WO2007088229A1 - Adenovirus oncolíticos para el tratamiento del cáncer - Google Patents

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Manel Maria Cascallo Piqueras
Juan José ROJAS EXPÓSITO
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    • C12N2820/007Vectors comprising a special origin of replication system tissue or cell-specific

Definitions

  • the field of the invention is related in general terms to the field of tumor biology.
  • the invention relates to selective replication adenoviruses in tumors, called oncolytics, and their use to inhibit cancer.
  • the current cancer treatment is mainly based on chemotherapy, radiotherapy and surgery.
  • Despite a high cure rate for early-stage cancer most advanced cases of cancer are incurable because they cannot be surgically removed or because the radio or chemotherapeutic doses administered are limited by their toxicity in normal cells.
  • biotechnological strategies have been developed that seek to increase the potency and selectivity of cancer treatments.
  • gene therapy and virotherapy use viruses for therapeutic purposes against cancer.
  • the virus is modified to prevent its replication and to serve as a vehicle or vector of therapeutic genetic material.
  • virotherapy uses viruses that selectively replicate and spread in tumor cells 1 .
  • the tumor cell dies from the cytopathic effect caused by the replication of the virus inside it rather than the effect of a therapeutic gene.
  • the preferential replication in a tumor cell is called oncotropism and the tumor analysis is called oncolysis.
  • Viruses that selectively replicate in tumors are called oncolytics.
  • Cancer virotherapy is much earlier than gene therapy.
  • the first observations of cure of tumors with viruses date from the beginning of the last century.
  • 1912 De Pace obtained tumor regressions after inoculating the virus of rabies in cervical carcinomas 2 . Since then many types of viruses have been injected into tumors for treatment 3 .
  • viruses that have a natural oncotropism such as autonomous parvovirus 4 , vesicular stomatitis virus 5 and reovirus 6 .
  • Other viruses can be genetically engineered to selectively replicate in tumors.
  • Herpes Simplex virus has been made oncotropic by deleting the ribonucleotide reductase gene, an enzymatic activity that is available in cells in active proliferation such as tumor cells 7 .
  • adenovirus due to its low pathogenicity and high capacity to infect tumor cells, has been the virus most used in both virotherapy and cancer gene therapy.
  • Ad5 Human adenovirus type 5
  • Ad5 Human adenovirus type 5
  • CAR Coxsackie-Adenovirus Receptor
  • E1A the genes of the early region 1A
  • E1A binds to the Rb cell protein that is forming a complex with the transcription factor E2F. With this, E2F is released to activate the transcription of other viral genes such as E2, E3 and E4 and of the cellular genes that activate the cell cycle.
  • E1 B binds to p53 to activate the cell cycle and prevent apoptosis of the infected cell.
  • E2 encodes for virus replication proteins.
  • E3 proteins that inhibit the antiviral immune response.
  • E4 for viral RNA transport proteins. The expression of these early genes leads to the replication of the viral DNA and once replicated the promoter that regulates the expression of the late or structural genes that form the capsid is activated.
  • oncolytic adenoviruses Two methods have been used to construct oncolytic adenoviruses: the deletion of viral functions that are not necessary in tumor cells and Ia substitution of viral promoters with selective tumor promoters 1 .
  • the gene to be deleted or regulated belongs preferably to the E1 region, and above all it affects E1a because it controls the expression of the other viral genes.
  • deletions of viral functions for example, the E1b-55K protein has been eliminated. This inactive p53 protein to induce into the infected cell the S phase entry of the cell cycle and prevent cell apoptosis.
  • E1 b-55K An adenovirus mutated in E1 b-55K known as Onyx-015 has been used to treat p53-defective tumors although with little clinical success due to its low propagation capacity or oncolytic potency.
  • Another mutation made in the adenoviral genome to achieve selective replication in tumors affects the CR2 domain of E1a.
  • This domain of E1a mediates the binding to proteins of the Retinoblastoma family (Rb).
  • the pRb proteins block the transition from the Go / G1 phase to the S phase of the cell cycle forming a transcription inhibitor complex together with E2F.
  • E2F When E1a binds to pRb, the transcription factor E2F is released from the pRb-E2F complex and E2F acts as a transcriptional activator of the genes responsible for the passage to the S phase and of viral genes such as E2.
  • the release of E2F is thus a key step for the replication of adenovirus.
  • tumor cells the cell cycle is out of control because pRb is absent or inactivated by hyperphosphorylation and E2F is free. In these cells the inactivation of pRB by E1a is no longer necessary. Therefore, an adenovirus with an E1a mutation called Delta-24 that prevents its binding to pRb can normally be propagated in cells with inactive 9R1 pRb.
  • the E1a promoter has been replaced by various promoters such as the promoter of alpha-fetoprotein, prostate specific antigen (PSA), kallikrein, mucin 1 and osteocalcin 11 "15 .
  • PSA prostate specific antigen
  • kallikrein kallikrein
  • mucin 1 mucin 1
  • osteocalcin 11 "15 .
  • the regulation of several viral genes can be carried out with a different promoter for each viral gene such as the E2F1 promoter for E1a and the telomerase promoter for E4. In that case two promoters must be expressed at high levels to allow viral replication such that oncolytic potency can remain reduced in many tumor cells 20.
  • two viral genes can be regulated with the same promoter as for example in the oncolytic adenovirus Onyx411, in which E1a and E4 are regulated by the E2F1 21 promoter.
  • E1a and E4 are regulated by the E2F1 21 promoter.
  • a particularly interesting promoter used in the oncolytic adenovirus design is the E2F1 promoter 20 '21' 29 to 30.
  • This promoter has two E2F binding sites.
  • the family of E2F transcription factors regulates the transcription of the genes that allow the S-phase entry of the cell cycle. These factors behave as activators when they are free and as repressors when they are bound to the retinoblastoma protein pRb 31 .
  • the binding of pRb to E2F is regulated by phosphorylation of pRb so that the phosphorylation of pRb prevents its binding to E2F.
  • the tumors present alterations in the transduction pathways of signal that results in the hyperphosphorylation of pRb and an increase in free E2F.
  • E2F1 gene genes that respond to E2F are expressed as the E2F1 gene.
  • pRb in a normal quiescent cell pRb is not phosphorylated and remains bound to E2F forming a complex that acts as a transcriptional repressor.
  • oncolytic adenoviruses however, the simple regulation of E1a with the E2F1 promoter results in a low level of selective replication in tumors, of the order of 10 times 20.
  • the regulation of other viral genes in addition to E1a is a possible solution to this low selectivity but presents the drawbacks described in the previous paragraph.
  • OAS403 is an oncolytic adenovirus with E1a regulated with the E2F1 and E4 promoter regulated with the telomerase promoter, which also includes a polyadenylation signal to eliminate transcription from the ITR (inverted terminal repeat) and in which it has relocating the packing signal to the right end of the genome to reduce interference with the E1a 20 promoter.
  • ITR inverted terminal repeat
  • OAS403 it has been seen that the packaging signal and sequences adjacent to E4 change position in genome 22 . It has also been described that even minor modifications of the E4 region induce genomic instability with which strategies based on the modification of the E4 region have been abandoned 22 .
  • Another problem encountered with the E2F1 promoter regardless of its selectivity is the lack of potency.
  • an oncolytic adenovirus with E1a regulated with the E2F1 promoter loses lytic capacity with respect to the wild adenovirus as shown in Ryan et al. 20 and in the examples presented in the present invention.
  • the present invention describes the use of appropriate DNA sequences to achieve the proper functioning of a genome promoter of an oncolytic adenovirus. With these sequences an oncolytic adenovirus is designed that presents greater selectivity and antitumor potency.
  • the use of the elements described in the present invention allows to achieve a high tumor selectivity and oncolytic capacity using only a specific tumor promoter.
  • the use of a single promoter reduces the problems of genomic instability associated with the repetition of the same promoter in the adenoviral genome.
  • the regulation only of E1a avoiding Ia regulation of other viral genes allows the correct temporal regulation of adenoviral genes and prevents genomic instability associated with the modification of the E4 region.
  • the present invention relates to an oncolytic adenovirus for the treatment of cancer containing a human DNA sequence isolating a promoter that confers selective expression to an adenoviral gene.
  • the human DNA sequence is a sequence derived from the locus of myotonic dystrophy.
  • an oncolytic adenovirus in which said adenovirus contains a sequence that optimizes the protein translation of an adenoviral gene regulated by a promoter that confers tumor selectivity.
  • said sequence is the kozak sequence.
  • Another object of the invention is an oncolytic adenovirus for the treatment of cancer that contains a human DNA sequence isolating a selective expression promoter that regulates an adenoviral gene and a sequence that optimizes the protein translation of the same adenoviral gene.
  • the human DNA sequence is a sequence derived from the locus of myotonic dystrophy.
  • Another object of the present invention is an adenovirus that contains a human DNA sequence isolating a selective expression promoter that regulates an adenoviral gene and a sequence that optimizes the protein translation of the same adenoviral gene and also presents mutations in one or more genes. of the group E1a, E1b and E4 to achieve selective replication in tumors.
  • the human DNA sequence is a sequence derived from the locus of myotonic dystrophy.
  • Still another object of the present invention is an oncolytic adenovirus that contains a human DNA sequence isolating a selective expression promoter that regulates an adenoviral gene and a sequence that optimizes the protein translation of the same adenoviral gene and modifications in its capsid to increase its infectivity or direct it to a receptor present in a tumor cell.
  • the human DNA sequence is a sequence derived from the locus of myotonic dystrophy.
  • Still another object of the present invention is an oncolytic adenovirus that contains a human DNA sequence isolating a selective expression promoter that regulates an adenoviral gene and a sequence that optimizes the protein translation of the same adenoviral gene and that said adenovirus in turn contains other genes commonly used in the field of cancer gene therapy such as prodrug activators, tumor suppressors or immunostimulators.
  • the human DNA sequence is a sequence derived from the locus of myotonic dystrophy.
  • Still another object of the present invention is an oncolytic adenovirus that contains a human DNA sequence isolating a selective expression promoter that regulates an adenoviral gene and a sequence that optimizes the protein translation of the same adenoviral gene
  • the adenovirus is a derived human adenovirus. of a serotype between 1 and 50.
  • adenovirus is a human adenovirus of serotype 5.
  • the human DNA sequence is a sequence derived from the locus of myotonic dystrophy.
  • Still another object of the present invention is an oncolytic adenovirus that contains a human DNA sequence isolating the promoter of the human E2F1 gene modified by the addition of E2F binding sites to regulate the expression of an adenoviral gene and a sequence that optimizes the translation Protein of the same gene.
  • the human DNA sequence is a sequence derived from the locus of myotonic dystrophy.
  • Another object of the present invention is a pharmaceutical composition
  • a pharmaceutical composition comprising an effective amount of an oncolytic adenovirus that contains a human DNA sequence isolating a selective expression promoter that regulates an adenoviral gene and a sequence that optimizes the protein translation of the same adenoviral gene. and one or more pharmaceutically acceptable carriers and excipients.
  • the human DNA sequence is a sequence derived from the locus of myotonic dystrophy.
  • the present invention also aims at the use of an oncolytic adenovirus containing a human DNA sequence isolating a promoter from selective expression that regulates an adenoviral gene and a sequence that optimizes the protein translation of the same adenoviral gene for the preparation of a medicament for the treatment or prevention of cancer or a pre-malignant condition thereof.
  • the human DNA sequence is a sequence derived from the locus of myotonic dystrophy.
  • the adenovirus of the present invention can be optionally combined with other therapeutic modalities against cancer such as chemotherapy or radiotherapy.
  • the present invention describes an oncolytic adenovirus that contains a human DNA sequence, in particular a sequence derived from the locus of myotonic dystrophy, as an isolating sequence of a selective expression promoter that regulates an adenoviral gene and in turn contains a sequence that optimizes The protein translation of the same adenoviral gene, as well as the use of said oncolytic adenovirus for the treatment or prevention of cancer or a pre-malignant condition thereof.
  • the previously described insulators are not of human origin and have not been used in a context of oncolytic adenoviruses.
  • the locus of myotonic dystrophy is located on human chromosome 13 in position 19q13.3.
  • This locus contains two binding sites of the CTCF protein and a variable number according to each individual of CTG repeats that jointly function as a potent insulator of the effect of enhancers or activators on promoters 32 .
  • Prior to this invention its activity has never been analyzed in a viral genome. Its activity in a viral genome is not obvious since its activity has only been demonstrated in the context of the cell chromosome in which the associated histones may have a role in its functioning. Its human origin offers a superior alternative to the use of the chicken HS4 sequence since the transfer of sequences of non-human origin may have biosafety implications.
  • the present invention describes the use of a sequence optimized for protein translation to increase the levels produced of the adenoviral protein regulated under the tumor-specific promoter.
  • the Regulation of the expression of a viral gene with a selective tumor promoter has the disadvantage that the level of expression is usually reduced with respect to the level of expression observed in Ad5. This lower expression entails the lower replicative potency of the oncolytic adenovirus.
  • the insertion of the kozak sequence at the beginning of the translation of the regulated gene with the selective promoter is capable of restoring the expression levels of the regulated gene.
  • the present invention also describes the strategy of increasing the number of E2F binding sites in the sequence of the human E2F1 promoter to better control the expression of E1a in an oncolytic adenovirus.
  • This increase in E2F binding sites produces a greater expression of E1a in tumor cells and a lower expression of E1a in normal cells, which results in an increase in the tumor selectivity of adenoviral replication.
  • the invention is directed towards the need to find better therapies for cancer including, but not limited to, pancreatic, colon and lung cancer.
  • the cancer treatment with the oncolytic adenovirus containing the human DNA sequence and the sequence that optimizes the protein translation can be performed by direct injection into the tumor or by systemic intravenous administration in patients affected by cancer using standard methods in the field of Gene therapy and adenovirus virotherapy.
  • FIGURE 1 Adenovirus structure of selective replication in tumors characterized by containing a sequence of the locus of myotonic dystrophy isolating a selective expression promoter that regulates an adenoviral gene and a sequence that optimizes the protein translation of the same adenoviral gene.
  • Icovir2 contains the locus sequence of the myotonic dystrophy (DM) isolating the human promoter E2F1 that regulates E1a.
  • Icovir ⁇ also contains the kozak sequence at the beginning of translation of E1a to optimize its translation and thus increase the levels of E1a expression in tumor cells.
  • Icov ⁇ r7 also presents two additional E2F binding sites in the E2F1 promoter.
  • FIGURE 2 Scheme of the operation of an oncolytic adenovirus containing the DM sequence of the locus of the myotonic dystrophy isolating the E2F1 promoter that regulates E1a.
  • E1a contains a sequence that optimizes protein translation.
  • the E2F1 promoter can be modified by inserting additional E2F binding sites to increase its selectivity and potency.
  • the pRB-E2F complex acts as a repressor of the E2F1 promoter through the action of histone deacetylases (HDAC) and E1a is not expressed.
  • HDAC histone deacetylases
  • pRB is hyperphosphorylated or absent and E2F is free. In this way it acts as a transcriptional activator of E1a.
  • the kozak sequence in E1a allows a correct level of expression of E1a.
  • the DM insulator prevents interference from the ITR and adenoviral packaging signal in the modified E2F1 promoter
  • FIGURE 3 Demonstration of the effect on the expression of E1a resulting from the insertion of a DM insulating sequence in front of the E2F1 promoter.
  • E2F1 promoter ICOVIR1
  • ICOVIR2 E2F1 promoter
  • Fadu, SCC25 and SKMel-28 the expression of E1a is less than that obtained with adenoviruses where E1a is not regulated by E2F1.
  • E2F1 promoter isolated or not with DM, does not have the power necessary to allow a level of E1a expression in tumor cells comparable to wild adenovirus.
  • the present invention solves this problem with the insertion of the kozak sequence in E1a and the modification of the E2F1 promoter.
  • FIGURE 4 The DM sequence allows to increase the antitumor selectivity of an oncolytic adenovirus with E1a regulated with the E2F1 promoter.
  • the cells were infected with ICOVIR1 and ICOVIR2. Five days post-infection the cells and their culture media were collected and subjected to three freeze-thaw cycles to release the virus. The amount of virus in the cell extract was determined by infection in HEK293 and anti-hexon staining using the 2Hx-2 monoclonal antibody (ATCC) and a secondary Alexa 488 anti-mouse IgG antibody (Molecular Probes, Eugene, OR).
  • ATCC 2Hx-2 monoclonal antibody
  • a secondary Alexa 488 anti-mouse IgG antibody Molecular Probes, Eugene, OR.
  • ICOVI R2 The presence of the DM isolating sequence in ICOVI R2 results in a lower viral replication in normal cells compared to ICOVI R1 which has the non-isolated E2F1 promoter. It is important to note that in the majority of tumor lines its replicative capacity is less than that of AdwtRGD.
  • the present invention describes the method to increase this replicative capacity by means of the insertion of the kozak sequence in E1a and the modification of the E2F1 promoter.
  • FIGURE 5 Effect of the insertion of the kozak sequence to increase the potency of the promoter isolated with DM.
  • ICOVIR5 is distinguished from ICOVIR2 by containing the kozak sequence at the beginning of translation of E1a. The results show that in normal cells ICOVIR5 does not express E1a by presenting the E2F promoter isolated with DM. In tumor cells, the expression level of E1a is higher in ICOVIR5 than in ICOVIR2, which demonstrates the effect of the kozak sequence to increase the potency of the promoter isolated with DM.
  • FIGURE 6 Oncolytic efficacy in vitro of adenoviruses containing E1a regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence and the kozak sequence to optimize the translation of E1a.
  • cytolytic capacity in tumor cells of an adenovirus containing the kozak sequence in E1a and an E2F1 promoter isolated by DM was compared with that of a wild virus and a similar oncolytic virus but without the kozak sequence (ICOVIR2).
  • CPE cytopathic effect that the virus induces is measured as a decrease in the amount of protein in an infected cell monolayer (method BCA 33 ).
  • the cells were seeded in 96-well plates at 30,000 cells per well. The next day the cells were infected with serial dilutions virus from a concentration of 1000 plaque forming units per cell.
  • FIGURE 7 Effect of the modification of the E2F1 promoter to increase its potency when it is isolated with the DM sequence.
  • the oncolytic adenovirus ICOVIR7 is distinguished from ICOVIR5 by having the modified E2F1 promoter.
  • the analysis of the expression of E1a in the tumor line 1.36.1.5 of melanoma by western blot is shown.
  • the expression level of E1a is higher in ICOVIR7 than in ICOVIR5 Io which demonstrates the enhancing role of additional E2F binding sites in
  • ICOVIR7 ICOVIR7. Below is the level of viral production of ICOVIR7, ICOVIR5 and ICOVIR2 in the tumor line 1.36.1.5.
  • the AdwtRGD virus in which E1a is not regulated is used as the maximum production control.
  • ICOVIR7 is capable of propagating with the same power as the AdwtRGD control.
  • FIGURE 8 An adenovirus containing E1a regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence and the kozak sequence at the start of translation of E1a can be used for the treatment of tumors.
  • the graph shows the evolution of the tumor volume.
  • ICOVIR2 is able to inhibit tumor growth.
  • the photograph shows the presence of virus in the tumor treated with ICOVIR-2 versus the one treated with PBS.
  • the intravenous systemic treatment with ICOVIR5 of mice with SKMel-28 melanoma tumors is shown below.
  • the mean tumor growth of 8-10 tumors / group ⁇ SE is represented.
  • All treatment regimens with ICOVIR-5 demonstrated oncolytic activity resulting in a significantly different tumor growth suppression to the control group (PBS), p ⁇ 0.05 .
