TWI235766B - Fluorescent intensity assaying method for protein or peptide binding to nucleic acids - Google Patents
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Description
A7 1235766 五、發明説明(/ ) 發明領域 本發明是有關於生物聚合物結合分析,更特別地,是 有關於使用螢光強度數據以分析在核酸及肽類或蛋白質之 間的結合之方法。 發明背景 蛋白質-核酸複合體是已知在許多生物性過程中扮演重 要的角色。例如,參見Hill等人“以螢光的方法硏究蛋白 質-核酸複合作用”,卷278,酵素學方法,頁390 ( 1997 )。例如,DNA-結合蛋白是已知在基因調控中扮演重要的 角色。基因典型地是藉由DNA-結合蛋白而在轉錄的層次 上受到調控,這些DNA-結合蛋白則稱爲轉錄因子。轉錄 因子藉由在啓動子DNA中專一性地結合至標的核酸序列而 調控基因的表現。 由於蛋白質-核酸交互作用的生物重要性,所以許多用 以硏究蛋白質-核酸結合特性之方法因而被提出。例如,參 見Hill等人以及其中所引用的參考文獻。
Verdine之美國專利第5,783,384號,揭露用於測定 DNA結合蛋白對於標的核酸序列之親和力的方法。 Verdine所指示的方法包括··在DNA結合蛋白與標的核酸 序列之間,提供一可逆的鍵結;以及在監督的條件下,藉 由將此鍵結打斷而測定可逆鍵結的相對強度(並因此測定 蛋白質對於核酸的親和力)。用於打斷此鍵結所需之條件 愈嚴格的話,則蛋白質對於核酸就有愈高的親和力。但 Verdine並沒有揭露或建議以螢光爲基礎的結合分析法。 ________ 4 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS ) A4規格(210X297公釐) ' ~ -------1 |_-ΙΦ-----:111.------蟀 (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) 經濟部智慧財產局員工消費合作社印製 1235766 經濟部智慧財產局員工消費合作社印製 A7 B7 五、發明説明())
Royer之美國專利第5,445,935號,揭露以螢光爲基礎 ’用以硏究蛋白質-寡核苷酸結合的方法;然而,本發明的 指τκ僅限定於蛋光非等方性(anis〇tr〇py)的技術。基本上 ,非等方性是測量自由DNA或蛋白質結合的DNA之旋轉 的擴散,以及藉由一連接臂而貼附至DNA的螢光原( fluorophore)之局部移動。自由的DNA快速地旋轉,將光 更容易地退極化,並且顯示一低的非等方性數値。相對地 ’蛋白質結合的DNA緩慢地旋轉(相對於螢光原的壽命) ,僅輕微地將光退極化,並因此顯示一相當高的非等方性 數値。 然而,以非等方性爲基礎的分析存在有明顯的缺點。 非等方性改變的程度,如同結合函數一般,並非如同主張 以非等方性爲基礎的方法之擁護者一樣可預測。非等方性 數據之解釋,使得不一致的數據能符合理論的期望,是較 在分析方法中所需者需要更多的努力,特別是當此方法要 自動化時。 輻射活性的標記仍是用於分析蛋白質-核酸交互作用之 最普遍的方法,儘管它是相當地緩慢、對健康及環境有危 險以及相當地勞力密集。習知之輻射活性的標記方法,典 型地需要輻射活性末端標記的DNA探針與32磷(32P), 使用特定的酵素。從未倂入的32P中純化標記的DNA,牽 涉到聚丙烯醯胺凝膠電泳、隔夜的洗脫(elution)、凝膠 過濾以及濃縮等步驟。因爲32P的半衰期僅有14天,因此 大約每3個星期就需要對每個探針輻射標記一次。此外, 5 本I張尺度適用中國國家標準( CNS ) A4規格(210X297公釐) — I---------------訂------ (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁} A7 1235766 五、發明說明() 耳突變型JD3F/4F之螢光光譜。 圖2A顯示在50mM NaCl反應混合物中0奈克,20奈 克,100奈克及200奈克野生型c-Jim之DNA結合區域與 0.075微微莫耳野生型JD1F/2F之螢光光譜。 圖2B顯示在50mM NaCl反應混合物中0奈克,20奈 克,100奈克及200奈克野生型c-Jun之DNA結合區域與 0.075微微莫耳突變型JD3F/4F之螢光光譜。 圖3A及3B係0奈克,200奈克及400奈克在c-Jun 之鹼性區域有兩個胺基酸取代之純c-JTim突變14肽與 〇·〇75微微莫耳野生型JD1F/2F(圖3A)或突變型JD3F/4F( 圖3B)進行反應所得之螢光光譜。 圖4A及4B顯示200奈克之鋅指DNA結合蛋白Spl 結合至野生型JD11F/12F或突變型JHD13F/14F之螢光光譜 〇 圖5A及汩顯示在含0,750奈克,1微克或5微克 IgG之50mM NaCl反應混合物中1微克或250奈克oJim 結合至JD1F/2F之螢光光譜。 圖6A及6B係1〇微克HeLa細胞核抽取物分別與 °·05微微莫耳野生型JD49F/50F(圖3A)或突變型 JD51F/52F(圖3B)進行反應所得之螢光光譜。 圖7A顯示0,1〇微克及20微克含Oct-Ι蛋白之HeU 細胞核抽取物,0及〇·1微克VP16,及0·〇25微微莫耳野 生型JD41F/42F之混合物之螢光光譜。
圖7Β顯示〇,1〇微克及20微克含〇ct-l蛋白之HeU 本紙張尺度適ϋ國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公H ' 〜 (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) Φ 1235766 A7 ____B7____ 五、發明說明() 細胞核抽取物,〇及0.1微克vpl6,及0.025微微莫耳野 生型JD43F/44F之混合物之螢光光譜。 圖8A顯示0,10微克及20微克含〇ct-i蛋白之HeLa 細胞核抽取物,〇及0.1微克VP16,及0.025微微莫耳野 生型JD45F/46F之混合物之螢光光譜。 圖8B顯示0,10微克及20微克含Oct-Ι蛋白之HeLa 細胞核抽取物,0及0.1微克VP16,及〇·〇25微微莫耳野 生型JD47F/48F之混合物之螢光光譜。 較佳具體實施例之詳細說明 本發明提供一種用於分析在至少一種蛋白質序列以及 至少一種核酸序列之間的特定結合之方法,其中該至少一 種蛋白質序列及/或該至少一種核酸序列包含至少一種螢光 原。此方法包括:偵測導源於特定結合以形成至少一種蛋 白質-核酸複合體之至少一種螢光原上的螢光強度淬滅效應‘ 。較佳地,在結合至該至少一種蛋白質的序列之前,此螢 光原是貼附至該至少一種核酸的序列上。 不像螢光非等方性的程度,當蛋白質結合至DNA或 RNA寡核苷酸時,此程度會增加',當複合體形成時,此螢 光發散的強度會降低。 •-種用於偵測淬滅(並因此分析結合)的較佳方法包 括:(a)提供一測試介質,其包括至少一種核酸序列以及 至少一種蛋白質序列;(b)以輻射線照射此測試介質,使 有效產生至少一種螢光原,以發散螢光;以及(c)以一實 質上相同於此測試介質的參考介質之參考螢光強度,與此 ----- —— - 〇 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公爱) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁)
