WO2003086072A1 - Composition for storing organ and method of storing organ - Google Patents

Composition for storing organ and method of storing organ Download PDF

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WO2003086072A1
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organ
composition
inulin
preserving
preservation
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PCT/JP2003/004024
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Yoshihiko Masaki
Kazunari Yoshida
Tadao Endo
Hirofumi Nakamura
Yasuhito Tashiro
Original Assignee
Meiji Seika Kaisha, Ltd.
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    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02Preservation of living parts
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02Preservation of living parts
    • A01N1/0205Chemical aspects
    • A01N1/021Preservation or perfusion media, liquids, solids or gases used in the preservation of cells, tissue, organs or bodily fluids
    • A01N1/0226Physiologically active agents, i.e. substances affecting physiological processes of cells and tissue to be preserved, e.g. anti-oxidants or nutrients

Definitions

  • the present invention relates to an organ preservation composition comprising inulin-type fructan and a method for preserving an organ using the composition.
  • Organ transplantation can be the last treatment when routine treatment is difficult due to severe organ disease such as end-stage organ failure.
  • Transplantation treatment has come to be considered as one of the safe treatments because of sufficient securing of transplanted organs, improvement of organ preservation technology, improvement of transplantation procedures, and rejection
  • organ transplantation is not limited to simply extracting organs from donors (organ donors) and transplanting them into recipients (organ recipients).
  • organ recipients One of the major issues is how to preserve the organs removed from the donor in good condition.
  • organs in a living body die after prolonged interruption of blood flow. For example, in the case of liver, it is said that irreversible changes occur in 30 to 90 minutes if blood is blocked at room temperature.
  • living organ transplantation it is possible to adjust the time from organ removal to transplantation.
  • preservation of the removed organ is performed by the low temperature immersion method.
  • initial perfusion flushing
  • a cooled perfusate a cooled perfusate
  • the organ is immersed at a low temperature using a cooled storage solution. Cooling an organ can reduce its oxygen consumption, but cooling and preserving the organ will destroy the sodium pump in the cell membrane. For this reason, it has been considered advantageous to use a high potassium / low sodium solution having the same composition as the intracellular solution as a preservation solution for organs.
  • collins collins (Collins) solution containing glucose and an intracellular fluid-type electrolyte
  • Euro-Collins solution from which magnesium was removed from Collins solution were used as organ preservatives.
  • these preservatives are effective for the kidney, they may not provide sufficient tissue and cell protection for organs other than the kidney.
  • UW Universal of Wisconsin
  • UW Universal of Wisconsin
  • the UW solution is an electrolyte solution obtained by adding lactobionate and laffinose as an impermeable agent, hydroxyethyl starch as a colloid osmotic agent, and adenosine and insulin as energy metabolism promoting components.
  • UW solution is commercially available from DuPont Pharmaceuticals under the trade name ViaSpan and is widely used clinically.
  • UW solution not only has problems in stability and preparation method, but also is a preservation solution in a single product form, so it can fully support various organs such as heart, liver, kidney, lung, kidney, small intestine, etc. May not be true.
  • Organ preservatives usually contain carbohydrates such as glucose, raffinose, and mannitol. However, very little is known about what types of carbohydrates are suitable for organ preservation as far as we know.
  • JP-A-6-48001 European Patent No. 580444 discloses an organ preservative containing trehalose, hydroxyethyl starch and various electrolytes. However, it does not disclose the availability of the inulin-type fructan.
  • the present inventors have now found that the use of an organ preservative containing inulin-type fructan when preserving an organ significantly suppresses the deterioration of the function of the preserved organ and damage to the histological structure thereof.
  • the present invention is based on this finding.
  • an object of the present invention is to provide a composition for preserving an organ which is excellent in the function of maintaining the function and histological structure of the preserved organ.
  • composition for preserving organs according to the present invention comprises inulin-type fructan as an active ingredient.
  • the method for preserving an organ according to the present invention comprises contacting an organ with an organ preserving amount of the organ preserving effective amount.
  • a method for inhibiting or improving an organ comprising contacting the organ preserving composition with an effective amount of the organ preserving composition. And methods for reducing or improving damage.
  • an inulin-type fructan for producing an organ preservative.
  • the composition for preserving organs according to the present invention can significantly reduce organ function and damage to histological structures and improve the preservation state of organs as compared with conventionally known organ preservatives. It is. Therefore, the organ preserving composition and organ preservation method of the present invention can be widely used not only in the medical and clinical fields dealing with transplanted organs, but also in various fields where organs and the like may be stored. [Brief description of drawings]
  • FIG. 1 is a graph showing the amount of urine excreted from the kidney after continuous perfusion for 60 minutes in the isolated perfused kidney model of Example 1.
  • FIG. 2 is a graph showing creatinine 'clearance (Ccr) of the kidney in the isolated perfused kidney model of Example 1 at the time of performing continuous perfusion for 60 minutes.
  • FIG. 3 is a photograph of a histopathological image (magnification: 100 ⁇ ) of the kidney in Example 1 after being stored at 4 ° C. for 48 hours using a predetermined composition for preserving an organ.
  • 3A shows a histopathological image when organ preservation composition 2 (EC + 10% GF 3 ) is used
  • FIG. 3B shows an organ preservation composition 13 (UW solution). In this case, a histopathological image is shown.
  • FIG. 4 is a photograph of a histopathological image (magnification: 100 ⁇ ) of the liver after storage for 48 hours at 4 ° C. using the predetermined composition for preserving an organ in Example 2.
  • FIG. 4A shows a histopathological image when organ preservation composition 1 (EC + 5% GF 3 ) was used
  • FIG. 4B shows a case where organ preservation composition 13 (UW solution) was used.
  • 2 shows a histopathological image of the skeletal image.
  • FIG. 5 is a photograph of a histopathological image (magnification: 100 ⁇ ) of a heart after storage for 24 hours at 4 ° C. using a predetermined organ preservation composition in Example 3.
  • FIG. 5A shows a histopathological image when the organ preserving composition 14 (EC + 2.5% GF 3 ) was used
  • FIG. 5B shows an organ preserving composition 15 (EC solution). Histopathological image when used.
  • FIG. 6 is a photograph of a histopathological image (magnification: 100 ⁇ ) of the lung after storage for 24 hours at 4 ° C. using a predetermined organ preservation composition in Example 3.
  • FIG. 6A shows a histopathological image when the organ preserving composition 14 (EC + 2.5% GF 3 ) was used
  • FIG. 6B shows an organ preserving composition 15 (EC solution).
  • Fig. 2 shows a histopathological image when using the method.
  • composition for preserving organs according to the present invention comprises, as described above, an inulin-type fructan. It contains as an active ingredient.
  • “comprising as an active ingredient” means that it may include a carrier according to a desired dosage form, and of course includes a case where it contains another drug that can be used in combination.
  • the inulin-type fructan is a fructan having a degree of polymerization of 3 or more in which fructose is polymerized on sucrose by a /? 2 ⁇ 1 bond, and glucose is bonded to the reducing end. Therefore, Inurin type fructan, can be represented by the chemical structure GF n.
  • G is a glucosyl unit
  • F is a fructosyl unit
  • n means the number of fructose molecules linked to each other.
  • the polymerization degree of the inulin-type fructan is preferably from 3 to 30, more preferably from 3 to 6.
  • the inulin-type fructan in the present invention may be composed of one having any of the above-mentioned degrees of polymerization, or may be a mixture of two or more types of inulin-type fructans having different degrees of polymerization.
  • the mixture may contain the inulin-type fructans having different degrees of polymerization in any content.
  • the mixture comprises at least 10% by weight, more preferably at least 55% by weight, even more preferably at least 95% by weight of inulin-type fructan having a degree of polymerization of 3 to 6.
  • the inulin-type fructan is a mixture of two or more inulin-type fructans selected from inulin-type fructans having a degree of polymerization of 3 to 6.
  • the inulin-type fructan has a degree of polymerization of 3, ie, 1-kestose (GF 2 ).
  • the inulin-type fructan is a inulin-type fructan with a degree of polymerization of 4, ie, disodium (GF 3 ).
  • the inulin-type fructan usable in the present invention may be of natural origin or may be obtained by chemical synthesis.