  • the photograph shows the presence of virus in the tumor treated
  • FIGURE 9 In vivo demonstration of the reduction of toxicity after intravenously injecting adenoviruses containing E1a regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence and the kozak sequence to optimize the translation of E1a.
  • E1a was administered as described in Figure 9.
  • the expression of E1a was evaluated in liver sections by immunohistochemistry (upper panels).
  • E1a is not detected in animals injected with ICOVIR5.
  • the pathological evaluation of liver sections stained with eosin-hematoxylin indicates a normal appearance of the livers of mice injected with ICOVIR5 (lower panels).
  • the present invention describes the use in the treatment of adenovirus cancer containing E1a regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence, the kozak sequence to optimize the translation of E1a and the addition of E2F binding sites in the promoter E2F1.
  • the treatment is based on the selective replication of these viruses in tumors that have the altered retinoblastoma pathway.
  • the retinoblastoma pathway is the set of protein interactions that occur from the cell membrane to the nucleus to regulate the level of phosphorylation of the pRb retinoblastoma protein.
  • the cancer is characterized by an alteration of this pathway so that the pRb protein is hyperphosphorylated or lost.
  • This alteration of pRb causes a loss of binding of pRb to the transcription factor E2F and the increase of free E2F in the nucleus of the tumor cells.
  • This transcription factor binds promoters with specific E2F binding sites, such as the E2F1 promoter, to increase its expression.
  • the mechanism of selective replication in adenovirus tumors containing E1a regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence, the kozak sequence at the start of translation of E1a and the addition of E2F binding sites in the E2F1 promoter is based in which the presence of free E2F in tumors activates the expression of the E2F1 promoter in this virus and is indicated in Figure 2 of the present invention.
  • the presence of the DM sequence allows the correct activation of the promoter.
  • the presence of the kozak sequence allows the synthesis of an amount of E1a sufficient to maintain the appropriate replicative and lytic capacity of the oncolytic virus.
  • the presence of additional E2F binding sites in the E2F1 promoter allows to increase the level of E1a expression to maintain the appropriate replicative and lytic capacity of the oncolytic virus.
  • the isolating human DM sequence derived from the locus of myotonic dystrophy is represented by SEQ. ID 1 (from position 368 to 1096 of sequence 1).
  • the DM sequence is characterized by containing two binding sites to the CTCF factor and a variable number of repetitions of the CGT sequence that together function as a potent isolator of transcriptional interference 32 .
  • the DM sequence acts to isolate the effect of enhancers located in the adenovirus packaging sequence close to the E1a promoter.
  • the E1a promoter is replaced by a selective tumor promoter such as the E2F1 promoter and, to isolate this promoter from the enhancers present in the adenoviral packing sequence, the DM sequence is inserted between said packing sequence and the E2F1 promoter.
  • the sequence of the E2F1 promoter is shown in SEQ. ID 1 (from position 1283 to position 1564 of sequence 1). This promoter is characterized by presenting two E2F binding sites organized in imperfect palindromes and four Sp1 binding sites 34 .
  • the sequence of the E2F promoter is modified by the insertion of E2F binding sites additional to those already existing in the wild human promoter (from position 1321 to position 1447 of SEQ. ID 3).
  • the translation of mRNA by eukaryotic ribosomes can be optimized if we insert the CCA / GC sequence C in front of the first translated ATG codon 35 .
  • This sequence was identified by Marylin Kozak and has been called kozak. In the present invention this sequence acts by compensating for the little power observed experimentally when a tumor selective promoter such as the E2F1 promoter isolated with the DM sequence is used to control the expression of E1a (position 1558 to 1562 of SEQ. ID 2).
  • the methods of genetically modified adenovirus construction are well established in the field of gene therapy and adenovirus virotherapy 36 "41.
  • the most commonly used method is based on first constructing the desired genetic modification in a plasmid containing the adenoviral region. modify, then perform homologous recombination in bacteria with a plasmid containing the rest of the viral genome 41.
  • the procedure can be as follows:
  • adenoviruses with the expression of a viral gene regulated by selective promoter isolated with the DM sequence and enhanced with the kozak sequence may contain modifications of their capsid to increase their infectivity or target receptors present in Ia tumor cell
  • the adenoviral capsid proteins have been genetically modified to include ligands that increase infectivity or that direct the virus to a receptor in the tumor cell 47 ⁇ 53 . Directing adenovirus to the tumor can also be achieved with bifunctional ligands that bind the virus on the one hand and the tumor receptor on the other 53 "56.
  • the capsid can be covered with polymers such as polyethylene glycol 57.60 .
  • polymers such as polyethylene glycol 57.60 .
  • Another embodiment of the present invention relates to adenoviruses containing E1a regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence, the kozak sequence at the start of translation of E1a and the addition of E2F binding sites in the E2F1 promoter and which in turn contain other genes to increase their cytotoxicity on tumor cells such as the thymidine kinase gene, cytosine deaminase, proapoptotic genes, immunostimulators or tumor suppressors.
  • the adenoviruses described in the present invention are propagated following standard methods in the fields of adenovirology and adenoviral vectors 36 '37 .
  • the preferred method of propagation is by infection of a permissive cell line to the replication of adenovirus containing E1a regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence, the kozak sequence at the start of translation of E1a and the addition of sites of E2F binding in the E2F1 promoter.
  • the A549 pulmonary adenocarcinoma line is an example of that line. Propagation is carried out, for example, as follows: A549 cells are grown on plastic cell culture plates and infected using 50 viral particles per cell.
  • the cells are collected and stored in tubes. After centrifugation at 1000g for 5 minutes, the cell precipitate freezes and thaws three times to break the cells.
  • the resulting cell extract is centrifuged at 100Og for 5 minutes and the virus supernatant is loaded on top of a cesium chloride gradient and centrifuged for 1 hour at 35.00Og.
  • the virus band in the gradient is reloaded onto another gradient of cesium chloride and centrifuged for 16 hours at 35.00Og.
  • the virus band is collected and dialyzed against PBS-10% glycerol. The dialyzed virus is aliquot and stored at -8O 0 C.
  • Phosphate buffered saline with 10% glycerol is a standard formulation for adenovirus storage.
  • new formulations have been described that improve the stability of virus 61> 62 .
  • the present invention describes the use of adenoviruses containing E1a regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence, the kozak sequence at the start of translation of E1a and the addition of E2F binding sites in the E2F1 promoter to treat cancer.
  • the treatment is based on the selective replication of these viruses in cells with an active RB pathway.
  • the protocols for using the viruses described in the present invention in the treatment of cancer follow the same procedures as those used in the fields of adenovirus virotherapy and adenovirus gene therapy.
  • adenoviruses with selective replication of various proposed in the present invention have been used to treat cancer 9-37 - 63-68.
  • the purified adenovirus in any of the formulations described above is added to the culture medium for the infection of the tumor cells.
  • the adenovirus can be administered loco-regionally by injection into the tumor or into a body cavity where the tumor is located, or systemically by injection into the bloodstream.
  • the treatment of tumors with the adenoviruses described object of the present invention can be combined with other therapeutic modalities such as chemotherapy or radiotherapy.
  • An oncolytic adenovirus with E1a regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence expresses E1a v selectively replicates in tumor cells.
  • adenovirus with E1a regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence was constructed as follows: To generate ICOVIR-1 (Ad-E2F- ⁇ 24RGD), the human E2F1 promoter was obtained by PCR of human peripheral blood mononuclear cells using oligonucleotides that amplify from base pair -218 to +51 of the E2F-1 promoter (position +1 indicates the start of transcription). The oligonucleotides contained targets of Kpn ⁇ and HindW restriction for cloning in the plasmid pGL3 (Promega, South Hampton, UK). The resulting plasmid was named pGL3-E2F.
  • pE2F- ⁇ 24 was obtained by recombination with a pyramid containing 5,766 base pairs from the left end of the adenoviral genome except nucleotides (nt) 122 to 129 of E1a (derived from pXC1- ⁇ 24 with a Hind site ⁇ between nt 348 and nt 522 of the genome of Ad5 9 ).
  • pE2F- ⁇ 24 was recombined with pShuttle 41 to obtain pShuttle-E2F- ⁇ 24.
  • This plasmid was linearized with Pme ⁇ and recombined with pVK503 (which contains the Ad5 sequence with the fiber modified with RGD 69 ) to generate the plasmid pAd-E2F- ⁇ 24RGD or pICOVIR-1.
  • pVK503 which contains the Ad5 sequence with the fiber modified with RGD 69
  • pICOVIR-1 plasmid pAd-E2F- ⁇ 24RGD or pICOVIR-1.
  • the ICOVIR1 virus was generated by digestion with Pac ⁇ of this pyramid and transfection in HEK293 cells.
  • a parallel protocol was used to generate ICOVIR-2 (Ad-DM-E2F- ⁇ 24RGD).
  • the DM-1 isolating sequence was obtained from PCR of human peripheral blood mononuclear cells using oligonucleotides that amplify from nt 13006 to nt 13474 of the DM1 locus (sequence published in GenBank with number L08835).
  • the oligonucleotides of the PCR were designed to incorporate flanking Xho I sites.
  • the DM-1 was subcloned into Xhol of pShuttle-E2F- ⁇ 24 described above to obtain pShuttle-DM-E2F- ⁇ 24.
  • the correct orientation of the DM1 fragment was verified by restriction with ⁇ aA7? H1, HinulW, Xhol and Sma ⁇ .
  • pShuttle-DM-E2F- ⁇ 24 was recombined with pVK503 to generate plCOVIR2.
  • the ICOVIR2 virus was generated by Paci digestion of this pyramid and transfection in HEK293 cells.
  • ICOVIR1 and ICOVIR2 were propagated in the A549 line and purified by methods described in gene therapy and virotherapy 36 .
  • oligonucleotides used for these sequencing are: DMI-Up ( ⁇ '-GGGCAGATGGAGGGCCTTTTATTC-S 1 ), E2F-Up (5'-GTGTTACTCATAGCGCGTAA-3 '), ⁇ 24-down (5'-
  • an oncolytic adenovirus with E1a regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence expressly expresses E1a in tumor cells
  • normal cell cultures murine and human hepatocytes, human fibroblasts and human HUVEC endothelial cells
  • tumor cells were infected (NP9 pancreatic carcinoma cells, A549 lung carcinoma, FaDu and SCC25 head and neck carcinomas, and SK-Mel-28 and 1.36.1.5 melanoma) with ICOVIR1 and ICOVIR2 using multiplicity of infection that allowed more than 80% infection .
  • the cells were used in lysis buffer (400 mM NaCI, 1 mM EDTA, 5 mM NaF, 10% glycerol, 1mM sodium orthovanadate, 0.5% Nonidet P-40, 100 ug / ml fluoride phenylmethylsulfonyl, 1 ug / ml leupeptin and 10 ug / ml aprotinin in 1OmM Tris-HCI (pH 7.4)) for 1 h at 4 0 C.
  • lysis buffer 400 mM NaCI, 1 mM EDTA, 5 mM NaF, 10% glycerol, 1mM sodium orthovanadate, 0.5% Nonidet P-40, 100 ug / ml fluoride phenylmethylsulfonyl, 1 ug / ml leupeptin and 10 ug / ml aprotinin in 1OmM Tris-HCI (pH 7.4)
  • the lysate was centrifuged at 1400Og, and the protein supernatant was electrophoresed in 10% SDS -PAGE (25 ug / lane, determined by Bradford, BioRad, CA, USA) and transferred to nitrocellulose (Schleicher and Schuell, Dassel, Germany).
  • the membrane was blocked with 5% skim milk, 0.05% Tween 20, 0.9% NaCI in 5OmM Tris (pH 7.5), and incubated 16h at 4 0 C with a polyclonal anti-adenovirus-2 E1a antibody (clone 13 S- 5, Santa Cruz Biotechnology Inc., Santa Cruz, CA, USA).
  • E1a was revealed with a secondary anti-rabbit IgG antibody (DAKO A / S) conjugated to peroxidase and the chemiluminescence protocol of "Amersham's Enhanced Chemioluminescence” (Amersham, Arlington Heights, IL, EUU). The result is shown in Figure 3 of the present invention. It is demonstrated that the presence of the E2F1 promoter (ICOVIR1) is capable of decreasing the expression of E1a in normal cells. However, the DM sequence confers greater control of the expression of E1a by the E2F promoter (ICOVIR2).
  • both ICOVIR1 and ICOVIR2 are capable of expressing E1a, but it is important to note that in some tumor lines such as FaDu, SCC25 and SKMel-28 the expression of E1a is less than that obtained with the wild adenovirus and the oncolytic AdD24RGD where E1a It is not regulated by E2F1. This indicates that the E2F1 promoter isolated or not with DM does not have the power necessary to allow a level of expression of E1 a in tumor cells comparable to wild adenovirus.
  • ICOVIR1 The presence of the E2F1 promoter in ICOVIR1 reduces viral replication in normal cells (fibroblasts and HUVEC). However, the isolating sequence in ICOVIR2 results in a lower viral replication. In certain lines, tumor cells such as A549, ICOVIR1 and ICOVIR2 show a level of replication similar to the Adwt wild adenovirus but in the majority of tumor lines its replicative capacity is lower than that of Adwt.
  • EXAMPLE 2 The kozak sequence allows to increase the expression of E1a an oncolytic adenovirus in which the expression of E1a is regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence.
  • An oncolytic adenovirus was constructed with E1a regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence and with the kozak sequence to increase its translation.
  • E1a a DNA fragment containing the DM sequence, the E2F1 and E1a promoter was isolated from the pShuttle-DM-E2F-D24 described in example 1 by restriction with Kpn1 and subcloned into pGEM3Z (Promega) obtaining plasmid pGEM-E2F- d24.
  • This plasmid was used to replace the translation start of E1a using oligonucleotides with the kozak sequence obtaining pGEM-E2F-KD24.
  • the Kpn1 fragment thus modified was reclassified in Kpn1 of pShuttle-DM-E2F-D24 to obtain pShuttle- DM-E2F-KD24. Finally pShuttle-DM-E2F-KD24 was recombined with pVK503 to obtain pICOVIR ⁇ .
  • the ICOVIR5 virus was generated by digestion with Pac ⁇ of this plasmid and transfection in HEK293 cells.
  • ICOVIR5 was propagated in the A549 line and purified by methods described in gene therapy and virotherapy 36 . Its structure is presented in Figure 1 of the present invention. The correct sequence of the promoter and E1a was verified by restriction and sequencing. The sequence obtained is shown in SEQ. ID 2.
  • E1a is conditionally expressed in tumor cells when its expression is regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence and in addition its translation is optimized with the kozak sequence
  • the expression of E1a was analyzed as described in the Example 1.
  • ICOVIR5 oncolytic adenovirus was included, which is distinguished from ICOVIR2 because it contains the kozak sequence at the beginning of E1a translation.
  • Figure 5 of the present invention In normal cells ICOVIR5 does not express E1a by presenting the E2F promoter isolated with DM. In tumor cells, the expression level of E1a is higher in ICOVIR5 than in ICOVIR2, which demonstrates the effect of the kozak sequence to increase the potency of the promoter isolated with DM.
  • the kozak sequence allows to increase the oncolytic potency of an adenovirus in which the expression of E1a is regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence.
  • the cells of the SKMel-28 and FaDu tumor lines were cultured in 96-well plates in which a decrease in the replicative capacity of ICOVIR2 had been seen (as described in Example 1 and Figure 4). These cells were infected with increasing amounts of ICOVIR5, ICOVIR2 and AdwtRGD (the latter used as a control of maximum lithic power). Five days post-infection the amount of protein was spectrophotometrically evaluated as a reflection of cell survival. The results are shown in Figure 6 of the present invention.
  • the lithic capacity of ICOVIR5 in SKMel-28 is the same as that of AdwtRGD and greater than ICOVIR2. In FaDu it is also superior to ICOVIR2 although it does not reach the level of AdwtRGD.
  • E2F1 promoter by insertion of E2F binding sites allows the expression of E1a to be increased in tumor cells when E1a is regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence and also its translation is optimized with the kozak sequence.
  • plasmid pGEM-E2FKE1ad24 described in example 2 was introduced by means of directed mutagenesis for BsiWI in the E2F1 promoter (position 1326).
  • BsiWI site two copies of oligonucleotides were ligated with the palindromic sequence of E2F binding and which had ends compatible with BsiWI.
  • the promoter thus modified was sublconized in Kpn1 of pShuttle-DM-E2F-D24 to obtain pShDME2FBsiE2F2KE1ad24.
  • plasmid plCOVIR7 was obtained.
  • the ICOVIR7 virus was generated by Paci digestion of this plasmid and transfection into HEK293 cells.
  • ICOVIR7 was propagated in line A549 and purified by methods described in gene therapy and virotherapy 36 . Its structure is presented in Figure 1 of the present invention. The correct sequence of the promoter and E1a was verified by restriction and sequencing. The sequence obtained is shown in SEQ. ID 3.
  • E1a in the 1.36.1.5 tumor line of melanoma by western blot was analyzed as described in example 1.
  • Oncolytic adenovirus ICOVIR7 is distinguished from ICOVIR5 by having the modified E2F1 promoter. The results are shown in Figure 7 of the present invention.
  • the expression level of E1a is higher in ICOVIR7 which demonstrates the potentiating role of additional E2F binding sites in ICOVIR7.
  • the expression of E1a is higher in ICOVIR5 than in ICOVIR2, Io which demonstrates again the effect of the kozak sequence to increase the potency of the promoter isolated with DM.
  • EXAMPLE 5 An adenovirus containing E1a regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence and the kozak sequence at the start of translation of E1a can be used to effectively treat tumors.
  • mice of the Balb / c strain that contained NP9 tumors.
  • Tumors in the control group received two intratumoral injections of saline buffer (2 x 10 ⁇ l).
  • Those in the icovir ⁇ -treated group received two intratumoral injections (2 x 10 ⁇ l) of icovir ⁇ (10 9 viral particles per tumor).
  • V (mm 3 ) A (mm) x B 2 (mm 2 ) x ⁇ / 6, where B is the transverse length.
  • Figure 8 shows the tumor volume with respect to the start of treatment (day 0). The results are presented as mean + SEM The existence of significant differences between the results was calculated using a non-parametric trial of unpaired Mann-Whitney data. The growth curves were compared using an analysis of the variance. The results were considered significant if p ⁇ 0.05. Calculations were performed with the SPSS statistical package (SPSS Inc., Chicago, IL). There is a significant difference between tumor size on days 16 and 21.
  • ICOVIR-5 treatment regimens demonstrated oncolytic activity resulting in a significantly different tumor growth suppression to the control group (PBS), p ⁇ 0.05.
  • the administration of a pre-dose of 3.10 10 vp before the injection of 1.10 11 vp gives this regimen significantly better effectiveness than the other guidelines (p ⁇ 0.05).
  • the different sections of the tumors frozen in OCT were treated with an ⁇ -hexon antibody (adenovirus capsid protein) and were counterstained with 4 ', 6'-diamininid ⁇ 2-phenylndol.
  • the antitumor activity of ICOVIR-5 correlates with the replication of adenovirus at the intratumoral level, evaluated in tumors obtained at day 22 post-injection.
  • the samples of all the groups treated with ICOVI R-5 are positive for the presence of adenovirus, which locates in areas of tumor necrosis.
  • the toxicity associated with the systemic administration of adenovirus is reduced when an adenovirus containing E1a regulated with the E2F1 promoter isolated with the DM sequence and the kozak sequence is used at the beginning of E1a translation.
  • the in vivo toxicity of an adenovirus containing the kozak sequence in E1a and an E2F1 promoter isolated by DM (ICOVIR5) was compared with that of a wild virus and the oncolytic virus AdD24RGD expressing E1a under the wild promoter.
  • the viruses were administered intravenously at different doses and at 5 days post-injection parameters associated with toxicity such as animal survival, body weight, serum transaminase level, and hematogram were evaluated.
  • the lethal dose value 50 (LD 50 ) for AdwtRGD or Ad ⁇ 24RGD in immunocompetent mice Balb / C stands at 5.10 10 viral particles (vp) / mouse at day 5 post-injection, while double this dose (1.10 11 vp / mouse) is only lethal for 10% of mice (LD 1 0) injected with ICOVIR-5.
  • the body weight of the mice injected with 5.10 10 vp of AdwtRGD or Ad ⁇ 24RGD at day 5 post-injection experienced significant losses against the increase in weight of the mice injected with ICOVIR-5.
  • the adenovirus type 5 E1A enhancer contains two functionally distinct domains: one is specific for E1A and the other modulates all early units ⁇ n cis. CeII. 1986; 45: 229-236. Buvoli M, Langer SJ, Bialik S, Leinwand LA. Potential limitations of transcription terminators used as transgene insulators in adenoviral vectors.
  • Suzuki K et al. A conditionally replicative adenovirus with enhanced infectivity shows improved oncolytic potency.
  • Kasono K et al. Selective gene delivery to head and neck cancer cells via an integrin targeted adenoviral vector.
  • Hemminki A et al. Targeting oncolytic adenoviral agents to the epidermal growth factor pathway with a secretory fusion molecule.
  • Gu DL et al. Fibroblast growth factor 2 retargeted adenovirus has redirected cellular tropism: evidence for reduced toxicity and enhanced antitumor activity in mice.