A7 B7 1235766 五、發明說明() 螢光的螢光強度相比較,除了此參考介質是缺乏此至少一 種蛋白質序列之外,其中,當螢光強度小於參考螢光強度 時,偵測該淬滅效應以及該特定的結合。淬滅是蛋白質-核 酸複合體經由特定的結合而形成之象徵。 如同此處所定義的,在至少一種蛋白質序列以及至少 一種核酸序列之間的特定結合,是排除在肽類核酸以及核 酸之間的互補(也就是,華森-克立克)鹼基對,但包括所 有在蛋白質(爲了本發明之目的,名詞“蛋白質”是以其 最寬廣的觀念而定義,如包括,例如,肽類(例如胜肽、 二胜肽、三胜肽等)、多胜肽、蛋白質以及多蛋白質複合 體)以及核酸(例如,雙股DNA (dsDNA)、單股DNA (ssDNA)、RNA、單股 RNA、雙股 RNA、信使 RNA (mRNA)、核不均 RNA (hnRNA)、轉移 RNA (tRNA)、核糖 體 RNA (rRNA)、單股 DNA : RNA 雜合物(hybdds)、雙股 DNA : RNA雜合物、核酸類似物以及寡核苷酸)之間的其 他類型之特定結合。 許多蛋白質-核酸複合體可使用本發明之方法而分析。 本發明可用於分析在核酸以及,例如,肽類、蛋白質或多 蛋白質複合體之間的結合特性(包括結合以及結合親和力 的存在或不存在)。適合用於分析的蛋白質包括,例如, 野生型、突變的、分離的、體外的(M Wko)轉譯的及/或 合成的蛋白質。本發明特別適合用於分析DNA-結合蛋白 對雙股DNA之結合。測試用的樣品不需要是1〇〇%的純, 但可包括例如,純化的製備、合成的製備、半純化的蛋白 __2__ _ _ 本纸張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公爱) ' " (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) I I · I I------I . -n n n n ϋ n ϋ n n n n n n n ϋ n I I ϋ n ϋ < A7 1235766 B7 五、發明說明() ^〜 ---- 『又物、粗製(crude)蛋白質萃取物或活體外轉譯的製 本發明之具體實麵分析多種蛋白質複合體的結合 性,此複合體具有結合到在核酸序列上之單一或數個結八 位置之相同或不同的蛋白質。多蛋白質:D·複合體在= f界:是更普_,並且較單—蛋白質:DNA複合體或同 =二聚體(h〇m〇dimer) : DNA複合體更具有生物學上的 思義。使用本發明,可以偵測兩種(或多種)交互作用的 虫白貞,是否獨立地、合作地或協同地結合到它們各自的 DNA位置。例如,本發明可測量兩個蛋白質結合到兩個 DNA位置,其藉由插入的DNA序列而分開,當這兩個結 合的蛋白質互相交互作用時,此插入的DNA序列結成環狀 〇 結合的複合體之成份不需要一定是野生型或完美的配 對。例如’本發明可分析在突變的蛋白質及突變的DNA結 合序列之間的結合,或者可分析在具有改變的結合親和力 之突變蛋白質至野生型DNA結合位置之間的結合。 本發明可偵測第一未標記的化合物至第二未標記的化 合物之結合,藉由偵測在第一未標記的化合物及標記的化 合物之間結合特性的改變(如同藉由螢光強度的改變所指 示)。爲了本發明的目的,這樣的偵測稱爲“二級結合的 ”偵測,或以其較寬廣的觀念,稱爲“非直接結合的”偵 測。理論上,本發明可進行三級結合的偵測、四級結合的 偵測等等,如果結合的每一個額外的程度’可在標記的化 "^紙張尺度適財關家鮮(CNS)A4規格χ 2971(^' (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) ------—丨訂---------線— · •ϋ ·ϋ ί - 1235766 五、發明說明() 合物及弟一未標記的化σ物之間的結合,產生一*明顯的改 變的話。 相似地,本發明也可偵測未標記的化合物到至少一種 複雜化合物的複合體成員的結合,其中,至少一種複雜的 化合物被標記以用於螢光強度的測量。標記的化合物及未 標記的化合物,甚至不需要直接地交互作用就可偵測。必 要的關鍵是在於,本發明可經由其在標記探針的結合特性 上之非直接或直接對標的物之影響而偵測一狀況。 因此,本發明可偵測一對抗特定蛋白質的抗體(也就 是,“第二未標記的化合物”)對特定蛋白質(也就是, “第一未檩記的化合物”)的結合,其中,此特定的蛋白 質是直接結合到標記的DNA序列,或是存在於多蛋白質·· DNA複合體中,並且因此與一種或多種在複合體中的其他 蛋白質交互作用,但並不需要與標記的DNA直接交互作用 。加入特定的抗體至蛋白質:DNA複合體(特別是多蛋白 質:DNA複合體),是廣泛使用的技術,以鑑別在蛋白質 :DNA複合體中未知蛋白質的存在。抗體的結合將避免蛋 白質:DNA複合體的形成(當與自由的DNA比較時,導 致強度上沒有改變),或者將導致抗體:蛋白質:DNA的 複合體,其甚至可能較蛋白質:DNA複合體更爲降低螢光 的強度。 本發明更進一步地可偵測標記的核酸至其他序列專一 性的結合分子之直接及非直接的結合,此分子例如,肽類 、模擬的肽類、複雜的碳水化合物或其他的寡聚物。 (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁)
本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) 1235766 a7 __—_ B7__ 五、發明說明() 本發明是有效用於非常多的目的,包括設計及/或篩選 分子,此分子以位置專一性的方式結合至所需要的DNA或 其他類型的序列,或是此分子改變其他分子的結合。因此 ’本發明提供一種用於鑑別及評估新物質或藥物的方法, 其具有特定的結合活性,或是可預測地改變其他結合配對/ 複合體之結合特性。例如,可鑑別具有DNA結合專一性的 物質,其結合至啓動子DNA,因此扮演轉錄阻礙者的角色 。這個新鑑別的轉錄阻礙物質,可同時使用於活體外及活 體內(MWvo)的轉錄作用。 本發明之方法可以不需要在螢光強度偵測之前,從至 少一種蛋白質序列及至少一種核酸序列中,分離至少一種 蛋白質:核酸複合體,並且不需要在該至少一種蛋白質上 或在該至少一種核酸序列上,提供一信息淬滅作用劑。 本發明並不需要使用輻射活性的探針,其使用上爲具 有危險、令人厭煩和浪費時間的,並且需要不斷地再生。 本發明之探針較佳地使用上是安全的,並且可保持數年的 穩定。因此,可大量地製造或訂購探針並且儲存。 本發明之方法並不需要膠體分離的步驟,藉此允許加 倍要測試樣品的量,並且只要半天的時間來分析。定量分 析是簡單並準確的。 本發明將關於以下的實施例做更詳盡地說明,但應了 解的是,本發明並非視爲限制於此。 實施例 本實施例證明三種不同類型的DNA結合蛋白質,對 本紙張尺度中國國家標準(Cns)A4規格(210 X 297公爱) 一 ' (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) ·--------訂---------線 *·-- 1235766 A7 _______B7_____ 五、發明說明() 其相對的DNA辨認位置之結合,作爲本發明以雷射爲基礎 的分析,可應用在所有類型的DNA結合蛋白質之證據。實 施例所選擇之三種代表性的蛋白質是c-JUN(實施例1-3 及5)、Spl(實施例4)以及Oct-l(實施例6-7)。 實施例f c-JUN是轉錄因子之AP-1家族的成員,其結合並且調 控在許多細胞及病毒基因的啓動子或促進子序列中之天然 存在的AP-1 DNA結合位置。例如,參見Bohmann等人“ 人類原生-致癌基因編碼具有結構性及功能性轉錄因 子AP-1性質的DNA結合蛋白質”卷238,科學雜誌,頁 1386-1392 ( 1987)。此外,人類c-JUN蛋白質是屬於名爲 原生-致癌蛋白質的一類蛋白質(其包括c-FOS及c-MYC )’當其解除管制並活化時,產生腫瘤形成以及癌症。c-JUN、c-FOS及c-MYC構成一特定的DNA結合蛋白質族 群’其DNA結合的功能部位(domain)是由一富含驗性氨 基酸的區域所組成(一^般稱爲驗性區域”或“驗性功能 口 βίΐΔ )’其緊罪在名爲白肢酸拉鍊(leucine zipper ) 的結構性功能部位旁。白胺酸拉鍊是由4到5個白胺酸 殘基所組成(c-JUN具有5個),其以7個氨基酸的固定 間隔而分開,形成二分子的螺旋-螺旋結構。