WO2010074266A1 - 抗cd4抗体 - Google Patents

抗cd4抗体 Download PDF

Info

Publication number
WO2010074266A1
WO2010074266A1 PCT/JP2009/071681 JP2009071681W WO2010074266A1 WO 2010074266 A1 WO2010074266 A1 WO 2010074266A1 JP 2009071681 W JP2009071681 W JP 2009071681W WO 2010074266 A1 WO2010074266 A1 WO 2010074266A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
antibody
amino acid
seq
human
acid sequence
Prior art date
Application number
PCT/JP2009/071681
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
知明 中川
紗也香 堀
丹羽　倫平
麗夫 久保田
和宏 桝田
中村　和靖
Original Assignee
協和発酵キリン株式会社
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 協和発酵キリン株式会社 filed Critical 協和発酵キリン株式会社
Priority to EP09835062.2A priority Critical patent/EP2374883B1/en
Priority to ES09835062.2T priority patent/ES2602459T3/es
Priority to DK09835062.2T priority patent/DK2374883T3/en
Priority to JP2010544182A priority patent/JP5511686B2/ja
Publication of WO2010074266A1 publication Critical patent/WO2010074266A1/ja

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/28—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • C07K16/2803—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against the immunoglobulin superfamily
    • C07K16/2812—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against the immunoglobulin superfamily against CD4
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00—Antineoplastic agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00—Drugs for immunological or allergic disorders
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00—Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02—Immunomodulators
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00—Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02—Immunomodulators
    • A61P37/04—Immunostimulants
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00—Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/08—Antiallergic agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/505—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising antibodies
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K2317/00—Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/50—Immunoglobulins specific features characterized by immunoglobulin fragments
    • C07K2317/56—Immunoglobulins specific features characterized by immunoglobulin fragments variable (Fv) region, i.e. VH and/or VL
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K2317/00—Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/50—Immunoglobulins specific features characterized by immunoglobulin fragments
    • C07K2317/56—Immunoglobulins specific features characterized by immunoglobulin fragments variable (Fv) region, i.e. VH and/or VL
    • C07K2317/565—Complementarity determining region [CDR]
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K2317/00—Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/70—Immunoglobulins specific features characterized by effect upon binding to a cell or to an antigen
    • C07K2317/72—Increased effector function due to an Fc-modification
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K2317/00—Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/70—Immunoglobulins specific features characterized by effect upon binding to a cell or to an antigen
    • C07K2317/73—Inducing cell death, e.g. apoptosis, necrosis or inhibition of cell proliferation
    • C07K2317/732—Antibody-dependent cellular cytotoxicity [ADCC]
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K2317/00—Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/70—Immunoglobulins specific features characterized by effect upon binding to a cell or to an antigen
    • C07K2317/73—Inducing cell death, e.g. apoptosis, necrosis or inhibition of cell proliferation
    • C07K2317/734—Complement-dependent cytotoxicity [CDC]
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K2317/00—Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/90—Immunoglobulins specific features characterized by (pharmaco)kinetic aspects or by stability of the immunoglobulin
    • C07K2317/92—Affinity (KD), association rate (Ka), dissociation rate (Kd) or EC50 value
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K2319/00—Fusion polypeptide
    • C07K2319/30—Non-immunoglobulin-derived peptide or protein having an immunoglobulin constant or Fc region, or a fragment thereof, attached thereto
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/435—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans
    • G01N2333/705—Assays involving receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • G01N2333/70503—Immunoglobulin superfamily, e.g. VCAMs, PECAM, LFA-3
    • G01N2333/70514—CD4

