WO2002002009A1 - Appareil et technique d'analyse, compose stimulant la muqueuse olfactive trouve par cette technique d'analyse, appareil therapeutique et electrode de mesure - Google Patents

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experimental animal
olfactory mucosa
stimulating compound
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Hiroaki Oka
Ryuta Ogawa
Tetsuo Yukimasa
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Matsushita Electric Industrial Co., Ltd.
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Definitions

  • the present invention relates to a screening apparatus and method for examining the efficacy of various drugs such as central nervous drugs administered to living organisms in the fields of environmental science, medical science, pharmacy, food science, neurophysiology, and the like. More specifically, an apparatus and method for screening an olfactory mucosa stimulating compound that enhances the homeostasis and self-healing ability of a living body by stimulating the olfactory mucosa of an experimental animal, and an olfactory mucosal stimulation obtained by the screening method
  • the present invention relates to a compound, a therapeutic device capable of obtaining the same effects as the olfactory mucosa stimulating compound, and a measurement electrode unit used in a screening device and a therapeutic device. Background art
  • the drug is administered to the living body by oral administration, application, intravenous injection, intramuscular injection, etc., but with any of the administration methods, the administered drug reaches the affected area after circulating through the body through the bloodstream
  • drugs that reach the affected area act directly on the affected area.
  • lead compounds and their analogs which are drug candidates in the future, also act directly on the affected area, similarly to conventional drugs.
  • a drug administered to the living body by oral administration, intravenous injection, etc. it is necessary to simulate and demonstrate the pharmacokinetics of the administered drug, the absorption rate of the drug, the efficiency of reaching the affected area, and the like.
  • the administered drug when a drug is administered to a patient by oral administration, the administered drug is absorbed by the stomach or small intestine, and the absorbed drug circulates in the body through the liver and the bloodstream.
  • drugs that have reached the liver are excreted or metabolized as they are, and most of them are removed outside the body, so there are many cases where only a part of the administered drug is used. I have.
  • patients with damage to the stomach, small intestine, or liver, especially the liver have limitations in the types and amounts of drugs that can be administered.
  • drugs to the central system of the brain need to pass through the so-called blood-brain barrier when moving to the brain, and depending on the structure of the drug, may not be able to move into the brain.
  • neurons with different properties are intricately entangled in the brain, unexpected side effects may occur due to drugs that have reached the brain, and avoid such side effects. It is very difficult.
  • the present invention has been made in view of the above-mentioned problems, and an object thereof is to provide an apparatus and a method for screening a compound that directly acts on brain cells by stimulating an olfactory mucous membrane, and use in the apparatus. Measuring electrode part, odor obtained by the method An object of the present invention is to provide a mucosal irritant and a treatment device.
  • an olfactory mucosa stimulating compound screening device comprises: an administration means for administering an olfactory mucosa stimulating compound toward an olfactory mucosa of an experimental animal; A measuring electrode portion which is implanted and measures an electric signal generated in the olfactory bulb; and an electric signal measured by the measuring electrode portion when the olfactory mucosa stimulating compound is administered to the olfactory mucosa of the experimental animal by the administration means And a processing means for analyzing the correlation between physiological responses induced in the experimental animal.
  • the olfactory mucosa stimulating compound screening device according to claim 2, wherein the olfactory mucosa stimulating compound screening device according to claim 1, wherein the processing means directly obtains data on a physiological response from an experimental animal, and performs the measurement. It analyzes the correlation with the electrical signal measured at the electrode section.
  • the olfactory mucosa stimulating compound screening device is the olfactory mucosa stimulating compound screening device according to claim 1, wherein the processing means is configured to transmit data regarding an electrical signal in an olfactory bulb that causes a laboratory animal to induce a physiological response. It has in advance and analyzes the correlation with the electric signal measured by the measurement electrode unit based on the data.
  • an olfactory mucosa stimulating compound screening device according to claim 4, wherein the olfactory mucosa stimulating compound screening device according to any one of claims 1 to 3, wherein the administration means comprises a box containing an olfactory mucosa stimulating compound, A nozzle for spraying the olfactory mucosa stimulating compound contained in the box onto the olfactory mucosa of an experimental animal.
  • the olfactory mucosa stimulating compound screening device according to claim 5, wherein the olfactory mucosa stimulating compound screening device according to any one of claims 1 to 4, wherein the measurement electrode unit detects an electric signal from a nerve cell of an olfactory bulb. It has at least one microelectrode.
  • the olfactory mucosa stimulating compound screening device is the olfactory mucosa stimulating compound screening device according to claim 5, wherein a plurality of the microelectrodes are provided.
  • the microelectrodes are arranged so that electrical signals generated in the olfactory bulb by administration of the olfactory mucosa stimulating compound to the olfactory mucosa of the experimental animal can be obtained at multiple points.
  • the olfactory mucosa stimulating compound screening device is the olfactory mucosa stimulating compound screening device according to claim 5 or 6, wherein each of the microelectrodes is provided with an electric signal for inducing a physiological reaction in a laboratory animal. Is given.
  • An olfactory mucosa stimulating compound screening method comprises the steps of: administering the olfactory mucosa stimulating compound to the olfactory mucosa of the experimental animal; and And a step of measuring an electric signal generated in the olfactory bulb of the experimental animal, and a step of analyzing a correlation between the measured electric signal and a physiological response induced in the experimental animal.
  • the olfactory mucosa stimulating compound according to claim 9 is characterized in that the olfactory mucosa stimulating compound screening method according to claim 8 correlates an electrical signal defined at the measurement electrode portion with a physiological response induced in an experimental animal. A relationship is recognized.
  • the treatment apparatus wherein the measurement electrode unit embedded in the olfactory bulb of the living body and a stimulation pattern of the olfactory bulb that induces a physiological reaction in the living body are provided as an electric signal pattern to the measurement electrode unit.
  • the measurement electrode unit according to claim 11 wherein the measurement electrode unit is embedded in the olfactory bulb of an experimental animal and is used for measuring an electric signal generated in the olfactory bulb or for giving an electric signal to the olfactory bulb.
  • a plurality of microelectrodes are provided to detect electrical signals from the olfactory mucous membrane, respectively. Things.
  • the measurement electrode section according to claim 12 is the measurement electrode section according to claim 11, wherein each of the microelectrodes has an area of 1 m 2 to 100 000 m 2 . It is.
  • a measurement electrode unit according to claim 13 is the measurement electrode unit according to claim 12, wherein the minute electrodes are arranged in a matrix.
  • the measuring electrode part according to claim 14 is the measuring electrode part according to claim 13, which is adjacent to the measuring electrode part according to claim 13.
  • the interval between the microelectrodes is 10 to 100 m.
  • the microelectrodes are arranged on a film-like substrate.
  • the measurement electrode section according to claim 16 is the measurement electrode section according to claim 15, wherein each of the microelectrodes has a ring shape, and is disposed at a peripheral portion of a through hole provided in the substrate. Is what is being done.
  • the inner diameter 3 of the through hole formed in the substrate is 1000 m or less.
  • the measurement electrode unit according to claim 18 is the measurement electrode unit according to claim 11, wherein the microelectrodes are arranged at the same position on the front surface and the back surface of the substrate, and are arranged on one surface of the substrate. Each provided microelectrode detects an electrical signal pattern that induces a physiological response in the experimental animal, and the other applies the same or different signal to the detected signal.
  • the measurement electrode section according to claim 19 is the measurement electrode section according to claim 15, wherein the microelectrode is formed of any one of gold, platinum, IT ⁇ , titanium nitride, copper, silver, and tungsten. Is what it is.
  • the measurement electrode section according to claim 20 is the measurement electrode section according to claim 15, wherein the substrate is made of a biomaterial.
  • the measurement electrode section according to claim 21 is the measurement electrode section according to claim 15, wherein the substrate is made of any one of polyethylene terephthalate, Teflon, silicon rubber, semiconductor material, and conductive rubber. Is what it is.
  • the measurement electrode section according to claim 22 is the measurement electrode section according to claim 13, wherein the microelectrodes are formed at the tips of the needle-shaped conductive wires, respectively, and a predetermined number of the needle-shaped conductive wires are provided.
  • the microelectrodes are bundled at predetermined intervals to form an electrode row, and a plurality of electrode rows are arranged in parallel at predetermined intervals.
  • the measurement electrode section according to claim 23 is the measurement electrode section according to claim 21, wherein the needle-shaped conductive wire has a diameter of 1 m to 100 m.
  • the measurement electrode part according to claim 24 is the measurement electrode part according to claim 22, wherein the needle-shaped conductive wire is formed by covering a needle-shaped conductive material with an insulating film except for a microelectrode at the tip. Is what is being done.
  • the measurement electrode part according to claim 25 is the measurement electrode part according to claim 24, wherein the conductive material of the acicular conductive wire is gold, platinum, ITO, titanium nitride, copper, silver, tungsten, conductive rubber. Is constituted by any of the above.
  • the measurement electrode part according to claim 26 is the measurement electrode part according to claim 24, wherein the insulating film of the acicular conductive wire is formed of any one of polystyrene, acrylic, polyacrylonitrile, and polyimide. Is what it is.
  • the measurement electrode unit according to claim 27 is the measurement electrode unit according to claim 11, wherein the microelectrode is covered with a film made of a biomaterial.
  • a measurement electrode section according to claim 28 is the measurement electrode section according to claim 22, wherein a tip portion of the acicular conductive material is covered with a biomaterial film.
  • the treatment method according to claim 29, comprises the steps of: administering an olfactory mucosa stimulating compound to the olfactory mucosa of the experimental animal; ! Measuring the electrical signal generated in the olfactory bulb of the experimental animal at the time of administration of the intense compound; the pattern of the electrical signal measured; and the physiological pattern induced in the experimental animal by the pattern of the electrical signal. Grasping the type and degree of the target reaction, and providing the olfactory bulb of the experimental animal with an electric signal pattern sufficient to produce the desired physiological response.
  • the desired physiological response is a decrease in blood pressure.
  • the target physiological reaction is a decrease in blood glucose level.
  • FIG. 1 shows an example of an embodiment of a screening device for an olfactory mucosa stimulating compound of the present invention.
  • FIGS. 2A and 2B are diagrams showing an example of a measurement electrode used in a screening device.
  • FIG. 2A is a schematic plan view showing an example of a measurement electrode unit used in the screening device, and FIG. An enlarged plan view showing details thereof, and (c) is a side view thereof.
  • FIG. 3 is a diagram showing another example of the measurement electrode used in the screening device.
  • FIG. 4 is a diagram showing still another example of a measurement electrode used in a screening device.
  • FIG. 4 (a) is a schematic diagram showing still another example of a measurement electrode portion used in the screening device. ) Is a cross-sectional view showing the details.
  • FIGS. 5A and 5B are diagrams showing the results in Example 1, and FIGS. 5A and 5B show the electric signal patterns measured at the measurement electrode unit in Example 1, respectively. .
  • FIG. 6 is a graph showing changes over time in blood pressure and heart rate, where (a) and (b) show the blood pressure and heart rate induced by the electrical signal patterns shown in FIGS. 5 (a) and (b), respectively. It is a graph which shows a temporal change of a number.