與其迴文的( palindromic) DNA序列之特定接觸,經由鹼性區域而初步 地發生。白胺酸拉鍊提供c-JUN對本身的二聚作用,形成 dUN : c-JUN同質二聚體,或對C-F〇s形成C-JUN :卜 FOS異質一聚體。c_juN的同質二聚體使得DNA朝向 -— ___ η 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) ""— --- (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) ·訂-丨 1>1 m tn m I n —ϋ A7 B7 1235766 五、發明說明() DNA螺旋的次要凹槽(minor groove)彎曲79度,然而c-JUN : c-FOS異質二聚體使得DNA以相反的方向,朝向 DNA螺旋的主要凹槽(major groove)彎曲94度。具有完 整功能的DNA結合功能部位,同時需要鹼性區域以及白胺 酸拉鍊。如同純的人類c-JUN蛋白質使用在以下的分析, 本實施例顯示c-JUN : c-JUN同質二聚體結合至單一的AP-1 位置(JD1F/2F)。 螢光素標記的野生型雙股DNA寡核苷酸,JD1F/2F, 其含有一致性的7個鹼基對之AP-1 DNA結合位置,是衍 生自人類膠原蛋白酶(collagenase)基因的啓動子序列。 互補的5’-螢光素標記之單股DNA 17-聚體JD1F及JD2F, 其具有5個核苷酸包圍在一致性AP-1位置的兩側,在 PerSeptive Biosystems Expedite核酸合成儀上合成,並且藉 由高效能液體色層分析(HPLC)而純化。相等莫耳量的 JD1F及JD2F寡核苷酸,在10毫莫耳濃度的三羥甲基氨基 甲烷(Tris)、pH 7.5、100毫莫耳濃度的氯化鈉、1毫莫 耳濃度的乙二胺四乙酸(EDTA)中,藉由在95°C變性5 分鐘,然後分別在42°C、35°C及21°C中各培養40分鐘而 黏合(anneal)。黏合的寡核苷酸在-20°C以酒精沈澱2小 時,在〇°C以14,000轉/分鐘(rpm)的轉速離心20分鐘而 形成小片,以100%酒精淸洗,在0°C以14,000轉/分鐘的 轉速離心20分鐘再形成小片,乾燥,並且以1〇〇奈克(ng )/微升的最終濃度溶解於二次蒸|留水中。所形成的雙股 DNA寡核苷酸,在5’末端的兩側具有單一的螢光素分子。 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁)
-ϋ n ϋ n n n n-^OJ· n n n ϋ n n ϋ I ·.1 ·ϋ ϋ n n n n n n ϋ ϋ n n n ϋ n ϋ ϋ n ϋ -ϋ n I A7 B7 1235766 五、發明說明() 野生型JD1F之序列(序列辨識編號:1): 5,-螢光素-GTG TCT GAC TCA TGC TT-3’ 野生型JD2F之序列(序列辨識編號:2): 5、螢光素-AAG CAT GAG TCA GAC AC-3’ 突變的雙股DNA 17-聚體JD3F/4F,是相同於野生型 JD1F/2F的序列,除了在野生型AP-1 —致性的DNA結合 位置內,從GC到TA單一鹼基對(標以底線)的改變之 外。 突變的JD3F之序列(序列辨識編號:3): 5’-螢光素-GTG TCT IAC TCA TGC TT-3’ 突變的JD4F之序列(序列辨識編號:4): 5,-螢光素_AAG CAT GAG ΤΔΛ GAC AC-3’ c-JUN : DNA的結合反應混合液(30微升)包含下列 成份:9.25毫莫耳濃度的N-2-羥乙基派嗪-N’_2’-乙基磺酸 (HEPES)、pH,7.9、2.23毫莫耳濃度的氯化鎂、0.03毫 莫耳濃度的乙二胺四乙酸、50毫莫耳濃度的氯化鈉、5.0 毫莫耳濃度的二硫蘚糖醇(DTT)、3.75% (Wv)甘油、 0.15微克/微升的牛血淸白蛋白CBSA)、0-2.0微克純的 c-JUN 蛋白質(Promega,Madison,威其斤康辛)或 0-400 奈克純的c-JUN胜肽,以及0.075微微莫耳(pmole)之 5’-螢光素標記的雙股DNA寡核苷酸。當使用全長的c-JUN時,將3奈克/微升的聚(dl)-聚(dC)納入至反應混合液 中,並且在添加蛋白質及螢光素標記的DNA之前添加。在 第1B及1D圖中的實施例包含50毫莫耳濃度的氯化鉀替 (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) · 訂i •線丨-- 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) A7 1235766 ___B7 __ 五、發明說明() 代50毫莫耳濃度的氯化鈉。野生型及突變的c-JUN DNA 結合功能部位胜肽,是由Dirk Bohmann博士慷慨提供(歐 洲分子生物實驗室,海德堡,德國)。反應混合液在21°C 培養30分鐘,置於石英小管中,以具有488毫微米波長的 氬離子雷射波束照射,並且監測螢光的發散。 野生型的c-JUN DNA結合功能部位胜肽,是由c-JUN 的羧基端132個氨基酸殘基所組成(從麩胺酸醯胺209到 苯丙胺酸340)。c-JUN突變的14 DNA結合功能部位胜肽 ,在序列上是相同於野生型的胜肽,除了在中間的鹼性功 能部位內之2個氨基酸取代基(標以底線)之外,把在位 置277的離胺酸轉換爲異白胺酸,以及把位置278的半胱 胺酸轉換爲天門冬胺酸。 野生型c-〗UN胜肽之序列(序列辨識編號:5)= 210 220 230 240 QPQQQQQPPfiHLPQQMPVQHPRLQALKEEPQTVPEMPGE 250 260 270 280
TPPLSPIDMESQERIKAERKRMRNRIAASKCRKRKLERIA 290 300 310 320 RLEEKVKTLICAQNSELASTANMLREQVAQLKQKVMNHV 330 340
NSGCQLMLTQQLQTF 突變的14c-JUN月生之序列(序列辨識編號:6): 210 220 230 240
QPQQQQQPPHHLPQQMPVQHPRLQALKEEPQTVPEMPGE L——~—-----16 _ 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁)
--ϋ 11 n n n n n^OJa n ·1 -ϋ I 線丨· A7 1235766 _____B7_____ 五、發明說明() 250 260 270 280 TPPLSPIDMESQERIKAERKRMRNRIAASJ^RKRKLERIA 290 300 310 320 RLEEKVKTLKAQNSELASTANMLREQVAQLKQKVMNHV 330 340
NSGCQLMLTQQLQTF 2微克、1微克或0.05微克之全長c-JUN結合至0.075 微微莫耳野生型JD1F/2F或0.075微微莫耳突變的JD3F/4F 所得到的螢光光譜,顯示於第1A-1D圖。對於每個樣品的 測試,DNA濃度都固定保持在2.5 fmole ( 10_15莫耳)/微 升。所有的樣品不論是只有DNA,或是有存在c-JUN,都 在相同的反應條件下測試。最大的螢光強度發生在525 nm ,因爲使用的螢光原是螢光素。當1微克或0.05微克的c-JUN結合至JD1F/2F時,觀察到最大的強度分別是比只有 JD1F/2F時所觀宰到的低54%及49% (第1A圖)。當2 微克的c-JUN結合至野生型JD1F/2F時,產生強度上55% 的降低(數據未顯示)。1微克及2微克的C-JUN兩者所 得到強度上相似的降低,顯示添加1微克的c-JUN蛋白質 就可達到結合的飽和程度。 爲了測試在不同的鹽條件下,c-JUN對於結合DNA的 偏好程度,以上的實驗在含有50毫莫耳濃度氯化鉀以取代 50毫莫耳濃度氯化鈉的反應緩衝液中,同步地進行(第 1B圖)。