TW442492B - Process for the enrichment of interferon - Google Patents

Process for the enrichment of interferon Download PDF

Info

Publication number
TW442492B
TW442492B TW085108439A TW85108439A TW442492B TW 442492 B TW442492 B TW 442492B TW 085108439 A TW085108439 A TW 085108439A TW 85108439 A TW85108439 A TW 85108439A TW 442492 B TW442492 B TW 442492B
Authority
TW
Taiwan
Prior art keywords
patent application
interferon
solution
item
copper
Prior art date
Application number
TW085108439A
Other languages
English (en)
Inventor
Pierre Francois Fauquex
Catherine Georges
Original Assignee
Novartis Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Novartis Ag filed Critical Novartis Ag
Application granted granted Critical
Publication of TW442492B publication Critical patent/TW442492B/zh

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12N9/2405Glucanases
    • C12N9/2408Glucanases acting on alpha -1,4-glucosidic bonds
    • C12N9/2411Amylases
    • C12N9/2414Alpha-amylase (3.2.1.1.)
    • C12N9/2417Alpha-amylase (3.2.1.1.) from microbiological source
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/16Extraction; Separation; Purification by chromatography
    • C07K1/22Affinity chromatography or related techniques based upon selective absorption processes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/52Cytokines; Lymphokines; Interferons
    • C07K14/555Interferons [IFN]
    • C07K14/56IFN-alpha
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/50Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
    • C12N9/64Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue
    • C12N9/6421Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue from mammals
    • C12N9/6424Serine endopeptidases (3.4.21)
    • C12N9/6427Chymotrypsins (3.4.21.1; 3.4.21.2); Trypsin (3.4.21.4)
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/81Carrier - bound or immobilized peptides or proteins and the preparation thereof, e.g. biological cell or cell fragment as carrier
    • Y10S530/811Peptides or proteins is immobilized on, or in, an inorganic carrier
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/81Carrier - bound or immobilized peptides or proteins and the preparation thereof, e.g. biological cell or cell fragment as carrier
    • Y10S530/812Peptides or proteins is immobilized on, or in, an organic carrier

