WO2006046674A1 - C型肝炎ウイルス感染症の予防および治療剤 - Google Patents

C型肝炎ウイルス感染症の予防および治療剤 Download PDF

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hepatitis
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virus infection
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Tatsuya Ito
Masahiro Aoki
Masayuki Sudoh
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Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha
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Definitions

  • the present invention relates to a pharmaceutical composition for preventing and treating hepatitis C virus infection.
  • HCV hepatitis C virus
  • Hepatitis C virus is a single-stranded RNA virus, which is a particle having a diameter of 55 to 65 nm composed of a core protein, an envelope protein and RNA. These particles adsorb to and invade human hepatocytes, and then unshell and release RNA.
  • the virus and its gene RNA replicas are synthesized by the virus's own RNA-dependent RNA polymerase. Based on mRNA information, virus structure protein, protease, helicopterase, RNA polymerase, etc. are made, virus particles are formed, reach the cell membrane through the Golgi apparatus, and are released outside the liver cell, and the virus grows I will do it.
  • HCV avoids the host's immune mechanism for reasons that are still unclear, so persistent infection is often established even when infected with an adult with an immune mechanism. Persistent infection progresses to chronic hepatitis, flicker cirrhosis, and liver cancer, and it is known that many patients with liver cancer recur due to inflammation that continues to occur in non-cancerous areas even after surgery.
  • interferon treatment is known as the only effective treatment for eliminating HCV.
  • about 1 Z 3 of all patients are effective for interferon treatment.
  • the response rate of interferon against HCV genotype 1b is very low.
  • Hepatitis C is also treated with a combination of interferon and ribavirin. However, the effectiveness rate is still low.
  • An object of the present invention is to provide a compound effective for preventing and treating hepatitis C virus infection and a pharmaceutical composition containing this compound. Disclosure of the invention
  • the present invention provides a pharmaceutical composition for preventing or treating hepatitis C virus infection, comprising an extract of a plant belonging to the genus Himehagi as an active ingredient.
  • hepatitis C virus infection refers to a disease associated with infection with hepatitis C virus, and examples include hepatitis C, cirrhosis, liver fibrosis and liver cancer.
  • Prevention and treatment of hepatitis C virus infection includes reducing or eliminating the symptoms of these diseases, inhibiting the growth of hepatitis C virus in infected patients, reducing the activity of the virus, and virus This includes annihilating or reducing.
  • plants of the genus Himehagi are plants belonging to the genus Polygala of the family Polygalaceae, and some of them are conventionally known as herbal medicines.
  • a typical example is Onji (Polygala Tenuifolia Willdenow's Root) and senega (the root of Polygala senega Linne).
  • extract refers to a substance obtained by extracting a plant belonging to the genus Himehagi, such as its stem, root, and leaves, with an appropriate solvent, and concentrating and drying as necessary. It may be a mixture of a plurality of compounds.
  • the extract of the plant of the genus Hygiensis is savonine.
  • Saponins are glycosides in which oligosaccharides are bound to steroids and triterpenoids, and are widely distributed in the plant kingdom.
  • a preferred saponin in the present invention is ondisaponin or polygalasaponin.
  • the present invention provides Ondisaponin B, Polygalasaponin
  • a pharmaceutical composition for preventing or treating hepatitis C virus infection comprising as an active ingredient a compound selected from the group consisting of XLIV, polygalasaponin XXXII and ondisaponin F.
  • the present invention provides the following formula (I):
  • R 2 and R 3 are each independently a sugar, sugar chain or hydrogen
  • R 4 , R 5 and R 6 are each independently 1 H, 1 OH or —OR 7 , wherein R 7 is a C i — 6 linear or branched alkyl group]
  • a pharmaceutical composition for preventing or treating hepatitis C virus infection is provided.
  • it is a linear or branched alkyl group of RC ⁇ s.
  • sugar means a monosaccharide, for example, glucose, galactose, fruct! , Xylose, arabinose, rhamnose, apiose, fucose and the like.
  • these monosaccharides are bound as a shaku 2 ! ⁇ 3 , that is, as a residue, the position where the bond is present depends on the type of sugar such as 5 monosaccharide or 6 monosaccharide.
  • the sugar chain means a component in which a plurality of monosaccharides, preferably 2 to 10 monosaccharides, more preferably 2 to 4 monosaccharides are bonded to each other by glycosidic bonds.
  • the pharmaceutically acceptable salt is not particularly limited as long as it is pharmacologically acceptable.
  • examples thereof include salts of alkali metals such as sodium, potassium and calcium or alkaline earth metals, and various kinds of ammonia. Mention may be made of salts such as organic bases.
  • the compound of formula (I) has the formula:
  • the present invention provides a method for preventing or treating hepatitis C virus infection, comprising administering an extract of a plant of the genus Himehagi to a patient infected with hepatitis C virus.
  • Figure 1 shows the anti-HCV replicon activity and cytotoxicity of Onji LC-UV-MS chromatograms and micro-preparative fractions.
  • Figure 2 shows the LC-UV-MS chromatogram of Senega and the anti-HCV rebricon activity and cytotoxicity of the preparative fraction.
  • FIG. 3 shows the structures of polygalasaponin XXXII and ondisaponin F.
  • FIG. 4 shows the 1H-NMR (500 MHz) spectrum of Fr. 4 (Ondisaponin F).
  • Figure 5 shows the anti-HCV replicon activity and cytotoxicity of substances purified from Onji and ribavirin.
  • Figure 6 shows the measurement results of ondisaponin inhibition of HCV protein synthesis by Western plot analysis.
  • Figure 7 shows the antiviral effect of ondisaponin by Western blot analysis.
  • Fig. 8 shows the measurement results of inhibition of HCV RNA replication by ondisaponin by Northern blot analysis.
  • Figure 9 shows the antiviral effect of ondisaponin by Northern blot analysis.
  • Chem. Soc, 88, 1544- 1549, 1966) was found to have selective and strong anti-HCV activity.
  • Herbal medicine Onji and Senega are used as ingredients for expectorants, and the extract is known to have increased airway secretion and diuretic action.
  • Onji or Senega-derived preparations and extract components had anti-HCV activity or therapeutic effects on hepatitis.
  • Onzi and Senegal extracts were analyzed by LC / MS, and the amount of each peak component was measured simultaneously and analyzed.
  • a similar saponin peak group showed anti-HCV activity. Therefore, for Onji, the active substance was purified and isolated to clarify this component, and when its structure was identified, saponins containing Onsensaponin F and other presenegenins and cinnamic acid derivatives as aglycones were separated as active ingredients. I was able to. Ondisaponin F inhibited HCV replicon activity by 50% at 0.17 M, but showed no cytotoxicity at 6 x M. This activity disappeared by hydrolyzing saponin. Extraction method of active ingredients
  • the pharmaceutical composition of the present invention can be produced by extracting useful components from roots, stems, leaves, or seeds of the plant of the genus Himehagi.
  • Onji the root of Polygala Tenuifolia Willdenow
  • Senega the root of Senega
  • extraction solvent water, ethanol, methanol, acetone, propanol, bubutanol, methyl ethyl ketone, jetyl ether, or a mixture thereof can be used. Extraction may be performed while cooling or heating, or may be performed under pressure.
  • the obtained extract from roots, stems, leaves or seeds if necessary, removes insoluble components by filtration, and then removes the extraction solvent to obtain the extract of the present invention.
  • This extract may be pasteurized if necessary, and may be further concentrated and dried. Drying can be performed by conventional spray drying or freeze drying.