當2微克的c-JUN在氯化鉀反應緩衝液中結合至 野生型JD1F/2F時,可觀察到57%的強度降低,相較於只 ----U------ 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) -------------^丨一 1235766 a7 ___ B7___ 五、發明說明() 有DNA所達到的程度。1微克及〇·5微克的c-JUN,在50 毫莫耳濃度的氯化鉀緩衝液中結合至野生型的JD1F/2F, 分別產生40%及34%的強度降低,顯示低於結合的飽和程 度。因此,c-JUN結合至其AP-1位置,在50毫莫耳濃度 的氯化鈉反應混合液中,是要比在50毫莫耳濃度的氯化鉀 反應混合液中有較高的結合親和力。因此,根據本發明的 雷射結合分析,不僅可以確實地偵測c-JUN : DNA的結合 ,並且也可以鑑別優先的結合條件。 在相同的實驗期間,當確實相同的c-JUN量,在50 毫莫耳濃度的氯化鈉反應混合液中(第1C圖),或50毫 莫耳濃度的氯化鉀反應混合液中(第1D圖),與〇.075微 微莫耳突變的JD3F/4F反應時,在每個樣品中都沒有觀察 到螢光強度的降低,顯示蛋白質並沒有結合到突變的DNA 序列。這些突變的DNA結合硏究,證實c-JUN :野生型 DNA結合條件以及雷射偵測方法兩者的專一性。 當發散的螢光強度,在3種不同的積分時間測量時, 得到相同的結果(數據未顯示),顯示一致性的結果與積 分時間無關。 實施例2 全長的c-JUN蛋白質是40汗道耳吞(kDa)或340個 氨基酸的大小。C-JUN之DNA結合的功能部位是位在c-JUN羧基端的132個氨基酸殘基(從第2〇9殘基的麩胺酸 酸胺到第340殘基的苯丙胺酸),並且能夠以相同於全長 蛋白質的結合親和力而結合DNA。 1丨一丨 _ 1只 本纸張尺度適用中®(CNS)A4規格⑽χ撕公髮) ^-- (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁)
訂---------線L 1235766 A7 _________B7___ 五、發明說明() 第1A-2B圖顯示,雷射分析也可藉由只由這132個氨 基酸的DNA結合功能部位所組成的純蛋白質胜肽,而偵測 特定的結合。20奈克、100奈克以及200奈克的野生型c-JUN DNA結合功能部位胜肽,在50毫莫耳濃度的氯化鈉 反應混合液中,與0.075微微莫耳野生型JD1F/2F結合, 分別導致13%、28%以及43%螢光強度的降低,相較於只 有JD1F/2F所發散的螢光強度(第2A圖)。事實上,只 有20奈克的c-JUN胜肽與0.075微微莫耳DNA的結合, 是可以被確實地偵測,顯示此雷射分析的高靈敏度。此外 ,肽類:DNA的結合分析是定量的,因爲c-JUN胜肽的增 加量會導致更加地與野生型DNA的結合。 相較之下,20奈克、100奈克以及200奈克的野生型 c-JUN胜肽,並沒有結合至突變的JD3F/4F,導致螢光強 度小量的增加,在只有突變的DNA所觀察到的結果之上( 第2B圖),證實此雷射結合分析的專一性。 如同預測的,對於200奈克的c-JUN胜肽結合至 JD1F/2F所觀察到之43%的螢光強度降低,是分別少於1 微克及〇·5微克全長的,c-JUN蛋白質所觀察到之54%及 49%的降低。任何人將可預期以一肽類得到較少的靜態淬 滅發生,因爲較少的蛋白質質量將吸收在肽類中所發散的 螢光。 實施例3 雷射結合分析的專一性更進一步地藉由將突變的c-JUN DNA結合功能部位胜肽,與野生型或突變的DNA反 ___19 _________ 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) -n m in n n 一· I— n I n -n flu —m I ϋ ·ϋ n 1— n n n n n n n I ϋ i n n f n n n n —1 - -i 1235766 a7 _________B7 ____ 五、發明說明() 應而測試。在c-JUN的鹼性功能部位中,特定的突變徹底 破壞DNA結合但卻不影響二聚作用,然而在白胺酸拉鍊中 ,特定的突變卻同時阻止二聚作用以及DNA結合。當200 奈克及400奈克之純的C-JUN突變14胜肽(其在C-JUN 的鹼性功能部位內,具有2個氨基酸取代基)與0.075微 微莫耳的野生型JD1F/2F或突變的JD3F/4F結合時,所得 到的螢光光譜,分別顯示在第3A圖以及第3B圖。對於 JD1F/2F或JD3F/4F,並沒有觀察到螢光強度的降低,甚至 當非常過量的c-JUN突變14胜肽存在時,明白地顯示 DNA結合的破壞’並且更加g登明雷射結合分析的專一*性。 實施例4
Spl是屬於一類明顯的DNA結合蛋白質,名爲鋅指( zinc finger ) DNA結合蛋白質。例如,參見Kadonaga等人 ,“編碼轉錄因子Spl的cDNA之分離,以及DNA結合 功能部位的功能性分析”卷51,細胞雜誌,頁1079-1090 ( 1987 )。Spl控制大量病毒及細胞的啓動子或促進子之 轉錄作用,包括HIV-1長端重複(LTR)。Spl結合位置 的數目、間隔、方向以及序列’廣泛地在啓動子之間改變 ,導致高親和力、中親和力或低親和力的結合位置。雖然 Spl是相當大的蛋白質(95仟道耳吞及105仟道耳吞’分 別在其醣化及磷酸化的形式),但DNA結合活性是位於靠 近此蛋白質的羧基端(從第539殘基的半胱胺酸到第619 殘基的組織胺酸)。此區域包含3個鄰接的鋅(π)指主 體結構(modf),其爲與DNA交互作用的金屬蛋白( __ ____2jQ_ 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公爱) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁)
A7 B7 1235766 五、發明說明() metalloprotein)結構。DNA結合的序歹[]專一性是藉由3個 鋅(II)指而完整地提供。第3指是最關鍵的指(相關於 結合親和力),然後是第2指,最後是第1指。2個半胱 胺酸以及2個組織胺酸殘基結合一鋅(II)離子,以形成 每一指。鋅的移除瓦解3個鋅指的二級結構。在此類DNA 結合蛋白質中,這些指具有(半胱胺酸-X2,4-半胱胺酸-X3-苯丙胺酸-X5-白胺酸-X2-組織胺酸-X3-組織胺酸)之一致性 的序列,稱爲半胱胺酸2/組織胺酸2指。第二類型的鋅(II )指主體結構稱爲半胱胺酸2/半胱胺酸2指,具有(半胱 胺酸-X2-半胱胺酸-x13-半胱胺酸-X2-半胱胺酸),發現於 其他的DNA結合蛋白質中,例如,許多的荷爾蒙受體。 一種含有單一一致性10個驗基對的Spl DNA結合位 置之野生型螢光素標記的雙股DNA寡核苷酸,JD11F/12F ,是衍生自人類金屬硫肽(MT-IIA)基因的啓動子序列。 互補的5’-螢光素標記之單股DNA 20-聚體JD11F及JD12F ,以上述之方法合成、純化以及黏合。 野生型JD11F之序列(序列辨識編號:7): 5,-螢光素-CCG GCC GGG GCG GGG CTT TT-3’ 野生型JD12F之序列(序列辨識編號:8): 5,-螢光素-AAA AGC CCC GCC CCG GCC GG-3’ 突變的雙股DNA 20-聚體JD13F/14F,是相同於野生 型JD11F/12F的序列,除了 6個鹼基對的改變(標以底線 )之外,其將一致性的Spl結合位置GGG GCG GGG C轉 變成爲 TAA ATA GGG C。 ____2J________ 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) ·--------訂---------線 *·--- 1235766 B7 五、發明說明() 突變的JD13F之序列(序列辨識編號:9): 5,-螢光素-CCG GCC TAA ΑΤΑ GGG CTT ΤΤ-3’ 突變的JD14F之序列(序列辨識編號:1〇): 5,-螢光素-AAA AGC CC工 A1XIAG GCC GG-3, Spl : DNA的結合反應混合液(30微升)包含下列成 份:25毫莫耳濃度的N-2-羥乙基呢嗪-N’-2’-乙基磺酸( HEPES)、pH 7.8、2.23毫莫耳濃度的氯化鉀、100微莫耳 濃度的硫酸鋅、1毫莫耳濃度的二硫蘚糖醇(DTT)、20 % ( v/v)甘油、0.05微克/微升的牛血淸白蛋白(BSA)、 0-200奈克純的Spl蛋白質(Promega)以及0.1微微莫耳 (pmole)之5’-螢光素標記的雙股DNA寡核苷酸。