TWI539977B - Contains non-woven material for bone filling - Google Patents
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Description
本發明係有關於一種含有骨填補材之不織布。
近年來,在因年齡增長或牙周病等造成牙齒缺損時,已廣泛地實行將人工牙根埋入齒槽骨中,並於其上裝著人工齒冠及上部構造之治療(所謂的「植入治療」)。
若牙齒有缺損時(亦即,牙齒脫落時),至當時為止支持牙齒的齒槽骨會急速地被吸收而減少。因此,於植入治療常常會發生人工牙根埋入齒槽骨時齒槽骨厚度不足的狀況。若齒槽骨的厚度不足,即便埋入人工牙根仍很可能會有不穩定之虞。此時,會採取骨骼移植或使骨骼再生等之處置。
頻繁使用於齒槽骨再生的方法之一,可舉例如GBR法(引導骨質再生術:guided bone regeneration)。具體而言,該方法係於齒槽骨不足的部分(患部)上,設置經粉碎的自體骨或骨填補材,且於其上設置膜(遮蔽膜,亦稱為GBR膜)(即,將骨填補材包埋於經填補的患部中),一邊防止牙齦組織之混入,一邊促進齒槽骨之再生的方法。然而,現今所使用的骨填補材,其細胞附著性及增殖性並不充分,而需要長時間來進行齒槽骨再生。又,對齒槽骨之接著性或對患部的留置性亦難謂良好,即便以GBR膜進行包埋,
仍可能會從患部漏出。
又,雖亦有使用骨水泥(bone cement)的情形,但骨水泥具有細胞無法浸潤之缺點。
如上所述,現今所使用的骨再生材料具有細胞附著性及增殖性不充分之問題。
為了改善如此的狀況,已有在持續研究開發適於骨骼(特別是齒槽骨)之再生的骨再生用材料(例如專利文獻1、專利文獻2)。
[專利文獻1]WO2007/132186
[專利文獻2]日本專利特開2007-325543號公報
本發明之目的在於提供一種適合於骨骼(特別是齒槽骨)再生的骨再生用材料。
本發明人發現到,令人訝異地,骨填補材被包含在構成不織布的纖維間且構成不織布的纖維係生物相容性纖維之含有骨填補材之不織布,可成為一種細胞(特別是骨原細胞)增殖效率非常高(細胞增殖活性高)的骨再生用材料,再進行反覆改良而完成了本發明。
亦即,本發明包含例如以下各項所記載的主題。
一種不織布,係包含有骨填補材者,其中骨填補材被包含在構成不織布的纖維間,且構成不織布的纖維係生物相容性纖維。
如第1項所記載的不織布,其中生物相容性纖維為包含生物相容性聚合物而形成的纖維。
如第2項所記載之不織布,其中生物相容性聚合物係至少1種選自於由聚乳酸、聚乙醇酸、聚乳酸-聚乙醇酸共聚物、聚己內酯、幾丁質、膠原蛋白、聚離胺酸、聚精胺酸、玻尿酸、絲膠蛋白、纖維素、聚葡萄糖及聚三葡萄糖(pullulan)所構成之群者。
如第1至3項中任一項記載之不織布,其中骨填補材係至少1種選自於由β-TCP(β-磷酸三鈣)、α-TCP(α-磷酸三鈣)、HA(羥磷灰石)、DCPD(磷酸氫鈣)、OCP(磷酸八鈣)、4CP(磷酸四鈣)、氧化鋁、氧化鋯、鋁酸鈣(CaO-Al2O3)、鋁矽酸鹽(Na2O-Al2O3-SiO2)、生物活性玻璃、石英及碳酸鈣所構成之群者。
如第1至4項中任一項記載之不織布,其中骨填補材之粒徑為50~5000μm左右。
請求項第1至5項中任一項記載之不織布,其中不織布之孔隙率為78.5~97%。
如第1至6項中任一項記載之不織布,其中不織布之纖維部分的孔隙率為80~99.99%。
如第1至7項中任一項記載之不織布,其中不織布之容積密度(g/cm3)為0.1~0.6。
一種骨再生用材料,包含如第1至8項中任一項記載之不織布。
一種骨原細胞培養支架材料,包含第1至8項中任一項記載之不織布。
一種使骨骼再生的方法,係包含將如第1至8項中任一項記載之不織布適當使用至欲使骨骼再生的部位之步驟。
如第A-1項所記載的方法,其中骨骼為齒槽骨。
如第1至8項中任一項記載之不織布,係供於骨再生中使用者。
如第B-1項所記載的不織布,其中骨骼為齒槽骨。
如第1至8項中任一項記載之不織布的用途,該不織布係用於骨再生用製劑之製造。
如第C-1項所記載的用途,其中骨再生用製劑係齒槽骨再生用製劑。
如第1至8項中任一項記載之不織布之用途,該不織布係作為活體外(in vitro)的細胞支架材料使用。
在將本發明含有骨填補材之不織布作為細胞培養之支架使用時,細胞(特別是骨原細胞)之增殖效率會提高非常多(亦即,可提高細胞之增殖活性)。又,由於該不織布包含骨填補材,故亦可提高骨再生效率(特別是在作為骨原細胞之培養支架使用時)。因此,該不織布可適合作為骨再生用材料使用。具體而言,因外在原因(例如事故)而使骨損傷時,或是因內在原因(例如骨質疏鬆症、牙周病)而使骨骼減少或消失時,可藉由適當使用本發明不織布(具體而言,藉由埋於患部或黏附於患部),來達成早期之骨骼再生。
[第1圖]顯示藉由電紡絲法之不織布製造方法的簡單概要。
[第2圖]顯示製造本發明不織布時所使用的接地電極之一例。
[第3圖]顯示本發明之不織布(及藉由電紡絲法製得之通常不織布)的截面圖。
[第4圖]顯示本發明不織布之截面圖(藉由掃描式電子顯微鏡而得者)。
[第5圖]顯示研究本發明不織布例子之樣品1~3的細胞增殖活性之結果。
[第6a圖]顯示在將塊狀骨填補材(OSfcrion之塊狀物)移植至大鼠時結締組織對塊狀骨填補材的浸潤程度之組織切片觀察影像。外側虛線表示經移植骨填補材之輪廓,內側點線則表示浸潤於該骨填補材之組織的前端。
