4 mg of ammonium sulfate and 189.1 mg of citric acid monohydrate were dissolved in pure water and made up to 15 mL to prepare a 200 mM ammonium sulfate / 60 mM citric acid aqueous solution.
  • the aqueous solution for liposome internal phase was prepared by adjusting 2.5 mL of 200 mM ammonium sulfate / 60 mM citric acid aqueous solution to pH 5.5 with aqueous ammonia and then measuring up to 5 mL with pure water.
  • lipid film Preparation of liposome preparation solution> Hydrogenated soybean phosphatidylcholine (manufactured by Lipoid) 317.9 mg, cholesterol (manufactured by Sigma) 116.0 mg, and polyethylene glycol 2000-phosphatidylethanolamine (Genzyme, MPEG2000-distearoylphosphatidylethanolamine) 130.4 mg in 10 mL of chloroform After dissolution, it was accurately dispensed into three, one of which was subjected to vacuum evaporation under reduced pressure using a rotary evaporator to prepare a lipid film. To the obtained lipid film, 5 mL of an aqueous solution for liposome internal phase was added by heating to about 60 ° C.
  • liposome preparation solution was prepared by This liposome preparatory solution.
  • This liposome preparatory solution was sonicated for 20 minutes and then sized using an extruder (manufactured by Lipex Biomembranes) heated to about 65 ° C. to obtain a liposome preparatory solution.
  • an extruder manufactured by Lipex Biomembranes
  • the particle size of the liposome in the obtained liposome preparatory solution was measured by a dynamic light scattering method, all were 90 to 100 nm.
  • Liposomes in which eribulin mesylate is introduced into liposomes by mixing 0.5 mL of the liposome dispersion and 0.5 mL of eribulin mesylate solution in a 10 mL glass container and incubating in a 55 ° C. water bath for 3 minutes. A composition was obtained.
  • the encapsulation rate was determined as follows.
  • the liposome composition encapsulating the active compound was ultracentrifuged at 400,000 ⁇ g for 30 minutes.
  • the amount of the active compound not encapsulated in the liposome was quantified by measuring the concentration of the active compound in the supernatant by HPLC.
  • the encapsulation rate was calculated by the following formula.
  • the encapsulation rate of eribulin mesylate was 90.9%.
  • Example 2 ⁇ Preparation of aqueous solution for liposome internal phase>
  • 264.3 mg of ammonium sulfate and 126.1 mg of citric acid monohydrate were dissolved in pure water, and made up to 10 mL using a volumetric flask to prepare a 200 mM ammonium sulfate / 60 mM citric acid aqueous solution. did. Of these, 1 mL was weighed out, adjusted to pH 5.5 with aqueous ammonia, and then made up to 2 mL with pure water to prepare an aqueous solution for liposome internal phase.
  • the liposome preparatory liquid was sized using an extruder (manufactured by Lipex Biomembranes) heated to about 80 ° C. to obtain a liposome preparatory liquid.
  • Eribulin mesylate (eribulin mesylate) was dissolved in 0.9% sodium chloride / 10 mM histidine aqueous solution to obtain a 5 mg / mL eribulin mesylate solution.
  • ⁇ Preparation of liposome composition A liposome in which eribulin mesylate is introduced into the liposome by mixing 0.96 mL of the liposome dispersion and 0.24 mL of eribulin mesylate solution in a 10 mL glass container and incubating in a water bath at 60 ° C. for 3 minutes. A composition was obtained.
  • aqueous solution for liposome internal phase 264.3 mg of ammonium sulfate and 126.1 mg of citric acid monohydrate were dissolved in pure water to make about 15 mL. After adjusting the pH to 7.0 with an aqueous sodium hydroxide solution, the aqueous solution for liposome inner phase (100 mM ammonium sulfate / 30 mM citric acid) was prepared by making up to 20 mL with pure water.
  • the liposome preparation solution was sized with an extruder (manufactured by Lipex Biomembranes) equipped with a 50 nm polycarbonate membrane filter and heated to about 80 ° C. to obtain a liposome preparation solution having a particle diameter of about 80 nm.
  • ⁇ Preparation of liposome composition In a 10 mL glass container, 9.6 mL of the liposome dispersion and 1.2 mL of eribulin mesylate solution were mixed, and the pH was adjusted to 9.5 using sodium hydroxide. By incubating in a water bath at 60 ° C. for 3 minutes, a liposome composition in which eribulin mesylate was introduced into the liposome was obtained. After cooling, the pH was adjusted to 7.5 using hydrochloric acid. When the encapsulation rate was measured in the same manner as in Example 1, the encapsulation rate was 99%.
  • ⁇ Preparation of liposome preparation solution Hydrogenated soybean phosphatidylcholine and cholesterol and polyethylene glycol 2000-phosphatidylethanolamine were each weighed in the amounts shown in Table 1 below. Each was dissolved in 3 mL of chloroform, and then chloroform was distilled off under reduced pressure using a rotary evaporator to prepare a lipid film. To the obtained lipid film, 10 mL of the prepared aqueous solution for liposome inner phase was added by heating to about 80 ° C. and stirred to prepare a liposome preparation solution. The size was adjusted using an extruder (manufactured by Lipex Biomembranes) heated to about 80 ° C. to obtain a sized liposome preparation solution.
  • Table 1 Hydrogenated soybean phosphatidylcholine and cholesterol and polyethylene glycol 2000-phosphatidylethanolamine were each weighed in the amounts shown in Table 1 below. Each was dissolved in 3 mL of chloroform, and then chloroform was
  • Rp. 1 is 77 nm
  • Rp. 2 is 95 nm
  • Rp. 3 is 79 nm
  • Rp. 4 was 128 nm.
  • ⁇ Preparation of liposome composition> In the same manner as in Example 1, a liposome dispersion was obtained. Further, eribulin mesylate was dissolved in 0.9% sodium chloride / 10 mM histidine aqueous solution to obtain a 5 mg / mL eribulin mesylate solution. In a 10 mL glass container, 4.8 mL of each liposome dispersion and 0.6 mL of eribulin mesylate solution were mixed and incubated in a 60 ° C. water bath for 3 minutes to introduce eribulin mesylate into the liposomes. Liposome composition was obtained.
  • mice Female nude mice (NU / NU, Charles River Japan Co., Ltd.) are inoculated subcutaneously with human melanoma LOX cells, and the sample becomes 10 mL / kg (1.0 mg / kg as eribulin mesylate) after 11 or 12 days.
  • Blood was collected in a test tube containing heparin and centrifuged at 1,500 ⁇ g for 10 minutes at 4 ° C. within 30 minutes after collection to obtain plasma. Tumors were extracted from all tissues, washed with PBS, wiped with water-absorbing paper, and immediately measured and recorded. The tissue was placed in a test tube, cooled in ice water, and stored at -80 ° C until analysis.
  • Eribulin mesylate in plasma and tumor tissue was measured using LC / MS / MS.
  • the PK parameters were calculated using non-compartment model analysis software (WinNonlin v.5.0.1).
  • the results of plasma PK parameter and tumor tissue PK parameter of eribulin mesylate are shown in Table 2 and Table 3, respectively.
  • ⁇ Preparation of liposome preparation solution> Weighed 221.8 mg of hydrogenated soybean phosphatidylcholine and 72.5 mg of cholesterol and 86.9 mg of polyethylene glycol 2000-phosphatidylethanolamine. After dissolving in 3 mL of chloroform, chloroform was distilled off under reduced pressure using a rotary evaporator to prepare a lipid film. To the obtained lipid film, 10 mL of the prepared aqueous solution for liposome inner phase was added by heating to about 80 ° C. and stirred to prepare a liposome preparation solution. The size was adjusted using an extruder (manufactured by Lipex Biomembranes) heated to about 80 ° C. to obtain a sized liposome preparation solution. When the particle diameter of the liposome in the obtained liposome preparation liquid was measured by the dynamic light scattering method, it was about 90 nm.
  • an eribulin mesylate solution was diluted with 0.9% sodium chloride / 10 mM histidine aqueous solution, and sterilized by filtration using a 0.22 ⁇ m PVDF filter. : 0.3 mg / mL and 0.4 mg / mL).
  • ⁇ Preparation of liposome composition In a 10 mL glass container, 1.8 mL of the liposome dispersion and 1.2 mL of eribulin mesylate solution were mixed and incubated in a 60 ° C. water bath for 3 minutes to introduce eribulin mesylate into the liposomes. A liposome composition was obtained. The obtained liposome composition was diluted with 0.9% sodium chloride / 10 mM histidine aqueous solution and sterilized by filtration using a 0.22 ⁇ m PVDF filter, so that an administration specimen (concentration of eribulin mesylate: 0.2 mg / mL) was obtained. Got. In the same manner as in Example 1, the encapsulation rate was measured and confirmed to be 90% or more.
  • FaDu obtained from American Type Culture Collection
  • MEM medium containing 10% fetal bovine serum.
  • Cells were released from the flask using a 0.05% Trypsin-EDTA solution and collected. After washing with PBS, the suspension was suspended in PBS to 5 ⁇ 10 7 cells / mL, and kept on ice.
  • a 6-week-old nude mouse (Charles River Japan, Inc.) was subcutaneously injected with 0.1 mL of cell suspension per mouse into the right ventral region. Each mouse was observed every day, and when abnormalities were found, recording was performed as appropriate.
  • the size of the tumor was measured over time using calipers, and the size of the tumor was calculated based on the calculation formula: major axis ⁇ (minor square) ⁇ 2.
  • major axis ⁇ (minor square) ⁇ 2 When the tumor size reached 100-200 mm 3 , grouping was performed so that the average tumor size and the average body weight of the mice were uniform among the test groups (the number of mice in each test group was 5), and intravenous administration of the drug into the tail vein (0.2 mL / 20 g; 3 times at 7-day intervals).
  • the transition result of the average tumor volume after sample administration is shown in FIG.
  • FaDu is a cell line with low sensitivity to eribulin mesylate.
  • a liposome composition (concentration of eribulin mesylate: 0.3 mg / mL) was obtained in the same manner as in Example 5, except that the liposome-compatible aqueous solution prepared as described above was used. In the same manner as in Example 1, the encapsulation rate was measured and confirmed to be 90% or more.
  • ACHN obtained from American Type Culture Collection
  • MEM medium containing 10% fetal bovine serum and grown.
  • Cells were released from the flask using a 0.05% Trypsin-EDTA solution and collected. After washing with PBS, the suspension was suspended in PBS to 5 ⁇ 10 7 cells / mL, and kept on ice.
  • a 6-week-old nude mouse (Charles River Japan, Inc.) was subcutaneously injected with 0.1 mL of cell suspension per mouse into the right ventral region. Each mouse was observed every day, and when abnormalities were found, recording was performed as appropriate.
  • the size of the tumor was measured over time using calipers, and the size of the tumor was calculated based on the calculation formula: major axis ⁇ (minor square) ⁇ 2.
  • major axis ⁇ (minor square) ⁇ 2 When the tumor size reached 150 to 200 mm 3 , grouping was performed so that the average tumor size and the average body weight of the mice were uniform between the test groups (the number of mice in each test group was 5), and intravenous administration of the drug into the tail vein (0.2 mL / 20 g; 3 times at 7-day intervals).
  • the transition results of the average tumor volume after sample administration are shown in FIG. As shown in FIG.
  • Example 7 ⁇ Preparation of aqueous solution for liposome internal phase> Twelve kinds of aqueous solutions for inner phase shown in Table 4 below were prepared.
  • the liposome preparation solution was sized using an extruder heated to about 80 ° C. to obtain a liposome preparation solution.
  • ⁇ Preparation of liposome composition In a 10 mL glass container, the liposome dispersion and eribulin mesylate solution were mixed so that the concentration of eribulin mesylate: 0.2 mg / mL and the total lipid concentration: 16 ⁇ mol / mL. The temperature was raised at 60 ° C. for 5 minutes to obtain a liposome composition in which eribulin mesylate was introduced into the liposome.
  • ⁇ Measurement of encapsulation rate> The encapsulation rate was measured in the same manner as in Example 1. The results are shown in Table 4. As can be seen from Table 4, it was revealed that the encapsulation rate of eribulin mesylate was improved when any ammonium salt was used for the internal phase. In particular, when ammonium sulfate, ammonium citrate, ammonium phosphate, or ammonium tartrate was used, the encapsulation rate was significantly improved.
  • a liposome preparation solution was prepared in the same manner as in Example 7 using the aqueous solution for liposome internal phase.
  • ⁇ Preparation of liposome composition In a 10 mL glass container, the liposome dispersion and eribulin mesylate solution were mixed so that eribulin mesylate: 0.2 mg / mL and total lipid concentration: 16 mM. The temperature was raised at 60 ° C. for 5 minutes to obtain a liposome composition in which eribulin mesylate was introduced into the liposome.
  • encapsulation rate was measured in the same manner as in Example 1. The results are shown in Table 5. It was shown that the encapsulation rate was remarkably reduced only by the presence of 0.4 mM ammonium sulfate in the liposome external phase, and almost no encapsulation was present when 10 mM was present.
  • Example 9 ⁇ Preparation of aqueous solution for liposome internal phase>
  • a liposome preparation solution was prepared in the same manner as in Example 7 using the aqueous solution for liposome internal phase.
  • ⁇ Preparation of liposome composition In a 10 mL glass container, the liposome dispersion and the eribulin mesylate solution were mixed so that the eribulin mesylate was 0.2 mg / mL and the total lipid concentration was 16 mM.
  • the pH of the liposome outer phase was adjusted using 1M aqueous sodium hydroxide solution. The temperature was raised at 60 ° C. for 5 minutes to obtain a liposome composition in which eribulin mesylate was introduced into the liposome. Next, the pH of the outer phase was adjusted to 7.5 using hydrochloric acid.
  • a liposome preparation solution was prepared in the same manner as in Example 7 using the aqueous solution for liposome internal phase.