  • FIG. 5 shows an electric signal pattern applied to the measurement electrode unit in the second embodiment.
  • FIG. 8 is a graph showing changes over time in blood pressure and heart rate of a rat when the electric signal pattern shown in FIG. 7 is applied to the measurement electrode unit.
  • FIGS. 9A and 9B are graphs showing the change over time in blood glucose level of a rat.
  • FIG. 9A shows an electric signal pattern applied to a measurement electrode unit in Example 3, and
  • FIG. 9B shows an electric signal pattern thereof.
  • 7 is a graph showing the time-dependent change of the blood glucose level of a rat when the blood glucose level was given to the measurement electrode part.
  • FIG. 10 shows an electric signal pattern measured by the measurement electrode unit in the fourth embodiment.
  • FIG. 11 is a graph showing changes over time in blood pressure and heart rate measured in Example 4.
  • FIGS. 1 to 11 indicate the following members or devices, respectively: 10 measuring electrode unit, 12 substrate, 13 microelectrode, 14 conductive wire,, 15 current collector , 16 needle conductive wire, 16a microelectrode, 17 electrode row, 18 holder 1, 3 1 olfactory mucosa stimulating compound storage box, 3 2 experimental animal fixation device, 3 3 spray nozzle, 3 4 signal amplification stimulation Equipment, 3 5 signal amplification equipment, 3 6 treatment equipment.
  • 10 measuring electrode unit 12 substrate, 13 microelectrode, 14 conductive wire, 15 current collector , 16 needle conductive wire, 16a microelectrode, 17 electrode row, 18 holder 1, 3 1 olfactory mucosa stimulating compound storage box, 3 2 experimental animal fixation device, 3 3 spray nozzle, 3 4 signal amplification stimulation Equipment, 3 5 signal amplification equipment, 3 6 treatment equipment.
  • the present invention provides an apparatus and a method for screening a drug candidate compound that regulates physiological functions by directly activating or suppressing brain functions by stimulating the olfactory mucosa of a living body.
  • the screening device of the present invention measures the stimulation pattern of the olfactory bulb induced when an olfactory mucosa stimulant, which is a drug candidate compound, is administered to the olfactory mucosa of a living body, and performs a pattern analysis of the stimulating pattern to generate the olfactory stimulus in the living body.
  • an olfactory mucosa stimulant which is a drug candidate compound
  • the olfactory mucosa stimulating compound that is screened by the screening device of the present invention is different from drugs such as oral drugs, because it stimulates brain cells directly through the olfactory mucosa, making it difficult to administer oral drugs and the like. It is also effective as a therapeutic drug for patients who have had it. In addition, there are almost no side effects of the oral medication on the route to the affected area, and there is no need to conduct pharmacokinetic experiments.
  • FIG. 1 shows a schematic configuration of the screening device of the present invention.
  • the screening device 1 comprises a box 31 containing an olfactory mucosa stimulating compound filled with a desired concentration of an olfactory mucosa stimulating compound, which is a candidate compound for screening, and an experimental animal for fixing the behavior range of the experimental animal within a predetermined range.
  • Fixing device 3 2 and box containing olfactory mucosa stimulating compound 31 has a spray nozzle 33 for spraying the olfactory mucosa stimulating conjugate in the experimental animal fixture 32.
  • mice As the experimental animals fixed in the experimental animal fixation device 32 , animals of various sizes are used depending on the purpose of the screening experiment, and are usually rats, mice, and egrets.
  • the size of the experimental animal fixator 32 is set to a size corresponding to the size of the experimental animal used.
  • the olfactory mucosa stimulating compound filled in the olfactory mucosa stimulating compound storage box 31 is sprayed toward the nose tip of the experimental animal fixed to the experimental animal fixing device 32 by the spray nozzle 33.
  • the experimental animal fixator 32 has an appropriate size so that the olfactory mucosa stimulating compound sprayed from the spray nozzle 33 is not excessively diffused inside.
  • a rat is used as an experimental animal, and the experimental animal fixation device 32 has a size corresponding to the size of the rat.
  • the measurement electrode unit 10 is attached to the olfactory bulb in the skull of the experimental animal fixed to the experimental animal fixator 32 by surgery.
  • the olfactory bulb is located at the tip of the left and right olfactory lobes protruding forward from the brain, and is the primary center of olfaction composed of a group of neurons arranged in layers.
  • the axons of olfactory cells which form the olfactory mucosa at the top of the nasal cavity, pass through the interior of the skull to the olfactory bulb.
  • Secondary eurons from the olfactory bulb reach the orbitofrontal gyrus, the olfactory area of the cerebral cortex.
  • the stimulation of the olfactory mucosa by the olfactory mucosa stimulating compound always passes through the olfactory bulb, so that the stimulation from the olfactory mucosa to the brain cells can be reliably detected in the olfactory bulb.
  • the electrical reaction of the olfactory bulb of the experimental animal by spraying air containing the olfactory mucosa stimulating compound from the spray nozzle 33 is measured by the measuring electrode unit 10 attached to the experimental animal.
  • the electric signal measured at the measuring electrode unit 10 is given to the signal amplifying device 35 via the evening terminal line 38 connected to the measuring electrode unit 10 and the signal amplifying stimulator 34.
  • the signal amplifying device 35 amplifies the given electric signal, and is provided to a processing device 36 constituted by a combination device or the like.
  • the processing device 36 analyzes the stimulus pattern in the olfactory bulb based on the electric signal given from the measurement electrode unit 10, and stores the stimulus pattern obtained by the analysis as data.
  • the analysis result of the stimulus pattern obtained by the processing device 36 is image-processed and displayed on the display device 37.
  • the signal amplification stimulating device 34 provided between the measuring electrode unit 10 and the signal amplifying device 35 is used to amplify the electric signal output from the processing device 36 and supply the amplified signal to the measuring electrode unit 10.
  • the measuring electrode unit 10 is provided and is used only for measuring the electric signal in the olfactory bulb, the electric signal from the measuring electrode unit 10 passes without being particularly operated.
  • the experimental animal fixing device 32 is provided with a means for measuring a physiological response generated in the living body such as the blood pressure and the heart rate of the fixed experimental animal. Given to 36.
  • FIG. 2 (a) is a schematic plan view of the measurement electrode unit 10 mounted on the olfactory bulb of the experimental animal
  • FIG. 2 (b) is an enlarged view thereof
  • FIG. 2 (c) is a side view thereof.
  • the measurement electrode unit 10 has a substrate 12 made of an insulating film, and, for example, 16 microelectrodes 13 arranged on the surface of the substrate 12 in a 4 ⁇ 4 matrix.
  • the substrate 12 is formed in a square shape having a thickness of about 1 m to 100 m and a side length of about 2 mm.
  • Each microelectrode 13 is formed in a square shape with one side of about 100 m, and the pitch between a pair of adjacent microelectrodes 13 is about 50 Om.
  • each microelectrode 13 it is not particularly limited, 1] at 11 2 ⁇ 100000000 xm 2 approximately in the range, as appropriate, is set. Also, the pitch between the pair of adjacent microelectrodes 13 is not particularly limited, and is appropriately set in a range of about 10 m to 10,000 m.
  • a conductive wire 14 is connected to each microelectrode 13.
  • the conductive wire 14 is formed by a conductive pattern provided on the substrate 12, and its surface is covered with a film of an insulating material.
  • Each conductive line 14 is connected to each electrode 15 a of a current collector 15 arranged along one side edge along the lateral direction of the substrate 12.
  • Each electrode 15a of the current collector 15 is connected to a terminal line 38 (see Fig. 1), and this evening line 38 is drawn out of the skull of the experimental animal to stimulate signal amplification. Connected to device 3 4.
  • Each of the microelectrodes 13 is covered with a thin film formed of collagen, which is a biomaterial, in order to improve the adhesiveness with the living tissue.
  • the thin film covering each microelectrode 13 may be made of a biomaterial such as gelatin or cellulose, in addition to collagen. In this way, by covering each microelectrode 13 with a film made of a biomaterial, when the measurement electrode section 10 is embedded in the olfactory bulb of the experimental animal, the olfactory bulb has high adhesion to the biological components of the olfactory bulb. Is held within.
  • each microelectrode 13 and each conductive wire 14 can be used as the material of each microelectrode 13 and each conductive wire 14.
  • the insulating material covering the conductive wire 14 for example, polystyrene, acrylic, polycarbonate, polyimide or the like is used.
  • the substrate 12 can be made of polyethylene terephthalate, Teflon, silicon rubber, a semiconductor material, or the like.
  • the substrate 12 is not limited to such a material, and may be made of a biological material such as collagen, gelatin, or cellulose.
  • the substrate 12 is made of a biomaterial, when the measurement electrode unit 10 is embedded in the olfactory bulb of the experimental animal, the substrate 12 is integrated with the biological component of the olfactory bulb, and each microelectrode 13 and conductive wire The insulating film of 14 is held in the olfactory bulb with high adhesion.
  • the olfactory mucosa stimulating compound serving as a screening candidate is filled into the olfactory mucosa stimulating compound accommodation box 31 at a desired concentration.
  • a rat as an experimental animal is fixed to the experimental animal fixing device 32.
  • the rat has the measurement electrode unit 10 attached to the olfactory bulb.
  • the olfactory mucosa stimulating compound filled in the olfactory mucosa stimulating compound storage box 31 is directed toward the nose of the rat by the spray nozzle 33 when the rat is fixed. Sprayed with air into 32.
  • the olfactory mucosa stimulating compound contained in the air ejected from the spray nozzle 33 stimulates the olfactory cells of the rat olfactory mucosa, and this stimulation is transmitted to the olfactory bulb as an electrical signal.
  • Each microelectrode 13 of the measurement electrode part 10 embedded in the olfactory bulb of the rat measures an electric signal generated by stimulation of the olfactory mucosa at each position of the olfactory bulb corresponding to each microelectrode 13, The signal is transmitted through the conductive wire 14 and the current collector 15 connected to each of the small electrodes 13 and the signal amplification stimulator 34 provided outside the experimental animal fixture 32. It is transmitted to the amplification device 35.
  • the electric signal transmitted to the signal amplifying device 35 is amplified by the signal amplifying device 35 and output to the processing device 36.
  • the processing device 36 analyzes the electric signal at each position corresponding to each of the microelectrodes 13 arranged in the olfactory bulb based on the electric signal provided from the signal amplifying device 35.
  • the measurement results such as the blood pressure and the heart rate of the rat fixed by the experimental animal fixation device 32 were obtained. Has been given.
  • the processor 36 determines the effectiveness of the olfactory mucosa stimulating compound sprayed on the rat based on the analyzed electric signal pattern in the olfactory bulb and the measurement results of the blood pressure, heart rate, and the like of the rat. For example, if it is detected that the blood pressure of the rat is lowered by stimulation of the olfactory mucosa by the olfactory mucosa stimulating compound, the olfactory mucosa stimulating compound suppresses brain cells and lowers blood pressure. It is determined that a physiological response has been induced. Thereby, it is screened that the olfactory mucosa stimulating compound is effective in lowering blood pressure. In this case, the electric signal pattern obtained by the measurement electrode unit 10 is stored in the processing device 36 as data.