Definitions

  • the present invention binds to human CD4 extracellular region with high affinity and has high antibody-dependent cellular cytotoxicity (hereinafter referred to as ADCC activity) or high complement-dependent cytotoxic activity (complement).
  • ADCC activity antibody-dependent cellular cytotoxicity
  • complement-dependent cytotoxic activity complement
  • a monoclonal antibody or an antibody fragment thereof exhibiting -dependent cellular cytotoxicity hereinafter referred to as CDC activity
  • CDC activity a hybridoma producing the antibody
  • a DNA encoding the antibody a vector comprising the DNA
  • a vector obtained by introducing the vector The present invention relates to a method for producing an antibody or an antibody fragment using the transformant, the hybridoma or the transformant, a therapeutic agent and a diagnostic agent using the antibody or the antibody fragment.
  • CD4 Cluster differentiation 4
  • CD4 is a glycoprotein with a molecular weight of approximately 550,000, expressed on the surface of most thymocytes, about two-thirds of peripheral blood T cells, monocytes, and macrophages.
  • CD4 is a type I transmembrane protein, and there are four immune immunoglobulin superfamily domains (D1-D4 in order from the N-terminal toward the cell membrane) outside the cell, totaling two sites in domains D3-D4 N-linked sugar chains are added.
  • CD4 binds to Major histocompatibility complex (MHC) class II molecules via the D1 and D2 domains and activates T cells.
  • MHC Major histocompatibility complex
  • CD4 is known to polymerize via the D3 and D4 domains.
  • the D1 domain of CD4 is known to be a receptor for human immunodeficiency virus (hereinafter referred to as HIV) (Non-patent Document 1).
  • CD4 is also known as T4, and the gene was cloned in 1985 (Non-patent Document 2).
  • the DNA sequence, amino acid sequence and three-dimensional structure of CD4 have been published on public databases.
  • P01730 It can be referred from the accession number such as SWISSPROT) or M12807 (EMBL).
  • the anti-CD4 monoclonal antibody OKT4 was first established as a monoclonal antibody that binds to CD4 (hereinafter referred to as mAb) (Non-patent Document 3). Since then, many monoclonal antibodies against CD4 (hereinafter referred to as anti-CD4 mAb) have been reported.
  • Non-patent Document 1 Many of the reported anti-CD4 mAbs are known to recognize the D1 domain (Non-patent Document 1). Some anti-CD4 mAbs have been clinically developed to treat cancer, immune diseases, and infectious diseases. For example, since the binding of CD4 and HIV is essential for HIV infection, antibodies that recognize the D1 domain of CD4 to which HIV binds are being developed as HIV therapeutic agents as antibodies that inhibit HIV infection. Yes.
  • anti-CD4 mAbs that have been developed as drugs for treating cancer or immune diseases include zanolimumab (6G5) (Non-patent Document 4) and keliximab (CE9.1) (Non-patent Document 5). These antibodies are antibodies that exert their medicinal effects by specifically damaging CD4 expressing cells, which are target cells, and it is considered that their medicinal mechanisms are mainly ADCC activity (Non-patent Documents 6 and 7). On the other hand, as with ADCC, these antibodies have been shown to have no CDC activity, which is generally known as one of the main drug efficacy mechanisms of antibody drugs (Non-Patent Documents 6 and 7).
  • the strength of CDC activity varies depending on the antibody subclass, and human IgG1 and IgG3 subclasses have high CDC activity, and the strength of CDC activity between subclasses is generally IgG3 ⁇ IgG1 >> IgG2 ⁇ IgG4. It is known to be ordered.
  • the CDC activity of an antibody may or may not be exhibited depending on the antigen to which the antibody binds (Non-patent Document 11). For this reason, not all antibodies necessarily exhibit CDC activity.
  • An object of the present invention is to bind a CD4 extracellular region with a high affinity and have a high ADCC activity or a CDC activity, or a monoclonal antibody or the antibody fragment thereof, a hybridoma producing the antibody, a DNA encoding the antibody, the DNA
  • a method for producing an antibody or antibody fragment using the transformant obtained by introducing the vector, the hybridoma or the transformant, and a therapeutic or diagnostic agent using the antibody or the antibody fragment There is.
  • the present invention relates to the following (1) to (35).
  • (1) dissociation constant of the antibody for antigen (hereinafter referred to as K D) is not more than 1 ⁇ 10 -9 M, and binds to the extracellular region of human CD4 with high affinity and high antibody-dependent cellular cytotoxicity (A monoclonal antibody against human CD4 having antibody-dependent cellular cytotoxicity (hereinafter referred to as ADCC activity) and the antibody fragment.
  • ADCC activity A monoclonal antibody against human CD4 having antibody-dependent cellular cytotoxicity
  • CDC activity complement dependent cellular cytotoxicity
  • the monoclonal antibody has an amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 51 to 53 in the complementarity determining region (hereinafter referred to as CDR) 1 to 3 of the heavy chain (hereinafter referred to as H chain) of the antibody.
  • CDR complementarity determining region
  • H chain heavy chain
  • L chain an amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 54 to 56.
  • the monoclonal antibody or the antibody fragment thereof according to any one of (1) to (3).
  • the monoclonal antibody has an amino acid sequence in which CDRs 1 to 3 of the H chain of the antibody are represented by SEQ ID NOs: 51 to 53, and amino acids in which CDR1 to 3 of the L chain of the antibody are represented by SEQ ID NOs: 54 to 56.
  • the monoclonal antibody or the antibody fragment thereof according to any one of (1) to (4), which is a monoclonal antibody that binds to the same epitope as the epitope present in the extracellular region of CD4 to which the antibody as a sequence binds.
  • the monoclonal antibody has an amino acid sequence in which CDRs 1 to 3 of the H chain of the antibody are represented by SEQ ID NOs: 27 to 29, and amino acids in which CDRs 1 to 3 of the L chain of the antibody are represented by SEQ ID NOs: 30 to 32 3.
  • the monoclonal antibody or the antibody fragment thereof according to any one of (1) to (2), which is a monoclonal antibody that competes with an antibody that is a sequence and binds to an extracellular region of CD4.
  • the monoclonal antibody has an amino acid sequence in which CDRs 1 to 3 of the H chain of the antibody are represented by SEQ ID NOs: 27 to 29, and amino acids in which CDRs 1 to 3 of the L chain of the antibody are represented by SEQ ID NOs: 30 to 32
  • the antibody or the antibody fragment thereof according to any one of (1) to (7), wherein the monoclonal antibody is a gene recombinant antibody.
  • the antibody heavy chain variable region (hereinafter referred to as VH) and the antibody light chain variable region (hereinafter referred to as VL) are selected from SEQ ID NO: 16 and SEQ ID NO: 26, and SEQ ID NO: 12 and SEQ ID NO: 22.
  • VH antibody heavy chain variable region
  • VL antibody light chain variable region
  • the VH and VL of the antibody are SEQ ID NO: 77 and SEQ ID NO: 78, SEQ ID NO: 96 and SEQ ID NO: 78, SEQ ID NO: 98 and SEQ ID NO: 78, SEQ ID NO: 100 and SEQ ID NO: 78, and SEQ ID NO: 100 and SEQ ID NO: 102.
  • (16) A transformed strain obtained by introducing the recombinant vector according to (15) into a host cell.
  • the transformed strain according to (16) is cultured in a medium, and the antibody or the antibody fragment thereof according to any one of (1) to (14) is produced and accumulated in the culture, The method for producing an antibody or antibody fragment according to any one of (1) to (13), wherein the antibody or the antibody fragment is collected.
  • the diagnostic agent according to (20), wherein the disease involving human CD4-positive cells is cancer.
  • the diagnostic agent according to (20), wherein the disease involving human CD4-positive cells is an allergic disease or an autoimmune disease.
  • the therapeutic agent according to (23), wherein the disease involving human CD4-positive cells is cancer.
  • the therapeutic agent according to (23), wherein the disease involving human CD4-positive cells is an allergic disease or an autoimmune disease.
  • (26) A method for diagnosing a disease involving human CD4-positive cells, comprising detecting or measuring human CD4-positive cells using the antibody or the antibody fragment thereof according to any one of (1) to (13) .
  • (27) A method for diagnosing a disease involving human CD4-positive cells, comprising detecting or measuring human CD4 using the antibody or the antibody fragment thereof according to any one of (1) to (13).
  • (28) The diagnostic method according to (26) or (27), wherein the disease involving human CD4 positive cells is cancer.
  • the diagnostic method according to (26) or (27), wherein the disease involving human CD4 positive cells is an allergic disease or an autoimmune disease.
  • the construction process of a CD4 expression vector is shown.
  • the construction process of a CD4-Fc expression vector is shown.
  • the reactivity of anti-CD4 rat monoclonal antibody and anti-CD4 mouse antibody OKT4 to human T cell lymphoma cell line HPB-ALL in FCM analysis is shown.
  • the graph is divided into (A) to (D) for each antibody subclass, with the horizontal axis representing the concentration of each antibody and the vertical axis representing the mean fluorescence intensity MFI value.
  • (A) ⁇ represents anti-CD4 rat monoclonal antibody KM4065, and ⁇ represents anti-CD4 rat monoclonal antibody KM4069.
  • (B) x represents anti-CD4 rat monoclonal antibody KM4068.
  • FIG. 2 shows complement-dependent cytotoxic activity (CDC activity) of CD4 expressing transfectants of anti-CD4 rat monoclonal antibody and anti-CD4 mouse monoclonal antibody OKT4.
  • the vertical axis in the figure represents the cytotoxic activity rate (%), and the horizontal axis represents the antibody concentration of the anti-CD4 monoclonal antibody.
  • ⁇ represents anti-CD4 rat monoclonal antibody KM4066
  • ⁇ represents anti-CD4 rat monoclonal antibody KM4067
  • ⁇ represents anti-CD4 rat monoclonal antibody KM4068
  • ⁇ represents anti-CD4 mouse monoclonal antibody OKT4.
  • the cloning process of an anti-CD4 rat monoclonal antibody is shown.
  • the construction process of an anti-CD4 chimeric antibody expression vector is shown.
  • the expression vector construction process of anti-CD4 human antibody 6G5-1 antibody and 6G5-113F antibody is shown.
  • the reactivity of various anti-CD4 antibodies in a binding ELISA is shown.
  • the horizontal axis represents the concentration of each antibody, and the vertical axis represents the binding activity of each antibody.
  • ⁇ in the broken line is the monoclonal antibody 6G5-1
  • ⁇ in the solid line is the anti-CD4 human antibody 6G5-P
  • ⁇ is the anti-CD4 human antibody 6G5-113F
  • ⁇ is the anti-CD4 chimeric antibody KM4045
  • ⁇ is the anti-CD4 chimeric antibody KM4046
  • the anti-CD4 chimeric antibody KM4047, the broken line x represents the anti-CD4 chimeric antibody KM4048, and the solid line x represents the anti-CD4 chimeric antibody KM4049.
  • the antibody-dependent cytotoxic activity (ADCC activity) of various anti-CD4 antibodies against various human T cell lines is shown.
  • the vertical axis in the figure represents the cytotoxic activity rate (%), and the horizontal axis represents the antibody concentration of each antibody.
  • ⁇ in the broken line is the monoclonal antibody 6G5-1
  • ⁇ in the solid line is the monoclonal antibody 6G5-P
  • ⁇ is the chimeric antibody 6G5-113F
  • ⁇ is the chimeric antibody KM4045
  • ⁇ is the chimeric antibody KM4046,
  • ⁇ is the chimeric antibody KM4047
  • the chimeric antibody KM4048 and the solid line x indicate the chimeric antibody KM4049, respectively.
  • A ADCC activity when HPB-ALL is used for target cells.
  • B ADCC activity when HUT78 is used for target cells.
  • FIG. 2 shows complement-dependent cytotoxic activity (CDC activity) of various anti-CD4 antibodies against CD4-expressing transfectants or human lymphoma cell lines.
  • the vertical axis represents the cytotoxic activity rate (%), and the horizontal axis represents the antibody concentration of each antibody.
  • A shows CDC activity against CD4-expressing transfectants.
  • B shows CDC activity against human lymphoma cell line HPB-ALL.
  • the broken line ⁇ indicates anti-CD4 human antibody 6G5-1
  • the solid line ⁇ indicates anti-CD4 human antibody 6G5-113F
  • ⁇ indicates anti-CD4 chimeric antibody KM4045
  • ⁇ indicates anti-CD4 chimeric antibody KM4046
  • ⁇ indicates anti-CD4 chimeric antibody KM4047
  • ⁇ represents anti-CD4 chimeric antibody KM4049
  • ⁇ on the broken line represents anti-CD4 mouse antibody OKT4.
  • the reactivity of various anti-CD4 antibodies to CD4 positive T cell lymphoma cell line HPB-ALL using a flow cytometer is shown.
  • the horizontal axis represents antibody concentration ( ⁇ g / mL), and the vertical axis represents average fluorescence intensity MFI value.
  • ⁇ is a chimeric antibody KM4045
  • ⁇ is a humanized antibody HV0LV0
  • ⁇ is a humanized antibody HV2LV0
  • ⁇ is a humanized antibody HV3LV0
  • ⁇ is a humanized antibody HV4LV6
  • ⁇ is a human antibody 6G5-1
  • ⁇ represents the human antibody 6G5-P.
  • the antibody-dependent cytotoxic activity (ADCC activity) of various anti-CD4 antibodies against various human T-cell lymphoma lines is shown.
  • the vertical axis in the figure represents the cytotoxic activity rate (%), and the horizontal axis represents the antibody concentration (ng / mL).
  • ⁇ represents the chimeric antibody KM4045, ⁇ represents the humanized antibody KM8045, the broken line represents the human antibody 6G5-1, and the solid line represents the human antibody 6G5-P.
  • A ADCC activity when HPB-ALL is used for target cells.
  • B ADCC activity when HUT78 is used for target cells.
  • C ADCC activity when CCRF-CEM is used for target cells.
  • mouth is shown.
  • the horizontal axis represents the number of days after tumor transplantation, and the vertical axis represents the tumor volume.
  • X represents a negative control group
  • ⁇ represents a KM8045 administration group
  • ⁇ represents a 6G5-P administration group. Bars indicate standard deviation.
  • the antitumor effect (metastasis model) of each antibody with respect to CD4 / EL4 cell transplanted to C57BL / 6 mouse is shown.
  • (A) The vertical axis represents the liver weight ratio, and (B) the vertical axis represents the kidney weight ratio. Bars indicate standard deviation.
  • mouth is shown.
  • the horizontal axis represents the number of days after tumor transplantation, and the vertical axis represents the tumor volume.
  • X represents a negative control group
  • ⁇ represents a KM8045 20 ⁇ g / head administration group
  • ⁇ represents a KM8045 100 ⁇ g / head administration group
  • ⁇ represents a KM8045 200 ⁇ g / head administration group. Bars indicate standard deviation.
  • the present invention relates to a monoclonal antibody or an antibody fragment thereof that binds to the CD4 extracellular region with high affinity and has high antibody-dependent cellular cytotoxicity (hereinafter referred to as ADCC activity).
  • CD4 in the present invention a polypeptide having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 or EMBL accession number M12807 or one or more amino acids in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 or EMBL accession number M12807 is deleted, A polypeptide comprising a substituted or added amino acid sequence and having a CD4 function, and 60% or more, preferably 80% or more, more preferably 90%, with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 or EMBL accession number M12807 Examples thereof include a polypeptide having an amino acid sequence having the above homology, most preferably a polypeptide having an amino acid sequence having a homology of 95% or more and having a CD4 function.
  • a polypeptide having an amino acid sequence in which one or more amino acids have been deleted, substituted, or added in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 or EMBL accession number M12807 can be obtained by site-directed mutagenesis [Molecular Cloning, A Laboratory Manual , Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989), Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons (1987-1997), Nucleic Acids Research, 10 , 6487 (1982), Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 79 , 6409 (1982), Gene, 34 , 315 (1985), Nucleic Acids Research, 13 , 4431 (1985), Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 82 , 488 (1985)], etc.
  • the number of amino acids to be deleted, substituted or added is not particularly limited, but is preferably 1 to several tens, for example 1 to 20, more preferably 1 to several, for example 1 to 5 amino acids. It is.
  • Examples of the gene encoding CD4 include the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 2 or EMBL accession number M12807.
  • DNA having the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 2 or EMBL accession number M12807 was used as a probe for colony hybridization, plaque hybridization, Southern blot -This means hybridizable DNA obtained by the hybridization method or DNA microarray method. Specifically, DNA derived from hybridized colonies or plaques, or PCR products or oligo DNAs having this sequence are immobilized. Hybridization at 65 ° C.
  • the hybridizable DNA is DNA having at least 60% or more homology with the base sequence represented by SEQ ID NO: 2 or EMBL accession number M12807, preferably DNA having 80% or more homology, more preferably 95 % Of DNA having homology of at least%.
  • a gene polymorphism In the base sequence of a gene encoding a eukaryotic protein, a gene polymorphism is often observed.
  • the gene used in the present invention which has a small-scale mutation in the base sequence due to such polymorphism, is also included in the gene encoding CD4 of the present invention.
  • the numerical value of homology in the present invention may be a numerical value calculated using a homology search program known to those skilled in the art.
  • the default parameters are 5 if G (Cost to open gap) is a base sequence, 11 if it is an amino acid sequence, 2 if -E (Cost to extend gap) is a base sequence, and 1 if it is an amino acid sequence.
  • -Q (Penalty for nucleotide mismatch) is -3
  • -r (reward for nucleotide match) is 1
  • -e (expect value) is 10
  • -W (wordsize) is a base sequence
  • 11 residues amino acid sequence 3 residues
  • -y [Dropoff (X) for) blast extensions in bits] is 20 if blastn, 7 for programs other than blastn
  • -X X dropoff value for gapped alignment in bits
  • Z final X dropoff value for gapped alignment in bits
  • a polypeptide consisting of a partial sequence of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 or EMBL accession number M12807 can be produced by a method known to those skilled in the art, for example, a DNA encoding the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2. Can be prepared by culturing a transformant into which an expression vector containing this is introduced. Further, based on the polypeptide or DNA produced by the above method, one or more amino acids in the partial sequence of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 or EMBL accession number M12807 is deleted by the same method as described above, A polypeptide having a substituted or added amino acid sequence can be obtained.
  • polypeptide consisting of a partial sequence of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 or EMBL accession number M12807, or a partial sequence of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 or EMBL accession number M12807 is deleted.
  • a polypeptide having a substituted or added amino acid sequence can also be produced by a chemical synthesis method such as a fluorenylmethyloxycarbonyl (Fmoc) method or a t-butyloxycarbonyl (tBoc) method.
  • the amino acid sequence of the polypeptide represented by SEQ ID NO: 1 is converted into a known transmembrane region prediction program SOSUI (http://bp.nuap.nagoya-u.ac.jp/ SOSUI / SOSUI_submit.), TMHMM ver. 2 (http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM-2.0/) or ExPASy Proteomics Server (http://Ca.expasy.org/) It is done.
  • examples include up to 394th from the N-end, which is an extracellular domain predicted in SOSUI.
  • the extracellular domain has D1-D4 immunoglobulin superfamily domains, and any domain is included.
  • any extracellular region of CD4 having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 or EMBL accession number M12807 has a structure equivalent to a structure that can be taken in a natural state.
  • the structure of may be sufficient.
  • the structure that the extracellular region of CD4 can take in the natural state refers to the natural three-dimensional structure of CD4 expressed on the cell membrane.
  • the function of CD4 is to bind a complex of MHC class II expressed on an antigen-presenting cell and an antigen to each other via a T cell receptor expressed on a T cell. It means that T cell activation or differentiation is caused by acting as a cofactor of the T cell receptor.
  • the function of CD4 is that CD4 expressed on the cell membrane of T cells binds to gp120, one of the envelope proteins of human immunodeficiency virus (HIV), so that HIV can infect T cells. It can also be involved.
  • the binding of the antibody of the present invention or the antibody fragment thereof to the extracellular region of CD4 is known for cells expressing CD4 using a radioimmunoassay using a solid phase sandwich method or an enzyme immunoassay (ELISA). It can be confirmed by a method capable of examining the binding property of an antibody to a specific antigen with cells expressing the specific antigen, such as an immunological detection method, preferably a fluorescent cell staining method.
  • fluorescent antibody staining using the FMAT8100HTS system Applied Biosystems
  • fluorescent cell staining using flow cytometry or Biacore system (GE Healthcare)
  • Biacore system GE Healthcare
  • the cell expressing CD4 may be any cell as long as it expresses CD4.
  • a cell naturally existing in the human body a cell line established from a cell naturally existing in the human body, or a gene set Examples thereof include cells obtained by the replacement technique.
  • Examples of cells naturally present in the human body include cells in which the polypeptide is expressed in autoimmune disease patients, allergic patients, and cancer patients.
  • the cells Examples include cells expressing CD4.
  • the CD4 As a cell line established from cells naturally present in the human body, among the cell lines obtained by establishing cells expressing the CD4 obtained from the above cancer patients, the CD4 is expressed. Examples thereof include human T cell lymphoma cell line HPB-ALL [DSMZ number: ACC483] or HUT78 (ATCC number: TIB162) which are cell lines established from humans. Specifically, cells obtained by gene recombination technology include cells expressing CD4 obtained by introducing an expression vector containing cDNA encoding CD4 into insect cells or animal cells. can give.
  • the dissociation constant for CD4 antibody (hereinafter, referred to as K D) is at 1 ⁇ 10 -9 M or less, binds to the extracellular region of human CD4 with high affinity, and higher ADCC activity And monoclonal antibodies against human CD4 and the antibody fragments thereof.
  • the dissociation constant K D for the antigen of the antibody is not more than 1 ⁇ 10 -9 M, and binds to the extracellular region of human CD4 with high affinity, has high ADCC activity, and high Examples thereof include monoclonal antibodies having complement-dependent cellular cytotoxicity (CDC activity) and the antibody fragments.
  • the antibody of the present invention also includes a monoclonal antibody having CDC activity against a human cancer cell line expressing human CD4 and the antibody fragment.
  • examples of the monoclonal antibody include an antibody produced by a hybridoma or a recombinant antibody produced by a transformant transformed with an expression vector containing an antibody gene.
  • a monoclonal antibody is an antibody that is secreted by an antibody-producing cell of a single clone, recognizes only one epitope (also called an antigenic determinant), and has a uniform amino acid sequence (primary structure) constituting the monoclonal antibody. .
  • a monoclonal antibody has a structure composed of a heterotetramer composed of two H chains and two L chains, and the H chain is an H chain variable region (hereinafter referred to as VH) and an H chain constant region ( Hereinafter, it is referred to as CH), and the L chain is composed of an L chain variable region (hereinafter referred to as VL) and an L chain constant region (CL).
  • VH H chain variable region
  • CH H chain constant region
  • CL L chain constant region
  • CH consists of four domains, a CH1 domain, a hinge domain, a CH2 domain, and a CH3 domain. The CH2 domain and the CH3 domain are collectively defined as an antibody Fc region, Fc domain, or simply Fc.
  • Epitopes include a single amino acid sequence that is recognized and bound by a monoclonal antibody, a three-dimensional structure composed of amino acid sequences, an amino acid sequence linked with sugar chains, and a three-dimensional structure composed of amino acid sequences combined with sugar chains.
  • the epitope recognized by the monoclonal antibody of the present invention is preferably an extracellular region of CD4, an epitope consisting of amino acid sequences 1 to 394 of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1, more preferably D1 of the extracellular region of CD4 or Examples include an epitope consisting of a D2 domain, or an epitope consisting of a D3 or D4 domain close to the cell membrane in the extracellular region of CD4.
  • the antibody that binds with high CD4 affinity is an antibody having sufficient affinity as therapeutic antibodies, preferably a dissociation constant K D of 1 ⁇ 10 -9 M or less, more preferably 7 ⁇ 10 - It means binding to CD4 with an affinity of 10 M or less, more preferably 2 ⁇ 10 ⁇ 10 M or less.
  • K D dissociation constant
  • Affinity is measured by reaction kinetic analysis, and can be measured using, for example, Biacore T100 (manufactured by GE Healthcare Bioscience).
  • the slow dissociation means that the value of the dissociation rate constant kd of the antibody calculated in Biacore T100 shows a smaller value.
  • a small dissociation rate constant indicates that the antibody is unlikely to dissociate from cells expressing the antigen, and by increasing the amount of antibody that binds to the cell surface, the antibody efficacy is prolonged, resulting in a high efficacy. Can be expected.
  • the dissociation rate constant kd is measured using, for example, Biacore T100 (manufactured by GE Healthcare Bioscience), and can be calculated using attached software Biacore T100 evaluation software (manufactured by Biacore).
  • an antibody having high ADCC activity refers to the ADCC activity of a plurality of antibodies simultaneously on CD4 expressing cells using a known measurement method [Cancer Immunol. Immunother., 36 , 373 (1993)]. When measured, it refers to an antibody having higher ADCC activity than the anti-CD4 antibodies 6G5 and CE9.1, which have been reported to have ADCC activity.
  • ADCC activity means that an antibody bound to an antigen on a target cell binds to an Fc receptor of an immune cell through the Fc region of the antibody to activate an immune cell (such as a natural killer cell) and damage the target cell. Activity.
  • Fc receptor (hereinafter also referred to as FcR) is a receptor that binds to the Fc region of an antibody, and induces various effector activities by the binding of the antibody.
  • FcR corresponds to an antibody subclass, and IgG, IgE, IgA, and IgM specifically bind to Fc ⁇ R, Fc ⁇ R, Fc ⁇ R, and Fc ⁇ R, respectively.
  • Fc ⁇ R has Fc ⁇ RI (CD64), Fc ⁇ RII (CD32), and Fc ⁇ RIII (CD16) subtypes, and Fc ⁇ RIA, Fc ⁇ RIB, Fc ⁇ RIC, Fc ⁇ RIIA, Fc ⁇ RIIB, Fc ⁇ RIIC, Fc ⁇ RIIIA, and Fc ⁇ RIIIB exist. To do. These different Fc ⁇ Rs are present on different cells (Annu. Rev. Immunol. 9: 457-492 (1991)). In humans, Fc ⁇ RIIIB is specifically expressed in neutrophils, and Fc ⁇ RIIIA is expressed in monocytes, Natural Killer cells (NK cells) and some T cells. Antibody binding via Fc ⁇ RIIIA induces NK cell-dependent ADCC activity.
  • an antibody having high CDC activity refers to the CDC activity of a plurality of antibodies simultaneously against CD4-expressing cells using a known CDC measurement method using human complement [Cancer Immunol. Immunother., 36 , 373 (1993)], the antibody has higher CDC activity than the existing anti-CD4 antibody. More preferably, when the CDC activity of an antibody is measured in the same manner as described above against a CD4 expressing cell or a CD4 positive cancer cell line that is naturally present in the human body, the CDC activity is higher than that of an existing anti-CD4 antibody.
  • CDC activity refers to an activity in which an antibody bound to an antigen on a target cell activates a series of cascades (complement activation pathways) composed of complement-related proteins in the blood and damages the target cell.
  • migration and activation of immune cells can be induced by protein fragments generated by complement activation.
  • the antibody of the present invention include a monoclonal antibody that binds to either D1 or D2 in the extracellular region of human CD4, or a D3 or D4 domain close to the cell membrane of the extracellular region of human CD4, and the antibody fragment.
  • CDRs 1 to 3 of the heavy chain variable region (hereinafter referred to as VH) of the antibody are amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 33 to 35
  • a monoclonal antibody in which CDRs 1 to 3 of the light chain variable region (hereinafter referred to as VL) of the antibody are amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 36 to 38
  • a D3 or D4 domain As an antibody that recognizes, CDR1 to 3 of antibody VH is an amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 51 to 53
  • CDR1 to 3 of antibody VL is an amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 54 to 56
  • a monoclonal antibody, a monoclonal antibody in which CDR1 to 3 of antibody VH are amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 27 to 29, and CDR1 to 3 of antibody VL chain are amino acid sequences represented by
  • the monoclonal antibody of the present invention specifically, a monoclonal antibody or an antibody of which the VH of the antibody is an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 16 and the VL of the antibody is an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 26
  • the VH of the antibody is the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 13
  • a monoclonal antibody in which the VL of the antibody is the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 23
  • the VH of the antibody is the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 14
  • the VL of the antibody is the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 24
  • Examples thereof include a monoclonal antibody and a monoclonal antibody in which VH of the antibody is an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 15 and VL of the antibody is an amino acid sequence represented by SEQ
  • the monoclonal antibody of the present invention the same monoclonal antibody that binds to the extracellular region of CD4 and the epitope present on the extracellular region of CD4 to which the above-mentioned monoclonal antibody binds compete with the monoclonal antibody described above. Mention may be made of monoclonal antibodies that bind to the epitope. Furthermore, the present invention includes monoclonal antibodies that bind to CD4 and have apoptosis-inducing activity and antibody fragments thereof.
  • the hybridoma is prepared by using, for example, cells expressing the above-mentioned CD4 as antigens, inducing antibody-producing cells having antigen specificity from animals immunized with the antigens, and further fusing the antibody-producing cells and myeloma cells.
  • An anti-CD4 monoclonal antibody can be obtained by culturing the hybridoma or administering the hybridoma cell to an animal to cause ascites cancer and separating and purifying the culture medium or ascites.
  • Any animal can be used as the animal to immunize with the antigen as long as it can produce a hybridoma.
  • a mouse, a rat, a hamster, a chicken or a rabbit is used.
  • antibodies produced by hybridomas obtained by obtaining cells having antibody-producing ability from such animals, immunizing the cells with in vitro, and fusing with myeloma cells are also included in the antibodies of the present invention. Is included.
  • a recombinant antibody includes a human chimeric antibody, a humanized antibody (also referred to as a human complementarity determining region (CDR) transplanted antibody), a human antibody, or an antibody fragment thereof. It includes antibodies produced by replacement.
  • a recombinant antibody having characteristics of a monoclonal antibody, low antigenicity, and extended blood half-life is preferable as a therapeutic agent. Examples of the recombinant antibody include those obtained by modifying the monoclonal antibody of the present invention using a gene recombination technique.
  • the CH of the recombinant antibody of the present invention is preferably derived from human and includes a CH1 domain, a hinge domain, a CH2 domain, and a CH3 domain.
  • the Fc region of the recombinant antibody of the present invention may contain one or more amino acid residue modifications as long as it has binding activity to Fc ⁇ R.
  • the human chimeric antibody refers to an antibody comprising a heavy chain variable region VH and a light chain variable region VL of a non-human animal antibody and CH and CL of a human antibody.
  • the human chimeric antibody of the present invention obtains cDNA encoding VH and VL from a hybridoma that specifically recognizes CD4 and produces a monoclonal antibody that binds to the extracellular region. It is inserted into an animal cell expression vector having a gene encoding, and a human chimeric antibody expression vector is constructed and introduced into an animal cell for expression and production.
  • the CH of the human chimeric antibody may be any CH as long as it belongs to human immunoglobulin (hereinafter referred to as hIg), preferably hIgG class, and hIgG1, hIgG2, and hIgG3 belonging to hIgG class. Any of the subclasses such as hIgG4 can be used.
  • the CL of the human chimeric antibody may be any as long as it belongs to hIg, and those of ⁇ class or ⁇ class can be used.
  • the human chimeric antibody of the present invention is a chimeric antibody or antibody comprising the antibody VH having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 16 and the antibody VL having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 26.
  • the chimeric antibody of the present invention is the same as the chimeric antibody that competes with the chimeric antibody described above and binds to the extracellular region of CD4 and the epitope present on the extracellular region of CD4 to which the chimeric antibody binds.
  • a chimeric antibody that binds to an epitope can be mentioned.
  • a humanized antibody refers to an antibody obtained by grafting the VH and VL CDR amino acid sequences of a non-human animal antibody into appropriate positions of the human antibody VH and VL.
  • the humanized antibody of the present invention specifically recognizes VH and VL of a non-human animal antibody produced from a hybridoma that produces a monoclonal antibody of a non-human animal that specifically recognizes CD4 and binds to the extracellular region.
  • a cDNA encoding the V region in which the CDR amino acid sequence is grafted to the VH and VL FR of any human antibody is constructed, and inserted into an expression vector for animal cells having genes encoding the CH and CL of the human antibody, respectively.
  • Humanized antibody expression vectors can be constructed and expressed and produced by introducing them into animal cells.
  • the CH of the humanized antibody may be any as long as it belongs to hIg, but preferably the hIgG class is used, and any of the subclasses such as hIgG1, hIgG2, hIgG3, or hIgG4 belonging to the hIgG class may be used. it can.
  • the CL of the humanized antibody may be any as long as it belongs to hIg, and those of ⁇ class or ⁇ class can be used.
  • CDR1 to 3 of VH of the antibody are amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 51 to 53, and amino acids of CDR1 to 3 of VL of the antibody are represented by SEQ ID NOs: 54 to 56
  • the humanized antibody as a sequence, the CDR1 to 3 of the VH of the antibody are the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 27 to 29, and the amino acid sequence of the CDR1 to 3 of the L chain of the antibody are represented by SEQ ID NOs: 30 to 32
  • CDR1 to 3 of the VH of the antibody is an amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 33 to 35
  • CDR1 to 3 of the L chain of the antibody is an amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 36 to 38
  • a humanized antibody, CDR1-3 of the VH of the antibody is an amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 39-41, and CDR1-3 of the L chain of the antibody is an amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 42-44 CDRs
  • humanized antibody of the present invention examples include the humanized antibodies shown below.
  • the amino acid sequence of the antibody VH the 18th Leu, 93rd Val, 97th Ala and 114th Thr in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 77 are the other amino acid residues.
  • a humanized antibody having an amino acid sequence substituted with Preferably, a humanized antibody having an amino acid sequence in which the 93rd Val, 97th Ala and 114th Thr in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 77 are substituted with other amino acid residues in the antibody VH.
  • a humanized antibody having an amino acid sequence in which the 18th Leu, 97th Ala and 114th Thr in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 77 are substituted with other amino acid residues in the antibody VH.
  • Preferred examples include a humanized antibody having an amino acid sequence in which 97th Ala and 114th Thr are substituted with other amino acid residues.
  • the 18th Leu in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 77 is Met
  • the 93rd Val is Thr
  • the 97th Ala is Thr
  • an amino acid sequence into which at least one modification selected from the modification in which the 114th Thr is substituted with Ile is introduced.
  • the amino acid sequence of VH into which four modifications were introduced was, in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 77, 18th Leu as Met, 93rd Val as Thr, 97th as Examples include amino acid sequences in which Ala is replaced with Thr and 114th Thr is replaced with Ile.
  • amino acid sequence of VH into which three modifications have been introduced specifically, in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 77 An amino acid sequence in which the 93rd Val is replaced with Thr, the 97th Ala is replaced with Thr, and the 114th Thr is replaced with Ile, An amino acid sequence in which the 18th Leu is replaced with Met, the 97th Ala with Thr, and the 114th Thr with Ile, An amino acid sequence in which the 18th Leu is replaced with Met, the 93rd Val is replaced with Thr, and the 114th Thr is replaced with Ile, and Examples include amino acid sequences in which the 18th Leu is replaced with Met, the 93rd Val is replaced with Thr, and the 97th Ala is replaced with Thr.
  • amino acid sequence of VH into which two modifications are introduced specifically, in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 77 An amino acid sequence in which the 18th Leu is replaced with Met and the 93rd Val is replaced with Thr, An amino acid sequence in which the 18th Leu is replaced with Met and the 97th Ala with Thr, An amino acid sequence in which the 18th Leu is replaced with Met, and the 114th Thr is replaced with Ile, Amino acid sequence in which 93rd Val is replaced with Thr and 97th Ala is replaced with Thr, Amino acid sequence in which 93rd Val is replaced with Thr, and 114th Thr is replaced with Ile, and Examples include amino acid sequences in which the 97th Ala is replaced with Thr and the 114th Thr is replaced with Ile.
  • amino acid sequence of VH into which one modification has been introduced specifically, in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 77
  • An amino acid sequence in which the 18th Leu is replaced with Met, an amino acid sequence in which the 93rd Val is replaced with Thr, an amino acid sequence in which the 97th Ala is replaced with Thr, and an amino acid sequence in which the 114th Thr is replaced with Ile, can give.
  • the 13th Ala, 15th Val, 19th Val, 47th Ala, 62nd Val, and 82nd Leu in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 78 examples include amino acid sequences substituted with other amino acid residues.
  • an amino acid sequence in which the 13th Ala, 19th Val, 62nd Val, and 82nd Leu in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 78 is substituted with another amino acid residue is exemplified. .
  • the 13th Ala in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 78 is Val
  • the 15th Val is Leu
  • the 19th Val is Ala
  • Examples include an amino acid sequence in which at least one modification selected from a modification in which the 47th Ala is replaced with Gln, the 62nd Val is replaced with Ile, and the 82nd Leu is replaced with Val is introduced.
  • the 13th Ala in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 78 is Val
  • the 15th Val is Leu
  • the 19th Examples include amino acid sequences in which Val is replaced with Ala, 47th Ala is replaced with Gln, 62nd Val is replaced with Ile, and 82nd Leu is replaced with Val.
  • the amino acid sequence of VL introduced with five modifications is the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 78.
  • amino acid sequence of VL into which four modifications have been introduced specifically, in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 78 Amino acid sequence in which the 13th Ala is replaced with Val, the 15th Val is replaced with Leu, the 19th Val is replaced with Ala, and the 47th Ala is replaced with Gln.
  • Amino acid sequence with 13th Ala replaced with Val, 19th Val replaced with Ala, 47th Ala replaced with Gln, and 82nd Leu replaced with Val An amino acid sequence in which the 13th Ala is replaced with Val, the 19th Val is replaced with Ala, the 62nd Val is replaced with Ile, and the 82nd Leu is replaced with Val.
  • the amino acid sequence of VL introduced with three modifications is the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 78.
  • Amino acid sequence in which the 13th Ala is replaced with Val, the 47th Ala with Gln, and the 62nd Val with Ile Amino acid sequence in which the 13th Ala is replaced with Val, the 47th Ala is replaced with Gln, and the 82nd Leu is replaced with Val.
  • the amino acid sequence of VL into which two modifications are introduced is the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 78.
  • Amino acid sequence in which the 13th Ala is replaced with Val and the 15th Val is replaced with Leu Amino acid sequence in which the 13th Ala is replaced with Val and the 19th Val is replaced with Ala
  • Amino acid sequence in which the 13th Ala is replaced with Val and the 62nd Val is replaced with Ile
  • Amino acid sequence in which the 13th Ala is replaced with Val and the 82nd Leu is replaced with Val
  • An amino acid sequence in which the 15th Val is replaced with Leu and the 19th Val is replaced with Ala
  • Amino acid sequence in which the 15th Val is replaced with Leu and the 47th Ala with Gln
  • the amino acid sequence of VL introduced with one modification is the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 78.
  • Amino acid sequence with 13th Ala substituted with Val, 15th Val substituted with Leu, 19th Val substituted with Ala, 47th Ala substituted with Gln, 62nd amino acid sequence The amino acid sequence in which Val is replaced with Ile, the amino acid sequence in which the 82nd Leu is replaced with Val, and the like.
  • human antibody of the present invention examples include a human in which VH is an amino acid sequence selected from SEQ ID NOs: 77, 96, 98 and 100, and / or VL is an amino acid sequence selected from SEQ ID NOs: 78 and 102 Antibody.
  • the humanized antibody in which the H chain of the variable region has the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 77 and / or the L chain of the variable region is represented by SEQ ID NO: 78
  • a humanized antibody having an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 100 and / or VL represented by SEQ ID NO: 78, and a humanized antibody having an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 100 and / or VL represented by SEQ ID NO: 102 Examples include antibodies.
  • the humanized antibody of the present invention is present on the humanized antibody that binds to the extracellular region of CD4 in competition with the above-mentioned humanized antibody and on the extracellular region of CD4 to which the above-mentioned humanized antibody binds.
  • Humanized antibodies that bind to the same epitope as the epitope can be mentioned.
  • a human antibody originally refers to an antibody that naturally exists in the human body, but a human antibody phage library and a human antibody-producing transgene prepared by recent advances in genetic engineering, cell engineering, and developmental technology. Also included are antibodies obtained from transgenic animals.
  • the antibodies naturally present in the human body can be cultured by, for example, isolating human peripheral blood lymphocytes, infecting and immortalizing EB virus, etc., and cloning the lymphocytes that produce the antibodies.
  • the antibody can be further purified.
  • the human antibody phage library is a library in which antibody fragments such as Fab and scFv are expressed on the phage surface by inserting an antibody gene prepared from human B cells into the phage gene. From the library, phages expressing an antibody fragment having a desired antigen-binding activity on the surface can be recovered using the binding activity to the substrate on which the antigen is immobilized as an index.
  • the antibody fragment can be further converted into a human antibody molecule comprising two complete heavy chains and two complete light chains by genetic engineering techniques.
  • a human antibody-producing transgenic animal means an animal in which a human antibody gene is incorporated into cells.
  • a human antibody-producing transgenic mouse can be produced by introducing a human antibody gene into a mouse ES cell, transplanting the ES cell into an early mouse embryo, and generating the mouse embryo.
  • human antibody-producing hybridomas are obtained and cultured using normal hybridoma production methods performed in non-human animals to produce human antibodies in the culture supernatant. It can be produced by accumulating.
  • the number of amino acids to be deleted, substituted, inserted and / or added is one or more and the number is not particularly limited, but site-directed mutagenesis [Molecular Cloning 2nd Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989), Current protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons (1987-1997), Nucleic Acids Research, 10 , 6487 (1982), Proc. Natl. Acad.
  • the number is 1 to several tens, preferably 1 to 20, more preferably 1 to 10, and further preferably 1 to 5.
  • deletion, substitution, insertion or addition of one or more amino acid residues in the amino acid sequence of the above antibody indicates the following. That is, it means that there is a deletion, substitution, insertion or addition of one or more amino acid residues in any and one or more amino acid sequences in the same sequence.
  • deletion, substitution, insertion or addition may occur simultaneously, and the amino acid residue to be substituted, inserted or added may be either a natural type or a non-natural type.
  • Natural amino acid residues include L-alanine, L-asparagine, L-aspartic acid, L-glutamine, L-glutamic acid, glycine, L-histidine, L-isoleucine, L-leucine, L-lysine, L-methionine , L-phenylalanine, L-proline, L-serine, L-threonine, L-tryptophan, L-tyrosine, L-valine, or L-cysteine.
  • amino acid residues contained in the same group can be substituted for each other.
  • Group A leucine, isoleucine, norleucine, valine, norvaline, alanine, 2-aminobutanoic acid, methionine, O-methylserine, t-butylglycine, t-butylalanine, cyclohexylalanine
  • Group B aspartic acid, glutamic acid, isoaspartic acid, Isoglutamic acid, 2-aminoadipic acid, 2-aminosuberic acid
  • Group C asparagine, glutamine
  • D lysine, arginine, ornithine, 2,4-diaminobutanoic acid, 2,3-diaminopropionic acid
  • Group E proline, 3 -Hydroxyproline, 4-hydroxyproline
  • Group F serine, threonine, homoserine
  • Fab is a disulfide of about half of the N-terminal side of the H chain and the entire L chain of fragments obtained by treating IgG with papain, a proteolytic enzyme (cleaved at the 224th amino acid residue of the H chain). It is an antibody fragment having an antigen binding activity with a molecular weight of about 50,000 bound by binding.
  • the Fab of the present invention can be obtained by treating a monoclonal antibody that specifically recognizes CD4 and binds to the extracellular region with papain.
  • a Fab may be produced by inserting a DNA encoding the Fab of the antibody into a prokaryotic expression vector or a eukaryotic expression vector, and expressing the vector by introducing the vector into a prokaryotic or eukaryotic organism. it can.
  • F (ab ') 2 was obtained by cleaving the lower part of two disulfide bonds in the hinge region of IgG with pepsin, a proteolytic enzyme. It is a fragment having an antigen binding activity with a molecular weight of about 100,000.
  • the F (ab ′) 2 of the present invention can be obtained by treating a monoclonal antibody that specifically recognizes CD4 and binds to the extracellular region with pepsin.
  • Fab ′ described below can be produced by thioether bond or disulfide bond.
  • Fab ′ is an antibody fragment having a molecular weight of about 50,000 and having an antigen binding activity obtained by cleaving the disulfide bond in the hinge region of F (ab ′) 2 .
  • Fab ′ of the present invention can be obtained by treating F (ab ′) 2 that specifically recognizes CD4 of the present invention and binds to the extracellular region with a reducing agent such as dithiothreitol.
  • DNA encoding the Fab ′ fragment of the antibody is inserted into a prokaryotic expression vector or eukaryotic expression vector, and the vector is introduced into prokaryotic or eukaryotic cells to express Fab ′. You can also
  • scFv is a VH-P-VL or VL-P-VH polypeptide in which one VH and one VL are linked using an appropriate peptide linker (hereinafter referred to as P) and has antigen-binding activity. It is an antibody fragment having The scFv of the present invention specifically obtains the cDNA encoding the VH and VL of the monoclonal antibody that specifically recognizes the CD4 of the present invention and binds to the extracellular region, constructs a DNA encoding scFv, Can be expressed and produced by inserting the expression vector into a prokaryotic expression vector or eukaryotic expression vector and introducing the expression vector into a prokaryotic or eukaryotic organism.
  • Diabody is an antibody fragment obtained by dimerizing scFv, and is an antibody fragment having a bivalent antigen binding activity.
  • the bivalent antigen binding activity can be the same, or one can be a different antigen binding activity.
  • the diabody of the present invention obtains cDNA encoding VH and VL of a monoclonal antibody that specifically recognizes CD4 of the present invention and binds to the extracellular region, and converts the scFv-encoding DNA into the amino acid sequence of the peptide linker. Is constructed so that its length is 8 residues or less, inserted into a prokaryotic expression vector or eukaryotic expression vector, and introduced into the prokaryotic or eukaryotic expression vector. And can be manufactured.
  • dsFv refers to a polypeptide in which one amino acid residue in each of VH and VL is substituted with a cysteine residue, which are linked via a disulfide bond between the cysteine residues.
  • the amino acid residue substituted for the cysteine residue can be selected based on the three-dimensional structure prediction of the antibody according to a known method [Protein Engineering, 7 , 697 (1994)].
  • the dsFv of the present invention specifically recognizes the CD4 of the present invention and obtains cDNA encoding the VH and VL of the monoclonal antibody that binds to the extracellular region, constructs a DNA encoding dsFv, Can be expressed and produced by inserting the expression vector into a prokaryotic expression vector or eukaryotic expression vector and introducing the expression vector into a prokaryotic or eukaryotic organism.
  • the peptide containing CDR is composed of at least one region of CDR of VH or VL. Peptides containing multiple CDRs can be linked directly or via a suitable peptide linker.
  • the peptide comprising the CDR of the present invention constructs a DNA that specifically recognizes the CD4 of the present invention and encodes the CDRs of the VH and VL monoclonal antibodies that bind to the extracellular region, and uses the DNA for prokaryotes It can be produced by inserting into an expression vector or an eukaryotic expression vector and introducing the expression vector into a prokaryotic or eukaryotic organism.
  • the peptide containing CDR can also be manufactured by chemical synthesis methods, such as Fmoc method or tBoc method.
  • the monoclonal antibody of the present invention specifically recognizes the extracellular region of CD4 of the present invention and binds to the extracellular region with a radioisotope, a low molecular drug, or a high molecular weight antibody fragment. It includes derivatives of antibodies in which drugs, proteins, antibody drugs or the like are chemically or genetically bound.
  • the derivative of the antibody specifically recognizes the extracellular region of CD4 of the present invention and binds to the extracellular region, or the N-terminal side of the H chain or L chain of the monoclonal antibody or an antibody fragment thereof or C Appropriate substituents or side chains in the terminal side, antibody or antibody fragment thereof, as well as sugar chains in the monoclonal antibody or antibody fragment thereof, etc., radioisotopes, low molecular weight drugs, high molecular weight drugs, immunostimulants It can be produced by binding a protein or antibody drug by a chemical method [Introduction to antibody engineering, Jinjinshokan (1994)].
  • DNA encoding a monoclonal antibody or antibody fragment that specifically recognizes the extracellular region of CD4 of the present invention and binds to the extracellular region is linked to DNA encoding the protein or antibody drug to be bound. And then inserted into an expression vector, introduced into an appropriate host cell, and expressed by a genetic engineering technique.
  • radioactive isotopes include 131 I, 125 I, 90 Y, 64 Cu, 99 Tc, 77 Lu, and 211 At.
  • the radioactive isotope can be directly bound to the antibody by the chloramine T method or the like.
  • a substance that chelates a radioisotope may be bound to the antibody.
  • the chelating agent include 1-isothiocyanate benzyl-3-methyldiethylenetriaminepentaacetic acid (MX-DTPA).
  • Low molecular weight drugs include alkylating agents, nitrosourea agents, antimetabolites, antibiotics, plant alkaloids, topoisomerase inhibitors, hormone therapy agents, hormone antagonists, aromatase inhibitors, P glycoprotein inhibitors, platinum complex derivatives
  • Anticancer agents such as M phase inhibitors or kinase inhibitors [Clinical Oncology, Cancer and Chemotherapy (1996)], or steroids such as hydrocortisone and prednisone, nonsteroids such as aspirin and indomethacin, gold thiomalate,
  • Anti-inflammatory agents such as immunomodulators such as penicillamine, immunosuppressive agents such as cyclophosphamide and azathioprine, chlorpheniramine maleate, or antihistamines such as clemacytin [Inflammation and anti-inflammatory therapy, Ishiyaku Shuppan Co., Ltd.
  • Anticancer agents include amifostine (ethiol), cisplatin, dacarbazine (DTIC), dactinomycin, mechlorethamine (nitrogen mustard), streptozocin, cyclophosphamide, ifosfamide, carmustine (BCNU), lomustine (CCNU), doxorubicin (adriamycin) ), Epirubicin, gemcitabine (gemzar), daunorubicin, procarbazine, mitomycin, cytarabine, etoposide, methotrexate, 5-fluorouracil, fluorouracil, vinblastine, vincristine, bleomycin, daunomycin, pepromycin, estramustine, paclitaxel, paclitaxel , Aldesleukin, asparaginase, busulfan, carboplatin, Xaliplatin, nedaplatin, cladribine, camptothecin,
  • Low molecular weight drug and antibody can be bound by binding between drug and antibody amino group via glutaraldehyde, or by coupling amino group of drug and antibody carboxyl group via water-soluble carbodiimide.
  • the method of making it examples of the polymer drug include polyethylene glycol (hereinafter referred to as PEG), albumin, dextran, polyoxyethylene, styrene maleic acid copolymer, polyvinyl pyrrolidone, pyran copolymer, and hydroxypropyl methacrylamide.
  • PEGylation-modifying reagents include a modifier for ⁇ -amino group of lysine (JP-A-61-178926), a modifier for carboxyl group of aspartic acid and glutamic acid (JP-A-56-23587), or a guanidino of arginine. And a modifier for the group (Japanese Patent Laid-Open No. 2-11920).
  • the immunostimulant may be a natural product known as an immunoadjuvant, and specific examples include ⁇ (1 ⁇ 3) glucan (lentinan, schizophyllan), ⁇ galactosylceramide, etc. It is done.
  • proteins include cytokines or growth factors that activate immunocytes such as NK cells, macrophages, or neutrophils, or toxin proteins.
  • cytokines or growth factors examples include interferon (hereinafter referred to as INF) - ⁇ , INF- ⁇ , INF- ⁇ , interleukin (hereinafter referred to as IL) -2, IL-12, IL-15, IL- 18, IL-21, IL-23, granulocyte colony stimulating factor (G-CSF), granulocyte / macrophage colony stimulating factor (GM-CSF), macrophage colony stimulating factor (M-CSF) and the like.
  • INF interferon
  • IL interleukin
  • IL-12 interleukin
  • IL-15 interleukin
  • IL-15 interleukin
  • IL-15 interleukin- 18, IL-21
  • IL-23 granulocyte colony stimulating factor
  • G-CSF granulocyte colony stimulating factor
  • GM-CSF granulocyte / macrophage colony stimulating factor
  • M-CSF macrophage colony stimulating factor
  • toxin protein examples include ricin
  • antibody drugs include antigens that induce apoptosis by antibody binding, antigens involved in tumor pathogenesis or antigens that regulate immune function, and antibodies against antigens involved in angiogenesis of lesion sites.
  • Antigens that induce apoptosis by antibody binding include Cluster of differentiation (hereinafter referred to as CD) 19, CD20, CD21, CD22, CD23, CD24, CD37, CD53, CD72, CD73, CD74, CDw75, CDw76, CD77, CDw78, CD79a, CD79b, CD80 (B7.1), CD81, CD82, CD83, CDw84, CD85, CD86 (B7.2), human leukocyte antigen (HLA) -Class II, or Epidermal Growth Factor Receptor (EGFR) Etc.
  • CD Cluster of differentiation
  • CD40, CD40 ligand, B7 family molecules are antigens involved in tumor pathogenesis or antibodies that regulate immune function , B7 family molecule ligand (CD28, CTLA-4, ICOS, PD-1, or BTLA), OX-40, OX-40 ligand, CD137, tumor necrosis factor (TNF) receptor family molecule (DR4, DR5, TNFR1 , Or TNFR2), TNF-related apoptosis-inducing ligand receptor (TRAIL) family molecule, TRAIL family molecule receptor family (TRAIL-R1, TRAIL-R2, TRAIL-R3, or TRAIL-R4), receptor activator of nuclear factor kappa B ligand (RANK), RANK ligand, CD25, folate receptor 4, cytokine [IL-1 ⁇ , IL-1 ⁇ , IL-4, IL-5, IL-6,
  • Antibody antigens that inhibit angiogenesis at the lesion include vascular endothelial growth factor (VEGF), Angiopoietin, fibroblast growth factor (FGF), EGF, platelet-derived growth factor (PDGF), insulin-like growth factor (IGF) Erythropoietin (EPO), TGF ⁇ , IL-8, Ephilin, SDF-1, or a receptor thereof.
  • VEGF vascular endothelial growth factor
  • FGF fibroblast growth factor
  • EGF platelet-derived growth factor
  • IGF insulin-like growth factor
  • EPO Erythropoietin
  • TGF ⁇ IL-8
  • a fusion antibody with a protein or antibody drug is constructed by linking a cDNA encoding a protein to a cDNA encoding a monoclonal antibody or antibody fragment, constructing a DNA encoding the fusion antibody, and expressing the DNA for prokaryotic or eukaryotic organisms.
  • a fusion antibody can be
  • the extracellular region of the CD4 of the present invention is specifically recognized and binds to the extracellular region.
  • the drug that binds to the monoclonal antibody or the antibody fragment thereof include labels used in usual immunological detection or measurement methods.
  • Labels include enzymes such as alkaline phosphatase, peroxidase, or luciferase, luminescent materials such as acridinium esters or lophine, or fluorescent materials such as fluorescein isothiocyanate (FITC) or tetramethylrhodamine isothiocyanate (RITC). Can be given.
  • the present invention also relates to a therapeutic agent for a disease involving CD4 positive cells that specifically recognize the extracellular region of CD4 and contain a monoclonal antibody or an antibody fragment thereof that binds to the extracellular region as an active ingredient.
  • the disease involving CD4 positive cells may be any disease involving cells expressing CD4, and examples thereof include cancer, autoimmune diseases, allergic diseases, and infectious diseases.
  • CD4 positive cells examples include CD4 positive T cells such as Th1 cells, Th2 cells, Th17 cells, regulatory T cells (also referred to as regulatory T cells), and ⁇ T cells.
  • CD4 positive T cells such as Th1 cells, Th2 cells, Th17 cells, regulatory T cells (also referred to as regulatory T cells), and ⁇ T cells.
  • autoimmune diseases and allergic diseases which are cancer and inflammatory diseases
  • CD4 is expressed in abnormal cells that cause the disease, and therefore CD4 positive cells involved in these diseases can be mentioned.
  • cancer examples include blood cancer, breast cancer, uterine cancer, colon cancer, esophageal cancer, stomach cancer, ovarian cancer, lung cancer, kidney cancer, rectal cancer, thyroid cancer, cervical cancer, small intestine cancer, prostate cancer or pancreatic cancer.
  • blood cancer, esophageal cancer, stomach cancer, colon cancer, liver cancer or prostate cancer can be mentioned.
  • T cell-derived cancers such as cutaneous T cell lymphoma (CTCL), peripheral T cell lymphoma (PTCL), anaplastic large cell lymphoma (Anaplastic large cell) lymphoma, ALCL), acute lymphoblastic leukemia (ALL), other lymphocytic leukemia, myeloid leukemia, multiple myeloma, Hodgkin lymphoma, or non-Hodgkin lymphoma.
  • CTCL cutaneous T cell lymphoma
  • PTCL peripheral T cell lymphoma
  • ALCL anaplastic large cell lymphoma
  • ALL acute lymphoblastic leukemia
  • other lymphocytic leukemia myeloid leukemia
  • myeloid leukemia multiple myeloma
  • Hodgkin lymphoma Hodgkin lymphoma
  • non-Hodgkin lymphoma non-Hodgkin lymphoma.
  • autoimmune diseases include rheumatoid arthritis, psoriasis, Crohn's disease, ankylosing spondylitis, multiple sclerosis, type I diabetes, hepatitis, myocarditis, Sjogren's syndrome, and post-transplant rejection.
  • allergic diseases include acute or chronic airway hypersensitivity, bronchial asthma, atopic dermatitis, allergic rhinitis and the like.
  • Infectious diseases include human immunodeficiency virus (HIV) infection.
  • the therapeutic agent of the present invention contains the above-described monoclonal antibody of the present invention or the antibody fragment as an active ingredient.
  • the therapeutic agent containing the antibody of the present invention or the antibody fragment or derivative thereof may contain only the antibody or the antibody fragment or derivative thereof as an active ingredient, but is usually pharmacological. It is desirable to provide a pharmaceutical formulation prepared by any method known in the pharmaceutical arts, mixed with one or more pharmaceutically acceptable carriers.
  • oral administration or parenteral administration such as buccal, respiratory tract, rectal, subcutaneous, intramuscular or intravenous, preferably intravenous.
  • parenteral administration such as buccal, respiratory tract, rectal, subcutaneous, intramuscular or intravenous, preferably intravenous.
  • Internal administration can be given.
  • the dosage form include sprays, capsules, tablets, powders, granules, syrups, emulsions, suppositories, injections, ointments, or tapes.
  • the dose or frequency of administration varies depending on the intended therapeutic effect, administration method, treatment period, age, body weight, etc., but is usually 10 ⁇ g / kg to 10 mg / kg per day for an adult.
  • the present invention relates to a method for immunological detection or measurement of CD4, comprising as an active ingredient a monoclonal antibody or an antibody fragment thereof that specifically recognizes the extracellular region of CD4 and binds to the extracellular region.
  • the present invention relates to a reagent for immunological detection or measurement, a method for immunological detection or measurement of cells expressing CD4, and a diagnostic agent for a disease involving CD4 positive cells.
  • any known method may be used as a method for detecting or measuring the amount of CD4.
  • Examples include immunological detection or measurement methods.
  • the immunological detection or measurement method is a method for detecting or measuring the amount of antibody or the amount of antigen using a labeled antigen or antibody.
  • Immunological detection or measurement methods include radiolabeled immunoassay (RIA), enzyme immunoassay (EIA or ELISA), fluorescent immunoassay (FIA), luminescent immunoassay, and western blot. Or a physicochemical method etc. are mention
  • a disease associated with CD4 can be diagnosed.
  • Known immunological detection methods can be used to detect the cells in which the polypeptide is expressed, but immunoprecipitation, fluorescent cell staining, immunohistochemical staining, immunohistological staining, etc. Preferably used. Further, fluorescent antibody staining methods such as FMAT8100HTS system (Applied Biosystems) can also be used.
  • the biological sample to be detected or measured for CD4 may include cells expressing CD4 such as tissue cells, blood, plasma, serum, pancreatic juice, urine, feces, tissue fluid, or culture fluid. If it is a thing, it will not specifically limit.
  • the diagnostic agent containing the monoclonal antibody of the present invention or an antibody fragment thereof, or a derivative thereof may contain a reagent for conducting an antigen-antibody reaction and a reagent for detecting the reaction, depending on the intended diagnostic method. Examples of the reagent for performing the antigen-antibody reaction include a buffer and a salt.
  • Reagents for detection include reagents used in normal immunological detection or measurement methods such as labeled secondary antibodies that recognize the monoclonal antibody or antibody fragments thereof, or derivatives thereof, or substrates corresponding to the labels. can give.
  • Monoclonal antibody production method (1) Preparation of antigen Cells expressing CD4 or CD4 as an antigen are expressed in E. coli, yeast, insect cells, or animal cells using an expression vector containing cDNA encoding CD4 full length or a partial length thereof. It can be obtained by introducing into the above.
  • CD4 can be purified and obtained from cultured human tumor cells and human tissues that express CD4 in large amounts. Further, the tumor cultured cells or the tissue can be used as an antigen as it is.
  • a synthetic peptide having a CD4 partial sequence can be prepared by a chemical synthesis method such as Fmoc method or tBoc method and used as an antigen.
  • CD4 used in the present invention is a method described in Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989), Current Protocols In Molecular Biology, John Wiley & Sons (1987-1997), etc.
  • DNA encoding the CD4 can be expressed in a host cell and produced by the following method.
  • a recombinant vector is prepared by inserting a full-length cDNA containing a portion encoding CD4 downstream of a promoter of an appropriate expression vector.
  • a DNA fragment having an appropriate length containing a polypeptide-encoding portion prepared based on the full-length cDNA may be used.
  • a transformant producing a polypeptide can be obtained by introducing the obtained recombinant vector into a host cell suitable for the expression vector.
  • Any expression vector that can be autonomously replicated in the host cell to be used or integrated into the chromosome and that contains a suitable promoter at a position where the DNA encoding the polypeptide can be transcribed should be used.
  • the host cell any microorganism that belongs to the genus Escherichia such as Escherichia coli, yeast, insect cells, or animal cells can be used so long as it can express the target gene.
  • the recombinant vector When a prokaryote such as E. coli is used as a host cell, the recombinant vector is capable of autonomous replication in the prokaryote, and simultaneously contains a promoter, a ribosome binding sequence, a DNA containing a CD4 coding portion, and a transcription termination sequence. It is preferable that it is a vector containing.
  • the recombinant vector does not necessarily require a transcription termination sequence, but it is preferable to place the transcription termination sequence immediately below the structural gene.
  • the recombinant vector may contain a gene that controls the promoter.
  • the recombinant vector it is preferable to use a plasmid in which the distance between the Shine-Dalgarno sequence (also referred to as SD sequence), which is a ribosome binding sequence, and the initiation codon is adjusted to an appropriate distance (eg, 6 to 18 bases).
  • the base sequence of DNA encoding the CD4 can be replaced with a base so as to be an optimal codon for expression in the host, thereby improving the target CD4 production rate. .
  • Any expression vector can be used as long as it can function in the host cell to be used.
  • pBTrp2, pBTac1, pBTac2 aboveve Roche Diagnostics
  • pKK233-2 Pharmacia
  • pSE280 Invitrogen
  • pGEMEX-1 Promega
  • pQE-8 Qiagen
  • pKYP10 JP 58-110600
  • pKYP200 [Agricultural Biological Chemistry, 48 , 669 ( 1984)]
  • pLSA1 Agric. Biol. Chem., 53 , 277 (1989)]
  • pGEL1 Proc. Natl. Acad. Sci.
  • coli IGKA2 (FERM BP-6798), JP 60-221091], pTerm2 (US4686191, US4939094, US5160735), pSupex, pUB110, pTP5, pC1 94, pEG400 [J. Bacteriol., 172 , 2392 (1990)], pGEX (Pharmacia), pET system (Novagen), or pME18SFL3.
  • any promoter can be used as long as it can function in the host cell to be used.
  • promoters derived from Escherichia coli or phage such as trp promoter (Ptrp), lac promoter, PL promoter, PR promoter, or T7 promoter, can be mentioned.
  • An artificially designed and modified promoter such as a tandem promoter, tac promoter, lacT7 promoter, or let ⁇ I promoter in which two Ptrps are connected in series can also be used.
  • Examples of host cells include E. coli XL1-Blue, E. coli XL2-Blue, E. coli DH1, E. coli MC1000, E. coli KY3276, E. coli W1485, E. coli JM109, E. coli HB101, E. coli No. 49, E. coli W3110, E. coli NY49, or E. coli DH5 ⁇ .
  • any method can be used as long as it is a method for introducing DNA into a host cell to be used.
  • a method using calcium ions [Proc. Natl. Acad. Sci. USA , 69 , 2110 (1972), Gene, 17 , 107 (1982), Molecular & General Genetics, 168 , 111 (1979)].
  • any expression vector can be used as long as it can function in animal cells.
  • Any promoter can be used as long as it can function in animal cells.