[第6b圖]顯示在將本發明不織布移植至大鼠時的結締組織對不織布之浸潤程度之組織切片觀察影像。外側虛線表示經移植不織布之輪廓,內側點線則表示浸潤於該不織布之組織的前端。
[第7圖]顯示將各不織布作為支架培養細胞後,進行HE染色而得的影像及由該影像測得之細胞浸潤距離。
[第8圖]顯示各不織布之孔徑測定結果及將各不織布作為支架培養細胞並進行HE染色而得之影像。
[第9圖]顯示各不織布纖維之間的距離(纖維間距離)測定方法之概要。
[第10圖]顯示各不織布之孔徑測定結果,以及將各不織布作為支架培養細胞並進行HE染色而得的影像及從該影像測得之細胞浸潤距離。
以下,對本發明進一步詳細說明。再者,「質量」亦可換用成「重量」。
本發明係有關於一種含有骨填補材之不織布。於該不織布中,骨填補材被包含在構成不織布的纖維間。又,構成不織布的纖維係生物相容性纖維。
包含在不織布中的骨填補材可使用眾所皆知者。眾所皆知的骨填補材可例示如:β-TCP(β-磷酸三鈣)、α-TCP(α-磷酸三鈣)、HA(羥磷灰石)、DCPD(磷酸氫鈣)、OCP(磷酸八鈣)、4CP(磷酸四鈣)、氧化鋁、氧化鋯、鋁酸鈣(CaO-Al2O3)、鋁矽酸鹽(Na2O-Al2O3-SiO2)、生物活性玻璃、石英、碳酸鈣等。具體而言,可使用包含該等成分之碎片(較佳為由該等成分構成之碎片)。骨填補材可單獨使用1種或是使用組合2種以上使用。當組合2種以上使用時,可使用骨填補材之1碎片中由2種以上組合包含者,亦可組合2種以上僅由1成分構成之碎片來使用。
又,骨填補材之1碎片的大小只要是可埋沒在不織布中來含有之程度的大小以下即可。又,形狀亦無特別限制,例如可為粒子狀、塊狀、圓筒狀等。
骨填補材1碎片之粒徑以比不織布之厚度短為佳,且以50~5000μm左右更佳,並以75~5000μm左右更佳,又以150~3000μm左右又更佳,又以500~1500μm左右特佳。該粒徑係藉由乾式篩法而求得之值。具體而言,係使用設置有JIS Z8801所規定的篩之羅泰普(RO-TAP)振動機而得之
值。藉由乾式篩法可得到該粒徑之骨填補材。又,藉由乾式篩法,可測定未知粒徑的骨填補材之粒徑程度。再者,於此所述的「粒徑」並無意圖將骨填補材之形狀限定於粒狀,而僅僅是表示藉由前述方法求得之值而已。即便形狀不為粒狀(例如塊狀或圓筒狀)之骨填補材,亦可求得此處所提及之「粒徑」之值。
亦可購入市售的作為骨填補材者來使用於本發明之不織布中。可舉例如:OSferion(Olympus Terumo Biomaterials股份有限公司)、Boneceram(Olympus Terumo Biomaterials股份有限公司)、NEOBONE((股)MMT)、Osteograft-S(日本Medical Materials股份有限公司)、APACERAM(PENTAX股份有限公司)等。
於本發明不織布,骨填補材係存在於構成不織布的複數(多數)的纖維與纖維之間。亦即,骨填補材被包含在構成不織布的纖維間。並非被包含在1根纖維內。構成不織布的纖維亦可說是以盤繞固定於骨填補材的方式存在。構成本發明不織布的纖維係生物相容性纖維。生物相容性纖維係指包含生物相容性聚合物而成的纖維。且以在生物體內具有可生物降解性者為佳。纖維中的生物相容性聚合物之含有率通常係大於50質量%,且以在75質量%以上為佳,並以在80質量%以上更佳,又以在85質量%以上又更佳,又以在90質量%以上又更佳,又以在95質量%以上特佳,而以實質為100%(即,僅由生物相容性聚合物構成的生物相容性纖維)最佳。
生物相容性聚合物係指,在使其接著於生物體時或是埋入生物體時,無異物反應或是異物反應小(經過長期間不會對生物體造成不良影響或強烈刺激,而可一邊發揮原本的功能一邊與生物體和平共存)的聚合物。可例示如生物吸收性聚合物、生物分解性聚合物等。
更具體而言,生物相容性聚合物可例示如:聚乳酸、聚乙醇酸、聚乳酸-聚乙醇酸共聚物、聚己內酯、聚丁二酸丁二酯、聚丁二酸乙二酯、聚苯乙烯、聚碳酸酯、聚六伸甲基碳酸酯、聚丙烯酸酯、聚乙烯基異氰酸酯、聚丁基異氰酸酯、聚甲基丙烯酸甲酯、聚甲基丙烯酸乙酯、聚甲基丙烯酸正丙酯、聚甲基丙烯酸正丁酯、聚丙烯酸甲酯、聚丙烯酸乙酯、聚丙烯酸丁酯、聚丙烯腈、聚乙酸乙烯酯、聚乙烯基甲基醚、聚乙烯基乙基醚、聚乙烯基正丙基醚、聚乙烯基異丙基醚、聚乙烯基正丁基醚、聚乙烯基異丁基醚、聚乙烯基第三丁基醚、聚二氯乙烯、聚偏二氯乙烯、聚(N-乙烯吡咯啶酮)、聚(N-乙烯咔唑)、聚(4-乙烯吡啶)、聚乙烯基甲基酮、聚甲基異丙烯基酮、聚環氧乙烷、聚環氧丙烷、聚環氧戊烷、聚苯乙烯碸、鐵氟龍(註冊商標)(聚四氟乙烯)、聚氰基丙烯酸酯、聚醚醚酮、聚胺基甲酸酯、聚醯亞胺、聚氯乙烯、聚乙烯(包含有超高分子量聚乙烯)、聚丙烯、聚對苯二甲酸乙二酯、聚偏二氟乙烯(聚二氟亞乙烯)、聚碸、聚醚碸以及其等之共聚物等合成聚合物、再生纖維素、纖維素二乙酸酯、纖維素三乙酸酯、甲基纖維素、丙基纖維素、苯甲基纖維素、絲蛋白、天然橡膠等之生物
高分子及其衍生物。又,亦可例示如幾丁質、明膠、膠原蛋白、聚胺基酸(聚離胺酸、聚精胺酸)、玻尿酸、絲膠蛋白、聚葡萄糖、聚三葡萄糖等。
其等之中,較佳例可舉例如:聚乳酸、聚乙醇酸、聚乳酸-聚乙醇酸共聚物、聚羥丁酸、聚己內酯、聚己二酸乙二酯、聚己二酸丁二酯、聚丁二酸丁二酯、聚丁二酸乙二酯及聚氰基丙烯酸酯以及其等之共聚物等脂肪族聚酯、聚丙烯碳酸酯、聚乙烯碳酸酯等脂肪族聚碳酸酯;且更佳係可舉例如:聚乳酸、聚乙醇酸、聚乳酸-聚乙醇酸共聚物、聚己內酯。其中係以聚乳酸為特佳。生物相容性聚合物可單獨使用1種或者組合2種以上來使用。