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Abstract

La presente invención se refiere a un adenovirus oncolítico para el tratamiento del cáncer que contiene una secuencia de DNA humano aislando a un promotor que confiere expresión selectiva a un gen adenoviral. Dicho adenovirus puede contener además una secuencia que optimiza la traducción proteica de un gen adenoviral regulado por un promotor que confiere selectividad tumoral. La invención tiene aplicación en el tratamiento del cáncer.

Description

ADENOVIRUS ONCOLITICOS PARA EL TRATAMIENTO DEL CÁNCER
CAMPO DE LA INVENCIÓN
El campo de Ia invención está relacionado en términos generales con el campo de Ia biología tumoral. En particular Ia invención se refiere a adenovirus de replicación selectiva en tumores, llamados oncolíticos, y su uso para inhibir el cáncer.
ANTECEDENTES DE LA INVENCIÓN
El tratamiento actual del cáncer se basa principalmente en Ia quimioterapia, radioterapia y cirugía. Pese a una elevada tasa de curación para el cáncer en estadios tempranos, Ia mayoría de casos avanzados de cáncer son incurables porque no pueden ser extirpados quirúrgicamente o porque las dosis radio o quimioterapéuticas administradas se ven limitadas por su toxicidad en células normales. Para paliar esta situación se han desarrollado estrategias biotecnológicas que buscan aumentar Ia potencia y selectividad de los tratamientos oncológicos. Entre ellas, Ia terapia génica y Ia viroterapia utilizan virus con propósitos terapéuticos contra el cáncer. En terapia génica el virus se modifica para impedir su replicación y para servir de vehículo o vector de material genético terapéutico. Por el contrario, Ia viroterapia utiliza virus que se replican y propagan selectivamente en las células tumorales 1. En viroterapia Ia célula tumoral muere por el efecto citopático causado por Ia replicación del virus en su interior más que por el efecto de un gen terapéutico. La replicación preferencial en una célula tumoral se denomina oncotropismo y Ia tisis del tumor se denomina oncolisis. Los virus que se replican selectivamente en tumores se denominan oncolíticos.
La viroterapia del cáncer es muy anterior a Ia terapia génica. Las primeras observaciones de curaciones de tumores con virus datan de principios del siglo pasado. Ya en 1912 De Pace obtuvo regresiones tumorales tras inocular el virus de la rabia en carcinomas cervicales 2. Desde entonces muchos tipos de virus se han inyectado en tumores para su tratamiento 3. Hay virus que presentan un oncotropismo natural como por ejemplo el parvovirus autónomo 4, el virus de Ia estomatitis vesicular 5 y el reovirus 6. Otros virus se pueden manipular genéticamente para que se repliquen selectivamente en tumores. Por ejemplo el Herpes Simplex virus (HSV) se ha hecho oncotrópico al deleccionar el gen de Ia ribonucleótido reductasa, una actividad enzimática dispensable en células en proliferación activa como las células tumorales 7. Sin embargo, el adenovirus, por su baja patogenicidad y alta capacidad de infectar células tumorales ha sido el virus más utilizado tanto en viroterapia como en terapia génica del cáncer.
El adenovirus humano tipo 5 (Ad5) es un virus formado por una cápsida proteica icosaédrica que encierra un ADN lineal de 36 kilobases 8. En adultos Ia infección con Ad5 suele ser asintomática y en niños causa un resfriado común y conjuntivitis. En general el Ad5 infecta células epiteliales, que en el curso de una infección natural son las células del epitelio bronquial. Entra en Ia célula por medio de Ia interacción de Ia fibra, proteína viral que se extiende a modo de antena desde los doce vértices de Ia cápsida, con una proteína celular implicada en adhesión intercelular llamada Receptor de Coxsackie-Adenovirus (CAR). Cuando el ADN viral llega al interior del núcleo empieza ordenadamente Ia transcripción de los genes tempranos del virus. Los primeros genes virales que se expresan corresponden a los genes de Ia región temprana 1A (E1A). E1A se une a Ia proteína celular Rb que está formando un complejo con el factor de transcripción E2F. Con ello se libera E2F para activar Ia transcripción de otros genes virales como E2, E3 y E4 y de los genes celulares que activan el ciclo celular. Por otro lado, E1 B se une a p53 para activar el ciclo celular e impedir Ia apoptosis de Ia célula infectada. E2 codifica para proteínas de replicación del virus. E3 para proteínas que inhiben Ia respuesta inmune antiviral. E4 para proteínas de transporte de ARN viral. La expresión de estos genes tempranos conduce a Ia replicación del ADN viral y una vez replicado se activa el promotor que regula Ia expresión de los genes tardíos o estructurales que forman Ia cápsida.
Se han usado dos métodos para construir adenovirus oncolíticos: Ia delección de funciones virales que no son necesarias en células tumorales y Ia substitución de promotores virales por promotores selectivos de tumor 1. En ambas estrategias el gen a deleccionar o regular pertenece preferiblemente a Ia región E1 , y sobretodo afecta a E1a porque controla Ia expresión de los demás genes virales. En cuanto a delecciones de funciones virales se ha eliminado por ejemplo Ia proteína E1b-55K. Esta proteína inactiva p53 para inducir en Ia célula infectada Ia entrada en fase S del ciclo celular e impedir Ia apoptosis celular. Un adenovirus mutado en E1 b-55K conocido como Onyx-015 se ha usado para tratar tumores defectivos en p53 aunque con escaso éxito clínico por su baja capacidad de propagación o potencia oncolítica. Otra mutación realizada en el genoma adenoviral para conseguir replicación selectiva en tumores afecta al dominio CR2 de E1a. Este dominio de E1a media Ia unión a las proteínas de Ia familia del Retinoblastoma (Rb). Las proteínas pRb bloquean Ia transición de Ia fase Go/G1 a Ia fase S del ciclo celular formando un complejo inhibidor de Ia transcripción junto con E2F. Cuando E1a se une a pRb se libera el factor de transcripción E2F del complejo pRb-E2F y E2F actúa como un activador transcripcional de los genes responsables del paso a Ia fase S y de genes virales como E2. La liberación de E2F es de este modo un paso clave para Ia replicación del adenovirus. En células tumorales el ciclo celular está fuera de control debido a que pRb está ausente o inactivado por hiperfosforilación y E2F está libre. En estas células Ia inactivación de pRB por E1a ya no es necesaria. Por ello un adenovirus con una mutación en E1a llamada Delta-24 que impide su unión a pRb se puede propagar normalmente en células con pRb inactivo 9l1°.
Con relación a Ia estrategia de substituir promotores virales por promotores selectivos de tumor, el promotor de E1a se ha reemplazado por diversos promotores como el promotor de Ia alfa-fetoproteína, antígeno prostático específico (PSA), kallikreína, mucina 1 y osteocalcina 11"15. Sin embargo se ha identificado un problema importante en el uso de promotores celulares en el contexto viral: Ia existencia de secuencias virales que interfieren con Ia correcta regulación del promotor y que disminuyen su selectividad 16'17. Esta pérdida de selectividad se ha intentado corregir regulando otros genes virales además de E1a, como E1b, E2 y E4 18>19. La regulación de varios genes virales se puede realizar con un promotor distinto para cada gen viral como por ejemplo el promotor de E2F1 para E1a y el promotor de Ia telomerasa para E4. En tal caso los dos promotores deben expresarse a elevados niveles para permitir Ia replicación viral con Io que Ia potencia oncolítica puede quedar disminuida en muchas células tumorales20. Alternativamente dos genes virales se pueden regular con el mismo promotor como por ejemplo en el adenovirus oncolítico Onyx411, en el que E1a y E4 están regulados por el promotor de E2F1 21. Sin embargo, se ha demostrado que Ia duplicación de las secuencias del promotor en el genoma adenoviral produce inestabilidad genómica por recombinación entre estas secuencias repetidas 22. Este problema es de difícil solución puesto que cualquier modificación de Ia región E4 parece inducir Ia inestabilidad genómica del adenovirus oncolítico 22. Además Ia regulación transcripcional de los genes adenovirales está controlada temporalmente de modo que E1a activa Ia expresión de los demás genes virales tempranos. Esta regulación es óptima para el ciclo viral y se pierde si el promotor de otros genes virales distintos a E1a es substituido por promotores específicos de tumor. Por otro lado el problema de Ia interferencia entre secuencias virales y el promotor específico utilizado para controlar Ia replicación adenoviral es especialmente importante cuando se quiere regular Ia transcripción de E1a y de E4 puesto que existen "enhancers" y orígenes de transcripción localizados en las repeticiones terminales y en Ia señal de empaquetamiento del adenovirus 23"25. En el campo de vectores no oncolíticos esta interferencia se ha paliado insertando entre el promotor y estos "enhancers" secuencias aislantes derivadas del locus HS4 del gen de Ia B-globina de pollo 26'27. El mecanismo aislante de HS4 se basa en Ia unión de Ia proteína CTCF que inhibe las interacciones entre factores presentes en el enhancer y el promotor 28. La presente invención describe Ia utilización de una secuencia aislante derivada del genoma humano en el contexto del diseño de adenovirus oncolíticos.
Un promotor particularmente interesante usado en el diseño de adenovirus oncolíticos es el promotor de E2F1 20'21'29-30. Este promotor presenta dos sitios de unión de E2F. La familia de factores de transcripción E2F regula Ia transcripción de los genes que permiten Ia entrada en fase S del ciclo celular. Estos factores se comportan como activadores cuando están libres y como represores cuando están unidos a Ia proteína del retinoblastoma pRb 31. La unión de pRb a E2F se regula por fosforilación de pRb de modo que Ia fosforilación de pRb impide su unión a E2F. Los tumores presentan alteraciones en las vías de transducción de señal que resultan en Ia hiperfosforilación de pRb y un aumento de E2F libre. Por ello, en los tumores se expresan los genes que responden a E2F como el gen de E2F1. Por el contrario, en una célula normal quiescente pRb no está fosforilado y permanece unido a E2F formando un complejo que actúa de represor transcripcional. En adenovirus oncolíticos, sin embargo, Ia simple regulación de E1a con el promotor de E2F1 resulta en un bajo nivel de replicación selectiva en tumores, del orden de 10 veces 20. La regulación de otros genes virales además de E1a es una posible solución a esta baja selectividad pero presenta los inconvenientes descritos en el párrafo anterior. Por ejemplo OAS403 es un adenovirus oncolítico con E1a regulado con el promotor de E2F1 y E4 regulado con el promotor de Ia telomerasa, que además incluye una señal de poliadenilación para eliminar Ia transcripción desde el ITR (repetición terminal invertida) y en el cual se ha relocalizado Ia señal de empaquetamiento al extremo derecho del genoma para disminuir Ia interferencia con el promotor de E1a 20. Durante Ia amplificación de OAS403 se ha visto que Ia señal de empaquetamiento y secuencias adyacentes a E4 cambian de posición en el genoma 22. Se ha descrito además que modificaciones incluso menores de Ia región E4 inducen inestabilidad genómica con Io que se han abandonado las estrategias basadas en Ia modificación de Ia región E4 22. Otro problema encontrado con el promotor de E2F1 independientemente de su selectividad es Ia falta de potencia. Además de ser poco selectivo, un adenovirus oncolítico con E1a regulado con el promotor de E2F1 pierde capacidad lítica respecto al adenovirus salvaje tal como se muestra en Ryan y colaboradores 20 y en los ejemplos presentados en Ia presente invención. La presente invención describe Ia utilización de secuencias de DNA apropiadas para conseguir el correcto funcionamiento de un promotor en genoma de un adenovirus oncolítico. Con estas secuencias se diseña un adenovirus oncolítico que presenta mayor selectividad y potencia antitumoral. La utilización de los elementos descritos en Ia presente invención permite conseguir una elevada selectividad tumoral y capacidad oncolítica utilizando tan solo un promotor específico tumoral. La utilización de un solo promotor disminuye los problemas de inestabilidad genómica asociada a Ia repetición del mismo promotor en el genoma adenoviral. Además, Ia regulación solamente de E1a evitando Ia regulación de otros genes virales, permite Ia correcta regulación temporal de los genes adenovirales y evita Ia inestabilidad genómica asociada a Ia modificación de Ia región E4.
DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN
La presente invención se refiere a un adenovirus oncolítico para el tratamiento del cáncer que contiene una secuencia de DNA humano aislando a un promotor que confiere expresión selectiva a un gen adenoviral. En particular, Ia secuencia de DNA humano es una secuencia derivada del locus de Ia distrofia miotónica.
También se refiere a un adenovirus oncolítico en Ia que dicho adenovirus contiene una secuencia que optimiza Ia traducción proteica de un gen adenoviral regulado por un promotor que confiere selectividad tumoral. En particular, dicha secuencia es Ia secuencia de kozak. Otro objeto de Ia invención es un adenovirus oncolítico para el tratamiento del cáncer que contiene una secuencia de DNA humano aislando a un promotor de expresión selectiva que regula un gen adenoviral y una secuencia que optimiza Ia traducción proteica del mismo gen adenoviral. En particular, Ia secuencia de DNA humano es una secuencia derivada del locus de Ia distrofia miotónica. Otro objeto de Ia presente invención es un adenovirus que contiene una secuencia de DNA humano aislando a un promotor de expresión selectiva que regula un gen adenoviral y una secuencia que optimiza Ia traducción proteica del mismo gen adenoviral y que también presenta mutaciones en uno o más genes del grupo E1a, E1b y E4 para conseguir replicación selectiva en tumores. En particular, Ia secuencia de DNA humano es una secuencia derivada del locus de Ia distrofia miotónica.
Aún otro objeto de Ia presente invención es un adenovirus oncolítico que contiene una secuencia de DNA humano aislando a un promotor de expresión selectiva que regula un gen adenoviral y una secuencia que optimiza Ia traducción proteica del mismo gen adenoviral y modificaciones en su cápsida para aumentar su infectividad o dirigirlo a un receptor presente en una célula tumoral. En particular, la secuencia de DNA humano es una secuencia derivada del locus de Ia distrofia miotónica.
Aún otro objeto de Ia presente invención es un adenovirus oncolítico que contiene una secuencia de DNA humano aislando a un promotor de expresión selectiva que regula un gen adenoviral y una secuencia que optimiza Ia traducción proteica del mismo gen adenoviral y que dicho adenovirus a su vez contiene otros genes usados comúnmente en el campo de terapia génica del cáncer como activadores de prodrogas, supresores tumorales o inmunoestimuladores. En particular, Ia secuencia de DNA humano es una secuencia derivada del locus de Ia distrofia miotónica.
Aún otro objeto de Ia presente invención es un adenovirus oncolítico que contiene una secuencia de DNA humano aislando a un promotor de expresión selectiva que regula un gen adenoviral y una secuencia que optimiza Ia traducción proteica del mismo gen adenoviral donde el adenovirus es un adenovirus humano derivado de un serotipo entre el 1 al 50. En particular, el adenovirus es un adenovirus humano del serotipo 5. En particular, Ia secuencia de DNA humano es una secuencia derivada del locus de Ia distrofia miotónica.
Aún otro objeto de Ia presente invención es un adenovirus oncolítico que contiene una secuencia de DNA humano aislando al promotor del gen E2F1 humano modificado por Ia adición de sitios de unión a E2F para regular Ia expresión de un gen adenoviral y una secuencia que optimiza Ia traducción proteica del mismo gen. En particular, Ia secuencia de DNA humano es una secuencia derivada del locus de Ia distrofia miotónica.
Otro objeto de Ia presente invención es una composición farmacéutica que comprende una cantidad efectiva de un adenovirus oncolítico que contiene una secuencia de DNA humano aislando a un promotor de expresión selectiva que regula un gen adenoviral y una secuencia que optimiza Ia traducción proteica del mismo gen adenoviral y uno o más portadores y excipientes farmacéuticamente aceptables. En particular, Ia secuencia de DNA humano es una secuencia derivada del locus de Ia distrofia miotónica.
La presente invención también tiene por objeto el uso de un adenovirus oncolítico que contiene una secuencia de DNA humano aislando a un promotor de expresión selectiva que regula un gen adenoviral y una secuencia que optimiza Ia traducción proteica del mismo gen adenoviral para Ia preparación de un medicamento para el tratamiento o prevención del cáncer o de una condición pre- maligna del mismo. En particular, Ia secuencia de DNA humano es una secuencia derivada del locus de Ia distrofia miotónica.
El adenovirus de Ia presente invención puede combinarse optativamente con otras modalidades terapéuticas contra el cáncer como Ia quimioterapia o Ia radioterapia.