  • the extract can be stored at room temperature, refrigerated or frozen.
  • the crude extract thus separated can be subjected to a further purification step as necessary.
  • Purification can be performed by a method commonly used for separation and purification of physiologically active substances. For example, column chromatography using a carrier such as silica gel, chemically modified silica gel, activated alumina, activated carbon, or adsorbent resin. , High performance liquid chromatography, gel filtration and the like.
  • silica When the column chromatography method using a gel as a carrier is employed, examples of the elution solvent include black mouth form, ethyl acetate, methanol, water, etc., and these should be used in combination of two or more. Can do.
  • aqueous solutions of water-soluble organic solvents such as hydrous methanol and hydrous acetonitrile can be used as the elution solvent.
  • examples of the carrier include chemically modified silica gel bonded with octadecyl group, octyl group, phenyl group, etc .; polystyrene-based porous polymer gel, etc.
  • an aqueous solution of a water-soluble organic solvent such as hydrous methanol and hydrous acetonitrile can be used.
  • gel filtration carriers such as CEFADEX LH-20 and G-10 can be used, and methanol, water, hydrous methanol, etc. can be used as the mobile phase.
  • the anti-HCV activity of the pharmaceutical composition of the present invention can be measured using a levicon assembly.
  • Lebricon Atsey is an in vitro RNA replication system for hepatitis C virus (HCV), which predicts the ability of HCV to proliferate at the cellular level. Since HCV does not have an in vitro cell culture system, it has been necessary to use an alternative virus assembly method using other related viruses to evaluate anti-HCV drugs.
  • Lohmann et al. V. Lohmann et al, Science: 285, 110-113, 1999
  • the Brikon Atsey method has made it easier to evaluate anti-HCV drugs.
  • the original method is to detect the number of HCV RNA by polymerase chain reaction (PCR).
  • PCR polymerase chain reaction
  • a gene introduced with a luciferase gene derived from a foal can be used. Specifically, according to the method of Krieger et al. (N. Krieger et al., J. Virology: 75, 4614-24, 2001)
  • the luciferase gene is introduced in the form of fusing with the neomycin resistance gene directly under the Ribosome Entry Site (IRES).
  • IRES Ribosome Entry Site
  • the RNA is introduced into an appropriate cell by an elect mouth position method or the like to obtain a firefly luciferase HCV levicon cell. Place the cells in a well of a 96-well plate, add the diluted test substance, and incubate for several days. Then add the substrate and measure the luminescence with a plate reader.
  • the IC 50 (50% inhibition concentration) of the test substance can be calculated by subtracting the value with no cell added from all values and setting the value with no test substance added as 0% inhibition. Cytotoxicity test (WS "8)
  • the cytotoxicity of the pharmaceutical composition of the present invention can be measured, for example, using a commercially available Cell counting kit-8 (Dojindo cat. No. CK04). Place the above-mentioned foal le siferase HCV replicon cells in a well of a 96-well plate, add the diluted test substance, and incubate for several days. Add Cell counting kit-8 to each well and measure the absorbance.
  • the IC 50 (50% inhibitory concentration) of the test substance can be calculated by subtracting the value with no cell added as the background and subtracting it from all the values and setting the value with no test substance added as 0% inhibition.
  • Pharmaceutical formulation can be calculated by subtracting the value with no cell added as the background and subtracting it from all the values and setting the value with no test substance added as 0% inhibition.
  • the pharmaceutical composition of the present invention is useful for the prevention and Z or treatment of hepatitis C virus infection.
  • the pharmaceutical composition of the present invention can be formulated by methods known to those skilled in the art.
  • a pharmaceutically acceptable carrier or vehicle such as sterilized water or saline, vegetable oil, emulsifier, suspension, surfactant, stabilizer, flavoring agent, excipient, vehicle, Used in combination with preservatives, binders, etc. as appropriate for generally accepted pharmaceutical practice It can be formulated by mixing in the required unit dosage form.
  • tablets, pills, dragees, capsules, liquids by mixing the extract or compound of the present invention or a salt thereof with a pharmaceutically acceptable carrier well known in the art. It can be formulated as a gel, syrup, slurry, suspension, etc.
  • a pharmaceutically acceptable carrier well known in the art. It can be formulated as a gel, syrup, slurry, suspension, etc.
  • the carrier those conventionally known in the technical field can be widely used. For example, lactose, sucrose, sodium chloride, glucose, urea, starch, calcium carbonate, kaolin, crystalline cellulose, kaic acid, etc.
  • Agents Water, ethanol, propanol, simple syrup, glucose solution, starch solution, gelatin solution, strength binders such as llpoxymethylcellulose, shellac, methylcellulose, potassium phosphate, polyvinylpyrrolidone, dried starch, sodium alginate, agar Powder, laminaran powder, sodium hydrogen carbonate, calcium carbonate, polyoxyethylene sorbitan fatty acid ester, sodium lauryl sulfate, stearic acid monoglyceride, starch, lactose and other disintegrants; white sugar, stear cocoa butter, hydrogenated oil, etc.
  • strength binders such as llpoxymethylcellulose, shellac, methylcellulose, potassium phosphate, polyvinylpyrrolidone, dried starch, sodium alginate, agar Powder, laminaran powder, sodium hydrogen carbonate, calcium carbonate, polyoxyethylene sorbitan fatty acid ester, sodium lauryl sulfate, stearic acid monoglyceride
  • the tablets can be made into tablets with ordinary coatings, for example, sugar-coated tablets, gelatin-encapsulated tablets, enteric-coated tablets, film-coated tablets, double tablets or multilayer tablets as required.
  • the extract or compound of the present invention or a salt thereof can be formulated according to normal pharmaceutical practice using pharmaceutically acceptable vehicles well known in the art.
  • Water-soluble vehicles for injection include, for example, physiological saline, isotonic solutions containing glucose and other adjuvants such as D-sorbitol, D-mannose, D-mannitol, and sodium chloride salt. It may be used in combination with other solubilizing agents such as alcohols, specifically ethanol, polyalcohols such as propylene glycol, polyethylene dallicol, nonionic surfactants such as polysorbate 80 (TM) and HCO-50.
  • solubilizing agents such as alcohols, specifically ethanol, polyalcohols such as propylene glycol, polyethylene dallicol, nonionic surfactants such as polysorbate 80 (TM) and HCO-50.
  • Oily vehicles include sesame oil and soybean oil.
  • Benzoic acid as a solubilizer It may be used in combination with benzyl or benzyl alcohol.
  • a buffering agent such as phosphate buffer solution, sodium acetate buffer solution, soothing agent such as hydrochloric acid pro-in, stabilizer such as benzyl alcohol, phenol, or antioxidant may be added.
  • the prepared injection is usually filled in a suitable ampoule.
  • Suitable administration routes for the pharmaceutical composition of the present invention include, but are not limited to, oral, rectal, transmucosal, or enteral administration, or intramuscular, subcutaneous, intramedullary, intrathecal, direct intraventricular, intravenous Intravitreal, intraperitoneal, intranasal, or intraocular injection.
  • the administration route and administration method can be appropriately selected depending on the age and symptoms of the patient.
  • the dosage of the pharmaceutical composition of the present invention can be selected, for example, within the range of O.OOOlmg to lOOOmg per lkg body weight. Alternatively, for example, the dose can be selected in the range of 0.001 to: LOOOOOmg / body per patient, but is not necessarily limited to these values.
  • the dose and administration method vary depending on the patient's weight, age, symptoms, etc., but can be appropriately selected by those skilled in the art.