再者,亦可在不損及本發明效果的範圍內,併用其他聚合物或化合物(例如:聚合物共聚物、聚合物摻合物、磷脂質、其他化合物等及其等之混合物)。
構成不織布的纖維之平均纖維徑係以0.05~20μm左右為佳,且以0.1~5μm左右更佳,並以0.1~3μm左右又更佳。只要是該平均纖維徑,由於特別容易使骨原細胞接著,可提升骨再生效率故有利。再者,此處的纖維徑係指纖維的直徑。又,該平均纖維徑係指從該不織布的電顯攝影影像來測定各纖維之直徑,並從隨機選擇的50根纖維徑計算出的平均值。
不織布之厚度可配合適用不織布的患部(骨缺損部位)的大小來適當設定。以0.1~5cm左右為佳,且以0.1~1cm左右更佳,並以0.1~0.5cm左右又更佳。再者,於此處的不織
布之“厚度”係指不對該不織布之厚度方向施加壓力而測得之厚度。測定係可使用厚度計(數位厚度計(Digital thickness gauge),尾崎製作所,DG-205M)等。
本發明不織布之容積密度((g/cm3),亦即,{不織布重量(g)/不織布體積(cm3)})係以0.1~0.6左右為佳,且以0.1~0.5左右更佳,並以0.1~0.4左右又更佳,又以0.1~0.3左右又更佳,又以0.15~0.25左右又更佳,而以0.15~0.2左右特佳。當含有的骨填補材為β-TCP或α-TCP時,容積密度特別是以在該範圍內為佳。再者,於此處的不織布體積係將不織布切割成長方形(約4cm2左右),以上述厚度計測定縱、橫及厚度之長度,且將縱、橫、厚度之長度相乘而求得之體積(cm3)。
本發明不織布之孔隙率係以78.5~97%左右為佳,且依序以80~97%左右、85~97%左右、90~97%左右、90~95%左右、91~95%左右、91.5~95%左右、92~95%左右為更佳。再者,孔隙率(%)可從構成不織布的纖維及骨填補材自身的密度(真密度)求得。亦即,由於可藉由將本發明不織布每1cm3所含有的纖維之重量及骨填補材之重量除以各自的真密度,來求得該纖維及該骨填補材所分別占的體積,故可藉由從1(cm3)減去其等體積(cm3)之合計值,並將其乘以100,來求得該不織布之孔隙率(%)。若以算式表示則如下所列。
[數1]不織布之孔隙率(%)=〔1-{(纖維重量/纖維真密度)+(骨填補材重量/骨填補材真密度)}〕×100
又,亦可藉由將上述纖維所占的體積(cm3),除以從
1(cm3)減去上述骨填補材所占體積(cm3)之值,並將其乘以100,來求得不織布纖維部分的孔隙率(%)。若以算式表示則如下所列。
[數2]不織布之纖維部分之孔隙率(%)=[1-〔(纖維重量/纖維真密度)/{1-(骨填補材重量/骨填補材真密度)}〕]×100
不織布之纖維部分的孔隙率係以85~99.99%左右為佳,以90~99.99%左右更佳,且以97.5~99.99%左右又更佳,並以98~99.8%左右又更佳。
再者,於本說明書之中,真密度係以定體積膨脹法求得之值。真密度之測定可使用例如乾濕自動密度計(Accupyc1330;島津製作所)。
不織布之孔隙率、不織布之纖維部分之孔隙率只要是在上述範圍內,從特別會使細胞易於浸潤,且體液、血液等之通液性也很高,而在組織再生時會使新生血管容易侵入等觀點來看係十分有利。再者,本發明不織布之纖維部分之孔隙率會成為比通常不織布更高的孔隙率。雖非為限定性解釋,但可認為是藉由將骨填補材包含在纖維間而產生高孔隙率。無關於此高纖維部分孔隙率,本發明不織布即便施加壓力,若移除該壓力(例如即便以手擠壓,之後若挪開手)厚度仍會回復到某種程度。可認為此亦為因骨填補材被包含在纖維間所發揮的效果。
本發明不織布之孔徑係以0.5~500μm左右為佳,以1~100μm左右更佳,且以2~50μm左右又更佳,並以3~30μm左右又更佳,而以6~20μm左右特佳。
再者,於此處的不織布之孔徑係指,使用剝除本發明不織布之表層而得者來作為測定用樣品,且藉由使用全氟聚酯的半乾法(half dry method)(ASTM E1294-89)來求得之眾數(組距1μm)。該孔徑測定係可使用毛細流動式孔洞分析儀(CFP-1200-AEL,Porous Materials Inc)。
又,本發明之不織布係作成纖維會依據部分而或疏或密(即,存在有纖維分布之疏密構造)。纖維密集存在的部分之纖維間距離係以5~40μm左右為佳,且以10~30μm左右更佳,並以15~25μm左右又更佳。又,纖維稀疏存在的部分之纖維間距離約為50~100μm左右。於此處的不織布之纖維間距離係從以顯微鏡觀察不織布之凍結塊切片而得之影像來檢測纖維,並藉由重心間距離法來從經檢測的纖維之數據求得之值。
本發明不織布之骨填補材比例係以10~98%左右為佳,且以50~98%左右更佳,並以80~98%左右又更佳。
再者,於此處的骨填補材比例係指藉由:{不織布所含有的骨填補材(g)/不織布(g)}×100(%)求得之值。不織布所含有的骨填補材(g)係測定在將本發明不織布中的聚乳酸以二氯甲烷溶解後(亦即,溶解不織布之纖維部分之後)的殘渣之重量而求得之值。
本發明之不織布可藉由電紡絲法來製造。電紡絲法係製造不織布的手法中的一種眾所皆知的方法。具體而言,係藉由將揮發性溶劑(例如:氯仿、二氯甲烷、六氟異丙醇或其等之混合溶液等)中溶解有聚合物(以及,因應需要溶解