  • a cytomegalovirus (CMV) immediate (IE) gene promoter for example, a cytomegalovirus (CMV) immediate (IE) gene promoter, an SV40 early promoter, a retrovirus promoter , Metallothionein promoter, heat shock promoter, SR ⁇ promoter, or Moloney murine leukemia virus promoter or enhancer.
  • CMV cytomegalovirus
  • IE immediate
  • SV40 early promoter SV40 early promoter
  • a retrovirus promoter e.g., et alpha promoter
  • Metallothionein promoter e.g., Metallothionein promoter
  • heat shock promoter for example, a Metallothionein promoter, heat shock promoter, SR ⁇ promoter, or Moloney murine leukemia virus promoter or enhancer.
  • SR ⁇ promoter e.g., SR ⁇ promoter
  • Host cells include human leukemia cell Namalwa cell, monkey cell COS cell, Chinese hamster ovary cell CHO cell (Journal of Experimental Medicine, 108, 945 (1958); Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 60, 1275 ( 1968); Genetics, 55, 513 (1968); Chromosoma, 41, 129 (1973); Methods in Cell Science, 18, 115 (1996); Radiation Research, 148, 260 (1997); Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 77, 4216 (1980); Proc Natl. Acad. Sci., 60, 1275 (1968); Cell, 6, 121 1975 (1975); Molecular Cell Genetics, Appendix I, II (pp.
  • any method for introducing a recombinant vector into a host cell any method can be used as long as it introduces DNA into animal cells.
  • electroporation [Cytotechnology, 3 , 133 (1990)]
  • calcium phosphate method JP-A-2-27075
  • the lipofection method [Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 84 , 7413 (1987)].
  • a transformant derived from a microorganism or animal cell having a recombinant vector incorporating a DNA encoding CD4 obtained as described above is cultured in a medium, and the CD4 is produced and accumulated in the culture. By collecting from the culture, CD4 can be produced.
  • the method of culturing the transformant in a medium can be performed according to a usual method used for culturing a host.
  • CD4 When expressed in cells derived from eukaryotes, CD4 with an added sugar or sugar chain can be obtained.
  • an inducer may be added to the medium as necessary.
  • indole acrylic acid or the like may be added to the medium.
  • a medium for culturing a transformant obtained using an animal cell as a host a commonly used RPMI1640 medium [The Journal of the American Medical Association, 199 , 519 (1967)], Eagle's MEM medium [Science, 122 , 501 (1952)], Dulbecco's modified MEM medium [Virology, 8 , 396 (1959)], 199 medium [Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 73 , 1 (1950)], Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM ) Medium or a medium obtained by adding fetal bovine serum (FBS) or the like to these mediums.
  • IMDM Iscove's Modified Dulbecco's Medium
  • FBS fetal bovine serum
  • the culture is usually carried out for 1 to 7 days under conditions such as pH 6 to 8, 30 to 40 ° C., and the presence of 5% CO 2 .
  • CD4 can be produced in a host cell, secreted outside the host cell, or produced on the host cell outer membrane, changing the host cell used or the structure of CD4 produced. Thus, an appropriate method can be selected.
  • CD4 When CD4 is produced in the host cell or on the host cell outer membrane, the method of Paulson et al. [J. Biol. Chem., 264 , 17619 (1989)], the method of Roh et al. [Proc. Natl. Acad. Sci. , USA, 86 , 8227 (1989), Genes Develop., 4 , 1288 (1990)], Japanese Patent Application Laid-Open No. 05-336963, or WO94 / 23021. Can be secreted. In addition, the production amount of CD4 can be increased using a gene amplification system (Japanese Patent Laid-Open No. 2-227075) using a dihydrofolate reductase gene or the like.
  • the obtained CD4 can be isolated and purified as follows, for example.
  • CD4 When CD4 is expressed in a dissolved state in the cells, the cells are collected by centrifugation after culturing, suspended in an aqueous buffer solution, and then used with an ultrasonic crusher, French press, Manton Gaurin homogenizer, or dynomill. The cells are disrupted to obtain a cell-free extract.
  • an ordinary protein isolation and purification method that is, a solvent extraction method, a salting-out method using ammonium sulfate, a desalting method, a precipitation method using an organic solvent, diethylamino Anion exchange chromatography using resins such as ethyl (DEAE) -Sepharose and DIAION HPA-75 (Mitsubishi Chemical), and cation exchange chromatography using resins such as S-Sepharose FF (Pharmacia) , Methods such as hydrophobic chromatography using resins such as butyl sepharose and phenyl sepharose, gel filtration using molecular sieve, affinity chromatography, chromatofocusing, or electrophoresis such as isoelectric focusing Can be used alone or in combination to obtain a purified preparation.
  • a solvent extraction method ethyl (DEAE) -Sepharose and DIAION HPA-75 (Mitsubishi Chemical)
  • CD4 When CD4 is expressed by forming an insoluble substance in the cell, the cell is collected and crushed in the same manner as described above, and centrifuged to collect the insoluble substance of CD4 as a precipitate fraction. The recovered insoluble matter of CD4 is solubilized with a protein denaturant. By diluting or dialyzing the solubilized solution, the CD4 is returned to a normal three-dimensional structure, and then a purified polypeptide preparation can be obtained by the same isolation and purification method as described above.
  • the derivative such as CD4 or a sugar-modified product thereof can be recovered from the culture supernatant.
  • a soluble preparation can be obtained by treating the culture with a method such as centrifugation as described above, and using the same isolation and purification method as described above from the soluble fraction. it can.
  • CD4 used in the present invention can also be produced by a chemical synthesis method such as Fmoc method or tBoc method.
  • chemical synthesis using peptide synthesizers such as Advanced Chemtech, Perkin Elmer, Pharmacia, Protein Technology Instrument, Synthecel-Vega, Perceptive, or Shimadzu It can also be synthesized.
  • mice, rats or hamsters of 3 to 20 weeks old are immunized with the antigen obtained in (1), and the spleen, lymph nodes, Collect antibody-producing cells in peripheral blood.
  • CD4 knockout mice can also be used as immunized animals when the immunogenicity is low and sufficient increase in antibody titer is not observed in the above animals.
  • Immunization is carried out by administering the antigen subcutaneously, intravenously or intraperitoneally to the animal together with an appropriate adjuvant such as Freund's complete adjuvant or aluminum hydroxide gel and pertussis vaccine.
  • an appropriate adjuvant such as Freund's complete adjuvant or aluminum hydroxide gel and pertussis vaccine.
  • the antigen is a partial peptide
  • a conjugate with a carrier protein such as BSA (bovine serum albumin) or KLH (Keyhole Limpet hemocyanin) is prepared and used as an immunogen.
  • BSA bovine serum albumin
  • KLH Keyhole Limpet hemocyanin
  • the antigen is administered 5 to 10 times every 1 to 2 weeks after the first administration.
  • blood is collected from the fundus venous plexus, and the antibody titer of the serum is measured using an enzyme immunoassay [Antibodies-A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory (1988)].
  • An animal whose serum shows a sufficient antibody titer against the antigen used for immunization is used as a source of antibody producing cells for fusion.
  • tissues containing antibody-producing cells such as the spleen are removed from the immunized animal, and antibody-producing cells are collected.
  • spleen cells When using spleen cells, the spleen is shredded and loosened, and then centrifuged, and the erythrocytes are removed to obtain antibody producing cells for fusion.
  • (3) Preparation of myeloma cells As a myeloma cell, a cell line obtained from a mouse was used. For example, an 8-azaguanine resistant mouse (derived from BALB / c) myeloma cell line P3-X63Ag8-U1 (P3- U1) [Current Topics in Microbiology and Immunology, 18 , 1 (1978)], P3-NS1 / 1-Ag41 (NS-1) [European J.
  • the myeloma cells are passaged in normal medium [RPMI1640 medium supplemented with glutamine, 2-mercaptoethanol, gentamicin, FBS, and 8-azaguanine] and passaged to normal medium 3-4 days prior to cell fusion. Secure a cell count of 2 x 10 7 or more on the day of fusion.
  • RPMI1640 medium supplemented with glutamine, 2-mercaptoethanol, gentamicin, FBS, and 8-azaguanine
  • the cells After loosening the precipitated cells, the cells are gently suspended in the HAT medium [normal medium supplemented with hypoxanthine, thymidine, and aminopterin] on the antibody-producing cells for fusion. This suspension is cultured for 7-14 days at 37 ° C. in a 5% CO 2 incubator.
  • HAT medium normal medium supplemented with hypoxanthine, thymidine, and aminopterin
  • a part of the culture supernatant is extracted, and a cell group that reacts with an antigen containing CD4 and does not react with an antigen not containing CD4 is selected by a hybridoma selection method such as a binding assay described later.
  • cloning was repeated twice by the limiting dilution method [first time using HT medium (medium obtained by removing aminopterin from HAT medium) and second time using normal medium], and a stable and strong antibody titer was observed.
  • One is selected as a monoclonal antibody-producing hybridoma.
  • the supernatant is removed by centrifugation, suspended in Hybridoma SFM medium, and cultured for 3-7 days .
  • the obtained cell suspension is centrifuged, and purified using a protein A-column or protein G-column from the resulting supernatant, and the IgG fraction is collected to obtain a purified monoclonal antibody.
  • 5% Daigo GF21 can be added to the Hybridoma SFM medium.
  • the subclass of the antibody is determined by an enzyme immunoassay using a subcluster epiting kit. The amount of protein is quantified by the Raleigh method or absorbance at 280 nm. (6) Monoclonal antibody selection Monoclonal antibody selection is performed by the binding assay by the enzyme immunoassay shown below and the kinetics analysis by Biacore.
  • (6-a) Binding assay As an antigen, a gene-transferred cell or a recombinant obtained by introducing an expression vector containing cDNA encoding CD4 obtained in (1) into E. coli, yeast, insect cells, or animal cells. Proteins or purified polypeptides or partial peptides obtained from human tissues are used. When the antigen is a partial peptide, a conjugate with a carrier protein such as BSA or KLH is prepared and used.
  • a carrier protein such as BSA or KLH
  • a test substance such as serum, hybridoma culture supernatant or purified monoclonal antibody is dispensed and reacted as the first antibody.
  • an anti-immunoglobulin antibody labeled with biotin, an enzyme, a chemiluminescent substance, a radiation compound or the like is dispensed and reacted as a second antibody.
  • a reaction is performed according to the labeling substance of the second antibody, and a monoclonal antibody that reacts specifically with the immunogen is selected.
  • a monoclonal antibody that competes with the anti-CD4 monoclonal antibody of the present invention and binds to CD4 can be obtained by adding a test antibody to the above-described binding assay system and allowing it to react. That is, by screening for an antibody that inhibits the binding of a monoclonal antibody when a test antibody is added, a monoclonal antibody that competes with the acquired monoclonal antibody for binding to the CD4 extracellular region can be obtained.
  • the epitope that is recognized by the monoclonal antibody that binds to the extracellular region of CD4 of the present invention and the antibody that binds to the same epitope are identified by identifying the epitope of the antibody obtained by the above-described binding assay system. It can be obtained by preparing a partial synthetic peptide or a synthetic peptide mimicking the three-dimensional structure of an epitope and immunizing it.
  • human CD4 is immobilized on a sensor chip by, for example, an amine coupling method, and then purified monoclonal antibodies having a plurality of known concentrations are flowed to measure binding and dissociation. The obtained data is subjected to kinetics analysis using a binding binding model using software attached to the device, and various parameters are obtained.
  • a method for producing a human chimeric antibody and a humanized antibody is shown below.
  • (1) Construction of recombinant antibody expression vector is an expression vector for animal cells in which DNAs encoding CH and CL of a human antibody are incorporated, and the expression vector for animal cells is human. It can be constructed by cloning DNAs encoding antibody CH and CL, respectively.
  • CH and CL of any human antibody can be used.
  • ⁇ 1 subclass CH of human antibody and CL of ⁇ class are used.
  • cDNA is used for DNA encoding CH and CL of a human antibody
  • chromosomal DNA consisting of exons and introns can also be used.
  • Any animal cell expression vector can be used as long as it can incorporate and express a gene encoding the C region of a human antibody. For example, pAGE107 [Cytotechnol., 3 , 133 (1990)], pAGE103 [J. Biochem., 101 , 1307 (1987)], pHSG274 [Gene, 27 , 223 (1984)], pKCR [Proc. Natl. Acad.
  • promoters and enhancers include the early promoter of SV40 [J. Biochem., 101 , 1307 (1987)], Moloney murine leukemia virus LTR [Biochem. Biophys. Res. Commun., 149 , 960 ( 1987)], or an immunoglobulin heavy chain promoter [Cell, 41 , 479 (1985)] and an enhancer [Cell, 33 , 717 (1983)].
  • Recombinant antibody expression vectors balance the ease of construction of recombinant antibody expression vectors, ease of introduction into animal cells, and the balance of expression levels of antibody H and L chains in animal cells.
  • a vector J. Immunol. Methods, 167 , 271 (1994)
  • a type tandem type in which the antibody H chain and L chain are present on the same vector
  • a type in which the antibody H chain and L chain are present on different vectors can also be used.
  • pKANTEX93 WO97 / 10354
  • pEE18 Hybridoma, 17 , 559 (1998)
  • MRNA is extracted from hybridoma cells producing non-human antibodies to synthesize cDNA.
  • the synthesized cDNA is cloned into a vector such as a phage or a plasmid to prepare a cDNA library.
  • Recombinant phages or recombinant plasmids having cDNA encoding VH or VL are isolated from the library using DNA encoding the C region portion or V region portion of the mouse antibody as a probe.
  • the entire base sequence of VH or VL of the mouse antibody of interest on the recombinant phage or recombinant plasmid is determined, respectively, and the total amino acid sequence of VH or VL is estimated from the base sequence, respectively.
  • a non-human animal for producing a hybridoma cell producing a non-human antibody a mouse, rat, hamster, rabbit or the like is used, but any animal can be used as long as it can produce a hybridoma cell.
  • a kit such as RNA easy kit (Qiagen).
  • oligo (dT) immobilized cellulose column method For preparation of mRNA from total RNA, oligo (dT) immobilized cellulose column method [MolecularMCloning, lonA Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)], or Oligo-dT30 ⁇ Super> mRNA PurificationurKit Use a kit such as (Takara Bio).
  • mRNA can be prepared from hybridoma cells using a kit such as Fast Track mRNA Isolation Kit (Invitrogen) or QuickPrep mRNA Purification Kit (Pharmacia).
  • any vector can be used as a vector into which cDNA synthesized using mRNA extracted from hybridoma cells as a template is incorporated.
  • ZAP Express [Strategies, 5 , 58 (1992)], pBluescript II SK (+) [Nucleic Acids Research, 17 , 9494 (1989)], ⁇ ZAPII (Stratagene), ⁇ gt10, ⁇ gt11 [DNA Cloning: A Practical Approach, I, 49 (1985)], Lambda BlueMid (Clontech), ⁇ ExCell, pT7T3-18U (Pharmacia), pcD2 [Mol. Cell. Biol., 3 , 280 (1983)], or pUC18 [ Gene, 33 , 103 (1985)].
  • Any Escherichia coli into which a cDNA library constructed by a phage or plasmid vector is introduced can be used as long as it can introduce, express and maintain the cDNA library.
  • cDNA or cDNA library synthesized from mRNA was used as a template for Polymerase Chain Reaction method (hereinafter referred to as PCR method, Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989). ), Current Protocols in Molecular Biology, Supplement 1, John Wiley & Sons (1987-1997)], a cDNA encoding VH or VL can also be prepared.
  • the selected cDNA is cleaved with an appropriate restriction enzyme and then cloned into a plasmid such as pBluescript SK (-) (Stratagene), and the nucleotide sequence of the cDNA is determined by a commonly used nucleotide sequence analysis method or the like.
  • the base sequence analysis method includes, for example, a dideoxy method [Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 74 , 5463 (1977)] and then ABI PRISM3700 (manufactured by PE Biosystems) or A.I. L. F. An automatic base sequence analyzer such as a DNA sequencer (Pharmacia) is used.
  • the length of the secretory signal sequence and the N-terminal amino acid sequence can be estimated, and further, the subgroup to which they belong can be known.
  • the amino acid sequence of each CDR of VH and VL is also found by comparing with the amino acid sequence of VH and VL of known antibodies [Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services (1991)]. Can do.
  • VH and VL complete amino acid sequences
  • the BLAST method [J. Mol. Biol., 215 , 403 (1990) against any database such as SWISS-PROT or PIR-Protein. Or the like, and whether or not the complete amino acid sequences of VH and VL are novel can be confirmed.
  • the non-human antibody VH or VL is upstream of each gene encoding CH or CL of the human antibody of the recombinant antibody expression vector obtained in (1), respectively.
  • a human chimeric antibody expression vector can be constructed by cloning the encoded cDNAs.
  • the base sequence of the linking portion encodes an appropriate amino acid
  • VH and VL cDNAs designed to be appropriate restriction enzyme recognition sequences are prepared. Clone the prepared VH and VL cDNAs so that they are expressed appropriately in the upstream of each gene encoding the human antibody CH or CL of the humanized antibody expression vector obtained in (1). Then, a human chimeric antibody expression vector is constructed.
  • a cDNA encoding the non-human antibody VH or VL is amplified by a PCR method using a synthetic DNA having an appropriate restriction enzyme recognition sequence at both ends, and the recombinant antibody expression vector obtained in (1) Can also be cloned.
  • Construction of cDNA encoding V region of humanized antibody cDNA encoding VH or VL of humanized antibody can be constructed as follows.
  • the amino acid sequence of the VH or VL framework region (hereinafter referred to as FR) of the human antibody to be grafted with the VH or VL CDR amino acid sequence of the non-human antibody is selected.
  • Any amino acid sequence can be used as long as it is derived from a human antibody.
  • FR amino acid sequences of human antibodies registered in databases such as Protein Data Bank, or common amino acid sequences of each subgroup of FRs of human antibodies [Sequencesenceof Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services ( 1991)].
  • an FR amino acid sequence having as high a homology as possible (at least 60% or more) with the FR amino acid sequence of VH or VL of the original antibody is selected.
  • the CDR amino acid sequence of the original antibody is transplanted to the VH or VL FR amino acid sequence of the selected human antibody, respectively, and the VH or VL amino acid sequence of the humanized antibody is designed.
  • the designed amino acid sequence is converted into a DNA sequence in consideration of the frequency of codon usage [Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services1991 (1991)]
  • a DNA sequence encoding the amino acid sequence of VH or VL is designed.
  • the humanized antibody expression vector obtained in (1) can be easily encoded with VH or VL of the humanized antibody.
  • CDNA can be cloned.
  • each H chain and L chain full length synthetic DNA synthesize combined as one DNA based on the designed DNA sequence.
  • the amplified product is cloned into a plasmid such as pBluescript SK (-) (Stratagene), the base sequence is determined by the same method as described in (2), and the desired humanized antibody is obtained.
  • a plasmid having a DNA sequence encoding the amino acid sequence of VH or VL is obtained.
  • a humanized antibody can only have its antigen-binding activity by transplanting only the VH and VL CDRs of a non-human antibody into the VH and VL FRs of a human antibody. It is lower than that of non-human antibodies [BIO / TECHNOLOGY, 9 , 266 (1991)].
  • the amino acid residues of FR of human antibody VH and VL can be modified by performing the PCR reaction described in (4) using the synthetic DNA for modification. Determine the nucleotide sequence of the amplified product after the PCR reaction by the method described in (2) and confirm that the target modification has been performed. (6) Construction of humanized antibody expression vector VH or VL of the constructed recombinant antibody upstream of each gene encoding CH or CL of the human antibody of the recombinant antibody expression vector obtained in (1) Each of the cDNAs encoding can be cloned to construct a humanized antibody expression vector.
  • the humanized antibody expression vector obtained in (1) is cloned so that it is expressed in an appropriate form upstream of each gene encoding CH or CL of the human antibody.
  • Transient expression of recombinant antibodies Transient expression of recombinant antibodies using the recombinant antibody expression vectors obtained in (3) and (6) or modified expression vectors
  • Any host cell capable of expressing a recombinant antibody can be used as a host cell into which an expression vector is introduced.
  • COS-7 cells American Type Culture Collection (ATCC) number: CRL1651] Used [Methods in Nucleic Acids Res., CRC press, 283 (1991)].
  • Expression vectors can be introduced into COS-7 cells by DEAE-dextran method [Methods in Nucleic Acids Res., CRC press (1991)] or lipofection method [Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 84 , 7413 ( 1987)].
  • the expression level and antigen-binding activity of the recombinant antibody in the culture supernatant are determined by the enzyme immuno-antibody method [Monoclonal Antibodies-Principles and practice, Third edition, Academic Press (1996), Antibodies-A Laboratory Manual, Use Cold Spring Harbor Laboratory (1988), monoclonal antibody experiment manual, Kodansha Scientific (1987)], etc.
  • (8) Obtaining a transformant that stably expresses the recombinant antibody and preparation of the recombinant antibody Introducing the recombinant antibody expression vector obtained in (3) and (6) into an appropriate host cell Thus, a transformed strain that stably expresses the recombinant antibody can be obtained.
  • an electroporation method [JP-A-2-57891, Cytotechnology, 3 , 133 (1990)] or the like is used.
  • Any host cell capable of expressing a recombinant antibody can be used as a host cell into which the recombinant antibody expression vector is introduced.
  • CHO-K1 ATCC CCL-61
  • DukXB11 ATCC CCL-9096
  • Pro-5 ATCC CCL-1781
  • CHO-S Life Technologies, Cat # 11619
  • mouse myeloma cell NSO mouse myeloma cell SP2 / 0-Ag14 (ATCC number: CRL1581)
  • mouse P3X63-Ag8.653 cell ATCC number: CRL1580
  • dihydrofolate reductase gene CHO cells deficient in dhfr (Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 77 , 4216 (1980)), Lec13 [Somatic Cell and Molecular genetics, 12 , 55 (1986) that acquired lectin resistance.
  • CHO cells deficient in the ⁇ 1,6-fucose transferase gene (WO2005 / 035586, WO02 / 31140), rat YB2 / 3HL. P2. G11. 16Ag. 20 cells (ATCC number: CRL1662) etc. are used.
  • a protein such as an enzyme involved in the synthesis of intracellular sugar nucleotide GDP-fucose or a sugar chain modification in which the 1-position of fucose is ⁇ -linked to the 6-position of the reducing end of N-glycoside-linked complex sugar chain N-acetylglucosamine Host cells that have reduced or no activity such as proteins involved in the transport of proteins, or proteins involved in the transport of intracellular sugar nucleotides GDP-fucose to the Golgi apparatus, such as ⁇ 1,6-fucose transferase gene deficient CHO cells (WO2005 / 035586, WO02 / 31140) and the like can also be used.
  • a transformant that stably expresses the recombinant antibody is selected by culturing in an animal cell culture medium containing a drug such as G418 sulfate (hereinafter referred to as G418) (special feature).
  • G4108 special feature
  • the medium for animal cell culture includes RPMI1640 medium (manufactured by Invitrogen), GIT medium (manufactured by Nippon Pharmaceutical), EX-CELL301 medium (manufactured by JRH), IMDM medium (manufactured by Invitrogen), Hybridoma-SFM medium ( Invitrogen) or a medium obtained by adding various additives such as FBS to these mediums.
  • the recombinant antibody By culturing the obtained transformant in a medium, the recombinant antibody is expressed and accumulated in the culture supernatant.
  • the expression level and antigen binding activity of the recombinant antibody in the culture supernatant can be measured by ELISA or the like.
  • the transformant can increase the expression level of the recombinant antibody using a DHFR amplification system (Japanese Patent Laid-Open No. 2-257891).
  • the recombinant antibody is purified from the culture supernatant of the transformant using a protein A-column [Monoclonal Antibodies-Principles and practice, Third edition, Academic Press (1996), Antibodies-A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory (1988)].
  • methods used in protein purification such as gel filtration, ion exchange chromatography, and ultrafiltration can be combined.
  • the molecular weight of the purified recombinant antibody H chain, L chain, or whole antibody molecule can be determined by polyacrylamide gel electrophoresis [Nature, 227 , 680 (1970)] or Western blotting [Monoclonal Antibodies-Principles and practice, Third edition, Academic Press (1996), Antibodies-A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory (1988)].
  • Activity evaluation of purified monoclonal antibody or antibody fragment thereof The activity evaluation of the purified monoclonal antibody or antibody fragment thereof of the present invention can be carried out as follows.
  • the binding activity to the CD4 expressing cell line is measured using the above-described binding assay described in 1- (6a) and the surface plasmon resonance method using the Biacore system described in (6b). Further, it can be measured using a fluorescent antibody method [Cancer Immunol. Immunother., 36 , 373 (1993)]. CDC activity or ADCC activity against an antigen-positive cultured cell line is measured by a known measuring method [Cancer Immunol. Immunother., 36 , 373 (1993)].
  • Four. Method for controlling the effector activity of the antibody The method for controlling the effector activity of the anti-CD4 monoclonal antibody of the present invention is as follows.
  • Effector activity refers to antibody-dependent activity induced through the Fc region of an antibody.
  • Antibody-dependent cytotoxic activity (ADCC activity), complement-dependent cytotoxic activity (CDC activity), macrophages and dendritic cells
  • ADCC activity Antibody-dependent cytotoxic activity
  • CDC activity complement-dependent cytotoxic activity
  • ADP activity Antibody-dependent phagocytosis
  • the effector activity of the antibody can be increased or decreased.
  • ADCC activity and CDC activity can be increased or decreased by modifying amino acid residues in the Fc region of the antibody.
  • ADCC activity can be controlled by increasing or decreasing the binding activity to Fc ⁇ R
  • CDC activity can be controlled by increasing or decreasing binding activity.
  • ADCC activity or CDC activity can be increased or decreased by performing amino acid modification described in US6,737,056, US7,297,775, US7,317,091, and WO2005 / 070963.
  • an antibody with controlled effector activity of the antibody can be obtained.
  • Five. Method for Treating Disease Using Anti-CD4 Monoclonal Antibody or Antibody Fragment thereof of the Present Invention The monoclonal antibody or antibody fragment thereof of the present invention can be used for the treatment of diseases involving CD4 positive cells.
  • the therapeutic agent containing the monoclonal antibody of the present invention or an antibody fragment thereof, or a derivative thereof may contain only the antibody or the antibody fragment, or a derivative thereof as an active ingredient. It is provided as a pharmaceutical preparation produced by a method known in the technical field of pharmaceutics by mixing with one or more physically acceptable carriers.
  • the administration route includes oral administration or parenteral administration such as buccal, intratracheal, rectal, subcutaneous, intramuscular or intravenous, and administration forms include sprays, capsules, tablets, powders, granules. Agents, syrups, emulsions, suppositories, injections, ointments, or tapes.
  • Suitable formulations for oral administration are emulsions, syrups, capsules, tablets, powders or granules.
  • Liquid preparations such as emulsions or syrups include sugars such as water, sucrose, sorbitol or fructose, glycols such as polyethylene glycol or propylene glycol, oils such as sesame oil, olive oil or soybean oil, p-hydroxybenzoic acid It is produced using an antiseptic such as an ester or a flavor such as strawberry flavor or peppermint as an additive.
  • Capsules, tablets, powders or granules include excipients such as lactose, glucose, sucrose or mannitol, disintegrants such as starch or sodium alginate, lubricants such as magnesium stearate or talc, polyvinyl alcohol, hydroxy A binder such as propylcellulose or gelatin, a surfactant such as fatty acid ester, or a plasticizer such as glycerin is used as an additive.
  • Suitable formulations for parenteral administration include injections, suppositories or sprays.
  • An injection is produced using a carrier comprising a salt solution, a glucose solution, or a mixture of both.
  • Suppositories are produced using a carrier such as cacao butter, hydrogenated fat or carboxylic acid.
  • the propellant is produced using a carrier that does not irritate the recipient's oral cavity and airway mucosa, disperses the monoclonal antibody of the present invention or an antibody fragment thereof as fine particles, and facilitates absorption.
  • the carrier for example, lactose or glycerin is used. It can also be produced as an aerosol or dry powder.
  • Diagnosis of cancer which is one of diseases associated with CD4, can be performed by detecting or measuring CD4 as follows, for example. Diagnosis can be made by detecting CD4 expressed in cancer cells in a patient using an immunological technique such as a flow cytometer.
  • An immunological technique is a method of detecting or measuring the amount of antibody or the amount of antigen using a labeled antigen or antibody. For example, a radioactive substance labeled immunoassay method, an enzyme immunoassay method, a fluorescence immunoassay method, a luminescence immunoassay method, a Western blot method, a physicochemical method, or the like is used.
  • Radioactive substance-labeled immunoantibody method for example, after reacting the antibody or the antibody fragment of the present invention with an antigen or antigen-expressing cell, and further reacting with a radiolabeled anti-immunoglobulin antibody or binding fragment Measure with a scintillation counter.
  • an antigen or a cell expressing the antigen is reacted with the antibody of the present invention or the antibody fragment, and further, a labeled anti-immunoglobulin antibody or binding fragment is reacted, and then a coloring dye. Is measured with an absorptiometer. For example, a sandwich ELISA method is used.
  • an enzyme label known in the art [Enzyme Immunoassay, Medical School (1987)] can be used.
  • alkaline phosphatase label, peroxidase label, luciferase label, biotin label or the like is used.
  • the sandwich ELISA method is a method in which after binding an antibody to a solid phase, an antigen to be detected or measured is trapped and a second antibody is reacted with the trapped antigen.
  • the ELISA method two types of antibodies or antibody fragments recognizing an antigen to be detected or measured and having different antigen recognition sites are prepared, and the first antibody or antibody fragment is pre-plated on a plate (for example, 96 Next, the second antibody or antibody fragment is labeled with a fluorescent substance such as FITC, an enzyme such as peroxidase, or biotin.
  • a fluorescent substance such as FITC
  • an enzyme such as peroxidase
  • biotin biotin
  • the detected monoclonal antibody or antibody fragment is reacted, and a detection reaction according to the labeling substance is performed.
  • the antigen concentration in the test sample is calculated from a calibration curve prepared by diluting antigens with known concentrations stepwise.
  • an antibody used in the sandwich ELISA method either a polyclonal antibody or a monoclonal antibody may be used, and an antibody fragment such as Fab, Fab ′, or F (ab) 2 may be used.
  • the combination of the two types of antibodies used in the sandwich ELISA method may be a combination of monoclonal antibodies or antibody fragments that recognize different epitopes, or a combination of polyclonal antibodies and monoclonal antibodies or antibody fragments.
  • the fluorescence immunoassay is measured by the method described in the literature [Monoclonal Antibodies-Principles and Practice, Academic Edition, Academic Press (1996), Monoclonal Antibody Experiment Manual, Kodansha Scientific (1987)].
  • a known fluorescent label [fluorescent antibody method, Soft Science Co., Ltd. (1983)] can be used.
  • FITC or RITC is used.
  • the luminescence immunoassay is measured by the method described in the literature [Bioluminescence and chemiluminescence clinical examination 42, Yodogawa Shoten (1998)].
  • Examples of the label used in the luminescence immunoassay include known phosphor labels, such as acridinium ester and lophine.
  • SDS sodium dodecyl sulfate
  • PAGE polyvinylidene fluoride
  • Anti-mouse IgG antibody that is blotted on a membrane or nitrocellulose membrane, reacted with an antibody or antibody fragment that recognizes antigen on the membrane, and further applied with a fluorescent substance such as FITC, an enzyme label such as peroxidase, or a biotin label After reacting the bound fragments, the label is measured by visualizing it.
  • a fluorescent substance such as FITC
  • an enzyme label such as peroxidase
  • biotin label After reacting the bound fragments, the label is measured by visualizing it.
  • An example is shown below. Cells and tissues expressing a polypeptide having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 are lysed, and 0.1 to 30 ⁇ g of protein per lane is electrophoresed by SDS-PAGE under reducing conditions.
  • the migrated protein is transferred to a PVDF membrane and reacted with PBS containing 1 to 10% BSA (hereinafter referred to as BSA-PBS) for 30 minutes at room temperature to perform a blocking operation.
  • BSA-PBS PBS containing 1 to 10% BSA
  • the monoclonal antibody of the present invention was reacted, washed with PBS containing 0.05 to 0.1% Tween-20 (hereinafter referred to as Tween-PBS), and peroxidase-labeled goat anti-mouse IgG was allowed to stand at room temperature. React for 2 hours.
  • the polypeptide having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2 is detected by washing with Tween-PBS and detecting the band to which the monoclonal antibody is bound using ECL Western Blotting Detection Reagents (manufactured by Amersham).
  • ECL Western Blotting Detection Reagents manufactured by Amersham.
  • an antibody used for detection by Western blotting an antibody capable of binding to a polypeptide that does not have a natural three-dimensional structure is used.
  • the physicochemical method is performed by, for example, forming an aggregate by binding the antigen CD4 and the monoclonal antibody of the present invention or an antibody fragment thereof, and detecting the aggregate.
  • the capillary method, the one-dimensional immunodiffusion method, the immunoturbidimetric method, or the latex immunoturbidimetric method [Presentation of clinical test method, Kanbara Publishing Co., Ltd. (1998)] can also be used as a physicochemical method.
  • Latex immunoturbidimetry is a method in which an antibody or antigen-sensitized carrier such as polystyrene latex having a particle size of about 0.1 to 1 ⁇ m is used to cause an antigen-antibody reaction with the corresponding antigen or antibody. Scattered light increases and transmitted light decreases. By detecting this change as absorbance or integrating sphere turbidity, the antigen concentration in the test sample is measured.
  • a known immunological detection method can be used for the detection or measurement of cells expressing CD4.
  • immunoprecipitation method immune cell staining method, immunohistochemical staining method, fluorescent antibody staining method, etc. Is used.
  • cells expressing CD4 and the like are reacted with the monoclonal antibody of the present invention or an antibody fragment thereof, and then a carrier having a specific binding ability to immunoglobulins such as protein G-sepharose is added to the antigen-antibody complex. Let the body settle.
  • the following method can be used.
  • the above-described monoclonal antibody of the present invention or antibody fragment thereof is immobilized on a 96-well plate for ELISA, and then blocked with BSA-PBS. If the antibody is in an unpurified state, such as a hybridoma culture supernatant, anti-mouse immunoglobulin, anti-rat immunoglobulin, protein-A or protein-G is preliminarily immobilized on a 96-well plate for ELISA. After blocking with BSA-PBS, the hybridoma culture supernatant is dispensed and bound. Next, after discarding BSA-PBS and thoroughly washing with PBS, a lysate of cells or tissues expressing CD4 is reacted. The immunoprecipitate is extracted from the well-washed plate with a sample buffer for SDS-PAGE and detected by the above Western blotting.
  • an unpurified state such as a hybridoma culture supernatant, anti-mouse immunoglobulin, anti-rat immunoglobulin
  • the immune cell staining method or the immunohistochemical staining method is a method in which cells or tissues expressing an antigen are treated with a surfactant or methanol to improve the passage of the antibody in some cases, and then reacted with the monoclonal antibody of the present invention. And then reacting with a fluorescent label such as FITC, an enzyme label such as peroxidase or a biotin label, or an anti-immunoglobulin antibody or a binding fragment thereof, then the label is visualized and microscopically observed .
  • a fluorescent label such as FITC
  • an enzyme label such as peroxidase or a biotin label
  • the monoclonal antibody of the present invention or an antibody fragment thereof, which binds to the extracellular region of CD4, can detect cells expressing the natural three-dimensional structure by fluorescent antibody staining.
  • CD4 transfectant (1) Preparation of CD4 expression vector
  • a vector in which the human CD4 gene sequence is incorporated is a vector in which the human CD4 gene is incorporated into the vector pCMV-SPORT6 (Open Biosystems, Clone No. 5226427, (Hereinafter referred to as “pCMV-CD4”).
  • the CD4 gene fragment was amplified by a normal PCR method using pCMV-CD4 as a template and primers having the nucleotide sequences represented by SEQ ID NOs: 79 and 80.
  • the PCR product was purified by PCR Purification Kit (manufactured by QIAGEN) and treated with restriction enzymes with EcoRI and SpeI.
  • the vector pBluescript II sk (-) (Stratagene) (hereinafter referred to as pBS) is similarly treated with EcoRI and SpeI and these two fragments are attached using Ligation high (TOYOBO). Were linked according to the instructions.
  • the obtained recombinant plasmid DNA solution was used to transform Escherichia coli DH5 ⁇ strain (manufactured by TOYOBO). Plasmid DNA was prepared from the clone of the transformant and confirmed by restriction enzyme treatment to obtain plasmid pBS / CD4 into which the CD4 gene was inserted. The thus obtained pBS / CD4 into which the CD4 gene was incorporated and the animal cell expression vector pKANTEX93 (WO97 / 10354) were treated with restriction enzymes with EcoRI and SpeI. The reaction solution was fractionated by agarose gel electrophoresis, and the EcoRI-SpeI fragment of CD4 and the EcoRI-SpeI fragment of pKANTEX93 were recovered.
  • FIG. (2) Preparation of CD4-expressing CHO / DG44 cells
  • the CD4 expression vector pKANTEX / CD4 prepared in (1) above was prepared by electroporation [Cytotechnology, 3, 133 (1990)] as follows. The cells were introduced into cells [Somatic Cell and Molecular Genetics, 12, 555 (1986)].
  • the cells were placed in IMDM medium (Invitrogen) (hereinafter referred to as A3 medium) supplemented with 10% fetal bovine serum (Life Technologies) and Gentamicin (Nacalai Tesque, 50 ⁇ g / mL), 1 ⁇ A subcultured medium supplemented with HT supplement (Invitrogen) was used.
  • A3 medium IMDM medium
  • fetal bovine serum Life Technologies
  • Gentamicin Nacalai Tesque, 50 ⁇ g / mL
  • CHO / DG44 cells contain 137 nmol / L potassium chloride, 2.7 nmol / L sodium chloride, 8.1 mmol / L disodium monohydrogen phosphate, 1.5 nmol / L monosodium dihydrogen phosphate and 4 mmol / L magnesium chloride Suspend in buffer (hereinafter referred to as K-PBS) to 8 ⁇ 10 6 cells / mL, and use 200 ⁇ L of the resulting cell suspension (1.6 ⁇ 10 6 cells) as the expression plasmid pKANTEX / CD4 (8 ⁇ g).
  • This mixed solution was transferred to a cuvette (distance between electrodes: 2 mm), and gene introduction was performed using GenePulser II (manufactured by Bio-Rad) under the conditions of a pulse voltage of 0.35 kV and an electric capacity of 250 ⁇ F.
  • GenePulser II manufactured by Bio-Rad
  • the cell suspension in the cuvette was suspended in a cell culture vessel containing A3 medium and cultured in a 37 ° C., 5% carbon dioxide incubator. Thereafter, the cells were cultured in a medium supplemented with G418 (manufactured by Invitrogen, 0.5 mg / mL) to obtain a transformed cell line resistant to G418.
  • a clone that highly expresses CD4 is selected, and a CD4 expressing CHO cell line (CHO / CD4 cell or CD4 transfectant) is obtained. did.
  • CD4-Fc Preparation of CD4-Fc expression vector
  • Vector pBS / CD4 containing human CD4 gene and vector pKANTEX93 prepared in Example 1 (1) were mixed and used as a template.
  • PCR reaction was carried out using four kinds of synthetic oligonucleotides represented by 81, 82 as primers.
  • a gene sequence in which the gene encoding the extracellular region of the CD4 protein and the gene of the Fc region were linked was synthesized (hereinafter referred to as the CD4-Fc gene).
  • the PCR product thus obtained was fractionated by agarose gel electrophoresis, and the target CD4-Fc gene (about 2 kbp) was excised and purified.
  • the CD4-Fc gene was amplified by performing the PCR reaction again using the purified product as a template and two kinds of primers represented by SEQ ID NOs: 79 and 82.
  • This PCR product was fractionated by agarose gel electrophoresis, and about 2 kbp target gene CD4-Fc was excised and treated with EcoRI and SpeI to obtain an EcoRI-SpeI fragment of the CD4-Fc gene.
  • the vector pKANTEX93 was subjected to restriction enzyme treatment with EcoR and Spe, and these two types of fragments were ligated using Ligation High (TOYOBO).
  • the obtained recombinant plasmid DNA solution was used to transform Escherichia coli DH5 ⁇ strain (manufactured by TOYOBO). Plasmid DNA was prepared from the clone of the transformant and confirmed by restriction enzyme treatment to obtain plasmid pKANTEX / CD4-Fc into which the CD4-Fc gene was inserted. The plasmid was reacted using the BigDye Terminator Cycle Sequencing FS Ready Reaction Kit (manufactured by PE Biosystems) according to the attached instruction, and the nucleotide sequence was analyzed with its sequencer ABI PRISM3700.
  • FIG. (2) Expression of CD4-Fc Using pKANTEX / CD4-Fc prepared in (1) above, conventional methods [Antibody Engineering, A Practical Guide, W. H. Freeman and Company (1992)] obtained CHO cells in which CD4-Fc was expressed (hereinafter referred to as CHO / CD4-Fc).
  • Preparation of anti-CD4 monoclonal antibody (1) Preparation of immunogen To obtain anti-CD4 monoclonal antibody, recombinant human CD4 (manufactured by R & D Systems, Catalog No. 514-CD / CF) was lyophilized from Dulbecco's phosphate buffer (Phosphate buffered) A human CD4-Fc fusion protein (hereinafter referred to as CD4-Fc) prepared in saline (PBS) or prepared in Example 2 (3) was used as an immunogen.
  • CD4-Fc human CD4-Fc fusion protein prepared in saline (PBS) or prepared in Example 2 (3) was used as an immunogen.
  • Partial blood was collected from the fundus vein of the rat, the serum antibody titer thereof was confirmed by CD4 binding ELISA, and the spleen was removed 3 days after the final immunization from the rat showing a sufficient antibody titer.
  • the spleen was shredded in MEM (Minimum Essential Medium) medium (Nissui Pharmaceutical Co., Ltd.), ground and centrifuged (1200 rpm, 5 minutes). Tris-ammonium chloride buffer (pH 7.6) was added to the obtained precipitate fraction, and the erythrocytes were removed by treatment at 37 ° C. for 1 minute. The resulting precipitate fraction (cell fraction) was washed 3 times with MEM medium and used for cell fusion.
  • MEM Minimum Essential Medium
  • Tris-ammonium chloride buffer pH 7.6
  • Tween-PBS polyoxyethylene (20) sorbitan monolaurate [(ICI trademark Tween 20 equivalent: Wako Pure Chemical Industries)] / PBS (hereinafter referred to as Tween-PBS), then 2
  • Tween-PBS polyoxyethylene (20) sorbitan monolaurate
  • ZYMED peroxidase-labeled goat anti-rat IgG (H + L chain) antibody
  • the plate was washed with Tween-PBS, and ABTS [2.2-azinobis (3-ethylbenzothiazole-6-sulfonic acid) ammonium] substrate solution [1 mmoL / L ABTS,. 1moL / L citrate buffer (pH 4.2), 0.1% H 2 O 2 ] is added at 50 ⁇ L / well for color development, and 5% SDS (Sodium Lauryl Sulfate) solution is added at 50 ⁇ L / well to stop the reaction.
  • the absorbance at OD 415 nm was measured using a plate reader Emax (Molecular Devices).
  • mice 8-Azaguanine-resistant mouse myeloma cell line P3X63Ag8U.1 (P3-U1: purchased from ATCC) was cultured in RPMI1640 supplemented with 10% fetal bovine serum (Invitrogen). ⁇ 10 7 or more cells were secured and used as a parent strain for cell fusion. (5) Measurement of culture supernatant by FMAT method The CD4 transfectant prepared in Example 1 or CHO / DC44 cells as a negative target were placed in a 96-well FMAT plate (Applied Biosystems) at 1 ⁇ 10 4 Cells / 50 ⁇ L / well were seeded and cultured overnight at 37 ° C.
  • Example 3 (2) Production of hybridoma
  • PEG-1000 polyethylene glycol-1000
  • MEM medium Minimum Essential Medium
  • DMSO dimethyl sulfoxide
  • the HAT medium [RPMI1640 medium supplemented with 10% fetal bovine serum was added to HAT Media Supplement (manufactured by Invitrogen). Medium) was gently suspended in 100 mL. The suspension was dispensed at 200 ⁇ L / well into a 96-well culture plate and cultured at 37 ° C. for 10-14 days in a 5% CO 2 incubator. After the culture, the culture supernatant was measured by the FMAT method described in Example 3 (5), and a well that reacted with CHO / CD4 prepared in Example 1 but did not react with CHO / DG44 cells was selected.
  • the cells producing the selected CD4-specific antibody were cloned twice by limiting dilution, and anti-CD4 monoclonal antibody-producing hybridomas KM4065, KM4066, KM4067, KM4068 and KM4069 were established.
  • Anti-CD4 rat monoclonal antibody Activity evaluation of anti-CD4 rat monoclonal antibody (1) Reactivity of anti-CD4 rat monoclonal antibody against human CD4 positive cell line using FCM Human IgG (manufactured by Sigma) 1 mg / mL is added to 1-5 ⁇ 10 5 human T-cell lymphoma cell line HPB-ALL to block the cells, and anti-CD4 rat monoclonal antibodies KM4065-KM4069 and anti-CD4 mouse antibody OKT4 (BioLegend) was appropriately diluted with BSA-PBS and added to make a total volume of 50 ⁇ L. These cell suspensions were reacted on ice for 60 minutes, and then the cells were washed twice with BSA-PBS.
  • FCM Human IgG manufactured by Sigma
  • FIG. 3 shows the mean fluorescence intensity (MFI value) when the monoclonal antibodies were reacted at 5, 0.5 and 0.05 ⁇ g / mL. It was confirmed that the anti-CD4 rat monoclonal antibodies KM4065 to KM4069 and the anti-CD4 mouse antibody OKT4 all bind to a CD4 positive cell line in an antibody concentration-dependent manner.
  • the binding rate constant (hereinafter referred to as ka), dissociation rate constant (hereinafter referred to as kd), and dissociation constant K D (kd / ka) of each antibody obtained are shown in Table 2.
  • the anti-CD4 rat monoclonal antibodies KM4065 and KM4066 showed higher affinity than the existing antibodies.
  • the CD4 transfectant After washing the CD4 transfectant with PBS, it is washed with RPMI1640 medium (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) containing 10% fetal bovine serum (FBS), adjusted to the optimal concentration with the same medium, and the target cell suspension It was.
  • the target cell suspension was dispensed into 96-well flat bottom plates (manufactured by Sumitomo Bakelite Co., Ltd.) so that 5 ⁇ 10 4 cells per well were obtained.
  • % Human complement (manufactured by SIGMA) was added to prepare a total volume of 100 ⁇ L / well.
  • a reaction well containing no antibody (0% cytotoxic activity well) was prepared as a negative control, and a reaction well containing no cells (100% cytotoxic activity well) was prepared as a positive control.
  • the reaction was performed in a 37 ° C., 5% CO 2 incubator for 3 hours.
  • 10 ⁇ L of WST-1 reagent (Roche) was added to each reaction well, reacted at 37 ° C. for about 3 hours, and OD450 in each well was measured using a plate reader Emax (Molecular Devices).
  • CDC activity cytotoxic activity [%] was calculated from the absorbance of each well using the following formula.
  • PCR is performed using a rat Ig ( ⁇ ) specific primer (SEQ ID NO: 6) instead of each antibody subclass specific primer to amplify a cDNA fragment of the light chain variable region (hereinafter referred to as VL) of each antibody. did.
  • VL light chain variable region
  • the PCR reaction was heated at 94 ° C for 5 minutes, followed by 5 reaction cycles consisting of 94 ° C for 15 seconds, 72 ° C for 3 minutes, 94 ° C for 15 seconds, 70 ° C for 30 seconds, After 5 reaction cycles consisting of 3 minutes at 72 ° C, 30 reaction cycles consisting of 94 ° C for 15 seconds, 68 ° C for 30 seconds, 72 ° C for 3 minutes, and 72 ° C for 10 minutes. went.
  • PCR reaction was performed using PTC-200 DNA Engine (manufactured by BioRad).
  • the obtained PCR products are separated by agarose gel electrophoresis, and the VH gene fragment and VL gene fragment are separated using Gel Extraction Kit (QIAGEN). Extracted.
  • Target Clone Plus manufactured by TOYOBO
  • deoxyadenine (dA) was added to the obtained extracted fragment according to the attached instruction, and then VH or VL of each antibody was incorporated into the pTA2 vector.
  • E. coli DH5 ⁇ strain was transformed according to the instruction manual attached to Competent Quick (manufactured by TOYOBO).
  • a plasmid was extracted from the obtained transformant using an automatic plasmid extractor (Kurabo).
  • the extracted plasmid was reacted using the BigDye Terminator Cycle Sequencing FS Ready Reaction Kit (manufactured by PE Biosystems) according to the attached instructions, and then the sequencer ABI PRISM3700 was used. And analyzed. As a result, a plasmid containing a full-length VH cDNA and a plasmid containing a VL cDNA, which had an ATG sequence presumed to be the initiation codon at the 5 ′ end of the cDNA, were obtained.
  • the outline of cloning is shown in FIG.
  • each isolated cDNA is an anti-CD4 monoclonal antibody KM4065-KM4069 containing a secretory signal sequence.
  • V region variable region
  • the KM4065 H chain is the first to 19th amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 12
  • the KM4065 L chain is SEQ ID NO: 22 1 to 20 of the amino acid sequence described in is a secretory signal sequence
  • 1 to 19 of the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 13 for the KM4066 H chain and SEQ ID NO: 23 for the L chain of KM4066
  • the 1st to 19th amino acid sequence is a secretory signal sequence
  • the KM4067 H chain is the amino acid sequence 1 to 18 of SEQ ID NO: 14
  • the KM4067 L chain is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 24 1 to 20 is secreted
  • the KM4068 H chain is the secretory signal sequence
  • the KM4069 H chain is the secretory signal sequence from the 1st to the 19th amino acid sequence described in SEQ ID NO: 16, and the KM4069 L chain is the 1st to 20th amino acid sequence described in SEQ ID NO: 26. It became clear.
  • VH and VL CDRs of each monoclonal antibody were identified by comparing with the amino acid sequences of known antibodies.
  • the amino acid sequences of CDR1, CDR2, and CDR3 of VH of the anti-CD4 monoclonal antibody KM4065 are shown in SEQ ID NOs: 27, 28, and 29, and the amino acid sequences of CDR1, CDR2, and CDR3 of VL are shown in SEQ ID NOs: 30, 31, and 32, respectively.
  • the amino acid sequences of CDR1, CDR2, and CDR3 of VH of the anti-CD4 monoclonal antibody KM4066 are shown in SEQ ID NOs: 33, 34, and 35, and the amino acid sequences of CDR1, CDR2, and CDR3 of VL are shown in SEQ ID NOs: 36, 37, and 38, respectively.
  • the amino acid sequences of CDR1, CDR2, and CDR3 of VH of anti-CD4 monoclonal antibody KM4067 are shown in SEQ ID NOs: 39, 40, and 41, and the amino acid sequences of CDR1, CDR2, and CDR3 of VL are shown in SEQ ID NOs: 42, 43, and 44, respectively.
  • the amino acid sequences of CDR1, CDR2 and CDR3 of VH of anti-CD4 monoclonal antibody KM4068 are shown in SEQ ID NOs: 45, 46 and 47, and the amino acid sequences of CDR1, CDR2 and CDR3 of VL are shown in SEQ ID NOs: 48, 49 and 50, respectively.
  • the amino acid sequences of CDR1, CDR2, and CDR3 of VH of anti-CD4 monoclonal antibody KM4069 are shown in SEQ ID NOs: 51, 52, and 53, and the amino acid sequences of CDR1, CDR2, and CDR3 of VL are shown in SEQ ID NOs: 54, 55, and 56, respectively.
  • anti-CD4 chimeric antibody (1) Construction of anti-CD4 chimeric antibody expression vector
  • the chimeric antibody prepared in the present invention is the variable region of the heavy and light chains of the anti-CD4 rat monoclonal antibody obtained in Example 5 (2).
  • a heavy chain constant region having a strong CDC activity (hereinafter referred to as type 113F) consisting of an amino acid sequence in which a part of the Fc region of the human IgG1 antibody disclosed in US2007 / 0148165 is substituted with the Fc of the human IgG3 antibody.
  • high CDC type chimeric antibody expression vector PKTX93 / 113F (described in US2007 / 0148165) containing the variable region of anti-CD20 antibody, and VH or VL of each monoclonal antibody obtained in Example 5 (2) are used.
  • an anti-CD4 chimeric antibody expression vector was constructed as follows (FIGS. 5 and 6).
  • 100 ng of TA2 vector containing VH or VL of each monoclonal antibody was used as a template, 10 ⁇ KOD Plus buffer 5 ⁇ L, 2 mmol / LmmoldNTP 5 ⁇ L, 25 mmol / L magnesium chloride 2 ⁇ L, DMSO 2.5 ⁇ L, KOD
  • a solution consisting of 1 ⁇ L of plus polymerase (manufactured by TOYOBO) and 1 ⁇ L each of 10 ⁇ mol / L primers specific to VH and VL of each anti-CD4 rat monoclonal antibody was prepared in a total volume of 50 ⁇ L. The prepared solution was heated at 94 ° C. for 2 minutes, and then subjected to PCR for 30 cycles of 94 ° C.
  • KM4065 VH primer is SEQ ID NO: 57 and 58
  • VL primer is SEQ ID NO: 59 and 60
  • KM4066 VH primer is SEQ ID NO: 61 and 62
  • VL primer is SEQ ID NO: 63 and 64
  • KM4067 VH primer is SEQ ID NOs: 65 and 66
  • VL primer is SEQ ID NO: 67 and 68
  • KM4068 VH primer is SEQ ID NO: 69 and 70
  • VL primer is SEQ ID NO: 71 and 72
  • KM4069 VH primer is SEQ ID NO: 73 and 74
  • VL primers are shown in SEQ ID NOs: 75 and 76.
  • Each PCR reaction product was purified using PCR Purification Kit (manufactured by QIAGEN).
  • the VH of each antibody thus obtained was subjected to restriction enzyme treatment using ApaI (manufactured by New England Biolabs) and NotI (manufactured by New England Biolabs) to obtain a NotI-ApaI fragment of VH.
  • the VL of each antibody was subjected to restriction enzyme treatment using BsiWI (New England Biolabs) and EcoRI (New England ⁇ ⁇ Biolabs) to obtain an EcoRI-BsiWI fragment of VL.
  • the high CDC type chimeric antibody expression vector PKTX93 / 113F was similarly treated with NotI and ApaI or EcoRI and BsiWI.
  • Example 1 (1) The following is performed in the same manner as in Example 1 (1).
  • a cloned vector was obtained.
  • Restriction enzyme treatment is performed by adding EcoRI and NotI to the PKTX93 / 113F vector in which the VH or VL of each antibody is incorporated, and the NotI-EcoRI of the PKTX93 / 113F vector in which the VL EcoRI-NotI fragment and VH are incorporated A fragment was obtained.
  • Example 1 The following was carried out in the same manner as in Example 1 (1), and an anti-CD4 chimeric antibody expression vector in which cDNAs encoding VH and VL of anti-CD4 monoclonal antibodies KM4065 to KM4069 were respectively cloned was obtained.
  • a schematic diagram of vector construction is shown in FIG.
  • Anti-CD4 chimeric antibodies prepared from anti-CD4 monoclonal antibodies KM4065 to KM4069 were designated as anti-CD4 chimeric antibodies KM4045 to KM4049, respectively (Table 3).
  • VH and VL of the anti-CD4 human antibody 6G5 are based on the sequence information disclosed in US2006 / 0183195, respectively, a synthetic oligo DNA of SEQ ID NO: 89-92, a synthetic oligo DNA of SEQ ID NO: 83-88, It was prepared by performing a PCR reaction using T3 primer and T7 primer located at both ends of the variable region. Subcloning was performed by ligating the VH or VL gene fragment of 6G5 antibody amplified by PCR reaction with pBluescript II sk (-) vector (Stratagene).
  • Example 1 or Example 6 (2) Thereafter, the same procedure as in Example 1 or Example 6 (2) was performed to prepare a 6G5.1-1 expression vector and a 6G5.1-113F expression vector (FIG. 7).
  • the prepared 6G5.1-1 expression vector was expressed in both CHO / DG44 cells and FUT8 knockout CHO cells (WO2002 / 31140), and the 6G5.1-113F expression vector was expressed in FUT8 knockout CHO cells.
  • Expression vector introduction, expression strain acquisition, cell culture and antibody purification were performed in the same manner as in Examples 6 (2) and (3) above, and as a result, present at the reducing end of the N-linked complex sugar chain of the antibody.
  • 6G5-1 antibody (hereinafter referred to as 6G5-1) in which fucose is ⁇ 1,6-linked to N-acetylglucosamine
  • 6G5-1 antibody (hereinafter referred to as 6G5-P) and antibody in which fucose is not bound
  • 6G5-113F antibody (hereinafter referred to as 6G5-113F) in which fucose was not bound to the N-linked complex sugar chain of the Fc region was obtained.
  • anti-CD4 chimeric antibodies KM4045 to KM4049, 6G5-1, 6G5-P and 6G5-113F all bound to recombinant human CD4.
  • anti-CD4 chimeric antibodies KM4045, KM4046, KM4048 and KM4049 bound to recombinant CD4 much more strongly than 6G5-1, 6G5-P and 6G5-113F.
  • a measurement sample (anti-CD4 chimeric antibody KM4045 to KM4049) was added to a chip on which an anti-human IgG antibody was solidified, and was captured so as to obtain 100 RU (resonance unit). Thereafter, recombinant human CD4 (manufactured by R & D) diluted in 2500 steps from 2500 ng / mL was flowed on the chip at a rate of 30 ⁇ L / min, and sensorgrams at each concentration were obtained.
  • Biacore T100 Evaluation software (manufactured by Biacore) attached to the apparatus, analysis was performed using a 1: 1 binding model, and the binding rate constant ka and dissociation rate constant kd of each antibody to human CD4 were calculated.
  • Table 5 shows the binding rate constant ka, dissociation rate constant kd, and dissociation constant K D (kd / ka) of each antibody obtained as a result.
  • each of the chimeric antibodies KM4045 to KM4049 showed higher affinity than the existing anti-CD4 human antibody 6G5-1.
  • ADCC activity (%) ⁇ ([absorbance of sample]-[absorbance of spontaneous release of target cells]-[absorbance of spontaneous release of effector cells]) / ([absorbance of total release of target cells]-[absorbance of spontaneous release of target cells] ]) ⁇ ⁇ 100
  • the existing anti-CD4 human antibody 6G5-1 did not show ADCC activity against the human T cell lymphoma cell line HPB-ALL, but core fucose was bound to the N-linked complex sugar chain in the Fc region of the antibody.
  • the anti-CD4 chimeric antibodies KM4045, KM4046, KM4047, KM4048 and KM4049 of the present invention are all 6G5-P against human T cell lymphoma cell line HUT78 and human T cell lymphoblastic lymphoma cell line SUP-T1. Furthermore, the anti-CD4 chimeric antibodies KM4045, KM4046, KM4048 and KM4049 all have 6G5- against the human T cell lymphoma cell line HPB-ALL. It had ADCC activity higher than 113F ( Figure 9D).
  • the anti-CD4 chimeric antibodies KM4045, KM4046, KM4047, KM4048 and KM4049 of the present invention all have ADCC activity equivalent to or higher than that of existing anti-CD4 human antibodies.
  • CDC activity complement-dependent cytotoxic activity
  • the existing anti-CD4 human antibody 6G5-1 and 6G5-113F having 113F type Fc in which a part of Fc of IgG1 was domain-exchanged to Fc of IgG3 exhibited CDC activity against CD4 transfectants.
  • none of the anti-CD4 chimeric antibodies KM4045, KM4046, KM4047, KM4048 and KM4049 of the present invention had CDC activity (FIG. 10A).
  • amino acid sequence of VH and VL of anti-CD4 humanized antibody was designed as follows. First, the amino acid sequence of FR of human antibody VH for grafting the amino acid sequence of CDR1-3 of anti-CD4 rat monoclonal antibody antibody KM4065VH represented by SEQ ID NOs: 27-29, respectively, was selected. Using GCG Package (Genetics Computer Group) as a sequence analysis system, the amino acid database of existing proteins is homologous to anti-CD4 rat monoclonal antibody KM4065 by BLASTP method (Nucleic Acid Res., 25, 3389 (1997)). Searched for high human antibodies.
  • GCG Package Genetics Computer Group
  • Glu which is an amino acid residue found in the anti-CD4 rat monoclonal antibody KM4065
  • the 11th Val was frequently substituted in the human antibody sequence and was substituted with Leu which is an amino acid residue found in the anti-CD4 rat monoclonal antibody KM4065.
  • Leu is an amino acid residue found in the anti-CD4 rat monoclonal antibody KM4065.
  • VH CDR amino acid sequence of the anti-CD4 rat monoclonal antibody KM4065 represented by SEQ ID NOs: 27 to 29 was transplanted at an appropriate position of the FR amino acid sequence of the human antibody determined as described above. In this way, the amino acid sequence HV0 of VH of the anti-CD4 humanized antibody represented by SEQ ID NO: 77 was designed. Next, the amino acid sequence of VL of the anti-CD4 humanized antibody was designed as follows.
  • amino acid sequence LV0 of the VL of the anti-CD4 humanized antibody represented by SEQ ID NO: 78 was designed.
  • VH amino acid sequence HV0 and VL amino acid sequence LV0 of the anti-CD4 humanized antibody designed above are sequences in which only the CDR amino acid sequence of the anti-CD4 rat monoclonal antibody KM4065 is grafted to the FR amino acid sequence of the selected human antibody. is there.
  • the binding activity is often lowered only by transplanting the amino acid sequence of the CDR of the mouse antibody to the FR of the human antibody.
  • amino acid residues that are thought to affect binding activity Modifications are being made. Therefore, also in this example, FR amino acid residues that are thought to affect the binding activity were identified as follows.
  • the three-dimensional structure of the antibody V region (HV0LV0) consisting of the VH amino acid sequence HV0 and the VL amino acid sequence LV0 of the anti-CD4 humanized antibody designed above was constructed using a computer modeling technique.
  • a computer model of the three-dimensional structure of the V region of the anti-CD4 rat monoclonal antibody KM4065 was also constructed in the same manner.
  • amino acid residues different from the anti-CD4 rat antibody KM4065 were selected from the VH and VL FR amino acid sequences of HV0LV0, and an amino acid sequence modified to the amino acid residue of the anti-CD4 rat monoclonal antibody KM4065 was prepared.
  • a three-dimensional structural model was constructed. By comparing the three-dimensional structures of the V regions of these anti-CD4 rat monoclonal antibodies KM4065 and HV0LV0 and variants, amino acid residues predicted to affect the antibody binding activity were identified.
  • amino acid residues of FR of HV0LV0 the three-dimensional structure of the antigen binding site was changed, and as amino acid residues that are thought to affect the binding activity of the antibody, 18th Leu, 93rd in HV0 Val, 97th Ala, and 114th Thr, LV0 selected 13th Ala, 15th Val, 19th Val, 47th Ala, 62nd Val, and 82nd Leu, respectively .
  • amino acid residues at least one amino acid sequence is modified to an amino acid residue present at the same site of the anti-CD4 rat monoclonal antibody KM4065, and VH and VL of humanized antibodies having various modifications are changed. Designed.
  • the 18th Leu of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 77 is Met
  • the 93rd Val is Thr
  • the 97th Ala is Thr
  • the 114th Thr At least one modification among the amino acid modifications substituting Ile was introduced.
  • the 13th Ala of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 78 is Val
  • the 15th Val is Leu
  • the 19th Val is Ala
  • the 47th Ala is Gln
  • the 62nd At least one of the amino acid modifications in which Val was replaced with Ile and the 82nd Leu was replaced with Val was introduced.
  • the amino acid sequence of the variable region of HV2LV0, HV3LV0, HV4LV0, and HV4LV6, in which at least one amino acid residue is modified, present in FR of HV0LV0 is designed, and the amino acids of H chain variable region HV2, HV3, HV4, and L chain variable region LV6
  • the sequences are shown in SEQ ID NO: 96, 98, 100 and 102, respectively.
  • amino acid modification is carried out using the existing codon, it was prepared using a codon frequently used in mammalian cells.
  • the DNA sequences encoding the amino acid sequences of HV0 and LV0 of the anti-CD4 humanized antibody are shown in SEQ ID NOs: 93 and 94, respectively, and the amino acid sequences of the variable regions HV2, HV3, HV4 and LV6 with amino acid modifications are encoded.
  • the DNA sequences to be shown are shown in SEQ ID NOs: 95, 97, 99 and 101, respectively. Each DNA sequence was prepared by total synthesis.
  • Example 6 the total synthetic DNA encoding each variable region was inserted into the humanized antibody expression vector pKANTEX93 to prepare an anti-CD4 humanized antibody expression vector.
  • the prepared anti-CD4 humanized antibody expression vector was introduced into animal cells to express humanized antibodies, and anti-CD4 humanized antibodies HV0LV0, HV2LV0, HV3LV0, HV4LV0 and HV4LV6 were prepared.
  • the produced anti-CD4 humanized antibodies HV2LV0, HV3LV0, HV4LV0 and HV4LV6 are all anti-CD4 chimeric antibodies KM4045 and The binding activity was equivalent or more than 1/2. Therefore, an anti-CD4 humanized antibody having a high binding activity was produced.
  • the humanized antibodies HV0LV0, HV2LV0, HV3LV0, HV4LV0, and HV4LV6 retained a very strong binding activity of 1 ⁇ 10 ⁇ 10 M or more. This was equivalent to the chimeric antibody KM4045 and exceeded 6G5-1.
  • Human IgG (manufactured by Sigma) was added to 1-5 ⁇ 10 5 human T-cell lymphoma cell line HPB-ALL at a final concentration of 1 mg / mL to inhibit non-specific binding of the test antibody.
  • Various anti-CD4 antibodies were appropriately diluted with BSA-PBS and added to make a total volume of 50 ⁇ L. These cell suspensions were reacted for 90 minutes on ice, and then the cells were washed twice with BSA-PBS. 50 ⁇ L of FITC-labeled anti-human IgG Fc antibody (manufactured by Acris) diluted with BSA-PBS was added to the cells, and reacted on ice for 90 minutes.
  • FIG. 11 shows the mean fluorescence intensity (MFI value) when the above antibodies were reacted at 6.7, 0.67 and 0.067 ⁇ g / mL. All of the anti-CD4 humanized antibodies bound to the CD4 positive cell line in an antibody concentration-dependent manner, and the degree thereof was equivalent to that of the chimeric antibody KM4045.
  • Example 8 The anti-CD4 humanized antibody HV2LV0 prepared in Example 8 is hereinafter referred to as KM8045.
  • the antibody-dependent cytotoxic activity (ADCC activity) of the anti-CD4 humanized antibody against human blood cancer cell lines was evaluated by the method described in Example 7 (3).
  • humanized antibody KM8045, chimeric antibody KM4045, and human antibodies 6G5-1 and 6G5-P were used as antibodies.
  • the humanized antibody KM8045 showed high ADCC activity equivalent to that of the chimeric antibody KM4045 against any cell line, and ADCC activity equivalent to or higher than that of 6G5-P.
  • 6G5-1 showed only weak ADCC activity against HPB-ALL and HUT78 and no ADCC activity against CCRF-CEM (FIG. 12).
  • FIG. 13 shows the daily transition of the average value of the tumor volume in each group. As shown in FIG. 13, only a weak antitumor effect was observed in the 6G5-P administration group as compared to the negative control group, but a significant antitumor effect was observed in the KM8045 administration group.
  • Day 0 is the day when the tumor was implanted, and on day 1, anti-CD4 humanized antibody KM8045 and anti-CD4 human antibodies 6G5-P and 6G5-1 are prepared to 0.2 ⁇ g / 100 ⁇ L / head and 2 ⁇ g / 100 ⁇ L / head, respectively. And intravenously administered at 100 ⁇ L / head.
  • the negative control group was administered with PBS alone or isotype control antibody.
  • All mice were weighed and exsanguinated under ether anesthesia, and then euthanized by cervical dislocation.
  • liver weight ratio and kidney weight ratio The ratio of liver and kidney weight to the body weight of each individual (hereinafter referred to as liver weight ratio and kidney weight ratio) was calculated as a percentage.
  • the antitumor effect was evaluated by comparing the liver and kidney weight ratios of healthy mice not transplanted with tumors measured at the same time (average of 3 animals), and the liver and kidney weight ratios of each group increased by tumor cell metastasis. Was performed by comparing.
  • the liver weight ratio of each group is shown in FIG. 14 (A), and the kidney weight ratio is shown in FIG. 14 (B).
  • FIGS. 14 (A) and (B) in the 6G5-1 administration group, no anti-tumor effect was observed compared to the negative control group, whereas in the 6G5-P administration group and the KM8045 administration group An anti-tumor effect was observed. Furthermore, a stronger antitumor effect was observed in the KM8045 administration group than in the 6G5-P administration group. From the above, it was revealed that KM8045 has a stronger antitumor effect than 6G5-1 and 6G5-P in a mouse metastasis model targeting CD4 / EL4.
  • FIG. 15 shows the daily transition of the average value of the tumor volume in each group.
  • an antitumor effect was observed in the KM8045 administration group, and a stronger antitumor effect was observed in the 200 ⁇ g / head group than in the 20 ⁇ g / head and 100 ⁇ g / head groups. Tumor effect was confirmed. From the above, it was revealed that the anti-CD4 humanized antibody KM8045 has an antitumor effect even in an advanced cancer model targeting HH cells.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Pulmonology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