  • the Luciferase gene was introduced in the form of fusing with the neomycin resistance gene directly under Site (IRES). After synthesizing the RNA in vitro, it was introduced into Huh7 cells by the electrovolonce method and isolated as a G418 resistant clone. Firefly luciferase HCV revuricon cells (Huh7-3- 1) are suspended in Dulbecco's MEM (Gibco cat. No. 10569-010) containing 5% urine fetal serum (Hyclone cat. No. SH30071.03). the well plates were seeded at 5000 cells well and cultured overnight in 5% C0 2, 37. After about 20 hours, add 10 L of diluted compound per well and incubate for another 3 days.
  • Luminescence was measured with MicroBeta TRILUX (WALLAC).
  • the IC 50 (50% inhibitory concentration) of the drug was calculated by subtracting the value without addition of cells from all values as the background, and setting the value without drug addition as 0% inhibition.
  • Cytotoxicity test (WST-8): Cell counting kit-8 (Dojindo cat. No. CK04) was used to measure cytotoxicity. That is, 10 L of Cell counting kit '8 was added to the above-mentioned clear plate and incubated at 37 ° C for 30 to 60 minutes. Absorbance was measured with a 96-well plate reader at a wavelength of 450 nm and a control wavelength of 630 nm. The IC 50 (50% inhibitory concentration) of the drug was calculated by subtracting the value with no cell added from all values as the background, and the value without drug added as 0% inhibition.
  • LC / MS analysis Waryuzu 2790 was used for the liquid delivery module (pump and autosampler), 996 was used for the UV detector, and ZMD2000 was used for the MS detector.
  • Develosil Combi-RP5 C30, 4.6 mmID x 50 mm, 5 fim, Nomura Chemical
  • the solution was fed at 1.5 mL / min using a acetonitrile-water gradient containing 0.1% formic acid (acetonitrile ratio: 15-98%, 16 minutes).
  • Fraction collector FC-203 Fraction collector FC-203 (Gilson) was used for fractionation of trace fractions. One fraction was obtained every 0.4 minutes, for a total of 40 fractions.
  • Replicon (Rep) and cytotoxicity (WST) were measured for 500-fold and 4500-fold dilutions of each fraction, and the% inhibition was graphed.
  • the upper right panel of Fig. 1 shows the ESI-MS spectrum of the peak with a retention time of 7.82 minutes
  • the upper right panel of Fig. 2 shows the UV spectrum of the peak with a retention time of 7.92 minutes.
  • Onji and Senega showed similar chromatographic patterns, and the peaks were divided into peak groups with retention times of 3-4 minutes and 7-9 minutes, and anti-HCV revlikon activity was 7-9 minutes. Observed. In both Onji and Senega, these activities did not show cytotoxicity when diluted 500-fold (WST ⁇ ), but strong anti-HCV activity was observed even when diluted 4500-fold.
  • Preparative HPLC was performed under the following conditions.
  • the HPLC was controlled with a Gilson unipoint system using a Gilson 306 pump and Agilent Technologies 1100 PDA detector with a 215 liquid handler as the fraction collector.
  • Pegasil ODS (20 mmID X 250 mm, Senshu Issei) was used for the column.
  • Acetonitrile monohydrate gradient containing 0.01% TFA (trifluoroacetic acid) (acetonitrile ratio: 40-50%, 17 minutes) was sent at 15 mL / min, and the peak fraction was measured using UV 320 nm absorption as an indicator. I took it.
  • TFA trifluoroacetic acid
  • TFA trifluoroacetic acid
  • Mightysil ODS (20 mmID x 50mm, Kanto Kagaku
  • Example 2 Western analysis was performed by the following method. Onzisaponin F (Fr. 4) obtained in Example 2 was given to the replicon cell Huh-3-l in the range of ⁇ to ⁇ and cultured at 37: in the presence of 5% CO 2 . After 72 hours, discard the medium and PBS
  • RPN756 was used.
  • the electrophoresed protein was transferred to a membrane (ImmobiloirFL, Millipore cat. No. IPFL00010) using a mini-transplot cell (BIO-RAD cat. No. 170-3930).
  • Western analysis was performed using the HCV protein-derived anti-NS3 Usagi antibody (Nature chemical biology, 16 October 2005; doi: 10.1038 / nchembio742) as the primary antibody, following the protocol of Odyssey (Aloka).
  • An anti-actin rabbit antibody (Cell SignaUng Tbchnology cat. No. 7074) was used as an internal standard, and an anti-rabbit IgG (Alexa680: A21074) was used as a secondary antibody.
  • Ondisaponin F (Fr. 4) obtained in Example 2 was given to replicon cells Huh-3-l in the range of 12 nM to ⁇ , and 5% C0 2 was present. The cells were cultured at 37 ° C. After 72 hours, the cells were collected and total RNA was extracted, followed by Northern analysis using the neomycin resistance gene as a probe according to the method of Northern Max Kit of Ambion.
  • NorthernMax transfer buffer (Ambion cat. No. 8672), transfer membrane (odesse cat. No. 926-10000), filter paper
  • RNA was immobilized on the transfer membrane with a UV crosslinker.
  • Use a high prerotor for 42 and 30 minutes of rotation pretreatment with ULTRAhyb discard the pretreatment solution, add the pyotinylated neomycin resistance gene prepared by the above PCR method and 10 mL of ULTRAhyb solution, and shake overnight at 42. Finally processed.
  • the pharmaceutical composition of the present invention is useful for prevention and Z or treatment of hepatitis C virus infection such as hepatitis C, cirrhosis, liver fibrosis and liver cancer.

