WO2009107803A1 - 標的物質の定量方法 - Google Patents

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WO2009107803A1
WO2009107803A1 PCT/JP2009/053740 JP2009053740W WO2009107803A1 WO 2009107803 A1 WO2009107803 A1 WO 2009107803A1 JP 2009053740 W JP2009053740 W JP 2009053740W WO 2009107803 A1 WO2009107803 A1 WO 2009107803A1
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aptamer
nucleic acid
target substance
acid chain
binding
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PCT/JP2009/053740
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智子 原田
祐己 渡部
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ソニー株式会社
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    • C12Q2525/30—Oligonucleotides characterised by their secondary structure
    • C12Q2525/301—Hairpin oligonucleotides

Definitions

  • the present invention relates to a molecular quantification method. More specifically, the present invention relates to a molecular quantification method using an aptamer.
  • Biosensors consist of materials with molecular identification functions and transducers that detect physical and chemical signals of interactions between them and chemical substances.
  • proteins such as enzymes, antibodies and receptors have been used as materials having a molecular identification function.
  • Reference 1 (BUNSEKI KAGAKU Vol. 51, No. 6, (2002) 389-396) provides an estrogen-responsive gene promoter on an SPR sensor chip as a rapid screening method for endocrine disruptors using a surface plasmon resonance (SPR) sensor.
  • SPR surface plasmon resonance
  • a method is disclosed in which the interaction between ER and ERE is unmodified and measured in real time by immobilizing the region's hormone response element DNA (ERE) and adding purified estrogen receptor ⁇ (ER).
  • ERE hormone response element DNA
  • ER purified estrogen receptor ⁇
  • proteins are unsuitable for long-term use because they are chemically and thermally unstable and thus have a short life and cause nonspecific adsorption.
  • nucleic acid sequence that causes specific binding like an antibody using an antigen ranging from a low molecular weight compound to a protein as the antigen has attracted attention.
  • Aptamers have advantages in terms of stability and life because the material is not a protein.
  • it since it can be regenerated under relatively mild conditions, it can be mass-produced at low cost by chemical synthesis, and has properties specific to nucleic acids such as reversible binding and dissociation with complementary strands. Application to biosensors is expected.
  • the main object of the present invention is to provide a method for quantifying a target substance with high sensitivity in a method for quantifying a target substance using an aptamer.
  • the present invention provides a method for quantifying a target substance, which is complementary to at least a part of the aptamer with respect to an aptamer that specifically binds to the target substance. Obtained by detecting at least one of a physical change and a chemical change caused by binding of the aptamer to the nucleic acid chain under a condition in which the nucleic acid chain having a basic sequence is competitively bound. A method for quantifying the target substance based on the detection result is provided.
  • the target substance according to the present invention is understood in a broad sense and includes not only molecules but also ions and the like. Aptamers refer to nucleic acid molecules and peptides that specifically bind to specific molecules.
  • the aptamer is preferably immobilized on the detection surface of the sensor.
  • the detection principle of the sensor is a surface plasmon resonance principle, and a change in dielectric constant caused by the binding of the aptamer to the nucleic acid chain is detected by the sensor, or the detection principle of the sensor is a crystal oscillator microbalance.
  • the sensor detects a mass change caused by binding of the aptamer to the nucleic acid strand.
  • the aptamer preferably has a stem-loop structure, and the nucleic acid chain preferably has a base sequence complementary to the base sequence of the non-stem portion of the aptamer.
  • the nucleic acid chain By making the nucleic acid chain at least have a base sequence complementary to the base sequence of the non-stem portion of the aptamer, the nucleic acid chain binds to the self-annealed aptamer and releases the self-anneal of the aptamer.
  • the “non-stem portion” refers to a portion other than the stem structure in which the aptamer forms a complementary strand, and refers to a loop portion having a loop structure, a bulge portion not forming a complementary strand, and the like.
  • the nucleic acid chain has a base sequence that is non-complementary to the aptamer, or at least one of the aptamer and the nucleic acid chain is a physical change caused by binding of the aptamer and the nucleic acid chain. And preferably substituted by a substituent that increases at least one of the chemical changes.
  • Such a configuration of the complementary strand is preferable because the physical change and the chemical change when the nucleic acid strand binds to the aptamer are increased, so that the detection sensitivity is improved.
  • the nucleic acid chain may be immobilized on the detection surface of the sensor.
  • the detection principle of the sensor is a surface plasmon resonance principle, and a change in dielectric constant caused by binding of the nucleic acid chain to the aptamer is detected by the sensor, or the detection principle of the sensor is a crystal oscillator microbalance. In principle, it is preferable that the sensor detects a mass change caused by binding of the nucleic acid strand to the aptamer.
  • the present invention is a method for quantifying a target substance in a sample, the step of immobilizing an aptamer that specifically binds to the target substance on a detection surface, and the target in the sample with respect to the aptamer Physical changes and chemical changes caused by binding of the aptamer to the nucleic acid strand under a condition in which a substance and a nucleic acid strand having a base sequence complementary to at least a part of the aptamer are competitively bound
  • the aptamer binds to the nucleic acid chain under a condition that a predetermined amount of a target substance and a predetermined amount of the nucleic acid chain are competitively bound to the aptamer.
  • a step of estimating the amount of the target substance in the postal provides a method for at least performing.
  • 1 is a conceptual diagram of a method according to the present invention. It is a flowchart of suitable 1st embodiment of the method concerning this invention. It is a conceptual diagram of the 1st process of suitable 1st embodiment of the method concerning this invention. It is a conceptual diagram of the 2nd process of suitable 1st embodiment of the method concerning this invention. It is a conceptual diagram of the 3rd process of suitable 1st embodiment of the method concerning this invention. It is a conceptual diagram of the 4th process of suitable 1st embodiment of the method concerning this invention. It is a conceptual diagram of an example of the suitable nucleic acid chain
  • FIG. 1 is a conceptual diagram of a method for quantifying a target substance according to the present invention.
  • T represents a target substance
  • A represents an aptamer that specifically binds to the target substance
  • N represents a nucleic acid chain having a base sequence complementary to at least a part of the aptamer A.
  • a base sequence complementary to the target substance T and at least a part of the aptamer A is selected for the aptamer A that specifically binds to the target substance T.
  • the nucleic acid strand N is competitively bound (see FIG. 1 (1)).
  • at least one of a physical change and a chemical change caused by binding of the aptamer A and the nucleic acid chain N is detected (see FIG. 1 (2)).
  • the target substance T is quantified based on the obtained detection result.
  • the target substance T is a low molecule
  • the aptamer A is The target substance T can be quantified even when sufficient sensitivity cannot be obtained even if it is attempted to detect at least one of a physical change and a chemical change caused by binding to the target substance T.
  • the influence by the self-annealing of the aptamer A can be eliminated, noise due to the self-annealed aptamer A can be reduced.
  • FIG. 2 is a flowchart of a preferred first embodiment of the method according to the present invention
  • FIGS. 3 to 6 are conceptual diagrams of each step of the preferred embodiment of the method according to the present invention.
  • . 1 represents a detection surface of the sensor
  • 11 represents a linker.
  • a predetermined amount of aptamer A is introduced to the detection surface 1, and the aptamer A is immobilized on the detection surface 1.
  • the aptamer A has a functional group to be immobilized on the detection surface 1 at the end, and is immobilized on the detection surface 1 by being linked via a linker 11 (first step, (See FIG. 3).
  • a sample that can contain the target substance T and the nucleic acid chain N are introduced into the detection surface 1 on which the aptamer A is immobilized. Then, in a state where both are competitively bound to the aptamer A, at least one of a physical change and a chemical change caused by the binding of the aptamer A and the nucleic acid chain N is detected (second step) FIG. 4).
  • the amount of target substance T in the sample is estimated based on a calibration curve.
  • the method of creating a calibration curve is as follows. A predetermined amount of target substance T and a predetermined amount of nucleic acid chain N are introduced into the detection surface 1 on which the aptamer A is immobilized, and are bound competitively. Under this condition, at least one of a physical change and a chemical change caused by binding of the aptamer A to the nucleic acid chain is detected. A calibration curve is created by obtaining a correlation between the introduction amount of the target substance T and the detection result by performing detection by changing the introduction amount of the target substance T with the introduction amount of the nucleic acid chain N being constant. (3rd process, refer FIG. 5).
  • the amount of the target substance T in the sample is estimated from the detection result in the second step (fourth step, see FIG. 6).
  • the physical change and / or the chemical change caused by the binding of the aptamer A and the nucleic acid chain N to be detected in the method according to the present invention is not particularly limited.
  • Specific examples of the physical change include a change in dielectric constant and a change in mass.
