WO2006016646A1 - イオントフォレーシス装置 - Google Patents

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WO2006016646A1
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iontophoresis device
drug
physiologically active
charged
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PCT/JP2005/014737
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Hirotoshi Adachi
Seiji Tokumoto
Naruhito Higo
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Hisamitsu Pharmaceutical Co., Inc.
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    • A61N1/32Applying electric currents by contact electrodes alternating or intermittent currents
    • A61N1/325Applying electric currents by contact electrodes alternating or intermittent currents for iontophoresis, i.e. transfer of media in ionic state by an electromotoric force into the body

Definitions

  • the present invention relates to an iontophoresis device for transdermal administration of a ionic charged physiologically active substance.
  • Iontophoresis is a method of delivering a drug from the skin or mucous membrane using electrical energy (eg, Acta Dermatol venereol, 64 ⁇ , p. 93, 1984).
  • an iontophoresis device having a desired structure is used as a device for delivering a physiologically active substance.
  • the iontophoresis system is usually arranged such that two electrodes connected to a power source are in contact with the skin, for example.
  • One of the electrodes is called a donor electrode, where force bioactive substance (drug) is administered into the body.
  • the other electrode is called a counter electrode and is used to form a closed circuit between the power source and the donor electrode.
  • the physiologically active substance to be administered when the physiologically active substance to be administered is positively charged and cationically charged, the anode electrode is the donor electrode and the force sword electrode is the counter electrode.
  • the physiologically active substance to be administered is anion-charged, which is relatively negatively charged, the force sword electrode is the donor electrode and the anode electrode is the counter electrode.
  • an electrode material of this type of device for example, silver is used for the anode electrode, and for example, salty silver is used for the force sword electrode.
  • the operation of the iontophoresis system causes a redox reaction at these electrodes, which results in another ion having the same charge as the drug ion. This other ion becomes a competitive ion for the drug ion, and as a result, there is a problem that the administration efficiency of the drug due to iontophoresis decreases.
  • salty silver is reduced during the operation of the iontophoresis system, and chloride is reduced. Ions are generated. The salt ions generated at this electrode compete with the ion-charged physiologically active substance. The efficiency of transdermal administration of sex physiologically active substances becomes worse.
  • Japanese Patent Publication No. 9-511662 proposes to provide a force thione exchange material layer.
  • This cation exchange material layer is provided between the cathode electrode and the drug reservoir.
  • the ions generated during electrode reduction react with cations in the cation exchange material layer to form electrically neutral or substantially insoluble compounds. This is intended to substantially eliminate the competition of key ions generated during electrode reduction for the key drug in the drug reservoir.
  • Patent Document 1 Japanese Patent Publication No. 9 511662
  • an object of the present invention is to solve the above-mentioned problems of the prior art and to provide an iontophoresis device excellent in transdermal absorbability for a key-charged physiologically active substance.
  • the present inventors have made use of a cation-charged interface, whereby an ion having excellent transdermal absorbability for a cation-charged physiologically active substance.
  • the present inventors have found that a tophoresis device can be obtained and completed the present invention.
  • a tophoresis device can be obtained and completed the present invention.
  • cations transmitted from the skin side cannot pass therethrough, and thus do not adversely affect the delivery efficiency of cation drug ions.
  • the ionic drug ions are transferred to the skin without competition.
  • the object is to provide a force sword electrode, an interface composed of a cation chargeable membrane, and a key-on charge physiologically active substance disposed between or in the force sword electrode and the interface.
  • an iontophoresis device comprising:
  • the zeta potential of the cationically chargeable membrane is preferably 5 mV or more.
  • the key-on charged physiologically active substance can be alprostadil or alprostadyl alfa detas.
  • a disaccharide can be added as a stabilizer to the cation-charged physiologically active substance.
  • the disaccharide is preferably sucrose or lactose, for example.
  • an iontophoresis device includes a force sword electrode, an interface made of a cation chargeable film, and an anion charge disposed between or in the interface between the force sword electrode and the interface.
  • a physiologically active substance and means for supplying a solution to the physiologically active substance can be a dissolution liquid reservoir opened by pressing.
  • the lysing solution may contain dariserine.
  • an iontophoresis device excellent in transdermal absorbability can be obtained, compared with a key-on charged physiologically active substance.
  • FIG. 1 is a cross-sectional view showing a configuration example of an iontophoresis device according to the present invention, wherein (a) is a diagram in which a drug is disposed between a force sword electrode and an interface; (b) The figure shows a drug placed in the interface.
  • FIG. 2 is a cross-sectional view showing another configuration example of the iontophoresis device according to the present invention.
  • (A) is a diagram in which a drug is disposed between a force sword electrode and an interface, and (b) is a drug. It is a diagram arranged in the force interface.
  • FIG. 3 is a graph showing the cumulative permeation amount of alprostadil ( ⁇ g / cm 2 ).
  • FIG. 4 is a graph showing the cumulative amount of lidocaine ( ⁇ g / cm 2 ).
  • FIG. 5 is a graph showing the cumulative permeation amount of alprostadil ( ⁇ g / cm 2 ).
  • FIG. 6 is a graph showing the blood concentration of PGE1 (ng ′ eqZml).
  • the iontophoresis device (formulation) of the present invention includes a force sword electrode and an interface made of a cation-charged membrane, and a key-on between the force sword electrode and the interface or in the interface.
  • a charged physiologically active substance hereinafter referred to as a drug
  • FIG. 1 is a cross-sectional view showing a configuration example of an iontophoresis device according to the present invention.
  • (A) is a diagram in which a drug is disposed between a force sword electrode and an interface, and (b) is a drug force interface.
  • FIG. 1 is a cross-sectional view showing a configuration example of an iontophoresis device according to the present invention.
  • (A) is a diagram in which a drug is disposed between a force sword electrode and an interface, and
  • (b) is a drug force interface.
  • the iontophoresis device shown in FIG. 1 (a) includes a force sword electrode 25 and an interface 31 that also has a cation-charged membrane force, and a drug 10 that is dried between the force sword electrode 25 and the interface 31 is provided. And an absorbent material 11 made of a material that can absorb liquid and contain liquid. A wall material 13 having an adhesive layer 12 on the lower surface is disposed around the absorbent material 11, and a support 15 having an opening 14 in the center is disposed on the absorbent material 11 and the wall material 13.
  • the force sword electrode 25 is connected to a lead portion 26 for connecting an external power source.
  • the interface 31 in Fig. 1 (a) does not contain drugs.
  • the iontophoresis device shown in Fig. 1 (b) is different from Fig. 1 (a) in that the drug 10 is not contained in the absorbent 11 and is contained in the interface 32. It is the same.
  • the opening of the support 15 is opened with a syringe or the like (not shown).
  • the absorbent 11 and the interface 31 or 32 are moistened, and the drug 10 is uniformly activated.
  • the drug penetrates the skin through the interface due to the energization of the photophoresis.
  • the interface 31 or 32 is an interface made of a cation-charged membrane, and the cation transmitted from the skin side cannot permeate it, so that the drug is efficiently administered through the skin.