　CD4発現細胞が関与する疾患に対して、CD4に対して高いアフィニティーで結合し、抗体依存的細胞傷害活性（ADCC活性）、または高い補体依存性細胞傷害活性（CDC活性）などのエフェクター活性が高い抗CD4抗体が求められている。　本発明によれば、CD4の細胞外領域を特異的に認識し、該細胞外領域に高いアフィニティーで結合し、かつ高いADCC活性またはCDC活性を発揮するモノクローナル抗体またはその抗体断片、該抗体を産生するハイブリドーマ、該抗体をコードするDNA、該DNAを含んでなるベクター、該ベクターを導入して得られる形質転換体、該ハイブリドーマまたは該形質転換体を用いる抗体またはその抗体断片の製造方法、該抗体またはその抗体断片を用いる治療薬、および該抗体またはその抗体断片を用いる診断薬を提供することができる。

Description

抗CD4抗体
　本発明は、高いアフィニティーでヒトCD4細胞外領域に結合し、かつ高い抗体依存的細胞傷害活性（antibody-dependent cellular cytotoxicity、以下ADCC活性と記す）、または、高い補体依存性細胞傷害活性（complement-dependent cellular cytotoxicity、以下CDC活性と記す）を発揮するモノクローナル抗体またはその抗体断片、該抗体を産生するハイブリドーマ、該抗体をコードするDNA、該DNAを含んでなるベクター、該ベクターを導入して得られる形質転換体、該ハイブリドーマまたは該形質転換体を用いる抗体または該抗体断片の製造方法、抗体または該抗体断片を用いる治療薬および診断薬に関する。
　Cluster of differentiation 4（以下、CD4と記す）は、胸腺細胞のほとんど、末梢血T細胞の約3分の2、単球、マクロファージ細胞表面に発現する、分子量約55万の糖タンパク質である。CD4はI型膜貫通タンパク質であり、細胞外に4つの免疫イムノグロブリンスーパーファミリードメイン（N末より細胞膜側に向かって、順にD1～D4とする）が存在し、ドメインD3～D4に合計2箇所のN結合型糖鎖が付加している。CD4は、D1、D2ドメインを介して、Major histocompatibility complex（MHC）クラスII分子と結合し、T細胞を活性化する。また、CD4は、D3、D4ドメインを介し、重合することが知られている。CD4のD1ドメインはヒト免疫不全ウイルス（Human immunodeficiency virus、以下HIVと記す）のレセプターとなることが知られている（非特許文献1）。
　CD4は、別名T4としても知られ、1985年に遺伝子がクローニングされ（非特許文献2）、CD4のDNA配列、アミノ酸配列および立体構造は、公的データベース上に公開されており、例えば、P01730（SWISSPROT）、M12807（EMBL）等のアクセッション番号から参照可能である。
　抗CD4モノクローナル抗体OKT4は、CD4に結合するモノクローナル抗体（以下mAbと記す）として、初めて確立された（非特許文献3）。以後、CD4に対する多くのモノクローナル抗体（以下抗CD4mAbと記す）が報告されている。報告されている抗CD4mAbの多くは、D1ドメインを認識することが知られている（非特許文献1）。一部の抗CD4mAbは、癌、免疫疾患、感染症の治療を目指し臨床開発が行われている。例えば、CD4とHIVの結合がHIV感染に必須であることから、HIVが結合するCD4のD1ドメインを認識する抗体は、HIVの感染を阻害する抗体として、HIV治療薬としての開発が進められている。
　癌または免疫疾患治療薬として開発されている抗CD4mAbには、例えば、zanolimumab（6G5）（非特許文献4）、keliximab（CE9．1）(非特許文献5)などがある。これらの抗体は、標的細胞であるCD4発現細胞を特異的に傷害することにより薬効を発揮する抗体であり、その薬効メカニズムはADCC活性が主であると考えられる(非特許文献6、7)。一方、これらの抗体には、ADCCと同様に、一般に抗体医薬の主な薬効メカニズムの1つとして知られるCDC活性は無いことが示されている（非特許文献6、7）。
　CDC活性の強さは、抗体のサブクラスにより異なり、ヒトIgG1およびIgG3サブクラスは高いCDC活性を有しており、サブクラス間のCDC活性の強さは、一般的にIgG3≧IgG1>>IgG2≒IgG4の序列であることが知られている。また、抗体のCDC活性は、抗体が結合する抗原に依存して発揮される場合と発揮されない場合がある（非特許文献11）。そのため、全ての抗体が必ずしもCDC活性を発揮することができるわけではない。
　これまでに確立されている抗CD4mAbのうち、CDC活性を有する抗体はほとんど知られていない。唯一、補体価が高いウサギ血清を用いた場合にのみ、OKT4はCD4陽性のヒト細胞株に対してCDC活性を示すことは知られているが（非特許文献8）、ヒト補体を用いた場合に、CD4陽性のヒト細胞株に対するCDC活性を示した抗体の例は報告されていない。
　既存のいくつかの抗CD4mAbに関して、抗体の解離定数KDが報告されている。例えば、下表に示す抗体では、解離定数KDが7～0．01 nM程度であることが報告されている（表1）。但し、解離定数の算出に当たっては、測定機器、測定方法、解析方法により測定値が変動する可能性があるため、解離定数を比較する場合は、同条件で測定・解析された数値であることが必要である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
Leucocyte Typing VI, 49 (1997） Cell, 42, 93 (1985) Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 76, 4061 (1979) Blood, 109, 4655 (2007) Lancet, 352, 1109 (1998) Clin Immunol Immunopathol, 84, 73 (1997) Cancer Res, 67, 9945 (2007) J Immunol, 164, 1925 (2000) J Immunol, 145, 2839 (1990) Clinical Immunology, 119, 38 (2006) J.Immunol., 174, 5706(2005)
　本発明の課題は、高いアフィニティーでCD4細胞外領域に結合し、かつ高いADCC活性、またはCDC活性を有するモノクローナル抗体または該抗体断片、該抗体を産生するハイブリドーマ、該抗体をコードするDNA、該DNAを含んでなるベクター、該ベクターを導入して得られる形質転換体、該ハイブリドーマまたは該形質転換体を用いる抗体または該抗体断片の製造方法抗体または該抗体断片を用いる治療薬または診断薬を提供することにある。
　本発明は、以下の(1)～(35)に関する。
（1）抗体の抗原に対する解離定数（以下、KDと記す）が1×10-9M以下であり、高いアフィニティーでヒトCD4の細胞外領域に結合し、かつ高い抗体依存性細胞傷害活性（Antibody-dependent cellular cytotoxicity、以下ADCC活性と記す）を有するヒトCD4に対するモノクローナル抗体および該抗体断片。
（2）抗体が、高い補体依存性細胞傷害活性（complement dependent cellular cytotoxicity、CDC活性）を有する抗体である（1）記載のモノクローナル抗体および該抗体断片。
（3）抗体が、ヒトCD4を発現しているヒト癌細胞細胞株に対してCDC活性を有する抗体である（2）記載のモノクローナル抗体および該抗体断片。
（4）モノクローナル抗体が、抗体の重鎖（以下、H鎖と記す）の相補性決定領域(complementarity determining region，　以下CDRと記す)1～3が配列番号51～53で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体の軽鎖（以下、L鎖と記す）のCDR1～3が配列番号54～56で表されるアミノ酸配列である抗体と競合して、CD4の細胞外領域に結合するモノクローナル抗体である、（1）～（3）のいずれか1項に記載のモノクローナル抗体または該抗体断片。
（5）モノクローナル抗体が、抗体のH鎖のCDR1～3が配列番号51～53で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のL鎖のCDR1～3が配列番号54～56で表されるアミノ酸配列である抗体が結合するCD4の細胞外領域に存在するエピトープと、同じエピトープに結合するモノクローナル抗体である、（1）～（4）のいずれか1項に記載のモノクローナル抗体または該抗体断片。
（6）モノクローナル抗体が、抗体のH鎖のCDR1～3が配列番号27～29で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のL鎖のCDR1～3が配列番号30～32で表されるアミノ酸配列である抗体と競合して、CD4の細胞外領域に結合するモノクローナル抗体である、（1）～（2）のいずれか1項に記載のモノクローナル抗体または該抗体断片。
（7）モノクローナル抗体が、抗体のH鎖のCDR1～3が配列番号27～29で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のL鎖のCDR1～3が配列番号30～32で表されるアミノ酸配列である抗体が結合するCD4の細胞外領域に存在するエピトープと、同じエピトープに結合するモノクローナル抗体である、（1）～（2）および（6）のいずれか1項に記載のモノクローナル抗体または該抗体断片。
（8）モノクローナル抗体が、遺伝子組換え抗体である、（1）～（7）いずれか1項に記載の抗体または該抗体断片。
（9）遺伝子組換え抗体が、ヒト型キメラ抗体、ヒト化抗体およびヒト抗体から選ばれる遺伝子組換え抗体である、（8）に記載の抗体または該抗体断片。
（10）抗体のH鎖可変領域（以下、VHと記す）および抗体のL鎖可変領域（以下、VLと記す）が、配列番号16および配列番号26、ならびに配列番号12および配列番号22から選ばれるいずれか1組のアミノ酸配列である（9）記載の遺伝子組換え抗体および該抗体断片。
（11）抗体のH鎖のCDR1～3およびL鎖のCDR1～3が、配列番号51～53および配列番号54～56ならびに配列番号27～29および配列番号30～32から選ばれるいずれか1組のアミノ酸配列である（9）記載の遺伝子組換え抗体および該抗体断片。
（12）抗体のVHおよびVLが、配列番号77および配列番号78、配列番号96および配列番号78、配列番号98および配列番号78、配列番号100および配列番号78、ならびに配列番号100および配列番号102から選ばれるいずれか1組のアミノ酸配列である（9）記載のヒト化抗体。
（13）抗体断片が、Fab、Fab’、F（ab’）2、一本鎖抗体（scFv）、二量体化V領域（Diabody）、ジスルフィド安定化V領域（dsFv）およびCDRを含むペプチドから選ばれる抗体断片である（1）～（12）のいずれか1項に記載の抗体断片。
（14）（1）～（13）のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片をコードするDNA。
（15）（14）に記載のDNAを含有する組換え体ベクター。
（16）（15）に記載の組換え体ベクターを宿主細胞に導入して得られる形質転換株。
（17）（16)に記載の形質転換株を培地に培養し、培養物中に（1)～(14)のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片を生成蓄積させ、培養物から該抗体または該抗体断片を採取することを特徴とする（1)～(13)のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片の製造方法。
（18）（1）～（13）のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片を用いるヒトCD4の免疫学的検出または測定方法。
（19）（1）～（13）のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片を用いるヒトCD4の検出または測定用試薬。
（20）（1）～（13）のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片を用いるヒトCD4陽性細胞が関与する疾患の診断薬。
（21）ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患が癌である、（20）に記載の診断薬。
（22）ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患がアレルギー性疾患または自己免疫疾患である、（20）に記載の診断薬。
（23）（1）～（13）のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片を有効成分として含有するヒトCD4陽性細胞が関与する疾患の治療薬。
（24）ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患が癌である、（23）に記載の治療薬。
（25）ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患がアレルギー性疾患または自己免疫疾患である、（23）に記載の治療薬。
（26）（1）～（13）のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片を用いてヒトCD4陽性細胞を検出または測定することを含む、ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患の診断方法。
（27）（1）～（13）のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片を用いてヒトCD4を検出または測定することを含む、ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患の診断方法。
（28）ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患が癌である、（26）または（27）に記載の診断方法。
（29）ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患がアレルギー性疾患または自己免疫疾患である、（26）または（27）に記載の診断方法。
（30）ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患の診断薬を製造するための、（1）～（13）のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片の使用。
（31）ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患が癌である、（30）に記載の抗体または該抗体断片の使用。
（32）ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患がアレルギー性疾患または自己免疫疾患である、（30に記載の抗体または該抗体断片の使用。
（33）ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患の治療薬を製造するための、（1）～（13）のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片の使用。
（34）ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患が癌である、（33）に記載の抗体または該抗体断片の使用。
（35）ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患がアレルギー性疾患または自己免疫疾患である、（33）に記載の抗体または該抗体断片の使用。
　本発明により、ヒトCD4の細胞外領域を特異的に認識し、かつ該細胞外領域に高いアフィニティーで結合し、かつ高いADCC活性、または高いCDC活性を有するモノクローナル抗体または該抗体断片、該抗体を産生するハイブリドーマ、該抗体をコードするDNA、該DNAを含んでなるベクター、該ベクターを導入して得られる形質転換体、該ハイブリドーマまたは該形質転換体を用いる抗体または該抗体断片の製造方法、抗体または該抗体断片を用いる治療薬および診断薬を提供することができる。
CD4発現ベクターの造成工程を示す。 CD4-Fc発現ベクターの造成工程を示す。 FCM解析での、ヒトT細胞リンパ腫細胞株HPB-ALLに対する抗CD4ラットモノクローナル抗体および抗CD4マウス抗体OKT4の反応性を示す。グラフは抗体のサブクラスごとに（A）～（D）に分けてあり、横軸に各抗体の濃度を、縦軸に平均蛍光強度MFI値を示す。（A）●は抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065、×は抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4069を示す。（B）×は抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4068を示す。（C）■は抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4066、□は抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4067を示す。（D）●は抗CD4マウスモノクローナル抗体OKT4を表す。 抗CD4ラットモノクローナル抗体および抗CD4マウスモノクローナル抗体OKT4のCD4発現トランスフェクタントに対する補体依存性細胞傷害活性（CDC活性）を示す。図の縦軸は細胞傷害活性率（％）を、横軸は抗CD4モノクローナル抗体の抗体濃度を示す。●は抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4066を、■は抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4067を、―は抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4068を、◆は抗CD4マウスモノクローナル抗体OKT4をそれぞれ表す。 抗CD4ラットモノクローナル抗体のクローニングの工程を示す。 抗CD4キメラ抗体発現ベクターの造成工程を示す。 抗CD4ヒト抗体6G5-1抗体および6G5-113F抗体の発現ベクター造成工程を示す。 バインディングELISAにおける各種抗CD4抗体の反応性を示す。横軸に各抗体の濃度を、縦軸に各抗体の結合活性を示す。リコンビナントヒトCD4に対する各抗体の反応性を示す。破線に△はモノクローナル抗体6G5-1、実線に△は抗CD4ヒト抗体6G5-P、▲は抗CD4ヒト抗体6G5-113F、●は抗CD4キメラ抗体KM4045、■は抗CD4キメラ抗体KM4046、□は抗CD4キメラ抗体KM4047、破線に×は抗CD4キメラ抗体KM4048、実線に×は抗CD4キメラ抗体KM4049をそれぞれ表す。 各種抗CD4抗体の、各種ヒトT細胞株に対する抗体依存性細胞傷害活性（ADCC活性）を示す。図の縦軸は細胞傷害活性率（％）を、横軸は各抗体の抗体濃度を表す。破線に△はモノクローナル抗体6G5-1、実線に△はモノクローナル抗体6G5-P、▲はキメラ抗体6G5-113F、●はキメラ抗体KM4045、■はキメラ抗体KM4046、□はキメラ抗体KM4047、破線に×はキメラ抗体KM4048、実線に×はキメラ抗体KM4049をそれぞれ表す。（A）標的細胞にHPB-ALLを用いた際のADCC活性を示す。（B）標的細胞にHUT78を用いた際のADCC活性を示す。（C）標的細胞にSUP-T1を用いた際のADCC活性を示す。（D）標的細胞にHPB-ALLを用いた際のADCC活性を示す。 各種抗CD4抗体のCD4発現トランスフェクタントまたはヒトリンパ腫細胞株に対する補体依存性細胞傷害活性（CDC活性）を示す。図の縦軸は細胞傷害活性率（％）を、横軸は各抗体の抗体濃度を示す。（A）CD4発現トランスフェクタントに対するCDC活性を示す。（B）ヒトリンパ腫細胞株HPB-ALLに対するCDC活性を示す。破線に◆は抗CD4ヒト抗体6G5-1、実線に◆は抗CD4ヒト抗体6G5-113F、▲は抗CD4キメラ抗体KM4045、●は抗CD4キメラ抗体KM4046、■は抗CD4キメラ抗体KM4047、―は抗CD4キメラ抗体KM4048、■は抗CD4キメラ抗体KM4049、破線に■は抗CD4マウス抗体OKT4をそれぞれ表す。 各種抗CD4抗体の、フローサイトメーターを用いたCD4陽性T細胞リンパ腫細胞株HPB-ALLへの反応性を示す。図の横軸は抗体濃度（μg/mL）を、縦軸は平均蛍光強度MFI値を示す。●はキメラ抗体KM4045、□はヒト化抗体HV0LV0、○はヒト化抗体HV2LV0、◇はヒト化抗体HV3LV0、―はヒト化抗体HV4LV0、×はヒト化抗体HV4LV6、破線に△はヒト抗体6G5-1、実線に△はヒト抗体6G5-Pを表す。 各種抗CD4抗体の、各種ヒトT細胞リンパ腫株に対する抗体依存性細胞傷害活性（ADCC活性）を示す。図の縦軸は細胞傷害活性率（％）を、横軸は抗体濃度（ng/mL）を表す。●はキメラ抗体KM4045、○はヒト化抗体KM8045、破線に▲はヒト抗体6G5-1、実線に▲はヒト抗体6G5-Pを表す。（A）標的細胞にHPB-ALLを用いた際のADCC活性を示す。（B）標的細胞にHUT78を用いた際のADCC活性を示す。（C）標的細胞にCCRF-CEMを用いた際のADCC活性を示す。 SCIDマウスに移植したヒトT細胞リンパ腫細胞株HHに対する各抗体の抗腫瘍効果（初期癌モデル）を示す。横軸は腫瘍移植後の日数、縦軸は腫瘍体積をそれぞれ表す。×は陰性対照群、▲はKM8045投与群、●は6G5-P投与群をそれぞれ示す。バーは標準偏差を示す。 C57BL/6マウスに移植したCD4/EL4細胞に対する各抗体の抗腫瘍効果（転移モデル）を示す。（A）縦軸は肝臓重量比率、（B）縦軸は腎臓重量比率を表す。バーは標準偏差を示す。 SCIDマウスに移植したHH細胞株に対する各抗体の抗腫瘍効果（進行癌モデル）を示す。横軸は腫瘍移植後の日数、縦軸は腫瘍体積をそれぞれ表す。×は陰性対照群、▲はKM8045　20μg/head投与群、●はKM8045　100μg/head投与群、■はKM8045　200μg/head投与群をそれぞれ示す。バーは標準偏差を示す。
　本発明は、高いアフィニティーでCD4細胞外領域に結合し、これに伴い、高い抗体依存性細胞傷害活性（Antibody-dependent　cellular　cytotoxicity、以下ADCC活性と記す）を有するモノクローナル抗体またはその抗体断片に関する。
　本発明におけるCD4としては、配列番号1またはEMBLアクセッション番号M12807で示されるアミノ酸配列を有するポリペプチドまたは配列番号1またはEMBLアクセッション番号M12807で示されるアミノ酸配列において1つ以上のアミノ酸が欠失、置換あるいは付加されたアミノ酸配列からなり、かつCD4の機能を有するポリペプチド、ならびに配列番号1またはEMBLアクセッション番号M12807で示されるアミノ酸配列と60％以上、好ましくは80％以上、さらに好ましくは90％以上の相同性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチド、最も好ましくは95％以上の相同性を有するアミノ酸配列からなり、かつCD4の機能を有するポリペプチドなどがあげられる。
　配列番号1またはEMBLアクセッション番号M12807で示されるアミノ酸配列において1以上のアミノ酸が欠失、置換、または付加されたアミノ酸配列を有するポリペプチドは、部位特異的変異導入法[Molecular Cloning,A Laboratory Manual,Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)、Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons (1987-1997)、Nucleic Acids Research, 10, 6487 (1982)、Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 79, 6409 (1982)、Gene, 34, 315 (1985)、Nucleic Acids Research, 13, 4431 (1985)、Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 82, 488 (1985)]などを用いて、例えば配列番号1で示されるアミノ酸配列を有するポリペプチドをコードするDNAに部位特異的変異を導入することにより得ることができる。欠失、置換または付加されるアミノ酸の数は特に限定されないが、好ましくは1個～数十個、例えば、1～20個、より好ましくは1個～数個、例えば、1～5個のアミノ酸である。
　CD4をコードする遺伝子としては、配列番号2またはEMBLアクセッション番号M12807で示される塩基配列があげられる。配列番号2またはEMBLアクセッション番号M12807で示される塩基配列において、1以上の塩基が欠失、置換または付加された塩基配列からなり、かつCD4の機能を有するポリペプチドをコードするDNAを含む遺伝子、配列番号2またはEMBLアクセッション番号M12807で示される塩基配列と少なくとも60％以上の相同性を有する塩基配列、好ましくは80％以上の相同性を有する塩基配列、さらに好ましくは95％以上の相同性を有する塩基配列からなり、かつCD4の機能を有するポリペプチドをコードするDNAを含む遺伝子、ならびに配列番号2またはEMBLアクセッション番号M12807で示される塩基配列を有するDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするDNAからなり、かつCD4の機能を有するポリペプチドをコードするDNAを含む遺伝子なども本発明のCD4をコードする遺伝子に包含される。
　ストリンジェントな条件下でハイブリダイズするDNAとしては、配列番号2またはEMBLアクセッション番号M12807で示される塩基配列を有するDNAをプローブに用いた、コロニー・ハイブリダイゼーション法、プラーク・ハイブリダイゼーション法、サザンブロット・ハイブリダイゼーション法、またはDNAマイクロアレイ法などにより得られるハイブリダイズ可能なDNAを意味し、具体的には、ハイブリダイズしたコロニーあるいはプラーク由来のDNA、または該配列を有するPCR産物あるいはオリゴDNAを固定化したフィルターまたはスライドガラスを用いて、0．7～1．0mol/Lの塩化ナトリウム存在下、65℃でハイブリダイゼーション[Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)、Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons (1987-1997)、DNA Cloning 1: Core Techniques, A Practical Approach, Second Edition, Oxford University, (1995)]を行った後、0．1～2倍濃度のSSC溶液（1倍濃度のSSC溶液の組成は、150mmol/L塩化ナトリウム、15mmol/Lクエン酸ナトリウムよりなる）を用い、65℃条件下でフィルターまたはスライドグラスを洗浄することにより同定できるDNAをあげることができる。ハイブリダイズ可能なDNAとしては、配列番号2またはEMBLアクセッション番号M12807で示される塩基配列と少なくとも60％以上の相同性を有するDNA、好ましくは80％以上の相同性を有するDNA、さらに好ましくは95％以上の相同性を有するDNAをあげることができる。
　真核生物の蛋白質をコードする遺伝子の塩基配列には、しばしば遺伝子の多型が認められる。本発明において用いられる遺伝子に、このような多型によって塩基配列に小規模な変異を生じた遺伝子も、本発明のCD4をコードする遺伝子に包含される。
　本発明における相同性の数値は、特に明示した場合を除き、当業者に公知の相同性検索プログラムを用いて算出される数値であってよいが、塩基配列については、BLAST[J. Mol. Biol., 215, 403 (1990)]においてデフォルトのパラメータを用いて算出される数値など、アミノ酸配列については、BLAST2[Nucleic Acids Res.,25, 3389 (1997)、Genome Res., 7, 649 (1997)、http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Education/BLASTinfo/information3.html]においてデフォルトのパラメータを用いて算出される数値などがあげられる。
　デフォルトのパラメータとしては、G（Cost to open gap）が塩基配列の場合は5、アミノ酸配列の場合は11、-E（Cost to extend gap）が塩基配列の場合は2、アミノ酸配列の場合は1、-q （Penalty for nucleotide mismatch）が-3、-r（reward for nucleotide match）が1、-e（expect value）が10、-W（wordsize）が塩基配列の場合は11残基、アミノ酸配列の場合は3残基、-y[Dropoff（X）for blast extensions in bits]がblastnの場合は20、blastn以外のプログラムでは7、-X（X dropoff value for gapped alignment in bits）が15および-Z（final X dropoff value for gapped alignment in bits）がblastn　の場合は50、blastn以外のプログラムでは25である（http：//www．ncbi．nlm．nih．gov/blast/html/blastcgihelp．html）。
　配列番号1またはEMBLアクセッション番号M12807で示されるアミノ酸配列の部分配列からなるポリペプチドは、当業者に公知の方法によって作製することができ、例えば、配列番号2で示されるアミノ酸配列をコードするDNAの一部を欠失させ、これを含む発現ベクターを導入した形質転換体を培養することにより作製することができる。また、上記の方法で作製されるポリペプチドまたはDNAに基づいて、上記と同様の方法により、配列番号1またはEMBLアクセッション番号M12807で示されるアミノ酸配列の部分配列において1以上のアミノ酸が欠失、置換または付加されたアミノ酸配列を有するポリペプチドを得ることができる。さらに、配列番号1またはEMBLアクセッション番号M12807で示されるアミノ酸配列の部分配列からなるポリペプチド、または配列番号1またはEMBLアクセッション番号M12807で示されるアミノ酸配列の部分配列において1以上のアミノ酸が欠失、置換あるいは付加されたアミノ酸配列を有するポリペプチドは、フルオレニルメチルオキシカルボニル（Fmoc）法、t-ブチルオキシカルボニル（tBoc）法などの化学合成法によって製造することもできる。
　本発明におけるCD4の細胞外領域としては、例えば配列番号1で示される該ポリペプチドのアミノ酸配列を公知の膜貫通領域予測プログラムSOSUI（http：//bp．nuap．nagoya-u．ac．jp/SOSUI/SOSUI＿submit．）、TMHMM ver．2（http：//www．cbs．dtu．dk/services/TMHMM-2．0/）またはExPASy Proteomics Server（http：//Ca．expasy．org/）などを用いて予測された領域などがあげられる。具体的には、SOSUIにおいて予測される細胞外ドメインであるN末より394番目までがあげられる。細胞外ドメインは、D1～D4のイムノグロブリンスーパーファミリードメインを有しており、いずれのドメインも含まれる。
　本発明におけるCD4の細胞外領域としては、配列番号1またはEMBLアクセッション番号M12807で示されるアミノ酸配列を有するCD4の細胞外領域が天然状態でとりうる構造と同等の構造を有していればいずれの構造でもよい。CD4の細胞外領域が天然状態でとりうる構造とは、細胞膜上に発現しているCD4の天然型の立体構造のことをいう。
　本発明においてCD4の機能としては、抗原提示細胞上に発現しているMHCクラスIIと抗原とが結合した複合体と、T細胞上に発現しているT細胞受容体を介して結合する際に、T細胞受容体の共因子として作用することにより、T細胞の活性化または分化を引き起こすことをいう。また、CD4の機能としては、T細胞の細胞膜上に発現するCD4が、ヒト免疫不全ウイルス（HIV）のエンベロープタンパク質の1つであるgp120と結合することで、HIVがT細胞へ感染する過程に関与することもあげられる。
　本発明の抗体またはその抗体断片が、CD4細胞外領域に結合することは、固相サンドイッチ法などを用いたラジオイムノアッセイ、または酵素免疫測定法（ELISA）などを用いたCD4を発現した細胞に対する公知の免疫学的検出法、好ましくは蛍光細胞染色法などの特定の抗原を発現した細胞と特定抗原に対する抗体の結合性を調べることができる方法により確認することができる。例えば、FMAT8100HTSシステム（アプライドバイオシステム社製）などを用いる蛍光抗体染色法[Cancer Immunol.Immunother., 36, 373 (1993)]、フローサイトメトリーを用いる蛍光細胞染色法、またはBiacoreシステム（ジーイーヘルスケア社製）などを用いた表面プラズモン共鳴などの方法があげられる。また、公知の免疫学的検出法[Monoclonal Antibodies - Principles and practice, Third edition,Academic Press (1996)、Antibodies-A Laboratory Manual , Cold Spring Harbor Laboratory (1988)、単クローン抗体実験マニュアル，　講談社サイエンティフィック （1987）]などを組み合わせて確認することもできる。
　CD4を発現した細胞としては、該CD4を発現していればいずれの細胞でもよく、例えばヒト体内に天然に存在する細胞、ヒト体内に天然に存在する細胞から樹立された細胞株、または遺伝子組換え技術により得られた細胞などがあげられる。
　ヒト体内に天然に存在する細胞としては、自己免疫疾患患者、アレルギー患者および癌患者体内において該ポリペプチドが発現している細胞があげられ、例えば、バイオプシーなどで得られた腫瘍細胞のうちで該CD4が発現している細胞などがあげられる。
　ヒト体内に天然に存在する細胞から樹立された細胞株としては、上記の癌患者から得られた該CD4が発現している細胞を株化して得られた細胞株のうち、該CD4を発現している細胞株があげられ、例えば、ヒトから樹立された細胞株であるヒトT細胞リンパ腫細胞株HPB-ALL[DSMZ番号：ACC483]またはHUT78（ATCC番号：TIB162）などがあげられる。
　遺伝子組換え技術により得られた細胞としては、具体的には、該CD4をコードするcDNAを含む発現ベクターを昆虫細胞または動物細胞などに導入することにより得られる、該CD4を発現した細胞などがあげられる。
　本発明の抗体としては、抗体のCD4に対する解離定数（以下、KDと記す）が1×10-9M以下であり、高いアフィニティーでヒトCD4の細胞外領域に結合し、かつ高いADCC活性を有するヒトCD4に対するモノクローナル抗体および該抗体断片があげられる。
　また、本発明の抗体としては、抗体の抗原に対する解離定数KDが1×10-9M以下であり、高いアフィニティーでヒトCD4の細胞外領域に結合し、高いADCC活性を有し、かつ高い補体依存性細胞傷害活性（complement-dependent cellular cytotoxicity、CDC活性）を有するモノクローナル抗体および該抗体断片があげられる。本発明の抗体としては、ヒトCD4を発現しているヒト癌細胞細胞株に対してCDC活性を有するモノクローナル抗体および該抗体断片も含まれる。
　本発明においてモノクローナル抗体としては、ハイブリドーマにより生産される抗体、または抗体遺伝子を含む発現ベクターで形質転換した形質転換体により生産される遺伝子組換え抗体をあげることができる。
　モノクローナル抗体とは、単一クローンの抗体産生細胞が分泌する抗体であり、ただ一つのエピトープ（抗原決定基ともいう）を認識し、モノクローナル抗体を構成するアミノ酸配列（1次構造）が均一である。
　本発明において、モノクローナル抗体は、2本のH鎖および2本のL鎖からなるヘテロテトラマーからなる構造を有し、H鎖はH鎖可変領域（以下、VHと記す）およびH鎖定常領域（以下、CHと記す）、L鎖はL鎖可変領域（以下、VLと記す）およびL鎖定常領域（CL）からなる。更に、CHは、CH1ドメイン、ヒンジドメイン、CH2ドメインおよびCH3ドメインの4ドメインからなる。また、CH2ドメインおよびCH3ドメインを合わせて、抗体のFc領域、Fcドメインまたは単にFcと定義される。
　エピトープとは、モノクローナル抗体が認識し、結合する単一のアミノ酸配列、アミノ酸配列からなる立体構造、糖鎖が結合したアミノ酸配列および糖鎖が結合したアミノ酸配列からなる立体構造などがあげられる。本発明のモノクローナル抗体が認識するエピトープとして、好ましくはCD4の細胞外領域、配列番号1で示されるアミノ酸配列の1～394番目のアミノ酸配列からなるエピトープ、より好ましくはCD4の細胞外領域のD1またはD2ドメインからなるエピトープ、またはCD4の細胞外領域の細胞膜に近いD3またはD4ドメインからなるエピトープなどをあげることができる。
　本発明において、CD4に高いアフィニティーで結合する抗体とは、治療用抗体として十分なアフィニティーを有する抗体であり、好ましくは解離定数KDが1×10-9M以下、より好ましくは7×10-10M以下、さらに好ましくは2×10-10M以下のアフィニティーでCD4に結合することをいう。既に臨床試験が実施されているZanolimumab（6G5）は、解離定数KDが7．1×10-9Mのアフィニティーであり、高い治療効果を示していることから、本発明の抗体は、更に高い治療効果を示すことができる。
　アフィニティーとは、反応速度論的な解析により測定されるものであり、例えばBiacore　T100（GEヘルスケアバイオサイエンス社製）などを用いて測定することができる。
　本発明において、解離が遅いとは、Biacore T100において算出される抗体の解離速度定数kdの値が、より小さな値を示すことである。解離速度定数が小さいことは、抗体が抗原を発現する細胞から解離しにくいことを示しており、細胞表面上に結合する抗体量を増加させることで抗体の薬効を延長させ、結果的に高い薬効を期待することができる。解離速度定数kdは、例えばBiacore T100（GEヘルスケアバイオサイエンス社製）を用いて測定され、付属ソフトウエアBiacore T100 evaluation software（Biacore社製）により算出することができる。
　本発明において、高いADCC活性を有する抗体とは、CD4発現細胞に対して、同時に複数の抗体のADCC活性を、公知の測定方法[Cancer Immunol. Immunother., 36, 373 （1993）]を用いて測定した場合、ADCC活性を有する事が報告されている抗CD4抗体6G5およびCE9．1と比べて、より高いADCC活性を有する抗体をいう。
　ADCC活性とは、標的細胞上の抗原に結合した抗体が、抗体のFc領域を介して免疫細胞のFc受容体と結合することで免疫細胞（ナチュラルキラー細胞など）を活性化し、標的細胞を傷害する活性をいう。
　Fc受容体（以下、FcRと記すこともある）とは、抗体のFc領域に結合する受容体であり、抗体の結合によりさまざまなエフェクター活性を誘導する。FcRは抗体のサブクラスに対応しており、IgG、IgE、IgA、IgMはそれぞれFcγR、FcεR、FcαR、FcμRに特異的に結合する。更にFcγRには、FcγRI（CD64）、FcγRII（CD32）およびFcγRIII（CD16）のサブタイプが存在し、ぞれぞれFcγRIA、FcγRIB、FcγRIC、FcγRIIA、FcγRIIB、FcγRIIC、FcγRIIIA、FcγRIIIBのアイソフォームが存在する。これらの異なるFcγRは異なる細胞上に存在している(Annu. Rev. Immunol. 9:457-492(1991))。ヒトにおいては、FcγRIIIBは好中球に特異的に発現しており、FcγRIIIAは、単球、Natural　Killer細胞（NK細胞）および一部のT細胞に発現している。FcγRIIIAを介した抗体の結合は、NK細胞依存的なADCC活性を誘導する。
　本発明において、高いCDC活性を有する抗体とは、CD4発現細胞に対して、同時に複数の抗体のCDC活性を、ヒト補体を用いて公知のCDC測定方法[Cancer Immunol. Immunother., 36, 373 (1993)]を用いて測定した場合、既存の抗CD4抗体と比べて、より高いCDC活性を有する抗体である。更に好ましくは、ヒト体内に天然に存在するCD4発現細胞あるいはCD4陽性癌細胞株に対して、上述と同様にして抗体のCDC活性を測定した場合、既存の抗CD4抗体と比べて、高いCDC活性を有する抗体である。より具体的には、既存の抗CD4抗体6G5やOKT4に比べ、同一の実験系においてより強いCDC活性を示すことである。
　CDC活性とは標的細胞上の抗原に結合した抗体が血液中の補体関連タンパク質群からなる一連のカスケード（補体活性化経路）を活性化し、標的細胞を傷害する活性をいう。また、補体の活性化により生じるタンパク質断片により免疫細胞の遊走、活性化を誘導することができる。
　本発明の抗体は、ヒトCD4の細胞外領域のD1またはD2、またはヒトCD4の細胞外領域の細胞膜に近いD3またはD4ドメインのいずれかに結合するモノクローナル抗体および該抗体断片があげられる。
　本発明の抗体のうち、D1またはD2ドメインを認識する抗体としては、抗体の重鎖可変領域（以下、VHと記す）のCDR1～3が配列番号33～35で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体の軽鎖可変領域（以下、VLと記す）のCDR1～3が配列番号36～38で表されるアミノ酸配列であるモノクローナル抗体、また本発明の具体的な抗体のうち、D3またはD4ドメインを認識する抗体としては、抗体のVHのCDR1～3が配列番号51～53で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のVLのCDR1～3が配列番号54～56で表されるアミノ酸配列であるモノクローナル抗体、抗体のVHのCDR1～3が配列番号27～29で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のVL鎖のCDR1～3が配列番号30～32で表されるアミノ酸配列であるモノクローナル抗体、抗体のVHのCDR1～3が配列番号39～41で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のVL鎖のCDR1～3が配列番号42～44で表されるアミノ酸配列であるモノクローナル抗体および抗体のVHのCDR1～3が配列番号45～47で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のVL鎖のCDR1～3が配列番号48～50で表されるアミノ酸配列であるモノクローナル抗体があげられる。
　また、本発明のモノクローナル抗体として具体的には、抗体のVHが配列番号16で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のVLが配列番号26で表されるアミノ酸配列であるモノクローナル抗体、抗体のVHが配列番号12で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のVLが配列番号22で表されるアミノ酸配列であるモノクローナル抗体、抗体のVHが配列番号13で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のVLが配列番号23で表されるアミノ酸配列であるモノクローナル抗体、抗体のVHが配列番号14で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のVLが配列番号24で表されるアミノ酸配列であるモノクローナル抗体および抗体のVHが配列番号15で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のVLが配列番号25で表されるアミノ酸配列であるモノクローナル抗体があげられる。
　更に、本発明のモノクローナル抗体としては、上述のモノクローナル抗体と競合して、CD4の細胞外領域に結合するモノクローナル抗体および上述のモノクローナル抗体が結合するCD4の細胞外領域上に存在するエピトープと、同じエピトープに結合するモノクローナル抗体をあげることができる。
　さらに、本発明には、CD4に結合しアポトーシス誘導活性を有するモノクローナル抗体およびその抗体断片が包含される。
　ハイブリドーマは、例えば上記のCD4を発現した細胞などを抗原として調製し、該抗原を免疫した動物より抗原特異性を有する抗体生産細胞を誘導し、さらに、該抗体生産細胞と骨髄腫細胞とを融合させることにより、調製することができる。該ハイブリドーマを培養するか、あるいは該ハイブリドーマ細胞を動物に投与して該動物を腹水癌化させ、該培養液または腹水を分離、精製することにより抗CD4モノクローナル抗体を取得することができる。
　抗原を免疫する動物としてはハイブリドーマを作製することが可能であれば、いかなるものも用いることができるが、好ましくはマウス、ラット、ハムスター、ニワトリまたはラビットなどが用いられる。また、このような動物から抗体産生能を有する細胞を取得し、該細胞にin vitroで免疫を施した後に、骨髄腫細胞と融合して作製したハイブリドーマが生産する抗体なども本発明の抗体に包含される。
　本発明において遺伝子組換え抗体としては、ヒト型キメラ抗体、ヒト化抗体［ヒト型相補性決定領域（complementarity　determining　region；CDRと記す）移植抗体ともいう］、ヒト抗体または該抗体断片など、遺伝子組換えにより製造される抗体を包含する。遺伝子組換え抗体において、モノクローナル抗体の特徴を有し、抗原性が低く、血中半減期が延長されたものは、治療薬として好ましい。遺伝子組換え抗体は、例えば上記本発明のモノクローナル抗体を遺伝子組換え技術を用いて改変したものがあげられる。
　本発明の遺伝子組換え抗体のCHとしては、ヒト由来のものが望ましく、CH1ドメイン、ヒンジドメイン、CH2ドメインおよびCH3ドメインを含む。
　また本発明の遺伝子組換え抗体のFc領域としては、FcγRに対する結合活性を有していれば、1アミノ酸残基以上のアミノ酸残基改変を含んでいてもよい。
　ヒト型キメラ抗体は、ヒト以外の動物の抗体の重鎖可変領域VHおよび軽鎖可変領域VLとヒト抗体のCHおよびCLとからなる抗体をいう。本発明のヒト型キメラ抗体は、CD4を特異的に認識し、かつ該細胞外領域に結合するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマより、VHおよびVLをコードするcDNAを取得し、ヒト抗体のCHおよびCLをコードする遺伝子を有する動物細胞用発現ベクターにそれぞれ挿入してヒト型キメラ抗体発現ベクターを構築し、動物細胞へ導入することにより発現させ、製造することができる。
　ヒト型キメラ抗体のCHとしては、ヒトイムノグロブリン（以下、hIgと表記する）に属すればいかなるものでもよいが、好ましくはhIgGクラスのものが用いられ、さらにhIgGクラスに属するhIgG1、hIgG2、hIgG3、hIgG4といったサブクラスのいずれも用いることができる。また、ヒト型キメラ抗体のCLとしては、hIgに属すればいずれのものでもよく、κクラスあるいはλクラスのものを用いることができる。
　本発明のヒト型キメラ抗体として具体的には、抗体のVHが配列番号16で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のVLが配列番号26で表されるアミノ酸配列であるキメラ抗体、抗体のVHが配列番号12で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のVLが配列番号22で表されるアミノ酸配列であるキメラ抗体、抗体のVHが配列番号13で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のVLが配列番号23で表されるアミノ酸配列であるキメラ抗体、抗体のVHが配列番号14で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のVLが配列番号24で表されるアミノ酸配列であるキメラ抗体および抗体のVHが配列番号15で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のVLが配列番号25で表されるアミノ酸配列であるキメラ抗体があげられる。
　更に、本発明のキメラ抗体としては、上述のキメラ抗体と競合して、CD4の細胞外領域に結合するキメラ抗体および上述のキメラ抗体が結合するCD4の細胞外領域上に存在するエピトープと、同じエピトープに結合するキメラ抗体をあげることができる。
　ヒト化抗体は、ヒト以外の動物の抗体のVHおよびVLのCDRのアミノ酸配列をヒト抗体のVHおよびVLの適切な位置に移植した抗体をいう。本発明のヒト化抗体は、CD4を特異的に認識し、かつ該細胞外領域に結合するヒト以外の動物のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマから産生されるヒト以外の動物の抗体のVHおよびVLのCDRのアミノ酸配列を任意のヒト抗体のVHおよびVLのFRに移植したV領域をコードするcDNAを構築し、ヒト抗体のCHおよびCLをコードする遺伝子を有する動物細胞用発現ベクターにそれぞれ挿入してヒト化抗体発現ベクターを構築し、動物細胞へ導入することにより発現させ、製造することができる。
　ヒト化抗体のCHとしては、hIgに属すればいかなるものでもよいが、好ましくはhIgGクラスのものが用いられ、さらにhIgGクラスに属するhIgG1、hIgG2、hIgG3、またはhIgG4といったサブクラスのいずれも用いることができる。また、ヒト化抗体のCLとしては、hIgに属すればいずれのものでもよく、κクラスあるいはλクラスのものを用いることができる。
　本発明のヒト化抗体としては、抗体のVHのCDR1～3が配列番号51～53で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のVLのCDR1～3が配列番号54～56で表されるアミノ酸配列であるヒト化抗体、抗体のVHのCDR1～3が配列番号27～29で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のL鎖のCDR1～3が配列番号30～32で表されるアミノ酸配列であるヒト化抗体、抗体のVHのCDR1～3が配列番号33～35で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のL鎖のCDR1～3が配列番号36～38で表されるアミノ酸配列であるヒト化抗体、抗体のVHのCDR1～3が配列番号39～41で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のL鎖のCDR1～3が配列番号42～44で表されるアミノ酸配列であるヒト化抗体および抗体のVHのCDR1～3が配列番号45～47で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のL鎖のCDR1～3が配列番号48～50で表されるアミノ酸配列であるヒト化抗体があげられる。
　更に、本発明のヒト化抗体としては、具体的には以下に示すヒト化抗体があげられる。
　抗体のVHのアミノ酸配列については、抗体のVHが配列番号77で表されるアミノ酸配列中の18番目のLeu、93番目のVal、97番目のAlaおよび114番目のThrが、他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列を有するヒト化抗体。　
　好ましくは抗体のVHが配列番号77で表されるアミノ酸配列中の93番目のVal、97番目のAlaおよび114番目のThrが、他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列を有するヒト化抗体。
　好ましくは抗体のVHが配列番号77で表されるアミノ酸配列中の18番目のLeu、97番目のAlaおよび114番目のThrが、他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列を有するヒト化抗体。
　好ましくは97番目のAlaおよび114番目のThrが、他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列を有するヒト化抗体などがあげられる。
　上記のアミノ酸改変の結果得られる抗体VHのアミノ酸配列としては、配列番号77で表されるアミノ酸配列中の18番目のLeuをMetに、93番目のValをThrに、97番目のAlaをThrに、および114番目のThrをIleに置換する改変から選ばれる少なくとも1つの改変が導入されたアミノ酸配列があげられる。
　4個の改変が導入されたVHのアミノ酸配列としては、具体的には、配列番号77で表されるアミノ酸配列中の18番目のLeuをMetに、93番目のValをThrに、97番目のAlaをThrに、および114番目のThrをIleに置換したアミノ酸配列があげられる。
　3個の改変が導入されたVHのアミノ酸配列としては、具体的には、配列番号77で表されるアミノ酸配列中の
93番目のValをThrに、97番目のAlaをThrに、および114番目のThrをIleに置換したアミノ酸配列、
18番目のLeuをMetに、97番目のAlaをThrに、および114番目のThrをIleに置換したアミノ酸配列、
18番目のLeuをMetに、93番目のValをThrに、および114番目のThrをIleに置換したアミノ酸配列、ならびに
18番目のLeuをMetに、93番目のValをThrに、および97番目のAlaをThrに置換したアミノ酸配列
などがあげられる。
　2個の改変が導入されたVHのアミノ酸配列としては、具体的には、配列番号77で表されるアミノ酸配列中の
18番目のLeuをMetに、および93番目のValをThrに置換したアミノ酸配列、
18番目のLeuをMetに、および97番目のAlaをThrに置換したアミノ酸配列、
18番目のLeuをMetに、および114番目のThrをIleに置換したアミノ酸配列、
93番目のValをThrに、および97番目のAlaをThrに置換したアミノ酸配列、
93番目のValをThrに、および114番目のThrをIleに置換したアミノ酸配列、ならびに
97番目のAlaをThrに、および114番目のThrをIleに置換したアミノ酸配列
などがあげられる。
　1個の改変が導入されたVHのアミノ酸配列としては、具体的には、配列番号77で表されるアミノ酸配列中の
18番目のLeuをMetに置換したアミノ酸配列、93番目のValをThrに置換したアミノ酸配列、97番目のAlaをThrに置換したアミノ酸配列、および114番目のThrをIleに置換したアミノ酸配列、があげられる。
　抗体のVLについては、例えば配列番号78で表されるアミノ酸配列中の13番目のAla、15番目のVal、19番目のVal、47番目のAla、62番目のVal、および82番目のLeuが、他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列があげられる。
　好ましくは、配列番号78で表されるアミノ酸配列中の13番目のAla、19番目のVal、62番目のVal、および82番目のLeuが、他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列があげられる。
　上記のアミノ酸改変の結果得られるVLのアミノ酸配列としては、配列番号78で表されるアミノ酸配列中の13番目のAlaをValに、15番目のValをLeuに、19番目のValをAlaに、47番目のAlaをGlnに、62番目のValをIleに、および82番目のLeuをValに置換する改変から選ばれる少なくとも1つの改変が導入されたアミノ酸配列があげられる。
　6個の改変が導入されたVLのアミノ酸配列としては、具体的には、配列番号78で表されるアミノ酸配列中の13番目のAlaをValに、15番目のValをLeuに、19番目のValをAlaに、47番目のAlaをGlnに、62番目のValをIleに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列などがあげられる。
　5個の改変が導入されたVLのアミノ酸配列としては、具体的には、配列番号78で表されるアミノ酸配列中の
13番目のAlaをValに、15番目のValをLeuに、19番目のValをAlaに、47番目のAlaをGlnに、および62番目のValをIleに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、15番目のValをLeuに、19番目のValをAlaに、47番目のAlaをGlnに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、15番目のValをLeuに、19番目のValをAlaに、62番目のValをIleに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、15番目のValをLeuに、47番目のAlaをGlnに、62番目のValをIleに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、19番目のValをAlaに、47番目のAlaをGlnに、62番目のValをIleに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、ならびに
15番目のValをLeuに、19番目のValをAlaに、47番目のAlaをGlnに、62番目のValをIleに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
などがあげられる。
　4個の改変が導入されたVLのアミノ酸配列としては、具体的には、配列番号78で表されるアミノ酸配列中の
13番目のAlaをValに、15番目のValをLeuに、19番目のValをAlaに、および47番目のAlaをGlnに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、15番目のValをLeuに、19番目のValをAlaに、および62番目のValをIleに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、15番目のValをLeuに、19番目のValをAlaに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、15番目のValをLeuに、47番目のAlaをGlnに、および62番目のValをIleに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、15番目のValをLeuに、47番目のAlaをGlnに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、15番目のValをLeuに、62番目のValをIleに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、19番目のValをAlaに、47番目のAlaをGlnに、および62番目のValをIleに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、19番目のValをAlaに、47番目のAlaをGlnに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列
13番目のAlaをValに、19番目のValをAlaに、62番目のValをIleに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
15番目のValをLeuに、19番目のValをAlaに、47番目のAlaをGlnに、および62番目のValをIleに置換したアミノ酸配列、
15番目のValをLeuに、19番目のValをAlaに、47番目のAlaをGlnに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
15番目のValをLeuに、19番目のValをAlaに、62番目のValをIleに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、ならびに
19番目のValをAlaに、47番目のAlaをGlnに、62番目のValをIleに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
などがあげられる。
　3個の改変が導入されたVLのアミノ酸配列としては、具体的には、配列番号78で表されるアミノ酸配列中の
13番目のAlaをValに、15番目のValをLeuに、および19番目のValをAlaに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、15番目のValをLeuに、および47番目のAlaをGlnに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、15番目のValをLeuに、および62番目のValをIleに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、15番目のValをLeuに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、19番目のValをAlaに、および47番目のAlaをGlnに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、19番目のValをAlaに、および62番目のValをIleに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、19番目のValをAlaに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、47番目のAlaをGlnに、および62番目のValをIleに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、47番目のAlaをGlnに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
15番目のValをLeuに、19番目のValをAlaに、および47番目のAlaをGlnに置換したアミノ酸配列、
15番目のValをLeuに、19番目のValをAlaに、および62番目のValをIleに置換したアミノ酸配列、
15番目のValをLeuに、19番目のValをAlaに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
15番目のValをLeuに、47番目のAlaをGlnに、および62番目のValをIleに置換したアミノ酸配列、