La presente invención describe un adenovirus oncolítico que contiene una secuencia de DNA humano, en particular una secuencia derivada del locus de Ia distrofia miotónica, como secuencia aislante de un promotor de expresión selectiva que regula a un gen adenoviral y a su vez contiene una secuencia que optimiza Ia traducción proteica del mismo gen adenoviral, así como el uso de dicho adenovirus oncolítico para el tratamiento o prevención del cáncer o de una condición pre-maligna del mismo. Previamente se ha descrito el uso de secuencias aislantes derivadas de Ia B-globina de pollo en vectores adenovirales 26'27. A diferencia de Ia presente invención los aislantes descritos previamente no son de origen humano y no se han utilizado en un contexto de adenovirus oncolíticos. El locus de Ia distrofia miotónica se localiza en el cromosoma 13 humano en Ia posición 19q13.3. Este locus contiene dos sitios de unión de Ia proteína CTCF y un número variable según cada individuo de repeticiones CTG que conjuntamente funcionan como un potente aislante del efecto de los "enhancers" o activadores sobre los promotores32. Previamente a esta invención su actividad nunca ha sido analizada en un genoma viral. Su actividad en un genoma viral no es obvia puesto que sólo se ha demostrado su actividad en el contexto del cromosoma celular en el que las histonas asociadas pueden tener un papel en su funcionamiento. Su origen humano ofrece una alternativa superior al uso de Ia secuencia HS4 de pollo puesto que Ia transferencia de secuencias de origen no humano puede tener implicaciones de bioseguridad. Además Ia presente invención describe Ia utilización de una secuencia optimizada para Ia traducción proteica para aumentar los niveles producidos de Ia proteína adenoviral regulada bajo el promotor específico de tumores. La regulación de Ia expresión de un gen viral con un promotor selectivo tumoral presenta el inconveniente de que el nivel de expresión suele resultar reducido con respecto al nivel de expresión observado en Ad5. Esta menor expresión conlleva Ia menor potencia replicativa del adenovirus oncolítico. La inserción de Ia secuencia de kozak en el inicio de Ia traducción del gen regulado con el promotor selectivo es capaz de restaurar los niveles de expresión del gen regulado.
La presente invención también describe Ia estrategia de aumentar el número de sitios de unión a E2F en Ia secuencia del promotor humano de E2F1 para controlar mejor Ia expresión de E1a en un adenovirus oncolítico. Este aumento de sitios de unión a E2F produce una mayor expresión de E1a en células tumorales y una menor expresión de E1a en células normales, Io que resulta en un aumento de Ia selectividad tumoral de Ia replicación adenoviral.
La invención se dirige hacia Ia necesidad de hallar mejores terapias para el cáncer incluyendo, pero no limitándose a, cáncer de páncreas, colon y pulmón. El tratamiento del cáncer con el adenovirus oncolítico que contiene Ia secuencia de DNA humano y Ia secuencia que optimiza Ia traducción proteica se puede realizar por inyección directa del dentro del tumor o por administración endovenosa sistémica en pacientes afectados de cáncer usando métodos estándar en el campo de terapia génica y viroterapia con adenovirus.
DESCRIPCIÓN DE LAS FIGURAS
Los dibujos incluidos en Ia invención se han anexado con el propósito de que las características, ventajas, y construcciones de Ia invención queden claras y se entiendan con detalle. Esos dibujos forman parte de las especificaciones e ilustran las invenciones preferidas pero no deben ser considerados limitativos del ámbito de Ia invención.
FIGURA 1. Estructura de adenovirus de replicación selectiva en tumores caracterizados por contener una secuencia del locus de Ia distrofia miotónica aislando a un promotor de expresión selectiva que regula un gen adenoviral y una secuencia que optimiza Ia traducción proteica del mismo gen adenoviral. Icovir2 contiene Ia secuencia del locus de Ia distrofia miotónica (DM) aislando al promotor humano E2F1 que regula E1a. Icovirδ contiene además Ia secuencia de kozak en el inicio de traducción de E1a para optimizar su traducción y aumentar así los niveles de expresión de E1a en células tumorales. Icov¡r7 presenta además dos sitios adicionales de unión a E2F en el promotor de E2F1.
FIGURA 2. Esquema del funcionamiento de un adenovirus oncolítico que contiene Ia secuencia DM del locus de Ia distrofia miotónica aislando al promotor E2F1 que regula E1a. E1a contiene una secuencia que optimiza Ia traducción proteica. El promotor de E2F1 puede estar modificado mediante Ia inserción de sitios adicionales de unión a E2F para aumentar su selectividad y potencia. En una célula normal el complejo pRB-E2F actúa de represor del promotor de E2F1 a través de Ia acción de deacetilasas de histonas (HDAC) y no se expresa E1a. En una célula tumoral pRB se halla hiperfosforilado o ausente y E2F se halla libre. De esta forma actúa como activador transcripcional de E1a. La secuencia kozak en E1a permite un nivel correcto de expresión de E1a. El aislante DM evita las interferencias del ITR y señal de empaquetamiento adenoviral en el promotor E2F1 modificado.
FIGURA 3 Demostración del efecto sobre Ia expresión de E1a resultante de Ia inserción Ia una secuencia aislante DM delante del promotor E2F1.
Cada tipo celular indicado se infectó con el virus indicado. Después de 24 horas se usaron las células y se detectó E1a por western blot. La presencia del promotor E2F1 (ICOVIR1 ) es capaz de disminuir Ia expresión de EIa en células normales. Sin embargo, se observa que Ia secuencia DM confiere un mayor control de Ia expresión de E1a por el promotor E2F (ICOVIR2). En células tumorales tanto ICOVIR1 como ICOVIR2 son capaces de expresar E1a, pero en Fadu, SCC25 y SKMel-28 Ia expresión de E1a es menor que Ia obtenida con los adenovirus en donde E1a no está regulada por E2F1. Ello indica que el promotor de E2F1 , aislado o no con DM, no tiene Ia potencia necesaria para permitir un nivel de expresión de E1a en células tumorales comparable al adenovirus salvaje. La presente invención resuelve este problema con Ia inserción de Ia secuencia de kozak en E1a y Ia modificación del promotor E2F1.
FIGURA 4. La secuencia DM permite aumentar Ia selectividad antitumoral de un adenovirus oncolítico con E1a regulada con el promotor de E2F1.
Para demostrar que un adenovirus oncolítico con E1a regulada con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM se replica selectivamente en células tumorales se procedió a infectar las células con ICOVIR1 e ICOVIR2. Cinco días post-infección se recolectaron las células y sus medios de cultivo y se sometieron a tres ciclos de congelación-descongelación para liberar el virus. La cantidad de virus en el extracto celular se determinó por infección en HEK293 y tinción anti-hexón utilizando el anticuerpo monoclonal 2Hx-2 (ATCC) y un anticuerpo secundario Alexa 488 anti-lgG de ratón (Molecular Probes, Eugene, OR). La presencia de Ia secuencia aislante DM en ICOVI R2 resulta en una menor replicación viral en células normales comparada con ICOVI R1 que tiene el promotor E2F1 no aislado. Es importante señalar que en Ia mayoría de líneas tumorales su capacidad replicativa es menor que Ia de AdwtRGD. La presente invención describe el método para aumentar esta capacidad replicativa mediante Ia inserción de Ia secuencia de kozak en E1a y Ia modificación del promotor E2F1.
FIGURA 5 Efecto de Ia inserción de Ia secuencia de kozak para aumentar Ia potencia del promotor aislado con DM.
Cada tipo celular indicado a Ia izquierda de Ia figura se infectó con el virus indicado arriba de Ia figura. Después de 24 horas se usaron las células y se detectó E1a por western blot. ICOVIR5 se distingue de ICOVIR2 por contener Ia secuencia de kozak en el inicio de traducción de E1a. Los resultados muestran que en células normales ICOVIR5 no expresa E1a por presentar el promotor E2F aislado con DM. En células tumorales el nivel de expresión de E1a es superior en ICOVIR5 que en ICOVIR2, Io que demuestra el efecto de Ia secuencia de kozak para aumentar Ia potencia del promotor aislado con DM. FIGURA 6. Eficacia oncolítica in vitro de los adenovirus que contienen E1a regulado con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM y Ia secuencia de kozak para optimizar Ia traducción de E1a.
La capacidad citolítica en células tumorales de un adenovirus que contiene Ia secuencia de kozak en E1a y un promotor E2F1 aislado por DM (ICOVIR5) se comparó con Ia de un virus salvaje y un virus oncolítico similar pero sin Ia secuencia de kozak (ICOVIR2) El efecto citopático (CPE) que el virus induce se mide como una disminución de Ia cantidad de proteína en una monocapa celular infectada (método BCA 33). Las células se sembraron en placas de 96 pocilios a 30.000 células por pocilio. Al día siguiente las células se infectaron con diluciones seriadas virus desde una concentración de 1000 unidades formadoras de placa por célula. Las células infectadas se incubaron durante 5 días, se lavaron con PBS y se medió Ia cantidad de proteína restante en el pocilio. En conjunto, los resultados muestran que ICOVIR5 tiene mayor capacidad lítica que ICOVIR2 Io que demuestra el efecto potenciador conferido por Ia secuencia de kozak.
FIGURA 7. Efecto de Ia modificación del promotor E2F1 para aumentar su potencia cuando se halla aislado con Ia secuencia DM.
El adenovirus oncolítico ICOVIR7 se distingue de ICOVIR5 por tener el promotor E2F1 modificado. En Ia parte superior de Ia figura se muestra el análisis de Ia expresión de E1a en en Ia línea tumoral 1.36.1.5 de melanoma por western blot. El nivel de expresión de E1a es superior en ICOVIR7 que en ICOVIR5 Io que demuestra el papel potenciador de los sitios de unión a E2F adicionales en
ICOVIR7. Abajo se muestra el nivel de producción viral de ICOVIR7, ICOVIR5 e ICOVIR2 en Ia línea tumoral 1.36.1.5. Como control de máxima producción se utiliza el virus AdwtRGD en el que E1a no está regulada. ICOVIR7 es capaz de propagarse con Ia misma potencia que el control AdwtRGD.
FIGURA 8. Un adenovirus que contiene E1a regulado con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM y Ia secuencia de kozak en el inicio de traducción de E1a puede ser utilizado para el tratamiento de tumores. En Ia parte superior de Ia figura se muestra un experimento in vivo con ratones atímicos de Ia cepa Balb/c que contenían tumores NP9. Un total de 1.2 x 107 células tumorales se inyectaron subcutáneamente en cada flanco posterior del ratón. Después de 15 días los tumores formados (que alcanzaron 70-80 mm3) se distribuyeron en los distintos grupos experimentales (n=10 por grupo). Los tumores se inyectaron con PBS (?) ó 109 partículas virales de ICOVIR-2 (? ) o AdwtRGD (¡ ). La gráfica muestra Ia evolución del volumen tumoral. ICOVIR2 es capaz de inhibir el crecimiento tumoral. La fotografía muestra Ia presencia de virus en el tumor tratado con ICOVIR-2 frente al tratado con PBS. Abajo se muestra el tratamiento por vía sistémica endovenosa con ICOVIR5 de ratones con tumores de melanoma SKMel-28. Tratamiento: PBS («).Una inyección a día 0 de ICOVIR- 5 de 25.1010 partículas virales (vp) (A). Una inyección a día 0 de ICOVIR-5 de 1.1011 vp (4). Una inyección a día 0 de 3.1010 vp y otra de 1.1011 vp separadas entre sí 1 hora (•). Se representa Ia media del crecimiento tumoral de 8-10 tumores/grupo ± S. E. Todos los regímenes de tratamiento con ICOVIR-5 demostraron actividad oncolítica que resulta en una supresión del crecimiento tumoral significativamente distinta al grupo control (PBS), p<0,05. La fotografía muestra Ia presencia de virus en el tumor tratado con ICOVIR5.
FIGURA 9. Demostración ¡n vivo de Ia reducción de toxicidad tras inyectar endovenosamente adenovirus que contienen E1a regulado con el promotor de E2F1 aislado con la secuencia DM y Ia secuencia de kozak para optimizar Ia traducción de E1a.
La toxicidad in vivo de un adenovirus que contiene Ia secuencia de kozak en E1a y un promotor E2F1 aislado por DM (ICOVIR5) se comparó con Ia de un virus salvaje y el virus oncolítico que AdD24RGD que expresa E1a bajo el promotor salvaje. Los virus se administraron endovenosamente a distintas dosis (1010, 5x1010 y 1011) en ratones inmunocompetentes Balb/c. A los 3 días postinyección se evaluó parámetros asociados a Ia toxicidad como supervivencia animal (dosis letal 50), peso corporal, nivel de transaminasas séricas, y hematograma. La toxicidad asociada a Ia administración de ICOVIR 5 es muy baja incluso a Ia dosis más elevada. FIGURA 10. Demostración in vivo de reducción de Ia expresión de E1a en tejido no tumoral y de toxicidad tras inyectar endovenosamente adenovirus que contienen E1a regulado con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM y Ia secuencia de kozak para optimizar Ia traducción de E1a.
Los virus indicados se administraron como se describe en Ia figura 9. A los 3 días post-inyección se evaluó Ia expresión de E1a en cortes de hígado por inmunohistoquímica (paneles superiores). E1a no se detecta en los animales inyectados con ICOVIR5. La valoración anatomopatológica de cortes de hígado teñidos con eosina-hematoxilina indica una apariencia normal de los hígados de los ratones inyectados con ICOVIR5 (paneles inferiores).
DESCRlPCiON DETALLADA DE LA INVENCIÓN
A. Estructura de los adenovirus que contienen E1a regulado con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM, Ia secuencia de kozak para optimizar Ia traducción de E1a y Ia adición de sitios de unión a E2F en el promotor E2F1.
La presente invención describe el uso en el tratamiento del cáncer de adenovirus que contienen E1a regulado con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM, Ia secuencia de kozak para optimizar Ia traducción de E1a y Ia adición de sitios de unión a E2F en el promotor E2F1. El tratamiento se basa en Ia replicación selectiva de estos virus en tumores que tienen Ia vía del retinoblastoma alterada.
La vía del retinoblastoma es el conjunto de interacciones proteicas que se suceden desde Ia membrana celular hasta el núcleo para regular el nivel de fosforilación de Ia proteína del retinoblastoma pRb. El cáncer se caracteriza por una alteración de esta vía de modo que Ia proteína pRb se hiperfosforila o se pierde. Esta alteración de pRb provoca una pérdida de unión de pRb al factor de transcripción E2F y el aumento de E2F libre en el núcleo de las células tumorales. Este factor de transcripción se une a los promotores con sitios de unión específicos de E2F, como el promotor de E2F1 , para aumentar su expresión. El mecanismo de replicación selectiva en tumores de adenovirus que contienen E1a regulado con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM, Ia secuencia de kozak en el inicio de traducción de E1a y Ia adición de sitios de unión a E2F en el promotor E2F1 se basa en que Ia presencia de E2F libre en los tumores activa Ia expresión del promotor E2F1 en este virus y se indica en Ia figura 2 de Ia presente invención. La presencia de Ia secuencia DM permite Ia activación correcta del promotor. La presencia de Ia secuencia de kozak permite Ia síntesis de una cantidad de E1a suficiente para mantener Ia capacidad replicativa y lítica apropiada del virus oncolítico. Asimismo, Ia presencia de sitios de unión a E2F adicionales en el promotor E2F1 permite aumentar el nivel de expresión de E1a para mantener Ia capacidad replicativa y lítica apropiada del virus oncolítico.
La secuencia humana aislante DM derivada del locus de Ia distrofia miotónica está representada por SEQ. ID 1 (desde Ia posición 368 hasta Ia 1096 de Ia secuencia 1 ). La secuencia DM se caracteriza por contener dos sitios de unión al factor CTCF y un número variable de repeticiones de Ia secuencia CGT que conjuntamente funcionan como un potente aislante de Ia interferencia transcripcional 32. En Ia presente invención Ia secuencia DM actúa para aislar el efecto de los enhancers localizados en Ia secuencia de empaquetamiento del adenovirus próximos al promotor de E1a. El promotor de E1a se substituye por un promotor selectivo de tumores como por ejemplo el promotor E2F1 y, para aislar este promotor de los enhancers presentes en Ia secuencia de empaquetamiento adenoviral, Ia secuencia DM se inserta entre dicha secuencia de empaquetamiento y el promotor E2F1. La secuencia del promotor de E2F1 se muestra en SEQ. ID 1 (desde Ia posición 1283 hasta Ia posición 1564 de Ia secuencia 1). Este promotor se caracteriza por presentar dos sitios de unión a E2F organizados en palíndromas imperfectos y cuatro sitios de unión a Sp1 34. En Ia presente invención Ia secuencia del promotor E2F se modifica por Ia inserción de sitios de unión a E2F adicionales a los que ya existen en el promotor humano salvaje (desde Ia posición 1321 hasta Ia posición 1447 de SEQ. ID 3). Con ello se consigue aumentar tanto Ia represión transcripcional en células normales como Ia activación transcripcional en células tumorales. La traducción de ARNm por los ribosomas eucarióticos se puede optimizar si insertamos Ia secuencia C C A/G C C delante del primer codón ATG traducido 35. Esta secuencia fue identificada por Marylin Kozak y ha recibido el nombre de kozak. En Ia presente invención esta secuencia actúa compensando Ia poca potencia observada experimentalmente cuando un promotor selectivo de tumor como el promotor E2F1 aislado con Ia secuencia DM se utiliza para controlar Ia expresión de E1a (posición 1558 hasta 1562 de SEQ. ID 2).
Existen varios métodos para manipular el genoma adenoviral. Los métodos de construcción de adenovirus modificados genéticamente están bien establecidos en el campo de Ia terapia génica y Ia viroterapia con adenovirus 36"41. El método más comúnmente utilizado se basa en construir primero Ia modificación genética deseada en un plásmido que contiene Ia región adenoviral a modificar, para después realizar una recombinación homologa en bacterias con un plásmido que contiene el resto del genoma viral 41. El procedimiento puede ser como sigue:.
Otros tipos de mutaciones y manipulaciones genéticas distintas a Ia regulación de Ia expresión de E1a con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM, Ia inserción de Ia secuencia de kozak para optimizar la traducción de E1a y Ia adición de sitios de unión a E2F en el promotor E2F1 descritas en Ia presente invención se han realizado para obtener replicación selectiva en tumores
1,42-44 frstas pUecjen ser inserciones de otros promotores distintos a E2F1 que son activos en células tumorales y que se usan también para controlar Ia expresión de genes virales. Una realización de Ia presente invención es el uso de Ia secuencia aislante DM y Ia secuencia de kozak en combinación con esos otros promotores.
Otra modificación descrita para conseguir replicación selectiva en tumores es Ia delección de funciones tempranas de E1 que bloquean Ia vía de RB. La replicación selectiva de dichos mutantes ya ha sido demostrada 9'10. Otros genes virales que interaccionan directamente con pRB como E4 45 y E4orf6/7 46, respectivamente, son candidatos a ser deleccionados para conseguir replicación selectiva en células tumorales.
En otra realización de Ia invención los adenovirus con Ia expresión de un gen viral regulada por promotor selectivo aislado con Ia secuencia DM y potenciada con Ia secuencia de kozak pueden contener modificaciones de su cápsida para aumentar su infectividad o dirigirse a receptores presentes en Ia célula tumoral. Las proteínas de Ia cápsida adenoviral se han modificado genéticamente para incluir ligandos que aumentan Ia infectividad o que dirigen el virus a un receptor en Ia célula tumoral 47~53. Dirigir el adenovirus al tumor también se puede conseguir con ligandos bifuncionales que unen al virus por un lado y al receptor tumoral por otro 53"56. Por otro lado, para aumentar Ia persistencia del adenovirus en sangre y con ello aumentar las posibilidades de alcanzar nodulos tumorales diseminados, Ia cápsida puede cubrirse con polímeros como el polietilen-glicol 57'60. Se pueden configurar estas modificaciones en adenovirus que contienen E1a regulado con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM, Ia secuencia de kozak en el inicio de traducción de E1a y Ia adición de sitios de unión a E2F en el promotor E2F1.
Otra realización de Ia presente invención son adenovirus que contienen
E1a regulado con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM, Ia secuencia de kozak en el inicio de traducción de E1a y Ia adición de sitios de unión a E2F en el promotor E2F1 pero que derivan de otros serotipos de adenovirus distintos al
Ad5.
Otra realización de Ia presente invención se refiere a adenovirus que contienen E1a regulado con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM, Ia secuencia de kozak en el inicio de traducción de E1a y Ia adición de sitios de unión a E2F en el promotor E2F1 y que a su vez contienen otros genes para aumentar su citotoxicidad sobre células tumorales como el gen de Ia timidina quinasa, citosina deaminasa, genes proapoptóticos, inmunoestimuladores o supresores tumorales.
B. Producción, purificación y formulación de adenovirus que contienen E1a regulado con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM, Ia secuencia de kozak en el inicio de traducción de E1a y Ia adición de sitios de unión a E2F en el promotor E2F1.
Los adenovirus descritos en Ia presente invención se propagan siguiendo métodos estándar en los campos de Ia adenovirología y los vectores adenovirales 36'37. El método preferido de propagación es por infección de una línea celular permisiva a Ia replicación de adenovirus que contienen E1a regulado con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM, Ia secuencia de kozak en el inicio de traducción de E1a y Ia adición de sitios de unión a E2F en el promotor E2F1. La línea de adenocarcinoma pulmonar A549 es un ejemplo de dicha línea. La propagación se realiza por ejemplo del siguiente modo: Las células A549 se crecen sobre placas de cultivo celular de plástico y se infectan usando 50 partículas virales por célula. Dos días después el efecto citopático que refleja Ia producción de virus se observa como un arracimamiento de las células. Las células se recogen y se almacenan en tubos. Después de una centrifugación a 1000g durante 5 minutos, el precipitado celular se congela y descongela tres veces para romper las células. El extracto celular resultante se centrifuga a 100Og durante 5 minutos y el sobrenadante con virus se carga encima de un gradiente de cloruro de cesio y se centrifuga durante 1 hora a 35.00Og. La banda de virus en el gradiente se carga de nuevo sobre otro gradiente de cloruro de cesio y se centrifuga durante 16 horas a 35.00Og. La banda de virus se recoge y se dializa frente a PBS-10% glicerol. El virus dializado se alícuota y almacena a -8O0C. La cuantificación de número de partículas y unidades formadoras de placa se realiza siguiendo protocolos estándar 39. Tampón fosfato salino con glicerol al 10% es una formulación estándar para el almacenamiento de adenovirus. Sin embargo se han descrito nuevas formulaciones que mejoran Ia estabilidad del virus 61>62.
C. Utilización de adenovirus que contienen E1a regulado con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM, Ia secuencia de kozak en el inicio de traducción de E1a y Ia adición de sitios de unión a E2F en el promotor E2F1 para el tratamiento del cáncer.
La presente invención describe el uso de adenovirus que contienen E1a regulado con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM, Ia secuencia de kozak en el inicio de traducción de E1a y Ia adición de sitios de unión a E2F en el promotor E2F1 para tratar el cáncer. El tratamiento se basa en Ia replicaclón selectiva de estos virus en células con una vía de RB activa.
Los protocolos para usar los virus descritos en Ia presente invención en el tratamiento del cáncer siguen los mismos procedimientos que los usados en los campos de viroterapia con adenovirus y terapia génica con adenovirus. Existe una amplia experiencia en el uso de adenovirus no replicativos y replicativos en el campo de Ia terapia génica. En particular adenovirus con mecanismos de replicación selectiva distintos al propuesto en Ia presente invención han sido usados para tratar el cáncer 9-37-63-68. Existen numerosas publicaciones de tratamiento de células tumorales en cultivo, en modelos animales y en ensayos clínicos con pacientes. Para el tratamiento de células en cultivos in vitro el adenovirus purificado en cualquiera de las formulaciones descritas más arriba se añade al medio de cultivo para Ia infección de las células tumorales. Para tratar tumores en modelos animales o en pacientes humanos el adenovirus se puede administrar loco-regionalmente por inyección en el tumor o en una cavidad corporal donde se localiza el tumor, o bien sistémicamente por inyección en el torrente sanguíneo. Como se ha practicado con otros adenovirus de replicación selectiva, el tratamiento de tumores con los adenovirus descritos objeto de Ia presente invención se puede combinar con otras modalidades terapéuticas como Ia quimioterapia o radioterapia.
EJEMPLOS
EJEMPLO 1
Un adenovirus oncolítico con E1a regulada con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM expresa E1a v se replica selectivamente en células tumorales.
Se construyó un adenovirus con E1a regulada con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM del siguiente modo: Para generar ICOVIR-1 (Ad- E2F-Δ24RGD), el promotor E2F1 humano se obtuvo por PCR de células mononucleares de sangre periférica humana usando oligonucleótidos que amplifican desde el par de bases -218 al +51 del promotor E2F-1 (Ia posición +1 indica el inicio de transcripción). Los oligonucleótidos contenían dianas de restricción Kpn\ y HindW para Ia clonación en el piásmido pGL3 (Promega, South Hampton, UK). El piásmido resultante se denominó pGL3-E2F. A partir de este se obtuvo pE2F- Δ24 por recombinación con un piásmido que contiene las 5,766 pares de bases del extremo izquierdo del genoma adenoviral exceptuando los nucleótidos (nt) 122 a 129 de E1a (derivado de pXC1-Δ24 con un sitio Hind\\\ entre nt 348 y el nt 522 del genoma de Ad5 9). pE2F- Δ24 se recombinó con pShuttle 41 para obtener pShuttle-E2F- Δ24. Este piásmido se linearizó con Pme\ y se recombinó con pVK503 (que contiene Ia secuencia de Ad5 con Ia fibra modificada con RGD 69) para generar el piásmido pAd-E2F-Δ24RGD ó pICOVIR- 1. La combinación del promotor E2F1 y otras modificaciones descritas en esta invención con Ia mutación de E1a denominada Δ24 y Ia inserción del péptido RGD en Ia fibra se realizó para demostrar que las modificaciones presentadas en esta invención aumentan Ia selectividad y potencia oncolítica de un virus reconocido como selectivo de Ia vía de Rb y potente en el campo de Ia oncolisis (adenovirus Ad-Δ24RGD 70). El virus ICOVIR1 se generó por digestión con Pací de este piásmido y transfección en células HEK293. Un protocolo paralelo se utilizó para generar ICOVIR-2 (Ad-DM-E2F-Δ24RGD). La secuencia aislante DM-1 se obtuvo de PCR de células mononucleares de sangre periférica humana usando oligonucleotidos que amplifican desde el nt 13006 al nt 13474 del locus DM1 (secuencia publicada en GenBank con número L08835). Los oligonucleotidos de Ia PCR se diseñaron para incorporar sitios Xho I flanqueantes. El DM-1 se subclonó en Xhol de pShuttle-E2F-Δ24 arriba descrito para obtener pShuttle-DM- E2F-Δ24. La correcta orientación del fragmento DM1 se verificó por restricción con βaA7?H1 , HinúlW, Xhol y Sma\. pShuttle-DM-E2F-Δ24 se recombinó con pVK503 para generar plCOVIR2. El virus ICOVIR2 se generó por digestión con Pací de este piásmido y transfección en células HEK293. ICOVIR1 e ICOVIR2 se propagaron en Ia línea A549 y se purificaron por métodos descritos en terapia génica y viroterapia 36. La estructura correcta de los genomas de ICOVIR-1 e ICOVIR-2 se verificó por restricción con Kpn\ y H/ndlII respectivamente. Adicionalmente se secuenció Ia región DM-1 , el promotor E2F, Ia mutación E1A- Δ24 y Ia región de Ia fibra que contiene RGD. Los oligonucleotidos usados para estas secuenciaciones son: DMI-Up (δ'-GGGCAGATGGAGGGCCTTTTATTC-S1), E2F-Up (5'-GTGTTACTCATAGCGCGTAA-3'), Δ24-down (5'-
CCTCCGGTGATAATGACAAG-3') y FiberUp (δ'-CAAACGCTGTTGGATTTATG- 3'). Las secuencias obtenidas se muestran en SEQ. ID 1.
Para demostrar que un adenovirus oncolítico con E1a regulada con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM expresa E1a selectivamente en células tumorales se procedió a infectar cultivos celulares de células normales (hepatocitos murinos y humanos, fibroblastos humanos y células endoteliales humanas HUVEC) y tumorales (células de carcinoma de páncreas NP9, carcinoma de pulmón A549, carcinomas de cabeza y cuello FaDu y SCC25, y melanoma SK-Mel-28 y 1.36.1.5) con ICOVIR1 e ICOVIR2 usando multiplicidad de infección que permitía más del 80% de infección. Después de 20 horas postinfección se usaron las células en tampón de lisis (400 mM NaCI, 1 mM EDTA, 5 mM NaF, 10% glicerol, 1mM orthovanadato de sodio, 0,5% Nonidet P-40, 100 ug/ml fluoruro de phenylmethylsulfonyl , 1 ug/ml leupeptina y 10 ug/ml aprotinina en 1OmM Tris-HCI (pH 7.4)) durante 1 h a 40C. El lisado se centrifugó a 1400Og, y el sobrenadante con proteínas se separó por electroforesis en 10% SDS-PAGE (25 ug/carril, determinados por Bradford, BioRad, CA, EEUU) y se transfirió a nitro-celulosa (Schleicher and Schuell, Dassel, Alemania). La membrana se bloqueó con 5% de leche desnatada, 0.05% Tween 20, 0.9% NaCI en 5OmM Tris (pH 7.5), y se incubó 16h a 40C con un anticuerpo policlonal anti-adenovirus-2 E1a (clon 13 S-5, Santa Cruz Biotechnology Inc., Santa Cruz, CA, EEUU). E1a se reveló con un anticuerpo secundario anti-conejo IgG (DAKO A/S) conjugado a peroxidasa y el protocolo de quimioluminiscencia de "Amersham's Enhanced Chemioluminiscence" (Amersham, Arlington Heights, IL, EUU). El resultado se muestra en Ia figura 3 de Ia presente invención. Se demuestra que Ia presencia del promotor E2F1 (ICOVIR1) es capaz de disminuir Ia expresión de E1a en células normales. Pero Ia secuencia DM confiere un mayor control de Ia expresión de E1a por el promotor E2F (ICOVIR2). En células tumorales tanto ICOVIR1 como ICOVIR2 son capaces de expresar E1a, pero es importante señalar que en algunas líneas tumorales como FaDu, SCC25 y SKMel-28 Ia expresión de E1a es menor que Ia obtenida con el adenovirus salvaje y el oncolítico AdD24RGD en donde E1a no está regulada por E2F1. Ello indica que el promotor de E2F1 aislado o no con DM no tiene Ia potencia necesaria para permitir un nivel de expresión de E1 a en células tumorales comparable al adenovirus salvaje.
Para demostrar que un adenovirus oncolítico con E1a regulada con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM se replica selectivamente en células tumorales se procedió a infectar las células con ICOVIR1 e ICOVIR2 como se describe en el párrafo anterior. Cinco días post-infección se recolectaron las células y sus medios de cultivo y se sometieron a tres ciclos de congelación- descongelación para liberar el virus. La cantidad de virus en el extracto celular se determinó por infección en HEK293 y tinción anti-hexón utilizando el anticuerpo monoclonal 2Hx-2 (ATCC) y un anticuerpo secundario Alexa 488 anti-lgG de ratón (Molecular Probes, Eugene, OR). El resultado se muestra en Ia figura 4. La presencia del promotor E2F1 en ICOVIR1 reduce Ia replicación viral en células normales (fibroblastos y HUVEC). Sin embargo, Ia secuencia aislante en ICOVIR2 resulta en una menor replicación viral. En ciertas líneas células tumorales como A549, ICOVIR1 e ICOVIR2 muestran un nivel de replicación similar al adenovirus salvaje Adwt pero en Ia mayoría de líneas tumorales su capacidad replicativa es menor que Ia de Adwt.
EJEMPLO 2 La secuencia de kozak permite aumentar Ia expresión de E1a un adenovirus oncolítico en el que Ia expresión de E1a está regulada con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM.
Se construyó un adenovirus oncolítico con E1a regulada con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM y con Ia secuencia de kozak para aumentar su traducción. Para ello un fragmento de DNA que contenía Ia secuencia DM, el promotor E2F1 y E1a fue aislado del pShuttle-DM-E2F-D24 descrito en el ejemplo 1 por restricción con Kpn1 y subclonado en pGEM3Z (Promega) obteniéndose el plásmido pGEM-E2F-d24. Este plásmido se utilizó para reemplazar el inicio de traducción de E1a utilizando oligonucleótidos con Ia secuencia de kozak obteniéndose pGEM-E2F-KD24. El fragmento Kpn1 así modificado se reclonó en Kpn1 de pShuttle-DM-E2F-D24 para obtener pShuttle- DM-E2F-KD24. Finalmente pShuttle-DM-E2F-KD24 se recombinó con pVK503 para obtener pICOVIRδ. El virus ICOVIR5 se generó por digestión con Pac\ de este plásmido y transfección en células HEK293. ICOVIR5 se propagó en Ia línea A549 y se purificó por métodos descritos en terapia génica y viroterapia 36. Su estructura se presenta en Ia figura 1 de Ia presente invención. La secuencia correcta del promotor y E1a se verificó por restricción y secuenciación. La secuencia obtenida se muestra en SEQ. ID 2.
Para demostrar que E1a se expresa condicionalmente en células tumorales cuando su expresión está regulada con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM y además su traducción se optimiza con Ia secuencia de kozak, se procedió a analizar Ia expresión de E1a como se describe en el ejemplo 1. En este caso se incluyó en adenovirus oncolítico ICOVIR5, que se distingue de ICOVIR2 por contener Ia secuencia de kozak en el inicio de traducción de E1a. Los resultados se muestran en Ia figura 5 de Ia presente invención. En células normales ICOVIR5 no expresa E1a por presentar el promotor E2F aislado con DM. En células tumorales el nivel de expresión de E1a es superior en ICOVIR5 que en ICOVIR2, Io que demuestra el efecto de Ia secuencia de kozak para aumentar Ia potencia del promotor aislado con DM.
EJEMPLO 3
La secuencia de kozak permite aumentar Ia potencia oncolítica de un adenovirus en el que Ia expresión de E1a está regulada con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM.
Se cultivaron en pocilios de placas de 96 pocilios las células de las líneas tumorales SKMel-28 y FaDu en las cuales se había visto una disminución de Ia capacidad replicativa de ICOVIR2 (como se ha descrito en el ejemplo 1 y figura 4). Estas células se infectaron con cantidades crecientes de ICOVIR5, ICOVIR2 y AdwtRGD (este último utilizado como control de máxima potencia lítica). Cinco días post-infección se evaluó espectrofotométricamente Ia cantidad de proteína como reflejo de Ia supervivencia celular. Los resultados se muestran en Ia figura 6 de Ia presente invención. La capacidad lítica de ICOVIR5 en SKMel-28 es Ia misma que Ia de AdwtRGD y superior a ICOVIR2. En FaDu es también superior a ICOVIR2 aunque no alcanza el nivel del AdwtRGD.
EJEMPLO 4
La modificación del promotor E2F1 por inserción de sitios de unión a E2F permite aumentar en células tumorales Ia expresión de E1a cuando E1a está regulada con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM y además su traducción se optimiza con Ia secuencia de kozak.
Se construyó un adenovirus oncolítico con E1a regulada con un promotor de E2F1 modificado por Ia inserción de cuatro sitios de unión a E2F. Para ello en el plásmido pGEM-E2FKE1ad24 descrito en el ejemplo 2 se introdujo mediante mutagénesis dirigida una diana para BsiWI en el promotor de E2F1 (posición 1326). En este sitio BsiWI se ligaron dos copias de oligonucleótidos con Ia secuencia palindrómica de unión a E2F y que tenían extremos compatibles con BsiWI. El promotor así modificado se sublconó en Kpn1 de pShuttle-DM-E2F-D24 para obtener pShDME2FBsiE2F2KE1ad24. Por recombinación homologa de este plásmido con un genoma AdwtRGD se obtuvo el plásmido plCOVIR7. El virus ICOVIR7 se generó por digestión con Pací de este plásmido y transfección en células HEK293. ICOVIR7 se propagó en Ia línea A549 y se purificó por métodos descritos en terapia génica y viroterapia 36. Su estructura se presenta en Ia figura 1 de Ia presente invención. La secuencia correcta del promotor y E1a se verificó por restricción y secuenciación. La secuencia obtenida se muestra en SEQ. ID 3. Para demostrar el papel del promotor E2F1 modificado en el contexto de aislamiento obtenido con DM se procedió a analizar Ia expresión de E1a en Ia línea tumoral 1.36.1.5 de melanoma por western blot como se describe en el ejemplo 1. El adenovirus oncolítico ICOVIR7 se distingue de ICOVIR5 por tener el promotor E2F1 modificado. Los resultados se muestran en Ia figura 7 de Ia presente invención. El nivel de expresión de E1a es superior en ICOVIR7 Io que demuestra el papel potenciador de los sitios de unión a E2F adicionales en ICOVIR7. Además Ia expresión de E1a es mayor en ICOVIR5 que en ICOVIR2, Io que demuestra de nuevo el efecto de Ia secuencia de kozak para aumentar Ia potencia del promotor aislado con DM.