  • the measurement electrode section 10 has 16 microelectrodes 13 provided on the substrate 12. However, it is sufficient if at least one microelectrode 13 is provided.However, in order to accurately obtain a stimulation pattern of the olfactory mucosa in the olfactory bulb, a plurality of olfactory bulbs are provided so as to correspond to electric signals generated in the olfactory bulb. It is desirable to correspond to the pattern of the generated electric signal. In this case, the number of microelectrodes 13 is not limited to 16.
  • the processing device 36 measures physiological responses such as blood pressure and heart rate from the rat fixed to the experimental animal fixation device 32, and responds to the pattern of the electric signal obtained by the measurement electrode portion 10. It is designed to directly determine that a physiological response is induced in the rat, but data on the electrical signal pattern in the olfactory bulb that induces the physiological response in the experimental animal is set in the processing unit 36 in advance. The data may be compared with a pattern of an electric signal measured by the measurement electrode unit 10 to determine that a physiological reaction is induced in the rat.
  • FIG. 3 shows another example of the measuring electrode unit 10, FIG. 3 (a) is a schematic plan view of the measuring electrode unit 10, FIG. 3 (b) is an enlarged view thereof, and FIG. ) Is a side view.
  • a through-hole having an inner diameter of about 50 m is provided in a 4 ⁇ 4 matrix on a substrate 12 made of an insulating film material.
  • the pitch between a pair of adjacent through holes is about 500 / m.
  • Ring-shaped microelectrodes 13 are provided on the periphery of each through hole on the front and back surfaces of the substrate 12, respectively. Therefore, 16 microelectrodes 13 are arranged at the same position on the front and back surfaces of the substrate 12, respectively.
  • Each rescue electrode 13 has an opening with an inner diameter of about 500 m, similarly to each through-hole, and is arranged concentrically with each through-hole.
  • the outer diameter of each microelectrode 13 is about 100 m.
  • each through hole provided in the substrate 12 and the opening of each microelectrode 13 depends on the outer diameter of the microelectrode 13, but is usually 1 im or more and 1000 m or less. You. Further, each microelectrode 13 arranged on the surface of the measurement electrode section 10 is provided with an olfactory mucous membrane.
  • the electric signal sent from the cell to the olfactory bulb is measured, and is supplied to the signal amplifying device 35 via the terminal line 38 and the signal amplifying stimulator 34, and after being amplified by the signal amplifying device 35
  • the processing unit 36 is provided.
  • the processing device 36 analyzes the stimulus pattern in the olfactory bulb based on the electric signal amplified by the signal amplifying device 35.
  • Each of the microelectrodes 13 arranged on the back of the measurement electrode section 10 receives the electric signal transmitted from the processing device 36 after being amplified by the signal amplification stimulator 34.
  • the olfactory bulb of the rat on which the measurement electrode unit 10 is mounted is stimulated by the electric signal given to the elephant. Then, the stimulus by the electric signal provided by each microelectrode 13 is transmitted to rat brain cells.
  • the microelectrodes 13 disposed on the back surface of the measurement electrode section 10 include, for example, a brain cell that suppresses brain cells to lower blood pressure by stimulating the olfactory bulb of the rat with an olfactory mucosa stimulating compound.
  • an electric signal having the same pattern as that of the electric signal obtained by each of the microelectrodes 13 arranged on the surface of the measurement electrode section 10 is provided.
  • the olfactory bulb is given to the brain cells via the olfactory bulb a stimulation pattern similar to the stimulation of the olfactory mucosa by the olfactory mucosa stimulating compound, which can lower blood pressure.
  • the measurement electrode It is not necessary that the pattern of the electric signal obtained by the microelectrodes 13 on the surface of the section 10 be the same, and the electric signal is transmitted to each microelectrode 13 so that a different electric signal pattern can be obtained. Is also good.
  • the measurement electrode unit 10 is attached to the olfactory bulb of the living body, and an electric signal is applied to each microelectrode 13 of the measurement electrode unit 10.
  • a physiological response can be induced by activating or suppressing brain cells.
  • the device of the present invention can be used as a treatment device for a living body.
  • the measurement electrode section 10 is embedded in the olfactory bulb of the human body, and a predetermined electric signal is sent from the processing device 36 to the measurement electrode section 10.
  • the signal can be amplified by the signal amplification stimulator 34 and applied to each of the microelectrodes 13 of the measurement electrode unit 10 to induce a physiological response to the human body, which can be used as a human body treatment device. Can be.
  • each microelectrode 13 is formed in a ring shape, and the openings of each microelectrode 13 provided on the front surface and the back surface of the substrate 12 are connected to the substrate.
  • the nerve tissue in the olfactory bulb that is separated when the measurement electrode section 10 is implanted in the olfactory bulb is connected to the opening of each pair of microelectrodes 13. Extending through the portion and the through hole. Therefore, it is possible to regenerate the nerve path that has been separated in the olfactory bulb.
  • FIG. 4 shows still another example of the measuring electrode unit 10.
  • FIG. 4 (a) is a schematic configuration diagram of the measuring electrode unit 10, and FIG. 4 (b) is a cross-sectional view of a main part thereof. It is.
  • the measurement electrode unit 10 is, for example, a four-electrode array 1 formed by bundling four needle-like conductive wires 16 of different lengths each provided with a microelectrode 16 a at its tip. Has seven.
  • the needle-shaped conductive wire 16 is formed by covering a needle-shaped conductive material with an insulating film, and the insulating film at the tip of each needle-shaped conductive wire 16 is peeled off to form the microelectrode 16a. Are formed at the respective tips.
  • Each microelectrode 16a has a length of, for example, 100 m.
  • Platinum, gold, nickel, titanium nitride, copper, silver, tungsten, or the like is used as the conductive material of the needle-shaped conductive wire 16.
  • an insulating film that covers the conductive material Polyimide, polystyrene, acrylic, polycarbonate, etc. are used.
  • Each electrode row 17 has four needle-shaped conductive wires 16 having different lengths, and microelectrodes 16 a provided at the tip are arranged at intervals of, for example, 500; m. It is bundled in a state. Each electrode row 17 is fixed at a portion that is further 500 m away from the tip of each shortest needle-like conductive wire 16 with an insulating holder 18 made of silicon, Teflon or the like. Each is held in parallel with a distance of 500 m. In FIG. 4A, the width of each of the needle-shaped conductive wires 16 is shown to be wider than the actual width in order to make the drawing easier to see.
  • the measurement electrode section 10 having such a configuration is also embedded in the olfactory bulb of a living body and used for the screening device or the treatment device shown in FIG.
  • this measuring electrode section 10 since the electrode rows 17 provided with the four microelectrodes 16a are held at an appropriate distance from each other, there is little cutting of brain tissue and a neural circuit. It is easy to implant the living body into the olfactory bulb while maintaining the net.
  • the length of the microelectrode 16a is 100 zm, and the interval between adjacent microelectrodes 16a in each electrode row 1 # is 500. Also, platinum is used as the conductive material of the needle-shaped conductive wires 16, and polyimide is used as the insulating film.
  • the measurement electrode section 10 Prior to implantation in the rat olfactory bulb, the measurement electrode section 10 was used to couple the microelectrode 16a with N2 supplement to improve the regeneration and adhesion of nerve cells after implantation. Pretreatment was performed with lagen.
  • Nembutal (barbitur) was injected into the abdominal cavity at an amount of 10 to 10 times the weight of the rat, anesthetized, and the rat was fixed prone. After the rat was fixed, the scalp of the frontal region was opened, and the skull was opened at a size of I mm ⁇ 5 mm. Subsequently, the pretreated measurement electrode portion 10 was inserted into the olfactory bulb, and the terminal line 38 of the measurement electrode portion 10 was pulled out of the rat head. Next, the hole formed in the skull was filled with dental cement, and the scalp was sutured while the terminal line 38 was pulled out of the skull. After this suture, the affected area after the operation was washed with antibiotics (penicillin 100 OuZm and streptomycin 100 g Zml) and hardened with sterile dental cement.
  • antibiotics penicillin 100 OuZm and streptomycin 100 g Zml
  • the rats were kept in an environment free of odor components cleaned with activated carbon until three weeks had elapsed. Then, three weeks after the operation, the rat was fixed to the experimental animal fixture 32 of the screening device 1 shown in FIG.
  • the terminal line 38 pulled out of the body is connected to the signal amplification stimulator 34 outside the experimental animal fixture 32.
  • the screening device olfactory mucosa stimulating compound contained box 3 1 of 1, as the olfactory mucosa stimulating compound, filled with cineole (C le H 18 ⁇ ) of a predetermined concentration, olfactory mucosa stimulating compound contained box 3
  • the spray in the olfactory bulb of the rat is sprayed onto the rat in the experimental animal fixture 32 with normal air for 5 minutes together with normal air for 5 minutes. Recorded as electrical signal from 6a.
  • FIG. 5A shows the electrical signals of the 16 microelectrodes 16a in the measurement electrode section 10.
  • blood pressure and heart rate of rats when cineol was sprayed were measured. The measurement results are shown in Fig. 6 (a).
  • FIG. 5 (b) shows the electrical signals of the 16 microelectrodes 16a in the measurement electrode section 10.
  • Fig. 6 (b) shows the results of the blood pressure and heart rate of the rat measured at the same time.
  • FIG. 5 (a) and FIG. 5 (b) revealed that cineole stimulated the olfactory mucosa of rats.
  • FIG. 6 (a) and FIG. 6 (b) revealed that cineol induced a physiological response such as an increase in blood pressure and heart rate.
  • the blood pressure and heart rate of rats are higher than when cineol is sprayed on the olfactory mucosa with air having 5% higher oxygen concentration than normal. It was also found out.
  • cineol was found to be effective in increasing blood pressure and heart rate, especially in the absence of high oxygen concentration.
  • the measurement electrode section 10 shown in FIG. 3 was mounted on the ratt in the same manner as in Example 1.
  • ITO as a conductive material was used, and the surface of each microelectrode 13 was plated with gold.
  • the rat equipped with the measurement electrode unit 10 is fixed to the animal experiment fixture 32 of the screening device 1 shown in FIG. 1 so that a predetermined electric signal pattern is given to the olfactory bulb of the rat.
  • the electrical signals shown in FIG. 7 were respectively applied to 16 microelectrodes 13 provided on the back surface of the measurement electrode section 10. Then, the changes over time in blood pressure and heart rate of the rat when the electric signal pattern was given to the olfactory bulb were measured.
  • Figure 8 shows the results.
  • the measurement electrode portion 10 shown in FIG. 2 was mounted on the ratt in the same manner as in Example 1.
  • Each of the microelectrodes 13 of the measurement electrode section 10 was made of ITO as a conductive material, and the surface of each of the microelectrodes 13 was plated with gold.
  • the rat equipped with the measuring electrode unit 10 is fixed to the animal experiment fixing device 32 of the screening device 1 shown in FIG. 1 so that the predetermined stimulating pattern is given to the rat olfactory bulb.
  • the electric signal shown in Fig. 9 (a) was given.
  • the change over time of the blood glucose level of the rat when such an electric signal was given to the measurement electrode section 10 was measured. The result is shown in Fig. 9 (b).