15番目のValをLeuに、47番目のAlaをGlnに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
19番目のValをAlaに、47番目のAlaをGlnに、および62番目のValをIleに置換したアミノ酸配列、
19番目のValをAlaに、47番目のAlaをGlnに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、ならびに
47番目のAlaをGlnに、62番目のValをIleに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
などがあげられる。
　2個の改変が導入されたVLのアミノ酸配列としては、具体的には、配列番号78で表されるアミノ酸配列中の
13番目のAlaをValに、および15番目のValをLeuに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、および19番目のValをAlaに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、および47番目のAlaをGlnに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、および62番目のValをIleに置換したアミノ酸配列、
13番目のAlaをValに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
15番目のValをLeuに、および19番目のValをAlaに置換したアミノ酸配列、
15番目のValをLeuに、および47番目のAlaをGlnに置換したアミノ酸配列、
15番目のValをLeuに、および62番目のValをIleに置換したアミノ酸配列、
15番目のValをLeuに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
19番目のValをAlaに、および47番目のAlaをGlnに置換したアミノ酸配列、
19番目のValをAlaに、および62番目のValをIleに置換したアミノ酸配列、
19番目のValをAlaに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
47番目のAlaをGlnに、および62番目のValをIleに置換したアミノ酸配列、
47番目のAlaをGlnに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、ならびに
62番目のValをIleに、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、
などがあげられる。
　1個の改変が導入されたVLのアミノ酸配列としては、具体的には、配列番号78で表されるアミノ酸配列中の
13番目のAlaをValに置換したアミノ酸配列、15番目のValをLeuに置換したアミノ酸配列、19番目のValをAlaに置換したアミノ酸配列、47番目のAlaをGlnに置換したアミノ酸配列、62番目のValをIleに置換したアミノ酸配列、および82番目のLeuをValに置換したアミノ酸配列、などがあげられる。
　また、本発明のヒト抗体の具体例としては、VHが配列番号77、96、98および100から選ばれるアミノ酸配列であり、および/またはVLが配列番号78および102から選ばれるアミノ酸配列であるヒト化抗体があげられる。
　更に、本発明のヒト化抗体の具体例としてより具体的には、可変領域のH鎖が配列番号77および/または可変領域のL鎖が配列番号78で表されるアミノ酸配列を有するヒト化抗体、VHが配列番号96および/またはVLが配列番号78で表されるアミノ酸配列を有するヒト化抗体、VHが配列番号98および/またはVLが配列番号78で表されるアミノ酸配列を有するヒト化抗体、VHが配列番号100および/またはVLが配列番号78で表されるアミノ酸配列を有するヒト化抗体、ならびにVHが配列番号100および/またはVLが配列番号102で表されるアミノ酸配列を有するヒト化抗体などがあげられる。
　更に、本発明のヒト化抗体としては、上述のヒト化抗体と競合して、CD4の細胞外領域に結合するヒト化抗体および上述のヒト化抗体が結合するCD4の細胞外領域上に存在するエピトープと、同じエピトープに結合するヒト化抗体をあげることができる。
　ヒト抗体は、元来、ヒト体内に天然に存在する抗体をいうが、最近の遺伝子工学的、細胞工学的、発生工学的な技術の進歩により作製されたヒト抗体ファージライブラリーおよびヒト抗体産生トランスジェニック動物から得られる抗体なども含まれる。
　ヒト体内に天然に存在する抗体は、例えば、ヒト末梢血リンパ球を単離し、EBウイルスなどを感染させ不死化し、クローニングすることにより、該抗体を産生するリンパ球を培養でき、培養上清中より該抗体を精製することができる。
　ヒト抗体ファージライブラリーは、ヒトB細胞から調製した抗体遺伝子をファージ遺伝子に挿入することによりFab、scFvなどの抗体断片をファージ表面に発現させたライブラリーである。該ライブラリーより、抗原を固定化した基質に対する結合活性を指標として所望の抗原結合活性を有する抗体断片を表面に発現しているファージを回収することができる。該抗体断片は、さらに、遺伝子工学的手法により2本の完全なH鎖および2本の完全なL鎖からなるヒト抗体分子へも変換することができる。
　ヒト抗体産生トランスジェニック動物は、ヒト抗体遺伝子が細胞内に組込まれた動物を意味する。具体的には、例えば、マウスES細胞へヒト抗体遺伝子を導入し、該ES細胞をマウスの初期胚へ移植後、発生させることによりヒト抗体産生トランスジェニックマウスを作製することができる。ヒト抗体産生トランスジェニック動物からのヒト抗体は、通常のヒト以外の動物で行われているハイブリドーマ作製方法を用い、ヒト抗体産生ハイブリドーマを取得し、培養することで培養上清中にヒト抗体を産生蓄積させることにより作製できる。
　上述の抗体または抗体断片を構成するアミノ酸配列において、1つ以上のアミノ酸が欠失、付加、置換または挿入され、かつ上述の抗体またはその抗体断片と同様な活性を有するモノクローナル抗体またはその抗体断片も、本発明のモノクローナル抗体またはその抗体断片に包含される。
　欠失、置換、挿入および/または付加されるアミノ酸の数は1個以上でありその数は特に限定されないが、部位特異的変異導入法[Molecular Cloning 2nd Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)、Current protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons (1987-1997)、Nucleic Acids Research, 10, 6487 (1982)、Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 79, 6409 (1982)、Gene, 34, 315 (1985)、Nucleic Acids Research, 13, 4431 (1985)、Proc. Natl. Acad. Sci USA, 82, 488 (1985)]などの周知の技術により、欠失、置換もしくは付加できる程度の数である。例えば、1～数十個、好ましくは1～20個、より好ましくは1～10個、さらに好ましくは1～5個である。
　上記の抗体のアミノ酸配列において1つ以上のアミノ酸残基が欠失、置換、挿入または付加されたとは、次のことを示す。即ち、同一配列中の任意、かつ1もしくは複数のアミノ酸配列中において、1または複数のアミノ酸残基の欠失、置換、挿入または付加があることを意味する。また、欠失、置換、挿入または付加が同時に生じる場合もあり、置換、挿入または付加されるアミノ酸残基は天然型と非天然型いずれの場合もある。天然型アミノ酸残基としては、L-アラニン、L-アスパラギン、L-アスパラギン酸、L-グルタミン、L-グルタミン酸、グリシン、L-ヒスチジン、L-イソロイシン、L-ロイシン、L-リジン、L-メチオニン、L-フェニルアラニン、L-プロリン、L-セリン、L-スレオニン、L-トリプトファン、L-チロシン、L-バリン、またはL-システインなどがあげられる。
　以下に、相互に置換可能なアミノ酸残基の好ましい例を示す。同一群に含まれるアミノ酸残基は相互に置換可能である。
　A群：ロイシン、イソロイシン、ノルロイシン、バリン、ノルバリン、アラニン、2-アミノブタン酸、メチオニン、O-メチルセリン、t-ブチルグリシン、t-ブチルアラニン、シクロヘキシルアラニン
　B群：アスパラギン酸、グルタミン酸、イソアスパラギン酸、イソグルタミン酸、2-アミノアジピン酸、2-アミノスベリン酸
　C群：アスパラギン、グルタミン
　D群：リジン、アルギニン、オルニチン、2，4-ジアミノブタン酸、2，3-ジアミノプロピオン酸
　E群：プロリン、3-ヒドロキシプロリン、4-ヒドロキシプロリン
　F群：セリン、スレオニン、ホモセリン
　G群：フェニルアラニン、チロシン
　本発明において、抗体断片としては、Fab、F（ab’)2、Fab’、scFv、diabody、dsFvおよびCDRを含むペプチドなどがあげられる。
　Fabは、IgGを蛋白質分解酵素であるパパインで処理して得られる断片のうち（H鎖の224番目のアミノ酸残基で切断される）、H鎖のN末端側約半分とL鎖全体がジスルフィド結合で結合した分子量約5万の抗原結合活性を有する抗体断片である。本発明のFabは、CD4を特異的に認識し、かつ該細胞外領域に結合するモノクローナル抗体をパパインで処理して得ることができる。また、該抗体のFabをコードするDNAを原核生物用発現ベクターあるいは真核生物用発現ベクターに挿入し、該ベクターを原核生物あるいは真核生物へ導入することにより発現させ、Fabを製造することもできる。
　F(ab’)2は、IgGのヒンジ領域の2個のジスルフィド結合の下部を蛋白質分解酵素であるペプシンで分解して得られた、2つのFab領域がヒンジ部分で結合して構成された、分子量約10万の抗原結合活性を有する断片である。本発明のF（ab’）2は、CD4を特異的に認識し、かつ該細胞外領域に結合するモノクローナル抗体をペプシンで処理して得ることができる。また、下記のFab’をチオエーテル結合あるいはジスルフィド結合させ、作製することもできる。
　Fab’は、上記F(ab’)2のヒンジ領域のジスルフィド結合を切断した分子量約5万の抗原結合活性を有する抗体断片である。本発明のFab’は、本発明のCD4を特異的に認識し、かつ該細胞外領域に結合するF(ab’)2をジチオスレイトールなどの還元剤で処理して得ることができる。また、該抗体のFab’断片をコードするDNAを原核生物用発現ベクターあるいは真核生物用発現ベクターに挿入し、該ベクターを原核生物あるいは真核生物へ導入することにより発現させ、Fab’を製造することもできる。
　scFvは、1本のVHと1本のVLとを適当なペプチドリンカー（以下、Pと表記する）を用いて連結した、VH-P-VLないしはVL-P-VHポリペプチドで、抗原結合活性を有する抗体断片である。本発明のscFvは、本発明のCD4を特異的に認識し、かつ該細胞外領域に結合するモノクローナル抗体のVHおよびVLをコードするcDNAを取得し、scFvをコードするDNAを構築し、該DNAを原核生物用発現ベクターあるいは真核生物用発現ベクターに挿入し、該発現ベクターを原核生物あるいは真核生物へ導入することにより発現させ、製造することができる。
　diabodyは、scFvが二量体化した抗体断片で、二価の抗原結合活性を有する抗体断片である。二価の抗原結合活性は、同一であることもできるし、一方を異なる抗原結合活性とすることもできる。本発明のdiabodyは、本発明のCD4を特異的に認識し、かつ該細胞外領域に結合するモノクローナル抗体のVHおよびVLをコードするcDNAを取得し、scFvをコードするDNAをペプチドリンカーのアミノ酸配列の長さが8残基以下となるように構築し、該DNAを原核生物用発現ベクターあるいは真核生物用発現ベクターに挿入し、該発現ベクターを原核生物あるいは真核生物へ導入することにより発現させ、製造することができる。
　dsFvは、VHおよびVL中のそれぞれ1アミノ酸残基をシステイン残基に置換したポリペプチドを該システイン残基間のジスルフィド結合を介して結合させたものをいう。システイン残基に置換するアミノ酸残基は既知の方法[Protein Engineering, 7, 697 (1994)]に従って、抗体の立体構造予測に基づいて選択することができる。本発明のdsFvは、本発明のCD4を特異的に認識し、かつ該細胞外領域に結合するモノクローナル抗体のVHおよびVLをコードするcDNAを取得し、dsFvをコードするDNAを構築し、該DNAを原核生物用発現ベクターあるいは真核生物用発現ベクターに挿入し、該発現ベクターを原核生物あるいは真核生物へ導入することにより発現させ、製造することができる。
　CDRを含むペプチドは、VHまたはVLのCDRの少なくとも1領域以上を含んで構成される。複数のCDRを含むペプチドは、直接または適当なペプチドリンカーを介して結合させることができる。本発明のCDRを含むペプチドは、本発明のCD4を特異的に認識し、かつ該細胞外領域に結合するモノクローナル抗体のVHおよびVLのCDRをコードするDNAを構築し、該DNAを原核生物用発現ベクターあるいは真核生物用発現ベクターに挿入し、該発現ベクターを原核生物あるいは真核生物へ導入することにより発現させ、製造することができる。また、CDRを含むペプチドは、Fmoc法、またはtBoc法などの化学合成法によって製造することもできる。
　本発明のモノクローナル抗体には、本発明のCD4の細胞外領域を特異的に認識し、かつ該細胞外領域に結合するモノクローナル抗体またはその抗体断片に放射性同位元素、低分子の薬剤、高分子の薬剤、蛋白質、または抗体医薬などを化学的あるいは遺伝子工学的に結合させた抗体の誘導体を包含する。
　本発明における、抗体の誘導体は、本発明のCD4の細胞外領域を特異的に認識し、かつ該細胞外領域に結合するモノクローナル抗体またはその抗体断片のH鎖あるいはL鎖のN末端側あるいはC末端側、抗体またはその抗体断片中の適当な置換基あるいは側鎖、さらにはモノクローナル抗体またはその抗体断片中の糖鎖などに、放射性同位元素、低分子の薬剤、高分子の薬剤、免疫賦活剤、蛋白質または抗体医薬などを化学的手法[抗体工学入門，　地人書館　（1994）]により結合させることにより製造することができる。
　また、本発明のCD4の細胞外領域を特異的に認識し、かつ該細胞外領域に結合するモノクローナル抗体または抗体断片をコードするDNAと、結合させたい蛋白質または抗体医薬をコードするDNAを連結させて発現ベクターに挿入し、該発現ベクターを適当な宿主細胞へ導入し、発現させる遺伝子工学的手法より製造することができる。
　放射性同位元素としては、131I、125I、90Y、64Cu、99Tc、77Lu、または211Atなどがあげられる。放射性同位元素は、クロラミンT法などによって抗体に直接結合させることができる。また、放射性同位元素をキレートする物質を抗体に結合させてもよい。キレート剤としては、1-イソチオシアネートベンジル-3-メチルジエチレントリアミンペンタ酢酸（MX-DTPA）などがあげられる。
　低分子の薬剤としては、アルキル化剤、ニトロソウレア剤、代謝拮抗剤、抗生物質、植物アルカロイド、トポイソメラーゼ阻害剤、ホルモン療法剤、ホルモン拮抗剤、アロマターゼ阻害剤、P糖蛋白阻害剤、白金錯体誘導体、M期阻害剤、あるいはキナーゼ阻害剤などの抗癌剤[臨床腫瘍学，　癌と化学療法社　（1996）]、またはハイドロコーチゾン、プレドニゾンなどのステロイド剤、アスピリン、インドメタシンなどの非ステロイド剤、金チオマレート、ペニシラミンなどの免疫調節剤、サイクロフォスファミド、アザチオプリンなどの免疫抑制剤、マレイン酸クロルフェニラミン、あるいはクレマシチンのような抗ヒスタミン剤などの抗炎症剤[炎症と抗炎症療法，　医歯薬出版株式会社　（1982）]などがあげられる。抗癌剤としては、アミフォスチン（エチオール）、シスプラチン、ダカルバジン（DTIC）、ダクチノマイシン、メクロレタミン（ナイトロジェンマスタード）、ストレプトゾシン、シクロフォスファミド、イホスファミド、カルムスチン（BCNU）、ロムスチン（CCNU）、ドキソルビシン（アドリアマイシン）、エピルビシン、ゲムシタビン（ゲムザール）、ダウノルビシン、プロカルバジン、マイトマイシン、シタラビン、エトポシド、メトトレキセート、5-フルオロウラシル、フルオロウラシル、ビンブラスチン、ビンクリスチン、ブレオマイシン、ダウノマイシン、ペプロマイシン、エストラムスチン、パクリタキセル（タキソール）、ドセタキセル（タキソテア）、アルデスロイキン、アスパラギナーゼ、ブスルファン、カルボプラチン、オキサリプラチン、ネダプラチン、クラドリビン、カンプトテシン、10-ヒドロキシ-7-エチル-カンプトテシン（SN38）、フロクスウリジン、フルダラビン、ヒドロキシウレア、イホスファミド、イダルビシン、メスナ、イリノテカン（CPT-11）、ノギテカン、ミトキサントロン、トポテカン、ロイプロリド、メゲストロール、メルファラン、メルカプトプリン、ヒドロキシカルバミド、プリカマイシン、ミトタン、ペガスパラガーゼ、ペントスタチン、ピポブロマン、ストレプトゾシン、タモキシフェン、ゴセレリン、リュープロレニン、フルタミド、テニポシド、テストラクトン、チオグアニン、チオテパ、ウラシルマスタード、ビノレルビン、クロラムブシル、ハイドロコーチゾン、プレドニゾロン、メチルプレドニゾロン、ビンデシン、ニムスチン、セムスチン、カペシタビン、トムデックス、アザシチジン、UFT、オキザロプラチン、ゲフィチニブ（イレッサ）、イマチニブ（STI571）、エルロチニブ、FMS-like tyrosine kinase 3(Flt3)阻害剤、vascular endothelial growth facotr receptor(VEGFR）阻害剤、fibroblast growth factor receptor(FGFR)阻害剤、イレッサ、タルセバなどのepidermal growth factor receptor(EGFR)阻害剤、ラディシコール、17-アリルアミノ-17-デメトキシゲルダナマイシン、ラパマイシン、アムサクリン、オール-トランスレチノイン酸、サリドマイド、アナストロゾール、ファドロゾール、レトロゾール、エキセメスタン、金チオマレート、D-ペニシラミン、ブシラミン、アザチオプリン、ミゾリビン、シクロスポリン、ラパマイシン、ヒドロコルチゾン、ベキサロテン（ターグレチン）、タモキシフェン、デキサメタゾン、プロゲスチン類、エストロゲン類、アナストロゾール（アリミデックス）、ロイプリン、アスピリン、インドメタシン、セレコキシブ、アザチオプリン、ペニシラミン、金チオマレート、マレイン酸クロルフェニラミン、クロロフェニラミン、クレマシチン、トレチノイン、ベキサロテン、砒素、ボルテゾミブ、アロプリノール、カリケアマイシン、イブリツモマブチウキセタン、タルグレチン、オゾガミン、クラリスロマシン、ロイコボリン、イファスファミド、ケトコナゾール、アミノグルテチミド、スラミン、メトトレキセート、マイタンシノイド、またはその誘導体、などがあげられる。
　低分子の薬剤と抗体とを結合させる方法としては、グルタールアルデヒドを介して薬剤と抗体のアミノ基間を結合させる方法、または水溶性カルボジイミドを介して薬剤のアミノ基と抗体のカルボキシル基を結合させる方法などがあげられる。
　高分子の薬剤としては、ポリエチレングリコール（以下、PEGと表記する）、アルブミン、デキストラン、ポリオキシエチレン、スチレンマレイン酸コポリマー、ポリビニルピロリドン、ピランコポリマー、またはヒドロキシプロピルメタクリルアミドなどがあげられる。これらの高分子化合物を抗体または抗体断片に結合させることにより、（1）化学的、物理的あるいは生物的な種々の因子に対する安定性の向上、（2）血中半減期の顕著な延長、（3）免疫原性の消失または抗体産生の抑制、などの効果が期待される[バイオコンジュゲート医薬品，　廣川書店　(1993)]。例えば、PEGと抗体を結合させる方法としては、PEG化修飾試薬と反応させる方法などがあげられる[バイオコンジュゲート医薬品，　廣川書店　(1993)]。PEG化修飾試薬としては、リジンのε-アミノ基への修飾剤（特開昭61-178926）、アスパラギン酸およびグルタミン酸のカルボキシル基への修飾剤（特開昭56-23587）、またはアルギニンのグアニジノ基への修飾剤（特開平2-117920）などがあげられる。
　免疫賦活剤としては、イムノアジュバントとして知られている天然物でもよく、具体例としては、免疫を亢進する薬剤が、β（1→3）グルカン（レンチナン、シゾフィラン）、またはαガラクトシルセラミドなどがあげられる。
　蛋白質としては、NK細胞、マクロファージ、または好中球などの免疫担当細胞を活性化するサイトカインあるいは増殖因子、または毒素蛋白質などがあげられる。
　サイトカインあるいは増殖因子としては、例えば、インターフェロン（以下、INFと記す）-α、INF-β、INF-γ、インターロイキン（以下、ILと記す）-2、IL-12、IL-15、IL-18、IL-21、IL-23、顆粒球コロニー刺激因子（G-CSF）、顆粒球/マクロファージコロニー刺激因子（GM-CSF）、またはマクロファージコロニー刺激因子（M-CSF）などがあげられる。毒素蛋白質としては、リシン、ジフテリアトキシン、またはONTAKなどがあげられ、毒性を調節するためにタンパク質に変異を導入したタンパク毒素も含まれる。
　抗体医薬としては、抗体の結合によりアポトーシスが誘導される抗原、腫瘍の病態形成に関わる抗原または免疫機能を調節する抗原、病変部位の血管新生に関与する抗原に対する抗体があげられる。
　抗体の結合によりアポトーシスが誘導される抗原としては、Cluster　of　differentiation（以下、CDと記載する）19、CD20、CD21、CD22、CD23、CD24、CD37、CD53、CD72、CD73、CD74、CDw75、CDw76、CD77、CDw78、CD79a、CD79b、CD80（B7．1）、CD81、CD82、CD83、CDw84、CD85、CD86（B7．2）、human leukocyte antigen(HLA)-Class II、またはEpidermal Growth Factor Receptor（EGFR）などがあげられる。
　腫瘍の病態形成に関わる抗原または免疫機能を調節する抗体の抗原としてはCD40、CD40リガンド、B7ファミリー分子（CD80、CD86、CD274、B7-DC、B7-H2、B7-H3、またはB7-H4）、B7ファミリー分子のリガンド（CD28、CTLA-4、ICOS、PD-1、またはBTLA）、OX-40、OX-40リガンド、CD137、tumor necrosis factor(TNF)受容体ファミリー分子(DR4、DR5、TNFR1、またはTNFR2)、TNF-related apoptosis-inducing ligand receptor(TRAIL)ファミリー分子、TRAILファミリー分子の受容体ファミリー（TRAIL-R1、TRAIL-R2、TRAIL-R3、またはTRAIL-R4）、receptor activator of nuclear factor kappa B ligand(RANK)、RANKリガンド、CD25、葉酸受容体4、サイトカイン[IL-1α、IL-1β、IL-4、IL-5、IL-6、IL-10、IL-13、transforming growth factor(TGF)β、またはTNFαなど]、これらのサイトカインの受容体、ケモカイン（SLC、ELC、I-309、TARC、MDC、またはCTACKなど）、またはこれらのケモカインの受容体があげられる。
　病変部位の血管新生を阻害する抗体の抗原としては、vascular endothelial growth factor(VEGF)、Angiopoietin、fibroblast growth factor(FGF)、EGF、platelet-derived growth factor(PDGF)、insulin-like growth factor(IGF)、erythropoietin(EPO)、TGFβ、IL-8、Ephilin、SDF-1、またはこれらの受容体などがあげられる。
　蛋白質または抗体医薬との融合抗体は、モノクローナル抗体または抗体断片をコードするcDNAに蛋白質をコードするcDNAを連結させ、融合抗体をコードするDNAを構築し、該DNAを原核生物あるいは真核生物用発現ベクターに挿入し、該発現ベクターを原核生物あるいは真核生物へ導入することにより発現させ、融合抗体を製造することができる。
　上記抗体の誘導体を検出方法、定量方法、検出用試薬、定量用試薬または診断薬として使用する場合に、本発明のCD4の細胞外領域を特異的に認識し、かつ該細胞外領域に結合するモノクローナル抗体またはその抗体断片に結合する薬剤としては、通常の免疫学的検出または測定法で用いられる標識体があげられる。標識体としては、アルカリフォスファターゼ、ペルオキシダーゼ、あるいはルシフェラーゼなどの酵素、アクリジニウムエステル、あるいはロフィンなどの発光物質、またはフルオレセインイソチオシアネート（FITC）、あるいはテトラメチルローダミンイソチオシアネート（RITC）などの蛍光物質などがあげられる。
　また、本発明は、CD4の細胞外領域を特異的に認識し、かつ該細胞外領域に結合するモノクローナル抗体またはその抗体断片を有効成分として含有するCD4陽性細胞が関与する疾患の治療薬に関する。
　CD4陽性細胞が関与する疾患としては、CD4が発現している細胞が関与する疾患であればいかなるものでもよく、例えば癌、自己免疫疾患、アレルギー性疾患、感染症があげられる。
　CD4陽性細胞としては、CD4陽性T細胞であるTh1細胞、Th2細胞、Th17細胞、制御性T細胞（regulatory T細胞ともいう）およびγδT細胞などがあげられる。また、癌や炎症性疾患である自己免疫疾患やアレルギー性疾患では、疾患の原因となる異常な細胞にCD4が発現していることから、これら疾患に関与するCD4陽性細胞をあげることができる。
　癌としては、血液癌、乳癌、子宮癌、大腸癌、食道癌、胃癌、卵巣癌、肺癌、腎臓癌、直腸癌、甲状腺癌、子宮頸癌、小腸癌、前立腺癌または膵臓癌などがあげられ、好ましくは血液癌、食道癌、胃癌、大腸癌、肝癌または前立腺癌があげられる。血液癌としては、T細胞由来の癌、例えば皮膚T細胞性リンパ腫（Cutaneous T cell lymphoma,CTCL）、末梢T細胞性リンパ腫（peripheral T cell lymphoma,PTCL）、未分化大細胞型リンパ腫（Anaplastic large cell lymphoma,ALCL）、急性リンパ性白血病（Acute lympatic leukemia,ALL）、その他リンパ性白血病、骨髄性白血病、多発性骨髄腫、ホジキンリンパ腫、または非ホジキンリンパ腫などがあげられる。
　自己免疫疾患としては、関節リウマチ、乾癬、クローン病、強直性脊椎炎、多発性硬化症、I型糖尿病、肝炎、心筋炎、シェーグレン症候群、移植後拒絶反応などがあげられる。
　アレルギー性疾患としては、急性または慢性気道過敏症、気管支喘息、アトピー性皮膚炎、アレルギー性鼻炎などがあげられる。
　感染症としてはヒト免疫不全ウイルス（HIV）感染症などがあげられる。
　本発明の治療剤としては、上述した本発明のモノクローナル抗体または該抗体断片を有効成分として含有する。
　本発明の抗体または該抗体断片、またはこれらの誘導体を含有する治療剤は、有効成分としての該抗体もしくは該抗体断片、またはこれらの誘導体のみを含むものであってもよいが、通常は薬理学的に許容される1以上の担体と一緒に混合し、製剤学の技術分野において公知の任意の方法により製造した医薬製剤として提供するのが望ましい。
　投与経路は、治療に際して最も効果的なものを使用するのが望ましく、経口投与、または口腔内、気道内、直腸内、皮下、筋肉内あるいは静脈内などの非経口投与があげられ、好ましくは静脈内投与をあげられる。
　投与形態としては、噴霧剤、カプセル剤、錠剤、散剤、顆粒剤、シロップ剤、乳剤、座剤、注射剤、軟膏、またはテープ剤などがあげられる。
　投与量または投与回数は、目的とする治療効果、投与方法、治療期間、年齢、および体重などにより異なるが、通常成人1日当たり10μg/kg～10mg/kgである。
　さらに、本発明は、CD4の細胞外領域を特異的に認識し、かつ該細胞外領域に結合するモノクローナル抗体またはその抗体断片を有効成分として含有する、CD4の免疫学的検出または測定方法、CD4の免疫学的検出用または測定用試薬、CD4が発現する細胞の免疫学的検出または測定方法、およびCD4陽性細胞が関与する疾患の診断薬に関する。
　本発明においてCD4の量を検出または測定する方法としては、任意の公知の方法があげられる。例えば、免疫学的検出または測定方法などがあげられる。
　免疫学的検出または測定方法とは、標識を施した抗原または抗体を用いて、抗体量または抗原量を検出または測定する方法である。免疫学的検出または測定方法としては、放射性物質標識免疫抗体法（RIA）、酵素免疫測定法（EIAまたはELISA）、蛍光免疫測定法（FIA）、発光免疫測定法（luminescent immunoassay）、ウェスタンブロット法または物理化学的手法などがあげられる。
　本発明のモノクローナル抗体または該抗体断片を用いてCD4が発現した細胞を検出または測定することにより、CD4が関連する疾患を診断することができる。
　該ポリペプチドが発現している細胞の検出には、公知の免疫学的検出法を用いることができるが、免疫沈降法、蛍光細胞染色法、免疫組織染色法、または免疫組織染色法などが、好ましく用いられる。また、FMAT8100HTSシステム（アプライドバイオシステム社製）などの蛍光抗体染色法なども用いることができる。
　本発明においてCD4を検出または測定する対象となる生体試料としては、組織細胞、血液、血漿、血清、膵液、尿、糞便、組織液、または培養液など、CD4が発現した細胞を含む可能性のあるものであれば特に限定されない。
　本発明のモノクローナル抗体あるいはその抗体断片、またはこれらの誘導体を含有する診断薬は、目的の診断法に応じて、抗原抗体反応を行なうための試薬、該反応の検出用試薬を含んでもよい。抗原抗体反応を行なうための試薬としては、緩衝剤、塩などがあげられる。検出用試薬としては、該モノクローナル抗体あるいはその抗体断片、またはこれらの誘導体を認識する標識された二次抗体、または標識に対応した基質などの通常の免疫学的検出または測定法に用いられる試薬があげられる。
　以下に、本発明の抗体の製造方法、疾患の治療方法、および疾患の診断方法について、具体的に説明する。
1．モノクローナル抗体の製造方法
（1）抗原の調製
　抗原となるCD4またはCD4を発現させた細胞は、CD4全長またはその部分長をコードするcDNAを含む発現ベクターを、大腸菌、酵母、昆虫細胞、または動物細胞などに導入することにより、得ることができる。また、CD4を多量に発現している各種ヒト腫瘍培養細胞、ヒト組織などからCD4を精製し、得ることが出来る。また、該腫瘍培養細胞、または該組織などをそのまま抗原として用いることもできる。さらに、Fmoc法、またはtBoc法などの化学合成法によりCD4の部分配列を有する合成ペプチドを調製し、抗原に用いることもできる。
　本発明で用いられるCD4は、Molecular Cloning,A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)やCurrent Protocols In Molecular Biology, John Wiley & Sons (1987-1997)などに記載された方法などを用い、例えば以下の方法により、該CD4をコードするDNAを宿主細胞中で発現させて、製造することができる。
　まず、CD4をコードする部分を含む完全長cDNAを適当な発現ベクターのプロモーターの下流に挿入することにより、組換えベクターを作製する。上記完全長cDNAの代わりに、完全長cDNAをもとにして調製された、ポリペプチドをコードする部分を含む適当な長さのDNA断片を用いてもよい。次に、得られた該組換えベクターを、該発現ベクターに適合した宿主細胞に導入することにより、ポリペプチドを生産する形質転換体を得ることができる。
　発現ベクターとしては、使用する宿主細胞における自律複製または染色体中への組込みが可能で、ポリペプチドをコードするDNAを転写できる位置に、適当なプロモーターを含有しているものであればいずれも用いることができる。
　宿主細胞としては、大腸菌などのエシェリヒア属などに属する微生物、酵母、昆虫細胞、または動物細胞など、目的とする遺伝子を発現できるものであればいずれも用いることができる。
　大腸菌などの原核生物を宿主細胞として用いる場合、組換えベクターは、原核生物中で自律複製が可能であると同時に、プロモーター、リボソーム結合配列、CD4をコードする部分を含むDNA、および転写終結配列を含むベクターであることが好ましい。また、該組換えベクターには、転写終結配列は必ずしも必要ではないが、構造遺伝子の直下に転写終結配列を配置することが好ましい。さらに、該組換えベクターには、プロモーターを制御する遺伝子を含んでいてもよい。
　該組換えベクターとしては、リボソーム結合配列であるシャイン・ダルガルノ配列（SD配列ともいう）と開始コドンとの間を適当な距離（例えば6～18塩基）に調節したプラスミドを用いることが好ましい。
　また、該CD4をコードするDNAの塩基配列としては、宿主内での発現に最適なコドンとなるように塩基を置換することができ、これにより目的とするCD4の生産率を向上させることができる。
　発現ベクターとしては、使用する宿主細胞中で機能を発揮できるものであればいずれも用いることができ、例えば、pBTrp2、pBTac1、pBTac2（以上、ロシュ・ダイアグノスティックス社製）、pKK233―2（ファルマシア社製）、pSE280（インビトロジェン社製）、pGEMEX-1（プロメガ社製）、pQE-8（キアゲン社製）、pKYP10（特開昭58-110600）、pKYP200[Agricultural Biological Chemistry, 48, 669 (1984)]、pLSA1[Agric. Biol. Chem., 53, 277 (1989)]、pGEL1[Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 82, 4306 (1985)]、pBluescript II SK(-)(ストラタジーン社製)、pTrs30[大腸菌JM109/pTrS30（FERM BP-5407）より調製]、pTrs32[大腸菌JM109/pTrS32（FERM BP-5408）より調製]、pGHA2[大腸菌IGHA2（FERM BP-400）より調製、特開昭60-221091]、pGKA2[大腸菌IGKA2（FERM BP-6798）より調製、特開昭60-221091]、pTerm2　（US4686191、US4939094、US5160735）、pSupex、pUB110、pTP5、pC194、pEG400[J. Bacteriol., 172, 2392 (1990)]、pGEX（ファルマシア社製）、pETシステム（ノバジェン社製）、またはpME18SFL3などがあげられる。
　プロモーターとしては、使用する宿主細胞中で機能を発揮できるものであればいかなるものでもよい。例えば、trpプロモーター（Ptrp）、lacプロモーター、PLプロモーター、PRプロモーター、またはT7プロモーターなどの、大腸菌やファージなどに由来するプロモーターを挙げることができる。また、Ptrpを2つ直列させたタンデムプロモーター、tacプロモーター、lacT7プロモーター、またはlet Iプロモーターなどの人為的に設計改変されたプロモーターなども用いることができる。
　宿主細胞としては、例えば、大腸菌XL1-Blue、大腸菌XL2-Blue、大腸菌DH1、大腸菌MC1000、大腸菌KY3276、大腸菌W1485、大腸菌JM109、大腸菌HB101、大腸菌No．49、大腸菌W3110、大腸菌NY49、または大腸菌DH5αなどがあげられる。
　宿主細胞への組換えベクターの導入方法としては、使用する宿主細胞へDNAを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、カルシウムイオンを用いる方法[Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 69, 2110 (1972)、Gene, 17, 107 (1982)、Molecular & General Genetics, 168, 111 (1979)]があげられる。
　動物細胞を宿主として用いる場合、発現ベクターとしては、動物細胞中で機能を発揮できるものであればいずれも用いることができ、例えば、pcDNAI、pcDM8（フナコシ社製）、pAGE107　[特開平3-22979；Cytotechnology, 3, 133 (1990)]、pAS3-3（特開平2-227075）、pCDM8[Nature，　329，　840　（1987）]、pcDNAI/Amp（インビトロジェン社製）、pcDNA3．1（インビトロジェン社製）、pREP4（インビトロジェン社製）、pAGE103[J. Biochemistry, 101, 1307 (1987)]、pAGE210、pME18SFL3、またはpKANTEX93（WO97/10354）などがあげられる。
　プロモーターとしては、動物細胞中で機能を発揮できるものであればいずれも用いることができ、例えば、サイトメガロウイルス（CMV）のimmediate early（IE）遺伝子のプロモーター、SV40の初期プロモーター、レトロウイルスのプロモーター、メタロチオネインプロモーター、ヒートショックプロモーター、SRαプロモーター、またはモロニーマウス白血病ウイルスのプロモーターあるいはエンハンサーがあげられる。また、ヒトCMVのIE遺伝子のエンハンサーをプロモーターと共に用いてもよい。
　宿主細胞としては、ヒト白血病細胞Namalwa細胞、サル細胞COS細胞、チャイニーズ・ハムスター卵巣細胞CHO細胞（Journal of Experimental Medicine, 108, 945 (1958); Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 60 , 1275 (1968); Genetics, 55, 513 (1968); Chromosoma, 41, 129 (1973); Methods in Cell Science, 18, 115 (1996); Radiation Research, 148, 260 (1997); Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 77, 4216 (1980); Proc. Natl. Acad. Sci., 60, 1275 (1968); Cell, 6, 121 (1975); Molecular Cell Genetics, Appendix I, II (pp. 883-900);）、CHO/DG44、CHO-K1(ATCC CCL-61）、DUkXB11 (ATCC CCL-9096）、Pro-5（ATCC CCL-1781)、CHO-S（Life Technologies, Cat # 11619）、Pro-3、ラットミエローマ細胞YB2/3HL．P2．G11．16Ag．20（またはYB2/0ともいう）、マウスミエローマ細胞NSO、マウスミエローマ細胞SP2/0-Ag14、シリアンハムスター細胞BHKまたはHBT5637（特開昭63-000299）、などがあげられる。
　宿主細胞への組換えベクターの導入方法としては、動物細胞にDNAを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、エレクトロポレーション法[Cytotechnology, 3, 133 (1990）]、リン酸カルシウム法（特開平2-227075）、またはリポフェクション法[Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 84, 7413 (1987)]などがあげられる。
　以上のようにして得られるCD4をコードするDNAを組み込んだ組換えベクターを保有する微生物、または動物細胞などの由来の形質転換体を培地に培養し、培養物中に該CD4を生成蓄積させ、該培養物から採取することにより、CD4を製造することができる。該形質転換体を培地に培養する方法は、宿主の培養に用いられる通常の方法に従って行うことができる。
　真核生物由来の細胞で発現させた場合には、糖あるいは糖鎖が付加されたCD4を得ることができる。
　誘導性のプロモーターを用いた組換えベクターで形質転換した微生物を培養するときには、必要に応じてインデューサーを培地に添加してもよい。例えば、lacプロモーターを用いた組換えベクターで形質転換した微生物を培養する場合にはイソプロピル-β-D-チオガラクトピラノシドなどを、trpプロモーターを用いた組換えベクターで形質転換した微生物を培養する場合にはインドールアクリル酸などを培地に添加してもよい。
　動物細胞を宿主として得られた形質転換体を培養する培地としては、一般に使用されているRPMI1640培地[The Journal of the American Medical Association, 199, 519 (1967)]、EagleのMEM培地[Science, 122, 501 (1952)]、ダルベッコ改変MEM培地[Virology, 8, 396 (1959)]、199培地[Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 73, 1 (1950)]、Iscove’s Modified Dulbecco’s Medium(IMDM)培地、またはこれら培地に牛胎児血清（FBS）などを添加した培地などがあげられる。培養は、通常pH6～8、30～40℃、5％CO2存在下などの条件下で1～7日間行う。また、培養中必要に応じて、カナマイシン、ペニシリンなどの抗生物質を培地に添加してもよい。
　CD4をコードする遺伝子の発現方法としては、直接発現以外に、分泌生産または融合蛋白質発現などの方法[Molecular Cloning, A Laboratory Manual,Second Edition,Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)]を用いることができる。
　CD4の生産方法としては、宿主細胞内に生産させる方法、宿主細胞外に分泌させる方法、または宿主細胞外膜上に生産させる方法があり、使用する宿主細胞や、生産させるCD4の構造を変えることにより、適切な方法を選択することができる。
　CD4が宿主細胞内又は宿主細胞外膜上に生産される場合、ポールソンらの方法[J. Biol. Chem., 264, 17619 (1989)]、ロウらの方法[Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 86, 8227 (1989)、Genes Develop., 4, 1288 (1990)]、特開平05-336963、またはWO94/23021などに記載の方法を用いることにより、CD4を宿主細胞外に積極的に分泌させることができる。
　また、ジヒドロ葉酸還元酵素遺伝子などを用いた遺伝子増幅系（特開平2-227075）を利用してCD4の生産量を上昇させることもできる。
　得られたCD4は、例えば、以下のようにして単離、精製することができる。
　CD4が細胞内に溶解状態で発現した場合には、培養終了後に細胞を遠心分離により回収し、水系緩衝液に懸濁後、超音波破砕機、フレンチプレス、マントンガウリンホモゲナイザー、またはダイノミルなどを用いて細胞を破砕し、無細胞抽出液を得る。該無細胞抽出液を遠心分離することにより得られる上清から、通常の蛋白質の単離精製法、即ち、溶媒抽出法、硫安などによる塩析法、脱塩法、有機溶媒による沈殿法、ジエチルアミノエチル（DEAE）-セファロース、DIAION HPA-75（三菱化学社製）などのレジンを用いた陰イオン交換クロマトグラフィー法、S-Sepharose FF（ファルマシア社製）などのレジンを用いた陽イオン交換クロマトグラフィー法、ブチルセファロース、フェニルセファロースなどのレジンを用いた疎水性クロマトグラフィー法、分子篩を用いたゲルろ過法、アフィニティークロマトグラフィー法、クロマトフォーカシング法、または等電点電気泳動などの電気泳動法などの手法を単独あるいは組み合わせて用い、精製標品を得ることができる。
　CD4が細胞内に不溶体を形成して発現した場合は、上記と同様に細胞を回収後破砕し、遠心分離を行うことにより、沈殿画分として該CD4の不溶体を回収する。回収した該CD4の不溶体を蛋白質変性剤で可溶化する。該可溶化液を希釈または透析することにより、該CD4を正常な立体構造に戻した後、上記と同様の単離精製法によりポリペプチドの精製標品を得ることができる。
　CD4またはその糖修飾体などの誘導体が細胞外に分泌された場合には、培養上清において該CD4またはその糖修飾体などの誘導体を回収することができる。該培養物を上記と同様に遠心分離などの手法により処理することにより可溶性画分を取得し、該可溶性画分から、上記と同様の単離精製法を用いることにより、精製標品を得ることができる。
　また、本発明において用いられるCD4は、Fmoc法、またはtBoc法などの化学合成法によっても製造することができる。また、アドバンストケムテック社製、パーキン・エルマー社製、ファルマシア社製、プロテインテクノロジインストルメント社製、シンセセル-ベガ社製、パーセプチブ社製、または島津製作所社製などのペプチド合成機を利用して化学合成することもできる。
（2）動物の免疫と融合用抗体産生細胞の調製
　3～20週令のマウス、ラットまたはハムスターなどの動物に、（1）で得られる抗原を免疫して、その動物の脾、リンパ節、末梢血中の抗体産生細胞を採取する。また、免疫原性が低く上記の動物で充分な抗体価の上昇が認められない場合には、CD4ノックアウトマウスを被免疫動物として用いることもできる。
　免疫は、動物の皮下あるいは静脈内あるいは腹腔内に、例えば、フロインドの完全アジュバント、または水酸化アルミニウムゲルと百日咳菌ワクチンなどの適当なアジュバントとともに抗原を投与することにより行う。抗原が部分ペプチドである場合には、BSA（ウシ血清アルブミン）、またはKLH（Keyhole Limpet hemocyanin）などのキャリア蛋白質とコンジュゲートを作製し、これを免疫原として用いる。
　抗原の投与は、1回目の投与の後、1～2週間おきに5～10回行う。各投与後3～7日目に眼底静脈叢より採血し、その血清の抗体価を酵素免疫測定法[Antibodies - A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory (1988)]などを用いて測定する。免疫に用いた抗原に対し、その血清が十分な抗体価を示した動物を融合用抗体産生細胞の供給源とする。
　抗原の最終投与後3～7日目に、免疫した動物より脾臓などの抗体産生細胞を含む組織を摘出し、抗体産生細胞を採取する。脾臓細胞を用いる場合には、脾臓を細断、ほぐした後、遠心分離し、さらに赤血球を除去して融合用抗体産生細胞を取得する。
（3）骨髄腫細胞の調製
　骨髄腫細胞としては、マウスから得られた株化細胞を用い、例えば、8-アザグアニン耐性マウス（BALB/c由来）骨髄腫細胞株P3-X63Ag8-U1（P3-U1）[Current Topics in Microbiology and Immunology, 18, 1 (1978)]、P3-NS1/1-Ag41(NS-1)[European J. Immunology, 6, 511 (1976)]、SP2/0-Ag14（SP-2）[Nature, 276, 269 (1978）]、P3-X63-Ag8653（653）[J. Immunology, 123, 1548 (1979）]、またはP3-X63-Ag8（X63）[Nature, 256, 495 (1975)]などが用いられる。
　該骨髄腫細胞は、正常培地[グルタミン、2-メルカプトエタノール、ジェンタマイシン、FBS、および8-アザグアニンを加えたRPMI1640培地]で継代し、細胞融合の3～4日前に正常培地に継代し、融合当日2×107個以上の細胞数を確保する。
（4）細胞融合とモノクローナル抗体産生ハイブリドーマの調製
　（2）で得られる融合用抗体産生細胞と（3）で得られる骨髄腫細胞をMinimum Essential Medium(MEM)培地またはPBS（リン酸二ナトリウム1．83g、リン酸一カリウム0．21g、食塩7．65g、蒸留水1リットル、pH7．2）でよく洗浄し、細胞数が、融合用抗体産生細胞：骨髄腫細胞＝5～10：1になるよう混合し、遠心分離した後、上清を除く。沈澱した細胞群をよくほぐした後、ポリエチレングリコール-1000（PEG-1000）、MEM培地およびジメチルスルホキシドの混液を37℃で、攪拌しながら加える。さらに1～2分間毎にMEM培地1～2mLを数回加えた後、MEM培地を加えて全量が50mLになるようにする。遠心分離後、上清を除く。沈澱した細胞群をゆるやかにほぐした後、融合用抗体産生細胞にHAT培地[ヒポキサンチン、チミジン、およびアミノプテリンを加えた正常培地]中にゆるやかに細胞を懸濁する。この懸濁液を5％CO2インキュベーター中、37℃で7～14日間培養する。
　培養後、培養上清の一部を抜き取り、後述のバインディングアッセイなどのハイブリドーマの選択方法により、CD4を含む抗原に反応し、CD4を含まない抗原に反応しない細胞群を選択する。次に、限界希釈法によりクローニングを2回繰り返し[1回目はHT培地（HAT培地からアミノプテリンを除いた培地）、2回目は正常培地を使用する]、安定して強い抗体価の認められたものをモノクローナル抗体産生ハイブリドーマとして選択する。
（5）精製モノクローナル抗体の調製
　プリスタン処理[2，6，10，14-テトラメチルペンタデカン（Pristane）0．5mlを腹腔内投与し、2週間飼育する]した8～10週令のマウスまたはヌードマウスに、（4）で得られるモノクローナル抗体産生ハイブリドーマを腹腔内に注射する。10～21日でハイブリドーマは腹水癌化する。このマウスから腹水を採取し、遠心分離して固形分を除去後、40～50％硫酸アンモニウムで塩析し、カプリル酸沈殿法、DEAE-セファロースカラム、プロテインA-カラムあるいはゲル濾過カラムによる精製を行ない、IgGあるいはIgM画分を集め、精製モノクローナル抗体とする。
　また、（4）で得られるモノクローナル抗体産生ハイブリドーマを、10％FBS添加を添加したRPMI1640培地などで培養した後、遠心分離により上清を除き、Hybridoma SFM培地に懸濁し、3～7日間培養する。得られた細胞懸濁液を遠心分離し、得られた上清よりプロテインA-カラムまたはプロテインG-カラムによる精製を行ない、IgG画分を集め、精製モノクローナル抗体を得ることもできる。なお、Hybridoma SFM培地には5％ダイゴGF21を添加することもできる。
　抗体のサブクラスの決定は、サブクラスタイピングキットを用いて酵素免疫測定法により行う。蛋白量の定量は、ローリー法または280nmでの吸光度より算出する。
　（6）モノクローナル抗体の選択
　モノクローナル抗体の選択は以下に示す酵素免疫測定法によるバインディングアッセイ、およびBiacoreによるkinetics解析により行う。
　（6-a）バインディングアッセイ
　抗原としては、（1）で得られるCD4をコードするcDNAを含む発現ベクターを大腸菌、酵母、昆虫細胞、あるいは動物細胞などに導入して得られた遺伝子導入細胞、リコンビナント蛋白質、またはヒト組織から得た精製ポリペプチドあるいは部分ペプチドなどを用いる。抗原が部分ペプチドである場合には、BSAまたはKLHなどのキャリア蛋白質とコンジュゲートを作製して、これを用いる。
　抗原を96ウェルプレートなどのプレートに分注し、固相化した後、第1抗体として血清、ハイブリドーマの培養上清または精製モノクローナル抗体などの被験物質を分注し、反応させる。PBSまたはPBS-Tweenなどで、よく洗浄した後、第2抗体としてビオチン、酵素、化学発光物質または放射線化合物などで標識した抗イムノグロブリン抗体を分注して反応させる。PBS-Tweenでよく洗浄した後、第2抗体の標識物質に応じた反応を行ない、免疫原に対し特異的に反応するモノクローナル抗体を選択する。
　また、本発明の抗CD4モノクローナル抗体と競合してCD4に結合するモノクローナル抗体は、上述のバインティングアッセイ系に、被検抗体を添加して反応させることで取得できる。すなわち、被検抗体を加えた時にモノクローナル抗体の結合が阻害される抗体をスクリーニングすることにより、CD4細胞外領域への結合について、取得したモノクローナル抗体と競合するモノクローナル抗体を取得することができる。
　更に、本発明のCD4の細胞外領域に結合するモノクローナル抗体が認識するエピトープと、同じエピトープに結合する抗体は、上述のバインティングアッセイ系で取得された抗体のエピトープを同定し、同定したエピトープの、部分的な合成ペプチド、またはエピトープの立体構造に擬態させた合成ペプチド等を作製し、免疫することで、取得することができる。
　（6-b）Biacoreによるkinetics解析
　Biacore　T100を用い、抗原と被験物の間の結合におけるkineticsを測定し、その結果を機器付属の解析ソフトウエアで解析をする。抗マウスIgG抗体をセンサーチップCM5にアミンカップリング法により固定した後、ハイブリドーマ培養上清または精製モノクローナル抗体などの被験物質を流し、適当量結合させ、更に濃度既知の複数濃度の抗原を流し、結合、解離を測定する。得られたデータを機器付属のソフトウエアを用い、1：1バインディングモデルによりkinetics解析を行い、各種パラメータを取得する。または、ヒトCD4をセンサーチップ上に、例えばアミンカップリング法により固定した後、濃度既知の複数濃度の精製モノクローナル抗体を流し、結合、解離を測定する。得られたデータを機器付属のソフトウエアを用い、バイバレントバインディングモデルによりkinetics解析を行い、各種パラメータを取得する。
2．遺伝子組換え抗体の作製
　遺伝子組換え抗体の作製例として、以下にヒト型キメラ抗体およびヒト化抗体の作製方法を示す。
（1）　遺伝子組換え抗体発現用ベクターの構築
　遺伝子組換え抗体発現用ベクターは、ヒト抗体のCHおよびCLをコードするDNAが組み込まれた動物細胞用発現ベクターであり、動物細胞用発現ベクターにヒト抗体のCHおよびCLをコードするDNAをそれぞれクローニングすることにより構築することができる。
　ヒト抗体のC領域は任意のヒト抗体のCHおよびCLを用いることができる。例えば、ヒト抗体のγ1サブクラスのCHおよびκクラスのCLなどを用いる。ヒト抗体のCHおよびCLをコードするDNAには、cDNAを用いるが、エキソンとイントロンからなる染色体DNAを用いることもできる。動物細胞用発現ベクターには、ヒト抗体のC領域をコードする遺伝子を組込み発現できるものであればいかなるものでも用いることができる。例えば、pAGE107[Cytotechnol., 3, 133 (1990)]、pAGE103[J. Biochem., 101, 1307 (1987)]、pHSG274[Gene, 27, 223 (1984)]、pKCR[Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 78, 1527 (1981)]、pSG1bd2-4[Cytotechnol., 4, 173 (1990)]、またはpSE1UK1Sed1-3[Cytotechnol., 13, 79 (1993)]などを用いる。動物細胞用発現ベクターのうちプロモーターとエンハンサーには、SV40の初期プロモーター[J. Biochem., 101, 1307 (1987)]、モロニーマウス白血病ウイルスLTR[Biochem. Biophys. Res. Commun., 149, 960 (1987)]、または免疫グロブリンH鎖のプロモーター[Cell, 41, 479 (1985)]とエンハンサー[Cell, 33, 717 (1983)]などを用いる。
　遺伝子組換え抗体発現用ベクターには、遺伝子組換え抗体発現ベクターの構築の容易さ、動物細胞への導入の容易さ、動物細胞内での抗体H鎖およびL鎖の発現量のバランスが均衡するなどの点から、抗体H鎖およびL鎖が同一のベクター上に存在するタイプ（タンデム型）の遺伝子組換え抗体発現用ベクター[J. Immunol. Methods, 167, 271 (1994)]を用いるが、抗体H鎖およびL鎖が別々のベクター上に存在するタイプを用いることもできる。タンデム型の遺伝子組換え抗体発現用ベクターには、pKANTEX93（WO97/10354）、pEE18[Hybridoma，　17，　559　（1998）]などを用いる。
（2）ヒト以外の動物由来の抗体のV領域をコードするcDNAの取得およびアミノ酸配列の解析
　非ヒト抗体のVH及びVLをコードするcDNAの取得およびアミノ酸配列の解析は以下のようにして行うことができる。
　非ヒト抗体を産生するハイブリドーマ細胞よりmRNAを抽出し、cDNAを合成する。合成したcDNAをファージまたはプラスミドなどのベクターにクローニングしてcDNAライブラリーを作製する。該ライブラリーより、マウス抗体のC領域部分またはV領域部分をコードするDNAをプローブとして用い、VHあるいはVLをコードするcDNAを有する組換えファージまたは組換えプラスミドをそれぞれ単離する。組換えファージまたは組換えプラスミド上の目的とするマウス抗体のVHあるいはVLの全塩基配列をそれぞれ決定し、塩基配列よりVHまたはVLの全アミノ酸配列をそれぞれ推定する。
　非ヒト抗体を産生するハイブリドーマ細胞を作製するヒト以外の動物には、マウス、ラット、ハムスター、またはラビットなどを用いるが、ハイブリドーマ細胞を作製することが可能であれば、いかなる動物も用いることができる。
　ハイブリドーマ細胞からの全RNAの調製には、チオシアン酸グアニジン-トリフルオロ酢酸セシウム法[Methods　in　Enzymol．，　154，　3　（1987）]、またはRNA　easy　kit（キアゲン社製）などのキットなどを用いる。
　全RNAからのmRNAの調製には、オリゴ（dT）固定化セルロースカラム法[Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)]、またはOligo-dT30<Super> mRNA Purification Kit（タカラバイオ社製）などのキットなどを用いる。また、Fast Track mRNA Isolation Kit（インビトロジェン社製）、またはQuickPrep mRNA Purification Kit（ファルマシア社製）などのキットを用いてハイブリドーマ細胞からmRNAを調製することもできる。
　cDNAの合成およびcDNAライブラリーの作製には、公知の方法[Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)、Current Protocols in Molecular Biology, Supplement 1, John Wiley & Sons (1987-1997)]、またはSuperScript Plasmid System for cDNA Synthesis and Plasmid Cloning（インビトロジェン社製）、あるいはZAP-cDNA Synthesis Kit(ストラタジーン社製）などのキットなどを用いる。
　cDNAライブラリーの作製の際、ハイブリドーマ細胞から抽出したmRNAを鋳型として合成したcDNAを組み込むベクターには、該cDNAを組み込めるベクターであればいかなるものでも用いることができる。例えば、ZAP Express[Strategies, 5, 58 (1992)]、pBluescript II SK(+)[Nucleic Acids Research, 17, 9494 (1989)]、λZAPII(Stratagene社製)、λgt10、λgt11[DNA Cloning:A Practical Approach, I, 49 (1985)]、Lambda BlueMid(クローンテック社製)、λExCell、pT7T3-18U(ファルマシア社製)、pcD2[Mol. Cell. Biol., 3, 280 (1983)]、またはpUC18[Gene, 33, 103 (1985)]などを用いる。
　ファージまたはプラスミドベクターにより構築されるcDNAライブラリーを導入する大腸菌には、該cDNAライブラリーを導入、発現および維持できるものであればいかなるものでも用いることができる。例えば、XL1-Blue MRF’[Strategies, 5, 81 (1992)]、C600[Genetics, 39, 440 (1954)]、Y1088、Y1090[Science, 222, 778 (1983)]、NM522[J. Mol. Biol., 166, 1 (1983)]、K802[J. Mol. Biol., 16, 118 (1966)]、またはJM105[Gene, 38, 275 (1985)]などを用いる。
　cDNAライブラリーからの非ヒト抗体のVHまたはVLをコードするcDNAクローンの選択には、アイソトープあるいは蛍光標識したプローブを用いたコロニー・ハイブリダイゼーション法、またはプラーク・ハイブリダイゼーション法[Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)]などを用いる。
　また、プライマーを調製し、mRNAから合成したcDNAまたはcDNAライブラリーを鋳型として、Polymerase Chain Reaction法[以下、PCR法と表記する、Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Second Edition , Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)、Current Protocols in Molecular Biology, Supplement 1, John Wiley & Sons (1987-1997)]を行うことよりVHまたはVLをコードするcDNAを調製することもできる。
　選択されたcDNAを、適当な制限酵素などで切断後、pBluescript　SK（-）（ストラタジーン社製）などのプラスミドにクローニングし、通常用いられる塩基配列解析方法などにより該cDNAの塩基配列を決定する。塩基配列解析方法には、例えば、ジデオキシ法[Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 74, 5463 (1977)]などの反応を行った後、ABI PRISM3700（PEバイオシステムズ社製）またはA．L．F．DNAシークエンサー（ファルマシア社製）などの塩基配列自動分析装置などを用いる。
　決定した塩基配列からVHおよびVLの全アミノ酸配列をそれぞれ推定し、既知の抗体のVHおよびVLの全アミノ酸配列[Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services (1991)]と比較することにより、取得したcDNAが分泌シグナル配列を含む抗体のVHおよびVLの完全なアミノ酸配列をコードしているかをそれぞれ確認する。分泌シグナル配列を含む抗体のVHおよびVLの完全なアミノ酸配列に関しては、既知の抗体のVHおよびVLの全アミノ酸配列[Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services (1991)]と比較することにより、分泌シグナル配列の長さおよびN末端アミノ酸配列を推定でき、更にはそれらが属するサブグループを知ることができる。また、VHおよびVLの各CDRのアミノ酸配列についても、既知の抗体のVHおよびVLのアミノ酸配列[Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services (1991)]と比較することによって見出すことができる。