EJEMPLO 5 Un adenovirus que contiene E1a regulado con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM v Ia secuencia de kozak en el inicio de traducción de E1a puede ser utilizado para tratar eficazmente tumores.
Se realizó un experimento in vivo con ratones atímicos de Ia cepa Balb/c que contenían tumores NP9. Un total de 1.2 x 107 células tumorales de Ia línea SKMel-28 se inyectaron subcutáneamente en cada flanco posterior del ratón. Después de 15 días los ratones con tumores formados (que alcanzan 70-80 mm3) se distribuyeron en los distintos grupos experimentales (n=10 por grupo). Los tumores del grupo control recibieron dos inyecciones intratumorales de tampón salino (2 x 10 μl). Los del grupo tratado con icovirδ recibieron dos inyecciones intratumorales (2 x 10 μl) de icovirδ (109 partículas virales por tumor). Se midieron los tumores cada dos días y su volumen se estimó según Ia fórmula: V (mm3)= A (mm) x B2 (mm2) x π/6, en donde B es Ia longitud transversal. La figura 8 muestra el volumen tumoral respecto al inicio del tratamiento (día 0). Los resultados se presentan como media + S.E.M. La existencia de diferencias significativas entre los resultados se calculó usando un ensayo no paramétrico de datos no apareados de Mann-Whitney. Las curvas de crecimiento se compararon usando un análisis de Ia variancia. Los resultados se consideraron significativos si p < 0.05. Los cálculos se realizaron con el paquete estadístico SPSS (SPSS Inc., Chicago, IL). Existe una diferencia significativa entre el tamaño tumoral a días 16 y 21.
En otro experimento el tratamiento se realizó por inyección sistémica de ICOVIR5. Tumores de Ia línea celular de melanoma humana SKMel-28 (1.107 células/tumor) se implantaron en ratones atímicos BaIb C nu/nu, y una vez establecidos fueron tratados por administración en Ia vena de Ia cola con PBS, con una única inyección a día 0 de ICOVIR-5 de 2,5.1010 partículas virales (vp) ó de 1.1011 vp , o con una inyección de 3.1010 vp y otra de 1.1011 vp separadas entre sí 1 hora. Los resultados se muestran en Ia parte inferior de Ia figura 8 de Ia presente invención. Todos los regímenes de tratamiento con ICOVIR-5 demostraron actividad oncolítica que resulta en una supresión del crecimiento tumoral significativamente distinta al grupo control (PBS), p<0,05. La administración de una pre-dosis de 3.1010 vp antes de Ia inyección de 1.1011 vp confiere a este régimen efectividad significativamente mejor que las otras pautas (p<0,05). Las diferentes secciones de los tumores congelados en OCT se trataron con una anticuerpo α-hexon (proteína de Ia cápsida del adenovirus) y se contratiñeron con 4',6'-diamin¡dino~2-phenyl¡ndol. La actividad antitumoral de ICOVIR-5 correlaciona con Ia replicación del adenovirus a nivel intratumoral, evaluada en los tumores obtenidos a día 22 post-inyección. Las muestras de todos los grupos tratados con ICOVI R-5 son positivas para Ia presencia de adenovirus, que localiza en áreas de necrosis tumoral.
EJEMPLO 6
La toxicidad asociada a Ia administración sistémica de adenovirus se reduce cuando se utiliza un adenovirus que contiene E1a regulada con el promotor de E2F1 aislado con Ia secuencia DM y Ia secuencia de kozak en el inicio de traducción de E1a. La toxicidad in vivo de un adenovirus que contiene Ia secuencia de kozak en E1a y un promotor E2F1 aislado por DM (ICOVIR5) se comparó con Ia de un virus salvaje y el virus oncolítico AdD24RGD que expresa E1a bajo el promotor salvaje. Los virus se administraron endovenosamente a distintas dosis y a los 5 días post-inyección se evaluó parámetros asociados a Ia toxicidad como supervivencia animal, peso corporal, nivel de transaminasas séricas, y hematograma. Los resultados se muestran en Ia figura 9 de Ia presente invención. El valor de dosis letal 50 (LD50) para AdwtRGD ó AdΔ24RGD en ratones inmunocompetentes Balb/C se sitúa en 5.1010 partículas virales (vp)/ratón a día 5 post-inyección, mientras que el doble de esta dosis (1.1011 vp/ratón) sólo es letal para el 10% de los ratones (LD10) inyectados con ICOVIR-5. El peso corporal de los ratones inyectados con 5.1010 vp de AdwtRGD ó AdΔ24RGD a día 5 postinyección experimentó importantes pérdidas frente al incremento de peso de los ratones inyectados con ICOVIR-5. Paralelamente, las medidas de transaminasas hepáticas en plasma a día 5 post-inyección (valores medios ± S. D.; /i=5-10/ grupo) también revelaron importantes diferencias, siendo ICOVIR-5 claramente menos hepatotóxico a las mismas dosis. El perfil hematológico de los ratones a día 5 evidenció que Ia administración de 5.1010 vp de ICOVIR-5 no daba lugar a alteraciones significativas del hematograma ni reproducía Ia significativa plaquetopenia asociada a Ia administración de Ia misma dosis de AdwtRGD. El análisis de Ia expresión de Ia proteína adenoviral E1A en el hígado de los ratones por immunodetección en secciones congeladas obtenidas a día 5 post-inyección muestra que Ia presencia de una versión aislada del promotor de E2F-1 en ICOVIR-5 es efectiva restringiendo Ia expresión de las proteínas virales, incluso cuando Ia dosis administrada se incrementa (figura 10). La evaluación histológica por tinción de hematoxilina / eosina de secciones en parafina de los hígados a día 3 post-inyección también confirmó Ia baja toxicidad de ICOVIR-5 (figura 10). Así, mientras los hígados de los ratones que recibieron 5.1010 vp de AdwtRGD ó AdΔ24RGD presentaban síntomas claros de hepatitis fulminante (macroesteatosis, abundancia de cuerpos de Councilman, y presencia de puentes de necrosis), los animales inyectados con ICOVIR-5 tenían hígados con un fenotipo prácticamente normal, que sólo marginalmente presentaban cuerpos de Councilman en las regiones más externas.
REFERENCIAS
1 Alemany R, Balague C, Curiel DT. Replicative adenoviruses for cáncer therapy. Nat Biotechnol. 2000; 18: 723-727. 2 De Pace N. Sulla scomparsa di un enorme cráneo vegetante del eolio dell'utero senza cura chirurgica. Ginecología. 1912; 9: 82-89.
3 Sinkovics J, Horvath J. New developments in the virus therapy of cáncer: a historical review. Intervirology. 1993; 36: 193-214.
4 Dupressoir T et al. Inhibition by parvovirus H-1 of the formation of tumors in nude mice and colonies in vitro by transformed human mammary epithelial cells. Cáncer Res. 1989; 49: 3203-3208. 5 Stojdl DF et al. Exploiting tumor-specific defects ¡n the interferon pathway with a previously unknown oncolytic virus. Nat Med. 2000; 6: 821-825.
6 Norman KL, Lee PW. Reovirus as a novel oncolytic agent. J Clin Invest. 2000; 105: 1035-1038. 7 Markert JM et al. Conditionally replicating herpes simplex virus mutant, G207 for the treatment of malignant glioma: results of a phase I trial. Gene Ther. 2000; 7: 867-874.
8 Shenk T. Adenoviridae: The Viruses and Their Replication. Lippincott- Raven Publishers: Philadelphia, 1996. 9 Fueyo J et al. A mutant oncolytic adenovirus targeting the Rb pathway produces anti-glioma effect in vivo. Oncogene. 2000; 19: 2-12.
10 Heise C et al. An adenovirus E1A mutant that demonstrates potent and selective systemic anti-tumoral efficacy. Nat Med. 2000; 6: 1134-1139.
11 Alemany R et al. Complementary adenoviral vectors for oncolysis. Cáncer Gene Ther. 1999; 6: 21-25.
12 Hallenbeck PL et al. A novel tumor-specific replication-restricted adenoviral vector for gene therapy of hepatocellular carcinoma. Hum Gene Ther. 1999; 10: 1721-1733.
13 Rodríguez R et al. Prostate attenuated replication competent adenovirus (ARCA) CN706: a selective cytotoxic for prostate-specific antigen-positive prostate cáncer cells. Cáncer Res. 1997; 57: 2559-2563.
14 Kurihara T, Brough DE, Kovesdi I, Kufe DW. Selectivity of a replication- competent adenovirus for human breast carcinoma cells expressing the MUC1 antigen. J Clin Invest. 2000; 106: 763-771. 15 Matsubara S et al. A conditional replication-competent adenoviral vector, Ad-OC-EIa, to cotarget prostate cáncer and bone stroma ¡n an experimental model of androgen-independent prostate cáncer bone metástasis. Cáncer Res. 2001 ; 61 : 6012-6019.
16 Ring CJ, Harris JD, Hurst HC, Lemoine NR. Suicide gene expression induced ¡n tumour cells transduced with recombinant adenoviral, retroviral and plasmid vectors containing the ERBB2 promoter. Gene Ther. 1996; 3: 1094-1103. Shi Q, Wang Y, Worton R. Modulation of the specificity and activity of a cellular promoter in an adenoviral vector. Hum Gene Ther. 1997; 8: 403- 410. Brunori M, Malerba M, Kashiwazaki H, lggo R. Replicating adenoviruses that target tumors with constitutive activation of the wnt signaling pathway. J Virol. 2001 ; 75: 2857-2865. Doronin K et al. Tissue-specific, tumor-selective, replication-competent adenovirus vector for cáncer gene therapy. J Virol. 2001 ; 75: 3314-3324. Ryan PC et al. Antitumor efficacy and tumor-selective replication with a single intravenous injection of OAS403, an oncolytic adenovirus dependent on two prevalent alterations in human cáncer. Cáncer Gene Ther. 2004; 11 : 555-569. Johnson L et al. Selectively replicating adenoviruses targeting deregulated E2F activity are potent, systemic antitumor agents. Cáncer CeII. 2002; 1 : 325-337. Working PK, Lin A, Borellini F. Meeting product development challenges in manufacturing clinical grade oncolytic adenoviruses. Oncogene. 2005; 24: 7792-7801. Hearing P, Shenk T. The adenovirus type 5 E1A enhancer contains two functionally distinct domains: one is specific for E1A and the other modulates all early units ¡n cis. CeII. 1986; 45: 229-236. Buvoli M, Langer SJ, Bialik S, Leinwand LA. Potential limitations of transcription terminators used as transgene insulators in adenoviral vectors.
Gene Ther. 2002; 9: 227-231. Yamamoto M et al. Transcription initiation activity of adenovirus left-end sequence in adenovirus vectors with e1 deleted. J Virol. 2003; 77: 1633- 1637. 26 Steinwaerder DS, Lieber A. Insulation from viral transcriptional regulatory elements improves inducible transgene expression from adenovirus vectors ¡n vitro and in vivo. Gene Ther. 2000; 7: 556-567.
27 Martin-Duque P, Jezzard S, Kaftansis L, Vassaux G. Direct comparison of the insulating properties of two genetic elements ¡n an adenoviral vector containing two different expression cassettes. Hum Gene Ther. 2004; 15: 995-1002.
28 West AG, Gaszner M, Felsenfeld G. Insulators: many functions, many mechanisms. Genes Dev. 2002; 16: 271-288. 29 Tsukuda K et al. An E2F-responsive replication-selective adenovirus targeted to the defective cell cycle in cáncer cells: potent antitumoral efficacy but no toxicity to normal cell. Cáncer Res. 2002; 62: 3438-3447.
30 Jakubczak JL et al. An oncolytic adenovirus selective for retinoblastoma tumor suppressor protein pathway-defective tumors: dependence on E1A, the E2F-1 promoter, and viral replication for selectivity and efficacy. Cáncer
Res. 2003; 63: 1490-1499.
31 Dyson N. The regulation of E2F by pRB-family proteins. Genes Dev. 1998; 12: 2245-2262.
32 Filippova GN et al. CTCF-binding sites flank CTG/CAG repeats and form a methylation-sensitive insulator at the DM1 locus. Nat Genet. 2001 ; 28: 335-
343.
33 O'Carroll SJ et al. Quantifying adenoviral titers by spectrophotometry. Biotechniques. 2000; 28: 408-410, 412.
34 Neuman E, Flemington EK, Sellers WR, Kaelin WG, Jr. Transcription of the E2F-1 gene ¡s rendered cell cycle dependent by E2F DNA-binding sites within its promoter. Mol Cell Biol. 1995; 15: 4660.
35 Kozak M. Point mutations define a sequence flanking the AUG initiator codon that modulates translation by eukaryotic ribosomes. Cell. 1986; 44: 283-292. 36 Graham FL, Prevec L. Manipulation of adenoviral vectors. Humana Press: CI¡fton, N.J., 1991.
37 Alemany R, Zhang W. Oncolytic adenoviral vectors. Humana Press: Totowa, NJ., 1999. 38 Davis AR et al. Construction of adenoviral vectors. Mol Biotechnol. 2001 ; 18: 63-70.
39 Mittereder N, March KL, Trapnell BC. Evaluation of the concentration and bioactivity of adenovirus vectors for gene therapy. J Virol. 1996; 70: 7498- 7509. 40 Chartier C et al. Efficient generation of recombinant adenovirus vectors by homologous recombination in Escherichia coli. J Virol. 1996; 70: 4805- 4810.
41 He TC et al. A simplified system for generating recombinant adenoviruses. Proc NatlAcad Sci U SA. 1998; 95: 2509-2514. 42 Kirn DH, McCormick F. Replicating viruses as selective cáncer therapeutics. Mol Med Today. 1996; 2: 519-527.
43 Kirn D. Replication-selective oncolytic adenoviruses: virotherapy aimed at genetic targets ¡n cáncer. Oncogene. 2000; 19: 6660-6669.
44 Ring CJ. Cytolytic viruses as potential anti-cancer agents. J Gen Virol. 2002; 83: 491-502.
45 Dobner T, Horikoshi N, Rubenwolf S, Shenk T. Blockage by adenovirus E4orf6 of transcriptional activation by the p53 tumor suppressor. Science. 1996; 272: 1470-1473.
46 Schaley J et al. Induction of the cellular E2F-1 promoter by the adenovirus E4-6/7 protein. J Virol. 2000; 74: 2084-2093.
47 Wickham TJ. Targeting adenovirus. Gene Ther. 2000; 7: 110-114 the above report in.
48 Wickham TJ et al. Increased ¡n vitro and in vivo gene transfer by adenovirus vectors containing chimeric fiber proteins. J Virol. 1997; 71 : 8221-8229. Wickham TJ, Roelvink PW, Brough DE, Kovesdi I. Adenovirus targeted to heparan-containing receptors increases its gene delivery efficiency to múltiple cell types. Nat Biotechnol. 1996; 14: 1570-1573. Wickham TJ, Carrion ME, Kovesdi I. Targeting of adenovirus penton base to new receptors through replacement of its RGD motif with other receptor- specific peptide motifs. Gene Ther. 1995; 2: 750-756. Suzuki K et al. A conditionally replicative adenovirus with enhanced infectivity shows improved oncolytic potency. Clin Cáncer Res. 2001 ; 7: 120-126. Kasono K et al. Selective gene delivery to head and neck cáncer cells via an integrin targeted adenoviral vector. Clin Cáncer Res. 1999; 5: 2571- 2579. Hemminki A et al. Targeting oncolytic adenoviral agents to the epidermal growth factor pathway with a secretory fusión molecule. Cáncer Res. 2001 ; 61 : 6377-6381. Gu DL et al. Fibroblast growth factor 2 retargeted adenovirus has redirected cellular tropism: evidence for reduced toxicity and enhanced antitumor activity in mice. Cáncer Res. 1999; 59: 2608-2614. Haisma HJ et al. Targeting of adenoviral vectors through a bispecific single- chain antibody. Cáncer Gene Ther. 2000; 7: 901-904. Curiel DT. Strategies to adapt adenoviral vectors for targeted delivery. Ann N YAcad Sci. 1999; 886: 158-171. Croyle MA, Yu QC, Wilson JM. Development of a rapid method for the PEGylation of adenoviruses with enhanced transduction and ¡mproved stability under harsh storage conditions. Hum Gene Ther. 2000; 11 : 1713-
1722. Croyle MA1 Chirmule N, Zhang Y, Wilson JM. "Stealth" adenoviruses blunt cell-mediated and humoral immune responses against the virus and allow for significant gene expression upon readministration in the lung. J Virol. 2001 ; 75: 4792-4801. 59 Alemany R, Suzuki K, Curiel DT. Blood clearance rates of adenovirus type 5 in mice. J Gen Virol. 2000; 81 Pt 11 : 2605-2609.
60 O'Riordan C et al. PEGylation of adenovirus with retention of infectivity and protection from neutralizing antibody in vitro and in vivo. Hum Gene Ther. 1999; 10: 1349-1358.
61 Croyle MA, Cheng X, Wilson JM. Development of formulations that enhance physical stability of viral vectors for gene therapy. Gene Ther. 2001 ; 8: 1281-1290.
62 Croyle MA, Cheng X, Sandhu A, Wilson JM. Development of novel formulations that enhance adenoviral-mediated gene expression in the lung in vitro and in vivo. Mol Ther. 2001 ; 4: 22-28.
63 Ganly I et al. A phase I study of Onyx-015, an E1 B attenuated adenovirus, administered intratumorally to patients with recurrent head and neck cáncer. Clin Cáncer Res. 2000; 6: 798-806. 64 Heise C et al. ONYX-015, an E1B gene-attenuated adenovirus, causes tumor-specific cytolysis and antitumoral efficacy that can be augmented by standard chemotherapeutic agents. Nat Med. 1997; 3: 639-645.
65 Heise CC, Williams A, Olesch J, Kim DH. Efficacy of a replication- competent adenovirus (ONYX-015) following ¡ntratumoral ¡njection: intratumoral spread and distribution effects. Cáncer Gene Ther. 1999; 6:
499-504.
66 Heise CC et al. Intravenous administration of ONYX-015, a selectively replicating adenovirus, induces antitumoral efficacy. Cáncer Res. 1999; 59: 2623-2628. 67 Khuri FR et al. A controlled trial of intratumoral ONYX-015, a selectively- replicating adenovirus, in combination with cisplatin and 5-fluorouracil in patients with recurrent head and neck cáncer. Nat Med. 2000; 6: 879-885.
68 Simons J, Henderson D. A phase I study of the intraprostatic injections of
CN706, a prostate-specific antigen gene-regulated cytolytic adenovirus in patients with locally recurrent cáncer following definitive radiotherapy. Human Gene Therapy Protocol 99802-236. National Institutes of Health. Recombinant DNA Advisory Committee. 1998. Dmitriev I et al. An adenovirus vector with genetically modified fibers demonstrates expanded tropism via utilization of a coxsackievirus and adenovirus receptor-independent cell entry mechanism. J Virol. 1998; 72:
9706-9713. Suzuki K et al. A conditionally replicative adenovirus with enhanced infectivity shows improved oncolytlc potency. Clin Cáncer Res. 2001 ; 7: 120-126.