  • ⁇ Preparation of liposome composition In a 10 mL glass container, the liposome dispersion and the eribulin mesylate solution were mixed so that the eribulin mesylate was 0.2 mg / mL and the total lipid concentration was 16 mM.
  • the temperature was raised at 60 ° C. for 5 minutes to obtain a liposome composition in which eribulin mesylate was introduced into the liposome.
  • ⁇ Measurement of encapsulation rate> The encapsulation rate was measured in the same manner as in Example 1. The results are shown in Table 7. It has been clarified that a very high encapsulation rate can be obtained in the case of sodium chloride as an electrolyte compared to the case of sucrose in which the liposome external phase is a non-electrolyte. In addition to the effect of the electrolyte, a 100% encapsulation rate was achieved by applying a pH gradient that makes the liposome outer phase alkaline.
  • the present invention can provide a method for producing a liposome having a high retention stability of an active compound at a high encapsulation rate.
  • the liposome composition of the present invention is preferably used for therapeutic use due to the pharmacological action of eribulin or a pharmaceutically acceptable salt thereof.

Abstract

　本発明は、エリブリンまたはその薬理学的に許容される塩を含む新規なリポソーム組成物およびその製造方法を提供する。

Description

リポソーム組成物
　本発明は、エリブリンまたはその薬理学的に許容される塩を含有する新規なリポソーム組成物に関する。また、本発明は、該リポソーム組成物の製造方法に関する。
　リポソームは、１つ以上の脂質二重層により包囲された内相を有する微細閉鎖小胞であり、水溶性物質を内相に、脂溶性物質を脂質二重層に保持することができる。リポソームに活性化合物を封入し、標的組織へ送達する際には、いかにして活性化合物をリポソームへ高い効率で封入するか、また、いかにしてリポソームによる活性化合物の保持安定性を確保するかが重要なポイントとなる。
　脂溶性化合物をリポソームへ封入する場合、比較的容易に高い封入率を達成できるが、アムホテリシンＢ（リポソーム医薬品アンビゾームの主薬）のような膜親和性の非常に高い化合物の場合を除き、一般的に血漿中での保持安定性は低く、体内動態が十分に改善されることは難しい。水溶性化合物のリポソームへの封入方法にはリピドフィルム法（ボルテックス法）、逆相蒸発法、界面活性剤除去法、凍結融解法やリモートローディング法（ｐＨ勾配法、イオン勾配法）等様々な方法がある。しかしながら、１００％近い高い封入率が得られるのはリモートローディング法のみであり、その他の方法では５～３０％程度の封入率しか得られない。
　リモートローディング法として、ｐＨ勾配や硫酸アンモニウムイオン勾配を利用したものが知られている。ｐＨ勾配を利用したリモートローディング法であるｐＨ勾配法とは、目的の化合物のｐＨによる分子型／イオン型の乖離平衡の移動を利用して化合物をリポソーム内に取り込む技術である。
　ｐＨ勾配法によりリポソームに封入される化合物の一例として、例えば、ドキソルビシン(ＤＯＸ、ｐＫａ：８．２)が挙げられる。ｐＨ４の緩衝液によりリポソーム溶液を調製した後に、リポソーム外相をｐＨ７の緩衝液に置換する。このリポソーム溶液にＤＯＸを加えた場合、加えられたｐＨ７の溶液中では分子型のＤＯＸは脂溶性となるため、水相ではなくリポソーム膜に移行する。さらにリポソーム膜に移行したＤＯＸがｐＨ４のリポソーム内相と接触した場合、イオン型となりリポソーム内相に溶け込んでいく。このように、解離平衡の移動によってＤＯＸはリポソーム外相から内相に輸送される（非特許文献１、非特許文献２、および特許文献１を参照。）。
　また、このようなリモートローディング法を改良した種々の技術が報告されている。
　非特許文献３には、コレステロールフリーリポソームという特別な組成のリポソームにおいてｐＨ勾配法を行う際に、リポソーム外相に活性化合物と共にエタノールを添加することで、活性化合物の封入率を向上させる技術が開示されている。
　特許文献２には、ｐＨ勾配に加えて、リポソーム内相に銅イオンを存在させることで、活性化合物の封入率を向上させる技術が開示されている。
　硫酸アンモニウムイオン勾配を利用したリモートローディング法である硫酸アンモニウム法とは、ｐＨ勾配法におけるｐＨ勾配に代えて、２価の硫酸アンモニウム等のイオン勾配を利用して活性化合物をリポソーム内相に取り込む技術である（非特許文献１および特許文献３を参照。）。
　特許文献４には、硫酸アンモニウムによるイオン勾配に加えて、リポソーム外相に活性化合物と共にボロン酸を添加することで、リポソーム内に活性化合物を取り込む技術が開示されている。
　また、特許文献５には、硫酸アンモニウムによるイオン勾配に変えて、グルクロン酸アニオンによるイオン勾配を利用して活性化合物をリポソームに取り込むことで、硫酸アンモニウムを利用した場合に比べて、活性化合物の放出速度を向上させる技術が開示されている。
　このように、封入率の面からリモートローディング法は優れた封入方法である。しかしながら、リポソーム内相に封入された活性化合物が結晶化するＤｏｘｉｌ(ＤＯＸのリポソーム製剤)等の特殊な例を除くと、リモートローディング法を用いた場合、活性化合物は血漿中でリポソームから漏出しやすく、活性化合物の保持安定性が低いという問題点がある。
　以上のように、従来技術の方法では、リポソームへの活性化合物の高い封入率と、リポソームにおける活性化合物の保持安定性を両立することは難しいのが現状である。
米国特許第５１９２５４９号明細書 国際公開第２００６／０３７２３０号パンフレット 米国特許第５３１６７７１号明細書 米国特許第６０５１２５１号明細書 国際公開第２００５／０４６６４３号パンフレット
佐塚泰之，"リポソームの調製法"，「リポソーム応用の新展開：人工細胞の開発に向けて（秋吉一成，辻井薫監修）」，エヌ・ティー・エス, (2005), pp.33-37. Mayer LD et al., Biochimica et Biophysica Acta, (1986), 857:pp.123-126. N. Dos Santos et al., Biochimica et Biophysica Acta, (2004), 1661(1):pp.47-60
　本発明が解決しようとする課題は、活性化合物の保持安定性および封入率が高いリポソーム組成物を提供することにある。
　本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討した結果、エリブリンまたはその薬理学的に許容される塩を活性化合物とするリポソーム組成物が、リポソーム組成物における活性化合物の保持安定性および封入率が極めて高いことを見出し、本発明を完成した。
　すなわち、本発明は、以下のとおりである。
［１］
　リポソームを含み、リポソーム内相に活性化合物を含むリポソーム組成物であって、活性化合物がエリブリンまたはその薬理学的に許容される塩である、リポソーム組成物。
［２］
　リポソーム組成物が固体状または液体状である、１に記載のリポソーム組成物。
［３］
　リポソーム内相にアンモニウム塩をさらに含む、１または２に記載のリポソーム組成物。
［４］
　前記アンモニウム塩の濃度が１０ｍＭ以上である、３に記載のリポソーム組成物。
［５］
　リポソーム内相に塩、酸、塩基および／またはアミノ酸をさらに含む、１～４のいずれかに記載のリポソーム組成物。
［６］
　前記塩の濃度が１～３００ｍＭである、５に記載のリポソーム組成物。
［７］
　前記酸の濃度が１～３００ｍＭである、５または６に記載のリポソーム組成物。
［８］
　前記アミノ酸の濃度が１～３００ｍＭである、５～７のいずれかに記載のリポソーム組成物。
［９］
　前記塩基の濃度が１～３００ｍＭである、５～８のいずれかに記載のリポソーム組成物。
［１０］
　前記活性化合物の濃度が０．０１～３００ｍｇ/ｍＬである、１～９のいずれかに記載のリポソーム組成物。
［１１］
　前記活性化合物がメシル酸エリブリンである、１～１０のいずれかに記載のリポソーム組成物。
［１２］
　リポソーム内相に硫酸アンモニウム、クエン酸、および活性化合物をさらに含む、１～１１のいずれかに記載のリポソーム組成物。
［１３］
　リポソーム外相に糖、電解質、および／またはアミノ酸を含む、１～１２のいずれかに記載のリポソーム組成物。
［１４］
　リポソーム外相に糖または電解質、およびアミノ酸を含む、１～１３のいずれかに記載のリポソーム組成物。
［１５］
　前記糖の濃度が２～２０％である、１３または１４に記載のリポソーム組成物。
［１６］
　前記アミノ酸の濃度が１～３００ｍＭである、１３～１５のいずれかに記載のリポソーム組成物。
［１７］
　リポソーム外相にショ糖または塩化ナトリウム、およびヒスチジンを含む、１～１６のいずれかに記載のリポソーム組成物。
［１８］
　前記リポソーム内相にシクロデキストリンを実質的に含まない、１～１７のいずれかに記載のリポソーム組成物。
［１９］
　リポソームが水素添加ホスファチジルコリンを含む、１～１８のいずれかに記載のリポソーム組成物。
［２０］
　リポソームがコレステロールを含む、１～１９のいずれかに記載のリポソーム組成物。
［２１］
　リポソームがメトキシポリエチレングリコール縮合体を含む、１～２０のいずれかに記載のリポソーム組成物。
［２２］
　前記メトキシポリエチレングリコール縮合体がジステアロイルホスファチジルエタノールアミン－ポリエチレングリコール縮合体である、２１に記載のリポソーム組成物。
［２３］
　リポソームが水素添加ホスファチジルコリン、コレステロール、およびジステアロイルホスファチジルエタノールアミン－ポリエチレングリコール縮合体を含む、１～２２のいずれかに記載のリポソーム組成物。
［２４］
　前記水素添加ホスファチジルコリンを１０～８０％、前記コレステロールを１～６０％、前記ジステアロイルホスファチジルエタノールアミン－ポリエチレングリコール縮合体を０～５０％含む、２３に記載のリポソーム組成物。
［２５］
　リポソームが水素添加大豆ホスファチジルコリン、コレステロール、およびポリエチレングリコール２０００－ホスファチジルエタノールアミンを含む、１～２４のいずれかに記載のリポソーム組成物。
［２６］
　１～２５のいずれかに記載のリポソーム組成物を製造する方法であって、
　リポソームを含む、リポソーム分散液を供するステップと、
　前記リポソーム分散液と前記活性化合物とを混合するステップと、
　前記リポソーム分散液のリポソーム内相に前記活性化合物を導入するステップと
　を含む方法。
［２７］
　前記リポソーム分散液がリポソーム外相にアンモニウム塩を実質的に含まない、２６に記載の方法。
［２８］
　前記リポソーム分散液のリポソーム外相のｐＨが３～１０である、２６または２７に記載の方法。
［２９］
　前記リポソーム分散液のリポソーム外相のｐＨが７～１０である、２６～２８のいずれかに記載の方法。
［３０］
　前記ｐＨが、前記リポソーム分散液と前記活性化合物とを混合するステップにおける前記リポソーム分酸液のリポソーム外相のｐＨである、２８または２９に記載の方法。
［３１］
　前記リポソーム分散液を供するステップが、リポソームを含み、リポソーム内相およびリポソーム外相にアンモニウム塩を含むリポソーム準備液を供するステップと、
　前記リポソーム準備液のリポソーム外相を置換または希釈するステップと
　を含む、２６～３０のいずれかに記載の方法。
［３２］
　前記リポソーム外相を置換または希釈するステップが、リポソーム外相のｐＨをリポソーム内相のｐＨより高くするステップである、３１に記載の方法。
［３３］
　前記リポソーム外相を置換または希釈するステップが、リポソーム内相のｐＨとリポソーム外相のｐＨの差を１～５とするステップである、３１または３２に記載の方法。
［３４］
　前記リポソーム内相のｐＨが３～９である、２６～３３のいずれかに記載の方法。
［３５］
　前記リポソーム内相のｐＨが４～９である、２６～３４のいずれかに記載の方法。
［３６］
　前記リポソーム内相のｐＨが５～８である、２６～３５のいずれかに記載の方法。
［３７］
　前記活性化合物を導入するステップにおいて、リポソーム外相が電解質を含む溶液である、２６～３６のいずれかに記載の方法。
［３８］
　前記リポソーム分散液が、シクロデキストリンをリポソーム内相に実質的に含まない、２６～３７のいずれかに記載の方法。
［３９］
　リポソーム外相のｐＨを中性にするステップをさらに含む、２６～３８のいずれかに記載の方法。