  • Specific examples of the chemical change include a change in the structure of the aptamer A and a change in bond strength when the aptamer A has an intramolecular bond.
  • the detection means of at least one of a physical change and a chemical change caused by binding of the aptamer A to the nucleic acid strand N is not limited to this embodiment, but the aptamer A is a detection surface of a sensor. It is preferable that at least one of a physical change and a chemical change caused by binding of the aptamer A to the nucleic acid strand N is detected by the sensor. Detection by such means is desirable because the aptamer A and the nucleic acid chain N can be detected without modification with an unstable label such as a dye. Further, it is desirable that the detection surface 1 can be regenerated so that the measurement can be performed any number of times.
  • the detection principle of the sensor used is that the immobilized aptamer A is the There is no particular limitation as long as at least one of a physical change and a chemical change caused by binding to the nucleic acid strand N can be detected.
  • Specific examples include the surface plasmon resonance (hereinafter referred to as SPR) principle, the quartz oscillator microbalance (hereinafter referred to as QCM) principle, and the like.
  • the aptamer A is immobilized on the detection surface 1 and a change in dielectric constant caused by binding of the aptamer A to the nucleic acid chain N is detected. Specifically, a change in dielectric constant caused by binding of the aptamer A immobilized on the detection surface 1 to the nucleic acid chain N is observed as a change in the attenuation peak angle of the reflected light intensity due to the surface plasmon resonance phenomenon. . Therefore, the sensitivity when the SPR principle is used as the detection principle depends on the amount of change in dielectric constant caused by the binding of the aptamer A to the nucleic acid chain N.
  • the aptamer A is similarly immobilized on the detection surface 1 and a mass change caused by binding of the aptamer A to the nucleic acid chain N is detected. Specifically, a change in mass caused by binding of the aptamer A immobilized on the detection surface 1 to the nucleic acid chain N is observed as a change in resonance frequency due to the piezoelectric effect of the crystal resonator. Therefore, the sensitivity when the QCM principle is used as the detection principle depends on the amount of mass change caused by binding of the aptamer A to the nucleic acid chain N.
  • the target substance T quantified by the method according to the present invention is not particularly limited, and examples thereof include proteins, nucleic acids, hormones, environmental hormones, drugs, and the like.
  • small molecules such as hormones, environmental hormones, drugs, etc. It is suitably quantified. Even if small molecules such as hormones, environmental hormones, and drugs are directly detected by a biosensor such as an SPR sensor or a QCM sensor, the change in dielectric constant or mass is small and sufficient detection sensitivity may not be obtained. Even in such a case, according to the method of the present invention, low molecules such as hormones, environmental hormones and drugs can be detected with high sensitivity.
  • the aptamer A used in the method according to the present invention is a molecule such as a nucleic acid that specifically binds to the target substance T.
  • the type and the like are not particularly limited as long as they specifically bind to the target substance T, and DNA aptamer, RNA aptamer, peptide aptamer, PNA (peptide nucleic acid), and the like can be used.
  • the detection sensitivity can be improved without increasing the noise by increasing the amount of the aptamer A used in the method according to the present invention.
  • the method for immobilizing the aptamer A to the detection surface 1 is not particularly limited.
  • avidin is modified at the end of the aptamer A, and the detection surface 1 is biotinylated.
  • a method of immobilizing using avidin-biotin bond after modification a method of aminating the end of aptamer A, applying a carboxylic acid modification to detection surface 1 and immobilizing using an amide bond, aptamer A
  • the detection surface 1 made of a material that easily adsorbs a protein by modifying the protein at the end of the aptamer A is fixed to the detection surface 1 made of a noble metal using a bond between thiol and metal.
  • a method of immobilizing using physical adsorption of protein is not particularly limited.
  • avidin is modified at the end of the aptamer A
  • the detection surface 1 is biotinylated.
  • a method of immobilizing using avidin-biotin bond after modification a method of aminating the end of
  • the amount of the aptamer A used in the method according to the present invention is not particularly limited, and can be appropriately set according to the type, concentration, etc. of the target substance T to be quantified. Even when the aptamer A is immobilized on the detection surface 1, the amount of the aptamer A immobilized on the detection surface 1 is not particularly limited.
  • the nucleic acid strand N used in the method according to the present invention has a base sequence complementary to at least a part of the aptamer A, and a physical change caused by binding of the aptamer A to the nucleic acid strand N and At least one of the chemical changes is detected, and the target substance T is quantified based on the obtained detection result.
  • the number of bases of the base sequence complementary to the aptamer A that the nucleic acid chain N has is not particularly limited. By changing the number of bases in the complementary base sequence, the equilibrium constant of the double-stranded bond between the aptamer A and the nucleic acid chain N can be changed. Thereby, the sensitivity can be adjusted.
  • the base sequence complementary to the aptamer A included in the nucleic acid chain N is not particularly limited, but when the aptamer A has a stem loop structure, the nucleic acid chain N is a base sequence of a non-stem part of the aptamer A It is desirable to have a complementary base sequence.
  • the nucleic acid strand N is self-annealed, and has a base sequence complementary to the base sequence of the non-stem portion of the aptamer A having a stem-loop structure.
  • the aptamer A can be efficiently bound to the aptamer A starting from the non-stem portion of the aptamer A, and the sensitivity can be improved.
  • the aptamer A that is self-annealed and has a stem-loop structure may not bind to the target substance T and may not contribute to detection.
  • such aptamer A can cause noise during detection.
  • the nucleic acid strand N have a base sequence complementary to the base sequence of the non-stem part of the aptamer A, self-annealing of the aptamer A having a stem-loop structure is performed. It can be solved and contribute to detection. Further, by reducing the aptamer A that is self-annealed, noise can be further reduced and detection sensitivity can be improved (see FIG. 8).
  • the number of bases of the base sequence complementary to the non-stem part of the aptamer A is not particularly limited. It is preferable to use a base or more. It is desirable that the number of bases in the complementary base sequence is 4 bases or more because it can efficiently bind to the non-stem portion of the aptamer A.
  • the nucleic acid chain N has a base sequence complementary to the base sequence of the portion with which the target substance T interacts most strongly when it binds to the target substance T in the base sequence of the aptamer A. Is desirable.
  • the portion of the base sequence of the aptamer A that binds to the target substance T is stabilized by binding to the target substance T. Therefore, when the nucleic acid chain N has a base sequence complementary to this part, the nucleic acid chain N is likely to bind to the aptamer A that is not bound to the target substance T (FIG. 7 ( 1)), it can be difficult to bind to the aptamer A once bound to the target substance T (see FIG. 7 (2)).
  • the nucleic acid chain N When the nucleic acid chain N has a base sequence complementary to the base sequence of the portion that binds to the target substance T in the base sequence of the aptamer A, it binds to the target substance T in the base sequence of the aptamer A
  • the number of bases in the base sequence complementary to the portion to be performed is not particularly limited.
  • the nucleic acid chain N used in the method according to the present invention is not particularly limited as long as it has a base sequence complementary to at least a part of the aptamer A, but has a base sequence non-complementary to the aptamer A. It is preferable that By having a non-complementary base sequence, it is possible to increase the dielectric constant and mass of the nucleic acid strand N, and increase the change in the dielectric constant and mass when bound to the aptamer A to increase sensitivity. It is desirable because it can be raised.
  • At least one of the aptamer A and the nucleic acid chain N includes the aptamer A and the nucleic acid chain.
  • the nucleic acid chain N may be modified by a substituent that increases at least one of a physical change and a chemical change caused by binding.
  • the said substituent is not specifically limited, According to a detection means, it can select suitably.
  • a dielectric can be modified at the end of the nucleic acid chain.
  • the amount of the nucleic acid chain N used in the method according to the present invention is not particularly limited, and may be appropriately set according to the structure of the aptamer A and the nucleic acid chain N, the amount of the target substance T to be introduced, and the like. it can.
  • the order of introducing the target substance T and the nucleic acid chain N is not particularly limited.
  • the substance T and the nucleic acid chain N can be introduced simultaneously.
  • the target substance T is put before the complementary strand N.
  • FIG. 9 is a flowchart of the second preferred embodiment of the method according to the present invention
  • FIGS. 10 to 13 are conceptual diagrams of the respective steps of the preferred embodiment of the method according to the present invention.
  • . 2 represents a detection surface of the sensor
  • 21 represents a linker.
  • the nucleic acid chain N has a functional group for immobilization on the detection surface 2 at the end, and is immobilized on the detection surface 2 by being linked via a linker 21 (first step). FIG. 10).
  • a sample that can contain the target substance T and the aptamer A are introduced into the detection surface 2 on which the nucleic acid strand N is immobilized.