反應混 合液在〇°C.培養15分鐘,置於石英小管中,以具有488 nm 波長的氬離子雷射波束照射,並且監測螢光的發散。 第4圖顯示鋅指DNA結合蛋白質Spl與野生型 JD11F/12F或突變的JD13F/14F之結合。當200奈克的 Spl結合至0.1微微莫耳的JD11F/12F時,觀察到44%的 螢光強度降低,相較於只有JD11F/12F時所達到的螢光強 度(第4A圖)。此外,可確實地偵測到25奈克之全長 Spl蛋白質的結合(數據未顯示),顯示此雷射分析的高 靈敏度。因爲Spl是相當大的蛋白質(95仟道耳吞),然 而c-JUN只有40仟道耳吞的大小,因此,對於Spl結合 的DNA要比c-JUN結合的DNA需要較少量的蛋白質,以 達到44%的螢光強度降低,這是由於較大的蛋白質對於發 散的螢光有較高的吸收及保留。 _____ΊΎ _ 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) 訂---------線丨-- A235766 A7 _____B7 _ 五、發明說明() 當200奈克的Spl與0·1微微莫耳的JD13F/14F時, 並沒有觀察到螢光強度的降低(第4Β圖),顯示沒有蛋 白質結合到突變的DNA序列上。這些硏究證實,雷射偵測 分析對於完全不同類型的DNA結合蛋白質之專一性。 實施例5 本實施例說明本發明硏究抗體直接對特定蛋白質結合 的能力,此特定蛋白質是直接地結合到標記的DNA序列上 。將特定的抗體加到蛋白質:DNA複合體(特別是多蛋白 質:DNA複合體)中,是一種用以鑑別在蛋白質:DNA 複合體中,是否存在有未知蛋白質的技術。抗體的結合將 抑制或完全地避免蛋白質:DNA複合體的形成(當與自由 的DNA比較時,導致螢光強度之最小的降低或沒有改變) ,或者將導致抗體:蛋白質:DNA複合體的形成,其降低 螢光強度甚至超過蛋白質:DNA複合體。 如前所述,1微克、500奈克及250奈克的c-JUN與 0.075微微莫耳的野生型JD1F/2F,在50毫莫耳濃度的氯 化鈉或50毫莫耳濃度的氯化鉀反應混合液中反應。在21 °C培養15分鐘之後,變量的單株免疫球蛋白IgGi抗體, c-JUN ( KM-1 )(購自 Santa Cruz 生物科技,Santa Cruz, 加州),其得自對抗一段相當於人類c-JUN氨基酸56到 69的胜肽,將其加到一些c-RJN : DNA混合液中。反應混 合液在21°C再培養40分鐘,置於石英小管中,以具有488 nm波長的氬離子雷射波束照射,並且監測螢光的發散。 第5A圖及第5B圖顯示,在50毫莫耳濃度的氯化鈉 -_____7^ —------ 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) ——^-------------------------------- 1235766 A7 B7 五、發明說明() 反應混合液中,1微克或250奈克的c-JUN分別與 JD1F/2F的結合。當1微克或250奈克的c-JUN與 JD1F/2F結合時,分別觀察到25%及11%螢光強度的降低 ,相較於只有DNA所達到的螢光強度。將5微克或1微克 的c-JUN抗體加到1微克的c-JUN中,分別導致42%及 37%螢光強度的降低(也就是,更降低17%及12%) ’顯 示IgG : 〇JUN : DNA複合體的形成(第5A圖)。當c, JUN抗體在50毫莫耳濃度的氯化鉀反應混合液中’結合到 1微克之與JD1F/2F結合的c-JUN時,觀察到相同的螢光 強度降低(數據未顯示)。相似地,將750奈克的c-JUN 抗體加到250奈克之與JD1F/2F結合的c-JUN時,產生27 %的螢光強度降低,比只有蛋白質:DNA複合體所達到的 程度更降低丨6% (第5B圖)。IgG : c-JUN複合體並沒有 與突變的DNA JD3F/4F結合(數據未顯示),證實此雷射 分析的專一性。· 此實施例顯示,此雷射偵測方法可區別(抗體:蛋白 質:DNA複合體)以及(蛋白質·· DNA複合體)。此外 ,其建立了本發明可確實地偵測異源性多蛋白質複合體與 DNA結合的能力,而非只是區別蛋白質的單體或同質二聚 體結合至DNA。在多蛋白質:DNA複合體中,只有一種 蛋白質需要與DNA結合。多蛋白質:DNA複合體,其中 多於一種蛋白質與DNA交互作用,也可使用本發明之方法 來偵測。 實施例6 ----24 _ 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) Γ 请先閱讀背面之注意事項再填寫本頁} ·· 11 •線丨— 1235766 A7 ___B7 五、發明說明() 普遍存在的細胞八聚體結合蛋白質(〇ct_l),藉由其 獨特的DNA結合功能部位,而直接與DNA結合,其完全 地不同於c-JUN或Spl之DNA結合功能部位。〇ct-;[是 POU功能部位DNA結合蛋白質的一員,其調控細胞專一 性的轉錄及發育。例如,參見Sturm等人“普遍存在的八 聚體結合蛋白質Oct-Ι ’包含具有同源異形盒(homeobox )次功能部位(subdomain)的p〇u功能部位” 2,基因及 發育,1582-1599 ( 1988 )。POU功能部位的結構,在 DNA結合功能部位中是獨特的,因爲它包含2個結構上獨 立的功能部位,其功能上地配合如同單一的DNA結合單位 。Oct-Ι藉由此POU功能部位而結合至DNA,係由75個 氨基酸的POU專一性(POUs)功能部位所組成:24個氨 基酸的短連接區域以及60個氨基酸的POU類型同源異形 (P0UH)功能部位。P〇Us功能部位以及POUH功能部位 都包含有螺旋轉螺旋(HTH)的結構。 不像實施例1-5使用純化的蛋白質,本實施例使用海 拉(HeLa)細胞核萃取物(購自Promega,Madison,威斯 康辛),作爲〇ct-l的來源。HeLa細胞核萃取物的使用, 其含有大量的各種DNA結合蛋白質以及轉錄因子,顯不藉 由本發明的雷射分析,使用天然的蛋白萃取物以偵測序列 專一性蛋白質:DNA的結合是可行的。 一種含有單——致性8個鹼基對的Oct-1 DNA結合位 置之野生型螢光素標記的雙股DNA寡核苷酸,JD49F/50F ,是衍生自人類免疫球蛋白重鏈的啓動子。互補的5’-螢光 _____25 一----- 本纸張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) I n ϋ n n n i-_i n^OJ爾―— I ϋ ϋ ϋ 1 n n ϋ n n A7 B7 1235766 五、發明說明() 素標記之單股DNA 18-聚體JD49F及JD50F,以上述之方 法合成、純化以及黏合。 野生型JD49F之序列(序列辨識編號:11): 5,-螢光素-GAG TAT GCA AAT CAT GTG-3’ 野生型JD50F之序列(序列辨識編號:12): 5,-螢光素-CAC ATG ATT TGC ATA CTC-3’ 突變的雙股DNA 18-聚體JD51F/52F,是相同於野生 型JD49F/50F的序列,除了雙重的點突變(AJ2—CG)( 標以底線),其使得P〇Us結合位置不活化;以及第二@ 重的點突變(A6A7—CC)(標以底線),其使得POUh# 合位置不活化之外,藉此將一致性的〇ct-l結合位# ATGCAAAT 轉變成爲 GGGCACCT。 突變的JD51F之序列(序列辨識編號:13): 5’-螢光素-GAG TCG GCA Q£J CAT GTG-3’ 突變的JD52F之序列(序列辨識編號:14): 5’-螢光素-CAC ATG AGG TGC CGA CTC-3’