　本発明によれば、新規なリポソーム組成物を提供することができる。本発明のリポソーム組成物は、高い効率でリポソーム内相へ活性化合物を封入し、また、活性化合物の高い保持安定性を有する。
in vitroラット血漿中（３７℃）でのメシル酸エリブリンのリポソーム組成物の濃度推移を示す。 in vivo ＦａＤｕ担癌ヌードマウスでのリポソームによるメシル酸エリブリンの抗腫瘍活性を示す。 in vivo ＡＣＨＮ担癌ヌードマウスでのリポソームによるメシル酸エリブリンの抗腫瘍活性を示す。
　本発明を、発明を実施するための形態により具体的に説明するが、本発明は、以下の発明を実施するための形態に限定されるものではなく、種々変形して実施することができる。
　本発明において参照される文献に開示されている内容は、本発明に参照として取り込まれる。
［定義］
　「リポソーム」とは、脂質二重層により包囲された内相を有する微細閉鎖小胞を意味する。本発明において、リポソームは、小さな１枚膜リポソーム（ＳＵＶ：small unilamellar vesicle）、大きな１枚膜リポソーム（ＬＵＶ：large unilamellar vesicle）、さらに大きな１枚膜リポソーム（ＧＵＶ：giant unilamellar vesicle）、同心円状の複数の膜を有する多重層リポソーム（ＭＬＶ：multilamellar vesicle）、同心円状でなく不規則に複数の膜を有するリポソーム（ＭＶＶ：Multivesicular vesicle）等を含む。
　「リポソーム内相」は、リポソームの脂質二重層に包囲された水性領域を意味し、「内水相」および「リポソーム内水相」と同義で用いる。「リポソーム外相」は、リポソームが液体中に分散している場合に、リポソームの脂質二重層に包囲されていない領域（すなわち、内相および脂質二重層以外の領域）を意味する。
　「リポソーム組成物」とは、リポソームを含み、リポソーム内相にメシル酸エリブリンをさらに含む組成物を意味する。本発明において、リポソーム組成物は、固体状および液体状のものを含む。
　「リポソーム分散液」とは、リポソームを含む組成物であって、リポソーム内相に活性化合物が導入される前の組成物を意味する。
　「リポソーム準備液」とは、リポソームを含む組成物であって、リポソーム内相にメシル酸エリブリンを封入するために、リポソーム外相を調整する前の組成物を意味する。
　「リポソーム試薬」とは、液体状の場合、リポソーム分散液を意味し、固体状の場合は、所定の溶媒に溶解または懸濁することでリポソーム分散液を得ることのできる試薬を意味する。溶媒については後述する。後述するように、固体状のリポソーム試薬は、例えばリポソーム分散液を乾燥させることで得られる。
　なお、本明細書において、固体と液体を混合するとは、固体を液体に溶解することと懸濁することとを包含するものとし、混合、溶解、懸濁は互いに交換可能に用いる。同様に、溶媒と分散媒も互いに交換可能に用いる。
　また、本発明のリポソーム組成物、リポソーム分散液、リポソーム準備液、リポソーム試薬は、シクロデキストリンを実質的に含まない。シクロデキストリンを実質的に含まないとは、シクロデキストリンを添加していないことを意味する。なお、シクロデキストリンによる活性化合物の溶解度（みかけの溶解度）の向上が有意に認められる量のシクロデキストリンを含まなければよく、活性化合物の溶解度の向上が有意に認められない量を加えた場合も、本発明の実施として排除されるものではない。
　さらに、本発明の好ましい態様として、リポソーム分散液におけるリポソーム分散液が、リポソーム外相に実質的にアンモニウム塩を含まないとは、リポソーム分散液のリポソーム外相にアンモニウム塩を添加していないことを意味する。なお、本発明の目的を達成できる範囲の量のアンモニウム塩を加えることが、本発明の実施として排除されるものではない。また、リポソーム準備液のリポソーム外相にアンモニウム塩を含む場合、アンモニウム塩を実質的に含まない溶液を用いてリポソーム準備液のリポソーム外相を置換または希釈することにより、アンモニウム塩を実質的に含まないリポソーム分散液を調製することができる。
［活性化合物］
　本発明における活性化合物は、エリブリンまたはその薬理学的に許容される塩である（以下、「エリブリン等」と記載する場合がある。）。薬理学的に許容される塩とは、無機酸塩、有機酸塩のいずれであってもエリブリンと塩を形成するものであれば特に限定されないが、例えば、塩酸塩、硫酸塩、クエン酸塩、臭化水素酸塩、ヨウ化水素酸塩、硝酸塩、重硫酸塩、リン酸塩、過リン酸塩、イソニコチン酸塩、酢酸塩、乳酸塩、サリチル酸塩、酒石酸塩、パントテン酸塩、アスコルビン酸塩、コハク酸塩、マレイン酸塩、フマル酸塩、グルコン酸塩、サッカリン酸塩、ギ酸塩、安息香酸塩、グルタミン酸塩、メタンスルホン酸塩、エタンスルホン酸塩、ベンゼンスルホン酸塩、ｐ－トルエンスルホン酸塩、パモ酸塩（pamoate）等が挙げられ、好ましくは、塩酸塩、硫酸塩、酢酸塩、リン酸塩、クエン酸塩、メシル酸塩等が挙げられ、より好ましくはメシル酸塩である。すなわち、本発明における活性化合物は、好ましくは、メシル酸エリブリンである。また、エリブリンの薬理学的に許容される塩としては、エリブリンと、アルミニウム、カルシウム、リチウム、マグネシウム、カルシウム、ナトリウム、亜鉛、ジエタノールアミンとの塩であってもよい。エリブリンまたはその薬理学的に許容される塩は、国際公開第９９／６５８９４号パンフレットまたは米国特許第６２１４８６５号公報（これら特許文献に記載される内容は参照により取り込まれる）に記載される化合物またはその塩であり、抗腫瘍及び抗有糸分裂活性を含めて薬理学的活性を有する。そして、エリブリンまたはその薬理学的に許容される塩は、抗腫瘍剤として、メラノーマ、線維肉腫、単球性白血病、結腸ガン、卵巣ガン、乳ガン、骨肉腫、前立腺ガン、肺ガン、及びｒａｓ－転換繊維芽細胞などに抗腫瘍活性を有する。
　ただし、エリブリン等と共に組み合わせることのできる活性化合物としては、医薬（診断薬を含む）、化粧料、食品などの分野において用いられる化合物から選択することができる。活性化合物は、エリブリン等以外の１種の化合物または２種以上の化合物の組み合わせであってもよい。
　活性化合物としては、低分子化合物等が挙げられ、中でも、抗腫瘍剤、抗菌剤、抗炎症剤、抗心筋梗塞剤、造影剤として用いられる化合物が好適である。
　活性化合物は、分子量が１００～２０００であるものが好ましく、２００～１５００であるものがより好ましく、３００～１０００であるものがさらに好ましい。一般にこれらの範囲において、活性化合物のリポソーム膜透過性が良好であり、好適に本発明を適用できる。
　活性化合物は、水溶性化合物および脂溶性化合物を含み、水または水性溶媒へ少なくとも多少とも溶解するものであれば、本発明を適用することができる。
　本発明において、抗腫瘍剤としては、特に限定されないが、例えば、塩酸イリノテカン、塩酸ノギテカン、エキサテカン、ＲＦＳ－２０００、Ｌｕｒｔｏｔｅｃａｎ、ＢＮＰ－１３５０、Ｂａｙ－３８３４４１、ＰＮＵ－１６６１４８、ＩＤＥＣ－１３２、ＢＮ－８０９１５、ＤＢ－３８、ＤＢ－８１、ＤＢ－９０、ＤＢ－９１、ＣＫＤ－６２０、Ｔ－０１２８、ＳＴ－１４８０、ＳＴ－１４８１、ＤＲＦ－１０４２、ＤＥ－３１０等のカンプトテシン誘導体；ドセタキセル水和物、ドセタキセル、パクリタキセル、ＩＮＤ－５１０９、ＢＭＳ－１８４４７６、ＢＭＳ－１８８７９７、Ｔ－３７８２、ＴＡＸ－１０１１、ＳＢ－ＲＡ－３１０１２、ＳＢＴ－１５１４、ＤＪ－９２７等のタキサン誘導体；イホスファミド、塩酸ニムスチン、カルボコン、シクロホスファミド、ダカルバジン、チオテパ、ブスルファン、メルファラン、ラニムスチン、リン酸エストラムスチンナトリウム、６－メルカプトプリンリボシド、エノシタビン、塩酸ゲムシタビン、カルモフール、シタラビン、シタラビンオクホスファート、テガフール、ドキシフルリジン、ヒドロキシカルバミド、フルオロウラシル、メトトレキサート、メルカプトプリン、リン酸フルダラビン、アクチノマイシンＤ、塩酸アクラルビシン、塩酸イダルビシン、塩酸ピラルビシン、塩酸エピルビシン、塩酸ダウノルビシン、塩酸ドキソルビシン、エピルビシン、ピラルビシン、ダウノルビシン、ドキソルビシン、塩酸ピラルビシン、塩酸ブレオマイシン、ジノスタチンスチマラマー、ネオカルチノスタチン、マイトマイシンＣ、硫酸ブレオマイシン、硫酸ペプロマイシン、エトポシド、酒石酸ビノレルビン、硫酸ビンクリスチン、硫酸ビンデシン、硫酸ビンブラスチン、塩酸アムルビシン、ゲフィニチブ、エキセメスタン、カペシタビン、ＴＮＰ－４７０、ＴＡＫ－１６５、ＫＷ－２４０１、ＫＷ－２１７０、ＫＷ－２８７１、ＫＴ－５５５５、ＫＴ－８３９１、ＴＺＴ－１０２７、Ｓ－３３０４、ＣＳ－６８２、ＹＭ－５１１、ＹＭ－５９８、ＴＡＴ－５９、ＴＡＳ－１０１、ＴＡＳ－１０２、ＴＡ－１０６、ＦＫ－２２８、ＦＫ－３１７、Ｅ７０７０、（８Ｅ、１２Ｅ、１４Ｅ）－７－｛（４－シクロヘプチルピペラジン－１－イル）カルボニル｝オキシ－３、６、１６、２１－テトラヒドロキシ－６、１０、１２、１６、２０－ペンタメチル－１８、１９－エポキシトリコサ－８、１２、１４－トリエン－１１－オリド（Ｅ７１０７）、ＫＲＮ－７００、ＫＲＮ－５５００、Ｊ－１０７０８８、ＨＭＮ－２１４、ＳＭ－１１３５５、ＺＤ－０４７３等を挙げることができる。上記抗腫瘍剤において、塩として記載している化合物は、任意の塩であってもよく、フリー体であってもよい。また、フリー体として記載している化合物は、任意の塩であってもよい。
　抗菌剤としては、特に限定されないが、例えば、アンホテリシンＢ、セフォチアムーヘキセシル、セファロスポリン、クロラムフェニコール、ジクロフェナック等を挙げることができる。上記抗菌剤において、化合物は、任意の塩であってもよい。
　抗炎症剤としては、特に限定されないが、例えば、プロスタグランジン類（ＰＧＥ１、ＰＧＥ２）、デキサメサゾン、ハイドロコルチゾン、ピロキシカム、インドメタシン、プレドニゾロン等を挙げることができる。上記抗炎症剤において、化合物は、任意の塩であってもよい。
　抗心筋梗塞剤としては、特に限定されないが、例えば、アデノシン、アテノロール、ピルジカイニド等が、造影剤としては、イオパミドール、イオキサグル酸、イオヘキソール、イオメプロール等を挙げることができる。上記抗心筋梗塞剤および上記造影剤において、化合物は、任意の塩であってもよい。
［脂質］
　本発明のリポソームは、膜構成成分として、リン脂質および／またはリン脂質誘導体を含むことが好ましい。リン脂質およびリン脂質誘導体としては、例えば、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジルコリン、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジルグリセロール、カルジオリピン、スフィンゴミエリン、セラミドホスホリルエタノールアミン、セラミドホスホリルグリセロール、セラミドホスホリルグリセロールホスファート、１，２－ジミリストイル－１，２－デオキシホスファチジルコリン、プラスマロゲン、ホスファチジン酸等を挙げることができる。リン脂質およびリン脂質誘導体は、これらのうち１種または２種以上の組み合わせであってもよい。
　リン脂質およびリン脂質誘導体における脂肪酸残基は特に限定されないが、例えば、炭素数１２～２０の飽和または不飽和の脂肪酸残基を挙げることができ、具体的には、ラウリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、ステアリン酸、オレイン酸、リノール酸等の脂肪酸由来のアシル基を挙げることができる。また、卵黄レシチン、大豆レシチン等の天然物由来のリン脂質、および不飽和脂肪酸残基に部分的にまたは完全に水素添加した部分水素添加卵黄レシチン、（完全）水素添加卵黄レシチン、部分水素添加大豆レシチン、（完全）水素添加大豆レシチン等を用いることもできる。
　リポソームを調製する際に用いるリン脂質および／またはリン脂質誘導体の配合量（モル分率）は、特に限定されないが、リポソーム膜成分全体に対して１０～８０％が好ましく、３０～６０％がより好ましい。
　本発明のリポソームは、膜構成成分として、リン脂質および／またはリン脂質誘導体以外に、膜安定化剤としてコレステロール、コレスタノール等のステロール類、炭素数８～２２の飽和または不飽和のアシル基を有する脂肪酸類、α－トコフェロール等の酸化防止剤を含んでもよい。
　リポソームを調製する際に用いるこれらステロール類の配合量（モル分率）は、特に限定されないが、リポソーム膜成分全体に対して、１～６０％が好ましく、１０～５０％がより好ましく、３０～５０％がさらに好ましい。
　また、脂肪酸類の配合量（モル分率）は、特に限定されないが、リポソーム膜成分全体に対して、０～３０％が好ましく、０～２０％がより好ましく、０～１０％がさらに好ましい。酸化防止剤の配合量（モル分率）は酸化防止効果が得られる量が添加されれば十分であるが、リポソーム膜成分全体の０～１５％が好ましく、０～１０％がより好ましく、０～５％がさらに好ましい。
　本発明のリポソームは、膜構成成分として、機能性脂質または修飾脂質を含有していてもよい。
　機能性脂質として、血中滞留性脂質誘導体、温度変化感受性脂質誘導体、ｐＨ感受性脂質誘導体等を挙げることができる。修飾脂質として、ＰＥＧ化脂質、糖脂質、抗体修飾脂質、ペプチド修飾脂質等が挙げられる。
　血中滞留性脂質誘導体としては、例えば、グリコフォリン、ガングリオシドＧＭ１、ガングリオシドＧＭ３、グルクロン酸誘導体、グルタミン酸誘導体、ポリグリセリンリン脂質誘導体、ホスフォエタノールアミンとメトキシポリエチレングリコールの縮合体である、Ｎ－｛カルボニル－メトキシポリエチレングリコール－２０００｝－１，２－ジパルミトイル－ｓｎ－グリセロ－３－ホスフォエタノールアミン、Ｎ－｛カルボニル－メトキシポリエチレングリコール－５０００｝－１，２－ジパルミトイル－ｓｎ－グリセロ－３－ホスフォエタノールアミン、Ｎ－｛カルボニル－メトキシポリエチレングリコール－７５０｝－１，２－ジステアロイル－ｓｎ－グリセロ－３－ホスフォエタノールアミン、Ｎ－｛カルボニル－メトキシポリエチレングリコール－２０００｝－１，２－ジステアロイル－ｓｎ－グリセロ－３－ホスフォエタノールアミン（ＭＰＥＧ２０００－ジステアロイルホスファチジルエタノールアミン）、Ｎ－｛カルボニル－メトキシポリエチレングリコール－５０００｝－１，２－ジステアロイル－ｓｎ－グリセロ－３－ホスフォエタノールアミン等のポリエチレングリコール誘導体（メトキシポリエチレングリコール縮合体など）等を挙げることができる。リポソームが血中滞留性脂質誘導体を含有することにより、リポソームが外来異物として肝臓などにおいて捕捉されにくくなることで、リポソームの血中滞留性を向上させることなどが可能となる。