有分散補助劑)而成的溶液,吐出至電極間形成的靜電場中,並將溶液朝向電極(接地電極)進行紡絲,來製造纖維狀物質的方法。於第1圖顯示電紡絲法之極簡概要。再者,第1圖為例示。眾所皆知的電紡絲法只要是可製造本發明不織布的方法,皆可用於本發明不織布之製造。簡單說明第1圖。若將高電壓附加至針筒(前端裝著噴嘴)中的聚合物溶解溶液,聚合物溶液滴會成為尖銳的圓錐。然後,若再增加電壓,溶液會變得朝向接地電極(例如銅、鋁等)飛行(被作成噴霧),而在接地電極上形成薄纖維膜(即不織布)。亦即,第1圖中接地電極係兼作為集電器。
於本發明中,使用於電紡絲法的生物相容性聚合物溶解溶液中的生物相容性聚合物之濃度雖可適當地設定,但通常以1~30質量%左右為佳,且以2~25質量%左右更佳,並以3~20質量%左右又更佳。
又,電極間的距離(於第1圖中係針筒與接地電極間的距離)係取決於帶電量、噴嘴尺寸、紡絲液流量、紡絲液濃度等,而可適當地設定。例如,在外加電壓為10kV左右時係以5~50cm左右為佳,且以10~30cm左右更佳。又,外加的靜電電位通常為3~100kV左右,以5~50kV左右為佳,且以5~30kV左右更佳。
於製造本發明不織布的步驟,係在藉由電紡絲法製造不織布的途中供給骨填補材。具體而言,例如,可藉由「利用電紡絲法以少量噴霧生物相容性聚合物溶解溶液來製造不織布,並使適當量之骨填補材朝該不織布上分散之後,
再噴霧生物相容性聚合物溶解溶液」此步驟來製造本發明不織布。較佳地,反覆進行該步驟數次~數十次(具體而言係2~50次左右,且以5~10次左右為佳)來製造本發明不織布。換言之,本發明不織布之製造方法包含該步驟,且較佳係包含反覆進行數次~數十次該步驟。較佳的製造方法之一態様係可例示如:以0.5~1.5μL/sec之比例噴霧生物相容性聚合物溶解溶液,每隔15分鐘添加0.1~0.2g骨填補材之方法。於該例示方法中,骨填補材係添加至合計添加量成為1~2g左右為止。
再者,於電紡絲法,隨著擬製造的不織布之厚度變厚,為了讓該不織布存在,會使接地電極變得難以帶負電,從而使得生物相容性聚合物溶解溶液變得難以噴霧。因此,藉由習知電紡絲法會難以得到較厚的不織布。於本發明中,為了製造較厚的不織布,較佳係在接地電極施以下述的處置。亦即,不僅使用金屬板(例如鋁、銅等板)作為接地電極,較佳係在該板上具有突起(較佳為圓柱狀或圓錐狀)。此外,該突起係以可上下移動者為佳。若為具有如此突起的接地電極,藉由在不織布厚度變厚而使接地電極難以帶負電時使該突起上昇,而可進一步使接地電極帶負電。較佳在金屬板上以例如1~3cm左右的間隔以成為格子狀之方式具有該突起。又,該突起之截面積以0.001~0.5cm2左右為佳,且以0.01~0.1cm2左右更佳。本發明亦包含具有如此構成的電紡絲用接地電極。再者,如後述般,第2圖表示具有如此構成的電紡絲用接地電極之一態様。
由於本發明之不織布在作為細胞培養支架使用時,細胞(特別是骨原細胞)的增殖效率會提高非常多(提高細胞增殖活性),因此可適合作為細胞培養支架材料使用,更可適合作為骨再生用材料使用。具體而言,在因外在原因(例如事故)而使骨骼損傷時,或者因內在原因(例如骨質疏鬆症、牙周病)而使骨骼減少或消失時,藉由適當使用本發明不織布(具體而言,藉由埋於患部或黏附於患部)可達成早期的骨骼再生。特別是,本發明的不織布由於具有習知不織布所不可能達到的厚度程度,而可達成以下使用方法:藉由與習知骨填補材相同地埋入擬進行骨再生之部位(患部)而促進骨再生。
特別是,由於使骨填補材被盤繞保持在不織布的纖維中,故本發明之不織布的骨填補材之留置性很高,且具有適度的韌性,因此即便患部的形狀複雜仍很容易適用(埋入)。又,細胞通透性及通液性亦十分優異。
雖未被限制,但本發明之不織布尤其是適合使用在植入治療中的齒槽骨再生。
迄今,於GBR法(Guided Bone Regeneration:引導骨質再生療法),在對使齒槽骨再生的區域填充骨填補材之後,為了抑制會妨礙骨組織再生的牙齦組織或上皮組織等浸潤至該區域內中,必須要使用遮蔽膜(亦即,必須要“依序”使用以併用設置骨填補材及遮蔽膜)。因此,由於在該區域中要先填充骨填補材,接著再使用遮蔽膜,故施術者需付出很大的時間及勞力,並且需要求施術者有高度的技術。另
一方面,在使用本發明的不織布代替骨填補材使用時,由於可與遮蔽膜一起進行“單次”使用,故可減輕施術者的時間及勞力,且與以往相比在技術上亦可簡單地適用。特別是,雖然習知骨填補材常會有從適用部位漏出的情形,但是若將本發明之不織布代替骨填補材使用,則不會產生這種問題。又,本發明之不織布由於具有優異的柔軟性,因此可配合患部形狀使其變形後來使用,或者是可配合患部形狀剪切後來使用。
此外,於本發明的不織布中,藉由增長從內部所含有的骨填補材至外側的長度(亦即,藉由增厚本發明之不織布與牙齦組織或上皮組織相接面的纖維層),可抑制牙齦組織或上皮組織對再生區域的浸潤(亦即,附加遮蔽膜的功能)。此時,可僅僅使用本發明不織布來代替遮蔽膜及骨填補材使用。
又,如上所述,本發明之不織布雖可藉由以電紡絲法反覆進行“少量噴霧生物相容性聚合物溶解溶液來製造不織布,並使適當量之骨填補材朝該不織布上分散之後,再噴霧生物相容性聚合物溶解溶液”此一步驟來製造,但亦可藉由稍微變更此製造過程,而製造各種形態之有用的不織布。舉例而言,一開始大量噴霧生物相容性聚合物溶解溶液而製造暨寬且厚的不織布,並僅在其上較狹窄的一部分加入骨填補材並反覆進行噴霧生物相容性聚合物溶解溶液此一操作,而會得到暨寬且厚的不織布成為基座且其一部分含有骨填補材的不織布隆起的大禮帽狀不織布。在將其