Oct-1 : DNA的結合反應混合液(3〇微升)包含下列 成份·· 9.25毫莫耳濃度的N-2-羥乙基呢嗪-N,-2,-乙基磺酸 (HEPES)、pH 7·9、2.23毫莫耳濃度的氯化鎂、0.03毫 莫耳濃度的EDTA、63毫莫耳濃度的氯化鈉、1.0毫莫其 濃度的二硫蘚糖醇(DTT)、3.75% (ν/ν)甘油、0.10毫 克/毫升的牛血淸白蛋白(BSA) 、0.01毫莫耳濃度的 PMSF、67微克/毫升的聚(dl)-聚(dC)、67微克/毫升的聚 (dG-dC)-聚(dG-dC)、0-15微克的HeLa細胞核萃取物( ______26 一 本纸張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) A7 I235766 __B7___ 五、發明說明()
Promega)以及0·05微微莫耳(pmole)之5’-螢光素標記 的雙股DNA寡核苷酸。當使用天然的細胞核蛋白質萃取物 時,相當高濃度的聚(dl)-聚(dC)以及聚(dG-dC)-聚(dG-dC) 是需要的,以確保序列專一性的蛋白質:DNA結合。反應 混合液在21°C培養30分鐘,置於石英小管中,以具有488 nm波長的氬離子雷射波束照射,並且監測螢光的發散。 當10微克的HeLa細胞核萃取物與0.05微微莫耳的野 生型JD49F/50F或0.05微微莫耳突變的JD51F/52F反應時 ,所得到的螢光光譜分別顯示於第6A及6B圖。存在於 HeLa細胞核萃取物中的Oct-Ι蛋白質,專一性地結合至野 生型高度親和力的Oct-Ι結合位置,導致22%的螢光強度 降低,相較於只有JD49F/50F時所觀察到的程度(第6A 圖)。相較之下’ Oct-Ι並沒有結合至突變的JD51F/52F ’ 如同螢光強度在只有突變的DNA所觀察到的結果之上所指 示(第6B圖)·,證實此雷射結合分析的序列專一性。這 些實驗顯示對於其他完全不同類型的DNA結合蛋白質之雷 射偵測分析的專一性。 此外,本實施例也證實,可藉由本發明確實地測量專 一性的蛋白質:DNA結合,甚至當使用天然的HeLa細胞 核萃取物時(其包含數以百計的其他DNA結合蛋白質)° 專一性是藉由適當標記的DNA序列之篩選而提供’其辨認 要硏究的特定DNA結合蛋白質。 竇施例7 本實施例淸楚地顯示本發明之方法,可測量多蛋白質 ____ ^7 —---- 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) ·--------訂 i •線丨----- 1235766 A7 __________B7______ 五、發明說明() (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) 線丨# 複合體(其由兩種或多種不同的蛋白質所組成)’與一種 (或多種)在DNA序列上之結合位置的結合。此硏究是以 人類細胞蛋白質八聚體結合蛋白質(Oct-Ι)和宿主細胞因 子(HCF ;例如,參見Wilson等人,“VP16輔助蛋白質 HCF是加工自大的前驅蛋白質之一多胜肽家族”卷76,細 胞雜誌,頁115-125,( 1993 )),與單純疱疹病毒第1 型(HSV-1)蛋白質VP16 (或Vmw65)結合至DNA序列 TAATGARAT (其中R是嘌呤)而進行。此多蛋白質: DNA複合體稱爲特早期複合體(IEC)或VP16誘導的複 合體。雖然VP16是曾鑑別過的轉活化子中,最有效的基 因轉活化子,但它本身卻不能有效地結合DNA。除此之外 ,它專一性地與Oct-Ι和HCF交互作用以誘導基因。VP16 藉由其胺基端的411個氨基酸而與Oct-Ι和HCF結合。 VP16羧基端之高度酸性的功能部位,藉由氨基酸411到 490而定義,作爲有效的轉錄活化區域。例如,參見 Dalrymple等人,“單純疱疹病毒第1型基因之DNA序列 ’其產物負責特早期啓動子之轉錄活化”卷13,核酸硏究 ,頁 7865-7879 ( 1985 )。
Oct-Ι藉由其兩部份的POU功會g部位而結合至DNA, 其可以顯現異常的DNA序列辨識適應性。Oct-1的POU功 能部位,以P0Us功能部位接觸此位置5’端的一半(ATGC ),以及POUH功能部位與在此DNA另一端上,此位置3’ 端的一半(AAAT)交互作用,而如同單體般結合至八聚 體序歹[J ATGCAAAT。當Oct-Ι結合至高親和力的 ______28 ____ 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) 1235766 A7 __B7 五、發明說明() ATGCAAAT結合位置時’其不能與νρι6交互作用。
Oct-Ι也結合至與八聚體一致性序列幾乎不相像的 DNA位置。例如,Oct-Ι藉由其本身或聯合hCF及VP16 ,可結合DNA序列TAATGARAT,其具有如同符合八聚 體一致性位置的8個鹼基,4個鹼基般少的序列。兩種形 式的TAATGARAT位置,在單純瘦瘆病毒特早期(HSV ιΕ )基因的啓動子序列中被發現。第一個,命名爲 (OCTA+)TAATGARAT主體結構,包含一重疊的八聚體 /ΤΛΑ丁GARAT序歹[],其以高度的親和力結合〇第二 個,稱爲(〇CTA>TAATGARAT,缺少一重疊的八聚體序 歹[1,並且以相當低的親和力結合Oct-Ι。Oct-Ι的P〇UH功 能部位結合5’TAAT序列,然而P0Us功能部位卻結合在 (OCTA )TAATGARAT 位置上的 GARAT 序歹[J。在 (OCTA+)TAATGARAT結合位置上,p〇uH功能部位保持固 定在’TAAT序列,,然而P〇Us功能部位卻可結合5,ATGC 序列或3’GARAT元素。Oct-1的P〇UH功能部位是足以與 VP16交互作用的。 HCF是需要的,用以穩定Ocw與VP16在 TAATGARAT位置上的結合,藉由先與VP16 (與無 關)或TAATGARAT元素形成一穩定的複合體。HCF穩定 VP16結合Oct-Ι的確實機轉仍是不淸楚的。HCF可誘導在 VP16內之構形上的改變,其啓動VP16與Oct-Ι以及 TAATGARAT位置上的GARAT元素交互作用。另外,在 UEC複合體之內,HCF可接觸Oct-Ι或DNA,並因此提供 —_____29__ 一 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) ---III— · I I I I I I--I 一 1235766 a7 ___B7_ 五、發明說明() 此複合體較大的穩定度。 一種含有(〇CTA-)TAA丁GARAT位置之野生型螢光素 標記的雙股DNA寡核苷酸,JD41F/42F,是衍生自HSV-1 IE基因4/5啓動子的20個鹼基對的區域(-343到-324)。 互補的5’-螢光素標記之單股DNA 20-聚體JD41F及JD42F ,以上述之方法合成、純化以及黏合。 野生型JD41F之序列(序列辨識編號:15): 5’-螢光素-GGC GGT AAT GAG ATA CGA GC-3’ 野生型JD42F之序列(序列辨識編號:16): 5,-螢光素-GCT CGT ATC TCA TTA CCG CC-3, 突變的雙股DNA 20-聚體JD43F/44F,是相同於野生 型JD41F/42F的序列,除了雙重的點突變(A2A3—CC)( 標以底線),其使得P〇UH結合位置不活化;以及第二雙 重的點突變(A8T9—CG)(標以底線),其使得POUs結 合位置不活化之外,藉此將OcM結合位置TAATGAGAT 轉變成爲TCCTGAGCG。 突變的JD43F之序列(序列辨識編號:17): 5’-螢光素-GGC GGT Q£J GAG CGA CGA GC-3’ 突變的JD44F之序列(序列辨識編號:18): 5,-螢光素-GCT CGT CGC TCA GGA CCG CC-3’