　温度変化感受性脂質誘導体としては、例えば、ジパルミトイルホスファチジルコリン等を挙げることができる。リポソームが温度変化感受性脂質誘導体を含有することにより、特定の温度においてリポソームを崩壊させる、リポソームの表面特性を変化させるなどが可能となる。さらに腫瘍等の標的部位の加温と組み合わせることで、標的部位でリポソームが崩壊し、標的部位に活性化合物を放出させることなどが可能となる。
　ｐＨ感受性脂質誘導体としては、例えば、ジオレオイルホスファチジルエタノールアミン等を挙げることができる。リポソームがｐＨ感受性脂質誘導体を含有することにより、エンドサイトーシスによりリポソームが細胞へ取り込まれる際にリポソームとエンドソームとの膜融合を促し、活性化合物の細胞質への送達を改良することなどが可能となる。
　糖脂質、抗体修飾脂質およびペプチド修飾脂質としては、標的細胞または標的組織に親和性のある糖、抗体またはペプチドを結合した脂質が挙げられる。修飾脂質を用いることで、能動的にリポソームを標的細胞または標的組織に送達することができる。
　リポソームを調製する際に用いる血中滞留性脂質誘導体の配合量（モル分率）は、特に限定されないが、リポソーム膜構成成分脂質全体の０～５０％が好ましく、０～３０％がより好ましく、０～２０％がさらに好ましい。
［リポソーム］
　上記した通り、リポソームは脂質二重層により包囲された内相を有する微細閉鎖小胞である。
　理想的には、リポソームは、ａ）エリブリン等を内相にいったん封入した後では、エリブリン等がリポソーム外相には漏れ出ないバリア能を有していることが好ましい。また、医薬として用いる場合、リポソームは生体内で安定であることが好ましく、また、リポソームは、生体に投与した際に血中ではエリブリン等がリポソーム外相には漏れ出ないバリア能を有することが好ましい。
　実用可能なレベルでこのような膜透過性を有するリポソームのための膜構成成分の組成は、当業者であれば、必要に応じて後述する実施例を参照することで、活性化合物や標的組織などに応じて適宜設定することができる（菊池寛他、「リポソームI－調製法と検定法－」、細胞工学, (1983), 2(9):pp.1136-1149および当該文献に引用される文献等参照）。
　なお、医薬として用いる場合、リポソームが、標的組織、細胞または細胞内小器官に到達した後は、エリブリン等がリポソームから放出されることが好ましい。リポソームは、一般に膜構成成分自体は生分解性であり、最終的には標的組織等で分解される。これにより、封入されていたエリブリン等が放出されると考えられる。また、リポソーム自体が細胞に取り込まれてもよい。
　また、リポソーム組成物は固形癌などの標的組織へのターゲティングばかりでなく、血液癌などへの活性化合物の送達にも用いることができ、血中での徐放性製剤（slow release formulation）や放出制御製剤（controlled release formulation）等として用いることも可能である。
　リポソームの粒子径は目的に応じて設定することができる。例えば、注射剤等としてＥＰＲ（Enhanced Permeability and Retention）効果により癌組織や炎症組織へとリポソームを送達することを意図する場合、リポソームの粒子径は、好ましくは３０～４００ｎｍ、より好ましくは５０～２００ｎｍである。また、マクロファージへとリポソームを送達することを意図する場合、リポソームの粒子径は、好ましくは３０～１０００ｎｍ、より好ましくは１００～４００ｎｍである。また、リポソーム組成物を経口製剤や経皮製剤として用いる場合など、リポソームの粒子径は、数ミクロンとすることができる。なお、(1)正常組織では（血管内皮細胞が密に血管壁を構成しているため）血管壁がバリアーとなり、高分子や特定の大きさのリポソームのような微細粒子は組織内に分布できないが、病変組織では（血管内皮細胞間に隙間ができていて）血管壁がルーズとなって血管透過性が亢進しており、高分子や微細粒子は血管外の組織に分布でき（enhanced permeability）、また、(2)正常組織ではリンパ系が発達しているが、病変組織ではリンパ系が発達していないためにいったん取り込まれた高分子や微細粒子が全身系に回収されずにその病変組織に留まる（enhanced retention）ことが知られており、ＥＰＲ効果と呼ばれている（松村、前田, Cancer Research, (1986), 46:pp.6387-6392）。これにより、リポソームの粒子径を調整することで、体内動態を制御することができる。
　なお、本発明において、リポソームの粒子径は、動的光散乱法（準弾性光散乱法）による重量平均粒子径を意味する。ここでは動的光散乱(Dynamic Light Scattering)測定器（例えば、Malvern Instruments Ltd社製Zetasizer Nano ZSモデルや大塚電子社製ELS-8000）により測定された粒子径を示す。測定器は粒子のブラウン運動を測定し、確立された動的光散乱法理論に基づいて粒子径を決定している。
　リポソーム内相の溶媒は特に限定されるべきものではなく、例えば、リン酸塩緩衝液、クエン酸塩緩衝液、リン酸塩緩衝化生理食塩液等の緩衝液、生理食塩水、細胞培養用の培地などを挙げることができる。溶媒として、緩衝液を用いる場合には、緩衝剤の濃度が５～３００ｍＭであることが好ましく、１０～１００ｍＭであることがより好ましい。リポソーム内相のｐＨは、特に限定されるものではないが、３～１１が好ましく、４～９がより好ましい。
［リポソーム組成物］
　本発明によるとリポソーム組成物が提供される。リポソーム組成物は、リポソームを含み、リポソーム内相にエリブリン等をさらに含む。上記した通り、リポソーム組成物は、固体状および液体状のものを含む。リポソーム組成物が固体状のものの場合、後述するように所定の溶媒に溶解または懸濁することで、液体状のものとすることができる。また、リポソーム組成物が凍結した固体の場合には室温放置等により融解させることで、液体状のものとすることができる。
　リポソーム組成物におけるリポソームの濃度および活性化合物の濃度は、リポソーム組成物の目的、剤形等に応じて適宜設定することができる。リポソーム組成物が液剤の場合において、リポソームの濃度はリポソームの構成成分である全脂質の濃度として、０．２～１００ｍＭ、好ましくは１～３０ｍＭとすることができる。リポソーム組成物を医薬として用いる場合における活性化合物の濃度（用量）については後述する。リポソーム組成物におけるシクロデキストリンの量は、エリブリン等に対して０．１モル当量未満が好ましく、検出限界以下であることがより好ましい。
　本発明におけるリポソームは、脂質二重層にエリブリン等が分配されていてもよい。
　リポソーム組成物が液剤の場合におけるリポソーム組成物の溶媒（分散媒）は特に限定されるべきものではなく、例えば、リン酸塩緩衝液、クエン酸塩緩衝液、リン酸塩緩衝化生理食塩液等の緩衝液、生理食塩水、細胞培養用の培地などを挙げることができる。リポソーム組成物におけるリポソーム外相のｐＨは、特に限定されるものではないが、３～１１が好ましく、４～９がより好ましい。
　リポソーム組成物には、さらに、グルコース、ガラクトース、マンノース、フルクトース、イノシトール、リボース、キシロース等の単糖類、乳糖、ショ糖、セロビオース、トレハロース、マルトース等の二糖類、ラフィノース、メレジトース等の三糖類、シクロデキストリン等の多糖類、エリスリトール、キシリトール、ソルビトール、マンニトール、マルチトール等の糖アルコールなどの糖や、グリセリン、ジグリセリン、ポリグリセリン、プロピレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコール、ジエチレングリコール、トリエチレングリコール、ポリエチレングリコール、エチレングリコールモノアルキルエーテル、ジエチレングリコールモノアルキルエーテル、１，３－ブチレングリコールなどの多価アルコール等を加えてもよい。糖とアルコールとを組み合わせて用いてもよい。
　この溶媒（分散媒）に分散したリポソームを安定に長期間保存するには、凝集などの物理的安定性の面から、溶媒（分散媒）中の電解質を極力なくすことが好ましい。また、脂質の化学的安定性の面から、溶媒（分散媒）のｐＨを酸性から中性付近（ｐＨ３．０～８．０）に設定することや窒素バブリングにより溶存酸素を除去することが好ましい。
　リポソーム組成物に含まれる糖または多価アルコールの濃度は特に限定されないが、リポソームが溶媒に分散した状態において、例えば、糖の濃度は、２～２０％（Ｗ／Ｖ）が好ましく、５～１０％（Ｗ／Ｖ）がより好ましい。多価アルコールの濃度は、１～５％（Ｗ／Ｖ）が好ましく、２～２．５％（Ｗ／Ｖ）がより好ましい。これら溶媒をリポソーム分散液におけるリポソーム外相として用いることもでき、リポソーム準備液のリポソーム外相をこれら溶媒で置換または希釈することで、リポソーム外相の溶液をこれら溶液とすることができる。
　リポソーム組成物の固形製剤は、例えば、グルコース、ガラクトース、マンノース、フルクトース、イノシトール、リボース、キシロース糖の単糖類、乳糖、ショ糖、セロビオース、トレハロース、マルトース等の二糖類、ラフィノース、メレジノース等の三糖類、シクロデキストリン等の多糖類、エリスリトール、キシリトール、ソルビトール、マンニトール、マルチトール等の糖アルコールなどの糖を含むことが好ましいが、より好ましくは、グルコース、乳糖、ショ糖、トレハロース、ソルビトールの配合であり、さらに好ましくは、乳糖、ショ糖、トレハロースの配合である。これにより、固形製剤を安定に長期間保存することができる。また、凍結する場合には、固形製剤は、グリセリン、ジグリセリン、ポリグリセリン、プロピレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコール、ジエチレングリコール、トリエチレングリコール、ポリエチレングリコール、エチレングリコールモノアルキルエーテル、ジエチレングリコールモノアルキルエーテル、１，３－ブチレングリコール等の多価アルコール（水溶液）を含むことが好ましい。多価アルコール（水溶液）は、グリセリン、プロピレングリコール、ポリエチレングリコールがより好ましく、グリセリン、プロピレングリコールがさらに好ましい。これにより、固形製剤を安定に長期間保存することができる。糖と多価アルコールとを組み合わせて用いてもよい。
［リポソーム組成物の製造方法］
　本発明によると、エリブリンまたはその薬理学的に許容される塩を含有するリポソーム組成物を製造する方法が提供される。リポソーム組成物を製造する方法は、リポソームを含むリポソーム分散液を供するステップと、前記リポソーム分散液と前記活性化合物（エリブリンまたはその薬理学的に許容される塩）とを混合するステップと、前記リポソーム分散液のリポソーム内相に前記活性化合物を導入するステップとを含む方法である。
　リポソームを含むリポソーム分散液を供するステップは、リポソーム準備液を供するステップと、前記リポソーム準備液のリポソーム外相を置換または希釈するステップとを含むことが好ましい。
　リポソーム準備液は、例えば、アンモニウム塩を含む溶液中でリポソームを調製することで供することができる。アンモニウム塩を含む溶液中でリポソーム準備液を調製することにより、リポソーム内相にアンモニウム塩をさらに含むリポソーム分散液とすることができる。
　リポソーム準備液を調製する際のアンモニウム塩を含む溶液は、いずれかのアンモニウム塩を含む溶液であれば特に限定されるものではない。
　アンモニウム塩としては、例えば、塩化アンモニウム、ホウ酸アンモニウム、硫酸アンモニウム、ギ酸アンモニウム、酢酸アンモニウム、クエン酸アンモニウム、酒石酸アンモニウム、コハク酸アンモニウム、リン酸アンモニウムが挙げられ、好ましくは、硫酸アンモニウム、酢酸アンモニウム、クエン酸アンモニウム、酒石酸アンモニウム、リン酸アンモニウムであり、より好ましくは、硫酸アンモニウム、クエン酸アンモニウム、酒石酸アンモニウムであり、特に好ましくは、硫酸アンモニウムである。
　これらのアンモニウム塩のうち、いずれか２種以上のアンモニウム塩を組み合わせて用いてもよい。
　アンモニウム塩を含む溶液におけるアンモニウム塩の濃度は、封入するエリブリン等の量に応じて適宜設定することができるが、高ければ高いほどよく、好ましくは１０ｍＭ以上であり、より好ましくは２０ｍＭ以上であり、さらに好ましくは５０ｍＭ以上である。アンモニウム塩を含む溶液のｐＨは３～９とすることが好ましく、封入率と安定性のバランスから、より好ましくは４～９であり、さらに好ましくは５～８である。
　アンモニウム塩を含む溶液のｐＨ調整のために、ｐＨ調整剤を使用することができる。アンモニウム塩を含む溶液中の個々のｐＨ調整剤の濃度は特に限定されないが、好ましくは１～３００ｍＭであり、より好ましくは５～１００ｍＭである。
　ｐＨ調整剤は、例えば、アルギニン、ヒスチジン、グリシンなどのアミノ酸、アスコルビン酸、安息香酸、クエン酸、グルタミン酸、リン酸、酢酸、プロピオン酸、酒石酸、炭酸、乳酸、ホウ酸、マレイン酸、フマル酸、りんご酸、アジピン酸、塩酸、硫酸などの酸、上記酸のナトリウム塩、カリウム塩、アンモニウム塩などの塩、トリスヒドロキシメチルアミノメタン、アンモニア水（アンモニア）、水酸化ナトリウム、水酸化カリウムなどのアルカリ性化合物（塩基）等が挙げられる。ｐＨ調整剤としては、好ましくは、水酸化ナトリウム、塩酸、アンモニア水、酢酸、乳酸、酒石酸、コハク酸、クエン酸、およびリン酸であり、より好ましくは水酸化ナトリウム、アンモニア水、塩酸、酢酸、クエン酸、およびリン酸であり、さらに好ましくは、水酸化ナトリウム、アンモニア水、塩酸、クエン酸、およびリン酸である。ｐＨ調整剤は、いずれか２種以上のアンモニウム塩を組み合わせて用いてもよい。また、ｐＨ調整剤として、リン酸塩緩衝液、クエン酸塩緩衝液、リン酸塩緩衝化生理食塩液等の緩衝液を用いてもよい。