　また、得られたVHおよびVLの完全なアミノ酸配列を用いて、例えば、SWISS-PROTまたはPIR-Proteinなどの任意のデータベースに対してBLAST法[J. Mol. Biol., 215, 403 (1990)]などの相同性検索を行い、VHおよびVLの完全なアミノ酸配列が新規であるか否かを確認できる。
（3）ヒト型キメラ抗体発現ベクターの構築
　（1）で得られる遺伝子組換え抗体発現用ベクターのヒト抗体のCHまたはCLをコードするそれぞれの遺伝子の上流に、それぞれ非ヒト抗体のVHまたはVLをコードするcDNAをそれぞれクローニングすることで、ヒト型キメラ抗体発現ベクターを構築することができる。
　非ヒト抗体のVHまたはVLをコードするcDNAの3’末端側と、ヒト抗体のCHまたはCLの5’末端側とを連結するために、連結部分の塩基配列が適切なアミノ酸をコードし、かつ適当な制限酵素認識配列になるように設計したVHおよびVLのcDNAを作製する。作製されたVHおよびVLのcDNAを、（1）で得られるヒト化抗体発現用ベクターのヒト抗体のCHまたはCLをコードするそれぞれの遺伝子の上流にそれらが適切な形で発現する様にそれぞれクローニングし、ヒト型キメラ抗体発現ベクターを構築する。
　また、非ヒト抗体VHまたはVLをコードするcDNAを、適当な制限酵素の認識配列を両端に有する合成DNAを用いてPCR法によりそれぞれ増幅し、（1）で得られる遺伝子組換え抗体発現用ベクターにクローニングすることもできる。
（4）ヒト化抗体のV領域をコードするcDNAの構築
　ヒト化抗体のVHまたはVLをコードするcDNAは、以下のようにして構築することができる。
　非ヒト抗体のVHまたはVLのCDRのアミノ酸配列を移植するヒト抗体のVHまたはVLのフレームワーク領域（以下、FRと表記する）のアミノ酸配列をそれぞれ選択する。選択するFRのアミノ酸配列には、ヒト抗体由来のものであれば、いずれのものでも用いることができる。例えば、Protein Data Bankなどのデータベースに登録されているヒト抗体のFRのアミノ酸配列、またはヒト抗体のFRの各サブグループの共通アミノ酸配列[Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services (1991)]などを用いる。抗体の結合活性の低下を抑えるため、元の抗体のVHまたはVLのFRのアミノ酸配列とできるだけ高い相同性（少なくとも60％以上）のFRのアミノ酸配列を選択する。
　次に、選択したヒト抗体のVHまたはVLのFRのアミノ酸配列に、もとの抗体のCDRのアミノ酸配列をそれぞれ移植し、ヒト化抗体のVHまたはVLのアミノ酸配列をそれぞれ設計する。設計したアミノ酸配列を抗体の遺伝子の塩基配列に見られるコドンの使用頻度[Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services (1991)]を考慮してDNA配列に変換し、ヒト化抗体のVHまたはVLのアミノ酸配列をコードするDNA配列をそれぞれ設計する。
　設計したDNA配列に基づき、100塩基前後の長さからなる数本の合成DNAを合成し、それらを用いてPCR反応を行う。この場合、PCR反応での反応効率及び合成可能なDNAの長さから、好ましくはH鎖、L鎖とも6本の合成DNAを設計する。
　また、両端に位置する合成DNAの5’末端に適当な制限酵素の認識配列を導入することで、（1）で得られるヒト化抗体発現用ベクターに容易にヒト化抗体のVHまたはVLをコードするcDNAをクローニングすることができる。
　または、設計したDNA配列に基づき、1本のDNAとして合成された各H鎖、L鎖全長合成DNAを用いることで実施できる。
　PCR反応後、増幅産物をpBluescript SK(-)（ストラタジーン社製）などのプラスミドにそれぞれクローニングし、（2）に記載の方法と同様の方法により、塩基配列を決定し、所望のヒト化抗体のVHまたはVLのアミノ酸配列をコードするDNA配列を有するプラスミドを取得する。
　（5）ヒト化抗体のV領域のアミノ酸配列の改変
　ヒト化抗体は、非ヒト抗体のVHおよびVLのCDRのみをヒト抗体のVHおよびVLのFRに移植しただけでは、その抗原結合活性は元の非ヒト抗体に比べて低下する[BIO/TECHNOLOGY，　9，　266　（1991）]。ヒト化抗体では、ヒト抗体のVHおよびVLのFRのアミノ酸配列の中で、直接抗原との結合に関与しているアミノ酸残基、CDRのアミノ酸残基と相互作用するアミノ酸残基、および抗体の立体構造を維持し、間接的に抗原との結合に関与しているアミノ酸残基を同定し、それらのアミノ酸残基を元の非ヒト抗体のアミノ酸残基に置換することにより、低下した抗原結合活性を上昇させることができる。
　抗原結合活性に関わるFRのアミノ酸残基を同定するために、X線結晶解析[J. Mol. Biol., 112, 535 (1977)]またはコンピューターモデリング[Protein Engineering, 7, 1501 (1994)]などを用いることにより、抗体の立体構造の構築および解析を行うことができる。また、それぞれの抗体について数種の改変体を作製し、それぞれの抗原結合活性との相関を検討することを繰り返し、試行錯誤することで必要な抗原結合活性を有する改変ヒト化抗体を取得できる。
　ヒト抗体のVH及びVLのFRのアミノ酸残基は、改変用合成DNAを用いて（4）に記載のPCR反応を行うことにより、改変させることができる。PCR反応後の増幅産物について（2）に記載の方法により、塩基配列を決定し、目的の改変が施されたことを確認する。
　（6）ヒト化抗体発現ベクターの構築
　（1）で得られる遺伝子組換え抗体発現用ベクターのヒト抗体のCHまたはCLをコードするそれぞれの遺伝子の上流に、構築した遺伝子組換え抗体のVHまたはVLをコードするcDNAをそれぞれクローニングし、ヒト化抗体発現ベクターを構築することができる。
　例えば、（4）および（5）で得られるヒト化抗体のVHまたはVLを構築する際に用いる合成DNAのうち、両端に位置する合成DNAの5’末端に適当な制限酵素の認識配列を導入することで、（1）で得られるヒト化抗体発現用ベクターのヒト抗体のCHまたはCLをコードするそれぞれの遺伝子の上流にそれらが適切な形で発現するようにそれぞれクローニングする。
（7）遺伝子組換え抗体の一過性発現
　（3）および（6）で得られる遺伝子組換え抗体発現ベクター、またはそれらを改変した発現ベクターを用いて遺伝子組換え抗体の一過性発現を行い、作製した多種類のヒト化抗体の抗原結合活性を効率的に評価することができる。
　発現ベクターを導入する宿主細胞には、遺伝子組換え抗体を発現できる宿主細胞であれば、いかなる細胞でも用いることができるが、例えばCOS-7細胞[American Type Culture Collection(ATCC)番号:CRL1651]を用いる[Methods in Nucleic Acids Res., CRC press, 283 (1991)]。
　COS-7細胞への発現ベクターの導入には、DEAE-デキストラン法[Methods in Nucleic Acids Res., CRC press (1991)]、またはリポフェクション法[Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 84, 7413 (1987)]などを用いる。
　発現ベクターの導入後、培養上清中の遺伝子組換え抗体の発現量および抗原結合活性は酵素免疫抗体法[Monoclonal Antibodies-Principles and practice, Third edition, Academic Press (1996)、Antibodies - A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory (1988)、単クローン抗体実験マニュアル，　講談社サイエンティフィック　(1987)]などを用いて測定する。
（8）遺伝子組換え抗体を安定に発現する形質転換株の取得と遺伝子組換え抗体の調製
　（3）および（6）で得られた遺伝子組換え抗体発現ベクターを適当な宿主細胞に導入することにより遺伝子組換え抗体を安定に発現する形質転換株を得ることができる。
　宿主細胞への発現ベクターの導入には、エレクトロポレーション法[特開平2-257891、Cytotechnology, 3, 133 (1990)]などを用いる。
　遺伝子組換え抗体発現ベクターを導入する宿主細胞には、遺伝子組換え抗体を発現させることができる宿主細胞であれば、いかなる細胞でも用いることができる。例えば、CHO-K1(ATCC CCL-61)、DUkXB11 (ATCC CCL-9096)、Pro-5(ATCC CCL-1781)、CHO-S(Life Technologies, Cat # 11619)、ラットミエローマ細胞YB2/3HL．P2．G11．16Ag．20（またはYB2/0ともいう）、マウスミエローマ細胞NSO、マウスミエローマ細胞SP2/0-Ag14（ATCC番号：CRL1581）、マウスP3X63-Ag8．653細胞（ATCC番号：CRL1580）、ジヒドロ葉酸還元酵素遺伝子（以下、dhfrと表記する）が欠損したCHO細胞[Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 77, 4216 (1980)]、レクチン耐性を獲得したLec13[Somatic Cell and Molecular genetics, 12, 55 (1986)]、α1，6-フコース転移酵素遺伝子が欠損したCHO細胞（WO2005/035586、WO02/31140）、ラットYB2/3HL．P2．G11．16Ag．20細胞（ATCC番号：CRL1662）などを用いる。
　また、細胞内糖ヌクレオチドGDP-フコースの合成に関与する酵素などの蛋白質あるいはN-グリコシド結合複合型糖鎖の還元末端のN-アセチルグルコサミンの6位にフコースの1位がα結合する糖鎖修飾に関与する酵素などの蛋白質、または細胞内糖ヌクレオチドGDP-フコースのゴルジ体への輸送に関与する蛋白質などの活性が低下または欠失した宿主細胞、例えばα1，6-フコース転移酵素遺伝子が欠損したCHO細胞（WO2005/035586、WO02/31140）などを用いることもできる。
　発現ベクターの導入後、遺伝子組換え抗体を安定に発現する形質転換株は、G418硫酸塩（以下、G418と表記する）などの薬剤を含む動物細胞培養用培地で培養することにより選択する（特開平2-257891）。
　動物細胞培養用培地には、RPMI1640培地（インビトロジェン社製）、GIT培地（日本製薬社製）、EX-CELL301培地（ジェイアールエイチ社製）、IMDM培地（インビトロジェン社製）、Hybridoma-SFM培地（インビトロジェン社製）、またはこれら培地にFBSなどの各種添加物を添加した培地などを用いる。得られた形質転換株を培地中で培養することで培養上清中に遺伝子組換え抗体を発現蓄積させる。培養上清中の遺伝子組換え抗体の発現量および抗原結合活性はELISA法などにより測定できる。また、形質転換株は、DHFR増幅系（特開平2-257891）などを利用して遺伝子組換え抗体の発現量を上昇させることができる。
　遺伝子組換え抗体は、形質転換株の培養上清よりプロテインA-カラムを用いて精製する[Monoclonal Antibodies - Principles and practice, Third edition, Academic Press (1996)、Antibodies - A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory (1988)]。また、ゲル濾過、イオン交換クロマトグラフィーおよび限外濾過などの蛋白質の精製で用いられる方法を組み合わせることもできる。
　精製した遺伝子組換え抗体のH鎖、L鎖或いは抗体分子全体の分子量は、ポリアクリルアミドゲル電気泳動法[Nature, 227, 680 (1970)]、またはウェスタンブロッティング法[Monoclonal Antibodies - Principles and practice, Third edition, Academic Press (1996)、Antibodies - A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory(1988)]など用いて測定することができる。
3．精製モノクローナル抗体またはその抗体断片の活性評価
　精製した本発明のモノクローナル抗体またはその抗体断片の活性評価は、以下のように行うことができる。
　CD4発現細胞株に対する結合活性は、前述の1-（6a）記載のバインディングアッセイおよび（6b）記載のBiacoreシステムなどを用いた表面プラズモン共鳴法を用いて測定する。また、蛍光抗体法[Cancer Immunol. Immunother., 36, 373 (1993)]などを用いて測定できる。
　抗原陽性培養細胞株に対するCDC活性、またはADCC活性は公知の測定方法[Cancer Immunol. Immunother., 36, 373 (1993)]により測定する。
4．抗体のエフェクター活性を制御する方法
　本発明の抗CD4モノクローナル抗体のエフェクター活性を制御する方法としては、抗体のFc領域の297番目のアスパラギン（Asn）に結合するN結合複合型糖鎖の還元末端に存在するN-アセチルグルコサミン（GlcNAc）にα-1,6結合するフコース（コアフコースともいう）の量を制御する方法（WO2005/035586、WO2002/31140、WO00/61739）や、抗体のFc領域のアミノ酸残基を改変することで制御する方法などが知られている。本発明の抗CD4モノクローナル抗体にはいずれの方法を用いても、エフェクター活性を制御することができる。
　エフェクター活性とは、抗体のFc領域を介して引き起こされる抗体依存性の活性をいい、抗体依存性細胞傷害活性（ADCC活性）、補体依存性傷害活性（CDC活性）や、マクロファージや樹状細胞などの食細胞による抗体依存性ファゴサイトーシス（Antibody-dependent phagocytosis,ADP活性）などが知られている。
　抗体のFcのN結合複合型糖鎖のコアフコースの含量を制御することで、抗体のエフェクター活性を増加または低下させることができる。抗体のFcに結合しているN結合複合型糖鎖に結合するフコースの含量を低下させる方法としては、α1，6-フコース転移酵素遺伝子が欠損したCHO細胞を用いて抗体を発現することで、フコースが結合していない抗体を取得することができる。フコースが結合していない抗体は高いADCC活性を有する。一方、抗体のFcに結合しているN結合複合型糖鎖に結合するフコースの含量を増加させる方法としては、α1，6-フコース転移酵素遺伝子を導入した宿主細胞を用いて抗体を発現させることで、フコースが結合している抗体を取得できる。フコースが結合している抗体は、フコースが結合していない抗体よりも低いADCC活性を有する。
　また、抗体のFc領域のアミノ酸残基を改変することでADCC活性やCDC活性を増加または低下させることができる。Fc領域のアミノ酸残基改変を行うことで、FcγRへの結合活性を増加させるあるいは低下させることによりADCC活性を制御することができるし、Fc領域のアミノ酸残基改変を行うことで、補体の結合活性を増加させるあるいは低下させることによりCDC活性を制御することができる。例えば、US2007/0148165に記載のFc領域のアミノ酸配列を用いることで、抗体のCDC活性を増加させることができる。また、US6,737,056、US7,297,775、やUS7,317,091、WO2005/070963に記載のアミノ酸改変を行うことで、ADCC活性またはCDC活性を、増加させることも低下させることもできる。
　更に、上述の糖鎖を制御する方法とFc領域のアミノ酸残基改変を行う方法を組み合わせることにより、抗体のエフェクター活性が制御された抗体を取得することができる。
5．本発明の抗CD4モノクローナル抗体またはその抗体断片を用いた疾患の治療方法
　本発明のモノクローナル抗体またはその抗体断片は、CD4陽性細胞が関与する疾患の治療に用いることができる。
　本発明のモノクローナル抗体またはその抗体断片、またはこれらの誘導体を含有する治療剤は、有効成分としての該抗体もしくは該抗体断片、またはこれらの誘導体のみを含むものであってもよいが、通常は薬理学的に許容される1以上の担体と一緒に混合し、製剤学の技術分野において公知の方法により製造した医薬製剤として提供される。
　投与経路には、経口投与、または口腔内、気道内、直腸内、皮下、筋肉内あるいは静脈内などの非経口投与があげられ、投与形態としては、噴霧剤、カプセル剤、錠剤、散剤、顆粒剤、シロップ剤、乳剤、座剤、注射剤、軟膏、またはテープ剤などがあげられる。
　経口投与に適当な製剤は、乳剤、シロップ剤、カプセル剤、錠剤、散剤、または顆粒剤などである。
　乳剤またはシロップ剤のような液体調製物は、水、ショ糖、ソルビトールあるいは果糖などの糖類、ポリエチレングリコールあるいはプロピレングリコールなどのグリコール類、ごま油、オリーブ油あるいは大豆油などの油類、p-ヒドロキシ安息香酸エステル類などの防腐剤、またはストロベリーフレーバーあるいはペパーミントなどのフレーバー類などを添加剤として用いて製造する。
　カプセル剤、錠剤、散剤または顆粒剤などは、乳糖、ブドウ糖、ショ糖あるいはマンニトールなどの賦形剤、デンプンあるいはアルギン酸ナトリウムなどの崩壊剤、ステアリン酸マグネシウムあるいはタルクなどの滑沢剤、ポリビニルアルコール、ヒドロキシプロピルセルロースあるいはゼラチンなどの結合剤、脂肪酸エステルなどの界面活性剤またはグリセリンなどの可塑剤などを添加剤として用いて製造する。
　非経口投与に適当な製剤としては、注射剤、座剤または噴霧剤などである。
　注射剤は、塩溶液、ブドウ糖溶液、またはその両者の混合物からなる担体などを用いて製造する。
　座剤はカカオ脂、水素化脂肪またはカルボン酸などの担体を用いて製造する。
　噴霧剤は受容者の口腔および気道粘膜を刺激せず、かつ本発明のモノクローナル抗体またはその抗体断片を微細な粒子として分散させ、吸収を容易にさせる担体などを用いて製造する。担体としては、例えば乳糖またはグリセリンなどを用いる。また、エアロゾルまたはドライパウダーとして製造することもできる。
　さらに、上記非経口剤においても、経口投与に適当な製剤で添加剤として例示した成分を添加することもできる。
6．本発明の抗CD4モノクローナル抗体またはその抗体断片を用いた疾患の診断方法
　本発明のモノクローナル抗体または該抗体断片を用いて、CD4またはCD4が発現した細胞を検出または測定することにより、CD4が関連する疾患を診断することができる。
　CD4が関連する疾患の一つである癌の診断は、例えば、以下のようにCD4の検出または測定して行うことができる。
　患者体内の癌細胞に発現しているCD4をフローサイトメーターなどの免疫学的手法を用いて検出することにより診断を行うことができる。
　免疫学的手法とは、標識を施した抗原または抗体を用いて、抗体量または抗原量を検出または測定する方法である。例えば、放射性物質標識免疫抗体法、酵素免疫測定法、蛍光免疫測定法、発光免疫測定法、ウェスタンブロット法または物理化学的手法などを用いる。
　放射性物質標識免疫抗体法は、例えば、抗原または抗原を発現した細胞などに、本発明の抗体または該抗体断片を反応させ、さらに放射線標識を施した抗イムノグロブリン抗体または結合断片を反応させた後、シンチレーションカウンターなどで測定する。
　酵素免疫測定法は、例えば、抗原または抗原を発現した細胞などに、本発明の抗体または該抗体断片を反応させ、さらに標識を施した抗イムノグロブリン抗体または結合断片を反応させた後、発色色素を吸光光度計で測定する。例えばサンドイッチELISA法などを用いる。酵素免疫測定法で用いる標識体としては、公知[酵素免疫測定法，　医学書院　（1987）]の酵素標識を用いることができる。例えば、アルカリフォスファターゼ標識、ペルオキシダーゼ標識、ルシフェラーゼ標識、またはビオチン標識などを用いる。サンドイッチELISA法は、固相に抗体を結合させた後、検出または測定対象である抗原をトラップさせ、トラップされた抗原に第2の抗体を反応させる方法である。該ELISA法では、検出または測定したい抗原を認識する抗体または抗体断片であって、抗原認識部位の異なる2種類の抗体を準備し、そのうち、第1の抗体または抗体断片を予めプレート（例えば、96ウェルプレート）に吸着させ、次に第2の抗体または抗体断片をFITCなどの蛍光物質、ペルオキシダーゼなどの酵素、またはビオチンなどで標識しておく。上記の抗体が吸着したプレートに、生体内から分離された、細胞またはその破砕液、組織またはその破砕液、細胞培養上清、血清、胸水、腹水、または眼液などを反応させた後、標識したモノクローナル抗体または抗体断片を反応させ、標識物質に応じた検出反応を行う。濃度既知の抗原を段階的に希釈して作製した検量線より、被験サンプル中の抗原濃度を算出する。サンドイッチELISA法に用いる抗体としては、ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体のいずれを用いてもよく、Fab、Fab’、またはF（ab）2などの抗体フラグメントを用いてもよい。サンドイッチELISA法で用いる2種類の抗体の組み合わせとしては、異なるエピトープを認識するモノクローナル抗体または抗体断片の組み合わせでもよいし、ポリクローナル抗体とモノクローナル抗体または抗体断片との組み合わせでもよい。
　蛍光免疫測定法は、文献[Monoclonal Antibodies-Principles and practice, Third edition,Academic Press (1996）、単クローン抗体実験マニュアル，　講談社サイエンティフィック　(1987)]などに記載された方法で測定する。蛍光免疫測定法で用いる標識体としては、公知[蛍光抗体法，　ソフトサイエンス社 (1983)]の蛍光標識を用いることができる。例えば、FITC、またはRITCなどを用いる。
　発光免疫測定法は文献[生物発光と化学発光　臨床検査42，　廣川書店 (1998)]などに記載された方法で測定する。発光免疫測定法で用いる標識体としては、公知の発光体標識があげられ、アクリジニウムエステル、ロフィンなどを用いる。
　ウェスタンブロット法は、抗原または抗原を発現した細胞などをSDS（ドデシル硫酸ナトリウム）-PAGE[Antibodies - A Laboratory Manual Cold Spring Harbor Laboratory (1988)]で分画した後、該ゲルをポリフッ化ビニリデン（PVDF）膜またはニトロセルロース膜にブロッティングし、該膜に抗原を認識する抗体または抗体断片を反応させ、さらにFITCなどの蛍光物質、ペルオキシダーゼなどの酵素標識、またはビオチン標識などを施した抗マウスIgG抗体または結合断片を反応させた後、該標識を可視化することによって測定する。一例を以下に示す。配列番号2で示されるアミノ酸配列を有するポリペプチドを発現している細胞や組織を溶解し、還元条件下でレーンあたりのタンパク量として0．1～30μgをSDS-PAGE法により泳動する。泳動されたタンパク質をPVDF膜にトランスファーし1～10％BSAを含むPBS（以下、BSA-PBSと表記する）に室温で30分間反応させブロッキング操作を行う。ここで本発明のモノクローナル抗体を反応させ、0．05～0．1％のTween-20を含むPBS（以下、Tween-PBSと表記する）で洗浄し、ペルオキシダーゼ標識したヤギ抗マウスIgGを室温で2時間反応させる。Tween-PBSで洗浄し、ECL Western Blotting Detection Reagents(アマシャム社製）などを用いてモノクローナル抗体が結合したバンドを検出することにより、配列番号2で示されるアミノ酸配列を有するポリペプチドを検出する。ウェスタンブロッティングでの検出に用いられる抗体としては、天然型の立体構造を保持していないポリペプチドに結合できる抗体が用いられる。
　物理化学的手法は、例えば、抗原であるCD4と本発明のモノクローナル抗体またはその抗体断片とを結合させることにより凝集体を形成させて、この凝集体を検出することにより行う。この他に物理化学的手法として、毛細管法、一次元免疫拡散法、免疫比濁法あるいはラテックス免疫比濁法[臨床検査法提要，　金原出版 (1998)]などを用いることもできる。ラテックス免疫比濁法は、抗体または抗原を感作させた粒径0．1～1μm程度のポリスチレンラテックスなどの担体を用い、対応する抗原あるいは抗体により抗原抗体反応を起こさせると、反応液中の散乱光は増加し、透過光は減少する。この変化を吸光度あるいは積分球濁度として検出することにより被験サンプル中の抗原濃度などを測定する。
　一方、CD4が発現している細胞の検出または測定は、公知の免疫学的検出法を用いることができるが、好ましくは免疫沈降法、免疫細胞染色法、免疫組織染色法または蛍光抗体染色法などを用いる。
　免疫沈降法は、CD4を発現した細胞などを本発明のモノクローナル抗体またはその抗体断片と反応させた後、プロテインG-セファロースなどのイムノグロブリンに特異的な結合能を有する担体を加えて抗原抗体複合体を沈降させる。または以下のような方法によっても行なうことができる。ELISA用96ウェルプレートに上述した本発明のモノクローナル抗体またはその抗体断片を固相化した後、BSA-PBSによりブロッキングする。抗体が、例えばハイブリドーマ培養上清などの精製されていない状態である場合には、抗マウスイムノグロブリン、抗ラットイムノグロブリン、プロテイン-Aまたはプロテイン-GなどをあらかじめELISA用96ウェルプレートに固相化し、BSA-PBSでブロッキングした後、ハイブリドーマ培養上清を分注して結合させる。次に、BSA-PBSを捨てPBSでよく洗浄した後、CD4を発現している細胞や組織の溶解液を反応させる。よく洗浄した後のプレートより免疫沈降物をSDS-PAGE用サンプルバッファーで抽出し、上記のウェスタンブロッティングにより検出する。
　免疫細胞染色法または免疫組織染色法は、抗原を発現した細胞または組織などを、場合によっては抗体の通過性を良くするため界面活性剤やメタノールなどで処理した後、本発明のモノクローナル抗体と反応させ、さらにFITCなどの蛍光標識、ペルオキシダーゼなどの酵素標識またはビオチン標識などを施した抗イムノグロブリン抗体またはその結合断片と反応させた後、該標識を可視化し、顕微鏡にて顕鏡する方法である。また、蛍光標識の抗体と細胞を反応させ、フロ-サイトメーターにて解析する蛍光抗体染色法[Monoclonal Antibodies - Principles and practice, Third edition,Academic Press (1996)、単クローン抗体実験マニュアル，　講談社サイエンティフィック　(1987)]により検出を行うことができる。特に、CD4の細胞外領域に結合する、本発明のモノクローナル抗体またはその抗体断片は、蛍光抗体染色法により天然型の立体構造を保持して発現している細胞の検出ができる。
　また、蛍光抗体染色法のうち、FMAT8100HTSシステム（アプライドバイオシステム社製）などを用いた場合には、形成された抗体-抗原複合体と、抗体-抗原複合体の形成に関与していない遊離の抗体または抗原とを分離することなく、抗原量または抗体量を測定できる。
　以下、本発明を実施例により具体的に説明するが、本発明は下記実施例に限定されるものではない。
CD4トランスフェクタントの作製
（1）CD4発現ベクターの作製
　ヒトCD4遺伝子配列が組み込まれたベクターは、ベクターpCMV-SPORT6にヒトCD4遺伝子が組み込まれたベクター（Open Biosystems社製、Clone No.5226427、以下pCMV-CD4と記す）から以下のようにして作製した。
　CD4遺伝子断片は、pCMV-CD4を鋳型とし、配列番号79、80で表される塩基配列を有するプライマーを用いて通常のPCR法により増幅した。PCR産物をPCR Purification Kit（QIAGEN社製）により精製し、EcoRIおよびSpeIで制限酵素処理した。ベクターpBluescript II sk(-)（ストラタジーン社製）（以下、pBSと記す）も同様にEcoRIおよびSpeIで制限酵素処理を行い、これら2種類の断片をLigation high（TOYOBO社製）を用いて添付の説明書に従って連結した。得られた組換えプラスミドDNA溶液を用いて大腸菌DH5α株（TOYOBO社製）を形質転換した。形質転換株のクローンよりプラスミドDNAを調製して制限酵素処理により確認し、CD4遺伝子が挿入されたプラスミドpBS/CD4を取得した。こうして得られたCD4遺伝子が組み込まれたpBS/CD4、および動物細胞用発現ベクターpKANTEX93（WO97/10354）をEcoRIおよびSpeIで制限酵素処理した。その反応液をアガロースゲル電気泳動により分画し、CD4のEcoRI-SpeI断片およびpKANTEX93のEcoRI-SpeI断片をそれぞれ回収した。これら2種類の断片をLigation high（TOYOBO社製）を用いて添付の説明書に従って連結した。得られた組換えプラスミドDNA溶液を用いて大腸菌DH5α株（TOYOBO社製）を形質転換した。形質転換株のクローンよりプラスミドDNAを調製して制限酵素処理により確認し、CD4遺伝子が挿入されたプラスミドpKANTEX/CD4を取得した。該プラスミドに関して、BigDye Terminator Cycle Sequencing FS Ready Reaction Kit（PEバイオシステムズ社製）を用いて、添付の説明書に従って反応後、同社のシーケンサーABI PRISM3700により塩基配列を解析した。その結果、ヒトCD4をコードするcDNAがクローニングされたベクターpKANTEX/CD4を取得した。ベクター構築の概略図を図1に示した。
（2）CD4発現CHO/DG44細胞の作製
　上記（1）で作製したCD4発現ベクターpKANTEX/CD4を、エレクトロポレーション法[Cytotechnology, 3, 133(1990）]により、以下のようにしてCHO/DG44細胞[Somatic Cell and Molecular Genetics, 12, 555 (1986)]へ導入した。細胞は、10％ウシ胎児血清（ライフテクノロジーズ社製）およびGentamicin（ナカライテスク社製、50μg/mL）を添加したIMDM培地（インビトロジェン社製）（以下、A3倍地と表記する）に、1×HT supplement（インビトロジェン社製）を添加した培地で継代したものを用いた。CHO/DG44細胞を137nmol/L塩化カリウム、2．7nmol/L塩化ナトリウム、8．1mmol/Lリン酸一水素二ナトリウム、1．5nmol/Lリン酸二水素一ナトリウムおよび4mmol/L塩化マグネシウムを含む緩衝液（以下、K-PBSと表記する）に懸濁して8×106細胞/mLとし、得られた細胞懸濁液200μL（1．6×106個の細胞）を発現プラスミドpKANTEX/CD4（8μg）と混和した。この混和液をキュベット（電極間距離2mm）に移し、GenePulserII（バイオラッド社製）を用いてパルス電圧0．35kV、電気容量250μFの条件で遺伝子導入を行った。キュベットを氷上で静置後、キュベット中の細胞懸濁液を、A3培地を含む細胞培養用容器に懸濁し、37℃、5％炭酸ガス培養器中で培養した。その後、G418（インビトロジェン社製、0．5mg/mL）を添加した培地で培養し、G418に耐性を有する形質転換細胞株を取得した。更にメソトレキセートを培地に添加し、段階的に濃度を上昇させることにより、CD4を高発現するクローンを選択し、CD4発現CHO細胞株（CHO/CD4細胞、またはCD4トランスフェクタントと記す）を取得した。
CD4-Fcの作製
（1）CD4-Fc発現ベクターの作製
　実施例1（1）で作製した、ヒトCD4遺伝子が入ったベクターpBS/CD4とベクターpKANTEX93を混合して鋳型とし、配列番号79、80、81、82で表される4種の合成オリゴヌクレオチドをプライマーとしてPCR反応を行った。この反応により、CD4タンパク質の細胞外領域をコードする遺伝子とFc領域の遺伝子を連結した遺伝子配列を合成した（以下CD4‐Fc遺伝子と表す）。こうして得られたPCR産物をアガロースゲル電気泳動により分画し、目的のCD4‐Fc遺伝子（約2kbp）を切り出して精製した。精製産物をテンプレートとして配列番号79、82で表される2種類のプライマーを用いて再度PCR反応を行うことにより、CD4-Fc遺伝子を増幅した。このPCR産物をアガロースゲル電気泳動により分画し、約2kbpの目的遺伝子CD4-Fcを切り出してEcoRIおよびSpeIで制限酵素処理することにより、CD4-Fc遺伝子のEcoRI-SpeI断片を取得した。同様にベクターpKANTEX93をEcoRおよびSpeで制限酵素処理を行い、これら2種類の断片をLigation High（TOYOBO社製）を用いて連結した。得られた組換えプラスミドDNA溶液を用いて大腸菌DH5α株（TOYOBO社製）を形質転換した。形質転換株のクローンよりプラスミドDNAを調製して制限酵素処理により確認し、CD4‐Fc遺伝子が挿入されたプラスミドpKANTEX/CD4―Fcを取得した。該プラスミドに関して、BigDye Terminator Cycle Sequencing FS Ready Reaction Kit（PEバイオシステムズ社製）を用いて、添付の説明書に従って反応後、同社のシーケンサーABI PRISM3700により塩基配列を解析した。その結果、CD4-FcをコードするcDNAがクローニングされたベクターpKANTEX/CD4-Fcを取得した。ベクター構築の概略図を図2に示した。
（2）CD4-Fcの発現
　上記（1）で作製したpKANTEX/CD4‐Fcを用いて、常法[Antibody Engineering, A Practical Guide，W．H.Freeman and Company（1992）]により、CD4-Fcを発現させたCHO細胞を取得した（以下、CHO/CD4-Fcと記す）。
（3）可溶性CD4-Fcの精製
　上記（2）で作製したCHO/CD4-Fcを、実施例1（2）の方法と同様な培養条件で培養した後、細胞懸濁液を回収し、3000rpm、4℃の条件で20分間の遠心分離を行い、培養上清を回収した後、0．22μm孔径MillexGVフィルター（Millipore社製）を通して濾過滅菌した。得られた培養上清よりProtein A High-capacityレジン（Millipore社製）カラムを用いて、添付の説明書に従い、CD4-Fcタンパク質の精製を行った。
抗CD4モノクローナル抗体の作製
（1）免疫原の調製
　抗CD4モノクローナル抗体を取得するため、リコンビナントヒトCD4（R＆Dシステム社製、カタログ番号　514-CD/CF）凍結乾燥品をダルベッコリン酸バッファー（Phosphate　buffered saline：PBS）にて溶解したもの、または実施例2（3）で調整したヒトCD4-Fc融合蛋白（以下CD4-Fcと表記する）を免疫原として用いた。
（2）動物の免疫と抗体産生細胞の調製
　リコンビナントヒトCD4または実施例2（3）で作製したCD4-Fcの20μgを水酸化アルミニウムアジュバント〔Antibodies - A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, p99、1988〕2mgを百日咳ワクチン（千葉県血清研究所製）1×109細胞とともにSDラット（日本SLC社）に投与した。投与2週間後より、該CD4　20μgと水酸化アルミニウムアジュバント2mgのみを1週間に1回、計4回投与した。該ラットの眼底静脈より部分採血し、その血清抗体価をCD4バインディングELISAで確認し、十分な抗体価を示したラットから最終免疫3日後に脾臓を摘出した。脾臓をMEM（Minimum Essential Medium）培地（日水製薬社製）中で細断し、すりつぶして遠心分離（1200 rpm、5分間）した。得られた沈殿画分にトリス-塩化アンモニウム緩衝液（pH7．6）を添加し、37℃で1分間処理することにより赤血球を除去した。得られた沈殿画分（細胞画分）をMEM培地で3回洗浄し、細胞融合に用いた。
（3）CD4バインディングELISA
　アッセイには96ウェルのELISA用プレート（グライナー社）を用いた。実施例1（1）で調製した2μg/mLリコンビナントヒトCD4をプレートに50μL/ウェルで分注し、4℃で一晩静置して吸着させたものを用いた。該プレートをPBSで洗浄後、1％牛血清アルブミン（BSA）-PBS（以下、BSA-PBSと記す）を100μL/ウェル加え、室温で1時間静置して残っている活性基をブロックした。その後、BSA-PBSを捨て、該プレートに一次抗体として被免疫ラット血清を適宜希釈して50μL/ウェル分注し、2時間静置した。該プレートを0．05％ポリオキシエチレン（20）ソルビタンモノラウレート[（ICI社商標Tween 20相当品：和光純薬工業社製）]/PBS（以下Tween‐PBSと表記）で洗浄後、2次抗体としてペルオキシダーゼ標識ヤギ抗ラットIgG（H＋L鎖）抗体（ZYMED社）を50μL/ウェル加えて1時間室温で静置した。該プレートをTween‐PBSで洗浄し、ABTS〔2．2‐アジノビス（3‐エチルベンゾチアゾール-6-スルホン酸）アンモニウム〕基質液〔1 mmoL/L　ABTS、．1moL/L　クエン酸バッファー（pH4．2）、0．1％H2O2〕を50μL/ウェル添加して発色させ、5％SDS（Sodium Lauryl Sulfate）溶液を50μL/ウェル添加して反応を止めてOD415nmの吸光度をプレートリーダーEmax（Molecular Devices社）を用いて測定した。
（4）マウス骨髄腫細胞の調製
　8-アザグアニン耐性マウス骨髄腫細胞株P3X63Ag8U.1（P3-U1：ATCCより購入）を10％ウシ胎児血清添加RPMI1640（インビトロジェン社）で培養し、細胞融合時に2×107個以上の細胞を確保し、細胞融合に親株として供した。
（5）FMAT法による培養上清の測定
　実施例1で作製したCD4トランスフェクタントまたは陰性対象としてCHO/DC44細胞を、96ウェルFMAT用プレート（アプライドバイオシステム社製）に、1×104細胞/50μL/ウェルの細胞数で播種し、37℃、5％CO2インキュベーター内で一晩培養した。該プレートにハイブリドーマの培養上清を10μL/ウェル添加し、すぐにBSA-PBSで希釈したAlexa-647標識ヤギ抗ラットIgG（H+L）抗体（インビトロジェン社製）を50μL/ウェル加え、遮光して室温で3時間静置した。その後、レーザー光　633nm　He/Neで励起される650nm～685nmの波長を、8200 Cellular Detection System（アプライドバイオシステム社製）を用いて測定した。以下、この測定法をFMAT法とする。
（6）ハイブリドーマの作製
　実施例3（2）で得られたマウス脾細胞と実施例3（4）で得られた骨髄腫細胞とを10：1になるよう混合し、遠心分離（1200rpm、5分間）した。得られた沈澱画分の細胞群をよくほぐした後、攪拌しながら、37℃で、ポリエチレングリコール-1000（PEG-1000）1g、Minimum Essential Medium（以下、MEM培地）1mL、およびDMSO（ジメチルスルホキシド）0．35mLの混液を1×108個のマウス脾細胞あたり0．5mL加え、該懸濁液に1分間毎にMEM培地1mLを数回加えた後、MEM培地を加えて全量が50mLになるようにした。該細胞懸濁液を遠心分離（900rpm、5分間）し、得られた沈澱画分の細胞をゆるやかにほぐした後、HAT培地〔10％ウシ胎児血清添加RPMI1640培地にHAT Media Supplement（インビトロジェン社製）を加えた培地〕100mL中にゆるやかに懸濁した。該懸濁液を96ウェル培養用プレートに200μL/ウェルずつ分注し、5％CO2インキュベーター中、37℃で10～14日間培養した。培養後、培養上清を実施例3（5）に記載のFMAT法で測定し、実施例1で作製したCHO/CD4には反応し、CHO/DG44細胞には反応しないウェルを選択した。次に、選択されたCD4特異的抗体を産生している細胞を、限界希釈法によるクローニングを2回繰り返して行い、抗CD4モノクローナル抗体産生ハイブリドーマKM4065、KM4066、KM4067、KM4068およびKM4069を確立した。
抗CD4ラットモノクローナル抗体の活性評価
（1）FCMを用いたヒトCD4陽性セルラインに対する抗CD4ラットモノクローナル抗体の反応性
1～5×105細胞のヒトT細胞リンパ腫細胞株HPB-ALLに、ヒトIgG（シグマ社製）を1mg/mL加えて細胞をブロッキングし、抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065～KM4069および抗CD4マウス抗体OKT4（BioLegend社製）をBSA-PBSで適宜希釈して添加し、全量を50μLとした。これらの細胞懸濁液を氷上で60分間反応させた後、BSA-PBSを用いて細胞を2回洗浄した。該細胞に、BSA-PBSで希釈調製したAlexa-488標識抗ラットIgG（H＋L）ヤギ抗体（インビトロジェン社製）を50μL添加し、氷上で40分間反応させた。BSA-PBSで細胞を1回洗浄した後、BSA-PBSに懸濁して、フローサイトメーター（ベックマン・コールター社製）用いて、蛍光強度を測定した。
　図3に、上記モノクローナル抗体を5、0．5および0．05μg/mLで反応させた場合の平均蛍光強度（MFI値）を示す。抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065～KM4069、および抗CD4マウス抗体OKT4はいずれも抗体濃度依存的にCD4陽性細胞株へ結合することが確認された。
（2）Biacoreを用いたリコンビナントヒトCD4に対する抗CD4ラットモノクローナル抗体の結合活性
　抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065～KM4069および市販抗ヒトCD4マウス抗体の、リコンビナントヒトCD4に対する結合活性を反応速度論的に解析するため、表面プラズモン共鳴法（SPR法）を用いて結合活性測定を行った。以下の操作は全てBiacore T100（GEヘルスケアバイオサイエンス社製）を用いて行った。Mouse Antibody Capture Kit（GEヘルスケアバイオサイエンス社製）を用い、添付のプロトコールに従い、抗マウスIgG抗体をアミンカップリング法によりCM5センサーチップ（GEヘルスケアバイオサイエンス社製）に固層化した。抗マウスIgG抗体を固層化したチップに、抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065～KM4069、Leu-3a（BDバイオサイエンス）、OKT4（バイオレジェンド）および13B8．2（ベックマンコールター）をぞれぞれ添加し、100RU（レゾナンス ユニット）になるようにセンサーチップ上にキャプチャーさせた。その後2500ng/mLから5段階に希釈したリコンビナントヒトCD4（R＆D社製）を、30μL/minの速度でチップ上に流し、各濃度におけるセンサーグラムを取得した。装置添付の解析ソフトを用い、1：1バインディングモデルを用いて解析し、各抗体のヒトCD4に対する結合速度定数ka及び解離速度定数kdを算出した。
　その結果、取得した各抗体の結合速度定数（以下、kaと記す）、解離速度定数（以下、kdと記す）および解離定数KD（kd/ka）を表2に示した。
　表2に示すように、抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065およびKM4066は既存抗体よりも高いアフィニティ-を示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
（3）抗CD4ラットモノクローナル抗体のCD4トランスフェクタントに対する補体依存性細胞傷害活性（CDC活性）の評価
　実施例1で作製したCD4トランスフェクタントに対する抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4066～KM4068および抗CD4マウス抗体OKT4のCDC活性を、ラットハイブリドーマの培養上清を用いて、以下に示す方法に従って測定した。
　CD4トランスフェクタントをPBSで洗浄後、10％ウシ胎児血清（FBS）を含むRPMI1640培地（和光純薬工業社製）で洗浄し、同培地で至適濃度に調製して標的細胞懸濁液とした。1ウェル当たり5×104個となるよう、標的細胞懸濁液を96well平底プレート（住友ベークライト社製）に分注し、更に、適当な濃度に調製した抗CD4キメラ抗体溶液及び終濃度が25％のヒト補体（SIGMA社製）を添加し、全量100μL/ウェルに調製した。また、陰性対照として抗体を含まない反応ウェル（0％細胞傷害活性ウェル）、陽性対照として細胞を含まない反応ウェル（100％細胞傷害活性ウェル）をそれぞれ用意した。37℃、5％CO2インキュベーターにおいて3時間反応を行った。反応終了後、各反応ウェルに10μLのWST-1試薬（ロシュ社製）を加え、37℃で3時間程度反応させ、各ウェルにおけるOD450をプレートリーダーEmax（Molecular Devices社）を用いて測定した。各ウェルの吸光度より以下の式を用いてCDC活性（細胞傷害活性[％]）を算出した。
（式）
CDC活性（細胞傷害活性[％]）＝100×｛1-（反応ウェルの吸光度―100％Lysisウェルの吸光度）/（0％Lysisウェルの吸光度―100％Lysisウェルの吸光度）｝
　その結果を図4に示した。図4に示されるように、既存の抗CD4マウス抗体OKT4はCDC活性を有し、同様に本発明で取得した抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4066～KM4068は、いずれのクローンもCDC活性を示した。
　抗CD4モノクローナル抗体の可変領域をコードするcDNAの単離、解析
（1）抗CD4モノクローナル抗体産生ハイブリドーマ細胞からのmRNAの調製
　実施例3で取得した各ハイブリドーマKM4065～KM4069それぞれ、5×107～1×108個の細胞より、RNAeasy Mini kit（QIAGEN社製）およびOligotexTM-dT30<Super>mRNA Purification Kit（TaKaRa社製）を用いて、それぞれ添付の使用説明書に従い、各抗CD4ラットモノクローナル抗体のmRNAを調製した。
（2）抗CD4モノクローナル抗体のH鎖およびL鎖可変領域の遺伝子クローニング
　実施例5（1）で取得したモノクローナル抗体のmRNA　0.5μgから、SMART RACE cDNA Amplification Kit（Clontech社製）を用いて、添付の使用説明書に従ってcDNAを取得した。取得したcDNAを鋳型として、キット添付のユニバーサルプライマーAmixと、ラットIgG1に特異的なプライマー（配列番号3）、ラットIgG2aに特異的なプライマー（配列番号4）、またはIgG2bに特異的なプライマー（配列番号5）とを用いて、それぞれPCR反応を行い、各抗体の重鎖可変領域（以下、VHと記す）のcDNA断片を増幅した。また抗体の各サブクラス特異的プライマーの代わりにラットIg（κ）特異的プライマー（配列番号6）を用いてPCRを行い、各抗体の軽鎖可変領域（以下、VLと記す）のcDNA断片を増幅した。いずれの抗体サブクラスにおいても、PCR反応は、94℃で5分間加熱後、94℃で15秒間、72℃で3分間からなる反応サイクルを5回、94℃で15秒間、70℃で30秒間、72℃で3分間からなる反応サイクルを5回、94℃で15秒間、68℃で30秒間、72℃で3分間からなる反応サイクルを30回それぞれ行った後、72℃で10分間反応させて行った。PCR反応は、PTC-200 DNA Engine（BioRad社製）を用いて行った。
　次に、クローニングして塩基配列を決定するため、取得したPCR産物をアガロースゲル電気泳動で分離し、VH遺伝子断片およびVL遺伝子断片をGel Extraction Kit（QIAGEN社製）を用いて、ぞれぞれ抽出した。次に、Target Clone Plus（TOYOBO社製）を用いて、添付の説明書に従って、得られた抽出断片にデオキシアデニン（dA）を付加した後、pTA2ベクターに各抗体のVHまたはVLを組み込んだ。こうして得られたベクターを用いて、Competent Quick（TOYOBO社製）の付属の取扱説明書に従って大腸菌DH5α株を形質転換した。得られた形質転換体より自動プラスミド抽出機（クラボウ社製）を用いてプラスミドを抽出した。クローニングしたPCR産物の塩基配列は、抽出したプラスミドを、BigDye Terminator Cycle Sequencing FS Ready Reaction Kit（PEバイオシステムズ社製）を用いて、添付の説明書に従って反応させた後、同社のシーケンサーABI PRISM3700を用いて解析した。その結果、cDNAの5’末端に開始コドンと推定されるATG配列が存在する、完全長のVHのcDNAを含むプラスミドおよびVLのcDNAを含むプラスミドが取得された。クローニングの概略を図5に示した。
（3）抗CD4モノクローナル抗体可変領域の遺伝子配列の解析
　実施例5（2）で得られたプラスミドに含まれていた、抗CD4モノクローナル抗体KM4065～KM4069のVHの全塩基配列を配列番号7～11に、該配列から推定されるシグナル配列を含んだVHの全アミノ酸配列を配列番号12～16に、またVLの全塩基配列を配列番号17～21に、該配列から推定されるシグナル配列を含んだVLの全アミノ酸配列を配列番号22～26にそれぞれ示した。既知のラット抗体の配列データ[SEQUENCES of Proteins of Immunological Interest、US Dept.Health and Human Services(1991）]との比較から、単離した各々のcDNAは分泌シグナル配列を含む抗CD4モノクローナル抗体KM4065～KM4069の可変領域（以下、V領域と記す）をコードする完全長cDNAであり、KM4065のH鎖については配列番号12に記載のアミノ酸配列の1から19番目が、KM4065のL鎖については配列番号22に記載のアミノ酸配列の1から20番目が分泌シグナル配列であり、KM4066のH鎖については配列番号13に記載のアミノ酸配列の1から19番目が、KM4066のL鎖については配列番号23に記載のアミノ酸配列の1から19番目が分泌シグナル配列であり、KM4067のH鎖については配列番号14に記載のアミノ酸配列の1から18番目が、KM4067のL鎖については配列番号24に記載のアミノ酸配列の1から20番目が分泌シグナル配列であり、KM4068のH鎖については配列番号15に記載のアミノ酸配列の1から19番目が、KM4068のL鎖については配列番号25に記載のアミノ酸配列の1から20番目が分泌シグナル配列であり、KM4069のH鎖については配列番号16に記載のアミノ酸配列の1から19番目が、KM4069のL鎖については配列番号26に記載のアミノ酸配列の1から20番目が分泌シグナル配列であることが明らかとなった。
　次に、抗CD4モノクローナル抗体KM4065～KM4069のVHおよびVLのアミノ酸配列の新規性について検討した。配列解析システムとしてGCG Package（version 9．1、Genetics Computer Group社製）を用い、既存のタンパク質のアミノ酸配列データベースをBLASTP法[Nucleic Acids Res．，25,3389(1997)]により検索した。その結果、VH、VLともに完全に一致するアミノ酸配列は認められず、抗CD4モノクローナル抗体KM4065～KM4069のVHおよびVLは新規なアミノ酸配列を有していることが確認された。
　また、各モノクローナル抗体のVHおよびVLのCDRを、既知の抗体のアミノ酸配列と比較することにより同定した。抗CD4モノクローナル抗体KM4065のVHのCDR1、CDR2およびCDR3のアミノ酸配列を配列番号27、28および29に、VLのCDR1、CDR2およびCDR3のアミノ酸配列を配列番号30、31および32にそれぞれ示した。抗CD4モノクローナル抗体KM4066のVHのCDR1、CDR2およびCDR3のアミノ酸配列を配列番号33、34および35に、VLのCDR1、CDR2およびCDR3のアミノ酸配列を配列番号36、37および38にそれぞれ示した。抗CD4モノクローナル抗体KM4067のVHのCDR1、CDR2およびCDR3のアミノ酸配列を配列番号39、40および41に、VLのCDR1、CDR2およびCDR3のアミノ酸配列を配列番号42、43および44にそれぞれ示した。抗CD4モノクローナル抗体KM4068のVHのCDR1、CDR2およびCDR3のアミノ酸配列を配列番号45、46および47に、VLのCDR1、CDR2およびCDR3のアミノ酸配列を配列番号48、49および50にそれぞれ示した。抗CD4モノクローナル抗体KM4069のVHのCDR1、CDR2およびCDR3のアミノ酸配列を配列番号51、52および53に、VLのCDR1、CDR2およびCDR3のアミノ酸配列を配列番号54、55および56にそれぞれ示した。
　抗CD4キメラ抗体の作製
（1）抗CD4キメラ抗体発現ベクターの構築
　本発明で作製するキメラ抗体は、実施例5（2）で得られた抗CD4ラットモノクローナル抗体の重鎖および軽鎖の可変領域に、US2007/0148165に開示されているヒトIgG1抗体のFc領域の一部をヒトIgG3抗体のFcに置換したアミノ酸配列からなる、強いCDC活性を有する重鎖定常領域（以下、113F型と記す）およびヒトκの軽鎖定常領域をそれぞれ連結したキメラ抗体である。方法としては、抗CD20抗体の可変領域が含まれる高CDC型キメラ抗体発現ベクターPKTX93/113F（US2007/0148165に記載）と、実施例5（2）で得られた各モノクローナル抗体のVHまたはVLが含まれているpTA2ベクターを用いて、抗CD4キメラ抗体発現ベクターを以下のようにして構築した（図5、図6）。
　各モノクローナル抗体のVHまたはVLが含まれたTA2ベクターを鋳型として100ng使用し、10×KOD Plus緩衝液5μL、2mmol/L dNTP　5μL、25mmol/Lの塩化マグネシウムを2μL、DMSOを2．5μL、KOD plus　polymerase（TOYOBO社製）を1μL、各抗CD4ラットモノクローナル抗体のVHおよびVLに特異的な10μmol/Lのプライマーを、それぞれ1μLを含む、全量50μLからなる溶液を調製した。該調製した溶液を用いて、94℃で2分間加熱後、94℃で15秒間、60．6℃で30秒間、68℃で1分間の反応を30サイクルのPCR反応を行った。KM4065のVHのプライマーは配列番号57および58、VLのプライマーは配列番号59および60、KM4066のVHのプライマーは配列番号61および62、VLのプライマーは配列番号63および64、KM4067のVHのプライマーは配列番号65および66、VLのプライマーは配列番号67および68、KM4068のVHのプライマーは配列番号69および70、VLのプライマーは配列番号71および72、KM4069のVHのプライマーは配列番号73および74、VLのプライマーは配列番号75および76に示す。
　それぞれのPCR反応産物をPCR Purification Kit(QIAGEN社製）を用いて精製した。得られた各抗体のVHは、ApaI（New England Biolabs社製）およびNotI（New England Biolabs社製）を用いて制限酵素処理を行い、VHのNotI-ApaI断片を取得した。また、各抗体のVLは、BsiWI（New England Biolabs社製）およびEcoRI（New England Biolabs社製）を用いて制限酵素処理を行い、VLのEcoRI-BsiWI断片を取得した。高CDC型キメラ抗体発現ベクターPKTX93/113Fも、同様にNotIおよびApaI、またはEcoRIおよびBsiWIで制限酵素処理を行った。以下は、実施例1（1）と同様の方法で行い、抗CD4モノクローナル抗体KM4065～KM4069のVHをコードするcDNAがクローニングされたベクターと、抗CD4モノクローナル抗体KM4065～KM4069のVLをコードするcDNAがクローニングされたベクターを取得した。取得した各抗体のVHまたはVLが組み込まれたPKTX93/113FベクターにEcoRIおよびNotIを加えて制限酵素処理を行い、VLのEcoRI-NotI断片と、VHが組み込まれたPKTX93/113FベクターのNotI-EcoRI断片を取得した。以下は、実施例1（1）と同様の方法で行い、抗CD4モノクローナル抗体KM4065～KM4069のVHおよびVLをコードするcDNAがそれぞれクローニングされた、抗CD4キメラ抗体発現ベクターを取得した。ベクター構築の概略図を図6に示した。また、抗CD4モノクローナル抗体KM4065～KM4069から作製した抗CD4キメラ抗体を、それぞれ抗CD4キメラ抗体KM4045～KM4049とした（表3）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
（2）動物細胞を用いた抗CD4キメラ抗体の発現
　実施例6（1）で得られた抗CD4キメラ抗体発現ベクターを用いて抗CD4キメラ抗体の動物細胞での発現を、常法[Antibody Engineering, A Practical Guide，W．H.Freeman and Company（1992）]により行い、抗CD4キメラ抗体を産生する形質転換株KM4045～KM4049を取得した。発現させる動物細胞株としては、α1，6-フコシルトランスフェラーゼ（FUT8）の遺伝子をダブルノックアウトしたCHO/DG44細胞株(以下、FUT8ノックアウトCHO細胞)を用いた。この宿主細胞株で発現させた抗体のN-結合型複合型糖鎖のコア部分には、フコースが付加されないことが知られている（WO2002/31140）。
（3）精製キメラ抗体の取得
　上記（2）で得られた形質転換株KM4045～KM4049を、通常の培養法で培養した後、細胞懸濁液を回収し、3000rpm、4℃の条件で20分間の遠心分離を行い、培養上清を回収した後、0．22μm孔径MillexGVフィルター（Millipore社製）を通して濾過滅菌した。得られた培養上清よりProtein A High-capacityレジン（Millipore社製）カラムを用いて、添付の説明書に従い、抗CD4キメラ抗体KM4045～KM4049を精製した。
（4）抗CD4ヒト抗体6G5のIgG1型抗体および113F型抗体の作製
　本発明の抗CD4モノクローナル抗体の活性と比較するために、既存の抗CD4ヒト抗体6G5の可変領域と、通常のヒトIgGFc領域または高CDC活性型113F型Fc領域を有する2種類の抗体（以下、6G5-1、6G5-113Fと略記する）を作製した。
　抗CD4ヒト抗体6G5のVHおよびVLをコードする遺伝子は、US2006/0183195に開示されている配列情報に基づき、それぞれ配列番号89～92の合成オリゴDNA、配列番号83～88の合成オリゴDNAと、可変領域の両端に位置するT3プライマーおよびT7プライマーを用いて、PCR反応を行って作製した。PCR反応で増幅した6G5抗体のVHまたはVL遺伝子断片をpBluescript　II　sk（-）ベクター（ストラタジーン社製）と連結してサブクローニングを行った。これ以降は、実施例1または実施例6（2）と同様にして行い、6G5.1-1発現ベクターおよび6G5．1-113F発現ベクターを作製した（図7）。作製した6G5.1-1発現ベクターは、CHO/DG44細胞およびFUT8ノックアウトCHO細胞（WO2002/31140）の両方で発現させ、6G5．1-113F発現ベクターは、FUT8ノックアウトCHO細胞で発現させた。発現ベクターの導入、発現株の取得、細胞培養および抗体精製は、上述実施例6（2）および（3）と同様にして行い、その結果、抗体のN結合複合型糖鎖の還元末端に存在するN-アセチルグルコサミンにフコースがα1,6結合している6G5-1抗体（以下、6G5-1と記す）、フコースが結合していない6G5-1抗体（以下、6G5-Pと記す）および抗体のFc領域のN結合複合型糖鎖にフコースが結合していない6G5-113F抗体（以下、6G5-113Fと記す）を取得した。
（5）抗CD4キメラ抗体のフコース含量測定
　WO2002/31140に記載の方法に従い、各抗CD4キメラ抗体および6G5-1抗体のFc領域のN結合複合型糖鎖の還元末端に存在するN-アセチルグルコサミンの6位にフコースの1位がα結合していない糖鎖の割合を調べた。結果を表4に示す。
　この結果から、実施例6（3）で作製したキメラ抗体にはフコースが付加していないことが明らかになった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
抗CD4キメラ抗体の活性評価
　以下の（1）から（4）では、実施例6で得られた抗CD4キメラ抗体KM4045～KM4049、実施例6（5）で作製した6G5-1、6G5-Pおよび6G5-113Fの活性評価を行った。
（1）バインディングELISA法による抗CD4キメラ抗体のリコンビナントヒトCD4への結合活性評価
　バインディングELISAは、実施例2（3）と同様にして行った。1次抗体には実施例6で取得した抗CD4キメラ抗体KM4045～KM4049、および6G5-1、6G5-P、6G5-113Fを、1μg/mLから5倍希釈で段階的に希釈したものを用いた。結果を図8に示した。
　その結果、抗CD4キメラ抗体KM4045～KM4049、6G5-1、6G5-Pおよび6G5-113Fは、いずれもリコンビナントヒトCD4に結合した。また、抗CD4キメラ抗体KM4045、KM4046、KM4048およびKM4049は、6G5-1、6G5-Pおよび6G5-113Fよりも、非常に強くリコンビナントCD4に結合した。
（2）ビアコアによる抗CD4キメラ抗体のリコンビナントヒトCD4への結合活性評価
　抗CD4キメラ抗体KM4045～KM4049、6G5-1および6G5-PのリコンビナントヒトCD4に対する結合活性を反応速度論的に解析するため、表面プラズモン共鳴法（SPR法）を用いて結合活性測定を行った。以下の操作は全てBiacore　T100（GEヘルスケアバイオサイエンス社製）を用いて行った。Human　Antibody　Capture　Kit（GEヘルスケアバイオサイエンス社製）を用い、添付のプロトコールに従い、抗ヒトIgG抗体をアミンカップリング法によりCM5センサーチップ（GEヘルスケアバイオサイエンス社製）に固層化した。抗ヒトIgG抗体を固層化したチップに測定サンプル（抗CD4キメラ抗体KM4045～KM4049）を添加し、100RU（resonance ユニット）になるようにキャプチャーさせた。その後、2500ng/mLから5段階に希釈したリコンビナントヒトCD4（R＆D社製）を30μL/minの速度でチップ上に流し、各濃度におけるセンサーグラムを取得した。装置添付の解析ソフトBiacore T100 Evaluation software（Biacore社製）を用い、1：1バインディングモデルを用いて解析し、各抗体のヒトCD4に対する結合速度定数ka及び解離速度定数kdを算出した。
　その結果得られた各抗体の結合速度定数ka、解離速度定数kdおよび解離定数KD（kd/ka）を表5に示した。
　表5に示すように、キメラ抗体KM4045～KM4049はいずれも、既存の抗CD4ヒト抗体6G5-1を上回る高いアフィニティーを示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
*KM4045は解離が遅く、本システムにおける、メーカーが示す解離速度定数kdの測定限界値（1×10-5）を越えていた。