一種含有(〇CTA+)TAATGARAT位置之野生型螢光素 標記的雙股DNA寡核苷酸,JD45F/46F,是衍生自HSV-1 ΪΕ基因1啓動子的23個鹼基對的區域(-170到-148)。 互補的5,-螢光素標記之單股DNA 23-聚體JD45F及JD46F ______ 本纸張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) 一-οτ I 11 1_ amMme Bn l n tmmMm I n ϋ aB_l ϋ— n «ϋ· n -ϋ ϋ_ι m ·_ϋ n m I— n If n i i Hi n in 1235766 A7 __B7__ 五、發明說明() ,以上述之方法合成、純化以及黏合。 野生型JD45F之序列(序列辨識編號:19): 5,-螢光素-GTG CAT GCT AAT GAT ATT CTT TG-3’ 野生型JD46F之序列(序列辨識編號:20): 5,-螢光素-CAA AGA ATA TCA TTA GCA TGC AC-3’ 突變的雙股DNA 23-聚體JD47F/48F,是相同於野生 型JD45F/46F的序列,除了雙重的點突變(A6A7—CC)( 標以底線),其使得P〇UH結合位置不活化;以及另外兩 個雙重的點突變(AJ2—CG)以及(A12T13—CG)(標以 底線),其使得兩個P〇Us結合位置不活化之外,藉此將 Oct-Ι 結合位置 ATGCTAATGATAT 轉變成爲 CGGCTCCTGATCG。 突變的JD47F之序列(序列辨識編號:21): 5’-螢光素-GTG CCG GCT CCT GAT QQJ CTT TG-35 突變的JD48.F之序列(序列辨識編號:22): 5’-螢光素_CAA AGA CGA TCA ΟϋΑ GCC_ QGC AC-3, Oct-1 ·· HCF : VP16 : DNA的結合反應混合液(30微 升)包含下列成份:9.25毫莫耳濃度的N-2-羥乙基顿嗪-N’-2’-乙基磺酸(HEPES)、pH 7.9、2.23毫莫耳濃度的氯 化鎂、0.03毫莫耳濃度的EDTA、63毫莫耳濃度的氯化鈉 、1.0毫莫耳濃度的二硫蘚糖醇(DTT)、3.75% ( v/v)甘 油、0.10毫克/毫升的牛血淸白蛋白(BSA)、0.01毫莫耳 濃度的PMSF、133微克/毫升的聚(dl)-聚(dC)、67微克/毫 升的聚(dG-dC)-聚(dG-dC)、0-25微克的HeLa細胞核萃取 _31,____ 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) 一 ff n flu ammmMm i n n s I n ·1 n HI in n n n I— HI ϋ— n n m i n ϋ ·ϋ I— ^^1 n n 1235766 B7 五、發明說明() 物(Promega)、0-0.1微克的HSV-1病毒粒子萃取物以及 0.025微微莫耳(pmole)之5’-螢光素標記的雙股DNA寡 核苷酸。包含80%純的VP16之HSV-1病毒粒子萃取物是 由Chds Preston博士所慷慨提供(MRC病毒學硏究所, Glasgow,蘇格蘭)。HeLa細胞核萃取物提供作爲Oct-1 及HCF的來源。除了 DNA及病毒粒子萃取物之外的所有 成份在21°C培養1〇分鐘。然後加入DNA,接著加入 HSV-1病毒粒子萃取物(適量)。反應混合液在21°C再培 養30分鐘,置於石英小管中,以具有488 nm波長的氬離 子雷射波束照射,並且監測螢光的發散。
Oct-Ι蛋白質,以10微克及20微克HdU細胞核萃取 物的量存在,專一性地與0.025微微莫耳的野生型 JD41F/42F結合,分別導致10%及43%的螢光強度降低, 相較於只有JD41F/42F所達到的程度(第7A圖)。0.025 微微莫耳的低DNA量,以莫耳數而言是超過存在於HeLa 細胞核萃取物中的Oct-1量。當Oct-1結合至0.05微微莫 耳之其高度親和力的JD49F/50F結合位置時(在實施例6 中),觀察到10微克的HeLa細胞核萃取物產生22%的螢 光強度降低,然而,當Oct-Ι結合至0.025微微莫耳之其 低度親和力的JD41F/42F結合位置時(以莫耳數而言,其 超過Oct-Ι存在的量),相同量的HeLa細胞核萃取物卻僅 導致10%的螢光強度降低,證實對於相同的蛋白質,雷射 結合分析可區分高度親和力以及低度親和力的DNA結合位 置。 ______飞 9 ____ 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) 訂------ 線丨· 1235766 A7 _B7 ____ 五、發明說明() 當〇·1微克的VP16加到Oct-1 : JD41F/42F反應混合 液中時,觀察到20%螢光強度的降低,相當於只有Oct-1 :JD41F/42F複合體所達到的程度更降低10% (第7A圖 )。此額外的降低是由多蛋白質:〇ct-l : HCF : VP16 : JD41F/42F複合體的形成所引起,比起單一的蛋白質Oct-1 :JD41F/42F複合體,其可以吸收以及保留更多發散的螢 光。 當10微克或20微克的HeLa細胞核萃取物(存在或 不存在VP16)與0.025微微莫耳突變的JD43F/44F反應時 ,並沒有觀察到螢光強度的降低,顯示Oct-Ι或Oct-Ι : HCF : VP16複合體並沒有與突變的DNA序列結合(第7B 圖)。這些突變的DNA結合硏究,證實對於使用天然的細 胞核萃取物以測量專一性的多蛋白質:DNA複合體的形成 上,此雷射偵測方法的專一性。 當10微克的HeLa細胞核萃取物與0.025微微莫耳的 野生型JD45F/46F反應時,發生32%螢光強度的降低,相 較於只有JD45F/46F所觀察到的螢光強度(第8A圖)。 此相當大的強度降低,是Oct-Ι以高度親和力結合至 (〇CTA>TAATGARAT位置的能力之作用。 將0.1微克的VP16加到10微克的HeLa細胞核萃取 物以及0.025微微莫耳的野生型JD45F/46F,導致69%螢 光強度的降低,相當於只有Oct-1 : JD45F/46F複合體所得 到的強度更降低37% (第8A圖)。因爲Oct-1、HCF以 及VP16分別是11〇仟道耳吞、〜300仟道耳吞以及65仟道 ____— _23____ 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) 訂---------線1·丨 1235766 A7 __ _____ 五、發明說明() 耳呑的大小,所以此巨大的69%的降低’是局度有效的多 蛋白質:〇ct-l : HCF : VP16,與存在於JD45F/46F中的 (〇CTA+)TAATGARAT位置結合之直接的結果。 相較之下,當微克的HeLa細胞核萃取物(存在或 不存在0.1微克的VP16)與0.025微微莫耳突變的 JD47F/48F反應時,並沒有觀察到螢光強度的降低(第8Β 圖),淸楚地顯示DNA與突變的DNA序列之結合的破壞 ,並且更證明此雷射結合分析的專一性。 此實施例淸楚地顯示,當使用天然的細胞核萃取物時 ,本發明之方法可再現地測量多蛋白質複合體(其由兩種 或多種不同的蛋白質所組成)之專一性的結合至一種(或 多種)在DNA序列上之結合位置。此外,此雷射結合分析 可評估特定的蛋白質或多蛋白質複合體,結合至任何給定 的DNA序列之親和力。 如同實施例所顯示,本發明可應用至所有類型的DNA 結合蛋白質。例如,當致癌蛋白質c-JUN結合至其專一性 的DNA辨識位置時,觀察到55%可測量單位的降低,相 較於未結合的DNA所達到的程度(第1A及1B圖)。當 c-JUN與突變的DNA序列反應時,並沒有觀察到強度的降 低(第1C及1D圖),顯示沒有結合,並且證實此偵測方 法的專一性 此外,只含有蛋白質的DNA結合功能部位之肽類的 專一性結合,可用定量的方式偵測。例如,20奈克、1〇〇 奈克及200奈克結合至野生型DNA的c-JUN胜狀,分別 — ________24___— 一 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) .