比擬成大禮帽時,帽緣部分為暨寬且厚的不織布,帽冠部分則為含有骨填補材的不織布。此大禮帽狀的不織布,可將帽冠部分埋入欲使齒槽骨再生的區域,且可藉帽緣部分來抑制牙齦組織或上皮組織浸潤至該區域內。亦即,該大禮帽狀的不織布具有遮蔽膜及骨填補材兩者的功能。
如此一來,本發明之不織布可作為骨再生用材料使用。此外,本發明亦包含使骨原細胞等附著或添加在本發明之不織布而成者。亦即,本發明包含含有上述不織布的骨再生用材料,且該骨再生用材料可為包含上述不織布者,亦可為再進一步包含骨原細胞的上述不織布。再者,若要包含骨原細胞,只要例如將該不織布作為支架來培養細胞即可。
又,本發明之不織布可作為骨原細胞培養支架材料來使用。於此情況下,可將具有與上述骨再生材料相同構成的不織布作為骨原細胞培養支架材料使用。
又進一步,從可作為骨再生用材料使用的觀點來看,本發明不織布可使用於例如以下所記載的治療、手術形式或用途。
骨內缺損、第二類型臼齒根叉病變、萎縮型缺損、裂開型缺損中的引導組織再生術;齒槽脊之增骨術、齒槽脊增大術、植入物周圍之增骨術中的引導骨質再生術;齒槽脊形成術;上顎竇提升術中的sinus lifting法;保存齒槽中的socket preservation法;鼻腔底提升術;骨延長手術、刮
除骨壞死部分後的骨填充、刮除骨組織之癌症病灶後的骨填充、用於治療因外傷造成之骨折之骨填充中的骨重建術;齒橋下的牙齦增大、對牙齦萎縮之牙根覆蓋、齒間乳頭重建、其他牙齦增大等因審美目的之施術等。
骨延長手術;刮除骨壞死部分後、刮除骨組織之癌症病灶後、因外傷造成之骨折的治療、脊椎壓迫骨折、骨不癒合治療中的骨重建術;骨延長手術:作為治療骨質疏鬆症中的藥效成分之載體材之用途等。
再者,本發明亦包含將上述本發明之不織布適當使用至擬使骨(較佳為齒槽骨)再生的部位而使骨骼再生的方法。該方法可使用於例如上述治療、手術形式。
以下雖具體說明本發明,但本發明當不為下述例子所限定。再者,實驗時亦可適宜地參照該技術領域之教科書等(例如Molecular Cloning:A Laboratory Manual(3 Vol.Set);Cold Spring Harbor Laboratory Press)。
於聚乳酸(三井化學,LACEA,H-400)7g中添加六氟異丙醇:二氯甲烷=8:2(質量比)之混合溶液43g並使其溶解而得到聚乳酸溶液(14w/w%)。將該聚乳酸溶液填充至針筒(Henke SASS WOLF,5mL)中,並將針(Terumo,平口針21G1.1/2)裝著在針筒上,並設置於電紡絲裝置上。將自針筒至擬成為標靶的接地線的距離設為8cm,於外加電壓
10kV之下,且以表1所示條件,分別變化噴霧量、噴霧時間來進行噴霧。進行噴霧之間,每隔15分鐘儘可能無遺漏地添加骨填補材(OSferion/Olympus Terumo Biomaterials股份有限公司)。該添加係進行至合計添加量成為2g為止。再者,所使用的骨填補材(OSferion)之粒徑為0.5~1.5mm(規格值)。添加骨填補材全量結束後,再噴霧聚乳酸溶液15分鐘。如此進行來製造表1所示的4種不織布。
再者,當在製造時,係使用可上下移動的具有銅製突起之鋁板來作為接地電極(兼作為集電器)。該接地電極之概要係表示於第2圖。於上述噴霧之間,每隔15分使該銅製突起各上昇0.5mm。
依以下程序,測定上述4種不織布(樣品0、1、2、3)之厚度、容積密度、骨填補材比例及構成不織布的纖維的纖維徑。
將樣品分別剪切成長方形(約4cm2左右),並測定重量。
以厚度計(Digital thickness gauge,尾崎製作所,DG-205M)測定測定樣品的縱、橫及厚度之長度,且將縱、橫、厚度之長度相乘而求得之體積(cm3)。再者,令厚度為20個位置之測定值的平均值。
依據次式從樣品重量及體積求得容積密度。
容積密度(g/cm3)=樣品重量(g)/樣品體積(cm3)
此外,將經剪切的各樣品分別置入錐形管中,添加50mL之二氯甲烷,而溶解樣品中的聚乳酸。接著於錐形管中留下沉澱物,去除上清液。使該沉澱物之二氯甲烷蒸發,並測定留下來的沉澱物之重量,當作骨填補材之重量。然後,依據次式求得骨填補材比例。
骨填補材比例(%)=(二氯甲烷不溶解物(沉澱物)/所使用的樣品重量)×100
又,使用掃描式電子顯微鏡(日立高科技股份有限公司,S-3400N)攝影各樣品截面,並藉由Image J(ver.1.43u)(NIH開發的影像處理軟體)來從500倍之電顯攝影影像測定纖維徑。將50根纖維的纖維徑平均值當作各樣品之纖維徑。
再者,將各樣品之截面照片示於第3圖。於第3圖中,分別將A示為樣品0,將B示為樣品1,將C示為樣品2,將D示為樣品3。從第3圖可確認到,相較於樣品0,樣品1~3因有加入骨填補材故成為具厚度的不織布。又,藉由掃描式電子顯微鏡而得到的樣品3之截面攝影圖係示於第4圖。亦於第4圖合併表示模式圖。
將以上物性評定之結果示於表2。
又進一步,針對樣品1~3,計算出不織布之孔隙率(%)及不織布之纖維部分之孔隙率(%)。計算係使用1.26g/cm3之值作為聚乳酸之真密度、使用3.17g/cm3之值作為骨填補材(OSferion)之真密度。將結果示於表3。再者,該真密度值係藉由乾濕自動密度計(Accupyc 1330;島津製作所)所求得之值。
[表3]