　リポソーム準備液として、実質的にシクロデキストリンを含まずに、リポソームを調製することで得られる溶液を用いることが好適である。また、リポソーム準備液として、リポソーム内相に塩、酸、塩基および／またはアミノ酸をさらに含有していてもよく、この場合、リポソーム内相に、活性化合物、アンモニウム塩、および酸を含有することが好ましい。アンモニウム塩としては、硫酸アンモニウムが好ましい例示として挙げられ、酸としては、クエン酸が好ましい例示として挙げられる。
　リポソームの調製は、リピドフィルム法（ボルテックス法、）、逆相蒸発法、超音波法、プレーベジクル法、エタノール注入法、Ｆｒｅｎｃｈ Ｐｒｅｓｓ法、コール酸除去法、Ｔｒｉｔｏｎ　Ｘ－１００バッチ法、Ｃａ２＋融合法、エーテル注入法、アニーリング法、凍結融解融合法等が挙げられる。
　リポソームの調製における各種条件（膜構成成分の量、温度など）は、リポソームの調製方法や目的とするリポソームの組成、粒子径等に応じて適宜設定することができる（前掲、菊池(1983)等参照）。
　必要に応じて任意に、リポソームの粒子径を調整することができる。粒子径は、例えば孔径のそろったメンブランフィルターを用いて、高圧力下でイクストルージョン（押し出し濾過）を行うことで調整することができる。粒子径の調整は、本発明のリポソーム組成物の製造における任意のタイミングで行うことができ、例えば、リポソーム準備液におけるリポソーム外相を調整する前、リポソーム準備液におけるリポソーム外相を調整した後、または活性化合物をリポソーム内相へ導入した後に行うことができる。粒子径の調整は、活性化合物をリポソーム内相へ導入する前に行うことが好ましく、リポソーム準備液におけるリポソーム外相を調整する前に行うことがより好ましい。
　得られたリポソーム準備液のリポソーム外相を置換または希釈することにより、リポソーム分散液を得ることができる。リポソーム外相の置換または希釈は、１回で行ってもよく、各種置換または希釈する方法を組み合わせて複数回行ってもよい。
　リポソーム準備液のリポソーム外相を置換する方法としては、透析、遠心分離、ゲルろ過等の方法が挙げられる。リポソーム外相を置換することで、リポソーム外相にシクロデキストリンあるいはアンモニウム塩を実質的に含まないように本発明を実施することができる。また、リポソーム外相を置換または希釈することにより、リポソーム内相に、効率的に、エリブリンまたはその薬理学的に許容される塩を封入することもできる。
　透析は、例えば、透析膜を用いて行うことができる。透析膜としては、セルロースチューブやスペクトラポア等の分子量で分画する膜が挙げられる。
　遠心分離は、例えば、遠心加速度が、好ましくは１００，０００ｇ以上、より好ましくは３００，０００ｇ以上で実施することができる。遠心によりリポソーム外相を置換することで、リポソーム外相の置換とあわせて、リポソームの濃縮を行うことができる。
　ゲルろ過は、例えば、ＳｅｐｈａｄｅｘやＳｅｐｈａｒｏｓｅ等のカラムを用いて、分子量に基づいて分画することにより実施することができる。
　リポソーム外相を置換および／または希釈する際に用いる溶媒（分散媒）としては、例えばショ糖溶液、食塩水、細胞培養用の培地などを挙げることができる。これら溶媒を用いることにより、安定なリポソーム組成物を調製することができる。
　当該溶媒のｐＨは、特に限定されるものではないが、２～１１の範囲で設定でき、好ましくは３～１０、より好ましくは６～１０、さらに好ましくは７～１０である。後述するように、エリブリン等のリポソーム内相への導入にｐＨ勾配を利用することもできる。この場合、リポソーム外相が目的のｐＨとなるように溶媒のｐＨを設定することができる。
　当該溶媒のｐＨ調整のためにｐＨ調整剤を使用することができる。使用する濃度は特に限定されないが、好ましくは１～３００ｍＭ、より好ましくは５～１００ｍＭである。
　ｐＨ調整剤としては、例えば、アルギニン、ヒスチジン、グリシンなどのアミノ酸、アスコルビン酸、安息香酸、クエン酸、グルタミン酸、リン酸、酢酸、プロピオン酸、酒石酸、炭酸、乳酸、ホウ酸、マレイン酸、フマル酸、リンゴ酸、アジピン酸、塩酸、硫酸などの酸、上記酸のナトリウム塩、カリウム塩、アンモニウム塩などの塩、トリスヒドロキシメチルアミノメタン、アンモニア水、水酸化ナトリウム、水酸化カリウムなどのアルカリ性化合物が挙げられ、好ましくは、水酸化ナトリウム、塩酸、ヒスチジン、酒石酸、コハク酸、クエン酸、およびリン酸であり、より好ましくは水酸化ナトリウム、塩酸、ヒスチジン、酒石酸、クエン酸、およびリン酸であり、さらに好ましくは水酸化ナトリウム、塩酸、ヒスチジン、リン酸である。
　エリブリンまたはその薬理学的に許容される塩のリポソームへの封入率を改善するために、リポソーム外相に、電解質を含む溶液（塩類溶液）を添加してイオン強度を増大させることにより、封入率を増加させることができる。リポソーム外相に含まれる電解質（塩類）は、特に限定されないが、好ましくは塩化ナトリウム、塩化カリウムであり、より好ましくは塩化ナトリウムである。また、生理食塩水を用いることもできる。また、リポソーム分散液等のリポソーム外相として、糖、電解質、および／またはアミノ酸を含んでいてもよく、糖または電解質と、アミノ酸とを含有していてもよい。糖としては、ショ糖が好ましい例示として挙げられ、電解質としては生理食塩水、塩化ナトリウム等が好ましい例示として挙げられ、アミノ酸としてはヒスチジンが挙げられる。
　得られたリポソーム分散液は、リポソーム外相およびリポソーム内相に実質的にシクロデキストリンあるいはアンモニウム塩を含有していないことが好ましいが、本発明においては、何らかの理由でリポソーム分散液のリポソーム外相にシクロデキストリンあるいはアンモニウム塩を添加した場合など、リポソーム分散液が、リポソーム外相にシクロデキストリンあるいはアンモニウム塩を含有していても、エリブリンまたはその薬理学的に許容される塩をリポソーム内相に導入することができる。
　リポソーム分散液におけるリポソームの脂質濃度は、１～１００ｍＭであることが好ましく、１～５０ｍＭであることがより好ましい。これらの範囲において、リポソーム分散液の物性を損なうことなく、より多くのリポソーム粒子を好適に形成することができる。
　得られたリポソーム分散液とエリブリン等の活性化合物とを混合し、リポソーム分散液のリポソーム内相に活性化合物を導入することで、リポソーム組成物を得ることができる。導入するステップは、リポソーム分散液と活性化合物との混合液におけるリポソームの膜透過性を上げるステップとを含むことが好ましい。これにより、エリブリン等のリポソームへの封入をより短時間に行うことができる。しかしながら、リポソーム分散液とエリブリン等とを混合した後、リポソームの膜透過性を上げるための操作を特に行わなくても、時間をかければエリブリン等をリポソームへ封入することができる。
　エリブリンまたはその薬理学的に許容される塩を混合するステップにおいて、エリブリン等として、溶媒に溶解したものや、固体状のものを用いることができる。溶媒は特に限定されるものではなく、例えば、リポソーム分散液におけるリポソーム外相と同じものを用いることができる。
　必要に応じて任意に、エリブリン等のリポソーム内相への導入にｐＨ勾配を利用することもできる。この場合、リポソーム分散液におけるリポソーム内相のｐＨは３～９が好ましく、４～９がより好ましく、５～８がさらに好ましい。
　また、リポソーム外相のｐＨをリポソーム内相のｐＨよりも高く設定してｐＨ勾配を付与することができる。好ましいｐＨの勾配は１～５であり、より好ましくは２～３である。
　さらに、リポソーム外相のｐＨをエリブリン等のｐＫａ付近により近づけることにより、リポソームへの封入率を高めることができる。好ましくは７．５～１２．５、より好ましくは８．５～１１．５、さらに好ましくは９～１０．５である（メシル酸エリブリンのｐＫａ＝９．６）。
　リポソーム準備液として、実質的にシクロデキストリンを含まずに、リポソームを調製することで得られる溶液を用いることが好適である。
　得られた混合液におけるリポソームの膜透過性を上げる方法として、混合液を加熱する方法、混合液に膜流動化剤を添加する方法等が挙げられる。
　混合液を加熱する場合、一般的には、より高い温度に昇温することで、より効率的に活性化合物をリポソーム内相に導入できる。具体的には、活性化合物や用いるリポソーム膜構成成分の熱的安定性を考慮して、昇温する温度を設定することが好ましい。特に、昇温する温度は、リポソームの脂質二重膜の相転移温度以上とすることが好ましい。
　リポソームの脂質二重膜の「相転移温度」とは、昇温状態での示差熱分析における吸熱開始温度（吸熱反応が始まった際の温度）を意味する。示差熱分析とは、試料および基準物質の温度を変化させながら、当該試料と基準物質の温度差を時間または温度の関数として測定することで試料の熱特性を分析することができる技術である。リポソームの膜構成成分について示差熱分析を行った場合、温度の上昇につれリポソーム膜成分の流動化が起こり、吸熱反応が観察される。本技術分野において広く知られているように、リポソームの膜成分によって吸熱反応が観察される温度域は大きく変化する。例えばリポソーム膜成分が純粋な脂質で構成される場合、吸熱反応が観察される温度域は非常に狭く、吸熱反応は、吸熱ピーク温度に対して±１℃の範囲内で観察されることが多い。一方で、リポソーム膜成分が複数の脂質で構成される場合、特に天然物由来の脂質で構成される場合など、吸熱反応が観察される温度域が広くなる傾向があり、吸熱反応は、吸熱ピーク温度に対して例えば±５℃の範囲内で観察される（すなわちブロードなピークが観察される）ことがある。本発明において、リポソームの脂質二重膜の相転移温度以上に昇温することで、リポソームの膜流動性が上昇し、活性化合物の膜透過性が上昇すると考えられる。
　例えば、活性化合物や用いるリポソーム膜構成成分の熱的安定性等にもよるが、リポソームの脂質二重膜の相転移温度～相転移温度＋２０℃の温度範囲であることが好ましく、相転移温度～相転移温度＋１０℃の温度範囲であることがより好ましく、相転移温度＋５℃～相転移温度＋１０℃の温度範囲であることがさらに好ましい。
　昇温する温度は通常２０～１００℃であり、好ましくは４０～８０℃、さらに好ましくは４５～６５℃である。
　具体的には、ジパルミトイルホスファチジルコリン（単体での相転移温度：４１℃）とコレステロールを主体としたリポソーム膜の場合には、その組成にもよるが、一般に昇温温度は、４０～６０℃が好ましく、４５～５０℃がより好ましい。また、水素添加大豆ホスファチジルコリン（ＨＳＰＣ，単体での相転移温度：５０～６０℃）とコレステロールを主体としたリポソーム膜の場合には、その組成にもよるが、一般に昇温温度は、５０～７０℃が好ましく、５５～６５℃がより好ましい。しかしながら、これら昇温する温度は本発明を何ら限定するものではない。
　昇温するステップにおいて、相転移温度以上の温度に維持する時間は特に限定されるものではなく、例えば、数秒～３０分の範囲で適宜設定することが可能であるが、活性化合物や脂質の熱的安定性や、効率的な大量生産を考慮すれば、短時間で処理することが望ましい。すなわち、昇温維持時間は１分～３０分であることが好ましく、２分～５分であることがより好ましい。しかしながら、これら温度維持の時間は本発明を何ら限定するものではない。
　また、上記した通り、得られた混合液に膜流動化剤を添加（すなわち、リポソームの外相側に添加）することでも、リポソームの膜透過性を上げることができる。膜流動化剤として、水系溶媒に可溶な有機溶媒、界面活性剤、酵素等を挙げることができる。より具体的には、有機溶媒として、たとえばエチルアルコール、ベンジルアルコール等の一価アルコール類、グリセリン、プロピレングリコール等の多価アルコール類、ジメチルスルホキサイド（ＤＭＳＯ）等の非プロトン性極性溶媒を挙げることができる。界面活性剤として、脂肪酸ナトリウム、モノアルキル硫酸塩、モノアルキルリン酸塩等の陰イオン系界面活性剤、アルキルトリメチルアンモニウム塩等の陽イオン系面活性剤、アルキルジメチルアミンオキシド等の両性界面活性剤、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、アルキルモノグリセリルエーテル、脂肪酸ソルビタンエステル等の非イオン性界面活性剤を挙げることができる。酵素として、コリンエステラーゼ、コレステロールオキシダーゼ等を挙げることができる。当業者であれば、リポソーム膜構成成分の組成、膜流動化剤などに応じて、膜流動化剤の添加による活性化合物の封入の効率化の程度や、リポソームの安定性などを考慮して、膜流動化剤の量を設定することができる。
　本発明のリポソーム組成物の製造方法は、前記導入するステップの後に引き続いて、得られたリポソーム組成物のリポソーム外相のｐＨを調整するステップを含むことができる。
　外相の調整するｐＨは特に限定されないが、リポソームを構成するリン脂質の化学的安定性の観点から、好ましくは４～１０、より好ましくは５～９、さらに好ましくは６～８の中性ｐＨである。
　また、得られたリポソーム組成物を乾燥させるステップをさらに含むことができる。
すなわち、リポソーム組成物を液剤とする場合、上記導入するステップにより得られた液体状のリポソーム組成物をそのまま最終的なリポソーム組成物とすることができ、または得られた液体状のリポソーム組成物におけるリポソーム外相を調整（置換等）することで最終的なリポソーム組成物とすることができる。この際のリポソーム外相の調整は、リポソーム準備液におけるリポソーム外相の調整と同様に行うことができる。リポソーム組成物が液剤である場合、そのまま使用に供することができる。
　また、リポソーム組成物を固形製剤とする場合、上記導入するステップにより得られた液体状のリポソーム組成物を乾燥させることにより最終的な固体状のリポソーム組成物とすることができる。リポソーム組成物を乾燥させる方法としては、凍結乾燥や噴霧乾燥等を挙げることができる。リポソーム組成物が固形製剤の場合、リポソーム組成物は適当な溶媒に溶解または懸濁させることで液剤として使用に供することができる。溶媒は、リポソーム組成物の使用の目的等に応じて適宜設定することができ、例えばリポソーム組成物を注射剤として用いる場合、溶媒は、滅菌蒸留水であることが好ましい。リポソーム組成物を医薬として用いる場合、医者や患者により、例えば固形製剤を封入したバイアルに溶媒を注入することで、このような用時調製を行うことができる。また、液体状のリポソーム組成物を凍結させた固形製剤の場合、凍結状態で保存し、使用時に室温で放置融解または加温による急速融解により液体状に戻すことで液剤として使用に供することができる。
［医薬組成物等］
　本発明のリポソーム組成物は、医薬分野において、治療薬として用いることができる。具体的には、本発明のリポソーム組成物は抗腫瘍剤の医薬組成物とし用いることができる。
　本発明のリポソーム組成物を医薬組成物として用いる場合、リポソーム組成物は、注射（静注、動注、局所注射）、経口、経鼻、経皮、経肺、点眼により投与することができ、特に静脈注射、皮下注射、皮内注射、動脈内注射の他、標的とする細胞や臓器に対しての局所注射などの注射が好ましい。経口投与する場合のリポソーム組成物の剤形としては、例えば、錠剤、散剤、顆粒剤、シロップ剤、カプセル剤、内服液剤等を挙げることができる。非経口投与する場合のリポソーム組成物の剤形としては、例えば、注射剤、点滴剤、点眼剤、軟膏剤、座剤、懸濁剤、パップ剤、ローション剤、エアゾール剤、プラスター剤等を挙げることができ、特に注射剤、点滴剤が好ましい。
　医薬組成物の投与量は、対象となる疾患の種類、活性化合物の種類、患者の年齢、性別、体重、症状の程度等により著しく異なるが、通常成人１日当たり、エリブリンまたはその薬理学的に許容される塩の投与量は、特に限定されないが、好適な塩であるメシル酸エリブリンは、通常、０．１～１０ｍｇである。また、１日１～数回にわけて投与することができる。本発明のリポソーム組成物として、リポソーム内相にエリブリンまたはその屋栗毛区的に許容される塩を、例えば、０．０１～３００ｍｇ／ｍＬ含むリポソーム組成物を投与することができる。
［キット］
　本発明によるとリポソーム組成物を調製するためのキットが提供される。キットは、医薬としてのリポソーム組成物を調製するために用いることができ、臨床現場で医者や患者自身が使用することができる。
　キットは、リポソーム試薬を含む。リポソーム試薬は、固体状または液体状のいずれでもよい。リポソーム試薬が液体状である場合、上記リポソーム分散液をリポソーム試薬とすることができる。また、リポソーム試薬が固体状である場合、リポソーム試薬は、適当な溶媒に溶解または懸濁することでリポソーム分散液を得ることのできる試薬であり、上記リポソーム分散液を乾燥させることでリポソーム試薬を得ることができる。乾燥は、上記リポソーム組成物の乾燥と同様に行うことができる。キットを使用する際は、リポソーム試薬が固体状である場合、リポソーム試薬を適当な溶媒に溶解または懸濁させることでリポソーム分散液とする。この際の溶媒は、上記リポソーム分散液におけるリポソーム外相と同様である。
　本発明のキットは、エリブリンまたはその薬理学的に許容される塩（好適な塩としては、メシル酸エリブリン）をさらに含む。エリブリンまたはその薬理学的に許容される塩は、固体状または液体状（溶媒に溶解または懸濁された状態）のいずれでもよい。キットを使用する際は、エリブリン等が固体状である場合、エリブリン等を適当な溶媒に溶解または懸濁させ、液体状とすることが好ましい。溶媒は、エリブリン等の物性等に応じて適宜設定することができ、例えば上記リポソーム分散液におけるリポソーム外相と同様とすることができる。本発明のキットには、エリブリンまたはその薬理学的に許容される塩以外の活性化合物を含んでいてもよい。
　キットにおいて、リポソーム試薬と活性化合物は、別個に包装されていてもよく、または、リポソーム試薬と活性化合物は、それぞれ固体状であり、混合されていてもよい。
　リポソーム試薬が固体状である場合に、上記した通り溶解または懸濁させることでリポソーム分散液とすることを除けば、キットは、上記リポソーム組成物の製造方法における、リポソーム分散液と活性化合物との混合、およびリポソーム分散液のリポソーム内相への活性化合物の導入と同様のステップを行うことで使用することができる。これにより、リポソーム試薬のリポソーム内相へ活性化合物が導入されたリポソーム組成物を製造することができる。
　リポソーム試薬と活性化合物が、それぞれ固体状であり、一緒に包装されている場合には、このリポソーム試薬と活性化合物との混合物を適当な溶媒に溶解または懸濁させる。この際の溶媒は、上記リポソーム分散液におけるリポソーム外相と同様である。これにより、リポソーム分散液と活性化合物とを混合した状態とすることができ、その後、上記リポソーム組成物の製造方法における、リポソーム分散液のリポソーム内相への活性化合物の導入におけるその他のステップを行うことで使用することができる。
　本発明を実施例および比較例を挙げて具体的に説明するが、本発明は、以下の実施例に限定されるものではない。
［実施例１］
＜リポソーム内相用水溶液の調製＞
　硫酸アンモニウム３９６．４ｍｇおよびクエン酸一水和物１８９．１ｍｇを純水で溶解し、１５ｍＬにメスアップすることで２００ｍＭ　硫酸アンモニウム／６０ｍＭ　クエン酸水溶液を作成した。リポソーム内相用水溶液は２００ｍＭ　硫酸アンモニウム／６０ｍＭ　クエン酸水溶液２．５ｍＬをアンモニア水でｐＨ５．５に調整後、純水を用いて５ｍＬにメスアップすることにより調製した。
＜リポソーム準備液の調製＞
　水素添加大豆ホスファチジルコリン（Lipoid社製）３１７．９ｍｇ、コレステロール（Sigma社製）１１６．０ｍｇおよびポリエチレングリコール２０００－ホスファチジルエタノールアミン（Genzyme社製、ＭＰＥＧ２０００－ジステアロイルホスファチジルエタノールアミン）１３０．４ｍｇをクロロホルム１０ｍＬに溶解した後に正確に３本に分注し、そのうちの１本をロータリーエバポレーターでクロロホルムを減圧留去し、リピッドフィルムを作成した。得られたリピッドフィルムに、リポソーム内相用水溶液５ｍＬを約６０℃に加温して添加し、撹拌してリポソーム準備液を調製した。このリポソーム準備液を２０分間超音波処理した後に、約６５℃に加温したエクストルーダー（Ｌｉｐｅｘ　Ｂｉｏｍｅｍｂｒａｎｅｓ社製）を用いて整粒し、リポソーム準備液を得た。得られたリポソーム準備液中のリポソームの粒子径を動的光散乱法で測定したところ、いずれも９０～１００ｎｍであった。
＜リポソーム分散液の調製＞
　Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－５０カラムを用い、得られたリポソーム準備液を０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液（ｐＨ＝７．６）で溶出することで、リポソーム外相を０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液へと置換した。リポソーム外相を置換した後、４００，０００×ｇで３０分間遠心した。遠心後、再分散し、０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液を用いて液量を５ｍＬに調整し、リポソーム分散液を得た。
＜活性化合物溶液の調製＞
　メシル酸エリブリンを０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液で溶解し、１ｍｇ／ｍＬのメシル酸エリブリン溶液を得た。
＜リポソーム組成物の調製＞
　１０ｍＬのガラス容器中、０．５ｍＬのリポソーム分散液と０．５ｍＬのメシル酸エリブリン溶液を混合し、５５℃の水浴中で３分間インキュベートすることにより、リポソーム内にメシル酸エリブリンが導入されたリポソーム組成物を得た。
＜封入率の測定＞
　封入率は、以下のようにして求めた。
　活性化合物が封入されたリポソーム組成物を４００，０００×ｇで３０分間超遠心した。上清中の活性化合物濃度をＨＰＬＣで測定することで、リポソームに未封入の活性化合物量を定量した。封入率を下記式により計算した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-M000001
　メシル酸エリブリンの封入率は、９０．９％であった。
［実施例２］
＜リポソーム内相用水溶液の調製＞
　実施例１と同様にして、硫酸アンモニウム２６４．３ｍｇおよびクエン酸一水和物１２６．１ｍｇを純水で溶解し、メスフラスコを用いて１０ｍＬにメスアップすることで２００ｍＭ　硫酸アンモニウム／６０ｍＭ　クエン酸水溶液を作成した。そのうち１ｍＬを量り取り、アンモニア水でｐＨを５．５に調整後、純水で２ｍＬにメスアップすることによりリポソーム内相用水溶液を調製した。
＜リポソーム準備液の調製＞
　脂質混合物（水素添加大豆ホスファチジルコリン：コレステロール：ポリエチレングリコール２０００－ホスファチジルエタノールアミン＝５８．６：１９．２：２２．２（重量比））を８０ｍｇずつ秤量し、リポソーム内相用水溶液２ｍＬを約８０℃に加温して添加し、撹拌してリポソーム準備液を調製した。このリポソーム準備液を約８０℃に加温したエクストルーダー（Ｌｉｐｅｘ　Ｂｉｏｍｅｍｂｒａｎｅｓ社製）を用いて整粒し、リポソーム準備液を得た。
＜リポソーム分散液の調製＞
　得られたリポソーム準備液を０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液（ｐＨ＝７．６）で１０ｍＬにメスアップし、４００，０００×ｇで３０分間遠心した。遠心後、上清を全て廃棄した。沈殿を０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液で再分散し、メスフラスコを用いて液量を１ｍＬに調整し、リポソーム分散液を得た。
＜薬物溶液の調製＞
　メシル酸エリブリン（メシル酸エリブリン）を０．９％　塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液で溶解し、５ｍｇ／ｍＬのメシル酸エリブリン溶液を得た。
＜リポソーム組成物の調製＞
　１０ｍＬのガラス容器中、０．９６ｍＬのリポソーム分散液と０．２４ｍＬのメシル酸エリブリン溶液を混合し、６０℃の水浴中で３分間インキュベートすることにより、リポソーム内にメシル酸エリブリンが導入されたリポソーム組成物を得た。
＜ラット血漿中での安定性＞
　調製したメシル酸エリブリン封入リポソーム０．２ｍＬとラット血漿１．８ｍＬを混合し、液相インキュベーターを用いて３７℃で振盪した。調製直後、振盪開始６時間後、１２時間後、２４時間後、４８時間後、７２時間後にサンプリングを行い、メシル酸エリブリンのリポソーム内残存量をＨＰＬＣで測定した。
　測定結果を図１に示す。図１からわかるように血漿中でも１２０時間という長期間に亘ってメシル酸エリブリンを安定に保持し、徐放することが可能であることが示された。
[実施例３]
＜リポソーム内相用水溶液の調製＞
　硫酸アンモニウム２６４．３ｍｇおよびクエン酸一水和物１２６．１ｍｇを純水で溶解し、約１５ｍＬにした。水酸化ナトリウム水溶液でｐＨを７．０に調整後、純水で２０ｍＬにメスアップすることによりリポソーム内相用水溶液（１００ｍＭ硫酸アンモニウム／３０ｍＭクエン酸）を調製した。
＜リポソーム準備液の調製＞
　脂質混合物（水素添加大豆ホスファチジルコリン：コレステロール：ポリエチレングリコール２０００－ホスファチジルエタノールアミン＝５８．６：１９．２：２２．２（重量比））を３７８ｍｇ秤量し、上記リポソーム内相用水溶液１０ｍＬを約８０℃に加温して添加し、撹拌してリポソーム準備液を調製した。５０ｎｍのポリカーボネートメンブレンフィルターを装着し約８０℃に加温したエクストルーダー（Ｌｉｐｅｘ　Ｂｉｏｍｅｍｂｒａｎｅｓ社製）でリポソーム準備液を整粒し、粒子径約８０ｎｍのリポソーム準備液を得た。
＜リポソーム分散液の調製＞
　Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－５０カラムを用い、得られたリポソーム準備液を０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭヒスチジン水溶液（ｐＨ＝７．６）で溶出することで、リポソーム外相を０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭヒスチジン水溶液へと置換した。リポソーム外相を置換した後、約４００，０００×ｇで３０分間遠心した。遠心後、９６ｍｇ／ｍＬスクロース／１０ｍＭヒスチジン水溶液（ｐＨ＝７．６）で再分散し、液量を１０ｍＬにメスアップすることでリポソーム分散液を得た。
＜薬物溶液の調製＞
　メシル酸エリブリンを９６ｍｇ／ｍＬスクロース／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液（ｐＨ＝７．６）で溶解し、５ｍｇ／ｍＬのメシル酸エリブリン溶液を得た。
＜リポソーム組成物の調製＞
　１０ｍＬのガラス容器中、９．６ｍＬのリポソーム分散液と１．２ｍＬのメシル酸エリブリン溶液を混合し、水酸化ナトリウムを用いてｐＨを９．５に調整した。６０℃の水浴中で３分間インキュベートすることにより、リポソーム内にメシル酸エリブリンが導入されたリポソーム組成物を得た。冷却後、塩酸を用いてｐＨを７．５に調整した。実施例１と同様にして封入率を測定したところ、封入率は９９％であった。
[実施例４]
＜リポソーム内相用水溶液の調製＞
　実施例１と同様にして、１００ｍＭ　硫酸アンモニウム／３０ｍＭ　クエン酸水溶液（ｐＨ＝５．５）を調製した。
＜リポソーム準備液の調製＞