  • the detection surface 2 on which the nucleic acid strand N is immobilized In the state where the nucleic acid chain N and the target substance T are competitively bound to the aptamer A, at least physical changes and chemical changes caused by the binding of the nucleic acid chain N and the aptamer A Either one is detected (see the second step, FIG. 11).
  • the amount of target substance T in the sample is estimated based on a calibration curve.
  • the method of creating a calibration curve is as follows. A predetermined amount of aptamer A and a predetermined amount of target substance T are introduced into the detection surface 2 on which the nucleic acid chain N is immobilized, and are bound competitively. Under these conditions, at least one of a physical change and a chemical change caused by the binding between the nucleic acid strand N and the aptamer A is detected. By making the introduction amount of the aptamer A constant and performing detection by changing the introduction amount of the target substance T, a correlation between the introduction amount of the target substance T and the detection result is obtained, and a calibration curve is created. (Third step, see FIG. 12).
  • the amount of the target substance T in the sample is estimated from the detection result of the second step (fourth step, see FIG. 13).
  • the nucleic acid strand N is immobilized on the detection surface 2 of the sensor, and at least one of a physical change and a chemical change caused by the binding of the nucleic acid strand N and the aptamer A is performed by the sensor.
  • Detection by such means is desirable because the aptamer A and the nucleic acid chain N can be detected without modification with an unstable label such as a dye. Further, it is desirable that the detection surface 2 can be regenerated, since measurement can be performed any number of times.
  • the detection principle of the sensor used is that the immobilized nucleic acid strand N Is not particularly limited as long as at least one of a physical change and a chemical change caused by binding of aptamer A to the aptamer A can be detected. Specific examples include the SPR principle and the QCM principle.
  • the nucleic acid strand N is immobilized on the detection surface 2 and a change in dielectric constant caused by the binding between the nucleic acid strand N and the aptamer A is detected. Specifically, a change in dielectric constant caused by binding of the nucleic acid strand N immobilized on the detection surface 2 to the aptamer A is observed as a change in the attenuation peak angle of reflected light intensity due to the surface plasmon resonance phenomenon. . Therefore, the sensitivity when the SPR principle is used as the detection principle depends on the amount of change in dielectric constant caused by binding of the nucleic acid chain N to the aptamer A.
  • the nucleic acid chain N is immobilized on the detection surface 2 in the same manner, and a mass change caused by the binding between the nucleic acid chain N and the aptamer A is detected. Specifically, a change in mass caused by binding of the nucleic acid strand N immobilized on the detection surface 2 to the aptamer A is observed as a change in resonance frequency due to the piezoelectric effect of the crystal resonator. Therefore, the sensitivity when the QCM principle is used as the detection principle depends on the amount of mass change caused by binding of the nucleic acid chain N to the aptamer A.
  • the method for immobilizing the nucleic acid chain N on the detection surface 2 is not particularly limited.
  • the detection surface is modified by modifying avidin at the end of the nucleic acid chain N.
  • the amount of the aptamer A used in the method according to the present invention is not particularly limited, and can be appropriately set according to the type, concentration, etc. of the target substance T to be quantified.
  • the dynamic range for the target substance T can be changed by changing the concentration of the aptamer A.
  • At least one of the aptamer A and the nucleic acid chain N includes the aptamer A and the nucleic acid chain.
  • the nucleic acid chain N may be modified by a substituent that increases at least one of a physical change and a chemical change caused by binding.
  • the said substituent is not specifically limited, According to a detection means, it can select suitably.
  • a dielectric can be modified at the end of the aptamer A.
  • the amount of the nucleic acid chain N immobilized on the detection surface 2 of the sensor is not particularly limited, and the structure of the aptamer A and the nucleic acid chain N, the amount of the target substance T to be introduced, etc. Can be set as appropriate.
  • the order in which the target substance T and the aptamer A are introduced into the detection surface 2 is not particularly limited.
  • the target substance T and the aptamer A can be introduced simultaneously.
  • the target substance T is reacted with the aptamer A in advance, and this is introduced into the nucleic acid chain N, whereby detection can be performed in a state where the reaction between the target substance T and the aptamer A has progressed to equilibrium.
  • the target substance T can be quantified with high sensitivity.
  • FIG. 14 is a conceptual diagram of a preferred third embodiment of the method according to the present invention.
  • F represents a fluorescent dye
  • Q represents a quencher that quenches the fluorescent dye F.
  • At least one of a physical change and a chemical change caused by binding of the aptamer A and the nucleic acid chain N is the fluorescent dye F modified in the base sequence of the aptamer A and the fluorescent dye F. Is detected by the quencher Q that quenches.
  • the fluorescent dye F and the quencher Q are close to each other when the aptamer A is bound to the target substance T or is self-annealed, and the aptamer A is the nucleic acid. In the state where it is bound to the chain N, it is modified with the aptamer A so as to increase the mutual distance (see FIG. 14).
  • the fluorescent dye F is close to the quencher Q. Quenched and no fluorescence is observed (see FIG. 14 (1)).
  • the fluorescent dye F is not quenched by the quencher Q because the fluorescent dye F and the quencher Q are separated from each other. Will be observed (see FIG. 14 (2)).
  • a structural change caused by binding of the aptamer A to the nucleic acid chain N can be observed as a change in fluorescence intensity of the fluorescent dye F modified to the aptamer A.
  • the target substance T is a small molecule, and an attempt is made to detect at least one of a physical change and a chemical change caused by the aptamer A binding to the target substance T. Even when sufficient sensitivity cannot be obtained, the target substance T can be quantified with high sensitivity. Moreover, since the influence by the self-annealing of the aptamer A can be eliminated, noise due to the self-annealed aptamer A can be reduced.
  • the equilibrium constant of the aptamer a-the target substance T may be calculated from the equilibrium state between the nucleic acid chain N and the aptamer A and the equilibrium state between the nucleic acid chain N-the target substance t-the aptamer A. it can.
  • the target substance t for a certain aptamer a for example, which target substance t and the affinity for the aptamer a can be easily measured.
  • drug screening can be easily performed.
  • nucleic acid chain As a competing molecule for the target substance, a 20-mer long nucleic acid chain having a base sequence complementary to a part of the aptamer was used. The complementary portions were 5 'to 15 mer (nucleic acid strand 1) and 10 mer (nucleic acid strand 2), and the remaining portions were arranged so as not to bind non-specifically to the aptamer and the nucleic acid strand itself. Each nucleic acid chain is shown in Table 2.
  • ⁇ Aptamer immobilization method Immobilization of the aptamer to the chip was performed as follows.
  • An SA chip manufactured by Biacore
  • the SA chip is modified with dextran having a carboxyl group on the gold surface, and streptavidin is immobilized on the carboxyl group.
  • 10 ⁇ M of biotin-modified aptamer was fed at 5 ⁇ L / min for 480 seconds.
  • 50 mM NaOH aqueous solution After further washing with 50 mM NaOH aqueous solution, it was sufficiently immobilized until no more aptamer reacted.
  • Aptamers could be immobilized to about 1500-2500 Resonance Units.
  • the reference DNA was immobilized on the reference cell in the same manner except that the reference DNA was used instead of the aptamer.
  • ⁇ SPR measurement method Samples were prepared by preparing 0 ⁇ M, 0.1 ⁇ M, 1 ⁇ M, 10 ⁇ M, 50 ⁇ M, 100 ⁇ M methyl cholate and 2 ⁇ M nucleic acid strands, and mixing them both at 1: 1.
  • the prepared sample was fed simultaneously to the aptamer cell and the reference cell.
  • the flow rate was set at two levels of 480 seconds at 5 ⁇ L / min and 300 seconds at 10 ⁇ L / min.
  • a blank was measured and corrected for each sample using an acetonitrile-containing running buffer having the same composition. Cell washing between measurements was performed by feeding a 3 mM NaOH aqueous solution and a 500 mM HCl aqueous solution.
  • FIG. 15 shows the SPR angle shift difference between the aptamer cell and the reference cell of the nucleic acid chain 1 (5 ⁇ L / min) and the nucleic acid chain 2 (10 ⁇ L / min). While the sample was being fed, the signal increased, and nucleic acid chain binding was observed on the substrate surface. On the other hand, when the liquid feeding of the sample was completed and the running buffer was fed, the signal decreased and dissociation of the nucleic acid chain was observed. In the case of the nucleic acid chain 1, it is considered that the signal decrease after the completion of the sample feeding is more gradual, and the dissociation rate from the aptamer is slower. From this measurement result, it was confirmed that a change in dielectric constant caused by binding of an aptamer to a nucleic acid chain can be detected.
  • FIG. 16 shows a value obtained by subtracting the peak shift value at each methyl cholic acid concentration from the blank peak shift value when the nucleic acid strand 1 is used.
  • a peak shift depending on the concentration of methyl cholic acid was obtained. There was a tendency that a large signal was obtained because the reaction progressed when the feeding time was long.
  • the maximum detection limit of methylcholic acid obtained by the method according to the present invention was 0.5 ⁇ M, and the target substance could be detected with very high sensitivity.
  • the target substance in a method of quantifying a target substance using an aptamer, can be quantified with high sensitivity.