  • the measurement electrode unit 10 shown in FIG. 4 was mounted on the ratt in the same manner as in Example 1. Platinum was used as the conductive material of the needle-shaped conductive wires 16 of the measurement electrode section 10, and the conductive material was subjected to an insulation coating treatment with polyimide.
  • the diameter of the needle-shaped conductive wire 16 was 100 im, and the interval between adjacent microelectrodes 16 a in the electrode row 17 was 500 m.
  • the microelectrode 16a was covered with a thin film composed of collagen.
  • the rat equipped with the measuring electrode unit 10 was moved to the operation of the screening device 1 shown in Fig. 1.
  • the electrical signals shown in Fig. 10 were given to the 16 microelectrodes 16a of the measurement electrode section 10 in the growing environment, respectively.
  • the changes over time in blood pressure and heart rate when a stimulation pattern was given by an electrical signal were measured under low oxygen concentration conditions and high oxygen concentration conditions, respectively.
  • the oxygen concentration was 5% lower than that of normal air
  • the high oxygen concentration condition the oxygen concentration was 5% higher than that of normal air.
  • Fig. 11 shows the measurement results.
  • the electrical signal pattern applied to the olfactory bulb induces physiological changes such as an increase in blood pressure and heart rate.
  • physiological changes such as an increase in blood pressure and heart rate.
  • the blood pressure and heart rate under hypoxic conditions are increased. In both cases, it was confirmed that the level was higher than in the high oxygen concentration condition.
  • a device having a plurality of microelectrodes on the front and back sides is used.
  • a physiological response is induced by stimulation of the olfactory bulb of a living body by the apparatus and method of the present invention.
  • different stimulation patterns for the olfactory bulb result in different types and degrees of the induced physiological reaction.
  • the olfactory mucosa stimulating compound is screened based on the relevance of the physiological reaction elicited by the olfactory mucosa stimulating compound that stimulates the olfactory mucosa of the living body.
  • the screened olfactory mucosa stimulating compound has immediate effects because it acts directly on brain cells, and is also useful for patients who have difficulty administering drugs by oral administration, vascular injection, intramuscular injection, etc. It can be used as a new drug that can be administered. In addition, drugs that are effective against new diseases that appear with various environmental changes Can also be created.
  • the electrical signal pattern generated in the olfactory bulb due to the stimulation of the olfactory mucosa by the olfactory mucosa stimulating compound and the type and degree of the physiological response of the living body induced by the electrical signal pattern are grasped.
  • a stimulus pattern that induces a predetermined physiological response to the measurement electrode unit attached to the olfactory bulb in the form of an electric signal a predetermined physiological A reaction will be induced. This makes it possible to treat the living body, such as lowering blood pressure and blood sugar level.
  • Examples 1 to 4 are merely examples for demonstrating the usefulness of the apparatus and the method of the present invention, and the compounds to be provided and the oxygen concentration are not particularly limited.
  • the screening device and the method of the present invention measure the electrical signal generated in the olfactory bulb by the olfactory mucosa stimulating compound by the measurement electrode section embedded in the olfactory bulb of the experimental animal, and induce the olfactory bulb in the experimental animal. Since the effectiveness of the olfactory mucosa stimulating compound is determined based on the physiological reaction to be performed, an effective olfactory mucosa stimulating compound for an experimental animal can be easily and reliably screened.
  • the treatment apparatus of the present invention directly stimulates the brain cells of the human body, there is no possibility that side effects or the like occur as in administration of a drug.
  • the measurement electrode unit of the present invention can be suitably used for these screening devices and treatment devices.

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Description

スクリーニング装置及び方法、 スクリーニング方法により得られる嗅粘膜刺激 化合物、 並びに、 治療装置、 測定電極部 技術分野
本発明は、 環境科学分野、 医療科学分野、 薬学分野、 食品科学分野、 神経生理 学分野等において、 生物に投与される中枢神経薬等の種々の薬物の効力を調べる スクリ一ニング装置および方法に関し、 より具体的には、 実験動物の嗅粘膜を剌 激することにより、 生体の恒常性、 自己治癒能力等を高める嗅粘膜刺激化合物を スクリーニングする装置及び方法、そのスクリーニング方法によって得られる嗅 粘膜刺激化合物、 さらには、嗅粘膜刺激化合物と同様の効果が得られる治療装置、 さらには、スクリーニング装置および治療装置に使用される測定電極部に関する。 背景技術
近年、 環境汚染に伴う環境変化により、 生態系が脅かされて、 新たな疾病が増 加する傾向になっているが、 医療技術の発達により、 種々の病気が克服され、 長 寿命の人が増加している。 しかしながら、 その反面、 主として老人に見られるァ ルツハイマー症候群、 パーキンソン病等、 脳機能に異常を引き起こす病気の患者 数が増加しており、 脳機能を改善する薬物のさらなる開発が望まれている。
このような状況のもとで、 多くの薬品メーカ一および化学メーカ一は、 新規な 薬物の開発を行っている。
薬物は、 内服、 塗布、 静脈注射、 筋肉注射等により生体に投与されるが、 いず れの投与方法であっても、 投与された薬物が血流によって体内を循環した後、 患 部に到達し、 患部に到達した薬物が、 その患部に直接的に作用する点において共 通する。 また、 将来的に薬物の候補となるリード化合物、 その類縁体等も、 従来 の薬物と同様に、 直接、 患部に作用する。 内服、 静脈注射等によって生体に投与される薬物の場合には、 投与される薬物 の薬物動態、 薬物の吸収率、 患部到達効率等をシミュレーションし、 それを実証 する必要がある。