　水素添加大豆ホスファチジルコリンおよびコレステロールおよびポリエチレングリコール２０００－ホスファチジルエタノールアミンを以下の表１に記載の量だけそれぞれ秤量した。それぞれクロロホルム３ｍＬに溶解した後にロータリーエバポレーターでクロロホルムを減圧留去し、リピッドフィルムを作成した。得られたリピッドフィルムに、作成したリポソーム内相用水溶液１０ｍＬを約８０℃に加温して添加し、撹拌してリポソーム準備液を調製した。約８０℃に加温したエクストルーダー（Ｌｉｐｅｘ　Ｂｉｏｍｅｍｂｒａｎｅｓ社製）を用いて整粒し、整粒したリポソーム準備液を得た。得られたリポソーム準備液中のリポソームの粒子径を動的光散乱法で測定したところ、Ｒｐ．１は７７ｎｍ、Ｒｐ．２は９５ｎｍ、Ｒｐ．３は７９ｎｍ、Ｒｐ．４は１２８ｎｍであった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
＜リポソーム組成物の調製＞
　実施例１と同様にして、リポソーム分散液を得た。また、メシル酸エリブリンを０．９％　塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液で溶解し、５ｍｇ／ｍＬのメシル酸エリブリン溶液を得た。
　１０ｍＬのガラス容器中、４．８ｍＬの各リポソーム分散液と０．６ｍＬのメシル酸エリブリン溶液をそれぞれ混合し、６０℃の水浴中で３分間インキュベートすることにより、リポソーム内にメシル酸エリブリンが導入されたリポソーム組成物を得た。それぞれのリポソーム組成物に２４．６ｍＬの０．９％　塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液を添加し、０．２２μｍのポリフッ化ビニリデン（ＰＶＤＦ）フィルターを用いて濾過滅菌することで、投与検体（メシル酸エリブリン濃度：０．１ｍｇ／ｍＬ）を得た。
　実施例１と同様にして、封入率を測定し、いずれの処方においても９０％以上であることを確認した。
　雌性ヌードマウス（ＮＵ／ＮＵ、日本チャールズ・リバー株式会社）にヒトメラノーマＬＯＸ細胞を皮下に接種し，１１日後または１２日後に検体を１０ｍＬ／ｋｇ（メシル酸エリブリンとして１．０ｍｇ／ｋｇ）となるように尾静脈内投与した．投与後一定時間（１５分，３０分，１，２，４，８，１２，２４，３６，４８時間）経過後に心穿刺による血液採取と腫瘍組織の摘出を実施した（ｎ＝３）．血液はヘパリンを含む試験管に取り，採取後３０分以内４℃で１０分間１，５００×ｇで遠心分離して血漿を得た．腫瘍は全組織を摘出してＰＢＳで洗浄し，吸水紙でふき取った後にただちに組織重量を測定・記録した．組織を試験管に入れて氷水中で冷却した後，分析操作までは－８０℃で保存した．
　血漿中および腫瘍組織中のメシル酸エリブリンはＬＣ／ＭＳ／ＭＳを用いて測定した。
　ＰＫパラメーターはｎｏｎ－ｃｏｍｐａｒｔｍｅｎｔ　ｍｏｄｅｌ解析ソフトウェア（WinNonlin v.5.0.1）を用いて算出した。メシル酸エリブリンの血漿ＰＫパラメーターおよび腫瘍組織ＰＫパラメーターの結果を、それぞれ表２および表３に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　表２および表３から、Ｒｐ.１～４の全てのリポソーム組成物において、フリーのメシル酸エリブリンと比較して血漿および腫瘍組織のAUCが増大していることから、メシル酸エリブリンの腫瘍移行量および滞留性が向上していた。
[実施例５]
＜リポソーム内相用水溶液の調製＞
　実施例１と同様に、１００ｍＭ　硫酸アンモニウム／３０ｍＭ　クエン酸水溶液（ｐＨ＝５．５）を調製した。
＜リポソーム準備液の調製＞
　水素添加大豆ホスファチジルコリン２２１．８ｍｇおよびコレステロール７２．５ｍｇおよびポリエチレングリコール２０００－ホスファチジルエタノールアミン８６．９ｍｇを秤量した。クロロホルム３ｍＬに溶解した後にロータリーエバポレーターでクロロホルムを減圧留去し、リピッドフィルムを作成した。得られたリピッドフィルムに、作成したリポソーム内相用水溶液１０ｍＬを約８０℃に加温して添加し、撹拌してリポソーム準備液を調製した。約８０℃に加温したエクストルーダー（Lipex Biomembranes社製）を用いて整粒し、整粒したリポソーム準備液を得た。得られたリポソーム準備液中のリポソームの粒子径を動的光散乱法で測定したところ、約９０ｎｍであった。
＜リポソーム分散液の調製＞
　Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－５０カラムを用い、得られたリポソーム準備液を０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭヒスチジン水溶液（ｐＨ＝７．６）で溶出することで、リポソーム外相を０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭヒスチジン水溶液へと置換した。リポソーム外相を置換した後、４００，０００×ｇで３０分間遠心した。遠心後、再分散し、０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭヒスチジン水溶液を用いて液量を１０ｍＬに調整し、リポソーム分散液を得た。
＜薬物溶液の調製＞
　メシル酸エリブリンを０．９％　塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液で溶解し、１ｍｇ／ｍＬのメシル酸エリブリン溶液を得た。また、フリー体の投与検体として、０．９％　塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液でメシル酸エリブリン溶液を希釈し、０．２２μｍのＰＶＤＦフィルターを用いて濾過滅菌することで、投与検体（メシル酸エリブリン濃度：０．３ｍｇ／ｍＬおよび０．４ｍｇ／ｍＬ）を得た。
＜リポソーム組成物の調製＞
　１０ｍＬのガラス容器中、１．８ｍＬのリポソーム分散液と１．２ｍＬのメシル酸エリブリン溶液をそれぞれ混合し、６０℃の水浴中で３分間インキュベートすることにより、リポソーム内にメシル酸エリブリンが導入されたリポソーム組成物を得た。得られたリポソーム組成物を０．９％　塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液で希釈し、０．２２μｍのＰＶＤＦフィルターを用いて濾過滅菌することで、投与検体（メシル酸エリブリン濃度：０．２ｍｇ／ｍＬ）を得た。実施例１と同様にして、封入率を測定し、９０％以上であることを確認した。
　ヒト咽頭扁平上皮癌細胞株であるＦａＤｕ(Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎより入手)を１０％ウシ胎児血清含有ＭＥＭ培地で培養し、増殖させた。細胞を０．０５％Ｔｒｙｐｓｉｎ－ＥＤＴＡ溶液を用いてフラスコより遊離させ回収した。ＰＢＳで洗浄後、ＰＢＳにて５×１０７個／ｍＬになるように懸濁し、氷上で保持した。６週齢のヌードマウス（日本チャールス・リバー株式会社）の右腹側部へ、１匹あたり０．１ｍＬの細胞懸濁液を皮下注射した。各々のマウスを毎日観察し、状態異常が発見された場合には適宜記録を行った。腫瘍の大きさを経時的にノギスを用いて測定し、腫瘍の大きさを、計算式：長径×（短径の２乗）÷２に基づき算出した。腫瘍の大きさが１００～２００ｍｍ３になった時点で、各試験群間での腫瘍の大きさおよびマウスの体重の平均値が均一になるように群分けを行い（各試験群のマウス数は５匹）、薬物の尾静脈内投与（０．２ｍＬ／２０ｇ；７日間隔で３回）を行った。
　検体投与後の平均腫瘍体積の推移結果を図２に示す。
　図２に示すように、ＦａＤｕは、メシル酸エリブリンに感受性の低い細胞株であるため、フリー体では最大耐用量である４ｍｇ／ｋｇ投与でも腫瘍縮小効果は得られなかった。一方、リポソーム組成物の場合には、最大耐用量以下である２ｍｇ/ｋｇ投与でも腫瘍縮小効果が明確に認められ、これまでメシル酸エリブリンが奏功しなかった癌種に対しても非常に高い薬理効果が得られることが示された。
[実施例６]
＜リポソーム内相用水溶液の調製＞
　実施例１と同様に、１００ｍＭ　硫酸アンモニウム／３０ｍＭ　クエン酸水溶液（ｐＨ＝５．５）を調製した。
＜薬物溶液の調製＞
　実施例５と同様に実施し、フリー体の投与検体（メシル酸エリブリン濃度：０．２ｍｇ／ｍＬおよび０．３ｍｇ／ｍＬおよび０．４ｍｇ／ｍＬ）を得た。
＜リポソーム組成物の調製＞
　上述のように作製したリポソーム内相溶水溶液を用いた以外は実施例５と同様にして、リポソーム組成物（メシル酸エリブリン濃度：０．３ｍｇ／ｍＬ）を得た。実施例１と同様にして、封入率を測定し、９０％以上であることを確認した。
　ヒト腎癌細胞株であるＡＣＨＮ(Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎより入手)を１０％ウシ胎児血清含有ＭＥＭ培地で培養し、増殖させた。細胞を０．０５％Ｔｒｙｐｓｉｎ－ＥＤＴＡ溶液を用いてフラスコより遊離させ回収した。ＰＢＳで洗浄後、ＰＢＳにて５×１０７個／ｍＬになるように懸濁し、氷上で保持した。６週齢のヌードマウス（日本チャールス・リバー株式会社）の右腹側部へ、１匹あたり０．１ｍＬの細胞懸濁液を皮下注射した。各々のマウスを毎日観察し、状態異常が発見された場合には適宜記録を行った。腫瘍の大きさを経時的にノギスを用いて測定し、腫瘍の大きさを、計算式：長径×（短径の２乗）÷２に基づき算出した。腫瘍の大きさが１５０～２００ｍｍ３になった時点で、各試験群間での腫瘍の大きさおよびマウスの体重の平均値が均一になるように群分けを行い（各試験群のマウス数は５匹）、薬物の尾静脈内投与（０．２ｍＬ／２０ｇ；７日間隔で３回）を行った。
　検体投与後の平均腫瘍体積の推移結果を図３に示す。
　図３に示すように、ＡＣＨＮは、メシル酸エリブリンに耐性のある細胞株であるため、フリー体投与では２ｍｇ／ｋｇ投与群、３ｍｇ／ｋｇ投与群、および４ｍｇ／ｋｇ（最大耐用量）投与群のいずれにおいても検体投与開始４５日後において無処置群との有意な差は認められなかった。一方、リポソーム組成物３ｍｇ／ｋｇ投与群においては腫瘍増殖抑制効果が認められ、検体投与開始４５日後において無処置群およびフリー体投与群に対し有意に小さい腫瘍体積値を示した。このようにこれまでのメシル酸エリブリンではまったく治療効果が得られないような癌種に対してもリポソーム製剤化することで、腫瘍の増殖を遅延させることが可能となることが示された。
［実施例７］
＜リポソーム内相用水溶液の調製＞
　以下の表４に示す１２種類の内相用水溶液を作成した。
＜リポソーム準備液の調製＞
　脂質混合物（水素添加大豆ホスファチジルコリン：コレステロール：ポリエチレングリコール２０００－ホスファチジルエタノールアミン＝５８．６：１９．２：２２．２（重量比））を１２０ｍｇずつ試験管に秤量し、８０℃に加温した各内相用水溶液３ｍＬで水和した。
　このリポソーム準備液を約８０℃に加温したエクストルーダーを用いて整粒し、リポソーム準備液を得た。
＜リポソーム分散液の調製＞
　Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－５０カラムを用い、得られたリポソーム準備液を０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液で溶出することで、リポソーム外相を０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液へ置換した。
　リポソーム外相を置換した後、４００，０００×ｇで１時間遠心し、上清を完全に除去した。沈殿物を９６ｍｇ／ｍＬスクロース／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液（ｐＨ＝７．５）で約２ｍＬとなるように再懸濁した。
　得られたリポソーム分散液の粒子径を動的光散乱法で測定したところ、いずれも約８０ｎｍであった。
＜薬物溶液の調製＞
　メシル酸エリブリンを９６ｍｇ／ｍＬスクロース／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液で溶解し、５ｍｇ／ｍＬのメシル酸エリブリン溶液を得た。
＜リポソーム組成物の調製＞
　１０ｍＬのガラス容器中、リポソーム分散液とメシル酸エリブリン溶液をメシル酸エリブリン：０．２ｍｇ／ｍＬ，総脂質濃度:１６μｍｏｌ／ｍＬとなるように混合した。６０℃で５分間昇温し、リポソーム内にメシル酸エリブリンが導入されたリポソーム組成物を得た。
＜封入率の測定＞
　封入率は、実施例１と同様にして測定した。結果を表４に示す。表４から分かるとおり、いずれのアンモニウム塩を内相に用いた場合でもメシル酸エリブリンの封入率が向上することが明らかとなった。特に硫酸アンモニウム、クエン酸アンモニウム、リン酸アンモニウム、酒石酸アンモニウムを用いた際に顕著に封入率が向上した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
［実施例８］
＜リポソーム内相用水溶液の調製＞
　実施例７と同様にして、１００ｍＭ　硫酸アンモニウム／３０ｍＭ　クエン酸水溶液（ｐＨ＝７．５）のリポソーム内相用水溶液を調製した。
＜リポソーム準備液の調製＞
　上記リポソーム内相用水溶液を用いて実施例７と同様にリポソーム準備液を調製した。
＜リポソーム分散液の調製＞
　Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－５０カラムを用い、得られたリポソーム準備液を０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液で溶出することで、リポソーム外相を０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液へ置換した。
　リポソーム外相を置換した後、４００，０００×ｇで１時間遠心し、上清を完全に除去した。沈殿物を９６ｍｇ／ｍＬ／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液（ｐＨ＝７．５）で再懸濁し、リポソーム外相を９６ｍｇ／ｍＬスクロース／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液（ｐＨ＝７．５）に置換し、リポソーム分散液を得た。得られたリポソーム分散液の粒子径を動的光散乱法で測定したところ、約８０ｎｍであった。