Abstract

ヒメハギ属の植物の抽出物を有効成分として含有する、C型肝炎ウイルス感染症を予防または治療するための医薬組成物が開示される。好ましくは、本発明の医薬組成物は、オンジ(Polygala Tenuifolia Willdenowの根部)の抽出物またはセネガ (Polygala senega Linneの根部)の抽出物を含む。好ましくは抽出物はサポニン、例えば、オンジサポニンまたはポリガラサポニンである。

Description

明細書
C型肝炎ウィルス感染症の予防および治療剤 技術分野
本発明は、 C型肝炎ウィルス感染症を予防および治療するための医薬組成物に 関する。 背景技術
C型肝炎ウィルス (HCV)の感染者は世界中で約 1一 2億人、 日本国内では 2 0 0万人以上と推測されている。 これらの感染者の約 5 0 %が慢性肝炎に移行し、 そのうち約 2 0 %が感染後 3 0年以上たつて肝硬変や肝癌を発症する。 肝癌の原 因の約 9 0 %は C型干炎であると言われている。 日本国内では、 毎年 2万人以上 の患者が H C V感染に伴う肝癌により死亡している。
C型肝炎ウィルスは、 1本鎖 RNAウィルスであり、 コア蛋白、 エンベロープ 蛋白および RNAで構成される直径 55〜65 nmの粒子である。 この粒子は、 ヒ トの肝細胞に吸着、 侵入したあと脱殻し、 RNAを放出する。 肝細胞内で、 ウイ ルス自身が持つ RNA依存性 RNAポリメラーゼによつて mRNAおよびウィル ス遺伝子 RNAの複製が合成される。 mRNAの情報によって、 ウィルスの構造 蛋白やプロテアーゼ、 ヘリ力一ゼ、 RNAポリメラーゼなどが作られ、 ウィルス 粒子が形成され、 ゴルジ装置を通って細胞膜に達し、 肝細胞外へ放出され、 ウイ ルスは増殖していく。
H C Vは、 いまだ明らかでない原因により宿主の免疫機構を回避するため、 免 疫機構の発達した成人に感染した場合でも持続感染が成立することが多い。 持続 感染は、 慢性肝炎、 fl干硬変、 肝癌へと進行し、 手術により摘出しても、 非癌部で 引き続き起こる炎症のため、 肝癌が再発する患者が多いことも知られている。 現在、 H C V排除の唯一の有効な治療法としてィンターフェ口ン治療が知られ ている。 しかし、 インターフェロン治療が有効な患者は、 全患者の 1 Z 3程度で ある。 特に、 H C Vゲノタイプ 1 bに対するインターフェロンの奏効率は非常に 低い。 また、 インターフェロンとリバビリンとの併用による C型肝炎の治療も行 われているが、 有効率は依然として低い。 また、 インターフェロンァゴニスト、 イン夕一ロイキン— 1 2ァゴニスト等、 患者の免疫力を増強させることによって ウィルスを排除する手段も試みられているが、 いまだ有効とされる薬剤は見いだ されていない。
したがって、 当該技術分野においては、 H C Vを排除し C型肝炎を治療する有 効な治療方法および治療薬の開発が求められている。
本発明に関連する先行技術文献情報としては以下のものがある: V. Lohmann et al, Science: 285, 110— 113, 1999; S. Sakuma and J. Shoji, Chem. Pharm. Bull: 29, 2431-2441, 1981; S. Sakuma and J. Shoji, Chem. Pharm. Bull: 30, 810-821, 1982; Y. Shimizu and S. W. Pelletier, J. Am. Chem. Soc, 88, 1544-
Figure imgf000004_0001
本発明は、 C型肝炎ウィルス感染症を予防および治療するのに有効な化合物な らびにこの化合物を含む医薬組成物を提供することを目的とする。 発明の開示
本発明者は、 広範な種類の植物および生薬について抗 H C V活性を調べた結果、 ヒメハギ属の植物のエタノール抽出物が強力な抗 H C V活性を有することを見い だした。 すなわち、 本発明は、 ヒメハギ属の植物の抽出物を有効成分として含有 する、 C型肝炎ウィルス感染症を予防または治療するための医薬組成物を提供す る。
本発明において、 「C型肝炎ウィルス感染症」 とは、 C型肝炎ウィルスの感染 に関連する疾患を表し、 例えば、 C型肝炎、 肝硬変、 肝繊維化および肝癌が挙げ られる。 C型肝炎ウィルス感染症の予防および治療には、 これらの疾患の症状を 軽減または排除すること、 感染患者中の C型肝炎ウィルスの増殖を阻害すること、 ウィルスの活性を低下させること、 およびウィルスを消滅もしくは減少させるこ とが含まれる。
本発明において、 「ヒメハギ属の植物」 とは、 ヒメハギ科 (Polygalaceae) の ヒメハギ属 (Polygala) に属する植物であり、 その一部は従来より生薬として知 られている。 代表的なものとしては、 オンジ (Polygala Tenuifolia Willdenowの 根部)およびセネガ(Polygala senega Linneの根部)が挙げられる。
「抽出物」 とは、 ヒメハギ属の植物、 例えばその茎、 根、 葉等を適当な溶媒で 抽出し、 必要に応じて濃縮 ·乾燥することにより得られる物質をいい、 単離され た化合物でもよく、 複数の化合物の混合物でもよい。
本発明の 1つの好ましい態様においては、 ヒメハギ属の植物の抽出物はサボ二 ンである。 サポニンは、 ステロイドやトリテルぺノイドにオリゴ糖が結合した配 糖体であり、 植物界に広く分布する物質である。 本発明において好ましいサボ二 ンは、 オンジサポニンまたはポリガラサポニンである。
別の観点においては、 本発明は、 オンジサポニン B、 ポリガラサポニン
XLIV、 ポリガラサポニン XXXIIおよびオンジサポニン Fからなる群より選択 される化合物を有効成分として含有する、 C型肝炎ウィルス感染症を予防または 治療するための医薬組成物を提供する。
別の観点においては、 本発明は、 以下の式 ( I ) :
Figure imgf000005_0001
[式中、
R 2および R 3は、 それぞれ独立して、 糖、 糖鎖または水素であり ;
R 4、 R 5および R 6は、 それぞれ独立して、 一 H、 一 OHまたは— O R 7であり、 ここで、 R 7は C i _6の直鎖または分枝鎖のアルキル基である]
の化合物またはその薬学的に許容しうる塩を有効成分として含む、 C型肝炎ウイ ルス感染症を予防または治療するための医薬組成物を提供する。 好ましくは、 R C ^sの直鎖または分枝鎖のアルキル基である。 上記式中、 糖とは単糖類を意味し、 例えば、 グルコース、 ガラクトース、 フル ク! ス、 キシロース、 ァラビノース、 ラムノース、 ァピオース、 フコースなど が挙げられる。 これらの単糖類が、 尺2ぉょび!^ 3、 すなわち残基として結 合する場合、 結合手が存在する位置としては、 5単糖、 6単糖といった糖の種類 にもよるが、 例えば、 糖における 1位 (ァノメリックポジション) 、 2位、 3位、 4位、 5位および 6位が挙げられる。 中でも、 1位 (ァノメリックポジション) に結合手が存在するのが好ましい。 糖鎖とは、 複数の単糖類、 好ましくは 2— 1 0個の単糖類、 より好ましくは 2— 4個の単糖類がグリコシド結合により互いに 結合した成分を意味する。
薬学的に許容しうる塩としては、 薬理学的に許容されるものであれば特に限定 されず、 例えば、 ナトリウム、 カリウム、 カルシウム等のアルカリ金属またはァ ルカリ土類金属等の塩、 ァンモニァゃ各種有機塩基等の塩類を挙げることができ る。
特に好ましくは、 式 (I ) の化合物は、 式:
Figure imgf000006_0001
で表される化合物 (オンジサポニン F) である。
別の観点においては、 本発明は、 C型肝炎ウィルスに感染した患者にヒメハギ 属の植物の抽出物を投与することを含む、 C型肝炎ウィルス感染症を予防または 治療する方法を提供する。 図面の簡単な説明
図 1は、 オンジの LC-UV-MSクロマトグラムおよび微量分取フラクションの 抗 HCVレプリコン活性および細胞毒性を示す。
図 2は、 セネガの LC-UV-MSクロマトグラムおよび微量分取フラクシヨンの 抗 HCVレブリコン活性および細胞毒性を示す。
図 3は、 ポリガラサポニン XXXIIおよびオンジサポニン Fの構造を示す。 図 4は、 Fr. 4 (オンジサポニン F) の 1H-NMR (500MHz) スぺクトルを示す。 図 5は、 オンジより精製された物質およびリバビリンの抗 HCVレプリコン活 性および細胞毒性を示す。
図 6は、 ウエスタンプロット解析によるオンジサポニンの HCVタンパク質合 成阻害の測定結果を示す。
図 7は、 ウエスタンブロット解析によるオンジサポニンの抗ウィルス効果を示 す。
図 8は、 ノザンブロット解析によるオンジサポニンの HCV RNA複製阻害の 測定結果を示す。
図 9は、 ノザンブロット解析によるオンジサポニンの抗ウィルス効果を示す。 発明の詳細な説明
HCVレブリコンアツセィを用いて、 市販の生薬のエタノール抽出物 280種に ついてスクリーニングしたところ、 オンジ (S. Sakuma and J. Shoji,Chem.