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

442492 A7 B7 經濟部中央標準局員工消費合作社印製 五、發明説明() 本發明有關用銅螯合-親和力層析術之蛋由質新純化方 法。 銅螯合物-親和力層析術係利用將蛋ή質之易接近之電 子供予基(例如組胺酸)連結在銅離子上(用螯合基共價 附在靜止撐體上)之方法完成。單獨一個易接近之組胺酸 之存在通常足夠讓蛋白質吸附在一銅(II)-IDA-螯合物h ( IDA =亞胺二乙酸酯)。蛋白質在銅螯合物-親和力層析中之停留 視可與金屬交互作用之蛋白質上之側基之數目及種類而 定。交互作用係受各種獨立變數像pH、溫度、溶劑種類、 鹽種類及鹽濃度影響。在中性或低鹸性pH範圍內與銅螯合 物結合之蛋白質通常利用一競爭性試劑之漸減之pH梯度 (連續或逐步)或漸增之濃度梯度(連續或逐步)溶析, 例如用路易士鹸像咪唑溶於緩衝液之溶液溶析·或者,第 三個可能的溶析方法包括一溶析液中之螯合物(像 EDTA) ° 然而,這些方法有幾個缺點: •低選擇性,即在相同條件下可析出數個蛋白質 •低濃化 •蛋白質與高濃度銅(II)離子共溶析,若使用競爭性或螯合 試劑 •需要另外之純化步驟以去除溶析液 *爲了提高選擇性,通常必須使用連續梯度溶析期望之蛋 白質。 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS)A4规格(210 X 297公釐) ......................裝..............:-訂...........::.4 (請先閲讀背面之注意事項蜞寫本頁) 442492 經濟部中央標準局員工消費合作社印製 A7 B7 五、發明説明() 例如在蛋白質使用一競爭性或螫合試劑溶析之情況,析出 液含蛋白質、競爭性或螯合試劑及釋出之銅(Π)離子。所 以,競爭性試劑及銅(II)離子必須利用額外之純化步驟去 除,而且,許多蛋白質在溶液中含高濃度銅(II)離子下不安 定(氧化作用)或在低pH値下不安定(沉澱作用),且 失活。 〜 本發明現在提供一特別有利之從銅螯合物-複合物中溶 析蛋白質之方法。利用本發明方法,驚異地可用去離子水 (其可選擇性地含額外之蛋白質安定劑)溶析期望之蛋白 質。使用去離子水有幾個優於先前技術之優點: •不使用競爭性或螯合試劑,所以不需要額外之純化步驟 •期望之蛋白質不與可能引起氧化問題之高濃度銅(Π)離子 共溶析 •期望之蛋白質在可能引起沉澱或失活問題之低pH値下不 析出 •期望之蛋白質以特別高純度及高產率回收 •溶析可利用一步驟實施,而不使用一梯度(連續或逐 步) •析出之蛋白質不用另外處理即可儲存。 發明詳述 本發明有關提高蛋白質濃度之方法,該方法包括以下 之步驟: a)將不純或純化前之蛋甶質吸附在固定之銅(II)離子上, .......................裝........^.......’玎...............^ (請先閲讀背面之注意事Ϊ5填寫本頁) 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS>A4规格(210X 297公釐) 442492 A7 B7 經濟部中央標準局員工消費合作社印製 五、發明説明() b) 用一路易士鹼溶液淸洗吸附之蛋內質,及 c) 用去離子溶析期望之蛋白質。 銅(II)離子通常固著在一靜止撐體(例如,無機載體像 矽石或聚合基質)上。 靜止撐體必須可與銅(II)離子形成螯合物·•此靜止撐體 之實例爲那些,其中之螯合基(像亞胺乙酸(IDA)、Ν,Ν,Ν·-查 (羧甲)·伸乙二胺(TED)、羧甲基化之天冬胺酸(CM-ASP)、四伸 乙基五胺(ΤΕΡΑ)、氮乙酸(NTA)或羧甲基化之οφ·二胺琥珀酸 (CM-DASA))共價結合在靜止撐體上者。螯合基可直接或經 由間隔基附在靜止撐體上。聚合載體可爲任何傳統用於金 屬離子-親和力層析術之聚合化合物此類聚合材料之實例 包括瓊脂糖、葡聚糖或其它合成聚合物;偏愛者爲瓊脂糖 及乙烯基聚合物。有共價附著之螯合基之製備方法係描述 在,例如,Hochu】i,CHIMIA (1986),40, 408 - 412 (亦參見 Figueroa et al., J. Chromatography (1986), 371, 335 - 352 ; Porath, Protein expression and purification (1992), 3, 263 - 281 i L. KSgedal in "Protein Purification, principles, high resoluton methods and applications" Janson and Ryden Eds. (1989), 227 - 251, VCH Publishers, New York)。在本發明之一偏愛 之具體實施例中,靜止撐體可在1 -200,且更適宜在10-100 微摩爾/毫升靜止撐體之濃度下,與銅(II)離子形成螯合 物。 適合使用在本發明中之聚合載體亦可在市面上購得, 像: 本紙張尺度適用中國S家標準(CNS)A4規格(210X297公釐) .......................裝...............V...............-'# (請先閲讀背面之注意事項%寫本頁) 442492 A7 B7 經涛部中央標準局員工消費合作社印裝 五、發明説明() •蜜合之西法露快流(Chelating-Sepharose Fast Flow)® ( Pharmacia 公司,Uppsala),其中間隔基上之亞胺二乙酸基係利用 安定之酸連接鍵稱合至西法露快流(Sepharose Fast Flow) 上; •螯合之西法露 6B (Chelating-Sepharose 6B)® ( Pharmacia 公司, Uppsala);及 • TSK Toyopearl AF-Chelate-650 Μ® ( TosoHaas 公司,Stuttgart), 其中亞胺二乙酸基係固著在一由寡乙二醇、甲基丙烯酸 縮水甘油酯及二甲基丙烯酸異戊四酯之共聚物製成之親 水性半硬靜止撐體上。 銅(U)離子固定前,靜止撐體通常要淸洗。例如,靜止 撐體連續用M0,較適宜者爲3-7倍床體積之5-50%,較適宜 者爲10-30%乙醇;1-10,較適宜者爲3-7倍床體積之去離子 水;M0,較適宜者爲3-7倍床體積之0.01-0.1M,較適宜者爲 0.03-0.07 M EDTA 及 0.1-1 Μ,較適宜者爲 0.3-0.7 M NaCl ; M5, 較適宜者爲3-1〇倍床體積之去離子水清洗;最後用1-10,較 適宜者爲3-7倍床體積之0.01-1%,較適宜者爲0.05-0.5%甲酸及 1-15,較適宜者爲3-10倍床體積之去離子水淸洗。這些淸洗 溶液之流率通常爲每小時1-50,較適宜者爲5_20倍床體積。 銅(II)離子在以上之靜止撐體中之固著可簡單地用銅離 子充滿靜止撐體之方法達成。常見之銅(II)離子源爲銅(Π) 鹽,像CuCl2、CMCHgCOOh及特別是CuS04 "通常使用M0,較 適宜者爲3-7倍床體積之0.001-0.1\1,較適宜者爲0.003-0,11^之 CuS04x5H20水溶液,隨後將靜止撐體用大過量之水淸洗, (請先閱讀背面之注意事項再填寫本筲) 、-° 丁 ·- 本紙張尺度適用中國國家標芈(CNS ) Λ4規格(210 X 297公婕) -7- 442492 Λ7 Β7 經濟部中央標準局負工消费合作社印製 五、發明説明() 以消除剩餘之未結合銅離子。如是製備之含固著之銅(Π)離 子之靜止撐體立即可用於本發明之方法中。 視靜止撐體、含蛋白質之溶液之pH及離子強度而定, 有時在充塡含蛋白質之溶液前,較適宜用一有相同PH及離 子強度之溶液處理,以避免吸附蛋白質時發生膨脹或收 縮。此一處理之必要性可利用一小規模試驗很容易地檢 查。此預處理可將M0,較適宜者爲3·7倍床體積之處理溶 液流過靜止撐體而達成。 蛋白質經由螯合物之形成在以上製備之靜止撐體上之 吸附係簡單地將一含蛋白質之溶液載入含固著之銅(Π)離子 之管柱中而達成。 蛋白質溶液可得自各種來源,且可預純化或未預純 化。例如,若要單離之蛋白質被宿主分泌至培養液內,例 如,可在離心後直接將培養液加於靜止撐體。若蛋白質在 宿主內產生及儲存,細胞必須破壞且含蛋白質之溶液必須 從細胞碎屑中分離出,例如利用離心法。如此得到之含蛋 白質之溶液可如上所述直接加入靜止撐體中,或可進一步 純化,例如利用技術上熟知之沉澱、萃取或層析法。因 此,含蛋白質之溶液可得自各種來源,且其可能含各種不 純物,像離子物種、外來蛋白質等。 蛋白質是否可用本發明方法純化可輕易地在一小規模 試驗中決定,其中蛋白質係吸附在少量充塡銅(Π)之靜止撐 體上,用如下定義之路易士鹸處理,接著決定可用去離子 水溶析之蛋白質量,並與可用2MNH4C1溶析之蛋白質量比 (婧先閲讀背面之注意事項再填寫本頁) 裝- 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS ) Λ4规格(210X297公釐} -8 - 442492 經濟部中央樣準局員工消費合作社印黎 A7 B7 五、發明説明() 較。通常,本發明方法可應用於以如下定義之路易士鹸不 完全破壞該蛋白質與銅(Π)離子間之複合物爲特徵之蛋白 質。偏愛之蛋白質爲干擾素、澱粉酶、胰蛋甬酶及相關之 蛋白質。特別偏愛者爲干擾素-α、胰蛋白酶及〇t-源粉酶。 要載入靜止撐體上之含蛋白質溶液之量係決定於固著 在此靜止撐體上之銅(Π)離子濃度、溶液中之蛋白質濃度及 蛋白質性質。所以,要載入之適當溶液量係靠經驗決定, 使用一檢測器(像紫外光監測器)觀測流出液。 本發明之一重要步驟爲用去離子水溶析前,用路易士 鹼淸洗吸附在靜止撐體上之蛋白質。路易士鹼爲一電子對 予體像胺、HCT、磷烷或膦。實例爲NH3、CH3NH2、 (CH3)2NH、(CH3)3N、(^(CH+N、C2H5NH2、(QH^NH、 (C2H5>3N、CjH7NH2、C4H9NH2、C5HUNH2、C6H13NH2、CH3PH2、 (CH4PH、(CHAP、胺基酸、胱胺酸、帶有羥基之胺像 HOCH2NH2、(HOCHANH 或(HOCH2)3N、HOC2H4NH2、(HOQH^NH 或(HOQHAN ;或爲 TRIS-HC1。 在本發明之一偏愛之形式中,路易士鹼溶液含中性或 低鹸性pH範圍之NH/或第一、第二或第三胺、或高鹸性PH 範圍之OH·。在本發明之一更偏愛之具體實施例中,路易士 鹼溶液含NH/或第一、第二或第三胺,且最偏愛者爲一含 NH4+或第一胺像乙醇胺、胱胺酸、nh4SCN、NH4C1、 NH4+CH3COCT、(NH^SCX» 或 TRIS-HC1 之溶液。 本紙張尺度適用中國國家標华(CNS ) A4規格(210X 297公嫠)