　リポソーム分散液を７本に分注し、既知量の硫酸アンモニウム（水酸化ナトリウム水溶液によりｐＨを７．５に調整済）を表５の各濃度になるようにリポソーム外相にそれぞれ添加し、リポソーム外相中に硫酸アンモニウムが既知濃度存在するリポソーム分散液を得た。
＜薬物溶液の調製＞
　メシル酸エリブリンを９６ｍｇ／ｍＬスクロース／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液で溶解し、５ｍｇ／ｍＬのメシル酸エリブリン溶液を得た。
＜リポソーム組成物の調製＞
　１０ｍＬのガラス容器中、リポソーム分散液とメシル酸エリブリン溶液をメシル酸エリブリン：０．２ｍｇ／ｍＬ，総脂質濃度:１６ｍＭとなるように混合した。６０℃で５分間昇温し、リポソーム内にメシル酸エリブリンが導入されたリポソーム組成物を得た。
＜封入率の測定＞
　封入率は、実施例１と同様にして測定した。結果を表５に示す。リポソーム外相中に硫酸アンモニウムが０．４ｍＭ存在するだけで封入率は顕著に低下し、１０ｍＭ存在するとほとんど封入されないことが示された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
［実施例９］
＜リポソーム内相用水溶液の調製＞
　実施例７と同様にして、１００ｍＭ　硫酸アンモニウム／３０ｍＭ　クエン酸水溶液（ｐＨ＝７．５）のリポソーム内相用水溶液を調製した。
＜リポソーム準備液の調製＞
　上記リポソーム内相用水溶液を用いて実施例７と同様にリポソーム準備液を調製した。
＜リポソーム分散液の調製＞
　Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－５０カラムを用い、得られたリポソーム準備液を０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液で溶出することで、リポソーム外相を０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液へ置換した。
　リポソーム外相を置換した後、４００，０００×ｇで１時間遠心し、上清を完全に除去した。沈殿物を９６ｍｇ／ｍＬスクロース／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液（ｐＨ＝７．５）で再懸濁し、リポソーム外相を９６ｍｇ／ｍＬスクロース／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液（ｐＨ＝７．５）に置換し、リポソーム分散液を得た。得られたリポソーム分散液の粒子径を動的光散乱法で測定したところ、約８０ｎｍであった。
　その後、リポソーム分散液を７本に分注した。
＜薬物溶液の調製＞
　メシル酸エリブリンを９６ｍｇ／ｍＬスクロース／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液で溶解し、５ｍｇ／ｍＬのメシル酸エリブリン溶液を得た。
＜リポソーム組成物の調製＞
　１０ｍＬのガラス容器中、リポソーム分散液とメシル酸エリブリン溶液をメシル酸エリブリン：０．２ｍｇ／ｍＬ，総脂質濃度:１６ｍＭとなるようにそれぞれ混合した。１Ｍ　水酸化ナトリウム水溶液を用いて表６に示すようにそれぞれリポソーム外相のｐＨを調整した。６０℃で５分間昇温し、リポソーム内にメシル酸エリブリンが導入されたリポソーム組成物を得た。次いで、塩酸を用いて外相のｐＨを７．５に調整した。
＜封入率の測定＞
　封入率は、実施例１と同様にして測定した。結果を表６に示す。リポソーム外相のｐＨの上昇に伴いエリブリンの封入率は大幅に向上し、ほぼ１００％の封入率を達成した。
［実施例１０］
＜リポソーム内相用水溶液の調製＞
　実施例７と同様にして、１００ｍＭ　硫酸アンモニウム／３０ｍＭ　クエン酸水溶液（ｐＨ＝７．５）のリポソーム内相用水溶液を調製した。
＜リポソーム準備液の調製＞
　上記リポソーム内相用水溶液を用いて実施例７と同様にリポソーム準備液を調製した。
＜リポソーム分散液の調製＞
　Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－５０カラムを用い、得られたリポソーム準備液を０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液で溶出することで、リポソーム外相を０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液へ置換した。
　リポソーム分散液を４本に分注し、４００，０００×ｇで１時間遠心し、上清を完全に除去した。そのうち２本の沈殿物は９６ｍｇ／ｍＬスクロース／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液（ｐＨ＝７．５）で再懸濁し、リポソーム外相を９６ｍｇ／ｍＬスクロース／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液（ｐＨ＝７．５）に置換した。残りの２本の沈殿物は０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液（ｐＨ＝７．５）で再懸濁し、リポソーム外相を０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液（ｐＨ＝７．５）に置換した。得られたリポソーム分散液の粒子径を動的光散乱法で測定したところ、いずれも約８０ｎｍであった。
＜薬物溶液の調製＞
　メシル酸エリブリンを９６ｍｇ／ｍＬスクロース／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液で溶解し、５ｍｇ／ｍＬのメシル酸エリブリン溶液を得た。また、同様にメシル酸エリブリンを０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液で溶解し、５ｍｇ／ｍＬのメシル酸エリブリン溶液を得た。
＜リポソーム組成物の調製＞
　１０ｍＬのガラス容器中、リポソーム分散液とメシル酸エリブリン溶液をメシル酸エリブリン：０．２ｍｇ／ｍＬ，総脂質濃度:１６ｍＭとなるようにそれぞれ混合した。リポソーム外相が９６ｍｇ／ｍＬスクロース／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液（ｐＨ＝７．５）の２本のうち１本のリポソーム外相のｐＨを水酸化ナトリウムの添加により９．５に調整した。同様に、リポソーム外相が０．９％塩化ナトリウム／１０ｍＭ　ヒスチジン水溶液（ｐＨ＝７．５）の２本のうち１本のリポソーム外相のｐＨを水酸化ナトリウムの添加により９．５に調整した。６０℃で５分間昇温し、リポソーム内にメシル酸エリブリンが導入されたリポソーム組成物を得た。
＜封入率の測定＞
　封入率は、実施例１と同様にして測定した。結果を表７に示す。リポソーム外相が非電解質であるスクロースの場合と比べ、電解質である塩化ナトリウムの場合では非常に高い封入率が得られることが明らかとなった。また、電解質の効果に加え、リポソーム外相をアルカリにするｐＨ勾配を適用することで１００％の封入率を達成した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　本出願は、２００９年３月３０日出願の日本特許出願（特願２００９－０８２５２１号）および米国特許仮出願（６１／１６４６５３）に基づくものであり、その内容はここに参照として取り込まれる。
　本発明は、活性化合物の保持安定性が高いリポソームを高い封入率で製造する方法を提供することができる。
　本発明のリポソーム組成物は、エリブリンまたはその薬理学的に許容される塩の薬理作用により治療用途に用いることが好適である。

Claims (39)

  1. 　リポソームを含み、リポソーム内相に活性化合物を含むリポソーム組成物であって、活性化合物がエリブリンまたはその薬理学的に許容される塩である、リポソーム組成物。
  2. 　リポソーム組成物が固体状または液体状である、請求項１に記載のリポソーム組成物。
  3. 　リポソーム内相にアンモニウム塩をさらに含む、請求項１または２に記載のリポソーム組成物。
  4. 　前記アンモニウム塩の濃度が１０ｍＭ以上である、請求項３に記載のリポソーム組成物。
  5. 　リポソーム内相に塩、酸、塩基および／またはアミノ酸をさらに含む、請求項１～４のいずれかに記載のリポソーム組成物。
  6. 　前記塩の濃度が１～３００ｍＭである、請求項５に記載のリポソーム組成物。
  7. 　前記酸の濃度が１～３００ｍＭである、請求項５または６に記載のリポソーム組成物。
  8. 　前記アミノ酸の濃度が１～３００ｍＭである、請求項５～７のいずれかに記載のリポソーム組成物。
  9. 　前記塩基の濃度が１～３００ｍＭである、請求項５～８のいずれかに記載のリポソーム組成物。
  10. 　前記活性化合物の濃度が０．０１～３００ｍｇ/ｍＬである、請求項１～９のいずれかに記載のリポソーム組成物。
  11. 　前記活性化合物がメシル酸エリブリンである、請求項１～１０のいずれかに記載のリポソーム組成物。
  12. 　リポソーム内相に硫酸アンモニウム、クエン酸、および活性化合物をさらに含む、請求項１～１１のいずれかに記載のリポソーム組成物。
  13. 　リポソーム外相に糖、電解質、および／またはアミノ酸を含む、請求項１～１２のいずれかに記載のリポソーム組成物。
  14. 　リポソーム外相に糖または電解質、およびアミノ酸を含む、請求項１～１３のいずれかに記載のリポソーム組成物。
  15. 　前記糖の濃度が２～２０％である、請求項１３または１４に記載のリポソーム組成物。
  16. 　前記アミノ酸の濃度が１～３００ｍＭである、請求項１３～１５のいずれかに記載のリポソーム組成物。
  17. 　リポソーム外相にショ糖または塩化ナトリウム、およびヒスチジンを含む、請求項１～１６のいずれかに記載のリポソーム組成物。
  18. 　前記リポソーム内相にシクロデキストリンを実質的に含まない、請求項１～１７のいずれかに記載のリポソーム組成物。
  19. 　リポソームが水素添加ホスファチジルコリンを含む、請求項１～１８のいずれかに記載のリポソーム組成物。
  20. 　リポソームがコレステロールを含む、請求項１～１９のいずれかに記載のリポソーム組成物。
  21. 　リポソームがメトキシポリエチレングリコール縮合体を含む、請求項１～２０のいずれかに記載のリポソーム組成物。
  22. 　前記メトキシポリエチレングリコール縮合体がジステアロイルホスファチジルエタノールアミン－ポリエチレングリコール縮合体である、請求項２１に記載のリポソーム組成物。
  23. 　リポソームが水素添加ホスファチジルコリン、コレステロール、およびジステアロイルホスファチジルエタノールアミン－ポリエチレングリコール縮合体を含む、請求項１～２２のいずれかに記載のリポソーム組成物。
  24. 　前記水素添加ホスファチジルコリンを１０～８０％、前記コレステロールを１～６０％、前記ジステアロイルホスファチジルエタノールアミン－ポリエチレングリコール縮合体を０～５０％含む、請求項２３に記載のリポソーム組成物。
  25. 　リポソームが水素添加大豆ホスファチジルコリン、コレステロール、およびポリエチレングリコール２０００－ホスファチジルエタノールアミンを含む、請求項１～２４のいずれかに記載のリポソーム組成物。
  26. 　請求項１～２５のいずれかに記載のリポソーム組成物を製造する方法であって、
    　リポソームを含む、リポソーム分散液を供するステップと、
    　前記リポソーム分散液と前記活性化合物とを混合するステップと、
    　前記リポソーム分散液のリポソーム内相に前記活性化合物を導入するステップと
    　を含む方法。
  27. 　前記リポソーム分散液がリポソーム外相にアンモニウム塩を実質的に含まない、請求項２６に記載の方法。
  28. 　前記リポソーム分散液のリポソーム外相のｐＨが３～１０である、請求項２６または２７に記載の方法。
  29. 　前記リポソーム分散液のリポソーム外相のｐＨが７～１０である、請求項２６～２８のいずれかに記載の方法。
  30. 　前記ｐＨが、前記リポソーム分散液と前記活性化合物とを混合するステップにおける前記リポソーム分酸液のリポソーム外相のｐＨである、請求項２８または２９に記載の方法。
  31. 　前記リポソーム分散液を供するステップが、リポソームを含み、リポソーム内相およびリポソーム外相にアンモニウム塩を含むリポソーム準備液を供するステップと、
    　前記リポソーム準備液のリポソーム外相を置換または希釈するステップと
    　を含む、請求項２６～３０のいずれかに記載の方法。
  32. 　前記リポソーム外相を置換または希釈するステップが、リポソーム外相のｐＨをリポソーム内相のｐＨより高くするステップである、請求項３１に記載の方法。
  33. 　前記リポソーム外相を置換または希釈するステップが、リポソーム内相のｐＨとリポソーム外相のｐＨの差を１～５とするステップである、請求項３１または３２に記載の方法。
  34. 　前記リポソーム内相のｐＨが３～９である、請求項２６～３３のいずれかに記載の方法。
  35. 　前記リポソーム内相のｐＨが４～９である、請求項２６～３４のいずれかに記載の方法。
  36. 　前記リポソーム内相のｐＨが５～８である、請求項２６～３５のいずれかに記載の方法。
  37. 　前記活性化合物を導入するステップにおいて、リポソーム外相が電解質を含む溶液である、請求項２６～３６のいずれかに記載の方法。
  38. 　前記リポソーム分散液が、シクロデキストリンをリポソーム内相に実質的に含まない、請求項２６～３７のいずれかに記載の方法。
  39. 　リポソーム外相のｐＨを中性にするステップをさらに含む、請求項２６～３８のいずれかに記載の方法。
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