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Abstract

　アプタマーを用いて標的物質を定量する方法において、高感度に標的物質の定量を行う方法を提供する。標的物質を定量する方法であって、前記標的物質と、特異的に結合するアプタマーの少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する核酸鎖と、を競争的に結合させた条件で、前記アプタマーと前記核酸鎖とが結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出し、得られた検出結果に基づいて前記標的物質を定量する方法とする。

Description

標的物質の定量方法
　本発明は、分子の定量方法に関する。より詳しくは、アプタマーを用いた分子の定量方法に関する。
　バイオセンサは分子識別機能を持つ材料と、それらと化学物質間の相互作用の物理・化学的シグナルを検出するトランスデューサーからなる。これまで分子識別機能を持つ材料として酵素、抗体、レセプター等のたんぱく質が用いられてきた。
　文献１（ＢＵＮＳＥＫＩ　ＫＡＧＡＫＵ　Ｖｏｌ．５１，Ｎｏ．６，（２００２）３８９－３９６）では、表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）センサを用いた内分泌撹乱物質高速スクリーニング法として、ＳＰＲセンサチップ上にエストロゲン応答遺伝子のプロモーター領域のホルモン応答配列ＤＮＡ（ＥＲＥ）を固定化し、精製したエストロゲンレセプターα（ＥＲ）を添加することで、ＥＲとＥＲＥの相互作用を非修飾でリアルタイムに測定する方法が開示されている。
　しかしながら、たんぱく質は、化学的・熱的に不安定であるために短寿命である点、それ自身非特異吸着を起こす点等から、長期にわたって使用する用途には不向きであった。
　これに対し、低分子化合物からたんぱく質に至るまでを抗原として、抗体のように特異的結合を起こす核酸配列（アプタマー）が注目されている。アプタマーは素材がたんぱく質ではないため安定性や寿命の面で利点がある。また、比較的温和な条件で再生が可能であることや、化学合成により安価に大量生産が可能であること、相補鎖とも可逆的に結合・解離する等、核酸特有の性質を併せ持つことから、バイオセンサへの応用が期待されている。
　文献２（Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１２８，（２００６）３１３８－３１３９）では、アプタマーの末端にメチレンブルーを修飾することによって、標的物質であるコカインが存在することによるアプタマーの構造の変化を電気化学的手法により観測している。
　しかしながら、文献２（Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１２８，（２００６）３１３８－３１３９）に記載の発明では、アプタマーが標的物質と結合することによる構造の変化と、アプタマーが分子内で二重鎖を形成（以下、自己アニールと称する）することによる構造の変化とを区別することができず、自己アニールしたアプタマーの分だけノイズレベルが高くなり検出限界が高くなってしまう場合があった。
　そこで、本発明は、アプタマーを用いて標的物質を定量する方法において、高感度に標的物質の定量を行う方法を提供することを主目的とする。
　上記技術的課題を解決するために、本発明は、標的物質を定量する方法であって、前記標的物質と特異的に結合するアプタマーに対し、前記標的物質と、前記アプタマーの少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する核酸鎖と、を競争的に結合させた条件で、前記アプタマーが前記核酸鎖と結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出し、得られた検出結果に基づいて前記標的物質を定量する方法を提供する。
　なお、本発明に係る標的物質は広義に解するものとし、分子のみならずイオン等をも含むものとする。また、アプタマーとは、特定の分子と特異的に結合する核酸分子やペプチドをいう。
　本発明において、前記アプタマーは、センサの検出表面に固定化されるのが好適である。
　この場合、前記センサの検出原理は表面プラズモン共鳴原理であり、前記アプタマーが前記核酸鎖と結合することによって生じる誘電率変化を前記センサによって検出したり、前記センサの検出原理は水晶発振子マイクロバランス原理であり、前記アプタマーが前記核酸鎖と結合することによって生じる質量変化を前記センサによって検出するのが好適である。
　本発明に係る方法において、前記アプタマーはステムループ構造を有し、前記核酸鎖は、前記アプタマーの非ステム部分の塩基配列と相補的な塩基配列を有することが好ましい。前記核酸鎖を、前記アプタマーの非ステム部分の塩基配列と相補的な塩基配列を少なくとも有するものとすることにより、前記核酸鎖は自己アニールしているアプタマーと結合し、前記アプタマーの自己アニールを解くことができるため好ましい。
　なお、本発明において「非ステム部分」とは、アプタマーが相補鎖を形成するステム構造以外の部分をいい、ループ構造を有するループ部分や、相補鎖を形成していないバルジ部分等を指す。
　また、前記核酸鎖は、前記アプタマーと非相補的な塩基配列を有するものとしたり、前記アプタマー及び前記核酸鎖の少なくともいずれかは、前記アプタマーと前記核酸鎖とが結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを増大せしめる置換基によって置換されているものとするのが好ましい。前記相補鎖をこのような構成とすることにより、前記核酸鎖が前記アプタマーに結合した際の物理的変化及び化学的変化が大きくなるため、検出感度が向上するため好ましい。
　さらに、前記核酸鎖は、センサの検出表面に固定化されるものとすることができる。
　この場合、前記センサの検出原理は表面プラズモン共鳴原理であり、前記核酸鎖が前記アプタマーと結合することによって生じる誘電率変化を前記センサによって検出したり、前記センサの検出原理は水晶発振子マイクロバランス原理であり、前記核酸鎖が前記アプタマーと結合することによって生じる質量変化を前記センサによって検出するのが好適である。
　そして、本発明は、試料中の標的物質を定量する方法であって、検出表面に、前記標的物質に特異的に結合するアプタマーを固定化する工程と、前記アプタマーに対し、前記試料中の標的物質と、前記アプタマーの少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する核酸鎖と、を競争的に結合させた条件で、前記アプタマーが前記核酸鎖と結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出する工程と、前記アプタマーに対し、所定量の標的物質と、所定量の前記核酸鎖と、を競争的に結合させた条件で、前記アプタマーが前記核酸鎖と結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出し、前記標的物質の量と検出結果との相関関係を得る工程と、前記相関関係に基づいて、前記試料中の標的物質の量を推定する工程と、を少なくとも行う方法を提供する。
本発明に係る方法の概念図である。 本発明に係る方法の好適な第一の実施形態のフロー図である。 本発明に係る方法の好適な第一の実施形態の第一工程の概念図である。 本発明に係る方法の好適な第一の実施形態の第二工程の概念図である。 本発明に係る方法の好適な第一の実施形態の第三工程の概念図である。 本発明に係る方法の好適な第一の実施形態の第四工程の概念図である。 本発明に係る方法に用いられる好適な核酸鎖の一例の概念図である。 本発明に係る方法に用いられる好適な核酸鎖の他の一例の概念図である。 本発明に係る方法の好適な第二の実施形態のフロー図である。 本発明に係る方法の好適な第二の実施形態の第一工程の概念図である。 本発明に係る方法の好適な第二の実施形態の第二工程の概念図である。 本発明に係る方法の好適な第二の実施形態の第三工程の概念図である。 本発明に係る方法の好適な第二の実施形態の第四工程の概念図である。 本発明に係る方法の好適な第三の実施形態の概念図である。 本発明の実施例に係るアプタマーセルと参照用セルのＳＰＲ角度シフト差を示す図である。 本発明の実施例に係る各メチルコール酸濃度におけるピークシフトの値をブランクのピークシフト値から差し引いた値を示す図である。
　以下、本発明を実施するための好適な形態について図面を参照としながら説明する。なお、以下に説明する実施形態は、本発明の代表的な実施形態の一例を示したものであり、これにより本発明の範囲が狭く解釈されることはない。
　図１は、本発明に係る標的物質を定量する方法の概念図である。Ｔは標的物質を、Ａは前記標的物質と特異的に結合するアプタマーを、Ｎは前記アプタマーＡの少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する核酸鎖をそれぞれ表す。
　本発明に係る方法では、標的物質Ｔを定量するに際して、前記標的物質Ｔと特異的に結合するアプタマーＡに対し、前記標的物質Ｔと、前記アプタマーＡの少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する核酸鎖Ｎとを競争的に結合させる（図１（１）参照）。この状態において、前記アプタマーＡと前記核酸鎖Ｎとが結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出する（図１（２）参照）。そして、得られた検出結果に基づいて、前記標的物質Ｔを定量する。
　前記アプタマーＡと前記核酸鎖Ｎとが結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出対象とすることにより、例えば、標的物質Ｔが低分子であって、前記アプタマーＡが前記標的物質Ｔと結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出しようとしても充分な感度が得られない場合においても、前記標的物質Ｔを定量することができる。
　また、前記アプタマーＡが自己アニールすることによる影響を排除することができるため、自己アニールした前記アプタマーＡによるノイズを低減することができる。
　以下、本発明に係る方法の好適な第一の実施形態について、工程ごとに説明する。なお、図２は、本発明に係る方法の好適な第一の実施形態のフロー図であり、図３～図６は、本発明に係る方法の好適な実施形態の各工程の概念図である。また、１はセンサの検出表面を、１１はリンカーをそれぞれ表す。
　はじめに、検出表面１に所定量のアプタマーＡを導入し、前記検出表面１に前記アプタマーＡを固定化する。前記アプタマーＡは、前記検出表面１に固定化されるための官能基を末端に備えており、リンカー１１を介して連結されることによって、前記検出表面１に固定化される（第一工程、図３参照）。
　次に、前記アプタマーＡが固定化された前記検出表面１に、前記標的物質Ｔを含有しうる試料と、前記核酸鎖Ｎとを導入する。そして、両者を前記アプタマーＡに競争的に結合させた状態において、前記アプタマーＡと前記核酸鎖Ｎとが結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出する（第二工程、図４参照）。
　試料中の標的物質Ｔの量は、検量線に基づいて推定する。検量線の作成方法は以下の通りである。前記アプタマーＡが固定化された前記検出表面１に、所定量の標的物質Ｔと、所定量の核酸鎖Ｎと、を導入し、競争的に結合させる。この条件において、前記アプタマーＡが前記核酸鎖と結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出する。前記核酸鎖Ｎの導入量を一定とし、前記標的物質Ｔの導入量を変化させて検出を行うことによって、前記標的物質Ｔの導入量と検出結果との相関関係を得て、検量線を作成する（第三工程、図５参照）。