Claims

REIVINDICACIONES
1. Adenovirus oncolítico para el tratamiento del cáncer caracterizado porque contiene una secuencia de DNA humano aislando a un promotor que confiere expresión selectiva a un gen adenoviral.
2. Adenovirus oncolítico según Ia reivindicación 1 , caracterizado porque Ia secuencia de DNA humano es una secuencia derivada del locus de Ia distrofia miotónica.
3. Adenovirus oncolítico según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 2, caracterizado porque dicho adenovirus contiene una secuencia de kozak que optimiza Ia traducción proteica de un gen adenoviral regulado por un promotor que confiere selectividad tumoral.
4. Adenovirus oncolítico según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, caracterizado porque contiene mutaciones en uno o más genes del grupo E1a, E1b y E4 para conseguir replicación selectiva en tumores.
5. Adenovirus oncolítico según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, caracterizado porque contiene modificaciones en su cápsida para aumentar su infectividad o dirigirlo a un receptor presente en una célula tumoral.
6. Adenovirus oncolítico según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, caracterizado porque contiene otros genes usados comúnmente en el campo de terapia génica del cáncer como activadores de prodrogas, supresores tumorales o inmunoestimuladores.
7. Adenovirus oncolítico según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, caracterizado porque el adenovirus es un adenovirus humano derivado de un serotipo entre el 1 al 50.
8. Adenovirus oncolítico según Ia reivindicación 7, caracterizado porque el adenovirus es un adenovirus humano del serotipo 5.
9. Adenovirus oncolítico según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, caracterizado porque el promotor que confiere selectividad tumoral es el promotor del gen E2F1 humano.
10. Adenovirus oncolítico según Ia reivindicación 9, caracterizado porque el promotor que confiere selectividad tumoral es un promotor E2F1 modificado por Ia inserción de sitios adicionales de unión a E2F.
11. Composición farmacéutica que comprende una cantidad efectiva de un adenovirus oncolítico según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10 y uno o más portadores o excipientes farmacéuticamente aceptables.
12. Uso de un adenovirus oncolítico según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10 para Ia preparación de un medicamento para el tratamiento o prevención del cáncer o de una condición pre-maligna del mismo.
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Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2010097419A1 (en) 2009-02-25 2010-09-02 Fundació Privada Centre De Regulació Genòmica (Crg) Conditionally replicating adenovirus effective in the treatment of tumors
WO2010108931A1 (en) 2009-03-24 2010-09-30 Fundació Privada Institut D'investigació Biomèdica De Bellvitge (Idibell) Combination of an oncolytic adenovirus and a calcium channel blocker and its use for the treatment of cancer
JP2010538652A (ja) * 2007-09-13 2010-12-16 アボット・ラボラトリーズ B型肝炎プレs2核酸
WO2020047345A1 (en) 2018-08-31 2020-03-05 Yale University Compositions and methods of using cell-penetrating antibodies in combination with immune checkpoint modulators
WO2021024207A1 (en) 2019-08-05 2021-02-11 Mesoblast International Sarl Cellular compositions comprising viral vectors and methods of treatment
WO2022034506A1 (en) 2020-08-10 2022-02-17 Mesoblast International Sárl Cellular compositions and methods of treatment
WO2024081736A2 (en) 2022-10-11 2024-04-18 Yale University Compositions and methods of using cell-penetrating antibodies

Families Citing this family (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20040175362A1 (en) * 1999-05-12 2004-09-09 Curiel David T. Infectivity-enhanced conditionally-replicative adenovirus and uses thereof
ES2304281B1 (es) * 2006-02-01 2009-08-12 Dnatrix Inc. Adenovirus oncoliticos para el tratamiento del cancer.
FI123955B (en) 2011-11-25 2014-01-15 Oncos Therapeutics Ltd Oncolytic adenovirus
CA2903582C (en) 2013-03-14 2021-06-08 Salk Institute For Biological Studies Oncolytic adenovirus compositions
DK3021859T3 (en) 2013-10-25 2018-03-05 Psioxus Therapeutics Ltd ONCOLYTIC ADENOVIRA EQUIPPED WITH HETEROLOGICAL GENES
CA2931322A1 (en) * 2013-11-22 2015-05-28 Dnatrix, Inc. Adenovirus expressing immune cell stimulatory receptor agonist(s)
MX2017013684A (es) 2015-04-30 2018-08-28 Psioxus Therapeutics Ltd Adenovirus oncolitico que codifica una proteina b7.
KR102106619B1 (ko) * 2015-10-12 2020-05-06 진메디신 주식회사 유전자 전달 및 유전자 치료를 위한 아데노바이러스 복합체
JP7064437B2 (ja) 2015-12-17 2022-05-10 サイオクサス セラピューティクス リミテッド 抗tcr複合体抗体又は断片をコードするb群アデノウイルス
JP7054527B2 (ja) 2016-02-23 2022-04-14 ソーク インスティテュート フォー バイオロジカル スタディーズ アデノウイルスの複製動態を測定するための高スループットアッセイ
EP4155411A1 (en) 2016-02-23 2023-03-29 Salk Institute for Biological Studies Exogenous gene expression in therapeutic adenovirus for minimal impact on viral kinetics
GB201713765D0 (en) 2017-08-28 2017-10-11 Psioxus Therapeutics Ltd Modified adenovirus
WO2018041827A1 (en) 2016-08-29 2018-03-08 Psioxus Therapeutics Limited Adenovirus armed with bispecific t cell engager (bite)
EP3293201B1 (en) * 2016-09-12 2020-11-04 Targovax Oy Combining adenovirus and checkpoint inhibitors for treating cancer
WO2018111767A1 (en) 2016-12-12 2018-06-21 Salk Institute For Biological Studies Tumor-targeting synthetic adenoviruses and uses thereof
CN110684743A (zh) * 2019-07-16 2020-01-14 伍泽堂 特异性杀伤肿瘤细胞的病毒和肿瘤治疗药物

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20030104624A1 (en) * 2001-02-23 2003-06-05 Lori Clarke Novel vector constructs
WO2003070958A1 (en) * 2002-02-19 2003-08-28 The Hospital For Sick Children Retroviral gene therapy vectors including insulator elements to provide high levels of gene expression