--------訂---------線 ---- 1235766 B7 五、發明說明() 導致13%、28%及43%的降低,相較於自由的DNA所觀 察到程度(第2A圖)。事實上可確實地測量只有20奈克 的oJUN胜肽之結合,顯示此偵測分析之高靈敏度。相較 之下,20奈克、100奈克及200奈克的c-JUN胜肽,並沒 有結合突變的DNA,在只有突變的DNA所觀察到的程度 之上,導致較小的降低(第2B圖)。以肽類替代全長蛋 白質的結合,對於設計及篩選藥物可以是特別引起興趣的 〇 此偵測分析的專一性,可藉由將突變的c-JUN DNA結 合功能部位胜肽,與野生型(第3A圖)或突變的DNA ( 第3B圖)反應而進一步地測試。甚至當過量的c-JUN突 變的14胜肽出現時,也沒有觀察到降低,淸楚地顯示 DNA結合的破壞,並且進一步地證明此分析的專一性。 第4A及4 B圖顯示鋅指DNA結合蛋白質Spl,分別 與野生型或突變的DNA結合位置之結合。當200奈克的 Spl結合至野生型的DNA時,觀察到44%的降低,相較 於只有DNA所測得的程度。對於突變的DNA序列,並沒 有觀察到200奈克Spl的結合。 此雷射偵測分析可區分抗體:蛋白質:DNA複合體以 及蛋白質:DNA複合體。例如,當5微克或1微克的c-JUN抗體結合至1微克的c-JUN時(其複合於野生型的 DNA),分別觀察到42%以及37%螢光強度的降低,相較 於c-JUN : DNA複合體所得到的25%降低(第5A圖)。 IgG : c-JUN複合體並沒有結合至突變的DNA序列。 _35 ________ 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁)
H ϋ n n ϋ n n^OJe n I n I
線L 1235766 A7 _ _Β7___ __ 五、發明說明() 第6、7及8圖顯示兩部份的POU功能部位DNA結合 蛋白質Oct-Ι,以不同的結合親和力結合至3種不同的 DNA序列辨識位置。此外,實施例6-7證明使用天然的細 胞核萃取物作爲DNA結合蛋白質來源的可行性,但仍保留 高度專一性的蛋白質-DNA結合。根據每個DNA位置的結 合親和力,1〇微克的HeLa細胞核萃取物,結合至野生型 〇ct-l DNA結合位置,具有10%、22%以及32%的降低, 相較於未結合的DNA所達到的程度。 顯然地,本發明之方法可確實地測量多蛋白質複合體 (其由兩種或多種不同的蛋白質所組成)結合至一種(或 多種)DNA結合位置,不論是使用純的蛋白質或是天然的 細胞核萃取物。例如,當結合至高親和力的 (OCTA+)TAATGARAT位置,或低親和力的(OCTA_ )TAATGARAT 位置時,Oct-1 : HCF : VP16 : DNA 複合體 分別產生69%及,20%螢光強度的降低(第8及7圖)。對 於所有突變的DNA序列,沒有觀察到Oct-Ι蛋白質或〇(^-1 : HCF : VP16蛋白質複合體的結合。 多蛋白質:DNA複合體比單一蛋白質:DNA複合體 ,在本質上是更普遍的並且更具生物意義。本發明之方法 可使用天然的細胞核蛋白質萃取物’以分析單一或多蛋白 質以高度專一性的方式結合至DNA的能力’是最重要的客 觀關連。 雖然本發明已以其附隨的實施例詳細地說明’但顯而 易見的是,在不脫離本發明的範疇之外,熟悉於此技藝者 ______^6 -------- 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公t ) (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁)
1235766 A7 B7 五、發明說明() 可做各種的更動以及潤飾 (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) I n ϋ n I— n n 一-OJI n I ϋ n n n ϋ I ϋ n n I— n n n n 37 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐)
Claims (1)
1235766 哉 C8 D8 六、申請專利範圍 (mRNA)、核不均 RNA (hnRNA)、轉移 RNA (tRNA)、核糖 體 RNA (rRNA)、單股 DNA : RNA 雜合物(hybrids)、雙股 DNA : RNA雜合物、核酸類似物以及寡核苷酸所組成的族 群中;及其中該未標記的化合物是一肽類、多胜肽、蛋白 質或多蛋白質複合體。 2.如申請專利範圍第1項之方法,其中該核酸結合性 蛋白質是以純化的製備、合成的製備、半純化的蛋白質萃 取物、粗製的蛋白質萃取物或活體外轉譯的製備的形式而 提供。 3·如申請專利範圍第1項之方法,其中該螢光原標記 的化合物是一核酸結合性蛋白質,以及該未標記的化合物 是一核酸。 4·如申請專利範圍第1項之方法,其中該螢光原標記 的化合物是一核酸,以及該未標記的化合物是一核酸結合 性蛋白質。 5·如申請專利範圍第1項之方法,更包括對於多數不 同未標記的化合物,測定該標記的化合物之結合親和力。 6.如申請專利範圍第5項之方法,其中該標記的化合 物是一核酸,以及該多數不同未標記的化合物是核酸結合 性蛋白質。 7·如申請專利範圍第6項之方法,更包括根據該結合 親和力的測定,從該多數不同未標記的蛋白質中篩選一藥 物候選物。 8·如申請專利範圍第6項之方法,更包括根據該結合 2 (請先閲讀背面之注意事項再塡寫本頁) -έ 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297父釐) 1235766 韶 C8 D8 六、申請專利範圍 親和力的測定,從該多數不同未標記的蛋白質中篩選一基 因抑制劑或活化劑。 9·如申請專利範圍第6項之方法,更包括比較該多數 不同未標記的蛋白質之結合親和力,以測定該蛋白質是否 寺價地結合。 W·如申請專利範圍第4項之方法,其中該方法更包 括偵測一蛋白質結合的化合物與該蛋白質之結合。 11·如申請專利範圍第10項之方法,其中該蛋白質結 合的化合物是專一性對抗該蛋白質的抗體。 12·如申請專利範圍第11項之方法,其中當螢光強度 是藉由該抗體與該蛋白質以及該蛋白質與該核酸之結合而 淬滅時,偵測該蛋白質-抗體的結合。 13·如申請專利範圍第11項之方法,其中當螢光強度 沒有淬滅時,偵測該蛋白質-抗體的結合,該沒有淬滅顯示 一蛋白質-抗體複合體已形成,並且阻礙該核酸與該蛋白質 的結合。 14·如申請專利範圍第1項之方法,更包括在該核酸 以及至少一種沒有螢光原的核酸之間,藉由將該沒有螢光 原的核酸加到該測試介質,而進行一競爭性的分析。 15. 如申請專利範圍第1項之方法,其中該未標記的 化合物是一突變體。 16. 如申請專利範圍第1項之方法,其中該標記的化 合物是一突變體。 17. 如申請專利範圍第1項之方法,其中該未標記的 3 本紙張尺度適用0國家標準(CNS)A4規格(210 x 297公釐) (請先閲讀背面之注意事項 φ^ϋ 再填寫本頁) .1235766 098 8 99 ABCD 六、申請專利範圍 化合物,是在一多蛋白質複合體內的一突變蛋白質,該未 標記的化合物阻礙其他蛋白質與該螢光原標記的化合物之 結合。 18. 如申請專利範圍第1項之方法,其中該未標記的 化合物,是藉由磷酸化、醣化或與金屬離子交互作用而改 質。 19. 如申請專利範圍第5項之方法,更包括在一蛋白 質萃取物內鑑別一功能性蛋白質或多蛋白質複合體的存 在,其可在蛋白質萃取物製備的不同代謝狀態期間結合 DNA。 20·如申請專利範圍第6項之方法,其中該核酸是改 質的。 21·如申請專利範圍第20項之方法,其中該核酸是甲 基化的。 4 (請先閲讀背面之注意事項再塡寫本頁) -•5U 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4規格(210 X 297公釐)
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