  • FIG. 2 is a cross-sectional view showing another configuration example of the iontophoresis device according to the present invention
  • (a) is a diagram in which a drug is arranged between a force sword electrode and an interface
  • (b) Is a diagram in which drugs are arranged in the interface.
  • the iontophoresis device shown in Fig. 2 (a) includes a force sword electrode 25 and an interface 31 that also has a cation-charged membrane force, and a drug 10 that is dried between the force sword electrode 25 and the interface 31 is provided. And an absorbent material 11 made of a material that can absorb liquid and contain liquid. A wall material 13 having an adhesive layer 12 on the lower surface is disposed around the absorbent material 11, and a support 15 having an opening 14 in the center is disposed on the absorbent material 11 and the wall material 13.
  • a diaphragm 20 is disposed on the support 15, and the diaphragm 20 has a protrusion 17 for holding a drug-dissolving solution 16 between the diaphragm 20 and breaking the diaphragm 20 by pressing.
  • a solution reservoir 18 is provided.
  • the protrusion 17 has, for example, a linear tip as shown in the figure, and is disposed in contact with or close to the diaphragm 20.
  • the force sword electrode 25 is connected to a lead portion 26 for connecting an external power source.
  • the interface 31 in Fig. 2 (a) does not contain drugs.
  • the iontophoresis device shown in FIG. 2 (b) is different from that shown in FIG. 2 (a) except that the drug 10 is not contained in the absorbent 11 and is contained in the interface 32. is there.
  • the zeta potential of the cation-charged membrane of the interface is preferably about 7 mV or more, and preferably about 5 mV or more in the solution or the environment of the membrane after dissolution.
  • the drug can be a ionic charged bioactive substance that is at least partially dissociated into ionic, such as alprostadil or alprostadil alphadex.
  • Additives such as stabilizers, drug dissolution rate adjusters, pH adjusters, absorption enhancers and the like can be added to the drugs, and disaccharides such as lactose can be added as stabilizers.
  • the drug and the additive may be dissolved on a cation-charged membrane at the same time or after being dissolved in a soluble solvent, for example, alcohols such as water and ethanol or a mixture thereof, and if necessary, dissolved by heating (dissolution step). It can be produced by dropping individually (dropping step) and drying (drying step).
  • a soluble solvent for example, alcohols such as water and ethanol or a mixture thereof, and if necessary, dissolved by heating (dissolution step). It can be produced by dropping individually (dropping step) and drying (drying step).
  • the above-mentioned solution may contain an additive effective for making the charged state of the membrane cationic or a substance that further improves drug absorption.
  • an additive effective for making the charged state of the membrane cationic or a substance that further improves drug absorption for example, water, alcohols, polyhydric alcohols, Surfactants, sugars, pH adjusters, salts, water-soluble polymers, solubilizers, absorption enhancers
  • glycerin as a polyhydric alcohol.
  • concentration of glycerin added is preferably less than 50% by weight. If the added concentration of glycerin exceeds 50% by weight, the voltage when the iontophoresis is energized becomes too high, which is not preferable.
  • the power source for supplying electric energy to the iontophoresis device of the present invention is not particularly limited, but a power source capable of applying a continuous or Norse direct current is a preferred example.
  • the continuous DC current is preferably 0.01 to 4 mAZcm 2.
  • the voltage is preferably 2 to 20V.
  • the frequency is preferably 0.1 to 200 kHz.
  • the on / off ratio is preferably lZl00 to 20Zl.
  • the pulsed direct current is preferably 0.01 to A range of 4 mAZcm 2 is preferred.
  • the pulse direct current voltage is preferably 2 to 20V.
  • the energization conditions can be variously set according to the type and amount of the physiologically active substance to be administered.
  • the ion-charged physiologically active substance (drug) used in the present invention is all therapeutic and preventive in the pharmaceutical field as long as at least a part of the drug molecule can be dissociated into anions.
  • Antiinfectives such as drugs, antibiotics, antivirals, analgesics, analgesics, anesthetics, anorexia drugs, antiarthritis drugs, antiasthma drugs, anticonvulsants, antidepressants, antidiabetic drugs Antidiarrheal, antihistamine, anti-inflammatory, anti-migraine, anti-hypnotic, anti-emetic, antitumor, antiparkinsonian, itching, antipsychotic, antipyretic, gastrointestinal and urinary tract Antispasmodic drugs, anticholinergic drugs, sympathomimetic drugs, xanthine derivatives, cardiovascular preparations including forceful channel blockers, beta blockers, beta-agonists, antiarrhythmic drugs, antihypertension Medicine, ACE inhibitor, diuretic, whole body, coronary, peripheral Vasodilators including cerebral blood vessels, central nervous system stimulants, cough and cold medicines, decongestants, diagnostic agents, hormones, hypnotics, immunosuppressants, muscle relax
  • ion-charged physiologically active substances include alprostadil, alprostadil alpha detas, amoxicillin, ampicillin, aspoxicillin, benzilpenicillin, methicillin, piperacillin, sulpenicillin.
  • Examples of the ion-charged physiologically active substance of the present invention also include peptides, polypeptides, and proteins. These polymeric materials typically have a molecular weight of at least about 300 daltons, more typically in the range of about 300-40,000 daltons. In general, the net charge on a polypeptide or protein must be maintained negative (ie, as a key) by maintaining the pH of the polypeptide Z protein reservoir above the isoelectric point of the polypeptide or protein. Can do.
  • LHRH for example LHRH analogues such as buserelin, gonadorelin, nafrelin and leuprolide, GHRH, GHRF, insulin, insulin mouthpin, heparin, calcitonin, octreotide, Endorphin, TRH, NT—36 (Chemical name: N-[[(s) —4oxo2azetidyl] carbonyl] -L-histidyl-L-prolinamide), repressin, pituitary hormone (eg, HGH, HMG, HCG , Desmopressin acetate, etc.), follicular luteoid (luteoid), a ANF such as growth factor releasing factor (GFRF), j3 M SH, somatostatin, bradycun, somatotropin, platelet-derived growth factor, asparginase, Bleomycin s
  • GFRF growth factor releasing factor
  • the disaccharide used in the present invention acts as a stabilizing agent for the bioactive physiologically active substance.
  • sucrose sucrose, non-reducing
  • maltose maltose, reducing
  • lactose lactose
  • trehalose non-reducing
  • cellopios cellopios
  • yl cellopios
  • the cationically chargeable membrane used in the present invention is not particularly limited, but is not limited to polyolefin such as polyethylene, polyester such as PET, polyamide such as polycarbonate, polyvinyl chloride, nylon, polyimide, polyacrylonitrile, Microporous material that also has material strength such as polystyrene derivatives, ethylene acetate butyl copolymer, ethylene polybutyl alcohol copolymer, fluorine resin, acrylic resin, epoxy resin, cellulose derivative, polysulfone such as PES Is preferably used.
  • the physiologically active substance is a protein or the like, it is preferable to use a low protein adsorption membrane.
  • the thickness of the cation-charged membrane is 10 to 200 m.