また、 内服により薬物を患者に投与する塲合、 投与された薬物は、 胃または小 腸により吸収され、 吸収された薬物は、肝臓を経て、血流により体内を循環する。 しかし、 肝臓に到達した薬物は、 そのまま排泄、 あるいは、 代謝されることによ り、 ほとんどが体外に除去されるために、 投与した薬物の一部しか利用されない ような塲合も多く発生している。 また、 胃、 小腸、 肝臓のいずれか、 特に肝臓に 損傷のある患者には、 投与できる薬物の種類及び量が制限される塲合がある。 さらに、 脳の中枢系への薬物は、 脳に移行するに際して、 いわゆる血液脳関門 を通過する必要があり、薬物の構造によっては、脳内に移行できない場合がある。 しかも、 脳内では、 性質が異なる神経細胞が複雑に絡み合った状態になっている ために、 脳内に達した薬物によって不測の副作用が発現するおそれがあり、 この ような副作用の発現を回避することは非常に困難である。
また、 薬物が血流による体内循環を経て患部に到達する場合には、 薬物が患部 に到達して作用するまでに時間がかかるという問題もある。
患部に薬物を塗布するように、 直接、 薬物を患部に作用させる方法でも、 これ らの問題点を回避することは困難である。
一方、 生体の嗅粘膜の刺激は、 直接、 脳細胞に伝達されることが知られている が、 生体の嗅粘膜の刺激によって、 脳細胞がどのように機能するかは必ずしも明 確に解明されていない。 発明の開示
本発明は、 上記のような問題に鑑みてなされたものであり、 その目的は、 嗅粘 膜を刺激することにより、 直接、 脳細胞に作用する化合物をスクリーニングする 装置及び方法、 その装置に使用される測定電極部、 その方法によって得られる嗅 粘膜刺激物、 並びに治療装置を提供することにある。
上記課題を解決するため、 本発明の請求項 1の嗅粘膜刺激性化合物スクリ一二 ング装置は、実験動物の嗅粘膜に向けて嗅粘膜刺激化合物を投与する投与手段と、 実験動物の嗅球に埋め込まれて、 嗅球にて生じる電気信号を測定する測定電極部 と、 前記投与手段によって実験動物の嗅粘膜に嗅粘膜刺激化合物が投与された場 合における該測定電極部にて測定される電気信号と実験動物に誘起される生理的 反応との相関関係を分析する処理手段と、 を備えたものである。
請求項 2の嗅粘膜刺激化合物スクリ一二ング装置は、 請求項 1記載の嗅粘膜剌 激化合物スクリーニング装置において、 前記処理手段は、 実験動物から、 生理的 反応に関するデータを直接得て、 前記測定電極部にて測定される電気信号との相 関関係を分析するものである。
請求項 3の嗅粘膜刺激化合物スクリ一二ング装置は、 請求項 1記載の嗅粘膜刺 激化合物スクリーニング装置において、 前記処理手段は、 実験動物が生理的反応 を誘起させる嗅球における電気信号に関するデータを予め有しており、 そのデー 夕に基づいて、 前記測定電極部にて測定される電気信号との相関関係を分析する ものである。
請求項 4の嗅粘膜刺激化合物スクリ一二ング装置は、 請求項 1〜 3のいずれか に記載の嗅粘膜刺激化合物スクリーニング装置において、 前記投与手段は、 嗅粘 膜刺激化合物を収容するボックスと、 該ボックス内に収容された嗅粘膜刺激化合 物を、 実験動物の嗅粘膜に噴霧するノズルとを有するものである。
請求項 5の嗅粘膜刺激化合物スクリ一ニング装置は、 請求項 1〜 4のいずれか に記載の嗅粘膜刺激化合物スクリーニング装置において、 前記測定電極部は、 嗅 球の神経細胞からの電気信号を検出する少なくとも 1つの微小電極を有するもの である。
請求項 6の嗅粘膜刺激化合物スクリーニング装置は、 請求項 5記載の嗅粘膜剌 激化合物スクリーニング装置において、 前記微小電極が複数設けられており、 各 微小電極は、 実験動物の嗅粘膜に対する嗅粘膜刺激化合物の投与によって嗅球に 発生する電気信号パ夕一ンが多点で得られるように配置されているものである。 請求項 7の嗅粘膜刺激化合物スクリ一二ング装置は、 請求項 5または 6記載の 嗅粘膜刺激化合物スクリーニング装置において、 前記各微小電極には、 実験動物 が生理的反応を誘起させる電気信号がそれぞれ与えられるものである。
請求項 8の嗅粘膜刺激性化合物スクリ一ニング方法は、 実験動物の嗅粘膜に向 けて嗅粘膜刺激化合物を投与する工程と、 実験動物の嗅粘膜に嗅粘膜刺激化合物 が投与された場合に、 実験動物の嗅球に生じる電気信号を測定する工程と、 測定 される電気信号と実験動物に誘起される生理的反応との相関関係について分析す る工程と、 を包含するものである。
請求項 9の嗅粘膜刺激性化合物は、 請求項 8に記載の嗅粘膜刺激性化合物スク リーニング方法によって、 測定電極部にて則定される電気信号と実験動物に誘起 される生理的反応との相関関係が認められるものである。
請求項 1 0の治療装置は、 生体の嗅球に埋め込まれる測定電極部と、 生体が生 理的反応を誘起させる嗅球での剌激パターンを、 該測定電極部に対して電気信号 パターンとして与える手段と、 を具備するものである。
請求項 1 1の測定電極部は、 実験動物の嗅球に埋め込まれて、 嗅球にて生じる 電気信号の測定または嗅球に電気信号を与えるために使用される測定電極部であ つて、 嗅球の神経細胞からの電気信号をそれぞれ検出する複数の微小電極が設け られており、 各微小電極が、 実験動物の嗅粘膜に対する嗅粘膜刺激化合物の投与 によって嗅球に発生する電気信号パターンに基づいて配置されているものである。 請求項 1 2の測定電極部は、 請求項 1 1記載の測定電極部において、 前記各微 小電極が、 1 m2〜l 0 0 0 0 0 0 0 0 m2の面積になっているものである。 請求項 1 3の測定電極部は、 請求項 1 2記載の測定電極部において、 前記微小 電極がマトリクス状に配置されているものである。
請求項 1 4の測定電極部は、 請求項 1 3記載の測定電極部において、 隣接する 微小電極の間隔が、 1 0〜1 0 0 0 0 mになっているものである。
請求項 1 5の測定電極部は、 請求項 1 1記載の測 ^電極部において、 前記各微 小電極は、 フィルム状の基板上に配置されているものである。
請求項 1 6の測定電極部は、 請求項 1 5記載の測定電極部において、 前記各微 小電極は、 それぞれリング状をしており、 前記基板に設けられた貫通孔の周縁部 にそれぞれ配置されているものである。
請求項 1 7の測定電極部は、 請求項 1 6記載の測定電極部において、 前記基板 に形成された貫通孔の内径3が 1 0 0 0 0 m以下であるものである。
請求項 1 8の測定電極部は、 請求項 1 1に記載の測定電極部において、 前記微 小電極は、 前記基板の表面および裏面の同じ位置に配置されており、 前記基板の 一方の面に設けられた各微小電極は、 実験動物が生理的反応を誘起させる電気信 号パターンを検出し、 他方は、 検出した信号と同じ、 または異なる信号を印加す るものである。
請求項 1 9の測定電極部は、 請求項 1 5記載の測定電極部において、 前記微小 電極が、 金、 白金、 I T〇、 チッ化チタン、 銅、 銀、 タングステンのいずれかに よって形成されているものである。
請求項 2 0の測定電極部は、 請求項 1 5記載の測定電極部において、 前記基板 が、 生体材料によって構成されているものである。
請求項 2 1の測定電極部は、 請求項 1 5記載の測定電極部において、 前記基板 が、 ポリエチレンテレフタレ一卜、 テフロン、 シリコンゴム、 半導体材料、 導電 性ゴムのいずれかによつて構成されているものである。
請求項 2 2の測定電極部は、 請求項 1 3記載の測定電極部において、 前記微小 電極は、 針状導電線の先端部にそれぞれ形成されており、 所定本数の針状導電線 が、 各微小電極がそれぞれ所定の間隔をあけた状態で束ねられて電極列を構成す るとともに、 複数の電極列が、 所定の間隔をあけて平行に配置されているもので ある。 請求項 2 3の測定電極部は、 請求項 2 1記載の測定電極部において、 前記針状 導電線は、 直径 1 m〜l 0 0 0 mになっているものである。
請求項 2 4の測定電極部は、 請求項 2 2記載の測定電極部において、 前記針状 導電線は、 針状の導電材料を、 先端部の微小電極を除いて絶縁皮膜によって覆わ れて構成されているものである。
請求項 2 5の測定電極部は、 請求項 2 4記載の測定電極部において、 前記針状 導電線の導電材料が、 金、 白金、 I T O、 チッ化チタン、 銅、 銀、 タングステン、 導電性ゴムのいずれかによって構成されているものである。
請求項 2 6の測定電極部は、 請求項 2 4記載の測定電極部において、 前記針状 導電線の絶縁皮膜が、 ポリスチレン、 アクリル、 ポリ力一ポネート、 ポリイミド のいずれかによつて構成されているものである。
請求項 2 7の測定電極部は、 請求項 1 1記載の測定電極部において、 前記微小 電極は、 生体材料によって構成された皮膜によって覆われているものである。 請求項 2 8の測定電極部は、 請求項 2 2記載の測定電極部において、 前記針状 導電性材料の先端部が生体材料の皮膜によって覆われているものである。
請求項 2 9の治療方法は、 実験動物の嗅粘膜に向けて嗅粘膜刺激化合物を投与 する工程と、 実験動物の嗅粘膜に嗅粘膜束!!激化合物が投与された塲合に、 実験動 物の嗅球に生じる電気信号を測定する工程と、測定される電気信号のパターンと、 該電気信号のパ夕一ンによって実験動物に誘起される生理的反応の種類および程 度を把握する工程と、 目的の生理的反応を生じるに十分な電気信号パターンを刺 激パターンとして該実験動物の嗅球に与える工程と、 を包含するものである。 請求項 3 0の方法は、 前記目的の生理的反応が血圧降下であるものである。 請求項 3 1の方法は、前記目的の生理的反応が血糖値の低下であるものである。 図面の簡単な説明
図 1は、 本発明の嗅粘膜刺激性化合物のスクリ一二ング装置の実施形態の一例 を示す概略構成図である。
図 2は、スクリ一ニング装置に使用される測定電極の一例を示す図であり、( a ) は、 そのスクリーニング装置に使用される測定電極部の一例を示す概略平面図、 (b) は、 その詳細を示す拡大平面図、 (c) は、 その側面図である。
図 3は、 スクリーニング装置に使用される測定電極の他の例を示す図であり、
(a) は、 そのスクリーニング装置に使用される測定電極部の他の例を示す概略 平面図、 (b) は、 その詳細を示す拡大平面図、 (c) は、 その側面図である。 図 4は、 スクリーニング装置に使用される測定電極のさらに他の例を示す図で あり、 (a) は、 そのスクリーニング装置に使用される測定電極部のさらに他の 例を示す概略図、 (b) は、 その詳細を示す断面図である。
図 5は、 実施例 1における結果を示す図であって、 (a) および (b) は、 そ れぞれ、 実施例 1において、 測定電極部にて測定される電気信号パターンを示し ている。
図 6は、 血圧及び心拍数の経時変化を示すグラフであって、 (a) および(b) は、 それぞれ、 図 5 (a) および (b) に示す電気信号パターンによって誘起さ れる血圧及び心拍数の経時変化を示すグラフである。
図 Ίは、 実施例 2において測定電極部に与えられた電気信号パターンを示して いる。
図 8は、 図 7に示す電気信号パターンを測定電極部に与えた場合のラッ卜の血 圧及び心拍数の経時変化を示すグラフである。
図 9は、 ラッ卜の血糖値の経時的変化を示すグラフであって、 (a) は、 実施 例 3において測定電極部に与えられる電気信号パターンを示し、 (b) はその電 気信号パターンを測定電極部に与えた場合のラットの血糖値の経時的変化を示す グラフである。
図 10は、 実施例 4において、 測定電極部にて測定された電気信号パターンを 示している。 図 1 1は、 実施例 4において測定された血圧及び心拍数の経時的変化を示すグ ラフである。