It ^^^^1 I . ml fluv ti 1^1^1 1 rr (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) -9- 442492
經濟部中央標準扃員工消費合作社印I A7 B7 五、發明説明() 爲了不使路易士鹼溶液溶析期望之蛋白質,可調節路 易士鹼之濃度或含路易士鹼溶液之pH。適宜之胺(路易士 鹼)之濃度範圍爲從0.001至 路易士鹼之最佳濃度強烈地決定於電子予體。例如, 在胱胺酸之情況,最佳濃度爲ImM,然而在NH4C12情況, 最佳濃度爲300-500 mM。數種鹽之最佳濃度爲,例如, Nl^SCN 爲 10-100 mM,NH4CI 爲 10-500 mM,NH4(CH3COO)爲 10-800 mM或更高及(NH4>2S04爲10-500 mM或更高。 在使用胺爲路易士鹸之情況,pH宜調成pH 6-9;更適宜 者爲6.5-8.5 ;且最適宜者爲7·0-8.0。在使用OH_爲路易士鹸之 情況,pH宜調成9-11,例如用硼酸鹽或磷酸鹽緩衝液。 亦可使用不同路易士鹼之混合物以改進結果,或額外 加入非路易士鹼之鹽像NaCl或KC1。額外鹽之濃度可高至 5M,且較適宜者爲高至2M。 典型上,已吸附蛋白質之靜止撐體係用M0或較適宜者 爲3-7倍床體積之上述之淸洗溶液淸洗。流率係由經驗決 定,且爲,例如,1-10或較適宜者爲3-5倍床體積/小時。 上述之淸洗步驟最好是恰在蛋白質用去離子水溶析前 實施。亦可在載入蛋白質同時進行此淸洗步驟,倘若其後 立即實施溶析步驟。 期望之蛋白質可在用如上述之路易士鹸淸洗後溶析, 簡單地用去離子水淸洗靜止撐體。爲了得到高純度,去離 子水不可含超過0.001M之離子化合物。相反地,去離子水 可含非離子化合物,例如,以安定蛋白質之第三或第四結 本紙張尺度通用中國國家標隼(CNS ) Λ4規格(210X297公釐) H. (^^1 d— rp^^i n^i i . <m n^i ] i ri. I* (請先閲讀背面之注意事項再填寫本頁) -10- 442492 A 7 B7 五、發明説明() 構。適合之非離子化合物爲’例如’糖或多醇像甘露糖 醇、葡萄糖、乳糖、果糖、甘油、聚乙二醇:或含維持蛋 白質之锍基氧化態之其它化合物。去離子水之用量宜爲1-10,且更適宜者爲3-7倍床體積。 在本發明之方法中,大多數與靜止撐體特異結合之外 來蛋白質不被去離子水溶析。其仍然被吸附,且其後可使 用傳統溶析溶液(例如2M NH^Cl在25 mM TRIS-HC1緩衝液 中,pH7.6)去除。所以,造成之產物濃化特別高。例如, 對干擾素-αΒΛΒ:^之情況,產物純度高至大約90% (由30% 純度之吸附溶液開始),然而先前技術銅螯合物-親和力層 析術達到之純度僅爲30-50°/〃 經濟部中央標準局負工消費合作社印製 n - -- « HI ^^^1 —I» I 111. 1 nf n^i m n^i ^1.^1 El--SJ1 (請先閲讀背面之注意事項再填寫本頁) 爲了使期望之蛋白質達到最佳純度及回收,可在蛋白 質吸附步驟與用路易士鹸淸洗步驟間選擇性地加入一或多 個用適當緩衝液(像硼酸鉀緩衝液)及/或用去離子水之 額外淸洗步驟。因此,在本發明之一更偏愛之具體實施例 中,被吸附之蛋白質係用非路易士鹸緩衝液淸洗,及/或 在用路易士鹼溶液淸洗前用去離子水淸洗。此發現是驚人 的,因爲淸洗步驟及溶析步驟可利用相同手法(即去離子 水)進行。 此使用去離子水之中間淸洗步驟是有效的,例如,用 於消除副產物,特別是那些經由疏水性交互作用(及非經 特異之銅離子親和力)與靜止撐體結合者。 由其它基於銅(Π)螯合物之純化程序得知,單離蛋白質 之溶液可含極少量銅(Π)離子。這些離子可利用技術上已知 本紙張尺度適用中國國家操準(CNS〉Λ4規格(210X297公嫠) -11 - 442492
經濟部中央標準局負工消費合作社印製 五、發明説明() 之方法(像離子交換或銅(II)離子螯合管柱)輕易地去除。 後一個純化步驟可各別進行或,例如,緊接在管柱下半部 塡滿銅(II)離子去除材料後進行。 純化後,銅充塡之靜止撐體可淸洗或及用於另一純 化,或爲了得到可再現之結果,銅(U)離子最好用一競爭性 螯合劑(例如EDTA)從靜止撐體中去除,接著將靜止撐體 再度如上述地塡滿銅(Π)離子》 實施例 實施例1 : IFN-B/D之純化 基因重組之人類雜交干擾素(以下稱爲IFN-B/D)係如專利案EP-A-205404中所述而建造。IFN-B/D係利用 啤酒酵母菌菌株HT 393產生,其相當於海因梅爾(Heinemeyer) 等人發表之 E 95-1-2A (EMBO Journal (1991),10, 555-562; DSM 9697),且其用質體pDP34R/PH05/IFNAM119轉形。酵母菌載體 PDP34R及酵母菌酸磷酸酶基因啓動子PH05參見海連(Hinnen) 等人(在:"Yeast Genetic Engineering' Barr et al.,Eds, Butterworths, Boston (1989), 193-213 中)。IFN AM119 爲 IFN-B/D 之編碼序列, 且參見專利案EP-A-205404。 含編碼IFN-B/D之基因重組質體之酵母菌菌株HT 393在 大發酵槽中生長。發酵完全後,將生物量利用離心收集。 將得到之細胞沉澱物用含0.5 M NaCl之0.07 Μ磷酸鉀緩衝液 (ρΗ7)稀釋成5〇%之濕綑胞濃度。當細胞流過一玻璃珠硏磨 器打碎後,利用一含40% (重量百分比)細胞勻漿、18% nn mt tut n 1 «^—^1 T4 -¾ i (請先閲讀背面之注意事項再填寫本頁) 本紙张尺度適用中國國家標隼(CNS ) A4规格(210 X 297公嫠) -12- 442492 經濟部中央標準局貝工消費合作社印褽 A7 B7 五、發明説明() (重量百分比)聚乙二醇1500、4% (重量百分比)磷酸鉀 (pH 7)及總濃度1摩爾/公斤之NaCl之水性兩相系統中分 配,將IFN-B/D蛋白質從細胞勻漿萃取出。在流過轉速815〇 rpm(13000g)之離心盤架分離爲相分離後,收集上層相,並 在第二個水性兩相系統中分配淸洗(第二個系統係將4份 (重量百分比)上層相及1份(重量百分比)含20% (重量 百分比)磷酸鉀(pH 7)之1摩爾/公斤NaCl溶液混合而 成)。在一沉降槽中相分離後,將IFN-B/D從新的上層相利 用在第三個水性兩相系統中反萃取而回收(第三個系統係 將3份(重量百分比)第二個兩相系統之上層相及7份(重 量百分比)1.56摩爾/公斤硫酸鎂溶液混合而成)。在一沉 降槽中相分離後,將重相收集,用雙倍體積的水稀釋,經 由一 〇.2μ濾網過濾,然後在利用銅螯合物層析術加工前, 在4°C下儲存數天。 此吸附溶液具有以下之特性:PH5.6,電導度約43mS/ cm (主要爲MgS〇4所致),聚乙二醇濃度6毫克/毫升,IFN-B/D濃度約0.1-0.5毫克/毫升,IFN-B/D純度約30%之總蛋白 質含量。 銅螯合物層析術係在室溫下,使用一充塡100毫升螯合 之西法露快流(Chelating-Sepharose Fast Flow)® ( Pharmacia 公司, Uppsala)之管柱(直徑44毫米)實施。將靜止撐體連續用下 列溶液淸洗:5倍床體積之2〇%乙醇、5倍床體積之去離子 水、5倍床體積之0.〇5MEDTA及0.5MNaCl、5倍床體積之0.25 MNaOH及lMNaCl、7倍床體積之去離子水、5倍床體積之 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS ) Λ4規格(210Χ297公麓〉 I i 裝— I I I I I 訂—— (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) -13- ^ 442492 A7 B7 五、發明説明() 0.1%甲酸及7倍床體積之去離子水,流率爲每小時12倍床體 積。然後將靜止撐體充滿銅離子,加入5倍床體積之0.008M CuS(>r5H20溶液,並用大量去離子沖洗,以消除剩餘之未結 合之銅。在吸附步驟前,將管柱用5〇〇毫升緩衝溶液使之平 衡,該緩衝溶液係由〇.68MMgS04& 0.092M醋酸鈉(pH用醋 酸調成5.6)組成,具有大約與吸附溶液相同之電導度,即 43mS/cm。然後將一體積爲5000毫升之IFN-B/D吸附溶液以300 毫升/小時之流率加入管柱中。流出液係利用一設定在28〇 塵米波長之紫外光監測器監控= 裝塡後,在500毫升/小時之流率下連續進行三次淸 洗:第一次用500毫升之已在吸附前使用過之平衡緩衝液(PH 5.6),第二次用500毫升去離子水及第三次用500毫升之含02 M NH4CI 及 1 M NaCl 之 0.025 M TRIS-HC1 緩衝液(pH 7.6)。