  • the membrane pore size does not impair the amount of drug retained, release property, etc., and immediately after the drug comes into contact with the solution. It should be in the range where it can be released from the membrane and form a high-concentration drug-dissolved layer on the skin contact surface, but considering the efficiency of drug absorption due to the charged state of the membrane, : LOO / zm is preferably 0.1 to 10 ⁇ m, more preferably 0.1 to 5 ⁇ m.
  • the porosity of the cation-charged membrane is preferably about 60 to 90%, which is preferably higher as long as the physical strength can be secured. Further, for charging, it is preferable to modify with an amino group or a secondary to quaternary ammonium group.
  • Biodyne A Biodyne B
  • Biodyne Plus manufactured by Nippon Pole
  • High Bond N + Amersham Biosciences
  • Immobilon N y + Immobilon N y +
  • Silver and silver chloride electrodes were used as the electrodes, and each interface was installed on the contact surface between the spacer layer (absorbent) (nonwoven fabric) and the skin.
  • the spacer layer is filled with 5 mg of the ionic bioactive substance (alprostadil alfadex) dissolved in 1.2 ml of distilled water for injection and the receptor phase is 0.2% sodium chloride sodium solution. used.
  • the experiment was performed in an air bath prepared at 32 ° C, and the physiologically active substance in the receptor phase was measured by HPLC over time. The energization was 1 mA, DC current for 2 hours (constant current).
  • Example 1 Examples using Biodyne A and B (Nippon Pole) as the interface are ⁇ Example 1 '' and ⁇ Example 2 '' respectively, and those using Biodyne C (Nippon Pole) as the interface are compared.
  • the test was conducted as “Example 1” and “Comparative Example 2” without the interface.
  • Table 1 shows the type and polarity of each interface.
  • FIG. 3 shows the results of the in vitro skin permeation test in Experimental Example 1.
  • Alprostadil alphadex which is a ionic drug, uses the cation-charged (plus charge) interface (Examples 1 and 2) and uses the ionic charge (minus charge) interface V, In comparison with Comparative Example 1 and Comparative Example 2 where no interface was used, the drug permeability was high. Thus, the cation-charged interface promotes iontophoretic permeation of ionic bioactive substances. It became clear that it became power.
  • a silver electrode is used as an electrode, and a cationic bioactive substance (hydrocaine lidocaine 0.1%) is dissolved and filled in distilled water for injection on the spacer layer (absorbent), 1 mA, 2 hours (constant current) Direct current was applied.
  • a cationic bioactive substance hydrocaine lidocaine 0.1%)
  • distilled water for injection on the spacer layer (absorbent)
  • 1 mA 1 mA
  • 2 hours constant current
  • Direct current was applied.
  • Comparative Example 3 Biodyne B (manufactured by Nippon Pole) was used as an interface
  • Comparative Example 4 Biodyne C (manufactured by Nippon Pole) was used as an interface
  • Comparative Example 5 was tested without an interface. Table 2 shows the types and polarities of each interface.
  • the zeta potential of the interface varies depending on the material. This is based on the interaction between the ionic functional group of the interface and the solvent as the medium. In the case of a membrane having cationic chargeability (plus charge) in at least a part of the interface (Examples 3 to 7), the zeta potential shows a value of 1. 1 mV or more. In these cases, the amount of alprostadil permeated through the skin was significantly increased. Considering that the zeta potential varies depending on the type of drug, it is considered that the amount of permeation through the skin is significantly increased when the zeta potential is approximately 5.0 mV or more.
  • Example 8 in which the interface is on the contact surface with the skin showed higher skin penetration of alprostadil than Comparative Examples 8, 9 and 10.
  • Interface is skin Comparative Examples 8 and 9 that are not arranged on the contact surface were almost equal to Comparative Example 10 that did not use an interface.
  • Example 11 was 6 mg of ratatose and dried.
  • Formulations were prepared using the agents together. The prepared formulation was stored at 50 ° C. for 1 month, and the alprostadil content was measured by HPLC method. Table 4 shows the amount of drug remaining after storage at 50 ° C for 1 month as a percentage of the initial amount.
  • Table 5 shows the amount of drug remaining after storage at 50 ° C'l as a percentage of the initial value.
  • the stabilizers listed below are disaccharides (sucrose 6 mg, latatose 8 mg), zeolitic desiccant (Ozo, Yukiedo Co., Ltd.), silica gel desiccant (Sorb—It, SUD—CHEMIE), A system desiccant (Desi Pak, SUD—made by CHEMIE) or a molecular sieve type desiccant (Tri-Sorb, SUD—made by CHEMIE) was used.
  • the amount of alprostadil permeated increased with an increase in the amount of glycerin added.
  • the voltage during energization increases depending on the glycerin addition concentration, and the voltage increases remarkably when the glycerin addition concentration exceeds 50% by weight. Therefore, the glycerin-added caro concentration is preferably 50% by weight or less. ,.
  • Example 8 Using the formulation shown in FIG. 1 (a), a formulation containing 5 mg of alprostadil alphadex and 3 H-prostaglandin E ( 3 H-PGE, 3 Ci) as drugs was prepared. SD male rats (body weight approximately 250 g) were used. After 25% urethane anesthesia (5 mLZKg), the abdominal skin was shaved with a clipper and a shaver, and the skin surface was disinfected with alcohol. After the prepared preparation was pasted and fixed on the skin surface, each solution was added to the preparation to prepare the preparation. As a solution, Example 20 used a 30% glycerol solution, and Comparative Example 15 used purified water containing no glycerol. The energization was performed at 0.4 mAZcm 2 for 60 minutes, blood was collected from the jugular vein over time, plasma was separated after centrifugation, and the amount of radioactivity was measured by the liquid scintillation method.
  • 3 H-PGE 3 H-PGE,
  • Fig. 6 shows changes in plasma PGE concentration of each preparation. Similar to the results of the in vitro hairless mouse skin permeation test, in the glycerol 30% -containing solution (Example 20), a marked increase in absorption was observed as compared to the case where glycerol was not added.
  • each solution was filled in a solution reservoir (blister part) (made of PVC) of the preparation shown in FIG. Heat sealed.
  • the prepared solution container was stored in an aluminum packaging material together with a desiccant (Ozo 1G, Yukiedo Co., Ltd.) at 50 ° C for 1 month, and the change in weight was examined.
  • Table 7 shows the weight loss during storage in terms of the rate of change in initial weight.
  • the present invention relates to an iontophoresis device for transdermally administering a ionic charged physiologically active substance, and has industrial applicability.

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Abstract

 アニオン荷電性生理活性物質について経皮吸収性に優れたイオントフォレーシス装置を提供する。  本イオントフォレーシス装置は、カソード電極(25)と、カチオン荷電性膜からなるインタフェース(31)または(32)とを備え、このカソード電極(25)とインタフェース(31)との間またはインタフェース(32)中にアニオン荷電性生理活性物質(薬物)(10)が配置される。吸収材(11)の周囲には下面に粘着層(12)を有する壁材(13)が配置され、吸収材(11)および壁材(13)上には中央部に開口(14)を有する支持体(15)が配置されている。用時には薬物の溶解液を開口(14)を介して吸収材(11)に供給する。この溶解液により、吸収材(11)およびインタフェース(31)または(32)が湿潤状態となり薬物(10)がまんべんなく活性化される。

Description

明 細 書
イオントフォレーシス装置
技術分野
[0001] 本発明は、ァ-オン荷電性生理活性物質を経皮投与するためのイオントフォレーシ ス装置に関する。
背景技術
[0002] イオントフォレーシスは、電気的なエネルギーを用いて皮膚や粘膜から薬物を送達 する方法である(例えば、 Acta Dermatol venereol, 64卷, 93ページ, 1984年 )。この方法を実施するために、生理活性物質を送達するための装置として、所望の 構造を有するイオントフォレーシス装置が用いられる。
[0003] イオントフォレーシスシステムは、通常電源に接続された 2つの電極が例えば皮膚 に接触するように配置される。その一方の電極はドナー電極と呼ばれ、そこ力 生理 活性物質 (薬物)が体内に投与される。他方の電極はカウンター電極と呼ばれ、電源 とドナー電極との間で閉回路を形成するために用いられる。このようなイオントフォレ 一シスシステムにお 、て、投与すべき生理活性物質が正に荷電するカチオン荷電性 の場合にはアノード電極がドナー電極であり、力ソード電極はカウンター電極となる。 逆に投与すべき生理活性物質が相対的に負に荷電するァニオン荷電性の場合には 力ソード電極がドナー電極であり、アノード電極はカウンター電極となる。
[0004] この種のデバイスの電極材料は、アノード電極には例えば銀が用いられ、力ソード電 極には例えば塩ィ匕銀が用いられる。ここで注意しなければならないことは、イオントフ ォレーシスシステムの作動により、これらの電極において酸化還元反応が起こり、これ により薬物イオンと同じ電荷を有する別のイオンが生じると 、う点である。この別のィ オンは薬物イオンに対して競合イオンとなり、その結果、イオントフォレーシスによる薬 物の投与効率が低下するという問題がある。例えば、ァ-オン荷電性の生理活性物 質を経皮投与する際に、力ソード電極に塩ィ匕銀を用いる場合、イオントフォレーシス システムの作動時に塩ィ匕銀が還元され、塩化物イオンが発生する。この電極で発生 した塩ィ匕物イオンがァ-オン荷電性の生理活性物質と競合するので、ァ-オン荷電 性の生理活性物質の経皮投与の効率は悪くなる。
[0005] 上記のような問題を解決するために、例えば、特表平 9— 511662号公報には、力 チオン交換物質層を備えることが提案されている。このカチオン交換物質層は、カソ ード電極と薬物溜めの間に設けられる。電極還元中に発生するァ-オンはカチオン 交換物質層中のカチオンと反応し、電気的に中性又は実質的に不溶性の化合物を 形成する。これにより、薬物溜め中のァ-オン性薬物に対する電極還元中に発生す るァ-オンの競合を実質的に排除しょうとするものである。
特許文献 1:特表平 9 511662号公報
発明の開示
発明が解決しょうとする課題
[0006] 上記従来技術では、薬物イオンに対して力ソード電極で発生する競合イオンにつ いての対策は行っている力 皮膚側力 伝達される陽イオンに対する対策は行われ ていない。この陽イオンは経皮投与されるァ-オン性薬物イオンと競合するため、薬 物イオンの送達効率が低下するという問題がある。
したがって、本発明の目的は、上記従来技術の問題点を解決し、ァ-オン荷電性 生理活性物質について経皮吸収性に優れたイオントフォレーシス装置を提供するこ とにある。
課題を解決するための手段
[0007] 本発明者らは、上記課題を解決するために研究を重ねた結果、カチオン荷電性ィ ンタフェースを使用することにより、ァ-オン荷電性生理活性物質について経皮吸収 性に優れたイオントフォレーシス装置が得られることを見出し、本発明を完成させたも のである。即ち、カチオン荷電性インタフェースを設けることにより、皮膚側から伝達さ れる陽イオンはこれを透過できな 、ので、ァ-オン性薬物イオンの送達効率に悪影 響を与えない。イオントフォレーシスの通電当初は、力ソード電極に競合イオンは存 在しないので、ァ-オン性薬物イオンは競合なく皮膚に伝達される。但し、徐々に力 ソード電極力も競合イオン (塩ィ匕銀電極の場合は塩ィ匕物イオン)が増加するので、ァ ユオン性薬物イオンの送達効率は低下していくが、上記カチオン荷電性インタフエ一 スにより皮膚側からの陽イオンの侵入を阻止することができるので、総じてァ-オン荷 電性生理活性物質の経皮吸収性は優れたものとなる。また、皮膚にとっては陽イオン のデバイス側への流出が少ないので、その分、皮膚生理への悪影響が低減される。
[0008] 即ち、上記目的は、力ソード電極と、カチオン荷電性膜からなるインタフェースと、前 記力ソード電極と前記インタフェースとの間または前記インタフェース中に配置された ァ-オン荷電性生理活性物質とを備えたイオントフォレーシス装置により、達成される 。ここで、前記カチオン荷電性膜のゼータ電位は、 5mV以上であることが好ましい 。前記ァ-オン荷電性生理活性物質は、アルプロスタジルまたはアルプロスタジルァ ルフアデタスとすることができる。前記ァ-オン荷電性生理活性物質に安定化剤とし て二糖類を付加することができる。前記二糖類は例えば蔗糖または乳糖が好まし 、。
[0009] また、本発明に係るイオントフォレーシス装置は、力ソード電極と、カチオン荷電性 膜からなるインタフェースと、前記力ソード電極と前記インタフェースとの間または前記 インタフェース中に配置されたァニオン荷電性生理活性物質と、前記生理活性物質 に溶解液を供給するための手段とを備える。ここで、前記溶解液を供給するための手 段は、押圧により開封される溶解液溜めとすることができる。また、前記溶解液はダリ セリンを含有することができる。
発明の効果
[0010] 本発明によれば、ァ-オン荷電性生理活性物質にっ ヽて経皮吸収性に優れたィ オントフォレーシス装置を得ることができる。
図面の簡単な説明
[0011] [図 1]本発明に係るイオントフォレーシス装置の一構成例を示す断面図であり、(a)は 薬物が力ソード電極とインタフェースとの間に配置された図、(b)は薬物がインタフエ ース中に配置された図である。
[図 2]本発明に係るイオントフォレーシス装置の他の構成例を示す断面図であり、 (a) は薬物が力ソード電極とインタフェースとの間に配置された図、(b)は薬物力インタフ ース中に配置された図である。
[図 3]アルプロスタジルの累積透過量( μ g/cm2)を示すグラフである。
[図4]リドカインの累積透過量( μ g/cm2)を示すグラフである。
[図 5]アルプロスタジルの累積透過量( μ g/cm2)を示すグラフである。 [図 6]PGE1の血中濃度 (ng ' eqZml)を示すグラフである。
符号の説明
[0012] 10 薬物
11 吸収材
12 粘着層
13 壁材
14 開口
15 支持体
25 力ソード電極
26 リード部
31、 32 インタフェース
発明を実施するための最良の形態
[0013] 本発明のイオントフォレーシス装置 (製剤)は、力ソード電極と、カチオン荷電性膜か らなるインタフェースとを備え、この力ソード電極とインタフェースとの間またはインタフ エース中にァ-オン荷電性生理活性物質 (以下、薬物という)が配置される。
図 1は本発明に係るイオントフォレーシス装置の一構成例を示す断面図であり、 (a) は薬物が力ソード電極とインタフェースとの間に配置された図、 (b)は薬物力インタフ ース中に配置された図である。
[0014] 図 1 (a)に示すイオントフォレーシス装置は、力ソード電極 25と、カチオン荷電性膜 力もなるインタフェース 31とを備え、力ソード電極 25とインタフェース 31との間に乾燥 した薬物 10を含有するとともに液体を吸収できる材料で構成された吸収材 11が設け られている。吸収材 11の周囲には下面に粘着層 12を有する壁材 13が配置され、吸 収材 11および壁材 13上には中央部に開口 14を有する支持体 15が配置されている 。力ソード電極 25には外部電源接続用のリード部 26が接続される。図 1 (a)における インタフェース 31には薬物は含まない。一方、図 1 (b)に示すイオントフォレーシス装 置は、薬物 10が吸収材 11には含有されず、インタフェース 32に含有される点が異な り、その他は図 1 (a)のものと同様である。
[0015] 用時には、図 1 (a)、 (b)ともに、溶解液を図示しない注射器等で支持体 15の開口 1 4を介して吸収材 11に供給する。この溶解液により、吸収材 11およびインタフェース 31または 32が湿潤状態となり薬物 10がまんべんなく活性ィ匕される。これにより、ィォ ントフォレーシスの通電により薬物がインタフェースを介して皮膚に浸透する。ここで、 インタフェース 31または 32はカチオン荷電性膜からなるインタフェースであり、皮膚 側から伝達される陽イオンはこれを透過できな 、ので、薬物は効率よく皮膚を介して 投与される。
[0016] 図 2は本発明に係るイオントフォレーシス装置の他の構成例を示す断面図であり、 ( a)は薬物が力ソード電極とインタフェースとの間に配置された図、(b)は薬物がインタ フェース中に配置された図である。
[0017] 図 2 (a)に示すイオントフォレーシス装置は、力ソード電極 25と、カチオン荷電性膜 力もなるインタフェース 31とを備え、力ソード電極 25とインタフェース 31との間に乾燥 した薬物 10を含有するとともに液体を吸収できる材料で構成された吸収材 11が設け られている。吸収材 11の周囲には下面に粘着層 12を有する壁材 13が配置され、吸 収材 11および壁材 13上には中央部に開口 14を有する支持体 15が配置されている 。支持体 15上には隔膜 20が配置されており、隔膜 20上には薬物溶解用の溶解液 1 6を隔膜 20との間に保持し押圧により隔膜 20を破壊するための突起部 17を有する 溶解液溜め 18を備える。突起部 17は、例えば、図示のように線状の先端部を有して おり、隔膜 20に接触または近接して配置される。力ソード電極 25には外部電源接続 用のリード部 26が接続される。図 2 (a)におけるインタフェース 31には薬物は含まな い。一方、図 2 (b)に示すイオントフォレーシス装置は、薬物 10が吸収材 11には含有 されず、インタフェース 32に含有される点が異なり、その他は図 2 (a)のものと同様で ある。
[0018] 用時には、図 2 (a)、(b)ともに、溶解液溜め 18の上面を押圧して、突起部 17で隔 膜 20を破る。この際、隔膜 20は突起部 17の線状の先端部に沿って大きく破れ、溶 解液溜め 18中の溶解液 16が支持体 15の開口 14を介して吸収材 11に流れる。この 溶解液により、吸収材 11およびインタフェース 31または 32が湿潤状態となり薬物 10 力 Sまんべんなく活性ィ匕される。これにより、イオントフォレーシスの通電により薬物がィ ンタフェースを介して皮膚に浸透する。ここで、インタフェース 31または 32はカチオン 荷電性膜からなるインタフェースであり、皮膚側から伝達される陽イオンはこれを透過 できないので、薬物は効率よく皮膚を介して投与される。
[0019] 上記インタフェースのカチオン荷電性膜のゼータ電位は、溶解液または溶解後に おける膜の環境下において、約 7mV以上、好ましくは約 5mV以上であることが 好ましい。ゼータ電位がこれ以下の場合は薬物の経皮吸収性が悪ィ匕する。薬物は、 少なくとも一部がァ-オンに解離するァ-オン荷電性生理活性物質、例えば、アルプ ロスタジルまたはアルプロスタジルアルファデクスとすることができる。薬物には、安定 ィ匕剤、薬物の溶解速度調整剤、 pH調整剤、吸収促進剤等の添加剤を加えることが でき、安定化剤としては乳糖等の二糖類を付加することができる。また、薬物及び添 加剤は、溶解可能な溶媒、例えば水やエタノール等のアルコール類またはそれらの 混合物、必要に応じて加熱して溶解した後 (溶解工程)、カチオン荷電性膜上に同時 または個別に滴下し (滴下工程)、乾燥すること (乾燥工程)で製造できる。前記の溶 液には、膜の荷電状態をカチオン性にするために有効な添加剤や薬物吸収をさらに 改善する物質などを添加してもよぐ例えば、水、アルコール類、多価アルコール、界 面活性剤類、糖類、 pH調整剤、塩類、水溶性高分子、溶解剤、吸収促進剤、油脂 類、保存剤等が挙げられる力 多価アルコールとしてグリセリンを添加することが好ま しい。グリセリンの添加濃度は、 50重量%未満とすることが好ましい。グリセリンの添 加濃度が 50重量%を超えると、イオントフォレーシスの通電時の電圧が高くなりすぎ るので好ましくない。
[0020] なお、本発明のイオントフォレーシス装置に電気エネルギーを供給するための電源 は特に限定されな 、が、例えば連続またはノ ルス直流を印加しうる電源が好ま ヽ 例として挙げられる。連続直流の電流は、 0. 01〜4mAZcm2とすることが好ましぐ 電圧は、 2〜20Vとすることが好ましい。パルス直流の場合は、周波数は好ましくは 0 . l〜200kHzが好ましぐオン Zオフ(on/off)比は、 lZl00〜20Zlとすることが好 ましぐパルス直流の電流は、 0. 01〜4mAZcm2の範囲が好ましい。また、パルス 直流の電圧は、 2〜20Vが好ましい。
なお、上記通電条件は、投与する生理活性物質の種類や量等に応じて種々設定 することができる。 [0021] 本発明において使用されるァ-オン荷電性生理活性物質 (薬物)は、薬物分子の 少なくとも一部が陰イオンに解離し得る生理活性物質であれば、医薬分野における すべての治療、予防薬、抗生物質、抗ウィルス剤のような抗感染薬、鎮痛薬、鎮痛複 合薬、麻酔薬、食欲減退薬、抗関節炎薬、抗喘息薬、抗痙攣薬、抗うつ薬、抗糖尿 病薬、下痢止め、抗ヒスタミン薬、抗炎症薬、抗偏頭痛薬、乗り物酔い防止剤、抗おう 吐薬、抗腫瘍薬、抗パーキンソン病薬、かゆみ止め、抗精神病薬、解熱薬、胃腸及 び尿路を含む鎮痙薬、抗コリン作動薬、交感神経作用薬、キサンチン誘導体類、力 ルシゥムチャンネル遮断薬を含めた心血管製剤、ベータ遮断薬、ベータ—ァゴ-スト 、抗不整脈薬、抗高血圧薬、 ACE阻害剤、利尿薬、全身、冠状、末梢及び脳血管を 含む血管拡張薬、中枢神経系刺激薬、咳き薬及び風邪薬、うつ血除去薬、診断薬、 ホルモン類、催眠薬、免疫抑制薬、筋弛緩薬、副交感神経遮断薬、副交感神経作 用薬、プロスタグランジン、蛋白質、ペプチド、ポリペプチド、精神刺激薬、鎮静薬及 びトランキライザー等を含む。
[0022] また、これらァ-オン荷電性生理活性物質の具体例としては、アルプロスタジル、ァ ルプロスタジルアルファデタス、ァモキシシリン、アンピシリン、ァスポキシシリン、ベン ジルペニシリン、メチシリン、ピぺラシリン、スルペニシリン、チカルシリン、セファクロル 、セフアドロキシノレ、セファレキシン、セファトリジン、セフィキシム、セフラジン、セフロ キサジン、セフアマンドール、セファゾリン、セフメタゾール、セフミノクス、セフオペラゾ ン、セフォタキシム、セフオタテン、セフォキシチン、セフピラミド、セフスロジン、セフタ ジジム、セフチゾキシム、セフトリアキソン、セフゾナム、ァズトレオナム、カノレモナム、 フトモキセフ、ィメぺネム、タラモキセフ、シプロフロキサシン、エノキサシン、ナリジタス 酸、ノルフロキサシン、オフロキサシン、ビダラゾン、フルォロウラシル、メトトレキサート 、リン酸デキサメタゾンナトリウム、レボチロキシン、リオチロニン、アンレキサノクス、ク ロモグリク酸、トラ-ラスト、グリクラジド、インスリン類、ベンズブロマロン、カルバゾクロ ム、トラネキサム類、アルクロフエナク、アスピリン、ジクロフエナク、イブプロフェン、ィ ンドメタシン、ケトプロフェン、メフエナム酸、スリンダク、チアプロフェン酸、トルメチン、 スルピリン、口ベンザリット、ぺニシラミン、ァモバルビタール、ペントバルビタール、フ エノバルピタール、チォペンタール、フエニトイン、バルプロ酸、ドロキシドノ Vレボドパ 、ノ クロフェン、ダントロレン、デノパミン、フロセミド、ァセタゾラミド、ブメタ-ド、カンレ ノ酸、エタクリン酸、ァラセプリル、カプトプリル、リシノプリル、メチルドパ、クロフィブラ ート、プラバスタチン、プロブコーノレ、アミノフィリン、テオフィリン、カノレボシスティン及 びそれらの塩が挙げられる。
本発明のァ-オン荷電性生理活性物質としては、また、ペプチド、ポリペプチド、タ ンパク質を挙げることもできる。これらの高分子物質は典型的に少なくとも約 300ダル トンの分子量、より典型的には約 300〜40, 000ダルトンの範囲内の分子量を有する 。一般に、ポリペプチド又はタンパク質上の正味電荷は、ポリペプチド Zタンパク質溜 めの pHをポリペプチド又はタンパク質の等電点より高く維持することによって、負に( すなわち、ァ-オンとして)維持されることができる。ペプチドとタンパク質の特定の例 は、特に限定されず、 LHRH、例えばブセレリン、ゴナドレリン、ナフレリン及びロイプ ロリドのような LHRH類似体、 GHRH、 GHRF、インシュリン、インスロト口ピン、へパリ ン、カルシトニン、ォクトレオチド、エンドルフィン、 TRH、 NT— 36 (化学名: N- [[ (s )— 4 ォキソ 2 ァゼチジュル]カルボニル] - L -ヒスチジル - L -プロリンアミド )、リプレシン、下垂体ホルモン(例えば、 HGH、 HMG、 HCG、酢酸デスモプレツシ ン等)、卵胞ルテオイド (luteoid)、 a ANF、例えば成長因子放出因子(GFRF)、 j3 M SH、ソマトスタチン、ブラディキュン、ソマトトロピン、血小板由来増殖因子のような成 長因子類、ァスパルギナーゼ、硫酸ブレオマイシン、キモパパイン、コレシストキニン 、絨毛性性腺刺激ホルモン、コルチコトロピン (ACTH)、エリスロポイエチン、ェポプ ロステノール(血小板凝固阻害因子)、グルカゴン、ヒルログ (hirulog)、ヒアルロニダ一 ゼ、インターフェロン、インターロイキン 1、インターロイキン 2、メノトロピン類(ゥロ フオリトロピン(FSH)と LH)、ォキシトシン、ストレプトキナーゼ、組織プラスミノーゲン 活性因子、ゥロキナーゼ、バソプレツシン、デスモプレツシン、 ACTH類似体、 ANP、 ANPクリアランス阻害因子、アンギオテンシン IIアンタゴニスト、抗利尿ホルモンァゴ 二スト、抗利尿ホルモンアンタゴ-スト、ブラディキュンアンタゴ-スト、 CD4、セレダ ーゼ、 CSF類、エンケフアリン、 FABフラグメント、 IgEペプチド抑制因子、 IGF—1、 神経栄養因子、コロニー刺激因子、上皮小体ホルモンとァゴニスト、上皮小体ホルモ ンアンタゴニスト、プロスタグランジンアンタゴニスト、プロテイン C、プロテイン S、レニ ン阻害因子、チモシン α—1、血栓溶解薬、 TNF、ワクチン、バソプレツシンアンタゴ 二スト類似体、 α— 1抗トリプシン (組換え体)及び TGF— βを含む。これらのぺプチ ド、ポリペプチド、タンパク質は、溶解媒体の ρΗに依存して、それぞれ等電点よりも高 V、ρΗにお 、て負荷電を帯びる。
[0024] 本発明において使用される二糖類は、ァ-オン性生理活性物質のための安定ィ匕 剤として作用する。
二糖類の中では、特に限定されず、蔗糖 (スクロース、非還元性)、麦芽糖 (マルト ース、還元性)、乳糖 (ラタトース、還元性)、トレハロース (非還元性)、セロピオ—ス、 イルマルトース等が挙げられるが、特に蔗糖または乳糖が好まし 、。
[0025] 本発明において使用されるカチオン荷電性膜としては、特に限定されないが、ポリ エチレン等のポリオレフイン、 PET等のポリエステル、ポリカーボネート、ポリ塩化ビ- ル、ナイロン等のポリアミド、ポリイミド、ポリアクリロニトリル、ポリスチレン誘導体、ェチ レン 酢酸ビュル共重合体、エチレン ポリビュルアルコール共重合体、フッ素榭脂 、アクリル榭脂、エポキシ榭脂、セルロース誘導体、 PES等のポリスルフォン等の材質 力もなる微多孔性のものを用いることが好ましい。また、生理活性物質がタンパク質 等の場合には、低蛋白吸着性の膜を使用することが好ま 、。
[0026] カチオン荷電性膜は、厚さは 10〜200 mとすることが好ましぐ膜孔径は、薬物 の保持量、放出性などを損なわず、薬物が溶解液と接触した後、速やかに膜から放 出され、皮膚接触面に高濃度の薬物溶解層を形成することが可能な範囲であればよ いが、膜の荷電状態による薬物吸収性への効率を考えると、 0. 05〜: LOO /z m 好ま しくは 0. 1〜10 μ m、より好ましくは 0. 1〜5 μ mである。また、カチオン荷電性膜の 空孔率は、物理的な強度を確保できる範囲で高い方が好ましぐ 60〜90%程度のも のが好ましい。また、荷電のために、アミノ基、または 2〜4級アンモ -ゥム基などで修 飾することが好ましい。
[0027] このような荷電性膜は、市販のものを用いてもよぐ例えば、バイオダイン A、バイオ ダイン B、バイオダインプラス(以上、 日本ポール社製)、ハイボンド N+ (アマシャムバ ィォサイエンス社製)、ィモビロン Ny+ (ミリポア社製)を用いることができる。
[0028] 以下、本発明の実施例を説明する。なお、実施例及び比較例にお!、て、「%」は重 量%を意味するものとする。
[0029] (実験例 1)
ヘアレスマウスの皮膚を用いた in vitro透過試験により、ァ-オン荷電性生理活性 物質の皮膚透過性に及ぼす各インタフェースの影響について評価した。
電極として銀,塩化銀電極を用い、スぺーサ一層(吸収材)(不織布)と皮膚との接 触面に、各インタフェースを設置した。スぺーサ一層にはァ-オン性生理活性物質( アルプロスタジルアルファデクス)5mgを注射用蒸留水 1. 2mlに溶解して充填し、レ セプター相は 0. 2%塩ィ匕ナトリウム溶液を使用した。実験は 32°Cに調製したェアバ ス中で行い、経時的にレセプター相中の生理活性物質を HPLCにより測定した。 通電は、 lmA、 2時間(定電流)の直流通電を行った。インタフェースとしてバイオ ダイン A及び B (日本ポール社製)を用いたものをそれぞれ「実施例 1」及び「実施例 2 」とし、インタフェースとしてバイオダイン C (日本ポール社製)を用いたものを「比較例 1」、インタフェースなしとしたものを「比較例 2」として試験を行った。各インタフェース の種類及び極性は表 1のとおりである。
[0030] [表 1]
Figure imgf000012_0001
* I 夕ルではプラスチヤ一ジ
[0031] 実験例 1における in vitro皮膚透過試験の結果を図 3に示す。
ァ-オン性薬物であるアルプロスタジルアルファデクスは、カチオン荷電性(プラス チャージ)のインタフェース(実施例 1及び 2)を用いた場合、ァ-オン荷電性 (マイナ スチャージ)のインタフェースを用 V、た場合 (比較例 1)及びインタフェースを使用して いない比較例 2と比べて、高い薬物透過性を示した。このことから、カチオン荷電性ィ ンタフェースは、ァ-オン性生理活性物質のイオントフォレーシスの透過を促進する ことが明ら力となった。
[0032] (実験例 2)
実験例 1と同様に、ヘアレスマウスの皮膚を用いた in vitro透過試験により、カチォ ン性生理活性物質の皮膚透過性に及ぼす各インタフェースの影響について評価し た。
電極として銀電極を用い、スぺーサ一層(吸収材)にカチオン性生理活性物質 (塩 酸リドカイン 0. 1%)を注射用蒸留水に溶解して充填し、 1mA, 2時間(定電流)の直 流通電を行った。比較例 3は、インタフェースとしてバイオダイン B (日本ポール社製) 、比較例 4はインタフェースとしてバイオダイン C (日本ポール社製)を用い、比較例 5 はインタフェースなしで試験を行った。各インタフェースの種類及び極性は表 2に示 すとおりである。
[0033] [表 2] 表 2 薬物及び各インタフェース (種類及び極性)
Figure imgf000013_0001
[0034] 比較例 3〜5の結果を図 4に示す。カチオン性生理活性物質である塩酸リドカインを 用いた結果、カチオン荷電性 (比較例 3)及びァ-オン荷電性のインタフェース (比較 例 4)を用いても、インタフェースを使用していない比較例 5と比較して、ほぼ同等の 皮膚透過性であった。この結果から、カチオン性生理活性物質の場合は、ァ-オン 荷電性インタフェースゃカチオン性荷電性インタフェースを用いても、インタフェース を用いなくても、生理活性物質の透過に影響を与えないことが分力つた。
[0035] (実験例 3)
下記表 3に示す各インタフェースの電荷がアルプロスタジルの皮膚透過性に及ぼ す影響について評価した。
ゼータ電位は、レーザーゼータ電位計 (ELS - 8000:大塚電子社製)を用いた。 溶媒として 10mM NaCl (塩酸で pH5に調製)を用い、温度(25°C)、電場(一 32V Zcm)で測定し、溶媒の粘度(r? =0. 881)、誘電率(ε = 78. 62)、屈折率 (η= 1 . 331)を条件として、 Smoluchowskiの式よりゼータ電位を算出した。 また、実験例 1と同様の条件で、アルプロスタジルの皮膚透過性に及ぼす各インタ フェースのチャージの影響について評価した。結果を表 3に示す。
[表 3]
Figure imgf000014_0001
*トータルではプラスチャージ
[0037] 表 3に示されるように、インタフェースのゼータ電位はその材質によって異なる値と なる。これはインタフェースの有するイオン性の官能基と媒体である溶解液との相互 作用に基づくものである。インタフェースの少なくとも一部にカチオン荷電性 (プラス チャージ)を有する膜の場合 (実施例 3〜7)は、ゼータ電位が 1. lmV以上の値を 示す。これらの場合にアルプロスタジルの皮膚透過量は顕著に増加した。ゼータ電 位値が薬物の種類によっても変わることを含めて考えると、ゼータ電位が概ね 5. 0 mV以上の範囲で皮膚透過量が顕著に増加すると考察される。
[0038] (実験例 4)
実験例 1と同様の条件で、アルプロスタジルの皮膚透過性に及ぼす各インタフエ一 スの配置場所の影響について評価した。インタフェースにはノ ィオダイン B (日本ポ ール社製)を使用し、「実施例 8」はスぺーサ一と皮膚との間にインタフェースを設置 し、「比較例 8」はスぺーサ一と電極の間に設置し、「比較例 9」はスぺーサ一とスぺー サ一の中間(皮膚と電極の中間)に配置し、「比較例 10」にはインタフ ースを使用し なかった。結果を図 5に示す。
[0039] 図 5に示すように、インタフェースが皮膚との接触面にある「実施例 8」は、比較例 8、 9及び 10に比べ、アルプロスタジルの高い皮膚透過を示した。インタフェースが皮膚 と接触面に配置されない比較例 8及び 9は、インタフェースを使用しない比較例 10と ほぼ等し力つた。これらのことから、本製剤におけるインタフェースの配置場所は製剤 性能を発揮する上で重要であることが示唆された。
[0040] (実験例 5)
図 1 (a)に示す製剤を用いて、薬物(アルプロスタジルアルファデクス 5mg)を添加し 、アルミニウム包材中に保管した。比較例 11では安定化剤を使用せず、実施例 9は 薬物と共にラタトース 6mgを添加し、実施例 10は乾燥剤 (ォゾ 1G、株式会社雪江堂 )、及び実施例 11はラタトース 6mg及び乾燥剤を共に用いて製剤を調製した。調製 された製剤は 50°C ' l力月間保管し、アルプロスタジル含量を HPLC法で測定した。 表 4に 50°C ' 1力月間保管後の薬物残存量を対初期に対する割合として示す。
[0041] [表 4]
Figure imgf000015_0001
[0042] 表 4に示される結果から明らかなように、安定化剤を使用しない比較例 11に比べて、 安定化剤としてラタトースまたは乾燥剤を添加した実施例 9〜 11は薬物安定性が向 上した。
[0043] (実験例 6)
下記表 5に示す製剤を実験例 5と同様に作成し、 50°C ' l力月間保管し、アルプロス タジルの安定性を検討した。
表 5に 50°C ' l力月間保管後の薬物残存量を対初期に対する割合として示す。下 記の安定剤は、二糖類 (スクロース 6mg、ラタトース 8mg)、ゼオライト系乾燥剤 (ォゾ 、株式会社雪江堂社製)、シリカゲル系乾燥剤(Sorb— It、 SUD— CHEMIE社製) 、クレイ系乾燥剤(Desi Pak、 SUD— CHEMIE社製)またはモレキュラーシーブ系 乾燥剤 (Tri - Sorb, SUD - CHEMIE社製)を用 、た。
[0044] [表 5] 製剤における薬物安定性に及ぼす安定化剤の影響
Figure imgf000016_0001
[0045] 表 5に示される結果から明らかなように、安定化剤を使用しない比較例 13に比べて 、安定化剤として-糖類または各種乾燥剤を添加する実施例 12から 16は薬物安定 性が向上したが、単糖類の D—ソルビトールを添加した比較例 12では、安定性は低 下した。
[0046] (実験例 7)
実験例 1と同様の条件で、インタフェースにはバイオダイン B (日本ポール社製)を 使用し、アルプロスタジルの皮膚透過性に及ぼす溶解液組成の影響につ!、て検討し た。アルプロスタジルアルファデクス 5mg及びグリセリン (各濃度)を水酸ィ匕ナトリウム 水溶液により溶解した溶液 (pH6、 1. 2mL)をスぺーサ一層に充填した。表 6に 2時 間後の累積透過量を示す。
[0047] [表 6] アルプロス夕ジルの皮膚透過に及ぼす溶解液組成の影響
Figure imgf000016_0002
[0048] 表 6に示されるように、グリセリン添カ卩量の増加に伴いアルプロスタジルの透過量は 増大した。しかし、グリセリン添加濃度に依存して通電中の電圧も高くなり、グリセリン 添加濃度が 50重量%より大きくなると電圧も顕著に高くなることから、グリセリン添カロ 濃度は 50重量%以下であることが好ま 、。
[0049] (実験例 8) 図 1 (a)に示す製剤を用い、薬物としてアルプロスタジルアルファデクス 5mg及び3 H—プロスタグランジン E (3H— PGE、 3 Ci)を含有する製剤を作成した。 SD雄 性ラット(体重約 250g)を用い、 25%ウレタン麻酔 (5mLZKg)後、腹部皮膚をバリ カン及びシェーバーで剃毛処理し、皮膚表面をアルコール消毒した。上記作成した 製剤を皮膚表面に貼付固定した後、各溶解液を製剤中に添加して製剤を調製した。 溶解液として、実施例 20は 30%グリセリン溶液、比較例 15はグリセリンを含まない精 製水を用いた。通電は、 0. 4mAZcm2、 60分間行い、経時的に頸静脈より採血し、 遠心分離後に血漿を分離して、液体シンチレーシヨン法により放射能量を測定した。
[0050] 図 6に、各製剤の血漿中 PGE濃度変化を示す。 In vitroヘアレスマウス皮膚透過 試験の結果と同様に、グリセリン 30%含有溶解液 (実施例 20)において、グリセリン 非添加と比べて顕著な吸収増大が観察された。
[0051] (実験例 9)
表 7に示すように、実施例 21〜23及び比較例 16において、図 2 (a)に示す製剤の 溶解液溜め(ブリスター部)(PVC製)に各溶解液を充填し、アルミニウム蓋材によりヒ ートシールした。作成した溶解液容器をアルミニウム包材中に乾燥剤 (ォゾ 1G、株式 会社雪江堂)と共に、 50°C ' l力月間保管し、重量の変化を検討した。表 7に保存中 の減量を初期重量力 の変化率で示す。
[0052] [表 7]
表 7 溶解液保存中の重量変化
Figure imgf000017_0001
[0053] 表 7に示されるように、グリセリンを添加することにより、保存中の生理活性物質の重 量変化が抑制される傾向を示した。
産業上の利用可能性
[0054] 本発明は、ァ-オン荷電性生理活性物質を経皮投与するためのイオントフォレーシ ス装置に関するものであり、産業上の利用可能性がある。

Claims

請求の範囲
[1] 力ソード電極と、カチオン荷電性膜からなるインタフェースと、前記力ソード電極と前 記インタフェースとの間または前記インタフェース中に配置されたァ-オン荷電性生 理活性物質とを備えたことを特徴とするイオントフォレーシス装置。
[2] 前記カチオン荷電性膜のゼータ電位力 5mV以上であることを特徴とする請求 項 1記載のイオントフォレーシス装置。
[3] 前記ァ-オン荷電性生理活性物質力 アルプロスタジルまたはアルプロスタジルァ ルフアデタスであることを特徴とする請求項 1または 2記載のイオントフォレーシス装置
[4] 前記ァ-オン荷電性生理活性物質に安定化剤として二糖類を付加したことを特徴 とする請求項 1〜3のいずれかに記載のイオントフォレーシス装置。
[5] 前記二糖類が蔗糖または乳糖であることを特徴とする請求項 4記載のイオントフォレ 一シス装置。
[6] 力ソード電極と、カチオン荷電性膜からなるインタフェースと、前記力ソード電極と前 記インタフェースとの間または前記インタフェース中に配置されたァ-オン荷電性生 理活性物質と、前記生理活性物質に溶解液を供給するための手段とを備えたことを 特徴とするイオントフォレーシス装置。
[7] 前記溶解液を供給するための手段が、押圧により開封される溶解液溜めであることを 特徴とする請求項 6記載のイオントフォレーシス装置。
[8] 前記溶解液がグリセリンを含有することを特徴とする請求項 6または 7記載のイオント フォレーシス装置。
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