なお、 図 1〜1 1に記載される参照番号は、 それぞれ以下の部材または装置を 示す: 1 0 測定電極部、 1 2 基板、 1 3 微小電極、 1 4 導電線、 、 1 5 集電部、 1 6 針状導電線、 1 6 a 微小電極、 1 7 電極列、 1 8 ホルダ 一、 3 1 嗅粘膜刺激化合物収容ボックス、 3 2 実験動物固定器、 3 3 噴霧 ノズル、 3 4 信号増幅刺激装置、 3 5 信号増幅装置、 3 6 処置装置。 発明を実施するための最良の形態
本発明は、 生体の嗅粘膜を刺激することにより、 直接、 脳機能を活性化または 抑制することにより、 生理機能を調節する医薬品候補化合物をスクリ一ニングす る装置及び方法を提供する。 本発明のスクリーニング装置は、 医薬品候補化合物 である嗅粘膜刺激物を生体の嗅粘膜に投与したときに惹起される嗅球の刺激パタ ーンを測定し、 そのパターン分析を行って、 生体内に生じる生理的反応との相関 関係を調査し、 嗅粘膜への刺激を介して脳を活性化又は抑制する嗅粘膜刺激物の スクリーニングする。
その結果、 本発明のスクリーニング装置によりスクリーニングされる嗅粘膜刺 激化合物は、 内服薬等の薬物と異なり、 嗅粘膜を介して、 直接、 脳細胞を刺激す るために、 内服薬等の投与が困難であった患者に対しても、 治療薬として有効で ある。 また、 内服薬等による患部到達経路に与える副作用もほとんどなく、 さら に、 薬物動態などの実験を行う必要もない。
以下に、 本発明のスクリーニング装置を、 図面に基づいて詳細に説明する。 図 1は、 本発明のスクリーニング装置の概略構成を示している。 このスクリー ニング装置 1は、 スクリーニングの候補化合物である嗅粘膜刺激化合物が、 所望 の濃度で充填された嗅粘膜刺激化合物収容ボックス 3 1と、 実験動物の行動範囲 を所定範囲内に固定する実験動物固定器 3 2と、 嗅粘膜刺激化合物収容ボックス 3 1内の嗅粘膜刺激ィ匕合物を実験動物固定器 3 2に噴霧する噴霧ノズル 3 3とを 有している。
実験動物固定器 3 2内に固定される実験動物としては、 スクリーニング実験の 目的によって種々の大きさの動物が使用され、 通常、 ラット、 マウス、 ゥサギ等 である。 実験動物固定器 3 2の大きさは、 用いられる実験動物の大きさに対応し た大きさとされる。
嗅粘膜刺激化合物収容ボックス 3 1に充填された嗅粘膜刺激化合物は、 噴霧ノ ズル 3 3によって、 実験動物固定器 3 2に固定された実験動物の鼻先に向けて噴 霧される。 実験動物固定器 3 2は、 噴霧ノズル 3 3から噴霧される嗅粘膜剌激化 合物が内部にて拡散し過ぎないような適度の大きさとされている。
なお、 本実施の形態では、 実験動物としてラットを用いており、 実験動物固定 器 3 2もラッ卜の大きさに対応した大きさとされている。
実験動物固定器 3 2に固定される実験動物の頭蓋内の嗅球には、手術によって、 測定電極部 1 0が装着されている。
嗅球とは、 脳から前方側に突き出た左右嗅索の先端にあり、 層状に並ぶニュ一 ロン群で構成される嗅覚の一次中枢である。 鼻腔の最上部にある嗅粘膜を形成す る嗅細胞の軸索は、 頭蓋の内部を通って、 嗅球に達している。 嗅球からの二次二 ユーロンは、 大脳皮質の嗅覚野である眼窩前頭回に達している。 従って、 嗅粘膜 刺激化合物による嗅粘膜への刺激は、嗅球を必ず通過するために、嗅球において、 嗅粘膜から脳細胞への剌激を確実に検出することができる。
噴霧ノズル 3 3から嗅粘膜刺激化合物を含む空気を噴霧することによる実験動 物の嗅球の電気的反応は、 実験動物に装着された測定電極部 1 0により測定され る。 測定電極部 1 0にて測定される電気信号は、 測定電極部 1 0に接続された夕 一ミナルライン 3 8および信号増幅刺激装置 3 4を介して、 信号増幅装置 3 5に 与えられている。 信号増幅装置 3 5は、 与えられる電気信号を増幅して、 コンビ ユー夕等によって構成された処理装置 3 6に与えられている。 処理装置 36は、 測定電極部 10から与えられる電気信号に基づいて、 嗅球に おける刺激パターンを分析するとともに、分析によって得られた刺激パターンを、 データとして保存する。 また、 処理装置 36によって得られた刺激パターンの分 析結果は、 画像処理されて、 表示装置 37に表示される。
なお、 測定電極部 10と信号増幅装置 35との間に設けられている信号増幅剌 激装置 34は、 処理装置 36から出力される電気信号を、 増幅して測定電極部 1 0に与えるために設けられており、 測定電極部 10が、 嗅球における電気信号の 測定のみに使用される場合には、 特に動作されず、 測定電極部 10からの電気信 号が通過する。
また、 実験動物固定器 32には、 固定された実験動物の血圧、 心拍数等の生体 内にて生じる生理反応を測定する手段が設けられており、 その測定手段による測 定結果が、 処理装置 36に与えられている。
図 2 (a) は、 実験動物の嗅球に装着された測定電極部 10の概略平面図、 図 2 (b) はその拡大図、 図 2 (c) は、 その側面図である。 測定電極部 10は、 絶縁性のフィルムによって構成された基板 12と、 その基板 12の表面に、 例え ば 4X4のマトリクス状に配置された 16個の微小電極 13とを有している。 基板 12は、 厚さが 1 m〜l 00 m程度であって、 一辺の長さが 2mm程 度の正方形状に形成されている。 各微小電極 13は、 1辺が 100 m程度の正 方形状に形成されており、 隣接する一対の微小電極 13のピッチは、 50 O m 程度とされている。 各微小電極 13の大きさに関しては、 特に限定されるもので はなく、 1 ]112〜 100000000 xm2程度の範囲にて、 適宜、 設定される。 また、 隣接する一対の微小電極 13のピッチに関しても、 特に限定されるもので はなく、 10 m〜l 0000 m程度の範囲にて、 適宜、 設定される。
各微小電極 13には、 導電線 14がそれぞれ接続されている。 導電線 14は、 基板 12上に設けられた導電パターンによって構成されており、 その表面が絶縁 性材料の皮膜によって覆われている。 各導電線 1 4は、 基板 1 2の横方向に沿った一方の側縁部に沿って配置されて いる集電部 1 5の各電極 1 5 aにそれぞれ接続されている。 集電部 1 5の各電極 1 5 aは、 ターミナルライン 3 8 (図 1参照) に接続されており、 この夕一ミナ ルライン 3 8は、 実験動物の頭蓋から外部に引き出されて信号増幅刺激装置 3 4 に接続されている。
各微小電極 1 3は、 生体組織との密着性を向上させるために、 生体材料である コラーゲンによって形成された薄い皮膜にて覆われている。 なお、 各微小電極 1 3を覆う薄い皮膜は、 コラーゲンの他、 ゼラチン、 セルロース等の生体材料を用 いてもよい。 このように、 各微小電極 1 3を生体材料による皮膜によって覆うこ とにより、 測定電極部 1 0が実験動物の嗅球内に埋め込まれた際に、 嗅球の生体 成分に対して高い密着性で嗅球内に保持される。
各微小電極 1 3及び各導電線 1 4の材質としては、 白金、 金、 I T O、 チッ化 チタン、 銅、 銀、 タングステンを使用することができる。 また、 導電線 1 4を覆 う絶縁性材料としては、 例えば、 ポリスチレン、 アクリル、 ポリ力一ポネート、 ポリイミド等が使用される。
また、 基板 1 2は、 ポリエチレンテレフ夕レート、 テフロン、 シリコンゴム、 半導体材料等によって構成することができる。 基板 1 2としては、 このような材 料に限らず、 コラーゲン、 ゼラチン、 セルロースなどの生体材料によって構成し てもよい。 基板 1 2を生体材料によって構成することにより、 測定電極部 1 0が 実験動物の嗅球内に埋め込まれた際に、 基板 1 2が嗅球の生体成分と一体化し、 各微小電極 1 3および導電線 1 4を絶縁材料の皮膜が、 高い密着性で嗅球内に保 持される。
このような構成のスクリーニング装置 1の動作について説明する。 まず、 スク リーニングの候補となる嗅粘膜刺激化合物を、 所望の濃度として嗅粘膜刺激化合 物収容ボックス 3 1に充填する。 また、 実験動物固定器 3 2に、 実験動物として のラットを固定する。 ラッ卜は、 嗅球に測定電極部 1 0が装着されている。 実験動物固定器 3 2 ラットが固定されると、 噴霧ノズル 3 3によって、 ラッ 卜の鼻先に向けて嗅粘膜刺激化合物収容ボックス 3 1に充填された嗅粘膜剌激化 合物が、 実験動物固定器 3 2内に空気とともに噴霧される。
噴霧ノズル 3 3から噴出される空気に含まれる嗅粘膜刺激化合物は、 ラットの 嗅粘膜の嗅細胞を刺激し、 この刺激が、 電気的信号として、 嗅球に伝達される。 ラットの嗅球に埋め込まれた測定電極部 1 0の各微小電極 1 3は、 各微小電極 1 3にそれぞれ対応した嗅球の各位置において、 嗅粘膜の刺激によって生じる電 気信号を測定し、 この電気信号が、 各^ [小電極 1 3に接続された導電線 1 4及び 集電板 1 5、 および、 実験動物固定器 3 2の外部に設けられた信号増幅刺激装置 3 4を介して、 信号増幅装置 3 5に送信される。
信号増幅装置 3 5に送信された電気信号は、 信号増幅装置 3 5によって増幅さ れて、 処理装置 3 6に出力される。 処理装置 3 6は、 信号増幅装置 3 5から与え られる電気信号に基づいて、 嗅球内に配置された各微小電極 1 3にそれぞれ対応 した各位置における電気信号を分析する。
また、 処理装置 3 6には、 噴霧ノズル 3 3から嗅粘膜刺激化合物を含む空気が 噴霧された際に、 実験動物固定器 3 2にて固定されたラットの血圧、 心拍数等の 測定結果が与えられている。
処理装置 3 6は、 分析された嗅球における電気信号のパターンと、 ラットの血 圧、 心拍数等の測定結果とに基づいて、 ラットに噴霧された嗅粘膜刺激化合物の 有効性について判定する。 例えば、 嗅粘膜刺激化合物による嗅粘膜の刺激によつ て、 ラッ卜の血圧が降下していることが検出されると、その嗅粘膜刺激化合物が、 脳細胞を抑制して、 血圧を降下させる生理的反応が誘起されているものと判定さ れる。 これにより、 その嗅粘膜刺激化合物が血圧の降下に有効であるとスクリ一 ニングされる。 この場合に、 測定電極部 1 0によって得られた電気信号パターン は、 デ一夕として処理装置 3 6に保存される。
なお、 測定電極部 1 0は、 基板 1 2上に微小電極 1 3が 1 6個設けられている が、 少なくとも 1つの微小電極 1 3を有すればよいが、 嗅球における嗅粘膜刺激 化合物による刺激パターンを精度よく得るためには、 嗅球に発生する電気信号に 対応するように複数設けて、 嗅球に発生する電気信号のパターンに対応させるこ とが望ましい。 この場合の微小電極 1 3の数は、 1 6個に限定されるものではな い。
また、 処理装置 3 6は、 実験動物固定器 3 2に固定されたラットからの血圧、 心拍数等の生理的反応を測定して、 測定電極部 1 0によって得られた電気信号の パターンに対してラッ卜に生理的反応が誘起されていることを直接的に判定する ようになっているが、 実験動物が生理的反応を誘起させる嗅球における電気信号 パターンに関するデータを予め処理装置 3 6に設定しておいて、 そのデータと、 測定電極部 1 0にて測定される電気信号のパターンとを比較して、 ラッ卜に生理 的反応が誘起されることを判定してもよい。
図 3は、 測定電極部 1 0の他の例を示しており、 図 3 ( a ) は、 測定電極部 1 0の概略平面図、 図 3 ( b ) は、 その拡大図、 図 3 ( c ) は、 その側面図である。 この測定電極部 1 0は、 絶縁性のフィルム材料によって構成された基板 1 2に、 4 X 4のマトリクス状に、 それぞれの内径 5 0 m程度の貫通孔が設けられてい る。 隣接する一対の貫通孔のピッチは、 5 0 0 / m程度になっている。 基板 1 2 の表面及び裏面における各貫通孔の周縁部には、 リング状の微小電極 1 3がそれ ぞれ設けられている。 従って、 基板 1 2の表面および裏面には、 1 6個の微小電 極 1 3が、 それぞれ同様の位置に配置されている。
各 ί救小電極 1 3は、 各貫通孔と同様に、 内径 5 0 0 m程度の開口部をそれぞ れ有しており、 各貫通孔と同心状態でそれぞれ配置されている。 各微小電極 1 3 の外径は、 1 0 0 m程度とされている。
基板 1 2に設けられた各貫通孔および各微小電極 1 3の開口部の内径は、 微小 電極 1 3の外径にもよるが、 通常、 1 i m以上、 1 0 0 0 0 m以下とされる。 また、 この測定電極部 1 0の表面に配置された各微小電極 1 3は、 嗅粘膜の嗅 細胞から嗅球に送られる電気信号をそれぞれ測定して、 ターミナルライン 3 8お よび信号増幅刺激装置 3 4を介して信号増幅装置 3 5に与えられて、 信号増幅装 置 3 5によって増幅された後に処理装置 3 6に与えられる。 処理装置 3 6では、 信号増幅装置 3 5によって増幅された電気信号に基づいて、 嗅球における刺激パ ターンを分析する。
測定電極部 1 0の裏面に配置された各微小電極 1 3は、 処理装置 3 6から送信 される電気信号が、 信号増幅刺激装置 3 4によって増幅されて与えられており、 各微小電極 1 6に与えられる電気信号によって、 測定電極部 1 0が装着されたラ ッ卜の嗅球を刺激する。 そして、 各微小電極 1 3によって与えられる電気信号に よる刺激が、 ラットの脳細胞に伝達される。
測定電極部 1 0の裏面に配置された各微小電極 1 3には、 例えば、 嗅粘膜刺激 化合物によってラットの嗅球が刺激されることによって例えば血圧を降下させる ように脳細胞が抑制された塲合において、 測定電極部 1 0の表面に配置された各 微小電極 1 3によって得られた電気信号のパターンと同様のパターンの電気信号 が与えられる。 これにより、 嗅球には、 嗅粘膜刺激化合物による嗅粘膜の刺激と 同様の剌激パターンが嗅球を介して脳細胞に与えられることになり、 血圧を降下 させることができる。
測定電極部 1 0の裏面に配置された各微小電極 1 3に与えられる電気信号のパ ターンは、 脳細胞の活性化あるいは抑制化させるために有効であると認められる ものであれば、 測定電極部 1 0の表面の微小電極 1 3によって得られる電気信号 のパターンと同様である必要はなく、 異なった電気信号パターンが得られるよう に、 各微小電極 1 3に電気信号を送信するようにしてもよい。
このように、 測定電極部 1 0の各微小電極 1 3に電気信号を与えて、 嗅球に対 して所定パターンの電気信号の剌激を与えることにより、 脳細胞の活性化あるい は抑制化によって生理的反応を誘起させることができる。 従って、 生体の嗅球に 測定電極部 1 0を装着して、 測定電極部 1 0の各微小電極 1 3に電気信号を与え て、 所定パターンの電気信号による刺激を嗅球に与えることによって、 脳細胞の 活性化あるいは抑制化による生理的反応の誘起させることができる。このように、 本発明の装置は、 生体の治療装置として使用することができる。
なお、 図 3に示すように、 基板 1 2の表面および裏面に微小電極 1 3がそれぞ れ設けられた測定電極部 1 0に限らず、 図 2に示すように、 基板 1 2の表面にの み微小電極 1 3が設けられている場合にも、 その測定電極部 1 0を人体の嗅球に 埋め込んで、 その測定電極部 1 0に対して、 処理装置 3 6から、 所定の電気信号 を、 信号増幅刺激装置 3 4によって増幅して、 測定電極部 1 0の各微小電極 1 3 に与えることにより、 人体に対して生理的反応を誘起させることができ、 人体の 治療装置として使用することができる。
図 3に示す測定電極部 1 0では、各微小電極 1 3がリング状に形成されており、 しかも、基板 1 2の表面および裏面に設けられた各微小電極 1 3の開口部同士が、 基板に設けられた貫通孔によつて相互に連通しているために、 測定電極部 1 0を 嗅球に埋め込んだ際に分断された嗅球内の神経組織が、 対をなす各微小電極 1 3 の開口部および貫通孔を介して伸長される。 従って、 嗅球内にて分断された神経 経路を再成することができる。
図 4は、 測定電極部 1 0のさらに他の例を示しており、 図 4 ( a ) は、 測定電 極部 1 0の概略構成図、 図 4 ( b ) は、 その要部の断面図である。 この測定電極 部 1 0は、 例えば、 それぞれの先端部に微小電極 1 6 aが設けられた長さの異な る 4本の針状導電線 1 6を束ねて構成された 4本の電極列 1 7を有している。 針 状導電線 1 6は、 針状の導電材料を絶縁皮膜によって覆われて構成されており、 各針状導電線 1 6の先端部の絶縁皮膜が剥離されることによって、 微小電極 1 6 aがそれぞれの先端部に形成されている。 各微小電極 1 6 aは、 例えば、 1 0 0 mの長さとされる。
針状導電線 1 6の導電材料としては、 白金、 金、 ニッケル、 チッ化チタン、 銅、 銀、 タングステン等が使用される。 また、導電材料を被覆する絶縁皮膜としては、 ポリイミド、 ポリスチレン、 アクリル、 ポリカーボネート等が使用される。
各電極列 1 7は、 それぞれ長さが異なる 4本の針状導電線 1 6を、 先端部に設 けられた微小電極 1 6 aが、 例えば、 5 0 0; mの間隔あけて配置された状態で 束ねられている。 各電極列 1 7は、 それぞれの最も短い針状導電線 1 6の先端か らさらに 5 0 0 m離れた部分を、 シリコン、 テフロン等の絶縁性のホルダ一 1 8によって固定することにより、 例えば、 それぞれが 5 0 0 mの間隔をあけた 状態で平行に保持されている。 なお、 図 4 ( a ) では、 図面を見やすくするため に、 各針状導電線 1 6の幅を実際の幅よりも広くして示している。
このような構成の測定電極部 1 0も、 生体の嗅球内に埋め込まれて、 図 1に示 すスクリーニング装置、 あるいは治療装置に使用される。この測定電極部 1 0は、 4つの微小電極 1 6 aが設けられた各電極列 1 7が、 相互に適当な間隔をあけて 保持されているために、 脳組織の切断が少なく、 神経回路網を維持したまま生体 の嗅球内への埋め込み手術が容易である。
実施例
実施例を用いて本発明を説明する。 以下の実施例は、 本発明の例示であって、 本発明を限定するものではない。
<実施例 1 >
実験用動物として、 生後 2週令のラットを使用し、 図 4に示す測定電極部 1 0 を埋め込む手術を実施した。
測定電極部 1 0は、 微小電極 1 6 aの長さが 1 0 0 z m、 各電極列 1 Ίにおけ る隣接する微小電極 1 6 aの間隔が 5 0 0 である。 また、 針状導電線 1 6の 導電材料としては、 白金が使用されており、 絶縁皮膜としては、 ポリイミドが使 用されている。
測定電極部 1 0は、 ラット嗅球への埋め込みに先立って、 埋め込み後の神経細 胞の再生、 密着性を向上させるために、 微小電極 1 6 aを N 2サプリメントとコ ラ一ゲンによって前処理を行った。
測定電極部 1 0をラットに装着する際には、 まず、 ネンブタール (バルビツー ル) を、 ラット体重の 1ノ1 0量を腹腔内に注射して麻酔した後、 ラットをうつ 伏せに固定した。 ラットを固定した後、 前頭部の頭皮を開き、 頭蓋骨を I mmX 5 mmの大きさで開いた。 続いて、 前処理を施した測定電極部 1 0を嗅球内に挿 入し、 測定電極部 1 0のターミナルライン 3 8をラットの頭部外に引き出した。 次に、 頭蓋に形成されている穴をデンタルセメントにて埋め、 ターミナルライン 3 8を頭蓋の外に引き出した状態で頭皮を縫合した。 この縫合の後、 術後の患部 を抗生物質(ペニシリン 1 0 O uZmしストレプトマイシン 1 0 0 g Zm l ) にて洗浄し、 滅菌デンタルセメントで固めた。
このようにして、 測定電極部 1 0を埋め込む手術をした後に、 3週間が経過す るまで、 活性炭によって清浄化された匂い成分のない環境下にてラットを飼育し た。 そして、 手術の 3週間後に、 図 1に示すスクリーニング装置 1の実験動物固 定器 3 2にラッ卜を固定した。 体外に引き出したターミナルライン 3 8は、 実験 動物固定器 3 2の外部にて、 信号増幅刺激装置 3 4に接続されている。
このような状態で、 スクリーニング装置 1の嗅粘膜刺激化合物収容ボックス 3 1内に、 嗅粘膜刺激化合物として、 所定の濃度のシネオール (CleH18〇) を充填 して、嗅粘膜刺激化合物収容ボックス 3 1内のシネオ一ルを、通常の空気と共に、 5分間にわたって、 実験動物固定器 3 2内のラットに噴霧して、 ラットの嗅球に おける反応を、 測定電極部 1 0の各微小電極 1 6 aからの電気信号として記録し た。 測定電極部 1 0における 1 6個の微小電極 1 6 aの電気信号を、 図 5 ( a ) に示す。 同時に、 シネオールが噴霧されたときのラットの血圧および心拍数を測 定した。 その測定結果を図 6 ( a ) に示す。
次に、 シネオールを含まない空気を活性炭によって清浄化し、 実験動物固定器 3 2に 3 0分間にわたって流して、ラッ卜の嗅球の反応が安定するまで待機した。 そして、 ラットの嗅球が安定した後に、 シネオールを通常より 5 %酸素濃度が高 い空気と共に実験動物固定器 3 2に噴霧し、 そのときのラットの嗅球の反応を、 測定電極部 1 0の各微小電極 1 6 aからの電気信号として記録した。 測定電極部 1 0における 1 6個の微小電極 1 6 aの電気信号を、 図 5 ( b) に示す。 また、 同時に測定されたラットの血圧および心拍数の結果を図 6 ( b ) に示す。
図 5 ( a ) と図 5 ( b ) との比較により、 シネオールによってラットの嗅粘膜 が刺激されていたことが判明した。 また、 図 6 ( a ) と図 6 ( b) との比較によ り、 シネオ一ルによって、 血圧及び心拍数が上昇するという生理的反応が誘起さ れていることも明らかになった。 しかも、 シネオールを通常の酸素濃度の空気と ともに嗅粘膜に噴霧した場合に、 シネオールを酸素濃度が通常より 5 %高い空気 とともに嗅粘膜に噴霧したときよりも、 ラットの血圧及び心拍数が上昇すること も判明した。
このように、 シネオールは、 血圧および心拍数の上昇に有効であり、 特に、 高 濃度酸素存在下でない場合に、 血圧および心拍数の上昇に有効であることが判明 した。
<実施例 2 >
図 3に示す測定電極部 1 0を、 実施例 1と同様にしてラッ卜に装着した。 この 測定電極部 1 0におけるリング状の各微小電極 1 3として、 導電性材料である I T Oを用い、 各微小電極 1 3の表面を、 それぞれ金によってメツキした。 なお、 基板 1 2としては、 厚さ 1 0 0 mのポリイミドのフィルム材料を使用した。 測定電極部 1 0が装着されたラットを、 図 1に示すスクリ一ニング装置 1の動 物実験固定器 3 2に固定して、 所定の電気信号パターンがラットの嗅球に与えら れるように、測定電極部 1 0の裏面に設けられた 1 6個の微小電極 1 3に対して、 図 7に示す電気信号をそれぞれ与えた。 そして、 電気信号パターンが嗅球に与え られた場合におけるラッ卜の血圧及び心拍数の経時変化を測定した。 その結果を 図 8に示す。
測定電極部 1 0における各微小電極 1 3に対して、 図 7に示す電気信号を与え ることにより、 図 8に示すように、 血圧および心拍数は上昇し、 1時間程度が経 過した時点で、 血圧値は最大になり、 また、 2時間程度が経過した時点で、 心拍 数は最大になっていた。
このように、 嗅球に対して所定の電気信号パ夕一ンを与えることによって、 脳 細胞が活性化されて、 血圧および心拍数の上昇という生理的反応が誘起されてい ることが明らかになった。