（3）抗CD4キメラ抗体のヒト血液癌細胞株に対する抗体依存性細胞傷害活性（ADCC活性）の評価
　ヒトT細胞リンパ腫細胞株に対する抗CD4キメラ抗体KM4045～KM4049、6G5-1、6G5-P、および6G5-113FのADCC活性を、以下に示す方法に従って測定した。
（3）-1　標的細胞懸濁液の調製
　ヒトT細胞リンパ腫細胞株HPB-ALL、HUT78およびT細胞性リンパ芽球性リンパ腫細胞株SUP-T1をPBSで洗浄後、5％透析済みウシ胎児血清（dFBS）（社製）を含むフェノールレッド不含有RPMI1640培地（インビトロジェン社製）（以下、ADCC用培地と記す）で洗浄し、同培地で至適濃度に調製して標的細胞懸濁液とした。
（3）-2　エフェクター細胞懸濁液の調製
　末梢血単核球（Peripheral blood mononuclear cell:PBMC）は、健常人末梢血から以下に示した方法により分離した。ヘパリンナトリウム注N「シミズ」（清水製薬社製）を0．5mL加えたシリンジを用いて、健常人から健常人末梢血50mLを採血した。採取した末梢血に同量の生理食塩水（大塚製薬製）を加えて希釈し、良く攪拌した。15mLチューブ（Greiner社製）に4．7mLずつ分注したLymphoprep（Axis-Shield社製）の上に、10mLの希釈末梢血を静かに重層し、2000rpm、ブレーキオフ、室温の条件で20分間遠心分離して、単核球層を分離した。こうして得られた単核球画分を、ADCC用培地を用いて2回洗浄し、同培地により至適な細胞数に調製してエフェクター細胞懸濁液とした。
（3）-3　ADCC活性の測定
CytoTox96 Non-Radioactive Cytotoxicity Assay（Promega社製）を用い、付属の説明書に従い以下の手順で測定した。
　96ウェルU底プレート（FALCON社製）の各ウェルに、各抗体を2μg/mLまたは1μg/mLから段階的に20倍希釈した抗体液を50μL分注し、次に（3）-1で調製した標的細胞懸濁液を2．5×104細胞/50μL/ウェルで分注し、最後に（3）-2で調製したエフェクター細胞懸濁液をは2×105細胞/50μL/ウェルで分注して、全量を150μLとし、37℃で4時間反応させた。よって、エフェクター細胞（E）と標的細胞（T）の比は8で実験を行った。ADCC活性は次式により求めた。結果を図9に示す。
（式）
ADCC活性（％）＝{（[検体の吸光度]-[標的細胞自然遊離の吸光度]-[エフェクター細胞自然遊離の吸光度]）/（[標的細胞全遊離の吸光度]-[標的細胞自然遊離の吸光度]）}×100
　その結果、既存の抗CD4ヒト抗体6G5-1は、ヒトT細胞リンパ腫細胞株HPB-ALLに対し、ADCC活性が認められなかったが、抗体のFc領域のN結合複合型糖鎖にコアフコースが結合していない6G5-Pおよび6G5-113Fは、高いADCC活性が認められ、かつ6G5-Pおよび6G5-113FのADCC活性はほぼ同等の活性であった（図9A）。この結果は、US7，214，775およびCancer Res 2008;68:(10):3863-72に開示されている結果と一致している。
　また、本発明の抗CD4キメラ抗体KM4045、KM4046、KM4047、KM4048およびKM4049はいずれも、ヒトT細胞リンパ腫細胞株HUT78およびヒトT細胞リンパ芽球性リンパ腫細胞株SUP-T1に対して、6G5-Pと同等以上の高いADCC活性を有しており（図9B、C）、更に抗CD4キメラ抗体KM4045、KM4046、KM4048およびKM4049はいずれも、ヒトT細胞リンパ腫細胞株HPB-ALLに対して、6G5-113Fよりも高いADCC活性を有していた（図9D）。
　以上の結果、本発明の抗CD4キメラ抗体KM4045、KM4046、KM4047、KM4048およびKM4049はいずれも、既存の抗CD4ヒト抗体と同等以上の高いADCC活性を有することが明らかになった。
（4）CD4トランスフェクタントおよびヒトT細胞リンパ腫細胞株に対する抗CD4キメラ抗体の補体依存性細胞傷害活性（CDC活性）の評価
　実施例1で作製したCD4トランスフェクタントおよびヒトT細胞リンパ腫細胞株HPB-ALLに対する、抗CD4キメラ抗体KM4045～KM4049のCDC活性を、実施例4（3）と同様にして測定した。
　その結果、既存の抗CD4ヒト抗体6G5-1およびIgG1のFcの一部がIgG3のFcにドメイン交換された113F型のFcを有する6G5-113Fは、CD4トランスフフェクタントに対してCDC活性をまったく有していなかったのに対し、本発明の抗CD4キメラ抗体KM4045、KM4046、KM4047、KM4048およびKM4049はいずれも、CDC活性を有していた（図10A）。一方、ヒトT細胞リンパ腫細胞株HPB-ALLに対しては、IgG1のFcの一部がIgG3のFcにドメイン交換された113F型のFcを有する既存の抗CD4ヒト抗体6G5-113F、既存の抗CD4マウス抗体OKT4および本発明の抗CD4キメラ抗体KM4045、KM4046はいずれもCDC活性を有しておらず、本発明の抗CD4キメラ抗体KM4049のみがヒトT細胞リンパ腫細胞株に対してCDC活性を示した（図10B）。
ヒト化抗体の作製
（1）抗CD4ヒト化抗体のVHおよびVLのアミノ酸配列の設計
　抗CD4ヒト化抗体のVHのアミノ酸配列を以下のようにして設計した。
　初めに、配列番号27～29でそれぞれ表される抗CD4ラットモノクローナル抗体抗体KM4065VHのCDR1～3のアミノ酸配列を移植するためのヒト抗体のVHのFRのアミノ酸配列を選択した。配列解析システムとしてGCG　Package　（Genetics　Computer　Group社製）　を用いて、既存の蛋白質のアミノ酸データベースをBLASTP法（Nucleic　Acid　Res．，　25，　3389　（1997））により抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065と相同性の高いヒト抗体を検索した。相同性スコアと実際のアミノ酸配列の相同性を比較したところ、SWISSPROTデータベースアクセッションナンバーAAC18328、Autoreactivity and immunologlobulin VH gene expression in aging humans（以下、AAC18328と称す）が84．2％を示し、最も相同性の高いヒト抗体であったため、この抗体のFRのアミノ酸配列を選択した。ただしAAC18328のFRアミノ酸配列においては、カバットら[Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services(1991)]により報告されている分泌型抗体のN末端の1アミノ酸残基（1番目）　の欠損が認められた。そこで、1番目については、抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065に見られるアミノ酸残基であるGluを選択した。また、11番目のValについては、ヒト抗体の配列において出現頻度が高く、抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065に見られるアミノ酸残基であるLeuへ置換した。これらのアミノ酸残基は、任意のヒト抗体の配列[Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services(1991)]においても高頻度に認められることから、ヒト抗体配列から逸脱するものではない。
　以上のようにして決定したヒト抗体のFRのアミノ酸配列の適切な位置に配列番号27～29で示した抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065のVHのCDRのアミノ酸配列を移植した。このようにして、配列番号77で表される抗CD4ヒト化抗体のVHのアミノ酸配列HV0を設計した。
　次に、抗CD4ヒト化抗体のVLのアミノ酸配列を以下のようにして設計した。
　配列番号30～32でそれぞれ表される抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065VLのCDR1～3のアミノ酸配列を移植するためのヒト抗体のVLのFRのアミノ酸配列を選択した。カバットらは、既知の様々なヒト抗体のVLをそのアミノ酸配列の相同性からサブグループ（HSG　I～IV）に分類し、それらのサブグループ毎に共通配列を報告している[Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services(1991)]。そこで、ヒト抗体のVLのサブグループI～IVの共通配列のFRのアミノ酸配列と抗CD4ラット抗体KM4065のVLのFRのアミノ酸配列との相同性検索を実施した。
　相同性を検索した結果、HSGIと72．2％と高い相同性を有していた。
　以上の結果から、ヒト抗体のVLのサブグループIの共通配列のFRのアミノ酸配列の適切な位置に抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065のVLのCDRのアミノ酸配列を移植した。しかし、配列番号22に記載の抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065のVLのアミノ酸配列中の24番目のLeu、および128番目のLeuは、カバットらがあげるヒト抗体FRのアミノ酸配列の相当する部位において、最も使用される頻度が高いアミノ酸残基ではないが、比較的高い頻度で使用されるアミノ酸残基であるため、上記の抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065のアミノ酸配列で認められるアミノ酸残基を用いることとした。このようにして、配列番号78で表される抗CD4ヒト化抗体のVLのアミノ酸配列LV0を設計した。
　上記で設計した抗CD4ヒト化抗体のVHのアミノ酸配列HV0およびVLのアミノ酸配列LV0は、選択したヒト抗体のFRのアミノ酸配列に抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065のCDRのアミノ酸配列のみを移植した配列である。しかし、一般に、ヒト化抗体を作製する場合には、単なるヒト抗体のFRへのマウス抗体のCDRのアミノ酸配列の移植のみでは結合活性が低下してしまうことが多い。このため、結合活性の低下を回避するため、CDRのアミノ酸配列の移植とともに、ヒト抗体とマウス抗体で異なっているFRのアミノ酸残基のうち、結合活性に影響を与えると考えられるアミノ酸残基を改変することが行われている。そこで、本実施例でも、結合活性に影響を与えると考えられるFRのアミノ酸残基を以下のようにして同定した。
　まず、上記で設計した抗CD4ヒト化抗体のVHのアミノ酸配列HV0およびVLのアミノ酸配列LV0よりなる抗体V領域（HV0LV0）の三次元構造をコンピューターモデリングの手法を用いて構築した。三次元構造座標作製に関してはソフトウェアAbM（Oxford Molecular社製）を、三次元構造の表示についてはソフトウェアPro-Explore（Oxford Molecular社製）、あるいはViewerLite（Accelrys社製）を用いてそれぞれ添付の使用説明書に従い、行った。また、抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065のV領域の三次元構造のコンピューターモデルも同様にして構築した。更に、HV0LV0のVHおよびVLのFRのアミノ酸配列の中で、抗CD4ラット抗体KM4065と異なっているアミノ酸残基を選択し、抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065のアミノ酸残基へ改変したアミノ酸配列を作製し、同様に三次元構造モデルを構築した。これら作製した抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065、HV0LV0および改変体のV領域の三次元構造を比較し、抗体の結合活性に影響を与えると予測されるアミノ酸残基を同定した。
　その結果、HV0LV0のFRのアミノ酸残基の中で抗原結合部位の三次元構造を変化させ、抗体の結合活性に影響を与えると考えられるアミノ酸残基として、HV0では18番目のLeu、93番目のVal、97番目のAla、および114番目のThrを、LV0では13番目のAla、15番目のVal、19番目のVal、47番目のAla、62番目のVal、および82番目のLeuをそれぞれ選択した。これらの選択したアミノ酸残基のうち、少なくとも1つ以上のアミノ酸配列を抗CD4ラットモノクローナル抗体KM4065の同じ部位に存在するアミノ酸残基へ改変し、様々な改変を有するヒト化抗体のVHおよびVLを設計した。具体的には、抗体VHについては、配列番号77で表されるアミノ酸配列の18番目のLeuをMetに、93番目のValをThrに、97番目のAlaをThrに、および114番目のThrをIleに置換するアミノ酸改変のうち、少なくとも1つの改変を導入した。また、VLについては、配列番号78で表されるアミノ酸配列の13番目のAlaをValに、15番目のValをLeuに、19番目のValをAlaに、47番目のAlaをGlnに、62番目のValをIleに、および82番目のLeuをValに置換するアミノ酸改変のうち、少なくとも1つの改変を導入した。
　HV0LV0のFRに存在する、少なくとも1つのアミノ酸残基を改変したHV2LV0、HV3LV0、HV4LV0およびHV4LV6の可変領域のアミノ酸配列を設計し、H鎖可変領域HV2、HV3，HV4およびL鎖可変領域LV6のアミノ酸配列を、それぞれ配列番号96、98、100および102に示した。
（2）抗CD4ヒト化抗体の作製および評価
　抗CD4ヒト化抗体の可変領域のアミノ酸配列をコードするDNAは、抗CD4モノクローナルラット抗体KM4065のVHまたはVLのアミノ酸配列をコードするDNAで用いられているコドンを利用し、アミノ酸改変を行う場合は、哺乳動物細胞で高頻度で使用されるコドンを用いて、作製した。抗CD4ヒト化抗体のHV0およびLV0のアミノ酸配列をコードするDNA配列を配列番号93、94にぞれぞれ示し、またアミノ酸改変を行った可変領域HV2、HV3、HV4およびLV6のアミノ酸配列をコードするDNA配列を、配列番号95、97、99および101にそれぞれ示した。各DNA配列は全合成により作製した。以下は、実施例6と同様にして、各可変領域をコードする全合成DNAを、ヒト化抗体発現ベクターpKANTEX93に挿入して、抗CD4ヒト化抗体発現ベクターを作製した。作製した抗CD4ヒト化抗体発現ベクターを動物細胞に導入しヒト化抗体を発現させ、抗CD4ヒト化抗体HV0LV0、HV2LV0、HV3LV0、HV4LV0およびHV4LV6を作製した。
　取得した抗CD4ヒト化抗体の結合活性をBiacore T100を用いて、抗体の結合活性を測定した結果、作製した抗CD4ヒト化抗体HV2LV0、HV3LV0、HV4LV0およびHV4LV6はいずれも、抗CD4キメラ抗体KM4045と同等または1/2以上の結合活性であった。よって、高い結合活性を有する抗CD4ヒト化抗体が作製された。
ヒト化抗体の結合活性評価
　実施例8に記載の方法で作製した抗CD4ヒト化抗体HV0LV0、HV2LV0、HV3LV0、HV4LV0およびHV4LV6の結合活性評価を行った。
（1）ビアコアによる抗CD4ヒト化抗体のリコンビナントヒトCD4への結合活性評価
実施例7（2）に記載の方法で測定した。その結果得られた各抗体の結合速度定数ka、解離速度定数kdおよび解離定数KD（kd/ka）を表6に示した。
　その結果、ヒト化抗体HV0LV0、HV2LV0、HV3LV0、HV4LV0、HV4LV6は1×10-10 M以上の非常に強い結合活性を保持していた。これはキメラ抗体KM4045と同等の結合活性であり、6G5-1を上回っていた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
＊KM4045、HV2LV0、HV3LV0、HV4LV0、HV4LV6は解離が遅く、本システムにおける、メーカーが示す解離速度定数kdの測定限界値（1×10-5）を越えていた。
（2）フローサイトメーターを用いたCD4陽性T細胞リンパ腫細胞株への結合活性の評価
　各種抗CD4抗体の細胞への反応性を評価した。抗体としては、キメラ抗体KM4045、ヒト化抗体HV0LV0、HV2LV0、HV3LV0、HV4LV0、HV4LV6、ヒト抗体6G5-1、6G5-Pを用いた。
　1～5×105細胞のヒトT細胞リンパ腫細胞株HPB-ALLに、被検抗体の非特異的な結合を阻害するためヒトIgG（シグマ社製）を終濃度1mg/mLで添加し、更に各種抗CD4抗体をBSA-PBSで適宜希釈して添加し、全量を50μLとした。これらの細胞懸濁液を氷上で90分間反応させた後、BSA-PBSを用いて細胞を2回洗浄した。該細胞に、BSA-PBSで希釈調製したFITC標識抗ヒトIgG　Fc抗体（Acris社製）を50μL添加し、氷上で90分間反応させた。BSA-PBSで細胞を1回洗浄した後、細胞をBSA-PBSに懸濁して、フローサイトメーター（ベックマン・コールター社製）用いて、蛍光強度を測定した。図11に、上記抗体を6．7、0．67および0．067μg/mLで反応させた場合の平均蛍光強度（MFI値）を示す。抗CD4ヒト化抗体は、いずれも抗体濃度依存的にCD4陽性細胞株へ結合し、その程度はキメラ抗体KM4045と同等であった。
ヒト化抗体HV2LV0のin vitro薬効評価
　実施例8で作製した抗CD4ヒト化抗体HV2LV0を、以後KM8045とする。抗CD4ヒト化抗体のヒト血液癌細胞株に対する抗体依存性細胞傷害活性（ADCC活性）の評価を、実施例7（3）に記載の方法で行った。標的細胞にはヒトT細胞リンパ腫細胞株であるHPB-ALL、HUT78、CCRF-CEMの3種類を用いた。また、抗体はヒト化抗体KM8045、キメラ抗体KM4045、ヒト抗体6G5-1および6G5-Pを用いた。
　その結果、ヒト化抗体KM8045はいずれの細胞株に対してもキメラ抗体KM4045と同等の高いADCC活性を示し、また6G5-Pと同等以上のADCC活性を示した。6G5-1は、HPB-ALLおよびHUT78に対しては弱いADCC活性しか示さず、CCRF-CEMに対してはADCC活性を示さなかった（図12）。
ヒト化抗体KM8045のin　vivo薬効評価
（1）ヒトT細胞リンパ腫細胞株HHを標的としたマウス初期癌モデル
　In vitroで培養したヒトT細胞リンパ腫細胞株HHを1×108　個/mLでRPMI1640培地（Gibco BRL）に懸濁し、SCIDマウス（日本クレア、雄、8週齢）の右側腹側部皮下に100μL移植した（1×107　個/mouse）。抗CD4ヒト化抗体KM8045または抗CD4ヒト抗体6G5-Pを、1μg/100μL/headになるように希釈し、、Day0、3、5に、計3回静脈内投与した。陰性対照群はPBSのみを投与した。腫瘍を移植した日をDay0とし、経日的にノギスによる腫瘍径の測定を行い、次式より腫瘍体積を算出した。
腫瘍体積＝短径×短径×長径×0．5
　各群の腫瘍体積の平均値の経日的推移を図13に示す。図13に示すように、6G5-P投与群では、陰性対照群と比べて弱い抗腫瘍効果しか観察されなかったが、KM8045投与群では顕著な抗腫瘍効果が観察された。
　以上より、HH細胞を標的としたマウス初期癌モデルにおいて、抗CD4ヒト化抗体KM8045は6G5-Pよりも強い抗腫瘍効果を有することが明らかになった。
（2）CD4発現EL4を標的としたマウス転移モデル
　実施例1（3）で作製したCD4/EL4をin vitroで培養し、1×106　個/mLでRPMI1640培地（Gibco　BRL）に懸濁した細胞懸濁液を、C57BL/6マウス（日本クレア、雄、8週齢）の尾静脈内に100μL/head移植した（1×105個/head）。腫瘍を移植した日をDay0とし、Day1に抗CD4ヒト化抗体KM8045、抗CD4ヒト抗体6G5-P、6G5-1を、0．2μg/100μL/headおよび2μg/100μL/headになるようにそれぞれ調製し、100μL/headで静脈内投与した。陰性対照群はPBSのみ、またはアイソタイプコントロール抗体を投与した。Day14に全てのマウスの体重を測定し、エーテル麻酔下、放血を行った後に頚椎脱臼して安楽死させた。その後、肝臓および腎臓を摘出して重量を測定し、各個体の体重に対する肝臓および腎臓重量の割合（以降、肝臓重量比率および腎臓重量比率と称する）を百分率で算出した。抗腫瘍効果の評価は、同時に測定した腫瘍を移植していない健康なマウスの肝臓および腎臓重量比率（3匹の平均値）に対し、腫瘍細胞の転移によって増加した各群の肝臓および腎臓重量比率を比較することにより行った。　
　各群の肝臓重量比率を図14（A）、腎臓重量比率を図14（B）に示す。図14（A）、（B）に示すように、6G5-1投与群においては陰性対照群に対して抗腫瘍効果は全く見られなかったのに対し、6G5-P投与群およびKM8045投与群においては抗腫瘍効果が観察された。さらに6G5-P投与群よりKM8045投与群において強い抗腫瘍効果が認められた。
　以上より、CD4/EL4を標的としたマウス転移モデルにおいて、KM8045は6G5-1および6G5-Pよりも強い抗腫瘍効果を有することが明らかになった。
（3）ヒトT細胞リンパ腫細胞株HHを標的としたマウス進行癌モデル
　実施例11（3）と同様に、in　vitroで培養したHH細胞株を1×108　個/mLでRPMI1640培地（Gibco BRL）に懸濁し、SCIDマウス（日本クレア、雄、8週齢）の右側腹側部皮下に100μL/head移植した（1×107　個/head）。腫瘍体積が平均60mm3になったDay6に群分けを行い、抗CD4ヒト化抗体KM8045を20、100、200μg/100μL/headになるようにPBSで希釈し、1週間に2回、計6回静脈内投与した。陰性対照群はPBSのみを投与した。腫瘍を移植した日をDay0とし、経日的にノギスによる腫瘍径の測定を行い、次式より腫瘍体積を算出した。
　腫瘍体積＝短径×短径×長径×0．5
　各群の腫瘍体積の平均値の経日的推移を図15に示す。図15に示したように、KM8045投与群において抗腫瘍効果が観察され、20μg/headおよび100μg/head群よりも200μg/head群で強い抗腫瘍効果が認められたことから、用量依存的な抗腫瘍効果が確認された。　
　以上より、抗CD4ヒト化抗体KM8045はHH細胞を標的とした進行癌モデルにおいても抗腫瘍効果を有することが明らかになった。
　本発明によれば、CD4の細胞外領域を特異的に認識し、該細胞外領域に高いアフィニティーで結合し、かつ高いADCC活性またはCDC活性を発揮するモノクローナル抗体またはその抗体断片、該抗体を産生するハイブリドーマ、該抗体をコードするDNA、該DNAを含んでなるベクター、該ベクターを導入して得られる形質転換体、該ハイブリドーマまたは該形質転換体を用いる抗体またはその抗体断片の製造方法、該抗体またはその抗体断片を用いる治療薬、および該抗体またはその抗体断片を用いる診断薬を提供することができる。
配列番号27：KM4065　HCDR1
配列番号28：KM4065　HCDR2
配列番号29：KM4065　HCDR3
配列番号30：KM4065　LCDR1
配列番号31：KM4065　LCDR2
配列番号32：KM4065　LCDR3
配列番号33：KM4066　HCDR1
配列番号34：KM4066　HCDR2
配列番号35：KM4066　HCDR3
配列番号36：KM4066　LCDR1
配列番号37：KM4066　LCDR2
配列番号38：KM4066　LCDR3
配列番号39：KM4067　HCDR1
配列番号40：KM4067　HCDR2
配列番号41：KM4067　HCDR3
配列番号42：KM4067　LCDR1
配列番号43：KM4067　LCDR2
配列番号44：KM4067　LCDR3
配列番号45：KM4068　HCDR1
配列番号46：KM4068　HCDR2
配列番号47：KM4068　HCDR3
配列番号48：KM4068　LCDR1
配列番号49：KM4068　LCDR2
配列番号50：KM4068　LCDR3
配列番号51：KM4069　HCDR1
配列番号52：KM4069　HCDR2
配列番号53：KM4069　HCDR3
配列番号54：KM4069　LCDR1
配列番号55：KM4069　LCDR2
配列番号56：KM4069　LCDR3
配列番号57：KM4065VH　キメラ　プライマー1
配列番号58：KM4065VH　キメラ　プライマー2
配列番号59：KM4065VL　キメラ　プライマー1
配列番号60：KM4065VL　キメラ　プライマー2
配列番号61：KM4066VH　キメラ　プライマー1
配列番号62：KM4066VH　キメラ　プライマー2
配列番号63：KM4066VL　キメラ　プライマー1
配列番号64：KM4066VL　キメラ　プライマー2
配列番号65：KM4067VH　キメラ　プライマー1
配列番号66：KM4067VH　キメラ　プライマー2
配列番号67：KM4067VL　キメラ　プライマー1
配列番号68：KM4067VL　キメラ　プライマー2
配列番号69：KM4068VH　キメラ　プライマー1
配列番号70：KM4068VH　キメラ　プライマー2
配列番号71：KM4068VL　キメラ　プライマー1
配列番号72：KM4068VL　キメラ　プライマー2
配列番号73：KM4069VH　キメラ　プライマー1
配列番号74：KM4069VH　キメラ　プライマー2
配列番号75：KM4069VL　キメラ　プライマー1
配列番号76：KM4069VL　キメラ　プライマー2
配列番号77：KM4065　HV0　アミノ酸配列
配列番号78：KM4065　LV0　アミノ酸配列
配列番号79：CD4発現ベクターのプライマー1
配列番号80：CD4発現ベクターのプライマー2
配列番号81：CD4-Fc発現ベクターのプライマー1
配列番号82：CD4-Fc発現ベクターのプライマー2
配列番号83：6G5VLのプライマー1
配列番号84：6G5VLのプライマー2
配列番号85：6G5VLのプライマー3
配列番号86：6G5VLのプライマー4
配列番号87：6G5VLのプライマー5
配列番号88：6G5VLのプライマー6
配列番号89：6G5VHのプライマー1
配列番号90：6G5VHのプライマー2
配列番号91：6G5VHのプライマー3
配列番号92：6G5VHのプライマー4
配列番号93：KM4065　HV0　DNA配列
配列番号94：KM4065　LV0　DNA配列
配列番号95：HV2　DNA配列
配列番号96：HV2　アミノ酸配列
配列番号97：HV3　DNA配列
配列番号98：HV3　アミノ酸
配列番号99：HV4　DNA配列
配列番号100：HV4　アミノ酸
配列番号101：LV6　DNA配列
配列番号102：LV6　アミノ酸