  • Inulin-type fructans are contained in the roots and rhizomes of plants such as Iridaceae, Asteraceae, Lily and Orchidaceae, or in cereals. Therefore, the inulin-type fructone can be obtained by extraction and / or purification from chicory or Jerusalem artichoke in accordance with a known method.
  • Inulin-type fructan can also be obtained by reacting sucrose with an enzyme having fructose transfer activity. Further, by reacting an enzyme such as inulinase-dinulin fructotransferase and saccharase with high-molecular-weight inulin-type fructan, an inulin-type fructan having a desired degree of polymerization can be obtained. When an inulin-type fructan is obtained by synthesis, it can be synthesized according to a known method.
  • inulin-type fructan that can be used in the present invention are as follows. Both the inulin-type fructan and the inulin-type fructan mixture obtained in the course of the following process can be used in the present invention.
  • an inulin-type fructan mixture containing 55% by weight or more of inulin-type fructan having a degree of polymerization of 3 to 6 (trade name: Meioligo G) (Meiji Seika) Co., Ltd.) can be obtained. Purifying the inulin-type fructan mixture using column chromatography or membrane separation to obtain an inulin-type fructan mixture further containing a high degree of inulin-type fructan having a polymerization degree of 3 to 6. Can be.
  • inulin-type fructan containing 95% by weight or more of inulin-type fructan having a polymerization degree of 3 to 6 (trade name: Mayoligo P) (Meiji Seika Co., Ltd.) (Made by the company).
  • an inulin-type fructan containing a single component as a main component such as 1-kestose (degree of polymerization 3), nystose (degree of polymerization 4), or fructosyl nystose
  • the compounding amount of the inulin-type fructan is not particularly limited, and can be appropriately changed depending on the use form and use environment of the composition.
  • the composition may be in the form of an inulin-type fructan alone.
  • the inulin-type fructan is preferably contained in the solution of the organ preserving composition in an amount of 3.5 to 300 g / L, more preferably 5 to 300 g / L. 0 to: 150 g / L, most preferably 50 to 100 g / L.
  • the concentration of inulin-type fructan can be appropriately changed depending on the organ to be preserved or perfused.
  • Optional ingredients can be appropriately changed depending on the organ to be preserved or perfused.
  • composition for preserving organs according to the present invention may further comprise an optional component in addition to the inulin-type fructan.
  • optional ingredients include, for example, carbohydrates, electrolytes, organic acids, vitamins, amino acids, hormones, antibiotics, active oxygen scavengers, anticoagulants, antihypertensives, antifreezes, thrombolytics, and pharmaceutical additives Agents (carriers) and solvents.
  • carbohydrates examples include glucose, sucrose, lactose, raffinose, trehalose, suixose, galactosyltrehalose, mannitol, sorbitol, maltitol, erythritol, palatinose, lactitol, xylitol. Tall, hydroxyethyl starch, dextran and the like.
  • electrolyte examples include sodium chloride, potassium chloride, magnesium chloride, calcium chloride, sodium dihydrogen phosphate, potassium dihydrogen phosphate, disodium hydrogen phosphate, dibasic hydrogen phosphate, sodium carbonate, carbon dioxide rim, etc. Are mentioned.
  • organic acid examples include gluconic acid, lactic acid, acetic acid, propionic acid,? -Hydroxybutyric acid, citric acid, fumaric acid, succinic acid, oxalic acid, and maleic acid.
  • the organ preserving composition when the organ preserving composition is dissolved in a predetermined solvent, or when the organ preserving composition is in a solvent form, the solution in which the organ preserving composition is dissolved is inulin-type fructan.
  • the solution in which the organ preserving composition is dissolved is inulin-type fructan.
  • metal ions and anions are contained at a predetermined concentration. Therefore, when the composition for preserving an organ is dissolved by mixing the above-mentioned electrolyte, organic acid, or an organic acid salt thereof (for example, a sodium salt or a potassium salt) with the composition for preserving an organ according to the present invention. Then, the desired ions can be generated.
  • the organ preserving composition when the organ preserving composition is a liquid preparation, the organ preserving composition comprises the following components (a) to (d) in the following amounts:
  • the concentration of the K ion of component (c) is preferably 115 to 12 OmM.
  • Component (d) is preferably, CL_, HC0 3 _ and Z or C 0 3 2 - is.
  • the concentration of component (d) is preferably between 25 and 104 mM.
  • the organ preserving composition when the organ preserving composition is a liquid preparation, the organ preserving composition further contains at least one or more of the following components (e) to (h) in the following amounts. Become :
  • (h) Hydroxyethyl starch 0 to 100 g / Lo
  • concentration of Mg ion of the component (e) is preferably 0 to 5 mM.
  • the Ca ion concentration of the component (:) is preferably 0 to 5 mM.
  • Component (g) is preferably, H 2 P_ ⁇ 4 and HPC 2 - a.
  • the concentration of component (g) is preferably between 25 and 57.5 mM.
  • the concentration of hydroxyethyl starch of component (h) is preferably from 0 to 50 gZL.
  • the container preservation composition comprises the following components (a ') to (! 1,) in the following amounts.
  • organ preservation composition of the present invention include, for example, those containing the following components (a ′) and (h ′) in the following amounts:
  • an organ preserving composition according to the present invention is prepared by replacing all or a part of saccharides such as glucose and raffinose among the components of a known organ preserving solution with inulin-type fructan. Is also good.
  • hormones include, for example, dexamethasone, hydrocortisone, and the like
  • antibiotics include, for example, penicillin G, streptomycin, and the like.
  • anticoagulants include heparin
  • antihypertensives include vasodilators and chlorpromazine
  • examples of thrombolytic agents include perokinase.
  • Pharmaceutical additives include, for example, excipients, dispersants, preservatives, preservatives, emulsifiers, bulking agents, coloring agents, surfactants, buffers, solubilizers, stabilizers, pH adjustment Agents and the like.
  • Examples of the solvent include purified water, sterilized purified water, and physiological saline. Production method and use of composition for organ preservation
  • composition for preserving organs according to the present invention can be easily produced by those skilled in the art by using inulin-type fructan and following a known method for producing an organ preservative.
  • the dosage form of the composition for organ preservation of the present invention is usually in a liquid dosage form by including the above-mentioned solvent, but if necessary, powders, granules, tablets, capsules, etc.
  • a solid preparation When used in the form of a solid preparation, it can be dissolved, suspended or emulsified in a suitable solvent such as purified water, sterile purified water, or physiological saline before use.
  • the preservation of an organ includes, naturally, preserving an organ extracted in the process of organ transplantation, and performing perfusion in the organ in the process of organ transplantation; and This includes protecting unremoved organs or transplanted organs from various diseases and injuries.
  • composition for preserving an organ according to the present invention can be used for preservation and perfusion of an organ.
  • the composition for preserving organs can be used as a preservation solution and perfusion solution for organs.
  • the composition for preserving organs according to the present invention is preferably used for suppressing or ameliorating organ deterioration and damage that may occur during the process of organ transplantation.
  • an organ is not limited to a narrowly defined organ such as a heart, a liver, a kidney, a lung, and a tongue, but is a tissue such as an intestine, blood, bone marrow, eyeball, cornea, bone, skin, blood vessel, or heart valve. Is included.
  • the composition for preserving organs according to the present invention can be suitably used for preserving these organs.
  • the composition for preserving an organ according to the present invention is used for heart, liver, kidney, lung, lung, and more preferably for heart, liver, kidney, lung, and more preferably, kidney.
  • a method for preserving an organ comprising contacting the organ with an organ in an amount effective for preserving the organ.
  • the amount effective for organ preservation means an amount necessary for effective organ preservation, and can be appropriately determined according to the type and state of the organ, the form of the organ preservation composition, and the like.
  • contacting the organ preservation composition with the organ means that the organ preservation composition and the organ may be brought into contact at least in any one of the embodiments.
  • the organ preservation composition may be placed on the organ. It includes applying an object, immersing the organ in a solution comprising the organ preserving composition, and perfusing the organ with the organ preserving composition. When the organ is immersed in the solution, it is preferable to immerse the organ under a low temperature condition.