Pharm. Bull: 29, 2431-2441, 1981; S. Sakuma and J. Shoji, Chem. Pharm.
Bull: 30, 810-821, 1982)およびセネガ (Y. Shimizu and S. W. Pelletier, J. Am.
Chem. Soc, 88, 1544- 1549, 1966) の抽出物が選択的かつ強い抗 HCV活性を有 することが見いだされた。 生薬オンジおよびセネガは、 去痰薬の配合剤原料とし て用いられており、 抽出物には気道分泌亢進および利尿作用が知られている。 し かし、 オンジまたはセネガ由来の製剤および抽出成分に抗 HCV活性あるいは肝 炎に対する治療効果があることは全く知られていなかった。
下記の実施例に記載されるように、 オンジおよびセネガの抽出物を LC/MSで 分析、 同時に微量分取して各ピーク成分の活性を測定したところ、 両生薬に共通 する類似のサポニンのピーク群に抗 HCV活性が認められた。 そこで、 オンジに ついて、 この成分を明らかにすべく活性物質を精製 ·単離し、 構造を同定したと ころ、 オンジサポニン Fなどのプレセネゲニンおよび桂皮酸誘導体をァグリコ ンとするサポニンを活性成分として分離することができた。 オンジサポニン F は、 0.17 Mで HCVレプリコン活性を 5 0 %阻害したが、 6 x Mでも細胞毒性 は示さなかった。 この活性は、 サポニンを加水分解することにより消失した。 有効成分の抽出方法
本発明の医薬組成物は、 ヒメハギ属の植物の根、 茎、 葉または種子から有用成 分を抽出することにより製造することができる。 ヒメハギ属の植物としては、 好 ましくは、 オンジ (Polygala Tenuifolia Willdenowの根部) およびセネガ
(Polygala senega Linneの根部)が用いられる。 あるいは、 これらを乾燥したも のや粉末としたものを使用してもよい。
ヒメハギ属の植物の根、 茎、 葉または種子から抽出物を得るためには、 これら の原料を細断し、 5〜1 0 0倍量の抽出溶媒を加えて数時間から数日間放置また は撹拌する。 抽出溶媒としては、 水、 エタノール、 メタノール、 アセトン、 プロ パノール、 ブ夕ノール、 メチルェチルケトン、 ジェチルエーテル等、 またはこれ らの混合物を用いることができる。 抽出は、 冷却または加熱しながら行ってもよ く、 加圧処理してもよい。
得られた根、 茎、 葉または種子からの抽出物は、 必要に応じて、 濾過により不 溶性成分を除去した後に、 抽出溶媒を除去して、 本発明の抽出物を得る。 この抽 出物は、 必要に応じて低温殺菌してもよく、 さらに濃縮、 乾燥してもよい。 乾燥 は慣用の噴霧乾燥または凍結乾燥などにより行うことができる。 抽出物は室温、 冷蔵または冷凍条件下で保存することができる。
このようにして分離された粗抽出物は、 必要に応じて、 さらに精製する工程に 付することができる。 精製は、 生理活性物質の分離、 精製に通常使用される方法 によって行うことができ、 例えば、 シリカゲル、 化学修飾されたシリカゲル、 活 性アルミナ、 活性炭、 吸着性樹脂等の担体を用いるカラムクロマトグラフィー法、 高速液体クロマトグラフィー法、 ゲルろ過法等により行うことができる。 シリカ ゲルを担体として用いるカラムクロマトグラフィー法を採用する場合は、 溶出溶 媒としては、 例えば、 クロ口ホルム、 酢酸ェチル、 メタノール、 水等を挙げるこ とができ、 これらは 2種類以上を併用することができる。 化学修飾されたシリカ ゲルを担体として用いるカラムクロマトグラフィー法を採用する場合は、 溶出溶 媒としては、 例えば、 含水メタノール、 含水ァセトニトリル等の水溶性有機溶媒 の含水溶液等を使用することができる。 高速液体ク口マトグラフィ一法を採用す る場合は、 担体として、 例えば、 ォクタデシル基、 ォクチル基、 フエニル基など が結合した化学修飾されたシリカゲル;ポリスチレン系ポーラスポリマーゲル等 を挙げることができ、 移動相としては、 例えば、 含水メタノール、 含水ァセトニ トリル等の水溶性有機溶媒の含水溶液等を使用することができる。 ゲルろ過法に おいては、 セフアデックス LH-20や G- 10等のゲルろ過担体等を用いることが でき、 移動相としては、 メタノールや水、 含水メタノール等を使用することがで きる。
さらに、 ヒメハギ属の植物の根、 茎、 葉または種子から上述のようにして抽出 された物質を、 さらに化学的に改変または修飾してもよい。 そのような改変およ び修飾は、 化学合成の分野においてよく知られる方法を用いて容易に行うことが できる。 レブリコンアツセィ
本発明の医薬組成物の抗 H C V活性は、 レブリコンアツセィを使用して測定す ることができる。 レブリコンアツセィは、 C型肝炎ウィルス (HCV) のインビ トロ RNA複製系であり、 細胞レベルで HCVの増殖能を予測するアツセィ系で ある。 HCVはインビトロ細胞培養系が無いために、 これまでは、 抗 HCV薬の 評価をするにあたり他の近縁ウィルスを用いた代替ウィルスアツセィ法を用いな ければならなかった。 近年、 Lohmannら (V. Lohmann et al, Science: 285, 110 - 113, 1999)により HCVの非構造領域部分を用いてィンビト口で HCVの複製 を観測することが可能になったことにより、 レブリコンアツセィ法によって抗 HCV薬の評価が容易となった。 ォリジナルの方法は HCV— RNA数をポリメラ —ゼ連鎖反応法 (PCR) で検出するものであるが、 その代わりの方法として HCV遺伝子中にレポ一ター遺伝子を導入する方法が一般的であり、 より効率的 なアツセィ法として評価に利用されている。
レポ一夕一遺伝子としては、 例えば、 ホ夕ル由来のルシフェラ一ゼ遺伝子を導 入したものを用いることができる。 具体的には、 Kriegerら (N. Krieger et al., J. Virology: 75, 4614-24, 2001) の方法に従い、 HCV遺伝子の Internal
Ribosome Entry Site(IRES)の直下にネオマイシン耐性遺伝子と融合する形でル シフェラ一ゼ遺伝子を導入する。 インビトロで当該 RNAを合成後、 エレクト口 ポレーシヨン法等により適当な細胞に導入して、 ホタル ·ルシフェラ一ゼ HCV レブリコン細胞を得る。 この細胞を 96穴プレートのゥエルに蒔き、 希釈した被 検物質を加えて数日間培養する。 次に基質を加えて、 プレートリーダーでルミネ ッセンスを測定する。 細胞未添加の値をバックグランドとして全ての値から差し 弓 、 被検物質未添加の値を阻害 0 %として、 被検物質の IC50 (50%阻害濃 度) を算出することができる。 細胞毒性試験(WS "8)
本発明の医薬組成物の細胞毒性は、 例えば、 市販の Cell counting kit-8 (Dojindo cat. no. CK04) を用いて測定することができる。 上述のホ夕ル ·ル シフェラ一ゼ HCVレブリコン細胞を 96穴プレートのゥエルに蒔き、 希釈した 被検物質を加えて数日間培養する。 各ゥエルに Cell counting kit-8を添加し、 吸光度を測定する。 細胞未添加の値をバックグランドとして全ての値から差し引 き、 被検物質未添加の値を阻害 0 %として、 被検物質の IC50 (50%阻害濃度) を算出することができる。 医薬製剤