　前記第三工程で得られた相関関係に基づいて、前記第二工程の検出結果より前記試料中の標的物質Ｔの量を推定する（第四工程、図６参照）。
　以下に、本発明の第一の実施形態の構成について詳細に説明する。
　本発明に係る方法において検出対象となる、アプタマーＡと核酸鎖Ｎとが結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかは、特に限定されない。物理的変化の具体例として、例えば、誘電率変化や質量変化等が挙げられる。また、化学的変化の具体例としては、例えば、前記アプタマーＡの構造変化や前記アプタマーＡが分子内結合を有する際の結合強度の変化等が挙げられる。
　本発明において、前記アプタマーＡが前記核酸鎖Ｎと結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかの検出手段は、本実施形態に限定されないが、前記アプタマーＡはセンサの検出表面１に固定化され、前記アプタマーＡが前記核酸鎖Ｎと結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを前記センサによって検出するのが好適である。このような手段で検出することにより、前記アプタマーＡや前記核酸鎖Ｎを色素等の不安定なラベルで修飾することなく検出することができるため望ましい。また、前記検出表面１を再生することができれば何度でも測定が可能であるため望ましい。
　前記アプタマーＡが前記核酸鎖Ｎと結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかをセンサによって検出する場合において、用いられる前記センサの検出原理は、固定化した前記アプタマーＡが前記核酸鎖Ｎと結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出できるものであれば、特に限定されない。具体例として、例えば、表面プラズモン共鳴（Ｓｕｒｆａｃｅ　Ｐｌａｓｍｏｎ　Ｒｅｓｏｎａｎｃｅ、以下ＳＰＲと称する）原理や、水晶発振子マイクロバランス（Ｑｕａｒｔｚ　Ｃｒｙｓｔａｌ　Ｍｉｃｒｏｂａｌａｎｃｅ、以下ＱＣＭと称する）原理等が挙げられる。
　検出原理としてＳＰＲ原理を用いる場合には、前記検出表面１に前記アプタマーＡを固定化し、前記アプタマーＡが前記核酸鎖Ｎと結合することによって生じる誘電率変化を検出する。具体的には、前記検出表面１に固定化された前記アプタマーＡが前記核酸鎖Ｎと結合することによって生じる誘電率変化を、表面プラズモン共鳴現象による反射光強度の減衰ピーク角度の変化として観測する。従って、検出原理としてＳＰＲ原理を用いた場合の感度は、前記アプタマーＡが前記核酸鎖Ｎと結合することによって生じる誘電率変化量に依存する。
　検出原理としてＱＣＭ原理を用いる場合には、同様に前記検出表面１に前記アプタマーＡを固定化し、前記アプタマーＡが前記核酸鎖Ｎと結合することによって生じる質量変化を検出する。具体的には、前記検出表面１に固定化された前記アプタマーＡが前記核酸鎖Ｎと結合することによって生じる質量変化を、水晶振動子の圧電効果による共振周波数の変化として観測する。従って、検出原理としてＱＣＭ原理を用いた場合の感度は、前記アプタマーＡが前記核酸鎖Ｎと結合することによって生じる質量変化量に依存する。
　本発明に係る方法で定量される標的物質Ｔは、特に限定されず、例えば、たんぱく質、核酸、ホルモン、環境ホルモン、薬剤等が挙げられるが、例えば、ホルモン、環境ホルモン、薬剤等の低分子が好適に定量される。ホルモン、環境ホルモン、薬剤等の低分子は、ＳＰＲセンサやＱＣＭセンサ等のバイオセンサで直接検出しようとしても、誘電率や質量の変化量が小さく、充分な検出感度が得られない場合がある。このような場合においても、本発明に係る方法によれば、ホルモン、環境ホルモン、薬剤等の低分子を高感度に検出することができる。
　本発明に係る方法に用いられるアプタマーＡは、前記標的物質Ｔと特異的に結合する核酸等の分子である。前記標的物質Ｔと特異的に結合するものであれば、その種類等は特に限定されず、ＤＮＡアプタマー、ＲＮＡアプタマー、ペプチドアプタマー、ＰＮＡ（ペプチド核酸）等を用いることができる。
　本発明に係る方法では、前記アプタマーＡが前記核酸鎖Ｎと結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出するため、自己アニールした前記アプタマーＡのノイズを低減することができる。このため、本発明に係る方法に用いられる前記アプタマーＡの量を増加させることにより、ノイズを増加させることなく検出感度を向上させることができる。
　前記アプタマーＡを検出表面１に固定化する場合において、前記アプタマーＡを前記検出表面１に固定化する方法は特に限定されず、例えば、アプタマーＡの末端にアビジンを修飾し、検出表面１にビオチン修飾を施して、アビジン－ビオチン結合を利用して固定化する方法、アプタマーＡの末端をアミノ化し、検出表面１にカルボン酸修飾を施して、アミド結合を利用して固定化する方法、アプタマーＡの末端をチオール化し、貴金属からなる検出表面１に、チオールと金属の結合を利用して固定化する方法、アプタマーＡの末端にタンパク質を修飾し、たんぱく質が吸着しやすい材質からなる検出表面１に、たんぱく質の物理吸着を利用して固定化する方法等が挙げられる。
　本発明に係る方法に用いられる前記アプタマーＡの量は特に限定されず、定量する前記標的物質Ｔの種類、濃度等に応じて適宜設定することができる。前記アプタマーＡを前記検出表面１に固定化する場合においても、前記検出表面１に固定化する前記アプタマーＡの量は特に限定されない。
　本発明に係る方法に用いられる核酸鎖Ｎは、前記アプタマーＡの少なくとも一部と相補的な塩基配列を有するものであり、前記アプタマーＡが前記核酸鎖Ｎと結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出し、得られた検出結果に基づいて標的物質Ｔを定量する。
　前記核酸鎖Ｎが有する前記アプタマーＡと相補的な塩基配列の塩基数については特に限定されない。相補的な塩基配列の塩基数を変化させることにより、前記アプタマーＡと前記核酸鎖Ｎとの二重鎖結合の平衡定数を変化させることができる。これにより、感度を調整することができる。
　前記核酸鎖Ｎが有する前記アプタマーＡと相補的な塩基配列については特に限定されないが、前記アプタマーＡがステムループ構造を有する場合において、前記核酸鎖Ｎは、前記アプタマーＡの非ステム部分の塩基配列と相補的な塩基配列を有するものであることが望ましい。前記核酸鎖Ｎを、自己アニールし、ステム－ループ構造を有している前記アプタマーＡの非ステム部分の塩基配列と相補的な塩基配列を有するものとすることにより、前記核酸鎖Ｎは自己アニールしている前記アプタマーＡの非ステム部分を起点として前記アプタマーＡに効率よく結合することができ、感度を向上させることができる。
　すなわち、自己アニールし、ステム－ループ構造を有している前記アプタマーＡは、前記標的物質Ｔと結合せず、検出に寄与しないものとなる場合がある。また、このような前記アプタマーＡは、検出の際にノイズの原因となりうる。前記核酸鎖Ｎを、前記アプタマーＡの非ステム部分の塩基配列と相補的な塩基配列を有するものとすることにより、自己アニールし、ステム－ループ構造を有している前記アプタマーＡの自己アニールを解き、検出に寄与するものとすることができる。また、自己アニールしている前記アプタマーＡを減少させることにより、ノイズをさらに減少させ、検出感度を向上させることができる（図８参照）。
　前記核酸鎖Ｎが前記アプタマーＡの非ステム部分の塩基配列と相補的な塩基配列を有する場合における、前記アプタマーＡの非ステム部分と相補的な塩基配列の塩基数は、特に限定されないが、４塩基以上とするのが好適である。相補的な塩基配列の塩基数を４塩基以上とすることにより、前記アプタマーＡの非ステム部分と効率よく結合することができるため望ましい。
　また、前記核酸鎖Ｎは、前記アプタマーＡの塩基配列のうち、前記標的物質Ｔと結合したときに、前記標的物質Ｔが最も強く相互作用する部分の塩基配列と相補的な塩基配列を有することが望ましい。前記アプタマーＡの塩基配列のうち標的物質Ｔと結合する部分は、標的物質Ｔと結合することによって安定化される。従って、前記核酸鎖Ｎがこの部分と相補的な塩基配列を有するものとすることにより、前記核酸鎖Ｎは、前記標的物質Ｔと結合していない前記アプタマーＡとは結合しやすく（図７（１）参照）、一旦前記標的物質Ｔと結合した前記アプタマーＡとは結合しにくいものとすることができる（図７（２）参照）。
　前記核酸鎖Ｎが、前記アプタマーＡの塩基配列のうち前記標的物質Ｔと結合する部分の塩基配列と相補的な塩基配列を有する場合において、前記アプタマーＡの塩基配列のうち前記標的物質Ｔと結合する部分と相補的な塩基配列の塩基数は、特に限定されない。
　また、本発明に係る方法に用いられる核酸鎖Ｎは、アプタマーＡの少なくとも一部と相補的な塩基配列を有するものであれば特に限定されないが、前記アプタマーＡと非相補的な塩基配列を有するものとするのが好適である。非相補的な塩基配列を有するものとすることにより、前記核酸鎖Ｎの誘電率や質量を増加させることができ、前記アプタマーＡと結合した際の誘電率や質量の変化を増加させて感度を上げることができるため望ましい。
　また、前記アプタマーＡと前記核酸鎖とが結合した際の誘電率や質量の変化を増加させて感度を上げるために、前記アプタマーＡ及び前記核酸鎖Ｎの少なくともいずれかは、前記アプタマーＡと前記核酸鎖Ｎとが結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを増大せしめる置換基によって修飾されていてもよい。前記置換基は特に限定されず、検出手段に応じて適宜選択することができる。例えば、前記アプタマーＡがＳＰＲ原理を検出原理とするセンサの表面に固定化されている場合には、前記核酸鎖の末端に誘電体を修飾することができる。
　本発明に係る方法に用いられる前記核酸鎖Ｎの量は特に限定されず、前記アプタマーＡや前記核酸鎖Ｎ等の構造、導入する前記標的物質Ｔの量等に応じて、適宜設定することができる。
　本発明に係る方法において、アプタマーＡに標的物質Ｔと核酸鎖Ｎとを競争的に結合させる際、前記標的物質Ｔと前記核酸鎖Ｎとを導入する順序は特に限定されず、例えば、前記標的物質Ｔと前記核酸鎖Ｎとを同時に導入することができる。また、前記アプタマーＡが前記核酸鎖Ｎと結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを、センサによって検出する場合においては、前記標的物質Ｔを前記相補鎖Ｎよりも先に導入することにより、前記アプタマーＡと前記核酸鎖Ｎとの結合が平衡に達する前に速やかにシグナルを得ることができる。
　以下、本発明に係る方法の好適な第二の実施形態について、工程ごとに説明する。第一の実施形態と同様の点については記載を省略し、相違する点について説明する。なお、図９は、本発明に係る方法の好適な第二の実施形態のフロー図であり、図１０～図１３は、本発明に係る方法の好適な実施形態の各工程の概念図である。また、２はセンサの検出表面を、２１はリンカーをそれぞれ表す。
　はじめに、検出表面２に所定量の核酸鎖Ｎを導入し、前記検出表面２に前記核酸鎖Ｎを固定化する。前記核酸鎖Ｎは、前記検出表面２に固定化されるための官能基を末端に備えており、リンカー２１を介して連結されることによって、前記検出表面２に固定化される（第一工程、図１０参照）。
　次に、前記核酸鎖Ｎが固定化された前記検出表面２に、前記標的物質Ｔを含有しうる試料と、前記アプタマーＡとを導入する。そして、前記核酸鎖Ｎと前記標的物質Ｔとを前記アプタマーＡに競争的に結合させた状態において、前記核酸鎖Ｎと前記アプタマーＡとが結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出する（第二工程、図１１参照）。