<実施例 3〉
図 2に示す測定電極部 1 0を実施例 1と同様にしてラッ卜に装着した。 この測 定電極部 1 0の各微小電極 1 3として、 導電性材料である I T Oを用い、 各微小 電極 1 3の表面を、 それぞれ金によってメツキした。 基板 1 2として、 厚さ 1 0 0 mのポリイミドのフィルム材料を使用した。
測定電極部 1 0が装着されたラットを、 図 1に示すスクリーニング装置 1の動 物実験固定器 3 2に固定して、 所定の刺激パターンがラットの嗅球に与えられる ように、 測定電極部 1 0に対して、 図 9 ( a ) に示す電気信号を与えた。そして、 このような電気信号が測定電極部 1 0に与えられた場合におけるラッ卜の血糖値 の経時変化を測定した。 その結果を図 9 ( b ) に示す。
このように、 嗅球に対して所定の電気信号を与えたることによって血糖値の低 下という生理的反応が誘起されていることが確認された。
ぐ実施例 4 >
図 4に示す測定電極部 1 0を実施例 1と同様にしてラッ卜に装着した。 この測 定電極部 1 0の針状導電線 1 6の導電材料として白金を用い、 その導電材料をポ リイミドによって絶縁皮膜処理した。 針状導電線 1 6の径は、 1 0 0 im、 電極 列 1 7における隣接する微小電極 1 6 aの間隔は 5 0 0 mとした。 また、 微小 電極 1 6 aと生体組織の密着性を良好にするために、 微小電極 1 6 aを、 コラ一 ゲンによって構成された薄い皮膜にて覆った。
測定電極部 1 0が装着されたラットを、 図 1に示すスクリ一二ング装置 1の動 物実験固定器 3 2に固定して、 生育環境下において、 測定電極部 1 0の 1 6個の 微小電極 1 6 aに対して、 図 1 0に示す電気信号をそれぞれ与えた、 嗅球に対し て電気信号による刺激パターンを与えた場合における血圧および心拍数の経時変 化を、 低酸素濃度条件下および高濃度酸素条件下のそれぞれについて測定した。 低酸素濃度条件として、 通常の空気の酸素濃度よりも酸素濃度を 5 %低くし、 高 酸素濃度条件として、 通常の空気における酸素濃度よりも酸素濃度を 5 %が高く した。 その測定結果を図 1 1に示す。
図 1 1に示すように、 嗅球に与えられる電気信号パターンによって、 血圧およ び心拍数が上昇するという生理的変化が誘起されており、 しかも、 低酸素濃度条 件下において、 血圧および心拍数とも、 高酸素濃度条件下よりも大きく上昇して いたことが確認された。
なお、 図 4に示す測定電極部 1 0に代えて、 図 3に示す測定電極部 1 0を使用 した場合にも、 同様の測定結果が得られた。
本実施例においては表裏に微小電極を複数備えたものを使用しているが、 表面 のみ電極を有する電極部から信号のみを検出し、 スクリーニングを行うことも可 能である。
各実施例 1〜4にそれぞれ示すように、 本発明の装置および方法により、 生体 の嗅球に対する刺激によって、 生理的反応が誘起される。 しかも、 嗅球に対する 刺激パターンが異なることにより、 誘起される生理的反応の種類、 程度等も異な る。 このために、 生体の嗅粘膜を刺激する嗅粘膜刺激化合物によって誘起される 生理的反応の種類、 程度等の関連性に基づいて、 嗅粘膜刺激化合物がスクリ一二 ングされる。
スクリーニングされた嗅粘膜刺激化合物は、 脳細胞に直接的に作用するために 即効性を有しており、 しかも、 内服、 血管注射、 筋肉注射等による薬物投与が困 難である患者に対しても投与することができる新規な薬物として使用することが できる。 また、 様々な環境変化に伴って出現する新たな疾病に対して有効な薬物 の創出も可能である。
さらに、 嗅粘膜刺激ィ匕合物による嗅粘膜の刺激によって、 嗅球にて生じる電気 信号パターンと、 その電気信号パターンによって誘起される生体の生理的反応の 種類、 程度等を把握しておき、 生体の嗅球に装着された測定電極部に対して、 所 定の生理的反応が誘起される刺激パターンを電気信号のパターンによって与える ことにより、 測定電極部が装着された生体には、 所定の生理的反応が誘起される ことになる。 これにより、 血圧、 血糖値の降下等のような、 生体の治療が可能に なる。
なお、 上記各実施例 1〜4は、 本発明の装置および方法の有用性を証明するた めになされた一例にすぎず、 与える化合物および酸素濃度等は、 特に限定される ものではない。
以上、 本発明を実施例を参照して説明したが、 本発明はこれらに限定されるも のではなく、 本発明の趣旨を逸脱しない範囲内で、 当業者の知識に基づき種々な る改良、 修正、 変形を加えた態様で実施できる。 産業上の利用可能性
本発明のスクリ一二ング装置および方法は、 実験動物の嗅球に埋め込まれた測 定電極部によつて、 嗅粘膜刺激化合物によつて嗅球に生じる電気的信号を測定し て、 実験動物に誘起される生理的反応に基づいて、 嗅粘膜刺激化合物の有効性が 判定されるために、実験動物に対する有効な嗅粘膜刺激化合物を容易に、 し力 、 確実にスクリーニングすることができる。
また、 本発明の治療装置は、 人体の脳細胞に直接刺激を与えるために、 薬物の 投与等のように、 副作用等が生じるおそれがない。 さらに、 本発明の測定電極部 は、 これらスクリーニング装置および治療装置に好適に使用することができる。

Claims

請求の範囲
1 . 実験動物の嗅粘膜に向けて嗅粘膜刺激化合物を投与する投与手段と、 実験動物の嗅球に埋め込まれて、 嗅球にて生じる電気信号を測定する測定電極 部と、
前記投与手段によって実験動物の嗅粘膜に嗅粘膜刺激化合物が投与された場合 における該測定電極部にて測定される電気信号と実験動物に誘起される生理的反 応との相関関係を分析する処理手段と、
を備えた、 嗅粘膜刺激性化合物スクリーニング装置。
2 . 前記処理手段は、 実験動物から、 生理的反応に関するデータを直接得て、 前記測定電極部にて測定される電気信号との相関関係を分析する、 請求項 1記載 の嗅粘膜刺激化合物スクリ一ニング装置。
3 . 前記処理手段は、 実験動物に生理的反応を誘起させる嗅球における電気信 号に関するデ一夕を予め有しており、 そのデータに基づいて、 前記測定電極部に て測定される電気信号との相関関係を分析する、 請求項 1記載の嗅粘膜刺激化合 物スクリーニング装置。
4. 前記投与手段は、 嗅粘膜刺激化合物を収容するボックスと、 該ボックス内 に収容された嗅粘膜刺激化合物を、 実験動物の嗅粘膜付近に噴霧するノズルとを 有する、請求項 1〜 3のいずれかに記載の嗅粘膜刺激化合物スクリ一ニング装置。
5 . 前記測定電極部は、 嗅球の神経細胞からの電気信号を検出する少なくとも 1つの微小電極を有する、 請求項 1〜 4のいずれかに記載の嗅粘膜刺激化合物ス クリーニング装置。
6 . 前記微小電極が複数設けられており、 各微小電極は、 実験動物の嗅粘膜に 対する嗅粘膜刺激化合物の投与によって嗅球に発生する電気信号パターンが多点 で得られるように配置されている、 請求項 5記載の嗅粘膜刺激化合物スクリ一二 ング装置。
7 . 前記各微小電極には、 実験動物が生理的反応を誘起させる電気信号がそれ ぞれ与えられる、請求項 5または 6記載の嗅粘膜刺激化合物スクリ一二ング装置。
8. 実験動物の嗅粘膜に向けて嗅粘膜刺激化合物を投与する工程と、 実験動物の嗅粘膜に嗅粘膜刺激化合物が投与された場合に、 実験動物の嗅球に 生じる電気信号を測定する工程と、
測定される電気信号と実験動物に誘起される生理的反応との相関関係について 分析する工程と、
を包含する、 嗅粘膜刺激性化合物スクリーニング方法。
9. 請求項 8に記載の嗅粘膜刺激性化合物スクリーニング方法によって、 測定 電極部にて測定される電気信号と実験動物に誘起される生理的反応との相関関係 が認められる、 嗅粘膜刺激性化合物。 ·
10. 生体の嗅球に埋め込まれる測定電極部と、
生体が生理的反応を誘起させる嗅球での刺激パ夕一ンを、 該測定電極部に対し て電気信号パターンとして与える手段と、
を具備する、 治療装置。
11. 実験動物の嗅球に埋め込まれて、 嗅球にて生じる電気信号の測定または 嗅球に電気信号を与えるために使用される測定電極部であって、
嗅球の神経細胞からの電気信号をそれぞれ検出する複数の微小電極が設けられ ており、 各微小電極が、 実験動物の嗅粘膜に対する嗅粘膜刺激化合物の投与によ つて嗅球に発生する電気信号パターンに基づいて配置されている、 測定電極部。
12. 前記各微小電極が、 1 m2〜 100000000 m2の面積になって いる、 請求項 11記載の測定電極部。
13. 前記微小電極がマトリクス状に配置されている、 請求項 12記載の測定
14. 隣接する微小電極の間隔が、 10〜10000 mになっている、 請求 項 13記載の測定電極部。
15. 前記各微小電極は、 フィルム状の基板上に配置されている、 請求項 11 記載の測定電極部。
16. 前記各微小電極は、 それぞれリング状をしており、 前記基板に設けられ た貫通孔の周縁部にそれぞれ配置されている、 請求項 15記載の測定電極部。
17. 前記基板に形成された貫通孔の内径が 10000 m以下である、 請求 項 16記載の測定電極部。
18. 前記微小電極は、 前記基板の表面および裏面の同じ位置に配置されてお り、 前記基板の一方の面に設けられた各微小電極は、 実験動物が生理的反応を誘 起させる電気信号パターンを検出し、 他方は、 検出した信号と同じ、 または異な る信号を印加する、 請求項 11に記載の測定電極部。
19. 前記微小電極が、 金、 白金、 I TO、 チッ化チタン、 銅、 銀、 タンダス テンのいずれかによつて形成されている、 請求項 15記載の測定電極部。
20. 前記基板が、 生体材料によって構成されている、 請求項 15記載の測定
21. 前記基板が、 ポリエチレンテレフ夕レート、 テフロン、 シリコンゴム、 半導体材料、 導電性ゴムのいずれかによつて構成されている、 請求項 15記載の 測定電極部。
22. 前記微小電極は、 針状導電線の先端部にそれぞれ形成されており、 所定 本数の針状導電線が、 各微小電極がそれぞれ所定の間隔をあけた状態で束ねられ て電極列を構成するとともに、 複数の電極列が、 所定の間隔をあけて平行に配置 されている、 請求項 13記載の測定電極部。
23. 前記針状導電線は、 直径 1 im〜l 000 μπιになっている、 請求項 2 2記載の測定電極部。
24. 前記針状導電線は、 針状の導電材料を、 先端部の微小電極を除いて絶縁 皮膜によって覆われて構成されている、 請求項 22記載の測定電極部。
25. 前記針状導電線の導電材料が、 金、 白金、 Ι ΤΟ、 チッ化チタン、 銅、 銀、 タングステン、 導電性ゴムのいずれかによつて構成されている、 請求項 24 記載の測定電極部。
2 6 . 前記針状導電線の絶縁皮膜が、 ポリスチレン、 アクリル、 ポリカーボネ —ト、 ポリイミドのいずれかによつて構成されている、 請求項 2 4記載の測定電 極部。 ·
2 7 . 前記微小電極は、 生体材料によって構成された皮膜によって覆われてい る、 請求項 1 1記載の測定電極部。
2 8 . 前記針状導電性材料の先端部が生体材料の皮膜によって覆われている、 請求項 2 2記載の測定電極部。
2 9 . 実験動物の嗅粘膜に向けて嗅粘膜刺激化合物を投与する工程と、 実験動物の嗅粘膜に嗅粘膜刺激化合物が投与された場合に、 実験動物の嗅球に 生じる電気信号を測定する工程と、
測定される電気信号のパターンと、 該電気信号のパターンによって実験動物に 誘起される生理的反応の種類および程度を把握する工程と、
目的の生理的反応を生じるに十分な電気信号パターンを剌激パターンとして該 実験動物の嗅球に与える工程と、
を包含する、 治療方法。
3 0 . 前記目的の生理的反応が血圧降下である、 請求項 2 9に記載の方法。
3 1 .前記目的の生理的反応が血糖値の低下である、請求項 2 9に記載の方法。
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