本発明の医薬組成物は C型肝炎ウィルス感染症の予防および Zまたは治療に有 用である。 本発明の医薬組成物は、 当業者に公知の方法で製剤化することができ る。 例えば、 薬学的に許容しうる担体もしくは媒体、 具体的には、 滅菌水や生理 食塩水、 植物油、 乳化剤、 懸濁剤、 界面活性剤、 安定剤、 香味剤、 賦形剤、 べヒ クル、 防腐剤、 結合剤などと適宜組み合わせて、 一般に認められた製薬実施に要 求される単位用量形態で混和することによつて製剤化することができる。
経口投与用には、 本発明の抽出物または化合物またはその塩を当該技術分野に おいてよく知られる薬学的に許容しうる担体と混合することにより、 錠剤、 丸薬、 糖衣剤、 カプセル、 液体、 ゲル、 シロップ、 スラリー、 懸濁液等として処方する ことができる。 担体としては、 当該技術分野において従来公知のものを広く使用 することができ、 例えば、 乳糖、 白糖、 塩化ナトリウム、 グルコース、 尿素、 澱 粉、 炭酸カルシウム、 カオリン、 結晶セルロース、 ケィ酸等の賦形剤;水、 エタ ノール、 プロパノール、 単シロップ、 グルコース液、 澱粉液、 ゼラチン溶液、 力 ルポキシメチルセルロース、 セラック、 メチルセルロース、 リン酸カリウム、 ポ リビニルピロリドン等の結合剤、 乾燥澱粉、 アルギン酸ナトリウム、 寒天末、 ラ ミナラン末、 炭酸水素ナトリウム、 炭酸カルシウム、 ポリオキシエチレンソルビ タン脂肪酸エステル、 ラウリル硫酸ナトリウム、 ステアリン酸モノグリセリド、 澱粉、 乳糖等の崩壊剤; 白糖、 ステアリンカカオバター、 水素添加油等の崩壊抑 制剤;第 4級アンモニゥム塩類、 ラウリル硫酸ナトリウム等の吸収促進剤;グリ セリン、 澱粉等の保湿剤;澱粉、 乳糖、 カオリン、 ベントナイト、 コロイド状ケ ィ酸等の吸着剤;精製タルク、 ステアリン酸塩、 ホウ酸末、 ポリエチレングリコ ール等の潤沢剤等を用いることができる。 さらに錠剤は、 必要に応じ、 通常の剤 皮を施した錠剤、 例えば、 糖衣錠、 ゼラチン被包錠、 腸溶被錠、 フィルムコーテ イング錠、 あるいは二重錠、 多層錠とすることができる。
非経口投与用には、 本発明の抽出物または化合物またはその塩を当該技術分野 においてよく知られる薬学的に許容しうるべヒクルを用いて通常の製剤実施に従 つて処方することができる。
注射剤用の水溶性べヒクルとしては、 例えば生理食塩水、 ブドウ糖やその他の 補助薬を含む等張液、 例えば D-ソルビトール、 D-マンノース、 D-マンニトール、 塩ィ匕ナトリウムが挙げられ、 適当な溶解補助剤、 例えばアルコール、 具体的には エタノール、 ポリアルコール、 例えばプロピレングリコール、 ポリエチレンダリ コール、 非イオン性界面活性剤、 例えばポリソルベート 80 (TM) 、 HCO-50 と併用してもよい。
油性べヒクルとしてはゴマ油、 大豆油があげられ、 溶解補助剤として安息香酸 ベンジル、 ベンジルアルコールと併用してもよい。 また、 緩衝剤、 例えばリン酸 塩緩衝液、 酢酸ナトリウム緩衝液、 無痛化剤、 例えば、 塩酸プロ力イン、 安定剤、 例えばべンジルアルコール、 フエノール、 酸化防止剤と配合してもよい。 調製さ れた注射液は通常、 適当なアンプルに充填させる。
本発明の医薬組成物の適当な投与経路には、 限定されないが、 経口、 直腸内、 経粘膜、 または腸内投与、 または筋肉内、 皮下、 骨髄内、 鞘内、 直接心室内、 静 脈内、 硝子体内、 腹腔内、 鼻腔内、 または眼内注射が含まれる。 投与経路および 投与方法は、 患者の年齢、 症状により適宜選択することができる。
本発明の医薬組成物の投与量としては、 例えば、 一回につき体重 lkgあたり O.OOOlmgから lOOOmgの範囲で選ぶことが可能である。 あるいは、 例えば、 患 者あたり 0.001〜: LOOOOOmg/bodyの範囲で投与量を選ぶことができるが、 これ らの数値に必ずしも制限されるものではない。 投与量、 投与方法は、 患者の体重 や年齢、 症状などにより変動するが、 当業者であれば適宜選択することが可能で ある。
本明細書において明示的に引用される全ての特許および参考文献の内容は全て 本明細書の一部としてここに引用する。 また, 本出願が有する優先権主張の基礎 となる出願である日本特許出願 2 0 0 4 - 3 0 9 1 9 6号の明細書および図面に 記載の内容は全て本明細書の一部としてここに引用する。 実施例
以下に実施例により本発明をより詳細に説明するが、 本発明はこれらの実施例 により限定されるものではない。 実施例 1
オンジおよびセネガの抽出物の抗 H C V活性および細胞毒性のアツセィ
生薬:オンジ(Polygala Tenu olia Willdenowの根部) およびセネガ
(Polygala senega Linneの根部) は小西製薬から購入した。 オンジまたはセネガ を刻み、 それぞれ 70% エタノール水を用いて抽出し、 乾燥して被検試料とした。 レプリコンアツセィ: Kriegerら (N. Krieger et al.、 J. Virology: 75、 4614 — 24、 2001) の方法に従い、 HCV遺伝子の Internal Ribosome Entry
Site(IRES)の直下にネオマイシン耐性遺伝子と融合する形でルシフエラ一ゼ遺伝 子を導入した。 インビトロで当該 RNAを合成後、 エレクトロボレ一シヨン法で Huh7細胞に導入し G418耐性クロ一ンとして単離した。 ホタル ·ルシフェラ一 ゼ HCVレブリコン細胞 (Huh7-3- 1) を 5 %ゥシ胎児血清 (Hyclone cat. no. SH30071.03) を含むダルベッコ MEM (Gibco cat. no. 10569-010) に懸濁し 96穴プレートに 5000細胞 ウエルで蒔き、 5 % C02、 37 で一夜培養した。 約 20時間後、 希釈した化合物をゥエルあたり 10 L加え、 さらに 3日間培養し
/し。
アツセィプレートは 2系統用意し、 1つは白色プレート、 他はクリア一プレー トでァッセィを行つた。 培養終了後、 白色プレー卜は Steady-Glo Luciferase Assay System (Promega cat. no. E2520) に用いた。 すなわち、 ゥエルあたり 100 Lの試薬を入れ、 3〜4回ピペットで混ぜ、 5分間放置後に 1450
MicroBeta TRILUX (WALLAC)にてルミネッセンスを測定した。 細胞未添加の 値をバックグランドとして全ての値から差し引き、 薬剤未添加の値を阻害 0 %と して薬剤の IC50 (50%阻害濃度) を算出した。
細胞毒性試験(WST-8):細胞毒性の測定には Cell counting kit-8 (Dojindo cat. no. CK04) を用いた。 すなわち、 10 Lの Cell counting kit'8を上述のク リア一プレートに添加し、 37°Cで 30〜60分間保温した。 96穴プレートリーダ —にて波長 450nm、 対照波長 630nmで吸光度を測定した。 細胞未添加の値を バックグランドとして全ての値から差し引き、 薬剤未添加の値を阻害 0 %として 薬剤の IC50 (50%阻害濃度) を算出した。
LC/MS分析:送液モジュール (ポンプおよびォートサンプラー)にはウォー夕 —ズ社 2790、 UV検出器に同 996、 MS検出器に同 ZMD2000を用いた。 カラ ムには、 Develosil Combi-RP5 (C30、 4.6 mmID x 50mm、 5 fi m, 野村化 学)を用いた。 送液は、 0.1%のギ酸を含むァセトニトリル—水グラジェント (ァセ トニトリルの割合: 15— 98%、 16分間)を用い、 1.5 mL/分で送液した。 微量フ ラクシヨンの分取には、 フラクションコレクター FC-203(ギルソン社製) を用 レ 0.4分間毎に 1フラクション、 合計 40フラクションを得た。 なお、 コント ロールとして、 フラクションの 1番には、 HPLC分画前のサンプル、 すなわち エタノール抽出物を置いた。 フラクションを濃縮乾固した後、 レブリコンおよび WS 8ァッセィに供した。 MSでの分析は、 Electro Spray Ionization(ESI)の Negativeモ一ド 用レた。