不含骨填補材之聚乳酸不織布(樣品0),其厚度薄至0.163mm,尤其是作為填充患部(骨缺損部)使用的骨再生用材料而言,難謂是足夠的厚度,但,添加骨填補材而成的聚乳酸不織布(樣品1~3)係厚度2~3mm之較厚的不織布,係即便以手擠壓之後只要挪開手仍會回復者,因此被認為是適宜作為骨再生用材料者。
依以下程序,探討研究各不織布(樣品1~3)之細胞增殖活性。具體而言,測定藉由各樣品增殖的細胞之DNA量來探討細胞增殖活性。
將各不織布樣品(樣品1~3)剪切成與48孔培養皿(住友Bakelite(股),SUMILON,MS-80480)之底面相同的大小,並至於48孔培養皿之底部。其等中係含有厚薄約50mg的骨填補材。又,將約50mg骨填補材(OSferion)作為控制組樣品直接置於48孔培養皿之底部。
於各評定樣品上放置不鏽鋼管(penicillin cup(盤尼西林杯)),再添加500μL之10%FBS/MEM培養基(添加有抗生素及麩胺酸的10%FBS/MEM培養基:以下之「10%FBS/MEM培養基」亦同)。藉由盤離心機離心5min(2500rpm,室溫),並進行減壓脫氣,再離心5min(2500rpm,室溫)。然後,添加200μL之10%FBS/MEM培養基,並於37℃、5%CO2培養箱內培養1hr以上。吸取並去除500μL培養基,以成為1.6×105cells/mL的方式將源自於
人類骨肉瘤的細胞MG-63懸浮在10%FBS/MEM培養基中,將其每100μL播種至各孔(well)中(1.6×104cells/well)。培養5小時,在使細胞附著於評定樣品後,添加200μL之10%FBS/MEM培養基,並進行培養。將培養1日、3日、8日後的樣品使用於細胞增殖活性評定。
培養後,取出附著有細胞的各評定樣品(不織布),分別加至已加入PBS(磷酸緩衝生理食鹽水)的培養皿中。測定含有PBS之狀態的重量,從乾燥重量及含有PBS之狀態的評定樣品重量求得吸水量(從含有PBS之狀態的評定樣品重量,減去供作為評定樣品實驗前的乾燥重量(剪切成與培養皿底面相同大小之時點所測定)的量)。
添加TE緩衝液至各培養皿,以使得樣品吸水量及TE緩衝液(Tris/Tris-HCl 10 mM,EDTA 1mM)合起來的溶液量成為1200μL。進行2次凍結熔解(反覆進行2次於-80℃使其凍結,且於室溫使其熔解之操作),其後,進行超音波處理30分鐘而使細胞破碎。將100μL使DNA溶解於TE緩衝液中而成的細胞溶解液(進行凍結熔解及超音波處理而得之細胞破碎液)添加至96孔螢光測定用盤(Nunc black microwell,cat.137101)而將其作為測定樣品。
以TE緩衝液稀釋PicoGreen(Invitrogen)(以20mL稀釋100μL),添加100μL至測定樣品,於室溫培養5分鐘。使用螢光盤分析儀(Molecular devices spectra Max gemin XPS),以激發光480nm、測定波長520nm來測定螢光強度。
由於PicoGreen為雙股DNA專一性的染色劑,故所得到的螢光強度可反映DNA量(進而反映細胞數)。將結果示於第5圖。相較於僅使用骨填補材(控制組)的情況,確認到在包含骨填補材的較厚聚乳酸不織布(樣品1~3)上有較多數細胞附著且增殖。因此,可知該等不織布作為骨再生材料係十分優異。
不織布之孔徑(眾數)係藉由利用全氟聚酯的半乾法(ASTM E1294-89)來測定(使用直徑7mm之圓形測定承接器)。再者,測定機器係使用毛細流動式孔洞分析儀(CFP-1200-AEL,Porous Materials Inc)。又,欲求出眾數時的組距係設為1μm。
於聚乳酸(Evonik Degussa Japan股份有限公司,RESOMER(註冊商標),L 206S)5g中添加六氟異丙醇:二氯甲烷=8:2(質量比)之混合溶液45g並使其溶解,而得到聚乳酸溶液(10重量%)。將該聚乳酸溶液填充至針筒(Henke SASS WOLF,5mL)中,並設置於電紡絲裝置(MEC股份有限公司,NF-103A)上。將自針筒至擬成為標靶的接地電極(4 x 4cm之鋁塊:與第2圖所示者為相同機構)的距離設為22cm,於外加電壓15kV之下,以噴霧量1ml/hour、噴霧合計時間90min之條件進行噴霧。進行噴霧之間,每隔3分鐘就無遺漏地添加0.033g之將骨填補材(Olympus Terumo Biomaterials股份有限公司,OSferionG1)及將骨填補材破碎
地更細緻且以篩調節粒徑而得者。該添加係進行至30次合計添加量成為約1g為止。如此進行來製作表4所示的5種不織布(A、B、C、D及E)。
又,使用塊狀(20mm×10mm×3.5mm之直方體狀)的OSferion(OSferion A1)作為骨填補材,同様地製作不織布。令該不織布為不織布F(表4)。
依以下程序,測定並算出不織布A~F之厚度、容積密度、骨填補材比例及構成不織布的纖維之纖維徑。
將各樣品分別切割出4 x 4cm之正方形,並測定重量。樣品之厚度係以數位式測微計(Mitutoyo股份有限公司,CLM1-15QM)測定。令厚度為20個位置的測定值之平均值。
接著,與上述「不織布之物性評定1」同様地進行,測
定且算出不織布A~F之容積密度、骨填補材比例及構成不織布的纖維之纖維徑。但,關於纖維徑,並非使用500倍的電顯攝影影像,而是使用2000倍的電顯攝影影像來求得。
將以上物性評定之結果示於表5。再者,不織布F由於是使用塊狀的骨填補材來製造,因此容積密度比其他不織布更大。