  • a method for preserving an organ is a method comprising contacting the organ preserving composition with an organ in an amount effective for preserving the organ, the method comprising preserving a cooled solvent.
  • a method comprising immersing an organ at a low temperature using the composition for preserving an organ is provided. More preferably, the preservation method further comprises a step of perfusing the excised organ using the cooled composition for organ preservation as a perfusate before the immersion step.
  • the low temperature is 0 to 4 ° C, preferably 3 to 4 ° C, and is about 4 ° C to give a specific example.
  • the amount of the composition for organ preservation in the form of a solvent used for preservation can be appropriately changed according to the weight of the organ and the estimated storage time, but usually, the amount in which the organ is sufficiently immersed is used. I do.
  • human kidney can be used in an amount of 80 Oml per about 400 g of kidney.
  • a method for inhibiting or improving an organ comprising contacting the organ preserving composition with an effective amount of the organ preserving composition. And methods for reducing or improving damage.
  • the effective amount for inhibiting or improving refers to the amount necessary for effectively suppressing or improving the functional deterioration and damage of the organ, and includes the type and state of the organ, the composition for organ preservation. It can be determined as appropriate according to the form of the product.
  • “function and damage to organs that can occur during the process of organ transplantation” include, for example, cell edema associated with Na / K pump failure and cell membranes and mitochondria caused by increased Ca concentration. Symptoms such as hydration disorders, production of hypoxanthine from ATP, and the like.
  • an inulin-type fructan for producing an organ preserving composition or an organ preserving agent.
  • An organ preservative is a medicine used for preserving an organ, and can be composed of the organ preserving composition according to the present invention.
  • the organ preservation composition or the organ preservative can be in the form of a preservation solution or a perfusion solution.
  • Organ preservation compositions 1 to 6 according to the present invention and organ preservation compositions 7 to 13 as comparative examples were prepared as follows.
  • Organ preservation composition 1-3 (the present invention)
  • the EC solution used was a solution in which the pudose injection solution was not mixed, and had the following electrolyte composition.
  • Organ preservation composition 4 ⁇ 6 was prepared. These compositions 4-6 have it it, be expressed as EC + 5% GF 2, EC + 10% GF 2, EC + 15% GF 2 below.
  • composition for organ preservation 7 (comparative example)
  • composition 7 For organ preservation, add 35 ml of Pudose Sugar Injection (50 w / v%) to the same volume of 465 ml of EC solution as in Organ Preservation Composition 1 to make a total volume of 500 ml. Composition 7 was prepared. This composition 7 may be referred to below as EC + 3.5G1c.
  • Organ preservation composition 8-11 (Comparative example)
  • organ preservation compositions 8 to 11 25 g, 50 g, 75 g, and 100 g of trehalose (manufactured by Hayashibara) were dissolved in 465 ml of the same EC solution as used for organ preservation composition 1, to prepare organ preservation compositions 8 to 11. .
  • organ preservation compositions 8-11 may be referred to below as EC + 5% Tre, EC + 10% Tre, EC + 15% Tre, EC + 20% Tre.
  • the organ preserving composition 13 As the organ preserving composition 13, a commercially available UW solution (trade name: Vispan, manufactured by Dubon Pharmaceuticals Co., Ltd.) was used.
  • mice were anesthetized by intraperitoneally administering about 400 g of SD rats (available from Japan SLC) with 50 mg / kg Nembu Yuil (trade name) (manufactured by Dynabot). The mice were then administered 1 ml of heparin and their kidneys were perfused with an organ preservation composition cooled to 4 ° C. Then, the mouse The kidney was excised from it, and the excised kidney was immediately transferred to a composition for organ preservation cooled to 4 ° C, where it was stored at 4 ° C for 48 hours.
  • kidneys After storing for 48 hours, the kidneys were subjected to a perfusion solution using a TN-type extirpator perfusion device (manufactured by Natsume Seisakusho) and Krebs-Henseleit solution containing 7.5% ⁇ albumin as a perfusate. Continuous perfusion for minutes.
  • a TN-type extirpator perfusion device manufactured by Natsume Seisakusho
  • Krebs-Henseleit solution containing 7.5% ⁇ albumin as a perfusate.
  • Urine volume and creatinine clearance (Ccr) were measured at 30, 60 and 90 minutes of perfusion.
  • urea For urea, a polyethylene tube was inserted into the ureter, and the urine output during a predetermined time was measured. Ccr was calculated based on the following equation (1).
  • FIG. 1 and FIG. 2 show the urine volume and C cr at the time of perfusion for 60 minutes.
  • the urine volume and C cr values when the kidneys were preserved using the organ preservation compositions 1, 2, 4, and 5 were more significant than when the comparative organ preservation composition was used. Showed a high value.
  • the preservation state of the kidney was evaluated based on histopathological findings.
  • the histopathological image of the kidney preserved using the organ preservation composition 2 (EC + 10% GF 3 ) was as shown in FIG. 3A.
  • tubular epithelial cells and brush border were well preserved, and no change was seen in glomeruli.
  • Organ Preservation Composition 4 (EC + 5% GF 2 )
  • Degeneration and shedding were observed in the child margin, but tubular epithelial cells were well preserved.
  • no changes were observed in the glomeruli, and the state of preservation was good.
  • kidney preserved with organ preservation composition 7 (EC + 3.5% G1c)
  • no glomerular changes were observed, but proximal tubular epithelial cell swelling and vacuolar degeneration were observed. I saw it.
  • the histopathological image of the kidney preserved using the organ preservation composition 13 was as shown in FIG. 3B.
  • the kidney in this case the glomeruli were well preserved, but there was slight shedding of proximal tubular epithelial cells outside the cortex and vacuolar degeneration.
  • an organ preserving composition 1 (EC + 5% GF 3 ) and an organ preserving composition 13 (UW solution) were prepared. The following tests were performed using each of these compositions.
  • the abdomen was opened, an elaster was inserted into the portal vein, and 5 ml of the organ preserving composition cooled to 4 ° C was flowed.
  • the artery above the liver was clamped, and the inferior vena cava was incised.
  • 20 ml of the organ preserving composition was flowed through Eras evening to remove the liver.
  • the excised liver was simply cooled and stored in the organ preservation composition for 48 hours.
  • FIG. 4A shows a histopathological image when organ preservation composition 1 (EC + 5% GF 3 ) was used
  • FIG. 4B shows an organ preservation composition 13 (UW solution). In this case, the pathological image is shown.
  • liver preserved using the organ preservation composition 1 showed only a slight degree of atrophy of hepatocytes, and the state of preservation was good. On the other hand, in the liver stored using the composition for organ preservation 13, hepatocyte atrophy was considerably observed, and hepatocyte dissociation tendency was observed. Mild to moderate denaturation was also observed.
  • Example 3 Heart and lung preservation test
  • an organ preservation composition 14 (EC + 2.5% GF 3 ) and an organ preservation composition 15 (EC solution) consisting of only EC solution were prepared. The following tests were performed using each of these compositions.
  • FIGS. 5A and 6A show the histological images of the organ preservation composition 14 (EC + 2.5% GF 3 ), and FIGS. 5B and 6B 3 shows a histopathological image when the composition for organ preservation 15 (EC solution) was used.
  • the heart preserved using the organ preservation composition 14 did not show any increase in eosinophilicity or nucleus concentration, and was in a good storage state.
  • the lungs stored using the organ preservation composition 14 had a well-opened alveolar cavity, no leaky hemorrhage, and were in a good storage condition.
  • the myocardial fiber was increased in acidophilicity and the nucleus was lightened. In addition, some of the striations were obscured.
  • the lung preserved using the organ preservation composition degeneration of the elastic fibers of the alveolar wall and atrophy of the alveoli were observed. In addition, leakage was observed with the degeneration of endothelial cells.