然後將 IFN-B/D再度簡單地使用400毫升去離子水,在500毫升/小 時之流率下析出"將利用紫外光監測器監控之三次淸洗液 及水析出液收集。 經濟部中央標準局員工消費合作社印製 ---.- — - - 1^1 111 m - - 1^1 In _ In ιϊ·^f (請先閲讀背面之注意事項再填寫本頁) 吸附溶液、三次淸洗液及水析出液中之IFN-B/D濃度係 利用反相高效液相層析術(HPLC)分析測量(管柱:VydaeO 18, 30塵米,粒子大小5ιη;移動相A: 0.1%三氟乙酸水溶 液,移動相B: 80%乙腈、19.91%水及0.09%三氟乙酸;流率1 毫升/分;注射體積〇.〇5毫升;在216塵米下實施紫外光檢 測)。 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS ) Λ4規格(210X297公釐} -14- 442492 經濟部中央橾準局貝工消費合作社印製 A7 B7__ 五、發明説明() 在三個淸洗液中發現之IFN-B/D量可忽略不計。出乎意 料地,發現水析出液中含回收產率約70%之IFN-B/D,且具有 高純度:大約90%之總蛋白質含量(即IFN-B/D加濃3倍)。 這種水溶析是特別驚人的,因爲在第二個淸洗液中未 發現IFN-B/D (回收產率小於5%),其完全由相同液體(即 純水)組成。 在低鹽濃度及大約8之pH値下有特別高IFN-B/D濃度 (大約1毫克/毫升)之水析出液在4°C下儲存時是安定 的;經過數天未發生IFN-B/D沉澱。 實施例2 :利用水溶析得到之各個IFN-B/D溶液之特性 IFN-B/D水溶液係利用類似於實施例1中描述之水溶析得 到,但改變溶析所用之水體積及/或恰在水溶析前之淸洗 步驟所用之緩衝液之組成。 第一個IFN-B/D溶液係使用與實施例1相同之淸洗緩衝液 (含 0.2 M NH4C1 及 1 M NaCl 之 0.025 M TRIS-HC1 緩衝液(pH 7.6)),且僅使用大約0.67倍床體積之去離子水溶析獲得。 第二個IFN-B/D溶液係使用含0.2 MNH4CI之0.025 Μ磷酸鉀 緩衝液(pH 7.6)爲淸洗緩衝液及1.5倍床體積之去離子水爲溶 析液獲得。 第三個IFN-B/D溶液係使用0.025 M TRIS-HC丨緩衝液(pH 7.6) (不含NH4CI及NaCl)爲淸洗緩衝液及4倍床體積之去離子水 爲溶析液獲得。三個IFN-B/D溶液之特性列於表1中。 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS ) Λ4現格(210X297公釐} nn l —It Mrnf ^^^1 n If ^ (請先M讀背面之注意事項再填寫本頁) -15- 442492 A7 B7 經濟部中央樣準局員工消費合作社印製 五、發明説明() 表1 :利用水溶析得到之各個IFN-B/D溶液之特性 麵之淸_衝液 IFN-B/D 濃度 (毫克/毫升) pH 電導度 (mS/cm) 0.025 M TRIS-HC1 pH 7.6 + 0.2 M NH4C1 + l.OMNaCl 7.0 8.8 11.3 0.025 M磷酸鉀 pH b + 0.2 M NH4CI 2.5 7.6 7.4 0.025 M TRIS-HC1 pH 7.6 1.5 8.2 0.4 第一個溶液有特別高的干擾素濃度(7毫克/毫升), 且發現在4°C下儲存時驚異地安定;經過一夜未發生IFN-B/D 沉澱。比較上,純IFN-B/D在(UM磷酸鉀緩衝液(pH7.6)中或 在0.1 Μ碳酸氫鈉緩衝液(pH 8.0)中之溶解度低於0.5毫克/毫 升。 第二及第三個溶液在4°c下儲存數天。1週後,利用反 相高效液相層析術分析測量(如實施例1中所述),發現這 兩個溶液中之干擾素濃度未改變。在第三個溶液之情況, 此安定性特別驚人,其在高至1.5毫克/毫升之干擾素濃度 下,有非常低的鹽濃度(電導度<〇.5mS/cm)。 實施例3 : IFN-B/D溶析之回收產率之估計 實驗係在室溫下,使用一 FPLC®層析術系統(Phannacia 公司,Uppsala)及一充塡5毫升螯合之西法露快流(〇^对^-Sepharose Fast Flow)® ( Pharmacia 公司,Uppsala)之玻璃管柱(直 徑10毫米)實施。所有泵經管柱之溶液之流率設定在60毫 升/小時。流出液係利用一波長設定在280塵米之紫外光監 測器監控。靜止撐體之再生及製備係如實施例1中所述實 施,連續將以下之溶液泵經管柱:25毫升之0.05MEDTA及 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS) A4規格(210X297公嫠〉 ^^1- m ^^^1 ^^^1 ^^^1 ^^^1 —^^1 mV nn mV n tetMMt ^ J (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) -]6- ;442492 Α7 Β7_____ 五、發明説明() 0.5 M NaCl、25 毫升之 0.25 M NaOH 及 1 M NaCl、35 毫升去離子 水、25毫升之0.1%甲酸、35毫升去離子水、25毫升之〇⑽8M CuS04x5H20及40毫升去離子水。 在第一個實驗中,將大約80毫升之純IFN-B/D(純度: 99.9%之蛋白質含量;濃度:大約0.3毫克/毫升)溶於0.2M 甘露糖醇及0.03M磷酸鈉(PH7.6)之溶液載入管柱中。用35毫 升之0.3M氯化銨緩衝液(pH7.6)淸洗後,使用35毫升去離子 水析出干擾素。然後,將一 35毫升體積之含2M氯化銨之 0.025MTRIS-HC1緩衝液(PH7.6)泵經管柱,以確定所有仍結合 在靜止撐體上之干擾素之溶析<收集液之干擾素濃度係利 用反相高效液相層析術分析測量,如實施例t中所述。得到 之相當回收產率列於表2中。 重覆相同實驗,但使用0.1M硼酸鉀(pH7.6)爲淸洗緩衝 液取代0.3 Μ氯化銨(pH7.6)。結果亦列於表2中。 表2: IFN-B/D溶析之回收產率 使用之淸洗 緩讎 用淸雛酿 析出之% 用氏〇 析出之% 用 2 M NH4CI 析出之〇/〇 0.3 Μ ΝΗ,ΟΙ pH 7.6 0 92 8 o.l Μ硼酸押pH 7.6 0 9 | 91 經濟部中央標準爲貝工消費合作社印製
In'— ^^—^1 ^^^1 HI ·^低^~4— tn ,~aJ (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) 如表2中所示,恰在溶析前之淸洗步驟使用之緩衝液之 組成大大地影響用水之溶析。 實施例4 :淸洗步驟之影馨 進行數次與實施例3中相同之實驗,僅改變淸洗緩衝液 之組成。各個測試之淸洗緩衝液及得到之相當之回收產率 列於表3中。 本紙張尺度適用中國國家標率(CNS ) A4規格(2丨0 X 297公痠) -17- 442492 A7 B7 五、發明説明() 表3: IFN-B/D溶析之回收產率 使用之淸洗 用淸洗緩衝液 用h2o 用2 Μ卿(:1 緩衝液 析出之% 析出之% 析出之% 0.1 Μ mmm pH 7.6 0 9 91 0.1 Μ 硼麵 pH 8.5 0 35 65 0.1 M ISM pH 9.5 0 66 34 0.3 Μ ㈣ pH 7.6 0 26 74 0.3 Μ 醋藤 pH 7.6 0 85 15 0.2 Μ N(CH3)4C1 pH 7.6 0 12 88 0.2 Μ 三乙醇胺 pH 7.6 0 68 32 0.2 Μ 二乙醇胺 pH 7.6 0 70 30 0.2 Μ 乙醇胺 pH 7.6 0 82 18 0.3 Μ nh4ci pH 7.6 0 92 8 0.001 Μ臓酸 pH 7.6 0 ΊΊ 23 0.5 Μ ΝΗ4〇 pH 7.6 19 72 9 (請先聞讀背面之注意事項再填寫本頁) 經濟部中决榇準局員工消费合作社印策 如表3中所示,用水溶析得到好的產率(高於60%), 若淸洗緩衝液之pH値在鹼性範圍內(例如用0.1M硼酸鉀(pH 9.5)),或若淸洗緩衝液含一接近中性pH値之胺或銨鹽(例 如用〇·3Μ醋酸銨(PH7.6),而不是用0.5M醋酸鉀(pH7.6))。 在此情況,胺可爲第一胺(例如乙醇胺)、第二胺(例如 二乙醇胺)或第三胺(例如三乙醇胺),但不能爲第四胺 (例如氯化四甲敍)。淸洗緩衝液之最佳濃度大大地視使 用之胺而定:例如在胱胺酸(pH 7.6)之情況約1 mM,或在 NH4CI (pH 7·6)之情況爲 300^500 mM。 實施例5 :路易士鹼處理後之第二淸洗步驟之影響 重覆實施例3中描述之相同實驗,但在用35毫升之0.3M 氯化銨緩衝液(pH7.6)進行之第一淸洗步驟與用水溶析間插 丁 本紙張尺度適用中國國家標隼(CNS ) Μ規格(210_乂297公釐) -18- 442492 A7 B7 五、發明説明() 入用35毫升之0.1M硼酸鉀(pH7.6)進行之第二步驟。發現之 回收產率爲: 在第一次淸洗液中 (0.3 M NH4C1 pH 7.6): 0% 在第二次淸洗液中 (0.1 Μ 硼酸鉀 pH 7.6): 0% 在第一次析出液中 (水) 22% 在第二次析出液中 (2M NH4C1 + 0.025M TRIS-HC1 pH 7.6): 78% 經濟部中央標準局員工消費合作社印製 在水析出液中發現少量的IFN-B/D。但儘管在第一次淸 洗步驟中存在銨離子,得到之回收產率仍低(大約22%), 表示恰在溶析前之淸洗步驟有較高影響。 實施例6 :無淸洗步驟之IFN-B/D溶析之回收產率 重覆實施例3中描述之相同實驗,但在吸附歩驟與用水 之溶析步驟間無淸洗步驟。 第一次實驗係完全使用實施例3中提到之相同之載入溶 液(0.3毫克/毫升IFN-B/D在0.2M甘露糖醇及0.03^I磷酸鈉 (pH7.6)中)進行。然後第二次實驗亦用相同之載入溶液進 行,但額外含濃度爲0.3摩爾/升之氯化銨。得到之相當之 回收產率列於表4中。 表4: IFN-B/D溶析之回收產率(無淸洗步驟情況) 載入緩衝液 用邮 析出之% 用 2 M NH4C1 析出之% 〇·〇3 M 碟_ pH 7·6 + 0·2 M 甘露糖醇 37 63 0.03 Μ pH 7.6 + 0.2 Μ 甘露糖醇 + 0.3MNH4C1 95 5 如表4中所示,恰在溶析前之載入緩衝液之組成大大地 影響用水之溶析。 本紙浪尺度適用中國國家標隼(CNS ) Λ4規格(210X297公釐) Γ- -1 ti —^ϋ mi f a^n— eJ (請先閱讀背而之注意事項再填寫本頁) -19^ 1 442492 Μ Β7 五、發明説明() 實施例7 :鹽析效應之影響 部份純IFN-B/D (純度:大約90%之蛋白質含量)之水溶 液係利用類似於實施例1中描述之方法,用水溶析獲得。將 此溶液部份冷凍,在大約-5至-10°C下儲存,並在使用前解 凍。 I -=: - J l^ii ^^^1 -I n I- I - ti ft— ^^^1^iJ (請先閲讀背面之注意事項再填寫本頁) 此儲液之組成爲 • IFN-B/D: 0.5-1毫克/毫升 TRIS-HC1: 大約0.02 Μ NaCl: 大約0.01 Μ 醋酸鈉: 大約0.01 Μ NH4C1: 大約0.002 Μ Cu2+: 大約ΙμΜ pH: 8 電導度: 2.2 mS/cm 經濟部中央標準局員工消費合作社印製 進行數次與實施例3中相同之實驗,載入50毫升之此儲 液,並僅改變淸洗緩衝液之組成。各個測試之淸洗緩衝液 及得到之相當之回收產率列於表5中。 表5: IFN-B/D溶析之回收產率 使用之淸洗 緩衝液 用淸洗緩衝液 析出之% 用h2o 析出之% 用2 Μ戰<:1 析出之% 0.025 M NH4SCN pH 7.6 0 84 16 0.1 Μ nh4scn pH 7.6 0 96 4 0.2 Μ NH4SCN pH 7.6 50 50 0 0.3 Μ NH4SCN pH 7.6 98 2 0 0.4 Μ NH4SCN pH 7.6 100 0 0 0.5 Μ nh4scn pH 7.6 100 0 0 0.025 Μ NH4C1 pH 7.6 2 97 1 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS ) Λ4規格(210X297公嫠) -20- 442492 Λ7 B7 五、發明説明() 0.1 Μ NH4CI pH 7.6 丨 0 100 0 0.2 Μ NH4C1 pH 7.6; 0 100 0 0.3 Μ NH4CI pH7.6| 0 96 4 0.5 Μ NH4CI pH 7.6: 8 91 1 0.8 Μ NH4CI pH 7.6: 19 81 0 0.025 Μ醋酸敍 ρΗ7.ό| 0 89 11 0.1 Μ 醋酸銨 pH 7.6| 0 97 3 0.5 Μ 醋難 pH7.6| 0 98 2 0.8 Μ 醋酸銨 pH 7.6; 0 ioo 0 0.025 Μ (NH4)2S04 pH 7.6; 0 80 20 0.1 Μ (NH4)2S04 pH 7.6| 0 98 2 0.2 Μ (NH^SCU pH 7.61 0 96 4 0.3 Μ 卿以04 pH 7.61 0 100 0 0.5 Μ (NH4>2S〇4 pH 7.6 j 0 97 3 (請先W讀背面之注意事項再填寫本頁) 經濟部中央標準局員工消費合作杜印製 所有測試之淸洗緩衝液爲PH7.6之銨鹽。用作相對離子 之陰離子係依照順序排在表5中,這些結果顯示破壞水結構 之趨勢(紊向效應),並造成疏水性交互作用強度之相對 降低(相對增加疏水性交互作用(鹽析效應)特別有效 者): 漸增之鹽析效應:SCN^Cl cO^COCnO广 如表5中所示: 一在NI^SCN之情況(低鹽析效應),若銨離子濃度太高(2 0-3M”則IFN-B/D直接用淸洗緩衝液析出。當NFUSCN之 濃度S0.1M時,水溶析得到高產率(>90%)。 —在NH4C1之情況,當NH4C1之濃度S0.5M時,水溶析得到 高產率。 一在醋酸銨之情況,可使用高至0.8M之濃度,且水溶析 可得到局產率。 丁 本紙張尺度適用中國國家標羋(CNS)A4规格(210X297公釐) -21 - 442492 經濟部中央標準局員工消費合作社印製 A7 B7 五、發明説明() 一在(NH4)2S04之情況(高鹽析效應),可使用高至1.0M之 銨離子濃度,且水溶析可得到高產率。 實施例8: pH及濃度之影響 重覆與實施例7相同之實驗,而改變淸洗緩衝液之組 成a各個測試之淸洗緩衝液及得到之相當之回收產率列於 表6中。 表6: IFN-B/D溶析之回收產率 使用之淸洗 緩衝液 用淸洗緩衝液 析出之% 用托〇 析出之% 用 2 M NH4C1 析出之% 0.025 Μ 醋_ pH 5.6 0 5 95 0.1 Μ 醋_ pH 5.6 0 9 91 0.25 Μ 醋_ pH 5.6 0 6 94 0.5 Μ 醋酸 pH 5.6 0 3 | 97 0.025 M TRIS-HC1 pH 5.6 0 21 79 0.1 Μ TRIS-HC1 pH 5.6 0 21 79 0.3 Μ TRIS-HC1 pH 5.6 0 22 78 0.5 Μ TR1S-HC1 pH 5.6 0 17 83 0.025 Μ TRIS-HC1 pH 7.6 0 62 | 38 0.1 Μ TRIS-HC1 pH 7.6 0 89 11 0.3 Μ TRIS-HC1 pH 7.6 1 89 | 10 0.5 Μ TRIS-HC1 pH 7.6 26 71 3 0.025 Μ TRIS-HC1 pH 7.6 0 98 I 2 + 1.7MNaCI 0.1 Μ TRIS-HC1 pH 7.6 0 98 2 + 1.7MNaCl 0.2 Μ TRIS-HC1 pH 7.6 10 89 ! 1 + 1.7MNaCl 如表6中所示: 本紙張尺度適用中國國家標苹(CNS ) Λ4规格(210X297公釐) ^^^1 —Bn· —^ϋ 111 i —-H n^i· In·! nn I 、 穿 i (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) 442492 Α7 Β7 五、發明説明() 一在醋酸鉀(pH 5.6)之情況(低pH値;不含胺)及在TR]S· HCi(pH5.6)之情況(低pH値:有胺存在),水溶析得到 之回收產率非常低。 —在TRIS-HC1 (pH 7.6)之情況(接近中性之pH値;有胺存 在),水溶析得到之回收產率佳(高於60%)。若胺濃 度太高(>〇.3M)’則直接用淸洗緩衝液產生IFN_B/D部份 溶析。若胺濃度太低(<0.1 M),則水溶析無法定量,且 剩餘量之 IFN-B/D 其後可使用 2 M NH4C1 + 0.025 M TRIS-HC1 緩衝液(ρΗ7.6)析出。這最後一個問題可利用NaC丨(濃度 爲1.7M)之加入而避免,NaCi將阻止靜止撐體與干擾素 蛋白質間之離子交互作用。 實施例9 :用梯度之溶析 進行與實施例7相同之實驗,使用0.1M TRIS-HC1 (pH 7.6) 爲淸洗緩衝液。水溶析得到之回收產率爲89%。IFN-B/D(11%) 之剩餘量隨後用2M NH4C1 + 0.025 M TRIS-HC1緩衝液(pH 7.6)析 出。 經濟部中央標準局貞工消費合作社印裝 ---------裝-- (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) 用相同之淸洗緩衝液(20毫升之0.1M TRIS-HC1 (pH 7.6)) 重覆此實驗,但在此淸洗步驟後,進行Π倍床體積(60毫 升)之從100%淸洗緩衝液至100%去離子水之線性梯度溶 析。將管柱另外用55毫升水沖洗,然後使用7倍床體積(35 毫升)之從 100% 水至 100% 之 2M NH4C1 + 0.025 M TRIS-HC1 緩衝 液(ρΗ7.6)之第二個線性梯度溶析。最後將管柱用15毫升之 此最後緩衝液沖洗。 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS } Λ4規格(210Χ29?公轉:} -23- 442492 經濟部中央標準局員工消費合作社印製 Α7 Β7 五、發明説明() IFN-B/D被發現在第一個梯度末端,在大約10至5ιηΜ TRIS-HCl(pH7.6)之相當濃度下析出,且回收產率爲60%。IFN-B/D (40%)之剩餘量在第二個梯度中段,在大約1M NH4C1 + 12.5 mM TRIS-HC1 (pH 7.6)之相當濃度下析出。 實施例10:溶析溶液之組成 重覆與實施例7相同之實驗,仍使用0.1M TRIS-HC1 (pH 7-6)之溶液爲淸洗緩衝液,但改變第一個溶析溶液之組成, 即水溶析之組成。各個測試之溶析溶液及得到之相當之回 收產率列於表7中。 表7: IFN-B/D溶析之回收產率 溶析溶液 電導度 (mS/cm) 用淸洗緩衝 液析出之% 用溶析溶液 析出之% 用 2MNH4C1 析出之% 去離子水 0.0012 0 89 11 0.001 MNaCl 0,17 0 45 55 0.003 M NaCl 0.36 0 18 82 0.005 M NaCl 0.59 0 2 98 0.001 Μ MES <0.03 0 59 41 0.010 Μ MES <0.03 0 0 100 0.002 Μ甘露糖醇 <0.03 0 87 13 0.010 Μ甘露糖醇 <0.03 0 77 23 0.5 Μ甘露糖醇 <0.03 0 90 10 2.7 Μ甘油 <0.03 0 65 35 如表7中所示: 水中殘留之鹽濃度必須極低(<0.001Μ),以得到回收產率 高於50%之IFN-B/D溶析。 未帶電荷之溶質如甘露糖醇或甘油可存在溶析溶液 中,甚至在高濃度下(在1Μ之範圍內),但兩性離子 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS ) A4規格(210X 297公釐) tut I ——^κ I Mu ml m HI \ 1· 淨-=5 (請先閲讀背面之注意事項再填寫本頁) -24- 442492 A7 B7 經濟部中央標準扃貝工消費合作社印聚 五、發明説明( ’ _2___軸)之濃度必須低 於0·001Μ’以得到良好的回收產率。 -溶析賴Μ導度不可腳_依據,以翻刪柳 溶析發生或不發生。
實施例 11 · jp^_D 實驗係用人類干擾素_αΒ(_)或用人類干擾素⑽ (1胸),浦施例3中描述之人類雜交干擾素·aBiD她㈣_ B/D)之方法實施,但使用僅充塡Q5毫升螯合之西法露快流 (Chelating-Sepharose Fast Flow)® ( Pharmacia 公司,Uppsaia)之較小 玻璃管柱(直徑5毫米)。泵經管柱之相當之流率及相當之 溶液體積縮小10倍a IFN-B及IFN-D (專利案EP-A-205404中描述之IFN-B/D之母 分子)係利用在酵母菌(啤酒酵母菌)中基因重組之DNA 表現,發酵’回收及部份純化而產生。 在 0_025 M TRIS-HC1 緩衝液(pH 7.6)中得到一 IFN-B 儲液, 其具有一〇.〇5毫克/毫升之干擾素濃度及與實施例7中描述 之IFN-B/D儲液大約相同之純度。
得到一 IFN-D儲液,其具有與實施例1中描述之IFN_B/D 吸附溶液相同之組成及大約相同之純度。 如實施例3中所述,載入管柱之干擾素係連續用一適當 緩衝液淸洗,用去離子水溶析及用含2M氯化銨之0.025 M TRIS-HC1緩衝液(pH7.6)溶析。收集液之干擾素濃度係利用反 相高效液相層析術分析測量,如實施例1中所述,且利用牛 細胞(Madin-Darby牛細胞)上對體外疱狀口炎病毒之生物抗 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS ) Λ4規格(2丨0X297公釐) I - i I i n ^^^1 ^^^1 . —m I -I HI— K) I --SJ (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) -25- 442492 Λ7 B7 五、發明説明() 病毒活性分析確定。各個測試之淸洗緩衝液及得到之相當 之回收產率列於表8中。 表8:丨FN-B或〗FN-D溶析之回收產率 IFN 使用之淸難衝液 用淸洗緩衝 液析出之% 用112〇析 出之% 用 2MNH4CI 析出之% IFN-BjO.lM TRIS-HC1 pH 7.6 0 53 47 ” ;0.3M TRIS-HC1 pH 7.6 39 61 0 ";0.3Μ 〇NfH4)2S〇4 pH 7.6 Ϊ8 82 0 〇·3 M 醋麟 pH 7.6 2 -------------------- 98 0 IFN-D|0.01M TRIS-HC1 pH 7.6 0 91 9 如表8中所示,IFN-B及IFN-D可用水析出。 經濟部中央標準局員工消費合作社印製 實施例12: 〇·殺粉酶及胰蛋白酶 實驗係用各種蛋白質實施,如實施例3中描述之IFN-B/D,使用相同之FPLC®層析術系統、相同量(5毫升)之螯 合之西法露快流(Chelating-Sepharose Fast Flow)®及相同之層析術 條件實施。 測試之蛋白質爲:得自桿菌屬之%澱粉酶(Sigma產品 N1380)、得自牛胰朦之胰蛋白酶(Serva產品N°37260)。各 實驗係利用裝入大約50毫升相當之蛋白質溶液(濃度〇.5毫 克/毫升)之方法,在0.01MTRIS-HC1緩衝液(pH7.6)中(若 使用TRIS-HC1爲以下之淸洗緩衝液),或在0.01M硼酸鉀緩 衝液(pH7·6)中(若使用硼酸鉀爲以下之淸洗緩衝液或取消 淸洗步驟)進行。 如實施例3中所述,載入管柱之蛋白質係連續用一緩衝 液(TRIS-HC1或硼酸鉀)淸洗,用去離子水溶析及用含2M 氯化銨之0.025\11^5_1«:1緩衝液印117.6)溶析。收集液之蛋白 H H I ^^1 —II- . ϋ^ρ ^^1 ^^1 ii‘·^ei (請先閲讀背面之注意事項再填寫本頁) 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS ) Λ4规格(210X297公嫠) -26- 442492 A7 B7 五、發明説明() 質濃度係利用Bio-Rad蛋由質分析法(Bio-Rad產品N° 500-0006,微量分析法)測量。測試之蛋白質及淸洗緩衝液,以 及得到之相當之回收產率,列於表9中。 表9:各個蛋白質溶析之回收產率 蛋白質 使用之淸洗緩衝液 用淸洗緩衝 液析出之% 用乐〇析 出之% 用 2M NH4C1 析出之% 0.010 M TRIS-HC1 pH 7.6 —0 _71 9 rt 0.025 M TR1S-HC1 pH 7.6 ——0…. 97 3 ” 0.050 M TRIS-HC1 pH 7.6 0 97 …―………3…………一.. " 0.100M TRIS-HC1 pH 7.6 5 89 6 0.300 M TRIS-HC1 pH 7.6 100 0 0 " ............................. 0.100 M 硼隨 pH 7.6 —.〇— 15 85 "|〇, 100 Μ 硼酸鉀 pH 9.5 0 ................... 100 〇 無淸洗緩衝液 一 22 78 胰蛋白酶 0.025 M TRIS-HCl pH 7.6 0 43 57 如表9中所示: (請先聞讀背面之注意事項再填寫本頁) 袈_ 經濟部中央標準局貝工消費合作社印製 一 α-殿粉酶(得自桿菌屬)可用水析出(回收產率:大約 90-100%),若淸洗緩衝液之pH値在鹼性範圍內(例如 用0.1M硼酸鉀(pH9.5)),或淸洗緩衝液含一接近中性pH 値及適當濃度之胺(例如用0.025 Μ至0.1 M TRIS-HC1 (pH 7.6))。 一胰蛋白酶(得自牛胰臟)亦可用水析出(回收產率高 於40% ),例如使用0.025 M TRIS-HC1 (pH 7.6)爲淸洗緩衝液。 實施例13 :層析介質 進行兩次與實施例7相同之實驗,仍使用0.1MTRIS-HC1 (pH7.6)爲淸洗緩衝液,但改變層析介質。 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS ) Λ4規格(210X297公釐) -27- 442492 A 7 B7 經濟部中央標準局員工消費合作社印製 五、發明説明() 第一個實驗使用之介質爲螯合之西法露快流(Chelating-Sepharose Fast Flow)® ( Pharmacia 公司,Uppsala ),如在實施例 1 至12中所用者。粒徑爲0.045-0.165毫米。螯合之西法露快流 (Chelating-Sepharose Fast Flow)包含間隔基上之亞胺二乙酸基, 係利用安定之醚連接鍵耦合至西法露快流(Sepharose Fast Flow)® : [西法露快流(Sepharose Fast F!ow)]-0-CH2-CHOH-CH2-〇-CH2-CHOH-CH2-N-(CH2COOH)2 基質-西法露快流(SepharoseFastFlow)-爲交聯之瓊脂糖。 第二個實驗使用之介質爲TSK Toyopearl® AF-Chelate-650 Μ (Tosohaas 公司,Stuttgart)。粒徑爲大約 0.065 毫米。TSK Toyopeari®爲一親水性半硬凝膠、一寡乙二醇、甲基丙烯酸 縮水甘油酯及二甲基丙烯酸異戊四酯之共聚物。配位子由 固著之亞胺二乙酸基組成。 每一個實驗之玻璃管柱(直徑10毫米)充塡5毫升各自 之凝膠。整合之西法露快流(Chelating-Sepharose Fast Flow)®介質 及TSK Toyopearl AF-Chelate-650 Μ®介質使用相同之再生及製備 方法(載入銅離子),如實施例3中所述。使用之IFN-B/D之 吸附溶液爲實施例7中描述之儲液。得到之相當之回收產率 列於表10中。在兩情況中,用水溶析得到高回收產率。 (請先W讀背面之注項再填寫本頁) 本紙張尺度適用中國國家標準(CNS ) Λ4规格(210 X 297公釐) 4424 9 2 at B7 五、發明説明() 表10:各個層析介質之IFN七/D溶析之回收產率(淸洗緩衝 液爲 0.1 M TR1S-HC1 (pH 7.6)) 層析介質 凝膠之基質 用淸洗緩衝 液析出之% 用呔〇析 出之% 用 2M NH4CI 析出之% 螯合之西法露 快流(Chelating-Sepharose Fast Flow)® 瓊脂糖 0 89 11 TSK Toyopearl AF-Chelate-650 "乙稀基聚 合物,型 0 100 0 微生物之寄存 以下之微生物菌株係寄存在德國菌體收集中心(DSM), 地址:德國,D-38142布朗席維格,馬歇歐得路1B(登錄號 及寄存日期如下): 啤酒酵母菌 HT 393 DSM 9697 27.01.1995 (請先閱讀背面之注意事項再填寫本頁) 裝 丁 *-° .¾. 經濟部中央標準局員工消費合作社印m 本紙張尺度適用中國國家標準(<^^)/\4規格(2丨0><297公婕) -29-