　試料中の標的物質Ｔの量は、検量線に基づいて推定する。検量線の作成方法は以下の通りである。前記核酸鎖Ｎが固定化された前記検出表面２に、所定量のアプタマーＡと、所定量の標的物質Ｔと、を導入し、競争的に結合させる。この条件において、前記核酸鎖Ｎと前記アプタマーＡとが結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出する。前記アプタマーＡの導入量を一定とし、前記標的物質Ｔの導入量を変化させて検出を行うことによって、前記標的物質Ｔの導入量と検出結果との相関関係を得て、検量線を作成する（第三工程、図１２参照）。
　前記第三工程で得られた相関関係に基づいて、前記第二工程の検出結果より前記試料中の標的物質Ｔの量を推定する（第四工程、図１３参照）。
　以下に、本発明の第二の実施形態の構成について詳細に説明する。
　本実施形態において、前記核酸鎖Ｎはセンサの検出表面２に固定化され、前記核酸鎖Ｎと前記アプタマーＡとが結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを前記センサによって検出する。このような手段で検出することにより、前記アプタマーＡや前記核酸鎖Ｎを色素等の不安定なラベルで修飾することなく検出することができるため望ましい。また、前記検出表面２を再生することができれば何度でも測定が可能であるため望ましい。
　前記核酸鎖Ｎと前記アプタマーＡとが結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかをセンサによって検出する場合において、用いられる前記センサの検出原理は、固定化した前記核酸鎖Ｎと前記アプタマーＡとが結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出できるものであれば、特に限定されない。具体例として、例えば、ＳＰＲ原理や、ＱＣＭ原理等が挙げられる。
　検出原理としてＳＰＲ原理を用いる場合には、前記検出表面２に前記核酸鎖Ｎを固定化し、前記核酸鎖Ｎと前記アプタマーＡとが結合することによって生じる誘電率変化を検出する。具体的には、前記検出表面２に固定化された前記核酸鎖Ｎが前記アプタマーＡと結合することによって生じる誘電率変化を、表面プラズモン共鳴現象による反射光強度の減衰ピーク角度の変化として観測する。従って、検出原理としてＳＰＲ原理を用いた場合の感度は、前記核酸鎖Ｎが前記アプタマーＡと結合することによって生じる誘電率変化量に依存する。
　検出原理としてＱＣＭ原理を用いる場合には、同様に検出表面２に前記核酸鎖Ｎを固定化し、前記核酸鎖Ｎと前記アプタマーＡとが結合することによって生じる質量変化を検出する。具体的には、前記検出表面２に固定化された前記核酸鎖Ｎが前記アプタマーＡと結合することによって生じる質量変化を、水晶振動子の圧電効果による共振周波数の変化として観測する。従って、検出原理としてＱＣＭ原理を用いた場合の感度は、前記核酸鎖Ｎが前記アプタマーＡと結合することによって生じる質量変化量に依存する。
　前記核酸鎖Ｎを検出表面２に固定化する場合において、前記核酸鎖Ｎを前記検出表面２に固定化する方法は特に限定されず、例えば、核酸鎖Ｎの末端にアビジンを修飾し、検出表面２にビオチン修飾を施して、アビジン－ビオチン結合を利用して固定化する方法、核酸鎖Ｎの末端をアミノ化し、検出表面２にカルボン酸修飾を施して、アミド結合を利用して固定化する方法、核酸鎖Ｎの末端をチオール化し、貴金属からなる検出表面２に、チオールと金属の結合を利用して固定化する方法、核酸鎖Ｎの末端にタンパク質を修飾し、たんぱく質が吸着しやすい材質からなる検出表面２に、たんぱく質の物理吸着を利用して固定化する方法等が挙げられる。
　本発明に係る方法に用いられる前記アプタマーＡの量は特に限定されず、定量する前記標的物質Ｔの種類、濃度等に応じて適宜設定することができる。アプタマーＡの濃度を変化させることにより、標的物質Ｔに対するダイナミックレンジを変化させることができる。
　また、前記アプタマーＡと前記核酸鎖とが結合した際の誘電率や質量の変化を増加させて感度を上げるために、前記アプタマーＡ及び前記核酸鎖Ｎの少なくともいずれかは、前記アプタマーＡと前記核酸鎖Ｎとが結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを増大せしめる置換基によって修飾されていてもよい。前記置換基は特に限定されず、検出手段に応じて適宜選択することができる。例えば、前記核酸鎖ＮがＳＰＲ原理を検出原理とするセンサの表面に固定化されている場合には、前記アプタマーＡの末端に誘電体を修飾することができる。
　本発明に係る方法において、センサの検出表面２に固定化される前記核酸鎖Ｎの量は特に限定されず、前記アプタマーＡや前記核酸鎖Ｎ等の構造、導入する前記標的物質Ｔの量等に応じて、適宜設定することができる。
　本実施形態において、前記標的物質Ｔと前記アプタマーＡとを前記検出表面２に導入する順序は特に限定されず、例えば、前記標的物質Ｔと前記前記アプタマーＡとを同時に導入することができる。また、予め前記標的物質Ｔを前記アプタマーＡと反応させ、これを前記核酸鎖Ｎに導入することにより、前記標的物質Ｔと前記アプタマーＡとの反応が平衡まで進んだ状態で検出を行うことができ、高感度で前記標的物質Ｔを定量することができる。
　以下、本発明に係る方法の好適な第三の実施形態について説明する。第一及び第二の実施形態と同様の点については記載を省略し、相違する点について説明する。なお、図１４は本発明に係る方法の好適な第三の実施形態の概念図であり、Ｆは蛍光色素を、Ｑは該蛍光色素Ｆを消光するクエンチャーをそれぞれ表す。
　本実施形態において、アプタマーＡと核酸鎖Ｎとが結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかは、前記アプタマーＡの塩基配列中に修飾された蛍光色素Ｆと該蛍光色素Ｆを消光するクエンチャーＱとによって検出される。前記蛍光色素Ｆと前記クエンチャーＱとは、前記アプタマーＡが前記標的物質Ｔと結合している状態又は自己アニールしている状態においては互いの距離が近接し、かつ、前記アプタマーＡが前記核酸鎖Ｎと結合している状態においては互いの距離が大きくなるように、前記アプタマーＡに修飾されている（図１４参照）。
　前記アプタマーＡが前記標的物質Ｔと結合している状態又は自己アニールしている状態においては、前記蛍光色素Ｆは前記クエンチャーＱと近接しているため、前記蛍光色素Ｆは前記クエンチャーＱによって消光され、蛍光は観測されない（図１４（１）参照）。
　一方、前記アプタマーＡが前記核酸鎖Ｎと結合している状態においては、前記蛍光色素Ｆと前記クエンチャーＱとが離れているため、前記蛍光色素Ｆは前記クエンチャーＱによって消光されず、蛍光が観測されることとなる（図１４（２）参照）。
　本実施形態に係る方法では、前記アプタマーＡが前記核酸鎖Ｎと結合することによって生じる構造変化を、前記アプタマーＡに修飾した前記蛍光色素Ｆの蛍光強度の変化として観測することとができる。
　本発明に係る方法によれば、例えば、標的物質Ｔが低分子であって、前記アプタマーＡが前記標的物質Ｔと結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出しようとしても充分な感度が得られない場合においても、前記標的物質Ｔを高感度で定量することができる。
　また、前記アプタマーＡが自己アニールすることによる影響を排除することができるため、自己アニールした前記アプタマーＡによるノイズを低減することができる。
　また、前記核酸鎖Ｎ－前記アプタマーＡ間の平衡状態及び前記核酸鎖Ｎ－前記標的物質ｔ－前記アプタマーＡ間の平衡状態から、前記アプタマーａ－前記標的物質Ｔの平衡定数を算出することもできる。
　さらに、一定の前記アプタマーａに対し、標的物質ｔを変化させることにより、例えば、前記アプタマーａに対してどの標的物質ｔと親和力が高いかを簡便に測定することができる。本発明に係る方法によって、例えば、薬剤のスクリーニング等を簡便に行うことができる。
　以下、実施例をあげて本発明を詳細に説明するが、本発明は、以下の実施例に限定されるものではない。　
＜実験条件＞
　標的物質として、コール酸メチルを用い、アプタマーとしてコール酸に対して作製されたアプタマーを用いた。検出表面に結合させるため、５’をビオチン修飾した。アプタマー及び参照用ＤＮＡの塩基配列を表１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　標的物質の競合分子として、アプタマーの一部と相補的な塩基配列を有する鎖長２０Ｍｅｒの核酸鎖を用いた。相補部分を５’から１５ｍｅｒ（核酸鎖１）、１０ｍｅｒ（核酸鎖２）とし、残りの部分はアプタマー及び核酸鎖自身に非特異的に結合しないよう配慮した配列とした。各核酸鎖を表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　ランニングバッファーとして５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ，３００ｍＭ　ＮａＣｌ，３０ｍＭ　ＫＣｌ，５ｍＭ　ＭｇＣｌ２，ｐＨ７．６を用い、ＳＰＲ測定にはＢＩＡＣＯＲＥＸ（Ｂｉａｃｏｒｅ社製）を用いた。
　以下、特に記載のない場合は、各種溶液の溶媒は上記ランニングバッファーである。
＜アプタマー固定化方法＞
　アプタマーのチップへの固定化は、以下のように行った。アプタマーを固定化するためにＳＡチップ（Ｂｉａｃｏｒｅ社製）を用いた。ＳＡチップは、金表面がカルボキシル基を持つデキストランで修飾されており、カルボキシル基にストレプトアビジンが固定化されている。５０ｍＭ　ＮａＯＨ水溶液でＳＡチップを洗浄後、ビオチン修飾したアプタマー１０μＭを、５μＬ／ｍｉｎで４８０秒送液した。５０ｍＭ　ＮａＯＨ水溶液で更に洗浄した後、アプタマーがこれ以上反応しなくなるまで充分固定化した。アプタマーは１５００～２５００Ｒｅｓｏｎａｎｃｅ　Ｕｎｉｔ程度固定化できた。
　参照用として、アプタマーの代わりに参照用ＤＮＡを用いた以外は同様の方法で、参照用セルに参照用ＤＮＡを固定化した。
＜ＳＰＲ測定方法＞
　０μＭ，０．１μＭ，１μＭ，１０μＭ，５０μＭ，１００μＭのコール酸メチル及び、２μＭ核酸鎖を調整し、両者を1:1で混合し、各サンプルを調製した。調製した前記サンプルを、アプタマーセルと参照用セルに同時に送液した。流速は５μＬ／ｍｉｎで４８０秒、１０μＬ／ｍｉｎで３００秒の二通りとした。なお、溶媒であるアセトニトリルの影響を除外するため、各サンプルについて、同組成のアセトニトリル含有ランニングバッファーを用いてブランクを測定し、補正を行った。
　測定間のセル洗浄は、３ｍＭＮａＯＨ水溶液及び５００ｍＭＨＣｌ水溶液を送液することによって行った。
＜測定結果＞
　核酸鎖１（５μＬ／ｍｉｎ）、核酸鎖２（１０μＬ／ｍｉｎ）のアプタマーセルと参照用セルのＳＰＲ角度シフト差を図１５に示す。サンプルが送液されている間はシグナルが増加し、基板表面に核酸鎖の結合が観測された。一方、サンプルの送液が終了し、ランニングバッファーを送液するとシグナルが減少し、核酸鎖の解離が観測された。核酸鎖１の方がサンプル送液終了後のシグナルの減少が緩やかであり、アプタマーとの解離速度がより遅いものと考えられる。本測定結果より、アプタマーが核酸鎖と結合することによって生じる誘電率変化を検出できることを確認した。
　次に、核酸鎖１を用いた際の、各メチルコール酸濃度におけるピークシフトの値をブランクのピークシフト値から差し引いた値を図１６に示す。メチルコール酸濃度に依存したピークシフトが得られた。送液時間が長いと反応が進むためシグナルが大きく得られる傾向が見られた。本発明に係る方法で得られたメチルコール酸の最高検出限界は０．５μＭであり、非常に高感度で標的物質の検出を行うことができた。
　本発明によれば、アプタマーを用いて標的物質を定量する方法において、高感度に標的物質の定量を行うことができる。