Claims (35)

  1. 抗体の抗原に対する解離定数（以下、KDと記す）が1×10-9M以下であり、高いアフィニティーでヒトCD4の細胞外領域に結合し、かつ高い抗体依存性細胞傷害活性（Antibody dependent cellular cytotoxicity、以下ADCC活性と記す）を有するヒトCD4に対するモノクローナル抗体および該抗体断片。
  2. 抗体が、高い補体依存性細胞傷害活性（complement dependent cellular cytotoxicity、CDC活性）を有する抗体である請求項1記載のモノクローナル抗体および該抗体断片。
  3. 抗体が、ヒトCD4を発現しているヒト癌細胞細胞株に対してCDC活性を有する抗体である請求項2記載のモノクローナル抗体および該抗体断片。
  4. モノクローナル抗体が、抗体の重鎖（以下、H鎖と記す）の相補性決定領域（complementarity determining region, 以下CDRと記す）1～3が配列番号51～53で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体の軽鎖（以下、L鎖と記す）のCDR1～3が配列番号54～56で表されるアミノ酸配列である抗体と競合して、CD4の細胞外領域に結合するモノクローナル抗体である、請求項1～3のいずれか1項に記載のモノクローナル抗体または該抗体断片。
  5. モノクローナル抗体が、抗体のH鎖のCDR1～3が配列番号51～53で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のL鎖のCDR1～3が配列番号54～56で表されるアミノ酸配列である抗体が結合するCD4の細胞外領域に存在するエピトープと、同じエピトープに結合するモノクローナル抗体である、請求項1～4のいずれか1項に記載のモノクローナル抗体または該抗体断片。
  6. モノクローナル抗体が、抗体のH鎖のCDR1～3が配列番号27～29で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のL鎖のCDR1～3が配列番号30～32で表されるアミノ酸配列である抗体と競合して、CD4の細胞外領域に結合するモノクローナル抗体である、請求項1～2のいずれか1項に記載のモノクローナル抗体または該抗体断片。
  7. モノクローナル抗体が、抗体のH鎖のCDR1～3が配列番号27～29で表されるアミノ酸配列であり、かつ抗体のL鎖のCDR1～3が配列番号30～32で表されるアミノ酸配列である抗体が結合するCD4の細胞外領域に存在するエピトープと、同じエピトープに結合するモノクローナル抗体である、請求項1～2および6のいずれか1項に記載のモノクローナル抗体または該抗体断片。
  8. モノクローナル抗体が、遺伝子組換え抗体である、請求項1～7いずれか1項に記載の抗体または該抗体断片。
  9. 遺伝子組換え抗体が、ヒト型キメラ抗体、ヒト化抗体およびヒト抗体から選ばれる遺伝子組換え抗体である、請求項8に記載の抗体または該抗体断片。
  10. 抗体のH鎖可変領域（以下、VHと記す）および抗体のL鎖可変領域（以下、VLと記す）が、配列番号16および配列番号26、ならびに配列番号12および配列番号22から選ばれるいずれか1組のアミノ酸配列である請求項9記載の遺伝子組換え抗体および該抗体断片。
  11. 抗体のH鎖のCDR1～3およびL鎖のCDR1～3が、配列番号51～53および配列番号54～56ならびに配列番号27～29および配列番号30～32から選ばれるいずれか1組のアミノ酸配列である請求項9記載の遺伝子組換え抗体および該抗体断片。
  12. 抗体のVHおよびVLが、配列番号77および配列番号78、配列番号96および配列番号78、配列番号98および配列番号78、配列番号100および配列番号78、ならびに配列番号100および配列番号102から選ばれるいずれか1組のアミノ酸配列である請求項9記載のヒト化抗体。
  13. 抗体断片が、Fab、Fab’、F(ab’)2、一本鎖抗体（scFv）、二量体化V領域（Diabody）、ジスルフィド安定化V領域（dsFv）およびCDRを含むペプチドから選ばれる抗体断片である請求項1～12のいずれか1項に記載の抗体断片。
  14. 請求項1～13のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片をコードするDNA。
  15. 請求項14に記載のDNAを含有する組換え体ベクター。
  16. 請求項15に記載の組換え体ベクターを宿主細胞に導入して得られる形質転換株。
  17. 請求項16に記載の形質転換株を培地に培養し、培養物中に請求項1～14のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片を生成蓄積させ、培養物から該抗体または該抗体断片を採取することを特徴とする請求項1～13のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片の製造方法。
  18. 請求項1～13のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片を用いるヒトCD4の免疫学的検出または測定方法。
  19. 請求項1～13のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片を用いるヒトCD4の検出または測定用試薬。
  20. 請求項1～13のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片を用いるヒトCD4陽性細胞が関与する疾患の診断薬。
  21. ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患が癌である、請求項20に記載の診断薬。
  22. ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患がアレルギー性疾患または自己免疫疾患である、請求項20に記載の診断薬。
  23. 請求項1～13のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片を有効成分として含有するヒトCD4陽性細胞が関与する疾患の治療薬。
  24. ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患が癌である、請求項23に記載の治療薬。
  25. ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患がアレルギー性疾患または自己免疫疾患である、請求項23に記載の治療薬。
  26. 請求項1～13のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片を用いてヒトCD4陽性細胞を検出または測定することを含む、ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患の診断方法。
  27. 請求項1～13のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片を用いてヒトCD4を検出または測定することを含む、ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患の診断方法。
  28. ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患が癌である、請求項26または27に記載の診断方法。
  29. ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患がアレルギー性疾患または自己免疫疾患である、請求項26または27に記載の診断方法。
  30. ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患の診断薬を製造するための、請求項1～13のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片の使用。
  31. ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患が癌である、請求項30に記載の抗体または該抗体断片の使用。
  32. ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患がアレルギー性疾患または自己免疫疾患である、請求項30に記載の抗体または該抗体断片の使用。
  33. ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患の治療薬を製造するための、請求項1～13のいずれか1項に記載の抗体または該抗体断片の使用。
  34. ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患が癌である、請求項33に記載の抗体または該抗体断片の使用。
  35. ヒトCD4陽性細胞が関与する疾患がアレルギー性疾患または自己免疫疾患である、請求項33に記載の抗体または該抗体断片の使用。
PCT/JP2009/071681 2008-12-26 2009-12-25 抗cd4抗体 WO2010074266A1 (ja)

Priority Applications (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP09835062.2A EP2374883B1 (en) 2008-12-26 2009-12-25 Anti-cd4 antibody
ES09835062.2T ES2602459T3 (es) 2008-12-26 2009-12-25 Anticuerpo anti-CD4
DK09835062.2T DK2374883T3 (en) 2008-12-26 2009-12-25 Anti-cd4 antibody
JP2010544182A JP5511686B2 (ja) 2008-12-26 2009-12-25 抗ｃｄ４抗体

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2008331904 2008-12-26
JP2008-331904 2008-12-26

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2010074266A1 true WO2010074266A1 (ja) 2010-07-01

Family

ID=42287870

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2009/071681 WO2010074266A1 (ja) 2008-12-26 2009-12-25 抗cd4抗体

Country Status (9)

Country Link
US (2) US8399621B2 (ja)
EP (1) EP2374883B1 (ja)
JP (1) JP5511686B2 (ja)
DK (1) DK2374883T3 (ja)
ES (1) ES2602459T3 (ja)
HU (1) HUE029946T2 (ja)
PL (1) PL2374883T3 (ja)
PT (1) PT2374883T (ja)
WO (1) WO2010074266A1 (ja)

Cited By (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014189138A1 (ja) 2013-05-23 2014-11-27 Ｉｄａｃセラノスティクス株式会社 免疫不全ウイルス感染の治療又は予防剤
WO2015125652A1 (ja) * 2014-02-21 2015-08-27 Ｉｄａｃセラノスティクス株式会社 固形がんの治療剤
WO2016088791A1 (ja) * 2014-12-02 2016-06-09 国立大学法人 東京大学 抗ｃｄ４抗体を有効成分とする抗がん剤の治療効果を判定する方法
JPWO2015190538A1 (ja) * 2014-06-11 2017-04-20 Ｉｄａｃセラノスティクス株式会社 免疫チェックポイント制御剤の副作用低減方法
WO2019172358A1 (ja) 2018-03-08 2019-09-12 国立大学法人 東京大学 Ｈｍｇｎ部分ペプチド及びこれを用いたがん療法
CN113045661A (zh) * 2021-04-07 2021-06-29 中美冠科生物技术（太仓）有限公司 新型抗cd4抗体
WO2023015217A1 (en) 2021-08-04 2023-02-09 Sana Biotechnology, Inc. Use of cd4-targeted viral vectors
WO2023114949A1 (en) 2021-12-16 2023-06-22 Sana Biotechnology, Inc. Methods and systems of particle production
WO2023133595A2 (en) 2022-01-10 2023-07-13 Sana Biotechnology, Inc. Methods of ex vivo dosing and administration of lipid particles or viral vectors and related systems and uses
WO2023150647A1 (en) 2022-02-02 2023-08-10 Sana Biotechnology, Inc. Methods of repeat dosing and administration of lipid particles or viral vectors and related systems and uses
WO2023193015A1 (en) 2022-04-01 2023-10-05 Sana Biotechnology, Inc. Cytokine receptor agonist and viral vector combination therapies
WO2024026377A1 (en) 2022-07-27 2024-02-01 Sana Biotechnology, Inc. Methods of transduction using a viral vector and inhibitors of antiviral restriction factors
WO2024044655A1 (en) 2022-08-24 2024-02-29 Sana Biotechnology, Inc. Delivery of heterologous proteins
WO2024064838A1 (en) 2022-09-21 2024-03-28 Sana Biotechnology, Inc. Lipid particles comprising variant paramyxovirus attachment glycoproteins and uses thereof
WO2024119157A1 (en) 2022-12-02 2024-06-06 Sana Biotechnology, Inc. Lipid particles with cofusogens and methods of producing and using the same

Families Citing this family (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7981420B2 (en) 2000-12-22 2011-07-19 Max-Planck-Gesellschaft Zur Foederung Der Wissenschaften E.V. Therapeutic use of antibodies directed against repulsive guidance molecule (RGM)
US8906864B2 (en) 2005-09-30 2014-12-09 AbbVie Deutschland GmbH & Co. KG Binding domains of proteins of the repulsive guidance molecule (RGM) protein family and functional fragments thereof, and their use
US8962803B2 (en) 2008-02-29 2015-02-24 AbbVie Deutschland GmbH & Co. KG Antibodies against the RGM A protein and uses thereof
ES2562832T3 (es) 2009-12-08 2016-03-08 Abbvie Deutschland Gmbh & Co Kg Anticuerpos monoclonales contra la proteína RGM para su uso en el tratamiento de la degeneración de la capa de fibra nerviosa de la retina
CN107880124B (zh) 2012-01-27 2021-08-13 艾伯维德国有限责任两合公司 用于诊断和治疗与神经突变性相关的疾病的组合物和方法
US10071170B2 (en) * 2013-06-24 2018-09-11 Ablbio Antibody-drug conjugate having improved stability and use thereof
JP2017507931A (ja) * 2014-02-05 2017-03-23 シーダーズ−サイナイ メディカル センター がん及び感染症の治療方法並びに治療用組成物
CN107001472B (zh) * 2014-11-10 2020-12-11 免疫医疗有限公司 对cd73具有特异性的结合分子及其用途
CA3096222A1 (en) 2018-04-06 2019-10-10 Atyr Pharma, Inc. Compositions and methods comprising anti-nrp2 antibodies
EP4037711A4 (en) 2019-10-03 2024-02-14 Atyr Pharma, Inc. COMPOSITIONS AND METHODS USING ANTI-NRP2 ANTIBODIES
CN113831412B (zh) * 2021-10-13 2023-06-20 宜明昂科生物医药技术（上海）股份有限公司 靶向cd24的抗体及其制备和用途
WO2024112867A1 (en) 2022-11-23 2024-05-30 University Of Georgia Research Foundation, Inc. Compositions and methods of use thereof for increasing immune responses
WO2024194605A1 (en) 2023-03-17 2024-09-26 Quell Therapeutics Limited Treg therapy

Citations (22)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5623587A (en) 1979-08-03 1981-03-05 Mitsuwa Seiki Co Ltd Vane type compressor
JPS58110600A (ja) 1981-12-25 1983-07-01 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd ヒトβ型インタ−フエロン遺伝子を含む組みかえ体プラスミド
JPS60221091A (ja) 1983-12-21 1985-11-05 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd 新規プロモ−タ−
JPS61178926A (ja) 1984-03-06 1986-08-11 Takeda Chem Ind Ltd 化学修飾ペプチドホルモンおよびその製造法
JPS63299A (ja) 1986-04-22 1988-01-05 イミユネツクス・コ−ポレ−シヨン ヒトｇ−ｃｓｆタンパク質の発現
JPH02117920A (ja) 1988-05-06 1990-05-02 Sumitomo Pharmaceut Co Ltd ポリエチレングリコール誘導体、修飾ペプチドおよびその製造方法
US4939094A (en) 1985-08-28 1990-07-03 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. Fused antigen polypeptide
JPH02227075A (ja) 1988-09-29 1990-09-10 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd 新規ポリペプチド
JPH02257891A (ja) 1989-03-31 1990-10-18 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd 組換え動物細胞による蛋白質の製造
JPH0322979A (ja) 1989-06-19 1991-01-31 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd 新規プラスミノーゲン活性化因子
JPH05336963A (ja) 1991-12-17 1993-12-21 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd 新規α２→３シアリルトランスフェラーゼ
WO1994023021A1 (en) 1993-03-29 1994-10-13 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. α-1,3-FUCOSYLTRANSFERASE
WO1997010354A1 (en) 1995-09-11 1997-03-20 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. ANTIBODY AGAINTS α-CHAIN OF HUMAN INTERLEUKIN 5 RECEPTOR
WO2000061739A1 (en) 1999-04-09 2000-10-19 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. Method for controlling the activity of immunologically functional molecule
WO2002031140A1 (fr) 2000-10-06 2002-04-18 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. Cellules produisant des compositions d'anticorps
US6737056B1 (en) 1999-01-15 2004-05-18 Genentech, Inc. Polypeptide variants with altered effector function
WO2005035586A1 (ja) 2003-10-08 2005-04-21 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. 融合蛋白質組成物
WO2005070963A1 (en) 2004-01-12 2005-08-04 Applied Molecular Evolution, Inc Fc region variants
US20060183195A1 (en) 1996-10-10 2006-08-17 Genpharm International, Inc. Transgenic non-human animals for producing heterologous antibodies
WO2007011041A1 (ja) * 2005-07-22 2007-01-25 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. 遺伝子組換え抗体組成物
US20070148165A1 (en) 2005-07-22 2007-06-28 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. Recombinant antibody composition
US7297775B2 (en) 1998-04-02 2007-11-20 Genentech, Inc. Polypeptide variants

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7037496B2 (en) * 1989-12-27 2006-05-02 Centocor, Inc. Chimeric immunoglobulin for CD4 receptors
US5770429A (en) 1990-08-29 1998-06-23 Genpharm International, Inc. Transgenic non-human animals capable of producing heterologous antibodies
US6136310A (en) * 1991-07-25 2000-10-24 Idec Pharmaceuticals Corporation Recombinant anti-CD4 antibodies for human therapy
NZ589687A (en) * 2005-07-21 2012-09-28 Genmab As Potency assays for antibody drug substance binding to an FC receptor

Patent Citations (25)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5623587A (en) 1979-08-03 1981-03-05 Mitsuwa Seiki Co Ltd Vane type compressor
JPS58110600A (ja) 1981-12-25 1983-07-01 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd ヒトβ型インタ−フエロン遺伝子を含む組みかえ体プラスミド
US4686191A (en) 1981-12-25 1987-08-11 Hakko Kogyo Co., Ltd. Kyowa Recombinant plasmid containing human interferon-beta gene
JPS60221091A (ja) 1983-12-21 1985-11-05 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd 新規プロモ−タ−
JPS61178926A (ja) 1984-03-06 1986-08-11 Takeda Chem Ind Ltd 化学修飾ペプチドホルモンおよびその製造法
US4939094A (en) 1985-08-28 1990-07-03 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. Fused antigen polypeptide
JPS63299A (ja) 1986-04-22 1988-01-05 イミユネツクス・コ−ポレ−シヨン ヒトｇ−ｃｓｆタンパク質の発現
JPH02117920A (ja) 1988-05-06 1990-05-02 Sumitomo Pharmaceut Co Ltd ポリエチレングリコール誘導体、修飾ペプチドおよびその製造方法
JPH02227075A (ja) 1988-09-29 1990-09-10 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd 新規ポリペプチド
JPH02257891A (ja) 1989-03-31 1990-10-18 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd 組換え動物細胞による蛋白質の製造
JPH0322979A (ja) 1989-06-19 1991-01-31 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd 新規プラスミノーゲン活性化因子
US5160735A (en) 1989-06-19 1992-11-03 Kyowa Hakko Kogyo Co. Ltd. Plasminogen activator
JPH05336963A (ja) 1991-12-17 1993-12-21 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd 新規α２→３シアリルトランスフェラーゼ
WO1994023021A1 (en) 1993-03-29 1994-10-13 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. α-1,3-FUCOSYLTRANSFERASE
WO1997010354A1 (en) 1995-09-11 1997-03-20 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. ANTIBODY AGAINTS α-CHAIN OF HUMAN INTERLEUKIN 5 RECEPTOR
US20060183195A1 (en) 1996-10-10 2006-08-17 Genpharm International, Inc. Transgenic non-human animals for producing heterologous antibodies
US7297775B2 (en) 1998-04-02 2007-11-20 Genentech, Inc. Polypeptide variants
US6737056B1 (en) 1999-01-15 2004-05-18 Genentech, Inc. Polypeptide variants with altered effector function
WO2000061739A1 (en) 1999-04-09 2000-10-19 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. Method for controlling the activity of immunologically functional molecule
US7214775B2 (en) 1999-04-09 2007-05-08 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. Method of modulating the activity of functional immune molecules
WO2002031140A1 (fr) 2000-10-06 2002-04-18 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. Cellules produisant des compositions d'anticorps
WO2005035586A1 (ja) 2003-10-08 2005-04-21 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. 融合蛋白質組成物
WO2005070963A1 (en) 2004-01-12 2005-08-04 Applied Molecular Evolution, Inc Fc region variants
WO2007011041A1 (ja) * 2005-07-22 2007-01-25 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. 遺伝子組換え抗体組成物
US20070148165A1 (en) 2005-07-22 2007-06-28 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. Recombinant antibody composition

Non-Patent Citations (123)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"Antibodies-A Laboratory Manual", 1988, COLD SPRING HARBOR LABORATORY
"Antibodies-A Laboratory Manual", 1988, COLD SPRING HARBOR LABORATORY, pages: 99
"Antibody Engineering Handbook", 1994, CHIJIN SHOKAN
"Antibody Engineering, A Practical Guide", 1992, W.H. FREEMAN AND COMPANY
"Bioconjugate Drug", 1993, HIROKAWA SHOTEN
"Current protocols in Molecular Biology", 1987, JOHN WILEY & SONS
"Current Protocols in Molecular Biology", vol. 1, 1987, JOHN WILEY & SONS
"DNA Cloning 1: Core Techniques, A Practical Approach", 1995, OXFORD UNIVERSITY
"Ensho to Kouensho-Ryoho", 1982, ISHIYAKU SHUPPANN
"Enzyme Immunoassay", 1987, IGAKU SHOIN
"Handbook of Clinical Test Methods", 1988, KANEHARA SHUPPAN
"Manual for Experiments of Monoclonal Antibodies", 1987, KODANSHA SCIENTIFIC
"Manual for Monoclonal Antibody Experiments", 1987, KODANSHA SCIENTIFIC
"Methods in Nucleic Acids Res.", 1991, CRC PRESS, pages: 283
"Molecular Cloning", 1989, COLD SPRING HARBOR LABORATORY PRESS
"Molecular Cloning, A Laboratory Manual", 1989, COLD SPRING HARBOR LAB. PRESS
"Molecular Cloning, A Laboratory Manual", 1989, COLD SPRING HARBOR LABORATORY PRESS
"Monoclonal Antibodies - Principles and practice", 1996, ACADEMIC PRESS
"Monoclonal Antibodies-Principles and practice", 1996, ACADEMIC PRESS
"Monoclonal Antibody Experiment Manual", 1987, KODANSHA SCIENTIFIC
"Rinsho Syuyo-gaku", 1996, GAN TO KAGAGURYOHO-SHA
"Sequence of Proteins of Immunological Interest", 1991, US DEPT. HEALTH AND HUMAN SERVICE
"Sequence of Proteins of Immunological Interest", 1991, US DEPT. HEALTH AND HUMAN SERVICES
"Sequences of Proteins of Immunological Interest", 1991, US DEPT. HEALTH AND HUMAN SERVICES
AGRIC. BIOL. CHEM., vol. 53, 1989, pages 277
AGRICULTURAL BIOLOGICAL CHEMISTRY, vol. 48, 1984, pages 669
ANNU. REV. IMMUNOL., vol. 9, 1991, pages 457 - 492
BIOCHEM. BIOPHYS. RES. COMMUN., vol. 149, 1987, pages 960
BIOLTECHNOLOGY, vol. 9, 1991, pages 266
BLOOD, vol. 109, 2007, pages 4655
CANCER IMMUNOL. IMMUNOTHER., vol. 3 6, 1993, pages 3 73
CANCER IMMUNOL. IMMUNOTHER., vol. 36, 1993, pages 373
CANCER IMMUNOL.LMMUNOTHER., vol. 36, 1993, pages 373
CANCER RES, vol. 67, 2007, pages 9945
CANCER RES, vol. 68, no. 10, 2008, pages 3863 - 72
CELL, vol. 33, 1983, pages 717
CELL, vol. 41, 1985, pages 479
CELL, vol. 42, 1985, pages 93
CELL, vol. 6, 1975, pages 121
CHROMOSOMA, vol. 41, 1973, pages 129
CLIN IMMUNOL IMMUNOPATHOL, vol. 84, 1997, pages 73
CLINICAL IMMUNOLOGY, vol. 119, 2006, pages 3
CURRENT TOPICS IN MICROBIOLOGY AND IMMUNOLOGY, 1978, pages 1 8 1
CYTOTECHNOL., vol. 13, 1993, pages 79
CYTOTECHNOL., vol. 3, 1990, pages 133
CYTOTECHNOL., vol. 4, 1990, pages 173
CYTOTECHNOLOGY, vol. 1, 1990, pages 133
CYTOTECHNOLOGY, vol. 3, 1990, pages 133
DNA CLONING: A PRACTICAL APPROACH, vol. I, 1985, pages 49
EUROPEAN J IMMUNOLOGY, vol. 6, 1976, pages 511
FLUORESCENT IMMUNOASSAY, SOFT SCIENCE, 1983
GENE, vol. 17, 1982, pages 107
GENE, vol. 27, 1984, pages 223
GENE, vol. 33, 1985, pages 103
GENE, vol. 34, 1985, pages 315
GENE, vol. 38, 1985, pages 275
GENES DEVELOP., vol. 4, 1990, pages 1288
GENETICS, vol. 39, 1954, pages 440
GENETICS, vol. 55, 1968, pages 513
GENOME RES., vol. 7, 1997, pages 649
HYBRIDOMA, vol. 17, 1998, pages 559
J IMMUNOL, vol. 145, 1990, pages 2839
J IMMUNOLOGY, vol. 123, 1979, pages 1548
J MOL. BIOL., vol. 166, 1983, pages 1
J MOL. BIOL., vol. 215, 1990, pages 403
J. BACTERIOL., vol. 172, 1990, pages 2392
J. BIOCHEM., vol. 101, 1987, pages 1307
J. BIOCHEMISTRY, vol. 101, 1987, pages 1307
J. IMMUNOL. METHODS, vol. 167, 1994, pages 271
J. IMMUNOL., vol. 174, 2005, pages 5706
J. MOL. BIOL., vol. 112, 1977, pages 535
J. MOL. BIOL., vol. 16, 1966, pages 118
J. MOL. BIOL., vol. 215, 1990, pages 403
JLMMUNOL, vol. 164, 2000, pages 1925
JOURNAL OF EXPERIMENTAL MEDICINE, vol. 108, 1958, pages 945
KABAT ET AL.: "Sequences of Proteins of Immunological Interest", 1991, US DEPT. HEALTH AND HUMAN SERVICES
LANCET, vol. 352, 1998, pages 1109
LEUCOCYTE TYPING, vol. VI, 1997, pages 49
LOWE ET AL., PROC. NATL. ACAD SCI. USA, vol. 86, 1989, pages 8227
METHODS IN CELL SCIENCE, vol. 18, 1996, pages 115
METHODS IN ENZYMOL., vol. 154, 1987, pages 3
METHODS IN NUCLEIC ACIDS RES., 1991, pages 283
MOL. CELL. BIOL., vol. 3, 1983, pages 280
MOLECULAR & GENERAL GENETICS, vol. 168, 1979, pages 111
MOLECULAR CELL GENETICS, APPENDIX I, vol. 11, pages 883 - 900
NATURE, vol. 227, 1970, pages 680
NATURE, vol. 256, 1975, pages 495
NATURE, vol. 276, 1978, pages 269
NATURE, vol. 329, 1987, pages 840
NEWMAN R. ET AL.: ""Primatization" of recombinant antibodies for immunotherapy of human diseases: a macaque/human chimeric antibody against human CD4.", BIOTECHNOLOGY, vol. 10, no. 11, 1992, pages 1455 - 1460 *
NUCLEIC ACIDS RES., vol. 25, 1997, pages 3 3 89
NUCLEIC ACIDS RES., vol. 25, 1997, pages 3389
NUCLEIC ACIDS RESEARCH, vol. 10, 1982, pages 6487
NUCLEIC ACIDS RESEARCH, vol. 13, 1985, pages 4431
NUCLEIC ACIDS RESEARCH, vol. 17, 1989, pages 9494
PAULSON ET AL., J. BIOL. CHEM., vol. 264, 1989, pages 17619
PROC. NATL. ACAD SCI. USA, vol. 69, 1972, pages 2110
PROC. NATL. ACAD SCI. USA, vol. 74, 1977, pages 5463
PROC. NATL. ACAD SCI. USA, vol. 76, 1979, pages 4061
PROC. NATL. ACAD SCI. USA, vol. 77, 1980, pages 4216
PROC. NATL. ACAD SCI. USA, vol. 79, 1982, pages 6409
PROC. NATL. ACAD SCI. USA, vol. 82, 1985, pages 488
PROC. NATL. ACAD SCI. USA, vol. 84, 1987, pages 7413
PROC. NATL. ACAD SCI., USA, vol. 79, 1982, pages 6409
PROC. NATL. ACAD. SCI USA, vol. 82, 1985, pages 488
PROC. NATL. ACAD. SCI. U.S.A., vol. 77, 1980, pages 4216
PROC. NATL. ACAD. SCI. USA, vol. 60, 1968, pages 1275
PROC. NATL. ACAD. SCI. USA, vol. 78, 1981, pages 1527
PROC. NATL. ACAD. SCI. USA, vol. 82, 1985, pages 4306
PROC. NATL. ACAD. SCI., vol. 60, 1968, pages 1275
PROCEEDING OF THE SOCIETY FOR THE BIOLOGICAL MEDICINE, vol. 73, 1950, pages 1
PROTEIN ENGINEERING, vol. 7, 1994, pages 1501
PROTEIN ENGINEERING, vol. 7, 1994, pages 697
RADIATION RESEARCH, vol. 148, 1997, pages 260
RINSHO KENSA: "Bioluminescence and Chemical Luminescence", vol. 42, 1998, HIROKAWA SHOTEN
SCIENCE, vol. 122, 1952, pages 501
SCIENCE, vol. 222, 1983, pages 778
SOMATIC CELL AND MOLECULAR GENETICS, vol. 12, 1986, pages 55
SOMATIC CELL AND MOLECULAR GENETICS, vol. 12, 1986, pages 555
STRATEGIES, vol. 5, 1992, pages 58
STRATEGIES, vol. 5, 1992, pages 81
THE JOURNAL OF THE AMERICAN MEDICAL ASSOCIATION, vol. 199, 1967, pages 519
VIROLOGY, vol. 8, 1959, pages 396

Cited By (23)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014189138A1 (ja) 2013-05-23 2014-11-27 Ｉｄａｃセラノスティクス株式会社 免疫不全ウイルス感染の治療又は予防剤
JP2019070056A (ja) * 2014-02-21 2019-05-09 Ｉｄａｃセラノスティクス株式会社 固形がんの治療剤
WO2015125652A1 (ja) * 2014-02-21 2015-08-27 Ｉｄａｃセラノスティクス株式会社 固形がんの治療剤
EP3338800A1 (en) 2014-02-21 2018-06-27 IDAC Theranostics, Inc. Therapeutic agent for solid cancer
JP2017014254A (ja) * 2014-02-21 2017-01-19 Ｉｄａｃセラノスティクス株式会社 固形がんの治療剤
JPWO2015125652A1 (ja) * 2014-02-21 2017-03-30 Ｉｄａｃセラノスティクス株式会社 固形がんの治療剤
JP6029160B2 (ja) * 2014-02-21 2016-11-24 Ｉｄａｃセラノスティクス株式会社 固形がんの治療剤
EP3338801A1 (en) 2014-02-21 2018-06-27 Idac Theranostics, Inc. Therapeutic agent for solid cancer
JP7041439B2 (ja) 2014-02-21 2022-03-24 Ｉｄａｃセラノスティクス株式会社 固形がんの治療剤
JPWO2015190538A1 (ja) * 2014-06-11 2017-04-20 Ｉｄａｃセラノスティクス株式会社 免疫チェックポイント制御剤の副作用低減方法
JPWO2016088791A1 (ja) * 2014-12-02 2017-11-02 国立大学法人 東京大学 抗ｃｄ４抗体を有効成分とする抗がん剤の治療効果を判定する方法
WO2016088791A1 (ja) * 2014-12-02 2016-06-09 国立大学法人 東京大学 抗ｃｄ４抗体を有効成分とする抗がん剤の治療効果を判定する方法
WO2019172358A1 (ja) 2018-03-08 2019-09-12 国立大学法人 東京大学 Ｈｍｇｎ部分ペプチド及びこれを用いたがん療法
CN113045661A (zh) * 2021-04-07 2021-06-29 中美冠科生物技术（太仓）有限公司 新型抗cd4抗体
WO2023015217A1 (en) 2021-08-04 2023-02-09 Sana Biotechnology, Inc. Use of cd4-targeted viral vectors
WO2023114949A1 (en) 2021-12-16 2023-06-22 Sana Biotechnology, Inc. Methods and systems of particle production
WO2023133595A2 (en) 2022-01-10 2023-07-13 Sana Biotechnology, Inc. Methods of ex vivo dosing and administration of lipid particles or viral vectors and related systems and uses
WO2023150647A1 (en) 2022-02-02 2023-08-10 Sana Biotechnology, Inc. Methods of repeat dosing and administration of lipid particles or viral vectors and related systems and uses
WO2023193015A1 (en) 2022-04-01 2023-10-05 Sana Biotechnology, Inc. Cytokine receptor agonist and viral vector combination therapies
WO2024026377A1 (en) 2022-07-27 2024-02-01 Sana Biotechnology, Inc. Methods of transduction using a viral vector and inhibitors of antiviral restriction factors
WO2024044655A1 (en) 2022-08-24 2024-02-29 Sana Biotechnology, Inc. Delivery of heterologous proteins
WO2024064838A1 (en) 2022-09-21 2024-03-28 Sana Biotechnology, Inc. Lipid particles comprising variant paramyxovirus attachment glycoproteins and uses thereof
WO2024119157A1 (en) 2022-12-02 2024-06-06 Sana Biotechnology, Inc. Lipid particles with cofusogens and methods of producing and using the same

Also Published As

Publication number Publication date
US20130177944A1 (en) 2013-07-11
ES2602459T3 (es) 2017-02-21
JP5511686B2 (ja) 2014-06-04
JPWO2010074266A1 (ja) 2012-06-21
EP2374883A1 (en) 2011-10-12
PT2374883T (pt) 2016-10-20
EP2374883A4 (en) 2013-01-16
PL2374883T3 (pl) 2017-05-31
US8877913B2 (en) 2014-11-04
US8399621B2 (en) 2013-03-19
US20100310573A1 (en) 2010-12-09
HUE029946T2 (en) 2017-04-28
EP2374883B1 (en) 2016-08-10
DK2374883T3 (en) 2016-09-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP5511686B2 (ja) 抗ｃｄ４抗体
US10550181B2 (en) Anti-TIM-3 antibody
WO2011155579A1 (ja) 抗Ｔｒｏｐ－２抗体
WO2014087863A1 (ja) 抗ｆｏｌｒ１抗体
JP7311425B2 (ja) ＣＤ４０とＥｐＣＡＭに結合するバイスペシフィック抗体
WO2012074097A1 (ja) 抗ｃｄ３３抗体
WO2011087091A1 (ja) 抗システムａｓｃアミノ酸トランスポーター２（ａｓｃｔ２）抗体
WO2013005649A1 (ja) 抗ヒトｃｃｒ６抗体
US20240026017A1 (en) Anti-human ccr1 monoclonal antibody
JP6803231B2 (ja) 抗ヒトＧａｓ６モノクローナル抗体
WO2016111344A1 (ja) Ｔｒａｉｌｒ２とｐｓｍａに結合するバイスペシフィック抗体
JP7502281B2 (ja) Ｃｄ４０とｇｐｃ３に結合するバイスペシフィック抗体
EP4393952A1 (en) Bispecific antibody that binds to cd116 and cd131

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 09835062

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2010544182

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

REEP Request for entry into the european phase

Ref document number: 2009835062

Country of ref document: EP

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2009835062

Country of ref document: EP

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE