WO2003096002A1 - Instrument et procede de mesure du signal d'action d'un echantillon biologique - Google Patents

Instrument et procede de mesure du signal d'action d'un echantillon biologique Download PDF

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WO2003096002A1
WO2003096002A1 PCT/JP2003/005735 JP0305735W WO03096002A1 WO 2003096002 A1 WO2003096002 A1 WO 2003096002A1 JP 0305735 W JP0305735 W JP 0305735W WO 03096002 A1 WO03096002 A1 WO 03096002A1
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measuring
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PCT/JP2003/005735
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Hiroaki Oka
Nobuhiko Ozaki
Hirokazu Sugihara
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Matsushita Electric Industrial Co., Ltd.
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    • G01N33/48707Physical analysis of biological material of liquid biological material by electrical means
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    • G01N33/5438Electrodes

Definitions

  • the present invention relates to an apparatus and a method for measuring an activity signal emitted from a biological sample such as a cell.
  • a physicochemical signal emitted in accordance with the activity of a biological sample is taken into a measuring device and measured as an electrical signal or a digital signal such as a fluorescence intensity signal emitted by an indicator taken into the biological sample.
  • a digital value representing the amount of electricity passing through the channel obtained by an electrophysiological measurement device using a microelectrode probe such as a patch clamp and a dedicated control device. It is measured by calculating the channel opening / closing time, timing, number of times, etc. from the signal.
  • the patch clamp method is a method in which the transport of ions through a single channel protein molecule is electrically recorded by a microelectrode probe using a micropart (patch) of the cell membrane attached to the tip of the micropit.
  • Patch clamp is one of the few cell biology techniques that can examine the function of a single protein molecule in real time (eg, molecular biology of cells, 3rd edition, Gar 1 and Publ. Ng, Inc.> New York, 1994, Japanese version, translated by Keiko Nakamura et al., Pp. 181-282, 1995, see Kyoikusha).
  • the fluorescent dye method is a method for measuring the electrical activity of cells by combining a luminescence indicator or a fluorescent dye that emits light in accordance with a change in the concentration of a specific ion with an image processing method. For example, the movement of ions in cells is monitored based on fluorescence images of cells taken using a CCD camera.
  • the ion channel activity of the whole cell is generally measured by the total amount of ions flowing into the cell by a fluorescence measurement method.
  • the patch-clamp method requires special techniques for micropipette fabrication and manipulation, and it takes a lot of time to measure one sample. Not.
  • the fluorochrome method can rapidly screen a large number of drug candidate compounds, but requires a step of staining cells, and in measurement, the background due to the effect of the dye is high and the color is decolorized with time. There is a disadvantage that the SZN ratio is poor.
  • the present invention discloses an integrated composite electrode characterized by forming microelectrodes on a substrate by using photolithographic technique and capable of measuring electrical changes of cells extracellularly at multiple points, and a measurement system using the same.
  • International Publication No. WO 01/25759 discloses a method in which a through-hole is provided on an insulating substrate, and a biological sample such as a cell containing an ion channel is placed in the through-hole, so that a cell or the like and the surface of the insulating substrate are disposed.
  • a substrate that constitutes a giga shield and can measure a current generated when ions pass through an ion channel by using a reference electrode and a measurement electrode provided in two regions separated by the giga shield. .
  • U.S. Patent No. 5,187,699 discloses a device that can monitor cell growth by culturing cells on electrodes and measuring the change in impedance.
  • WO 99/66632 9 discloses a device for observing the state of activity of cells on a porous material by resistance or impedance change, and an assay method using the same.
  • International Publication No. WO 99/31503 discloses a method of forming a patch clamp by trapping cells in a through-hole using a substrate having a through-hole and measuring a change in current.
  • An object of the present invention is to provide an apparatus and a method for measuring an activity signal of a biological sample, which can easily, quickly and accurately detect an activity signal generated by the biological sample.
  • the object of the present invention is an apparatus for measuring an activity signal of a biological sample, comprising: a measurement chamber containing a liquid to be measured containing a biological sample; a porous insulating substrate provided with a measurement electrode on at least one surface; A transport device that transports the liquid to be measured in the measurement chamber and passes the porous insulating substrate from the measurement electrode side, and operates the transport device to measure the biological sample contained in the liquid to be measured.
  • a biological sample activity signal measuring device capable of measuring an activity signal of a biological sample via the measurement electrode by capturing at the electrode.
  • the object of the present invention is a method for measuring an activity signal of a biological sample, comprising: a step of injecting a liquid to be measured containing the biological sample into a measuring chamber; and a step of transporting the liquid to be measured from the measuring chamber.
  • a living body comprising: a step of capturing a biological sample at the measurement electrode by passing through a porous insulating substrate provided with a measurement electrode on at least one surface; and a step of measuring an activity signal of the biological sample via the measurement electrode. This is achieved by the activity signal measurement method of the sample.
  • FIG. 1 is a schematic configuration diagram of a main part of an apparatus for measuring an activity signal of a biological sample according to a first embodiment of the present invention.
  • FIG. 2 is an enlarged view of a main part of the apparatus shown in FIG.
  • Fig. 3 (A) and (B) are schematic diagrams showing the activities of biological samples (cells). You.
  • FIG. 4 is a schematic plan view of a biological sample activity signal measuring device according to a second embodiment of the present invention.
  • FIG. 5 is (A) a plan view and (B) a cross-sectional view of the cell isolation part of the device shown in FIG.
  • FIG. 6 is (A) a plan view and (B) a cross-sectional view of the porous insulating substrate of the device shown in FIG.
  • FIG. 7 is a partial sectional view of the device shown in FIG.
  • FIG. 8 is another partial cross-sectional view of the device shown in FIG.
  • 9 (A) and 9 (B) are block diagrams showing a schematic configuration of a biological sample activity signal measuring device according to a third embodiment of the present invention.
  • FIG. 10 is a graph showing the variation of the average value of the standard deviation with respect to Carbacho 1 concentration.
  • FIGS. 11 (A) and 11 (B) are block diagrams showing a schematic configuration of a biological sample activity signal measuring apparatus according to a fourth embodiment of the present invention.
  • FIG. 12 is a graph showing the result of approximating the variation of the standard deviation before and after administering Carbachol by a normal distribution.
  • FIG. 13 is a diagram showing a result of approximating, by a normal distribution, a variation in the standard deviation before and after administering Carbacho 1 obtained by a conventional method.
  • FIG. 14 is a diagram showing the amount of separation when the average value and half-value width of the obtained normal distribution are compared with reference values.
  • FIG. 15 is a block diagram showing a schematic configuration of a biological sample activity signal measuring device according to another embodiment of the present invention.
  • FIG. 16 is a block diagram showing a schematic configuration of an apparatus for measuring an activity signal of a biological sample according to still another embodiment of the present invention.
  • FIG. 1 is a schematic diagram of a main part of an apparatus for measuring an activity signal of a biological sample according to a first embodiment of the present invention.
  • a measurement electrode 1 for detecting a physicochemical signal of a biological sample such as a cell is formed on an upper surface (a surface on which a biological sample is placed) of a porous insulating substrate 5, and a conductive wire is 2 is derived.
  • a physicochemical signal is a signal generated by a biological sample such as a cell, a signal generated from a specific site to be measured, such as a cell ion channel, or a cell channel or receptor that responds to a drug. Such as a signal that changes due to a specific event in the measurement object such as activation of a signal.
  • porous insulating substrate 5 a nylon mesh is used in the present embodiment, but is not limited thereto.
  • Cellulose mixed ester Ethylene, polycarbonate, polypropylene, polyethylene terephthalate and the like may be used.
  • isopore made of polyethylene terephthalate: manufactured by Millipore
  • omnipore made of polytetrafluoroethylene: manufactured by Millipore
  • a typical example is a pore diameter of 5 and a thickness of 100 m, but a porous insulating substrate having a thickness of 100 m or more can also be suitably used.
  • This measuring device is manufactured as follows. First, the measurement electrode 1 and the conductive wire 2 are formed on the porous insulating substrate 5. The formation of the measurement electrode 1 and the conductive wire 2 is preferably performed by sputtering a conductive material. In the present embodiment, gold is used as a conductive material, and high-frequency plasma is generated between a pair of electrodes under low vacuum conditions in the presence of an inert gas such as argon, so that the gold on the cathode is ionized with ion energy. It is flipped and formed on a porous insulating substrate on the opposite anode. The electrodes and the conductive wires can be formed by a vacuum deposition method, a printing method, or the like in addition to the sputtering method.
  • the conductive material instead of using gold as the conductive material, platinum, copper, silver, silver and silver chloride, platinum and platinum black may be selected.
  • a conductive material made of a conductive plastic can be used.
  • the measurement electrode 1 is sputtered, it is preferable to form the electrode material so that the electrode material penetrates deep into the porous insulating substrate 5 without using a mask.
  • the conductive wire 2 is patterned by previously covering the porous insulating substrate 5 with a mask (not shown) so as to suppress the penetration of the conductive material into the deep portion of the porous insulating substrate 5.
  • the shape of the formed measurement electrode 1 is a disk shape in the present embodiment, but may be any shape according to the measurement target.
  • the size of the measuring electrode 1 is not particularly limited, but in the present embodiment, the measuring electrode 1 has a horizontal sectional area substantially equal to the horizontal sectional area of the measuring chamber A described later.
  • the porous insulating substrate 5 is sandwiched between the cell isolation part 3 and the support substrate 6.
  • the cell isolation part 3 and the support substrate 6 each have an opening, and are arranged such that the centers of the opening of the cell isolation part 3, the measurement electrode 1 of the porous insulating substrate 5 and the opening of the support substrate 6 substantially coincide with each other. You. As a result, a measurement chamber A (corresponding to the entire space of the opening formed in the cell isolation unit 3 in FIG. 1) defined by the opening wall of the cell isolation unit 3 and the porous insulating substrate 5 is formed.
  • the cell isolation part 3 and the support substrate 6 are fixed by an adhesive layer 4 made of an adhesive interposed at the periphery of the opening.
  • the adhesive layer 4 preferably has easy releasability and water-blocking property, and examples thereof include one-component RTV rubber (deacetic acid type) KE42T (Shin-Etsu Chemical Co., Ltd.).
  • a reference electrode 7 is provided on the side wall of the measurement chamber A, and the reference electrode 7 is immersed in the liquid 23 to be measured contained in the measurement chamber A.
  • the reference electrode 7 provides a reference potential for detecting an activity signal of a biological sample to be measured, and is composed of, for example, Ag—AgCl.
  • a DMEM culture solution can be exemplified as the test solution 23, and animal-derived cells can be exemplified as the cells to be cultured.
  • the upper portion of the measurement chamber A is covered with a lid 21, which prevents the liquid 23 to be measured from evaporating.
  • the lid 21 may not necessarily be provided depending on the type of the liquid 23 to be measured and the measurement conditions, etc.
  • the suction line attachment 8 is fixed to the lower surface side of the support substrate 6 via the adhesive layer 9.
  • the suction line attachment 8 is tapered upward from below. It has a suction section 8a that expands and a suction line 8b connected to the suction section 8a, and alignment is performed so that the suction section 8a substantially matches the opening of the support substrate. Will be In this way, a suction chamber B defined by the porous insulating substrate 5, the opening wall of the support substrate 6, and the inner wall of the sucking bow I portion 8a is formed.
  • the suction line attachment 8 functions as a transfer device for suctioning and transferring the liquid 23 to be measured, and is connected to a suction pump (not shown) on the suction line 8b. In this way, an activity signal measuring device for a biological sample can be configured.
  • a test solution 23 such as a cell culture solution is injected into the measurement chamber A.
  • the amount of the liquid 23 to be supplied to the measurement chamber A is, for example, 50 microliters.
  • the amount of the liquid 23 to be dropped onto the suction champ B via the porous insulating substrate 5 is very small.
  • the quantity of 3 is less than 150.
  • a suction pump (not shown) is operated to suck the liquid 23 to be measured in the measurement chamber A.
  • the pressure in the suction chamber B is reduced.
  • the biological sample 25 such as cells contained in the liquid 23 to be measured cannot pass through the porous insulating substrate 5 and is adsorbed on the measurement electrode 1 as shown in FIG.
  • the activity signal generated by the biological sample 25 can be detected as a potential difference generated between the measurement electrode 1 and the reference electrode 7. For example, when the biological sample 25 is a cell, as shown in Fig.
  • a cell in a stationary state is generated because the opening and closing of ion channels are in a balanced state, and the change in conductance of each channel is small.
  • the voltage change is small, and the amplitude of the potential near the cell membrane becomes substantially uniform.
  • active cells have a large change in the generated voltage due to a large change in the conductance of each channel due to the non-equilibrium state of the opening and closing of the ion channels, and the vicinity of the cell membrane.
  • the amplitude of the potential becomes non-uniform. Therefore, the activity state of the cell can be determined based on the time-series change of the detected potential difference.
  • the inside of the apparatus is cleaned by supplying a cleaning solution such as saline to measurement chamber A while operating a suction pump (not shown).
  • a cleaning solution such as saline
  • the next liquid 23 to be measured is poured into the measuring chamber A. In this way, for example, an activity signal of a biological sample can be sequentially measured for various solutions containing a compound as a product candidate.
  • the biological sample 25 is brought into close contact with the measurement electrode 1 simply by supplying the liquid 23 to be measured to the measurement chamber A and sucking it through the suction line attachment 8.
  • the contact resistance can be increased and the signal detection sensitivity can be increased.
  • replacement and cleaning of the liquid 23 to be measured can be performed in a short time by the suction line attachment 8.
  • the activity signal of the biological sample can be detected easily, quickly and with high accuracy.
  • FIG. 4 is a schematic plan view of a biological sample activity signal measuring device according to a second embodiment of the present invention.
  • This device is a device in which 16 measurement electrodes 1 in the device of the first embodiment shown in FIG. 1 are arranged in a matrix, and in this embodiment, the diameter of each measurement electrode 1 is 2 mm, and the measurement electrodes 1 are adjacent to each other.
  • the distance between measuring electrodes 1 is l mm.
  • the number of measuring electrodes 1, arrangement, size, etc. shape but is not limited to this embodiment, a good Masui an example, the area of the measuring electrode 1 1 111 2-1 0
  • the shape is almost circular or rectangular, the distance between adjacent measuring electrodes 1 is 10 to: L0000m, and the arrangement is matrix-like.
  • the same components as those in the first embodiment are denoted by the same reference numerals, and detailed description will be omitted.
  • the measurement electrode 1 and the conductive wire 2 connected to the measurement electrode 1 are arranged on the surface side of the porous insulating substrate 5.
  • the porous structure may be destroyed to further enhance the insulating property.
  • the reference electrode 7 and the conductive wire 12 connected to the reference electrode 7 are provided on the inner wall and the upper surface of the opening of the cell isolation part 3 corresponding to each measurement electrode 1.
  • the cell isolation part 3 is usually made of a transparent material.
  • FIG. 5 is a (A) plan view and (B) cross-sectional view of the cell isolation part 3
  • FIG. 6 is a (A) plan view and (B) cross-sectional view of the porous insulating substrate 5.
  • the measurement chamber A is formed at each opening of the cell isolation section 3 in which a plurality of measurement electrodes (not shown) are respectively arranged.
  • the measurement electrode 1 The conductive wire 2 is formed through the mask layer 10 formed on the upper surface of the porous insulating substrate 5 while being formed by impregnating the inside of the porous insulating substrate 5 by sputtering the material without a mask.
  • FIG. 7 and 8 are partial cross-sectional views of the device shown in FIG. 4.
  • FIG. 7 shows a region C on an enlarged scale
  • FIG. 8 shows a region D on an enlarged scale.
  • the biological sample 25 such as a cell contained in the liquid 23 to be measured is sucked by the suction line attachment (not shown) to be adsorbed to the measurement electrode 1.
  • a plurality of suction portions (corresponding to reference numeral 8a in FIG. 1) of the suction line attachment are provided in correspondence with each measurement electrode 1, and are provided through a common suction line (corresponding to reference numeral 8b in FIG. 1).
  • Biological samples 25 can be simultaneously adsorbed to each measurement electrode 1. As a result, the activity signal of the biological sample under various conditions can be measured in a short time. Attachment of the biological sample 25 to each measurement electrode 1 can be performed at different timings by providing individual suction lines for each measurement electrode 1 instead of providing a common suction line.
  • FIG. 9 is a block diagram showing a schematic configuration of a biological sample activity signal measuring device according to the third embodiment of the present invention.
  • This apparatus has the function of processing the electric signal detected in the measuring section 101 as the measuring section (signal source) 101 in the apparatus according to the first embodiment.
  • a unit standard deviation calculation unit 102 calculates the standard deviation using a predetermined number of samples as one unit based on the time series data detected by the measurement unit 101. Each unit containing a predetermined number of samples may be continuous in time, or may be at regular time intervals.
  • the average value calculation unit 105 calculates the average value of the obtained plurality of standard deviations.
  • the activity evaluation unit 120 evaluates the activity of the biological sample based on the average value of the standard deviation.
  • the activity evaluation unit 120 includes an activity calculation unit 108 and an activity classification unit 109, and calculates the activity based on the input information according to the purpose of measurement. The activity can be classified by comparing it with information stored in advance.
  • the overnight display section 110 displays the obtained activity on a screen. According to this device, constant Noise can be removed from digital signals (predetermined time-series data) acquired at sampling rates of, for example, to extract, measure, and classify significant signals representing the opening and closing of ion channels.
  • the unit standard deviation calculation unit 102, the average value calculation unit 105, and the activity evaluation unit 108 read a hard disk on which a program for executing these calculations is recorded.
  • the data display unit 110 can be configured by a built-in computer, and the data display unit 110 can be configured by a CRT.
  • the computer further includes a normal distribution approximation unit 103, a stimulus generation unit 104, and a mean / half width calculation unit 106, which will be described later.
  • Carbachol is a chemical known to be an analog of the neurotransmitter acetylcholine.
  • Carbachol manufactured by Sigma
  • Carbachol is dissolved in artificial cerebrospinal fluid and allowed to act on neurons at concentrations of 0, 0.1, 0.3, 1, 3, 10, 30, and 100 M.
  • the electrical signals emitted by the cells when they were exposed were measured.
  • time-series data every 100 milliseconds was sampled from the time-series data for 10 seconds obtained from the measurement unit 101, and the standard deviation was calculated.
  • the result of plotting the average value of the obtained standard deviations is shown in FIG.
  • the average value of the standard deviation represents the fluctuation of the potential near the cell membrane, and this value can be used to evaluate the activity of the ion channel.
  • the average value of the standard deviation increases as the concentration of Carbacho 1 increases, but the average value of the standard deviation decreases with the peak at 10.
  • the measurement method and apparatus according to the present embodiment confirmed that the activity of the ion channel in the mussel neurons was dependent on the concentration of Carbachol. Furthermore, based on the results of this experiment, it is possible to infer the total channel activity of neurons.
  • FIG. 11 is a block diagram showing a schematic configuration of a biological sample activity signal measuring device according to a fourth embodiment of the present invention.
  • This device as shown in Fig. 11 (B), A configuration similar to that of the third embodiment (see FIG. 9B) is provided.
  • the mean value calculation unit 105 in FIG. 9A is not used, and the normal distribution approximation unit 103 and the mean / half-width calculation unit 106 are used, so that the configuration shown in FIG. Is done.
  • the normal distribution approximation unit 103 classifies the plurality of standard deviations obtained by the unit standard deviation calculation unit 102 into a plurality of classes set for each predetermined width. Then, this class is set as the X axis, the number of standard deviations classified into each class is plotted on the Y axis, and the obtained graph is approximated to a normal distribution. Methods for approximating the normal distribution include various curve approximation analyses, such as exponential decrease, exponential increase, Gaussian, Lorenz, sigma, multiple peaks, and nonlinearity.
  • the average value / half width calculation unit 106 calculates the average value and the half value width (width that is half the peak height) of the obtained normal distribution.
  • the action of the chemical substance Carbacho 1 on nerve cells was measured using nerve cells prepared from a mussel as a material.
  • the normal distribution approximation unit 103 created the frequency distribution of the standard deviation based on the detection signal of the measurement unit 101 before and after administering 50 M concentration of Carbacho 1 to the neurons of the mussel.
  • Fig. 12 shows the result of approximating the normal distribution by creating a histogram using the standard deviation calculated every 5 ms based on the time series data consisting of the detection signals for 10 seconds before and after administering Carb ac ho 1
  • the graph on the left shows the state before administration
  • the graph on the right shows the state after administration.
  • the average value and the half width of the standard deviation were increased by the administration of Carbacho1.
  • the average and half-value widths before administration are 0.478 and 0.109, while the average and half-value widths before administration are 0.407 and 0.109. It was 175. This result is considered to indicate that the administration of Carbachol activated the ion channel of the mussel neuron, and the action potential fluctuated due to the opening and closing of the activated channel.
  • FIG. 13 shows the results of comparison before and after administration by the conventional intracellular recording method under the same conditions as in the above experiment.
  • the measurement method according to the present embodiment is based on the extracellular recording method. However, comparing FIG. 12 and FIG. 13, it can be seen that the same results as in the case of the intracellular recording method were obtained.
  • the measurement method of the present invention it is possible to easily measure the cell activity associated with the opening and closing of the ion channel and the change thereof without using the conventional intracellular recording method. Therefore, for example, the electrical change of the biological sample can be measured without forming a high-resistance shield (gigashield) between the biological sample and the measurement device, and the biological sample may be damaged. There is no.
  • a high-resistance shield gigashield
  • the absolute value of the channel activity and the increase / decrease of the channel activity before and after the administration of the drug to the cells or the dose can be compared.
  • Qualitative or quantitative classification can be performed.
  • Fig. 14 shows a normal distribution graph of the standard deviation from the detection signal of the measuring unit 101, and the difference between the average value and half-value width of this normal distribution compared to the reference value is the relative shift value. And the results expressed as relative spread.
  • the relative movement values and relative spreads to difendipine were stored in advance in a database at various concentrations (0. IMIOOM) as parameters, and the effects of the two Ca channel inhibitors A and B were determined. Classification was performed.
  • compound A has a similar behavior of relative migration value and relative spread for each concentration to difludipine ( ⁇ ), and a Ca ion channel similar to difludipine. Presumed to be an inhibitor.
  • compound B mouth
  • the distance from the reference value is within a predetermined value range (for example, within a circle of ⁇ 5% shown by a broken line in the figure). By judging whether or not this is the case, drug screening can be performed efficiently.
  • the evaluation is performed by using the difference amount when the average value and the half width of the normal distribution obtained based on the detection signal are compared with the reference value, respectively.
  • the activity may be evaluated by appropriately using a parameter based on the standard deviation (or variance) of the obtained normal distribution.
  • the configuration of the fourth and fifth embodiments shown in FIG. 11 (A) may be further provided with a sample distribution unit 1111 to obtain the configuration shown in FIG.
  • the sample sorting unit 111 is a very effective means for analyzing the characteristics of each of multiple types of ion channels present on the cell membrane.
  • the signal adding unit 107 adds the activity signal generated in the selected one or a plurality of measuring units (signal sources) 101.
  • each biological sample can be stimulated at the same time, whereby the timing of a plurality of activity signals to be added is increased. Can be matched.
  • the liquid to be measured passes through the porous insulating substrate by providing a suction line attachment and sucking the liquid to be measured.
  • the liquid to be measured can be configured to pass through the porous insulating substrate.
  • the average value calculation unit calculates the average value based on the plurality of standard deviations calculated by the unit standard deviation calculation unit.
  • the plurality of standard deviations may be grouped into a certain number in a time series, and an average value may be calculated for each group.
  • the time at which this average value is equal to or higher than a predetermined value and / or the time at which the rate of increase of the average value is equal to or lower than the predetermined value are identified.
  • the data may be displayed on the data display unit. This can provide an indication of the time lag before a chemical substance affects cell activity. Industrial applicability
  • an activity signal measurement device and a measurement method for a biological sample capable of easily, quickly, and accurately detecting an activity signal emitted from the biological sample.
  • the present invention is applicable to, for example, high-speed drug screening, cytodiagnosis (for example, discrimination between cancer cells and normal cells), and can be carried out on-site at the time of surgery or the like.

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Description

明 細 書 生体試料の活動信号計測装置および計測方法 技術分野
本発明は、 細胞などの生体試料が発する活動信号を計測する装置および方法に 関する。 背景技術
従来、 生体試料の活動に伴い発せられる物理化学的信号は、 電気的信号や、 生 体試料に取り込まれた指示薬により発せられる蛍光強度信号などのデジタル信号 として、 測定装置に取り込まれて測定される。 例えば、 細胞のチャンネル活性度 は、 単一チャンネルレベルで測定する場合、 パッチクランプなどの微小電極プロ ーブと専用の制御装置とを用いた電気生理測定装置によって得られるチャンネル 通過電気量を表すデジタル信号から、 チャンネルの開閉時間、 タイミング、 回数 などを算出することにより測定される。
パッチクランプ法は、 マイクロピぺットの先端部分につけた細胞膜の微小部分 (パッチ) を用いて、 単一のチャネルタンパク質分子を介するイオンの輸送を微 小電極プローブによって電気的に記録する方法である。 パッチクランプ法は、 細 胞生物学の技術の中で、 1個のタンパク質分子の機能をリアルタイムで調べるこ とのできる数少ない方法の 1つである (例えば、 細胞の分子生物学、 第 3版、 G a r 1 and Pub l i s h i ng, I nc > New Yo rk、 1994、 日本語版、 中村桂子ら監訳、 181〜 182頁、 1995年、 教育社を参照) 。 蛍光色素法は、 特定のイオンの濃度変化に応じて光を発する発光指示薬または 蛍光色素と画像処理法とを組み合わせることにより、 細胞の電気的活動を測定す る方法である。 例えば、 CCDカメラを用いて撮影した細胞の蛍光画像に基づい て、 細胞内のイオンの移動をモニタする。 蛍光色素法では、 細胞全体のイオンチ ヤンネル活性は、 一般に、 細胞内に流入するイオンの全体量を蛍光測定法によつ て測定する。 ところが、 パッチクランプ法は、 マイクロピペットの作製およびその操作など に特殊な技術を必要とし、 1つの試料の測定に多くの時間を要するため、 大量の 薬品候補化合物を高速でスクリーニングするのには適していない。 また、 蛍光色 素法は、 大量の薬品候補化合物を高速でスクリーニングできるが、 細胞を染色す る工程が必要であり、 測定において、 色素の影響によるバックグラウンドが高い 上に、 時間とともに脱色するため S ZN比が悪いという欠点がある。
生体試料の電気化学的変ィ匕を観察する方法を開示する従来文献として、 特許第
2 9 4 9 8 4 5号、米国特許第 5 8 1 0 7 2 5号、米国特許第 5 5 6 3 0 6 7号、 特開平 9一 8 2 7 3 1 8号、 国際公開第 0 1 / 2 5 7 6 9号、 米国特許第 5 1 8 7 0 6 9号、 国際公開第 9 8 / 5 4 2 9 4号、 国際公開第 9 9ノ 6 6 3 2 9号、 国際公開第 9 9 / 3 1 5 0 3号などが挙げられる。
特許第 2 9 4 9 8 4 5号、 米国特許第 5 8 1 0 7 2 5号、 米国特許第 5 5 6 3 0 6 7号、 および特開平 9— 8 2 7 3 1 8号は、 ガラス基板上にフォトリソダラ フ技術を用いて微小電極を構成し、 細胞の電気的変化を多点で細胞外測定できる ことを特徴とする一体化複合電極とそれを用いた計測システムを開示する。 国際公開第 0 1 / 2 5 7 6 9号は、 絶縁基板上に貫通孔を備え、 この貫通孔に イオンチヤンネルを含む細胞などの生体試料を配置することによって、 細胞など および絶縁基板表面上にギガシ一ルドを構成し、 このギガシールドにより隔てら れた 2つの領域に設置された基準電極および測定電極を用いて、 イオンチャネル をイオンが通過するときに発生する電流を測定できる基板を開示する。
米国特許第 5 1 8 7 0 6 9号は、 電極上で細胞を培養し、 インピーダンス変化 を測定することにより、 細胞の増殖をモニタできるデバイスを開示する。
国際公開第 9 8 / 5 4 2 9 4号は、 平板電極上に細胞を接着させ、 その電気的 信号を測定するデバイスを,示する。
国際公開第 9 9/ 6 6 3 2 9号は、 多孔性の材料上にある細胞の活動状態を、 抵抗またはインピーダンス変化により観察するデバイス、 およびそれを用いたァ ッセィ法を開示する。 国際公開第 9 9 / 3 1 5 0 3号は、 貫通孔を備えた基板を用い、 この貫通孔に 細胞をトラップすることによりパツチクランプを形成し、 電流変化を測定する方 法を開示する。
その他、 本出願に関する先行例として、 特開平 1 1— 3 2 6 1 6 6号公報、 特 開平 5— 1 5 7 7 2 8号公報、 および特開昭 6 2 - 7 3 1 5 2号公報を挙げるこ とができる。 発明の開示
本発明は、 生体試料が発する活動信号を容易、 迅速且つ高精度に検出すること ができる生体試料の活動信号計測装置および計測方法の提供を目的とする。
本発明の前記目的は、 生体試料の活動信号を計測する装置であって、 生体試料 を含む被測定液を収容する測定チャンバと、 少なくとも一方面に測定電極を備え る多孔性絶縁基板と、 前記測定チャンバ内の被測定液を搬送して、 前記測定電極 側から前記多孔性絶縁基板を通過させる搬送装置とを備え、 前記搬送装置を作動 させて、 被測定液に含まれる生体試料を前記測定電極において捕捉することによ り、 該測定電極を介して生体試料の活動信号を計測することができる生体試料の 活動信号計測装置により達成される。
また、 本発明の前記目的は、 生体試料の活動信号を計測する方法であって、 生 体試料を含む被測定液を測定チヤンバに注入するステツプと、 前記測定チヤンバ から被測定液を搬送して、 少なくとも一方面に測定電極を備える多孔性絶縁基板 を通過させることにより、前記測定電極において生体試料を捕捉するステツプと、 前記測定電極を介して生体試料の活動信号を計測するステップとを備える生体試 料の活動信号計測方法により達成される。 図面の簡単な説明
第 1図は、 本発明の第 1の実施形態に係る生体試料の活動信号計測装置の要部 概略構成図である。
第 2図は、 第 1図に示す装置の要部拡大図である。
第 3図 (A) および (B) は、 生体試料 (細胞) の活動状況を示す模式図であ る。
第 4図は、 本発明の第 2の実施形態に係る生体試料の活動信号計測装置の概略 平面図である。
第 5図は、 第 4図に示す装置の細胞隔離部の (A) 平面図および(B) 断面図 である。
第 6図は、 第 4図に示す装置の多孔性絶縁基板の (A) 平面図および (B) 断 面図である。
第 7図は、 第 4図に示す装置の一部断面図である。
第 8図は、 第 4図に示す装置の他の一部断面図である。
第 9図 (A) および (B) は、 本発明の第 3の実施形態に係る生体試料の活動 信号計測装置の概略構成を示すプロック図である。
第 10図は、 Ca rbacho 1濃度に対する標準偏差の平均値の変動を示す 図である。
第 11図 (A) および (B) は、 本発明の第 4の実施形態に係る生体試料の活 動信号計測装置の概略構成を示すプロック図である。
第 12図は、 Ca rbacho lを投与する前後における標準偏差のばらつき を正規分布で近似した結果を示す図である。
第 13図は、 従来の方法により求めた C a rbacho 1を投与する前後にお ける標準偏差のばらつきを正規分布で近似した結果を示す図である。
第 14図は、 得られた正規分布の平均値および半値幅をそれぞれ基準値と比較 したときの隔たり量を示す図である。
第 15図は、 本発明の他の実施形態に係る生体試料の活動信号計測装置の概略 構成を示すブロック図である。
第 16図は、 本発明の更に他の実施形態に係る生体試料の活動信号計測装置の 概略構成を示すブロック図である。 発明を実施するための最良の形態
以下、 本発明の実施の形態について図面を参照しながら説明する。
(実施の形態 1) 図 1は、 本発明の第 1の実施形態に係る生体試料の活動信号計測装置の要部概 略構成図である。 この装置は、 多孔性絶縁基板 5の上面 (生体試料を配置する側 の面)に、細胞などの生体試料の物理化学的信号を検出する測定電極 1を形成し、 この測定電極 1から導電線 2が導出されるように構成されている。 物理化学的信 号とは、 細胞などの生体試料が発する信号のうち、 細胞のイオンチャンネルのよ うな測定対象の特定部位から発生する信号、 または、 薬剤に応答する細胞のィォ ンチヤンネルや受容体の活性化のような測定対象における特定の事象に起因して 変化する信号などである。
多孔性絶縁基板 5として、本実施形態においてはナイロンメッシュを用いるが、 これに限定されず、セルロース混合エステル >親水性ポリビニリデンジフロラィド、 疎水性ポリビニリデンジフ口ライド、ポリテトラフルォロエチレン、ポリカーポネ 一卜、 ポリプロピレン、 ポリエチレンテレフ夕レートなどを用いてもよい。 具体 的には、 ァイソポア (ポリエチレンテレフタレート製:ミリポア社製) ゃォムニ ポア (ポリテトラルフルォロエチレン製:ミリポア社製) などを好ましく用いる ことができる。 また、 多孔性絶縁基板 5のサイズとして、 通常、 1〜: L O O O mの孔径および 1〜: L 0 0 0 0 mの厚さを有するものが選択される。 代表的な 例として、 5 の孔径および 1 0 mの厚さを挙げることができるが、 1 0 0 m以上の厚さの多孔性絶縁基板も好適に用いることができる。
この計測装置は、 以下のようにして製造される。 まず、 多孔性絶縁基板 5に測 定電極 1および導電線 2を形成する。 測定電極 1および導電線 2の形成は、 導電 性材料のスパッ夕により行うことが好ましい。 本実施形態においては、 導電性材 料として金を用い、 アルゴンなどの不活性ガスの存在下、 低真空条件にある一対 の電極間に高周波によるプラズマを発生させ、 陰極上の金をイオンエネルギーで はじき飛ばし、 対向する陽極上にある多孔性絶縁基板上に形成する。 電極および 導電線の形成は、 スパッ夕法以外に、 真空蒸着法や印刷法などにより形成するこ とも可能である。また、導電性材料として金を使用する代わりに、白金、銅、銀、 銀および塩化銀、 白金および白金黒などから選択してもよい。 また、 金属材料以 外に、 導電性プラスチックからなる導電性材料を用いることもできる。 測定電極 1のスパッ夕時には、 マスクを用いず、 多孔性絶縁基板 5の深部に電 極材料が侵入するように形成するのが好ましい。 一方、 導電線 2は、 あらかじめ 多孔性絶縁基板 5をマスク (図示せず) で覆ってパターニングし、 多孔性絶縁基 板 5の深部への導電性材料の侵入を抑制することが好ましい。
形成された測定電極 1の形状は、 本実施形態においては円板状であるが、 測定 対象に応じて任意の形状とすることができる。 また、 測定電極 1のサイズについ ても特に制限はないが、 本実施形態においては、 後述する測定チャンバ Aの水平 断面積と略同じ大きさの水平断面積を有する。
こうして、 測定電極 1および導電線 2を多孔性絶縁基板 5に形成した後、 この 多孔性絶縁基板 5を細胞隔離部 3と支持基板 6との間に挟持する。 細胞隔離部 3 及び支持基板 6はそれぞれ開口を有しており、 細胞隔離部 3の開口、 多孔性絶縁 基板 5の測定電極 1および支持基板 6の開口の各中心が略一致するように配置す る。 これにより、 細胞隔離部 3の開口壁および多孔性絶縁基板 5によって画定さ れる測定チヤンバ A (図 1における細胞隔離部 3に形成された開口部の空間全体 に相当) が形成される。 細胞隔離部 3と支持基板 6とは、 開口周縁に介在させた 接着剤からなる接着層 4により固定される。 この接着層 4は、 易剥離性および止 水性を有することが好ましく、 例えば、 一液型 R TVゴム (脱酢酸タイプ) KE 4 2 T (信越化学工業株式会社) を挙げることができる。
測定チャンバ Aの側壁には基準電極 7が設けられており、 基準電極 7は、 測定 チャンバ Aに収容した被測定液 2 3に浸漬される。 基準電極 7は、 測定対象とな る生体試料の活動信号を検出するための基準電位を与えるものであり、 例えば、 A g— A g C lからなる。 また、 被測定液 2 3として、 DME M培養液を例示す ることができ、 培養する細胞として、 動物由来細胞を例示することができる。 測定チヤンバ Aの上部は蓋体 2 1によつて覆われており、 これによつて被測定 液 2 3の蒸発を防止することができる。 尚、 蓋体 2 1は、 被測定液 2 3の種類や 測定条件などによっては必ずしも必要でなぐ 蓋体 2 1を設けない構成にするこ ともできる。
次に、 支持基板 6の下面側に、 接着層 9を介して吸引ラインアタッチメント 8 を固定する。 吸引ラインアタッチメント 8は、 下方から上方に向けてテーパ状に 拡がる吸引部 8 aと、 この吸引部 8 aに接続される吸引ライン 8 bとを有してお り、吸引部 8 aが支持基板 .6の開口と略一致するように、位置合わせが行われる。 こうして、 多孔性絶縁基板 5、 支持基板 6の開口壁および吸弓 I部 8 aの内壁によ つて画定される吸引チャンバ Bが形成される。 この吸引ラインアタッチメント 8 は、 被測定液 2 3を吸引して搬送するための搬送装置として機能し、 吸引ライン 8 bに吸引ポンプ (図示せず) に接続される。 このようにして、 生体試料の活動 信号計測装置を構成することができる。
次に、 この装置を用いた生体試料の活動信号計測方法を説明する。 まず、 測定 チャンバ Aに細胞培養液などの被測定液 2 3を注入する。 測定チャンバ Aに供給 される被測定液 2 3の量は、 例えば、 5 0マイクロリツトルである。
吸引部 8 aに吸引力を作用させない状態では、 多孔性絶縁基板 5を介して吸引 チャンパ Bに落下する被測定液 2 3の量はごく僅かであり、 通常は測定チャンパ Aにおける被測定液 2 3の量の 1 5 0以下である。
次に、 吸引ポンプ (図示せず) を作動させて、 測定チャンバ Aの被測定液 2 3 を吸引する。 これにより、 吸引チャンバ Bは減圧されるので、 被測定液 2 3は多 ?し性絶縁基板 5を通過し、 吸引チャンバ Bを介して吸引ライン 8 bを矢示の方向 に流れる。 一方、 被測定液 2 3に含まれる細胞などの生体試料 2 5は多孔性絶縁 基板 5を通過することができず、 図 2に示すように、 測定電極 1に吸着される。 この生体試料 2 5が発する活動信号は、 測定電極 1と基準電極 7との間に生じる 電位差として検出することができる。 例えば、 生体試料 2 5が細胞である場合、 図 3 (A) に示すように、 静止状態の細胞は、 イオンチャンネルの開閉が平衡状 態にあり、 チャンネル毎のコンダクタンスの変化が小さいため、 発生電圧変化が 小さく、 細胞膜近傍電位の振幅が略均一となる。 これに対し、 図 3 (B) に示す ように、 活動状態の細胞は、 イオンチャンネルの開閉が非平衡状態にあり、 チヤ ンネル毎のコンダクタンスの変化が大きいため、 発生電圧変化が大きく、 細胞膜 近傍電位の振幅が不均一となる。 したがって、 検出される電位差の時系列変化に 基づいて、 細胞の活動状態を ffiiiすることができる。
測定終了後は、 吸引ポンプ (図示せず) を作動させながら測定チャンバ Aに生 理食塩水などの洗浄液を供給することにより装置内部を洗浄し、 必要に応じて多 孔性絶縁基板 5を取り替えた後、次の被測定液 2 3を測定チャンバ Aに注入する。 こうして、 例えぱ¾品候補となる化合物を含む各種溶液に対して、 生体試料の活 動信号の測定を順次行うことができる。
このように、 本実施形態の計測方法によれば、 被測定液 2 3を測定チャンバ A に供給し吸引ラインアタッチメント 8を介して吸引するだけで、 生体試料 2 5を 測定電極 1に密着させることができ、 接触抵抗を増大させて、 信号検出感度を上 げることができる。 更に、 被測定液 2 3の入れ換えや洗浄も、 吸引ラインァタツ チメント 8により短時間で行うことができる。 この結果、 生体試料の活動信号を 容易、 迅速且つ高精度に検出することができる。
(実施の形態 2 )
図 4は、 本発明の第 2の実施形態に係る生体試料の活動信号計測装置の概略平 面図である。 この装置は、 図 1に示す第 1の実施形態の装置における測定電極 1 をマトリクス状に 1 6個配置したものであり、 本実施形態においては各測定電極 1の直径を 2 mmとし、 隣接する測定電極 1の間隔を l mmとしている。 測定電 極 1の数、 配置、 大きさ、 形状などは、 本実施形態のものに限定されないが、 好 ましい一例を挙げると、 測定電極1の面積は1 1112〜1 0
Figure imgf000010_0001
形状はほぼ円ま たは矩形、 隣接する測定電極 1の間隔は 1 0〜: L 0 0 0 0 mで、 配置はマトリ クス状である。 本実施形態において、 上記第 1の実施形態と同様の構成部分に同 一の符号を付して、 詳細な説明を省略する。
図 4において、 測定電極 1およびこれに接続される導電線 2は、 多孔性絶縁基 板 5の表面側に配置されている。 多孔性絶縁基板 5の表面における複数の導電線 2の間に熱またはレーザを作用させることにより、 多孔性構造を破壊して絶縁性 をより高めるようにしてもよい。 また、 基準電極 7及びこれに接続される導電線 1 2は、 各測定電極 1に対応させて、 細胞隔離部 3の開口内壁および上面にそれ ぞれ設けられている。 細胞隔離部 3は、 通常は透明な材質からなる。
図 5は、 細胞隔離部 3の (A) 平面図および (B) 断面図であり、 図 6は、 多 孔性絶縁基板 5の (A) 平面図および (B) 断面図である。 図 5に示すように、 測定チャンバ Aは、 複数の測定電極 (図示せず) がそれぞれ配置される細胞隔離 部 3の各開口部に形成される。 図 6 (B) に示すように、 測定電極 1は、 導電性 材料をマスクなしでスパッ夕することにより、 多孔性絶縁基板 5の内部まで含浸 させて形成される一方、 導電線 2は、 多孔性絶縁基板 5の上面に形成したマスク 層 1 0を介してスパッ夕することにより、 多孔性絶縁基板 5の内部への侵入を抑 制して形成される。 図 7および図 8は、 図 4に示す装置の部分断面図であり、 図 7は、 領域 Cを拡大して示し、 図 8は、 領域 Dを拡大して示している。 被測定液 2 3に含まれる細胞などの生体試料 2 5は、 第 1の実施形態と同様に、 吸引ライ ンアタッチメント (図示せず) によって吸引されることにより、 測定電極 1に吸 着される。 吸引ラインアタッチメントの吸引部 (図 1の符号 8 aに相当) は、 各 測定電極 1に対応して複数設けられており、 共通の吸引ライン (図 1の符号 8 b に相当) を介して、 各測定電極 1に生体試料 2 5を同時に吸着させることができ る。 これにより、 各種条件下における生体試料の活動信号の計測を短時間で行う ことができる。 各測定電極 1への生体試料 2 5の吸着は、 共通の吸引ラインを設 ける代わりに測定電極 1毎に個別に吸引ラインを設けることにより、 それぞれ異 なるタイミングにすることもできる。
(実施の形態 3 )
図 9は、 本発明の第 3の実施形態に係る生体試料の活動信号計測装置の概略構 成を示すブロック図である。 この装置は、 上記第 1の実施形態における装置を測 定部 (信号源) 1 0 1とし、 この測定部 1 0 1において検出される電気信号を処 理する機能を有するものであり、 図 9 (A) に示すように、 単位標準偏差計算部 1 0 2、 平均値計算部 1 0 5、 活性度評価部 1 2 0およびデータ表示部 1 1 0を 備えている。 単位標準偏差計算部 1 0 2は、 測定部 1 0 1において検出された時 系列データに基づき、 所定のサンプル数を一単位として標準偏差を算出する。 所 定サンプル数を含む各単位は、 時間的に連続してもよく、 或いは一定の時間間隔 をおいてもよい。 平均値計算部 1 0 5は、 得られた複数の標準偏差の平均値を算 出する。 活性度評価部 1 2 0は、 標準偏差の平均値に基づいて、 生体試料の活性 度を評価する。 活性度評価部 1 2 0は、 活性度計算部 1 0 8および活性度分類部 1 0 9を備えており、 計測の目的に応じて、 入力された情報に基づいて活性度を 計算したり、 予め格納された情報と比較して活性度を分類することができる。 デ 一夕表示部 1 1 0は、 得られた活性度を画面表示する。 この装置によれば、 一定 のサンプリング速度で取り込まれたデジタル信号 (所定の時系列データ) からノ ィズを除去して、 例えばイオンチャンネルの開閉を表す有意信号を抽出、 測定お よび分類することができる。
図 9 (B) に示すように、 単位標準偏差計算部 102、 平均値計算部 105お よび活性度評価部 108は、 これらの計算を実行するためのプログラムが記録さ れたハ一ドディスクを内蔵するコンピュータにより構成することができ、 データ 表示部 110は、 CRTにより構成することができる。 尚、 図 9 (B) に示すよ うに、コンピュータは、正規分布近似部 103、刺激発生部 104および平均値 · 半値幅計算部 106を更に備えており、 これらについては後述する。
上記構成を有する本実施形態の装置を用いて、 モノアラガイより調製した神経 細胞を材料に、化学物質 C a rbacho 1の神経細胞に対する作用を測定した。 Ca r bacho lは、 神経伝達物質であるァセチルコリンのアナログであるこ とが知られる化学物質である。 Ca r bacho l (S i gma社製) を人工脳 一脊髄液に溶解し、 0, 0. 1, 0. 3, 1, 3, 10, 30, および 100 Mの濃度で神経細胞に作用させたときの細胞が発する電気信号をそれぞれ測定し た。 そして、 各 Ca rbacho l濃度について、 測定部 101から得た 10秒 間の時系列データから 100ミリ秒ごとの時系列データをサンプリングし、 標準 偏差を計算した。得られた標準偏差の平均値をプロットした結果を図 10に示す。 標準偏差の平均値は、 細胞膜近傍電位の揺らぎを表しており、 この値によって イオンチヤンネルの活性度を評価することができる。 図 10に示すように、 C a r bacho 1濃度が大きくなるにつれて標準偏差の平均値も大きくなるが、 1 0 をピークに標準偏差の平均値は小さくなる。 このように、 本実施形態に係 る計測方法および装置により、 モノアラガイの神経細胞におけるイオンチャネル の活性が、 Ca rbacho l濃度に依存することを確認することができた。 更 に、 本実験結果に基づいて、 神経細胞の全チャネル活性度を類推することが可能 である。
(実施の形態 4)
図 11は、 本発明の第 4の実施形態に係る生体試料の活動信号計測装置の概略 構成を示すブロック図である。 この装置は、 図 11 (B) に示すように、 上記第 3の実施形態と同様の構成(図 9 (B)参照) を備えている。そして、 図 9 (A) における平均値計算部 105を使用しない一方、 正規分布近似部 103および平 均値 ·半値幅計算部 106を使用することにより、 図 11 ( A) に示すように構 成される。
正規分布近似部 103は、 単位標準偏差計算部 102で得られた複数の標準偏 差を、 所定幅ごとに設定された複数の階級に分類する。 そして、 この階級を X軸 とし、 各階級に分類された標準偏差の数を Y軸にプロットして、 得られたグラフ を正規分布に近似する。正規分布に近似する方法としては、指数減少、指数増加、 ガウス、 ローレンツ、 シグマ、 多重ピーク、 非線形などの各種曲線近似解析を挙 げることができる。 平均値 ·半値幅計算部 106は、 得られた正規分布の平均値 および半値幅 (ピーク高さの半分となる幅) を計算する。
上記構成を有する本実施形態の装置を用いて、 モノアラガイより調製した神経 細胞を材料に、化学物質 C a rbacho 1の神経細胞に対する作用を測定した。 具体的には、 モノアラガイの神経細胞に対し 50 M濃度の C a rbacho 1 を投与する前後における測定部 101の検出信号に基づいて、 正規分布近似部 1 03が標準偏差の頻度分布を作成した。
図 12は、 Ca r b ac ho 1を投与する前後 10秒間の検出信号からなる時 系列データに基づき、 5ミリ秒毎に計算して得た標準偏差によりヒストグラムを 作成して正規分布に近似した結果であり、 左側のグラフが投与前の状態を示し、 右側のグラフが投与後の状態を示している。 図 12に示すように、 C a r b a c ho 1の投与により、 標準偏差の平均値および半値幅が大きくなつていることが わかる。 平均値 ·半値幅計算部 106による算出結果は、 投与前の平均値および 半値幅が 0. 478および 0. 109であるのに対し、 投与後の平均値および半 値幅が 0. 703および 0. 175であった。 この結果は、 Ca rbacho l を投与することによって、 モノアラガイ神経細胞のイオンチャンネルが活性化さ れ、 その活性化されたチャンネルの開閉による活動電位の変動を表していると考 えられる。
上記実験と同様の条件で、 従来の細胞内記録法により投与前後を比較した結果 を図 13に示す。 本実施形態に係る計測方法は、 細胞外記録法によるものである が、 図 1 2と図 1 3とを比較すると、 細胞内記録法の場合と同様の結果が得られ ていることがわかる。 このように、 本発明の計測方法によれば、 従来の細胞内記 録法を用いることなぐ イオンチャンネルの開閉に伴う細胞活動、 およびその変 化を容易に測定することができる。 したがって、 例えば、 生体試料と測定用デバ イスとの間に高抵抗のシールド (ギガシ一ルド) を形成しなくても生体試料の電 気的変化を計測することができ、.生体試料を傷つけるおそれがない。
また、 本発明により、 細胞への薬物投与の前後またはその投与量に対するィォ ンチヤンネル活性度の絶対値やチヤンネル活性度の増減を比較することができ、 例えば以下に示すように、 薬物の作用効果の定性的または定量的な分類を行うこ とができる。
(実施の形態 5 )
平滑筋細胞の C aイオンチャンネルの活性は、 ノルェピネフィリン 1 0 iM剌 激時において、 二フエジピンにより濃度依存的に阻害されることが、 細胞内記録 法などによって確認されている。 本実施形態においては、 上記第 4の実施形態に 係る生体試料の活動信号計測装置を用いて薬剤を評価する方法を説明する。
図 1 4は、 測定部 1 0 1の検出信号から標準偏差の正規分布グラフを作成し、 この正規分布の平均値および半値幅をそれぞれ基準値と比較したときの隔たり量 を、 相対的移動値および相対的広がりとして表した結果である。 二フエジピンに の相対的移動値および相対的広がりを、 種々の濃度 ( 0 . I M I O O M) をパラメ一夕として予めデータベースに格納しておき、 2種類の C aチャンネル 阻害薬 Aおよび Bについて作用効果の分類を行った。
図 1 4に示すように、 化合物 A (△) は、 各濃度に対する相対的移動値および 相対的広がりの挙動が二フエジピン (〇) とほぼ同様であり、 二フエジピンと同 様の C aイオンチャンネル阻害剤であると推定される。これに対し、化合物 B (口) は、 濃度が変化しても相対的移動値および相対的広がりがほとんど変化せず、 二 フエジピン (〇) とは挙動が大きく異なっているので、 平滑筋細胞には存在しな いタイプの C aイオンチャンネル阻害剤である可能性が高いと考えられる。 この ようにして、 種々の薬物についての作用効果を推定することができる。 更に、 図 1 4に示す相対的移動値および相対的広がりに基づいて、 基準値から の隔たり量が所定値の範囲内 (例えば、 図に破線で示す ± 5 %の円内) に存在す るか否かを判断することにより、 薬品スクリ一二ングを効率よく行うことができ る。
(その他の実施形態)
以上、 本発明の各実施形態について説明したが、 本発明の具体的な態様は上記 実施形態に限定されない。 例えば、 上記第 4および第 5の実施形態においては、 検出信号に基づき得られた正規分布の平均値および半値幅をそれぞれ基準値と比 較したときの隔たり量を用いて評価を行っているが、 得られた正規分布の標準偏 差 (または分散) に基づくパラメータを適宜用いて、 活性度を評価してもよい。 また、 図 1 1 (A) に示す第 4および第 5の実施形態の構成においてサンプル 振り分け部 1 1 1を更に備えることにより、 図 1 5に示す構成にしてもよい。 サ ンプル振り分け部 1 1 1は、 細胞膜上に複数種類存在する各イオンチャンネルご との特徴を解析する時に、 非常に有効な手段である。
また、 図 1 1 (A) に示す第 4および第 5の実施形態の構成においては、 測定 部 (信号源) 1 0 1を 1つのみ用いているが、 第 2の実施形態に示すように複数 の測定電極 1 0 1を備える場合には、図 1 6に示すように構成することができる。 この計測装置において、信号加算部 1 0 7は、選択した 1または複数の測定部(信 号源) 1 0 1において発生した活動信号を加算する。各信号源 1 0 1に対しては、 刺激発生部 1 0 4から剌激信号を付与することにより各生体試料を同時に刺激す ることができ、 これによつて加算する複数の活動信号のタイミングを一致させる ことができる。
また、 上記各実施形態においては、 吸引ラインアタッチメントを設けて被測定 液を吸引することにより、 被測定液が多孔性絶縁基板を通過するように構成して いるが、 被測定液の搬送手段として吸引ラインアタッチメントの代わりに加圧装 置を設けて測定チヤンバを加圧することにより、 被測定液が多孔性絶縁基板を通 過するように構成することもできる。
また、 上記第 3の実施形態において、 平均値計算部は、 単位標準偏差計算部に より算出された複数の標準偏差に基づいて平均値を算出するようにしているが、 更に、 この複数の標準偏差を時系列に沿って一定数ごとにグループ分けを行い、 各グループ毎に平均値を算出するようにしてもよい。 各グループの平均値が時系 列に沿って増加する場合、 この平均値が所定値以上となった時刻、 および/また は、 平均値の増加率が所定値以下となった時刻を特定して、 データ表示部に表示 させるようにしてもよい。 これにより、 化学物質が細胞活動に影響を与えるまで のタイムラグの目安を得ることができる。 産業上の利用可能性
以上のように、 本発明によれば、 生体試料が発する活動信号を容易、 迅速且つ 高精度に検出することができる生体試料の活動信号計測装置および計測方法を提 供することができる。
本発明は、 例えば、 高速薬品スクリーニングや、 細胞診断 (例えば、 がん細胞 と正常細胞との識別) などに適用可能であり、 手術などの際にオンサイトで実施 することができる。

Claims

請求の範囲
1 . 生体試料を含む被測定液を測定チヤンバに注入するステツプと、
前記測定チャンバから被測定液を搬送して、 少なくとも一方面に測定電極を備 える多孔性絶縁基板を通過させることにより、 前記測定電極に生体試料を捕捉さ せるステップと、
前記測定電極を介して生体試料の活動信号を計測するステップとを備える生体 試料の活動信号計測方法。
2 . 前記測定電極に生体試料を捕捉させるステップは、 被測定液を吸引して前記 多孔性絶縁基板を通過させるステップを備える請求の範囲第 1項に記載の生体試 料の活動信号計測方法。
3 . 前記測定電極に生体試料を捕捉させるステップは、 前記測定チャンバに収容 された被測定液を全て搬送して排出するステツプを含み、
前記活動信号を計測するステツプの後、 新たな生体試料を含む被測定液を測定 チヤンバに注入するステップを更に備え、
前記測定チヤンバから被測定液を再び搬送することにより、 生体試料の活動信 号の計測を繰り返す請求の範囲第 1項に記載の生体試料の活動信号計測方法。
4. 前記測定電極に生体試料を捕捉させるステップは、 前記測定チャンバに収容 された被測定液を全て吸引して前記多孔性絶縁基板を通過させるステツプを備え る請求の範囲第 3項に記載の生体試料の活動信号計測方法。
5 . 前記活動信号を計測するステップの後、 新たな生体試料を含む被測定液を測 定チヤンバに注入するステップの前に、 前記多孔性絶縁基板を取り替えるステツ プを更に備える請求の範囲第 3項に記載の生体試料の活動信号計測方法。
6 . 前記多孔性絶縁基板は、 ?し径が 1〜1 0 0 0 ΠΙで、 厚さが 1〜: L 0 0 0 0 mの樹脂フィルムからなる請求の範囲第 1項に記載の生体試料の活動信号計測 方法。
7 . 前記多孔性絶縁基板は、 一方面にマスク層を介して形成され且つ前記測定電 極に電気的に接続された導電線を更に備え、
前記測定電極は、 前記導電線よりも前記多孔性絶縁基板の深部まで侵入して形 成されている請求の範囲第 1項に記載の生体試料の活動信号計測方法。
8. 前記測定電極及び導電線は、 前記多孔性絶縁基板の表面に導電性材料をスパ ッ夕リングすることにより形成されている請求の範囲第 7項に記載の生体試料の 活動信号計測方法。
9. 前記被測定液を測定チャンバに注入するステップは、 同一または異なる被測 定液を複数の測定チャンバにそれぞれ注入するステップを備え、
前記測定電極に生体試料を捕捉させるステツプは、 前記各測定チヤンバと連通 する共通の吸引ラインを介して前記各測定チヤンバに収容された被測定液を吸引 し、 前記各測定チヤンバに対応してそれぞれ設けられた複数の測定電極を少なく とも一方面に備える多孔性絶縁基板を通過させることにより、 同一または異なる 生体試料を前記各測定電極に同時に捕捉させるステップを備える請求の範囲第 1 項に記載の生体試料の活動信号計測方法。
1 0 . 前記測定電極を介して出力される活動信号の時系列データに基づき、 所定 のサンプル数毎に標準偏差を算出するステップと、
得られた複数の標準偏差の平均値を算出するステップと、
得られた標準偏差の平均値に基づいて、 生体試料の活性度を評価するステップ と、
活性度の評価結果を表示するステップとを備える請求の範囲第 1項に記載の生 体試料の活動信号計測方法。
1 1 . 前記測定電極を介して出力される活動信号の時系列データに基づき、 所定 のサンプル数毎に標準偏差を算出するステツプと、
得られた複数の標準偏差を所定幅ごとに設定された複数の階級に分類し、 この 分類結果を正規分布に近似するステツプと、
得られた正規分布に基づいて生体試料の活性度を評価するステツプと、 活性度の評価結果を表示するステップとを備える請求の範囲第 1項に記載の生 体試料の活動信号計測方法。
1 2. 前記活性度を評価するステップは、 得られた正規分布の平均値および半値 幅を算出するステツプと、 得られた正規分布の平均値および半値幅に基づいて活 性度を評価するステップとを含む請求の範囲第 1 1項に記載の生体試料の活動信 号計測方法。
1 3. 生体試料を含む被測定液を収容する測定チャンバと、 少なくとも一方面に測定電極を備える多孔性絶縁基板と、
前記測定チヤンバ内の被測定液を搬送して、 前記測定電極側から前記多孔性絶 縁基板を通過させる搬送装置とを備え、
前記搬送装置を作動させて、 被測定液に含まれる生体試料を前記測定電極にお いて捕捉することにより、 該測定電極を介して生体試料の活動信号を計測するこ とができる生体試料の活動信号計測装置。
1 4. 前記測定チャンバ内に設けられた基準電極を更に備える請求の範囲第 1 3 項に記載の生体試料の活動信号計測装置。
1 5 . 前記搬送装置は、 被測定液を吸引して前記多孔性絶縁基板を通過させる吸 引装置を備える請求の範囲第 1 3項に記載の生体試料の活動信号計測装置。
1 6. 前記多孔性絶縁基板は、 前記測定チャンバと前記吸引装置との間に着 Ml &に設けられる請求の範囲第 1 5項に記載の生体試料の活動信号計測装置。
1 7 . 前記多孔性絶縁基板は、 ?し径が 1〜: L O O O ^mで、 厚さが 1〜: L 0 0 0 0 の樹脂フィルムからなる請求の範囲第 1 3項に記載の生体試料の活動信号
1 8. 前記測定電極に電気的に接続された導電線を更に備え、
前記導電線は、 前記多孔性絶縁基板の一方面にマスク層を介して形成されてお り、
前記測定電極は、 前記導電線よりも前記多孔性絶縁基板の深部まで侵入して形 成されている請求の範囲第 1 3項に記載の生体試料の活動信号計測装置。
1 9. 前記測定電極及び導電線は、 前記多孔性絶縁基板の表面に導電性材料をス パッ夕リングすることにより形成される請求の範囲第 1 8項に記載の生体試料の 活動信号計測装置。
2 0. 前記測定チャンバおよび前記測定電極を複数備え、
前記搬送装置は、 前記各測定チヤンバと連通する共通の吸引ラインを有してお り、
前記搬送装置の作動により、 前記各測定チヤンバに収容された被測定液に含ま れる生体試料を、 対応する前記測定電極において同時に捕捉することができる請 求の範囲第 1 3項に記載の生体試料の活動信号計測装置。
2 1 . 前記測定チャンパ内にそれぞれ設けられた複数の基準電極を更に備える請 求の範囲第 2 0項に記載の生体試料の活動信号計測装置。
2 2. 前記測定電極を介して出力される活動信号の時系列データに基づき、 所定 のサンプル数毎に標準偏差を算出する単位標準偏差計算手段と、
得られた複数の標準偏差の平均値を算出する平均値計算手段と、
得られた標準偏差の平均値に基づいて、 生体試料の活性度を評価する活性度評 価手段と、
活性度の評価結果を表示する表示手段とを更に備える請求の範囲第 1 3項に記 載の生体試料の活動信号計測装置。
2 3. 前記測定電極を介して出力される活動信号の時系列データに基づき、 所定 のサンプル数毎に標準偏差を算出する単位標準偏差計算手段と、
得られた複数の標準偏差を所定幅ごとに設定された複数の階級に分類し、 この 分類結果を正規分布に近似する正規分布近似手段と、
得られた正規分布に基づいて生体試料の活性度を評価する活性度評価手段と、 活性度の評価結果を表示する表示手段とを更に備える請求の範囲第 1 3項に記 載の生体試料の活動信号計測装置。
2 . 得られた正規分布の平均値および半値幅を算出する平均値 ·半値幅計算手 段を更に備え、
前記活性度評価手段は、 得られた正規分布の平均値および半値幅に基づいて活 性度を評価する請求の範囲第 2 3項に記載の生体試料の活動信号計測装置。
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