又進一步,算出各不織布之孔隙率(%)及各不織布之纖維部分之孔隙率(%)。具體而言,計算係使用1.26g/cm3之值作為聚乳酸之真密度、使用3.17g/cm3之值作為骨填補材(OSferion)之真密度,與上述「不織布之物性評定1」同様地計算出。但,不織布F由於塊狀骨填補材本身包含很多空隙,因此僅在計算出不織布F之纖維部分之孔隙率時,使用0.7065g/cm3作為骨填補材之真密度。將結果示於表6。
不織布F由於是使用塊狀的骨填補材來製造,因此不織布之纖維部分之孔隙率比其他不織布更低。因此,與其他不織布相比之下,為稍硬的不織布。
將使用聚乳酸溶液濃度設為5重量%,且將從電紡絲裝置噴霧之條件設為噴霧量1ml/hour,將噴霧合計時間設為195 min,在開始噴霧15 min後,每隔6 min添加0.03 g之骨填補材至合計添加量成為約1 g為止,除此之外,與上述「不織布之製造2」同様地進行,以製造不織布α。
與上述「不織布之物性評定2」同様地進行,測定並算出不織布α之厚度、容積密度、骨填補材比例及立體構成不織布的纖維之纖維徑,再計算出立體不織布之孔隙率(%)及立體不織布之纖維部分之孔隙率(%)。將結果示於表7及表8。
將接地電極設為6×25cm之鋁塊,且將噴霧條件設為寬16 cm、噴霧量1 ml/hour,並將噴霧合計時間設為360 min,且在噴霧之間,每隔6 min於4×16 cm上無遺漏地添加0.135 g之骨填補材(OSferion)59次至合計添加量成為約8 g為止,除此之外,與上述「不織布之製造2」同様地進行,以製造不織布β。
上述「不織布之物性評定2」同様地進行,測定並算出不織布β之厚度、容積密度、骨填補材比例及立體構成不織布的纖維之纖維徑,再計算出立體不織布之孔隙率(%)及立體不織布之纖維部分之孔隙率(%)。將結果示於表9及表10。
將不織布β藉由以下方式移植至大鼠,來探討結締組織之浸潤程度。再者,塊狀骨填補材本身(OSferion A1)亦同様地移植至大鼠來作為對照。
購入SD系雄性大鼠(8週齡,約200g)當作實驗動物。對該大鼠施以2.5%異氟烷吸入麻醉,將術部(即背部)剃毛,
再以碘伏(Isodine)及消毒用醇消毒。切開背部皮膚,於疏鬆性結締組織內製作空隙。於此空隙中埋植不織布β或骨填補材之塊狀物(10 x 10 x 5 mm,Olympus Terumo Biomaterials公司,從OSferion A1切割出),以縫合線進行閉創。自埋植開始2週後,在2.5%異氟烷之吸入麻醉下從腹部大動脈進行放血,使施以移植的大鼠安樂死。進行該大鼠之致死確認後,採取埋植的檢體(包含周邊部)。將採取的樣品浸漬並固定於10%中性緩衝福馬林液(Mildform(註冊商標),和光純藥工業股份有限公司製)中。之後,自該樣品製作凍結非脫鈣組織切片,並施以蘇木精-曙紅染色(hematoxylin and eosin stain)。以光學顯微鏡觀察所得到的組織切片標本。將結果示於第6a圖及第6b圖。對不織布β之結締組織浸潤比對照的塊狀骨填補材之結締組織浸潤更為良好。
將不織布A~D剪切成直徑約1cm之大小,且設置於24孔培養皿(住友Bakelite(股),SUMILON,MS-80480)之底部。以盤尼西林杯(不鏽鋼管)壓住評定樣品,加入添加有抗生素及麩胺酸的10%FBS/MEM培養基(以下只要未特別預先提及,即便僅標示成「10%FBS/MEM培養基」時也包含抗生素及麩胺酸)10000μL並使其濕潤,並進行減壓脫氣。於37℃、5%CO2培養箱內,培養1hr以上。將事先培養的MG-63(來源:人類骨肉瘤,人類科學研究資源庫,Lot.05262004)懸浮在10%FBS/MEM培養基中,以使其成為
3.2×105cells/mL,且將每100μL播種至各孔(well)中(3.2×104cells/well)。將培養一晚的細胞作為評定樣品使用。
以4%三聚甲醛溶液固定細胞1hr,並以PBS洗淨。之後、於乾冰冷卻下的己烷中凍結樣品,並凍結包埋於4%CMC。將凍結樣品以厚度30μL的方式薄切,且進行蘇木精.曙紅染色(HE染色)。以正立顯微鏡(Olympus股份有限公司,BH-2)觀察薄切樣品。又,使用Image J ver 1.44來測定最大細胞浸潤距離。將結果示於第7圖。可確認到隨著孔隙率、纖維部分之孔隙率之上昇,細胞之浸潤性會變高。
將噴霧合計時間設為120 min,且在噴霧之間,每隔3 min於4×16 cm上無遺漏地添加0.135 g之骨填補材(OSferionG1)39次至合計添加量成為約5.3 g為止,,與上述「不織布之製造4」同様地進行,以製造不織布γ。
探討不織布β及不織布γ之細胞浸潤性。針對不織布β及γ係如下般進行細胞培養。亦即,剪切成直徑約1cm之大小,且在10%FBS/MEM培養基中進行減壓脫氣而使其完全濕潤。然後,於37℃、5%CO2培養箱內,培養1hr以上。將事先培養的MG-63(來源:人類骨肉瘤,人類科學研究資源庫,Lot.05262004))懸浮在10%FBS/MEM培養基中,以使其成為1.6×105cells/mL,並將各評定樣品浸於細胞溶液10mL中60分鐘。樣品係每15分鐘於溶液內輕輕地攪拌。從細胞液取
出樣品,並設置在24孔培養皿(住友Bakelite(股),SUMILON,MS-80240)之底部。添加1mL培養基,以盤尼西林杯(不鏽鋼管)壓住樣品,培養一晚。將此培養有細胞的不織布作為樣品,並以4%三聚甲醛溶液固定細胞1hr,且以PBS洗淨。之後,於乾冰冷卻下的己烷中凍結樣品,凍結包埋於4%CMC。將凍結樣品以厚度30μL的方式薄切,並進行HE染色。以顯微鏡(Olympus股份有限公司,BH-2)觀察薄切樣品,評定細胞浸潤性。