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Description

明 細 書 臓器保存用組成物および臓器の保存方法 [発 明 の 背 景]
発明の分野
本発明は、 ィヌリン型フルクタンを含んでなる臓器保存用組成物およびそれを 用いる臓器の保存方法に関する。
関連技術
臓器移植は、 末期臓器不全のような重篤な臓器疾患のために通常の治療が困難 な場合における最終治療法となりうるものである。
例えば、 日本では、 1 9 9 7年 1 0月に 「臓器の移植に関する法律 (いわゆる 臓器移植法) 」 が施行され、 従来の生体臓器移植 (特に生体肝移植) に加えて脳 死臓器移植が法的に可能になった。 一方、 欧米では、 3 0年以上も前から臓器提 供のシステムが確立されており、 これまでに心臓移植については 4 0 0 0 0例以 上、 腎臓移植については数十万例の移植が行われている。 欧米では、 移植医療が、 医療の一態様として社会に定着している。
移植治療が安全な治療法の一つとして考慮されるようになってきた背景として は、 移植臓器の確保が充分に成されること、 臓器保存技術の改善、 移植手技の向 上、 拒絶反応の制御が可能なこと等の環境が満たされつつあることが挙げられる 臓器移植においては、 単にドナ一 (臓器提供者) から臓器を摘出しレシピエン ト (臓器受容者) に移植することだけではなく、 ドナ一から摘出した臓器をいか に良好な状態で保存するかということは大きな課題の一つである。 一般的に、 生 体内の臓器は長時間血流が途絶えると壊死する。 例えば、 肝臓の場合、 常温で阻 血すると 3 0〜9 0分で不可逆的な変化が起こるとされている。 生体臓器移植で あれば臓器摘出から移植までの時間を調節することが可能である。 しかしながら、 臓器の摘出と移植とが異なった施設で行われる脳死臓器移植では、 組織適合性等 によるレシピエントの選択や臓器の搬送等に時間がかかることがあるため、 臓器 摘出から移植までの時間を短縮するには限界がある。 摘出した臓器の構造と機能 とを維持しながら可能な限りその臓器を長時間保存することは、 臓器移植の成否 を左右するボイントの一つである。
一般的に、 摘出した臓器の保存は低温浸漬法で行われる。 この方法は、 冷却し た灌流液を用いて摘出臓器を洗浄する初期灌流 (フラッシング) を行い、 次に冷 却した保存液を用いて臓器を低温浸漬保存する方法である。 臓器を冷却すること によりその酸素消費量を抑制することができるが、 臓器を冷却保存すると細胞膜 のナトリウムポンプが破壊される。 このため、 臓器の保存液として、 高カリウム /低ナトリウムである、 細胞内液と同様の組成を有する液を使用することが有利 とされていた。
臓器保存剤としては、 当初、 グルコースと細胞内液タイプの電解質を含むコリ ンズ (Collins) 液や、 コリンズ液からマグネシウムを除去したュ一ロコリンズ (Euro-Collins) 液等が用いられていた。 しかしながら、 これらの保存液は腎臓 には有効であるが、 腎臓以外の臓器に対しては、 組織 ·細胞の保護効果が十分で ないことがある。
近時、 ウィスコンシン大学のグループにより閧発された UW (University of Wisconsin) 液が、 臓器保存剤として多くの場合に使用されるようになっている c この UW液は、 肝臓ゃ滕臓の保存時間を延長することができるものであり、 例え ば、 特公平 7— 6 8 0 8 2号公報 (米国特許第 4879283号公報、 ドィヅ国特許第 3 843958号公報) 、 特公平 8— 2 2 8 0 1号公報に開示されている。 UW液は、 不 浸透剤としてのラクトビオン酸塩およびラフイノ一スと、 膠質浸透圧剤としての ヒドロキシェチル澱粉と、 エネルギー代謝促進成分としてのアデノシンやインス リンとを加えてなる電解質溶液である。 UW液は、 デュポン 'ファーマス一ティ カルズ (Du Pont Pharmaceuticals) 社から商品名ヴィァスパン (ViaSpan) とし て市販されており、 臨床的にも広く使用されている。 しかしながら、 UW液は安 定性や調製法に難点があるばかりでなく、 単一の商品形態の保存液であるため、 心臓、 肝臓、 腎臓、 肺、 脬臓、 小腸等多様な臓器に十分対応しているとはいえな いことがある。
このように、 保存による臓器の障害を軽減し、 臓器の保存状態を改善してその 保存時間を延長することができる臓器保存剤が依然として望まれている。 臓器保存剤には、 通常、 グルコース、 ラフイノース、 マンニトール等の糖質が 含まれている。 しかしながら、 どのようなタイプの糖質が臓器保存に適切である かについての知見は本発明者らの知る限り非常に少ない。
例えば、 特開平 6— 4 0 8 0 1号公報 (欧州特許第 580444号公報) には、 トレ ハロース、 ヒドロキシェチル澱粉および各種電解質を含む臓器保存剤が開示され ている。 しかしながら、 ここにはィヌリン型フルクタンの利用可能性については 開示されていない。
[発 明 の 概要]
本発明者らは今般、 臓器保存を行う際に、 ィヌリン型フルクタンを含む臓器保 存剤を用いることによって、 保存された臓器の機能低下およびその組織学的構造 の損傷を著しく抑制することを見出した。 これにより、 臓器保存状態を著しく改 善することがわかった。 本発明はかかる知見に基づくものである。
よって、 本発明は、 保存される臓器の機能および組織学的構造の維持作用に優 れた臓器保存用組成物の提供をその目的とする。
本発明による臓器保存用組成物は、 ィヌリン型フルクタンを有効成分として含 んでなるものである。
本発明による臓器の保存方法は、 臓器保存に有効な量の前記臓器保存用組成物 を、 臓器と接触させることを含んでなるものである。
また本発明の別の態様によれば、 抑制または改善する上での有効量の前記臓器 保存用組成物を、 臓器と接触させることを含んでなる、 臓器移植の過程で起こり うる臓器の機能低下および損傷を抑制または改善する方法が提供される。
本発明によれば、 臓器保存剤を製造するための、 ィヌリン型フルクタンの使用 が提供される。
本発明による臓器保存用組成物は、 従来知られている臓器保存剤に比べて、 臓 器機能の低下や組織学的構造の損傷を著しく抑制し、 臓器の保存状態を改善する ことができるものである。 このため、 本発明の臓器保存用組成物および臓器の保 存方法は、 移植臓器を取扱う医療および臨床分野のみならず、 臓器等を保存する ことがある様々な分野において、 広く用いることができる。 [図面の簡単な説明]
図 1は、 例 1の単離灌流腎モデルにおいて、 持続灌流を 60分間行った時点で の腎臓から排出された尿量を示すグラフである。
図 2は、 例 1の単離灌流腎モデルにおいて、 持続灌流を 60分間行った時点で の腎臓のクレアチニン 'クリアランス (Ccr) を示すグラフである。
図 3は、 例 1において、 所定の臓器保存用組成物を用いて、 4°Cで、 48時間 保存した後の腎臓の病理組織像 (倍率 100倍) の写真である。 この内、 図 3 A は、 臓器保存用組成物 2 (EC+ 10%GF3) を用いた場合の病理組織像を表 し、 図 3Bは、 臓器保存用組成物 13 (UW液) を用いた場合の病理組織像を表 す。
図 4は、 例 2において、 所定の臓器保存用組成物を用いて、 4°Cで、 48時間 保存した後の肝臓の病理組織像 (倍率 100倍) の写真である。 この内、 図 4A は、 臓器保存用組成物 1 (EC+5%GF3) を用いた場合の病理組織像を表し、 図 4Bは、 臓器保存用組成物 13 (UW液) を用いた場合の病理組織像を表す。 図 5は、 例 3において、 所定の臓器保存用組成物を用いて、 4°Cで、 24時間 保存した後の心臓の病理組織像 (倍率 100倍) の写真である。 この内、 図 5 A は、 臓器保存用組成物 14 (EC+2. 5%GF3) を用いた場合の病理組織像 を表し、 図 5Bは、 臓器保存用組成物 15 (EC液) を用いた場合の病理組織像 ¾表す。
図 6は、 例 3において、 所定の臓器保存用組成物を用いて、 4°Cで、 24時間 保存した後の肺の病理組織像 (倍率 100倍) の写真である。 この内、 図 6 Aは、 臓器保存用組成物 14 (E C + 2. 5%GF3) を用いた場合の病理組織像を表 し、 図 6Bは、 臓器保存用組成物 15 (EC液) を用いた場合の病理組織像を表 す。
[発明の具体的説明]
臓器保存用組成物
本発明による臓器保存用組成物は、 前記したように、 ィヌリン型フルクタンを 有効成分として含んでなるものである。
ここで 「有効成分として含んでなる」 とは、 所望する剤型に応じた担体を含んで いてもよいことは当然として、 併用可能な他の薬剤を含有する場合も包含する意 味である。
ィヌリン型フルクタン
ィヌリン型フルクタンは、 スクロースにフルクトースが/? 2→1結合で重合し た重合度 3以上のフルクタンであり、 還元末端にはグルコースが結合しているも のである。 したがって、 ィヌリン型フルクタンは、 化学構造 G F nで表すことが できる。 ここで、 Gはグルコシル単位であり、 Fはフルクトシル単位であり、 n は互いに結合されたフルクトース分子の数を意味する。
本発明において、 ィヌリン型フルクタンの重合度は、 好ましくは 3〜3 0、 よ り好ましくは 3〜 6である。
本発明におけるィヌリン型フルクタンは、 前記したいずれかの重合度を持つも の単独からなってもよいが、 2種以上の重合度が異なるィヌリン型フルクタンの 混合物であってもよい。
ィヌリン型フルクタンが、 2種以上の重合度が異なるィヌリン型フルクタンの 混合物である場合、 その混合物は、 重合度が異なるィヌリン型フルクタンを、 そ れそれ任意の含量で含むことができるが、 好ましくは、 該混合物は、 重合度 3〜 6であるィヌリン型フルクタンを 1 0重量%以上、 より好ましくは 5 5重量%以 上、 さらに好ましくは 9 5重量%以上含んでなる。
本発明の一つの好ましい態様によれば、 ィヌリン型フルクタンは、 重合度 3 ~ 6のィヌリン型フルクタンから選択される 2種以上のィヌリン型フルクタンの混 合物である。
本発明の別の一つの好ましい態様によれば、 ィヌリン型フルクタンは、 重合度 3のィヌリン型フルクタン、 すなわち、 1ーケストース (G F 2) である。
本発明のさらに別の一つの好ましい態様によれば、 ィヌリン型フルクタンは、 重合度 4のィヌリン型フルクタン、 すなわち、 二スト一ス (G F 3) である。 本発明において使用可能なィヌリン型フルクタンは、 天然由来のものであって も、 化学的に合成して得られたものであってもよい。 ィヌリン型フルクタンは、 アヤメ科、 キク科、 ユリ科、 ラン科等の植物の根、 および根茎、 またはイネ科穀類に含まれている。 このため、 ィヌリン型フルク夕 ンを、 例えばチコリーやキクイモから公知の方法にしたがって抽出および また は精製することによって得ることができる。 スクロースにフルクトース転移活性 を有する酵素を作用させることによつても、 ィヌリン型フルクタンを得ることが できる。 また、 高分子量のィヌリン型フルクタンに対してィヌリナーゼゃィヌリ ンフルクト トランスフェラーゼ、 サッカラーゼ等の酵素を作用させることによつ て、 所望する重合度のィヌリン型フルクタンを得ることもできる。 ィヌリン型フ ルクタンを合成して得る場合には、 公知の方法にしたがうことによって合成でき る。
本発明において使用可能なィヌリン型フルクタンの具体例を示すと下記のとお りである。 下記のプロセスの過程で得られたィヌリン型フルクタンおよびィヌリ ン型フルクタン混合物のいずれも、 本発明において使用可能である。
スクロースにァスペルギルス '二ガー (Aspergillus niger) 由来の酵素を作 用させることによって、 重合度 3〜6のィヌリン型フルクタンを 5 5重量%以上 含むィヌリン型フルクタン混合物 (商品名 :メイオリゴ G) (明治製菓株式会社 製) を得ることができる。 前記ィヌリン型フルクタン混合物を、 カラムクロマト グラフィ一または膜分離等を用いて精製することによって、 重合度 3〜 6のィヌ リン型フルクタンをさらに高含量で含んでなるィヌリン型フルクタン混合物を得 ることができる。 例えば、 前記メイオリゴ Gをカラムクロマトグラフィーを用い て精製することによって、 重合度 3〜6のィヌリン型フルクタンを 9 5重量%以 上含んでなるィヌリン型フルクタン (商品名:メイオリゴ P ) (明治製菓株式会 社製) を得ることができる。 カラムクロマトグラフィーや晶析等をさらに用いる ことによって、 単一成分を主成分とするィヌリン型フルクタン、 例えば 1—ケス トース (重合度 3 ) 、 ニストース (重合度 4 ) 、 またはフラクトシルニストース
(重合度 5 ) を得ることができる。
ィヌリン型フルクタンは、 天然に存在しヒトによる食経験もあり安全性には問 題がないが、 本発明において使用する場合には、 公知の方法にしたがって、 混在 することがあるパイロジェンを除去することが望ましい。 本発明の臓器保存用組成物において、 ィヌリン型フルクタンの配合量は、 特に 限定されず、 該組成物の使用形態、 使用環境に応じて適宜変更可能である。 この ため、 例えば該組成物がィヌリン型フルクタン単独の形態であってもよい。 また 例えば、 臓器保存用組成物を溶剤として使用する場合には、 臓器保存用組成物の 溶液中にィヌリン型フルクタンが、 好ましくは 3 . 5 ~ 3 0 0 g/L、 さらに好 ましくは 5 0〜: 1 5 0 g/L、 最も好ましくは 5 0〜 1 0 0 g/L含まれる。 ィ ヌリン型フルクタンの濃度は、 保存または灌流する臓器に応じて適宜変更可能で ある。 任意成分
本発明による臓器保存用組成物は、 ィヌリン型フルクタンに加えて、 任意成分 をさらに含んでなることができる。 このような任意成分としては、 例えば、 糖質、 電解質、 有機酸、 ビタミン、 アミノ酸、 ホルモン、 抗生物質、 活性酸素除去剤、 抗凝固剤、 降圧剤、 凍結防止剤、 血栓溶解剤、 製剤用添加剤 (担体) 、 および溶 媒等が挙げられる。
糖質としては、 例えば、 グルコース、 スクロース、 ラクト一ス、 ラフイノ一ス、 トレハロース、 ス夕キオース、 ガラクトシルトレハロ一ス、 マンニトール、 ソル ビト一ル、 マルチトール、 エリスリ トール、 パラチノース、 ラクチトール、 キシ リ トール、 ヒドロキシェチル澱粉、 デキストラン等が挙げられる。
電解質としては、 例えば、 塩化ナトリウム、 塩化カリウム、 塩化マグネシウム、 塩化カルシウム、 リン酸二水素ナトリウム、 リン酸二水素カリウム、 リン酸水素 ニナトリウム、 リン酸水素二力リウム、 炭酸ナトリウム、 炭酸力リゥム等が挙げ られる。
有機酸としては、 例えば、 グルコン酸、 乳酸、 酢酸、 プロピオン酸、 ?—ヒド ロキシ酪酸、 クェン酸、 フマル酸、 コハク酸、 シユウ酸、 マレイン酸が挙げられ る。
本発明においては、 臓器保存用組成物を所定の溶媒に溶解した場合、 または臓 器保存用組成物が溶剤形態である場合に、 臓器保存用組成物が溶解している溶液 が、 ィヌリン型フルクタンに加えて、 所定のアルカリ金属イオン、 アルカリ土類 金属イオンおよびァニオンを、 所定の濃度で含んでなることが好ましい。 したが つて、 本発明による臓器保存用組成物に、 前記した電解質、 有機酸、 またはその 有機酸塩 (例えば、 ナトリウム塩、 カリウム塩) を配合することによって、 臓器 保存用組成物を溶解したときに、 所望のイオンを生じさせることができる。 本発明の好ましい態様によれば、 臓器保存用組成物が液剤である場合、 臓器保 存用組成物は、 下記成分 (a) 〜 (d) を下記の量で含んでなる :
(a) ィヌリン型フルクタン 3. 5〜300 g/L
(b) Na+ 5〜 150 mM
(c) K+ 5〜: L 50 mM
(d) CI—、 HC03—、 C 03 2-、 有機酸および有機酸ァニオンからなる群よ り選択される一種以上の成分 1 0〜1 5 0 mMo 成分 (b) の N aイオンの濃度は、 好ましくは 10〜 3 OmMである。
成分 (c) の Kイオンの濃度は、 好ましくは 115〜 12 OmMである。 成分 (d) は、 好ましくは、 Cl_、 HC03_および Zまたは C 03 2—である。 成分 (d) の濃度は、 好ましくは 25〜104mMである。
本発明のより好ましい態様によれば、 臓器保存用組成物が液剤である場合、 臓 器保存用組成物は、 下記成分 (e) 〜 (h) の少なくとも一種以上を下記の量で さらに含んでなる :
(e) Mg2+ 0〜20 mM
(f) Ca2+ 0〜5 mM
(g) H2P04_および Zまたは HP 04 2_ 0〜150 mM
(h) ヒドロキシェチル澱粉 0〜100 g/Lo 成分 (e) の Mgイオンの濃度は、 好ましくは 0〜5mMである。
成分 (: ) の Caイオンの濃度は、 好ましくは 0〜5mMである。
成分 (g) は、 好ましくは、 H2P〇4 および HPC 2-である。 成分 (g) の 濃度は、 好ましくは 25〜57. 5mMである。
成分 (h) のヒドロキシェチル澱粉の濃度は、 好ましくは 0〜50 gZLであ る。
本発明のさらに好ましい態様によれば、 臓器保存用組成物が液剤である場合、 器保存用組成物は、 下記成分 (a' ) 〜 (! 1, ) を下記の量で含んでなる
(a, ) ィヌリン型フルクタン 50〜; L 50 g/L
(b, ) Na + 10〜30 mM
(c, ) K+ 115〜 120 mM
(d, ) C l-、 HCO CO; 有機酸および有機酸ァニオンからなる群 より選択される一種以上の成分 25〜 104 mM
(e' ) Mg++ 0〜 5 mM
• (g, ) H2P04 -および HPO, 25〜57. 5 mM
(h, ) ヒドロキシェチル澱粉 0-50 g/L。
本発明の臓器保存用組成物の具体例を挙げると、 例えば下記成分 (a' ) (h' ) を下記の量で含んでなるものが挙げられる :
ィヌリン型フルクタン 50〜: L 00 g/L
Na + 10 mM
K+ 15 mM
C 1- 15 mM
HC03 - 10 mM
BhP 04一 15 mM
Figure imgf000011_0001
本発明において、 ィヌリン型フルクタン以外のイオン組成に関しては、 公知の 臓器保存用溶液、 例えばュ一ロコリンズ (Euro- Collins) 液、 UW (University of Wisconsin) 液、 Celsior液等の成分の一部を変更または削除することによつ て、 調製することができる。 例えば、 公知の臓器保存用溶液の成分の内のグルコ —ス、 ラフイノース等の糖質の全部または一部を、 ィヌリン型フルクタンに代え ることによって、 本発明による臓器保存用組成物を調製してもよい。
上述した任意成分の内、 ホルモンとしては、 例えば、 デキサメゾン、 ハイ ドロ コーチゾン等が挙げられ、 抗生物質としては、 例えば、 ペニシリン G、 ストレブ トマイシン等が挙げられる。 抗凝固剤としては、 例えば、 へパリンが挙げられ、 降圧剤としては、 例えば、 血管拡張剤、 クロルプロマジン等が挙げられ、 血栓溶 解剤としては、 例えばゥロキナーゼ等が挙げられる。 „—
PCT/JP03/04024
10 製剤用添加剤としては、 例えば、 賦形剤、 分散剤、 保存剤、 防腐剤、 乳化剤、 増量剤、 着色剤、 界面活性化剤、 緩衝剤、 溶解補助剤、 安定化剤、 p H調整剤等 が挙げられる。
溶媒としては、 例えば、 精製水、 滅菌精製水、 生理食塩水等が挙げられる。 臓器保存用組成物の製法および用途
本発明による臓器保存用組成物は、 ィヌリン型フルクタンを用いて、 公知の臓 器保存剤の製法にしたがうことにより、 当業者であれば容易に製造することがで きる。
本発明の臓器保存用組成物の剤型は、 前記した溶媒を含むことによって液剤形 態となつているのが通常であるが、 必要に応じて、 散剤、 顆粒剤、 錠剤、 カプセ ル剤等の固形剤の形態であってもよい。 固形剤の形態である場合には、 使用に際 して、 精製水、 滅菌精製水、 生理食塩水等の適当な溶媒に溶解、 懸濁または乳化 させることができる。
本発明において、 臓器保存には、 臓器移植の過程で摘出した臓器を一時的に保 存しておくことを包含することは当然として、 臓器移植の過程で臓器において灌 流を行うこと、 および、 摘出していない臓器または移植後の臓器を各種疾患や損 傷から保護することも包含する。
本発明による臓器保存用組成物は、 臓器の保存および灌流に用いることができ る。 例えば、 該臓器保存用組成物は、 臓器の保存液および灌流液として用いるこ とができる。 本発明による臓器保存用組成物は、 好ましくは、 臓器移植の過程で 起こりうる臓器の機能低下および損傷の抑制または改善に用いられる。
本発明において臓器とは、 心臓、 肝臓、 腎臓、 肺、 滕臓のような狭義の臓器に 限定されず、 腸管、 血液、 骨髄、 眼球、 角膜、 骨、 皮膚、 血管、 心臓弁のような 組織を包含する。
したがって、 本発明による臓器保存用組成物は、 これらの臓器の保存に好適に 使用することができる。 好ましくは、 本発明による臓器保存用組成物は、 心臓、 肝臓、 腎臓、 肺、 滕臓に用いられ、 より好ましくは心臓、 肝臓、 腎臓、 肺、 さら に好ましくは腎臓に用いられる。 本発明によれば、 臓器保存に有効な量の前記臓器保存用組成物を、 臓器と接触 させることを含んでなる臓器の保存方法が提供される。
ここで臓器保存に有効な量は、 臓器保存を有効に行うのに必要な量をいい、 臓 器の種類およびその状態、 臓器保存用組成物の形態等に応じて適宜決定すること ができる。
また 「臓器保存用組成物を臓器と接触させる」 とは、 臓器保存用組成物と臓器 を、 いずれかの態様により少なくとも接触させれば良いことをいい、 例えば、 臓 器上に臓器保存用組成物を適用すること、 臓器を臓器保存用組成物を含んでなる 溶液に浸漬すること、 および臓器を臓器保存用組成物を用いて灌流することが包 含される。 臓器を溶液に浸漬する場合、 低温条件下で浸漬することが好ましい。 本発明の好ましい態様によれば、 臓器の保存方法は、 臓器保存に有効な量の前 記臓器保存用組成物を、 臓器と接触させることを含んでなる方法であって、 冷却 した溶剤形態の該臓器保存用組成物を用いて臓器を低温下において浸漬すること を含んでなる方法が提供される。 より好ましくは、 該保存方法は、 浸漬する工程 の前に、 冷却した溶剤形態の該臓器保存用組成物を灌流液として用いて摘出臓器 を灌流する工程をさらに含んでなる。 ここで低温とは、 0〜4 °C、 好ましくは 3 〜4 °Cのことであり、 具体例を挙げると約 4 °Cである。 また保存の際に使用され る溶剤形態の臓器保存用組成物の量は、 臓器の重量および保存予定時間等に応じ て適宜変更することができるが、 通常、 臓器が充分に浸漬する量を使用する。 例 えば、 ヒトの腎臓であれば、 腎臓約 4 0 0 gに対して 8 0 O m lの量で使用する ことができる。
また本発明の別の態様によれば、 抑制または改善する上での有効量の前記臓器 保存用組成物を、 臓器と接触させることを含んでなる、 臓器移植の過程で起こり うる臓器の機能低下および損傷を抑制または改善する方法が提供される。
ここで、 抑制または改善する上での有効量は、 臓器の機能低下および損傷を有 効に抑制または改善するために必要な量のことをいい、 臓器の種類およびその状 態、 臓器保存用組成物の形態等に応じて適宜決定することができる。
また 「臓器移植の過程で起こりうる臓器の機能低下および損傷」 として、 例え ば、 N a/Kポンプ障害に伴う細胞浮腫、 C a濃度の上昇による細胞膜とミ トコ ンドリァの障害、 A T Pからの hypoxanthineの産生等のような症状が挙げられる。 さらに本発明によれば、 臓器保存用組成物または臓器保存剤を製造するための、 ィヌリン型フルクタンの使用が提供される。 臓器保存剤とは、 臓器の保存を行う ために用いられる医薬のことであり、 本発明による臓器保存用組成物からなるこ とができる。 ここで臓器保存用組成物または臓器保存剤は、 保存液または灌流液 の形態であることができる。 施 例]
以下本発明を以下の実施例によって詳細に説明するが、 本発明はこれらに限定 されるものではない。
例 1 : 腎臓の保存試験
(a)臓器保存用組成物の調製
本発明による臓器保存用組成物 1〜6と、 比較例である臓器保存用組成物 7〜 13を以下のようにして調製した。
臓器保存用組成物 1〜3 (本発明)
市販のユーロコリンズ液 (EC液、 吉富製薬社製) 465mlに対して、 ニス トース (明治製菓株式会社製) をそれそれ 25 g、 50 g、 75 g溶解して、 臓 器保存用組成物 1〜3を調製した。 これら組成物 1〜3はそれそれ、 以下におい て、 EC + 5%GF3、 EC+10%GF3、 E C + 15 % G F 3と表すことがあ る o
なお使用した EC液は、 プドウ糖注射液を混合していない溶液であり、 下記の 電解質組成を有するものであった。
Na+ 1 OmM
K+ 115mM
C 1- 15 mM
HC03一 1 OmM
H2P04 - 15mM
Figure imgf000014_0001
ϋ保存用祖威物 4〜 6 し本発明) _ 4
13 臓器保存用組成物 1の場合と同じ EC液 465 mlに対して、 1—ケストース (明治製菓株式会社製) をそれそれ 25 g、 50 g、 75 g溶解して、 臓器保存 用組成物 4~6を調製した。 これら組成物 4〜6はそれそれ、 以下において EC + 5%GF2、 EC+10%GF2、 E C + 15 % G F 2と表すことがある。
臓器保存用組成物 7 (比較例)
臓器保存用組成物 1の場合と同じ EC液 465 mlに対して、 日本薬局方プド ゥ糖注射液 (50w/v%) 35mlを加えて全容量 500mlとすることによ つて、 臓器保存用組成物 7を調製した。 この組成物 7は、 以下において EC + 3. 5 G1 cと表すことがある。
臓器保存用組成物 8 ~ 11 (比較例)
臓器保存用組成物 1の場合と同じ EC液 465 mlに対して、 25 g、 50 g、 75 g、 100gのトレハロース (林原社製) を溶解し、 臓器保存用組成物 8〜 11を調製した。 これら組成物 8〜11はそれそれ、 以下において、 EC+5% Tre、 EC+10%Tre、 EC+15%Tr e, EC+20%Treと表す ことがある。
臓器保存用組成物 12 (比較例)
臓器保存用組成物 1の場合と同じ EC液に対して、 浸透圧が 32 OmOsm/ kgとなるようにラフイノ一ス (日本甜菜製糖社製) を溶解して、 臓器保存用組 成物 12を調製した。 この組成物 12は以下において、 EC+Raf と表すこと がある。
臓器保存用組成物 13 (比較例)
臓器保存用組成物 13としては、 市販の UW液 (商品名:ヴィァスパン、 デュ ボン ·ファーマス一ティカルズ社製) を用いた。
(b)評価試験: 単離灌流腎モデルを用いた腎機能評価
約 400 gの SD系ラット (日本 SLC社より入手可能) に、 50mg/kg のネンブ夕一ル (商品名) (ダイナボット社製) を腹腔内投与することによって、 該マウスを麻酔した。 次いで、 該マウスに lmlのへパリンを投与した後、 4°C に冷却した臓器保存用組成物を用いてその腎臓を灌流した。 その後、 該マウスか ら腎臓を摘出し、 摘出した腎臓を直ちに、 4°Cに冷却した臓器保存用組成物中に 移し、 そこで 4°C条件下で 48時間保存した。 48時間保存後に、 TN式摘出臓 器灌流装置 (夏目製作所製) を用い、 また、 7. 5%ゥシアルブミンを含むクレ ブス—ヘンゼライ ト (Krebs-Henseleit) 液を灌流液として用いて、 腎臓を 90 分間持続灌流した。
尿量およびクレアチニン ·クリアランス
灌流を 30、 60、 90分間行った時点で、 それそれ尿量、 クレアチニン 'ク リアランス (Ccr) を測定した。
尿素は、 尿管にポリエチレンチューブを挿入して、 所定時間の排出尿量を測定 した。 Ccrは、 下記式 (1) に基づいて算出した。
C c: r = (尿のクレアチニン値) (所定時間あたりの尿量) (灌流液のクレアチニン値)
(1) 結果は、 表 1、 図 1および図 2に示されるとおりであった。
表 1においては、 結果を、 各組成物についてそれそれ 8匹のラットの腎臓を用 いて得られた測定データの平均値と標準偏差により示した。 また、 図 1および図 2には、 灌流を 60分間行った時点での尿量および C c rを示した。
これらの結果において、 尿量値および C c r値はいずれも、 値が高いものほど、 腎機能が良好に保存されていることを表す。 すなわちこの場合は、 腎臓の保存状 態が良好であることを意味する。
臓器保存用組成物 1、 2、 4および 5を用いて腎臓を保存した場合の尿量値お よび C c r値はいずれも、 比較例である臓器保存用組成物を用いた場合よりも有 意に高い値を示していた。
病理組織像の所見
臓器保存用組成物中で 48時間保存した後の腎臓を、 病理組織学的な所見に基 づきその保存状態を評価した。
臓器保存用組成物 2 (E C+ 10%GF3) を用いて保存した腎臓の病理組織 像は図 3 Aに示されるとおりであった。 この場合の腎臓では、 尿細管上皮細胞お よび刷子縁が良好に保存されており、 糸球体にも変化は見られなかった。
臓器保存用組成物 4 (EC+5%GF2) を用いて保存した腎臓では、 一部刷 子縁に変性脱落が見られたが、 尿細管上皮細胞は良好に保存されていた。 また、 糸球体にも変化が見られず、 保存状態は良好であつた。
臓器保存用組成物 7 (E C + 3. 5%G1 c) を用いて保存した腎臓では、 糸 球体には変化が見られなかったが、 近位尿細管上皮細胞の腫大、 空胞変性が見ら れた。
臓器保存用組成物 12 (EC + Raf ) を用いて保存した腎臓では、 糸球体の 血管曲と思われる部位の外側に核成分が多くみられ、 炎症細胞の浸潤も考えられ た。 また、 ごく一部に尿細管上皮細胞に脱落がみられた。
臓器保存用組成物 13 (UW液) を用いて保存した腎臓の病理組織像は図 3 B に示されるとおりであった。 この場合の腎臓では、 糸球体はよく保たれているが、 皮質外側に近位尿細管上皮細胞のわずかな脱落、 空胞変性がみられた。
臓器保存用組成物 .里 し G一l-
(.ml/ JOTD
No. 組成
30 5.58±1.91 6.11 ±2.34
1 EC +5% GF3 60 8.05 ±1.85 8.40 ±2.13
90 6.61 ±2.21 6.72 ±2.20
30 5.32±1.95 5.51 ±2.13
2 EC + 10%GF3 60 9.54±3.38 9.66±3.57
90 8.96±4.63 9.09±4.81
30 3.26 ±1.42 3.40±1.53
3 EC + 15%GF3 60 5.83±2.17 6.04±2.31
90 5.63 ±2.60 5.73 ±2.51
30 3.26 ±0.70 3.37±0.82
4 EC+5% GF2 60 8.73 ±3.35 8.93±3.35
90 8.93±4.18 9.18 ±4.43
30 3.90±1.86 4.83 ±1.37
5 EC + 10% GF2 60 8.07±2.94 9.03 + 2.34
90 8.32±2.79 8.39±2.81
30 2.68 ±0.76 2.79 ±0.77
6 EC + 15%GF2 60 6.11 ±1.06 6.16±1.11
90 5.54±1.10 5.49±1."
30 0.26 ±0.06 0.26 ±0.06
7
EC+3.5% Glc 60 0.86 ±0.29 0.93 ±0.33
(比較例)
90 1.21 ±0.47 1.20±0.45
30 0.73 ±0.48 0.80 ±0.53
8
EC+5% Tre 60 0.99±0.66 1.14±0.68
(比較例)
90 0.92 ±0.47 1.03 ±0.45
30 1.35±0.51 1.41 ±0.56
9
EC +10% Tre 60 1.89±1.11 1.92±1.16
(比較例)
90 2.16 ±0.80 2.07±0.70
30 1·38±0·70 1.47 ±0.67
10
EC +15% Tre 60 2.58±1.57 2.57 ±1.44
(比較例)
90 2.85±1.46 2.77±1.31
30 0.46 ±0.40 0.54±0.41
11
EC +20% Tre 60 0.93 ±1.00 0.91 ±0.92
(比較例)
90 0.78±0.61 0.80±0.60
30 2.34±1.20 2·29±1.14
12
EC+Raf 60 4.07 ±2.06 3.64±1.56
(比較例)
90 3.22±2.28 3.01 ±1.97
30 3.53±1.27 3.66±1.34
13 夜 60 6.82±2.01 6.99±1.97
(比較例)
90 6.68 ±1.73 6.84±1.86
差替え用紙 O l J26) 例 2 : 肝臓の保存試験
例 1と同様にして、 臓器保存用組成物 1 (EC + 5%GF3) と、 臓器保存用 組成物 13 (UW液) とを用意した。 これら組成物をそれそれ用いて、 以下の試 験を行った。
400 g前後のラットを全身麻酔した後、 開腹し、 門脈にエラスターを挿入し て、 4°Cに冷却した臓器保存用組成物を 5 ml流した。 肝臓が白くなるのを確認 して肝上部の動脈をクランプし、 次いで下大静脈を切開した。 その後に、 20m 1の臓器保存用組成物をエラス夕一に流して肝臓を摘出した。 摘出した肝臓は臓 器保存用組成物中において 48時間単純冷却保存した。
48時間保存した後の肝組織を採取して、 これを 10%ホルマリンを用いて固 定した。 この肝組織を、 病理組織学的な所見に基づいてその保存状態を評価した。 得られた肝組織の病理組織像は、 図 4に示されるとおりであった。 この内、 図 4 Aは、 臓器保存用組成物 1 (EC+5%GF3) を用いた場合の病理組織像を 表し、 図 4Bは、 臓器保存用組成物 13 (UW液) を用いた場合の病理組織像を 表す。
臓器保存用組成物 1を用いて保存した肝臓は、 肝細胞の萎縮が軽度に見られる のみであり、 保存状態は良好であった。 一方、 臓器保存用組成物 13を用いて保 存した肝臓は、 肝細胞の萎縮がかなり見られ、 肝細胞の解離傾向が見られた。 ま た軽度から中程度の変性も見られた。 例 3 : 心臓および肺の保存試験
例 1と同様にして、 臓器保存用組成物 14 (EC + 2. 5%GF3) と、 EC 液のみからなる臓器保存用組成物 15 (EC液) とを用意した。 これら組成物を それぞれ用いて、 以下の試験を行った。
400 g前後のラットを全身麻酔した後、 開腹し、 下大動脈の末梢を結紮して エラス夕ーを揷入し、 頸静脈と下大静脈を切開した。 その後エラスダ一から臓器 保存用組成物を 60ml流して心臓および肺を摘出した。 摘出した心臓および肺 は、 臓器保存用組成物中において 24時間単純冷却保存した。
24時間保存した後の臓器の一部を採取して、 これを 10%ホルマリンで固定 した。 この臓器を、 病理組織学的な所見に基づいてその保存状態を評価した。 得られた心臓の病理組織像は、 図 5に示されるとおりであった。 また、 得られ た肺の病理組織像は、 図 6に示されるとおりであった。 これらの内、 図 5 Aおよ び図 6 Aは、 臓器保存用組成物 14 (EC + 2. 5%GF3) を用いた場合の病 理組織像を表し、 図 5Bおよび図 6Bは、 臓器保存用組成物 15 (EC液) を用 いた場合の病理組織像を表す。
臓器保存用組成物 14を用いて保存した心臓は、 好酸性の増多も核の濃縮も見 られず、 保存状態は良好であった。 また、 臓器保存用組成物 14を用いて保存し た肺は、 肺胞腔がよく開いており、 漏出性出血も見られず、 保存状態は良好であ つに o ,
一方、 臓器保存用組成物 15を用いて保存した心臓は、 心筋繊維の好酸性の増 多が見られ、 核の淡明化も見られた。 また、 一部横紋の不明瞭化も見られた。 臓 器保存用組成物 15を用いて保存した肺は、 肺胞壁の弾性繊維の変性や肺胞の萎 縮が見られた。 また、 内皮細胞の変性にともなって漏出が見られた。

Claims

請 求 の 範 囲
1. ィヌリン型フルクタンを有効成分として含んでなる、 臓器保存用組成物。
2. ィヌリン型フルクタンが、 重合度 3〜 6のィヌリン型フルクタンから選 択される 2種以上のィヌリン型フルクタンの混合物である、 請求項 1に記載の臓 器保存用組成物。
3. ィヌリン型フルクタンが 1ーケスト一スである、 請求項 1に記載の臓器 保存用組成物。
4. ィヌリン型フルクタンが二スト一スである、 請求項 1に記載の臓器保存 用組成物。
5. 下記成分 (a) 〜 (d) を下記の量で含んでなる、 請求項 1〜4のいず れか一項に記載の臓器保存用組成物:
(a) ィヌリン型フルクタン 3. 5〜300 g/L
(b) Na+ 5〜 150 mM
(c) K+ 5〜 150 mM
(d) CI—、 HC03—、 C 03 2—、 有機酸および有機酸ァニオンからなる群よ り選択される一種以上の成分 10〜; 150 mM。
6. 下記成分 (e) 〜 (h) の少なくとも一種以上を下記の量でさらに含ん でなる、 請求項 5に記載の臓器保存用組成物:
(e) Mg2+ 0〜20 mM
(f) Ca2+ 0〜5 mM
(g) H2PO および Zまたは HP〇 0〜150 mM
(h) ヒドロキシェチル澱粉 0〜; L O O g/
7 . 臓器移植の過程で起こりうる臓器の機能低下および損傷を抑制または改 善するための、 請求項 1〜 6のいずれか一項に記載の臓器保存用組成物。
8 . 臓器保存に有効な量の請求項 1〜 7のいずれか一項に記載の臓器保存用 組成物を、 臓器と接触させることを含んでなる、 臓器の保存方法。
9 . 接触が、 臓器を臓器保存用組成物を用いて灌流することにより行われる、 請求項 8に記載の方法。
1 0 . 抑制または改善する上での有効量の請求項 1〜7のいずれか一項に記 載の臓器保存用組成物を、 臓器と接触させることを含んでなる、 臓器移植の過程 で起こりうる臓器の機能低下および損傷を抑制または改善する方法。
1 1 . 臓器が、 腎臓、 肝臓、 心臓、 肺および塍臓からなる群より選択される ものである、 請求項 8 ~ 1 0のいずれか一項に記載の方法。
1 2 . 臓器保存用組成物を製造するための、 ィヌリン型フルクタンの使用。
1 3 . ィヌリン型フルクタンが、 重合度 3〜 6のィヌリン型フルクタンから 選択される 2種以上のィヌリン型フルクタンの混合物である、 請求項 1 2に記載 の使用。
1 4 . ィヌリン型フルクタンが 1ーケストースである、 請求項 1 2に記載の 使用。
1 5 . ィヌリン型フルクタンがニストースである、 請求項 1 2に記載の使用 c
1 6 . 臓器保存用組成物が臓器の灌流液である、 請求項 1 2〜 1 5のいずれ か一項に記載の使用。
17. 臓器が、 腎臓、 肝臓、 心臓、 肺おょぴ滕臓からなる群より選択される ものである、 請求項 12~16のいずれか一項に記載の使用。
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