LC MSによるオンジおよびセネガの分析と微量分取フラクションの活性:ォ ンジおよびセネガのエタノール抽出物を、 LC/MSで分析、 同時に微量の分取フ ラクシヨンを調製、 HCVレブリコンおよび WS 8アツセィに供した。 オンジ の LC-UV-MSクロマトグラムと、 微量分取フラクションの抗 HCVレブリコン 活性および細胞毒性を図 1に、 セネガの LC-UV-MSクロマトグラムと、 微量分 取フラクションの抗 HCVレブリコン活性および細胞毒性を図 2に示す。 図中、 クロマトグラムは UV 320 nmのものであり、 フラクションは 0.4分間毎に 1フ ラクシヨンである。 各フラクションの 500倍および 4500倍希釈物について、 レ プリコン (Rep)および細胞毒性 (WST)を測定し、 その%阻害をグラフに示した。 図 1右上のパネルは、 保持時間 7.82分のピークの ESI—MSスペクトルを、 図 2右上のパネルは、 保持時間 7.92分のピークの UVスペクトルを、 それぞれ示 す。
その結果、 オンジおよびセネガは類似のクロマトパターンを示し、 ピークは、 保持時間 3— 4分付近と 7— 9分付近のピーク群に別れ、 抗 HCVレブリコン活 性は、 7— 9分のピーク群に観察された。 これら活性は、 オンジ、 セネガとも、 500倍希釈で細胞毒性を示さなかったが (WST^), 4500倍に希釈しても強い抗 HCV活性が観察された。
これら活性ピークは、 ESI+では明瞭なスペクトルを与えなかったが、 ESI— 分析においては、 m/z 1400〜1800の比較的大きな擬似分子イオンピークをあた えた。 また、 これら活性ピークは、 UV 320 nm付近に吸収極大を示す特徴的な UVスペクトルを有していた。 これらより、 オンジおよびセネガは、 構造類似の 活性成分を含むと考えられた。 実施例 2
オンジサポニンの精製および構造解析 オンジサポニンの精製: 100gのオンジ (刻み)より 1000 mLの 70%エタノー ル水を用いて抽出し、 これを濃縮後、 ブ夕ノールで抽出 ·乾固し、 粗抽出物 20 gを得た。 この一部を、 分取 HPLCにより 5つの分画を得た (Fr. 1 〜 5)。
分取 HPLCは以下の条件で行った。 HPLCには、 ギルソン社 306ポンプおよ びアジレントテクノロジ一 1100 PDA検出器を、 フラクションコレクターに 215 リキッドハンドラーを用い、 ギルソン社ュニポイントシステムで制御した。 カラ ムには、 Pegasil ODS (20 mmID X 250 mm、 センシュ一科学)を用いた。
0.01%の TFA (トリフルォロ酢酸) を含むァセトニトリル一水グラジェント(ァ セトニトリルの割合: 40— 50%、 17分間)により、 15 mL/分で送液し、 UV 320 nmの吸収を指標にピーク分取した。 加水分解物の分取には、 カラムに
Mightysil ODS (20 mmID x 50mm, 関東科学)を用い、 0.01%の TFA (トリフ ルォロ酢酸) を含むァセトニトリル—水グラジェント (ァセトニトリルの割合: 40%、 1分間; 40— 50%、 16分間; 50%、 3分間) により、 15 mL/分で送液 し、 フラクションを時間で分取した。
物質の構造解析は、 LC/MSによる解析に加えて、 NMR(A-500、 日本電子)に より行った。 Fr. 1は、 LC/MS ESI-スペクトルにおいて、 m/z 1571(Μ·Η)および 1617 (Μ-Η)を与え (混合物)、 それぞれオンジサポニン Βとポリガラサポニン XLIVと推定された。 Fr. 2は、 ESI- m/z 1673 (Μ·Η)を与え、 ポリガラサポニン ΧΧΧΙ 図 3a、 分子量 1675.80、 分子式〇79 18038)と推定された。 Fr. 3は、 ESI- m/z 1817 (M-H)を与えた。 Fr. 4は、 ESI- m/z 1587を与え、 オンジサポ二 ン F (図 3b、 分子量 1589.71、 分子式 C^H O^)と推定され、 さらに · NMR (図 4)により確認された (1H-NMR (500MHz) スペクトル:測定溶媒は重 メタノール) 。 Fr. 5は、 ESI- m/z 1731を与えた。
実施例 1と同様にして、 オンジより精製された Fr. 1〜5の抗レプリコン活性 および細胞毒性 (WS^8および Thd)を測定した。 結果を図 5および表 1に示す (図中、 1. Fr.l、 2. Fr.2、 3. Fr. 3、 4. Fr. 4、 5. Fr. 5、 6. リバビリン (陽 性対照) ) 。 表 1. オンジより精製された物質の抗 HCV活性および細胞毒性
~ I C 5 0 (μΜ)
画分 物質名 抗 H C V活 細胞毒性
1 オンジサポニン Β +ポリガラサポニン X 0.24 >6.2
L I V
2 ポリガラサポニン XX X I I 0.013 >6.0
3 オンジサポニン (構造不明) 0.25 >5.5
4 オンジサポニン F 0.17 >6.3
5 オンジサポニン (構造不明) 0.52 >5.8
Fr. 1〜5の ICso値は、 それぞれ、 0.38, 0.021、 0.45、 0.27および 0.90 g/mL (0.24 0.013、 0.25、 0.17および 0.52 M)であった。 これに対して、 細胞毒性の IC50値は WS 8法にて 10 g/mL以上であつた。 Fr. 2 は、 50%以 上の増殖阻害にはいたらないものの、 弱い細胞毒性が比較的低濃度より観測され た。 実施例 3
ウェスタンブロット解析によるオンジサポニンの HCV夕ンパク質合成阻害の測 定
ウエスタン解析は以下の方法でおこなった。 実施例 2で得られたオンジサポ二 ン F (Fr. 4) を ΙΟ ηΜから ΙΟΟΟηΜの範囲でレプリコン細胞 Huh-3-lに与え、 5 %CO2存在下、 37 :にて培養した。 72時間後に培地を捨て、 PBS
(Phosphate buffered saline Sigma cat. no. P3813)を加え、 ピぺッティングによ り細胞をはがし、 遠心により細胞を回収した。 6穴プレートの細胞当たり 200 Lの CelLyticTM-M (Sigma cat. no. C2978)と 2 Lのプロテア一ゼィンヒビ夕 —カクテル (Sigma cat. no. P8340)を加え、 室温で 15分間振とうした。 遠心分 離 (15000回転、 15分間) 後、 上清のタンパク定量を Dye Reagent (nacalai tesque cat. no. 074-27)にておこなった (ゥシァグロブリン標準液、 BIO-RAD cat. no. 500 0005) 。 得られたタンパク質 5 gを 9— 11%グラジェントゲル
(第一化学薬品 cat. no. 317552) でトリス—グリシン一 SDS緩衝液 (BIO- RAD cat. no. 161-0772) を用いて電気泳動した。 分子量サイズマーカ一は Rainbow molecular weight markers (AmershamBioscience cat. no.