又,與上述「不織布之孔徑測定」同樣地進行來測定各不織布的孔徑。但,在測定不織布β及γ之孔徑時,係剝除不織布之表層,而將其用於測定。
將以上結果示於第8圖。第8圖之孔徑係顯示眾數。
此外,如下述般測定各不織布之各纖維之間的距離(纖維間距離)。亦即,將擬測定的樣品(不織布)浸漬於PBS中,並進行減壓脫泡。將浸潤有PBS的樣品沉入4%CMC(羥甲基纖維素)凝膠中,作成凍結塊。從所作成的塊狀物做成厚度2μm之樣品,並以樹脂封入載玻片與蓋玻片之間。以相位差顯微鏡攝影薄切樣品。從攝得的影像檢測纖維之截面,並以重心間距離法進行該纖維間距離之測定。重心間距離法之解析係使用「A像君」(旭化成工程,ver 2.20)來進行。將該解析之概要示於第9圖。再者,如此進行而測得之纖維間距離係:不織布β為18.4μm、不織布γ為27.2μm、不織布樣品2為33.3μm。
為了解析細胞浸潤性與不織布之孔徑間的關係,製造通常的不織布(平面不織布(i)~(iii):表11),來探討細胞浸潤性。
具體而言,於聚乳酸聚乳酸(Evonik Degussa Japan股份有限公司,RESOMER(註冊商標),L 206S)5g中添加六氟異丙醇:二氯甲烷=8:2(質量比)之混合溶液45g並使其溶解,而得到聚乳酸溶液(10重量%)。將該聚乳酸溶液填充至針筒(Henke SASS WOLF,5mL)中,並設置於電紡絲裝置(MEC股份有限公司,NF-103A)上。將自針筒至擬成為標靶(3x3cm之鋁塊)的接地線間的距離設為25cm,於外加電壓15kV之下,以噴霧量1ml/hour、噴霧合計時間60min之條件進行噴霧,來製作不織布(i)。又,不織布(ii)(iii)除了分別使用不同種類的旋轉式捲筒作為接地線之外,與不織布(i)相同地進行製作。
針對不織布(i)~(iii),與上述「細胞浸潤性之探討2」相同地,探討細胞浸潤性。但,僅在不織布(i)之孔徑測定中,於求出眾數時的組距係設為0.1μm。結果示於第10圖。第10圖之孔徑係顯示眾數。再者,第10圖之「最大浸潤距離」係從HE染色組織切片之觀察影像求得。又,各別的不織布之纖維間距離係:不織布(i)為7.3μm、不織布(ii)為13.4μm、不織布(iii)為15.8μm。
[第1圖]顯示藉由電紡絲法之不織布製造方法的簡單概要。
[第2圖]顯示製造本發明不織布時所使用的接地電極之一例。
[第3圖]顯示本發明之不織布(及藉由電紡絲法製得之通常不織布)的截面圖。
[第4圖]顯示本發明不織布之截面圖(藉由掃描式電子顯微鏡而得者)。
[第5圖]顯示研究本發明不織布例子之樣品1~3的細胞增殖活性之結果。
[第6a圖]顯示在將塊狀骨填補材(OSferion之塊狀物)移植至大鼠時結締組織對塊狀骨填補材的浸潤程度之組織切片觀察影像。外側虛線表示經移植骨填補材之輪廓,內側點線則表示浸潤於該骨填補材之組織的前端。
[第6b圖]顯示在將本發明不織布移植至大鼠時的結締組織對不織布之浸潤程度之組織切片觀察影像。外側虛線表示經移植不織布之輪廓,內側點線則表示浸潤於該不織布之組織的前端。
[第7圖]顯示將各不織布作為支架培養細胞後,進行HE染色而得的影像及由該影像測得之細胞浸潤距離。
[第8圖]顯示各不織布之孔徑測定結果及將各不織布作為支架培養細胞並進行HE染色而得之影像。
[第9圖]顯示各不織布纖維之間的距離(纖維間距離)測
定方法之概要。
[第10圖]顯示各不織布之孔徑測定結果,以及將各不織布作為支架培養細胞並進行HE染色而得的影像及從該影像測得之細胞浸潤距離。
Claims (9)
- 一種不織布,係包含有骨填補材者,其中骨填補材被包含在構成不織布的纖維間,構成不織布的纖維係生物相容性纖維,且骨填補材之粒徑為50~5000μm,構成不織布之纖維的平均纖維徑為0.05~20μm。
- 如申請專利範圍第1之不織布,其中生物相容性纖維為包含生物相容性聚合物而形成的纖維。
- 如申請專利範圍第2項之不織布,其中生物相容性聚合物係至少1種選自於由聚乳酸、聚乙醇酸、聚乳酸-聚乙醇酸共聚物、聚己內酯、幾丁質、膠原蛋白、聚離胺酸、聚精胺酸、玻尿酸、絲膠蛋白、纖維素、聚葡萄糖及聚三葡萄糖(pullulan)所構成之群者。
- 如申請專利範圍第1至3項中任一項之不織布,其中骨填補材係至少1種選自於由β-TCP(β-磷酸三鈣)、α-TCP(α-磷酸三鈣)、HA(羥磷灰石)、DCPD(磷酸氫鈣)、OCP(磷酸八鈣)、4CP(磷酸四鈣)、氧化鋁、氧化鋯、鋁酸鈣(CaO-Al2O3)、鋁矽酸鹽(Na2O-Al2O3-SiO2)、生物活性玻璃、石英及碳酸鈣所構成之群者。
- 如申請專利範圍第1至3項中任一項之不織布,其中不織布之孔隙率為78.5~97%。
- 如申請專利範圍第1至3項中任一項之不織布,其中不織布之纖維部分的孔隙率為80~99.99%。
- 如申請專利範圍第1至3項中任一項之不織布,其中不織布之容積密度(g/cm3)為0.1~0.6。
- 一種骨再生用材料,包含如申請專利範圍第1至7項中任一項之不織布。
- 一種骨原細胞培養支架材料,包含如申請專利範圍第1至7項中任一項之不織布。
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