Claims (1)

  1. 4 4 2t 4 9 % '1
    A8 B8 C8 D8 is^j£:.: 六、申請專利範圍 L ~種提高干擾素濃度之方法,該方法包括下列步驟: a) 將不純或純化前之干擾素吸附在固定之銅⑼離子上, b) 用一含中性或低鹼性PH範圍之NH4+或箄一、第二或第三 胺、或高驗性pH範圍之OIT之路易士鹼溶液淸洗吸附之 干擾素,及 c) 用去離子溶析期望之干擾素。 2·如申請專利範圍第1項之方法,其中銅(π)離子係固著在一 靜止撐體上。 3·如申請專利範圍第2項之方法,其中靜止撐體爲瓊脂糖或 乙烯基型聚合物。 4·如申請專利範圍第1項之方法,其中路易士鹼溶液含NH/ 或第一、第二或第三胺。 5·如申請專利範圍第1項之方法,其中路易士鹸溶液含NH/ 或第一胺。 6. 如申請專利範圖第1項之方法,其中路易士鹼溶液含Off 在緩衝之pH範圍9·ί1。 7. 如申請專利範圍第1項之方法,其中路易士鹼係選自由乙 醇胺、胱胺酸、NH4SCN、NH4C1、NH/CH3COO·、(NH4)2S〇4 及 TRIS-HC1組成之一組。 各紙張尺度適用中國因家標隼(CNS ) A4规格(2丨公釐} - (請先Β讀背面之注意事項再填寫本1) 、1Τ 經濟部中央標準局員工消費合作社印裝 44249 2 Λ8 Β8 C8 D8 經濟部甲央標準局員工消費合作社印策 六、申請專利範圍 8. 如申請專利範屬第1項之方法’其中使用之路易士鹼之濃 度爲0.001至1 Μ。 9. 如申請專利範圍第1項之方法’其中路易士鹸溶液額外含 一或多種非路易士鹸之鹽。 10. 如申請專利範圍第9項之方法,其中額外之鹽爲Naa或κα〇 11. 如申請專利範圍第9項之方法,其中額外使用之鹽之濃度 尚至5 Μ。 12·如申請專利範圍第9項之方法,其中額外使用之鹽之濃度 高至2Μ。 I3·如申請專利範圍第4項之方法,其中路易士鹼係調至pH 6-9。 14.如申請專利範圍第1項之方法,其中去離子水不含超過 0.001 Μ離子化合物。 15·如申請專利範圍第1項之方法,其中干擾素之特徵爲路易 士鹼完全不破壞該干擾素與銅(Π)離子間之複合物-。 如申請專利範圍第1項之方法,其中干擾素爲干擾素-α。 表紙張尺度適用中國國家標率(CNS ) Α4规格(2丨ΟΧ297公釐) -31 - (請先Η讀背面之注意事項再填寫本頁) 訂 44249 2 it C8 D8 ------------------ --------— 六、申請專利範圍 π.如申請專利範圍第1項之方法,其中去離子水含非離子化 合物。 is.如申請專利範圍第1項之方法,其中去離子水含糖或多 醇。 19_如申請專利範圍第1項之方法,其中去離子水含甘露糖醇 或甘油。 20. 如申請專利範圍第1項之方法,其中被吸附之干擾素係用 一非路易士鹼緩衝液淸洗,及/或在用路易士鹼溶液淸 洗前用去離子水淸洗。 21. 如申請專利範圍第1項之方法,其中干擾素在固著之銅(II) 離子上之吸附及用一路易士鹼溶液之處理步驟係同時進 行c (请先E讀背面之注意事項再填寫本頁) 經濟部中央標率局貝工消費合作社印装 本紙張尺度適用中國國家橾準{ CNS ) A4说格(2丨ox 297公釐) -32- «a 11.'2 2' 蘇I 補充! 年 申請日期| 矜.7. ->r 水 號 85108439 別丨 C^K '/it ,ία 以上各襴由本局填註) 一~中文說明書修Ί£頁(89年11月) 發明 新型 專利説明書 -、發:名稱 祈型 中 文 提高干擾素濃度之方法 英 文 PROCESS FOR THE ENRICHMENT OF INTERFERON 姓 名 1. 皮瑞·凡可斯·佛魁克斯 2. 卡撒琳·庚歐格斯 _發明 ~"創作 國 籍 住、居所 1. 瑞士 2. 比利時 1. 瑞士,4053巴塞爾,貴德丁格街133號 2. 瑞士,4147埃詩,梨園9號 姓 名 (名稱) 瑞士商諾華公司 國 籍 瑞士 三、命請人 住、居所 (事務所) 瑞士巴塞爾市史克瓦司伍德利路215號 代表人 姓 名 亞瑟·凱能尼克 克里斯多夫·湯姆 O:\5d\565W X>C\MFY 小 疚尺度適用中國國家標隼(CNS _>八4規格(BOX:97公;t ) d 42 4^5^)8439號專利申請案 中文說明書修正頁(89年1丨月)
    四、中文發明摘要(發明U稱提高干擾素濃度之方法 本方法有關用銅螫合物-親和力層析術之蛋白質新純化方 法,其中不純或純化前之蛋白質吸附在固定之銅(II)離子 上’選擇性地用緩衝劑及去離子清洗,用一路易士鹼溶液 清洗,最後用去離子水溶析, 英文發明摘要(發明之名稱:PROCESS FOR ΤΉ£ ENRICHMENT OF INTERFERON The instant invention relates to a new method for the purification of proteins using copper chelate-affinity chromatography, wherein the impure or pre-purified protein is adsorbed on immobilized copper(II) ions, optionally washed with buffer and deionized water, washed with a solution of a Lewis-base, and finally eluted with deionized water. -----------裝---------,訂------- 線 (請先閱讀背面之洼意事項再填寫本頁各襴) 經濟部智慧財產局員工消费合作社印製 i-^559.DOC\MFY 本纸張尺度適用_國國家標率(CNS ) A4见楼 ( 210X297公釐) 4 4 2t 4 9 % '1
    A8 B8 C8 D8 is^j£:.: 六、申請專利範圍 L ~種提高干擾素濃度之方法,該方法包括下列步驟: a) 將不純或純化前之干擾素吸附在固定之銅⑼離子上, b) 用一含中性或低鹼性PH範圍之NH4+或箄一、第二或第三 胺、或高驗性pH範圍之OIT之路易士鹼溶液淸洗吸附之 干擾素,及 c) 用去離子溶析期望之干擾素。 2·如申請專利範圍第1項之方法,其中銅(π)離子係固著在一 靜止撐體上。 3·如申請專利範圍第2項之方法,其中靜止撐體爲瓊脂糖或 乙烯基型聚合物。 4·如申請專利範圍第1項之方法,其中路易士鹼溶液含NH/ 或第一、第二或第三胺。 5·如申請專利範圍第1項之方法,其中路易士鹸溶液含NH/ 或第一胺。 6. 如申請專利範圖第1項之方法,其中路易士鹼溶液含Off 在緩衝之pH範圍9·ί1。 7. 如申請專利範圍第1項之方法,其中路易士鹼係選自由乙 醇胺、胱胺酸、NH4SCN、NH4C1、NH/CH3COO·、(NH4)2S〇4 及 TRIS-HC1組成之一組。 各紙張尺度適用中國因家標隼(CNS ) A4规格(2丨公釐} - (請先Β讀背面之注意事項再填寫本1) 、1Τ 經濟部中央標準局員工消費合作社印裝
TW085108439A 1995-07-26 1996-07-12 Process for the enrichment of interferon TW442492B (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP95810485 1995-07-26