RPN756) を用いた。 電気泳動したタンパク質をミニトランスプロットセル (BIO-RAD cat. no. 170-3930) にてメンブレン (ImmobiloirFL、 ミリポア cat. no. IPFL00010) に転写した。 以下、 ォデッセィ(ァロカ)のプロトコ一ルに 従い、 一次抗体に HCV夕ンパク質由来の抗 NS3ゥサギ抗体 (Nature chemical biology, 16 October 2005; doi:10.1038/nchembio742)を用いてウェスタン解析を 行った。 内部標準として抗ァクチンゥサギ抗体 (Cell SignaUng Tbchnology cat. no. 7074) 、 二次抗体に抗ゥサギ I g G (Alexa680: A21074) を用い、 ォデッセ ィで検出した。 その結果、 オンジサポニンによる HCVタンパク質合成の阻害の 濃度依存性が確認された (図 6 ) 。 各バンドの強度を定量し、 HCVタンパク質 の発現を 50%減少させる薬剤濃度 (IC50)を計算したところ、 55.4nMであった (図 7 ) 。 実施例 4
ノザンブロット解析によるオンジサポニンの HCV RNA複製阻害活性の測定 実施例 2で得られたオンジサポニン F (Fr. 4) を 12nMから ΙΟΟΟηΜの範囲 でレプリコン細胞 Huh-3-lに与え、 5 %C02存在下、 37°Cにて培養した。 72時 間後に細胞を回収し、 全 RNAを抽出した後で、 Ambion社のノザンマックスキ ッ卜の方法に従い、 ネオマイシン耐性遺伝子をプローブとしてノザン解析を行つ た。
ノザン解析は以下のものを用いた。 すなわち、 NorthernMax transfer buffer (Ambion cat. no. 8672), 転写膜 (ォデッセィ cat. no. 926 - 10000)、 ろ紙
(Sigma cat. no. P-6664) 、 ULTRAhyb (Ambion cat. no. 8670)。 プローブの 標識は Biotin-16-2'-deoxy-uridin-5'-triphosphate (Roche cat. no. 11 093 070 910)を用レて PCR (Gene Amp Core Re agents , Applie d Biosystems cat. no. N808-0009)にて行つた。 High Stringency buffer (Amibion cat. no. 8674)、 Blocking buffer ( 1 %SDS、 Aloka cat. no. ODY-927-40000) 、 Alexa Fluor 680 conjugate Streptavidin (ァロカ cat. no. S21378) 。
1 %ァガロースゲルで 1 gの 1 タル RNAを泳動し、 泳動後ェチジゥムブ 口ミドで RNAを染色して写真をとり、 脱色後 NorthernMax transfer bufferを 用いて転写膜に 2時間転写した。 湿ったままの状態で UVクロスリンカ一にて RNAを転写膜に固定化した。 ハイプリローターを用いて、 ULTRAhybにて 42 、 30分間の回転前処理の後、 前処理液を捨て、 上記 PCR法にて作製した ピオチン化ネオマイシン耐性遺伝子と 10mLの ULTRAhyb液を加えて 42 で 一夜振とう処理した。
ULTRAhyb液を捨て、 50°Cに保温した High Stringency bufferを 15mL加え 50°Cで 30分間振とうした。 同様の操作をもう一度繰り返した。 以下、 ォデッセ ィ(ァロカ)のプロトコールに従い、 RNAのバンドを検出した (図 8 ) 。 その結果、 オンジサポニンによる HCV RNA複製の阻害の濃度依存性が確認された。 各 バンドの強度を定量し、 HCV RNAの複製を 50%減少させる薬剤濃度 (IC50) を計算したところ、 59.6ΠΜであった (図 9 ) 。 産業上の利用性
本発明の医薬組成物は、 C型肝炎ウィルス感染症、 例えば、 C型肝炎、 肝硬変、 肝繊維化および肝癌の予防および Zまたは治療に有用である。

Claims

請求の範囲
1. ヒメハギ属の植物の抽出物を有効成分として含有する、 C型肝炎ウィルス 感染症を予防または治療するための医薬組成物。
2. ヒメハギ属の植物の抽出物がオンジの抽出物またはセネガの抽出物である、 請求項 1記載の医薬組成物。
3. ヒメハギ属の植物の抽出物がサポニンである、 請求項 1または 2に記載の 医薬組成物。
4. サポニンが、 オンジサポニンまたはポリガラサポニンである、 請求項 3記 載の医薬組成物。
5. オンジサポニン B、 ポリガラサポニン XLIV、 ポリガラサポニン XXXII およびオンジサポニン Fからなる群より選択される化合物を有効成分として含 有する、 C型肝炎ウィルス感染症を予防または治療するための医薬組成物。
6. 以下の式 (I) :
Figure imgf000019_0001
ぼ中、
R2および R3は、 それぞれ独立して、 糖、 糖鎖または水素であり ;
R4、 R5および R6は、 それぞれ独立して、 一 H、 一 OHまたは一 OR7であり、 ここで、 R7は Ci_6の直鎖または分枝鎖のアルキル基である]
の化合物またはその薬学的に許容しうる塩を有効成分として含む、 C型肝炎ウイ ルス感染症を予防または治療するための医薬組成物。
7. 式 ( I ) の化合物が、 式:
Figure imgf000020_0001
で表される化合物である、 請求項 6記載の医薬組成物。
8. C型肝炎ウィルス感染症が、 C型肝炎、 肝硬変、 肝繊維化および肝癌から なる群より選択される、 請求項 1一 7のいずれかに記載の医薬組成物。
9. C型肝炎ウィルスに感染した患者にヒメハギ属の植物の抽出物を投与する ことを含む、 C型肝炎ウィルス感染症を予防または治療する方法。
10. C型肝炎ウィルスに感染した患者に以下の式 (I) :
Figure imgf000020_0002
[式中、
R2および R3は、 それぞれ独立して、 糖、 糖鎖または水素であり ;
R4、 R5および R6は、 それぞれ独立して、 _H、 —OHまたは一〇R7であり、 ここで、 R7は の直鎖または分枝鎖のアルキル基である] を投与することを含む、 C型肝炎ウィルス感染症を予防または治療する方法。
1 1. 式 ( I ) の化合物が、 式:
Figure imgf000021_0001
で表される化合物である、 請求項 10記載の方法。
12. C型肝炎ウィルス感染症が、 C型肝炎、 肝硬変、 肝繊維化および肝癌か らなる群より選択される、 請求項 9に記載の方法。
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