Claims (11)

  1. 　標的物質を定量する方法であって、
    　前記標的物質と特異的に結合するアプタマーに対し、
    　前記標的物質と、前記アプタマーの少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する核酸鎖と、を競争的に結合させた条件で、
    　前記アプタマーと前記核酸鎖とが結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出し、得られた検出結果に基づいて前記標的物質を定量する方法。
  2. 　前記アプタマーは、センサの検出表面に固定化されていることを特徴とする請求項１記載の方法。
  3. 　前記センサの検出原理は表面プラズモン共鳴原理であり、前記アプタマーが前記核酸鎖と結合することによって生じる誘電率変化を前記センサによって検出することを特徴とする請求項２記載の方法。
  4. 　前記センサの検出原理は水晶発振子マイクロバランス原理であり、前記アプタマーが前記核酸鎖と結合することによって生じる質量変化を前記センサによって検出することを特徴とする請求項２記載の方法。
  5. 　前記アプタマーはステムループ構造を有し、前記核酸鎖は、前記アプタマーの非ステム部分の塩基配列と相補的な塩基配列を少なくとも有することを特徴とする請求項１記載の方法。
  6. 　前記核酸鎖は、前記アプタマーと非相補的な塩基配列を有することを特徴とする請求項１記載の方法。
  7. 　前記アプタマー及び前記核酸鎖の少なくともいずれかは、前記アプタマーと前記核酸鎖とが結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを増大せしめる置換基により修飾されていることを特徴とする請求項１記載の方法。
  8. 　前記核酸鎖は、センサの検出表面に固定化されていることを特徴とする請求項１記載の方法。
  9. 　前記センサの検出原理は表面プラズモン共鳴原理であり、前記核酸鎖が前記アプタマーと結合することによって生じる誘電率変化を前記センサによって検出することを特徴とする請求項８記載の方法。
  10. 　前記センサの検出原理は水晶発振子マイクロバランス原理であり、前記核酸鎖が前記アプタマーと結合することによって生じる質量変化を前記センサによって検出することを特徴とする請求項８記載の方法。
  11. 　試料中の標的物質を定量する方法であって、
    　検出表面に、前記標的物質に特異的に結合するアプタマーを固定化する工程と、
    　前記アプタマーに対し、前記試料中の標的物質と、前記アプタマーの少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する核酸鎖と、を競争的に結合させた条件で、前記アプタマーが前記核酸鎖と結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出する工程と、
    　前記アプタマーに対し、所定量の標的物質と、所定量の前記核酸鎖と、を競争的に結合させた条件で、前記アプタマーが前記核酸鎖と結合することによって生じる物理的変化及び化学的変化の少なくともいずれかを検出し、前記標的物質の量と検出結果との相関関係を得る工程と、
    　前記相関関係に基づいて、前記試料中の標的物質の量を推定する工程と、
    　を少なくとも行う方法。
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Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2012002541A1 (ja) * 2010-07-01 2012-01-05 独立行政法人産業技術総合研究所 標的分子の検出法
CN104597022A (zh) * 2015-02-06 2015-05-06 安徽科技学院 一种基于核酸适体的水胺硫磷和丙溴磷的荧光检测方法
CN106370868A (zh) * 2016-09-23 2017-02-01 中国科学院重庆绿色智能技术研究院 基于核酸适配体信号放大策略的检测微囊藻毒素的spr传感器及其制备方法和应用