Publications (1)

Publication Number Publication Date
TW442492B true TW442492B (en) 2001-06-23

Family

ID=8221776

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
TW085108439A TW442492B (en) 1995-07-26 1996-07-12 Process for the enrichment of interferon

Country Status (13)

Country Link
US (1) US5990289A (zh)
EP (1) EP0840746B1 (zh)
JP (1) JP3833255B2 (zh)
AT (1) ATE278705T1 (zh)
AU (1) AU6700796A (zh)
CA (1) CA2226080A1 (zh)
DE (1) DE69633567T2 (zh)
DK (1) DK0840746T3 (zh)
ES (1) ES2227603T3 (zh)
PT (1) PT840746E (zh)
TW (1) TW442492B (zh)
WO (1) WO1997005159A2 (zh)
ZA (1) ZA966315B (zh)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6479300B1 (en) * 1999-03-15 2002-11-12 Millipore Corporation Metal loaded ligand bound membranes for metal ion affinity chromatography
US7335383B2 (en) * 2001-01-16 2008-02-26 The Regents Of The University Of Michigan Generation of nitric oxide in vivo from nitrite, nitrate or nitrosothiols endogenous in blood
US7128904B2 (en) * 2001-01-16 2006-10-31 The Regents Of The University Of Michigan Material containing metal ion ligand complex producing nitric oxide in contact with blood
JP4283666B2 (ja) * 2001-06-21 2009-06-24 クローンテック ラボラトリーズ インク. 水溶性ポリマー金属イオンアフィニティ組成物、およびその使用方法
JP4293908B2 (ja) * 2001-11-28 2009-07-08 サンド・アクチエンゲゼルシヤフト 組換えヒトエリスロポエチンのクロマトグラフィー精製
US7294614B2 (en) * 2004-10-12 2007-11-13 Clontech Laboratories, Inc. Phosphoprotein affinity resins and methods for making and using the same
US20080241208A1 (en) * 2005-06-30 2008-10-02 Charles Shanley Methods, Compositions and Devices For Promoting Anglogenesis
WO2007064895A2 (en) * 2005-12-02 2007-06-07 The Regents Of The University Of Michigan Polymer compositions, coatings and devices, and methods of making and using the same
AU2011343813B2 (en) 2010-12-15 2015-05-21 Takeda Pharmaceutical Company Limited Eluate collection using conductivity gradient

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ES8302778A1 (es) * 1980-11-10 1983-02-01 Genentech Inc Un procedimiento para producir un polipeptido antiviral.
US4885166A (en) * 1985-06-11 1989-12-05 Ciba-Geigy Corporation Hybrid interferons
CA1304886C (en) * 1986-07-10 1992-07-07 Heinz Dobeli Metal chelate resins
US5169936A (en) * 1989-04-14 1992-12-08 Biogen, Inc. Protein purification on immobilized metal affinity resins effected by elution using a weak ligand
US5136025A (en) * 1990-04-04 1992-08-04 California Biotechnology Inc. Method to purify basic fibroblast growth factor

Also Published As

Publication number Publication date
DK0840746T3 (da) 2004-11-29
EP0840746A2 (en) 1998-05-13
EP0840746B1 (en) 2004-10-06
WO1997005159A2 (en) 1997-02-13
ZA966315B (en) 1997-01-27
AU6700796A (en) 1997-02-26
US5990289A (en) 1999-11-23
CA2226080A1 (en) 1997-02-13
DE69633567T2 (de) 2006-02-23
PT840746E (pt) 2004-12-31
ATE278705T1 (de) 2004-10-15
JP3833255B2 (ja) 2006-10-11
JPH11509853A (ja) 1999-08-31
DE69633567D1 (de) 2004-11-11
WO1997005159A3 (en) 1997-03-06
ES2227603T3 (es) 2005-04-01

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP4422797B2 (ja) ペプチドおよび核酸のクロマトグラフィー的分離法、ならびに新規な高アフィニティーイオン交換マトリクス
CA2784278C (en) Wash solution and method for affinity chromatography
EP1786273B1 (en) Sequential protein isolation and purification schemes by affinity chromatography
TW442492B (en) Process for the enrichment of interferon
US7351801B2 (en) Method, use and kit for separating albumin from contaminants in a liquid
Menegatti et al. Alkaline-stable peptide ligand affinity adsorbents for the purification of biomolecules
CN105777862A (zh) 使用mes和mops作为流动相改性剂从多峰树脂洗脱生物分子
US9580692B2 (en) Method for endotoxin removal
Emir et al. A new metal chelate affinity adsorbent for cytochrome c
Andersson et al. Evaluation of the interaction of protein α-amino groups with M (II) by immobilized metal ion affinity chromatography
Wei et al. Preparation of a monolithic column for weak cation exchange chromatography and its application in the separation of biopolymers
Siebers et al. Rapid, high yield purification and characterization of the K (+)-translocating Kdp-ATPase from Escherichia coli.
Müller et al. Size fractionation of DNA fragments ranging from 20 to 30000 base pairs by liquid/liquid chromatography
WO1996025425A1 (en) Purified tetanus toxoid and toxin
Porath Charge-transfer adsorption in aqueous media
Bresolin et al. Adsorption of human serum proteins onto TREN-agarose: Purification of human IgG by negative chromatography
JP2023529187A (ja) 混入dnaをより効果的に除去するための、アデノ随伴ウイルスの精製の強化
JP6303379B2 (ja) 抗体の精製方法
Liou et al. A poly (2-hydroxyethyl methacrylate)-based immobilized metal affinity chromatography adsorbent for protein purification
Martins et al. Immobilized metal affinity chromatography of monoclonal immunoglobulin M against mutant amidase from Pseudomonas aeruginosa
Hammond et al. High-resolution fractionation of proteins in downstream processing
WO2019035935A1 (en) COMPOSITIONS AND METHODS FOR AMINO ACID DEPLETION THERAPY
Smith et al. Use of 5′-UTP-agarose for ribonuclease affinity chromatography
Miller et al. Biochemical characterization of the antimicrobial histone released by deoxyribonuclease and lactic acid
Påhlman Adsorption of proteins at high salt concentrations on hydrophobically interacting matrices

Legal Events

Date Code Title Description
GD4A Issue of patent certificate for granted invention patent
MM4A Annulment or lapse of patent due to non-payment of fees