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU4147200A (en) * 1999-12-31 2001-07-16 Chong Kun Dang Pharmaceutical Corp. Cancer cell-specific gene expression system
US6936450B2 (en) * 2000-04-12 2005-08-30 Compugen Ltd. Variants of protein kinases
US20060147420A1 (en) * 2004-03-10 2006-07-06 Juan Fueyo Oncolytic adenovirus armed with therapeutic genes
JP2005538697A (ja) * 2002-04-19 2005-12-22 シエーリング アクチエンゲゼルシャフト 新規前立腺腫瘍特異的プロモーター
ES2304281B1 (es) * 2006-02-01 2009-08-12 Dnatrix Inc. Adenovirus oncoliticos para el tratamiento del cancer.
WO2007103825A2 (en) * 2006-03-02 2007-09-13 The Board Of Regents Of The University Of Texas System Combination therapy with oncolytic adenovirus
AR053246A1 (es) * 2006-04-28 2007-04-25 Fundacion Inst Leloir Un fragmento aislado de adn del promotor humano de sparc y su uso para dirigir la expresion de un gen heterologo en celulas tumorales
AR053600A1 (es) * 2006-04-28 2007-05-09 Fundacion Inst Leloir Un fragmento aislado de adn del promotor humano de a33 y su uso para dirigir la expresion de un gen heterologo en celulas tumorales

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20030104624A1 (en) * 2001-02-23 2003-06-05 Lori Clarke Novel vector constructs
WO2003070958A1 (en) * 2002-02-19 2003-08-28 The Hospital For Sick Children Retroviral gene therapy vectors including insulator elements to provide high levels of gene expression

Non-Patent Citations (74)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ALEMANY R ET AL.: "Complementary adenoviral vectors for oncolysis", CANCER GENE THER., vol. 6, 1999, pages 21 - 25
ALEMANY R; BALAGUE C; CURIEL DT.: "Replicative adenoviruses for cancer therapy", NAT BIOTECHNOL., vol. 18, 2000, pages 723 - 727
ALEMANY R; SUZUKI K; GURLEL DT.: "Blood clearance rates of adenovirus type 5 in mice", J GEN VIROL., vol. 81, no. 11, 2000, pages 2605 - 2609
ALEMANY R; ZHANG W.: "Oncolytic adenoviral vectors", 1999, HUMANA PRESS
BRUNORI M ET AL.: "Replicating adenoviruses that target tumors with constitutive activation of the wnt signaling pathway", J VIROL., vol. 75, 2001, pages 2857 - 2865
BUVOLI M ET AL.: "Potential limitations of transcription terminators used as transgene insulators in adenoviral vectors", GENE 7HER., vol. 9, 2002, pages 227 - 231
CHARMER C ET AL.: "Efficient generation of recombinant adenovirus vectors by homologous recombination in Escherichia coll", J VIROL., vol. 70, 1996, pages 4805 - 4810
CROYLE MA ET AL.: ""Stealth" adenoviruses blunt cell-mediated and humoral immune responses against the virus and allow for significant gene expression upon readministration in the lung", J VIROL., vol. 75, 2001, pages 4792 - 4801
CROYLE MA ET AL.: "Development of novel formulations that enhance adenoviral-mediated gene expression in the lung in vitro and in vivo", MOL THER., vol. 4, 2001, pages 22 - 28
CROYLE MA; CHENG X; WILSON JM.: "Development of formulations that enhance physical stability of viral vectors for gene therapy", GENE THER., vol. 8, 2001, pages 1281 - 1290
CROYLE MA; YU QC; WILSON JM.: "Development of a rapid method for the PEGylation of adenoviruses with enhanced transduction and improved stability under harsh storage conditions", HUM GENE THER., vol. 11, 2000, pages 1713 - 1722
CURIEL DT.: "Strategies to adapt adenoviral vectors for targeted delivery", ANN N Y ACAD SCI., vol. 886, 1999, pages 158 - 171
DAVIS AR ET AL.: "Construction of adenoviral vectors", MOL BIOTECHNOL., vol. 18, 2001, pages 63 - 70
DE PACE N.: "Sulta scomparsa di un enorme cranco vegetante del collo dell'utero senza cura chirurgica", GINECOLOGIA., vol. 9, 1912, pages 82 - 89
DMITRIAV I ET AL.: "An adenovirus vector with genetically modified fibers demonstrates expanded tropism via utilization of a coxsackievirus and adenovirus receptor-independent cell entry mechanism", J VIROL., vol. 72, 1998, pages 9706 - 9713
DOBNER T ET AL.: "Blockage by adenovirus E4orf6 of transcriptional activation by the p53 tumor suppressor", SCIENOE., vol. 272, 1996, pages 1470 - 1473
DORONIN K ET AL.: "Tissue-specific, tumor-selective, replication-competent adenovirus vector for cancer gene therapy", J VIROL., vol. 75, 2001, pages 3314 - 3324
DUPRESSOIR T: "Inhibition by parvovirus H-1 of the formation of tumors in 30 nude mice and colonies In vitro by transformed human mammary epithelial cells", CANCER RES., vol. 49, 1989, pages 3203 - 3208
DYSON N.: "The regulation of E2F by pRB-family proteins", GENES DEV., vol. 12, 1998, pages 2245 - 2262
FILIPPOVA G.N. ET AL.: "CTCF-binding sites flank CTG/CAG repeats and form a methylation-sensitive insulator at the DM1 locus", NAT. GENET., vol. 28, August 2001 (2001-08-01), pages 335 - 343, XP003016280 *
FILIPPOVA GN ET AL.: "CTCF-binding sites flank CTGICAG repeats and form a mothylation-sonsitive insulator at the DM1 locus", NAT GENET., vol. 28, 2001, pages 335 - 343
FUEYO J ET AL.: "A mutant oncolytic adenovirus targeting the Rb pathway produces anti-glioma effect in vivo", ONCOGENE, vol. 19, 2000, pages 2 - 12
GANLY I ET AL.: "A phase study of Onyx-015, an E1B attenuated adenovirus, administered intratumoraily to patients with recurrent head and neck cancer", CLIN CANCER RES., vol. 6, 2000, pages 798 - 806
GRAHAM FL; PREVEC L.: "Manipulation of adenoviral vectors", 1991, HUMANA PRESS
GU DL ET AL.: "Fibroblast growth factor 2 retargeted adenovirus has redirected cellular tropism: evidence for reduced toxicity and enhanced antitumor activity in mice", CANCER RES., vol. 59, 1999, pages 2608 - 2614
HAISMA HJ ET AL.: "Targeting of adenoviral vectors through a bispecific single- chain antibody", CANCER GENE THER., vol. 7, 2000, pages 901 - 904
HALLENBECK PL ET AL.: "A novel tumor-specific replication-restricted adenoviral vector for gene therapy of hepatocellular carcinoma", HUM GENE THER., vol. 10, 1999, pages 1721 - 1733
HE TC ET AL.: "A simplified system for generating recombinant adenoviruses", PROC NATL ACAD SCI U S A., vol. 95, 1998, pages 2509 - 2514
HEARING P; SHENK T.: "The adenovirus type 5 E1A enhancer contains two functionally distinct domains: one is specific for E1A and the other modulates all early units in cis", CELL, vol. 45, 1986, pages 229 - 236
HEISE C ET AL.: "An adenovirus E1A mutant that demonstrates potent and selective systemic anti-tumoral efficacy", NAT MOD., vol. 6, 2000, pages 1134 - 1139
HEISE C ET AL.: "ONYX-015, an E1B gene-attenuated adenovirus, causes tumor-specific cytolysis and antitumoral efficacy that can be augmented by standard chemotherapeutic agents", NAT MOD., vol. 3, 1997, pages 639 - 645
HEISE CC ET AL.: "Efficacy of a replication-competent adenovirus (ONYX-015) following intratumoral injection: intratumoral spread and distribution effects", CANCER GENE THER., vol. 6, 1999, pages 499 - 504
HEISE CC ET AL.: "Intravenous administration of ONYX-015, a selectively replicating adenovirus, induces antitumoral efficacy", CANCER RES., vol. 59, 1999, pages 2623 - 2628
HEMMINKI A ET AL.: "Targeting oncolytic adenoviral agents to the epidermal growth factor pathway with a secretory fusion molecule", CANCER RES., vol. 61, 2001, pages 6377 - 6381
JAKUBCZAK JL ET AL.: "An oncolytic adenovirus selective for retinoblastoma tumor suppressor protein pathway-defective tumors: dependence on E1A, the E2F-1 promoter, and viral replication for selectivity and efficacy", CANCER RES., vol. 63, 2003, pages 1490 - 1499
JOHNSON L ET AL.: "Selectively replicating adenoviruses targeting deregulated E2F activity are potent, systemic antitumor agents", CANCER CELL, vol. 1, 2002, pages 325 - 337
KASONO K ET AL.: "Selective gene delivery to head and neck cancer cells via an integrin targeted adenoviral vector", CLIN CANCER RES., vol. 5, 1999, pages 2571 - 2579
KHUD FR ET AL.: "A controlled trial of intratumoral ONYX-015, a selectively- replicating adenovirus, in combination with cisplatin and 5-fluorouracil in patients with recurrent head and neck cancer", NAT MED., vol. 6, 2000, pages 879 - 885
KIM D.: "Replication-selective oncolytic adenoviruses: virotherapy aimed at genetic targets in cancer", ONCOGENE, vol. 19, 2000, pages 6660 - 6669
KIRN DH; MCCORMICK F.: "Replicating viruses as selective cancer therapeutics", MOI MED TODAY., vol. 2, 1996, pages 519 - 527
KOZAK M.: "Point mutations define a sequence flanking the AUG initiator codon that modulates translation by eukaryotic ribosomes", CELL, vol. 44, 1986, pages 283 - 292
KURIHARA T ET AL.: "Selectivity of a replication-competent adenovirus for human breast carcinoma cells expressing the MUC1 antigen", J CLIN INVEST., vol. 106, 2000, pages 763 - 771
MAJEM M. ET AL.: "Control of E1A under an E2F-1 promoter insulated with the myotonic dystrophy locus insulator reduces the toxicity of oncolytic adenovirus Ad-delta24RGD", CANCER GENE THER., vol. 13, 24 February 2006 (2006-02-24), pages 696 - 705, XP003016279 *
MARKERT JM ET AL.: "Conditionally replicating herpes simplex virus mutant, G207 for the treatment of malignant glioma: results of a phase I trial", GENE THER., vol. 7, 2000, pages 867 - 874
MARTIN-DUQUE P ET AL.: "Direct comparison of the insulating properties of two genetic elements in an adenoviral vector containing two different expression cassettes", HUM GENE THER., vol. 15, 2004, pages 995 - 1002
MATSUBARA S ET AL.: "A conditional replication-competent adenoviral vector, Ad-OC-E1a, to cotarget prostate cancer and bone stroma in an experimental model of androgen-independent prostate cancer bone metastasis", CANCER RES., vol. 61, 2001, pages 6012 - 6019
MITTEREDER N; MARCH KL; TRAPNELL BC.: "Evaluation of the concentration and bioactivity of adenovirus vectors for gene therapy", J VIROL., vol. 70, 1996, pages 7498 - 7509
NEUMAN E ET AL.: "Transcription of the E2F-1 gene is rendered cell cycle dependent by E2F DNA-binding sites within its promoter", MOL CELL BIOL., vol. 15, 1995, pages 4660
NORMAN KL; LEE PW.: "Reovirus as a novel oncolytic agent", J CLIN INVAST., vol. 105, 2000, pages 1035 - 1038
O'CARROLL SJ ET AL.: "Quantifying adenoviral titers by spectrophotometry", BIOTECHNIQUES, vol. 28, 2000, pages 408 - 410
O'RIORDAN C ET AL.: "PEGylation of adenovirus with retention of infectivity and protection from neutralizing antibody in vitro and in vivo", HUM GENE THER., vol. 0, 1999, pages 1349 - 1358
RING CJ ET AL.: "Suicide gene expression induced in tumour cells transduced with recombinant adenoviral, retroviral and plasmid vectors containing the ERBB2 promoter", GENE, vol. 3, 1996, pages 1094 - 1103
RING CJ.: "Cytolytic viruses as potential anti-cancer agents", J GEN VIROL., vol. 83, 2002, pages 491 - 502
RODRIGUEZ R ET AL.: "Prostate attenuated replication competent adenovirus (ARCA) CN706: a selective cytotoxic for prostate-specific antigen-positive prostate cancer cells", CANCER RES., vol. 57, 1997, pages 2559 - 2563
RYAN PC ET AL.: "Antitumor efficacy and tumor-selective replication with a single intravenous injection of OAS403, an oncolytic adenovirus dependent on two prevalent alterations in human cancer", CANCER GENE THER., vol. 11, 2004, pages 555 - 569
SCHALEY J ET AL.: "Induction of the cellular E2F-1 promoter by the adenovirus E4-6/7 protein", J VIROL., vol. 74, 2000, pages 2084 - 2093
See also references of EP1990418A4
SHENK T.: "Adenoviridae: The Viruses and Their Replication", 1996, LIPPINCOTT-RAVEN PUBLISHERS
SHI Q; WANG Y; WORTON R.: "Modulation of the spscificity and activity of a cellular promoter in an adenoviral vector", HUM GENE THER., vol. 8, 1997, pages 403 - 410
SIMONS J; HENDERSON D.: "Human Gene Therapy Protocol", 1998, NATIONAL INSTITUTES OF HEALTH. RECOMBINANT DNA ADVISORY COMMITTEE, article "A phase study of the intraprostatic injections of CN706, a prostate-specific antigen gene-regulated cytolytic adenovirus in patients with locally recurrent cancer following definitive radiotherapy", pages: 99802 - 236
SINKOVICS J; HORVATH J.: "New developments in the virus therapy of cancer a historical review", INTEIVIROLOGY., vol. 36, 1993, pages 193 - 214
STEINWAERDER DS; LIEBER A.: "Insulation from viral transcriptional regulatory elements improves inducible transgene expression from adenovirus vectors in vitro and in vivo", GENE THER., vol. 7, 2000, pages 556 - 567
STOJDL DF ET AL.: "Exploiting tumor-specific defects in the interferon pathway with a previously unknown oncolytic virus", NAT MED., vol. 6, 2000, pages 821 - 825
SUZUKI K ET AL.: "A conditionally replicative adenovirus with enhanced infectivity shows improved oncolytic potency", CLIN CANCER RES, vol. 7, 2001, pages 120 - 126
SUZUKI K ET AL.: "A conditionally replicative adenovirus with enhanced infectivity shows improved oncolytic potency", CLIN CANCER RES., vol. 7, 2001, pages 120 - 126
TSUKUDA K ET AL.: "An E2F-responsive replication-selective adenovirus targeted to the defective cell cycle in cancer cells potent antitumoral efficacy but no toxicity to normal cell", CANCER RES., vol. 62, 2002, pages 3438 - 3447
WEST AG; GASZNER M; FELSENFELD G.: "Insulators: many functions, many mechanisms", GENES DEV., vol. 16, 2002, pages 271 - 288
WICKHAM TJ ET AL.: "Adenovirus targeted to heparan-containing receptors increases its gene delivery efficiency to multiple cell types", NAT BIOTECHNOL., vol. 1, no. 4, 1996, pages 1570 - 1573
WICKHAM TJ ET AL.: "Increased in vitro and in vivo gene transfer by adenovirus vectors containing chimeric fiber proteins", J VIROL., vol. 71, 1997, pages 8221 - 8229
WICKHAM TJ.: "Targeting adenovirus", GENE THER., vol. 7, 2000, pages 110 - 114
WICKHAM TJ; CARRION ME; KOVESDI 1.: "Targeting of adenovirus penton base to new receptors through replacement of its RGD motif with other receptor- specific peptide motifs", GENE THER., vol. 2, 1995, pages 750 - 756
WORKING PK; UN A; BORELLINI F.: "Meeting product development challenges in manufacturing clinical grade oncolytic adenoviruses", ONCOGENE, vol. 24, 2005, pages 7792 - 7801
YAMAMOTO M ET AL.: "Transcription initiation activity of adenovirus left-end sequence in adenovirus vectors with e1 deleted", J VIROL., vol. 77, 2003, pages 1633 - 1637
YE X. ET AL.: "Insulation from viral transcriptional regulatory elements enables improvement to hepatoma-specific gene expression from adenovirus vectors", BIOCHIM. BIOPHYS. RES. COM., vol. 307, 2003, pages 759 - 764, XP004439199 *

Cited By (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010538652A (ja) * 2007-09-13 2010-12-16 アボット・ラボラトリーズ B型肝炎プレs2核酸
WO2010097419A1 (en) 2009-02-25 2010-09-02 Fundació Privada Centre De Regulació Genòmica (Crg) Conditionally replicating adenovirus effective in the treatment of tumors
WO2010108931A1 (en) 2009-03-24 2010-09-30 Fundació Privada Institut D'investigació Biomèdica De Bellvitge (Idibell) Combination of an oncolytic adenovirus and a calcium channel blocker and its use for the treatment of cancer
ES2355882A1 (es) * 2009-03-24 2011-04-01 Institut Catala D`Oncologia (50%) Combinación de adenovirus oncolítico y un bloqueador de canal de calcio y su uso para el tratamiento del cáncer.
WO2020047345A1 (en) 2018-08-31 2020-03-05 Yale University Compositions and methods of using cell-penetrating antibodies in combination with immune checkpoint modulators
WO2021024207A1 (en) 2019-08-05 2021-02-11 Mesoblast International Sarl Cellular compositions comprising viral vectors and methods of treatment
WO2022034506A1 (en) 2020-08-10 2022-02-17 Mesoblast International Sárl Cellular compositions and methods of treatment
WO2024081736A2 (en) 2022-10-11 2024-04-18 Yale University Compositions and methods of using cell-penetrating antibodies

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EP1990418A1 (en) 2008-11-12
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US20090311219A1 (en) 2009-12-17
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