Families Citing this family (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP5132647B2 (ja) * 2009-09-24 2013-01-30 株式会社東芝 パターン形成方法
US9562266B1 (en) * 2012-01-14 2017-02-07 The University Of Toledo Amine-terminated aptamer functionalized surface plasmon resonanace sensors, methods of making and methods of using same
WO2013147217A1 (ja) * 2012-03-30 2013-10-03 国立大学法人九州大学 センサ、検出方法、検出システム、及び、検出装置
CN102645420B (zh) * 2012-04-17 2014-01-15 王利兵 一种基于表面等离子共振技术的食品中有害物质多残留同时检测方法
CN102628802B (zh) * 2012-04-17 2013-12-18 王利兵 一种基于表面等离子共振技术的食品中生物毒素检测方法
CN105647930A (zh) * 2016-01-21 2016-06-08 武汉慧禹信息科技有限公司 一种基于唾液中的孕酮的核酸适配体及检测用金标试纸条
US20190071735A1 (en) * 2016-01-22 2019-03-07 Nec Solution Innovators, Ltd. Target analysis method and target analysis kit for use in the method
CN105675605A (zh) * 2016-03-29 2016-06-15 中国药科大学 一种利用适配体功能化的金纳米颗粒检测胆汁酸的方法
EP3489683A4 (en) * 2016-07-20 2020-03-18 NEC Solution Innovators, Ltd. TARGET ANALYSIS KIT AND TARGET ANALYSIS
CN108753929A (zh) * 2018-04-24 2018-11-06 绿城农科检测技术有限公司 一种微流体芯片及其改性方法和在检测食品细菌数量上的应用
CN112538482A (zh) * 2019-09-23 2021-03-23 华东理工大学 一种rna检测与定量的方法

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1999031276A1 (en) * 1997-12-15 1999-06-24 Nexstar Pharmaceuticals, Inc. Homogeneous detection of a target through nucleic acid ligand-ligand beacon interaction
JP2005095009A (ja) * 2003-09-22 2005-04-14 達彦 小林 目的配列を複数有する核酸の製造方法
WO2007032359A1 (ja) * 2005-09-12 2007-03-22 National University Corporation Tokyo University Of Agriculture And Technology アプタマー・プローブ複合体を用いた標的分子の検出方法
JP2007228803A (ja) * 2006-02-27 2007-09-13 National Institute Of Advanced Industrial & Technology 転写機構を利用した知能型核酸配列センシングシステム
JP2007244254A (ja) * 2006-03-14 2007-09-27 Kanazawa Univ ８−ヒドロキシデオキシグアノシンに特異的な結合性を有するｄｎａアプタマー
JP2008278837A (ja) * 2007-05-14 2008-11-20 Sony Corp 検出用核酸鎖及び物質間の結合又は相互作用検出方法

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0586011A2 (en) 1992-08-28 1994-03-09 Eastman Kodak Company Methods for production and amplification of nucleic acids
US6680377B1 (en) * 1999-05-14 2004-01-20 Brandeis University Nucleic acid-based detection
AU1891701A (en) * 1999-12-16 2001-06-25 Center For Advanced Science And Technology Incubation, Ltd. Method of detecting target base sequence
CA2459320C (en) 2001-09-06 2016-07-05 Genomic Profiling Systems, Inc. Rapid detection of replicating cells
WO2003062422A1 (en) * 2002-01-22 2003-07-31 Mcmaster University Signalling aptamer complexes
WO2003062442A1 (fr) 2002-01-22 2003-07-31 Daiichi Fine Chemical Co., Ltd. Procede relatif a l'elaboration de pyridoxine-5'-$g(a)-glucoside
JP2005031066A (ja) 2003-04-28 2005-02-03 Canon Inc 固定化核酸プローブの処理方法、核酸の検出方法、核酸濃度分析方法、および核酸検出用キット
EP1799825B1 (en) * 2004-10-05 2011-06-29 The California Institute of Technology Aptamer regulated nucleic acids and uses thereof
CN101111847A (zh) * 2004-11-08 2008-01-23 耶鲁大学 涉及核糖开关的基于结构的化合物设计
CA2599013A1 (en) * 2005-02-28 2006-09-08 Gen-Probe Incorporated Compositions and methods of detecting an analyte by using a nucleic acid hybridization switch probe
US7892734B2 (en) * 2005-08-11 2011-02-22 The Board Of Trustees Of The University Of Illinois Aptamer based colorimetric sensor systems
JP5380287B2 (ja) 2006-07-18 2014-01-08 ノクソン・ファルマ・アクチエンゲゼルシャフト Ｓｄｆ−１結合核酸

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1999031276A1 (en) * 1997-12-15 1999-06-24 Nexstar Pharmaceuticals, Inc. Homogeneous detection of a target through nucleic acid ligand-ligand beacon interaction
JP2005095009A (ja) * 2003-09-22 2005-04-14 達彦 小林 目的配列を複数有する核酸の製造方法
WO2007032359A1 (ja) * 2005-09-12 2007-03-22 National University Corporation Tokyo University Of Agriculture And Technology アプタマー・プローブ複合体を用いた標的分子の検出方法
JP2007228803A (ja) * 2006-02-27 2007-09-13 National Institute Of Advanced Industrial & Technology 転写機構を利用した知能型核酸配列センシングシステム
JP2007244254A (ja) * 2006-03-14 2007-09-27 Kanazawa Univ ８−ヒドロキシデオキシグアノシンに特異的な結合性を有するｄｎａアプタマー
JP2008278837A (ja) * 2007-05-14 2008-11-20 Sony Corp 検出用核酸鎖及び物質間の結合又は相互作用検出方法

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BAKER, B.R. ET AL.: "An electronic, aptamer-based small-molecule sensor for the rapid, label-free detection of cocaine in adulterated samples and biological fluids.", J. AM. CHEM. SOC., vol. 128, no. 10, 15 March 2006 (2006-03-15), pages 3138 - 3139, XP008139102 *
BUNSEKI KAGAKU, vol. 51, no. 6, 2002, pages 389 - 396
J. AM. CHEM. SOC., vol. 128, 2006, pages 3138 - 3139
See also references of EP2246446A4 *

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2012002541A1 (ja) * 2010-07-01 2012-01-05 独立行政法人産業技術総合研究所 標的分子の検出法
JP2012198225A (ja) * 2010-07-01 2012-10-18 National Institute Of Advanced Industrial & Technology 標的分子の検出法
JPWO2012002541A1 (ja) * 2010-07-01 2013-08-29 独立行政法人産業技術総合研究所 標的分子の検出法
CN104597022A (zh) * 2015-02-06 2015-05-06 安徽科技学院 一种基于核酸适体的水胺硫磷和丙溴磷的荧光检测方法
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CN106370868A (zh) * 2016-09-23 2017-02-01 中国科学院重庆绿色智能技术研究院 基于核酸适配体信号放大策略的检测微囊藻毒素的spr传感器及其制备方法和应用

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